The Project Gutenberg eBook of Handbuch der Pharmakognosie This ebook is for the use of anyone anywhere in the United States and most other parts of the world at no cost and with almost no restrictions whatsoever. You may copy it, give it away or re-use it under the terms of the Project Gutenberg License included with this ebook or online at www.gutenberg.org. If you are not located in the United States, you will have to check the laws of the country where you are located before using this eBook. Title: Handbuch der Pharmakognosie Zweiter Band. Spezielle Pharmakognosie Author: A. Tschirch Release date: August 19, 2023 [eBook #71452] Language: German Original publication: Leipzig: Verlag von Chr. Herm. Tauchnitz, 1912 Credits: Peter Becker, Reiner Ruf, and the Online Distributed Proofreading Team at https://www.pgdp.net (This file was produced from images generously made available by The Internet Archive) *** START OF THE PROJECT GUTENBERG EBOOK HANDBUCH DER PHARMAKOGNOSIE *** #################################################################### Anmerkungen zur Transkription Der vorliegende Text wurde anhand der Buchausgabe von 1912 so weit wie möglich originalgetreu wiedergegeben. Typographische Fehler wurden stillschweigend korrigiert. Ungewöhnliche und heute nicht mehr verwendete Schreibweisen bleiben gegenüber dem Original unverändert; fremdsprachliche Ausdrücke wurden nicht korrigiert. Schreibweisen für die Namen von Rohprodukten, chemischen Substanzen, Handelswaren, sowie Personen- und Ortsnamen sind nicht einheitlich. Das Original wurde in Frakturschrift gesetzt; besondere Schriftschnitte werden im vorliegenden Text mit Hilfe der folgenden Sonderzeichen gekennzeichnet: kursiv: _Unterstriche_ fett: =Gleichheitszeichen= gesperrt: +Pluszeichen+ Kapitälchen: ~Tilden~ Das Caret-Symbol (^) steht für ein nachfolgendes hochgestelltes Zeichen. Tiefgestellte Zeichen werden in geschweifte Klammern gesetzt; zusätzlich wird noch ein Unterstrich vorangestellt, wie z.B. bei der Angabe des spezifischen Drehwinkels [α]_{D}. #################################################################### HANDBUCH DER PHARMAKOGNOSIE VON A. TSCHIRCH ZWEITER BAND SPEZIELLE PHARMAKOGNOSIE [Illustration] LEIPZIG 1912 VERLAG VON CHR. HERM. TAUCHNITZ HANDBUCH DER PHARMAKOGNOSIE VON A. TSCHIRCH ERSTE ABTEILUNG MIT 237 ABBILDUNGEN IM TEXT UND AUF EINGEHEFTETEN TAFELN, SOWIE 3 KARTEN [Illustration] LEIPZIG 1912 VERLAG VON CHR. HERM. TAUCHNITZ Das Recht der Übersetzung in fremde Sprachen ist vorbehalten DIE VERLAGSHANDLUNG Inhaltsübersicht zur ersten Abteilung des zweiten Bandes. Seite Einleitung 3 I. =Kohlehydratdrogen= (A bis D umfassen die Süßstoffdrogen) 6 A. +Drogen, die einen Zucker oder einen verwandten Süßstoff mit sechs Kohlenstoffatomen enthalten.+ a) Drogen, die Hexosen als Monosaccharide enthalten 6 Invertzuckerdrogen. Drogen, welche vorwiegend aus Invertzucker bestehen oder viel Invertzucker enthalten 8 α) _Mel_ 8 β) Blüten _Flos Verbasci_ 15 _Bassiablüten_ 23 γ) Früchte und Fruchtstände _Caricae_ 24 _Dactyli_ 35 _Passulae_ 39 δ) Zu Roobs oder Pulpen verarbeitete Früchte 43 _Fruct. Juniperi_ 44 _Fruct. Sambuci_ 53 _Fruct. Pruni_ 57 _Fruct. Jujubae_ 60 _Sebesten_ 61 _Fruct. Myrtilli_ 62 ε) Frische, zu Sirupen verarbeitete Früchte. _Fruct. Rubi idaei_ 65 _Fruct. Rubi fruticosi_ 70 _Fruct. Cerasi acidi_ 71 _Fruct. Mori_ 74 b) Drogen, die Sorbit enthalten 76 c) Drogen, die Glukuronsäure enthalten 76 _Rad. Liquiritiae_ 77 _Succus Liquiritiae_ 93 d) Drogen, welche Mannit enthalten. 1. _Eschenmanna_ 103 2. _Australisches Manna_ 113 3. _Platanus-Manna_ 113 4. _Manna von den Capverdischen Inseln_ 113 5. _Harlálumanna_ 113 6. _Olivenhonig_ 113 e) Drogen, welche Dulcit enthalten 113 _Madagaskar-Manna_ 114 B. +Drogen, welche Disaccharide von Hexosen enthalten+ 114 1. Rohrzuckergruppe. I. Drogen, welche aus Rohrzucker bestehen. Saccharum I. _Rohrzucker aus Zuckerrohr_ 117 II. _Rübenzucker_ 122 III. _Ahornzucker_ 126 IV. _Palmzucker_ 128 V. _Sorghumzucker_ 129 VI. _Andere Rohrzucker liefernde Materialien_ 130 II. Rohrzucker enthaltende Mannaarten. a) _Alhagi-Manna oder Terendschabin_ 131 b) _Tabaschir_ 132 c) _Californisches Manna_ 133 d) _Blue Grass Manna_ 133 e) _Weidenmanna oder Bide Khecht_ 133 f) _Eichenmanna oder Gueze-elefi_ 133 g) _Schîr-Khist_ 134 h) _Tamarixmanna_ 135 III. Rohrzuckerfrüchte. _Fructus Ceratoniae_ 136 2. Trehalosegruppe. _Trehalamanna_ 147 3. Milchzuckergruppe. _Milchzucker_ 148 C. +Drogen, welche Trisaccharide enthalten.+ a) _Eucalyptus-Manna_ 151 b) _Lärchen-Manna_ 151 D. +Drogen, welche Tetrasaccharide enthalten+ 152 E. +Polysacchariddrogen+ (keine Süßstoffdrogen, I-VII Inhaltsbestandteile, VIII Membranine). α) Zellinhaltsbestandteile. I. Stärkegruppe. I. Stärke aus unterirdischen Organen. a) _Amylum solani_ 158 b) Arrowroots 165 1. _Westindisches Arrowroot_ 166 2. _Maniok_ 171 3. _Ostindisches Arrowroot_ 174 4. _Queensland Arrowroot_ 175 5. _Tahiti Arrowroot_ 176 6. _Guyana Arrowroot_ (und _Bananenstärke_) 176 7. _Batatenstärke_ 177 8. _Arumstärke_ 178 9. _Costarica Arrowroot_ 178 10. _Japanisches Arrowroot_ 178 II. Stärke aus Stämmen. 1. _Sago_ 178 2. _Andere Palmen-_ (und _Cycadeen-_)_Stärke_ 184 III. Stärke aus dem Endosperm von Samen. 1. _Amylum Tritici_ 184 2. _Amylum Oryzae_ 189 3. _Amylum Maidis_ 194 4. _Fructus Hordei_ 197 IV. Stärke aus den Cotyledonen von Samen. _Leguminosenstärke_ 198 II. Amylodextringruppe 198 _Macis_ 199 III. Dextringruppe _Dextrin_ 200 IV. Inulindrogen 201 Kompositenwurzeln 202 _Rad. Cichorei_ (Cichorienkaffee) 202 _Rad. Taraxaci_ 207 _Rad. Bardanae_ 216 V. Lävulindrogen 218 VI. Triticindrogen 218 _Rhiz. Graminis_ 218 VII. Scillin-(Sinistrin-)Drogen 224 β) Membraninbildende Substanzen. VIII. Polysaccharide vom Charakter der Membranine. Membranin-Drogen 224 A. Zellulosindrogen 226 1. Celluloso-Membranin-Drogen 227 _Gossypium_ 229 _Pili haemostatici_ 246 Die Fasern 250 +Von Haaren gebildet+: _Baumwolle_, _Pflanzendunen_, _Pflanzenseiden_, _Einheimische Wollhaare_ 253 +Pflanzliche Bastfasern+: 253 _Lein_, _Hanf_, _Sunn_, _Nessel_, _Chinagras_, _Jute_, _Gambohanf_, _Neuseeländ. Flachs_, _Manilahanf_, _Pitafaser_, _Aloëhanf_, _Coir_ 254 _Papier_ 256 2. Reservezelluloso-Membranin-Drogen (Hemizellulosedrogen) 257 _Steinnuß_ 259 3. Lichenino-Membranin-Drogen (inkl. Amyloidmembranine) 263 _Pergamentpapier_ 263 _Lichen islandicus_ 264 _Lerp-Manna_ 273 4. Lignino-Membranin-Drogen 273 _Lignum Juniperi_ 276 _Holzstoff_, _Holzwolle_, _Waldwolle_ 276 5. Pectino-Membranin-Drogen 277 _Fruchtgelees_ 280 6. Koryzo-Membranin-Drogen 280 1. Schleime der Interzellularsubstanz Cryptogame Schleimdrogen 284 _Carrageen_ 284 _Stipes Laminariae_ 293 _Agar-Agar_ 304 I. Unbearbeitete Algen 304 _Agar v. Ceylon_, _Makassar_, _Japan. Moos_ 304 II. Aus Algen dargestellte Gelatinen 306 _Agar von Japan_ 306 2. Schleim der sekundären Membran 314 Schleime in Vegetations- u. Reproduktionsorganen von Phanerogamen a) Schleime in Samen 314 1. Schleimepidermen 314 _Sem. Lini_ 314 _Sem. Cydoniae_ 328 _Sem. Psyllii_ 337 2. Schleimendosperme 337 _Sem. Fenugraeci_ 338 b. Schleimzellen in der ganzen Pflanze verteilt 344 _Rad. Althaeae_ 345 _Fol. Althaeae_ 354 _Flos Althaeae_ 357 _Folium et Flos Malvae_ 357 _Flos Malvae arboreae_ 363 _Flos Tiliae_ 366 c) Schleimzellen in Knollen 374 _Tuber Salep_ 374 d) Schleimzellen in Rinden 386 _Cort. cinnamoni_ 386 _Cort. ulmi_ 386 7. +Gummo-Membranin-Drogen+ 386 Die Gummis 386 _Traganth_ 387 _Falsche Traganthe_ 405 _Gummi arabicum_ 406 I. Acaciengummi 426 A. _Afrikanisches Gummi_ 426 a) _Nilgummi_ 426 1. Westliches Gummi, _Cordofan-_, _Sudangummi_ 426 2. Östliches Gummi, _Sennaargummi_ 428 _Gedarefgummi_ 428 _Ghezirehgummi_ 428 _Talhgummi_, _Santa- oder Suntgummi_, _Kuk-Gummi_, _Kakamut_, _Kadab_ 429 _Suakimgummi_ 430 _Somaligummi_ 430 _Massauagummi_ 430 _Adengummi_ 430 _Geddagummi_, _Berberisches Gummi_ 430 Anhang: Gummi aus Arabien _Litty_, _Sarki_, _Fachmi-Gummi_ 430 b) _Senegalgummi_ 431 c) _Maroccogummi_ 433 d) _Tunis- und Tripolisgummi_ 434 e) _Capgummi und Orange River-Gummi_ 434 f) _Gummi aus den Deutsch-Afrikanischen Kolonien_: Deutsch-Ostafrika, Deutsch-Südwestafrika, Angra Pequena, Deutsch Adamaua, Togo 434 g) _Gummi von Angola_ 435 h) _Gummi von Nord-Nigeria_ 435 i) _Gummi von Réunion_ 435 B. _Indisches Acaciengummi_, _Ghati_ 435 C. _Australisches Acaciengummi_ 436 D. _Amerikanisches Acaciengummi_ 436 II. Gummi von Pflanzen, die nicht zur Gattung Acacia gehören A. _Indische Gummis_ 437 B. _Javanische Gummis_ 439 C. _Australische Gummis_ 439 D. _Amerikanische Gummis_ 439 _Prunoideengummi_ 455 Anhang. B. Membranine, die keine Polysaccharide enthalten oder von denen es noch nicht sicher ist, ob sie solche enthalten. 1. Suberino-Membranin-Drogen 456 _Kork_ 457 2. Pollenino-Membranin-Drogen 472 _Lycopodium_ 473 3. Mycino-Membranin-Drogen 482 _Fungus igniarius_ 485 4. Silico-Membranin-Drogen 488 _Kieselgur_ 489 5. Carbono-Membranin-Drogen 492 _Carbo ligni_ 493 _Torfwatte, Torfmull_ 494 =II. Albuminoiddrogen= 494 1. _Gelatine_ 495 2. _Os sepiae_ 497 3. _Cornu cervi raspatum_ 497 4. _Ichthyocolla_ 497 5. _Catgut_ 500 6. _Spongia_ 500 _Carbo Spongiae_ 503 _Lapis Spongiarum_ 503 7. _Seide_ 504 _Seidensurrogate_ 505 8. _Schafwolle_ 506 =III. Säuredrogen= 506 I. +Ameisensäuredrogen+ 508 _Formica_ 508 II. +Essigsäure- Propionsäure- Buttersäuredrogen+ 510 III. +Baldriansäuredrogen+ 510 _Rhizoma Valerianae_ 511 IV. +Oxalsäure- Bernsteinsäure- Apfelsäure-Drogen+ 526 _Extract. ferri pomati_ 527 V. +Weinsäuredrogen+ 527 _Weinstein_ 528 _Pulpa Tamarindi_ 528 VI. +Citronensäuredrogen+ 541 _Frische Citronen_ 542 _Citronensaft_ 542 =IV. Fett- und Wachsdrogen= 545 I. Vegetabilische Öle und pflanzliche Öldrogen 1. Trocknende Öle 553 _Semen Lini und Oleum Lini_ 553 _Fructus Cannabis und Oleum Cannabis_ 555 _Semen Papaveris und Oleum Papaveris_ 563 Andere trocknende Öle 570 2. Halbtrocknende Öle 570 Gruppe des Baumwollsamenöls _Semen Gossypii und Oleum Gossypii_ 570 _Semen Sesami und Oleum Sesami_ 573 _Semen Tiglii und Oleum Crotonis_ 579 Andere Öle der Baumwollsamenölgruppe 585 Gruppe der Cruciferenöle _Semen Rapae und Oleum Rapae_ 586 Andere Öle der Rübölgruppe 589 Gruppe des Erdnußöls _Fructus Arachidis und Oleum Arachidis_ 589 3. Nichttrocknende Öle Gruppe der Pruneenöle _Semen Amygdalae dulcis und Oleum Amygdalae_ 594 Andere Pruneenöle 604 Gruppe des Olivenöls _Fructus Olivae_ und _Oleum Olivae_ 608 Andere Öle der Olivenölgruppe 624 Gruppe des Ricinusöls _Semen Ricini_ und _Oleum Ricini_ 625 Andere Öle der Ricinusölgruppe 642 II. +Animalische Öle+ 1. Öle von Seetieren 642 a) Fischöle 642 b) Leberöle 643 _Oleum Jecoris Morrhuae_ 643 c) Trane 663 2. Öle von Landtieren 663 III. +Vegetabilische feste Fette und solche enthaltende Drogen+ 1. Myristinsäuregruppe 664 _Semen Myristicae_, _Macis_ und _Oleum Myristicae_ 664 Andere nutzbare Myristicaarten 689 Andere fettliefernde Myristicaceen 692 2. +Laurinsäuregruppe+ 693 _Fructus Lauri_ und _Oleum Lauri_ 694 _Fructus Cocos_ und _Oleum Cocos_ 700 Andere Vertreter der Gruppe 711 3. +Japansäure Gruppe+ 711 _Cera Japonica_ 711 4. +Ölsäuregruppe+ 713 _Fructus Elaeïdis_ und _Oleum Palmae_ 714 _Oleum Cacao_ 721 Andere Vertreter der Gruppe 724 IV. +Animalische feste Fette+ 724 1. +Körperfette+ 725 _Adeps suillus_ 726 _Sevum ovile_ 729 _Sevum bovinum_ 730 2. +Milchfette+ 732 _Butyrum_ 732 V. +Wachse+ 733 1. +Pflanzenwachse+ 733 _Carnaubawachs_ 734 Andere Pflanzenwachse 737 2. +Animalische Wachse+ 738 a) +Säugetierwachse+ 738 α) Walratgruppe 738 _Cetaceum_ 738 _Ambra_ 742 β) Cholesterinwachse. Wollfettgruppe 746 _Adeps Lanae_ 750 b) +Insektenwachse+ 756 _Cera flava_ (Bienenwachs) 757 _Chinesisches Insektenwachs_ 771 Zusätze und Berichtigungen zu Band II. Erste Abteilung 773 Verzeichnis der Tafeln und Karten der ersten Abteilung des zweiten Bandes. Seite Tafel I. Fabbrica liquirizia di Barone Senatore Compagna in Corigliano 94- 95 „ II. Interno di un solo frantoio (Fabbrica liquirizia di Barone Compagna. Dirett. Luigo Caruso) 94- 95 „ III. Lavorazione Biglie (Fabbrica liquirizia di Barone Compagna) 94- 95 „ IV. Zuckerrohr in Blüte (Java) 116-117 „ V. Zuckerfabrik in Java (Zucker aus Zuckerrohr) 118-119 „ VI. Ahornsaftgewinnung in America. Die Eimer am Baume befestigt während der Saison 126-127 „ VI a. Agar-Agar (Kanten-) Fabrik in Suwa Gori (Japan) 308-309 „ VII. Acacia Senegal Willd. 408-409 „ VIII. Anschneiden des Baumes zur Gummigewinnung 418-419 „ IX. Ausschwitzen des Gummis neben der angeschnittenen Stelle 418-419 „ X. Zweimal geschälte Korkeiche aus dem Korkeichenwald Hafir bei Tlemcen (Algier) 460-461 „ XI. Schwitzender Kohlenmeiler in Thüringen 492-493 „ XII. Kultur von Englischem Baldrian in Long Melford Medicinal Herb Farms 512-513 „ XIII. Tamarindus indica L. in Java 528-529 „ XIV. Terrassierte Olivenpflanzung bei Albergo in Ligurien 610-611 „ XV. Olivenernte, Racolta a mano, in Italien an einem ungewöhnlich grossen und reichtragenden Baume 612-613 „ XVI. Ricinus communis L. in Italien mit reifen Früchten 626-627 „ XVII. Die Flotille der Lofoten-Fischer begibt sich bei Morgengrauen auf den Dorschfang 644-645 „ XVIII. Öffnen der Dorsche auf dem Schiff und Versorgen der Lebern in Fässern 646-647 „ XIX. Myristica fragrans in Java. Frei stehender Baum in einem Zingiberaceengebüsch 664-665 „ XX. Melanesische Arbeiter bei der Coprabereitung 702-703 „ XXI. Copradarre der deutschen Handels- und Plantagen-Gesellschaft 704-705 „ XXII. Elaeïs guineensis in Kultur auf Java 714-715 „ XXIII. Palmölbereitung durch Eingeborene im Canoo 718-719 „ XXIV. Männlicher Pottwal 740-741 Karten. Die Feigenkultur im Mittelmeerdrogenreich 26- 27 Die Verbreitung der Korkeichenwälder in der Westprovinz des Mittelmeerdrogenreiches 458-459 Verbreitung der Olive im Mittelmeerdrogenreich 612-613 Zweiter Teil. Spezielle Pharmakognosie. Erste Abteilung. Non mihi sed studiis communibus ista paravi Sic vos non vobis mellificatis apes. C. ~Gesner~, Bibliotheca universalis. Einleitung. Bei der Besprechung der Aufgaben der Pharmakognosie habe ich (I. Teil, S. 6) als Ziel der Pharmakognosie als Wissenschaft neben der erschöpfenden allseitigen Behandlung der Einzeldroge +die Zusammenfassung des Zusammengehörigen unter gemeinsamen Gesichtspunkten+ bezeichnet. Welches sind nun diese allgemeinen Gesichtspunkte? Sollen wir morphologische benutzen? Das hieße sich auf den Standpunkt der Signatura (I, S. 886) stellen. Alle Wurzeln, alle Blätter, alle Samen in Kapiteln zusammenfassen, würde bedeuten, daß wir die betreffenden Drogen benutzen, weil sie Wurzeln, Blätter, Samen sind. Aber die Zugehörigkeit zu einer morphologischen Gruppe ist für die arzneiliche Anwendung ganz gleichgültig. Und aus dem gleichen Grunde sind aus dem anatomischen Bau, der inneren oder feineren Morphologie Einteilungsprinzipien nicht abzuleiten. Eher könnten wir schon die Drogen nach Pflanzenfamilien zusammenfassen. Denn es hat sich ja herausgestellt, daß wir häufig die gleichen oder ähnliche Bestandteile in den Gliedern ein und derselben Pflanzenfamilie antreffen und daß ~Caesalpini~ Recht hat, wenn er sagt: «Plantae quae generis societate junguntur, plerumque et similes possident facultates». Denn auf die Bestandteile kommt es an, die facultates, virtutes et vires. Aber auch hier treffen wir vielfach auf Unstimmigkeiten, vereinigen nicht zu Vereinigendes und trennen Zusammengehöriges. Zudem ist die pharmakognostische Ähnlichkeit der Arten einer Gattung und der Gattungen einer Familie nur selten so groß, daß die botanische Verwandtschaft mit der pharmakologischen und chemischen zusammenfällt. So bleibt denn schließlich nur das chemische System übrig (vgl. I, S. 228). +Wegen ihrer Bestandteile verwenden wir die Drogen.+ Ob eine Droge zu den Rubiaceen, den Zingiberaceen oder Lauraceen gehört, ist pharmakologisch ebenso gleichgültig, wie ob sie eine Wurzel, ein Blatt oder eine Blüte ist oder ob sie ein oder zwei Reihen Palisaden hat oder ob sie aus China bzw. Japan kommt. Für die Benutzung in der Medizin kommt nur in Betracht, was die Droge als wirksamen Bestandteil enthält. Läge nun der Fall so, daß jede Droge nur einen wirksamen Bestandteil oder nur eine Gruppe ähnlicher Bestandteile als wirksame enthielte, und wäre uns dieser Bestandteil für jede einzelne Droge bekannt, so läge die Sache sehr einfach. Dann wäre die Gruppierung der Drogen nach ihren Bestandteilen die einfachste Aufgabe der Welt. Aber, wie schon oben (I, S. 394) erwähnt, ist die Wirkung der Droge meist eine Mischwirkung und das Resultat mehrerer verschiedener Bestandteile. Wir werden also in einigen Fällen dieselbe Droge an verschiedenen Stellen des Systems unterbringen müssen. Dazu kommt, daß wir nur von einer kleinen Anzahl von Drogen die Bestandteile kennen oder angeben können, welches die wirksamen sind. Die Schwierigkeiten, welche sich der Gruppierung der Drogen nach chemischen Gesichtspunkten entgegenstellen, sind also beträchtliche. Aber sie müssen überwunden werden. Denn alle anderen Systeme sind nicht im Wesen der Sache begründet. Den Kern trifft nur das chemische System, kein anderes. Ich werde also die Drogen nach chemischen Gesichtspunkten ordnen und gruppieren, also nur solche aufnehmen, die chemisch einigermaßen untersucht sind. +Gar nicht oder nicht genügend chemisch untersuchte Drogen haben noch kein Anrecht auf Aufnahme in eine wissenschaftliche Drogenkunde. Sie gehören vorläufig nur in die Drogeninventare und Enzyklopädien.+ Ich bin mir sehr wohl bewußt, daß bei der von mir gewählten Darstellung zunächst etwas nicht ganz Vollkommenes herauskommen wird, wie ja auch die ersten Systeme, deren sich die Chemiker in ihren Handbüchern bedienten, unvollkommen waren, aber dem ersten Versuche wird ein zweiter folgen, der schon besser ist, dem zweiten ein dritter -- und je weiter unsere pharmakochemischen Kenntnisse fortschreiten werden, um so besser wird die Einteilung sich durchführen, eine um so grössere Zahl von Drogen wird sich im System an sicherer Stelle unterbringen lassen. Ganz unwesentlich erscheint es mir, daß einige wenige Drogen an verschiedenen Stellen unterzubringen sind. Nun, so erwähnt man sie eben an verschiedenen Stellen. Das ist doch kein so großes Unglück und zeigt uns nur die Mannigfaltigkeit der Beziehungen der betreffenden Droge. Man kann die Droge ja an der einen, der Hauptstelle, beschreiben und an der anderen nur erwähnen. (Über pharmakochemische Systeme vgl. im übrigen I, S. 216 u. flgd.) Jedenfalls darf die Pharmakognosie nicht länger eine Sammlung von Drogen-Monographien bleiben, ohne geistiges Band. Und dies geistige Band -- der die Artikel und Artikelgruppen verbindende Text -- spielt daher in der nachfolgenden Darstellung eine wichtige Rolle. Der Gang, den wir bei der Behandlung der pflanzlichen Drogen einzuhalten haben, ist vorgezeichnet durch den Weg, den die pflanzliche Zelle geht. Als Produkt der Assimilation der Kohlensäure entsteht meist zuerst ein +Zucker+. Man kann sich die Zuckerbildung aus Kohlensäure entweder über Formaldehyd (~Baeyer~) oder (~Löb~) in drei Phasen verlaufend denken: CO₂ + H₂O = CO + H₂ + O₂. 2(H₂ + CO) = CH₂OH.CHO. 3 CH₂OH.CHO = C₆H₁₂O₆. (In der Pflanze erfolgt die Zuckerbildung auch sekundär über Polysaccharide oder Pflanzensäuren, s. unten.) Aus dem Zucker entstehen einerseits die Polysaccharide, z. B. die Cellulosine: Gummi und Schleim, andererseits die Fette und andere aliphatische Substanzen. Denn «das in den Fetten enthaltene +Glycerin+ kann aus dem Traubenzucker durch Anlagerung von 4 Wasserstoff und Aufspaltung der Kohlenstoffkette entstehen, wie es selbst umgekehrt in Glycerose und Zucker übergeht. Und um die +Stearin- und Ölsäure+, welche gebunden an Glycerin in den meisten Fetten enthalten sind, vom Zucker abzuleiten, braucht man nur anzunehmen, daß von letzterem drei Moleküle durch ihre Aldehydgruppen so verkuppelt werden, wie es dem Formaldehyd bei der Zuckersynthese ergeht. Dann würde ein Molekül von 18 Kohlenstoffatomen resultieren, in welchem nur noch eine Verschiebung und Wegnahme von Sauerstoff nötig ist, um jene Säure zu erzeugen» (~Emil Fischer~). Doch kann man sich auch die Fettsäuren indirekt als aus Zuckerteilstücken aufgebaut denken. Andererseits kann man von den Kohlehydraten zu olefinischen Campherarten, zyklischen Terpenen, Retenderivaten und Phytosterinen gelangen. Die Brücke zu den zyklischen Verbindungen bildet der, wie wir jetzt wissen, weitverbreitete hexazyklische gesättigte +Inosit+, bei dem der Ringschluss eines sechsgliederigen Systems erfolgt ist, eines der ersten Glieder der hydroaromatischen Reihe, die in den Terpenen und Resinosäureharzen eine weitverbreitete Klasse pharmakognostisch wichtiger Stoffe liefert und der auch zum Phloroglucin hinüberleitet: C₆H₆(OH)₆ = C₆H₃(OH)₃ + 3 H₂O. Inosit Phloroglucin Dann folgen die ungesättigten, ringgeschlossenen aromatischen Substanzen und ihre Paarungen mit Gliedern der Zuckergruppe, die Glykoside, und den Beschluß machen die Alkaloide. So werden wir also vom Einfacheren zum Komplizierteren fortschreitend nacheinander die Zuckerdrogen, die Stärkedrogen, die Cellulosindrogen, die Drogen mit aliphatischen Säuren und sauren Salzen, die Fettdrogen, die Drogen mit ätherischen Ölen und anderen Riechstoffen, die Harzdrogen, die Drogen mit aromatischen Phenolen und die Tanniddrogen, die Glykosiddrogen und die Alkaloiddrogen behandeln und im einzelnen wieder die Einteilung nach der chemischen Struktur der wichtigsten Bestandteile, oder, wo dies angezeigt ist, nach Familienzusammengehörigkeit oder pharmakologischen Gesichtspunkten treffen. Die benutzten +Lehr- und Handbücher der Pharmakognosie+ sind in dem Kapitel «+Pharmakognostische Systeme+» (I, S. 216), die botanische Literatur in den Kapiteln +Pharmakosystematik+ (I, S. 298, 305, 326), +Pharmakomorphologie+ (I, S. 340) und +Pharmakoanatomie+ (I, S. 349, 354-356) aufgeführt. Die chemische Literatur wird bei jedem Kapitel zitiert werden. Bei einigen Kapiteln hat mich Prof. ~von Lippmann~ und Prof. ~Winterstein~ beraten. In etymologischen Fragen stütze ich mich besonders auf ~Grimm~, ~Kluge~ und ~Kanngiesser~. Die +Produktions-+, +Export-+ und +Importziffern+ sind vornehmlich den Handelsberichten und den Ausfuhr- und Einfuhrlisten von London, Hamburg, Amsterdam, New York, Buenos Aires, Rio de Janeiro, Japan, Singapore, Calcutta, Ceylon und Java entnommen. (Vgl. I, S. 181-184.) Einige Angaben verdanke ich auch den betreffenden Handelsministerien, z. B. dem Italiens, dem Department of commerce in Washington (U. S. A.), dem deutschen Handelsarchiv und anderen Quellen, wie dem Tropenpflanzer, dem Tableau général du commerce de France u. a. Für die durch Herrn Prof. ~Ed. Fischer~ in Bern freundlichst übernommene Bearbeitung der +pflanzlichen Schädlinge+ wurden hauptsächlich benutzt: ~P. Sorauer~, +Handbuch der Pflanzenkrankheiten+, 3. Auflage, zweiter Band, bearbeitet von ~G. Lindau~, Berlin 1908. -- ~A. B. Frank~, +Die Krankheiten der Pflanzen+, 2. Auflage, zweiter Band. Breslau 1896. -- ~von Tubeuf~, +Pflanzenkrankheiten+. Berlin 1895. -- ~P. A. Saccardo~, +Sylloge Fungorum omnium hucusque cognitorum+ Vol. XIII, 1898. -- ~M. Hollrung~, +Jahresbericht über das Gebiet der Pflanzenkrankheiten+. -- ~P. Sorauer~, +Zeitschrift für Pflanzenkrankheiten+. -- Auf die drei erstgenannten Handbücher seien auch diejenigen verwiesen, welche eingehendere Angaben suchen. Weitere Literaturnachweise finden sich in den einzelnen Abschnitten. Die tierischen Schädlinge hat Herr Apotheker ~Israël~ in Gera freundlichst zu bearbeiten übernommen. Im jeder Droge beigefügten +historischen Teil+ ist durchweg auf die Pharmakohistoria im I. Bande verwiesen. Dort sind die Quellen zu finden. Die Literatur wird entweder unter jedem Abschnitte oder am Schlusse des Artikels zitiert. I. Kohlehydratdrogen. Wir beginnen mit den Hexosen-Drogen; da sowohl Triosen wie Tetrosen nicht in den Heilpflanzen vorkommen, und Pentosen in freiem Zustande sehr selten sind. Die ersten faßbaren Assimilationsprodukte der Pflanze sind Hexosen. Der zu den Tetrosen in naher Beziehung stehende +Erythrit+: H H CH₂OH--C--C--CH₂OH, OH OH findet sich als Ester der Orsellinsäure in den _Roccella_arten. (vgl. _Lackmus_). 1. Süssstoffdrogen. A. Drogen, die einen Zucker oder einen verwandten Süßstoff mit sechs Kohlenstoffatomen enthalten. a) Drogen, die Hexosen als Monosaccharide enthalten. Die erste Gruppe der Zuckerarten ist die der Hexosen, die in Form von Monosacchariden auftreten. Sie entsprechen der Formel C₆H₁₂O₆ und sind bald +Aldosen+ (Mannose, Glukose [Traubenzucker, Dextrose, Stärkezucker, Harnzucker], Galaktose), bald +Ketosen+ (Fruktose [Fruchtzucker, Lävulose, Schleimzucker], Sorbinose, Tagatose). Sie sind in einer rechtsdrehenden, einer linksdrehenden und einer inaktiven Form bekannt, was auch in der Formel zum Ausdrucke kommt, z. B.: +Aldosen+ (Aldohexosen). CHO CHO CHO CHO CHO CHO | | | | | | OHCH HCOH HCOH OHCH OHCH HCOH | | | | | | HCOH OHCH HCOH OHCH HCOH OHCH | | | | | | HCOH OHCH OHCH HCOH OHCH HCOH | | | | | | OHCH HCOH OHCH HCOH OHCH HCOH | | | | | | CH₂OH CH₂OH CH₂OH CH₂OH CH₂OH CH₂OH A B C D E F A: l-Galaktose. B: d-Galaktose. [α]_{D} = +81°. Sechsseitige Tafeln. C: l-Mannose. D: d-Mannose. [α]_{D} = +14,25°. Rhombische Kristalle. E: l-Glukose. Links-Traubenzucker. F: d-Glukose. Rechts-Traubenzucker, Dextrose. Wasserfrei: α_{D} = +52,5°, F = 146,5°. Nadeln. Monohydrat: Tafeln oder blumenkohlartige Massen. +Invertzucker+ = Dextrose + Lävulose. +Ketosen+ (Ketohexosen). CH₂OH CH₂OH CH₂OH CH₂OH | | | | CO CO CO CO | | | | HCOH OHCH HCOH OHCH | | | | OHCH HCOH OHCH HCOH | | | | OHCH HCOH HCOH OHCH | | | | CH₂OH CH₂OH CH₂OH CH₂OH l-Fruktose d-Fruktose. Fruchtzucker, l-Sorbinose. d-Sorbinose. Lävulose. [α]_{D} = - 91°, F = 95-105°. Krusten, Warzen, Nadeln (sehr süß). (Über den Nachweis von Ketozuckern vgl. Rosin, Zeitschr. phys. Chem. 1903, 555). Monosaccharide vom Typus der Hexosen, besonders Dextrose und Lävulose (sehr selten freie Galaktose), finden sich in vielen Früchten reichlich, dürften aber kaum einer wachsenden Zelle fehlen. Ein Gemisch von Dextrose und Lävulose entsteht bei der Aufspaltung des Rohrzuckers (Saccharose s. d.), der ein Kondensationsprodukt dieser beiden Hexosen ist, z. B. durch das Enzym des Speichels der Biene (s. Honig). Die Rolle, die der Zucker in der Pflanze spielt, ist eine mannigfaltige. Bei den Organen, die den Zucker in so reichlicher Menge enthalten, daß sie zur Darstellung desselben benutzt werden können (Wurzel der Zuckerrübe, Stengel des Zuckerrohrs, Stamm der Zuckerpalmen), ist er in stark entwickeltem Speicherparenchym aufgespeichert, spielt also die Rolle eines +Reservestoffes+. In kleinen Mengen findet er sich aber in fast allen Organen, da er die Form darstellt, in der die Kohlehydrate wandern. Die Rolle, die er bei den Früchten spielt, ist eine verschiedene. Einmal mag er dort wohl zur direkten Sicherung der Keimung der Samen durch Herstellung eines nährstoffreichen Keimbettes, dann aber wohl als Anlockung von Vögeln dienen, die Früchte zu verspeisen, da Samen, die den Magendarmkanal passiert haben, meist leichter keimen. Durch Kultur ist dann der Zuckergehalt stark vermehrt worden. Das Pektin der Früchte entstammt der Interzellularsubstanz der Fruchtfleischzellen, die ich daher Protopektin genannt habe. Es ist löslich in Zuckerlösung, nicht in Wasser (~Tschirch~ und ~Rosenberg~). Diese Lösung gesteht in der Kälte zu einer Gallerte. Vielleicht steht die Zuckerbildung in den Früchten zur Pektinbildung, die die Auflockerung des Fruchtfleisches bedingt, in Beziehung. Die Umwandlung der Reservestärke in Zucker zur Zeit der Blütenstandsbildung läßt sich bei der _Sagopalme_ schön verfolgen, deren Stammstärke zu jener Zeit gelöst und als Zucker zu den Blütenstandsanlagen geschafft wird. Die Stärkekörner zeigen daher mehr oder weniger Auflösungserscheinungen (Korrosionen, vgl. den Artikel _Sago_). Quelle des Zuckers in den Früchten ist zum Teil die Stärke, zum Teil sind es vielleicht die in unreifen Früchten reichlich auftretenden Pflanzensäuren (Apfelsäure, Weinsäure, Zitronensäure) oder Tannide. Andererseits sind die Pflanzensäuren wohl auch Stufen des oxydativen Abbaues des Zuckers. Apfelsäure führende Früchte können in kalten Klimaten reifen, aber nicht weinsäurereiche, da die Apfelsäure bei viel niedrigeren Temperaturen in Zucker übergeführt wird. =Lit.= ~Emil Fischer~, Synthesen in der (Purin- und) Zuckergruppe. Vortrag, Braunschweig 1903 u. die Chemie der Kohlenhydrate und ihre Bedeutung für die Physiologie. Rede, Berlin 1894. Ferner Ber. d. d. chem. Ges. 1890 u. flgd. -- ~von Lippmann~, Chemie d. Zuckerarten. 1904. -- ~Tollens~, Kurzes Handbuch der Kohlenhydrate. -- ~Czapek~, Biochemie d. Pflanzen. In der lebenden Pflanze ist der Zucker immer im Zellsaft gelöst. In den Drogen findet sich Fruchtzucker und Rohrzucker oft auskristallisiert. Der +mikrohistochemische Nachweis der Hexosen in den Zellen+ der Drogen gelingt leicht durch die von ~Sachs~ zuerst 1862 auf mikrochemisches Gebiet übertragene ~Fehling~sche Reaktion. Man legt den nicht zu dünnen Schnitt 2-10 Minuten in eine konz. Kupfersulfatlösung, spült schnell mit destilliertem Wasser ab und trägt in eine siedende Lösung von Kalihydroxyd in Wasser. In den reduzierenden Zucker enthaltenden Zellen entsteht ein rotgelber Niederschlag von Kupferoxydul. Man kann auch den Schnitt direkt in ~Fehling~sche Lösung bringen, das Deckglas auflegen und bis eben zur Siedetemperatur erhitzen (~Meyer-Schimper~). Oder man benutzt die von ~Emil Fischer~ 1890 entdeckte, von ~Senft~ auf das mikrohistochemische Gebiet übertragene Reaktion mit Phenylhydrazin. Man legt das Präparat in ein Gemisch einer Lösung von Phenylhydrazinchlorhydrat und Natriumacetat und erwärmt. Nach dem Abkühlen zeigen sich in den glukosehaltigen Zellen Sphärite von Phenylglucosazon. Die Reaktion tritt aber auch unter Umständen bei saccharosehaltigen Zellen auf. Die direkte Methode von ~G. Kraus~, durch Einlegen der Schnitte in Glyzerin oder Alkohol den Zucker in Tröpfchenform zur Ausscheidung zu bringen, hat nur bei sehr zuckerreichen Geweben Erfolg. Unsicher sind die Reaktionen mit Thymol und Schwefelsäure, sowie mit α-Naphthol und Schwefelsäure, die ~Molisch~ angab, da sie außer mit Monosen auch mit den Substanzen eintreten, die unter den angegebenen Bedingungen solche abspalten oder Furolderivate bilden. Zur quantitativen makrochemischen Bestimmung des Zuckers bedient man sich jetzt allgemein der ~Allihn~schen Methode oder der Polarimetrie. =Lit.= ~Sachs~, Mikrochem. Reaktionen. Sitzungsber. Münch. Akad. 1859. Flora 1862 u. Pringh. Jahrb. III. Abgeändert wurde die Kupfersulfatmethode dann von ~Flückiger~ (Pharmakognos.), ~Schimper~ (Anleit. z. mikrosk. Unters. d. veget. Nahr.- und Genußm. 1900), ~A. Fischer~ (Pringsh. Jahrb. 22), ~Arthur Meyer~ (Mikrochem. Reakt. z. Nachw. d. reduzierenden Zuckerart. Ber. d. d. bot. Ges. 1885), ~Czapek~ (Sitzungsb. Wien. Akad. 1897) und ~Hoffmeister~ (Pringsh. Jahrb. 31. 1897). -- ~Poulsen~, Botanische Mikrochemie. 1881. -- ~Senft~, Sitzb. Wien. Akad. 1904 u. Über d. mikrochem. Zuckernachweis durch essigsaur. Phenylhydrazin. Pharmaz. Post 1902. -- ~Molisch~, Zwei neue Zuckerreakt. Sitzungsber. d. Wien. Akad. 97. 1886. Grundr. d. Histochemie d. pflanzl. Genußm. 1891 (vgl. auch Zeitschr. f. physiol. Chem. 1888). -- ~G. Kraus~, Botan. Zeit. 1876. -- ~Zimmermann~, Bot. Mikrotechn. 1892. Invertzuckerdrogen. Drogen, welche vorwiegend aus Invertzucker bestehen, oder viel Invertzucker enthalten. α) Mel. =Syn.= Honig -- Miel (franz.) -- Honey (engl.) -- Miele (it.) -- Miel (span.) -- honig (holl.) -- hunaja (finn.) -- méz (ung.) -- d.ᵉbasch (hebr.) -- shahad, mahd (hind.) -- madhu (= süß), mákshika (sansc.) -- Aasl, aaslun-nahal (arab., bei ~Ibn Baithar~: Asal) -- shahad, angabin, engebin (pers.) -- μέλι (n.-griech). =Etym.= Die Bezeichnungen in den romanischen Sprachen knüpfen an μέλι, mel an. Der Gote übersetzt das griech. μέλι mit milip. -- Alle spät. +germ.+ Dialekte haben das heutige Wort Honig, für das sich in den urverwandten Sprachen nichts findet. +ahd.+ honag, honang, +mhd.+ honec, +altnord.+ hunang, +schwed.+ honing, +dän.+ honning, +ags.+ hunig, +engl.+ honey, +altnfr.+ honog, +alts.+ honeg, hanig, +niederl.+ honigh, honing. Auch umgelautete Formen: hünic und hönic, hung (im Berndeutschen). ~Kluge~ bemerkt: der Ursprung steht nicht fest, man hat an gr. κόνις = Staub gedacht; Honig «körniger» (?). Honig ist Neutrum noch bei ~Luther~, auch noch bei ~Lessing~. Das erstemal männlich bei ~Kaisersberg~. Manche Schriftsteller schwanken dann -- so ~Goethe~; jetzt ist das Neutrum erloschen (~Grimm~). Über Met bemerkt ~Kluge~: +mhd.+ mēt, mëte, +ahd.+ mëto, mitu, «Met» = +angels+. meodo, +engl.+ mead «Met», +anord.+ mjqõr (das germ. mëdur erscheint +spätlatein.+ als medus, vorher +afrz.+ mietz) ein gemeingerman. und weiterhin auch gemeinidg. Wort (+idg.+ medhu): +skr.+ mádhu. «Honig, süßer Trank» +gr.+ μέθυ «Wein» +aslov.+ medu «Honig, Wein», +lit.+ midùs «Met» -- medùs «Honig»; +ir.+ mid. Dazu +altind.+ mádhu «süß, lieblich», woraus sich der Wechsel der Bedeutung von +idg.+ medhu «Met, Honig, Wein» erklärt, eigentl. «Süßer», vielleicht berauschende Flüssigkeit. =Herkunft.= Die Biene, =Apis mellifica= L. (Hymenoptera, Trib. Aculeata), die in zahlreichen Varietäten oder Rassen, von denen einige jetzt auch als gute Arten betrachtet werden, über ganz Europa, Afrika und einen großen Teil von Asien verbreitet ist -- und zwar nur die +Arbeitsbiene+ -- entnimmt («leckt, schöpft») mit ihrer zu einem Rüssel stark verlängerten dreilappigen Unterlippe (Zunge, Fig. 1 S.R.) aus den Nektarien der Blüten zahlreicher Pflanzen (seltener auch aus extrafloralen Nektarien) den von der Pflanze als Anlockungsmittel der Insekten behufs Sicherung der Befruchtung der Blüte gebildeten, vorwiegend Saccharose (Rohrzucker) enthaltenden Saft (Nektar). Diesen Saft invertiert die Biene in dem 45-60 mgr. Flüssigkeit fassenden Vormagen (Honigmagen, Honigblase, Kropf, Fig. 1 H.M.) durch den Speichel der Speicheldrüsen, deren Sekret, da die Drüsen an der Basis des Saugrüssels münden (a in Fig. 1), sich beim Saugen mit dem Nektar mischt und mit diesem in den Honigmagen gelangt, und entleert ihn (zur Fütterung der jungen Brut) in die zuvor aus Wachs gebildeten Waben. Dort wird er weiter konzentriert. Beim Einsammeln des Nektar setzt sich der Pollen der Antheren an die sog. Bürstchen (Borstenreihen an der Innenfläche des Tarsus) und Körbchen (von Borsten umgebene grubenartige Vertiefungen an der Außenseite der Hinterschiene) der Hinterbeine ab und mischt sich beim Entleeren des Honigs in die Wabe zum Teil dem Honig bei. Für 1 kg Honig ist der Besuch von 5600000 Kleeblüten erforderlich (~Wilson~) im Durchschnitt sonst von 100000 bis 2 Mill. Blüten. Ein Bienenvolk erzeugt c. 10-13 kg Honig. Honig ist also ein durch die Pflanze gebildetes, durch das Ptyalin des Speichels der Biene umgebildetes Produkt, dem häufig die Pollenkörner der Pflanzen, von denen die Biene den Nektar sammelte, beigemengt sind. Bisweilen läßt sich durch mikroskopische Analyse der Pollenkörner, die übrigens bei geseimtem Honig oft fehlen, feststellen, von welchen Blüten die Bienen den Honig sammelten und in besonders günstigen Fällen sogar, ob der Honig ein Frühlings-, Sommer- oder Herbsthonig ist. Denn die Blütezeit der Pflanzen ist ja innerhalb enger Grenzen festgelegt. Die in amerikanischen Honigen beobachteten Pollenkörner beschreibt ~Young~, die in deutschen gefundenen ~Pfister~ (s. Lit.). [Illustration: Fig. 1. +Schematische Darstellung der Saugvorrichtung der Biene.+ SR. Saugrüssel. K. Kopf. SpD. Speicheldrüsen. HM. Honigmagen (Oesophagus). VK. Verschlußklappe. Das Saugen erfolgt durch rhythmische Kontraktionen und Ausdehnungen des Honigmagens. Bei a tritt der Speichel hinzu (+Tschirch+).] ~Villiers~ et ~Collin~ (Altérations et Falsific. p. 842) geben die +Pollenkörner+ folgender Pflanzen als im Honig vorkommend an: _Tilia_, _Origanum_, _Lavendula_, _Melissa_, _Rosmarinus_, _Linum_, _Vaccinium Myrtillus_ u. and. _Ericaceen_, _Salvia officinalis_, _Verbascum Thapsus_, _Melilotus_, _Epilobium_, _Ledum_ und Kompositen-Synanthereen (Abbildung a. a. O. und auch in ~Winton-Moeller~, Microscopy 1906). Im Honig von Chamonix: _Erica_, _Vaccinium_, _Rhododendron_. In sog. giftigen Honigen (aus der Schweiz, Mingrelien, Pennsylvanien und Carolina) sollen sich Pollenkörner von _Aconitum Napellus_ und _Lycoctonum_, _Andromeda Mariana_, _Kalmia angustifolia_, _latifolia_ und _hirsuta_, _Azalea pontica_ und _Rhododendron ponticum_ finden. Bisweilen kommt es auch vor, daß die Bienen, besonders wenn sie nicht genug Blüten finden, das süße dextrinreiche Sekret der Blattläuse, das diese auf den Blättern absetzen, sammeln. Dieser meist minderwertige Honig heißt +Honigtauhonig+. =Beschreibung.= Honig bildet eine klare, dicke, gelbliche oder gelbbräunliche Flüssigkeit oder eine durch auskristallisierten, im Mikroskope in Form von Tafeln und Blättchen erscheinenden Traubenzucker (Dextrose) mehr oder weniger trübe, weißliche Masse. Farbe und Geruch des Honigs wechselt nach der Provenienz, der Geruch z. B. nach der Art der vornehmlich besuchten Blüten. Honig soll bisweilen auch die anderen Eigenschaften der besuchten Pflanzen annehmen, also wenn diese giftig sind (Ranunculaceen, _Aconitum_; Ericaceen, Apocyneen, _Nerium_, _Daphne_, _Azalea_, _Datura_, _Rhododendron_) giftig werden können. Der in Abyssinien in der Nähe von _Kusso_gärten gesammelte Honig besitzt die täniciden Eigenschaften des _Kusso_ und wird wie _Kusso_ benutzt. ~Kebler~ fand (1896) in giftigem Honig einen Körper ähnlich dem Andromedotoxin. Giftiger (_Rhododendron_-) Honig ist auch neuerdings wieder in Indien beobachtet worden (~Ainslie~), sowie in Pennsylvanien und im Kaukasus und (1905) in Neuseeland (~Kühn~). Nach anderen hat die Giftigkeit einer Pflanze keinen oder nur bedingten Einfluß auf die Wirkung des Honig. Das erscheint wahrscheinlich, denn von den Nektarien wird ja wohl nur Zuckersaft aber keine giftige Substanz ausgeschieden. Die Sekrete der Drüsenhaare jedoch wird die Biene beim Besuche der Blüten leicht mit abstreifen und so mag sich wohl eine riechende Substanz oder ein anderer von den Drüsenhaaren gebildeter Körper bisweilen beimengen. ~Plinius~ bemerkt, daß _Thymian_honig sehr gut riecht und schmeckt, überhaupt viel besser ist als z. B. _Rosmarin_honig. Auch die Alphita (vgl. I, S. 652) erwähnt einen Mel thimenon. Der corsische Honig roch nach _Taxus_ und stand im Altertum in schlechtem Ruf. In Vorderindien gilt der Honig als der beste, der durch die Bienen von _Strobilanthes_-Arten und _Plectranthus rugosus_ gesammelt wird (~Watt~). ~Elbasri~ weiß (bei ~Ibn Baithar~) zu berichten, daß die Honige, die von _Satureja_ und die von _Absynth_ stammen, eine verschiedene arzneiliche Wirkung besitzen. Letzterer sei auch bitter. Und neuerdings wurde berichtet, daß auch der _Eucalyptus_honig besondere arzneiliche Wirkung besitzen solle, was sich aber nicht bestätigt hat. Die Blütenhonige sind ebenso wie die Frühjahrshonige heller als die Tannenhonige, die Wald- und Honigtauhonige. Die überseeischen Honige besitzen meist einen wenig angenehmen Geruch und Geschmack und sind auch oft unrein. Aus ungedeckelten Waben ausgeschleuderter Honig ist wasserreicher, daher dünnflüssiger («unreifer Honig»). Das spez. Gewicht des Honigs beträgt etwa 1,42 (1,406-1,478 ~Mader~). Es wird (nach Pharm. helv.) nicht direkt bestimmt, sondern in Lösung 1 : 2. Diese Lösung soll wenigstens 1,12 spez. Gewicht besitzen. Guter Honig ist haltbar (durch den Gehalt an Ameisensäure?). Wasserreicher geht leicht in Gärung über (Honigwein, Met, vgl. I, S. 1016) oder wird sauer. Lit. ~Arnold~, Der Honig, dessen Bedeutung, Wert und Verwendung. 1886. -- ~Pauly~, Der Honig. 1890. -- ~von Berlepsch~ und ~W. Vogel~, Die Bienenzucht auf ihrem jetzigen Standpunkte. Berlin 1899. =Einsammlung.= Die Biene bildet entweder in hohlen Bäumen oder an geschützten Stellen (wilde Biene), oder in den Bienenkörben und Bienenstöcken aus sechseckigen, senkrecht gestellten Zellen (Waben, Wachszellen) einen Bau. Dieser wird durch Horizontalschnitte geöffnet, die Waben entdeckelt. Man läßt dann den Inhalt einfach auslaufen (Jungfernhonig, Senkhonig) oder beschleunigt das Ausfließen durch Zentrifugieren (Schleuderhonig), oder Zerkleinern der Waben (Laufhonig), oder Druck und Wärme (ausgelassener Honig, Preßhonig). Der letztere wird meist geklärt (geseimt). Auch die anderen Sorten läßt man oft durch ein Sieb laufen. =Handelssorten.= Linden-, Heide-, Fenchel-, Klee-, Raps-, Buchweizenhonig sind ziemlich willkürliche Namen für gute Blütenhonige. Honigtau-, Wald-, Tannenhonig sind weniger gute. Der Handel unterscheidet: Wabenhonig (Scheibenhonig mit den Waben), Schleuderhonig, Leckhonig oder Senkhonig, Preßhonig, Laufhonig, Seimhonig, Landhonig, Stampfhonig. Ferner unterscheidet man noch: +Frühjahrshonig+ (aus den Blüten von Raps, Obstbäumen, Weiden usw.), +Frühsommerhonig+ (aus den Blüten von Klee, Hederich usw.), +Hochsommerhonig+ (aus den Blüten von Linde, Kornblume, Wicke, Bohne usw.), +Herbsthonig+ (aus den Blüten von Buchweizen, _Erica_ usw. gesammelt). Schon ~Dioskurides~ sagt: «Den Vorzug verdient der Frühjahrshonig, danach der Sommerhonig, der dickere Herbsthonig (Haidhonig) ist minderwertig». ~Aristoteles~ dagegen hält den Herbsthonig für den besten. ~Plinius~ meint, der beste Honig entstehe zur Zeit wo _Thymus_ und _Weinstock_ blühe. Der Großhandel liefert jetzt viel überseeischen Honig und man unterscheidet jetzt solchen von Chile (Fässer à 70 kg), Havana, Kuba, Mexiko, Californien und Hawai, letzterer in Kanistern à 25 kg, die zu zwei in einer Kiste verpackt sind. Von chilenischen, dem wichtigsten, werden die Sorten weiß steif 00 und 0, blond, gelb und braun angeboten. =Produktion.= Europa produziert jährlich c. 80000 t Honig. Deutschland, wo die Imkerei am rationellsten betrieben wird (z. B. in Holstein), allein 20000 t, Spanien 19000 t, Österreich-Ungarn 18000 t, Frankreich (bes. Narbonne) 10000 t. Geringere Mengen liefern Italien, Griechenland, Belgien, Holland, England und Rußland (Polen). Die überseeischen Länder lieferten 1907 c. 3¾ Mill. kg. Besonders viel kam aus Kuba, Chile, San Domingo, Mexiko, Peru, Kalifornien. Valparaiso (I, Fig. 250) ist ein großer Honighafen. 1908 lieferten Kuba 1320 t, Mexiko 370 t, Chile und Peru 700 t, Kalifornien und Nordamerika 56 t, die übrigen Länder 433 t (~Gehe~). Die Einfuhr nach Deutschland betrug 1909: c. 112000 kg aus Kalifornien und Nordamerika c. 630000 „ „ Chile und Peru c. 1505000 „ „ Kuba c. 370000 „ „ Domingo und Haiti c. 220000 „ „ Jamaika c. 405000 „ „ Mexiko c. 331000 „ „ Divers. Ländern ---------- c. 3573000 kg in Summa Die Einfuhr von Honig nach Hamburg betrug seewärts 1906: 40618, 1907: 40699, 1908: 36746 Doppelzentner (dz). Die Vereinigten Staaten von Nordamerika führten 1909 145691 Gallons Honig ein, hauptsächlich aus Kuba (nämlich 103092 Gall.), Frankreich 1908: 12832 Quintalm. besonders aus Deutschland und Chile. =Chemie.= Honig besteht hauptsächlich aus einer konzentrierten wässrigen Lösung von +Invertzucker+ (Frucht- und Traubenzucker), die 65-80% (bei Blütenhonigen meist 65-73%, bei Honigtauhonigen weniger) +Invertzucker+ (nach ~Sieben~: 34,7 Dextrose und 39,2 Lävulose) und 15-20% (höchstens 20% nach Schweiz. Lebensmittelb.) +Wasser+ enthält. Daneben finden sich geringe Mengen +Rohrzucker+ (Saccharose, 2-5, höchstens 10%), +Dextrine+ (unt. and. Achroodextrin, bis 4%, besonders viel, bis 10%, im Coniferenhonig), +Proteïnsubstanzen+ (0,15-1,8%), etwas +Farbstoff+, +Ameisensäure+ (~A. Vogel~) und +Apfelsäure+, sowie 0,1-0,8% (nach ~Röhrig~ im Mittel 0,214%, aber auch bisweilen unter 0,1 (~Kreiss~), nach ~Utz~ 0,013-0,703%, nach Pharm. helv. IV. 0,3-0,8%) +Mineralsubstanzen+. Spuren von +gummiartigen Substanzen+ und von +Riechstoffen+. Im ganzen 1,5% «+Nichtzucker+». Die saure Reaktion rührt zum Teil von der Ameisensäure her. Sie entspricht 0,04-0,15% dieser Säure. Nach ~Farnsteiner~ beruht aber die saure Reaktion des Honigs in der Hauptsache auf einer nichtflüchtigen Säure (Apfelsäure?). In der +Asche+ finden sich besonders +Phosphate+ (4-10% der Asche, meist nicht über 7%). ~Hehner~ gab (1885) an, daß natürlicher Honig 0,01-0,03% Phosphorsäure enthält, künstlicher nur Spuren. Die hellen Blütenhonige sind stets linksdrehend, Honigtauhonige und Coniferenhonige, welche dunkle Farbe haben, rechtsdrehend. Rechtsdrehende Naturhonige werden nach Ausfällung des Dextrins inaktiv oder linksdrehend. Die Rechtsdrehung rührt also vom Dextrin her. Die Dextrine, die in Coniferenhonigen vorkommen, scheinen unter sich verschieden zu sein (~Hilger~) und zu den Stärkedextrinen in keiner Beziehung zu stehen. ~Monheim~ hält das Honigdextrin für ein Disaccharid. Daß der Honig einen «besonderen» Zucker (also nicht Rohrzucker) enthält, fand bereits ~Lowitz~ 1792. In Lindenhonig fand ~Maquenne~ übrigens bis zu 40% Melezitose. Die ~Fiehe~sche Reaktion zur Unterscheidung von Natur- und Kunsthonig (Rotfärbung des Rückstandes der Ätherausschüttelung mit einer Lösung von Resorcin in rauchender Salzsäure) beruht darauf, daß dem nicht erwärmten Naturhonig ganz oder nahezu ganz das +β-Oxy-δ-methylfurfurol+, ein Zersetzungsprodukt der Fruktose, fehlt, das sich sowohl im Kunsthonig, wie im Invertzucker und dem Stärkesirup findet (~Keiser~). Entscheidende Bedeutung kommt ihr +nicht+ zu (~Lippmann~). Honig enthält immer +Enzyme+ (~Marpmann~ nimmt drei an: ein proteolytisches, ein invertierendes und ein alkoholbildendes). Dieselben entstammen offenbar den Speicheldrüsen der Bienen (Fig. 1 Sp D). Sie fehlen dem Kunsthonig. Über die +Zusammensetzung des Pollens und Nektars+ haben ~Wilson~, ~von Planta~ und ~Kressling~ Mitteilungen gemacht. Die Nektare enthalten bald nur Glukose, bald nur Saccharose, bald Glukose und Saccharose in wechselndem Verhältnis. Der Pollen dagegen, soweit untersucht, meist nur Saccharose (~Kressling~). Ameisensäure fehlt im Pollen und im Nektar. Sie wird von der Biene erzeugt. Der ~Honigtau~ (s. oben) enthält neben Saccharose und Glukose 8-39% Dextrin. Der «Futterbrei» (Futtersaft), welchen die fütternden Arbeiterbienen in die Zellen der Larven der Königinnen, Drohnen und Arbeiterinnen einlegen, enthält viel Stickstoffsubstanz (c. 43%) neben Fett und Glukose (c. 24%). Angaben über den Rohrzuckergehalt der Nektarienflüssigkeiten bei ~Lippmann~ S. 1047. =Lit.= ~Hasterlik~, Der Bienenhonig und seine Ersatzmittel. 1909 (dort die Literatur). -- ~v. Lippmann~, Chemie der Zuckerarten. -- Schweiz. Lebensmittelbuch 1908 und Deutsche Reichsvereinbarungen. -- ~Elsner~ in Realenzyklopädie (Prüfung). -- ~König~, D. menschl. Nahrungs- u. Genußmittel. 4. Aufl. 1904 (dort die wichtigste chem. Lit.). -- ~Browne~, Chem. analys. and composition of american honeys, including a microscopical study of honey Pollen by ~Young~ U. S. Dep. Agric. Bur. of chemistry 1908 (dort die Honigliteratur 1892-1907). -- ~Pfister~, Forschungsber. 1895 (Pollen). -- Ferner: ~Künnmann~ und ~Hilger~, Zur Chemie des Honigs. Forschungsber. 1896. -- ~E. Beckmann~, Beitr. z. Prüf. d. Honigs. Zeitschr. Anal. Chemie 35. -- ~v. Planta~, Bienenzeit. 1878 u. 1879. -- ~Bishop~, Journ. pharm. chim. (5) 10, 459. -- Tabelle der Zusammensetz. bei ~Villiers-Collin~, Altérat. et falsificat. -- ~Bensemann~, Pharm. Centralh. 1894. -- ~Hefelmann~, Zeitschr. angew. Chem. 1888. -- ~Farnsteiner~, Zeitschr. f. Unters. d. Nahr.- u. Genußm. 1908. -- ~Fiehe~, Zeitschr. f. Unters. d. Nahr.- u. Genußm. 1908. -- ~Keiser~, Beitr. z. Chem. d. Honigs. Arbeit. d. kais. Gesundheitsamtes. 1909. -- ~Kühn~, Pharm. Zeit. 1905, S. 642 (giftiger Honig). -- ~Röhrig~, Jahresb. d. Pharm. 1908, S. 435 u. ~Kreiss~, Ebenda (Asche). -- ~Marpmann~, Pharm. Zeit. 1903, S. 1010. -- ~Monheim~, Honigdextrin des Tannenhonigs. Jahresb. d. Pharm. 1903, S. 576. Ferner ist die Literatur d. Unters. der Nahrungs- u. Genußmittel zu vergleichen. =Pathologie=. Über =Schädlinge= berichtet Israël: Die als Schädlinge auf Arzneistoffen und arzneilichen Zubereitungen gelegentlich auftretenden Milben gehören hauptsächlich zur Familie der _Tyroglyphinen_. Es finden sich unter diesen scheinbar keine echten Schmarotzer. Sie leben auf sich langsam zersetzenden, faulenden, tierischen und pflanzlichen, namentlich auch zuckerhaltigen Stoffen, und sind deshalb auch oft da zu finden, wo Zuckerlösungen in Gärung begriffen sind. Auch auf fast allen getrockneten Früchten, wie _Feigen_, _Datteln_, _Rosinen_, _Pflaumen_ usw. trifft man sie häufig genug an. Aber nicht allein auf diesen, sondern auch auf allen möglichen anderen trockenen vegetabilischen und tierischen Substanzen und Rohstoffen findet man oft irgend eine Milbenart in einer erstaunlichen Massenvermehrung. Auf diese Stoffe gelangen die Milben gewöhnlich im Zustande der Wanderlarve, durch die Fliegen, welche diese kleinen Tiere an ihren Beinen verschleppen und verbreiten. Auf gärendem Rohhonig findet man nicht selten _Glycyphagus domesticus_, _Tyroglyphus longior_ und _siro_ (vgl. das Kapitel Pharmakopathologie, S. 380). Als =Schmarotzer= leben in den Bienenstöcken (nach ~Israël~): 1. Die Larvenzustände von _Meloë_arten, besonders die des bekannten, gemeinen Maiwurms _Meloë proscarabaeus_. Dieser Käfer legt seine Eier in den Sand, die ausgehenden Larven klettern an den Pflanzen empor und gehen in die Blüten. Von hier lassen sie sich von den Bienen selbst, an deren haarige Beinchen sie sich anklammern, in die Stöcke tragen, woselbst sie in eine Zelle kriechen, und zunächst das Bienenei fressen, und ihre weitere, ziemlich komplizierte Hypermetamorphose durchmachen. Die Larve macht nämlich, ehe sie sich endgültig verpuppt, mehrere erhebliche Verwandlungen durch. 2. Die schönen roten Larven der sog. Bienenwölfe, der Käfergattung _Trichodes_, besonders _apiarius_. Sie befallen mehr die wilden Bienenarten, besonders die Mauerbiene, seltener die Honigbiene. 3. Die Raupen von _Galleria mellonella_, der Wachsmotte, welche manchen Stock zum Eingehen bringen. _Galleria_ gehört zur Familie der Pyralidae, einer Unterfamilie der Mikrolepidopteren. Sie fressen lange Gänge durch die Waben und stören den Haushalt der Bienen durch ihre Menge oft bedeutend; auch werden sie gelegentlich Veranlassung zur Entstehung von Faulbrut. Die Bienenmotte ist sehr resistent. Tuberkelbazillen beeinflussen sie z. B. gar nicht. =Beimengungen und Verfälschungen=. Verdünnt man den Honig in einem Sedimentierzylinder stark mit Wasser, so setzen sich Pollenkörner und Wachsteilchen am Boden ab und können mikroskopisch diagnostiziert werden (s. oben S. 9). Sie sind regelmäßige Beimengungen. Unzulässig dagegen sind Bruchstücke von Organen der Biene und Bienenbrut, Stärke und Mineralsubstanzen, die sich event. ebenfalls im Sedimente finden. Als +Verfälschungen+ sind zu nennen: Wasser, Stärkezucker, Rohrzucker, Kunsthonig, Dextrin; selten kommen vor: Stärke, Leim, Glycerin, Melasse, Saccharin, Farbstoffe. (Über Honigfälschungen vgl. auch Pharm. Zeit. 1903, 142). Wer Fälschung des Honigs vornahm, wurde im Mittelalter mit dem Verluste einer Hand +oder+ mit 65 Pfund Pfennigen (!) bestraft. =Prüfung=. Außer der mikroskopischen Prüfung ist der Zucker, das Wasser, die Mineralstoffe, die Acidität zu bestimmen und auf Dextrin zu prüfen, sowie das optische Verhalten festzustellen, und zwar vor und nach der Inversion, vor und nach dem Ausfällen des Dextrins mit Alkohol. Eventuell ist Dextrin, Stickstoffsubstanz und Phosphorsäure zu bestimmen und auf Saccharin und Teerfarbstoffe zu prüfen. (Gute Prüfung in der Pharm. helvet. IV, dem Schweiz. Lebensmittelbuche und in ~Schmidt~, Lehrb. d. pharmaz. Chemie.) Grenzzahlen s. oben. Honige mit Stärkezucker- oder Rohrzuckerzusatz bleiben auch, wenn das Dextrin mit Alkohol ausgefällt wurde, rechtsdrehend, echte werden inaktiv oder linksdrehend. +Kunsthonig+ ist meist invertierter Rohrzucker, der mit Naturhonig verschnitten oder mit Honigparfüm parfümiert ist. Er enthält meist keinen Stickstoff, keine Enzyme, keine oder wenig (s. oben) Phosphorsäure und keine Ameisensäure. Aber auch Stärkezucker, der zuerst 1811 von ~Kirchhoff~ dargestellt wurde, wird als Honig verkauft. =Lit.= ~Fiehe~, Über d. Nachweis von Stärkesirup im Honig und in Fruchtsäften. Arb. d. kais. Gesundheitsamtes 32 (1909), Heft 1. =Verwendung.= Honig war im alten Ägypten das meistgebrauchte Heilmittel. Auch im Koran ist er die allgemeine «Arznei für die Menschen». Er bildete das Constituens des _Theriak_ (I, S. 551) und war ein Bestandteil des Kyphi (I, S. 473). Honig ist jetzt vorwiegend Genuß- und Nahrungsmittel. Große Mengen, besonders überseeischer Honige, verbraucht die Lebkuchenfabrikation. Die Medizin benutzt ihn als gelindes Abführmittel und Geschmackskorrigens, auch wohl zu Mund- und Gurgelwässern. _Oxymel Scillae_, _Hydromel_, _Mel boraxatum_ und besonders _Mel rosatum_ sind noch viel benutzte, zum Teil uralte ägyptische Mel-Composita (I, S. 469 und 539). Die äußerliche Anwendung, die im Altertum eine Rolle spielte, ist jetzt nicht mehr beliebt. Reine Lävulose wird jetzt als Nährmittel für Zuckerkranke empfohlen. =Geschichte.= Honig war eines der ersten Nahrungsmittel des Menschen. Milch und Honig war die Kost der Götter, die Ambrosia, die Zeus, der Zögling der Honignymphe Melissa, mischte. Mit Honig schläferte Zeus den Kronos ein. Von der heiligen Esche träufelte nach der nordischen Sage der Tau (Hunangsfall = Honigfall) und von ihm nährten sich die Bienen. Auch bei den semitischen Völkern stand Honig in hohem Ansehn. Er durfte zu Speisopfern nicht gebraucht werden. Die griechischen Dichter besangen ihn. Als ältestes Opfer der Griechen nennt ~Plato~ mit Honig bestrichene Früchte. Im Ägyptischen heißt Honig ꜥft (koptisch êbiô und ěfeiô), im Babylonischen dišpu. Er war in Ägypten wohl das ursprüngliche süßende Geschmackskorrigens der Arzneien und der Dattelsirup ist erst durch babylonische Rezepte in die ägyptische Pharmazie gekommen (vgl. I, S. 469). Schon die ältesten Kulturvölker betrieben die Zucht der Biene und die Gewinnung von Honig und Wachs. Lange bevor der Rohrzucker dargestellt wurde, diente der Honig als allgemeiner Süßstoff, der aber auch medizinisch innerlich und äußerlich benutzt wurde. Schon das Altertum unterschied mehrere Handelssorten. ~Dioskurides~ kennt neben attischem Honig (vom Hymettos) solchen von den kykladischen Inseln und von Sicilien, sowie Honig von Sardinien und (giftigen) pontischen Honig, der auch bei ~Xenophon~ erwähnt wird und der von _Azalea pontica_ und _Rhododendron ponticum_ oder von einer _Datura_ (~Flückiger~) gesammelt wurde (~Sprengel~). Kap. 101-103 des II. Buches von ~Dioskurides~ Heilmittellehre handelt περὶ μέλιτος melitos]. ~Plinius~ kennt auch Honig, von der Insel Calydna und pelignischen sowie von Creta, Cypern und Afrika, und endlich auch deutschen. Diätetische Honiggetränke der Alten waren: μελίκρατον (Honigmet), ὑδρόμελι (Wassermet, Aqua mulsa), οἰνόμελι (Mulsum), μελίκρατον γάλακτος, ὀξύγλυκον und ὀξύμελι (Oxymel). ~Suśruta~ (I, S. 505) nennt hellen und kupferfarbigen Honig und erwähnt aus Honig dargestellte Zuckerarten. _Hydromel_ und _Oxymel_ war eines der beliebtesten Heilmittel des ~Hippokrates~. Gegorener Honig bildete den +Met+ (I, S. 1016). Daß Honig im Altertum als Konservierungsmittel der Leichen vornehmer Personen benutzt wurde, ist schon oben (I, S. 1013) erwähnt worden. Wie ~Bastian~ (Die Völker des östlichen Asiens II, 27) mitteilt, ist dies noch gegenwärtig in Birma üblich. «Hohe Herren werden ein Jahr lang für das Leichenbegängnis, das viele Vorbereitungen erfordert, präserviert und um sie frisch zu erhalten, steckt man sie in Honig, als die sicherste Methode, die außerdem die billigste ist, da der geschenkte Honig sich wieder verkaufen läßt». Nach Nordamerika wurde die Biene 1675, nach Brasilien 1845, nach Australien 1862 gebracht. ~v. Lippmann~, der viele historische Notizen über den Honig mitteilt, erbringt den Nachweis, daß der Honiggenuß sich besonders bei vegetarisch lebenden Völkern entwickelt hat. Zur Merovinger Zeit bestand der Garten in Deutschland nur aus einigen Obstbäumen und Bienenstöcken (I, S. 619). In der Frankfurter Lisie von 1450 (I, S. 812) steht propoleos uel on (d. h. das aromatische Vorwachs der Bienen, propolis). =Lit.= ~von Lippmann~, Geschichte des Zuckers 1890 (darin eine Geschichte des Honigs als Vorgeschichte des Zuckers). β) Blüten. Flos Verbasci. =Syn.= Königskerze, Wollblume, -- Bouillon blanc, molène, bonhomme, herbe de Saint-Fiacre, Cierge de Notre dame (franz.) -- High taper, torch-weed, mollein, mullein, wool-blade (engl.) -- fiore di verbasco, tasso barbasso, barabasco, barbarastio mignattone, candela regia (ital.) -- őkőrfarkkoró (ung.) -- φλῶμος (n.-griech.). Wollkraut, Himmelskerze, Fackelkraut. Fackelblumen, Unser Frauen Heil, Himmelbrand, Manwoll, Marienkerzen, Osterkerze, Wiln, Zöllich. -- +ahd.+: Konigskrone, Konigskarcz, vullena, wullina; -- +mhd.+: bullen, himelbrant, königsworcz, kunigskerz, wislma, wulkraut; -- bei ~Brunfels~: Bergenkraut -- bei ~Bock~: waldwull -- bei ~Fuchs~ auch Kerzenkraut. ~Dioskurides~ (I, S. 564) kennt mehrere Arten φλομός, der weiße ist wohl _V. plicatum_ (oder _Thapsus_?, _plicatum_ ist nach ~Fraas~ in Griechenland häufiger), der schwarze _V. sinuatum_ (= φλομός ἡ μέλαινα des ~Theophrast~). Er bemerkt, daß die Römer den Phlomos: _Verbascum_ (gräzisiert Berbasclum) nennen. (Daraus ist dann Barbascum und Verbascum entstanden.) ~Plinius~ schöpft aus der gleichen Quelle. Auch der Name Thapsos war in Gebrauch. Ob die φλόμις λεύκη (und ἀῤῥέα) des ~Galen~ _V. phlomoides_ ist, wie ~Dragendorff~ will, ist mir zweifelhaft. Es wird wohl eine der südlichen Arten sein (s. unter Paralleldrogen). Die φλόμις ἡ θύαλλις (und ἡ ἄγρια?) des ~Galen~ soll _Verbascum limnense_? (fehlt im Kew Index) sein. Was der φλόμος des ~Hermes Trismegistos~ («Kraut des Merkur») ist, ist unbekannt. Das gleiche gilt von dem ägyptischen Phlomos heteros (Athal, kerykion, honnu rabdon). Man warf im Altertum _Verbascum_ vielfach mit der Labiate _Phlomis_ zusammen. Bei ~Ibn Baithar~ steht für _Verbascum_arten: Busir, Sikrân el-haut (= fischbetäubendes Gift), Flumis, Miknasat el-andar, Berbaschka. =Etym.= (φλομός vielleicht von φλέγομαι leuchten, φλόξ Flamme, weil Stengel und Blätter zu Lampendochten verwandt wurden (~Plinius~ 25, 74), oder weil der Blütenstand (vgl. Fig. 2) wie ein Leuchter, eine Fackel oder eine Kerze aussieht. Darauf deuten auch die Namen Candella regia, Königskerze, Fackelblume, Marien- oder Osterkerze, während andere, wie Wollblumen, Wollkraut, wullina, barbascum (von barba?) auf die Behaarung Bezug haben; wie die arabische Bezeichnung Adân ed-dobb (= Bärenohren). Molène, mullein (von mollis = weich) hat vielleicht auch hierauf Bezug oder auf den Schleimgehalt (?) -- _Thapsus_ steht zur gelben Farbe der Blüten, d. h. zu θαψος, θαψία in Beziehung, mit welchem Worte die Griechen nach der Insel Thapsos (Isola degli Magnisi) bei Syrakus (~Flückiger~) eine zum Gelbfärben benutzte Umbellifere (_Thapsia garganica_?) bezeichneten. Aus thapsus und barbascum wurde dann tassus barbassus, ja sogar taxus barbatus (so bei ~Crescenzi~ I, S. 678) gebildet, was ich übrigens für einen Fehler des Abschreibers halte. =Stammpflanze.= =Verbascum thapsiforme= ~Schrader~ (V. Thapsus L. var. thapsiforme ~Hook.~ fil., V. phlomoides ~Mey.~, V. Thapsus ~Poll.~, V. cuspidatum ~Schrad.~, V. Kicxianum ~Dumort~) und =Verbascum phlomoides= L. =Systemat. Stellung.= +Scrophulariaceae+, Pseudosolaneae -- Verbasceae. -- Sectio Thapsus. Euthapsi. =Beschreibung der Stammpflanze.= Die meisten neueren Floristen (z. B. ~Schinz-Keller~, Flora der Schweiz, 3. Aufl., 1909) und auch ~Engler-Prantl~ (Pflanzenfamilien) trennen _V. phlomoides_, die wildblumenähnliche Königskerze, von _V. thapsiforme_, der großblütigen, als Arten. ~Schumann~ bemerkt (in ~Berg-Schmidt~, Atlas S. 74): «~G. F. W. Meyer~ hat zuerst die Meinung ausgesprochen, daß _V. thapsiforme_ ~Schrader~ von _V. phlomoides_ L. nicht spezifisch zu trennen sei; wir können dieser Meinung, die auch ~Franchet~ und ~Flückiger~ geteilt haben, wohl beipflichten, da sich das aus den Blättern hergenommene Merkmal als kaum genügend erweist, um unserer Pflanze einen anderen Wert als vielleicht den einer Varietät zuzuerkennen». Jedenfalls sind beide sehr ähnlich und die Blüten +beider+ werden z. B. von Pharm. helvet. IV ausdrücklich zugelassen. Ich halte sie hier auseinander, ohne zu der Frage Stellung zu nehmen. ~Schinz-Keller~ beschreiben _V. thapsiforme_: 30-180 cm hoch. Laubblätter länglich, elliptisch, gekerbt, gelblich filzig. Jedes Laubblatt bis zum nächst unteren herablaufend. Blütenstiele kürzer als der Kelch. Krone radförmig, +doppelt so groß und heller gelb als bei+ _V. Thapsus_, sonst aber wie diese. _V. phlomoides_, 1-2 m hoch, Stengel aufrecht steif, einfach oder mit einzelnen aufrechten Ästen. Laubblätter länglich-eiförmig, gekerbt, die mittleren und oberen sehr verschieden stark herablaufend. Krone flach, etwa doppelt so groß und blasser als bei _V. Thapsus_, die zwei längeren Staubfäden 1½-2 mal so lang als ihre herablaufenden Staubbeutel, Narbe am Grunde herablaufend, spatelförmig. _V. Thapsus_, das bei uns auch ziemlich verbreitet ist, kommt für uns nicht in Betracht. Es hat viel kleinere Blüten. Dagegen scheinen seine Blüten (common mullein) in Nordamerika benutzt zu werden, wo die Pflanze enorme Höhen (über 7 Fuß) erreicht. Auch _V. phlomoides_ findet sich (wohl eingeschleppt) in den Vereinigten Staaten, z. B. in Massachusetts. [Illustration: Fig. 2. _Verbascum phlomoides_ L.] Wie nötig es ist, bei den Pflanzennamen der Drogen die Autoren beizusetzen, zeigte ~Holmes~ (Ph. journ. 1900, 418) an _Verbascum_. Es gibt fünf _V. phlomoides_ (_V. phlomoides_ L., _V. glomeratum_ ~Boiss.~, _V. Boerhavi_ L., _V. montanum_ ~Schrad.~, _V. lasianthum_ ~Boiss.~) und zwei _V. thapsiforme_ (_V. thapsiforme_ ~Schrader~ und _V. thapsiforme_ ~Guss.~). Die Königskerze ist eine prächtige Pflanze von großer Schönheit. Ihr kerzengerader Stengel mit den großen grauen Blättern und der blütenübersäten langen Infloreszenz machen sie zu einer der charakteristischsten Pflanzen unserer Flora (Fig. 2). _Verbascum thapsiforme_ ~Schrad.~ sowohl wie _V. phlomoides_ L. sind zweijährig. Im ersten Jahr entsteht nur eine große Blattrosette, im zweiten die Infloreszenz. Die spiralig gestellten Blätter sind oblong oder schmal umgekehrt eiförmig, meist sitzend, am Grunde mehr oder weniger bis zum nächsten Blatt herablaufend, gekerbt, zugespitzt, durch zahlreiche Büschelhaare dick filzig. (Die abgelösten Wollhaare werden als Zunder benutzt!) Die Blüten von _V. thapsiforme_ sind zu Dichasien vereinigt, die ihrerseits wieder, an einer langen Infloreszenzachse sitzend, einen sog. Blütenschwanz bilden. Sie entstehen zuerst einzeln in den Achseln der spiralig angeordneten, zugespitzten, an der Infloreszenzachse herablaufenden Deckblätter (den Hochblättern der Infloreszenz, Fig. 3 D). Die erste Blüte (Fig. 3, 1) hat zwei lanzettliche Vorblätter (α). In den Achseln dieser letzteren entspringen bald 2, bald 4, gleichfalls mit Vorblättern (β) versehene Blüten (3-3, 5-5). Bevor jedoch diese 2, bzw. 4, mit der Blüte 1 ein 3- bzw. 5blütiges Dichasium bildenden Blüten sich entfalten, entsteht zwischen diesem Dichasium und dem Deckblatte D, also unter Blüte 1, eine Beiknospe als Bereicherungssproß. Der Bereicherungssproß ist im einfachsten Falle einblütig. Meist jedoch entsteht zwischen dieser einen Blüte, die zuerst aufblüht (2), und dem Deckblatte noch eine zweite Blüte (4). Jede derselben hat 2 Vorblätter (γ). Bisweilen finden sich aber auch noch in den Achseln der Deckblätter der oberen, älteren Blüte zwei weitere, aber deckblattlose Blüten (6). Diese sind die zuletzt aufblühenden. Infolge des sehr verschiedenen Alters der Blüten blühen von diesen Teilinfloreszenzen meist nur eine oder zwei zu gleicher Zeit. Da sie aber alle nacheinander (in der Reihenfolge der Zahlen) zum Blühen kommen, so steht ein Blütenschwanz von _Verbascum thapsiforme_ von oben bis unten wochenlang in Blüte. Bald öffnet sich hier, bald dort eine Blüte (~Schumann~ und ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas). Der gamosepale, krugförmige, fünfzählige +Kelch+ ist außen dicht filzig behaart, 6-8 mm lang. Die fünf Zipfel sind eilanzettlich, länglich dreieckig und zeigen aufsteigend-dachziegelige Knospenlage. Er ist zygomorph. Die Haare sind entweder Drüsenhaare mit oft sehr zahlreichen sezernierenden Zellen oder Sternhaare mit 1-4 Etagen (Büschelhaare). Der Gipfelstern ist 3-6strahlig. Dergleichen Haare finden sich auch auf den Laubblättern. Der Fruchtknoten ist eiförmig. [Illustration: Fig. 3. Oben: Diagramm einer Partialinfloreszenz in der Achsel des Deckblattes D. Die Kreise sind die Blüten. Die Nummern 1-6 bezeichnen die Aufblühfolge. In der Mitte: Eine aufgeschnittene Corolle. Unten: Vollständige Blüte im Längsschnitt. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Die gleichfalls median-zygomorphe +Corolle, die sich sehr leicht ablösen läßt+, ist radförmig, 5zählig, sympetal, in der Mediane c. 3,5-4, bisweilen sogar 5 cm breit. An der Basis sind die 5 Blätter zu einer kurzen Röhre verwachsen. Die Zipfel sind fast kreisrund. Sie decken sich dachziegelig in absteigender Präfloration. Der unterste Kronenlappen ist oft erheblich größer als die beiden seitlichen. Die beiden obersten sind oft ⅓ kleiner als die unteren. Im Röhrenteile ist die Corolle dick-fleischig. Die 5 +Stamina+ sind der Corolle etwas oberhalb der Röhre eingefügt. Sie alternieren mit den Lappen. Sie setzen die Zygomorphie der Corolle in verstärkter Weise fort: die drei oberen sind anders ausgebildet als die zwei unteren. Die drei oberen sind c. 6 mm lang; sie besitzen eine nierenförmige, dem Filament quer aufgesetzte, mit Gipfelspalten aufspringende Anthere und sind von der Mitte an bis zur Spitze des Filamentes so dicht mit langen Haaren besetzt, daß man bei Betrachtung der frischen Blüte von oben den ganzen Schlund von einem Haarfilz erfüllt sieht. Sie dienen also gewissermaßen als Signal für das die Blüte besuchende Insekt, daß weiter unten in der Blüte nichts zu holen ist und weisen es auf die lebhaft roten Antheren hin. Die Haare sollen, nach ~Herm. Müller~, neben dem roten Pollen als Anlockungsmittel der Insekten dienen. «Vielleicht», bemerkt ~A. Meyer~, «scheiden sie irgend einen genießbaren Stoff aus, oder sind selbst eine gute Nahrung». Beobachtungen ~Tunmanns~ sprechen dagegen: es fanden sich niemals abgefressene Haare. So bleiben den Bienen, denn diese sind die hauptsächlichsten Besucher der Königskerze, da auch Nektarien fehlen, nur die roten Pollenkörner, und diese sind es denn auch, welche sie sammeln und als Futter für die Brut verwenden. Die _Verbascum_blüte gehört zu den «Pollenblüten». Die zwei unteren Stamina sind etwa 10 mm lang, meist ganz unbehaart und tragen die 3-4 mm lange Anthere an der inneren Seite der Spitze des Filamentes. Sie ist mit ihm ein Stück weit verwachsen. So verschieden aber auch ihr Bau von dem der behaarten Stamina ist: der Querschnitt durch die Anthere der langen sieht fast ganz gleich aus wie der Längsschnitt durch die Anthere der kurzen (vgl. den Anatom. Atlas). Der +Fruchtknoten+ ist eiförmig, etwa 2 mm lang, zweifächerig. Der +Griffel+ ist nur an der Basis behaart, c. 12 mm lang. Die ungleich-großen Narbenschenkel sind nur undeutlich voneinander gesondert. Die Narbenpapillenschicht läuft ein Stück weit am Griffel herab. Die wandspaltig aufspringende +Kapsel+ ist bis 1 cm lang und 8 mm breit. Die +Samen+ sind zylindrisch. Der in Endosperm eingebettete Embryo ist gerade. +Die Droge besteht nur aus der Blumenkrone mit den ansitzenden Staubfäden.+ _V. phlomoides_ ist über ganz Mittel- und Südeuropa verbreitet. Sie wächst von Frankreich bis Dänemark und Rußland, von Spanien und Italien bis zur Krim, im Himalaya von Kaschmir bis West-Tibet. _V. thapsiforme_ geht nicht so weit nach dem Süden und findet sich besonders in Mitteleuropa. _V. phlomoides_ ist viel seltener als _V. thapsiforme_. Beide finden sich oft in derselben Gegend. Beide bilden zahlreiche Bastarde (vgl. ~Pabst-Köhler~, Medizinalpflanzen). Sie bevorzugen bei uns Wegränder, trockene Hügel und Haiden, sowie steinige, unbebaute Orte und lichte Waldplätze. Sie blühen von Anfang Juli bis Mitte Oktober. Lit. ~Schrader~, Monogr. generis Verbasci. Göttingen 1813/23. -- ~Franchet~, Étude sur les Verbascum de la France et de l’Europe centrale. Vendôme 1875. -- Abbild. von _V. thapsiforme_ in ~Berg-Schmidt~ Atlas. 2. Aufl. Taf. 26 (dort auch die florist. Lit.); von _V. phlomoides_ in ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. Taf. 45. -- ~Eichler~, Blütendiagramme. -- ~Wydler~, Flora 1851, 411. -- ~A. Meyer~, Drogenkunde. -- ~Herm. Müller~, Befruchtung d. Blumen 1877, 272. -- ~Kerner~, Pflanzenleben. -- ~Tunmann~ (s. unten). -- ~Lavadoux~ (s. unten). =Pathologie.= Auf _Verbascum_ kommen verschiedene Parasiten vor, wie _Peronospora sordida_ ~Berk.~, _Erysiphe Cichoracearum_ (DC.), _Uromyces Scrophulariae_ (DC.) und andere, doch dürften dieselben für die Blüten keine Bedeutung besitzen (~Ed. Fischer~). Über die tierischen =Schädlinge= berichtet ~Israel~: 1. +Käfer.+ _Bruchus marginellus_ ~Fabr.~ Larve in den Blütenknospen von _Verbascum_arten. _Cionus scrophulariae_ L., _Cionus verbasci_ ~Fb.~ Larven skelettierend auf _Scrophularia-_ und _Verbascum_arten. _Gymnetron teter._ ~Fb.~ Larve an den Blüten und Blättern von _Antirrhinum-_ und _Verbascum_arten. _Gymnetron thapsicola_ ~Germ.~ In Süd- und Mitteldeutschland auf _Verbascum_arten. _Clytus verbasci_ ~Fabr.~ Käfer, häufig an _Verbascum_blüten; ob die Larve in den Stengeln von _Verbascum_arten lebt, erscheint fraglich. _Longitarsus verbasci_ ~Panz.~ Larve meist in langgeschlängelten Blattminen in den Blättern von _Verbascum Thapsus_ und _phlomoides_. 2. +Schmetterlinge.+ _Melitaea trivia_ W. V., Raupe, in Süddeutschland an _Verbascum Thapsus_ und anderen _Verbascum_arten. _Gortyna flavago_ ~Hb.~ Die Raupe lebt in den markigen Stengeln vieler Pflanzen, auch in _Verbascum_arten. _Cucullia verbasci_ L., _Cucullia scrophulariae_ W. V. Die schönen Raupen dieser Falter leben von den Blättern, Blüten, Knospen und Samenkapseln der _Verbascum-_ und _Scrophularia_arten. _Cucullia thapsiphaga_ ~Tr.~ Die Raupe dieses seltenen Falters lebt ebenfalls an _Verbascum_arten. _Polia xanthomista_ ~Hübn.~, Raupe an _Verbascum-_ und _Silene_arten. _Acronycta euphorbiae_ W. V. Raupe an _Plantago-_, _Euphorbia-_ und _Verbascum_arten. Außer diesen leben an _Verbascum_arten noch eine große Anzahl polyphager Eulenraupen. =Kultur und Einsammlung.= _Verbascum_arten werden in den +Bauerngärten+ Deutschlands, Österreichs und der Schweiz kultiviert, die sogar hier und da an Drogisten liefern, und sind auch meist ein Bestandteil der +Apothekengärten+ (I, S. 50). Als besondere Kulturorte in Deutschland seien genannt: Horb (Württemberg), Neudorf (Bruchsal), Schweinfurt (Schwebheim, Räthlein), Aken (a. d. Elbe), Ballenstedt (a. Harz), Blaubeuren, Schwarzenfeld (Nabburg), Sonderburg (Alsen). Vgl. I, S. 63. In Ungarn werden die Blüten von _V. phlomoides_ von wildwachsenden Pflanzen in größerem Maßstabe gesammelt (~B. Páter~), stammen aber auch aus Kulturen. Auch Österreich exportiert _Flos Verbasci_. Oberösterreich kultiviert die Pflanzen in größerer Menge. In Rußland produziert das Gouvernement Poltawa _Flos Verb. russic_. Im Gouvernement Moskau werden die Blüten von wildwachsenden Pflanzen gesammelt. Man sammelt nur die Blumenkrone samt den ihr inserierten Staubfäden im Juli und August an sonnigen Tagen bei trockenem Wetter und trocknet rasch an der Sonne, oder in dünner Schicht ausgebreitet bei künstlicher Wärme, die 30-35° nicht überschreiten sollte, unter Absaugung des Wasserdampfes, jedenfalls bei guter Lüftung. Sonst werden sie (durch Oxydasen) braun. Blüten, deren Enzyme abgetötet wurden, bewahren ihre Farbe (~Perrot~ und ~Goris~). Da die Blüten leicht Wasser anziehen, bewahrt man sie über Kalk auf. Auch vor Licht sind sie zu schützen. Die Haare werden abgesiebt. 7-8 Teile frische Blüten geben 1 Teil trockene. =Anatomie der Blüte.= Im Röhrenteile ist die Corolle außen und innen kahl und glänzend, unten fast farblos, oben gelb. Die Epidermiszellen der Ober- und Unterseite sind etwas palissadenartig gestreckt (Fig. 4). Die Cuticula der Ober- (Innen-) Seite ist wellig gefaltet. Die Epidermen beider Blattseiten (und nur diese) enthalten neben kleinen gelblichen Chromatophoren einen +gelben+ Zellsaft. Der Farbstoff (α-Anthoxanthin) ist in Wasser und Alkohol löslich. Die Epidermiszellen beider Seiten führen, der Außenseite genähert, einen kleinen hellen, stark lichtbrechenden Tropfen (Fig. 4 tro), der sich nicht in Chloral, Essigsäure, Kali oder Alkohol, wohl aber in Salzsäure und Schwefelsäure löst und sich mit Osmiumsäure nicht färbt. Diese Tropfen bedingen den eigenartigen Glanz der Blätter, den ~Kerner~ fälschlich als durch (aus Spaltöffnungen hervortretenden) Nektar hervorgebracht ansah. Er verwechselte die glänzenden Epidermiszellen mit Honigtröpfchen. Nektarien finden sich nicht. Die Blattunter-(Außen-)Seite ist durch zahlreiche Etagen-Sternhaare (Büschelhaare) dickfilzig. Diese Sternhaare besitzen 2-3 Etagen. Der Spitzenstern ist 3-6-, die Etagensterne 3-5strahlig. Das Mesophyll ist im Röhrenteile der Blüte ziemlich mächtig, wird aber in den Kronenlappen wenigschichtig. Es besteht aus einem zartwandigen, bisweilen ziemlich reich durchlüfteten, daher in der Droge weiß erscheinenden Parenchym, dessen Zellen oft noch mit dem Chromatophor verbundene Stärkekörner enthalten. In das Gewebe eingebettet findet man da und dort rundliche oder gestreckte +Sekretzellen+ mit verkorkter Wand, die, in eine homoge oder von zarten Fäden durchzogene Masse eingebettet, sehr kleine Tröpfchen enthalten, die durch Osmiumsäure sich schwärzen und wohl ätherisches Öl sind. Die Kronenröhre ist von 30 Bündeln durchzogen, fünf davon treten in die Filamente der Stamina, je fünf in je einen der Kronenzipfel, sich hier reich verzweigend. In der Epidermis der Filamente finden sich neben gelbem Zellsaft wulstige +rote+ Chromatophoren (Fig. 5 chro), die durch Schwefelsäure gelb werden, während sich der Zellsaft bläulich färbt. Die Haare der drei oberen Stamina sind ziemlich lang, bleiben aber trotzdem einzellig. Sie sind an der Spitze keulenförmig und zeigen auf der Oberfläche zahlreiche derbe, oft in Reihen angeordnete Cuticularwärzchen (Fig. 5, 2). In der Droge sind sie oft bandartig zusammengefallen oder gedreht. Bisweilen schon in der Droge, besser bei Blüten, die frisch in Alkohol eingelegt wurden, findet man in diesen Haaren eigenartige Sphärokristalle. Dieselben wurden von den früheren Beobachtern ziemlich übereinstimmend für Zucker gehalten. Nach ~Tunmann~s Ansicht sind sie Hesperidin (s. weiter unten), resp. ein zur Hesperidingruppe gehöriger Körper. [Illustration: Fig. 4. _Verbascum thapsiforme._ 1. Querschnitt durch die Kronenröhre an der Basis der Corolle. 2. Querschnitt durch einen Kronenlappen am oberen Teil der Corolle. 3. Flächenansicht der Epidermis der Oberseite der Corolle. 4. Flächenansicht der Unterseite der Corolle. [Nach +Tschirch-Oesterle+.]] Die +Pollenkörner+ sind rundlich, besitzen eine stäbchenführende Exine, die diese feinpunktiert erscheinen lässt und drei Austrittsstellen für den Pollenschlauch. Sie sind meist mit Tropfen eines roten Öles so stark bedeckt, daß die aufgesprungenen Antheren orangerot erscheinen. Ähnliche von einigen Autoren auch für Hesperidin gehaltene +Sphaerokristalle+, wie oben bei den Staubfadenhaaren erwähnt, finden sich außer bei den übrigen _Verbascum_arten mit weißen Filamenthaaren (~Lavadoux~), in allen grünen Teilen von _Scrophularia nodosa_ (~Vogl~ 1896), bei allen _Citrus_arten, wenn man die frischen Organe einige Zeit in Alkohol legt (~Sachs~, ~Pfeffer~, ~Tschirch~), ferner in der Epidermis der Blätter von _Lythrum salicaria_, von _Pilocarpus trachylobus_ ~Holmes~, _P. jaborandi_ ~Holmes~, bei _Ptelea trifoliata_, bei Umbelliferen, z. B. _Conium_ (~Modrakowski~, ~Adolph Meyer~, ~Tunmann~, ~Tschirch~), _Aethusa_ (~Ad. Meyer~), Labiaten (_Mentha._ ~Tschirch~, _Hyssopus_, ~Tunmann~, _Teucrium_, _Satureja_ ~Mitlacher~), _Fol. Buccu_ (~Flückiger~, ~Shimoyama~), den Blättern von _Vicia Faba_ und _Calamintha acinosa_, in den Blumenblatthaaren von _Viola tricolor_ L., in den Blättern von _Elaeagnus angustifolia_ L., in _Aleppogallen_ (~Hartwich~), bei _Capsella Bursa Pastoris_ (~Mika~), bei _Cocculus laurifolius_ (~Kraus~), Solanaceen (_Nicotiana_, ~Tschirch~), _Tilia_ (~Tunmann~) u. and. ~Tunmann~ hält alle diese Kristallbildungen für Körper der +Hesperidingruppe+. Zucker sind sie nicht. Sie lösen sich nicht in Wasser, Alkohol, Glyzerin, Äther, Chloroform, Chloral, verd. Schwefelsäure, verd. u. konz. Salz- und Salpetersäure, sehr schwer und erst nach mehrtägiger Einwirkung in heißem Anilin, Ammoniak, heißer Essigsäure. Sie sind verschieden leicht löslich in Kalk- und Barytwasser, leicht und mit gelber Farbe löslich in verd. und konz. Kali- und Natronlauge. Für _Citrus_ ist durch ~Tiemann~ und ~Will~, für _Conium_ durch ~Modrakowsky~ makrochemisch der Beweis geliefert worden, daß es sich um Hesperidin handelt. [Illustration: Fig. 5. _Verbascum thapsiforme._ 1. Radialer Längsschnitt durch den Rand eines behaarten Filamentes mit den Staubfadenhaaren. 2. Spitze eines Staubfadenhaares. 3. Pollenkörner (oben mit ausgetriebenem Pollenschlauch). 4. Behaarte und unbehaarte Staubfäden. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Lit. ~Arthur Meyer~, Drogenkunde. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anat. Atlas. -- ~Tschirch~, Anatomie. -- ~Lavadoux~, Rech. sur l’anatom. des Verbascées Thèse. Paris 1902 (dort d. Lit.). Lit. der (Hesperidin-)Kristalle: ~Sachs~, Lehrbuch. -- ~Pfeffer~, Bot. Zeit. 1874. -- ~Mika~, Bot. Jahresb. 1878, 20. -- ~Tschirch~, Anatomie -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Borodin~, Sitzungsb. d. Ges. d. Naturf. Petersb. 1883. -- ~Modrakowski~, Poln. Arch. f. Biolog. u. mediz. Wissensch. 1905 (durch ~Tunmann~). -- ~Kraus~, Bot. Jahresb. 1872. -- ~Tiemann~ u. ~Will~, Ber. d. chem. Ges. 1881, 946 (darin ~Tschirch~, Verbreit. d. Hesp. bei den _Citrus_arten). -- ~Ad. Meyer~, Naturf. Ges. Halle 1882. -- ~Hartwich~, Arch. d. Pharm. 1883. -- ~Shimoyama~, Ebenda 1888. -- ~Vogl~, Pharm. Journ. 1896, 101. -- ~Mitlacher~, Zeitschr. d. österr. Apoth. Ver. 1908. - ~Braemer~, Assoc. franc. avanc. d. sc. 1893. -- ~Tunmann~, Pharm. Zeit. 1905, Zeitschr. d. österr. Apoth. Ver. 1906, Schweiz. Wochenschr. 1909. -- Staubfadenhaare bei verschiedenen _Verbascum_arten: ~Westling~, Om stådarhåren hos svenska Verbascumarter. Svensk. Farmac. tidskr. 1908. =Chemie.= Die _Flos verbasci_ enthält c. 10,5% +Invertzucker+ (~Rebling~: 11%, ~Schneegans~: 9,2-11,7%), daneben auch etwas +Saccharose+ (~Schneegans~), dann +Fett+, +Apfelsäure+, +Schleim+ und in Spuren ein +flüchtiges Öl+ (~Morin~); in der c. 4-6% (4,2-5,9 ~Hauke~, 4,8 ~Flückiger~) betragenden +Asche+: Kalk- und Kalisalze der Phosphorsäure und Schwefelsäure, Eisen und Silicium. Ferner auch Kaliumacetat (?). In frischen Blüten fand ~A. Meyer~ nur wenig reduzierenden Zucker. ~Janson~ fand in den Blüten von _V. Thapsus_: 2,49% Schleim, 11,76% Kohlehydrate auf Dextrin berechnet, 5,48% Glukose, 1,29% Saccharose, 16,76% Feuchtigkeit, 4,11% Asche und 32,75% Rohfaser. Die Kapillaranalyse des Auszuges zeigt zu unterst eine hellgelbe Schicht, dann folgt nach oben: graugelblich -- ockergelb -- +hellgelb+ -- gelb -- hellbraun -- hellgrau. Das Spektrum des kapillaranalytisch abgetrennten +gelben Hauptfarbstoffes+ der hellgelben Zone zeigt (mit dem Quarzspektrographen photographiert) zwei Bänder bei λ = 0,470-0,455 und λ = 0,445-0,425 µ. Die Endabsorption des Ultraviolett beginnt bei λ = 0,388 µ (~Tschirch~, ~Buss~ und ~Ottenberg~). Der Verbascumfarbstoff gehört zur Gruppe der wasserlöslichen +Anthoxanthine+ (α-Anthoxanthin ~Tschirch~, Anthochlor ~Prantl~, Xantheïn ~Fremy~ und ~Cloëz~). Zerfasert man ein Blumenblatt der Droge in Wasser und setzt viel Kali hinzu, so kristallisieren schöne gelbe, oft zu Rosetten vereinigte, wasserlösliche Nadeln aus (~Tschirch~). Wäscht man dann das Präparat mit Wasser aus und läßt Schwefelsäure zufließen, so färbt sich das Gewebe erst violett, dann dauerhaft rot. Schwefelsäure allein färbt den gelben Zellsaft erst blau, dann violett, dann rot. +Hesperidin+ ist bis jetzt nur mikrochemisch nachgewiesen (s. oben). Es ist ein Glykosid, und zwar der Traubenzucker-Rhamnose-Äther des Hesperetins, des Phloroglucinesters der Isoferulasäure: [Illustration: (Hesperetin)] Die Verfärbung der Blüten wird durch Enzyme (bes. Oxydasen) bedingt. In den Wurzeln von _Verbascum Thapsus_ fand ~Harlay~ neben reduzierendem Zucker (0,21-0,85%) Saccharose (0,21-0,73%). Lit. ~Rebling~, Zuckergeh. mehrer. Arzneikörper. Arch. Pharm. 1855, 11. -- ~Morin~, Journ. chim. med. 1827, 231; Arch. Pharm. 1827, 91; Chem. Unters. d. Blumen v. _V. Thapsus_. -- ~Janson~, The flowers of Verbascum Thapsus. Am. journ. pharm. 1890, 600. -- ~Schneegans~, Zuckergehalt d. Flor. verbasci, Journ. Pharm. f. Els. Lothr. 1898, 17. -- ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. I 554. -- ~Tschirch~, Vergleich. spektralanalyt. Unters. d. natürl. u. künstl. gelben Farbst. mit Hilfe d. Quarzspektrographen, Ber. d. d. Bot. Ges. 1904, 414. -- ~Buss~, Beitr. z. Spektralanal. einig. etc. Farbstoffe, Forschungsber. 1896. -- ~Ottenberg~, Spektralanalyt. mit d. Quarzspektrogr. vorgen. Unters. reiner u. kapillaranalyt. abgetr. Farbst. Diss. Bern 1904. -- ~Harlay~, Journ. pharm. 1905, 49. =Geruch und Geschmack.= Die +frischen+ Blüten riechen widerlich betäubend und schmecken bitterlich rettigartig. Die trockenen Blüten riechen ganz angenehm nach Honig und Veilchen und schmecken süßlich, etwas schleimig. =Verwechslungen.= Die Blüten von _V. Thapsus_ sind erheblich kleiner, mehr glockenförmig nicht flach ausgebreitet. Auch _V. Lychnitis_ ist kleinblütig. _V. nigrum_ hat violette Staubfadenhaare. =Geschichte.= Seit undenklichen Zeiten betrachten die Irländer _Flos verbasci_ und namentlich die frischen Blätter der Pflanze als unfehlbares Mittel gegen Phtise. Die Blätter werden übrigens auch bei Asthma geraucht. Im Mittelalter wurden besonders Blätter und Samen benutzt. Bei ~Schröder~ (Pharm. med. chym. I, S. 890) werden die Blätter und Wurzeln, dann aber auch die Blüten erwähnt. ~Murray~ (I, S. 952) verwendete besonders die Blätter der Pflanze. Angebaut scheint sie damals nicht zu sein. Sie fehlt im St. Galler Klostergarten (I, S. 622) und bei ~Macer~ (I, S. 626). ~Hildegard~ (I, S. 669) erwähnt sie als Wullena (Blandonia). Die mittelenglischen Medizinbücher (I, S. 683) nennen sie Moleyn. In der +Alphita+ (I, S. 642) steht: barbastus flosmos. Hier wie bei ~Bartholomaeus~, in +Circa instans+ und den +Tabulae+ (I, S. 660) auch tapsus barbatus, herba luminaria (daraus wurde dann Königs+kerze+) flosmos, molena; bei ~Simon Januensis~ (I, S. 664) flommos vel flosmus, tapsus barbatus; im +Nördlinger Register+ (1480): tassi barbasii; im +Braunschweiger Inventar+ (1522) (I, S. 815): tapsus verbatus. In der Taxe von +Worms+ 1582 steht: Flor. verbasci, Thapsi verbati, Wullkrautblum, Königkertzblumen. Vor dem XV. Jahrh. scheinen die +Blüten+ in Deutschland nicht arzneilich benutzt worden zu sein. =Paralleldrogen.= Im Süden von Europa werden die Blüten ähnlicher _Verbascum_arten benutzt; in Portugal: _Verbascum crassifolium_ H. et L.; in Italien: _V. densiflorum_ B.; in Spanien: _V. macranthum_ H. et L. (~Flückiger~); in Amerika: _V. Thapsus_. Auch in Vorderindien wird diese Art, die im Himalaya von Kaschmir bis Bhután vorkommt und dort phúlla oder gidar tamákú (= Schakaltabak) heißt, benutzt, aber vorwiegend die Blätter und die Samen (Pharmacogr. ind.). Auch in Frankreich scheint _V. Thapsus_ bevorzugt zu werden (~Planchon-Collin~). Über die Verwendung von _Verbascum_arten als Fischgifte vgl. unter Saponindrogen. Die Blütenkrone kommt hierbei nicht in Betracht. Bassiablüten. Ein zu den Sapotaceen gehörender, im indischen Jungle häufiger Baum, _Bassia latifolia_ (+hind.+ Mahwá, mahulá, janglîmohvâ. +sansc.+ madhuka, d. h. süß; oben S. 8) liefert in Indien (Wälder von Monghyr in Zentralindien und Satpurakette im Westen) pro Baum mehrere hundert (150-200) kg fleischige Blütenblätter, die bis 60 Liter Alkohol geben. Die Blütenblätter schwellen erst nach dem Verstäuben an (~Poisson~). Sie fallen dann von selbst ab und sind leicht zu sammeln. Sie tauchen von Zeit zu Zeit im Handel auf und gehen besonders nach Frankreich, England und Amerika. Sie schmecken sehr süß, rosinenartig. Sie enthalten nur +Invertzucker+ (~Lippmann~), bis 50 (~Castle~ and ~Rice~) oder 63% (~Poisson~) und liefern (besonders in Guzerat und Radschputana) gegoren Alkohol. Obwohl die Religion den Hindus und Mohammedanern den Alkoholgenuß verbietet, wurden doch allein in Vorderindien im Jahre 1907/08 9 Mill. Gallonen Schnaps für die einheimische Bevölkerung fabriziert, vorwiegend aus _Bassia_blüten (Mowrah [Mahua] flowers). Es geschieht dies z. B. in Dadar und auf der Halbinsel Urann bei Bombay, wo allein 19 Destillerien liegen. Lit. ~v. Lippmann~, Ber. d. chem. Ges. 1902 (dort die Lit.). -- ~Watts~ Dictionary. -- ~Lockwood~, Notes on the mahwa tree Journ. Linn. Soc. XVII, 1879. -- ~Castle and Rice~, The Mahwatree New. Rem. 1879 (Bot. Jahresber. 1879, 336). -- ~Soubeiran~, Journ. pharm. 1881. -- ~Poisson~, Bull. soc. bot. de France 1881. -- Tropenpflanzer. 1909. γ) Früchte und Fruchtstände. Caricae. =Syn.= Feigen -- fîga (althd.) -- vîge, veyg (mhd.) -- figues (franz.) -- figs (engl.) -- fichi (ital.) -- vijg (holl.) -- fiige (ung.) -- viikuna (finn.) -- die Frucht: σῦκον, der Baum: συκῆ (n.-griech.). Die hieroglyphischen Zeichen für Feige sind auf S. 468 wiedergegeben. Die Frucht hieß tab, der Baum meist nouhi nel tab, d. h. Sykomore mit Feigen, der Feigenbaum wird auch geschrieben db (deb, deba, dab, dabei), die Feige: neh ent bet, die kleine Feige: kund -- +Griech+. σῦκον (bei ~Dioskur~.) auch συκῆ z. B. bei ~Theophrast~ (τὰ ἐρινᾶ σῦκα = wilde Feigen), die unreife Feige: Olynthos (bei ~Galen~) -- +Lat+. Ficus (z. B. bei ~Plinius~, ~Celsus~) und Caprificus -- tînâ, tênâ (aram.) -- tîn (arab.) -- tᵉʾēnē (hebr.) -- anjér (hind, bengal. pers.) -- wu-hua-kuo (chines.) = Frucht ohne Blüte, wörtlich: Nicht-Blüte-Frucht. =Stammpflanze=. =Ficus Carica L.= (Kulturfeige) bildet unzählige Kulturvarietäten (bei Neapel: leucocarpa, dottata, colombra, polymorpha, pachycarpa, deliciosa, hypoleuca ~Gasparini~). ~Semler~ nennt folgende Spielarten: San Pedro (in Sizilien: Fico di San Pietro) in Italien und Dalmatien; braune türkische, klimahart; braune oder schwarze Ischia; weiße Ischia; Igo Breba in Spanien; Angelica; Nerii; Ottalo in Sizilien; weiße Genua; weiße Smyrna; weiße adriatische in Dalmatien, Italien und Kalifornien; Gentile in Kalifornien. Nicht alle diese Sorten eignen sich zum Dörren, einige liefern nur Tafelfeigen. =Etym.= Carica (so z. B. in der Alphita, Caricae bei ~Plinius~ eine Sorte Feigen) nach der Landschaft Karien gegenüber Rhodos. Feige ist indirekt aus Ficus umgebildet, dies vielleicht aus συκῆ (?). Doch sind beide vielleicht semitischen Ursprungs, συκῆ von schiqmâ, Ficus von pagg abzuleiten. Feige, wie andere südeuropäische Baum- und Fruchtarten, aus dem roman.-lat. hier spez. aus dem nordital.-provenz. Figa, daraus auch frz. Figue. =Systemat. Stellung=. Moraceae, Artocarpoideae-Ficeae Sect. Eusyce. Die Gattung Ficus (~Linné~, Gen. Plant.) hat etwa 600 Arten. ~Dragendorff~ führt 61 als benutzt auf. Vgl. auch ~Moeller~, Art. _Ficus_ in d. Realenzykl. d. ges. Pharm. V. =Beschreibung der Stammpflanze=. Die Kulturfeige ist ein großer Strauch oder ein viel verästelter Baum (Fig. 6 u. 7), der 8-9 m hoch werden kann. Sie besitzt, da die Äste eigentümlich, erst nach Außen, dann nach Innen, gebogen sind, besonders wenn unbelaubt, ein sehr eigenartiges, rundlich bizarres, unheimliches Aussehn. Die unbelaubte Feige ist daher auf weite Strecken hin kenntlich. Die ziemlich großen rauhen, blaugrünen Blätter sind eigenartig gelappt, drei-fünflappig («Feigenblatt»), und wechselständig. In ihren Achseln entstehen eigenartige krugförmige Receptacula, deren Innenwand von den Blüten ausgekleidet ist und die oben ein Ostiolum (Auge) besitzen. Diese Blütenstände entwickeln sich zur «Feige», die also keine Frucht, sondern ein Fruchtstand ist. Da man die Blüten von außen nicht sieht, hat der Chinese die Feige «Frucht ohne Blüte» genannt (s. oben) und auch ~Albertus Magnus~ sagt: «fructum autem profert sine flore». Die +Cauliflorie+ der Feige, die schon ~Plinius~ erwähnt, ist auch hier wie bei vielen tropischen _Ficus_arten zu finden (Fig. 7). Oft sieht man am Stamm und den dickeren Ästen zahlreiche Fruchtstände dicht beieinander aus der Rinde hervortreten. Alle Teile sind von ungegliederten Milchröhren durchzogen. Nachdem sich die Ansicht von ~Solms~, daß der +wilde Feigenbaum+ (Caprificus, ἐρίνεος, Caprifico, Profico) und die +Kulturfeige+ (_Ficus_, σῦκον), die beide schon im Altertum gut voneinander unterschieden wurden, als zwei verschiedene Rassen zu betrachten seien, von denen die Kulturfeige aus der wilden Feige hervorgegangen sei, als irrig erwiesen hatte, nimmt man jetzt auf Grund der Beobachtungen von ~Fritz Müller~ an den Feigen Südamerikas allgemein an (und auch ~Solms~ stimmt dem jetzt bei), daß, wie schon ~Linné~ wollte, der Caprificus die männliche, die Kulturfeige die weibliche Feige darstellt. Der Caprificus ist durch völlige Sterilität zweier Blütengenerationen und sehr dürftigen Samenertrag der dritten infolge von Bildung sog. Gallenblüten fast rein männlich, die Kulturfeige durch Fehlen der männlichen Blüten rein weiblich. Die Befruchtung wird durch die Feigeninsekten vermittelt, von denen namentlich _Blastophaga grossorum_ ~Gravenhorst~ (_Cynips Psenes_ L.) eine Chalcidide, und zwar das weibliche Tier als Inquilin fungiert und den Pollen überträgt. Die Gallenblüten (~Solms~) entstehen dadurch, daß die weibliche _Blastophaga_ durch den hier kurzen Griffel in den Fruchtknoten ein Ei legt (~Gasparini~). Die Inquilinen kommen also nur in den kurzgriffligen Gallenblüten auf den männlichen Pflanzen zur Entwicklung, finden beim Verlassen der Feige reifen Pollen vor und tragen denselben in die weiblichen Feigen der weiblichen Pflanzen, in denen sie natürlich, da die Blüten hier langgrifflig sind, nur die Befruchtung vollziehen, ohne daselbst Eier ablegen zu können. [Illustration: Fig. 6. _Ficus Carica_ belaubt. [Nach +Hamilton+.]] Die überwinternden «=Mamme=» des Caprificus enthalten nur weibliche Gallenblüten, und demnach die überwinternde Generation der _Blastophaga_, die sich später entwickelnden Profichi dagegen in den unteren Zweidritteln Gallenblüten für die Inquilinengenerationen, im oberen Drittel in der Nähe der Mündung zahlreiche, monatelang Pollen erzeugende männliche Staubblüten. Innerhalb der Infloreszenz des Caprificus herrscht proterogynische Dichogamie (~Gasparini~). Da nun die Pollenreife der Staubblüten des Caprificus und die Konzeptionsfähigkeit der Narben der weiblichen Blüten der Kulturfeige zusammenfällt, ist eine Befruchtung der letzteren durch Vermittelung der Insekten gesichert. [Illustration: Fig 7. Ein kleinasiatischer Feigenbaum kurz vor der Ernte. [+W. Tiedemann+ phot.]] Aber es kommt bei der Feige weniger auf die Befruchtung der Blüten als auf die Ausbildung der fleischigen Receptaculums an. Beides scheint bei der Kulturfeige nicht in direkter Beziehung zueinander zu stehen (~Cavolini~), wie ja auch bei vielen Obstsorten Samenbildung und Fruchtentwicklung unabhängig voneinander ist. Wir kennen ja kernloses Obst. Immerhin findet man in den Handelsfeigen so gut wie immer ausgebildete Samen; von dem Tiere allerdings nur sehr selten eine Spur. Es wird zwar angegeben, daß die Weibchen der _Blastophaga_, nachdem sie sich den Weg durch das Ostiolum mit vieler Mühe, oft unter Zurücklassung der Flügel, gebahnt, den Krug der Infloreszenz nicht wieder verlassen, da sie den Rückweg wegen der nach Innen gerichteten Schuppen des Ostiolumrandes nicht antreten können. Das kann aber nicht richtig sein. Sie müssen in der Mehrzahl der Fälle wieder ausschwärmen, denn in den Handelsfeigen findet man sie in der Regel nicht vor. Ich habe viele Feigen untersucht und nie ein Insekt oder Reste desselben darin gefunden. [Illustration: Die Feigenkultur im Mittelmeerdrogenreich. [Aus Ravasini, Die Feigenbäume Italiens, Bern 1911.]] [Illustration Beziehungen der drei Feigentypen zueinander nach +Tschirch+ und +Ravasini+. Erklärung der Zeichen: ---- Wege der Insekten. ······· Pollenübertragung. ✸ eßbare Fruchtstände. ♂ männliche Blüten. ♀ weibliche Blüten. ♀· Gallenblüten. ̷♀ sterile weibliche Blüten. (♀) vereinzelte weibliche Blüten. (♂) vereinzelte männliche Blüten. [Aus Ravasini, Die Feigenbäume Italiens, Bern 1911.]] Für das Gelingen der Befruchtung scheint die +Kaprifikation+ (ἐρινίασμα), d. h. das Einhängen von blühenden Caprificuszweigen bzw. Kränzen in die Krone der Kulturfeige (oder Zwischenpflanzen von Caprificus) nicht erforderlich zu sein, obwohl dieselbe noch jetzt in Algerien, Tripolis, Syrien, Kleinasien, Griechenland und den griechischen Inseln, Malta, Sicilien, einem Teile von Unteritalien, besonders Neapel, Calabrien z. T. (Catanzaro), in Spanien (Andalusien, Valencia, Estremadura, Murcia) und Süd-Portugal geübt wird. Denn die Länder, die sie nicht oder nicht mehr üben -- Ägypten, Mittel- und Norditalien, Sardinien, Corsica, Nordspanien, Südfrankreich, Tirol, die Canaren und Azoren -- erzeugen nicht minder gute und nicht weniger Feigen, doch scheint sie bei einigen Kulturrassen nötig, wie Versuche in Kalifornien gelehrt haben. Die Kaprifikation ist sehr alt und wohl eine Erfindung der Semiten Syriens und Arabiens. Die beiden üblichen Formen schildert schon ~Plinius~. «Man setzt daher den Caprificus, den wilden Feigenbaum, dahin, wo der Wind nach den Feigengärten zieht, damit derselbe die ausfliegenden Insekten auf die Feigenbäume bringe. Noch ein anderes Mittel hat man ausfindig gemacht; man legt nämlich jene, wenn man sie anderswoher bringt, zusammengebunden auf den zahmen Baum». Auch ~Theophrast~ (die wesentliche Quelle des ~Plinius~) bespricht die Kaprifikation bereits. Beiden ist eine Beziehung zu den Insekten bereits klar; ebenso dem ~Aristoteles~. Doch erkannte erst ~Linné~ 1744 die +Bedeutung+ der Insekten für die Fortpflanzung und die Bildung reifer Samen bei _Ficus_ (hier lange vor ~Sprengel~!). ~Solms~ meint, daß die +Kaprifikation+ «eine in längst vergangenen Zeiten notwendig gewesene, jetzt kaum mehr nützliche, durch die lebendige Überlieferung von Generation zu Generation bis zum heutigen Tage in gleicher Form konservierte gärtnerische Operation» sei. Ob bei _Ficus Carica_ nicht auch Parthenogenese stattfindet, bleibt zu untersuchen. Sie erscheint möglich, da z. B. bei _Ficus Roxburghii_ weder ein Eiapparat noch Antipoden normal entwickelt werden und der Embryo aus dem Nucellargewebe entsteht (~Cunnigham~). Die Sache ist nicht schwer zu entscheiden. Man braucht ja nur unreife Feigen in einen gut schließenden Gazebeutel einzuschließen, darin reifen zu lassen und zu untersuchen ob auch dann reife Früchte gebildet werden. Eine andere Operation ist das +Ölen+, das ogliazione der Italiener, das Verschmieren des Ostiolums mit Öl -- man bringt mit einem Strohhalm einen Tropfen _Olivenöl_ auf das Ostiolum --. Es war bereits den alten Juden und auch dem ~Theophrast~ bekannt. Es wird noch heute in Italien, Syrien, Spanien und der Provence geübt und bringt die Fruchtstände früher zur Reife. =Lit.= ~Miquel~, Prod. Monogr. ficuum. Hookers London Journ. of Bot. VII. -- ~Gasparini~ (Publikationen meist in der Acad. di Napoli) und ~Cavolini~ Opuscoli (beide zitiert bei ~Solms~). -- ~Tournefort~ (I, S. 905). -- Graf ~Solms-Laubach~, Die Herkunft, Domestikation und Verbreitung des gewöhnlichen Feigenbaumes. Abhandl. d. Göttinger Ges. d. Wissenschaft. 28. 1881 (auch separat 1882). Dort die Literatur. Ferner: Die Geschlechterdifferenzierung bei den Feigenbäumen. Bot. Zeit. 1885 (Ref. in Bot. Jahresber.). -- ~Treub~, D. weibl. Organ u. d. Embryogenese bei _Fic. hirta_. Ann. jard. bot. Buitenz. 1902. -- ~Fritz Müller~, Caprificus und Feigenbaum. Kosmos XI, 1882 (Ref. Bot. Jahresber.) -- ~King~, Observ. on the genus Ficus Journ. Linn. Soc. 24 u. Ann. roy. bot. gard. Calcutta 1887. -- ~Schweinfurth~, Bull. de l’Herbier Boissier 1896. -- ~Westwood~, Descript. of the insects infest. the seeds of Ficus Carica Transact. Entomol. Soc. 1882. -- ~G. Mayr~, Feigeninsekten. Zool. Bot. Ges. Wien 1885 (Ref. in Bot. Jahresb.). -- ~P. Mayer~, Zur Naturgesch. d. Feigeninsekt. Mitt. Zool. Stat. Neapel III 1882. -- ~Mayer~ u. ~Fritz Müller~, Zur Naturgesch. d. Feigeninsekt. Kosmos XII. Ref. Bot. Jahresber. -- ~Tschirch~ und ~Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Hehn~, Kulturpfl. u. Haust. -- ~Cunnigham~, Rundschau 1900, XV. 51. -- Abbildungen in ~Berg-Schmidt~, Atlas. Erste Auflage, ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants und in ~Zippel-Bollmann~, Wandtafeln. =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge der _Feige_ berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Unter den Pilzen, welche die Fruchtstände der Feige befallen und zerstören, sind besonders folgende Arten zu nennen: _Colletotrichum Carica_ ~Stevens~ et ~Hall~. (Zeitschrift für Pflanzenkrankheiten XIX 1909, p. 65); bringt die Fruchtstände zum Faulen und vorzeitigem Abfallen. _Cercospora Bolleana_ (~Thüm~.) tritt auf Blättern und Fruchtständen auf, letztere zu vorzeitigem Abfallen bringend. Auch eine _Botrytis_ ist beobachtet worden, welche die Fruchtstände durchwuchert, hier ihre Conidien bildet und sich von da auf die Zweige verbreitet. Das Fruchtfleisch reifer _Feigen_ des Handels ist zuweilen von einer schwarzen, etwas schmierigen Sporenmasse durchsetzt, die einem Pilze angehört, welchen ~Reichardt~ (Verhandl. zoolog. botan. Gesellsch. Wien XVII 1867) für eine Ustilaginee angesehen und _Ustilago Ficuum_ genannt hatte. ~Hennings~ (Hedwigia XXXIV 1895) zeigte jedoch, daß es sich um eine Aspergillacee handelt, die _Sterigmatocystis Ficuum_ (~Reich~.) ~P. Henn~. heißen muß. =Vorkommen und Kultur.= ~Schweinfurth~ hält die noch jetzt in Südarabien und Nordabyssinien vorkommende _Ficus palmata_ ~Forsk~. (_F. pseudocarica_ ~Hochst.~) für die Stammform, aus der die Kulturfeige entstand. Die Urheimat der Feige sucht ~Solms~ in Südarabien. Von dort wird sie dann nach Idumaea, Coelesyrien und Syrien, sowie nach Babylonien und Ägypten gebracht und dort domestiziert worden sein. _Ficus Carica_ existierte aber bereits in der Quartär- und Diluvial-Periode im westlichen Teile des Mediterrangebietes. Ein _Ficus_ findet sich sogar in der Kreide Grönlands. «Sie hat sich schon in vorhistorischen Zeiten von Osten nach Westen verbreitet, als sie noch nicht Kulturpflanze geworden war» (~Hehn~). In frühgeschichtlicher Zeit war die Kultur der Feige wohl auf Syrien, Ägypten, Arabien und Babylonien beschränkt. Die Feigenkultur erstreckte sich dann später vom nordwestlichen Indien und den ostarabischen Steppen über die Länder am Caspimeer, das obere und mittlere Mesopotamien, Syrien, Palästina und Kleinasien. Durch Kultur ist die Feige dann (s. Geschichte) wohl durch die Semiten Syriens über das ganze Mittelmeergebiet verbreitet worden, hat dann später die Alpen überschritten und ist bis nach England vorgedrungen. Am Südrande der Schweizer Seen, in Südtirol und in der Provence hält sie an geschützten Stellen über Winter aus, ebenso in Südengland und den Inseln des Kanals. Auch in China, Nordwest-Indien, Dekkan, Beludschistan, Kalifornien, Canada, Mexiko und Chile wird sie jetzt kultiviert; in Kalifornien seit 1901 in steigender Menge. Ausgedehnteste Feigenkulturen finden sich in Kleinasien im Distrikt Aidin am Menderes Tehay (Mäander), große Feigengärten auch bei Ayazlúk (Ephesus). Sehr gute gedeihen bei Yenishehír (südöstlich von Isnik-Gölii), am Sabándja-See und am Golf von Ismid, sowie bei Anádoli-Kavák am Bosporus; ferner vom unteren Kyzyl Yrmák ab östlich, vorzüglich bei Trapezunt, endlich bei Malátia (~Semler~). +Brasilien+ kultiviert von den Feigen besonders Fig blanc, albicone, napolitai und negretto. Vgl. auch Handelssorten. Die Feige gehört in das Mediterrane Drogenreich (I, S. 441). Sie ist ein ausgesprochen subtropisches Gewächs. In den Tropen kultivierte Bäume liefern weniger gute Früchte. =Lit.= ~Ritter~, Erdkunde von Asien VII. Berlin 1844. -- ~Hehn~ a. a. O. (dort weitere Literatur). -- ~Solms~ a. a. O. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botan. 1895. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. =Einsammlung.= In der Achsel der Blätter entwickeln sich an vorjährigen Trieben schon zu Ende des Winters, meist vereinzelt, die im Juni reifenden +Frühfeigen+ (Grossi, Profichi, Orni). Später kommen dann in den unteren Blattachseln die +Sommerfeigen+ (Forniti, Mammoni). Sie entwickeln sich im August und reifen im November. Und schließlich kommen die über den Winter dauernden, in April-Mai des nächsten Jahres reifenden +Spätfeigen+ (Cratiri, Mamme) zur Reife. Die Feigen werden meist an der Luft und Sonne auf Horden getrocknet. Die Feige bleibt bis zur Vollreife am Baum. Das «Dörren» muß sehr sorgfältig, entweder an der Sonne oder in eigenen Dörrapparaten bei 40-50° erfolgen. ~Semler~ empfiehlt die Feigen vor dem «Dörren» kurze Zeit in eine Pottaschelösung (1 : 14) zu tauchen, um ihre Haut geschmeidiger zu machen. Das Pressen der Feigen geschieht in eigenen, sehr einfachen Pressen. Gepreßte Feigen haben einen höheren Preis. Sie sind weniger den tierischen Feinden ausgesetzt. Lit. ~Rossi~, Sulla prod. d. fichi secchi in Italia. Ann. scol. sup. d’agricolt. Portici Napoli 1881. -- ~Semler~ a. a. O. =Handelssorten und Verpackung.= Schon im Altertum kannte man viele Sorten. Vorzügliche Feigen lieferte Caunus, nordöstlich von Rhodus, und Caria (Karien) im Südwesten Kleinasiens, woher noch heute Feigen und wie damals in Holzschachteln zu uns kommen. Dann waren auch die attischen berühmt. ~Plinius~ erwähnt lydische, afrikanische (Ruspina), alexandrinische, rhodische, tiburtinische, herkulanische, chalcidische Feigen, und auch solche, die nach ~Livius~ und ~Pompeius~ benannt waren, sowie Feigen von der Insel Ebusus und den Marrucinen, im ganzen 29 Sorten. In der Tariffa des ~Pasi~ (1540, I, S. 703) werden Fighi di Schiavonia, di Levante, di Italia und del Ponente erwähnt. [Illustration: Fig. 8. Ankunft eines kleinasiatischen Feigentransportes aus dem Innern des Landes auf der Station. [+W. Tiedemann+ phot.]] Die besten aber nicht sehr haltbaren Feigen des heutigen Handels sind die +Smyrnafeigen+ (türkische Feigen), die aus Kleinasien, besonders aus der Ebene von Aidin, Innovasi, Nasli, Sultan Hissar stammen und aus Smyrna exportiert werden. Sie sind groß, plattgedrückt rund, sehr süß, von Honiggeschmack und haben eine dünne gelbliche Haut. Man unterscheidet drei Untersorten: +Eleme+ [ellémé (türk.) = von Hand gepflückt] und +Erbegli+ (Erbeili) -- beide in runden Holztrommeln, Schachteln (Schachtelfeigen) oder Kistchen mit _Lorbeerblättern_ bedeckt -- und +Roba mercantile+ in Fässern, locker, ungepreßt. Die Feige ist die vornehmste Quelle des Reichtums von Smyrna, das den Feigenhandel beherrscht. 1901 betrug der Export 20 Mill. kg. Die im Innern Kleinasiens geernteten und am Produktionsorte getrockneten Feigen werden in Säcken verpackt, auf den Rücken der Kamele zur nächsten Bahnstation der kleinasiatischen Bahnen (Fig. 8) und von dort nach Smyrna gebracht, das Hauptstapelplatz und Ausfuhrhafen für die kleinasiatischen Feigen ist. Hier werden sie gewogen, gereinigt und sortiert, gewisse Sorten auch mit gepulvertem Fruchtzucker bestreut. Die kleineren +griechischen+ Feigen (Fraccazani, Corfu) sind weniger süß, derbhäutiger und haltbarer. Sie werden besonders von Kalamata, am Meerbusen von Messenien, von Andros und Syros exportiert und kommen entweder als Kranz- oder Moreafeigen, +Caricae in coronis+ -- gepreßt und auf _Cyperus_halme oder Bastschnüre gezogen -- oder locker in Fässer gepackt in den Handel. Die +italienischen+ Feigen werden meist lose in Körbchen versandt (Korbfeigen). Man unterscheidet: Neapolitaner, Calabrische, aus +Cosenza+ (in Calabria citeriore), Sicilianische, Puglieser und Genueser Feigen. Sie sind kleiner und weicher als die griechischen, aber weniger haltbar. Die türkischen, griechischen und italienischen Feigen kommen meist über Triest und Fiume. Die +Tiroler+ Feigen stammen aus Südtirol (Trient, Rovereto). Nach dem Packmaterial -- _Lorbeer_- oder _Rosmarinblätter_ -- heißen sie Lorbeer-, Laub- oder Rosmarin-Feigen. Die +Dalmatiner+, +Istrianer+ oder +Triester+ Feigen in Fässern sind sehr süß, aber nicht haltbar (Faßfeigen). Die +südfranzösischen+, +spanischen+ und +portugiesischen+ Feigen sind den kalabrischen ähnlich und kommen meist über Hamburg. +Marseille+ liefert viel Feigen, etwa von der Größe der Cosenzafeigen. Die Türkei und Griechenland exportierten 1907: 30 Mill. kg Feigen im Werte von 90 Mill. Piaster (Griechenland allein: 14 Mill.), Italien im gleichen Zeitraum 14 Mill. kg, Spanien 1906: 4 Mill. kg. Gehandelt werden die türkischen Feigen in Smyrna und Stambul, die italienischen in Catania, Bari und Genua, die griechischen in Patras. Einfuhrhäfen sind besonders Marseille, London und Triest, ein Hauptpunkt des Feigenhandels. Die in +Vorderindien+ gezogenen Feigen werden nicht exportiert. Sie sind weniger gut als die Mittelmeerfeigen. Die +ägyptischen+ Feigen (Eselsfeigen, Pharaofeigen, Adamsfeigen) sind die walnußgroßen Fruchtstände der Sycomore (_Ficus Sycomorus_ L.). Sie kommen aus Ägypten und Palästina. Die +indische Feige+ ist keine Feige, sondern die Frucht von _Opuntia vulgaris_ ~Miller~ (_Opuntia Ficus indica_). Die +Paradiesfeigen+ sind Bananen. =Lit.= J. ~Moeller~, in Realenzyklop. d. ges. Ph. III. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. u. and. Die Einfuhr an Feigen in Hamburg betrug in Doppelzentner (dz) 1906: 32226, 1907: 21770, 1908: 27966. Die meisten des Jahres 1908 stammten aus Kleinasien (15886 dz), dann folgt Griechenland und die Jonischen Inseln (5600) und Spanien (4689). Weniger kamen aus Triest, Algier und Italien, unbedeutende Mengen aus Frankreich, Arabien, den Verein. Staaten und der europäischen Türkei sowie den russischen Ostseehäfen. 1909 importierte +Deutschland+: 73594 dz. _Feigen_, vorwiegend aus Griechenland und der Asiat. Türkei, dann aus Italien, Algerien und Spanien. Die Vereinigten Staaten von Nordamerika führten 1909: 15235513 Pounds Feigen ein, vornehmlich (c. 13 Mill.) aus Kleinasien und (c. 1 Mill.) aus Griechenland. Italien exportierte Fichi 1907: 142511, 1908: 164417, 1909: 183953 Quint. [Illustration: Fig. 9. _Ficus Carica_. Längsschnitt durch einen Fruchtstand und weibliche Blüte. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Anatom. Atlas.]] =Morphologie und Entwicklung der Droge.= Die +Fruchtstände+ der Feige entstehen im typischen Falle zu zweit in der Achsel eines Laubblattes als seitliche Bildungen an der axillaren Laubknospe (Anatom. Atlas Taf. 28, Fig. 1 u. 17). Sie sind zunächst von der hinfälligen Stipulartute des Tragblattes umhüllt. Für gewöhnlich wird jedoch nur ein Fruchtstand entwickelt und der zweite verharrt im Stadium einer kurzen Knospe. Jeder Fruchtstand wird von einem Involukrum behüllt, das an der Basis der reifen Feige noch gut erhalten ist und aus drei schuppenartigen Blättern besteht: dem Vorblatt des Achselknöspchens und den Vorblättern des Blütenstandes. Der Blütenstand wird als eine flache Schale angelegt, an deren Rande schuppenartige Blättchen sitzen, Bildungen aus denen später die Schuppen werden, mit denen das Ostiolum verschlossen wird, und an deren Boden sich die Blütenanlagen finden. Mit fortschreitender Entwicklung wird die Schale immer tiefer und endlich zum Kruge (Receptaculum, Hypanthium, Frucht- oder Blütenboden). Dieser besitzt an seiner Spitze ein nicht ganz in der Mitte angeordnetes Ostiolum, das solange die Feige unreif ist von Schuppen geschlossen ist, deren äußerste schopfartig nach oben gerichtet sind, um die Insekten zunächst vom Besuche abzuhalten. In diesem Stadium ist die junge Feige noch ziemlich rundlich und grün. Sie milcht stark, wenn man sie verletzt, schmeckt widerlich und riecht unangenehm. Das derbe weiße Gewebe des Receptaculums enthält Stärke. Die die ganze Innenwand des Kruges auskleidenden Blüten sind bei der Kulturfeige für gewöhnlich rein weiblich, langgrifflig, kurzgestielt mit einem einseitig vorgewölbten Fruchtknoten, der einen Griffel mit zwei langen Narben trägt und meist drei Perigonblättern versehen (Fig. 9). Zwischen ihnen liegen auf dem Krugboden Haare (Anat. Atlas Taf. 28, 6, 8, 18). Die reife Feige hat eine mehr weniger schlanke, birnförmige, übrigens wechselnde Gestalt und Größe und eine grünlich-violette Farbe, die aber auch in bräunlich, rötlich, violett oder blauschwarz übergehen kann. Auch farbig gestreifte oder bereifte Sorten sind bekannt. Bisweilen platzt die Feige und läßt dicken Zuckersaft austreten (~Flückiger~). Das Ostiolum der reifen Feige ist durch nach unten gerichtete Schuppen geschlossen, die den Insekten den Weg nach Innen weisen. Das Gewebe des Receptaculums ist hyalin weich, zuckerreich und stärkefrei geworden. Der Geschmack ist nunmehr schleimig süß. Beim Verletzen tritt kein Milchsaft mehr aus. Der Inhalt der Milchröhren ist erstarrt, nicht mehr flüssig. Noch stärker sind die Veränderungen im Innern des Kruges. Aus den Blüten haben sich kleine gelbe, fast kugelrunde Früchtchen entwickelt, die ganz eingebettet sind in ein gelbliches, hyalines «Fruchtmuß», das durch eine tiefgreifende Pektin-Schleimmetamorphose der Krugwand, der Blütenstiele, Perigonblätter, Griffel und Narben, sowie der äußersten Schichten der Früchtchen gebildet wird und reichlich Zucker enthält. Immerhin findet man in der reifen Feige noch Reste, besonders der Narben, der oben erwähnten, jetzt dickwandiger gewordenen Haare, auch wohl einzelner Perigonblätter mit ihren Randhaaren und natürlich die etwa 2 mm großen Früchte. Die Frucht ist eine Drupa. Die Feigen kommen entweder einfach getrocknet oder gepreßt in den Handel. Die gepreßten werden von oben her zu Scheiben zusammengedrückt, so daß auf der einen Seite etwas seitlich von der Mitte das Ostiolum, auf der anderen der Stielansatz sichtbar ist. =Lit.= ~Payer~, Organographie p. 275, tab. 60. -- ~Eichler~, Blütendiagramme. -- ~Tschirch~ und ~Oesterle~, Anatom. Atlas, Taf. 28. =Anatomie der Droge.= Die Wand des Hypanthiums ist bedeckt von einer aus polyedrischen Zellen bestehenden Epidermis, in der sich da und dort Spaltöffnungen und ziemlich viele, meist aber nur kurze, derbe, kegelförmige Haare befinden (Fig. 10). Dann folgt eine Zone von Parenchym, dessen Zellen Oxalatdrusen enthalten und darauf die die Milchröhren führende Schicht. Weiter nach Innen liegen die Gefäßbündel. Die innerste Zone ist meist obliteriert. Die +Milchröhren+ sind verhältnismäßig dünnwandig, 15-45, meist 20-30 mik. weit und sehr reich verzweigt. Sie gehören zum Typus der einfachen ungegliederten und enthalten ziemlich große (4-7 mik.) Guttakörnchen isoliert oder zu Ballen zusammengeflossen, die nur in Chloroform löslich sind. Die +Gefäße+ sind meist Spiralgefäße, selten Netzleistengefäße. Sie besitzen eine Weite von 15-22 mik., sind also in der Regel enger als die Milchröhren (Unterschied gegenüber der _Cichorium_wurzel s. d.). [Illustration: Fig. 10. _Ficus Carica_. Succedane Flächenschnitte durch die einzelnen Schichten des Hypanthiums von der Epidermis (1) bis in die inneren Partien. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Anatom. Atlas.]] Von der +Fruchtwand+ gehen die äußersten parenchymatischen Schichten mit in der Pektin-Schleimmetamorphose, dem das ganze Innere des Kruges anheimfällt, zugrunde. Erhalten bleibt meist nur die dritte Schicht in Form kleiner verdickter isodiametrischer Zellen und die innerste Schicht, die aus kurzen, stark verdickten Brachysklereïden besteht (Fig. 11). Die +Samenschale+ besteht aus obliterierten Zellen und ist zusammengefallen. Der +Embryo+ ist stark gekrümmt, Radicula und zwei Cotyledonen sind deutlich. Er ist eingebettet in +Endosperm+. In ihm und im Embryo finden sich reichlich, in Ölplasma eingebettet, Aleuronkörner, die Kristalloide und Globoide enthalten. [Illustration: Fig. 11. _Ficus Carica_. Querschnitt durch die Randschicht eines herauspräparierten Früchtchens [Die äusseren Schichten (1-2) sind zu Grunde gegangen.] [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Lit.= ~Tschirch~, Angew. Anatomie, Fig. 611. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~J. Moeller~, Mikroskopie d. Nahrungs- u. Genußmittel. 2. Aufl. 1905 (dort weitere Literatur). -- Bei ~Malpighi~ (Opera 1687) findet sich ein guter Längsschnitt durch das Receptaculum. Er sah bereits die Milchröhren. =Pathologie der Droge.= Häufig finden sich in trockenen Feigen Milben, besonders _Carpoglyphus passularum_, _Glyciphagus prunorum_ u. and. (~Israël~, s. I, S. 380). =Chemie.= Getrocknete Feigen enthalten neben etwa 5,5% +Pektin+ 27-62 (70?), meist etwa 51% +Zucker+, wie es scheint nur +Invertzucker+ (Dextrose + Lävulose) und keinen Rohrzucker (Saccharose). Auch nach der Inversion bleibt der Zuckergehalt etwa gleich (~Dieterichs~). Der +Traubenzucker+ kristallisiert oft aus und bedeckt als Kruste die Oberfläche. Ein Liter frisch ausgepreßter Feigensaft enthält 128 g Zucker (~Balland~). Die unreife Feige enthält sehr wenig Zucker aber reichlich Stärke, die reife ist stärkefrei. Der Inhalt der Milchröhren, der beim Anschneiden unreifer Feigen ausfließt und diesen einen unangenehmen Geschmack verleiht, erhärtet beim Reifen und enthält dann zahlreiche ziemlich große Kautschukkörner, die aus Gutta bestehen (s. oben). Die Samen enthalten +fettes Öl+ und +Aleuron+. Der +Aschegehalt+ beträgt 1,3%. Die Asche enthält 0,06% Borsäure (~Hotter~ 1895). Frische Feigen enthalten oft 86% Wasser, trockene c. 30%. Da die Feige über 6% Eiweiß enthält, ist sie sehr nahrhaft. Das peptonisierende +Ferment+ Cravin, das sich im Milchsafte der ganzen Pflanze findet, ist nicht identisch mit Papayotin (~Mussi~). Schon ~Plinius~ und ~Dioskurides~ wußten, daß der Milchsaft unreifer Feigen, der im Altertum viel medizinisch angewendet wurde, Milch zum Gerinnen bringt. =Lit.= Ältere Analyse von ~Bley~ (in ~Pereira~, Heilmittellehre). -- ~Flückiger~, Pharmakognosie (~Dieterichs~). -- ~König~, Chem. d. Nahrungs- u. Genußmittel. 4. Aufl. 1903/04. -- ~Albini~, Ber. d. d. chem. Ges. 1871. -- ~Balland~, Journ. pharm. 1876. -- ~Carlucci~ u. ~Rossi~, Bot. Jahresb. 1881. -- ~Mussi~, Orosi 1890. -- Eine Analyse d. Milchsaftes: Magaz. f. Pharm. XX. -- Über den Milchsaft vgl. auch ~Bouchut~, Journ. d. pharm. 1880. -- ~Hansen~, Bot. Jahresber. 1881 u. 1885. -- Zusammensetzung des Feigenkaffees bei ~König~. =Geruch und Geschmack.= Der Geruch ist schwach und nicht unangenehm. Der Geschmack stark süß, schleimig. Die frische Feige schmeckt weichlich, fade süßlich und wirkt abführend. =Aufbewahrung.= Länger als ein Jahr bewahrt man Feigen nicht auf. Sie werden nach dieser Zeit trocken und unansehnlich und bedecken sich mit einer Schicht ausgewitterten Traubenzuckers (Kristalle abgebildet im Anatom. Atlas). Es kommt vor, daß Feigen, um ihre Haltbarkeit zu erhöhen, mit Mehl (bes. Kastanienmehl) bestreut werden (~E. Hanausek~ in ~Erdmann-König~ Waarenkunde). =Verwendung.= Die Feige wird jetzt fast nur noch in der Volksmedizin als erweichendes Mittel benutzt. Feigenpflaster (?) kannten schon die Juden aus der Zeit des Jesaias und die +Schola Salernitana+ lehrt: Zertruckte Feigen legt auf Kröpffe, Schwielen, Beulen, Sie helfen und thun die zerbroch’ne Beine heylen. Doch ist die Feige jetzt nur noch Bestandteil einer Spec. pectoral. cum fructibus. Bei den Arabern gilt sie als Aphrodisiacum (Signatura?). Die abführende Wirkung, die sie wie alle Zuckerdrogen besitzt, ist in drastischer Weise in ~Bocks~ Kräuterbuch dargestellt (vgl. I, S. 323, Fig. 313). Die frischen Feigen sind im Süden ein beliebtes Nahrungsmittel und Obst. Aus gegorenen Feigen wird neuerdings, z. B. in Kleinasien, viel Alkohol destilliert. Auch Feigenwein wird im Orient bereitet. Geröstet bildet die Feige den +Feigenkaffee+, der ein Kaffeesurrogat ist und auch bisweilen dem Kaffee zugesetzt wird, um den Geschmack zu verbessern (Karlsbader Kaffee). Er ist ziemlich teuer und es finden sich daher Fälschungen im Handel, besonders _Cichorien_ mit eingebetteten _Klee_ oder _Cruciferen_samen, die aber leicht mikroskopisch erkannt werden können. Auch Kornkaffee, geröstete _Birnen_ und _Carobben_ kommen als Fälschungen des Feigenkaffees vor. Der in Spanien und Portugal benutzte +Feigenkäse+ ist ein gepreßtes Gemenge aus Feigen, _Mandeln_, _Haselnüssen_, _Pistazien_ und Gewürzen. =Geschichte.= Die Feige ist eine der ältesten Kulturpflanzen. In der westlichen Hälfte des Mittelmeergebietes schon am Ende der Pliocen vorhanden, ist sie dann ausgestorben und in vorhistorischer Zeit vom Osten her wohl durch die Phönikier wieder in das Gebiet eingeführt worden (~Lloyd~), zunächst aus Syrien nach Griechenland und Italien, von da nach Spanien und Gallien. In einem babylonischen Hymnus der Bibliothek von Nippur aus dem Jahre 2000 n. Chr. wird die Feige erwähnt: «süßer als Trauben und Feigen» (Cuneiform Texts of the Brit. Mus. XV. pl. 1). In dem Alfabet des ~Ben Sira~ (XI. Jahrh. die Liste selbst älter) steht eine Liste von Pflanzen im Garten des ~Nebukadnezar~, die auch Feigen (tᵉēnīm) enthält. Sie haben übrigens auch einen assyrischen Namen: tittu. Auf assyrischen Denkmälern findet sich der Feigenbaum oft neben Dattel und Weinstock. (Ich halte wenigstens die in I, Fig. 371 mit _Salix_ (?) bezeichnete Pflanze für eine Feige), so daß die Angabe ~Herodots~ (V. Jahrh. n. Chr.), Babylonien erzeuge keine Feigen, nicht richtig sein kann. ~Herodot~ behauptete ja auch, Ägypten liefere keinen Wein, und doch kennen wir unzählige Darstellungen des Weinbaus +und der Weinbereitung+ auf ägyptischen Denkmälern von der ältesten Zeit an. Ebenso häufig findet sie sich auf ägyptischen Denkmälern (~Wönig~). Feigen finden sich schon unter der Totenspeise eines Grabes aus der XII. Dynastie (2400-2600 n. Chr. ~Schweinfurth~). Kein Zweifel besteht, daß in Ägypten in ältester Zeit (2400-2200 n. Chr.) die Feigenkultur in Blüte stand (Fig. 12), ebenso in Syrien, hier vielleicht in noch älterer. In der Bibel ist sie neben dem Weinstock Symbol des Überflusses. Im jüdischen Altertum war Feige und Wein in Mischkultur. Die alten Inder kannten die Feige ebenfalls (I, S. 507). Der Anbau der Feige in Italien scheint in die Zeit der griechischen Kolonisation zurückzureichen (nach ~Solms~ ist er älter und gehört die Feige dem ältesten römischen Sagenkreise an). Der erste Anbau in Griechenland fällt in die späthomerische Zeit (~Hehn~), etwa IX. oder VIII. Jahrh. Nach Griechenland wurde mit der Feige die Kaprifikation gebracht. Die Römer übernahmen diese nicht, sondern pflanzten zunächst den Feigenbaum durch Stecklinge fort. ~Dioskurides~, der ebenso wie ~Plinius~ und ~Ibn Baithar~ eine Menge von Krankheiten nennt, die durch Feigen geheilt werden -- auch ~Hippokrates~ bediente sich der Feige als Heilmittel -- erwähnt auch den wilden Feigenbaum und die Aschenlauge des Feigenbaumes. Auf dem Forum romanum standen mehrere heilige Feigenbäume. Zur Zeit des ~Plinius~ wurden schon 29 Feigensorten gezüchtet. [Illustration: Fig. 12. Altägyptische Darstellung der Feigenernte. Aus einem Gemälde der Westwand des Grabes Nr. 2 in Beni-Hassan, XII. Dynastie, 2400 bis 2200 n. Chr. [Nach +Wönig+.]] In Ägypten war der Feigenbaum dem ~Osiris~, in Griechenland dem ~Dionysos~ heilig sowie dem phallischen ~Hermes~ und dem ~Priapus~, bei den Römern der ~Juno~. Feigen spielten bei den Dionysien eine große Rolle. Bei den Römern war die Feige Symbol der vulva, bei den Hellenen des penis. Die sehr starke Erotik, die sich mit der Feige verknüpft, ist von südlichen, oft sehr alten Vorstellungen ausgegangen (~Aigremont~). Die Feige ist im Orient das Symbol der Fortpflanzung und wegen der zahlreichen Früchtchen auch Symbol der Fruchtbarkeit. Bei dem Feste der Thargelien waren die beiden φαρκμακοί, die als Sühnopfer zum Tode geführt wurden, der eine mit weißen, der andere mit schwarzen Feigen behangen (~Hehn~). Bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 577) findet sich _Caprificus_ und _Ficus arida_ (getrocknete Feigen). Im Edikt des ~Diocletian~ (I, S. 570) finden sich frische und getrocknete, karische, pressae und duplices (gespaltene). Die +Scriptores rei rusticae+ (I, S. 573) widmeten der Feige oft lange Kapitel und sie findet sich auch auf pompejanischen Wandgemälden und unter den Pflanzenresten Pompejis (I, S. 575). Sie wurde von den Römern als Heilmittel hoch geschätzt, ebenso von den Arabern. ~Ibn Baithar~ (I, S. 608) widmet ihr ein großes Kapitel. ~Karl der Grosse~ wünschte ihre Anpflanzung (I, S. 620). Doch fehlt sie im St. Galler Klostergarten (I, S. 622); wohl aber kennt die ~Hildegard~ den Feikbaum oder Fickbaum. Im VIII. Jahrh. waren F. in Südfrankreich bekannt (I, S. 714). Im mittelniederdeutschen Gothaer Arzneibuch (I, S. 681) steht: vige, vyge. Die Alphita (I, S. 644) führt _Caricae siccae_ auf. Über die Alpen muß sie ziemlich früh gekommen sein. ~Gesner~ (I, S. 846) beschreibt Feigenbäume in Straßburg. Nach England wurde sie unter ~Heinrich~ VIII. von Kardinal ~Pole~ gebracht, doch scheint sie schon im XIII. Jahrh. dort kultiviert worden zu sein. Der mittelalterliche Drogenhandel umfaßte auch die Feige (s. Brügge). Schließlich sei bemerkt, daß die Feige auch im Pents’ao kang mu (I, S. 519) steht, also auch in der chinesischen Medizin verwendet wurde. Die Krankheiten des Feigenbaums beschrieb schon der Rhizotom ~Kleidemus~ (~Theophrast~, Caus. plant. 3, 12). =Lit.= ~Hamilton~, Botanique de la bible. 1871. -- ~Solms~ a. a. O. -- ~Aigremont~, Volkserotik. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmakographia (dort weitere histor. Literatur). -- ~Schweinfurth~, Ber. d. d. bot. Ges. 1884 und Ägyptens Beziehungen. -- ~Schwendener~, Kulturpflanzen. Vortrag. -- ~Unger~, Botan. Streifzüge 1857. -- ~Moldenke~, Bäume Ägyptens. Diss. Straßburg 1887. -- ~Wönig~, Pflanzen d. alten Ägypten. 1886. -- ~Hehn~, Kulturpflanzen u. Haustiere. 7. Aufl. 1902. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botanik. 1895. Dactyli. Dattel -- datte (franz.) -- date (engl.) -- datil (span.) -- dattero (ital.) -- dadel (holl.) -- datolya (ung.) -- taateli (finn.) -- φοῖνιξ (n.-gr.). =Syn.= und =Etym.= Bei den Assyrern musuḳḳan (sumerisch-akkadisch = himmelhäuptig). bnr (ägypt. die hieroglyphischen Zeichen I, S. 468 u. 470), -- Palma (~Plinius~), P. Carioti (~Scrib. Larg.~), Dactyli (lat.), -- φοῖνιξ (griech. ~Dioskur~., ~Arrian~, ~Galen~), φοινικοβάλανοι (~Hippokr.~), -- Nachl, Tamr, Ruthab, Busr (arab.) -- el oder tāmār (hebr.), davon wohl tamar indie! -- Im Chinesischen heißt die Palme: Wu-tau-tsze (d. h. Fünf-Lasten) oder Fau-tsau (d. h. fremde Pflanze). -- Die Frucht: tsau. -- +Dattel+, bei ~Heresbach~ (1570): Daktel, +mhd.+ datel, tatel, tatele, aus it. dattilo, dies aus δάκτυλος. «Die Fiederblättchen der Dattel sind fingerförmig» (~Kluge~) oder (was wahrscheinlicher) nach der Fingerform der Früchte oder von aramäisch daqual, diplâ = Palme. «Palma» war ursprünglich _Chamaerops humilis_, wurde aber später bis ins Mittelalter ganz allgemein der Name der Dattelpalme, später dann auf alle «Palmen» übertragen. =Stammpflanze= und =Systemat. Stellung. Phönix dactylifera= L., mit 50 bis 80, nach anderen sogar 150 Kulturrassen. -- Palmae, Coryphinae -- Phoeniceae. =Beschreibung.= Die dioecische Dattelpalme bildet große schlanke Bäume (ihr hebr. Name tâmar bedeutet «schlank und hochgewachsen»), die bis 20 m hoch werden können (I, Fig. 212, 217, Taf. 19) und die der Landschaft in Afrika das charakteristische Gepräge geben. Die wilde Urform ist nicht bekannt. Die Stammform, aus der die Kulturdattel entstand, ist vielleicht _Phoenix spinosa_ (~Fischer~). Danach wäre das tropische Afrika Urheimat der Dattelpalme. Die Dattel ist seit Urzeiten in Kultur und die Kultur hat erst die süßen Früchte erzeugt oder sie verbessert. Die babylonischen Nabatäer gelten für die Erfinder der Dattelveredelung (I, S. 479). Da die Dattelpalme zweigeschlechtlich ist, so wird die Befruchtung dadurch gefördert, daß man (es geschah dies schon zur Zeit der alten Babylonier) die männlichen Infloreszenzen, noch wenn sie geschlossen sind, in die Baumkronen der weiblichen Pflanzen hängt, «sobald sie beim Pressen ein dem Reiben von angefeuchtetem Mehl ähnliches Geräusch hören lassen». Der Pollen fällt dann bald aus und bewirkt die Befruchtung. Die Blüten stehen oft zu 200 in großen Infloreszenzen vereinigt zwischen dem terminalen Blattschopf. Die Zahl der in jedem Blütenstand zur Reife kommenden Früchte schwankt zwischen 80 und 200. Die Früchte reifen nach fünf Monaten, meist im Juli, August, September und Oktober. Für den Handel sammelt man sie etwas vor völliger Reife und läßt sie an der Sonne nachreifen. Die vollreife Dattel wird leicht breiig. Die Dattelpalme liefert Früchte vom 5. Jahre an, doch zahlreiche erst vom 15., das Maximum erreicht sie im 30. Jahr, das Ende im 95. Ein Baum kann 50-70 kg Datteln liefern. Die Früchte sind von gelblicher, gelbrötlicher oder gelbbräunlicher Farbe. =Vorkommen.= Die Dattelpalme, «einer der wertvollsten Nutzbäume der Welt», «der König der Oasen», ist über Arabien, Ägypten, Nubien, die Oasen der Sahara, Algerien, Tunis und Marocco (Atlashochland) verbreitet. Sie geht westlich bis zu den Canaren und Capverdischen Inseln, östlich bis Iran, dem persischen Meerbusen bis zum Indus. Zentrum und Heimat der Kulturdattel ist wohl Arabien. Elche in Spanien liefert noch gute Datteln. In Nizza und San Remo reift die Dattel an geschützten Stellen -- sie hält noch -5° C. aus --, nicht diesseits der Alpen. «Sie senkt ihre Wurzeln in das Wasser und ihre Krone in das Feuer», d. h. sie braucht Grundwasser und heißes Klima. Ihr assyrischer Name mussuḳḳan bedeutet «himmelhäuptig». Beled-el-Dscherid, d. h. Dattelland, hieß früher der Südabhang des Atlas-Systems, jetzt wird damit das südliche Tunis bezeichnet. Fezzan ist ganz auf Dattelkultur angewiesen. Das Niltal ist eine ungeheuere Datteloase. Die Zahl der Dattelpalmen in Algier übersteigt 4 Millionen. In Ägypten, Algier und Tunis ist die Dattelpalme ein wichtiges Steuerobjekt. In Arabien, das viele Datteloasen hat, ist Dschidda ein großer Dattelmarkt, ebenso die Bahreininseln, «Datteln nach Bahrein tragen» lautet ein arabisches Sprichwort, d. h. soviel wie «Eulen nach Athen tragen». Persien besitzt ausgedehnte Palmenhaine, besonders in Laristan. Sie bildet überall Dorfwäldchen. Sie braucht eine mittlere Jahrestemperatur von 24-25° C. =Pathologie.= Über pflanzliche Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Das Fruchtfleisch der reifen _Datteln_ wird häufig von einem Parasiten zerstört, den ~Corda~ als eine Ustilaginee angesehen hatte, der aber nach ~Patouillard~ und ~Delacroix~ (Bull. soc. mycol. France T. VII, p. 118) eine Aspergillacee ist und _Sterigmatocystis Phoenicis_ (~Corda~) ~Patouill~. et ~Delacroix~ genannt werden muß. Im Niltale trägt die Krankheit den Namen Mchattel. Man beobachtet sie zuweilen auch an Datteln, die in Kistchen nach Europa spediert werden. =Handelssorten.= Die Dattel ist Charakterdroge der Südprovinz des mediterranen Drogenreiches (I, S. 441). Die meisten Datteln kommen jetzt aus Arabien, Persien und Ägypten. Algerien und Tunis liefern sehr gute Datteln. Die besten Datteln sind die afrikanischen. Sie sind fast walzenrund, fingerförmig, etwa 2-3 cm lang, weich und sehr süß. Man schätzt das Einkommen aus der in Afrika besteuerten Dattelpalme in Ägypten auf M. 10-20 pro Baum. Haupthandelsplatz für türkische Datteln ist Basra. Einfuhrhäfen sind besonders Marseille, dann Genua, Hamburg und London. Man findet sie im Handel locker in Kistchen in Reihen gelegt oder zu Ballen (Blöcken) gepreßt. Die unter türkischer Oberhoheit stehenden Länder produzierten 1907: 51 Mill. kg im Werte von 34 Mill. Piaster. Die Einfuhr von Datteln nach Hamburg betrug seewärts in dz. 1906: 21813, 1907: 14156, 1908: 24717. Von der Einfuhr 1908 stammten die meisten (15177 dz.) aus Arabien, viel lieferte auch Persien (3921) und Großbritannien (2943, aus den britischen Kolonien und Ägypten). Geringer war die Einfuhr aus Frankreich, Marokko, Syrien und Kleinasien. Die Vereinigten Staaten führten 1909: 21869218 Pounds Datteln ein, die Mehrzahl (beinahe 19 Mill.) aus der asiatischen Türkei. =Anatomie.= Das Pericarp ist von einer Epidermis bedeckt. Unter ihr liegt eine Schicht kleinzelligen Parenchyms. Dann folgt scharf abgesetzt in einer Zone stark tangential gestreckter, dünnwandiger Parenchymzellen die Sklereïdenschicht, die aus rundlichen oder stark radial gestreckten Zellen besteht, die oft zapfenartig nach Innen vorspringen. Dann folgt eine Zone größerer Parenchymzellen und dann die Region der Inklusen. Größere rundliche Parenchymzellen führen hier je einen hellen, stark lichtbrechenden, weichen, runden Körper, der sich Reagentien gegenüber ähnlich verhält, wie die Inklusen von _Ceratonia_ und _Diospyros_ (~Tichomirow~). Die Dattelinklusen färben sich mit Eisenchlorid blaugrün bis schwarz, mit Vanillin-Salzsäure rot. Sie enthalten ein in Wasser unlösliches Phloroglukotannid. Das Endocarp löst sich leicht als Silberhaut ab. An der Stelle, die der Samenrinne (s. unten) entspricht, ist es als Leiste vorgestülpt. Zwischen ihm und dem Fruchtfleisch findet man bisweilen Zuckerkristalle (~Vogl~, Nahrungsm. Fig. 136). Der +Same+ ist gestreckt, beiderseits zugespitzt, an der einen Seite mit einer Rinne versehen. Die dünne Samenschale besteht aus einer mehrzelligen äußeren hellen und aus einer einreihigen braunen Schicht, die auch in die Rinne eindringt. Die Zellen sind schwach verdickt und getüpfelt. Das Endosperm ist hart, hornig, läßt sich aber mit dem Messer schneiden. Es besteht aus strahlig angeordneten, radial gestreckten, stark verdickten und reich getüpfelten Zellen, die reichlich Aleuronkörner enthalten. Der kleine Keimling liegt in der Mitte der konvexen Längsseite. =Chemie.= Die Dattel enthält im vom Kern befreiten Fruchtfleisch 28-66, im Durchschnitt c. 47% +Invertzucker+ (20,7-39,3% +Dextrose+ und 22,1-22,4% +Lävulose+) und, wie es scheint, keinen Rohrzucker (~Bonastre~ gab 1832 welchen an). Der +Dattelhonig+ enthält 39,3% Dextrose, 32,4% Lävulose, 3,3% Pektin. Der +Dattelsirup+ 29,7% Dextrose und 22,1% Lävulose. Die aus Dattelhonig (s. unten) auskristallisierende Masse besteht aus 83,4% +Dextrose+ und 11% +Lävulose+ (~Grimbert~). Die Dattel enthält ferner in Prozenten: 20,8 +Wasser+, 6,6 +Eiweißstoffe+, 11,3 +Pektose+ und +Gummi+, 0,2 +fettes Öl+, 5,5 +Rohfaser+, 1,6 +Asche+. Asche der Samen: 1,1%. Die Samen enthalten viel +Reservezellulose+, eine Hemizellulose, die beim Keimen gelöst wird und +Cytase+ (~Newcombe~). Sie liefern bei der Hydrolyse +Galaktose+ und +Mannose+, enthalten also Galaktane und Mannane. =Verwendung.= Die Dattel ist vornehmstes Nahrungsmittel der Stämme in ganz Nordafrika. Jede Karawane hat einen Dattelvorrat. Die Elemente des genügsamen Fellah sind: Sonne, Nil, Dattel und Prügel. Der geröstete Kern wird in Algerien und auch sonst als Kaffeefälschungsmittel benutzt. In Europa werden Dattelkerne zur Fälschung der Gewürze angewendet. +Dattelkerne+ (Dactylorum ossa seu nuclei) finden sich in der Braunschweiger Taxe von 1574 (I, S. 816), wurden also jedenfalls damals als Arzneimittel benutzt. Die schlechteren Dattelsorten werden zur Alkoholfabrikation benutzt. Datteln aus Maskat werden z. B. in Vorderindien in großen Massen auf Schnaps verarbeitet. Die Fabriken in Urann gehören Parsi. Medizinische Anwendung findet die Dattel in Europa kaum noch, doch ist sie Bestandteil der quatre fruits pectoraux. Dattelsirup wird in Afrika als Pectorale benutzt. (Im übrigen vgl. ~Dragendorff~, Heilpflanzen.) Im Innern von Algerien wird aus einer sehr zuckerreichen Dattelart (Gharz) +Dattelhonig+ (dibus) und +Dattelsirup+ in der Weise bereitet, daß man die Früchte auf Palmzweighorden übereinander häuft und der Sonne aussetzt. Es fließt dann ein sirupdicker Saft aus, aus dem bisweilen Zucker reichlich auskristallisiert. Dattelhonig (_mel phoenicinum_) wird bereits im Edikt ~Diocletians~ (I, S. 570) erwähnt. Um Zucker aus der Dattelpalme zu gewinnen, macht man tiefe Einschnitte am oberen Stamm. In Jessore bei Calcutta wird noch jetzt viel Zucker aus dem Palmsaft bereitet. +Dattelwein+ (duschab), den bereits die Bibel, ~Herodot~ und ~Plinius~ erwähnen, wird noch heute dargestellt (vgl. I, S. 1017); ebenso +Dattelbranntwein+ (in Ägypten und Indien). Datteln wurden und werden im Orient bisweilen als Geld benutzt (I, S. 186). =Geschichte.= Schon in altsumerischer Zeit war die Dattel im Zweistromlande bekannt (I, S. 476). Sie ist ein Bestandteil zahlreicher Keilschriftrezepte, ebenso wie der Palmwein (Dattelwein I, S. 485). Die Dattelpalme findet sich auf den ältesten Darstellungen von Pflanzen, die auf uns gekommen sind, z. B. auf assyrischen Denkmälern (I, Fig. 371 u. 372), dort oft mit dem Weinstock zusammen. Berühmt war der königliche Dattelgarten von Babylon: Bagou; ~Strabo~ (I, S. 532) berichtet, daß die Dattel für die Babylonier Brot, Kuchen, Wein, Essig, Honig und Mehl gewesen, daß sie die Blätter zu Flechtwerk, die Kerne als Viehfutter und geglüht als Kohle für Schmiede benutzt hätten. Auf ägyptischen Denkmälern findet sich die Dattelpalme schon im III. Jahrtausend n. Chr. (I, Fig. 467). Sie scheint zur Zeit der X-XI. Dynastie (2560-2380 n. Chr.) dort in Kultur genommen worden zu sein (~Wönig~). Sie findet sich auch unter sehr alten Grabbeigaben (Verzeichnis bei ~Buschan~). Im Papyrus ~Ebers~ wird die Dattel, auch die unreife, Dattelhonig, -Wein und -Kuchen als Heilmittel erwähnt. Dattelwein und Dattelhonig waren schon zur Zeit des alten Reiches Heilmittel. Ein uraltes, noch heute gültiges, ungeschriebenes Kriegsrecht verbietet das Umhauen der Dattelpalme. Die Dattel (tamār) und ihr Honig (dibs) waren auch bei den Juden in Anwendung (I. Mose 43). Nach den griechischen Inseln kam sie um das Jahr 1000 n. Chr. (~Hehn~). Um das Jahr 700 n. Chr. kam sie nach Attica und Korinth (~Schwendener~). Auf dem italienischen Festlande ist sie 291 n. Chr. nachzuweisen (~Buschan~). Eingehend gedenkt ihrer ~Theophrast~ (I, S. 547), der auch die künstliche Befruchtung beschreibt und über die Ertragsfähigkeit orientiert ist. Er rühmt die kölesyrischen. Berühmt waren auch die syrischen sowie die von Jericho, welche Stadt Palmyra (hebr. Tadmor) hieß, d. h. Dattelstadt. ~Plinius~ unterscheidet verschiedene Sorten (die königlichen, die Syagren, Margariden, Sandaliden, Karyoten, Nikolaen, Adelphiden, Paleten, Dactylen). Im Periplus wird φοῖνιξ aus Persien und Gedrosien erwähnt (I, S. 535), als Ausfuhrhafen Barygaza. Im Pen tsao kang mu (I, S. 519) finden sich persische D. Für die Chinesen war der Dattelbaum eine «fremde Pflanze» (s. oben S. 35). In der Liste des ~Serapion~ (I, S. 606) finden sich dactili (Rorab). Die ~Hildegard~ erwähnt den Datilbaum (I, S. 671). Datteln (Dactyli ping., dattuli) finden sich auch bei ~Cordus~ (I, S. 798). =Lit.= ~Baillon~, Monographie des palmiers. Paris 1895. -- ~Drude~, Palmen in Engler-Prantl. -- ~Martius~, Verbreit. d. Palm. in d. alt. Welt. Münch. gel. Anzeig. 1839. -- ~Seemann~, Die Palmen. Deutsch von ~Bolle~ 1863. -- ~Wönig~, Pfl. d. alt. Ägypt. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botanik. 1895. -- ~Schwendener~, Kulturpflanzen, Vortrag. -- ~Schweinfurth~, Pflanzengeogr. Skizze d. ges. Nilgebietes. Peterm. geogr. Mitth. 1868 und (Über d. Kultur d. D.) Gartenflora 1901. -- ~Curtis~, Nil-Skizzen eines Howadji. Deutsch v. ~Spielhagen~ 1857. -- ~Fischer~, Die Dattelpalme, vgl. auch ~Fischers~ Karten in Peterm. Geogr. Mitt. Ergänzungsh. 64. 1881. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. 2. Aufl. I. -- ~Hassack~, Schönheit u. Nutzen d. Palmen. Vortrag, Wien 1898. -- Morph. Abbild. in ~Hérail~, Traité de pharmac. 1901, p. 64. -- Die Keimung der D. in ~Sachs~’ Lehrb. d. Bot. S. 444. -- ~Willkomm~, Südfrüchte. Samml. gemeinverständ. Vortr. 1877. -- ~Planchon-Collin~, Drogues simples. -- ~Hanausek~, Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1892. -- ~Vogl~, Nahrungs- u. Genußm. (anatom. Abbild.). -- ~Tichomirow~, Die Johannisbrotartigen Intrazellular-Einschließ. im Fruchtparench. mancher süßen Früchte usw. Bull. Soc. des Naturalist. de Moscou 1905. -- ~König~, Nahrungs- u. Genußm. 4. Aufl. 1903. -- ~Grimbert~, Journ. pharm. chim. 1889, p. 485. -- ~Vinson~, the Endo- and Ektoinvertase of the date. Journ. Am. Chem. Soc. 1908. Passulae. 1. =Passulae majores= -- Uvae passae -- Große Rosinen, Zibeben -- Raisins secs, R. passés ou de Malaga (franz.) -- Raisin (engl.) -- rozijn (holl.) -- rusina (finn.) -- mazsolaszöllö (ung.). Die Weinbeere heißt arab. ’Eneb, die Traube ägypt. elel, árer, aarer-t und die Rosinen zmtn. =Vitis vinifera= L., Vitaceae, Vitoideae, in sehr zahlreichen Kulturformen. (Sowie die amerikanische Rebe: =Vitis Labrusca= L. u. and.) Ursprüngliche Heimat vielleicht im Südkaukasus. [Illustration: Fig. 13. Der größte Rosinenmarkt der Erde, Savannah in Georgien. [Aus Les grandes cultures.]] =Etym=. Vitis ist sehr verschieden gedeutet worden. «Vitis a vino, idque a vi» (~Varro~), «Vitis dicta quod vim habeat citius radicandi» (~Isidor~), auch von vincire (= binden) -- Vinum, vin, wine, wijn etc. in allen Kultursprachen (s. auch unter Geschichte). Die reifen getrockneten Beeren, die sehr große Mannigfaltigkeit in Gestalt, Größe und Farbe besitzen, kommen aus Spanien, Frankreich, Griechenland, Kleinasien in den Handel. Die besten sind die +Smyrnäer+ (Elemé [s. Caricae], Chesme), sowie die Valencia-Rosinen (Spanien). Die +Sultaninen+ sind die größten, die +Malagatraubenrosinen+ (Muscateller) sehr fleischig, meist noch an den Stielen. Die +Zibeben+ sind hartfleischig, dunkel, oft zusammengeklebt. Rosinen werden in Kisten oder Fässern versandt. Besonders Malaga und Valencia sind Verschiffungshäfen für Rosinen. Beide Häfen verschiffen zusammen 3 Millionen Kisten (à 25 engl. Pfund). Dreiviertel der Rosinenausfuhr entfällt auf Malaga. Die Malagarosinen sind groß, fleischig und sorgfältig sortiert. Auch Kalifornien produziert jetzt steigende Mengen Rosinen. Savannah in Georgien ist einer der größten Rosinenhäfen der Welt (Fig. 13). Die Methoden der Trocknung sind verschieden. Entweder wird die Traube direkt in der Sonne getrocknet oder zuvor in heißes Wasser getaucht, oder künstliche Wärme benutzt. Die Valencia-Rosinen werden, um ihre Haut zarter zu machen, vor dem «Dörren» in ein aus Rebenasche hergestelltes Laugenbad getaucht. Die aufgeweicht kugeligen +Früchte+ sind von einer aus polygonalen Zellen bestehenden Epidermis bedeckt. Das Mesocarp besteht aus großen, zartwandigen Zellen, die bei der Droge tafelförmige Zuckerkristalle und derbe, meist zugespitzte Weinsteinkristalle enthalten. Legt man einen Schnitt durch eine Rosine in Öl, so sieht man die Schnittfläche mit zahlreichen großen Kristallen von Zucker und Weinstein, die in eine weiche hyaline Zuckermasse eingebettet sind, bedeckt. Daneben finden sich kleine Rosetten feiner Nadeln. Legt man einen Schnitt in Wasser, so lösen sich die Zuckerkristalle und man erkennt, daß der Weinstein besonders in der Peripherie liegt. Erwärmt man das Wasserpräparat, so lösen sich auch die Weinsteinkristalle. Die zarten Gefäßbündel sind bisweilen von Kristallkammerfasern begleitet. Die Fruchthöhle erscheint als Spalt. Die birnförmigen, meist zu zwei vorhandenen +Samen+ besitzen eine Epidermis mit dicker Außenwand. Dann folgt ein zartwandiges Parenchym, von dem einige Zellen Oxalatnadeln führen und auf dieses eine breite Zone starkverdickter, radialgestreckter Sclereïden. Zu innerst liegt wieder ein zartes Gewebe (Gitterzellen) und eine innere Epidermis. (Abbild. bei ~Moeller~). Das +Endosperm+ enthält Aleuronkörner, die entweder eine Oxalatdruse oder ein Globoid enthalten. [Illustration: Fig. 14. Die in Griechenland übliche Methode, die Korinthen zu trocknen. [Aus Les grandes cultures.]] Sie enthalten 60,5-73,5%, im Mittel: 61-64% +Invertzucker+ (~König~) und zwar c. 27% +Dextrose+ und c. 34% +Lävulose+, meist keinen Rohrzucker oder nur sehr wenig, ferner +Weinstein+. Im Mittel 1,22% freie Säure auf Weinsäure bezogen und 1,66% Asche. Ferner +Apfelsäure+ und +Pectin+, die Samen 5-6% +Gerbstoff+. Das 15-18% der Samen betragende (gelegentlich extrahierte) +fette Öl+ enthält vorwiegend Glyzeride der Erucasäure (C₂₂H₄₂O₂), dann auch solche der Stearin- und Palmitinsäure (Fitz). Auf und in den getrockneten Weinbeeren kristallisiert bisweilen Zucker und Weinstein aus. Trauben enthalten auch pro kg 0,32 mgr +Salizylsäure+, wohl als Methylester (~Traphogen~) und etwas +Borsäure+ (~Norton~). Die Einfuhr von Rosinen in Hamburg betrug seewärts in dz 1906: 110688, 1907: 114342, 1908: 99537. Von der Einfuhr 1908 stammte das meiste (67055 dz) aus Kleinasien und Spanien (24382 dz). Beträchtlich war auch noch die Zufuhr aus der europäischen Türkei (3031) und Persien, geringer die aus den russischen Häfen am Schwarzen und Asowschen Meer, aus Griechenland und den Jonischen Inseln, Syrien, Italien, Frankreich, Chile, Australien. +Deutschland+ importierte 1909: 184665 dz +Rosinen+. 2. =Passulae minores=, Uvae corinthiacae -- Kleine Rosinen, Korinthen -- Raisins de Corinthe -- Currants -- von =Vitis vinifera var. apyrena= L. Die etwa erbsengroßen, kernlosen Korinthen kommen aus Griechenland, besonders von den Jonischen Inseln (z. B. Zante), dann auch von Morea. Patras im Peloponnes ist der größte Korinthenhafen. Sie bilden einen Hauptexportartikel Griechenlands und kommen meist in Kisten in den Handel (Fig. 15). Die Korinthen enthalten im Fruchtfleisch reichlich Weinsteinkristalle. Der rote Farbstoff ist auf die peripherischen Zellschichten beschränkt. [Illustration: Fig. 15. Beginn der Verschiffung der Korinthenkisten (10.-15 August). [Aus Les grandes cultures.]] Sie enthalten im Mittel c. 62% +Invertzucker+ und zwar 31-36% +Lävulose+ und 25-30% +Dextrose+; im Mittel 1,52% freie Säure (auf Weinsäure bezogen) und 0,4% +Apfelsäure+, sowie im Mittel 2,61% +Weinstein+, etwas Borsäure (~Norton~) und 1,84% Asche. +Griechenland+, das Hauptproduktionsland von Korinthen, wohin die Rosinentraube ungefähr um das Jahr 1600 kam, produzierte 1907: 288300000, 1908: 328500000 venezian. Liter Korinthen (σταφίς) und exportierte 1907: 247238809, 1908: 201333485 venez. Liter. Viel geringer war der Export von Rosinen (Sultaninen, s. oben). Er betrug 1907: 733433, 1908: 15207440 venez. Liter (~Emmanuel~). Ein venez. Liter ist = 480 g. Die Einfuhr von Korinthen in Hamburg betrug seewärts in dz 1906: 80728, 1907: 89682, 1908: 65839. Von der Einfuhr 1908 stammte das meiste (64291 dz) von Griechenland und den Jonischen Inseln. Geringere Mengen kamen von Kleinasien, Italien, Algier. +Deutschland+ importierte 1909: 158604 dz +Korinthen+. =Pathologie.= Prof. ~Ed. Fischer~ berichtet über die Schädlinge: Bei der großen Bedeutung, welche der Weinrebe als Kulturpflanze zukommt, ist naturgemäß auch ihren Schädlingen eine ganz spezielle Aufmerksamkeit geschenkt worden. Die Zahl der auf _Vitis vinifera_ nachgewiesenen Parasiten ist daher auch eine besonders große. Wir greifen im folgenden, besonders nach ~Sorauer~s Handbuch der Pflanzenkrankheiten, Editio 3., nur einige der allerwichtigsten heraus und beschränken uns auf solche, die auch auf die Beeren übergehen. Im übrigen verweisen wir auf die phytopathologische Literatur, speziell auch auf ~Viala~, Les maladies de la Vigne und ~Semler~, Tropische Agrikultur. _Plasmopara viticola_ (~Berk.~ et ~Curt.~), ~Berl.~ et ~de Toni.~, ruft auf der Weinrebe die unter dem Namen «+falscher Mehltau+» oder «+Mildew+» bekannte Krankheit hervor, die in einer Verfärbung und im Absterben der Blätter besteht, was auch ein Kleinbleiben der Beeren infolge von Nahrungsmangel nach sich ziehen kann. Der Pilz kann aber auch Blüten und jüngere Früchte befallen und bringt letztere zum Verschrumpfen und Abfallen. Bekämpft wird diese Krankheit besonders mit der Bordeauxbrühe (vgl. ~Tschirch~, Das Kupfer vom Standpunkt der Hygiene. Stuttgart 1893). _Uncinula necator_ (~Schwein.~) ~Burr.~ (_U. spiralis_ ~Berk.~ et ~Curt.~), eine Erysiphacee, entwickelt ihr Mycelium auf den Blättern ganz epiphytisch, bloß Haustorien in die Oberhautzellen entsendend. Es sieht daher aus wie ein spinnwebeartiger Überzug, der dann infolge der Conidienbildung mehlig bestäubt erscheint. Diese Conidienform des Pilzes ist längst unter dem Namen _Oidium Tuckeri_ bekannt und die Krankheit wird daher kurzweg +Oidium+ oder +echter Mehltau der Rebe+ genannt. Besonders verderblich wird sie dadurch, daß der Pilz auch auf die jungen Beeren übergeht, die klein bleiben, Risse bekommen und zugrunde gehen. Erfolgreich bekämpft wird diese Krankheit durch Aufstäuben von Schwefelblumen. _Guignardia Bidwellii_ (~Ell.~) ~Viala~ et ~Rawaz~, besonders in der Pyknidenform (_Phoma uvicola_ ~Berk.~ et ~Curt.~) bekannt, ruft die sog. Schwarzfäule (Black-rot) der Trauben hervor, bei der die Beeren mißfarbige, später braune Flecken erhalten, dann verschrumpfen und vertrocknen. _Charrinia Diplodiella_ (~Speg.~) ~Viala~ et ~Rawaz~, mit ihrer Pyknidenform _Coniothyrium Diplodiella_ (~Speg.~) ~Sacc.~, wie die vorige ein Pyrenomycet, ist der Erreger der +Weißfäule+ (White-rot). Die Beeren nehmen dabei erst eine grauweiße Farbe an und trocknen schließlich ebenfalls ein. _Botrytis cinerea_ ~Pers.~, ein grauer Schimmel, wird als Conidienform des Discomyceten _Sclerotinia Fuckeliana_ angesehen. Auf reifen Beeren auftretend ruft er die sog. +Edelfäule+, auf unreifen die +Sauerfäule+ hervor. Fäulniserscheinungen der Beeren können übrigens auch durch _Penicillium_ hervorgerufen werden. _Gloeosporium ampelophagum_ (~Pass.~) ~Sacc.~ (_Sphaceloma ampelinum_ ~de By.~), eine «Imperfecte», ist der Erreger des +Schwarzen Brenners+ oder der +Anthraknose+, die auf allen Teilen des Weinstockes auftritt und auch die Beeren befällt. Letztere erhalten braune Flecken, schrumpfen und vertrocknen. _Melanconium fuligineum_ (~Scrib.~ et ~Viala~) ~Cav.~, ebenfalls eine Imperfekte, ruft ein Verschrumpfen der Beeren hervor, das unter dem Namen «+Bitterrot+» bekannt ist. =Schädlinge.= Häufig finden sich in älteren Rosinen und Korinthen Milben, besonders _Carpoglyphus passularum_ (~Israel~). =Anwendung.= _Passulae_ gehören zu den Früchten der Spec. pectoral. cum fructibus. Abführkorinthen (_passulae laxativae_) werden durch Einquellen von Korinthen in Wiener Trank und Trocknen bereitet. Früher wurden auch die Weinranken (_Pampini vitis_) und der Saft (_Omphacium_) vor der Reife gesammelter Weinbeeren (_Agresta_) benutzt. Die Pharmazie benutzt meist Valenciarosinen (~Hanbury~). Gemahlene Traubenkerne sind als Kaffeefälschung beobachtet worden. Der eingedickte Traubensaft heißt bei ~Ibn Baithar~ thilâ (so auch bei ~Galen~). Frischer Traubenmost wurde schon von den Alten als Versüßungsmittel benutzt und +Traubenzucker+ stellten schon die Araber aus eingedicktem Traubensaft dar (~Ibn al Awam~, ~Ibn Batuta~). Sie wußten bereits, daß er sich von Rohrzucker unterscheide. Er findet sich auch bei ~Pegolotti~, ~Olivier de Serres~ (1600), ~Glauber~ und ~Juncker~ (Conspectus chemiae 1730). ~Glauber~ stellte 1660 aus Most, Rosinen, Kirschen und Birnen körnig-kristallinischen Traubenzucker dar (I, S. 883). Rein erhielt ihn ~Marggraf~ (I, S. 964). Zur Zeit der Kontinentalsperre bestanden in Frankreich Traubenzuckerfabriken, die aber eingingen, als ~Kirchhoff~ 1811 die Darstellung des Stärkezuckersirups (Sirop impondérable, Capillairsyrup) entdeckte (~von Lippmann~). =Geschichte.= Die Heimat der Kultur des Weinstockes ist wohl in der Nähe des Caspimeeres, am Oxus und Jaxartes und südlich vom Kaukasus zu suchen. Von dort haben sie vielleicht die Ursemiten nach Westen gebracht, zunächst wohl nach Palästina, Syrien, Phönikien, Babylonien und Ägypten. ~Schrader~ hält aber nicht die Semiten für die Erfinder der Weinkultur, sondern indogermanische Stämme des westlichen Kleinasiens. Er leitet οἶνος (Wein) von dem indogermanischen voino, vino (= Ranke) ab. Das Wort Wein ist auch indogermanisch und stammt, wie vitis, von dem urindogermanischen uei = sich winden, bezeichnete also zunächst die Rebe (~Hoops~). Die Phönikier brachten die Weinkultur dann nach Massilia (Marseille), von dort kam sie nach Spanien. Die Römer brachten sie nach dem Norden. In Afrika baut Tunis und Algerien sowie das Capland Wein. Auch Australien ist jetzt Weinland geworden, ebenso China. In Amerika baut Chili, Argentinien, Peru, Bolivien, Brasilien, Uruguay, Mexiko, ferner Florida, Virginien und Kalifornien Wein. In prähistorischen Tuffsteinablagerungen von Montpellier finden sich Weinblätter (~Planchon~), in Pfahlbauresten Weinbeerensamen (Heer). Wild findet sich _Vitis vinifera_ noch jetzt da und dort in Spanien, so daß anzunehmen ist, daß sie über ganz Europa verbreitet war. In Pfahlbauten der neolithischen und Bronze-Periode sind Traubenkerne oft gefunden worden (Verzeichnis bei ~Buschan~). Schon auf ägyptischen Denkmälern aus der Zeit der V. Dynastie (um 3500 n. Chr.) finden wir Darstellungen von Anbau und Pflege des Weinstockes und Bereitung des Weines. Er hieß dort arp. Die alten Ägypter kannten acht Weinsorten. Der Weinstock muß in prähistorischer Zeit nach Ägypten gebracht worden sein. Ebenso findet er sich auf vielen babylonischen Denkmälern (I, S. 481, 483). Auch in uralten griechischen Gräbern finden sich Darstellungen der Weinernte. Auf dem Schilde des ~Achill~ wird die Traubenlese geschildert. Kreta, das Eldorado der antiken Heilpflanzenkultur, war in früher Zeit auch ein wichtiges Weinland, da das +damalige+ Klima Italiens der Weinkultur nicht eben hold war (~Buschan~). Die Weinberge von Burgund und Bordeaux bestanden schon zu ~Strabos~ Zeit, die an der Mosel und am rechten Rheinufer im II. bzw. III. Jahrh. (~Hoops~). Bereits die alten Ägypter trockneten die Weinbeeren und bereiteten Rosinen. Man fand solche -- es war besonders _Vitis vinifera var. monopyrena_ -- unter den ägyptischen Grabbeigaben (~Braun~, ~Schweinfurth~). Rosinen (inekuun -- Körner) sind ein Bestandteil des Kyphi (I, S. 473). Die Rosinen werden auch in der Bibel erwähnt (in Jesaias und Jeremias), sogar bereits kernlose Beeren (sorek). Im Edikt ~Diocletians~ (I, S. 570) stehen «ubae passae fabriles et maximae». Im Mittelalter waren Rosinen nördlich der Alpen ein Luxusartikel. In den mittelalterlichen Heilmittellisten, der Alphita (I, S. 655), bei ~Platearius~, ~Serapion~ und in den Synonoma ~Bartholomei~ stehen passulae, uva passa, haineb, uva çibib. Rosinen (pansa) finden sich auch im Zollbuch von Barcelona c. 1430 (I, S. 705), die Danziger Liste von 1410 (I, S. 811) führt sie als Einfuhrartikel von Lissabon auf. _Passulae enucleatae_ stehen im Nördlinger Register (I, S. 813). Bei ~Cordus~ (I, S. 801) finden sich _passulae enucleatae_ und _mucilago_ sowie _p. laxativae_ (s. oben). Traubenbeeren finden sich auch im Pen ts’ao kang mu als Heilmittel. =Lit.= ~Delitzsch~, Die Bibel und der Wein. 1885. -- ~Wönig~, Pfl. d. alt. Ägypt. -- ~Hehn~, Kulturpfl. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botanik. -- ~Rosenmüller~, Biblische Naturgeschichte. -- ~Hoops~, Waldbäume u. Kulturpflanzen. 1905. -- ~Vogl~, Nahr.- u. Genußm. 1899. -- ~Jos. Moeller~, Mikrosk. d. Nahrungs- u. Genußm. (dort weitere Literatur). -- ~T. F. Hanausek~, Nahrungs- u. Genußm. 1884. -- ~Villiers et Collin~, Traité d. altérat. et falsif. 1900. -- ~Howard~, Microsc. exam. of fruits. U. S. Agric. Dep. Bull. 66. -- ~Lampe~, Bau u. Entw. saftiger Früchte. Zeitschr. f. Naturw. 1886. -- ~Schuler~, Stud. über d. Bau u. d. Zusammens. d. Traubenbeere. Weinlaube 1880. -- ~König~, Nahrungsm. (dort die chem. Lit.). -- ~Fitz~, Ber. d. chem. Ges. 1871. -- Man vergleiche auch die Literatur der Unters. d. Nahrungs- u. Genußm. -- Über die Rosinenbereitung vgl. auch ~Semler~, Trop. Agrikultur. δ) Zu Roobs oder Pulpen verarbeitete Früchte. Hierher gehören die _Wacholderbeeren_, die _Fliederbeeren_, die _Pflaumen_, _Jujuben_, _Sebesten_ und die _Blaubeeren_, von denen seit der Zeit der Araber Roobs (Robs, Rubbs, I, S. 1062) bereitet wurden, aber nicht immer in arzneilicher Benutzung waren. Bei ~Cordus~ (I, S. 796) stehen auch noch folgende Roobs: R. de Ribes, de Berberis, Nucum, Diamorum, Cerasorum, Diamarenatum; in der Prager Taxe 1659: Roob Myrobalanorum; bei ~Cordus~ unter den Lenitiva et solutiva auch: Medulla sive Pulpa prunorum. Fructus Juniperi. =Syn.= Baccae Juniperi, Galbuli juniperi, Wacholderbeeren, Jachandel-, Johandel-, Kuddig-, Kattick-, Kranewitt-, Enebeer-, Reckholder-, Knirk-Beeren, -- Baies de genièvre (franz.) -- Juniper berries (engl.) -- Bacca di ginepro (ital.) -- Jenever bes (holl.) -- Katajan marja (finn.) -- boróka bogyó (ung.) -- ἀρκευθίς (griech.). In der +Alphita+ und den +Sinonoma+ (I, S. 650): geneure, gost, quikentre, grana juniperi, uva et semen. Bei der ~Hildegard~: cedrus und Wacholder, bei ~Albertus Magnus~ (I, S. 674): Juniperus, in den mittelenglischen Medizinbüchern (I, S. 683): tribulus. Weitere siehe unten unter Etym. und bei ~Kanngiesser~. =Etym.= +Wacholder+ (~Kluge~ schreibt Wachholder, beide Schreibweisen sind zulässig) von wach = lebendig (hier = immergrün) und +ahd.+ trâ (engl. tree) ter, tar = Baum; das ol ist eine Ableitungsendung. +ahd.+ Wecholter oder Wachholtern (zugrunde liegt das Wort wëhhalturia oder wëhhaltar), +mhd.+ auch Queckholter (Norddeutschland), von queck = lebendig (hier = immergrün), +angels.+ quicbeam; Wachholder auch vielfach entstellt in weckholter (~Brunschwig~, ~Bock~), wecheltürre, weckelder, wachhilter. Bei ~Hildegard~ auch: wachelterboum, bei ~Meggenberg~: wechalter, im +Ortus sanitatis+ und bei ~Cordus~: weckholder. Im +mnd.+ wachandel. Im Gothaischen Arzneibuch (I, S. 681): wachandelenbere. Daraus im Niederdeutschen: machandel (Ostfriesland) -- Jachandel (oberschles.) aus jach = munter (hier = immergrün) -- Rechholder (~Cordus~), Reckholder (in der Schweiz) aus reck = regsam (= queck und jach, s. oben) -- +kattick+, kaddie, katachu vom +altslav.+ kaditi = räuchern -- +kranwit+ (bei ~Meggenberg~) kranawit, kranetwit kraewet, kranawet (Österreich), sogar kranat aus +ahd.+ chrana (= Beere, unwahrscheinlicher aus kran = Kranich oder grôni = grün) und witu (= Holz) -- +knirk+ aus knick (= Hecke, niedriges Gesträuch, ~Kanngiesser~). Im Würzburger Rezept (I, S. 624) steht: aitiolidus = chraneuuito. Der Wacholder besitzt zahllose Volksnamen. =Lit.= ~Pritzel~ und ~Jessen~, Volksnamen. -- ~Kanngiesser~, Etymologie. -- ~Perger~, Studien über die deutschen Namen der in Deutschland heimischen Pflanzen. Denkschr. d. Wiener Akademie. 1860. =Stammpflanze.= =Juniperus communis= L. (~Linné~, Spec. plant. ed. I, 1040). =Etym.= Die Ableitung von _Juniperus_ ist zweifelhaft. ~Isidor. Hispal.~ (I, S. 592) glaubt, daß in _Juniperus_ der Begriff πῦρ = Feuer enthalten sei (nach der Form des Strauches oder weil das Holz das Feuer lange unterhält). Andere leiten es von iunix (= Kuh) und parere (= gebären) ab oder bringen es gar mit juvenis und parere (um die Benutzung von _Juniperus_arten als Abortiva anzudeuten) in Verbindung, noch andere mit dem keltischen Worte jeneprus = rauh. ~Kanngiesser~ bezeichnet die Ableitung ~Boerhaaves~ von junior und pario («da die jüngeren grünen Früchte gezeitigt werden, während die alten schwarzen noch am Strauche hängen») als die wahrscheinlichste. Aus _Juniperus_ entstand dann genévrier (franz.), enebro (span.), genepro (ital.), zimbro (port.), ferner jenever. =Systemat. Stellung.= +Coniferae+, Pinoideae, Cupressineae, Cupressinae (Sectio Oxycedrus). Über die sonst benutzten Arten der Gattung _Juniperus_ vgl. ~Tschirch~, Art. Juniperus in Realenzykl. d. Ges. Pharm. VII, 178. Die Arten der +Gattung+ _Juniperus_ bilden Bäume oder Sträucher mit in alternierenden, zwei- oder dreigliedrigen Wirteln angeordneten Nadeln oder Schuppen und diöcischen oder monöcischen Blüten (Fig. 16). Die männlichen Blüten werden von an der Basis von Staubblättern inserierten Pollensäcken gebildet, die weiblichen bilden einen kleinen armgliedrigen Zapfen. Die Zapfenschuppen des weiblichen Blütenstandes entstehen durch vollständige Verwachsung der Deck- und Fruchtblätter und erzeugen so einen beerenartigen Zapfen (Beerenzapfen, Galbulus, Scheinbeere), der die 1-3 (selten 4-8) Samen einschließt. Pollen ohne Exineblasen. Ovula frei, nicht in einen Fruchtknoten eingeschlossen (gymnosperm, nacktsamig), aufrecht, Integument krugförmig, an der Spitze offen. Zwei Cotyledonen. Bei der Sectio Oxycedrus sind die Nadelquirle dreizählig. Der Harzbehälter der Nadel (der +nicht+ fehlt wie die Systematiker vielfach behaupten) wölbt sich nach außen nicht vor (wie bei _Sabina_). Fruchtschuppen mit nur einer seitlichen Blüte. Zapfenschuppen in 1-3gliedrigen Wirteln, von denen nur der obere fruchtbar ist. =Vorkommen und Verbreitung.= _Juniperus communis_ L. ist ein durch ganz Europa bis zum äußersten Norden (Nordkap, Länder um die Hudsonsbai), sowie durch Mittel- und Nord-Asien auf offenen Heiden und in Wäldern als Unterholz verbreiteter, an den Seeküsten Bestand bildender, bis in die subalpine Region der Gebirge (im West-Himalaya bis über 4000 m) vordringender, in den Tropen und Subtropen fehlender, aber z. B. in Nord-Italien häufiger, selten geselliger (Lüneburger Heide, Ostpreußen, Ungarn) und dann einen bestimmten Vegetationscharakter (s. unten) bedingender Strauch von niedrigem Wuchs, der aber auch höher (bis 3 m) wird und dann pyramidale Umrisse zeigt, oder gar baumartig (bis 12 m), und dann cypressenähnlich wird (z. B. jenseits der Alpen, in Norwegen). In Ungarn bilden Wacholdersträuche oft undurchdringliche Dickichte. Im Gebirge wird er, besonders auf Torfgrund, bisweilen humifus und die Nadeln breiter und wenig stechend (Sierra Nevada bei 2600 m, auf der Balkanhalbinsel, in Südsibirien). Solche niederliegende, in den Hochalpen, in Schottland, Skandinavien, Nowaja Semlja und Grönland vorkommende Formen werden wohl als _Juniperus nana_ ~Willd.~ (_J. alpina_ ~Gaud.~, _J. prostrata_ ~Hort.~) oder _Juniperus sibirica_ ~Burgsdorf~ unterschieden, aber auch als gute Arten betrachtet. Aus der Ferne erscheinen diese meist isolierten niedrigen Büsche, die übrigens oft reiche Fruchtbildung zeigen, fast wie eine Herde Schafe (ähnlich den vegetable sheeps Neuseelands). Besonders der Kalk scheint den Wuchs zu hemmen (vgl. ~Körnicke~ und ~Roth~ in ~Karsten~ und ~Schenck~, Vegetationsbilder, 5. Reihe, Heft 1 und 2). [Illustration: Fig. 16. _Juniperus communis_ L. a, b, c, ♂ männliche, e, f, ♀ weibliche Infloreszenz, d Pollen, g Querschnitt durch f, i, k Samen. [Nach ~Berg-Schmidt~.]] _Wacholder_, jetzt neben der _Kiefer_ das weitverbreitetste Nadelholz Europas, muß schon in altgermanischer Zeit in ganz Deutschland gewachsen sein (~Hoops~). =Beschreibung der Stammpflanze.= Die anfangs glatte Rinde wird schon beim zweijährigen Sproß braun und von ihr lösen sich dann oft Schuppen und Bänder ab. Die jüngeren Internodien sind mehr oder weniger deutlich dreikantig. Die linear-pfriemlichen, abstehenden, linealen, starren, mit einer scharfen Stachelspitze versehenen, oberseits flachrinnigen Nadeln stehen in alternierenden, dreigliedrigen, genäherten Quirlen. Die Blüten stehen in den Achseln vorjähriger Blätter an kurzen Seitensprossen. Die männlichen sind fast sitzend, klein (3-4 mm), eikugelig bis oblong eiförmig. Bei den weiblichen ragen die drei aufrechten Ovula aus der ziegeldachartigen Hülle frei hervor, behüllt mit drei mit ihnen scheinbar alternierenden Fruchtblättern (Fig. 16). [Illustration: Fig. 17. _Juniperus communis._ Entwicklung des Galbulus. 1. Längsschnitt durch ein Zweiglein und die an seiner Spitze sitzenden Ovula vor der Befruchtung. 2. Dasselbe nach der Befruchtung. Die Fruchtblätter (hbl I) haben sich verdickt und beginnen um die Samenanlagen herum zu wachsen. 3. Die Fruchtblätter sind schon fast um die Samenanlagen herumgewachsen, doch hat sich die terminale Öffnung noch nicht geschlossen. 4. Die Öffnung ist geschlossen. Die kongenitale Verwachsung des Integumentes mit dem Fruchtblatte ist deutlich (links). 5. Reifer frischer Beerenzapfen längs durchschnitten. 6. Derselbe, quer durchschnitten. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Die Entwicklungsgeschichte des Galbulus ist folgende (ausführlichere Angaben bei ~A. Meyer~ und in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas). Fruchtbildende Zweiglein findet man bald in der Achsel aller drei Nadeln, bald nur in der zweier oder einer Nadel des Wirtels. Sie sind mit bis neun dreizähligen Wirteln kleiner Schuppenblätter besetzt. An der Spitze des Zweigleins sitzen die drei Ovula, von denen jedes nur ein Integument besitzt. Der Embryosack (Makrospore) entwickelt sich erst nach erfolgter Befruchtung (Mai, Juni). Im ersten Jahre entstehen nur die Embryoanlagen. Erst im Frühjahr des folgenden Jahres wird der Embryo ausgebildet. Der Beerenzapfen entsteht dadurch, daß die drei Blätter des obersten Hochblattwirtels, die man als Fruchtblätter bezeichnen kann, die zu Samen heranwachsenden Ovula umwachsen und schließlich der dadurch entstehende Becher oben fast ganz zusammenschließt -- nur einen dreistrahligen Spalt zurücklassend. So entsteht ein Gebilde, das ganz den Charakter einer Beere besitzt. Der einzige Unterschied ist der, daß, während bei der echten Beere die Ovula von vornherein in einem von den Fruchtblättern gebildeten Fruchtknoten eingeschlossen sind, hier die «Fruchtknotenwand» erst nachträglich gebildet wird. Die Bezeichnung Baccae juniperi kann also, wenn man den Begriff Beere im erweiterten Sinne braucht, aufrecht erhalten werden. Ein Fruchtstand ist der Galbulus keinesfalls, höchstens ein «Samenstand». Am besten ist wohl die Bezeichnung «Beerenzapfen». Die Spitzen der auch seitlich ganz miteinander verschmelzenden Fruchtblätter sind selbst an der reifen Frucht noch als kleine Höcker sichtbar. Die Blätter des zweiten Hochblattwirtels, die man als Deck- oder Vorblätter betrachten kann, verwachsen bisweilen mit der Basis der Fruchtblätter. Die Samenanlagen verwachsen nicht vollständig mit den Fruchtblättern. Die Spitze der Samen bleibt frei und ragt in die terminale Höhle des dreistrahligen Spaltes hinein. An der Basis ist jedoch die Verwachsung so vollständig, daß das Gewebe der Samenschale ganz allmählich in das der Fruchtblätter übergeht (Fig. 17). =Lit.= ~Eichler~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien. -- ~Brandis~, Forest Flora of northwestern and Central India 1874. -- ~Kerner~, Pflanzenleben der Donauländer. 1863. -- ~Schübeler~, Pflanzenwelt Norwegens 1875 und Viridarium norvegicum. 1888. -- ~Tschirch~, In Real-Enzykl. d. Pharm. VII. -- ~Pfitzer~, Entwickl. d. Embryos der Coniferen Bot. Zeit. 1871. -- ~Strasburger~, Die Coniferen u. Gnetaceen. 1872. -- ~A. Meyer~, Wissenschaftl. Drogenk. -- ~Tschirch~ u. ~Oesterle~, Anatom. Atlas. (Dort und bei ~Meyer~ die Entwicklungsgeschichte.) -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- +Abbild.+: ~Berg-Schmidt~ Atlas, II. Aufl., Taf. 155 (dort die florist. Liter.). -- ~Pabst-Köhlers~ Medizinalpfl., Taf. 53 -- und in fast allen anderen Abbildungswerken von Medizinalpflanzen. Die ältesten Abbild. bei den Patres. =Pathologie.= Parasitische Pilze scheinen als direkte Zerstörer der Beerenzapfen von _Juniperus communis_ keine große Bedeutung zu besitzen, während auf Blättern und Zweigen sehr zahlreiche Parasiten bekannt sind. Wir erwähnen nur die _Gymnosporangium_arten, deren Teleutosporenmycel in den Zweigen perenniert, die _Herpotrichia nigra_, die mit ihrem Mycel die beblätterten Zweige umspinnt, _Exosporium juniperinum_, das nach ~Jaczewski~ (Zeitschr. für Pflanzenkrankheiten XI, 1901) die Nadeln und oft auch den ganzen Strauch zum Absterben bringt, u. andere (~Ed. Fischer~). Über die tierischen Schädlinge berichtet ~Israel~: +Falter+: _Sesia cephiformis_ ~Ochs~, die Raupe dieses seltenen Glasflüglers lebt in Stengelanschwellungen von _Juniperus communis_. _Bupalus piniarius_ L., die Raupe dieses häufigen und in Nadelholzrevieren oft schädlich auftretenden Spanners lebt auch an _Juniperus communis_. _Cidaria juniperata_ L., Raupe an jungen Trieben. _Ypsolophus juniperellus_ L., die kleine Raupe verspinnt die Nadeln zu kleinen Säckchen und höhlt Nadeln und junge Triebe aus. Außer diesen leben an _Juniperus_ noch eine große Anzahl von Mikrolepidopteren, die aber weniger in Frage kommen. =Einsammlung.= Es werden nur die vollreifen Beeren des zweiten Jahres gesammelt und ohne Anwendung von künstlicher Wärme getrocknet. Wacholderbeeren ziehen leicht Feuchtigkeit an, sie werden daher am besten über Kalk aufbewahrt. Bisweilen kristallisiert Fruchtzucker auf der Oberfläche aus. Das Pulver wird aus über Kalk getrockneten Beeren hergestellt. Man kann die dem Insektenfraß ausgesetzten Früchte dadurch schützen, daß man sie mit Äther besprengt und in mit Äther ausgespülten, gut schließenden Gefäßen aufbewahrt (~Idelson~). =Handelssorten.= Wachholderbeeren kommen besonders aus +Nord-Italien+ (Parma), +Ungarn+, besonders den +Karpathen+, Frankreich, besonders Südfrankreich und den Departements Jura, Doubs, Savoien, und Deutschland (Ostpreußen, Lüneburger Heide), weniger aus Rußland und Mähren. Der Handel spricht von italienischen, ungarischen und deutschen Wacholderbeeren. Italienische sind in Säcken à 50 oder 60 kg im Handel. =Morphologie der Droge.= Die Baccae juniperi sind fast kugelig, kaum schwach dreikantig und besitzen einen Durchmesser von 5-9 (meist etwa 6-8) mm -- die indischen und die von Neufundland sind größer --. Außen sind sie tief braunschwarz und meist noch mit einem bläulichen Reif (Wachsüberzug) bedeckt. Nach Abwischen dieses sich leicht abscheuernden Reifes erscheinen sie glänzend. An der Basis sitzt oft noch als kleines Spitzchen der Sproßrest mit den kleinen Hochblattwirtelchen. Etwas seitlich von der Spitze erblickt man die breiten Spitzen der drei Fruchtblätter (s. oben), zwischen diesen mit der Lupe den dreistrahligen Spalt. Bei den Früchten von _Juniperus nana_, seltener bei _Jun. comm._, kommt es vor, daß der Galbulus durch Verwachsung von zwei dreizähligen Blattvierteln entsteht, also an der Spitze sechs Nähte sich zeigen. Diese Form hat ~Göppert~ als _Juniperus commun. var. duplicata_ beschrieben. Bei _Juniperus Oxycedrus_ ist diese Erscheinung häufig (~Flückiger~). Das Innere ist markig-mürbe, grünbräunlich, durch zahlreiche Ölbehälter oft glänzend punktiert. Die drei sehr hartschaligen Samen lassen sich leicht herauspräparieren. Sie sind oval-oblong, stumpf-dreikantig, meist mit einem starken, bisweilen fast flügelartigen Kiele versehen, an der Mikropylarseite zugespitzt, die Spitze nach oben gerichtet. Sie sind bis zu halber Höhe mit der Fruchtschale (Zapfenschuppe) verwachsen, oben frei. Succedane Querschnitte lehren, daß die Samen an der Basis der Frucht vollkommen ringsum, in der Mitte nur außen und oben gar nicht untereinander und mit dem Fruchtblatte verwachsen sind und die Fruchtblätter unten vollkommen, in der Mitte nur an den Rändern, ganz oben gar nicht miteinander verwachsen sind. Sie tragen, in die Testa eingesenkt, an der Basis der Bauchseite 1-2, an der Rückenseite 2-8, meist ungleich große, blasige, rundlich-elliptische, beim Herauslösen meist an dem Samen haften bleibende Ölbehälter. Der gerade Embryo ist in Endosperm eingebettet. [Illustration: Fig. 18. _Juniperus communis._ Querschnitt durch den reifen Samen und das angrenzende Gewebe des Fruchtblattes. Die Nährschicht (4 und 5) ist bis auf die innere Epidermis (5) obliteriert, ebenso der Nucellarrest (6, 7). Die Nährschicht dringt an den Ecken (x) in die Sclereidenschicht der Samenschale (3) ein. End Endosperm, rad Radicula, scb Sekretbehälter. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anatomie der Droge.= Die Epidermis der +Fruchtschale+ ist außen stark verdickt, an den Seitenwänden getüpfelt. Sie enthalten außer dem großen Zellkern eine braune, körnige, durch Jod gelbbraun, durch Eisenchlorid grünschwarz, durch Kali goldgelb sich färbende Masse, die die tief braunschwarze Farbe der Außenseite bedingt. Die Auffassung (von ~Nestler~), daß die in und auf der Frucht sich sehr häufig aber nicht immer findenden Fadenpilze [_Aspergillus_ (?), ~Lendner~ fand mindestens drei verschiedene] die Umfärbung der grünen Beeren in Braunschwarz bedingen, ist nicht richtig. Die die Reifung begleitende, sehr rasch eintretende, schon ~Theophrast~ bekannte Farbenänderung wird vielmehr bedingt durch den Sauerstoff der Luft und die Wirkung von Peroxyden und Peroxydasen auf den Gerbstoff und die harzartigen Substanzen der Epidermis (~Lendner~). Der Außenwand der Epidermiszellen ist ein feinkörniger Wachsüberzug aufgelagert, den man besonders auf den frischen Früchten regelmäßig findet. Spaltöffnungen finden sich meist nur an der Spitze der Frucht. Gegen den Spalt hin werden die Epidermiszellen der Innenseite der Fruchtwand papillös und am Spalt schieben sich die Pupillen zahnartig ineinander. Auf die Epidermis folgt ein schwach kollenchymatisches Hypoderm von einigen Zellschichten. Dann wird das Gewebe rasch sehr lückig und reich durchlüftet. Die großen rundlichen Zellen enthalten einen großen Zellkern und oft noch Chlorophyllkörner (bei der unreifen Frucht auch Stärke). Bei Glycerinpräparaten kristallisiert in diesen Zellen oft Zucker in schönen Tafeln aus. In dieses mürbe Gewebe sind reichlich große, schizogene Ölbehälter eingebettet, die von elliptischer Form in der äußeren Fruchtwand 100-150 mik. weit, im inneren Teile der Fruchtwand eine Weite von 1-2 mm erreichen, also mit bloßem Auge sichtbar sind. Sie gehören alle zur Fruchtwand, sind aber zum Teil der Samenschale so fest eingefügt, daß sie beim Herauslösen der Samen an diesen haften bleiben (Fig. 16). Sie enthalten in der Droge meist einen hellen, zähen Balsam, bei unreifen Früchten ein farbloses Öl, bei alten Früchten eine bisweilen kristallinische Harzmasse. Das Öl verharzt rasch. Bei jüngeren Früchten ist das Sezernierungsepithel und die resinogene Schicht gut sichtbar. Außerdem findet man in dem Gewebe einzeln oder zu Gruppen vereinigt zahlreiche leere, bisweilen verbogene oder verkrümmte +Idioblasten+ (Tonnenzellen ~Moellers~) mit verholzter, bisweilen etwas verdickter Wand, behöften Tüpfeln oder (seltener) netzleistenartigen Verdickungen. Man kann dieselben als versprengte, metamorphosierte Tracheiden eines nicht normal ausgebildeten Tracheidensaumes oder Transfusionsgewebes betrachten. Sie sind auch im Pulver durch Anwendung von Phloroglucin-Salzsäure leicht sichtbar zu machen und finden sich auch an den Gefäßbündeln. Die zarten Gefäßbündel sind zahlreich. Drei größere, den Mittelrippen der Fruchtblätter entsprechende sind der Außenwand genähert. Innerhalb derselben finden sich je sechs in einem nach außen offenen Bogen angeordnete kleinere. Sie zeigen strahlige Anordnung ihrer Elemente und führen neben einer Gruppe derber Bastfasern mit meist linksschiefen Tüpfeln zarte Spiralfasertracheïden von meist nur 7-8 mik. Weite. Die +Samenschale+ zeigt folgenden Bau (Fig. 18). An den inneren Seiten, wo die Samen freiliegen, ist die aus der Epidermis des Integumentes hervorgehende Samenschalepidermis zu sehen. Sie besitzt gegen den Hohlraum hin verdickte Außenwände. Diese Epidermis löst sich frühzeitig von der darunter liegenden Schicht ab und ist beim reifen Samen als zarte Haut oft auf weite Strecken abgetrennt. Unter der Epidermis folgt eine Reihe parenchymatischer Zellen. Dort, wo der Same mit dem Fruchtblatte verwachsen ist, geht sein Gewebe ganz allmählich in das des Fruchtblattes über. Die dritte Schicht der Samenschale ist die Sklereïdenschicht. Sie besteht aus verschieden stark, besonders in den inneren Partien der Schale sehr erheblich verdickten und dort radial gestreckten Sklereïden von verschiedener Gestalt, deren Wand verholzt und geschichtet ist und die reichliche Tüpfel besitzen. Im Lumen führen sie oft einen oder mehrere Oxalatkristalle. An die Sklereïdenschicht schließt sich die +Nährschicht+ an, die beim reifen Samen meist sehr stark obliteriert ist. Dort, wo der Same scharf dreikantig ist, dringt die Nährschicht in Form flügelartiger Zapfen in die Kanten ein. Die innere Epidermis der Nährschicht (innere Epidermis des Integumentes) obliteriert nicht. Das +Perisperm+ ist bis auf eine zarte bräunliche, das Endosperm bedeckende Haut resorbiert, die aus fast ganz obliterierten Zellen besteht. Die Außenwand der Epidermis besteht aus drei Schichten, einer Stäbchenschicht, einer zapfenartig in die Zwischenwände vordringenden derben, gelblichen Zwischenschicht und einer hellen, inneren quellbaren Zelluloseschicht. Die ersten beiden sind cuticularisiert. Das zartwandige +Endosperm+ enthält Öl und Aleuronkörner mit Kristalloid und Globoiden. Der innere Rand des Endosperms besteht aus Quellgewebe. Die gegen die Spitze des Samens gerichtete gerade +Radicula+ und die beiden plankonvexen +Cotyledonen+ enthalten ebenfalls Öl und Aleuron. =Lit.= ~A. Meyer~, Wissensch. Drogenkunde (mit Abb.). -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Moeller~, Pharmakognosie, 2. Aufl. u. Nahrungs- u. Genußmittel. -- ~Nestler~, Über d. Vorkommen von Pilzen in Wachholderbeeren. Ber. d. d. Bot. Ges. 1899. -- ~Lendner~, Bull. scienc. pharmacol. 1903. -- Vgl. auch H. ~Mongin~, Et. anat. de la feuille des Junipérinées Thèse. Paris 1902. =Pulver.= Im Pulver walten die Parenchymreste und Sklereïdengruppen vor, sowie Reste der äußeren Epidermis. Auch einzelne Sklereïden sind zu finden, ferner die Zellen des Transfusionsgewebes (s. oben) und abgebrochene Papillen der Innenepidermis der Fruchtschale. Im Ölpräparat findet man die Aleuronkörner. =Lit.= ~Koch~, Mikrosk. Analys. d. Drogenpulv. IV. Taf. XIII. =Chemie.= Frische Wachholderbeeren enthalten 7,07% +Invertzucker+ (in der Trockensubstanz 32,88%), keine Saccharose, 6,67% sonstige stickstofffreie Stoffe, 2,79% +freie Säure+, 0,9% +Stickstoffsubstanz+ und 78,5% +Wasser+ (~König~). ~Donath~ (und ~Franz~) fanden in mährischen Wacholderbeeren: +Zucker+ 29,65% (12,62), wachsähnliches +Fett+ 0,64% (0,094), +Harz+ im Alkoholauszug 1,29% (1,33), +ätherisches Öl+ 0,91% (0,89), +Rohfaser+ 15,83% (29,43), +Bitterstoff+ (Juniperin) 1,37% (0,24), +Pektin+ 0,73 (1,64), +Ameisensäure+ 1,86% (1,5), +Essigsäure+ 0,94% (0,57), +Apfelsäure+ 0,21% (0,43). Alte Früchte enthalten auch Buttersäure. ~Behrend~ fand in italienischen Wacholderbeeren: 25,8% Zucker. In ganz reifen fand ~Franz~ 26,49%, in halbreifen aber nur 8,46% Zucker. Der amorphe Bitterstoff, das +Juniperin+ von ~Steer~, das sich aus einer Auflösung des Roob und aus dem Dekokte absetzt, ist schwarz, in viel Wasser und in Äther löslich. Es soll (nach ~Vogt~) ein Glukotannid (?) sein oder enthalten. Wahrscheinlich ist auch noch Chlorophyllan darin (~Tschirch~) und noch anderes. ~Niccolet~ fand ein krist. +Harz+, welches ~Henry d. J.~ analysierte (C = 75, H = 5%). Im Durchschnitt liefern italienische Beeren 1-1,5, bayrische 1-1,2, ungarische 0,8-1% +ätherisches Öl+; ostpreußische, polnische, thüringische und fränkische Beeren geben 0,6-0,9%, schwedische 0,5% (~Gildemeister~ und ~Hoffmann~). Je wärmer das Klima, umso höher also der Ölgehalt (~Mayer~). Die ölärmsten sind die von Trondjem und Tjelwestat Orebro (Schweden). Das meist linksdrehende Öl enthält in dem zwischen 155-162° siedenden Anteile +Pinen+ C₁₀H₁₆ (~Tilden~, ~Wallach~), in der Fraktion 260-275° +Cadinen+ (~Schimmel~). In dem Anteile 162-260° sind die charakteristisch riechenden Bestandteile enthalten. Ester (~Kremel~) sind es hier nicht (~Schimmel~). Die Verseifungszahl liegt meist bei 3,3-3,7 und steigt selten auf 7,4 und 16,4 (~Kremel~). Im Nachlauf fand ~Schimmel~ (1895) einen in Nadeln kristallisierenden Körper vom Schmelzpunkt 165-166°. Es ist dies wahrscheinlich der schon früher von ~Buchner~, ~Blanchet~, ~Wandesleben~, ~Zaubzer~ beobachtete +Wacholdercampher+ (Wacholderstearopten), dem ~Wandesleben~ die Formel C₆H₁₄O₆ gibt. Der +Pentosan+gehalt beträgt 5,96-6,07%. Auch +Inosit+ ist nachgewiesen. Das Wachs, das den Reif der Früchte bildet, besteht aus +Cerotinsäure- und Palmitinsäure-Myricylalkohol+ neben geringen Mengen eines einwertigen Alkohols mit niedrigem Molekulargewicht und Glycerinestern (~Vogt~). Der wässerige Extrakt soll nicht weniger als 20% betragen (Ph. austr.). Die Handelsware liefert bisweilen 30-32%. Der Wacholderbranntwein (Steinhäger, Gin, Genièvre) enthält 42,5-55 Vol.% Alkohol (~Mansfeld~ und ~Franz~ bei ~König~). Über die Herstellung des Wacholderbranntweins vgl. ~Behrend~, Zeitschr. Spir. Industr. 1890. Der +Asche+gehalt der Früchte beträgt meist 3-4,5% und soll 5% nicht überschreiten (Ph. helv. IV). Die Asche ist grünlich. Wenn die zerquetschten Beeren, behufs Gewinnung des ätherischen Öles, mit Dampf destilliert werden, so bleibt in der Blase eine süße Masse. Sie wird mit heißem Wasser ausgelaugt und im Vakuum eingedickt. Dies ist der =Succus= oder =Roob juniperi= (Wacholdermuß, Wacholdersalse, Kaddigmus, Johandelbeersaft, Rob de genièvre). Er riecht kaum nach Wacholderbeeröl, enthält aber bisweilen so viel Zucker, daß dieser reichlich auskristallisiert. Die Pharmakopoeen (z. B. die Helvet. IV) verstehen jedoch unter «Succus juniperi inspissatus» ein aus +nicht+ destillierten Beeren unter nachherigem Zuckerzusatz hergestelltes Extrakt. Will man ein pektinreiches Extrakt, so muß die Extraktion unter +gleichzeitigem+ Zuckerzusatz erfolgen (~Tschirch~). Unreife Wacholderbeeren sind nicht süß und enthalten Stärke, die später verschwindet (~Aschoff~), sowie reichlich Peroxydasen (~Lendner~). Auch das ätherische Öl unreifer Früchte ist anders zusammengesetzt wie das reifer (~Blanchet~ und ~Sell~). Die Pharm. brit. läßt das _Ol. junip._ aus unreifen Beeren destillieren. =Lit.= ~Steer~, Analys. d. Früchte v. Jun. com. Sitzungsber. Wien. Akad. XXI und ~Buchn. Repert.~ VI (1857). -- ~König~, Nahrungs- u. Genußm. IV. Aufl. -- ~Donath~, Jahresber. d. Ph. 1873. Polytechn. Journ. 1877, Vierteljahrsschr. f. Nahr. u. Genußm. 1892. -- ~Franz~, Ebenda. -- ~Ritthausen~, Landw. Versuchsstat. 1877. -- ~Behrend~, Chem. Zeit. 1890. -- ~Vogt~, Dissert. Erlangen 1889. -- ~Niccolet~, Journ. d. pharm. 17 (1831). -- Asche bei ~Hauke~, Zeitschr. d. österr. Apoth. Ver. 1902. ~Gildemeister~ und ~Hoffmann~, Äther. Öle. -- ~Wandesleben~, Jahresb. d. Chem. 1861. -- ~Zaubzer~, Rep. Pharm. 22. -- ~Tilden~, Jahresb. d. Ph. 1877. -- ~Wallach~, Lieb. Ann. 227 (1885). -- ~Kremel~, Pharm. Post 1888. -- ~Schimmel~, Berichte 1887, 1890, 1895. -- ~Mayer~, Prager Rundschau 1884. -- Ältere Lit. in ~Schwartzes~ Tabellen und ~Gmelins~ Handb. d. Organ. Chem. V (1858). Die Ausbeute an Öl ermittelten bereits ~Cartheuser~ (I, S. 962) und ~Spielmann~ (I, S. 965). Das Öl untersuchten auch ~Buchner~ (Repert. 1825), ~Blanchet~ (Lieb. Ann. 1833), ~Dumas~ (ebenda 1835), ~Soubeiran et Capitaine~ (ebenda 1840). =Geschmack.= Die Wacholderbeere schmeckt eigenartig gewürzhaft, süß mit etwas bitterlichem Beigeschmack. =Verwechslungen.= _Juniperus Oxycedrus_ L. (im Mittelmeergebiete bis Kaukasien) hat größere (bis 12 mm), glänzend braunrote Beeren. _J. macrocarpa_ ~Sibth.~ (auch im Mittelmeergebiete) hat noch größere Früchte (12-15 mm). _J. phoenicea_ L., zur Sectio Sabina gehörig (in Südeuropa und dem Orient), hat rote glänzende Beeren von 8-14 mm Durchmesser (das _Herb. Sabinae_ der französischen Apotheken stammt oft von dieser Pflanze. ~Collin~). _J. Sabina_ L. hat schwarze, blau bereifte Beeren von 6-8 mm Durchmesser. _J. virginiana_ L. hat dunkelpurpurne Beeren. Die Früchte von _Juniperus macrocarpa_ ~Sibthorp~, die die Größe einer Kirsche erreichen, sind sehr süß. Noch besser schmecken die Früchte von _Junip. californica_, die von den südkalifornischen Indianern in großen Mengen gegessen werden (Am. journ. ph. 1878). Nur die Beeren von _Juniperus Sabina_ sind als Beimischung in Wacholderbeeren wirklich beobachtet worden (~Tschirch~). Die roten Beeren der _Phoenicea_ sind leicht kenntlich. =Anwendung.= Seit alter Zeit gilt Wacholder beim Volke als ein souveränes Universalmittel gegen Wassersucht (wie der Holunder). Wie hoch er geschätzt wurde, zeigt der folgende alte Vers: Vor Hollerstaud’n und Kranawitt’n Ruck’ i mein Huat und noag (= neige) mi bis halbe Mitt’n. Auch beim Übertragen der Krankheiten der Pflanzen spielte ehedem der «Herr Wacholder» oder «Frau Kranewitt» eine Rolle (I, S. 1008). Um Hexen abzuwehren, werden kleine Kinder noch jetzt über Feuer gehalten, in denen man Wacholderbeeren verbrennt. Wacholderräucherungen galten auch als ein wirksames Mittel gegen die Pest: In den gassen und ringen Ettlich hundert Fewer prinnen Von kranwitholz weyrauch darzu, Damit der lufft sich raynigen thu. (~Schmeltzl~ 1548.) Jetzt ist die medizinische Anwendung der Beeren gering. Sie werden benutzt zu Teemischungen und Räucherungen, zu Bädern und Kräuterkissen, zum Genever (s. oben), in der Tierheilkunde zu Kropfpulvern und als Diureticum (~Gmeiner~). Extrahiertes Wacholderbeerenpulver, wohl aus der Öldestillation stammend, ist als Verfälschungsmittel des _Pfeffer_ beobachtet worden (~Spaeth~). Es wurde in Posten zu 300 Ztr. im Handel angeboten (~Waage~). Der serbische Schnaps +Wodnijika+ wird durch Vergärenlassen von Wacholderbeeren mit Senf und Meerrettich gewonnen (I, S. 1018). =Lit.= ~Gmeiner~, Pharm. Zeit. 1906. -- ~Spaeth~, Forschungsber. I 1893. -- ~Waage~, Verunrein. von Drogen. Ber. d. pharm. Ges. 1893. =Geschichte.= Der _Wacholder_ wurde im Altertum zu Räucherungen benutzt (wie auch heute noch), aber es handelte sich dabei wohl mehr um _Juniperus Oxycedrus_ und _phoenicea_, die auch im südlichen Mittelmeergebiet vorkommen. Diese sind wohl auch in der +Bibel+ (Hiob 35, 4; Könige 19, 4) gemeint. Samen und Beeren von _Juniperus phoenicea_ (+hierogl.+ prt šn, pershou -- der Baum hieß in Ägypten ouôn, aoun, annou, arou, arlou --) sind mehrfach in Ägypten gefunden worden (~Schweinfurth~, vgl. auch I, S. 462). In zahlreichen Rezepten des Papyrus ~Ebers~ werden Beeren von _Juniperus phoenic._ aufgeführt. _Juniperus_ hieß in Ägypten «syrisches Holz», da es aus Syrien eingeführt wurde. Die Vorschrift zu dem berühmten Räuchermittel Kyphi (I, S. 473) enthielt die Früchte dieser Pflanze, die bei ~Theophrast~ (I, S. 547) θυία ἄγριον ἀείφυλλον heißt. ~Dioskurides~ erwähnt zwei Arten _Juniperus_: ἄρκευθος μεγάλη (= _Junip. phoenicea_ oder _macrocarpa_?) und ἄ. μικρά (= _Junip. communis_ [nach ~Daubeny~ I, S. 559] ἄρκευθις nach ~Kanngiesser~ soviel wie «verfluchter Strauch» -- wegen der stachligen Blätter). Als Synonyme sind bei ~Dioskurides~ in [] (vgl. I, S. 471) Mnesitheon, Akatalis, Zuorinsipet (so bei den Afrikanern = Karthagern), Libium (bei den Ägyptern), Juniperus (bei den Römern, z. B. bei ~Plinius~), Joupikelluson (bei den Galliern) genannt. Auch ~Hippocrates~ (I, S. 541) verwendete ἄρκευθος (wohl _Junip. comm._) neben κέδρος (_Junip. oxycedrus_). Bei den späteren Griechen finden sich für _Jun. commun._ die Bezeichnungen κατζαραία, κατζούρον, κατζαρία; für _J. phoenic._: κέντρος, κένδρος. Bei ~Ibn Baithar~ heißt der Wacholder ar’ar. Bei ~Scribonius~ findet sich _Juniperus_ (I, S. 577), ebenso bei ~Marcellus~ (I, S. 590) (hier _Juniperum hispanum_). Wacholderbeeren stehen auch in ~Meddygon Myddfai~ (I, S. 683), in der Alphita (s. oben), in Circa instans (I, S. 635), im Medicus hortus pauperum des ~Mizaldus~ (I, S. 859), und bei ~Cordus~ (I, S. 799). ~Actuarius~ (I, S. 857) unterscheidet _Baccae minoris Juniperi_ (_J. comm._) und _B. majoris Juniperi_ (_J. phoenic._?). Den Rob führten die Araber des Mittelalters in die Medizin ein. Das destillierte Wacholderbeerenöl wird erwähnt in ~Saladins~ Compendium aromatariorum 1488, bei ~Ryff~ (I, S. 875), ~Cordus~ (I, S. 801), in ~Schnellenbergs~ Arzneybuch. Königsberg 1556, in ~Flaccus~, Estimatio materiae medicae. Berol. 1574, in dem Frankfurter Catalogus von 1582 (I. S. 817), bei ~van Helmont~ (Ortus medicinae 1648) u. and. In dem Braunschweiger Register 1521 (I, S. 814) steht _Ol. de granis juniperi_ neben _Ol. junypery._ Bei ~Otho Cremonensis~ findet sich Classa (_Resina juniperi_). =Lit.= ~Buschan~, Vorgeschichtliche Botanik. 1895. -- ~Schweinfurth~, Die letzt. botan. Entdeck. -- ~Unger~, Streifzüge etc. -- ~Gildemeister-Hoffmann~, Ätherische Öle. Fructus Sambuci. =Syn.= Baccae Sambuci, Holunder-, Holler-, Holder-, Aalhorn-, Elder-, Elhorn-, Schipken-, Fliederbeeren, Hutscheln, -- Grana aktes im Mittelalter, -- im Gothaer Arzneibuch: vleder, -- in den mittelengl. Medizinbüchern (I, S. 683): hyldre. -- Baies de Sureau (franz.) -- Black elder fruit (engl.) -- Sambuco (ital.) -- Vliervrucht (holl.). -- Selja puun marja (finn.) -- Bodza bogyó (russ.) -- καρπός ἀκτῆς (n.-griech.). Bei ~Dioskurides~, ~Hippokrates~, ~Theophrast~, ~Galen~: ἀκτή, auch wohl ἄκεα, ἄκτεος. Nach ~Diosk.~ bei den Galliern: skobien, den Dakiern: seba. Bei den Arabern des Mittelalters (~Rhazes~, ~Ibn Baithar~): aktha (chamân, sabukat), in Japan: set-kotz-mo-kah. =Etym.= +Sambucus+ wohl vom +äol+. σάμβυξ oder σάνδυξ (= roter Farbstoff oder zum Rotfärben dienende Pflanze; nach dem Saft der Beeren). Die Ableitung vom persischen sambuca (einem dreieckigen Saiteninstrument), scheint mir zweifelhaft (zufälliger Gleichklang?). Im Mittelalter auch Riscus, Ruscus. -- Holunder (besser wie Hollunder) wohl von hohl (wegen des hohlen Markes) und tar, ter = Baum (~Perger~: holantar, engl. the hollowtree, der hohle Baum, hohl-ter) oder nach der Göttin ~Holla~ (~Freya~), der der Baum geweiht war, oder von halt (= brechen, holder also Brechholz, wegen der Zerbrechlichkeit des Holzes), ahd. holuntar, holenter, +mhd.+ holar, ellaer, holunder, holder, +mnd.+ holdern. Er hat uralte Kultbeziehungen (vgl. das Kap. Pharmakoethnologie I, S. 1008 u. 1009) -- +Elder+ von +ags+. eller, ellarn = anzünden, weil durch die ausgehöhlten Zweige das Feuer angeblasen wurde (~Kanngiesser~). Nach ~Grassmann~ hat Eller und Hollunder die gleiche Wurzel al, gotisch alan (= wachsen, sich erheben). Weitere Volksnamen bei ~Pritzel-Jessen~. Die befremdende Bezeichnung Ahornbeeren ist aus Aalhornbeeren korrumpiert, dies aus ellarn (s. oben). Wie es kam, daß der Name Flieder auch auf die Syringe übertragen wurde, ist unbekannt. Flieder ist der niederdeutsche Name von _Sambucus nigra_. Er stammt wohl von fleder (= flattern). =Stammpflanze.= =Sambucus nigra= L., (~Linné~, Spec. plant. ed. I, 269). +Caprifoliaceae+, Sambuceae, Sect. Eusambucus. Der schwarze Holunder ist ein Strauch oder Baum von bis 6 m Höhe mit borkiger Rinde, dekussierten Ästen, die im Jugendstadium rund, grün und von Lentizellen bedeckt sind. Ältere Äste enthalten ein großes Mark, das sich leicht in toto herauslösen läßt und dann das bei Herstellung mikroskopischer Schnitte vielbenutzte +Holundermark+ bildet. In den Gärten finden sich viele Spielarten, die durch die Teilung der Blätter, ganze oder teilweise Panachirung oder Chlorose sich unterscheiden (laciniata, argentea, aurea, virescens, monstrosa) oder weiße Früchte besitzen (leucocarpa). Die Pflanze ist fast durch ganz Europa bis Taurien und Kaukasien verbreitet -- auch vielfach kultiviert -- und geht in den Alpen weit hinauf, bleibt aber meist den Hütten benachbart. Selten sieht man dort und auch im Tal Hollunder frei. Er lehnt sich gern an die Hauswand oder sucht doch deren Nähe. _Sambucus nigra_ ist ein Bestandteil der Bauerngärten Deutschlands, Österreichs, Frankreich und der Schweiz, alles Länder, die unter ~Karls des Grossen~ Szepter vereinigt waren. =Lit.= Abbild. ~Berg-Schmidt~ Atlas (dort auch die Florenliteratur). -- ~Pabst-Köhlers~ Medizinalpfl. und ~Hayne~, Arzneigew. IV t. 16. -- Beschreib. in ~Luerssen~, Med. pharm. Bot. S. 1112. =Beschreibung der Droge.= Der halbunterständige Fruchtknoten der Holunderblüte (s. d.) ist meist drei- (seltener zwei-)fächerig. Er enthält drei (zwei) hängende, anatrop-epitrope Ovula. Er entwickelt sich zu einer Drupa (Steinbeere) mit drei (zwei) Samen. Die Frucht ist rundlich-oval, bis 6 mm lang, violettschwarz, oben genabelt. Das Fruchtfleisch ist purpurrot. Die einsamigen Steinkerne sind bräunlich, runzlig, außen gewölbt. Der gerade Embryo ist in Endosperm eingebettet. Die Früchte haben einen eigentümlichen Geruch und bitterlich säuerlich-süßen Geschmack. Sie reifen im August und September. Beim Trocknen verlieren sie ⅔ des Gewichtes und schrumpfen stark. =Pathologie.= Parasitische Pilze als Zerstörer der Früchte von _Sambucus nigra_ sind uns nicht bekannt (~Ed. Fischer~). =Anatomie.= Das Epicarp besteht aus großen, einen violettbraunen Inhalt führenden isodiametrischen oder etwas gestreckten Zellen, die infolge einer groben Faltung der Cuticula gestreift erscheinen (Fig. 19). Die Falten laufen in sehr regelmäßigen Abständen. Spaltöffnungen finden sich nur vereinzelt. Das Mesocarp besteht aus mehr oder weniger dickwandigen Zellen, deren Interzellularsubstanz oft verschleimt ist. Es scheint sich hier um einen besonderen Fall von Pektinmetamorphose zu handeln. Die Zellen führen einen braunen Inhalt. Das Gewebe ist von zarten Bündeln durchzogen. Das Endocarp (die Steinschale der «Steinkerne») ist sehr hart, zeigt buckelige Erhebungen, die Steinkerne erscheinen daher grobrunzelig. Zu äußerst liegt eine Reihe von kurzen, verbogenen und ineinander eingeschobenen, radial gestreckten, ungleich hohen Sklereïden mit verzweigtem, spaltförmigem Lumen (Fig. 20). Die stark verdickten Sklereïden besitzen unregelmäßigen Umriß und sind miteinander verzahnt. Dann folgt eine Schicht von ein bis zwei Reihen in der Längsrichtung des Samens gestreckter Bastfasern, dann eine ebenfalls ein- bis zweireihige Bastzellreihe, die rechtwinklig zu vorgenannten gestreckt ist. Die Anordnung der mechanischen Elemente in sich kreuzenden Schichten und Verzahnung der Zellen ist bei Frucht- und Samenschalen häufig und erhöht die Festigkeit bedeutend. Auch die Fasern der inneren Schichten sind unter sich und mit den Sklereïden verzahnt. Die Samenschale der (aus hängenden, anatrop-epitropen, mit nur einem Integumente versehenen (~Bochmann~) Ovulis hervorgehenden) Samen besteht nur aus einer obliterierten Nährschicht (Fig. 20, 1, 5). Embryo und Endosperm enthalten reichlich in Ölplasma eingebettete Aleuronkörner, bei denen man sowohl Kristalloide wie Globoide findet (Fig. 20, 4). [Illustration: Fig. 19. _Sambucus nigra_. Oben: Querschnitt durch die Randpartie der Frucht. Das Mesokarp in Pektin-Schleimmetamorphose. Unten: Flächenansicht der Epidermis der Frucht. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] [Illustration: Fig. 20. _Sambucus nigra_. 1. Querschnitt durch das Endokarp und den Rand des Samens. 2. Flächenschnitte durch das Endokarp. (Die Zahlen korrespondieren mit 1.) 3. Bastzelle aus Schicht 3 isoliert. 4. Aleuronkörner links in Alkohol, rechts nach Zusatz von Wasser. [Nach +Tschirch- Oesterle+, Atlas.]] =Lit.= ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas (dort das Detail). -- ~Tschirch~, Pectin und Protopectin. Ber. pharm. Ges. 1907. -- ~Rosenberg~, Über die Pectinmetamorphose. Diss. Bern 1908. -- ~Bochmann~, Bau u. Entw. offiz. Sam. u. Früchte. Dissert. Bern 1901. -- ~Arthur Meyer~, Drogenkunde. =Chemie.= ~Scheele~ fand +Apfelsäure+, aber keine +Zitronensäure+, ~Enz~ (1859): gärungsfähigen +Zucker, ätherisches Öl, Bitterstoff, roten Farbstoff, Baldriansäure+, Propionsäure (?), +Essigsäure, Weinsäure, Apfelsäure, Gerbsäure, Wachs, Gummi, Harz+. ~Kunz~ und ~Adam~ fanden (1901) +Zitronensäure+, aber keine +Apfelsäure+. «Hinsichtlich des +Fliederfarbstoffes+ sei bemerkt, daß verschiedene Arten _Sambucus_ sich spektralanalytisch verschieden zu verhalten scheinen. Gewisse Arten geben mit Alaun einen deutlichen Streif gleich dem Malvenfarbstoff, während andere ein abweichendes Verhalten zeigen» (~Vogel~). Der Farbstoff ist eisengrünend. Er wird durch Bleizucker lackmusblau gefällt, durch Alkalien blau, durch Säuren rot. Er tritt aus den trockenen Beeren, die an Alkohol, neben etwas (spektralanalytisch leicht nachweisbarem) Chlorophyll, nur einen gelben Farbstoff abgeben, in Wasser leicht mit violettroter Farbe über. Der mit Wasser aus der Droge hergestellte rote Auszug gibt nach dem Ausfällen der Schleimsubstanzen mittels Alkohol im Spektrum ein dunkles Band bei D etwa von λ = 0,560-0,620 und Trübung des Blau. Unabsorbiert wird nur Rot durchgelassen. Setzt man zur Lösung etwas Ammoniak, so treten zwei Bänder auf, ein dunkleres zwischen λ = 0,610 und 0,660 und ein helleres zwischen λ = 0,570 und 0,590 (~Tschirch~). Der unbekannte +schweißtreibende Bestandteil+ der Blüten findet sich auch in den Früchten. ~Sack~ und ~Tollens~ fanden in den Beeren +Tyrosin+. Der +Pentosangehalt+ beträgt 1,20-1,22. Das +Öl der Samen+ hat einen widerlichen Holundergeruch und Geschmack. Neuere Untersuchungen über die Kohlehydrate der Beeren fehlen. Die Beeren von _Sambucus Ebulus_ haben ähnliche Zusammensetzung (~Enz~). In der Rinde (das Fluidextrakt derselben nennt ~Lémoine~ +Sambucin+) und den Blättern findet sich neben Gerbstoff, abführend wirkendem Harz und einem Riechstoff ein krist. Alkaloid (~Malméjac~), in den Blättern Sambunigrin (~Rosenthaler~). Die Rinde, die Blätter und Wurzeln wurden im XVI. Jahrh. mehr verwendet als die Beeren und die Blüten (s. d.). =Lit.= ~Scheele~, Schriften 2, 378. -- ~John~, Tabellen. -- ~Enz. Wittsteins~, Vierteljahrschr. VIII (Jahresb. d. Pharm. 1859, S. 36). -- ~Vogel~, Spektralanalyse. -- ~Malméjac~, Journ. pharm. chim. 1901. -- ~Govaerts~ (Blätter, Rinde) Trav. Soc. Ph. d’Anvers 1880. -- ~Sack~ und ~Tollens~, Ber. d. d. chem. Ges. 1904. -- ~Sack~, Dissert. Göttingen 1901. -- ~Kunz~ u. ~Adam~, Zeitschr. Österr. Apoth. Ver. 1901, 244. -- ~van den Driessen~, Ned. Tijdkr. 1900. -- ~Alfred Blanc~, l’Hièble (Monographie), Montpellier 1905. -- Über die Blätter von Sambucus nigra vgl. ~Mitlacher~, Aus dem Arzneischatze des Volkes. Pharm. Post. 1908 (dort die Literatur). -- Historisch interessant: ~Martin Blochwich~, Anatomia (d. h. hier «Chemia») Sambuci or the Anatomie of the Elder. 1670. =Anwendung.= Die Fliederbeeren geben gepreßt einen Saft, aus welchem man das Holunder- oder Fliedermus, die Fliederkreide, Holundersalse, =Rob, Roob oder Rubb sambuci= bereitet. Dieses Fliedermus findet sich schon bei den arabischen Ärzten, getrocknete Holunderbeeren dann in den Taxen des XVI. Jahrh. und später. Die niederl. Pharmakopoee hat Fruct. samb. recentes (versche vliervruchten). Den ausgepreßten Saft der Blätter von _S. nigra_ benutzte ~Hippokrates~ als diätetisches Abführmittel. =Geschichte.= In steinzeitlichen Niederlassungen (z. B. Moosseedorf bei Bern) sowie in den bronzezeitlichen Terramaren Parmas sind Samen von _Sambucus nigra_ gefunden worden (~Heer~). Bereits der Mensch der Steinzeit scheint die Holunderbeeren zum Färben und zur Musbereitung benutzt zu haben. Die Benutzung von _Sambucus acinos_ zum Färben (der Haare) erwähnt auch ~Plinius~. Von den alten Deutschen wird berichtet, sie hätten nicht nur ihr Antlitz, sondern auch die Götterbilder mit Holdersaft gefärbt (~Lohenstein~). Bei den alten Preußen war der Holunder heilig und durfte nicht verletzt werden (~Grimm~). Vgl. auch den Vers bei _Juniperus_ (S. 52). _Sambucus_ findet sich als Bestandteil der geweihten Kräuterkränze (I, S. 1009). Auch beim Übertragen der Krankheiten auf Pflanzen spielt der «Herr Flieder», die «Frau Holler», «Frau Ellhorn» beim Volke eine Rolle (vgl. I, S. 1008). Akte (ἀκτῆ) findet sich bei ~Hippokrates~, ~Theophrast~ und ~Galen~. Bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 578) steht _sabucum_ und _sambucum_. In der Alphita, den Sinonoma, Circa instans, den Tabulae magistri Salerni steht: _Sambucus (actis) hellarne_, _Ebulus_, _Kameactis Sambucus_ -- man warf also vielfach (auch im Altertum schon) _Sambucus Ebulus_ und _nigra_ zusammen. Der Name Akte ging dann auf den Attich, d. h. _Sambucus Ebulus_ über. Attich ist aus Akte umgebildet. Bei der ~Hildegard~ (I, S. 671) steht nur der Holderbaum; bei ~Harpestreng~ (I, S. 684) Sambuca; im gothaischen Arzneibuch (I, S. 679): elhorn, alhorn und holunder. Bei ~Cordus~ steht _Sambucus_ (_flos et cimacum_) neben _sampsuchus_, das als _Maiorana_ gedeutet wird. (Vgl. auch ~Kühn~, Der Holunder in der alten Arzneikunde. Mediz. Klinik 1907, Nr. 33.) =Paralleldrogen.= In Nordamerika wird der sog. amerikanische Holunder, _Sambucus canadensis_ L., in der gleichen Weise benutzt (~Jackson~, ~Moosbrugger~). Die mehr rötlichen Früchte sind süßer; in Brasilien: _Sambucus australis_ ~Cham.~ et ~Schl.~; in Sibirien: _Sambucus racemosa_ L. (weitere in ~Dragendorff~, Heilpflanzen). Die Beeren von _Sambucus Ebulus_ L., des Zwergholunder (χαμαιάκτη der Griechen, Ebulum der Römer, nabsakat der Araber, hatich bei ~Hildegard~), purgieren (Bestandteil des Kneipp-Tee). Sie sind kleiner, viersamig, mit deutlicher hervortretendem Kelchrest. _Sambucus Ebulus_ ist in allen Teilen mehr oder weniger giftig. Die Beeren des Zwergholunder werden in Rumänien zum Färben des Weines benutzt (Analyse und Spektrum des Farbstoffes bei ~Radulescu~). =Lit.= ~Jackson~, Pharm. Journ. 1906. -- ~Moosbrugger~, Amer. Journ. ph. 1895. -- ~Radulescu~, Bul. Soc. sc. Bucaresc. 1899. (Ber. d. pharm. Ges. Jahrber. 1899). -- ~Holm.~ Sambucus canadensis. Merck Rep. XVIII, 259 (1909). Fructus Pruni. =Syn.= Pflaumen, Zwetschen, Zwetschgen, Quätschen, Brunellen. Prunibaum (bei der ~Hildegard~), -- pruneau noir, prune de Damas (franz.), -- prunes (engl.) -- pruim (holl.) -- luumu (finn.) -- δαμάσκηνον (n.-griech.) -- bei ~Ibn Baithar~: idschás. =Etym.= Prunus aus dem Griechischen übernommen, sicher aber wohl aus Kleinasien stammend, wo es für _Prunus domestica_ benutzt wurde. Nach ~Schmidt~ ist das +ahd.+ phrûma (so noch im XI. Jahrb.) pflûmo, +mhd.+ phlûme, durch thrakische oder illyrische Vermittlung direkt aus dem griechischen προῦμνον und nicht aus dem lateinischen prûnus, prunum entstanden. Im Griechischen auch: προῖνος (ein wilder Obstbaum) oder πρῶμος (= frühzeitig, da seine Früchte im Hochsommer reifen). Nach ~Kluge~ ist dagegen +Pflaume+ schon vor der ahd. Zeit aus dem latein. prûnum, prûna entlehnt. Das r des latein. Wortes ist ein l geworden, wie bei morus in Maulbeerbaum; +ndl.+ pruim hat noch das r, ebenso +frz.+ prune, +ital.+ prugna, +span.+ pruna; nicht mehr +angls.+ plúme, +engl.+ plum. Zwetsche hat wohl ursprünglich Quetsche geheißen (Quetschen, Quetsch noch heute in Thüringen, am Rhein, in Hessen) wegen des daraus bereiteten Muses (-- auch in Paris hörte ich für Pflaumenmus: quètche --), oder weil sich der Kern leicht herausquetschen läßt, oder von +slav.+ sweska (?). Viel mehr deutsche Volksnamen besitzt _Prunus insititia_, die heimische Pflaume, die im Mittelalter auch cinus, cinum, prinus, pruna, spinellum genannt wurde. Solche Namen sind: Bilse oder palse (von balgan = aufgeschwollen, bauchig?), kriech, kriecher, krigen (von chrieh, +franz.+ crêque = stechend, +ahd.+ chrezzan = kritzen), spilling (spinellum = Dörnlein), braume, haber, kickerling, marunken, pelzkirsche, prume, schlucken, spelje, zibarten, zipperli u. v. a. (vgl. ~Pritzel-Jessen~). =Stammpflanze.= =Prunus domestica= L. (~Linné~, Spec. plant. ed. I, 475), mit zahlreichen Varietäten, -- ~Don~ kennt 270 -- bes. wohl _P. d. var. Juliana_ DC. +Rosaceae+, Prunoideae, Untergatt. Prunophora. Einige (~Linné~, ~Link~, ~De Candolle~) halten alle Pflaumen für Varietäten von _Prunus domestica_, andere (~Dierbach~) leiten die runden Pflaumen von _Prunus sativa_ ~Fuchs~, die länglichen von _Prunus damascena_ ~Camer.~ ab, noch andere (~Koch~) halten _Prunus insititia_ L. für die Stammart der runden, _Prunus domestica_ für die der länglichen. Zu den runden Pflaumen, mit kurzem dicken Steinkern, gehört die Mirabelle und die Reineclaude, zu den länglichen Zwetschen mit langem platten Steinkern die Damaszener und Brignoler. Nur diese blauen länglichen Pflaumen werden medizinisch verwendet. In Japan wird _Prunus triflora_ ~Roxb.~ kultiviert. ~Ascherson~ und ~Gräbner~ halten (mit ~Focke~, ~Boissier~, ~Radde~) _P. domestica_ L. (_P. damascena_ ~Dierb.~, _P. domestica subsp. oeconomica_ ~C. K. Schneider~) für eine eigene Art, die zwar _P. insititia_ verwandt, aber doch gut von ihr geschieden ist. Nach ~Engler~ sind die heutigen Pflaumenarten von verschiedenen Stammarten abzuleiten. _Prunus insititia_ L. (Kriecherpflaume) ist im Kaukasus und Kleinasien heimisch, geht aber bis Nordafrika und nach Süd- und Mitteleuropa. _Prunus cerasifera_ ~Ehrh.~ (Kirschpflaume) stammt nach ihm von der in Turkestan und überhaupt in Vorderasien heimischen, in Persien angebauten _P. divaricata_ ~Ledeb.~ Die Zwetsche im engeren Sinne (_P. oeconomica_ ~Borkh.~) gehört zu _P. domestica_ L., die im Kaukasus, auf dem Talysch und Elbrus sehr verbreitet ist. Ob die Reineclaude (_P. italica_ ~Borkh.~) eine selbständige Art ist oder nicht, will ~Engler~ nicht entscheiden. =Kultur und Handel.= Die umfangreichsten Pflaumenkulturen finden sich in Bosnien und Serbien, wie überhaupt in den österreichisch-türkischen Grenzländern. Dort -- in dem Dorado des Slibowitz -- findet man ganze Zwetschenwälder, und von dort werden gedörrte Pflaumen in alle Länder exportiert. Neuerdings kultiviert Nordamerika viel Pflaumen. Deutschland importierte 1907: 392469 dz getrocknete +Zwetschen+ vorwiegend aus Serbien (135115) und Nordamerika, dann aus Frankreich und Österreich. =Pathologie.= Neben _Sclerotinia cinerea_ (s. unter _Prunus Cerasus_), die auch hier vorkommt, ist _Exoascus Pruni_ ~Fuck.~ der wichtigste Krankheitserreger des Zwetschenbaumes. Sein Mycel entwickelt sich in den Früchten, welche dadurch eine ganz abnorme Entwicklung erfahren: sie sind verkrümmt, abgeplattet oder stark verlängert, weißlich oder rötlich gefärbt und ungenießbar, es unterbleibt auch die Differenzierung von Steinkern und fleischigem Exocarp. Diese deformierten Früchte werden als «+Narren+», «+Taschen+» oder «+Hungerzwetschen+» bezeichnet. An ihrer Oberfläche entstehen die Asci des Pilzes. (~Ed. Fischer.~) Die tierischen Schädlinge s. unter ~Cerasus~. =Beschreibung.= Die frisch blaue, eirunde, mit einer seitlichen Rinne versehene Pflaume besitzt eine wechselnde Größe. Sie schrumpft beim Trocknen stark zusammen und wird außen fast schwarz, das Fruchtfleisch braunrot. Sie ist eine Drupa und schließt einen plattgedrückten Steinkern ein, dieser den Samen. Die den Farbstoff führenden Epidermiszellen der Fruchtschale zeigen oft noch die Teilungen der Mutterzellen. Die Epidermis besitzt einen Wachsüberzug, aber keine Haare. Oft finden sich auf der Oberfläche der Droge Zuckereffloreszenzen. Das Fruchtfleisch besteht aus Parenchymzellen. Die Gefäßbündel führen Spiral- und Netzleistengefäße. Das Endocarp besteht aus Sklereïden. Die Tonnenzellen der Samenschale (Abbild. bei ~Winton~) sind ziemlich klein, etwa von der Größe der Tonnenzellen bei der Aprikose. Das Endosperm ist schmal. Die Hauptmasse des Samens bilden die Cotyledonen. =Chemie.= Frische Pflaumen enthalten im Durchschnitt (Zusammenstellung bei ~König~) 78,6% +Wasser+, 14,71% (8,43-25,62) +Invertzucker+ (in der Trockensubstanz der Frucht 68,74%), 0,77% +freie Säure+ (auf Apfelsäure berechnet). Der +Pentosan+gehalt beträgt 0,54% (~Wittmann~). Das Fleisch der getrockneten Zwetschen enthält 23,28-59,20%, im Durchschnitt 43,15% Invertzucker (in der Trockensubstanz im Mittel 60,3%), im Mittel 2,44% freie Säure (auf Apfelsäure berechnet), Im Fruchtsaft der Pflaume wurde auch +Saccharose+ (0,51-2,81%) gefunden (s. bei ~König~), in trockenen Zwetschen 9,33-13,2%. Die Samen enthalten c. 44,5% +Fett+. Die +Asche+ der ganzen Frucht beträgt 3,17, die der Kerne 2,5, die des Fruchtfleisches 4,2% (auf Trockensubstanz berechnet). Analysen der Asche bei ~König~ B. I, S. 862. Die Samen enthalten ein +Blausäure abspaltendes Glykosid+ und ein hydrolytisches +Ferment+. Aus den gegorenen zerstampften Früchten wird in Elsaß-Lothringen und anderwärts ein Zwetschgenbranntwein (Slibowitz, Slivovica) dargestellt, der c. 43,5-52 Vol.% Alkohol und 0,2-3,3 mg Blausäure in 100 ccm enthält. (Über seine Zusammensetzung vgl. ~Windisch~, Arb. d. kais. Gesundheitsamt. 1898). Wie der Zuckergehalt der Pflaumen einem großen Wechsel unterworfen ist, so zeigt auch der Alkoholgehalt der Zwetschgenbranntweine große Schwankungen. Durch Einkochen des mit Wasser zerquetschten, durch ein Sieb getriebenen Fruchtfleisches zu einem dicken Brei wird das =Pflaumenmus= (Zwetschenmus, Pulpe de pruneau, Pulpa prunorum, Rob pruni) dargestellt, das seit Jahrhunderten als mildes Abführmittel benutzt wird. Es enthält c. 24,5% Invertzucker, c. 8,8% Saccharose und c. 1,7% Pectin. Ein sirupus de prunis steht im Kalender des ~Harib~ aus dem Jahre 961 (I, S. 612). =Schädlinge der Droge.= Auf getrockneten Pflaumen finden sich oft Milben, z. B. _Glyciphagus prunorum_ (~Israël~). =Geschichte.= Der königliche Garten des ~Nebukadnezar~ enthielt nach dem Alfabet des ~Ben Sira~ auch Pflaumen, achwānijjôt (~J. Löw~). -- _Prunus insiticia_, die Kriecherpflaume (vom +germ.+ krik, ~Schrader~), ist die europäische Pflaume, die schon für die vorgeschichtliche Flora Mitteleuropas nachgewiesen ist, nämlich in Pfahlbauten der neolithischen, Bronze- und Eisen-Periode (~Buschan~). Unter κοκκόμηλον (von κοκκό-μηλον = Kernobst, vielleicht steckt aber in κόκκος ein orientalisches Wort) -- die Schlehenpflaume hieß βράβυλον -- verstand ~Dioskurides~ sowohl diese heimische Pflaume, die heute noch in Griechenland coromelea heißt, wie auch die Syriens, besonders die von Damaskus, d. h. die nach der Zeit des ~Cato~ von dorther nach dem Westen gebrachte und von den Römern schon zur Zeit des ~Plinius~ in vielen Spielarten kultivierte Damascenerpflaume (_Prunus domestica_), deren Kultur sich zunächst im Orient entwickelt hatte (~Engler~). Die Römer warfen beide durcheinander. Auch noch bei der ~Hildegard~ (I, S. 670) scheint der Name Prunibaum beide zu umfassen, wie übrigens ja auch unser Wort «Pflaume» alle Arten umfaßt, die runden und die langen. Das Wort prunus bei ~Albertus Magnus~ (I, S. 675) scheint sowohl für _Prunus domestica_ wie _P. armeniaca_ benutzt worden zu sein. Die Ausgrabungen bei der Saalburg zeigten, daß bereits in den ersten christlichen Jahrhunderten dort Pflaumen, Zwetschen und Kirschen von den Römern gebaut wurden. Das östliche Deutschland erhielt die Damascener Pflaume vielleicht aus den österreichisch-türkischen Grenzländern über Ungarn, Siebenbürgen und Mähren, wo sie jedenfalls schon vor 400 Jahren viel kultiviert wurde (~Reling~ und ~Bohnhorst~). Wie alt die Kultur in Serbien und Bosnien ist, ist unbekannt. Vielleicht bestand sie schon vor der slavischen Einwanderung (?). «Aus Beeren, an denen der Nordosten reich ist, ein Getränke zu machen, ist ein altslavischer oder osteuropäischer Nationalzug, der schon von ~Herodot~ in seiner Beschreibung des hinterskytischen Landes angedeutet wird» (~Hehn~). Ein Prunarius steht sowohl im Kapitulare ~Karls~ wie im St. Galler Klosterplan (I, S. 622). Das war aber nicht die Damascener Pflaume. In der Alphita (I, S. 656) steht pruna alba et nigra, in den Tabulae: pruna immatura et damascena, bei ~Serapion~: anas. Die Pflaume spielt nicht in der Volksmedizin, wohl aber in der Volkserotik eine große Rolle, wie schon viele ihrer Volksnamen (Bockshoden, Geishoden, Hengsthoden, Tittlespflaumen, Spönling) zeigen. (Weiteres siehe bei ~Aigremont~, Volkserotik.) =Lit.= ~Engler~, in ~Hehn~ Kulturpflanzen, VII. Aufl. 1902. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botanik. -- ~Winton-Moeller~, Microscop. of vegetable foods 1906 (dort die weitere Lit.) -- ~Bordzilowski~, Entwickl. d. beerenart. u. fleischig. Früchte. Kiew. Naturf. Ges. 1888. -- ~König~, Nahrungs- u. Genußm. (dort die chem. Literatur). -- Abbild.: ~Hayne~, Arzneigew. IV. t. 43 und ~Nees von Esenbeck~, Pl. med. t. 319. Fruct. jujubae. =Syn.= Baccae Jujubae seu Zizyphi, Rote Brustbeeren, Zieserleinsbaumbeeren, Judendornbeeren, -- jujube (franz.) -- jujube (engl.). -- Ein Lotus der Alten (s. Geschichte). -- +Griech.+: ζίζυφα, ζίνζυφα, ζίτζυφα (davon der Gattungsname der Pflanze). -- Bei den späteren Griechen: hanab -- +n.-griech.+: καρπός ζιζύφων -- bei ~Avicenna~: Hunen und Zufaizef. -- Schon bei ~Serapion~: iuiubes -- Indian jujube: bér, beri (hind.) -- badara, kola (sansc.), -- sidr, aunnábehindi (arab.), sider wa nabk (~Ibn Baithar~) -- kunár (pers.) -- tao n’hon (in Annam). (Die Früchte des Sidr bei ~Ibn Baithar~: dhâl) -- Common jujube: pitni bér (hind.) -- unnah (arab.) -- bei ~Ibn Baithar~: unnāb -- sinjid-i-jiláni (pers.). -- _Zizyphus_ (und _Rhamnus_früchte) heißen im Chines. Swan-tsau, Nan-tsau, tsau-pʿi. =Stammpflanzen und Paralleldrogen.= Die in Deutschland und Frankreich benutzten spanischen oder französischen Brustbeeren (Common jujube, Große J., Welsche Hahnbutten, jujubier commun) stammen von =Zizyphus vulgaris= ~Lam.~ (_Z. sativa_ ~Gärtn.~, _Z. flexuosa_ ~Wall.~, _Rhamnus Zizyphus_ L.), kultiviert in Spanien und Südfrankreich. Die weniger süßen kleinen italienischen und nordafrikanischen von =Zizyphus Lotus= ~Lam.~ (_Z. nummularia_ W. et A., _Rhamnus nummularia_ ~Burm.~), kultiviert in Ägypten, Italien und Südspanien. Die ostindischen Jujuben (Indian Jujube, Chinese date) von: _Zizyphus Jujuba_ ~Lam.~ (_Z. mauritiana_ ~Ham.~, _Z. Sororia_ ~Schult.~, _Rhamnus Jujuba_ L.), heimisch im indomalaiischen Gebiet bis nach China, kultiviert in Vorderindien, Persien, China und nach ~Volkens~ auch in Togo (Notizbl. d. Berl. Bot. Gart. 1909). Weitere Paralleldrogen sind: _Zizyphus Oenoplia_ ~Mill.~ (Indien), _Z. Spina Christi_ ~Willd.~ (Ägypten, Palästina). Weitere in ~Dragendorff~s Heilpflanzen. =Systemat. Stellung und Beschreibung.= +Rhamnaceae+, +Zizypheae+. _Zizyphus vulgaris_ ist ein ursprünglich in China heimischer, jetzt im ganzen südlichen Europa und Nordafrika kultivierter und oft verwilderter Strauch oder Baum von 5-7 m mit dornigen Nebenblättern. Die glänzend zinnober- bis braunrote ovale, in Juli-August reifende Frucht von der Größe und der Form einer großen Olive (2-3 cm), ist eine Drupa. Sie schrumpft beim Trocknen stark und enthält einen oblongen Steinkern mit einem oft geschrumpften oder geschwundenen Samen. Innerhalb des derben lederigen Epicarp liegt ein außerordentlich weiches, markiges, reichdurchlüftetes Fruchtfleisch (Mesocarp, «Sarcocarp»), dessen Zellen da und dort Kristalldrusen führen. Das Endocarp ist steinhart. Es besteht zu äußerst aus einer breiten Schicht Sklereïden und einer schmalen inneren Faserschicht. Von den zwei Fächern ist meist nur eins ausgebildet. Die Früchte des z. B. in Tunis weit verbreiteten _Z. Lotus_, die kleinen Jujuben, sind kleiner, oft nur halb so groß. Die meisten großen Jujuben kommen jetzt aus der Provence sowie von den Iles d’Hyères, die kleinen aus Italien. Jujuben sind, besonders wenn ausgetrocknet, sehr dem Insektenfraß (_Anobium paniceum_) ausgesetzt. =Chemie.= Jujuben enthalten so reichlich +Zucker+, und zwar sowohl +Hexosen+ wie +Saccharose+ (~Tschirch~ u. ~Eriksson~), daß sie im Innern oft einen zähen Sirup führen und ein Schnitt durch das Fruchtfleisch (unter Öl betrachtet) übersät ist mit Zuckerkristallen. Ferner sind darin +Schleim+, +Malate+ und +Tartrate+ nachgewiesen. Schon ~Geoffroy~ teilt eine pyrochemische Analyse mit. Im Holz von _Z. Lotus_ fand ~Latour~ die krist. Ziziphussäure und Ziziphogerbsäure. =Anwendung.= Jujuben «thun bei Husten etc. nicht mehr als inländische süßschleimige Dinge» (~Gren~ 1799). Sie fanden sich in älteren Brustsirupen und Loochs oft in Gesellschaft von Datteln, Rosinen und Sebesten (s. d.) In der Pharm. gall. war früher ein Rob jujubae (Pulpa de jujubis) aufgeführt und die Jujuben sind ein Bestandteil der Quatre fruits pectoraux, einiger älterer Brusttees und and. (fruits béchiques, pâtes pectorales). Die säuerlich süß, frisch fast apfelartig schmeckenden Früchte von _Ziziphus Jujuba_ werden in Indien, die von _Z. vulgaris_ in Südeuropa gegessen. Auf _Z. Jujuba_ bildet die Lackschildlaus einen «Stocklack» (s. d.). =Geschichte.= +Lotus+ war ein antiker Sammelbegriff. Der indische Lotus ist _Nelumbium speciosum_, der ägyptische Lotus: _Nymphaea Lotus_, der kyrenäische Lotus: _Zizyphus Lotus_ (~Theophrast~). ~Theophrasts~ großer Lotus von Kyrene (λωτός λιβυκός d. ~Plinius~): _Celtis australis_, die Lotusbirne: _Diospyros Lotus_; der Lotusklee: _Trifolium fragiferum_ und _Melilotus messanensis_ (~Wönig~). ~Wönig~ hält also nur den kyrenäischen Lotus für _Zizyphus Lotus_. «~Theophrast~ kennt vom kyrenäischen Lotus zwei verschiedene Spezies: die eine in Form eines Baumes, birnenartig, die zweite unter dem Namen _Paliurus_ strauchartig (Hist. plant. IV, 3). Die letztgenannte Art hat ~Polybius~ (Athenaeus XIV, 65) genau beschrieben und aus seiner Beschreibung ist ersichtlich, daß unter derselben keine andere Pflanzenart als _Zizyphus Lotus_ W. gemeint sein kann, wie auch ~Desfontaines~ in einer besonderen Abhandlung erwiesen hat. (Mem. de l’acad. Paris 1788.) Dieser _Zizyphus_ wird allgemein für den in ~Homers~ Dichtungen erwähnten Lotusbaum der Alten (λωτός des ~Theophrast~) angesehen. Er ist zugleich der _Melilotus_ des ~Strabon~ (XVII, 3), aus dessen Früchten man nach ~Herodots~ Mitteilungen den lybischen Wein bereitete, der ein Lieblingsgetränk der ärmeren Bevölkerung Alexandriens bildete». Der zweite afrikanische Lotus ist _Celtis australis_. Die συρικά, Serika des ~Galen~ war wohl auch ein _Zizyphus_. Unsicher bleibt, ob der _Paliurus_ des ~Strabon~ _Zizyphus Spina christi_ (aus dem wohl die Dornenkrone Christi hergestellt wurde, I, S. 491) ist; der ägyptische Pflaumenbaum des ~Plinius~ ist vielleicht _Diospyrus Lotus_. Nach welchem Lotus die Lotophagen benannt wurden, wissen wir nicht. Im Papyrus ~Ebers~ findet sich (nach ~Lüring~ und ~Joachim~ I, S. 475) von _Zizyphus Lotus_ außer der Frucht (für ein Pflaster) das Harz, das Holz, die Späne, ein Brod und ein Pulver. (Eine in einem ägyptischen Grabe gefundene Frucht, ehedem für _Diospyros Lotus_ gehalten, wurde als _Mimusops Kummel_ ~Hochst~. erkannt). Den Römern wurde der Brustbeerenbaum (_Z. Lotus_) erst gegen Ende der Regierung des ~Augustus~ bekannt. Zu dieser Zeit brachte ihn der Konsul ~Sextus Papirius~ aus dem Orient, der ursprünglichen Heimat, nach Italien. Der Brustbeerenbaum muß aber schon zu des ~Plinius~ Zeit in Italien gut bekannt gewesen sein, denn ~Plinius~ vergleicht die Blätter des Baumes _Cypros_ mit denen des _Ziziphus_, also mit etwas Bekanntem. Jujuben stehen auch bei ~Columella~, bei ~Gargilius Martialis~ (I, S. 573) u. and. Die Araber bedienten sich der Früchte viel (vgl. ~Ibn Baithar~ und das botan. Lexikon Kitâb aš-šaģar, um 980) und ebenso das Abendland. In der Alphita findet sich Jujube (hunen, zufaizef); bei ~Bartholomaeus~ (I, S. 650) _poma Sancti Johannis_, Jugibe in der Frankfurter Liste (1450), jujubae und jujibe bei ~Cordus~ (I, S. 799). Jetzt sind sie ziemlich in Vergessenheit geraten. Jujuben gehören zu den Drogen erster Klasse («Fürsten») des ältesten chinesischen Pen tsʿ ao, des Shen nung Pen tsʿ ao king (I, S. 515). Sie sind dort seit Jahrtausenden bis auf den heutigen Tag hochgeschätzt. =Lit.= ~Jussieu~, Gen. plant I, 3798. -- ~Lamarck~ (Encyclop. und Diction.) t. 185, F. 1. -- Flor. Brit. Ind. I, 632. -- ~Watt~, Diction. econ. prod. VI, 4. -- Pharmacographia indica. -- +Abbild.+ bei ~Weberbauer~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien. -- ~Pomet~ (I, S. 941) gibt eine phantastische Abbildung der Pflanze, eine etwas bessere in ~Valentinis~ Museum I und in ~Hérail~, Traité de pharmacol., Fig. 66. -- Abbild. von _Z. vulgaris_: ~Hayne~ 10 t. 43 und +Düsseldorfer Atlas+ 16 t. 22. -- Abbild. von _Z. Jujuba_: ~Rheede~ 4 t. 41 und ~Rumphius~ 2 t. 36. -- ~Geoffroy~, Materia medica, p. 346. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- ~Wönig~, Die Pflanzen im alten Ägypten. 2. Aufl. 1886. -- ~Latour~, Journ. pharm. 1858, 420. Sebesten. Die früher sehr viel, oft (vgl. ~Geoffroy~) in Verbindung mit den Jujuben benutzten +schwarzen Brustbeeren+ oder +Sebesten+ (bei ~Theophrast~: μύξα, bei ~Paul. Aegineta~: μυξάρια, bei ~Actuarius~: +Sebesten+) stammten von _Cordia Myxa_ L. Sie finden sich schon im Papyrus ~Ebers~ (I, S. 463). Fructus myrtilli. =Syn.= Baccae Myrtillorum, Heidelbeeren, Blaubeeren -- Baies d’Airelles-myrtille (franz.) -- Bilberries, Blueberries (engl.) -- Bacca di mirtillo (ital.) -- blauwe boschbessen (holl.) -- mustikka (finn.) -- καρπός μυρτίλλων (n.-griech.). Schwarze Besinge, Bäsinge, -- Bickbeere, Gandelbeere, Haselbeer, Heiti (in Bern), Kranbeere, Paudel- oder Roßbeere, Puckelbeere, Setbeer, Wolpere (in Siebenbürgen), Köhteken (= Kuhzitzen); -- bei d. ~Hildegard~: waltbeere und heydelbeere, -- bei ~Bock~: Staudelbeeren, bei ~Cordus~: Heidel; -- im +athd.+: Heitbere, Heitperi, im +mhd.+: boschbesie, brounber, heudelbeeren, kräckelbäsin, heverbesin. =Etym.= Die gewöhnlichen Ableitungen von _Vaccinium_ durch Korruption aus ὑακίνθιον oder von vacca (= Kuh) verwirft ~Kanngiesser~ und leitet, wie mir scheint, mit Recht das Wort von bacca, baccinium (= Beerenstrauch) ab, da Umlautungen von b in v häufig sind (vetonica in betonica, valeriana in Baldrian, barbascum in Verbascum) -- Myrtillus ist Diminutiv von Myrtus, weil das Sträuchlein einer kleinen Myrthe ähnlich. -- Heidelbeere = Heidebeere; -- Blaubeere wegen der Farbe. -- Auf die dunkle, fast schwarze Farbe deuten auch die Bezeichnungen Bickbeere (+holl.+ pik = pechschwarz), bleuets, maurets (Dunkelbeeren), brambelles, brimbelles, blaeberry, mustikka u. and. Auch die russische Bezeichnung tscherinka bedeutet Schwarzbeere. -- Besie, Besing, Bei von bhan, bhâs (= glänzend). =Stammpflanze. Vaccinium Myrtillus= L. (~Linné~, Spec. plant. 349). =Systemat. Stellung und Beschreibung der Stammpflanze.= +Ericaceae+, Vaccinioideae -- Vaccinieae (Sectio Myrtillus). [Illustration: Fig. 21. _Vaccinium Myrtillus._ Gipfel der Frucht. K. Kelch, verwachsen mit der (FW) Fruchtknotenwand. CSt. Ansatzstelle der Korolle. D. Diskus. Gr. Griffelansatz. S. Same. [+Tschirch.+]] Die Heidelbeere ist circumpolar in Mittel- und Nordeuropa, in Asien (mit Ausschluß Innerasiens), in Kanada und dem mittleren Nordamerika bis Colorado südwärts verbreitet. Die Heidelbeere ist ein höchstens 30-50 cm hoher kahler Strauch mit eiförmig-rundlichen Blättern und einzeln achselständigen Blüten. Die Blüten besitzen einen unterständigen Fruchtknoten, der an den Seiten mit dem fleischigen Kelche vollständig verwächst und nur an der Spitze frei bleibt (Abbild. in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. IV. 1, S. 24). Hier liegt ein kleiner Diskus und diesem sind Corolle und Staubfäden inseriert (Fig. 21). Die Frucht ist also, da sich an der Bildung der Fruchtschale auch der Kelch beteiligt, keine echte Beere, besitzt aber, da die «Verwachsung» von Kelch- und Fruchtblättern eine vollständige ist, ganz Beerencharakter (Steinbeere ~Müller~). Die durch Albinismus zustande kommende weißfrüchtige Form, _Vaccinium Myrtillus_ L. _var. leucocarpum_ ~Hausm.~, kommt für uns nicht in Betracht. Die Früchte reifen im Juli und August, werden mit hölzernen Kämmen oder Rechen «abgebürstet» und in der Sonne getrocknet. 6½ Teile frische geben 1 Teil trockene. =Handelssorten.= Heidelbeeren kommen aus verschiedenen Gegenden Deutschlands, z. B. dem Fichtelgebirge, Bayern, Böhmen, Schlesien, aus Rußland. In Rußland liefern die Gouvernemente Wladimir und Moskau, sowie Polen _Myrtilli_. Die Blätter von _Vaccin. Myrtillus_ und besonders _V. Arctostaphyllos_ bilden den sog. «kaukasischen Tee», ein Surrogat des chinesischen Tees (s. I, S. 1023). =Beschreibung.= Die Heidelbeeren sind vier- oder fünffächerig, kugelig, etwa erbsengroß oder kleiner, blauschwarz, bereift. Sie schmecken säuerlich-süß, etwas herb und enthalten einen dunkel-violettroten Saft. An der Spitze liegt eine durch den unregelmäßigen Kelchsaum gerandete wulstige Scheibe, der Diskus, in dessen Mitte man die Ansatzstelle des Griffels bemerkt (Fig. 21). Durch Trocknen schrumpfen die Beeren stark. In Wasser gelegt, geben sie sofort Farbstoff ab und schwellen auf. Jedes Fach enthält zahlreiche kleine glänzende, gelbe bis gelbbraune, kurz geschnäbelte Samen mit netzadriger Oberfläche. Ihre Größe beträgt meist 1 mm. Die Epidermis der +Fruchtschale+ (d. h. des mit ihr verwachsenen Kelches, s. oben) besteht aus polygonalen Zellen, die blauen Zellsaft enthalten. Spaltöffnungen mit vier Nebenzellen, zwei großen und zwei schmalen, der Spalte parallelen finden sich nur an dem Kelchsaum an der Spitze der Frucht. In das Parenchym der Fruchtschale sind oft zu Nestern vereinigte Sklereïden eingebettet und auch die innere Epidermis der Fruchtschale und der Scheidewände ist teilweise sklerotisiert. Die Parenchymzellen enthalten den Farbstoff im Zellsaft gelöst und da und dort Oxalatkristalle. Die kleinen Bündel sind kollateral. Die «Verwachsung» von Kelch und Fruchtschale ist so vollständig, daß in der reifen Frucht keine Grenze zwischen beiden zu sehen ist. Die Epidermis der +Samenschale+ besteht aus innen und an den unteren Teilen der Seiten verdickten und dort getüpfelten Zellen ohne Schleimmembranauflagerungen (Unterschied von der Preißelbeere). Die übrige Samenschale besteht aus der obliterierten Nährschicht, deren Seitenwände schief gestellt sind. Der +Embryo+ ist in Aleuron führendes Endosperm eingebettet. =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: In den Früchten von _Vaccinium Myrtillus_ bildet _Sclerotinia baccarum_ (~Schroet.~) ~Rebent~. ihr Sklerotium aus. Es stellt dieses ein hohlkugeliges Gebilde dar, welches sich an Stelle der Gewebe des Pericarpes ausgebildet hat und äußerlich wie eine schmutzig-weiße Heidelbeere aussieht. Für das Nähere vgl. ~Woronin~, Über die Sclerotienkrankheit der Vaccinien-Beeren. Mém. Acad. des sciences de St. Pétersbourg, Ser. VII, T. 36, 1888). Vgl. auch ~Senft~, Pharm. Post 1903. Über die tierischen Schädlinge berichtet ~Israel~: An _Vaccinium Myrtillus_ lebt eine sehr große Zahl von mehr oder minder polyphagen Falterraupen (+Spinner+, und besonders +Eulen+) aus den Gattungen _Acronycta_, _Hadena_, _Mamestra_, _Agrotis_, _Anarta_ usw. Von Spannern ist es besonders eine Anzahl von _Cidaria_- und _Acidalia_arten, die sich von den Blättern der _Vaccinium_arten nähren. Auch die Zahl der _Mikrolepidopteren_, die an Heidelbeeren leben, ist sehr groß. =Chemie.= Heidelbeeren enthalten (nach ~Fresenius~, ~Martini~, ~Margold~, ~Kulisch~ und ~Omeis~) 4,78-6,28% +Invertzucker+ -- in der Trockensubstanz 21,29 bis 30,67% Zucker (nach ~Kayser~ 20,13, nach ~Blau~ 20,89%) -- und keinen Rohrzucker (~Omeis~ fand solchen nur in unreifen Früchten), 1-1,92% +freie Säure+ auf +Apfelsäure+ berechnet und als solche wohl auch vorhanden (in trockenen Beeren gibt ~Kayser~ 7,02% auf Weinsäure berechnet an). ~Scheele~ fand +Apfelsäure+ und +Zitronensäure+ in fast gleicher Menge und c. 0,5% +Pektin+. Der +Pentosan+gehalt beträgt 0,76 bis 1,28%. Die +Asche+ beträgt im Durchschnitt 0,71%. ~Omeis~ und ~Hornberger~ fanden darin neben Eisen c. 2% Manganoxyduloxyd. Die Kerne und Schalen betragen c. 11,5 bis 13%. ~Nygård~ gibt 4,5% Wasser und 2,88% Asche (der bei 105° getrockneten Droge) an. Der Zuckergehalt der Beeren steigt während des Reifungsprozesses von 0,42 auf 1,90 und schließlich 5,06% (~Omeis~). Bei reifen Beeren stellt sich das Verhältnis der Säure zum Zucker durchschnittlich wie 1 : 3. ~Schlegel~ fand im frischgepreßten +Heidelbeersaft+ 3,92-5,57% Invertzucker, 0,15-0,74% Alkohol, 6,92-9,29 Extrakt, 0,20-0,22% Asche, Gesamtsäure (auf Weinsäure berechnet) 1,11-1,13%, flüchtige Säuren (auf Essigsäure berechnet) 0,023-0,032%. Auch +Inosit+ ist im Safte der Heidelbeere gefunden worden (~Nacken~). Benzoësäure, die ~Nestler~ in _Vaccinium Oxycoccus_ auffand, findet sich in _V. Myrtillus_ nicht. Der +Farbstoff+ der Heidelbeeren ist im Zellsaft gelöst. Er ist löslich in Wasser und Alkohol, unlöslich in Äther, Benzol, Chloroform, Schwefelkohlenstoff. Aus neutraler und saurer Lösung geht er in Amylalkohol (~Späth~). Er gehört zu den Anthocyanen und zwar zur Gruppe des Weinrots (~Weigerts~). Er wird durch Eisensalze dunkelbraunrot, durch Alkalien grün, durch Säuren rot, reduziert ~Fehling~sche Lösung beim Sieden und soll die Zusammensetzung C₁₀H₁₂O₈ (?) besitzen (~Nacken~). Er wird durch Kalkmilch grüngrau gefällt. Er ist spektralanalytisch nicht mit dem Weinfarbstoff identisch, wie ~Andrée~ meinte, sondern davon verschieden (~Vogel~), welche Verschiedenheit besonders nach Zusatz von Ammoniak und Alaun hervortritt. Der Farbstoff verändert sich aber beim Trocknen der Beeren (vgl. ~Vogel~). Der Auszug frischer Heidelbeeren, der Blau und Rot durchläßt, zeigt ein Band bei bE, das durch Ammoniakzusatz nach D rückt, nach Alaun- und Ammoniakzusatz findet man ein breites Band d½ D bis b. Nach ~Heise~ soll der Farbstoff aus zwei Körpern bestehen, von denen der eine, rotbraune, in saurem Wasser löslich ist, der andere, rotviolette, der die Hauptmenge bildet, nicht. Der letztere spaltet sich bei der Hydrolyse mit verdünnten Säuren in Glukose und den zuerst genannten Farbstoff. Der Farbstoff passiert den Magendarmkanal fast ohne resorbiert zu werden. Er färbt daher die Faeces und geht auch in den Urin über. Die wirksame Substanz ist unbekannt. ~Winternitz~ hält den Farbstoff dafür, andere (~Müller~ und ~Blau~) den Gerbstoff (Chinagerbsäure?), von dem ~Blau~ angibt, daß er zu 7,28% der Trockensubstanz darin vorkomme. Nach ~Nacken~ soll der Gerbstoff ein Glykosid sein. Seine wässrige Lösung wird durch Eisenchlorid grün. Ob der von ~Rochleder~ und ~Schwarz~ in den Blättern verschiedener Ericaceen (bes. _Ledum_) aufgefundene, von ~Thal~ in den Blättern und Zweigspitzen von 29 Arten der Gattungen _Erica_, _Rhododendron_, _Pyrola_, _Vaccinium_ (auch _V. Myrtillus_), _Azalea_, _Gaultheria_, _Clethra_, _Eriodyction_, _Ledum_ und _Epigaea_ nachgewiesene glykosidische Bitterstoff +Ericolin+ (C₃₄H₅₆O₂₁?) wirklich auch in den +Früchten+ vorkommt, wie ich angegeben finde, erscheint mir noch zweifelhaft. Die Blätter enthalten auch +Chinasäure+ (~Siebert~ und ~Zwenger~). Vgl. auch ~Senft~, Über d. Zersetz. d. Arbutins in Fol. Myrtilli Pharm. Post 1903. =Verfälschungen= kommen kaum vor. Die Beeren von _Vaccinium uliginosum_ L. (Rauschbeere) sind größer, außen heller, weniger sauer. Sie dürften wohl die gleiche Wirkung haben. Die Beeren von _Vaccinium Vitis idaea._ L. sind +rot+, wenig saftig, herbe, durch Zitronensäure und Apfelsäure sauer. Bei ihnen nimmt der Gehalt an Zitronensäure während des Reifungsprozesses zu. Er erreicht 2,5%. =Anwendung.= Medizinische Anwendung fanden die Heidelbeeren vielfach. Sie finden sich z. B. in ~Schroeders~ Pharmakopoeia (I, S. 890), in ~Murrays~ Apparatus medicaminum (I, S. 952). Als Antidiarrhoicum und bei Eczemen (äußerlich) und zu Mundspülungen empfahl sie neuerdings ~Winternitz~ (in den Blättern f. klinische Hydrotherapie 1891 u. 1895). Vielfach wird das sog. Myrtillin, d. h. das +Extractum myrtillorum+ ~Winternitz~ und der Heidelbeerwein benutzt. Die Blätter wurden neuerdings (1892) gegen Diabetes empfohlen. Heidelbeeren sind auch ein beliebtes Weinfärbemittel. Deutschland liefert davon nach Frankreich wohl besonders zu diesem Zwecke. Dann werden aber auch baies de myrtille zur Alkoholdestillation nach Frankreich eingeführt. =Geschichte.= Heidelbeersamen und Fragmente der Früchte sind in steinzeitlichen Niederlassungen nur selten (Robenhausen) gefunden worden (~Heer~). Die Pfahlbauer benutzten die Früchte also jedenfalls nicht viel. Des ~Plinius~ (XVI, 31) Vaccinia scheint _V. Myrtillus_ gewesen zu sein. Er setzt sie in Gegensatz zu einer gallischen Art (_Vacc. Vitis idaea_?), die zum Färben der Kleider der Sklaven benutzt wurde. In der +Alphita+ (I, S. 653) steht Mirtus und Mirta; cujus semen: mirtillus, bei ~Bartholomaeus~ auch bloberi. Auch ~Lonicerus~ hat Mirtillus; bei ~Cordus~ (I, S. 800): Myrtillorum succus et bacca; in der Frankfurter Liste (1450): mirti; im Nördlinger Register (I, S. 813): mirtus. =Lit.= ~Müller~ und ~Blau~, Fruct. myrtilli. Pharm. Post. 1902. S. 461. -- (dort anatom. Abbild. u. auch die medizin. Literatur). -- ~Lampe~ a. a. O. -- ~Garcin~, Rech. histogen. d. pericapes charnus. Ann. scienc. nat. 1890. -- ~König~, Nahr.- u. Genußm. -- ~Fresenius~ und ~Martini~, Ann. Chem. u. Pharm. 101. -- ~Margold~, Jahresber. f. Agrik. Chem. 1861/62. -- ~Kulisch~, Zeitschr. angew. Chem. 1894. -- ~Omeis~, Chem. Centralbl. 1889. -- ~Schlegel~, Jahresb. d. Pharm. 1908. -- ~Nacken~, Zur chem. Charakt. d. Heidelbeersaftes. Forschungsber. 2 (1895). -- ~Andrée~, Arch. d. Pharm. 1880. -- ~Heise~, Pharm. Centrh. 35. -- ~H. W. Vogel~, Chem. Zeit. 1888 und Spektralanalyse 1889 (dort die Spektren). -- ~Späth~, Zeitschr. Unters. d. Nahrungs- u. Genußm. 1899. -- ~Gautier~, Bull. soc. chim. 25 (Arch. d. Pharm. 9, S. 486). -- ~Münzberger~, Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1893, 370. -- ~R. Kayser~, Repert. d. analyt. Chem. III, 182. -- ~Omeis~, Studien über die Entwickl. d. Frucht d. Heidelbeere. Mitt. pharm. Inst. Erlangen, II. Heft (Pharm. Centrh. 1889). -- ~Rochleder~ u. ~Schwarz~, Sitzungsb. d. Wien. Akad. 9 u. 11. -- ~Thal~, Pharm. Zeitschr. f. Rußl. 1883. -- ~Nevinny~, Rauschbeeren und Heidelbeeren. Zeitschr. f. Hyg. u. Infektionskr. 1908, 95. -- Analysen der Heidelbeeraschen bei ~König~, I, S. 862. ε) Frische zu Sirupen verarbeitete Früchte. Nicht als Drogen, sondern nur im frischen Zustande werden verwendet: Kirschen, Maulbeeren, Himbeeren, Brombeeren, Moltebeeren. Dieselben können auch zu den Säuredrogen gestellt werden, da sie, wie bereits ~Scheele~ fand, aliphatische Säuren enthalten (s. d. chem. Zusammensetzung), stehen aber richtiger hier an dieser Stelle. Fructus Rubi idaei. =Syn.= Himbeere, Himpbeer (bei ~Brunschwig~), Hindbeere (bei ~Gesner~), Hindelbeere, Hinkbeere, Entabeer, Höntabeer, Hünkbeer, Ampe, Maline. Im +althd.+ findet sich hintperi, hint-bẹri; im +mitthd+. hintbẹr auch haiper; heorotberge, herutbeg, hindberige (+angels.+ hier Erdbeere +und+ Himbeere bedeutend) -- hind-berry (engl.) -- hind baer (norw.), bei ~Cordus~: himpen (die Frucht: himper) -- frambroise (franz.) -- raspberry (engl.) -- framboos (holl.) -- lampone (ital.) -- vattu (finn.) -- erdei málna (ung.) -- καρπός ἰδαίας βάτου (n.-griech.) -- fuh-pwʿan-tsze (chin.). =Etym.= ~Dioskurides~ sagt: «βάτος ἰδαία ἐκλήθη μὲν διὰ τὸ πολλὴν ἐν τῇ Ἴδη γεννᾶσθαι». Ebenso äußert sich ~Plinius~. Himbeere (so z. B. schon bei ~Bock~), angeblich = Hindbeere, d. h. Hindin- oder Hirschkuhbeere, soviel als Waldbeere, vielleicht aber von hünk = Honig oder von Hain (?). -- Ampe von Ampornola. -- Maline von +slav+. malina. -- Raspberry von rasp = raspeln, schaben, kratzen, wegen der stachligen Zweige (~Kanngiesser~). Auch der spanische Name zarza idea erinnert an die Stachlichkeit. -- Framboscia (1537) bei ~Ruellius~ [daraus framboise (franz.) und framboos (holl.)] aus dem deutschen Brombeere umgebildet. Über Rubus vgl. unter Rubus fruticosus. =Stammpflanze.= =Rubus idaeus= L. (~Linné~, Spec. plant. edit. I. 492), Mit zwei Varietäten _var. viridis_ ~Al. Br.~ und _var. anomala_ ~Arrh.~ (auch wohl noch: _var. denudatus_ ~Spenner~, β. _spinulosus_ ~Müll.~ und γ. _trifoliatus_ ~Bell Salter~). =Systemat. Stellung.= +Rosaceae+ -- Rosoideae -- Potentilleae -- Rubinae, Sectio Idaeobatus. _Rubus idaeus_ ist eine Circumpolarpflanze. In lichten Wäldern, an Hecken, steinigen Berghängen durch ganz Europa (mit Ausnahme der südlichsten Teile) vorkommend, geht die Pflanze in Norwegen bis zum 70. Breitengrade, in Asien bis Nordsibirien hinauf und steigt auch in Skandinavien noch bis 1200 m an den Bergen empor. Sie findet sich auch in Grönland und auf Sacchalin. Sie wird auch vielfach in Gärten kultiviert (neuerdings auch amerikanische Mischlinge mit _Rubus occidentalis_ L.), aber niemals durch Samen fortgepflanzt. Die in Amerika kultivierte Himbeere ist nach ~Bailey~ ein Sprößling des dort einheimischen _Rubus strigosus_ ~Michx.~, der mit der europäischen Himbeere (_R. Idaeus_ L.) verwandt ist (~Winton~). =Pathologie.= Über die Feinde der Himbeere und der Brombeerarten, die sich nicht ohne Zwang trennen lassen, berichtet ~Israel~: 1. +Käfer+: _Byturus fumatus_ ~Fb.~, Himbeermade. Die Larven dieses Käferchens leben in den reifenden Himbeeren, welche sie ausfressen. _Haltica rubi_ ~Fabr.~ Soll auf _Rubus idaeus_ leben. _Anthonomus rubi_ ~Herbst~. Dieser Blütenkäfer lebt vorzüglich auf _Rubus_- u. _Prunus_arten. 2. +Falter+: _Argynnis daphne_ W. V., _A. paphia_ L. Raupen an _Rubus_- und _Viola_arten. _Syrichthus malvae_ L. Raupe an _Fragaria_ und _Rubus_arten. _Thecla rubi_ L. Raupe an _Rubus_arten, _Sarothamnus_ und _Genista_arten. _Bembecia hylaeiformis_ ~Lasp.~, Himbeer-Glasflügler. Die Raupe dieser Sesie lebt in den Wurzeln und unteren Stengelteilen der Himbeerbüsche, dieselben ausfressend. Man findet die Raupe häufig im Frühling in den vorjährigen Stengeln, die sich leicht ausreißen lassen. _Callimorpha dominula_ L., _C. hera_ L. Raupen an _Rubus_arten, Nesseln und Salweiden usw. _Arctia caja_ L., Raupe ziemlich polyphag, auch an _Rubus_arten. _Gonophora derasa_ L., _Thyatira batis_ L., Raupen an Rubusarten, nicht überall häufig; _derasa_ mehr in den Mittelgebirgen. _Acronicta leporina_ L., _A._ _rumicis_ L., Raupen an _Rubus_arten, Waldweiden und vielen niederen Pflanzen. _Xanthia fulvago_ L., Raupe an _Rubus_- und _Salix_arten usw. _Gnophos obscuraria_ ~Hübn.~, Raupe an _Rubus_arten. Auch sonst leben gelegentlich an _Rubus_arten sehr viele polyphage oder fast polyphage Raupen von Spinnern, Eulen, Spannern und Mikrolepidopteren, die hier nicht alle mit den Namen angeführt werden können. Überhaupt sind die Blätter von _Rubus_arten ein sehr beliebtes Futter, welches von sehr vielen Raupen angenommen und gerne gefressen wird. Im Frühlinge gesammelte, überwinterte Raupen, von denen man oft die Futterpflanze nicht kennt, die aber meist nicht sehr wählerisch im Futter sind, nehmen sehr oft _Rubus_arten als Futter an, und lassen sich damit zum Imago erziehen. 3. +Fliegen+: _Lasioptera rubi_ ~Heeg~. Diese kleine Fliege legt ihre Eier in die noch krautartigen Schößlinge der Himbeerbüsche. Durch den Fraß der jungen Maden entstehen längliche Anschwellungen (Stengelgallen), die man sehr häufig an Himbeerstengeln wahrnimmt. Im Frühling fliegen die fertigen Insekten aus den mittlerweile verholzten Gallen aus. 4. +Schnabelkerfe+: _Aphis rubi_ ~Kalt~. an _Rubus_arten, besonders an den Blättern, seltener auch an den krautartigen Stengeln. =Beschreibung.= Die Himbeere ist keine Beere, sondern eine Sammelfrucht, die aus einer Gruppe von Fruchtknoten hervorgeht, die in einer Blüte vereinigt sind. Jedes einzelne Früchtchen ist eine Drupa mit saftigem Mesocarp und sklerotischem, beim Herauslösen des Samens an diesem als grubige Hülle haften bleibendem Endocarp. Die 20-50 Einzelfrüchtchen liegen auf dem Fruchtboden so dicht nebeneinander, daß sie sich gegenseitig abplatten. Sie sind behaart und tragen noch den c. 4 mm langen, etwas unter dem Fruchtscheitel inserierten Griffel. Die schön rote (seltener gelbliche) Sammelfrucht löst sich als hohles, halbes Ellipsoid von dem an dem Stiel bleibenden Fruchtboden ab, der an seiner Basis die Reste des Kelches und der Stamina trägt. Die abgelöste Himbeere sieht aus wie ein umgestülpter Topf und die chinesische Bezeichnung fu-pau-tsze heißt denn auch «umgeworfene Schüssel». Die Himbeere reift im Juli oder August. Nur die roten werden verwendet, die weißen und gelben sind Albinoformen. Die aromatischeren, duftreicheren Waldhimbeeren werden bevorzugt. [Illustration: Fig. 22. _Rubus strigosus._ I. Sammelfrucht in nat. Gr. II. Querschnitt durch ein Früchtchen. Epi Epidermis. Hy Hypoderm. Mes Fruchtfleisch. F Steinschale (Endocarp). S Samenschale. R Raphe. E Endosperm. Em Embryo. III. Steinkern in natürlicher Größe. IV. Derselbe 8fach vergr. [Nach A. L. +Winton+.]] [Illustration: Fig. 23. _Rubus strigosus._ Steinschale und Randschicht des Samens im Querschnitt. End Endocarp. S Samenschale. E Endosperm. [Nach A. L. +Winton+.]] =Lit.= ~Bailey~, the evolution of our native fruits. London 1898. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Arechoug~ (Über d. Abstam. u. d. Verwandtsch. d. Rub. idaeus). Journ. of bot. 1873 (Bot. Jahresber. 1874). -- +Abbild.+ in ~Berg-Schmidt~, Atlas d. offiz. Pfl. 2. Aufl. Taf. 64 (dort die florist. Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. Taf. 43. -- ~Hayne~, Arzneipfl. III t. 8 u. and. -- Über die schwierige Gattung Rubus vgl. auch ~Focke~ in Engler-Prantl, Pflanzenfam. =Anatomie.= Das +Pericarp+ ist von einer aus polygonalen Zellen bestehenden Epidermis bedeckt, die Spaltöffnungen und an den freien Flächen der Frucht lange einzellige Haare in großer Zahl trägt, die so stark verfilzt sind, daß sie der Oberfläche ein sammetartiges Aussehn verleihen. Unter der Epidermis liegt eine Schicht kollenchymatischer Zellen. Das Mesocarp (Fruchtfleisch) besteht zu äußerst aus kristallführenden, vorwiegend aber aus radial gestreckten dünnwandigen Parenchymzellen, das sklerotische Endocarp aus zwei Schichten, einer die höckerige Beschaffenheit der herausgelösten «Steinkerne» bedingenden, ungleich breiten, äußeren Schicht, die aus längsgestreckten und einer schmalen inneren Schicht, die aus vorwiegend quergestreckten Zellen besteht. Die Richtungen der Zellen der beiden Schichten kreuzen sich also. Die zarte +Samenschale+ ist stark zusammengefallen, besonders in der Nährschicht. Nur die Epidermen pflegen gut erhalten zu sein. Das Perisperm, der Nucellarrest, bildet eine schmale helle Zone. Das Endosperm dagegen ist mehrere Zellreihen dick. Die kleine Radicula liegt an der Spitze des Samens. Die großen oblongen, plankonvexen, fleischigen Cotyledonen bilden die Hauptmasse des Samens. Der erhalten bleibende lange +Griffel+ ist am Grunde verbreitert und dort behaart. Die Epidermis ist kleinzellig, das Gewebe enthält Oxalatdrusen. =Lit.= ~Tschiercke~, Beitr. z. vgl. Anat. u. Entwicklungsg. einiger Dryadeenfr. Zeitschr. f. Naturw. 1886. -- ~Winton~, Beitr. z. Anat. d. Beerenobstes. Zeitschr. Unters. Nahr.- u. Genußm. 1902 (auch Rep. Connect. Agr. Exp. Stat. 1902) (mit zahlr. Abbild.). -- ~Moeller-Winton~, Nahrungs- u. Genußm. 2. Aufl. (mit Abbild.). -- ~Villiers et Collin~, Altérat. et Falsific. d. subst. aliment. 1900. -- ~Marpmann~, Beitr. z. mikrosk. Unters. d. Fruchtmarmelad. Zeitschr. angew. Mikrosk. 1896. =Chemie.= Die frischen Früchte liefern c. 70 (67-78)% Saft, der sich durch Gärung klärt. Frische Himbeeren enthalten im Mittel 4,38-4,7% +Invertzucker+ (das Verhältnis von Lävulose zu Dextrose ist wie 4,6:2,5), keinen oder wenig (0,72 bis 2%, ~Buignet~: 0,95%) +Rohrzucker+, +Apfel+- und +Zitronensäure+: 1,48% freie Säure (auf Apfelsäure berechnet). Auch +Ameisensäure+ ist nachgewiesen und sehr kleine Mengen +Salicylsäure+ (wohl als Methyläther, ~Traphogen~), 1,45% +Pektinsubstanzen+, 2,08% +Pentosane+, 0,32% +Asche+ (enthält viel Kali und Phosphorsäure, ~Goessmann~). In der Trockensubstanz finden sich im Mittel 35,82% Zucker. Waldhimbeeren sind ärmer an Zucker als Gartenhimbeeren. Sie enthalten davon nur c. 2,8-3,5% (~Gallencamp~, ~Zervas~, ~Seiffert~). Im Himbeersaft werden neuerdings +Zitronensäure+ (0,65-0,75%) und +Weinsäure+ (0,18-0,22) angegeben (~Kayser~ 1906). ~Pabst~ erklärte Apfelsäure und Zitronensäure als vorherrschend. ~Scheele~ fand Zitronensäure und Äpfelsäure etwa in gleichen Mengen, ~Bley~ im Verhältnis 8:13. Das Aroma (der Riechstoff) scheint ein +Fettsäureester+ zu sein. Aus dem destillierten Aqua Rubi idaei scheiden sich Flocken ab, die ausgeäthert in kleinen Blättchen erhalten werden können, die in Alkohol und Äther und auch in Wasser und Kalilauge sich lösen (~Bley~). Die fast regelmäßig im Himbeersaft auftretende Nachtrübung ist auf mikrokristallinische Abscheidung von +Ellagsäure+ zurückzuführen (~Kunz-Krause~ und ~Schweissinger~). ~Hefelmann~ fand in +frischen Preßsäften+ sächsischer und werderscher Himbeeren im Mittel 0,437% Asche, die Alkalinität der Asche war = 5,64 ccm Normallauge. Das Verhältnis von Asche zur Alkalinität sinkt nicht unter 1 : 10 herab (~Beythien~ und ~Waters~). Die freie Gesamtsäure betrug 1,561% (auf Apfelsäure berechnet). Der Alkoholgehalt 2,99%. ~Pabst~ fand im Liter Saft 46 g +Lävulose+ und 25 g +Dextrose+. Die +freie Säure+ beträgt in +vergorenem+ Himbeersaft im Mittel 1,836% (auf Apfelsäure berechnet), die flüchtige Säure, auf Essigsäure berechnet, im Mittel 0,359% (~Späth~), die Asche 0,515%. Der +Farbstoff+ ist nicht näher untersucht. Er ist in der Pflanze im Zellsaft gelöst, gehört also zur Gruppe der +Anthocyane+ ~Marquarts~ und zwar zur Gruppe des Weinrots. Er ist mit dem Weinrot selbst verwandt (~Pabst~). Der Himbeerfarbstoff gibt im Spektrum zwei nicht scharf getrennte Bänder, eins bei E und ein zweites zwischen b und F, die aber bald zu einem breiten Bande zwischen D½ E und F zusammenfließen (~v. Lepel~). Ausgepreßter Himbeersaft entfärbt sich mit der gleichen Menge Salpetersäure (spez. Gew. 1,2) gemischt erst nach 2-3 Tagen. Äther, Essigäther, Amylalkohol, Chloroform nehmen den Farbstoff nicht auf. Bleiessig gibt mit Himbeerpreßsaft einen starken grünen Niederschlag, das Filtrat ist schwach gelblich. Vergleiche zwischen den Reaktionen der Farbstoffe der Himbeeren, Kirschen und Heidelbeeren stellten ~van den Driessen-Mareeuw~, ~Späth~ u. and. an (vgl. Jahresber. d. Pharm. 1900, S. 588). Über Nachweis von fremden Farbstoffen im Himbeersaft vgl. ~Riegel~ (Pharm. Zeit. 1897, S. 247). Der mit Wasser verdünnte Himbeersirup gibt, der Kapillaranalyse unterworfen, eine untere, schwach schmutzigviolette, c. 2,8 cm breite und eine darüber liegende, fast farblose, steif anzufühlende Zone. Nach Zusatz von etwas Fuchsinlösung erhält man eine 3 cm breite, schmutzigviolette Zone, darüber 0,15 cm lebhaft fuchsinrot mit violettem Stich, 1,1 cm hell fuchsinrot und zu oberst 5,5 cm rötlicher Schein (~Goppelsröder~). In den Himbeerkernen sind 14,6% eines fetten, stark trocknenden +Öles+ enthalten, welches Linolsäure, Linolensäure, Ölsäure und Isolinolensäure enthält (~Kriżiżan~). =Lit.= ~König~, Nahr.- u. Genußm. -- ~Bley~, Arch. Pharm. (2), 13 (LII). -- ~Reichardt~ (~Seyffert~), Arch. Pharm. (3) 12 (1879). -- Analysen von ~Gallenkamp~ (1854) und ~Zervas~ (1855) in Jahresber. d. Chem. 1857, S. 636. -- ~Goessmann~, Amer. Chem. Journ. 1. -- ~Buignet~, Ann. chim. et pharm. (3) 61 (1861). -- ~Traphogen~ und ~Burke~, Journ. Amer. chem. soc. 1903 (Pharm. Zeit. 1903, S. 323). -- ~Hefelmann~, Zeitschr. f. öffentl. Chem. 1905. -- ~Beythien~ u. ~Waters~, Zeitschr. f. Unters. d. Nahr. u. Genußm. 1905. -- ~v. Lepel~, Über d. Verhalt. v. Fruchtsäften verschied. Alters gegen Reagent. Zeitschr. Anal. Chem. 1880 (dort auch die Spektren der Reaktionen). -- ~H. W. Vogel~, Spektralanalyse. -- (Farbstoff) ~Pabst~, Bull. soc. chim. 1885 und ~van den Driessen~, Ned. Tijdschr. 1900. -- ~Kunz-Krause~ u. ~Schweissinger~, Apoth. Zeit. 1907, S. 825. Über Himbeersaft vgl. die zahlreichen Arbeiten in den Zeitschriften für Untersuchung der Nahrungs- und Genußmittel. =Geschichte.= Aus den Pfahlbauten sowohl der neolithischen wie der Bronze-Periode kennen wir Steinkerne der Himbeeren (~Buschan~). Die Himbeeren und Brombeeren der Pfahlbauer stammten jedenfalls von wildwachsenden Pflanzen (~Hoops~). -- βάτος war bei den Griechen die Himbeere und die Brombeere, βάτος ἰδαία (bei ~Dioskurides~) vielleicht die Himbeere (~Fraas~), benannt nach dem Berge Ida (entweder der Psiloriti auf Candia, wo aber jetzt keine Himbeeren mehr wachsen, oder der Kaz dagh in Nordwest-Kleinasien, ~Flückiger~). βάτος ἀκανθώδης des ~Theophrast~ war möglicherweise auch _Rubus idaeus_, jedenfalls βάτος ὀρθοφυής. _Rubus idaeus_ steht schon bei ~Plinius~, ob aber damit unsere Himbeere gemeint ist, wie ~Fraas~ will, ist fraglich. Bei den arabischen Schriftstellern fehlt sie, ebenso bei der ~Hildegard~ (I, S. 667) und bei ~Albertus Magnus~ (I, S. 672). Der _Rubus_ der Alphita ist wohl die Brombeere (s. d.). Ob die Griechen und Römer unsere Himbeeren benutzten, ist nicht ganz sicher. Das Mittelalter beachtete sie nicht. ~Cordus~ (Dispensatorium I, S. 800) benutzte die Früchte (_Mora Rubi idaei_) neben Maulbeeren und Erdbeeren zum Rob Diamoron. Der _Syr. rubi idaei_ scheint zuerst von ~Gesner~ (Epistolar. medicin. libr. III, vgl. I, S. 847) dargestellt worden zu sein, den seine herrliche Farbe, sein höchst angenehmer Geschmack und Geruch entzückten (vgl. ~Flückiger~, 3. Aufl. S. 862). Die Pflanze beschrieben ~Bock~, ~Fuchs~, ~Cordus~. ~Bock~ gab eine Abbildung. In ~Bauhins~ Pinax heißt sie _Rubus idaeus spinosus_. Fructus Rubi fruticosi. =Syn.= Brombeere -- baie de ronce (franz.) -- blackberry (engl.) -- braambes (holl.) -- heggi málna (ung.). Brämel, Bramel, Brambla, Brombesing, Haiper, Swartjebeere; +angels.+: brēmbelaeppel, braemelberian, blace berian, -- +arab.+: ullaik, ʿullaiq, ollaik (bei ~Ibn Baithar~). Dieser Name umfaßt aber wohl, ebenso wie bâthus, thut elwahschi, auch die Himbeere; -- brema, brama (~Hildegard~), kratzen, bramenbeer (~Cordus~), prumen, brambernstruch (Ort. san.), prauper (~Megenberg~) -- +chin.+: hiuen-tiau-tsze. =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Rubus fruticosus= L. mit vielen Spielarten, oder in verschiedene Arten aufgelöst. +Rosaceae+, Rosoideae -- Potentilleae -- Rubinae. =Etym.= +Rubus+ im Latein. Kollektivum für verschiedene (dornige) Sträucher; vielleicht von ῥάπτειν stechen, unwahrscheinlicher von reber = rot, denn nur die unreife Frucht der Brombeere ist rot; aber auch das +franz.+ ronce ist wohl verwandt mit rouge = rot; mures ist wohl von μαυρός schwarz, wegen der schwarzen Farbe der reifen Frucht, abzuleiten. Das Gleiche sagt das englische blakeberien, blackberry (~Kanngiesser~). Der Name Brombeere von +mhd.+ brame = Dorn deutet auf die dornige Beschaffenheit, ebenso das englische bramble und das niederländische brambezi. -- +mhd.+ brâmber, +ahd.+ brâmberi, eigentlich die Beere «einer Dornart», +ahd.+ brâmo, +mhd.+ brâme (auch «Dornstrauch» überhaupt, ~Kluge~). Im Mittelalter finden sich auch die Namen morus rubi, citromora, batus (in der Alphita = Rubus ferens mora, bedegar) mora bati, mora silvatica, dumus, genesta, Morabati, Vepres. _Rubus fruticosus_, die europäische wilde Brombeere, die über Europa und Asien verbreitet ist, findet sich in Nordamerika weder wild noch in Kultur. Dort wird sie vertreten durch _Rubus villosus_ ~Ait.~ (kriechende Brombeere, Taubeere), _Rubus canadensis_ L. (dornenlose Brombeere) und _Rubus nigrobaccus_ ~Bail.~ (große oder Buschbrombeere, gemeine amerikanische Buschbrombeere). _Rubus nigrobaccus var. sativus_ ~Bail.~ ist der Stammvater der meisten Gartenvarietäten. =Beschreibung.= Die Brombeere ist der Himbeere (s. d.) ähnlich gebaut, doch sind die Früchtchen kahl und dem Fruchtboden angewachsen. Die Brombeer-Sammelfrucht löst sich also nicht so leicht von diesem ab wie die Himbeere. Die Epidermiszellen der Fruchtwand sind gestreckt. Die Griffel sind kürzer (c. 2 mm lang) und kahl. Sie verbreitern sich an der Basis nicht. Die «Steinkerne» sind meist (doch schwankt dies nach den Spielarten) etwas kürzer und dicker als bei der Himbeere, was schon ~Heer~ zur Unterscheidung der Pfahlbaufunde benutzte. ~Winton~ gibt umgekehrt an, daß sie größer seien. Die Sammelfrüchte von _Rubus caesius_ L. bestehen meist nur aus wenigen Früchten. Sie sind blauschwarz und hellblau bereift. Die geruchlosen, säuerlichen Sammelfrüchte von _Rubus saxatilis_ bestehen aus 3-7 ziemlich großen, scharlachroten Früchten. =Pathologie= s. bei _Rubus idaeus_. =Chemie.= Frische Brombeeren enthalten im Mittel 5,3% +Invertzucker+, wenig (0,48%) oder keinen Rohrzucker, 0,77% +freie Säure+ (auf Apfelsäure berechnet), 1,44% +Pektinstoffe+. In der Trockensubstanz finden sich im Mittel 40,17% Zucker. Der Blackberry-+Farbstoff+ ist in seinen Reaktionen von ~Kraemer~ studiert worden (vgl. The origin and nature of color in plants. Proc. amer. philos. soc. XLIII.). Die Brombeeren enthalten auch sehr kleine Mengen +Salicylsäure+, wohl als Methylester (~Traphogen~ und ~Burke~). =Geschichte.= Einige nehmen an, daß der brennende Busch (seneh) des Moses ein Brombeerstrauch gewesen sei (~Rosenmüller~). Da der Strauch in Griechenland häufig ist, war er ~Homer~, ~Theophrast~ und ~Dioskurides~ bekannt. βάτος; (= Dornstrauch) umfaßte auch die Brombeere. βάτα heißt sie noch im heutigen Griechenland. Batus seu Rubus findet sich auch in den Spuria ~Macri~ (I, S. 626). ~Plinius~ erwähnt die Brombeere. ~Palladius~ gibt (De re rustica XIV) eine Vorschrift für Brombeergelée. Aus den Pfahlbauten der neolithischen Periode kennen wir Brombeersteinkerne. Bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 578) und ~Celsus~ (I, S. 588) steht Rubus. Morus fructus, Mora rubi, blakeberien, Rubus ferens mora in der Alphita (I, S. 657) waren wohl Rubus fruticosus, ebenso batus der Sinonoma. In ~Serapions~ Tabula steht Rubus neben Rubus canis, bei ~Albertus Magnus~ heißt die Brombeere Ramnus (!), bei ~Hildegard~ steht brema. Der Succus mororum Rubi des ~Cordus~ ist Brombeersaft. Das im ganzen Mittelalter sehr geschätzte, auch in ~Karls~ Capitulare erwähnte Getränk +moratum+ wurde aus Brombeeren, Honig und Wein bereitet mit einem Zusatz von Gewürzen (~Fischer-Benzon~, Gesch. uns. Beerenobstes. Bot. Centralbl. 1895). =Lit.= ~Godfrin~, Etude histol. sur les Tégum. semin. d. Angiosp. Soc. d. scienc. Nancy 1880. -- ~Winton~, Beitr. z. Anatom. d. Beerenobstes. Zeitschr. Unters. d. Nahr.- u. Genußmittel 1902 u. Connect. Agric. Exp. Stat. 1902. -- ~Lampe~ a. a. O. -- ~Traphogen~ u. ~Burke~, Pharm. Zeit. 1903, S. 323. -- ~Moeller-Winton~ a. a. O. -- ~König~ a. a. O. -- Die ältere chem. Literatur in ~John~, Tabellen. Fructus Cerasi acidi. =Syn.= Sauerkirsche, Weichselkirsche, Morelle. -- cerise (franz.) -- cherry (engl.) -- ciliegia (ital.) -- zure kers (holl.) -- kirsikka (finn.) -- καρπός ὀξίνων κερασίων (n.griech.). =Etym.= +Kirsche mhd.+ Kirse, +alam.+ chriesi (s in sch umgebildet), +ahd.+ Kirsa «stammt sicher nicht aus lat. +cerasum+, sondern, wie die verwandten roman. Worte, aus einem ceresia», +mlat.+ cerésea. Die Entlehnung des hd. fällt wohl vor das VII. Jahrh. (~Kluge~). Im Gothaer Arzneibuch (I, S. 680) steht noch Kersebere. Weichsel ist (nach ~Hoops~) der alte vorrömische deutsche Name der einheimischen Vogelkirsche, der auch nach Einführung der römischen Kulturkirsche an der wilden Kirsche haften blieb. =Stammpflanze und systemat. Stellung. Prunus Cerasus= L. (~Linné~, Spec. plant. edit. I, 474). +Rosaceae+, Prunoideae. Untergattung Cerasus (Mischling von Süß- und Sauerkirsche?). Man unterscheidet von der sauren Kirsche zwei Varietäten (von ~Ehrhart~ 1792 als Arten betrachtet und wohl auch als _Cerasus acida_ ~Gärtner~ und _Cerasus austera_ ~Leight~ unterschieden): α. _acida_ ~Ehrh.~ (Glaskirsche) mit farblosem Safte (Unterarten und Varietäten in ~Ascherson-Gräbner~ Synopsis) und β. _austera_ ~Ehrh.~ (schwarze, saure Kirsche). Die saure Kirsche (_Pr. Cerasus_) wächst sicher wild in Transkaukasien, wird aber auch in Macedonien, am Bithynischen Olymp und am Kaukasus angegeben. In Mitteleuropa ist sie verwildert. Ihre Kultur erstreckt sich über Europa und die Vereinigten Staaten. Die wilde süße Kirsche (_Pr. avium_) war schon in vorgeschichtlicher Zeit in Europa heimisch (~Engler~). =Beschreibung.= Die Kirsche ist ein relativ kleiner Baum mit gerundeter Krone. Die Langtriebe der sauren Kirsche sind unfruchtbar, die gestielten Früchte werden an der Spitze von in den Blattachseln stehenden gestauchten Kurztrieben erzeugt. Die Blüte besitzt nur einen Fruchtknoten. Aus ihm entsteht eine niedergedrückt kugelige Steinfrucht von meist braunschwarzer Farbe und purpurrotem Mesocarp. Das sklerotische Endocarp umschließt den Samen und bildet mit ihm den kugeligen harten «Steinkern» der Früchte. Der Same besteht aus den zwei plankonvexen Cotyledonen und einem kurzen Würzelchen. Pathologie. Prof. ~Ed. Fischer~ berichtet über die =pflanzlichen Schädlinge=: Auf _Prunus Cerasus_ ruft _Sclerotinia cinerea_ (~Bon.~) ~Schroeter~ ein Absterben der Laubtriebe und Blütenstiele hervor, kann aber auch Fäulniserscheinungen der Früchte bewirken. Es entwickelt sich dabei eine Nebenfruchtform des Pilzes in Gestalt von grauen Schimmelpolstern (_Monilia cinerea_ ~Bon.~) (siehe ~Woronin~, Über _Sclerotinia cinerea_ und _Sclerotinia fructigena_, Mém. Acad. St. Petersbourg Ser. VIII, T. 10, 1900). _Gnomonia erythrostoma_ (~Pers.~) ~Auersw.~ befällt zwar fast nur die Süßkirsche, seltener die Sauerkirsche. Es entwickelt sich dieselbe auf den Blättern und Früchten, letztere in ihrer Entwicklung hemmend und zum Absterben bringend, und überwintert in den am Baume hängen bleibenden dürren Blättern, wo im Frühjahr seine Ascosporen reifen, und aufs neue Blätter und Früchte befallen. Besonders intensiv trat diese Krankheit in den achtziger Jahren des letzten Jahrhunderts im Altenlande bei Hamburg auf (~B. Frank~, Die jetzt herrschende Krankheit der Süßkirschen im Altenlande. Landwirtschaftliche Jahrbücher XVI, 1887). _Fusicladium Cerasi_ ~Rabenh.~ bringt auf den noch grünen Kirschen mißfarbige Flecke hervor und kann zur Folge haben, daß sie im Wachstum zurückbleiben und abdorren. -- Fäulniserscheinungen an Kirschen werden auch durch ein _Gloeosporium_ hervorgerufen. Über die =tierischen Schädlinge= von _Prunus_-Arten (Prunus _armeniaca_ L., _spinosa_ L., _cerasifera_ ~Ehrh.~, _domestica_ L., _insititia_ L., _avium_ L., _cerasus_ L., _chamaecerasus_ ~Jacq.~, _mahaleb._ L., _padus_ L., _Persica vulgaris_ ~Mill~,) berichtet ~Israël~: Die Zahl der auf Prunusarten lebenden Insekten ist sehr groß. Als die wichtigsten Insekten seien folgende angeführt. 1. +Käfer+: _Phytoëcia cylindrica_ L. Larve in dürren Zweigen von Obstbäumen, auch in alten Ballonkörben. _Saperda scalaris_ L. Larven in frischen Trieben von Kirschbäumen und anderen Laubhölzern. _Liopsus nebulosus_ L. Die Larve dieses Bockkäfers lebt im Splinte von Kirschbäumen, auch in anderen Obstbäumen. _Anthonomus druparum_ L. Die Larven dieses Rüsselkäfers leben in den Blüten und Früchten von _Prunus cerasus_ u. _Pr. padus. Magdalinus cerasi_ L., _M. pruni_ L. und andere Magdalinusarten leben als Larven unter der Rinde abständiger Schlehen, Kirschen, Quitten, Pflaumen, Äpfel und anderer Obstbäume, auch oft in trocknen Ästen. _Phyllobius pyri_ L., _P. argentatus_ L., _P. oblongus_ L. und andere Phyllobiusarten schaden als fertige Rüsselkäfer den Kirschen- und Pflaumenbäumen oft sehr durch das Benagen und Ausfressen der Knospen. _Rhynchites cupreus_ L., _R. bacchus_ L., _R. alliariae_ L. und andere Rhynchitesarten leben als Larven in den unreifen Früchten von Kirschen, Pflaumen, Äpfeln, Traubenkirschen, Aprikosen, Mispeln, Ebereschen usw. usw. _Rhinosimus planirostris_ ~Fabr.~, Larven in dürren Zweigen von Kirschen, Pflaumen, Aprikosen, Schwarz- und Weißdorn. _Eccoptagaster pruni_ ~Ratzb.~, _E. rugulosus_ ~Ratzb.~, Larven dieser Splintkäfer gerne in Apfel-, Pflaumen-, Quitten-, Pfirsich- und anderen Obstbäumen, auch Kirschbäumen. _Polygraphus pubescens_ ~Fabr.~ Larve im Splinte von Kirschbäumen, auch oft in verschiedenen Koniferen. _Bostrychus chalcographus_ L., _B. dispar._ ~Fabr.~ und andere Borkenkäfer leben nicht nur in Nadelhölzern, sondern auch in rückgängigen Laubhölzern des Waldes und der Gärten. _Valgus hemipterus_ L., Larve in Prunusarten und Weiden; auch in Johannisbeerstöcken. 2. +Falter+: Auch die Zahl der an Prunusarten lebenden Lepidopterenraupen ist ganz enorm. Es seien nur die hauptsächlichsten angeführt. _Aporia crataegi_ L., Raupe, besonders häufig an allen Prunusarten und an Crataegus, auch an Äpfeln, Quitten usw. Früher fast überall sehr häufig, ist der Falter heute in sehr vielen Gegenden Deutschlands zur Seltenheit geworden. Die Raupen leben in der Jugend in Nestern; wo sie auftreten, sind sie gewöhnlich massenhaft. _Thecla betulae_ L., _T. pruni_ L., _T. spini_ W. V., Raupen vornehmlich an Prunusarten, auch an Mandelbäumen und Rhamnusarten. _Aglaope infausta_ L., _Ino pruni_ W. V. Die asselförmigen Raupen an _Prunus_arten. Kommen nicht überall vor. An allen _Prunus_arten leben gelegentlich auch eine ganze Anzahl polyphager Bärenraupen (_Arctiidae_). Aus der großen Zahl der Spinnerraupen seien ferner noch die hauptsächlichsten angeführt; unter diesen finden sich die schädlichsten aller Lepidopteren. _Cossus ligniperda_ F. (_Cossus cossus_ L.), Raupe sehr oft auch in _Prunus_arten (s. Morus). _Zeuzera pyrina_ L. Raupe nicht nur in Waldbäumen, sondern auch in Gärten in fast allen Obstbäumen, auch in Syringen und Staphyllaea. _Dasychira pudibunda_ L., Raupe an allerhand Laubholz, meist Buchen, doch oft auch in Gärten an Obstbäumen. _Porthesia chrysorrhoëa_ L., _P. similis_, ~Füssly~, Raupen in Nestern an Waldbäumen. In Gärten an Obstbäumen oft sehr schädlich. Auch an Weißdorn gemein. _Psilura monacha_ L., die Nonne. Diese sehr gefährliche Raupe tritt oft an Laubhölzern, namentlich aber an Nadelhölzern sehr schädlich auf, oft den Nadelwald auf weite Strecken vernichtend. In Gärten und an Alleen scheint sie Kernobst (Kirschen) zu bevorzugen. Sie ist polyphag. _Ocneria dispar._ L. Die sehr schädliche und gefräßige Raupe an Laubholz; Pflaumen-, Kirschen- und Apfelbaum oft ganz entblätternd. _Bombyx crataegi_ L., _B. populi_ L., _B. neustria_ L., _B. lanestris_ L., Raupen an fast allen Obst- und Waldbäumen; namentlich die Raupe des Ringelspinners oft überaus schädlich in Gärten und an Alleen. _Phalera bucephala_ L. Die sehr schädliche Raupe oft in großer Anzahl an Linden, Ahorn, Rosen, Pappeln, Weiden, Birken, Erlen, Buchen, Hainbuchen, Eichen, Kirschen, Aprikosen, Pflaumen, Schlehen, Apfel- u. Birnbäumen. Nimmt in Parkanlagen gelegentlich auch exotische Laubhölzer an. _Lasiocampa pruni_ L. Raupe des seltenen Falters an Prunusarten. _L. quercifolia_ L. Raupe der Kupferglucke in Baumschulen oft sehr schädlich. Gern an _Prunus_arten. _Saturnia pavonia_ L. Raupe auch an Prunusarten usw. _Aglia tau_ L. Raupe an Eichen, Buchen, Linden usw., auch an _Prunus_. Die Zahl der Eulen- und Spannerraupen, die an _Prunus_arten und anderen Obstbäumen leben, ist ebenfalls ganz außerordentlich groß, doch sind alle diese keine eigentlichen Schädlinge, die nur selten einen Kahlfraß usw. an Obstbäumen herbeizuführen imstande sind. Letzteres kommt dagegen dem sehr schädlichen _Cheimatobia brumata_ L. und _Hibernia defoliaria_ L. und einigen anderen in bedeutendem Maße zu. Auch die Zahl der Mikrolepidopterenraupen, die an _Prunus_arten leben, ist sehr groß. Auch unter ihnen finden sich Schädlinge wie _Sciaphila nubilana_ ~Hb.~, die einen Kahlfraß ganzer Gegenden herbeiführen können. Sie können hier nicht alle angeführt werden, da sie gegenüber den schädlichen Spinnern weniger wichtig erscheinen. 3. +Fliegen+: _Trypeta signata_ ~Mg.~ Die Made dieser Fliege lebt vornehmlich in den süßen Kulturkirschen, oft in solcher Anzahl, daß man fast keine Kirsche aufbricht, in der nicht eine solche Made vorhanden wäre. Verschiedene _Cecidomyia_-Arten leben an den Blättern von Prunusarten. 4. +Schnabelkerfe+: _Aphis pruni_ ~Fb.~ lebt in sehr großer Anzahl auf der Rückseite der Blätter von Prunusarten, dieselben deformierend. Die Blätter kräuseln sich zusammen und machen einen krankhaften, weißbestäubten Eindruck. Die Fruchternte wird dadurch oft für Jahre vereitelt. _Aphis cerasina_ ~Wek.~ lebt besonders auf Kirschen (auch an Schlehen), die Blätter deformierend und die Fruchternte verhindernd. =Chemie.= Saure Kirschen enthalten 6,3-10,2% +Invertzucker+, in der Trockensubstanz 44-62%; 1,2-2% +freie Säure+ (auf Apfelsäure berechnet). Süße Kirschen enthalten meist 10,70-13,11 (bis 16,5)% +Invertzucker+, in der Trockensubstanz 42-58 (bis 72)%; 0,3-1% +freie Säure+ (auf Apfelsäure berechnet). Unreife Kirschen enthalten viel +Apfelsäure+, +Zitronensäure+ und +Bernsteinsäure+, sowie etwas +Inosit+ (~Keim~). Der +Pentosangehalt+ der Kirsche beträgt 0,61-1,07% (~Wittmann~). Die +Reinasche+ in der Trockensubstanz beträgt in der ganzen Frucht 2,35, im Fruchtfleisch 2,25% (~König~). Die Samen enthalten 37,61% der Trockensubstanz +Fett+. ~Schmid~ fand in getrockneten Kirschen +Glycerin+. Kirschen enthalten im Kilogramm meist 0,1-0,2 mg (~Desmoulière~) bis 0,4 mg (~Traphogen~) +Salicylsäure+, wohl als Methylester, sowie kleine Mengen +Borsäure+ (~Norton~). Die Samen enthalten ein +Blausäure abspaltendes Glykosid+ nebst einem glykosidspaltenden +Fermente+. Die Abspaltung der Blausäure war schon ~Ittner~ bekannt (1809). Durch Destillation der gegorenen zerstampften Früchte wird in der Schweiz, dem Schwarzwald und anderwärts der «+Kirsch+», ein Schnaps, bereitet, der c. 43-58 Vol.% Alkohol und c. 14-48 mg Blausäure im Liter enthält (Zusammensetzung bei ~Windisch~, Arb. d. k. Gesundheitsamtes 1895). Der +Farbstoff des Kirschsaftes+ zeigt die gleichen Absorptionsbänder, wie der des Himbeersaftes. Unterschiede in den Spektralreaktionen treten bei Einwirkung von Reagentien hervor (vgl. bei ~Lepel~). Mit der Zeit verändert sich der Farbstoff. =Geschichte.= Ob die in der Liste der Pflanzen des königlichen Gartens des ~Nebukadnezar~ von ~Ben Sira~ aufgeführten +Kirschen+ (wie ~J. Löw~ übersetzt) wirklich welche waren, scheint mir unsicher. Es ist nicht mehr festzustellen, ob das Wort κεράσια (κέρασος), das neben κράνεια von den Griechen benutzt wird (~Theophrast~), die süße Vogelkirsche oder die saure Kirsche oder beide bedeutete. Es ist nicht griechisches Indigenat, sondern stammt vom Pontus, von dem Worte Kirahs, hat also mit κέρας nichts zu tun. Die Stadt Cerasus ist nach der Kirsche, nicht (wie ~Isidor~ meint) diese nach der Stadt benannt (~Buschan~). Die Veredelung der Süßkirsche (_Prunus avium_) scheint frühzeitig am Pontus erfolgt zu sein und von dort hat wohl ~Lucullus~ die süße Edelkirsche nach Italien gebracht (~Koch~). Die Kirschkerne aus der Stein- und Bronzezeit sind alles Süßkirschen-Steinkerne (~Heer~, ~Buschan~). ~De Candolle~ nimmt an, daß die Sauerkirsche (_Prunus Cerasus_) schon in vorgeschichtlicher Zeit aus _Prunus avium_ hervorgegangen sei. Die Sauerkirsche ist durch Funde aus paläolithischer Zeit in Südfrankreich beglaubigt. 120 Jahre nach Einführung der Kirsche in Italien wurde sie bereits am Rhein, in Belgien und Britannien von den erobernden Römern gebaut (~Plinius~). Auf den pompejanischen Wandgemälden (I, S. 575) findet sich _Prunus Cerasus_, die wohl nicht lange nach der süßen Edelkirsche nach Italien kam. _Cerasarios_ diversi generis stehen im Capitulare (I, S. 620) und im Breviarium (I, S. 621), aber nicht im St. Galler Klosterplan (I, S. 622). Bei ~Albertus Magnus~ heißt die Sauerkirsche amarella, amarena. _Cerasorum nuclei_ stehen im Compend. des Magister Salerni (I, S. 639). ~Glauber~ stellte bereits 1660 (s. S. 883) aus Kirschen Traubenzucker dar. =Lit.= +Abbild.+ in ~Berg-Schmidt~, Atlas, Taf. 61 (dort auch die florist. Literatur). -- ~Hehn~, Kulturpflanzen usw. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botanik 1895. -- ~Keim~, Stud. über d. chem. Vorgänge bei d. Entwickl. u. Reife der Kirschfrucht. Wiesbad. 1891. -- ~von Lepel~, Über d. Verhalt. v. Fruchtsäft. verschied. Alters gegen Reagent. Zeitschr. anal. Chem. 1880. -- ~Schmid~, Zeitschr. f. Unters. d. Nahr.- u. Genußm. 1901. -- ~Desmoulière~, De la presence norm. d’acide salicylique dans div. subst. aliment. d’orig. végét. Thèse. Paris 1902 und Journ. pharm. chim. 19 (1904). -- ~Norton~, Amer. Chem. Soc. 1909. -- ~König~ a. a. O. -- ~Moeller-Winton~ a. a. O. -- Entwicklungsgesch. von Frucht u. Same bei _Prunus cerasifera_ in ~Copper~, Beitr. z. Entwicklungsgesch. offiz. Samen u. Fr. Dissertation Bern 1909. Fructus Mori. =Syn.= Maulbeeren -- mûre, mûres noires (franz.) -- mulberry (engl.) -- more (ital.) -- moerbezie (holl.) -- μῶρον oder συκάμινον (n.griech.). Bei ~Megenberg~ Maulper, im +mhd.+ auch: Mulbaum, Muleberban und Mulbeire, sowie dubere, dusbere, suazbere. =Etym.= Daß μόρος, μῶρον von μέρος = Teil (d. h. aus vielen Teilen zusammengesetzte Sammelfrucht) oder von μῶρος = unschmackhaft, fade abzuleiten wäre, erscheint mir unwahrscheinlich. Einleuchtender ist mir die Ableitung von μαυρός dunkelfarbig (+kelt.+ mor = schwarz), ein Ausdruck, der auch auf die Brombeere weist, die vielfach mit der schwarzen Maulbeere zusammengeworfen wurde. Das griechische μῶρον und lateinische môrum Maulbeere geht allmählich in mor, mori, moreni, Brombeere über. Der Stamm mor kehrt dann wieder in +ahd.+: Môrperi, murperi, murpoum, +mhd.+: morber. -- Maulbeere aus dem Lateinischen umgebildet. =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Morus nigra= L. -- Moraceae -- Moroideae -- Moreae. =Beschreibung.= Der Baum wächst wild angeblich im nördlichen Kleinasien, Armenien, Südkaukasus bis Persien. Der schwarze Maulbeerbaum ist unzweifelhaft wild in Süd-Transkaukasien und wohl auch in einigen persischen Provinzen zu treffen. Nach Europa kam er ungefähr zur Zeit der attischen Tragiker (~Hehn~). In Italien wurde er bis zur Einführung des weißen Maulbeerbaumes (c. 1434) zur Seidenraupenzucht benutzt. Jetzt dort verwildert. Er wird jetzt auch nördlich der Alpen kultiviert. Die Früchte reifen noch in Gotland, Schweden und England. Die Alten warfen ihn vielfach mit der Sykomore zusammen. Die Maulbeere ist eine +Scheinfrucht+. Sie ist entstanden aus dem scheinährenförmigen weiblichen Blütenstande durch Auswachsen und Fleischigwerden der vierblätterigen Blütenhüllen (Perigone), die als saftige Fruchthülle die Früchte (Nüßchen) umhüllen und Scheinfrüchtchen bilden. Diese Scheinfrüchtchen treten zu einer eirunden, etwa 2 cm langen, fast schwarzen, mit purpurfarbigen, säuerlich-süßen Safte erfüllten Scheinfrucht zusammen, die also ein Fruchtstand ist. Die Maulbeere ist etwa 2½ cm lang. Die einzelnen Früchtchen, bei denen man noch deutlich an der Spitze den vierstrahligen Spalt und die vier Perigonblätter bemerkt, messen 2-3 mm. Die der Himbeere äußerlich ähnlichen Früchte schmecken nur, wenn sie ganz reif sind, halten sich dann aber nur kurze Zeit. [Illustration: Fig. 24. _Morus alba._ A ♀ Blütenstand. B. Fruchtstand. [Nach +Baillon+.]] =Pathologie.= Über die Schädlinge berichtet ~Israël~: Falter: Die in Deutschland noch in der Umgebung vieler Städte (in Gärten, Parks auch als Alleebäume) anzutreffenden Maulbeerbäume stammen aus einer Zeit, als man die Zucht der Seidenraupe auch nach Deutschland zu verpflanzen trachtete. Die Blätter dieser Bäume sind die Hauptnahrung für die Seidenraupe, die Larve des Spinners _Bombyx mori_. In der Gefangenschaft läßt sie sich auch mit den Blättern von _Scorzonera hispanica_ erziehen. Sonst leben gelegentlich auf _Morus_arten die Raupen von _Acronycta aceris_ L. _Smerinthus tiliae_ L.: Die Zucht der letzteren ergab oft die braune Varietät. _Cossus ligniperda_ F. (_Cossus cossus_ L.): Diese große Holzraupe fand ich bei Hanau am Main in dem Holze von Wurzeln und Stämmen gefällter Maulbeerbäume. (Sonst lebt diese sehr schädliche Raupe meist in den Stämmen von Weiden, Pappeln, Eichen, Birnen, Äpfeln, Kirschen und anderen Laubhölzern.) =Chemie.= Frische Maulbeeren enthalten 84,71% Wasser, 9,19% +Invertzucker+, 1,86% +freie Säure+ (auf Apfelsäure berechnet), c. 2% Pektinstoffe, 0,57% Asche (~van Hees~ 1857). In der Trockensubstanz finden sich 60,10% Zucker. Die Maulbeere ist also eine der zuckerreichsten Früchte. Maulbeeren enthalten auch eine sehr kleine Menge Salicylsäuremethylester (~Desmoulière~). Auch aus den Maulbeeren wurde, wie den Holunderbeeren (s. d.), den Wacholderbeeren (s. d.) und den Möhrenwurzeln ein +Roob+ (Rob, Rubb) bereitet, der unter dem Namen Rob mororum baccarum bekannt war. Der Sir. Mori ist hauptsächlich Geschmackskorrigens. In Griechenland wird aus Maulbeeren ein berauschendes Getränk dargestellt. =Geschichte.= Der Maulbeerbaum wird von den alten Schriftstellern erwähnt und war z. B. den alten Juden bekannt. Maulbeeren (tut) werden von ~Ben Sira~ auch unter den Pflanzen des königlichen Gartens des ~Nebukadnezar~ aufgeführt (~J. Löw~). μορέα bei ~Dioskurides~ (I. Kap. 180) ist _Morus nigra_ und _alba_ (συκμόμορον war die Sycomore). Bei ~Theophrast~ hat Maulbeerbaum und Sycomore den gleichen Namen. Die schwarzen Maulbeeren finden sich bei ~Hippokrates~ (de victus ratione lib. II). Maulbeere heißt bei ~Aeschylos~ μόρον. ~Diodor~ unterscheidet den maulbeeren- von dem feigentragenden συκάμινος. Im Mittelalter wird der Maulbeerbaum zum Unterschiede von dem Brombeerbusch wohl mora celsa oder sycomorus celsa (Baumbrombeere) oder einfach celsa (celsus) genannt, die Früchte mora celsi. Bei ~Ibn Baithar~ heißt er tuth. Er findet sich auch in ~Karls~ Capitulare (I, S. 620) sowie im St. Galler Klosterplan (I, S. 622) als murarius, und dem Kalender des ~Harib~ aus dem Jahre 961 (I, S. 612) -- Sir. de moris wurde im Juni bereitet --. Dann im Brevis de Melle des Klosters Corbie u. and. Bei der ~Hildegard~ (I, S. 670) heißt er mulbaum, mulberbaum. In der Alphita steht: ~Celsus~, sicaminum, bei ~Serapion~: mora celsi, tut (I, S. 644). Der Succus mororum de arbore ist Maulbeersaft. =Lit.= ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Vogl~, Nahrungs- und Genußm. -- ~Fresenius~, Ann. Chem. pharm. 101. -- ~König~ a. a. O. -- ~Moeller-Winton~ a. a. O. -- Abbild. in ~Bentley~ and ~Trimen~. -- Über _Morus alba tartarica_ (Russian Mulberry) vgl. U. St. Dep. Agr. Forest. Divis. 1907 Circ. 83. b) Drogen, die Sorbit enthalten. Das Reduktionsprodukt der d-Glukose ist der d-Sorbit: OH H OH OH CH₂OH--C--C--C--C--CH₂OH, H OH H H der sich in den Beeren von _Sorbus aucuparia_ findet -- neben der verwandten H OH H +d-Sorbose+: CH₂OH--CO--C--C--C--CH₂OH. OH H OH Sorbit ist bisher nur in Pomoideen, Prunoideen und Spiraeoideen gefunden worden (z. B. _Pirus commun._, _P. Malus_, _Mespilus germanic._, _Prunus Cerasus_, _P. domestica_, _P. persica_, _P. armeniaca_, _P. Laurocerasus_). Nur Pflanzen dieser Familien besitzen die Fähigkeit, aus Sorbit Stärke zu bilden (~Treboux~). Der Chirkhestit (s. _Schir-kist-Manna_) der Pomacee _Cotoneaster nummularia_ ist wohl auch Sorbit. c) Drogen, die Glukuronsäure enthalten. An die Glukose schließt sich die zugehörige Säure, die Glukuronsäure, deren Beziehungen zur Glukose durch Vergleich der folgenden Formeln ersichtlich ist: OH H OH OH d-Glukose: COH--C--C--C--C--CH₂OH, H OH H H OH H OH OH Glukuronsäure: COH--C--C--C--C--COOH. H OH H H (An diese schließt sich dann die beim Behandeln der d-Glukose mit Salpetersäure entstehende d-Zuckersäure: OH H OH OH COOH--C--C--C--C--COOH.) H OH H H Freie Glukuronsäure, die der Tierkörper oftmals bildet, ist in Drogen oder Heilpflanzen bisher nicht gefunden worden. Auch gebundene war bis vor Kurzem in Pflanzen nicht bekannt. Denn die Euxanthinsäure, die sich im Jaune indien (Indian Yellow, Piuri, Purree, Indischgelb), einem in Indien viel benutzten Farbstoffe, findet, ist kein rein pflanzliches Produkt. Er wird aus dem Harn von Kühen dargestellt, die mit Mangoblättern gefüttert wurden. Er besteht aus dem Glukuronsäure-Euxanthonäther resp. dem Calcium-Magnesiumsalze desselben. Das Euxanthon entstammt der Pflanze, die Glukuronsäure dem tierischen Organismus, der die Fähigkeit besitzt, eingeführte Phenole durch Paarung mit Glukuronsäure zu verestern und durch den Harn fortzuschaffen. Die Glukuronsäure ist im Pflanzenreich zuerst im Süßholz aufgefunden worden (1907 ~Tschirch~ mit ~Cederberg~ und ~Gauchmann~), sie scheint aber auch in Algen, z. B. _Laminaria_, vorzukommen (~Tollens~). Neuerdings (1910) zeigte ~Goldschmiedt~, daß auch das +Scutellarin+, das ~Molisch~ in _Scutellaria_ und anderen Labiaten fand, ein Glukuronsäureester ist. Eine gute Reaktion auf Glukuronsäure ist die von ~Tollens~ mit Naphtoresorcin (Ber. d. chem. Ges. 1908, 1788): es entsteht ein ätherlöslicher, rotvioletter Farbstoff, dessen Spektrum ein Band bei D zeigt. Diese Reaktion unterscheidet die Glukuronsäure von den Pentosen, mit denen sie sonst manche Reaktionen teilt (z. B. die mit Orcin- und Phoroglucinsalzsäure). Mit α-Naphthol und konz. Schwefelsäure gibt Glukuronsäure und ihre Verbindungen eine smaragdgrüne Färbung, die durch allmählichen Zusatz von Wasser in Blau und Violett übergeht. (~Guido Goldschmiedt~, Eine neue Reaktion auf Glukuronsäure. Zeitschr. phys. Chem. 65 [1910] 389). Glukuronsäure liefert bei der Destillation mit HCl Furfurol. Die Glukuronsäure ist flüssig und schmeckt sauer, aber ihr kristallisierendes Anhydrid (Lakton): OH H OH OH CHO--C--C--C--C--CO, H \ H H / \ / \ / O schmeckt süß. Rad. liquiritiae. =Syn.= Rad. glycyrrhizae, Süßholz, Süßholzwurzel, Lakrizwurzel -- bois ou racine de réglisse (franz.) -- liquorice root (engl.) -- legno dolce, liquirizia, regolizia (ital.) -- zoethout (holl.) -- lakritsi juuri (finn.) -- edesgyökév (ung.) -- γλυκύρριζα (n.-gr.). Bei ~Theophrast~: γλυκεῖα ἡ σκυθική (russisches Süßholz), bei ~Dioskurides~: γλυκυῤῥίζη (D. führt noch folgende Namen an: Glyceraton, Symphyton, Leontica, Glycophyton, Scythion, Adipson, Sylithra, Lybiestason, Omoeomoeon, Penthaomoeon), bei ~Plinius~, ~Celsus~ u. and.: Radix dulcis. ~Galens~ Glykyrrhiza war wohl _Gl. glandulifera_, des ~Scribonius Largus~(I, S. 577): Glycyrrhiza war wohl _G. glabra_; im Liber medicinalis von St. Gallen (IX. Jahrh.): gliquiritia. Die spätlateinische Form liquiritia tritt wohl zuerst im IV. Jahrh. bei ~Theodorus Priscianus~ (in De diaeta cap. 9), dann auch bei ~Vegetius Renatus~ (I, S. 591) auf. Sie findet sich z. B. bei +Otho Cremonensis+. In ~Isidor~s Etymologicon (I, S. 592): ligusicium, liguricium, bei ~Hildegard~ (I, S. 668) liquiricium (Hunigwurz); im Gothaer Arzneibuch (I, S. 679): lacrisse, lacrissen, lacrissyen, lakerissien, lecritzen; im Tegernseer Arzneibuch (I, S. 678): liquiricii; bei ~Harpestreng~ (I, S. 684): lyquericia, lykrissa, lykriz, lakriz. In mittelengl. Medizinbüchern des XIV. Jahrh.: licoris, in Meddygon Myddfai 683: licraz (lacris ist die vallonische Form). Altfranzösisch: requelice, recolice, recalisse. In der Taxe von Ferrara von 1424 (I, S. 811) findet sich Requelizia, in ~Saladin~s Compendium: Rad. lyquyrrhizae. In dem Inventar von ~Lefort~ 1439 (I, S. 805) steht rigalice. In der Frankfurter Liste 1450: liqworicic. Auch die volksetymologischen Umbildungen Lackaricie, Lackeritze, Lackritze, Leckerici, Leckwariz, Licritz, Lickweritzie, Lukretia (!), Luquatze, Lichtkritz finden sich. In der +Alphita+ (I, S. 652), +Circa instans+ und den +Tabulae+, sowie bei ~Simon Januensis~ (I, S. 664): liquiritia, gliceria, glacoria, bei ~Serapion~, ~Najm Ad-Dyn Mahmud~ und ~Ibn Baithar~ (I, S. 611) auch sūs (sous), in den +Sinonoma+ (I, S. 639): glicoricia, glicida (hier mit Paeonia offic. [Glycysida bei ~Scribonius~] zusammengeworfen). Die Synonymie der Patres bei ~Schröder~ (I, S. 891), wo sich auch der Name Galissienhout findet. -- hind.: mulhatti, jethimahd -- sanscr.: madhuka (= Süßholz), yashti madhu (= Süßstengel) -- arab.: aslussús, aslus-sûs (= Süßwurzel) -- pers.: bikhe-mahak. shîrin bagân, urâk dâr haram (auch glikiriza ~Leclerc~); -- chin.: kau-tsʿau (kao tsao, kom tso), kao = Leim, Pflanzenharz, tsao = Kraut. =Etym.= Das Stammwort für alle Namen ist γληκυρῥίζη (von γλυκύς = süß und ῥίζα = Wurzel). Aus diesem Worte ist das latino-barbarische liquiritia, in all’ seinen zahlreichen Umformungen (vgl. auch I, S. 1060) lakriz, reglisse etc. entstanden. Das sanskritische madhu bedeutet ebenfalls Süßigkeit, süß. Es kehrt beim Honig (S. 8) und Met (I, S. 1016) und den Bassiablüten (S. 23) wieder. =Stammpflanze. Glycyrrhiza glabra= L. (G. laevis ~Pall.~, Liquiritia officinalis ~Moench~). =Systematische Stellung.= +Leguminosae+, +Papilionatae+ -- Galegeae -- Astragalinae, Sect. Euglycyrrhiza. =Beschreibung der Stammpflanze.= Die Pflanze bildet einfache Stengel, eine oft gewaltige Wurzel und zahlreiche Ausläufer. Die Blätter sind unpaarig gefiedert, vielpaarig, mit eioblongen, stumpflichen, an der Spitze meist etwas ausgerandeten, kurz stachelspitzigen, oberseits kahlen, unterseits schwach drüsigen und sonst kahlen oder behaarten kurzgestielten Blättchen. Die gestielten Trauben sind kürzer als die Blätter, sie sind später locker. Der Kelch ist röhrenförmig fast bis zur Hälfte in pfriemliche Zipfel geteilt. Die Fahne ist lineal-oblong, nur wenig aufwärts gekrümmt. Von den zehn geraden Staubfäden sind neun beinahe bis zur Hälfte in eine oben geschlitzte Röhre verwachsen, aber auch das zehnte hängt am Grunde mit dieser zusammen. Der Fruchtknoten enthält 6-8 campylotrope Ovula. Die gerade Hülse ist in eine Stachelspitze ausgezogen. _Glycyrrhiza glabra_ ist durch Südeuropa bis Mittelasien verbreitet. Sie variiert sehr nach dem Standort und bildet zahlreiche Varietäten und Wuchsformen. Es werden von ihr jetzt (nach ~Boissier~) folgende Varietäten unterschieden, die zum Teil früher als Arten gingen: α) _typica_ Reg. et Herd. (_G. glabra_ Aut.), ziemlich kahl, Kelchzähne linealisch-pfriemlich, so lang wie die Röhre, Fahne bläulich, Hülse kahl, drei-sechssamig; in Südeuropa, Mittelmeerländer, Kleinasien, Krim, kaukasisch-kaspisches Gebiet, Syrien, Nordpersien, Turkestan, Afghanistan. β) _violacea_ Boiss., ziemlich kahl; Blättchen kleiner, elliptisch, Kelchzähne breiter, pfriemlich, etwas kürzer als die Röhre, Fahne violett, Hülse kahl, etwas schmäler, vier-siebensamig; im Euphrat- und Tigrisgebiet, Babylonien, Assyrien. γ) _glandulifera_ Reg. et Herd. (_G. glandulifera_ W. K.; _G. hirsuta_ Pall.; _G. brachycarpa_ Boiss.), niedriger. Stengel behaart oder etwas rauh; Fahne violett, Hülsen zerstreut oder dichter stachelig, +drüsig+, bald mehr-, bald wenigsamig. In Südost-Europa (Ungarn, Galizien), Westasien (mittlere und südliche russische Gouvernemente), bis Turkestan und Afghanistan, Süd-Sibirien, Tschugarei, China bis zur großen Mauer. δ) _pallida_ Boiss., Stengel angepreßt und kraus kurzhaarig; Kelchzähne schmal pfriemlich bis doppelt so lang wie die Röhre; Fahne rötlich weiß. In Assyrien. Auch die als _G. asperrima_ (Linn. f. suppl. 330) bezeichnete Art, die «in arenosis et collibus inter Wolgam et Jaicum, in deserto Tatarico ad fl. Karaman, in mont. Uralens. et ad lacum Inderiensem» angegeben wird (~De Candolle~, Prodrom. II, 248), ist wohl ebenso wie die mit ungenügender Diagnose in ~De Candolles~ Prodromos veröffentlichte _G. uralensis_ (~Fisch.~ in litt.) vom Ural nur eine Varietät von _glabra_. Früher wurde ja auch _glandulifera_ als besondere Art betrachtet (_G. glandulifera_ Waldst. et Kit. Pl. Rar. Hung. I. 20 t. 21). ~Regel~ und ~Herder~ sind nicht dieser Ansicht, wollen aber doch wenigstens _asperrima_ und _uralensis_ vereinigen. Sie beschreiben von _Gl. glabra_ folgende Varietäten: α _typica_, β _asperula_, γ _hispidula_, δ _glandulifera_ (= _Gl. glandulifera_ Waldst. et Kit., _G. glandulifera._ Boiss. et Buhse), ε _echinata_, ζ _tuberculata_, -- von _G. asperrima_: α _uralensis_, β _desertorum_, γ _sutinermis_, δ _intermedia_, ε _glabra_, ζ _typica_. Jedenfalls steht _G. uralensis_ der _glabra_, besonders der Varietät _glandulifera_ sehr nahe, denn ~Ledebour~ nennt sie in seiner Flora rossica: _G. glandulifera_ β _grandiflora_ und auch _G. glandulifera_ Kar. et Kir. ist synonym damit. Sie findet sich «in Sibirica uralensi, in Sibiria altaica, in Dahuria, in Mongolia chinensi, in desertis soongoro-kirghisicis», geht also, da _Gl. glabra_ β _glandulifera_ als «in Hungaria, in provinciis caucasicis et transcaucasicis, in desertis soorgoro-kirghisicis volgensibusque» angegeben wird, weiter nach Norden und Osten. ~Ascherson~ und ~Graebner~ stellen in ihrer Synopsis _G. glandulifera_ wieder als Art der _G. glabra_ gegenüber. Dagegen ist die in Apulien und der Tartarei heimische _Glycyrrhiza echinata_ (Linn. spec. 1046, Abbild. in ~Berg-Schmidt~, Atlas, I. Aufl.) sicher als eine gute Art anzusprechen. Sie bildet keine Ausläufer und ihre Wurzel ist nicht gelb und nicht süß. Sie kann daher kein Süßholz liefern. Trotzdem zum Überfluß 1887 ~Becker~ (in den Bull. Soc. imp. d. natural. Moscou) nachwies, daß sie in der Tat kein Süßholz gibt (vgl. auch ~Flückiger~, Pharmakognosie III), wird sie auch noch in neueren Werken (z. B. ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam., ~Ascherson-Gräbner~, Synopsis) immer wieder als Stammpflanze des russischen Süßholz aufgeführt. Sie ist wohl die _Glycyrrhiza_ des ~Dioskurides~, der die Wurzel als ὑπόστρυφνος (etwas herb) bezeichnet, die oberirdischen Teile aber eher wie bei _glandulifera_ und _glabra_ beschreibt. Die Konfusion beginnt also bereits hier. _Glycyrrhiza glabra_ ist eine etwa mannshohe (1-2 m) Staude mit einem riesigen, viele Quadratmeter bedeckenden Systeme von Wurzeln und Ausläufern (vgl. die Abbild. in I, S. 324), die auch oberirdisch, wenn sie ungehindert wachsen kann, zu einem wahren Dickicht werden kann. Wie schwer es ist, eine ganze Pflanze mit allen ihren nicht selten 8 m langen Ausläufern aus dem Boden zu graben, zeigt die von ~Weigand~ mitgeteilte Sitte, daß die Gärtnerzunft von Bamberg ehedem als Meisterstück von den Gesellen verlangte, daß sie eine Süßholzpflanze mit allen Wurzeln und Ausläufern unversehrt aus dem Boden graben mußten (~Flückiger~). Wenn man sie sich selbst überläßt, okkupiert sie bald weite Strecken. Auf Kreta, in Kleinasien und nördlich vom Kaukasus ist sie z. B. ein lästiges Unkraut, auch in Sicilien, wo Süßholz wild im Simetotal (bei Catania) wächst und in Calabrien, wo man sie in der pianura di Sibari im Flußtal des Crati nördlich von Corigliano und Rossano findet (~Ravasini~). An den feinen Nebenwurzeln finden sich Wurzelknöllchen (~Tschirch~) wie bei so vielen Papilionaceen. _G. glabra_ wächst noch auf Sandboden, verlangt aber reichliche Bewässerung, gedeiht also am besten an Flußufern, in trockenen Flußbetten oder im Überschwemmungsgebiet. Und so treffen wir denn sowohl das wildwachsende Süßholz, wie auch die Kulturen fast ausschließlich in Flußtälern: am Guadalquivir, am Ebro, am Mäander, am Ural und an der Wolga, am Amu Darja und im Euphrat-Tigristale. Wir dürfen jetzt wohl annehmen, daß das spanische und italienische Süßholz (wie überhaupt das europäische) von _Glycyrrhiza glabra_ L. α. _typica_ ~Reg.~ et ~Herd.~, das russische von _Glycyrrhiza glabra_ L. γ. _glandulifera_ ~Reg.~ et ~Herd.~, das mesopotamische von _Glycyrrhiza glabra_ L. β. _violacea_ ~Boiss.~ und das chinesische von _Glycyrrhiza asperrima_ L. fil. α. _uralensis_ ~Boiss.~ (_G. uralensis_ ~Fisch.~) abstammt. Ob letztere auch das Uralsüßholz liefert, ist sehr zweifelhaft (s. unten). Ich glaube es nicht. Auch ~Holmes~ hält (1910) die Stammpflanze für die gleiche wie die des russischen Süßholz. =Lit.= ~Linné~, Spec. pl. ed. I 742. -- Abbild. in ~Berg-Schmidt~, Atlas, Taf. 55 (dort auch die florist.-Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. Taf. 135. -- ~Bentley-Trimen~, Medicin. plants. und zahlreichen anderen Abbildungswerken. -- ~Boissier~, Flora orientalis II, 202. -- ~Regel~ und ~Herder~, Enumer. plant. in regionibus cis- et transiliensibus etc. Bull. soc. imp. d. naturalistes de Moscou 1866. II 527. -- ~Sestini~, Gazetta chimic. italian. 1878. -- ~Whitmann~, Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1886. -- ~Bunge~, Enumerat. plant. quae in China boreali colleg. Petrop. 1831. -- ~Bretscheider~, Bull. Roy. Kew Gardens 1896. -- ~Aitchison~, Some plants of Afghanistan. Pharm. Journ. 1886, 465. -- ~Kowalew~, Diss. Petersb. (Chem. Z. 1907. Rep. 589). -- ~Tschirch~, Artikel Glycyrrhiza in Realenzyklop. d. Pharm. V, 706. =Pathologie.= Prof. ~Ed. Fischer~ berichtet über die Schädlinge: _Glycyrrhiza glabra_ wird von einer Uredinee _Uromyces Glycyrrhizae_ (~Rabh.~) ~Magnus~ befallen, deren Mycel ganze Sprosse durchzieht und an der Unterseite der Blätter Uredolager produziert. Aus dieser Form des Auftretens ist zu schließen, daß das Mycel im Rhizom perenniert (s. ~P. Magnus~, Über das Auftreten eines _Uromyces_ auf _Glycyrrhiza_ in der alten und in der neuen Welt. Berichte der deutschen botan. Gesellschaft 1890). Im Süßholz des Handels findet sich bisweilen die Mehlmotte _Pyralis farinalis_. =Kultur und Ernte.= _Glycyrrhiza glabra_ α. _typica_ wird vornehmlich in Spanien und in Italien kultiviert. Spanien exportiert Süßholz, Italien verarbeitet das meiste auf Succus. Die spanischen Kulturen liegen besonders im Tal des Ebro und Guadalquivir bei Alicante, Tortosa, Barcelona, Cordóba, Elche (s. auch Handelssorten). In Spanien ist Süßholz auch vielfach verwildert zu finden. Die italienischen Kulturen finden sich besonders in Calabrien, dann in Atri bei Teramo, in Abruzzo ulteriore primo und auf Sicilien, besonders im Süden (Caltanisetta). Bei Catania wird auch wildwachsendes Süßholz auf Succus verarbeitet. Südfrankreich baut auch etwas Süßholz. Dann England: Surrey (Mitcham), Yorkshire (Pontefract, Nottingley), bei London: Kew, Isleworth, aber lange nicht genug für den eigenen Bedarf. In Österreich bestehen Kulturen bei Auspitz in Mähren und in einigen ungarischen Distrikten, z. B. bei Sassin (Komitat Neutra). Unbedeutend ist die Kultur bei Bamberg, einem Orte, bei dem seit alter Zeit (vgl. I, S. 32) Süßholz gebaut wurde, das ehedem einen vortrefflichen Ruf genoß, dann bei Schweinfurt (Schwebheim). Apotheker ~Kraft~ in Bamberg berichtet mir darüber (1910): «Der Süßholzbau im Bamberger Flurbezirk ist auf einige wenige kleine Parzellen zurückgegangen, deren Erträgnis ungeschnitten in kleine Bündel verflochten am Gemüsemarkt zum Verkauf kommt. Kommerzielle Bedeutung hat der Anbau in der Gegenwart, welche ich aber auf beinahe 25 Jahre ausgedehnt wissen will, denn so lange beobachte ich das selbst, nicht.» Im XVI. Jahrh. lieferte Bamberg den ganzen Bedarf Deutschlands. Kleinasien kultiviert bei Smyrna und Sokia etwas Süßholz. Das meiste wird aber von wildwachsenden Pflanzen gesammelt, da sich die Pflanze im Innern von Kleinasien in großer Masse findet, wild z. B. im Mäander- und Hermustal. Man sieht oft weite Strecken des Bodens östlich von Smyrna ganz durchwühlt (~Kannenberg~). In Syrien bestehen Kulturen nur in der Umgegend von Antiochia (seit 1865). Hier, wie in Kleinasien, scheint es sich ebenfalls um _G. glabra_ zu handeln, da die Droge der spanischen ähnelt. Man sammelt in Kleinasien vom Oktober an. Am Abend liefern die Bauern das gesammelte Süßholz in die Depots. Dort bleibt die Wurzel bis zum Mai oder Juni und nimmt hierbei um 50% ab. Es wird dann entweder unsortiert in hydraulisch gepreßten Vals à 220 pounds (besonders nach Nordamerika) versandt, oder in debris und bagettet sortiert und in Säcken à 300-330 pounds (besonders nach Frankreich) exportiert (~Harris~ 1909). Über die Kulturen in Rußland vgl. unter Handelssorten. In Nordamerika sind neuerdings erfolgreiche Anbauversuche mit _Gl. glabra_ gemacht worden (I, S. 72), wesentlich auf Empfehlung von ~Rittenhouse~ (Amer. journ. ph. 1895 und 1897), der 1895 selbst mit der Kultur in New Jersey, Pennsylvania, Louisiana und Florida begann. Auch Kalifornien kultiviert etwas. In den Kulturen blüht _Glyc. glabra_ selten, und wenn sie blüht, bildet sie nur wenige oder keine Samen. Man vermehrt das Süßholz nicht durch Samen, sondern durch Knospen (buds) und Ausläufer (runner), die in England z. B. Anfang April gesetzt werden. Zwischen den Pflanzreihen werden dort Gräben gezogen, die ein leichtes Ausheben des ganzen Ausläufersystems ermöglichen. In den ersten Jahren werden in England Kartoffeln und Kohl dazwischen gepflanzt. In Mischkultur (mit Weizen, Erbsen, Mais) befindet sich das Süßholz auch bisweilen in Calabrien. Die besten Wurzeln und Ausläufer werden nach 3-4 Jahren erhalten. In England erntet man im September, in Spanien vom September bis März, in Syrien beginnt die Ernte im November. Ernte pro Hektar: c. 1000 kg. Das Süßholz leidet nicht von Parasiten und verträgt Frost gut. Bei der Ernte bedient man sich des Pfluges. Sie ist nicht leicht, denn nach 5-6 Jahren können die Wurzeln eine Dicke von 2 dm, die Ausläufer eine Länge von 8 m erreichen. Die Pflanze läßt sich leicht durch die Ausläufer, die auch zum Teil im Boden bleiben, vermehren. Sie ist sehr dankbar und anspruchslos. In England steckt man die Ausläufer senkrecht in den Boden. Die Wurzeln werden in den Produktionsländern nach dem Graben und vor dem Trocknen zunächst auf Haufen geschichtet und machen, wie es scheint, hierbei eine Gärung durch, die ihnen eine schöne Farbe verleiht. Die geernteten Ausläufer und Wurzeln werden gewaschen, geputzt und meist auch durch oberflächliches Abschaben von den Nebenwurzeln befreit. Das Schälen (s. russisches Süßholz) geschieht am Produktionsorte und in den Handelszentren (z. B. in Hamburg). =Lit.= Kultur in Italien: ~Sestini~, Gazz. chim. ital. 1878. -- England: Pharmakographia, Jahresber. d. Pharm. 1894, 156 und ~Whitmann~, Zeitschr. Öster. Apoth. Ver. 1886, 277. -- Kleinasien: Jahresb. d. Ph. 1884, 268, ~Kannenberg~, Kleinasiens Naturschätze und ~Nickum~, Am. J. pharm. 1895, 306. -- Syrien: Pharm. Zeit. 1886, 129. -- Rußland: Pharm. Journ. 1889, 613 u. and. (vgl. unter Handelssorten). -- Österreich: ~Gawalowski~, Pharm. Post 1901. -- Amerika: Am. journ. pharm. 95 und 1896, 636 u. Proc. am. ph. ass. 1895, 865. -- New South Wales: Am. journ. ph. 1897. -- Neuseeland: Arch. Pharm. 1883, 854. -- Deutschland: ~Hartwich~, Historisches über die Kultur von Arzneipflanzen. Schweiz. Wochenschr. 1893, 441. -- ~Tschirch~, Anbau der Arzneigew. in Deutschl. Arch. Ph. 1890. =Handelssorten.= 1. +Russisches+ S. Bis 1870 genügte die Produktion Spaniens, dann erschien zuerst Südrußland (speziell die nördlich vom Kaukasus gelegenen Länder), dessen Süßholz seit Anfang des XIX. Jahrh. in Deutschland bekannt war, dann Kleinasien (besonders Anatolien) auf dem Platz. Jetzt beherrscht seit 1908 das +Uralsüßholz+ vom Ural und den benachbarten Steppen den deutschen Handel, das schon 1889 von dem +kaukasischen+ unterschieden und diesem gegenübergestellt wurde. Der Geschmack des Uralsüßholz ist intensiv und rein süß, während das Kaukasussüßholz schwach und unangenehm süßlich schmeckt (~Caesar~ u. ~Loretz~). Die Ernte bewegte sich zwischen 10- und 15000 Pud (1907). An den Ufern des Ural, an denen _Glycyrrhiza_ in großen Mengen wächst, wird übrigens schon seit langem Süßholz gesammelt, vor 25 Jahren so viel, daß damals die Regierung das Graben einschränken, bzw. ganz verbieten mußte. Das +russische Uralsüßholz+ ist zurzeit das beste, und doppelt so teuer als Alicante. Es kommt in gut mundierter (einfach und doppelt geschälter), schön gelber Ware in Ballen, à 70, 90, 110 und 120 kg in den Handel, wird auf der großen Messe in Nischni-Nowgorod gehandelt und gelangt über Moskau und Petersburg nach Hamburg. Auch die beim Schälen und Nachschälen abfallenden, sehr billigen «Schnitzel» sind Handelsartikel (Ballen à 140 kg) und werden viel auf _Succus_ verarbeitet. Der Großhandel unterscheidet einfach und doppelt mundiertes S. [Illustration: Fig. 25. _Rad. liquiritiae ross._ «peeled». [+Wright Layman+ and +Umney+ phot.] [Vgl. auch +Greenish+, Textbook.]] Angeblich sollte das Uralsüßholz von _Glycyrrhiza uralensis_ ~Fisch.~ (_Gl. asperrima_ L., fil. α _uralensis_ ~Reg.~ et ~Herd.~, _G. glandulifera_ β _grandiflora_ ~Ledeb.~, _G. glandulifera_ ~Kar.~ et ~Kir.~) stammen, dessen einheimischer Name Chuntschir ist. Das von dieser Pflanze gesammelte Süßholz soll (nach ~Kowalew~) pharmakognostisch von dem spanischen und russischen abweichen und im Glycyrrhizingehalt zwischen beiden stehen. Das im Herbst gesammelte ist glycyrrhizinreicher als das im Sommer geerntete. Es ist mir jedoch fraglich, ob das Uralsüßholz von dieser Pflanze stammt und nicht vielmehr ebenfalls von der naheverwandten _Glycyrrhiza glabra_ γ _glandulifera_ ~Reg.~ et ~Herd.~, der bis vor kurzem allein als Stammpflanze des russischen Süßholz in Betracht kommenden Pflanze. Diese letztere wurde in ziemlich umfangreichem Maße auf den Inseln des Wolgadeltas und bei Sarepta kultiviert und die Droge über Astrachan nach Moskau gebracht. Dann wurden in den achtziger Jahren des XIX. Jahrh. Kulturen auch bei Batum am Schwarzen Meer angelegt und Liakha (Distrikt Elisabethpol) wurde Hauptstapelplatz für +kaukasisches Süßholz+. Aber die Pflanze findet sich auch wildwachsend sowohl in Ciskaukasien im Gebiete des Kuma und Terek und im Dagesthangebiet wie auch in Transkaukasien, besonders im Gouvernement Elisabethpol (früher. tartarisches Khanat Gandscha) zwischen Tiflis und Batum. Die Ernte im Kaukasus beträgt oft 11000 t und mehr. ~Rosenberg~ berichtete mir 1907, daß in Transkaukasien das Einsammeln der Wurzeln von den wildwachsenden Pflanzen ausschließlich durch zum Teil noch nomadisierende Tartaren betrieben werde und daß der Süßholzhandel dort durch feste Verträge mit den Aoulältesten von den Engländern monopolisiert sei, die viel Süßholz (zur Porter- und Alefabrikation) über die Häfen am Schwarzen Meer (Batum, Poti, Noworossiisk) nach England exportieren und auch in Elisabethpol eine _Succus_fabrik angelegt haben. Die Wurzel wird mittelst hydraulischer Pressen zu großen rechteckigen Ballen gepreßt, die mit 8-10 eisernen Reifen umgeben werden (Fig. 26). Die extrahierte Wurzel wird als Feuerungsmaterial benutzt, die Asche auf Pottasche verarbeitet. Die erste russische _Succus_fabrik im Kaukasus legte Anfang der neunziger Jahre ein Deutscher (~Peters~) in Tiflis an. Die von ihm eingeführte Marke «Sanitas» ist noch jetzt im Handel. [Illustration: Fig. 26. _Rad. liquiritiae ross._ «unpeeled». [+Wright Layman+ and +Umney+ phot.] [Vgl. auch +Greenish+, Textbook.]] Auch in Ciskaukasien kommt Süßholz massenhaft wild vor, namentlich im Überschwemmungsgebiete des Terek und Sulak. Dieses Land, das aus abwechselnden Vegetations- und Überschwemmungsschichten besteht, wird, wie mir ~Rosenberg~ berichtete, seit einigen Jahren von deutschen Kolonisten, meist Menonitengemeinden in Kultur genommen. Hier bildet die Pflanze mit ihren Ausläufern wahre Labyrinthe und es ist außerordentlich schwer sie ganz herauszubringen, um den Boden in Kultur zu nehmen. Man sieht dort auf den Feldern ganze Berge Süßholz, die, wenn die Handelskonjunktur ungünstig ist, einfach zu Feuerungszwecken benutzt werden. Der große Bedarf an Süßholz, den besonders die _Succus_fabriken neuerdings im Kaukasus haben, wird jetzt vornehmlich durch die Bucharei gedeckt, wo die Süßholzpflanze an beiden Seiten des Amu-Darja in großen Mengen wächst. Zentrum der Gewinnung ist die Stadt Tschardshui. Die Wurzel wird hier, nachdem sie nach dem Graben vorgetrocknet wurde, in großen Trockenanstalten fertig getrocknet und mittelst hydraulischer Pressen zu Ballen von 9-10 Pud gepreßt. Ein großer Teil der Wurzeln wird über Krassnowodsh und Batum nach England und Amerika ausgeführt. Die Ausfuhr betrug im Jahre 1909 über 600000 Pud. Rußland verbraucht übrigens viel Süßholz zum Einmachen der Früchte. Das russische Süßholz, das man in Bastmattenballen im Handel findet, ist meist geschält (Fig. 25), doch kommt auch ungeschältes vor (Fig. 26). 2. +Spanisches Süßholz.+ Das spanische Süßholz ist stets ungeschält und besteht nur aus den Ausläufern. Die beste Sorte ist +Tortosa+ (Catalonien) in Packleinewandballen à 24 Bunde à 5 kg (2 bouts 29/30 cm). Es bildet schön gewachsene, fast gleichdicke, im Querschnitt runde Stücke. Es ist zurzeit 1½ mal teurer als die zweite Sorte: +Alicante+, die in Säcken à 60 kg im Handel ist, bisweilen aber (z. B. 1909) fehlte. Die Händler machen einen Unterschied zwischen gelbem, rotem und braunem Süßholz. Das beste spanische Süßholz (Tortosa) kommt aus Aragonien und Catalonien, aus der Nähe des Ebro; das zweitbeste aus Córdoba (Andalusien), aus dem Tale des Guadalquivir, sowie aus Navarra und Alt-Castilien; geringere Sorten aus Alicante (Valencia). Hauptorte für den Export sind Sevilla, Alicante, Barcelona, Bilbao und Malaga. Zum Typus des spanischen Süßholzes gehören und auch von _G. glabra_ α. _typica_ stammen die übrigen europäischen Sorten. +Italien+ verarbeitet das Süßholz auf _Succus_ und exportiert wenig (vom Typus des spanischen). +Sicilianisches Süßholz+ war 1909 geschält, an der Sonne und im Ofen getrocknet, im englischen Handel. +Griechisches Süßholz+ war 1906 im deutschen Handel in Pack. à 60 und 150 kg zu finden. +Englisches Süßholz+ wird wenig exportiert. Es wird meist auf _Succus_ (Pontefract cakes) verarbeitet. Das gleiche gilt von dem +österreichischen+ (~Gawalowski~ 1906) und dem +südfranzösischen Süßholz+. Die übrigen Sorten sind ohne Bedeutung für den deutschen Handel. 3. +Kleinasiatisches Süßholz+ geht über Smyrna besonders nach Nord-Amerika, das 1909 mehr als die Hälfte seines Bedarfes, nämlich 53½ Mill. Pounds aus der asiatischen Türkei, einführte. Anatolische Wurzel steht betreffs der Süße zwischen spanischer und russischer. Sie kommt über Smyrna und ähnelt der spanischen. 4. +Syrisches Süßholz.+ Ausfuhrhafen für syrisches Süßholz sind Suedieh und Alexandrette. Dorthin wird die Wurzel auf Kamelen gebracht. Es ähnelt dem spanischen. 5. +Mesopotamisches+ und +persisches Süßholz+. Im Zweistromlande wächst viel Süßholz (_var. violacea_ und _pallida_), das meist an Ort und Stelle auf _Succus_ verarbeitet, aber auch exportiert wird (über die Häfen im persischen Golf). Persien exportiert viel besonders nach Indien, der Türkei, aber auch nach Europa. 6. +Australisches Süßholz.+ In +Neuseeland+ besteht seit Anfang der achtziger Jahre des XIX. Jahrh. eine Süßholzkultur und _Succus_fabrikation. In Australien (Neu Süd-Wales) gedeiht _Glycyrrhiza_ vorzüglich und das geerntete Süßholz ist gut (~Finzelbach~), aber noch nicht im Handel. 7. +Kalifornisches Süßholz.+ In geringer Menge seit 1896 im amerikanischen Handel (soll 14% Glycyrrhizin im Extrakt enthalten). 8. +Chinesisches Süßholz.+ China verbraucht große Mengen Süßholz. Ich traf es zierlich geschnitten in allen chinesischen Apotheken. Es ist dort nächst dem _Ginseng_ das meist benutzte Arzneimittel (~Simmonds~). Es gilt als ein Mittel sich jung und schön zu erhalten. In den europäischen Handel gelangt chinesisches Süßholz, das ungeschält ist und spanischem gleicht, nicht. Dieses chinesische Süßholz wird (mit mehr Recht wie das Uralsüßholz) von _G. uralensis_ ~Fisch.~ (s. oben S. 79, 80, 82) abgeleitet, da die Pflanze in Südsibirien, Ural, Turkestan und der Mongolei, sowie Tibet, also in chinesischen oder China benachbarten Ländern vorkommt. Aber auch die nordöstlichen Provinzen Chinas, z. B. die Mandschurei, liefern große Mengen Süßholz. Stapelplätze sind Chefoo, Hankow, Shanghai, Tientsin. Nach ~Bretschneider~ (1896) produzieren Shantung, Shensi, Kansu, Netschwang Süßholz. (Über Mandschurisches Süßholz vgl. auch Pharm. Journ. 1904, April.) _Glycyrrhiza uralensis_ wird auch von ~Przevalski~ als Stammpflanze des Süßholz genannt, das die Mongolen an die Chinesen verkaufen, welche die Droge auf dem Hoangho hinunter an die chinesischen Märkte bringen. Das Süßholz von _G. uralensis_ (Chuntschir) enthält nach ~Kowalejew~ mehr Glycyrrhizin als das spanische und weniger als das russische. Die Herbstpflanze enthielt mehr als die Sommerpflanze. =Lit.= ~Kowalejew~, Pharm. Journ. Rußl. 1908, 1063 (Pharm. Zeit. 1909, Nr. 8). Die Einfuhr von _Süßholz_ nach +Hamburg+ betrug seewärts 1906: 5484, 1907: 5088, 1908: 2503 dz. (= 100 kg). Davon kamen 1907 (1908) in dz aus Arabien 442 (446), Kleinasien 16 (588), Syrien 235 (0), Persien 1346 (0), Russischen Ostseehäfen 2010 (787), Frankreich 442 (146), Spanien 204 (151), russischen Häfen am Schwarz. u. As. Meer 0 (268), Großbritannien 388 (0). Übrige Einfuhr seewärts 5 (117), per Eisenbahn und Oberelbe 660 (819). Deutschland verbraucht vornehmlich russisches Süßholz. +Italien+ exportierte nur wenig Radiche di Liquirizia, 1907: 1014, 1908: 822, 1909: 1061 Quint. +Frankreich+ importierte 1908 28840 Quintalm. Süßholz, bes. aus der Türkei und Spanien, wenig (1366) aus Rußland, nur 443 Qˡm aus Italien, etwas auch aus Algier. +Japan+ importierte Süßholz 1908: 558336, 1909: 614496 kin. Die +Vereinigten Staaten+ von +Nordamerika+ brauchen sehr große Mengen Licorice root. Die Einfuhr betrug 1906: 102151969, 1907: 66115863, 1908: 109355720, 1909: 97742776 Pounds, vornehmlich aus Rußland und der asiatischen Türkei (c. 2 Mill. auch aus Spanien). Amerika kauft bisweilen die ganze kleinasiatisch-syrische Ernte auf. [Illustration: Fig. 27. _Glycyrrhiza glabra._ Lupenbild eines Ausläufers. [Aus +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Beschreibung der Droge.= Das +spanische Süßholz+ besteht nur aus den zu Bündeln vereinigten, meist geraden und einfachen ungeschälten Ausläufern von ziemlicher Länge, die meist in Wasser leicht untersinken. Wurzeln sind selten. Die Ausläufer sind oft auf weite Strecken von gleicher Dicke und fast genau rundem Querschnitt. Sie sind bis 2 cm dick, schwer, dicht, zäh, im Bruche grob- und langfaserig. Die Oberfläche ist längsrunzelig und querrissig, in der Farbe etwas wechselnd, graubräunlich bis rotbraun. Da und dort finden sich Rindenhöckerchen und vereinzelte Knospen oder deren Ansatzstellen. Das Innere ist gelb. Im Lupenbild tritt ein grobstrahliger Bau in Holz und Rinde hervor. Letztere ist deutlich geflammt. Im Holzkörper sind Gefäßöffnungen, das Cambium als graue Linie sichtbar. Die Ausläufer haben immer ein Mark, die größeren Wurzeln bisweilen (Fig. 27). [Illustration: Fig. 28. _Glycyrrhiza glabra._ Querschnitt durch einen Ausläufer am Cambium. [Nach +Tschirch+, Anatomie.]] Das +russische Süßholz+ ist meist mehr oder weniger tief geschält und daher auch außen hell zitronengelb. Es finden sich in ihm sowohl die dünnen Ausläufer, wie die nach unten sich verjüngenden Wurzeln, die bisweilen riesige Dimensionen annehmen und dann einen gewaltigen rundlichen, bisweilen mehrteiligen Wurzelkopf tragen. Die Ausläufer sind auch hier auf weite Strecken gleich dick. Der Bruch ist meist faseriger als beim spanischen, welches überhaupt zäher, fast hornartig zu sein pflegt. Öfter finden sich hier auch Zerklüftungen im Holzkörper. Es ist meist leichter und lockerer als das spanische und man findet oft Stücke, die in Wasser nicht untersinken. An der Außenseite findet man zahlreiche Fäserchen: beim Schälen bloßgelegte Bastfasergruppen der Rinde. =Anatomie.= Die Ausläufer sind von Sekundärkork bedeckt, der in der Stärkescheide entstanden ist (die primäre Rinde, die «Wurzelhaare» trägt, wird frühzeitig abgeworfen, ~Tschirch~, Angew. Anatomie Fig. 316). Die +Korkschicht+ ist oft 10-25 Zellenreihen dick und schuppt infolge von «Trennungsschichten» zwischen den Korkplatten ab. In der unter dem Kork liegenden Rindenpartie finden sich Oxalat führende Zellen, vereinzelte Bastfasern und (sehr zerstreut) Protophloëmbündel. Die +sekundäre+ Rinde ist von 3-8 Zellen breiten, sich nach außen verbreitenden Markstrahlen (Rindenstrahlen) durchzogen, die Stärke und Öltröpfchen führen. Zwischen ihnen liegt der sekundäre Siebteil. Er besteht aus Siebröhren, Cambiform, Bastfasern und Phloëmparenchym. Die Siebröhren sind nur in der Nähe des Cambiums unverändert erhalten. Etwas weiter nach außen sind sie samt dem Cambiform obliteriert und bilden nicht mehr leitende, breite, gestreckte, von Spalten durchzogene Keratenchymbänder (Fig 28). Das Phloëmparenchym obliteriert nicht. Es führt Stärke, Öl und da und dort monosymmetrische Oxalatkristalle (Einzelkristalle und Zwillinge), letztere besonders in der unmittelbaren Umgebung der zahlreichen Bastfasergruppen in sog. Kristallkammerfasern. Die kristallführenden Zellen sind mit einer unregelmäßigen bis fast an den Kristall heranreichenden Verdickungsschicht versehen, die mit Jodschwefelsäure blauviolett wird und früher entsteht als der Kristall. Dadurch erscheint der Kristall wie in einer Tasche steckend. Die Bastfasern sind sehr lang und stark, oft fast bis zum Verschwinden des Lumens, verdickt. Ihre primäre Membran ist stark verholzt, die sekundäre wenig, die tertiäre nicht oder fast gar nicht. Das Cambium ist wenig deutlich. Der +Holzkörper+ besteht aus Gefäßen, Tracheïden, Holzparenchym und Bastfasern (Libriform). Namentlich an der Peripherie finden sich sehr zahlreiche und sehr weite Gefäße. Im allgemeinen differiert die Weite der Gefäße erheblich: die engsten haben eine lichte Weite von 25 mik., die weitesten bis 170 mik., die meisten 100-130 mik. Die engsten besitzen kurze Tüpfel mit spaltenförmigem Ausführungsgang, die mittleren Leiter- und Netzleistenverdickungen, die weitesten schief reihenförmig angeordnete rhombische Tüpfel mit spaltenförmigem Ausführungsgang. Die Perforationsstellen der ursprünglichen Querwände sind gut zu sehen, die Gefäßwand daher deutlich gegliedert (Fig. 29). Die Gefäße werden begleitet von Tüpfel- oder Netzfaser-Tracheïden. Das Holzparenchym führt den gleichen Inhalt wie das Phloëmparenchym und die Markstrahlen. Die Bastfasergruppen, die in nichts von denen der Rinde abweichen, werden von Kristallkammerfasern begleitet, die ähnliche, im Typus der Form ⎔ folgende Kristalle einschließen. Es finden sich sowohl Einzelkristalle wie Zwillinge. Im Zentrum pflegt ein mehr oder weniger großes parenchymatisches +Mark+ zu liegen. In allen parenchymatischen Zellen findet sich neben meist einzelnen kleinen, rundlichen, spindelförmigen, ei- oder stäbchenförmigen, meist 1,5-7 (selten bis 20 und 30) mik. großen +Stärkekörnern+, +Glycyrrhizin+. Setzt man konzentrierte Schwefelsäure hinzu, so färbt sich das ganze Gewebe strohgelb und der Farbstoff wird von den Membranen der Gefäße und der primären Membran der Bastfasern gespeichert (~Tschirch-Oesterle~, Atlas). [Illustration: Fig. 29. _Glycyrrhiza glabra._ Längsschnitt durch den Gefäßteil eines Ausläufers. [Aus +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Die +Wurzeln+ weichen nur wenig von den Ausläufern ab. Der sekundäre Bau ist fast ganz derselbe. Sogar Mark wird oft gebildet, so daß es schwer hält, an kleinen Stücken Wurzeln von Ausläufern zu unterscheiden. Das primäre (meist tri- oder tetrarche) Bündel geht bald in den kollateralen Bau über und die primäre Rinde wird frühzeitig abgestoßen und ist nur an 8-10 mm dicken Wurzeln noch in Form von Fetzen zu sehen (~Tschirch~, Angew. Anatomie, Fig. 315). Bisweilen sind beim Süßholz einzelne Partien der Rinde, des Holzkörpers oder des Markes durch Binnenkorkbildung eingekreist und so aus dem Saftverkehr ausgeschaltet. An der Außenseite dieser Korkbänder finden sich reichlich Oxalatkristallzellen (~Vogl~) -- oft ganze Nester bildend. Das meist aus geschälter Wurzel hergestellte, daher korkfreie +Pulver+ (bei schlecht mundierter Ware treten einige Korkzellen auf) wird durch konzentrierte Schwefelsäure dunkelrot- bis orangegelb. Es läßt die Stärkekörner, die Kalkoxalatkristalle und deren Splitter, die Fragmente der getüpfelten und Netzleistengefäße sowie die Bastfasern und deren Gruppen erkennen, die oft von Kristallkammerfasern begleitet sind. =Lit.= ~G. W. Wedel~, De glycyrrhiza 1717 (hier die erste, allerdings sehr primitive mikroskopische Untersuchung). -- ~Wigand~, Flora 1877 und Lehrbuch 1879. -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie und Artikel Liquiritia in Realenzykl. d. Pharm. VIII, 234. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Tschirch-Holfert~, Arch. d. Pharm. 1888, S. 473. -- ~Vogl~ in ~Wiesner~, Rohstoffe. 2. Aufl. -- ~A. Meyer~, Drogenkunde. -- Der primäre Bau bei ~Holfert~, Arch. Pharm. 1889. -- Das Pulver sehr ausführlich in ~Koch~, Mikrosk. Anal. d. Drogenpulver II, Taf. 17 und auch bei ~Kraemer~, Am. journ. ph. 1897, Proc. Am. ph. ass. 1898, 310. -- ~Icliffe~, Drug. Circ. 1900 u. and. -- Entwicklungsgesch. von Frucht und Samen v. Gl. gl. in ~Stscherbatscheff~, Beitr. z. Entw. einig. Sam. u. Fr. Arch. Pharm. 1907, 48. =Chemie.= Der wichtigste Bestandteil des Süßholzes ist das Glycyrrhizin. Das +Glycyrrhizin+ (Glycyrrhizinsäure, Süßholzzucker, Wurzelzucker) wurde von ~Pfaff~ aufgefunden und +Glycion+ genannt, ~Robiquet~ gab ihm 1809 den Namen Glycyrrhizin. Es wurde dann von ~Döbereiner~, ~Berzelius~, ~Buchner~, ~Martin~, ~Hirsch~, ~Rump~, ~Flückiger~ und ~Möller~, ~Sestini~ u. and. studiert. ~A. Vogel~ jun. gab ihm die Formel C₁₆H₂₆O₆, ~Roesch~: C₁₆H₂₄O₆, ~T. Lade~: C₃₆H₄₈O₁₄, ~Gorup-Besanez~: C₄₈H₇₂O₁₈, ~Habermann~: C₂₂H₃₃NO₉ oder C₄₄H₆₆N₂O₁₈. Auch ~Roussin~ gibt Stickstoff als Bestandteil an, ebenso ~Tschirch~ und ~Relander~ (1898). ~Gorup-Besanez~ rechnet das Glycyrrhizin zu den Glykosiden. ~Habermann~ erhielt bei der Hydrolyse eine harzige Substanz, die er Glycyrrhetin nannte neben Parazuckersäure, ~Gorup-Besanez~ einen gärungsfähigen Zucker. Die zuerst von ~Flückiger~ (1867) ausgesprochene, von vornherein unwahrscheinliche Ansicht, daß das Glycyrrhizin in der Pflanze als Ammonsalz vorhanden sei, wurde von ~Roussin~ (1875) wiederholt und ging in alle Lehrbücher über. Sie ist von ~Tschirch~ und ~Cederberg~ (1907) widerlegt worden. In Pflanzen sind übrigens organische Ammonsalze bisher niemals gefunden worden. Die +Glycyrrhizinsäure+ ist in der Pflanze an Kalium und Calcium gebunden (nach ~Sestini~ nur an Ca, was aber unwahrscheinlich ist). ~Tschirch~ und ~Cederberg~ erhielten auch zuerst die Glycyrrhizinsäure über das tertiäre Kaliumsalz in reiner Form und zeigten, daß sie bei der Hydrolyse in +Glycyrrhetinsäure+ und +Glukuronsäure+ zerfällt. Sie formulierten daher: _____________ | | O.HC.CHOH.CHOH.CHO.CHOH.COOH / C₃₁H₄₅O₃-COOH + 2 H₂O \ O.HC.CHOH.CHOH.CHO.CHOH.COOH | | ------------- OH / = C₃₁H₄₅O₃-COOH + 2 (CHO.CHOH.CHOH.CHOH.CHOH.COOH) \ OH Glycyrrhetinsäure Glukuronsäure Die Glukuronsäure wurde dann durch ~Tschirch~ und ~Gauchmann~ (1908) weiter identifiziert und wahrscheinlich gemacht, daß in der Glycyrrhetinsäure nur eine doppelte Bindung und der Kern: --- | OH / \/ \ | | | \ /\ / | OH --- enthalten ist, sowie daß wahrscheinlich die Bindung der Glukuronsäure an den α-Hydroxylen erfolgt. Weder die Glycyrrhetinsäure (F = 210°), die in Nadeln kristallisiert, noch die Glukuronsäure (s. oben S. 77) sind süß. Wohl aber schmeckt sowohl die in farblosen Schuppen oder Prismen kristallisierende dreibasische, optisch inaktive Glycyrrhizinsäure C₄₁H₅₅O₇(OH)₆(COOH)₃ (F = 205°) als ihre wasserlöslichen Kalium- und Ammoniumsalze intensiv und rein süß, nicht kratzend -- noch in Lösungen 1:20000. Sie reduzieren weder Fehlingsche Lösung noch ammoniakalische Silberlösung. Die Glycyrrhizinsäure ist in heißem Wasser löslich. Die Lösung gesteht beim Erkalten zu einer Gallerte (beim Rohglycyrrhizin beobachtete dies schon ~Pfaff~). Das Glycyrrhizin, +das einen besonderen Typ der Süßstoffe darstellt+, ist zu etwa 5,3 bis 7% in der Droge enthalten (~Tschirch~, ~Cederberg~ und ~Eriksson~). Die früheren Autoren (~Flückiger~, ~Sestini~, ~J. H. Möller~ u. and.) sprechen von 6,27, 7,5, 8% und noch höheren Zahlen (9% ~Gawalowski~). Sie hatten aber nur unreines G. in Händen. Russisches Süßholz ist glycyrrhizinreicher als spanisches. Das fand schon ~Neese~ (1863). Das Roh-Glycyrrhizin fällt beim Versetzen der Perkolate der Wurzel mit Schwefelsäure als pflasterartige Masse aus. Aus der alkoholischen Lösung der letzteren (1=3) fällt bei weiterem Alkoholzusatz eine +stickstoffhaltige gummiartige Masse+. Dampft man das Filtrat zur Trockne, löst in Alkohol und setzt Äther hinzu, so fällt eine +außerordentlich bitter und dabei kratzend schmeckende Masse+ aus. Das so gereinigte Glycyrrhizin gibt an Äther etwas +Glycyrrhetinsäure+ (s. oben) ab, die also das Glycyrrhizin in der Pflanze begleitet. In dem Filtrate von der Schwefelsäurefällung (s. oben) findet sich d-+Glukose+ und +Mannit+ (~Tschirch~ und ~Relander~). Doch ist fraglich, ob Mannit primär gebildet in der Droge vorkommt. ~Arnst~ und ~Hart~ geben den Zuckergehalt bei span. Süßholz zu 9,57, bei russischem zu 10,39% an, ~König~ auf 7,44 bzw. 6,01% (in der Trockensubstanz 8,16 bzw. 6,58%) Glukose (direkt Fehling reduzierend). Nach ~Rasenack~ kommt auch reichlich +Saccharose+ im Süßholz vor. (~König~ gibt davon für spanisches 2,13, für russisches 10,38% an.) +Das Süßholz ist also ein wahres Arsenal von Süßstoffen. Es enthält deren nicht weniger wie vier.+ Die von mir vorgeschlagene +Methode der Bestimmung der drei Süßstoffe+ (Glukose, Rohrzucker, Glycyrrhizin) nacheinander in derselben Lösung ist von ~Ella Eriksson~ in meinem Institut durchgeprüft worden. Sie beruht darauf, daß Glukose in der Kälte, Saccharose bei kurzem, Glycyrrhizin erst bei lange anhaltendem Kochen ~Fehling~sche Lösung reduzieren und nach ~Allihn~ bestimmt werden können. In dem mit Alkohol von den Schleimstoffen befreiten Auszuge wird zuerst durch zwölfstündiges Stehenlassen mit ~Fehling~scher Lösung in der Kälte die Glukose oxydiert und nach ~Allihn~ bestimmt, im Filtrate vom Kupferoxydul wird durch 3 Minuten langes Kochen mit ~Fehling~scher Lösung die Saccharose bestimmt und dann aus dem Filtrate das Glycyrrhizin mit Schwefelsäure ausgefällt, aufgelöst und 15 Stunden mit ~Fehling~scher Lösung gekocht und dann ebenfalls nach ~Allihn~ bestimmt. Wir fanden in lufttrockenem Süßholzpulver: Glukose 1,39-1,45%, Saccharose 2,40 bis 2,57%, Glycyrrhizin 6,42-7,13%. Nach der ~Cederberg~schen gravimetrischen Methode erhielten wir etwas weniger, nämlich 5,5-5,6% Glycyrrhizin bei dem gleichen Material. Ferner findet sich im Süßholz l-+Asparagin+ = NH₂CO.CH₂.CH(NH₂).COOH, 2-4% (~Sestini~), das ~Caventou~ darin auffand und +Agedoil+ nannte (auch ~Pfaff~ hatte es in Händen). ~Henry~ und ~Plisson~ identifizierten es 1828 mit dem von ~Vauquelin~ und ~Robiquet~ (1809) im Spargel aufgefundenen Asparagin. ~Robiquet~ erwähnt in seiner Analyse eine kristallinische Substanz, ähnlich dem Vauqueline. ~Moulin~ weist das Asparagin dadurch nach, daß er Schwefelsäure und etwas Resorcin zusetzt, erhitzt und verdünntes Ammoniak hinzufügt. Es entsteht eine fluoreszierende Lösung. Ferner enthält das Süßholz bis 3,5% +Fett+ (wir fanden nur 0,2-0,8%), etwas +Harz+ (Glycyrrhizinharz?), gelben +Farbstoff+ in den Gefäßwandungen, durch Kali tiefgelb, wenig +Gerbstoff+, viel +Stärke+ (in span. Süßholz 31,33, in russischem 20,73%, ~Arnst~ und ~Hart~), +Gummi+ 1,5-4% (~Madsen~) und ein +ätherisches Öl+ (0,03% in spanischer, 0,035% in russischer Droge, ~Haensel~). Süßholz enthält auch kleine Mengen +Salicylmethylat+ (~Desmoulière~). Die bisweilen angegebene Apfelsäure dürfte Glukuronsäure gewesen sein. Der +Extraktgehalt+ beträgt bei russischem Süßholz meist 35-38%, bei spanischem 20-25% (~La Wall~ erhielt 1896 55%; Pharm. helv. IV verlangt wenigstens 28% bei 100° getrocknetes Extrakt, die Ph. austr. 30%). +Asche+ 3-6% (selten mehr als 5%, ~Hauke~, nach ~Dieterich~ 3,2 bis 6,15 (im Pulver etwas mehr; ~Dieterich~: russisches 4,8-11,7, span. 5,1-9,9); nach Pharm. helvet. IV höchstens 6%. Der +Wasser+gehalt beträgt 6,5-10% (im Mittel 8,75 ~Arnst~ und ~Hart~). Durch Liegenlassen in Ammoniakgas soll Süßholz etwas süßer werden (~Landerers~ Rad. liquirit. ammoniata). Die Prozedur ist aber unzulässig; in ihrer Wirkung zudem zweifelhaft. =Lit.= (Glycyrrhizin.) Ältere Lit. in ~Schwartze~, Tabellen 1819. -- ~Pfaff~, System d. Mat. med. I, 187. VI, 113. -- ~Döbereiner~, Elemente d. pharm. Chem. 149. -- ~Robiquet~, Ann. de chim. 72 (1809), 143, ~Trommsd.~ Journ. 19. -- ~Berzelids~, Poggend. Ann. 10 (1827). -- ~Martin~, Jahresb. d. Chem. 1860. -- ~Rumpf~, N. Repert. d. Pharm. 4, 153. -- ~Hirsch~, Jahresb. d. Chem. 1860, 551; 1871, 308. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie I. Aufl. -- ~A. Vogel~, Journ. f. prakt. Chem. 28, 1. -- ~Lade~, Ann. Chem. Pharm. 59, 224. -- ~Gorup-Besanez~, Ann. Chem. Pharm. 118, 236. -- ~Roesch~, Beitr. z. Kenntn. d. Glyc. Dissert. Erlangen 1877. (Jahresb. d. Pharm. 1878, 426.) -- ~Weselsky~ u. ~Benedict~, Ber. d. chem. Ges. 1876, 1158. -- ~Roussin~, Journ. pharm. chim. 1875. (Arch. d. Pharm. 1876, 157.) -- ~Sestini~, Gaz. chim. ital. 1878, 131 (Ber. 1878) u. Arch. d. Pharm. 1880, 233. -- ~Habermann~, Sitzungsb. d. Wien. Akad. 74 (1878) u. Ann. d. Chem. 197 (1879), 105. -- ~Tschirch~ u. ~Relander~, Schw. Wochenschr. f. Ch. u. Ph. 1898, S. 243. -- ~Tschirch~ u. ~Cederberg~, Arch. Pharm. 1907, 97. -- ~Tschirch~ u. ~Gauchmann~, Arch. Pharm. 1908, 545 u. 558. -- ~Rasenack~, Arbeit. d. K. Gesundheitsamt. 1908. ~Haensels~ Berichte 1899. -- ~Arnst~ u. ~Hart~, Zeitschr. ang. Chem. 1893, 136. -- ~König~, Nahr. u. Genußm. II, 1065. -- ~Kremel~, Pharm. Post. 22, 194. -- ~Moulin~, Journ. pharm. 1896. 543. -- ~La Wall~, Am. journ. pharm. 1896. -- ~Neese~, Jahresb. d. Ph. 1863. -- (Asche.) ~Hauke~, Zeitschr. Österr. Apoth. Ver. 1902, 418; ~Moor~ and ~Priest~, Ph. journ. 1900 und ~Dieterich~, Helfenb. Ann. 1890. +Glycyrrhizin in anderen Pflanzen.+ Mit Sicherheit nachgewiesen und durch Analysen belegt ist das Glyzyrrhizin bisher nur in der Wurzel der zu den Phaseoleen gehörenden _Periandra dulcis_ ~Mart.~ (_P. mediterranea_ ~Vell. Tab.~), der brasilianischen Süßholzwurzel (Alcassuz), in der ~Peckolt~ es bereits vermutete, durch ~Tschirch~ und ~Gauchmann~, sowie in der _Monesiarinde_ von _Pradosia lactescens_ (~Vell.~) Radlk. (_Chrysophyllum glycyphloeum_ ~Casar~.), einer brasilianischen Sapotacee, aus der zuerst ~Payen~ den Süßstoff in unreiner Form erhielt, ebenfalls durch ~Tschirch~ und ~Gauchmann~. Die Wurzel von _Abrus precatorius_ soll nach ~Hooper~ 1,5% Rohglyzyrrhizin enthalten, die Blätter sogar 9-10%. (Die Zahlen sind wohl zu hoch.) Die _Jequiritywurzel_ ist als Süßholzersatz (indisches Süßholz) empfohlen worden. Doch sind die Auszüge etwas bitterer (~Rudolfe~). Ferner wird Glyzyrrhizin angegeben in _Glycyrrhiza lepidota_ (~Mac Cullough~), _Sarcocolla_, _Trifolium alpinum_ L. (die unterirdischen Teile als Réglisse des montagnes bekannt), _Astragalus glycyphyllos_, Rhizom von _Polypodium vulgare_ (Engelsüß) und _pinnatifidum var. indivisa_ (~Guignet~), _Myrrhis odorata_ L. (~Schröder~), _Guilielma speciosa_ ~Mart.~, _Ononis spinosa_ (das Ononid soll glyzyrrhinähnlich sein), _Lepidota Pursh._ (angeblich 8,5%), _Tabermirca nummularia_, _Alyssicarpus longifolius_, _Macrua arenaria_ (die Wurzel der letzteren Pflanze findet sich in indischen Bazaren. ~Simmonds~). Doch ist bei keiner dieser Pflanzen bisher der Beweis erbracht, daß wirklich Glyzyrrhizin vorliegt. Daß der von ~Rasenack~ untersuchte und als Glykosid erkannte Süßstoff von _Eupatorium Rebaudianum_, auf welche Pflanze ~Bertoni~ (Pharm. Zeit 1902, 108) aufmerksam machte, +nicht+ Glyzyrrhizin ist, zeigten ~Tschirch~ und ~Gauchmann~ (1908). =Lit.= ~Peckolt~, Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1867; Pharm. Rundsch. 1888. -- ~Payen~, Exam. chim. et méd. du Monesia. Paris 1841. -- ~Guignet~, Rep. d. pharm. 13, 72. -- ~Hooper~, Pharm. Journ. 1894, 937 (_Abrus_ auch: ~Norman~, Bull. of ph. 1897). -- ~Simmonds~ Bull. of pharm. 1894, 205. -- ~Rudolfe~, ebenda 1897. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. und Pharmakographia. -- ~Guignet~, Jahresb. 1885, 16. -- ~Schröder~, ebenda (Arch. Pharm. 1885, 621). -- ~Tschirch~ und ~Gauchmann~, Arch. Pharm. 1908. -- ~Mac Cullough~, Am. journ. ph. 1890, 388. Der =Geschmack= des Süßholz ist eigenartig kräftig süß, schwach kratzend, ein wenig schleimig und sehr schwach bitterlich. =Verfälschung.= Im Pulver wurde als Verfälschung Olivenkernmehl und Maisstärke gefunden (~Evans~), auch Kartoffelstärke (1908). ~Wigand~ gibt (1887) als Verfälschung des Pulvers an: Mehl, Arrowroot, Curcuma, Farinzucker, Guajac, Schüttgelb, _Sem. Trigonellae_. Ich habe 1909 nichts dergleichen beobachtet. Auch ~Mitlacher~ fand Süßholz wenig verfälscht. ~Bastin~ beschreibt die Unterschiede (?) der Stolonen und Wurzeln. ~Hanson~ macht auf Verfälschung des Pulvers mit ausgezogenem Pulver aufmerksam. =Lit.= ~Evans~, Pharm. Journ. 1905. -- ~Wigand~, Pharmakognosie. -- ~Mitlacher~, Ergebnisse d. Apotheken-Visitationen usw. Zeitschr. d. Öster. Ap. Ver. 1904. -- ~Bastin~, Detection of stem admixtures in Root drugs. Pharm. Journ. 1902, 652. -- ~Hanson~, Amer. Drugg. 1886 (Jahresb. d. Ph. 1896). =Schädlinge.= Ein Schädling der Süßholzdroge ist _Pyralis farinalis_, die Mehlmotte (~Jackson~). Dann besonders _Niptus hololeucus_ ~Faldermann~, eine sehr schädliche Ptinide, die durch russisches Süßholz in Deutschland eingeschleppt, in den letzten Dezennien sich stark ausgebreitet hat (~Israel~). =Geschichte.= Das Süßholz gehört zu den ältesten Drogen. Es findet sich im Magical Papyrus (I, S. 465) und ist einer der Bestandteile des Theriak (I, S. 551). Bei den Indern diente Süßholz (madhuka) beim Liebeszauber (~Joret~). Eine Abkochung der Süßholzwurzel und des Süßtee (_Gymnostemma cissoides_) wird auch zum Bade Buddhas bei dessen Geburtsfeier am 8. Tage des 8. Monats benutzt. Am Morgen dieses Festes wird die Statue des Gottes in eine Kufe gesetzt und mittels einer Kelle von den Betenden dreimal mit diesem Tee begossen. Die abtropfende Flüssigkeit wird gesammelt und bildet ein geschätztes Heilmittel (~Junker von Langegg~). _Liquiritia_ gehört auch zu den Drogen der ersten Klasse («Fürsten») der Shen nung Pen tsʿao king, des ältesten chinesischen Kräuterbuches (I, S. 515). Es wurde seit alter Zeit, wie noch heute bei Katarrhen der Luftwege benutzt. Bei ~Theophrast~ steht (IX, 13): γλυκεῖα δὲ καὶ ἡ σκυθική. καὶ ἔνιοι δὲ καλοῦσιν εὐθὺς γλυκεῖαν αὐτήν. γίνεται δὲ περὶ τὴν Μαιῶτιν. χρησίμη δὲ πρός τε τὰ ἄσθματα καὶ πρὸς τὴν βῆχα ζηρὰν καὶ ὄλως τοὺς περὶ τόν θώρακα πόνους. ἔτι δὲ πρὸς τὰ hέλκη ἐν μέλιτι. δύναται δὲ καὶ τὴν δίψαν παύειν ἐάν τις ἐν τῶ στόματι ἔχῃ usw. Und ποιεῖ δὲ τὸ χύλισμα πρὸς τραχύτητας ἀρτηρίας (der Saft wirkt gegen Rauheit der Luftröhre) sagt schon Dioskurides (III, 5). Scribonius kennt Lakritz-Pastillen. Wir finden es also bei ~Theophrast~ (I, S. 548) und ~Dioskurides~ (I, S. 561). Ferner bei ~Galen~ (I, S. 581), ~Oribasius~ (I, S. 588), ~Marcellus Empiricus~ (I, S. 590), ~Paulus Aegineta~ (I, S. 592) und ~Alexander Trallianus~, die auch bereits das Süßholzextrakt kennen. Ebenso findet es sich bei ~Susrutas~ (I, S. 505). Die Inder werden es wohl von den Persern und Arabern übernommen haben. Es war bei ihnen sehr geschätzt, kommt aber in Indien, das die Droge noch heute vom persischen Golf, Karachi und Afghanistan bezieht, nicht vor. Auch die Kultur des Süßholz ist alt, besonders die in Spanien. Doch reicht sie hier nicht bis ins X. Jahrh. zurück. Der Kalender des ~Harib~ erwähnt Süßholz nicht. Die Kultur des Süßholz «auf dem Acker» bei Bamberg wird von den einen (~Reuss~, Walafridi Strabi Hortulus 1834) auf die Gemahlin ~Heinrichs~ II., ~Kunigunde~ († 1033), von anderen (wohl richtiger) auf die Benediktiner der Abtei Michaëlsberg zurückgeführt, die im XV. Jahrh. das Süßholz aus Italien (und Spanien?) nach Deutschland brachten. Im Vocabular ~Africs~, Erzbischof von Canterbury (X. Jahrh.), in ~Karls~ Capitulare, im St. Galler Klosterplan, im Hortulus und bei ~Macer Floridus~ fehlt das Süßholz. Es wurde also in Deutschland kaum vor dem XIII. Jahrh., wahrscheinlich erst vom XV. Jahrh. an kultiviert. ~Platearius~ (I, S. 635) und ~Crescenzi~ (I, S. 678) erwähnen Kulturen in Italien und beschreiben die Darstellung des _Succus_. ~Tabernaemontanus~ (I, S. 848) erwähnt _Succus liquiritiae_ von Creta. «Liquiritia» (_Radix_? oder _Succus_?), figuriert auch im XIV. Jahrb. in englischen Dokumenten (Testamentsexekution des Bischofs von Exeter 1310), unter Regolitia figuriert Liquiritia in verschiedenen Vorschriften des «Ricettario fiorentino» 1498. In der Frankfurter Liste 1450 (I, S. 812) steht Lequeritia und Succus liqworicic, bereits in dem Frankfurter Catalogus von 1582 (I, S. 817) findet sich _Rad. dulcos scythica_ (russisches) und _hispanica_, sowie cretischer (_candiacus seu creticus_) und venedischer Süßholzsaft. Die Eßlinger Taxe 1571 (I, S. 816) hat liquiriciae liquor cond(ensatus). Eine Abbildung der Pflanze, der Handelsform der Droge und einer Succustablette mit dem Reichsadler gab schon ~Bock~ (Fig. 30). Nach ~Tabernaemontanus~ wurde schon Anfang des XVI. Jahrh. viel Süßholz in Deutschland gebaut und _Succus_ (im Gegensatz zum venedischen _vulgaris_ genannt) dargestellt (vgl. auch Taxe von Worms 1609). Des bambergischen Süßholz gedenken ~Cordus~, ~Bock~ und ~Gesner~ (Horti german.). ~Schröder~ erwähnt in seiner Pharmac. med. chym. sogar +nur+ das bambergische. In der Reformation von Frankfurt 1656 steht ausdrücklich: _Liquiritiae succus_ impissatus Bambergensis. Das englische Süßholz steht in der ~Berlu~-Liste (1724, I, S. 949). Die Süßholzkultur in Italien scheint nicht viel über das XIII. Jahrh. zurückzureichen. Sie wird zuerst bei ~Crescenzi~ erwähnt. Und auch später kann sie nicht bedeutend gewesen sein, denn ~Anguillara~, ~Matthioli~ und ~Porta~ (Villae Libri XII) erwähnen sie nicht. Benutzt wurde das Süßholz aber das ganze Mittelalter viel, kaum weniger als in späterer Zeit, denn es fehlt in keinem medizinischen Werke. Italienisches und spanisches Süßholz gelangte 1264 nach England und zahlte 1305 dort Zoll (I, S. 713). In Sizilien wurde 1770 _Succus_ noch ebenso bereitet wie zur Zeit des ~Platearius~ (~Riedesel~, Reise durch Sizilien 1770). Der _Succus liquiritiae_ ist als Heilmittel kaum jünger als die Wurzel. Schon ~Andromachus~ (I, S. 551) nennt «Cyanea Glycyrrhizae» (nach ~Cordus~: _Succus liquir._) unter den Bestandteilen des Theriak. ~Dioskurides~ empfiehlt ihn. In ~Megenbergs~ Buch der Natur (Mitte des XIV. Jahrh. I, S. 692) steht lakritzenzahersaf, daz man süezholz haizt. Es ist dies die erste Erwähnung des Succus in Deutschland. ~Saladinus~ führt ihn in seiner Series medicaminum im Compendium Aromatariorum 1488 auf. ~Theoderich Dorsten~ beschrieb im Botanicon, Francf. 1540, die Darstellung in Italien und ~Walter Ryff~ gab in seinem Confectbüchlein, Frankf. 1544, eine verbesserte Vorschrift (~Flückiger~). Schon im XV. Jahrh. finden wir ihn in Taxen (s. d.). In den rates of marchandizes (I, S. 921) findet sich der _Succus_. In der ~Berlu~-Liste (I, S. 951) steht _Succus liquiritiae angl._ und _hispan_. In den Taxen +Frankfurt+ 1718 und +Goßlar+ 1731 steht _Succ. liquir. hispanic._ In ~Geoffroys~ Materia medica (1742) wird besonders spanischer, französischer und holländischer _Succus_ erwähnt (dann cretensischer, italienischer und deutscher) und als bester der catalonische (circa Dertusam et Ilerdam paratus) bezeichnet. Auch ~Gren~ erwähnt 1799 vorwiegend den letzteren (neben sizilianischen). In dem +Antidotario romano+ vom Jahre 1675 wird gesagt, daß der Succus aus den in der Gegend von Ascoli im Herbste gesammelten Wurzeln dargestellt werde. Im XVIII. Jahrh. wird der Suc de reglisse de Bayon erwähnt. =Paralleldrogen.= Die in Nordamerika heimische _Glycyrrhiza lepidota_ ~Nud.~ enthält Glycyrrhizin (~Cullongh~), nach ~Hooper~ sogar 6,39%. Sie wird aber, wie es scheint, nicht in größerem Stile benutzt. Vgl. auch indisches Süßholz (S. 91) und brasilianisches Süßholz (S. 91). =Lit.= ~Cullongh~, Amer. journ. pharm. 1890. -- ~Hooper~, Pharm. Journ. 1894. [Illustration: Fig. 30. Aus Hieronymi Tragi (+Bock+), Historia stirpium 1552. Links die Handelsform des _Süßholz_, rechts _Succus_tablette mit Stempel. [Phot. verkleinert.]] Succus liquiritiae. =Syn.= Extract. glycyrrhizae oder liquiritiae crud., Lakritzen (in vielen Sprachen [vgl. I, S. 1060], auch finn. lakritsi), Süßholzsaft, Bärendreck, Bärenzucker, -- Suc oder jus de réglisse (franz.) -- Extract or juice of liquorice (engl.) -- Sugo oder succo di liquirizia oder di regolizia (ital.) -- drop (holl.) -- ὀπός γλυκυρρίζης (n.-gr.) -- bei ~Actuarius~ (I. S. 792): Succus dulcis radix -- hind.: jathímadh-ká-ras, mulatthi-ká-ras -- pers.: asus, rob-a-sus. -- arab.: rubbussús. -- (Etym. s. Süßholz). =Gewinnung.= In +allen+ Süßholz bauenden und sammelnden Ländern wird auch Succus dargestellt, am meisten wohl jetzt in Rußland, das England und Amerika damit versorgt. Der in Deutschland verwendete stammt meist aus Italien oder Kleinasien, der spanische, französische, englische wird zumeist im Lande selbst verbraucht. In Italien, dessen Succus für uns in erster Linie in Betracht kommt, wird sowohl in Calabrien (der Succus heißt in Frankreich geradezu «Réglisse de Calabre») wie in Sicilien Succus fabriziert, meist in von Großunternehmern abhängigen Kleinbetrieben auf dem Lande, die ziemlich konservativ an den Gebräuchen festhalten und seit 100 Jahren wenig geändert haben. [Illustration: Fig. 31. Waschen und Schneiden der _Süßholz_wurzel in der Fabbrica liquirizia des Barone +Compagna+ in Corigliano. Die gewaschenen Wurzeln werden von zwei Arbeitern mit Stangen in die ganz vorn sichtbare Schneidemaschine geschoben. [+Ravasini+ phot.]] Der Succus kann in der Form fester Stangen +nur+ aus +frischer+ Wurzel dargestellt werden. Nur +diese+ Stangen werden hart und wetterfest und lassen sich brechen. Wird Succus aus getrockneter Wurzel dargestellt, so erhält man Stangen, die beim Liegen sich abplatten, nicht hart und wetterfest sind und sich beim Versuche, sie zu brechen, biegen (~Kämmerer~). Der Grund ist nicht bekannt. [Illustration: Tafel I. 4 3 2 1 Fabbrica liquirizia des Barone Senatore Compagna in Corigliano (Prov. di Cosenza). In 1 werden die Wurzeln gereinigt, gewaschen, geschnitten und gekocht und der Saft eingedampft, in 2 wird der Succus ausgerollt, in 3 getrocknet, in 4 magaziniert. (Ravasini.) ] [Illustration: Tafel II. +Interno di un solo frantoio+ (Fabbrica liquirizia di Barone Compagna. Dirett. Luigo Caruso). Zerquetschen der Süßholzwurzel mit den Lavawalzen. (Ravasini.) ] [Illustration: Tafel III. +Lavorazione Biglie+ (Fabbrica liquirizia di Barone Compagna. Dirett. Luigo Caruso). In der Mitte: Ausrollen der Stengel. Rechts: Stempeln. Links: Ausbreiten zum Trocknen und Beurteilung. (Ravasini.) ] ~Flückiger~ berichtet über die Darstellung in Catania: Anfangs April 1889 besuchte ich in Catania zwei Fabriken, welche die Wurzel der in der Gegend wildwachsenden Pflanze vom Oktober bis April verarbeiten. Die gewaschene, geschnittene und auf dem Reibsteine zerquetschte Wurzel wird in eisernen Pfannen (Caldaja), welche 2½ hl fassen, zweimal mit Wasser ausgekocht, dann zweimal gepreßt, was für eine Beschickung jeweilen einen Tag in Anspruch nimmt. Zum Zwecke des Pressens füllt man die gekochte Wurzel aus den Pfannen entweder in korbartiges Geflecht, Frantojo, aus Spänen von Kastanienholz (Sporta di pezzuola) oder schichtet sie mit 18 durchlöcherten Eisenplatten (lastre di ferro), welche, durch ein hölzernes Gestell (Gabbia) zusammengehalten, der Wirkung der Presse unterworfen werden. Nach der Klärung, welche durch ruhiges Stehen des Saftes herbeigeführt wird (die zuletzt abfließenden Anteile werden auf neue Portionen der Wurzel gegossen), kocht man den Saft in der Caldaja mit Hilfe von Steinkohlenfeuer ein und bringt ihn schließlich mittelst Holzkohlen zu der geeigneten Konsistenz. Eine Pfanne liefert so ungefähr 400 kg Pasta, welche sogleich durch Arbeiterinnen auf einem geölten Tische aus Nußbaumholz geteilt wird, wie oben erwähnt. Entweder formt man daraus Blöcke (Blocchi oder Pani) von 5 kg, welche in blaues Papier eingewickelt je zu 20 in eine Kiste (Cassa) verpackt werden. Oder man stellt aus der Pasta mit Hilfe von Rinnen aus Marmor oder Messing Stangen (Bilie) von gleicher Größe her, welche nach dem Stempeln rasch gewaschen werden, um sie von dem während des Ausrollens aufgenommenen Öle zu befreien. Schließlich erfolgt das Austrocknen auf Hürden (Tavole) im Magazin, wozu die Sommermonate erforderlich sind, weil wenigstens in jenen Fabriken in Catania kein Trockenraum mit Heizung eingerichtet war. Kupfer ist hier, wie man sieht, bei der Fabrikation ausgeschlossen. Ähnlich lautete schon die Beschreibung der Bereitung, die wir in ~Th. Martius~, +Über die Anfertigung des Succus liquiritiae crud.+ (Buchn. Rep. 89. 289, 1845) finden und die Angaben ~Hanburys~, die dieser 1872 auf Grund eigener Beobachtungen in Calabrien in der Pharmakographia machte. ~Hartwich~ teilt (nach Auskünften, die er 1896 erhalten) folgendes über die Bereitung mit (Kommentar zum Arzneibuch für das Deutsche Reich II, S. 622): Die Fabrikation zerfällt in die drei Operationen des Auskochens der Wurzeln, Klären des Saftes und Eindampfen desselben. In Italien werden in der vom November bis Juni reichenden Campagne die Nebenwurzeln (?) der mindestens vier Jahre alten Pflanzen durch Aushacken gewonnen, während man die Hauptwurzel und die tiefer als ½ m liegenden Nebenwurzeln (?) zur Erzeugung von Nachwuchs schont. Gewaschen, werden sie zerschnitten und durch Reiben in einen feinen Brei verwandelt. In den italienischen Betrieben scheint ein Schälen nicht stattzufinden. In Tiflis wird nur geschälte Wurzel verarbeitet. Das Reiben geschieht in allen größeren Fabriken durch Maschinen. Die breiige Masse wird nun durch etwa 15 Stunden mit Wasser gekocht, nach dem Abkochen durch Beutel filtriert, meist auch ausgepreßt, und in ein Bassin zum Klären gebracht. Aus den Klärbassins gelangt der Auszug durch mit feinen Metallsieben versehene Pumpen in flache Abdampfschalen, Caldaja in Italien genannt, wo die dünne Succuslösung erst auf freiem Steinkohlen-, dann auf Holzkohlenfeuer, um gegen Ende zu starke Erhitzung zu vermeiden, unter Umrühren eingedampft wird. Eine solche Caldaja ergibt etwa 400 kg Succus. Das Trocknen geschieht auf Holzplatten an der Luft und erfordert lange Zeit und warme Witterung. Vor dem Verpacken wäscht man sie nochmals, reibt sie mit Lakritzlösung ab und schichtet sie zwischen Lorbeerblättern, um das Aneinanderkleben zu verhüten. Nach 1910 von ~Ravasini~ erhaltener Auskunft wird der Succus meist in ziemlich primitiver Weise, neuerdings aber auch sorgfältiger, nur von Mitte Dezember bis Anfang Mai dargestellt. Man benutzt 4-5jährige Pflanzen, da sowohl jüngere wie ältere weniger Succus liefern. Die Ausläufer und Wurzeln werden gewöhnlich im Herbst, gleich nach Eintreten der ersten Regengüsse, wenn die Erde schon lockerer ist, ausgegraben. Sie werden gereinigt, dann in Fragmente von 3-6 pollici geschnitten (Fig. 31), mit Wasser sorgfältig gewaschen und in einer aus zwei Lavawalzen bestehenden Mühle zerquetscht (Taf. II). Nun bisweilen zunächst über Nacht mit Wasser mazeriert oder direkt mit Wasser einige Stunden bei schwachem Feuer ausgekocht und dann scharf in einer Presse (strettojo) abgepreßt. Die abgepreßte Wurzel wird dann meist noch zweimal auf stärkerem Feuer ausgekocht und der Saft, nachdem er durch ein Sieb filtriert worden war, in einem +kupfernen+ Kessel soweit eingedampft (einige Fabriken benutzen hierbei Vacua), daß die Konzentration gerade ein Filtrieren noch erlaubt, nun ein zweites Mal filtriert und darauf unter fortwährendem Umrühren mit hölzernen Spateln bei gelinderem, allmählich erlöschendem Feuer soweit eingedampft, bis die Masse beim Erkalten hart wird. Nun formt man aus dieser Masse Brote (pani, blocchi) zu c. 5 kg, die in Kisten von 20 Broten (100 kg) verpackt werden, oder man formt mit den Händen, die man mit Stärke, Öl oder Asche einstreut, oder mittelst geölter hölzernen oder auch aus Messing gebildeter Formen die bekannten Stangen (+bastoni+ oder +biglie+, Taf. III), die je nach den Fabrikmarken in verschiedenen Größen, und zwar zu 6, 8, 15, 25, 35, 45, 55, 75, 90 und 120 g geformt werden. Diese Stangen werden dann am einen Ende gestempelt (Taf. III, Fig. 32) und auf hölzernen Platten 2-3 Monate hindurch dem Trocknen überlassen. Die Stempel sind jetzt: 1. +nach den Fabrikanten+ benannt: ~R. de Rosa~ (in Atri bei Teramo), ~Martucci~, ~Baracco~, ~Gui Grasso~, ~Conte d’Alife~, ~Zagarese e Co.~, ~Sinib(aldo) Oddo~, ~Duca di Atri~ oder ~d’Atri~ (in der Provinz Abruzzo ulteriore), ~Muzzi~ (nicht mehr im Handel), ~Grimaldi~, ~Pignatelli~ (Fürst P. in Torre Cerchiara), ~Duca di Corigliano~ (alte gute Marke), Barone ~Compagna~ (in Corigliano, Taf. II u. III). ~Solazzi~ (in der Nähe von Corigliano), ~B. Fichera~, Barone ~Amarelli~, ~Salvago~, ~Savarini~, F. S. D. (nicht mehr im Handel), P. S. (= Principe de Salerno), ~Burgarella~, ~S. Franco~, ~Di Surdo~, ~La Rosa~, ~Caflisch~ (Catania), ~G. Bongiorno~ u. a. [Illustration: Fig. 32. Verschiedene Formen der Succusstangen. [+Ravasini+.]] 2. +nach den Orten+ benannt: +Corigliano+ und +Atri+ (diese zwei Marken sind auch unter den nach den Fabrikanten genannten Marken angeführt, da sich die betreffenden Herren dieser Besitze nach dem Orte auch Duca di Corigliano und Duca d’Atri nannten), +Cassano+ (mit und ohne Stern, vorzüglich, wegen des Papagei auf der Vignette auch als «Pappagalo» bekannt), +Gerace+, +Messina+, +Rossano+, +Policoro+, +Sicilia+, +Catanzaro+, +Torcella+, +Puglia+ usw. (s. die Karte auf S. 98). 3. mit Phantasienamen: +Theseus+ (von G. e. R. ~Fritz~), dann vom Barone Compagna fabriziert: +Schiavonea+, +Cedonia+, +Cesarello+, +Venetta+, +Fratelli+; vom Grafen ~D’Alife~ fabriziert: +Favella+; von ~de Rosa~: +Regina+; von ~Caflisch~: +Vittoria+, endlich +Imperial+ usw. Über die außerdem erwähnten Marken: Pollici, Lavoro, Derosas (wahrscheinlich Imitation von ~de Rosa~), Convitato, Ferrajuolo, S. Rafft, Lagusso, Cagliano, Pastora, konnte ich nichts in Erfahrung bringen. Bisweilen sieht man bei den Stangen außer dem Fabrikstempel auch Eindrücke, die von Stiften herrühren, die sich in den Formen finden (namentlich bei der Marke Ferrajuolo) oder einen Stern (~Cassano~), oder ein Wappen (~Pignatelli~), oder die Bezeichnung «Sug pur» (~Caflisch~), «Italy» (~Duca di Corigliano~, Barone ~Compagna~) usw. Die Stangen werden, nachdem sie vom Staube befreit und glänzend gemacht wurden (lavoro di lustratura) mit Lorbeerblättern (in Rußland mit Eichenblättern) bedeckt und in Kisten zu 50, 60 oder 100 kg verpackt (lavoro d’incasso). -- 3% Tara werden für die Blätter gerechnet. Auch bei den Broten werden Lorbeerblätter, die schon ~Geoffroy~ 1742 erwähnt, als Packmaterial benutzt. Wie aus Obigem hervorgeht, vermeidet man nicht immer kupferne Kessel (auch ~Janssen~-Florenz erwähnt solche) und messingne Formen für den Succus in Massen. Immerhin gilt jetzt die Tendenz, sie möglichst auszuschließen, z. B. geschieht dies in vielen italienischen, dann in den englischen Fabriken und endlich in denen von Tiflis, wo man eiserne Kessel usw. vorzieht. Die Furcht vor dem Kupfer ist übrigens unbegründet (vgl. ~Tschirch~, Das Kupfer vom Standpunkt der Hygiene usw.). Aus 5 Teilen frischer Wurzel erhält man c. 1 Teil fertige Ware (nach ~Woodcock~ 16%, nach ~Ravasini~ aus Winterwurzel 18-22, aus Sommerwurzel 12-14%). Die Stangen werden zwischen Lorbeerblättern in Kisten von 60, 110-120 kg verpackt. Das Gewicht der Lorbeerblätter darf nicht mehr als 3% des Gesamtgewichtes betragen. Außer in Stangen wird auch Succus in massa (blochi, pani) fabriziert (s. oben). Die Gesamtausfuhr Italiens an Succus betrug 1908 (nach Mitteilung des italienischen Handelsministeriums): 11664 Quintal (1 Qu. = 100 kg) im Werte von 1749600 Lire (1909: 13744 Quint.). Der meiste italienische Succus ging nach England (3102 Qu.), dann folgt Belgien, Österreich, Holland und Deutschland. 1910 existierten allein in Catania sieben Häuser, die Succus fabrizieren ließen (~Ravasini~). Zu der von ~Ravasini~ gezeichneten Karte der +italienischen Succusfabrikation+ (Fig. 33, S. 98) gibt dieser folgende Erläuterungen. Die Fabrik der Barone ~Compagna~ liegt bei Corigliano. Sie fabriziert die Primamarken +Duca di Corigliano+ (Stangen von 4, 3, 2 und 1 onze) und +Cassano+ mit Stern und einige Sekundasorten (s. d. Karte), Jahresproduktion: 1500-2000 dz. Nicht weit davon -- bei Isola Caporizzuto -- liegt die Fabrik des Barone ~Alberto Baracco~, die die berühmte Marke «Baracco» herstellt und in +Rossano+ befinden sich die Fabriken der Marchese ~G. Martucci~ und des Barone ~Amarelli~, aus der die guten Marken ~Martucci~, Barone ~Amarelli~ und ~G. Amarelli~ hervorgehen. Beide sollen mit Vakuumapparaten arbeiten. In der Nähe von Rossano liegen die Lakritzfabriken der Grafen ~d’Alife~ und von ~Zagarese~ & Co. Die erstere Fabrik macht die Marken Conte d’Alife, Solazzi und Favella, die zweite die Marke Zagarese, sowie die Fabrik des ~Francesco Pignatelli~ in Cerchiara di Calabria, in der die Marke V. Pignatelli hergestellt wird. Südlicher, bei Policoro, liegt dann die Fabrik von ~B. Berlingieri~, die die Marken Gerace (nach dem Orte an der Ostküste) und P. S. fabriziert. Ein Rest der alten Lakritzfabrikation in Ascoli ist die Fabrik ~R. de Rosa~ in Atri bei Teramo (in Abruzzo), die die Marken de Rosa und Regina herstellt. Die Marke Muzzi, ebenfalls aus Abruzzo, ist erloschen. In +Sizilien+ ist Catania Hauptort der Fabrikation. Die größte Fabrik ist die der ~Fratelli Caflisch~, die die vorzügliche Sorte Caflisch mit der Bezeichnung Sug pur macht. Mittelsorte ist G. Bongiorno, schlechtere: Vittoria (in kleinen Stangen von 6-8 und 15-17 g). Die Firma ~Bernardo Fichera~ fabriziert Marke Fichera, die Firma ~La Rosa Pastore~ die Marke La Rosa. Die Firma ~Gui Grasso~ soll die Fabrikation aufgeben wollen. [Illustration: Fig. 33 Die wichtigsten Fabrikationsorte des _Succus liquiritiae_ in Italien. Neben dem Orte ist der Fabrikant und neben diesem sind die von ihm fabrizierten Sorten angegeben. [+Ravasini+.]] In Messina wurden die Fabriken der Firmen ~Santo Franco~ (Marke S. Franco) und ~Salvago Nunzio e Co.~ (Marke Salvago) durch das Erdbeben vom 28. Dezember 1908 zerstört. Die Neffen des umgekommenen ~Santo Franco~ errichteten unter der Firma ~Fratelli Ainis~ eine neue Fabrik (Marke S. Franco). Die Fabriken von ~Sinibaldo Oddo~ in Termini Imerese (Marke Sinib. Oddo) und ~Vito Burgarella~ in Trapani (Marke Burgarella) sind eingegangen, da das Süßholz im Imeratal ausgerottet ist. Die Fabrik von ~Vincenzo Giuffrida~ in Caltagirone macht nur Brote à 5 kg (in Kisten zu 100 kg). Zwei österreichische Fabriken bestehen in Auspitz (Mähren). Englische Fabriken, die +meist mit Vakuumapparaten arbeiten+, bestehen in England (Yorkshire Lakrizen, Pontefract cakes, s. oben S. 84) und am Kaukasus, in Kasan und Astrachan, dann in Nazli, Sokia, Aidin und Alaschehr bei Smyrna. Auch Syrien fabriziert Succus (1901), dann Mesopotamien. Eine russische Fabrik, von einem Deutschen begründet und jetzt von der pharmazeutischen Handelsgesellschaft betrieben, besteht in Tiflis. Amerika erzeugt in Philadelphia und New York Succus aus eingeführtem, russischen, griechischen und kleinasiatischen Süßholz, ebenso Deutschland. Französische Fabriken bestehen in Nîmes (die Sorte «Bayonne» scheint jetzt verschwunden zu sein), spanische in Gerona und Vittonia. Die Fabriken in Sevilla und Saragossa gehören französischen Konsortien. In Griechenland wurde Succus in Patras dargestellt (1910 nicht mehr, ~Emmanuel~) und Morea (Gastuni) figurierte früher auch unter den Sorten (seit 1910 nicht mehr). Südrussische Marken sind z. B. +Sanitas Tiflis+, die als vortrefflich gilt, da die Fabrik mit modernen Einrichtungen (Vakuum usw.) arbeitet. In Deutschland sind Baracco, Marke J. G. ~Stern~, J. D. ~Riedel~ u. a. beliebt, in Österreich Martucci und Theseus (von ~Fritz~). Einige nicht italienische Firmen lassen sich in Italien Marken mit ihrer Firma herstellen, z. B. G. e R. ~Fritz-Pezoldt e Süss~, J. D. ~Riedel~, J. G. ~Stern~. Baracco ist am teuersten und wird oft nachgemacht, auch der Stempel (wegen des Markenschutzes) in Baraco, Barraco abgeändert. Die in Italien verbreitetste Marke ist jetzt de Rosa. Spanische Marken sind +Alicante+, +Careño+, +Zaragossana+, +Spaniola+, +Imit. Baracco+. Spanischer Succus heißt in Italien allgemein d’Alicante. Er gilt als schlechte Qualität. In Italien gelten als die besten Marken: Corigliano, Cassano, Baracco und Martucci. ~Hafner~ bezeichnete (Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1900) Cassano als minderwertig, Salvago als die beste. Die Einfuhr von Lakritzen nach +Hamburg+ betrug seewärts 1906: 3032, 1907: 3615, 1908: 3524 dz. Von der Einfuhr 1908 stammten aus Kleinasien 402, +Italien+ 1232, Rheinprovinz 1313, Frankreich 227, Großbritannien 196, Russische Häfen am Schwarzen und Asowschen Meer 73, Bremen 35, Griechenland und ionische Inseln 12, übrige Einfuhr seewärts 34. Mit der Eisenbahn und von der Oberelbe 354 dz. +Deutschland+ importierte 1909: 5817 dz Succus, davon 2902 dz aus Italien und 1548 aus der asiat. Türkei. +Frankreich+ importierte 1908: _Succus_ (jus de réglisse) 908705 kg, besonders aus Spanien und der Türkei, nur 66435 kg aus Italien. +Nordamerika+ importierte Licorice paste 1908: 644457, 1909: 551084 pounds. Fast überall wird der Succus nach der gleichen Methode dargestellt. Nur in Neuseeland wird (oder wurde wenigstens 1883) dem durch Auskochen mit Wasser erhaltenen, unter Zusatz von Schwefelsäure eingedampften, dann mit Alkohol gefällten und mit Pottasche neutralisierten Safte Stärke, Erbsmehl und Gummi zugesetzt. In Italien wird nahezu die ganze Süßholzernte auf Succus verarbeitet. Die extrahierten Rückstände dienen als Feuerungsmaterial, früher wurden sie zur Papierbereitung benutzt (~Mérat e Lens~). Dazu müssen sie sich, da die Bastfasern sehr lang und sehr zahlreich sind, gut eignen. =Lit.= ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie, III. Aufl. und Arch. Pharm. 1889. -- ~Sestini~, Gazz. chim. ital. 1878 (Jahresb. d. Ph. 1878). -- ~Woodcock~, Journ. d. pharm. chim. 13 (1886), 275 (Chem. Drugg.). -- ~Mérat-Lens~, Diction. univers. III; auch ~Fontenelle et Poisson~, Man. compl. du marchand papet. Paris 1828. -- Bereitung in Sizilien: Apoth. Zeit. 86. =Beschreibung der Droge.= Die Stangen besitzen je nach der Sorte einen verschiedenen Durchmesser und verschiedene Länge (11-20 cm lang und 1-2,5 cm dick). Sie sind schwarz, außen glatt, in der Wärme biegsam, trocken in der Kälte brechend mit muscheligem Bruch. Der Strich ist braun. Sie verlieren beim Trocknen bei 100° bis 20% Wasser, schwimmen auf Chloroform und sinken in Schwefelkohlenstoff unter. Bei 100° getrocknet beträgt das spez. Gewicht ungefähr 1,427 (~Flückiger~). =Chemie.= Kaltes Wasser entzieht dem Succus c. 60-75, bisweilen sogar bis 90% +lösliche Bestandteile+ (inkl. der Feuchtigkeit), Pontefract Cakes (Dunhills) z. B. geben 71% an kaltes Wasser. Die Stangen behalten hierbei, wenn man sie zwischen Holzwolle packt, ihre Form. Der Rückstand, der noch Spuren Glycyrrhizin enthält, besteht zum Teil aus +Stärkekleisterballen+, pektinösen und gummösen Substanzen, und enthält etwa so viel Asche als der Succus selbst (3,29% ~Flückiger~). +Unverkleisterte Stärke enthält er nicht.+ In Lösung geht Glycyrrhizin, Glukose, Saccharose, Mannit und deren Umwandlungsprodukte, welch letztere auch in Alkohol sich lösen. Ferner die oben (S. 90) genannten Begleitstoffe. Der wässerige Auszug gibt mit Weingeist eine Fällung. Das Rohglycyrrhizin wird aus ihm durch Schwefelsäure ausgefällt (Lakritzlösungen dürfen daher keine Mineralsäuren, aber auch keine Alkaloide zugesetzt werden!). Die gewaschene Fällung in Ammoniak gelöst und eingedampft gibt das im Handel als Glycyrrhizinum ammoniacale (~Merck~, ~Pégurier~) bekannte, in schwarze Lamellen gebrachte Präparat, das auch aus Süßholz dargestellt wird (in Frankreich als +Glyzine+ bekannt). Im Durchschnitt findet sich im Succus: 7-20, meist 10-14% Wasser, in +kaltem Wasser unlösliche Substanz+ 10-40, meist 17-33%, darin: c. 15% +gummöse Substanz+ und +Stärkekleister+ (1,33-35,5 [?] Stärke, ~Piltz~), dann 11 bis 16% +Zucker+ (~Piltz~), bisweilen aber nur 6-7%. Der Extraktgehalt schwankt zwischen 33 und 79%. Meist beträgt er 55-72%. Über den +Glycyrrhizingehalt+ können wir noch kein ganz sicheres Urteil abgeben, da eine ganz genaue Bestimmung desselben noch nicht gefunden wurde. Es kommt also sehr auf die Methode an. Bisher wurde immer nur Rohglycyrrhizin bestimmt (siehe Wertbest.). Es werden angegeben Prozente Ammoniumglycyrrhizat im Mittel: 5,8-(11,9) 20,8 (~Kremel~), 4,02-13,34 (~Py.~), 1,33-18,14 (~Piltz~), 3-30, meist 10-18 (~Prollius~), 15,8 (~Rennard~), 1,8-8,6 (~Schröder~), 6,4-27,78 (~Kinzey~), in einer Tifliser Marke Sanitas 30 (~Utescher~). In der Tabelle bei E. ~Schmidt~ (Ap. Zeit. 1900, 216): 6,6-14,7% (Salvago meist 10-13%). ~Parry~ gab (1910) folgende Zahlen: ----------------+------+-----+---------+--------+---------+---------- |Wasser|Asche|Unlöslich|Glycyrr-| Zucker | | |in Wasser| hizin | vor der |nach der | | | | |Inversion|Inversion ================+======+=====+=========+========+=========+========== Calabrischer |10,95-|5,95-| 17,95- | 9,95- | 11,90- | 14,50- Succus (Stengel| 13,60| 7,55| 25,15 | 12,50 | 13,50 | 15,50 u. Block) | | | | | | Anatolischer |16,95-|6,80-| 6,90- | 18,85- | 10,88- | 12,90- Succ. (Block) | 20,50| 7,22| 8,50 | 23,50 | 12,0 | 13,90 Spanischer | | | | | | Succus |8,55- |5,95-| 22,05- | 5,95- | 12,50- |14,45- (Block) |10,50 | 7,12| 26,55 | 6,65 | 14,50 | 15,25 ~Ella Eriksson~ fand mit Benutzung meiner Methode (siehe oben S. 90) in meinem Laboratorium (1910) in Cassano: 15,9-16,8% Glycyrrhizin (nach ~Cederberg~ bestimmt 12,8 bis 15,6%), 5,8-6,3% Fehlingsche Lösung in der Kälte reduzierende Substanz und 11,1-11,8% Fehlingsche Lösung bei kurzem Kochen reduzierende Substanz. Der Succus läßt sich nur schwer veraschen. Der +Aschengehalt+ wechselt sehr. Gute Sorten (z. B. Baracco) geben nicht mehr als 5% der lufttrockenen Substanz alkalische Asche. Die Asche des in Wasser unlöslichen Rückstandes beträgt etwas über 3% (~Flückiger~, s. oben), doch steigt die Gesamtasche oft auf 6, 8, 10, nach ~Madsen~ sogar auf 14%. Guter Succus gibt nicht mehr als 8%. Gefälschter Lakritzen hat oft weniger als 2% Asche, so daß auch eine untere Grenze verlangt werden sollte. In der Asche der echten Lakritzen finden sich 34-43% Kali (in der von gefälschtem 18-30%, ~Dyer~ 1888). Von Einfluß für die Zusammensetzung des Succus ist, ob derselbe durch kalte Extraktion der Wurzel, oder kaltes Auspressen des Saftes, oder Auskochen der Wurzel erhalten und ob das Auskochen lange oder kurze Zeit bei mäßigem oder starkem Feuer fortgesetzt wurde, endlich ob und wie der Saft geklärt, ob Teile des Saftes durch Ausfällen oder Koagulation abgeschieden und durch Filtrieren abgetrennt wurden und ob bei dem Eindampfen das Vakuum benutzt wurde oder nicht, bezw. bei starkem oder mäßigem Feuer eingedampft wurde. Daraus, daß ein einheitliches Verfahren nicht existiert, erklärt sich die außerordentliche Verschiedenheit der Handelsprodukte und der schon vor 60 Jahren gemachte, ganz berechtigte Vorschlag, den Succus selbst darzustellen event. nach einer Vorschrift der Pharmakopoee. Zugegeben mag werden, daß für die Festigkeit der Stangen ein gewisser Prozentsatz unlöslicher Substanz (wohl hauptsächlich Stärke und Pektinkörper) notwendig ist. Die Veränderungen, die die Bestandteile der Wurzel bei der Darstellung des Succus erleiden, sind noch nicht studiert. Ich habe Gründe anzunehmen, daß ein Teil des Glycyrrhizins gespalten wird. =Verfälschungen.= Dem Succus wird bisweilen, aber selten, Gummi, Dextrin, Stärkezucker, Gelatine zugesetzt (s. unten). Stärke erwähnt bereits ~Guibourt~, ~Woodcock~ Reis- und Weizenmehl, sowie Johannisbrotpulver, ~Vogl~ Mehl und Dextrin. Doch muß man hier vorsichtig sein mit dem Vorwurf der Verfälschung, da sich in Italien bisweilen die Arbeiter, welche das Ausrollen besorgen, die Hände mit Stärke einreiben (s. oben), um das Ankleben des Succus zu verhindern. Bisweilen (neuerdings selten) enthält der Succus Kupfer (Pharm. Zeit. 1894). Eine neuerdings von den Fabrikanten zur Erzielung größerer Festigkeit der Stangen beliebter Zusatz von 0,03% Gelatine dürfte kaum zu beanstanden sein. Früher wurden als Verfälschung angegeben: die Extrakte von Quecken, Löwenzahn und Cichorien, Schwefeleisen, Tonerde (~Wollweber~ 1862). =Schädlinge.= Oft wird alter Succus von _Sitodrepa panicea_ (I, S. 379), _Nicobium castaneum var. hirtum_ (I, S. 381) und einer anderen weißen Käferlarve (ebenda) befallen und zerstört. =Prüfung.= Im allgemeinen verlangt man jetzt von einem guten Succus, daß er höchstens 25% nicht in Wasser löslicher Substanzen enthalten soll (~Madsen~ fand 26-45%, ~Fromme~ dagegen nur 14,2-25,26%). Eine Wertbestimmung kann auf folgende Weise ausgeführt werden. 1 g lufttrockener, in möglichst kleine Stücke zerbrochener Süßholzsaft wird mit 150 g lauwarmem Wasser und 10 Tropfen Ammoniak übergossen, die Mischung öfters umgeschüttelt und nach 24 Stunden durch ein tariertes Filter von 10 cm Durchmesser filtriert; der Rückstand wird auf das Filter gespült und mit soviel Wasser nachgewaschen, daß das Filtrat 200 g wiegt. Das Gewicht des bei 100° getrockneten Rückstandes soll nicht mehr als 25 cg betragen. Werden 40 g des Filtrats auf dem Dampfbade zur Trockne eingedampft, so soll der Rückstand wenigstens 12 cg wiegen, 160 g des Filtrats, auf 10 g eingedampft, geben mit 30 g Weingeist vermischt, einen bräunlichen Niederschlag, welcher, mit Weingeist vollkommen ausgewaschen und bei 100° getrocknet, nicht mehr als 24 cg wiegen darf (Dextrin, Gummi) (Pharm. helvet. IV). Die Asche darf 6-8%, der Wassergehalt 17% nicht übersteigen. Für die +Bestimmung des Glycyrrhizins+ besitzen wir keine ganz zuverlässige Methode. Am besten hat sich bisher die gravimetrische Methode von ~Hafner~ bewährt, die für die Praxis leidlich zuverlässige Resultate ergibt. Ich habe sie etwas abändern lassen (vgl. die Dissertation von ~Cederberg~, Bern 1907). Meine oben (S. 90) erwähnte Methode muß noch an größerem Material durchgeprüft werden. Sie lieferte ~Ella Eriksson~ bei Cassano gut übereinstimmende Resultate. Da das trockene Süßholz c. 5,5-7% Glycyrrhizin enthält und ungefähr 25 bis 30% Extrakt gibt (in den Fabriken, wo anders gearbeitet wird, 16-20% der +frischen+ Wurzel), so müssten in gutem Succus etwa 16-21% Glycyrrhizin enthalten sein, vorausgesetzt daß das Glyzyrrhizin bei der Fabrikation intakt bleibt, was aber nicht der Fall ist. Tabellen über Analysen von _Succus liquiritiae_ finden sich im Kommentar zum deutschen Arzneibuch von ~Hager-Fischer-Hartwich~ 1896, II, S. 624, ~Wittstein~s Handwörterbuch d. Pharmakognosie S. 821 und bei ~E. Schmidt~, Apoth. Zeit. 1900, 216. Die Angaben von ~Parry~ s. oben (S. 100). =Lit.= Mit der Prüfung des Succus beschäftigten sich: ~Madsen~, Investigationes of Succus liqu. Kopenhagen 1881. -- ~Diehl~, Jahresb. d. Pharm. 1883, 269 (Seine Methode auch in ~Hager-Fischer-Hartwich~, Kommentar). -- ~Schröder~, Ebenda. S. 271. -- ~Py~, Journ. pharm. chim. 1897, 280. -- ~Piltz~ (1876, vgl. ~Wittstein~s Handwörterb. S. 821). -- ~Prollius~ in Fischer-Hartwich, Handb. d. pharm. Prax. -- ~Hager-Fischer-Hartwich~, Kommentar z. d. Arzneibuch 1896. -- ~Kremel~, Notizen z. Prüf. d. Arzneim. u. Komment. z. Öster. Pharm. Ed. VII, Arch. d. Pharm. 1889. -- ~Diehl~, Pharm. Rundsch. New York 1883. -- ~Kinzey~, Am. Journ. pharm. 1898. Journ. de pharm. 1898. 7. 304. -- ~Hafner~, Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1899 und 1900. Pharm. Centralh. 1899. -- ~Fromme~, Pharm. Centralh. 1901, 324. -- ~Trubeck~, Journ. Am. Chem. Soc. 1900 (Pharm. Zeit. 1900). -- ~Zetzsche~, Pharm. Centralh. 1901. 277. -- ~E. J. Parry~, The Liquorice-juice of commerce. Chem. and Drugg. 1910, 21. -- ~H. J. Möller~, ~Hager~, ~Utescher~, ~Fresenius~, ~Glücksmann~, ~Morpurgo~, ~Ledden Hülsebosch~, ~Stein~, ~Moore~, ~Tschirch~, ~Cederberg~, ~Eriksson~ u. and. =Anwendung.= Amerika braucht viel für Kautabak, Frankreich etwas für ein Getränk, den Coco, England für Porter und Ale. Das meiste wandert in die Pharmazie für die Süßholztabletten. China und Japan brauchen Succus in der Tusche- und Tintenfabrikation. =Geschichte=, s. Rad. liquiritiae. d) Drogen, welche Mannit enthalten. Auch die Mannose (s. oben S. 6) ist eine Hexose. Sie ist in der Natur selten frei zu finden (_Amorphophallus_), öfter in glykosidischer Bindung (_Sem. strophanthi_) oder als Polysaccharid (Mannane s. Membranine). Wohl aber spielt ihr Reduktionsprodukt, der d-Mannit, in der Drogenkunde eine Rolle, dessen Beziehungen zur Mannose der Vergleich der Formeln zeigt: H H OH OH d-Mannose: CHO--C--C--C--C--CH₂OH OH OH H H H H OH OH d-Mannit: CH₂OH--C--C--C--C--CH₂OH OH OH H H Der Mannit (Fraxinin, Syringin) ist also ein +Zuckeralkohol+. Er ist nicht sehr süß und bildet Nadeln oder rhombische Prismen, Schmelzp. 166°, die sich in 6,5 Teilen Wasser und 1500 Teilen absolutem Alkohol lösen. Er reduziert ~Fehling~sche Lösung auch in der Wärme nicht, wohl aber nach Oxydation mit Permanganat. 1. Eschenmanna. Manna (in zahlreich. Sprachen) -- Himmelsbrot, Himmelstau -- Manne -- Mana (span.). =Etym.= +Das+ (nicht die) _Manna_ von hebr. man, arab. mann = Geschenk des Himmels oder von hebr. man hu = «was ist das?» nach dem Ausrufe der Juden, als sie den ersten Mannaregen sahen (vgl. II. Mose, 16, IV. Mose, 11), so schon von ~Geoffroy~ gedeutet. _Manna_ bei ~Dioskurides~, ~Plinius~, ~Galen~ bedeutet stets eine geringere Sorte der betr. Droge, z. B. _Manna thuris_ (so auch bei ~Paulus Aegineta~), d. h. kleinkörniger _Weihrauch_. Die _Mannaesche_ hieß bei den Alten μέλεα (oder πολυμέλεα?). =Stammpflanze.= =Fraxinus Ornus L.= (Fraxinus panniculata ~Mill.~, F. florifera ~Scop.~, F. argentea ~Loss.~, F. vulgatior ~Seg.~, Ornus europaea ~Pers.~), Mannaesche, Frène à Manne, Manna ash. =Etym.= _Fraxinus_ leitet ~Isidor~ aber kaum richtig davon ab «quod magis inter aspera loca montanaque +fraga+ nascitur»; wahrscheinlicher klingen die Ableitungen von φράγμα, Zaun, weil der Baum für Zäune benutzt wurde, oder ῥῆγμα, Bruch, wegen der Brüchigkeit des Holzes. _Esche_, wohl urindogermanisch, +holl.+ esch, +isl.+ askr, +schwed.+ ask, +ahd.+ ask, asch, +mhd.+ eesch, eeisch, +altnord.+ ask-r, +engl.+ ash, +ags.+ aesc. (auch = Speer), bei der ~Hildegard~: asch, aska (vielleicht verwandt mit aesculus oder ὀξέα = Buche und Speer, ~Kanngiesser~). Die ursprünglichste Form scheint ås-is gewesen zu sein (~Hoops~). «Möglich ist, daß Speer die ursprüngliche Bedeutung gewesen ist, dann würde die Wurzel in as (= werfen, schleudern) enthalten sein» (~Grassmann~). Auch das lat. _Ornus_ (aus osinos) bedeutet sowohl Bergesche wie Speer (~Hoops~), ob von ὄρεκνος (= auf Bergen wachsend)? =System. Stellung.= +Oleaceae+, Oleoideae-Fraxineae. Sect. Ornus. Die Mannaesche ist ein mäßig hoher Baum (5-7, selten über 10 m) mit grauer glatter Rinde und unpaarig-gefiederten drei- bis vier-jochigen Blättern. Die Blättchen sind eiförmig, zugespitzt, gesägt. Die reichblütige überhängende Blütenrispe ist nicht länger als das Blatt. Sie sieht wie ein zierlicher Federbusch aus, was daher kommt, daß die Blüten 4-10 mm lange freie, schmal lanzettliche, hellgelblichweiße Kronenblätter und zwei Stamina mit sehr langen Filamenten haben. Der Baum ist in Südeuropa heimisch (waldbildend im Karst, in Kroatien, Slavonien, Dalmatien). Er findet sich auch im Tessin, Südtirol, Krain, Untersteiermark, Ungarn. Er wächst besonders an den nördlichen, westlichen und östlichen Gestaden des Mittelmeeres, von Valencia durch Südfrankreich bis nach Italien, von Istrien durch Dalmatien und die Donauländer bis Macedonien, Thessalien, Griechenland, Smyrna, Taurus, Libanon. Er hält nördlich der Alpen den Winter aus und ist ein beliebter Zierbaum. Aber er verträgt auch das afrikanische Klima und wird z. B. in Nordafrika kultiviert. Er blüht in Sizilien Ende März. _Fraxinus rotundifolia_ ~Lam.~ ist gewiß nicht spezifisch von _F. Ornus_ L. zu trennen. _Fr. americana_ ~Pers.~ ist gleichfalls, wie eine Reihe anderer von ~Persoon~ beschriebener Arten, mit ihr identisch, indem jene Formen irrtümlich als aus Amerika stammend angegeben werden (~Schumann~). Ob man die Varietät _Fraxinus Ornus var. rotundifolia_ als vornehmsten Mannalieferanten aufrecht erhalten kann, scheint mir sehr zweifelhaft, denn wie ~Hanbury~ 1872 feststellte, verdient keine der in Sizilien kultivierten Mannaeschen diesen Namen. In den Pflanzungen um Palermo fand ~Flückiger~ gerundete Fiederblättchen seltener als spitz-lanzettliche. Die Blattform variiert jedenfalls sehr. In Sizilien wird von _Fr. Ornus_ auch noch ein _Fr. fraxinaster_ unterschieden. In Sizilien meint man, daß _Fr. rotundifolia_ (der sog. amolleo) gute, _Fr. Ornus_ wildwachsend (frassino, orniello, avorniello) minderwertige Castelbuono- oder Frassino-_Manna_ liefere. =Lit.= ~Linné~, Spec. plant. I, 1057. -- Abbild. ~Berg-Schmidt~, Atlas, II. Aufl. Taf. 40 (dort auch die übrige systemat. Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpflanzen, Taf. 115. =Pathologie.= Unter den verschiedenen auf Zweigen und Stämmen von ~Fraxinus Ornus~ bekannten Pilzen scheint, unseres Wissens, keiner als Krankheitserreger eine wichtige Rolle zu spielen (~Ed. Fischer~). [Illustration: Fig. 34. Die Orte der Mannagewinnung in Nordwest-Sizilien. [+Ravasini.+]] [Illustration: Fig. 35. Mannaeschenpflanzungen (Frassinetti) aus der Umgebung von Cefalù in Sizilien. Die Arbeiter sind im Begriff Einschnitte zu machen (1910). [+Ravasini.+]] =Kultur.= Die _Manna_ liefernden Kulturen der Mannaesche (orniello, frassino della manna) liegen an der Nordküste von Sizilien und zwar im oberen Teile der Seezone oder dem unteren der Mittelzone. In der Seezone finden sich _Sumach_, _Oliven_, _Orangen_, _Korkeiche_, _Maulbeerbaum_; in der Mittelzone _Pistazien_, _Walnuß_, _Mandel_, _Kastanie_, _Johannisbrotbaum_. Die Mannaesche ist besonders mit _Olive_ und _Kastanie_ vergesellschaftet. Sie braucht keinen guten Boden und keine Düngung, wohl aber Sonne. Doch sind neuerdings Versuche mit Kalidüngung gemacht worden (Kali beeinflußt die Zuckerproduktion günstig). Die Sämlinge werden in Entfernungen von 1½-2 m oder noch weiter (3-4 m, ~Mariani~) gepflanzt. Die Mannaeschenpflanzungen (+Frassineti+) bilden lichte Haine (I, Fig. 17). Die unteren Äste werden bis zu einer Höhe von 2 m entfernt. Die Kulturen finden sich jetzt (Fig. 34) vornehmlich im westlichen Teile der Nordküste Siziliens bei Palermo, S. Maria di Gesú, gegen Valdese, dann in den Bezirken Torretta, Capaci, Cinisi, Terrasini-Favarotta, westlich von Palermo, dann östlich davon, bei Belmonte Mezzagno und vornehmlich bei Cefalù. Hier gehen sie weit in die Berge (bis 1100 m) hinauf nach Castelbuono, San Mauro und Geraci Siculo. Hier und bei Cefalù wird das beste _Manna_ gewonnen, bei Castelbuono (hier auch von wildwachsenden Bäumen) die geringeren Sorten (~Flückiger~). Im Distrikte Cefalù sind noch Castelverde, Pollina und Lascari zu nennen. Ganz im Westen wird _Manna_ im Bezirk Trapani (Castelamare del Golfo bei Alcano, Monte Giuliano) gewonnen (~Ravasini~). Da und dort scheint man auch mit Pfropfungen Versuche gemacht zu haben. Die Kulturen der Mannaesche, die zurzeit noch 4000 ha bedecken und in den genannten Gegenden die Haupteinnahmequelle der Bewohner bilden, weichen jetzt vielfach rentableren Kulturen, z. B. denen der _Orange_ (über die untergegangenen vgl. Geschichte). Doch sind allein in der Gegend von Palermo 2070 ha in Mannaeschenkultur und an der Einsammlung, die dort 980 dz pro Jahr beträgt, beteiligen sich, die Kinder nicht mitgerechnet, 800-900 Personen. Die +Mannagewinnung in Calabrien ist erloschen+. Eine minimale Menge wird noch gewonnen südlich von Neapel, in Cetara bei Salerno, in San Martino Valle Caudino bei Avellino und in Accettura bei Potenza (~Ravasini~). =Lit.= ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Arcuri~, Coltivazione del Frassino da Manna, Agricoltura meridionale 1879. [Illustration: Fig. 36. Mannastalaktiten am Baum (Sizilien). [Aus der Zeitschrift «Die Ernährung der Pflanze».]] =Gewinnung.= Wenn die Bäumchen 7-12 Jahre alt und wenigstens 2 m hoch sind und man die Stämmchen mit Daumen und Mittelfinger gerade umspannen kann, beginnt die Gewinnung. Schon 4 cm dicke Stämmchen geben reichlich _Manna_ und bleiben 12-20 Jahre ertragsfähig. Dann wird der Baum geschlagen. Aus dem Stuppen entwickeln sich neue Triebe, die nach 4-5 Jahren angeschnitten werden können. Das Anschneiden geschieht folgendermaßen: Mit einem gekrümmten scharfen und großen Messer (I, Fig. 150), das mit einer oder beiden Händen geführt wird, macht man im Juli, August und September frühmorgens zunächst an der Basis des Stämmchens einen Querschnitt durch die ganze Dicke der Rinde, bei den jüngeren Bäumen um ⅓, bei den älteren um ¼ des Umfanges und fährt nach oben aufsteigend fort, indem täglich vormittags ein neuer Horizontalschnitt gemacht wird (Fig. 35). Die Einschnitte sind etwa um Fingerbreite oder etwas weiter (1-4 cm) voneinander entfernt. Sie werden entweder genau horizontal oder etwas schief geführt. Wenn die eine Seite bis zur Ansatzstelle der Äste mit Einschnitten versehen ist, werden dieselben auf der nächst anstoßenden Seite in der gleichen Weise gemacht. Die Anzahl der Einschnitte beträgt pro Baum oft 90. Ein Arbeiter kann an einem Vormittag 4000 Bäume verwunden. Aus den Einschnitten fließt eine braune, bläulich fluoreszierende Flüssigkeit, die in wenigen Stunden fast weiß und kristallinisch wird und in einigen Stunden ihren anfangs bitterlichen Geschmack verliert. An geneigten Ästen treten hierbei natürlich stalaktitenartige Bildungen (Zapfen, Canoli, daher vielleicht canelata?) auf (Fig. 36), das meiste aber rinnt etwas an dem Stamme herab und erstarrt auf der Oberfläche in Form rinnenförmiger (daher cannellata, M. in cannoli) Stücke, die auf der einen Seite den Abdruck der Oberfläche des Baumes, auf der anderen wulstige Erhebungen zeigen (Manna cannellata, oder lat.: cannulata). Ob die früher sicher geübte Sitte, in die Wunde einen Grashalm (canna) einzuführen und an ihm das _Manna_ erstarren zu lassen, wie es ~Pomet~ 1694 abbildet, noch jetzt geübt wird, weiß ich nicht. Ich habe niemals Halme oder Höhlungen, die von herausgelösten Halmen herrühren könnten, in Handelsmanna gesehen. ~Ravasini~ sagt mir, daß die Sitte nicht mehr besteht, auch ~Mariani~, der die Mannahaine 1909 besuchte, erwähnt sie nicht. Das vom Stamme oder den Ästen herabtropfende _Manna_ wird von daruntergebreiteten Ziegeln oder den Stengeln (pali) des Feigenkaktus (_Opuntia vulgaris_) aufgefangen (Manna in sorta). Jüngere Bäume (des amolleo) liefern das beste _Manna_, ältere (des frassino) die geringeren, zum Teil schmierigen Sorten: Manna frassino, M. a sminuzzo (von sminuzzare = zerkleinern), M. in frasca (= Zweig), M. in grosso usw. Das Einsammeln (Fig. 37) geschieht bei heiterem Wetter in Zwischenräumen von mehreren Tagen oder wöchentlich bzw. alle 10 Tage von Mitte Juni bis Mitte September. Beim Biegen der Stämmchen lösen sich die Mannastücke von selbst ab (Cannelata). Das Haftenbleibende wird mit einem Spatel abgekratzt (Rotami), die kleineren Stücke davon sind M. in lagrime. Die Arbeiter tragen meist zwei aus Baumrinde gefertigte Röhren oder andere Behälter an einem Bande über die Schulter. In die eine legen sie die sorgfältig vom Baume gelösten weißen Stücke, in die andere die meist gefärbten, herabgeflossenen Massen. Diese bilden die beiden Handelssorten. Droht Regen, der ja das _Manna_ auflösen und fortführen würde, so wird sofort jeder verfügbare Arbeiter aufgeboten und man rettet was zu retten ist. In den Eschenhainen ist daher auch in der Nacht eine Wache aufgestellt, die eine Glocke zieht. Sobald die Glocke ertönt, eilt alles herbei. Die Handelsberichte berichten oft von durch Regen gestörten Ernten. Der Preis steigt alsdann rasch, da die Produktion manchmal (z. B. 1901) auf ¼ sinkt. Zu einer Mittelernte gehören mindestens 4-5 ungestörte Einsammlungen. Auch anhaltende Trockenheit beeinflußt die Produktion ungünstig. Das aus den untersten Einschnitten des Stammes, sowie aus älteren Bäumen gewonnenes _Manna_ ist unreiner, trocknet schwer aus, bleibt daher mehr oder weniger feucht und schmierig. Der aus den oberen Wunden ausgeflossene Saft, besonders jüngerer Bäume, gibt das beste, reinste, rasch austrocknende, durch und durch kristallinisch erstarrende _Manna_. Das besonders im August und September gesammelte _Manna_ wird dann in der Sonne getrocknet. Ein Hektar enthält etwa 5000 Bäumchen (oder weniger), die 80-100 kg Manna liefern. Auf 4,5 kg Manna in canoli kommen 85,5 Manna in sorta. Die Mannaproduktion geht, da unrentabel, zurück. Der Export beträgt aber immer noch c. 1 Mill. Lire (~Mariani~). Castelbuono produziert allein c. 2000 dz. Angeblich soll _Manna_ auf _Fraxinus Ornus_ auch durch den Stich der _Cicada Orni_ entstehen. Ich glaube, daß +jede+ Verwundung bei den Oleaceen die Mannitproduktion steigert. Unsorgfältig wird _Manna_ in Castelbuono gesammelt. Man kratzt die Ausscheidungen in toto von der Rinde und sortiert dann in bessere Stücke (M. Castelbuono scelte, d. h. auserlesene) und schmierige (M. frassino, bei Venedig: M. sporca [= schmutzige Manna] genannt). [Illustration: Fig. 37. Ablösen des Manna in Sizilien. [Aus der Zeitschrift „Die Ernährung der Pflanze“.]] Ein neuerer Bericht von ~Ward~ lautet: Das Manna fließt aus Schnitten, die an zehnjährigen Bäumen quer durch die Rinde in der Ausdehnung von etwa ⅓ der Peripherie täglich gemacht werden, -- während der Saison, die im September endigt, täglich etwa 45 --. Die am Baume erhärtende Masse bildet die _Manna cannoli_, die bei feuchtem Wetter herabfließende die _Manna rottami_ (= Bruchstücke, «Bruchmanna»). Im folgenden Jahre werden frische Einschnitte neben denen des Vorjahres gemacht und im dritten Jahre wird der Prozeß an dem noch uneingeschnitten gebliebenen Reste der Rinde wiederholt, dann der Stamm nahe der Wurzel gefällt. Jede Wurzel treibt dann mehrere, meist vier neue Stämme. Als Nebenprodukt erhält man nach ~Ravasini~ bei der Mannaernte ein honigartiges, nicht erhärtendes Sekret von süßem Geschmack, das +Mielocco+ genannt wird. Dieses wird in hohlen Stengeln von _Opuntia Ficus indica_ (sog. pali) aufgefangen und hat den Vorteil, keine fremden Beimengungen mit sich zu führen. Es wird gewöhnlich der M. rottami beigemengt. =Lit.= ~Langenbach~, Pharm. Zeit. 17, 38, Jahresber. d. Pharm. 1872, 137. -- ~Cleghorn~, Transact. Bot. Soc. Edinburgh. 1868/69, Jahresb. d. Pharm. 1870, 144. -- ~Stettner~, Arch. Ph. 1848, 194. -- ~Flückiger~, Arch. Pharm. 1889, 1028 u. Pharmakognosie. -- Über die Mannaproduktion in Calabrien: ~Hanbury~, On calabrian Manna. Science papers, p. 362; in Sicilien: ~Ward~, Pharm. Journ. 1893, 381 (Pharm. Zeit. 1894, 45). -- ~Mariani~, Über d. Mannabaum u. s. Kultur in Die Ernähr. d. Pflanze 5 (1909) S. 25. =Handelssorten.= Der italienische Handel unterscheidet Capaci cannolo, C. rottami, Geraci cannolo, G. rottami, G. lagrime, Castelbuono scelta. Der deutsche Handel unterscheidet jetzt +Manna cannellata electa+ (_in lacrimis_, Tränenmanna) und +in fragmentis+ (_in granis_, _guttis_, Tränenbruch), dann +Gerace optima+ (feine rottami) und +Gerace II+ (frassino). Die Gerace (richtiger Geraci) wird auch (fälschlich) als calabrina bezeichnet oder gar als Calabre Gerace (!). Die Cannellata ist oft doppelt so teuer als die Gerace. Die billigste ist die Castelbuono. Früher wurde _cannellata_, _gerace_, _calabrina_, _communis_, _capace_ (diese weich wie Terpentin) unterschieden, später dann _cannellata_ und _pinguis_ (_sordida_). Die Händler unterscheiden die Handelssorten auch nach den Orten, wo sie gewonnen wurden. Das Manna kommt in Kisten zu 30, 50 und 90 kg in den Handel. Allein aus Cefalù wurden in den letzten zehn Jahren 3000 dz Cannellata und 2000 dz Frassino exportiert. +Italien+ exportierte _Manna_ 1907: 2320, 1908: 1776, 1909: 2432 Quint. +Deutschland+ führte 1909: 372 dz +Manna+ aus Italien ein. +Frankreich+ importierte 1908 41737 kg. Eine +künstliche+ _M. cannellata_ wird in Italien in der Weise dargestellt, daß man _M. calabrina_ im zehnfachen warmen Wassers löst, die Lösung koliert, mit Tierkohle digeriert, mit Eiweiß klärt, stark eindampft, mit der Masse Stäbchen begießt und das Übergießen nach dem Erhärten jeden Aufgusses solange fortsetzt, bis man die nötige Dicke erhalten (Nieuw Tijdschr. Pharm. 1885). Neuerdings kommt jetzt aus Italien auch eine «_Manna pura_» in den Handel, die in der Weise dargestellt wird, daß man das _Manna_ löst, filtriert, eindampft und Brote zu 1 kg formt. Sie ist 15% teurer als _Manna cannellata_. Schlecht schmeckendes _Manna_ kann man durch Behandeln der wässerigen Lösung mit Tierkohle reinigen (~Hirsch-Schneider~, Kommentar 1891). =Beschreibung der Droge.= Gutes Eschenmanna bildet flache oder rinnenförmige oder stalaktitische, trockene, leicht zerreibliche, auf dem Querbruch bisweilen geschichtete Stücke von gelblich-weißer Farbe, honigartigem Geruche und süßem, schwach herbem Geschmacke. Die geringen Sorten bilden mehr oder wenig gelb-bräunliche, körnige, bisweilen ziemlich weiche oder gar schmierige Massen. Oft sind helle Körner durch eine bräunliche Masse verklebt. Die Arzneibücher verlangen meist nur die _M. cannellata_. Zerdrückt man ein Körnchen Manna in einem Tropfen Öl und betrachtet es unter dem Mikroskop, so sieht man zahlreiche, wohlausgebildete Kristalle und deren Fragmente, betrachtet man ein Körnchen _Manna_ in Wasser, so findet man meist einige Gewebsfragmente, vorwiegend des Holzkörpers der Mannaesche und Pilzsporen (Pharm. helv. IV), bisweilen auch Calciumoxalatkristalle und Stärkekörner. Man bewahrt _Manna_ über Kalk auf (Ph. helv. IV). Gut getrocknetes _Manna_ findet sich jetzt in Blechbüchsen im Handel (~Caesar~ und ~Loretz~). [Illustration: Fig. 38. Herstellung der Mannit-Coni bei F. +Giglio+ e Co. in Cefalù (Sizilien).] =Chemie.= Der wichtigste Bestandteil des Eschenmanna ist der +d-Mannit+. Derselbe wurde von ~Proust~ entdeckt (1806) und ist identisch mit dem Fraxinin, Granatin, Primulin, Syringin und Graswurzelzucker. Die Mengen, die davon in der _Manna_ gefunden wurden, werden sehr verschieden angegeben. Ganz reines weißes _Manna_ bester Qualität soll bis 90% enthalten (~Flückiger~), bei schlechter sinkt der Gehalt auf 30% und weniger. Alle diese Angaben bedürfen einer Revision, denn ~Tanret~ fand 1903 zwei neue krist. Zucker darin in beträchtlicher Menge: +Manneotetrose+ (Mannatetrasaccharid C₂₄H₄₂O₂₁, F. 167, wasserfrei α_{D} = +150°, vgl. weiter unten) und +Manninotriose+ (Mannatrisaccharid C₁₈H₃₂O₁₆, α_{D} = +167°, vgl. weiter unten). Das _Manna_ in Tränen besteht zu c. ⅙, das _Manna_ in Körnern zu ⅓ aus diesen Zuckern. Nach ~Tanret~ enthält gewöhnliches _Manna_ 40, _Manna_ in Tränen 55%, +Mannit+, 3 bzw. 2,2% +Glukose+, 3,4 bzw. 2,5% +Lävulose+, 16 bzw. 12% +Manneotetrose+, 16 bzw. 6% +Manninotriose+, 2 bzw. 1,5% +Asche+, 0,1 bzw. 0,05% Harz, 10% Feuchtigkeit und 10% noch zu untersuchender Körper. Früher (1890) wurde in _Manna_ gefunden: 11,8-11,31% +reduzierender Zucker+ (~Butler~); im allgemeinen schwankt der Gehalt daran zwischen 2 (bei gutem) und 20% (bei schlechtem _Manna_). ~Backhausen~ hält den Zucker für Traubenzucker, ~Buignet~ für Invertzucker. Dann in geringeren Sorten: +Rohrzucker+, viel +Lävulose+, +Dextrin+ (~Buignet~ 1868, ~Flückiger~ fand +kein+ Dextrin), +Schleim+, der mit Salpetersäure Schleimsäure liefert (~Flückiger~), Spuren +Zitronensäure+ und des aus der Rinde stammenden, fluoreszierende Lösungen gebenden Glykosids +Fraxin+, das bei der Hydrolyse in Fraxetin (ein Methyldioxycumarin) und Traubenzucker gespalten wird (fehlt in altem _Manna_, ~Flückiger~). ~Thénard~ fand in schlechtem _Manna_ einen ekelerregenden Körper bis 1%. Schon ~Rebling~ fand, daß, je besser das _Manna_ ist, um so mehr Mannit und um so weniger Zucker in ihm enthalten ist. Er fand in _Manna cannellata_ 82% Mannit und 2% Zucker; in _M. Gerace_ 57 bzw. 8%, in _M. commun._ 50 bzw. 18%, in _M. Capace_ 37,5 bzw. 30%. Vier italienische Fabriken (2 in Mailand, 1 in Genua, 1 in Cefalù) verarbeiten Manna auf Mannit, der in coni e pani und in tavoletti in den Handel kommt. Die +Coni+ (= 200-400 g) sind in den Fig. 38 und 39 dargestellt. Die tavolleti sind Tafeln von 25, 50 und 100 g. Der +Aschen+gehalt des Manna schwankt zwischen 0,07 und 5% (~Dieterich~). Nur bei den schlechten Sorten steigt er über 3 (~Hauke~). Den +Feuchtigkeits+gehalt gibt Ph. helv. IV auf höchstens 10% an. =Lit.= ~Tanret~, Compt. rend. 134, 1586, Bull. soc. chim. (3) 27, 947. -- ~Rebling~, Jahresber. d. Ph. 1855, 44. -- ~Butler~ in ~Flückiger~, Pharmakognosie (III), 27. -- ~Buignet~, Journ. pharm. 7, 401 und 8, 5. -- ~Flückiger~, Arch. Pharm. 200 (1872) 159. -- (Asche) ~Hauke~, Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1902 und ~Dieterich~, Helfenb. Ann. 1905 u. 1906. -- ~Proust~, Ann. chim. phys. 57, 143. -- ~Bouillon la Grange~, Journ. ph. 3 (1817), 10. (Erste Erwähnung kristallisierten Mannits «Manne pure»). -- Ältere Analysen von ~Fourcroy~ und ~Vauquelin~, ~Bucholz~, ~Leuchtweiss~. -- Mikroskop. Charakteristik auch bei ~Kraemer~, Proc. Am. Ph. Ass. 98, 334. [Illustration: Fig. 39. Trocknen der Mannit-Coni bei F. +Giglio+ e Co. in Cefalù (Sizilien).] Bei der Mannaesche entsteht der d-Mannit in größerer Menge erst infolge der Verwundungen, ist also ein pathologisches Produkt. Doch scheint er in Organen, besonders der Rinde, der Oleaceen (_Olea_, _Phyllirea_, _Fraxinus_, _Syringa_) normal vorzukommen -- das Fraxinin ist unreiner Mannit. Mannit scheint weit verbreitet zu sein (~Czapek~). Er findet sich auch bei _Evonymus_arten, _Platanus orientalis_, im Kambialsafte der Fichte (~Kachler~), der _Cort. canellae_ (~Meyer~ u. ~Reiche~), der Rinde von _Genipa brasiliensis_ (~Kwasnik~) und _Basanacantha spinosa_ (~Grützner~), in den Früchten von _Coffea arabica_ (2,2%, ~Boussingault~), von _Prunus Laurocerasus_ (~Vincent~ und ~Delachanal~), _Hippophaë rhamnoides_ (~Erdmann~), in _Aconitum_knollen (~Flückiger~), im _Süßholz_ (~Tschirch~), in _Rhiz. graminis_ (~Völcker~), _Sellerie_ und _Daucus Carota_ sowie in _Laminaria_- und _Fucus_arten (~Stenhouse~). d-Mannit ist bei zahlreichen höheren Pilzen ein wichtiger Reservestoff, der bisweilen bis zu 20% der Trockensubstanz ausmacht. Das Bakterium der Mannitkrankheit des Weines bildet aus Fruktose Mannit. Über das Vorkommen von Mannit in verschiedenen Vegetationsperioden verdanken wir ~de Luca~ Untersuchungen. Daß bei den _Oliven_ Mannit in Fett übergeht, zeigte ~Gerber~ durch genaues Studium des Respirationsquotienten. =Lit.= ~Czapek~, Biochemie. -- W. ~Meyer~ u. ~von Reiche~, Lieb. Ann. 47 (1843), 234. -- ~Völcker~, Über das Vorkommen von Mannit in den Wurzeln von Triticum repens. Ann. d. Chem. 59 (1846), S. 380. -- ~Stenhouse~, Lieb. Ann. 51 (1844) und 91 (1854), 255. -- ~Paschkis~, Pharm. Centrh. 1884, 193. -- ~Kachler~, Monatsh. d. Chem. 7 (1886), 410. -- ~Jandrjer~, Bot. Jahresb. 1893 II, 461. -- ~Kwasnik~, Chem. Zeit. 1892, 109. -- ~Grützner~, Arch. Pharm. 1895. -- ~Luca~, Compt. rend. 55, 470 u. 506. -- ~Peckolt~, Mannithaltige Pflanzen Brasiliens. Zeitschr. Österr. Apoth. Ver. 1896. -- Zusammenstellung d. Vorkommens von Mannit in ~Fehling~s Handwörterbuch IV, 265. =Prüfung.= Die Bestimmung des in Alkohol unlöslichen Teiles («Rohmannit») kann nach ~Dieterich~ erfolgen (Helfenb. Ann. 1893). Gutes _Manna_ soll mindestens 70-75% Rohmannit enthalten. Werden 2 g _Manna_ mit 2 g Wasser und 40 g Weingeist eine Stunde am Rückflußkühler gekocht, heiß durch gereinigte Baumwolle filtriert, Rückstand und Filter mit 10 g heißem Weingeist nachgewaschen, so soll nach dem Verdunsten der Flüssigkeit das Gewicht des bei 100° getrockneten Rückstandes mindestens 1,5 g betragen, was einem Minimalgehalt von 75% (Roh-) Mannit entspricht (Ph. helv. IV.). _Manna_ darf weder Stärke, noch Mehl, noch Honig enthalten. Der Ricettario fiorentino von 1498 (I, S. 794) erwähnt feingepulvertes Süßholz als Verfälschungsmittel des _Manna_, ~Meunieur~ (1842) Stärkezucker, ~Frickhinger~ neuerdings Weizenbrotteig, ~Jandous~ Traubenzucker. =Anwendung.= _Manna_ ist ein gelindes Abführmittel, das oft mit _Senna_ kombiniert wird. =Geschichte.= Die Alten glaubten, daß _Manna_ vom Himmel fällt: «Jupiter melle pluit» sagt ~Galenus~ (Lib. 3 De alimentis). Über das _Manna_ der Bibel vgl. weiter hinten. Was das mnn, das ~Ebers~ mannu liest, an den Wandungen des Laboratoriums im Tempel von Edfu war, wissen wir nicht. Es soll den Antakörnern (vom Nehabaume) gleichen, doch wissen wir nicht, was dies war (_Weihrauch_?), auch soll die Lesart anta (nach ~Spiegelberg~) falsch sein und das Wort ᶜntjw (vokalisiert etwa: ᶜᵃnt^êj^êw) lauten. Weihrauch wird meist sntr oder ʿnt_ỉ_ geschrieben. ~Brugsch~ und ~Loret~ halten mnn für Erdpech, nicht für _Manna_. Es war wohl ein Harz. Die älteste sichere Erwähnung eines süßen _Manna_ ist wohl in Suśrutas (I, S. 505) zu finden, wo süße Exsudate von _Anethum Sowa_, _Cordia latifolia_ und «_a foliis_» erwähnt werden. (Solche _Manna_ von den Blättern «di fronda» findet sich noch in einer Taxe von Rom 1558 I, S. 188.) Aber sowohl dieses _Manna_ wie das bei den Arabern des Mittelalters, ~Ibn Baithar~ (I, S. 608), ~Amran~ (I, S. 598) und ~Serapion~ erwähnte, als auch die oftmals (Alphita, Frankfurter Liste, Braunschweiger Inventar, bei ~Cordus~, ~Schröder~) genannten _Mannas_, besonders _Manna granata_, _granulata_ oder _mastichina_ sind sicher kein Eschenmanna, sondern persische oder syrische Produkte, vornehmlich das Alhagimanna (s. weiter hinten), dann Cedernmanna. Sie standen in hohem Ansehn als gelinde Abführmittel und wurden auch noch, als zuerst das calabrische, dann das sizilianische Eschenmanna in Aufnahme gekommen war, viel benutzt. Noch 1578 gibt ~Acosta~ an, daß das beste _Manna_ aus dem Orient über Venedig komme. Aber weder er noch ~Garcia da Orta~, noch früher ~Avicenna~, unterschieden die Mannen gut. In dem Frankfurter Catalogus von 1582 ist die _Calabrina_ als die schlechteste, die _Brianzona_ als mittelmäßige, _granulata_, _granata seu mastichina_ als die beste bezeichnet. Dagegen bezeichnet ~Wecker~ 1574 im Antidotarium (I, S. 807) die calabrische als die beste. ~Schröder~ führt in seiner Pharmakop. medic. phys. noch 1649 _Tereniabin_, _Manna granata_ und _mastichina_ neben der calabrischen auf. In der ersten +brandenburgischen Taxe+ 1574 steht: _Manna syriaca id est mastichina optima_ (M. de levant.) und _M. calabrina non adulterata_ (gemein gut Manna). In der Reformatio von +Worms+ 1609 steht _M. granata sive granulata_, _M. mastichina_ (die best M., die sich den Mastixkörnlein vergleicht), _M. calabrina_ (die allerschlechst und geringst M.). Der +Ricettario fiorentino+ von 1567 (I, S. 794) erwähnt neben Manna di Soria solche von Cosenza di Calauria. Zuerst wurde also Eschenmanna in Calabrien gewonnen (~Hanbury~). ~Wenrich~ meint, daß die Mannaesche nebst dem Zuckerrohr durch die Araber nach Sizilien gebracht wurde (die Pflanze ist aber in Sizilien heimisch). Die früheste (aber zweifelhafte) Erwähnung des sizilianischen _Manna_ stammt aus dem IX. Jahrh., wo es unter den Dingen genannt wird, die die Venetianer in Sizilien holten (~Marin~). Nicht erwähnt wird sizilianisches _Manna_ von ~Pegolotti~ (c. 1340), ~Antonio da Uzzano~ (c. 1442) u. and. Auch bei ~Saladin~ (Compendium aromatariorum 1488) und ~Pontano~ wird nur calabrisches Eschenmanna erwähnt und bei ihnen wie bei ~Matthioli~ (Comment. Venet. 1565 lib. I), wie es scheint, nur solche, die freiwillig an Blättern, Zweigen und am Stamme austrat. Ebensolches («di fronde» und «di corpo») findet sich auch in der römischen Taxe vom Jahre 1558. In ~Saladins~ Compendium aromatariorum wird der Mai als Sammelmonat des _Manna_ genannt: «Collige etiam in isto mense _mannam_ tam in oriente quam in +Calabria+, quia tunc ros ille preciosus de celo cadit». Ein Zeitgenosse ~Saladins~, ~Giovanni Gioviano Pontano~, verherrlichte in dem Gedichte «de pruina et rore et manna» die Einsammlung des _Manna_ durch die calabrischen Bauern. Der Brauch, die Rinde der Stämme durch Einschnitte zu verwunden, sog. «_Manna forzata_» zu erzeugen, kam Mitte des XVI. Jahrh. auf. 1691 betrug die bei Campana und Bocchiglioro in Calabrien gesammelte Menge 30000 Pfund (~Hanbury~). Im XVIII. Jahrh. mußte der gesamte Ertrag der Krone abgeliefert werden (~Flückiger~). ~Hanbury~ resümiert: Eschenmanna wurde zuerst in der ersten Hälfte des XV. Jahrh. und zwar in Calabrien gesammelt («_Manna_ nostra aetate coepit in Calabria provenire» sagt 1470 ~Raffaele Maffei Volaterranus~). Das Einkerben behufs Vergrößerung des Ertrages ist dort vor Mitte des XVI. Jahrh. nicht bekannt. In Sicilien wurde _Manna_ erst sehr viel später produziert. Es wird zuerst als _Manna forzata_ bei ~Boccone~ 1697 erwähnt, der als Produktionsorte: Giachia, Jeraci, Castel Buono, S. Mauro, Mistretta, Carini und Capaci angibt, also ungefähr die gleichen Orte, wo noch heute _Manna_ gesammelt wird (s. oben). ~Annibale Brigante~ zeigte, daß das freiwillig austretende mit dem durch Einschnitte erzeugten _Manna_ identisch ist. ~Pomet~ erwähnt 1694 _Manna_ von Calabrien (Galliopoli au Mont Saint Ange) und Sizilien und bildet die Gewinnung mittelst der Canna ab (Hist. gen. d. Drog. p. 236). Auch ~Geoffroy~ gedenkt des sicilianischen Manna. Ende des XVII. Jahrh. dominierte dieses Manna bereits. ~Pomet~ erwähnt allerdings noch: _Manne de la Tolfe_ (fälschlich = _Manne de Briançon_ gesetzt), _Manne liquide_ = Tereniabin (s. weiter unten). ~Boccone~ erwähnt 1697 von Calabrien: _Manna di Corpo_ (das beste, aus kleinen Wunden freiwillig ausfließend), _M. forzata_ («wie Eiszapfen», durch Einschnitte mit einem dreischneidigen Messer ≡ oder in Form von ̭̂), _M. forzatella_ oder _di foglio_ (freiwillig aus den Blättern der wilden Orni ausfließend). Im XVIII. Jahrh. wurde in Calabria citra am Golfe von Taranto, besonders in dem Territorium von Rossano, dann bei Corigliano, Cariati und Cosenza (~Boccone~ erwähnt noch Lucciro, Tarsia, Taverna, Castrovillari, Viesti, zwischen Bari und dem Monte S. Angelo) viel _Manna_ gewonnen (~Riedesel~, ~Cappel Craven~). Die sicher bis in den Anfang des XIX. Jahrh. blühende Mannaindustrie Calabriens war, wie ~Hanbury~ 1872 an Ort und Stelle feststellte, damals schon so gut wie erloschen. Man sammelte von den «ornelli» nur noch ganz geringe Mengen für den eigenen Gebrauch im Gebiete von Rossano, ja die Regierung hatte sogar das Herstellen von Einschnitten verboten. Auch die Mannaproduktion in den Maremmen von Toscana ist erloschen. Ebenso die im XVI. und XVII. Jahrh. blühende Mannagewinnung im Kirchenstaat (S. Lorenzo) und in Cività vecchia (Manna von Tolfa). Im XVIII. Jahrh. unterschied man Calabrina-, Tolfa- und Puglia-Manna. ~Boccone~ erwähnt 1697 als Produzenten von _Manna_ noch: S. Felicita, Tolfa, Castro, Palombara, Vicovaro, Monte flavio, Cori, Albano, Montecelle, Montorio, Sassa und die Seeseite von Siena. ~Boccone~ beschreibt die Gewinnung des Manna von Tolfa, das mit dem _Manna forzata_ Calabriens übereinstimmt, durch täglich zwei Einschnitte an der Ostseite des Stammes. Daß _Manna_ +nicht+ vom Himmel fällt, sondern der Succus concretus fraxini ist, behaupteten schon ~Angelus Palea~ und ~Bartholomaeus ab urbe vetere~, zwei Franziskaner, die 1543 einen Kommentar zu ~Mesuë~ schrieben, und ~Donatus Antonius ab Altomari~, medicus et philosophus Neapolitanus, zeigte c. 1558 durch einen Versuch, indem er die Bäume mit Tüchern bedeckte und doch _Manna_ darauf fand, daß dies richtig ist. Des ~Altomari~ Beobachtungen bestätigten ~Goropius~, ~Lobelius~, ~Pena~, ~Costaeus~ u. and. Trotzdem wird noch 100 Jahre später im Antidotario romano das _Manna_ immer noch als Tau bezeichnet, der vom Himmel fällt. Der erste, der deutlich die abführende Wirkung des _Manna_ erwähnt, ist ~Actuarius~ (XIII. Jahrh., I, S. 792), doch bezieht sich die Angabe nicht auf Eschenmanna, ebensowenig wie die analogen Bemerkungen der Araber. Die purgierende Wirkung des Eschenmanna behandelt zuerst ausführlich ~Rolfink~ (1667, De purgant. vegetabil.). Die Spagyriker destillierten das _Manna_ (vgl. I, S. 869). ~Geoffroy~, der in seiner Materia med. das _Manna_ sehr eingehend behandelt, teilt eine pyrochemische Analyse des _Manna_ mit. Bei den Chemikern des XVI. Jahrh. galt die Bezeichnung «Manna» für eine besondere Form «Salz» oder «Gummi». ~Pedemontanus~ nennt (I, S. 879) die Benzoësäure «mannaartig». =Lit.= ~Ebers~, Durch Gosen zum Sinai. Leipzig 1871. -- ~Brugsch~, Hieroglyph. Wörterbuch, -- ~Loret~, Rec. d. trav. relat. à la philolog. et archéol. égypt. 16. p. 158. -- ~Hanbury~ (Pharm. Journ. 1869), Arch. Pharm. 1870, 80. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Sylvii Bocconis~, Curiöse Anmerkungen über Ein unn ander natürliche Dinge 1697. I Anm. von der Italiänischen Manna. So in diesem Seculo zusammlen angefangen worden. -- ~St. F. Geoffroy~, Materia med. I, p. 498 (dort die Observationes des ~Altomari~). 2. Australisches Manna. Dieses Manna (Outeman genannt) findet sich an einer Polygalacee, _Myoporum platycarpum_ ~Rob. Brown.~, dem sog. Sandelholzbaume Australiens und herabgeflossen am Fuße der Bäume am Boden. Es wird in der Nähe der südaustralischen Fowler Bay gesammelt. Frisch ist es weiß, im Handel aber rotbräunlich. Die Stücke sind handgroß und bilden bis ein Fuß lange, kerzengerade Zylinder. Unterm Mikroskop sieht man zahlreiche Mannitkristalle. Dieses australische Manna enthält 89,65% Mannit, 2,87% reduzierenden Zucker, 0,51% invertierbaren Zucker (Rohzucker?) und 2,37% Schleim (~Maiden~). =Lit.= ~Bennett~, Wanderings in New South Wales. London 1834. -- ~Maiden~, Pharm. Journ. 1893, 608 (~Flückiger~, Apoth. Zeit. 1893, 39). -- ~Flückiger~, Arch. Pharm. 1894, 311. 3. Platanus-Manna. Ein Manna mit 90% Mannit erwähnt ~Jandrier~. Es wird von _Platanus orientalis_ gesammelt. =Lit.= ~Jandrier~, Comp. rend. 117 (1892), 498. 4. Manna von den Capverdischen Inseln. In diesem Manna fand ~Berthelot~ 1856 Mannit (Ann. chim. phys. 47, 86). Seine Provenienz ist unbekannt. 5. Harlálumanna. In Indien durch Erhitzen der Wurzeln des Baumes Katrā erhalten. Es scheint Mannit zu enthalten (~Hooper~). 6. Olivenhonig. _Olivenhonig_ (azzal zitoun) nennen die Eingeborenen von Bibans ein aus den Stämmen kranker Olivenbäume ausschwitzendes _Ölbaummanna_, das nach ~Trabut~ und ~Battandier~ (Journ. pharm. 1901 (13) 177, Zeitschr. Nahrungsm.-Unters. 1901, 991 u. Apoth. Zeit. 1901, 209) 52% Mannit, 7,8% reduzierenden Zucker, 9,3% durch Alkohol fällbare Substanzen enthält. Es soll infolge einer Bakterienerkrankung austreten. Die mannitfreien Mannasorten s. unter Disaccharide und Trisaccharide. e) Drogen, welche Dulcit enthalten. Der Dulcit ist dem Mannit stereoisomer, wie aus dem Vergleich der Formeln hervorgeht: OH H H OH Dulcit: CH₂OH--C--C--C--C--CH₂OH, H OH OH H H H OH OH Mannit: CH₂OH--C--C--C--C--CH₂OH. OH OH H H Er steht aber auch zur d-Galaktose (vgl. S. 6) in Beziehung, deren Reduktionsprodukt er ist. Dulcit bildet derbe, asparaginartige Kristalle, F. 186, optisch inaktiv, nicht gärungsfähig, nicht reduzierend. Dulcit ist in einem Manna von Madagascar, im Kraute von _Melampyrum nemorosum_ (~Hünefeld~, ~Eichler~, ~Erlenmeyer~) und im Cambialsafte von _Evonymus europaeus_, in der Rinde von _Evonymus atropurpureus_ (~von Hoehnel~), überhaupt im japanischen und europäischen Pfaffenhütchen, auch im Honigtau von _Evonymus japonicus_ (~Marquenne~), in _Celastrus_ und _Schaefferia_, wie überhaupt in Celastraceen (~Kubel~, ~v. Gilmer~, ~Borodin~) und Scrophularineen (~Eichler~, ~Monteverde~, ~v. Gilmer~, ~Borodin~) gefunden worden. Vorkommen oder Fehlen von Mannit und Dulcit kann als Gattungs- und Gruppenmerkmal bei Scrophulariaceen verwertet werden (~Monteverde~). Madagascar-Manna. Dieses Manna unbekannter Provenienz, das kristallinische helle Knollen bildet, besteht fast aus reinem Dulcit. Um Dulcit daraus darzustellen, braucht man es nur aus Alkohol oder heißem Wasser umzukristallisieren. ~Gilmer~ zeigte, daß der Melampyrit von ~Hünefeld~ und ~Eichler~, sowie der Evonymit von ~Kobel~ mit Dulcit identisch sind. =Lit.= ~Laurent~, Compt. rend. 30, 41, 339 und 31, 694. Lieb. Ann. 76, 358; 80, 345. -- ~Jaquelain~, Ebenda. -- ~Gilmer~, Lieb. Ann. 123, 375. -- ~Czapek~, Biochemie I, 212. B. Drogen, welche Disaccharide von Hexosen enthalten. Die Disaccharide oder Hexobiosen sind als durch Kondensation zweier Moleküle eines Monosaccharids, und zwar einer Hexose, unter Wasseraustritt entstanden zu denken, sind also ätherartige Anhydride der Hexosen. Hierher gehört die +Saccharose+ (Rohrzucker, Rübenzucker), die ein d-Glukose--d-Fruktose-Äther ist, die +Laktose+ (Milchzucker), die als d-Galaktose--d-Glukose-Äther und die damit wohl stereoisomere +Maltose+ (Malzzucker oder Maltobiose), die als d-Glukose--d-Glukose-Äther zu betrachten ist. Zu der Gruppe der Disaccharide gehört auch die dem Rohrzucker ähnlich gebaute +Trehalose+ oder +Mykose+ (C₁₂H₂₂O₁₁.2 H₂O), die in dem Trehalamanna, im Mutterkorn und anderen Pilzen (_Fung. sambuci_, _Agaricus Muscarius_) vorkommt. Untenstehende Formeln zeigen die Beziehungen der drei wichtigsten Disaccharide von Hexosen zueinander. Durch Säuren oder Enzyme werden sie in ihre Komponenten aufgespalten. Invertase spaltet Rohrzucker in Glukose und Fruktose; Laktase spaltet Milchzucker in Glukose und Galaktose. Bereits ~Lavoisier~ machte von einem Disaccharid, dem Rohrzucker, eine Elementaranalyse. CH------- CH₂OH CHO -----CH | \ \ | | / /| HCOH \ O----C-- HCOH / /HCOH | \ | \ | | / | | O | \ | | O | OHCH / OHCH \ OHCH | | OHCH | / | O | O | | HC--- HCOH / HCOH / +---CH | | / | / | HCOH HC--/ HCOH / HCOH | | | / | CH₂OH CH₂OH CH₂ CH_₂OH (d-Glukoserest) (d-Fruktoserest) (d-Glukoserest) (d-Galaktoserest) +Rohrzucker+, +Saccharose+ +Milchzucker+, +Laktose+ (Anhydridzucker) (Aldehydzucker) CHO ---CH-- | / | \ HCOH / HCOH \ | / | O OHCH / OHCH / | O | / HCOH / CH--- | / | HCOH / HCOH | / | CH₂--- CH₂OH (d-Glukoserest) (d-Glukoserest) +Maltose.+ 1. Rohrzuckergruppe. Saccharose scheint bei den Tieren zu fehlen, ist aber bei den Pflanzen viel weiter verbreitet als man früher annahm. Das haben neuere Untersuchungen besonders von ~E. Schulze~, ~Andersen~, ~Harlay~ und ~Bourquelot~ dargetan, welch letzterer mit Hilfe seiner Invertinmethode, die eine Reindarstellung der Zucker nicht benötigt, gute eindeutige Resultate erhielt. Nachgewiesen ist sie z. B. in Zuckerrohr, Zuckerrüben, Zuckerahorn, Zuckerhirse, vielen Palmsäften, Krappwurzel, Kaffeebohnen, Gerste, Wallnüssen, Haselnüssen, Mandeln, Johannisbrot, in den Nektarien vieler Blüten (vgl. ~Beilstein~, Handbuch). Sehr viel Rohrzucker fanden wir in einer _Rad. rhei monachorum_. ~Harlay~ fand (1905) viel auch in _Umbelliferen_wurzeln. ~Buignet~ gab ihn 1861 für viele Früchte an. Doch sind alle älteren Angaben mit Vorsicht aufzunehmen. Physiologisch betrachtet ist Rohrzucker dort, wo er in so großen Mengen auftritt, daß seine Gewinnung lohnt, als Reservestoff aufzufassen. In den Stämmen der Palmen und dem Zuckerrohr, wo er im ganzen Grundgewebe sich findet, ersetzt er die Stärke und ist in erster Linie zur Ernährung des austreibenden Blütenstandes bestimmt oder war doch hierfür in erster Linie gebildet. Bei der Zuckerrübe ersetzt er ebenfalls andere Reservestoffe, die sonst in unterirdischen Reservebehältern vorkommen. Durch Kultur und Auslese läßt sich die Menge des Zuckers auch hier steigern, und die Kultur hat bereits eine starke Steigerung erzielt. Bei der Zuckerrübe z. B. von 3 auf 26%! Rohrzucker findet sich besonders in Pflanzenteilen, die kein Chlorophyll enthalten (~Jodin~). Über die Verbreitung von Saccharose im Pflanzenreich vgl. ~Czapek~, Biochemie, und von ~Lippmann~, Chemie der Zuckerarten. Die Identität von Palmenzucker, Sorghumzucker, Ahornzucker und Johannisbrotzucker mit Rohrzucker stellte schon ~Berthelot~ fest (Jahresber. d. Chem. 1858, 486; dort die Lit.). Daß Rohrzucker ein vortreffliches Nahrungsmittel ist, wußten schon die alten indischen, persischen und arabischen Ärzte (~Lippmann~), daß er dies sein muß, geht schon aus seiner hohen Verbrennungswärme hervor. Dieselbe beträgt (nach ~Rubner~) cal. für 1 g: 4001, cal. für 1 g-Mol: 1368,3. Bei großen Muskelanstrengungen eignet er sich daher außerordentlich zum Ersatze des Blutzuckers und des Glykogens und ist in bezug auf Eiweißersparnis dem Fette überlegen. 1 g Sauerstoff liefert bei der Oxydation von Rohrzucker 1511 Meter-Kilogramm Arbeit (~Zuntz~). Die Kreuzfahrer kauten nach den Berichten des Mönches ~Albertus Aquensis~ bei Nahrungsmangel Zuckerrohr. Über die aus Zucker hergestellten gegorenen Getränke vgl. I, S. 1016. Vergärbar sind nur die Zuckerarten mit drei, sechs oder neun Kohlenstoffatomen. Über Zuckervergärung ohne Enzyme vgl. die Zusammenstellung in Pharm. Praxis 1908, 266 (~Schade~). ~Camill Hoffmeister~ beschreibt folgende mikro-histochemische Methode zum Nachweis von Rohrzucker +neben+ Glukosen: die Schnitte aus dem zu untersuchenden Gewebe, 3-4 Zelllagen dick, werden direkt in Schälchen mit konzentrierter, siedendheißer Kupfersulfat-Seignettesalz-Natronlauge gebracht, so daß das Oxydationsmittel möglichst rasch und in großem Überschuß einwirken kann. Nach 1-2 Minuten ist die +Glukose+ quantitativ oxydiert. Man nimmt die Schnitte heraus, spült dieselben durch Herumschwenken in einer Porzellanschale mit stark verdünnter Weinsäurelösung rasch ab und bringt sie auf dem Objektträger in einen Tropfen einer konzentrierten Lösung von Magnesiumchlorid. Das Magnesiumchlorid löst, besonders bei kurzem Erwärmen, den Niederschlag von Kupferoxydul in 1-2 Minuten glatt auf. Man spült nun das Magnesiumchlorid mit weinsäurehaltigem Wasser ab und bringt den Schnitt in einen Tropfen konzentrierter Invertinlösung auf den Objektträger. Man läßt mehrere Stunden die Zimmertemperatur einwirken. Ist der Tropfen nahe am Eintrocknen, so wird von neuem befeuchtet. Die genügende Zeit zur Inversion des +Rohrzuckers+ war stets erreicht, sobald das Eintrocknen 2-3 mal vor sich gegangen war. Nun wird der Schnitt mit einem Tropfen Kupfersulfat-Seignettesalz-Natronlauge bedeckt, das Deckglas darüber gelegt und vorsichtig bis eben zur Siedetemperatur erhitzt. Ist Rohrzucker vorhanden, so scheidet sich rotgelbes Kupferoxydul ab. Beim mikrochemischen Zuckernachweis nach der Methode von ~Sachs~ (s. oben S. 7) werden die rohrzuckerhaltigen Zellen hellblau gefärbt. Die regelmäßige Gestalt der Rohrzuckerkristalle erwähnt zuerst ~Cäsalpini~ (daß ~Olivier de Serres~ gegen 1600 Rübenzucker gekannt und dessen Kristallgestalt beschrieben habe, ist ein in französischen Werken weitverbreiteter, aber völlig haltloser Irrtum, ~Lippmann~). Der Tribolumineszenz gedenkt schon ~Bacon von Verulam~ als etwas Wohlbekannten. Das Drehungsvermögen erkannte ~Seebeck~ (1816) und ~Biot~ gründete (1819) darauf die optische Saccharimetrie. Die Inversion des Rohrzuckers erkannte ~Dubrunfaut~ 1847. Alkalische Kupferoxydlösung zur Erkennung von Invertzucker und Traubenzucker empfahl 1841 ~Trommer~, der in ~Mitscherlichs~ Laboratorium arbeitete und 1848 veröffentlichte ~Fehling~ die Vorschrift zu seiner alkalischen Kupfertartratlösung und beschrieb die Methode der quantitativen Zuckerbestimmung. =Lit.= ~von Lippmann~, Chem. der Zuckerarten. -- ~C. Hoffmeister~, Über d. mikrochem. Nachweis von Rohrzucker in pflanzlichen Gew. Jahrb. f. wiss. Bot. 31 (1898). -- ~E. Schulze~, Nachweis d. Rohrzuckers in Pflanzensamen. Zeitschr. f. phys. Chem. 52 (1907), 404. -- ~Buignet~, Ann. chim. phys. 3 ser. 61, p. 233. -- ~E. Schulze~ und ~Frankfurt~, Über die Verbreit. d. Rohrz. in den Pflanzen, Zeitschr. phys. Chem. 20 (1895) und 27 (1899). -- ~Nygård~, Om rörsockrets förekomst och kvantitet i droger. Farm. Notisbl. Helsingfors 1909. -- ~Andersen~, Zeitschr. phys. Chem. 29, S. 423. -- ~Bourquelot~, Le sucre de canne dans les véget. Bull. soc. d’hist. nat. des Ardennes 1901 (dort die Listen der Rohrzucker enthaltenden Pflanz.) und Journ. pharm. 1903. -- ~Harlay~, Le Saccharose dans les organes végétaux souterrains. Thèse Paris 1905 (dort d. Lit.) und Journ. pharm. chim. 1905. -- ~Ch. Lefebvre~, Application des procédés biochimiques à la recherche et au dosage des sucres et des glucosides dans les plantes etc. Thèse Paris 1907. -- ~Jodin~, Bull. soc. chim. 31. -- Vgl. auch Bot. Jahresber. 1905, 815 (Kultur von Rohrzuckerpflanzen). -- ~Brunno Linné~, Hydrolyse von Bi-, Tri- und Polysacchariden. Diss. Basel 1905. -- ~Fonces-Diacon~, Polysaccharides. Thèse Montpellier 1899. [Illustration: Tafel IV. Zuckerrohr in Blüte (Java). (Kolonial-Museum, Haarlem.)] Rohrzuckerdrogen. I. Drogen, welche aus Rohrzucker bestehen. Saccharum. =Syn.= Zucker, Rohrzucker, Saccharose, Saccharobiose -- sucre (franz.) -- sugar (engl.) -- zucchero (ital.) -- açucar (span.) -- suiker (holl.) -- socker (schwed.) -- sokuri (finn.) -- cukor (ung.) -- sachar (russ.). Die Bezeichnungen für Zucker leiten sich alle von dem indischen Worte Çarkarâ (sansk. = Sand) oder Sakkarâ (prakr.) ab. σάκχαρον (~Dioskurides~, war wohl Bambumanna, s. _Tabaschir_), σάκχαρι (Periplus), saccharum (~Plinius~), al sukkar (arab.), schakara (tibet.), schakar, scheker (pers.), scheker (türk.). Mit den Arabern kam das Wort nach dem Westen. I. Rohrzucker aus Zuckerrohr. =Stammpflanze und systemat. Stellung. Saccharum officinarum= L. (~Linné~, Spec. pl. I, 54), Kasab elsukker bei ~Ibn Baithar~. Nach Einigen eine durch Kultur entstandene Form von _S. spontaneum_, das jetzt in Südasien, z. B. auf Java, ein sehr gefürchtetes Unkraut ist (Alang-Alang). +Gramineae+ -- Andropogoneae. Sacchareae, Sect. Eusaccharum. =Beschreibung.= Die Heimat des Zuckerrohrs, einer Pflanze des feuchtwarmen tropischen Klimas, ist Indien. Die wilde Stammform ist nicht mehr sicher bekannt. Es wurde durch Kultur zunächst nach dem übrigen Südasien, dann nach Vorderasien und Europa gebracht (s. weiter unten) und wird jetzt in den meisten warmen Ländern kultiviert (s. weiter unten), auch in ganz Zentralafrika (Congo, Njansa, Aequatoria). Kälte und Trockenheit sind die größten Feinde des Zuckerrohrs. Im Habitus ist das Zuckerrohr dem _Mais_ ähnlich, wird aber viel höher, bis 6 m und bis über 5 cm dick. Es wird fast ausschließlich durch Stecklinge vermehrt und kommt in den Kulturen selten zur Blüte (Taf. IV) und fast nie zur Fruchtbildung. Der Saft des ausgereiften Zuckerrohrs enthält im Mittel 12-15%, zuweilen 15-17%, vereinzelt 18-20% Rohrzucker neben nur 0,6% unkristallisierbaren Zucker. =Pathologie.= Prof. ~Ed. Fischer~ berichtet über die pflanzlichen Schädlinge: Das Zuckerrohr wird von zahlreichen Krankheiten befallen (siehe ~Lindaus~ Bearbeitung in ~Sorauers~ Handbuch der Pflanzenkrankheiten, 3. Aufl., ~Wakker~ und ~Went~: De Ziekten van het Suikerriet op Java I, 1898, ~Cobb~, Fungus maladies of the sugar cane. Honolulu 1906). Eine Übersicht der in Java beobachteten Zuckerrohrkrankheiten gab ~Zehntner~, Oversicht van de Ziekten van het Suikerriet op Java. Mededeel. Proefstat. Oost Java. Soerabaia 1897. Vgl. dann auch den Katalog des Koloniaal-Museums. Haarlem 1900, vgl. auch I, S. 376. Wir greifen aus den Krankheiten nur die wichtigsten heraus: Zunächst sind in neuerer Zeit mehrere +Bakterienkrankheiten+ nachgewiesen worden, eine derselben ist die +Spitzenfäule+ (Top-rot). -- Blattfleckenkrankheiten werden von _Leptosphaeria Sacchari_ ~Breda de Haan~, _Coleroa Sacchari_ (Sacc.) ~Breda de Haan~ und mehreren _Cercospora_-Arten hervorgerufen. -- Eine gefährliche Erkrankung des Stengels (Rotfäule, red rot, red smut), bei der auch der Zuckergehalt sich vermindert (während die Glukose zunimmt), bewirkt _Colletotrichum falcatum_ ~Went~. Ebenfalls an den Stengeln tritt die Ananasziekte auf, hervorgerufen durch _Thielaviopsis Aethaceticus_, die freilich kein obligater Parasit ist, sondern deren Eindringen Verwundungen voraussetzt. -- Auch ein Brandpilz, _Ustilago Sacchari_ ~Rabenh.~, tritt auf den Zuckerrohrstengeln auf. Endlich kommen Hymenomyceten und Gastromyceten in Betracht, deren Mycel Krankheiten der Stecklinge oder Wurzelerkrankungen bedingen: _Marasmius Sacchari_ ~Wakker~, ein Hymenomycet, der Erreger der sog. +Dongkellankrankheit+ und die beiden Phalloideen _Phallus celebicus_ und _Ph. coralloides_. Die gefährlichste Krankheit ist die +Seréh+ genannte, über die eine ganze Literatur existiert. ~Wakker~ bezweifelt ihren parasitischen Charakter. =Gewinnung.= Frisches Zuckerrohr enthält 12-18% Rohrzucker und bis 0,7% reduzierenden Zucker (~Vandesmet~). Der Zucker ist nicht gleichmäßig verteilt. Während z. B. die Spitze nur 1,914% enthält, steigt der Gehalt im oberem Stengelteil auf 7,79%, im mittleren auf 14% und beträgt im unteren 14,7%. Umgekehrt sinkt in den gleichen Organabschnitten der Glukosegehalt von 2,367 auf 0,945, 0,207 und 0,175. Doch sind diese Verhältnisse sehr variabel. Unter verschiedenen organischen Nichtzuckerstoffen ist auch Aconitsäure im Zuckerrohr gefunden worden (~A. Behr~). [Illustration: Fig. 40. Ernte des Zuckerrohrs.] Die Gewinnung des Rohrzuckers aus dem Zuckerrohr geschieht in folgender Weise. Sobald das Rohr eine gewisse Höhe erreicht hat, wird es etwas über dem Boden geschnitten (Fig. 40). Dann werden die Blätter entfernt (I, Fig. 72 u. 73) und die knotig gegliederten dicken Stengel auf Kähnen (I, Fig. 219) oder Karren (I, Fig. 74 u. 215) oder Feldbahnen in die Mühle (I, Fig. 75) gebracht und dort zerquetscht (I, Fig. 144), worauf man den Rohsaft klärt, eindickt und kristallisieren läßt. Dies geschah früher in den Produktionsländern in sehr primitiver Weise und der Kolonialzucker mußte daher in Europa raffiniert werden. Jetzt sind unter Benutzung der bei der Rübenzuckerindustrie (s. d.) gemachten Erfahrungen zahlreiche modern eingerichtete Rohrzuckerfabriken in den Produktionsländern entstanden, die nunmehr auch in den Tropen reinen Rohzucker und selbst Konsumzucker fabrizieren. Die javanischen Zuckerfabriken z. B. sind mit allen nur erdenklichen modernen maschinellen Einrichtungen versehen (Taf. V). [Illustration: Tafel V. Zuckerfabrik in Java (Zucker aus Zuckerrohr). (Aus les grandes cultures.)] In Vorderindien ist (nach Pharmacogr. indic.) das durchschnittliche Erträgnis von 100 canes 18 guda (d. i. unraffinierter Zucker) oder 17,5 shakar (jaggery, d. i. trockener unraffinierter Zucker), oder 19,5 râb (d. i. Sirup). =Raffination.= Die Zuckersiederei, d. h. die Kunst aus dem Rohrzucker, der unter dem Namen +Moscovade+ (Mascovade, Muscuat) und +Kassonade+ nach Europa gebracht wurde, reinen Zucker herzustellen, der Prozeß der +Raffination+ (Reafinatio), war in den Ländern Europas im XVI. und XVII. Jahrh. schon weit verbreitet (vgl. z. B. ~Angelus Sala~, Saccharologia 1650). Die erste Beschreibung lieferte aber erst ~Duhamel du Monceau~ (L’art de raffiner le sucre 1764 mit 10 Taf., vgl. I, S. 975). Amsterdam, später Hamburg und Berlin, waren Hauptsitze der nordischen Zuckerraffinerie im XVIII. Jahrh. (vgl. darüber ~Lippmann~). Die erste Zuckerraffinerie in Amsterdam entstand um 1600. Die erste deutsche Zuckerraffinerie wurde 1573 durch ~Roth~ in Augsburg errichtet, eine zweite folgte 1597 in Dresden, dann folgten Hamburg, Orleans, Rouen. Der dreißigjährige Krieg vernichtete in Deutschland auch diese Industrie. =Handelssorten= (s. auch Rübenzucker). In dem Frankfurter Catalogus von 1582 (I, S. 817) findet sich Saccharum canariense, candum (nicht von Candia, das Wort stammt vom persischen qand = Zucker), s. crystallinum, madeirense (von Madeira, wo seit 1420 Zucker gewonnen wurde), melitense, penidium (die indische Bezeichnung [fânîdh, fênîdh] schon bei arabischen und persischen [pânîdh] Schriftstellern des Mittelalters, dann in allen deutschen Taxen -- vielleicht sog. Gerstenzucker), tabarzeth (pers. tabarzadh = axtgehauen, auch für Steinsalz -- in vielen Taxen des XVI. bis XVIII. Jahrh.), Thomasinum (von St. Thomé im Busen von Guinea, wo Zuckerrohr seit 1485 gebaut wurde), s. rubrum und miscellaneum. In der +Braunschweiger Liste+ 1521 (I, S. 814) figuriert: Hout sucker, Melzucker, Zucker penid und Zucker kand (s. auch unter Geschichte). =Eigenschaften.= Der Rohrzucker (Formel vgl. S. 114) kristallisiert in großen monoklinen Kristallen (der Zuckerkand besteht aus solchen). Er zeigt Tribolumineszenz, leitet strömende Elektrizität sogut wie gar nicht, Wärme sehr schlecht. Er schmilzt bei 160° und erstarrt glasartig amorph (Gerstenzucker), die Masse wird aber allmählich wieder kristallinisch und trübe («Absterben»), bei stärkerem Erhitzen karamelisiert er. Sein spez. Gewicht ist bei 17,5° = 1,580. In absolutem Alkohol löst sich Rohrzucker schwer (1 : 80), in verdünntem leichter; leicht löst er sich in Invertzuckerlösungen und in ⅓ seines Gewichtes Wasser. Konzentrierte Schwefelsäure verkohlt ihn (Unterschied von d-Glukose). Sein spezifisches Rotationsvermögen ist: α²⁰_{D} = +66,5°, oder allgemein für jede Konzentration: α_{D} = 66,386 + 0,015035. P - 0,0003986. P² (P = Prozentgehalt der Lösung an Rohrzucker). Er reduziert ~Fehling~sche Lösung erst nach der z. B. beim Kochen eintretenden Inversion. Die gewöhnlichen Bier- und Weinhefen vergären Rohrzucker erst nach Inversion durch die Hefeenzyme (Invertase usw.). Über den +Rum+ vgl. I, S. 1019. Die Pharm. helvet. IV läßt den Zucker aus Zuckerrohr neben Rübenzucker zu. =Produktion.= Zucker aus Rohrzucker produzieren jetzt: die Vereinigten Staaten (Louisiana), Porto Rico, Hawai, Cuba, Britisch Westindien (Trinidad, Jamaica, Antigua und St. Kitts, Barbados), Französ.-Westindien (Martinique, Guadeloupe), Dänisch-Westindien (St. Croix), Haiti und San Domingo, die kleinen Antillen, Mexiko, Zentralamerika (Guatemala, San Salvador, Nicaragua, Costa Rica), Brit. Guyana (Demerara), Holländ. Guyana (Surinam), Peru, Argentinien, Brasilien, Britisch Indien, Siam, Java, die Philippinen, Australien (Queensland, Neu-Süd-Wales), Fidschiinseln, Mauritius, Réunion, Ägypten, Spanien. Mauritius hieß früher die «Zuckerinsel». In Java spielt die Fabrikation von Rohrzucker eine große Rolle. Der Ertrag betrug 1907 in +Java+ pro acre: Rohr 38 t 15 cwt, Zucker 4 t 3 cwt. Der Gesamtertrag an Rohr: 1210200 t. 1908 waren 115458 ha unter Zuckerrohrkultur. +Java+ exportierte 1908: Hauptzucker 1075935516 kg, Sackzucker 80950282 kg, Stroopzucker 98278768 kg, Javan. Z. 5896000 kg. Die +Philippinen+ exportierten 1909 110604 t. +Brasilien+ exportierte Zucker 1906: 84948346 kg, 1907: 12857899 kg. Beträchtlich ist die Produktion in Cuba. +Cuba+ produzierte 1907/08: 961958 t, 1908/09 1513582 t Rohrzucker. Von rohem Zucker wurden 1908 in +Hamburg+ seewärts eingeführt: 26982 dz, davon aus Ostafrika: 19516, geringere Mengen aus Peru, Brit. Ostindien, San Salvador, Nicaragua, Guatemala, Ägypten, Trinidad, St. Croix. +Frankreich+ importierte 1908 aus seinen Kolonien Réunion, Martinique, Guadeloupe und Mayotte 119561084 kg +Rohrzucker+ (sucres en poudre), ziemlich viel (669357 kg) auch aus Engl. Afrika Die Rohrzuckerproduktion der Erde betrug 1907/08: 5161900 t. Davon entfallen auf Java, das schon seit dem XVII. Jahrh. besonders im Osten Zucker produziert, 1156400 t, auf die Vereinigten Staaten (Louisiana, Texas, Portorico) 985000 t, auf Cuba 950000 t (1908/09: 1350000 t), auf Hawai 450000 t. Über 100000 t produzieren dann noch: die Antillen und Zentralamerika, Brasilien, Queensland, Mauritius, Peru, Philippinen, Argentinien, Demerara, der Rest fällt auf die Fidschiinseln, Ägypten, Réunion, Neu Südwales und Spanien. (Siehe auch unter Rübenzucker.) =Verbreitung über die Erde.= Das Zuckerrohr ist in Indien heimisch und hat sich von dort aus über die Erde verbreitet. Schon 327 n. Chr. fand sich Zuckerrohr jenseits des Ganges (~Nearchos~), 250 n. Chr. in China, um Christi Geburt in Java, 400 n. Chr. finden wir es in Tibet und Kaschmir, um 600 in Ceylon, um 700 in Cambodja und auf Socotra. Auch nach Vorderasien gelangte es frühzeitig. Schon 643 finden wir es in Ägypten, 680 in Syrien, um 700 in Cypern, um 818 in Kreta. Nach Spanien kam die Zuckerrohrkultur 714. [Im arabischen Kalender des ~Harib~ aus dem Jahre 961 (I, S. 612) wird der Anpflanzung des Zuckerrohrs gedacht.] Nach Sicilien 827 (nicht erst im XII. Jahrh. wie I, S. 33 steht), nach der Provence 750. In Marokko finden wir sie 709, in Tripolis um 900, in Madeira 1420, auf den Canaren und auf St. Thomé um 1480 (~Lippmann~) ~Istachrî~ (I, S. 616) berichtet c. 920 über Zuckerrohrkulturen in Tripolis, Chusistan, Meserkan, Asker Mokrem, wo auch Zuckerfabriken bestanden. Während der Kreuzzüge war Syrien mit der größte Zuckerlieferant Europas. Im XII. Jahrh. blühte die Zuckerindustrie in Sicilien, aber schon im XI. Jahrh. finden wir sicilianischen Zucker auf dem Markte in Venedig. Die Rohrzuckerkultur hat sich noch in Ägypten und Spanien (Elche) erhalten, sonst ist sie im Westen erloschen. 1448 nahm die Zuckerrohrkultur die besten und ausgedehntesten Küstenstriche Siciliens in Anspruch (~Lippmann~). Bereits Ende des XIII. Jahrh. lieferte Cypern viel Zucker an den europäischen Markt, im XIV., XV. und XVI. Jahrh. blühte dort, wie auch in Ägypten, eine großartige Zuckerindustrie. Nach Amerika kam das Zuckerrohr schon durch ~Columbus~ (I, S. 745) 1493, der es auf seiner zweiten Reise nach Domingo brachte, wo es sich rasch akklimatisierte, ~Oviedo~ (I, S. 755) folgte 1514. Nach Mexiko kam es um 1520, nach Brasilien 1532, nach Peru 1533, nach Paraguay 1580, nach Argentinien 1620, nach Guadeloupe und Martinique 1630, nach Barbados 1641, nach Louisiana 1673, nach Pennsylvanien 1785 (~Lippmann~). Das Zuckerrohr kam um 1797 auch nach Kalifornien. 1869 hatte Nieder-Kalifornien weite Zuckerfelder (~Ross Browne~). Daß sich die Zuckerrohrkultur in Amerika so gut entwickelte, ist namentlich der Einführung der Sklaverei zu danken. Mit der Zuckerfabrikation wurde in Mexiko schon bald nach der Eroberung begonnen. Schon 1553 hören wir von einem Zuckerexport aus Mexiko. [Illustration: Fig. 41. Zuckerfabrikation in Sizilien um 1570. [Nach der Bildersammlung «Nova reperta» des +Joann. Stradanus+.]] =Geschichte.= Das Zuckerrohr wurde lange bevor man es lernte Zucker daraus darzustellen benutzt, wohl hauptsächlich gekaut. Die Darstellung festen Zuckers erfolgte zuerst in Indien, aber nicht vor dem III. oder gar VII. Jahrh. (~von Lippmann~). Immerhin ist es also möglich, daß die _Saccharum_-Sorten in Suśrutas (I, S. 505) Zucker waren. ~Paulus von Aegina~ und ~Avicenna~ nannten daher den Zucker Sal indus -- die Araber auch Tabarzeth. In der Alphita, bei ~Bartholomaeus~ und in Circa instans (I, S. 661) steht: zuccara, zaccara, zuccarum, zaccarum de canna mellis fit per decoctionem, auch zuchar, zucharum, zuccaria, zuccare. Die Perser und Araber nahmen die Zuckerfabrikation dann auf und brachten das Rohr und die Zuckerbereitung nach dem Westen. Bei den Hochzeitsfeierlichkeiten des Khalifen ~Meskadi-Benrittale~ (807 n. Chr.) in Bagdad wurden ungeheuere Zuckermengen verbraucht. Der Zuckerhut gilt als eine persische Erfindung, ebenso die Kunst zu raffinieren. Zuerst wurde der Zucker in Europa als Arzneimittel benutzt. Dann war er lange Luxusgegenstand. Noch Ende des XVII. Jahrh. war Zucker in Deutschland sehr teuer. In den Apotheken des Mittelalters findet sich _Saccharum melitense_ (nicht von Malta, sondern wohl wegen der gelblichen Farbe -- wie Melasse, ~Lippmann~), _S. madeirense_ und _canariense_, sowie _S. thomasinum_ (von der Insel St. Thomé, s. oben S. 120). Der großkristallisierte hieß schon damals _S. candum_ (Kandis). ~Pegolotti~ (I, S. 702) teilt c. 1335 folgende Zuckersorten mit: 1. +Hutzucker+: Mucchera, Caffetino, Bambillonia, Musciatto, Donmaschino. 2. +Kandiszucker.+ 3. +Kristallzucker+ (polvere di zucchero), Farin von Cypern, Rhodus, Syrien, Cranco di Monreale u. Alexandria. 4. +Sirup+ und +Melasse+ (Mele di Canna-melei). Er fand sich in Hüten, Broten und in Pulver. Die Hüte wurden in Palmblätter eingehüllt, zu zwei aneinandergelegt ◁▷ und so in Leinwand gewickelt (una coppia di zucchero). In den +Droits et Courtage+ etablis à Paris au XV siècle (herausg. von ~Dorveaux~) wird Sucre en bales et hors bales, Quassons (s. en morceaux) Pouldre de Cypre et d’Alexandrie und Sucre candy erwähnt. Im Nördlinger Register von 1480 (I, S. 813) steht: farina zuckari, zuccarum candie, zuccarum tabarset und zuckarum penidiarum. Das Braunschweiger Register von 1521 (I, S. 814) führt hout zucker, Melzucker, zucker penid und zucker kand. Penidiumzucker war wohl Gerstenzucker, der durch Schmelzen mit Weinstein infolge teilweiser Inversion dauernd in amorphen Zustand gebracht worden war (~Flückiger~). Tabarzed (s. oben S. 121) war ein reiner kristallisierter Stückzucker (bei ~Cordus~ ist Sacch. Tabarzeth = album gesetzt, I, S. 802), wie das Sal indum (siehe oben), welcher Name auch noch 1604 und 1658 in den Braunschweiger Inventarien der Ratsapotheke zu finden ist (~Flückiger~). Die Fabrikation des Rohrzuckers bildet schon ~Piso~ (I, S. 893) 1658 und ~Pomet~ (I, S. 942) 1694 ab, ~Piso~ eine +brasilianische+ Zuckerrohrmühle und eine Zuckersiederei. Dann findet sich auch eine noch ältere Abbildung in der Bildersammlung der Nova reperta des ~J. Stradanus~ (c. 1570 abgedr. vor ~Lippmanns~ Gesch. d. Zuckers, vgl. Fig. 41). =Lit.= ~Lippmann~, Geschichte des Zuckers und Chemie der Zuckerarten. -- Abbild.: ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants t. 298, ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 169, ~Nees von Esenbeck~, Pl. med. t. 33-35, ~Tussac~, Flore d. Antilles t. 23-25 und ~Engler-Prantl~, Pflanzenf. II, 2, 23. -- ~Schär~, Das Zuckerrohr, seine Heimat, Kultur und Geschichte. Neujahrsbl. d. Zürich. Naturf.-Ges. 1890. Auch dort eine Abbild. des Zuckerrohres. Eine solche auch in den +Afbeeldingen+ des Koloniaal Museums Haarlem. -- ~Paasche~, Zuckerindustrie und Zuckerhandel d. Welt 1891. -- ~W. Krüger~, Das Zuckerrohr und seine Kultur. Wien 1899. -- ~Tiemann~, Zuckerrohr, Kultur, Fabrikation usw. 1899. -- ~van Gorkom~, Oostindische Cultures. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. 2. Aufl. 1903 (dort die Kultur beschrieben). -- +Lit.+ der Javanischen Zuckerfabrikation in Catalogus der Boekverzameling. Koloniaal Museum Haarlem. Ferner: Proefstation Midden Java, Mededeel. -- Proefstat. West-Java Kagok-Pekalongan, Mededeel. -- Proefstat. Oost Java, Mededeel. -- Archief voor de Java-Suikerindustrie, Archief. -- Jaarboek voor suikerfabrikanten op Java. -- Karten in ~Langhans~, Kleiner Handelsatlas 1895 und ~Scobel~, Handelsatlas 1902. II. Rübenzucker. =Stammpflanze.= =Beta vulgaris= L. var. _Rapa_ Dumort. (_B. vulg._ var. _rapacea_ ~Koch~), var. _maritima_, var. _altissima_ und andere Varietäten und Sorten. Besonders beliebt sind: Imperial-, Electoral-, Mangold-, weiße schlesische, Quedlinburger Rüben, sowie die sog. Klein-Wanzlebener Rübe. ~Schindler~ (Bot. Zentrlbl. 46) leitet alle Kulturvarietäten von der an den Küsten Europas noch jetzt wild vorkommenden _Beta vulgaris_ L. var. _maritima_ ~Koch~ ab. _Beta vulgaris_ L. (wohl der τευτλός des ~Theophrast~) wird jetzt meist in die beiden Varietäten: _Cicla_ L. (Gartenmangold) und _Rapa_ Dum. zerlegt und letztere wieder in die zwei Untervarietäten: _B. vulg._ var. _rapacea rubra_ (rote Rübe) und _B. v._ var. _rapacea altissima_ (Zuckerrübe). =Systemat. Stellung.= +Chenopodiaceae+, Cyclolobeae -- Beteae. =Syn.= Beißkohl, Chrut, Dickrübe, Mangold, Manichel, Rabetwörtel, Raude, Römische Kolle, Rungelrüben oder Runkelrübe, Speis, Zwickeln, Namen, die zum Teil sowohl für _Beta vulgaris_ var. _Cicla_ wie für _B. v._ var. _Rapa_ benutzt werden. Im +ahd.+ finden sich die Namen: beizcol, bieza, bioza, stur, sturbete, manegolt, im +mhd.+: biese, bietekohl, mänglet, piesse, plateysske, romeskol, steyr, stir. -- Im Ortus sanitat. Römisch Köl -- bei ~Brunschwig~: Mangolt -- bei ~Gesner~: bayrische Rübe. =Etym.= +Beta+ (so schon bei ~Plinius~) vielleicht von kelt. bette = rot (wegen der Farbe der roten Rübe) oder, was wahrscheinlicher, von meta, «das jede spindelförmige Figur, in diesem Falle die Rübe bezeichnet» (~Kanngiesser~) -- beete heißt die Rübe auch noch jetzt in Norddeutschland; im Gothaer Arzneibuch (I, S. 679): bethe und betewort. Betas stehen im Capitulare ~Karls~ (I, S. 620) und im St. Galler Klosterplan (I, S. 622). Runkelrübe = dicke Rübe. -- Im Mittelalter: blitus (Tabula Mag. Salerni I, S. 638) und peta. -- Bette (franz.) -- beet (engl.) -- biet (holl.). -- Runkel von +altnord.+ hruga = zusammenballen, wegen der dicken Wurzeln. _Beta vulgaris_ ist eine krautige Pflanze mit großer basaler Blattrosette und einem meist nicht zur Ausbildung gelangenden oder unterdrückten ährenartigen Blütenstande. Die unscheinbaren fünfzähligen Blüten besitzen einen fast dreieckigen Fruchtknoten. Die Staubblätter sind am Grunde zu einem fleischigen, ringförmigen Polster (Discus) vereinigt. Der Embryo des Samens ist, ringförmig gekrümmt. (Abbild. bei ~Volkens~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. III, 1a, 57.) Die Wurzel ist eine mehr oder weniger hypertrophische Rübe, die oft ein sehr beträchtliches Gewicht erreicht und vorwiegend aus zuckerhaltigem Speicherparenchym besteht (s. oben). =Kultur.= Die Zuckerrübe, Runkelrübe oder Mangold ist am Mittelmeer, am Kaspischen Meer, auf den Canarischen Inseln, in Mesopotamien und Ostindien heimisch und wird wohl seit den IV-VI vorchristlichen Jahrh. kultiviert (~v. Lippmann~). Sie findet sich auf alten ägyptischen Tempelgemälden (~Wönig~). Pen Tsʿao Kang Mu (I, S. 519) kennt _Beta vulgaris_. ~Plinius~ beschreibt ihren Anbau, ebenso die römischen Agronomen (I, S. 571). ~Dioskurides~ empfiehlt sie als Heilmittel, ebenso die arabischen Ärzte (bei ~Rases~: sicula, sicla, nach Sicilien). Sie steht im Capitulare ~Karls~ (I, S. 619) und bei ~Megenberg~ (I, S. 693) als piezenkraut. Den Rohrzucker fand in ihr ~Marggraf~ (I, S. 964). Die Rübenkultur kam schon bald nach 1700 von den Niederlanden nach Deutschland. Die heutige Zuckerrübe gelangte nämlich (nach ~Rössig~) als Burgunderrübe aus den burgundischen Niederlanden zuerst in die Pfalz und verbreitete sich von hier über Deutschland, besonders Franken, Sachsen und Schlesien. Das Problem, zuckerreiche Rüben zu züchten, löste ~Achard~ durch seine 1786 begonnenen Anbauversuche. Der erste Aufschwung der Rübenzuckerindustrie datiert von der Kontinentalsperre. Nach Frankreich brachte die Zuckerrübe u. a. der ältere ~Vilmorin~. Sie wird jetzt in Deutschland, Österreich, Frankreich, Rußland, Belgien und Nordamerika gebaut. Die Zuckerrübe ist auch ein Kaffeesurrogat (s. Cichorium). =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Die Zuckerrübe wird von mehreren Bakterienkrankheiten heimgesucht. Eine auffällige ist die sog. +Rübenschwanzfäule+; sie besteht darin, daß die Rübe, beim Schwanzende beginnend, abstirbt, wobei eine Inversion des Rohrzuckers stattfindet. In Algier beobachtete ~L. Trabut~ eine Krankheit der Rübenwurzeln, die im Auftreten von fleischigen, traubigen Auswüchsen besteht, in welchen in stark vergrößerten Zellen ein Pilz auftritt, den ~Trabut~ für eine +Ustilaginee+ hielt, der aber nach Untersuchung von ~Magnus~ zu dem Chytridineengenus +Urophlyctis+ gehört (_U. leproides_ [~Trab.~] ~Magn.~). -- _Peronospora Schachtii_ wird als Erreger der sog. +Kräuselkrankheit+ der Herzblättchen der Rübe angesehen, welche mitunter einen nicht unbeträchtlichen Schaden stiftet. -- Bei der sog. +Wurzel-+ oder +Herzfäule+ der Rüben tritt u. a. _Phoma Betae_ ~B. Frank~ auf, welche nach ~Prillieux~ und ~Delacroix~ die Pyknidenform des Pyrenomyceten _Mycosphaerella tabifica_ ist; doch ist das ursächliche Verhältnis dieses Pilzes zu der Krankheit nicht in jeder Hinsicht klargestellt. Derselbe Pilz in Gemeinschaft mit _Pythium de Baryanum_ und _Aphanomyces laevis_ soll auch bei der gefährlichsten bei uns vorkommenden Rübenkrankheit, dem Wurzelbrand, beteiligt sein. -- Das Mycel von _Sclerotinia Libertiana_ und ein Mycel unbekannter Zugehörigkeit (_Rhizoctonia_) befallen die Rübenwurzeln, ersteres speziell auch die eingekellerten Rüben. Nicht völlig aufgeklärt ist in bezug auf ihren Urheber auch die sog. +Schorfkrankheit+ der Rüben. Über die Krankheiten der Zuckerrübe berichtet fortlaufend der Jahresber. über d. Untersuch. u. Fortschritte auf d. Gesamtgebiete der Zuckerfabrikation (herausg. v. ~Joh. Bock~) Braunschweig, ~Vieweg~. =Gewinnung.= In der Zuckerrübe bezw. in dem Safte derselben sind (bes. durch ~v. Lippmann~) sehr zahlreiche Substanzen nachgewiesen; neben +Rohrzucker+, der etwa 15-18% ausmacht, wenig Raffinose und Invertzucker, dann Zitronensäure, Oxalsäure, l-Apfelsäure, r-Weinsäure, Aconitsäure, Adipinsäure, Bernsteinsäure, Glutarsäure, Glykolsäure, Glyoxylsäure, Malonsäure, Oxyzitronensäure, Tricarballylsäure, ferner Glutamin, Asparagin, Leucin, Tyrosin, dann Lecithin, Cholin, Betain, Citrazinsäure, bisweilen auch Coniferin, Vanillin, Brenzcatechin, ferner Phytosterin und eine Rübenharzsäure, -- Arabinsäure, Metapektinsäure, Metarabin, Pararabin, γ-Galaktan, endlich Xanthin, Guanin, Hypoxanthin, Adenin, Carnin, Arginin, Guanidin, Allantoin, Vernin und Vicin, von Enzymen Tyrosinase und ein Farbstoff. Aufgabe der Rübenzuckerfabrikation ist es, den Rohrzucker von dem «Nichtzucker» zu trennen und zur Reinkristallisation zu bringen. Es geschieht dies jetzt meist in der Weise -- im einzelnen werden Abweichungen beobachtet --, daß die gut gewaschenen Rüben in Schnitzel geschnitten und in den zu Batterien vereinigten Diffuseuren der Diffusion unterworfen werden. Der von den Diffuseuren kommende, etwa 12-15% Rohrzucker enthaltende Saft wird in der Hitze mit Kalkhydrat behandelt, nahezu mit Kohlensäure saturiert und zum Sieden erhitzt, durch Filterpressen geleitet, dann nochmals mit Kohlensäure oder schwefliger Säure saturiert und schließlich wieder durch die Filterpresse geleitet. Der so erhaltene Dünnsaft, der 10-12% Zucker enthält, wird in Vakuumapparaten eingedickt und dann auf verschiedene Weise zur Kristallisation gebracht. Durch Zentrifugieren der erkalteten Masse gewinnt man den «Rohzucker», was von diesem abgeschleudert wird ist der Sirup, der bei weiterem Verkochen noch ein oder zwei «Nachprodukte» liefert, und die letzte, nicht mehr kristallisierbare Mutterlauge ist die +Melasse+. Sie wird jetzt oft noch mittelst Strontian chemisch entzuckert, oder durch Vergärung auf Alkohol und die Melasseschlempe auf Kaliumcarbonat verarbeitet. Der Rohzucker wird meist in eigenen Raffinerien raffiniert (Konsumzucker) und gelangt dann als ganz reiner weißer +Kristallzucker+ (und Raffinade) meist in den charakteristischen Hüten oder in Würfeln in den Handel. Die Herstellung der bekannten Zuckerhüte (Zuckerstöcke) erfolgt in der Weise, daß man den Kristallbrei in konische, mit der Spitze nach unten aufgestellte Formen füllt, die Mutterlauge abfließen läßt und dann oben eine gesättigte reine Zuckerlösung aufgießt («deckt»). Diese verdrängt die Mutterlauge und wird schließlich abgesaugt, worauf man die Hüte in Trockenstuben trocknet. =Produktion.= Die +Rübenzuckerproduktion+ Europas betrug 1907/08: 6527800 t, davon entfallen auf Deutschland 2135000 t, auf Österreich-Ungarn und Rußland je etwa 1400000 t, der Rest auf Frankreich, Belgien, Holland u. and. Es wird zurzeit (1910) wieder mehr Rohrzucker wie Rübenzucker produziert. (1907/08 mehr Rübenzucker.) Beide liegen in einem steten Kampfe. Die Rübenanbaufläche betrug 1908/09 allein in Deutschland 432400 ha, in Rußland, das jetzt mit Deutschland in Konkurrenz tritt, sogar 561300 ha, in ganz Europa 1680700 ha. In Deutschland waren 1909 361 Rübenzuckerfabriken in Betrieb. Der meiste Zucker wird in Preußen gewonnen. Deutschland exportierte 1909 von +Rübenzucker+ in Doppelzentner: Kristallzucker 3303364; Platten-, Stangen-, Würfelzucker 440225; gemahlenen Melis 300992; Stücken- und Krümelzucker 141253 (bes. nach der Schweiz); gemahlene Raffinade 160694; Brotzucker 128994; Farin 69335; Kandis 30827; rohen Zucker (festen und flüssigen) 4037927 dz. Die Rübenzuckerproduktion ist ein kompliziertes Problem, das auf das innigste ebenso mit einem rationellen Zuckerrübenbau (Erzielung hochprozentiger Rüben), mit den Bodenpreisen und Arbeitslöhnen, sowie den Besteuerungsverhältnissen, wie auch den maschinellen Einrichtungen der Fabriken, der chemischen Kontrolle des Betriebes und der Verwertung der Abfälle und Nebenprodukte zusammenhängt. Ein gutes Bild über die Zuckerproduktion der Erde gibt uns die Ein- und Ausfuhr von Nordamerika. Es führte ein an versteuerbarem Zucker: ----------------------+----------+----------+----------+-------------- | 1906 | 1907 | 1908 | 1909 ======================+==========+==========+==========+============== +Melasse+ | 16021076| 24630935| 18882756| 22092696 (vorwiegend aus Cuba) | | | | Gallons | | | | +Rübenzucker+ not | | | | above Nr. 16 Dutch | | | | standard in color | | | | (vorwiegend aus | 48548919| 397745046| 221036900| 98625908 Deutschland) | | | | Pounds | | | | +Rohrzucker+ dito | | | | (vorwiegend aus Cuba | | | | und den westind. | | | | Inseln, aus holländ. | | | | Indien und den | | | | Philippinen) |3921605729|3986510021|3144022433|4084921078 „ | | | | +Zucker+ , above Nr. | | | | 16 Dutch standard in | | | | color (vorwiegend aus | | | | aus Deutschland, | | | | Österreich und Canada)| 9176782| 7584908| 6937789| 5874032 „ Dem steht eine Ausfuhr gegenüber von: ----------------------+----------+----------+----------+-------------- | 1906 | 1907 | 1908 | 1909 ======================+==========+==========+==========+============== +Melasse+ (vorwiegend | | | | nach Großbritannien | 10205885| 3193322| 3320419| 3973908 und Canada) | | | | Gallons | | | | +Sirup+ (vorwiegend | | | | nach Großbritannien, | | | | Dänemark und Canada) | 12335645| 14115819| 13181095| 13865756 „ | | | | +Brown Sugar+ | | | | (vorwiegend nach | 276556| 58587| 13285| 60882 dänisch Westindien) | | | | Pounds | | | | +Raffinierter Zucker+ | | | | (vorwiegend nach | | | | Großbritannien und | | | | Südafrika, dann nach | | | | Zentralamerika und | | | | Labrador) | 21899290| 21179016| 25497358| 79885415 „ =Handelssorten.= Der Handel unterscheidet: Raffinade (Abarten: Würfelzucker, und Pilé, Cubes, Granulated (Sandzucker), Kastorzucker, Kristallzucker), Melis, Farinzucker (Bastardzucker). (Vgl. auch unter Produktion.) Für die pharmazeutischen Präparate darf nur beste Raffinade oder Kristallzucker benutzt werden. Pharm. helv. IV verlangt z. B. Abwesenheit von Metallen und Traubenzucker, läßt nur Spuren von Kalk und Sulfaten zu und schreibt vor, daß 0,5 g ohne wägbaren Rückstand verbrennen sollen. =Prüfung.= Ein für medizinische Zwecke brauchbares _Saccharum_ muß weiß sein. 1 ccm der Lösung (2=3) mit 1 ccm Kobaltnitrat und 2 ccm Natronlauge versetzt muß eine beständige violette Färbung annehmen. 2 Teile Zucker geben mit 1 Teil Wasser einen farblosen, geruchlosen, neutralen Sirup von 1,330 spez. Gewicht, der beim Stehen nichts absetzen darf und sich mit Alkohol klar mischen muß. 10 ccm des Sirups dürfen nach Zusatz von 1 ccm Natronlauge und 1 ccm Kupfersulfat innerhalb 5 Minuten bei gewöhnlicher Temperatur höchstens eine grünliche Trübung, dagegen keine Abscheidung von rotem Kupferoxydul zeigen (Traubenzucker). Die verdünnte Lösung muß gegen Schwefelwasserstoff und Ammoniumoxalat indifferent sich verhalten und durch Barytnitrat und Silbernitrat höchstens opalisierende Trübung geben. Medizinalzucker muß ultramarinfrei sein. Das blaue Ultramarin wird zugesetzt, um die gelbe Farbe unreinen Zuckers zu verdecken. Während nämlich unser Auge sehr empfindlich ist für Gelb und schon eine schwach gelbe Färbung deutlich wahrnimmt, ist es für Blau wenig empfindlich. =Geschichte.= ~Marggraf~ ist der wissenschaftliche, ~Achard~ der technische Begründer der Rübenzuckerindustrie (I, S. 964). Der erste von ~Achard~ in etwas größerem Maßstabe dargestellte Rübenzucker wurde 1798 von der Berliner Zuckersiederei-Kompagnie auf Kandis, Farin und Syrup raffiniert (~v. Lippmann~). Auch ~Nöldechen~, ~Hermbstädt~ und ~Göttling~ fabrizierten bereits im XVIII. Jahrb. Rübenzucker. Die erste wirkliche Rübenzuckerfabrik setzte ~Achard~ 1802 in Betrieb. =Lit.= ~v. Lippmann~, Gesch. d. Zuckers (dort weitere Literatur). -- Les grandes cultures. -- ~Roessig~, Vers. einer bot. Bestimm. d. Runkel- oder Zuckerrübe. Leipz. 1800. -- ~Scheibler~, Aktenstücke zur Rübenzuckerfabrikation in Deutschland. Berlin 1875. -- ~Rümpler~, Ausführl. Handbuch der Zuckerfabrikation 1909 (vervollständ. Sonderabdruck des Artikels Zucker in ~Muspratts~ Chemie). -- ~Rümpler~, Die Nichtzuckerstoffe der Rüben. -- ~Wiley~, Exper. with Sugar beets U. S. Dep. of Agric. 1894 und Progress of the Beet-Sugar Industry in the United States. House of representatives Doc. 699. 1900. -- Jahresbericht über die Untersuchungen und Fortschritte auf dem Gesamtgebiete der Zuckerfabrikation. Begr. v. ~Stammer~, herausg. v. ~Bock~; der 48 Jahrg. (1908) erschien 1909. -- Abbild. der Pflanze bei ~Pabst-Köhler~, Medizinalpflanzen t. 55 und in Les grandes cultures. Auf einer anderen Chenopodiacee, _Salsola foetida_, beobachtete ~Aitchison~ 1887 in Afghanistan ein aromatisch schmeckendes _Manna_. III. Ahornzucker. =Syn.= Maple sugar. =Stammpflanzen= und =Systemat. Stellung=. =Acer saccharum= (Sugar maple) und dessen Varietät _A. saccharum nigrum_ (black maple) in erster Linie, dann auch: _Acer rubrum_ (red maple), _Ac. saccharinum_ (silver maple), _Ac. macrophyllum_ (Oregon maple), _Ac. Negundo_ (box elder). _Acer saccharinum_ ~Wangenh.~ ist abgebildet bei ~Pax~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. III, S. 271. +Aceraceae.+ =Gewinnung.= Der Saft des Zuckerahorn enthält im Liter 240-270 g Rohrzucker. (Auch der Saft unseres Ahorn enthält im Frühjahr c. 3% Zucker.) Reiner frischer Ahornsaft enthält keine Spur reduzierenden Zucker (~Wiley~). Der Ertrag hängt vom Standorte ab. Ahornbäume auf Höhenzügen und südlichen Abdachungen haben den zuckerreichsten Saft. Je frischer das Klima, um so feiner ist der Geschmack des Saftes. Die Indianer der nördlichen Staaten Nordamerikas benutzten seit undenklichen Zeiten den Ahornzucker. Sie schnitten in ganz geregeltem, aber ziemlich rohem Betriebe mit einer Axt den Baum horizontal an und leiteten den Saft mit einem Stück Rinde in Gefäße, wo er dann konzentriert wurde, im Winter durch Ausfrierenlassen. Sie kannten festen Zucker. Die ersten Ansiedler ahmten die Methoden der Indianer nach und verbesserten sie langsam. Das Einkochen und Kristallisierenlassen fand im Walde selbst statt (Fig. 42). Eine eigentliche Ahornzuckerindustrie entwickelte sich um die Mitte des XIX. Jahrh. Sie führte zu einer Verbesserung der Art des Anschneidens und besonders der Konzentrationsarbeit. Die Verwundung wurde nun nicht mehr mit einer Axt gemacht, sondern ein ⅜ Zoll großes Bohrloch angelegt, in dasselbe eine Metallröhre, meist verkupfertes Eisenrohr, eingesetzt und ein Eimer angehängt (Taf. VI). Das Eindicken erfolgt jetzt in langen flachen, schräggestellten Pfannen (Cooks Evaporator), über deren fragmentierten, mit Dampf oder durch direkte Heizung erwärmten Boden der Saft aus den Tanks in Zickzackbahn langsam von einem Ende zum anderen fließt (Fig. 43). In entlegenen Gegenden werden auch die alten Methoden noch geübt. [Illustration: Tafel VI. Ahornsaftgewinnung in Amerika. Die Eimer am Baume befestigt während der Saison. [Nach Fox und Hubbard.]] [Illustration: Fig. 42. Eindampfen des Ahornsaftes im Walde in Nordamerika. [Nach +Fox+ und +Hubbard+.]] [Illustration: Fig. 43. Moderne Verdampfungseinrichtung für den Ahornsaft in Nordamerika. [Nach +Fox+ und +Hubbard+.]] Jeder Baum liefert jährlich 50-150 Liter Saft, woraus 12-35 kg Zucker gewonnen werden können. Der mir vorliegende Ahornzucker ist etwas gefärbt. Die Ahornzuckerindustrie hat sich namentlich in den nördlichen Staaten der Union ausgebreitet. Von der fast 12 Mill. Pfund betragenden Menge Ahornzucker, die die Vereinigten Staaten 1900 produzierten, entfallen auf die New England States (Maine, New Hampshire, Vermont, Massachusetts, Connecticut) fast 5½ Mill., etwa ebenso viel lieferten die Middle Atlantic States (New York, New Jersey, Pennsylvania, Maryland, Virginia, West Virginia), etwa 1 Mill. die Centralstates und nur wenig North Carolina. Der meiste Ahornzucker kommt aus den Staaten Vermont, New York und Pennsylvania. Auch Ahornsyrup wird viel gewonnen, 1900 etwa 2 Mill. Gallonen, davon kam mehr als die Hälfte aus den Zentralstaaten, besonders Ohio. 1909 soll die Produktion an Ahornzucker auf 22½ Mill. Pfund gestiegen sein. 15 Mill. Eisenröhren mußten neu verkupfert werden. 1901 belief sich die Gewinnung an Ahornzucker und Sirup in +Kanada+ auf 17804825 lbs im Werte von 1780482$. Hiervon fallen auf die Provinz Quebec 13,56 Mill. lbs, auf die Provinz Ontario 3,91 Mill. lbs. Die Produktion soll seither noch gestiegen sein. Auch sind eigens Ahornbäume in letzter Zeit angepflanzt worden (~Tunmann~). ~Hermbstädt~ fand 1809 Rohrzucker in folgenden _Acer_-Arten: _Acer saccharinum_, _A. pseudoplatanus_, _A. campestre_, _A. platanoides_, _A. dasycarpum_, _A. tataricum_, _A. Negundo_, _A. monspessulanum_. Eine lohnende Zuckerbereitung ist auch bei den japanischen Zuckerahornarten _Acer argutum_ und _A. japonicum_ möglich. =Lit.= ~Fox and Hubbard~, The maple Sugar industry U. S. Dep. of agricult. Bur. of forestr. 1905. -- ~Will. F. Hubbard~, Maple Sugar and Sirop. U. S. Dep. of agricult. Farmers Bull. Nr. 252, 1906. IV. Palmzucker. Die Gewinnung des +Palmzucker+ (jaggery) ist in B. I, S. 1017 geschildert. Dort sind auch die Palmzucker liefernden Palmen genannt. In ziemlich beträchtlicher Menge wird Palmzucker auf dem malaiischen Archipel, z. B. in Java, aus dem Safte der Zuckerpalme, _Arenga saccharifera_ ~Labill.~ (_Gommutus saccharifera_ ~Spr.~, _Saguerus Rumphii_ ~Roxb.~), gewonnen. Diese in Malacca Gumúti, in Java Aren oder Anau, in Menado Akol (weitere Namen bei ~Clerq~) genannte, ziemlich struppige (Abbild. in ~Tschirch~, Ind. Heil. u. Nutzpfl.) Gomuti- oder Arenpalme, wächst im Innern der Malaiischen Inseln, fern von der Küste. Sie enthält im Stamm ziemlich viel Stärke, die ihr den Namen Sagopalme von Malacca verschafft hat und die z. B. auf Celebes gewonnen wird. Sobald die Palme sich aber anschickt ihren Blütenstand zu bilden wird diese Stärke in Zucker umgewandelt. Sobald die weiblichen Infloreszenzen sich entwickelt haben und die erste männliche erscheint, wird der Kolben geklopft bis bei Einschnitten reichlich Saft austritt, dann abgeschnitten und die durch Blätter gegen Bienen geschützte Schnittfläche mehrfach erneuert. «Nunmehr wird an der Schnittfläche ein aus mehreren Internodien bestehendes, unten geschlossenes, im Innern aber durch Durchlochen der trennenden Querwände in eine Röhre von oft 2 m Länge verwandeltes Stück Bambusrohr derartig befestigt, daß der aus der Schnittfläche ausfließende Saft in die durch Räuchern innen «sterilisierte» Röhre fließt. Diese Röhre hängt der Länge nach am Baum herab und ist mittelst Rotang- (oder Eju, d. h. Aren-) Schnüren am Stamm befestigt. Sobald ein zweiter Blütenstand erscheint, wird in der gleichen Weise verfahren. Ich sah oftmals an einem Baume 3-4 solcher Bambusröhren hängen. Täglich fließen etwa 2-3 Monate hindurch 2-4 Liter des Zuckersaftes aus. Derselbe wird, nachdem die Röhre alle paar Tage herabgenommen und entleert worden ist über freiem Feuer eingedampft, bis ein Tropfen, auf einen Stein gebracht, erhärtet. Aus der infolge der unsorgfältigen Bereitung braunen Zuckermasse werden alsdann runde Scheiben oder rechteckige Blöcke geformt, die in die Blätter des _Aren_ oder der _Zalacca edulis_ geschlagen als Gula-aren (d. h. Arenzucker) auf den Markt gebracht werden» (~Tschirch~). Die Abgabe des Zuckersaftes dauert ziemlich lange, so daß ein Baum viel Zucker zu liefern im stande ist. Ein Hektar Arenpalmen könnte c. 8000 Pfund liefern, doch ist die Arenpalme nirgends in Plantagenkultur. Ich sah nur einzelne Exemplare. Zu ~Junghuhns~ Zeit (Mitte des XIX. Jahrh.) gab es in der Residentschaft Bandong noch 159 Kochplätze für Arenzucker mit 334 eisernen Pfannen. Jetzt verdrängt der Rohrzucker allmählich den Arenzucker. Immerhin traf ich 1889 noch viel davon in den Warongs (Garküchen) und auf dem Pasar (Markt). Der Zucker der _Arenga saccharifera_ besteht zu 87,97% aus Rohrzucker und enthält nur 1,53% Dextrose und 0,18% Fruktose (~Déon~). Ursprünglich ist er wohl reine Saccharose. Die chilenische Cocos- oder Coquito-Palme (I, S. 1018) liefert in Chile große Mengen +Palmenhonig+, eine Hacienda bei Valparaiso mit 150000 Bäumen z. B. jährlich 200000 Liter (~Semler~). Der zum Export gelangende Palmenzucker der Dattelzuckerpalme, der sog. wilden indischen Dattelpalme (_Phoenix silvestris_), wird hauptsächlich in Bengalen gewonnen. Seine Bereitung, durch Anzapfen der Stämme, Einführen eines Bambusröhrchens und Eindicken des Saftes, schildert ~Semler~ (Tropische Agrikultur, 2. Aufl. 1897, 686; vgl. auch ~Watt~, Dict. econom. prod. of India). Die Gewinnung des Zuckers wird in Indien auf dem Lande noch ziemlich primitiv nach alten Methoden betrieben. Schon ~Joseph~, ein Indianer von Calechut (I, S. 743), beschreibt die Palmzuckergewinnung. Lohnend erwies sich auch die Zuckergewinnung aus der Dattelpalme und der Cocospalme. In Malabar setzt man dem abgezogenen Safte der Cocospalme (vgl. I, S. 1017) etwas Muschelkalk hinzu, um ihn am Gären zu hindern. Der zum dicken Sirup eingedickte Palmsaft wird auf Palmblätter aufgestrichen und erhärtet hier. Dieser Cocospalmzucker ist in Malabar ein namhaftes Handelsprodukt (~Schröter~). In Malacca wird übrigens Zucker auch aus der Arenpalme, die dort auch Kabong heißt und in Kultur sich befindet, bereitet. Die Blütenkolben heißen dort «mayams». Über Palmweingewinnung vgl. I, S. 1017. Schon ~Odorico di Porto Maggiore~ (I, S. 726) berichtet von «Bäumen, die Wein tragen». In Ceylon (Moratuwa) und Vorderindien (Tolligunj, Konnagar) wird sehr viel Cocospalmsaft, sowie Dattelzuckermelasse auf Arak (Toddy) verarbeitet, der in Deutschostafrika Tembo heißt. =Lit.= ~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpfl. -- ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants. -- ~Simmonds~, Tropical Agricult. -- ~Watt~, Diction. econ. prod. -- ~Schröter~, Die Palmen (I, S. 1020). -- ~Clercq~, Nieuw Plantkund. Woordenboek voor Nederl. Ind. 1909. V. Sorghumzucker. =Stammpflanze.= =Sorghum saccharatum= ~Pers.~ (Andropogon Sorghum var. saccharatus, Holcus saccharatus L.) und einige Sorten von =Sorghum vulgare= ~Pers.~ (Andropogon Sorghum var. vulgaris). -- +Gramineae+ -- Andropogoneae, Andropogon. Untergattung: Sorghum. =Herkunft und Gewinnung.= Die Zuckerhirse oder das chinesische Zuckerrohr (Sorgho) und das wohl kaum davon verschiedene, bisweilen aber als _Sorghum kaffrarium_ davon unterschiedene afrikanische Zuckerrohr (Imphee), sind ursprünglich an der Ostküste von Afrika heimisch, aber jetzt über die Erde verbreitet. Die Zuckerhirse wurde zunächst nach China gebracht. Von dort aus kam sie über Europa nach Amerika. Die Stengel enthalten in den Zellen des Grundgewebes Rohrzucker. Die Menge an Gesamtzucker beträgt oft bis 16% (~Wachtel~), weil sie aber zum großen Teile aus Invertzucker besteht, ist die Ausbeute an kristallisiertem Zucker nur klein, meist nur wenige Prozente, während die Zuckerrüben schon bis 18%, das Zuckerrohr (z. B. in Cuba) schon 13% ihres Gewichtes krist. Zucker lieferten. Am meisten macht die Tatsache, daß der Saft der Zuckerhirse neben Rohrzucker und unkristallisierbarem Zucker (Glukose), viel Eiweiß und Aschenbestandteile enthält und sauer reagiert, die Darstellung von krist. Sorghumzucker schwierig und wenig lohnend. Dagegen kann mit Erfolg Sorghumsirup dargestellt werden. Es geschieht dies in Amerika, wo sich eine ziemlich große Sorghumzuckerindustrie -- meist jedoch in Kleinbetrieben -- entwickelt hat, in dem oben (S. 127) erwähnten Cooks Evaporator. Die großen Hoffnungen, die man in Nordamerika auf die Sorghumzuckerbereitung setzte, haben sich nicht oder doch nicht in dem Maße als man zur Zeit des «Sorghumfiebers» dachte, erfüllt. Immerhin wurden dort angeblich 1885 (vorübergehend) 600000 Pfund, aber ziemlich unreiner, Sorghumzucker gewonnen. Auch in Frankreich, in Indien und Australien sind mehrmals wenig erfolgreiche Versuche mit Sorghumzuckerbereitung gemacht worden. Der gereinigte +Sorghumzucker+ enthält 92% Saccharose und 4,5% Glukose. Einen Sirup bereiten die Mexikaner übrigens auch aus den Stengeln von =Zea Mais= L. (~Tayler~), doch ist wohl, besonders aus der _Süßmais_ genannten Varietät, deren frisch ausgepreßter Saft 15-16% Rohrzucker enthält, von jeher, schon in der präkolumbischen Zeit, auch fester Zucker dargestellt worden (Berichte des ~Cortez~). In Europa wurde schon im XVIII. Jahrh. Maiszucker gewonnen. Daß der _Mais_stengel Rohrzucker enthält, zeigte 1836 ~Pallas~. Aus Zuckermaissaft wird in Mexiko, aus Zuckerhirsesaft in China ein berauschendes Getränk bereitet. In Mexiko heißt dies +Pulque de Mahiz+. =Lit.= ~Semler~, Tropische Agrikultur III, 301. -- ~H. W. Wiley~, Rec. of experim. conduct. by the Commissioner of agriculture in the manufacture of Sugar from Sorghum at Rio Grande, New Jersey, Kenner, Louisiana, Conway springs, Douglass and Sterling, Kansas 1888, sowie Record of experiments with Sorghum 1890-1893 U. S. Dep. of Agriculture. Div. of Chem. Bulletin 20, 29, 34 u. 40. -- Rep. of the secretary of agriculture 1892. -- ~Wachtel~, Centralbl. f. Agrik. Chem. 1880. VI. Andere Rohrzucker liefernde Materialien. Es ist auch vorgeschlagen worden, die =Ananas= auf Rohrzucker zu verarbeiten, da deren Fruchtstand 11,5% kristallisierenden Zucker enthält. Er wird aber von 2% nicht kristallisierenden Zuckers begleitet. Der Saft eignet sich also nicht zur Rohrzuckergewinnung, ganz abgesehen davon, daß das Ausgangsmaterial zu teuer ist. Das gleiche gilt von den =Aprikosen=, die neben 6% kristallisierendem Zucker, 2,75% unkristallisierbaren enthalten (~Semler~). Auch die =Zuckerwurzel= (_Sium Sisarum_), die man in Südeuropa und Nordafrika kultiviert, wird nicht auf Zucker ausgebeutet, obwohl ~Marggraf~ in ihr Rohrzucker fand. Aus dem Safte der =Agave= (vgl. I, S. 1018) bereiteten die alten Mexikaner und Peruvianer Zucker. Jetzt geschieht dies nicht mehr. Im Safte der _Agave americana_ finden sich 6% Saccharose und 2,6% Fruktose. Der Saft der =Birke= wurde in Schottland und Irland, und wird noch jetzt da und dort in Nordamerika auf Zucker verarbeitet. (Näheres in ~W. Lenz~, Über Birkensaft in Arb. d. pharm. Instit. Berlin VII [1910], 228.) Früher diente auch =Heracleum sphondylium= und =sibiricum= in Nordasien zur Zuckerbereitung. Man trocknete die Stengel und klopfte die Zuckereffloreszenz ab. Den Zucker aus =Asclepias syriaca= kannte bereits ~Avicenna~. Die süß schmeckenden Früchte von =Glyceria fluitans= (Mannagras, Mannahirse), von denen man bis ins XVIII. Jahrh. glaubte, daß sie wie der Tau vom Himmel fielen, sind zur Zuckerbereitung, wie es scheint, nie benutzt worden. Zucker aus =Cocosmilch= dargestellt enthielt 74,95% Saccharose. Zucker aus dem Safte von =Borassus flabelliformis= 79,12% Saccharose (~Bourquelot~). In von _Ahorn_blättern abgespültem =Honigtau= fand ~Kreis~ 19,7% der Trockensubstanz Invertzucker, 9,7% Rohrzucker und 40,1% Dextrin. Weitere Angaben bei ~Lippmann~, Gesch. d. Zuckers. II. Rohrzucker enthaltende Mannaarten. (Sämtlich frei von Mannit.) a) =Alhagi Manna oder Terendschabin.= Khorosani, Alhagi-Manna, persische Manna, Terendschabin, Taranjabin, Taryngiabin, -- Terengebin (pers. = Fruchthonig, engebin = Honig, ~Aitchison~ übersetzt: Honig vom Grünen, d. h. vom grünen Strauch), yavása-sarkara (ind.); -- bei ~Rhazes~ und ~Avicenna~: Terengiabin, bei ~Ibn Baithar~: Tarandschubin, arab. Elbâdsch; bei ~Simon Januensis~: Tereheniabin; bei ~Serapion~ (I, S. 606) Tereniabin, bei ~Garcia da Orta~: Tirimiabin, Trungibim; bei ~Alpini~ und ~Cordus~ (I, S. 800): Tereniabin (oder _Manna orientalis_ s. Drosomeli). Die _Manna granata_, z. B. in der Frankfurter Liste (I, S. 812) und bei ~Cordus~, war vielleicht auch _Alhagi-Manna_ (~Flückiger~). Die im Mittelalter über Aleppo in den Handel gebrachte sog. syrische Manna war diese, die wohl auch ~Megenberg~ sah. Die Stammpflanze, =Alhagi Maurorum= ~Tournef.~ (Dc.) (_Hedysarum Alhagi_ L., _Alhagi manniferum_ ~Desv.~, _Alhagi camelorum_ ~Fischer~), eine Papilionacee, wird überall in Persien, besonders in Khorâsan, als Kamelfutter benutzt, daher Kamelsdorn. Das _Manna_ schwitzt, wie es scheint, nur unter besonderen Bedingungen (nach größerer Hitze? auf besonderen Standorten?) als ein süßes Exsudat in Tröpfchen aus. Denn trotz der weiten Verbreitung der Pflanze, die auch in Afghanistan, Belutschistan und Hindostan gefunden wird, kommt dieses _Manna_ nur aus Nord-Persien (Taebris) und vom persischen Golf (Bender-Buschir), übrigens meist stark mit Früchten und Stielen vermischt, in den Handel (~Schlimmer~). Die Gegend von Ruikhaut in Persien ist durch dieses _Manna_ berühmt (~Aitchison~). ~Ibn Baithar~ zitiert nach Ishak Ben Amrân: «Tarandschubin ist ein Tau, der vom Himmel fällt, der dem festen körnichten Honig gleicht und Honigtau genannt wird. Der chorasanische ist der häufigste, welcher auf den Baum Elhâdsch, welcher der Aakul Hedysarum Albagi ist, fällt. Er wächst in Syrien und Chorasân und trägt grüne Blätter und rote Blumen, die keine Früchte tragen. Der beste Honigtau ist der weiße von Chorasân kommende.» ~L. Rauwolff~ (I, S. 771) beschreibt das Manna, das er 1573 auf dem Bazar in Aleppo sah und den Baum, der es erzeugt. ~Mir Muhammed Husain~ gibt an, daß es in Khorasan, Mawarunnahi, Kurjistan und Hamadan gesammelt werde. Es bildet braune, trockene Klümpchen von unregelmäßiger Gestalt, die mit Pflanzenresten untermischt sind. Einige sind durchscheinend körnig, spröde, kristallinisch, andere zäh, weich, amorph (~Ebert~). Sie riechen bisweilen schwach sennaartig. Dies _Manna_ bildete das hauptsächlichste süße Abführmittel der alten persischen Ärzte und wurde wohl schon in Suśrutas als Hedysarum und von ~Theophrast~ (Hist. plant. IV, cap. 4) erwähnt. Es dient noch jetzt in Persien als Abführmittel und kommt dort in grünlich-gelben Broten in den Handel. ~Dymock~ fand es 1891 in indischen Bazaren. ~Ludwig~ fand in ihm c. 35,5%, ~Ebert~ 42% Rohrzucker und c. 20% Schleim. Daneben fand sich etwas Chlorophyll. Der unlösliche Rückstand betrug c. 32%. Er bestand aus Pflanzenresten (Dornen, Blättern, Blüten), Sand und (zugesetzter) fremder Stärke (~Ebert~). +Die kristallinischen Stücke sind nahezu reiner Rohrzucker.+ Der Feuchtigkeitsgehalt schwankt (1,5-5,5%). ~Villiers~ fand darin +Melezitose+ (C₁₈H₃₂O₁₆.2 H₂O), deren Darstellung daraus ~Alechin~ beschrieb. ~Ebert~ fand den Körper nicht. =Lit.= Die Pflanze (zuerst?) im Botan. Lexikon Kîtab as-šaǧar (um 980). -- ~Ebert~, Beitr. z. Kenntn. einig. selt. Mannasorten. Diss. Basel 1908 (dort die Literat.). Derselbe auch in Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 46 und Apoth. Zeit. 1909. -- ~Polak~, Persien 1865. -- ~Schlimmer~, Terminol. medico pharmac. Franc.-Pers. Teheran 1874. -- ~Ludwig~, Bestandt. einig. Mannasort. d. Orient. Arch. d. Pharm. 1870. -- ~Villiers~, Bull. soc. chim. 27, p. 98. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie (dort S. 31 weitere Lit.) -- ~Heyd~, Levantehandel. -- ~Haussknecht~, Arch. d. Pharm. 1870. -- ~Alechin~, Zeitschr. d. russ. chem. Ges. 21, p. 420. Nach ~Collin~ (Journ. pharm. chim. 1890) werden in Persien zwei purgierende und fünf pektorale Mannen unterschieden. Eine Übersicht über persische und indische Mannen auch bei ~Hooper~, Pharm. Journ. 1890. ~Boccone~ erwähnt in seinen Curiösen Anmerckungen 1697: Terengiebin (Alhagi), Chirchest (Xirquest, Xircest, Scirquest, Siracest), Guczangkemin, Men essemà (Men essalüa) und ein Manna aus der Feige, sowie das Mannagras und die _Manna caccia_ Ungarns (Hermata chassa). -- Vgl. ferner: ~Virey~, Sur la manne des Hébreux et les mannes divers de l’Orient. Journ. ph. 4 (1818), 120 (dort ältere Lit.). -- ~Maiden~, Vegetable exudationes. Scient. res. of the Elder Exploring Expedit. 1892. b) Tabaschir. Tabâshîr, Tabaxir, aus Tvak-Kshira (sansc. = Rindenmilch) korrumpiert, bei Suśrutas: tugâkshîrî -- Vaṁça rocana, Báns lochan (hind.), Bambusmanna, Vanśa śarkarā = Bambuszucker (_Saccharum bambusae_), Vanśa karpura = Bambuscampher (_Manna bombacina_ bei ~Alpini~?). I. +Tabaschir+ (I) findet sich an der Oberfläche der Halme einiger indischer Bambusarten, bes. =Bambusa stricta= ~Roxb.~ (_Dendrocalamus strictus_ ~Nees~), die in Zentral- und Südindien heimisch ist, in Form von stalaktitenähnlichen, gegen den Halm hin abgeplatteten weißen oder hellbräunlichen Stücken, die sich leicht und vollständig im gleichen Gewichte Wasser lösen und fast vollständig aus Rohrzucker bestehen (~Hooper~), jedenfalls nur wenig reduzierenden Zucker enthalten. Die Asche beträgt 0,96%. Nur 0,77% einer ~Fehling~sche Lösung reduzierenden Substanz ließen sich nachweisen. +Dies+ Tabaschir ist wohl (auch nach ~Lippmann~) das σάκχαρον des ~Dioskurides~, das er «Honig des Zuckerrohrs» nennt und als durch Ausscheidung entstanden und dem Salze ähnlich beschreibt. Es war ein Handelsartikel der Westküste Indiens, besonders von Thana, wo es ~Edrisi~ (1135) traf. Ebenso kennt es ~Ibn Sina~, die Zollliste von Aden (I, S. 699) und ~Garcia da Orta~ (I, S. 736). Es wird noch jetzt in der orientalischen Medizin benutzt, ist aber selten geworden. Auch die Pharmac. persica von 1681 (I, S. 808) führt dies Tabaschir auf. II. +Ein anderes Tabaschir+ (II) kommt +im Innern+ der Halme der Bambusen vor. Es wird schon von ~Ibn Baithar~ bestimmt von dem oben beschriebenen unterschieden. Es besteht fast ganz oder zum größten Teil aus Kieselsäure und Silikaten. ~Fourcroy~ und ~Vauquelin~ fanden darin 70%, ~Ince~ 86,39-91,69%, ~Rost van Tonningen~ 86,38%, ~Thomson~ 90,5%, ~Guibourt~ 97,39% Kieselsäure, daneben Kalk, Kali, Natrium. Es enthält aber auch 4,25% Rohrzucker neben 2,6% Schleim (~Ebert~). Die Beziehungen der beiden Tabaschire können wir uns so denken, daß ursprünglich in das Innere der Halme ein Gemisch von Silikaten und Zucker abgeschieden wurde, die zunächst in wässriger Lösung sich befanden. (Ich habe beim Anschneiden von Bambushalmen in Java oft im Innern eine beträchtliche Menge einer wässrigen Flüssigkeit gefunden.) Dann dialysierte besonders an den Knoten der kristallinische Zucker durch die Halmwand nach außen, wo er nur in der Trockenzeit sich erhielt und auskristallisierte, in der Regenzeit aber abgewaschen wurde und in der Höhle der Internodien blieb eine zuckerarme Lösung zurück, die die amorphen, kolloidalen Substanzen (Schleim und Silikate) enthielt (~Ebert~). Diese gab dann beim Eintrocknen das Tabaschir II. Das würde erklären, daß Tabaschir I seltener ist. (~Kobus~, der auf ~Lippmanns~ Ersuchen vor einigen Jahren den Sachverhalt untersuchte, fand obige Theorie in Java nicht bestätigt.) Auch das Tabaschir II wird noch jetzt arzneilich benutzt. Aus der Literatur, mit Ausnahme der analytischen, ist selten klar ersichtlich, welches der beiden gemeint ist. So würden denn ~Salmasius~ und ~Humboldt~ Recht haben, die (entgegen der Meinung ~Pereiras~) meinten, daß das σάκχαρον der Griechen der «Saft des Bambusrohres» gewesen sei (vgl. auch ~Pereiras~ Handbuch II, S. 26). =Lit.= ~Fourcroy~ u. ~Vauquelin~, Ann. du Museum VI, 1806 (amerikan. Tabaschir). -- ~Guibourt~, Hist. des drog. simpl. -- ~Thomson~, Rec. of Gen. Science 1836. -- ~Rost van Tonningen~, Jahresb. d. Chem. 1860. -- Pharmacographia indica. -- ~Watt~, Dictionary of the economic prod. of India. -- ~Hooper~, Pharm. Journ. 1891 und 1900, 640. -- ~Ince~, Ebenda. 1896 (dort Analysen). -- ~Poleck~, Bambusa arundinacea, Pharm. Centrh. 1886 u. Zeitschr. d. Österr. Ap. Ver. 1887. -- ~Huth~, Der Tabaschir in sein. Bedeut. für d. Bot. Mineral. u. Phys. Berlin 1887. -- ~Kurz~, Indian Forester I. -- ~Brandis~, Ebenda XIII. -- ~Ebert~, Beitr. z. Kenntn. selten. Mannasort. Diss. Zürich. 1908. -- ~Flückiger~, Zur Geschichte d. Tabaschir. Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1887 u. Schweiz. Zeitschr. f. Pharm. 1859. c) =Californisches Manna.= Auch an einem anderen Grase, =Phragmites communis=, ist ein wohl durch Aphiden (~Watson~) erzeugtes süßes Exsudat beobachtet worden (Pater ~Picolo~ und ~Ross Browne~ bei ~Lloyd~), das als +Californisches Manna+ bekannt ist. Es wird noch jetzt von Indianern gesammelt (~Lloyd~, Californian Manna. Amer. journ. pharm. 1897 (deutsch in Ber. d. pharm. Ges. 1897). d) =Blue Grass Manna.= Ebenfalls von einem Grase, und zwar von dem in Neusüdwales heimischen =Andropogon annulatus= ~Forsk.~, stammt das Blue grass Manna (~Baker~ and ~Smith~, Pharm. Journ. 1897). e) =Weidenmanna oder Bide Khecht.= Das +Weidenmanna+ (Bide khecht, Bid chischt) wird im Spätsommer von den Blättern von =Salix fragilis= L. in Persien ausgeschwitzt und nördlich von Teheran in den Dörfern am Fuße des Elbrus (~Polak~) oder dem Distrikt Cheriar (~Schlimmer~) gesammelt. Ein ähnliches _Manna_ scheint auf Apfelbäumen, auf _Pirus glabra_ und _Salsola foetida_ vorzukommen. Es bildet unregelmäßige weiße oder rote Stücke. Den ~Ebert~ 1908 vorgelegenen Stücken waren Rosenblätter und eine Ferulaceenfrucht beigemengt. ~Haussknecht~ sagt, es werde mit Mehl vermischt. Es enthält in den reinsten Stücken 50% Rohrzucker. Daneben findet sich darin 17,5% Dextrose, 13,26% andere wasserlösliche Bestandteile. Der unlösliche Rückstand (Gips, Weizenmehl, Pflanzenreste) betrug 19,2%. Ein ähnliches Manna liefert _Salix tetrasperma_ in Indien. Dies enthielt 10% eines reduzierenden Zuckers (Pharm. Zeit. 1893, 548). Aus einem Bidenguébine wurde neben 12% Glukose ein der Saccharose ähnlicher Zucker (+Bidenguebinose+) isoliert. Über das andere Weidenmanna siehe weiter unten. =Lit.= ~Ebert~ a. a. O. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Ludwig~, Arch. Pharm. 1870 (dort die ältere Lit.). -- ~Haussknecht~ a. a. O. -- ~Hooper~, Pharm. Journ. 1890. f) =Eichenmanna oder Gueze-elefi.= Das Eichenmanna, Vallonenmanna, _Manna quercina_ oder _quercea_, Gueze-elefi (gezza, bei den Türken küdret halwa = Himmelssüßigkeit, daraus vielleicht Trehala korrumpiert) erwähnt schon ~Theophrast~ (hist. plant. lib. 3). Es entsteht in Persien auf den Blättern und Fruchtbechern von =Quercus Vallonea= ~Kotschy~ und =Quercus persica= ~Jaub. et Spach~ (~Ibn Baithar~ nennt _Q. coccifera_ = dschidár), angeblich durch die Blattlaus _Coccus manniparus_ (?). Im August werden die Eichenwälder von diesen Blattläusen befallen, die Blätter bedecken sich mit einem feinen Mehltau, der zu sehr süßen wasserhellen Tropfen zusammenfließt, die abtropfend oft den ganzen Boden ringsum bedecken (~Haussknecht~). Dies auf die Erde fallende Manna scheint nicht gesammelt zu werden. Die Bewohner der Bergdistrikte sammeln vielmehr die von der _Manna_ befallenen Blätter, wiegen sie fein und stellen aus der klebrigen Masse graugrüne, zähe, gut haltbare Klumpen dar. Andererseits tauchen sie die klebrigen Blätter auch in heißes Wasser, dampfen zum Sirup ein und verwenden diesen direkt oder dicken weiter ein, vermischen das Extrakt mit Mehl, streichen auf Leinwandstreifen und trocknen an der Sonne. Dies Produkt heißt Pekmes (~Haussknecht~). Es scheint auch vorzukommen, daß man die Blätter trocknet und das eingetrocknete, pulverig gewordene Manna abklopft (~Berthelot~, ~Schlimmer~). Die mit der Blattmasse vermischten Klumpen, wie es scheint die einzige in den Handel gebrachte Sorte dieses _Manna_, enthält (nach ~Ebert~) 52,2% Rohrzucker (~Berthelot~ fand in der von der Blattmasse befreiten Masse 61%), 19% Traubenzucker, 10,3% Schleim, 7,45% Feuchtigkeit und 10% Rückstand. (Darunter nur wenige Tierreste.) ~Ludwig~ und ~Flückiger~ geben 48 resp. 90% Traubenzucker und keinen Rohrzucker an, doch sagt ~Flückiger~ nur, daß er rechtsdrehenden Zucker gefunden habe, den er nicht zum Kristallisieren bringen konnte. Dextrin, das ~Berthelot~ angibt, konnte er nicht finden. ~Ludwig~ hat nur die Drehung des Auszuges bestimmt. =Lit.= ~Polak~, Persien, das Land und seine Bewohner. 1865. -- ~Schlimmer~ a. a. O. -- ~Ebert~ a. a. O. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie u. Arch. Pharm. 1872. -- ~Ludwig~, Bestandt. einiger Mannasort. des Orient. Arch. Pharm. 1870 (dort die ältere Literat.). -- ~Haussknecht~, Mannasorten d. Orient. Ebenda 1870. -- ~Berthelot~, Ann. chim. phys. 3 ser. t. 67. g) =Schîr-Khist.= Bei ~Avicenna~: Szirchosta. Die Bezeichnung Schîr-Khist, Schir-Khisht, Shîrkhisht (= erhärtete Milch) +ist ein persisch-indischer Kollektivbegriff für Manna überhaupt+ (Dict. econom. prod. Ind.), wird aber auch für eine besondere Sorte, nämlich das schon von ~Ibn Baithar~ unter dem Namen Schîrschaschak als Husten- und Abführmittel erwähnte _Manna_ benutzt, das in Herat, dem Elbrus und in Khorasan gesammelt wird (~Schlimmer~) und von der Amygdalacee =Cotoneaster nummularia= ~Fischer et Meyer~ (und von der Polygonacee =Atraphaxis spinosa= L.) stammt (~Haussknecht~). Das von ~Ebert~ 1908 untersuchte _Manna_, das bestimmt von _Cotoneaster_ stammte (~Hartwich~), bildete grauweiße, bröcklige, von Kristallen durchsetzte Stücke von Erbsengröße und süßem, schwach mehligem Geschmack. Die beigemengten Pflanzenreste (Stücke der Stengel, Rinde, Kelche und Blättchen) waren von einem mehligem Überzuge bedeckt. Dieses _Manna_ enthielt 12,9% Rohrzucker, 37,5% Glukose, 24,2% Schleim, 15,9% Feuchtigkeit. Es wird noch heute in Persien benutzt (~Polak~). In dem in Indien viel benutzten _Manna_ von _Cotoneaster nummularia_ ~Fisch. et Meyer~, einem bis 14 Fuß hohen Strauche der Paropamisuskette und Khorasans, das im Juni durch Abschütteln der Zweige gesammelt und massenweise nach Persien und Indien exportiert wird (~Aitchison~), fand ~Hooper~ 8,3% Glykose, 4,1% Rohrzucker, gegen 50% +Chirkhestit+ (C₆H₁₄O₆ «dem Mannit und Sorbit verwandt», wahrscheinlich Sorbit, ~Raby~). Da Schîr-Khist ein Sammelname ist (siehe oben) -- bei ~Ibn Baithar~ lautet der Sammelname Mann -- ist es begreiflich, daß auch andere Mannaarten unter diesem Namen gelegentlich in den Handel kamen und kommen. So ist das Schîr-Khist von ~Raby~, in dem er einen neuen, angeblich dem Sorbit ähnlichen Zucker, den Chirkhestit, sowie das =Bidenguebin=-(Bid-engebin?-) =Manna=, in dem derselbe die Bidenguebinose auffand, sicher von der obigen verschieden und wohl den Weidenmannas (s. oben S. 133) anzugliedern. Und auch das Schîr-Khist von ~Ludwig~, in dem dieser 17,8% linksdrehenden Zucker und 22,5% Stärke fand, muß ein anderes Produkt gewesen sein (_Atraphaxis-Manna_?). _Atraphaxis-Manna_ erwähnt ~Garcia da Orta~ unter dem Namen Xirquest, Xircast. Die Manna mastichina des ~Prosper Alpin~ war vielleicht Schîr-Khist. =Lit.= ~Polak~ a. a. O. -- ~Schlimmer~ a. a. O. -- ~Haussknecht~ a. a. O. -- ~Ebert~, Dissert. Zürich 1908. -- ~Raby~, Chirkhest and Bidenguebin. Ph. Journ. Transact. 19 (1889) p. 993. -- ~Ludwig~ a. a. O. -- ~Hooper~, Pharm. Journ. 1890, 421. Weitere Mannaarten siehe unter den Trisacchariden, unter Mannit und Dulcit. Eine Liste der indischen Mannaarten in ~Watts~ Dictionary. Eine Zusammenstellung der Pflanzen, die ein Manna liefern, auch in Chem. Drugg. 1890, 863. Eine ältere Monographie der Mannen gab ~Claudius Salmasius~ (Plinian. exercitation. Ultraject. 1689). h) =Tamarixmanna.= Das Tamariskenmanna (arab. Gazánjabín, pers. gazangabín -- Ges-engebin, Gesendschebin, Gäzändjebîn, -- in der Pharmacop. persica 1681 (vgl. I, S. 808): Guezengebin, umfaßte hier wohl mehrere Mannaarten; -- bei ~Alpini~: Terengebil) wird von =Tamarix gallica var. mannifera= ~Ehrenberg~ (+arab.+ asl, tarfá [so auch bei ~Serapion~], athel [bei ~Amran~, I, S. 598], -- +pers.+ gaz -- gaz angabin [oder ges-engebin] also = Tamariskenhonig; _Tamariscus_ steht in der Alphita «arbor genestae s. miricae», I, S. 660) gesammelt und soll angeblich durch die Schildlaus _Coccus manniparus_ ~Ehrenb.~ erzeugt werden. Diese bis 7 m hohe Tamariske findet sich fast in ganz Persien (besonders häufig im Süden), dann in Afghanistan, Arabien, in der sinaitischen Wüste, Ober-Ägypten und Nubien. «Die glänzend weißen, honigdicken Tropfen dieser eigentümlich angenehm riechenden, wohlschmeckenden Tamariskenmanna träufeln in der Sonnenwärme des Juni und Juli von den obersten Zweigen herunter, werden in der Umgebung des St. Katharinenklosters am Sinai in lederne Schläuche gesammelt und seit Jahrhunderten (bereits ~Antonius Martyr~, c. 570 n. Chr., berichtet davon) teils genossen, teils den Pilgern teuer verkauft, da die ganze Ernte im günstigsten Jahr nur 700 Pfund beträgt» (~Wellsted~, ~Flückiger~). ~Burkhart~ traf den Baum im Tale Scheikh und nur in diesem einen Tale Arabiens, durch das die Juden seinerzeit zogen, kommt er in größerer Menge vor. Das _Manna_ wird vor Sonnenaufgang gesammelt, wenn es erhärtet ist, in der Sonne schmilzt es. Die Araber kochen es und seihen es durch ein Stück Zeug. Es ist schmutzig gelb, schmeckt süß und etwas gewürzhaft, hart wird es nie. In Persien scheint, jetzt wenigstens, _Tamarixmanna_ nicht gesammelt zu werden. _Tamarixmanna_ enthält 55% Rohrzucker, 25% Lävulose und 20% Dextrin (~Berthelot~). Nach der gewöhnlichen Annahme, die sich auf die Ausführungen von ~Ritter~, ~Tischendorf~ und ~Ebers~ stützt, soll dies +das Manna der Bibel+ sein. Auch ~Flückiger~ nimmt dies an. Ich lasse die Frage offen (I, S. 490) und führe (a. a. O.) als möglich an, daß es sich um eine Flechte (vielleicht um die Mannaflechte _Sphaerothallia esculenta_) gehandelt haben könne. Ich stütze mich auf ~Haussknechts~ Ausführungen, der bemerkt: «Was nun die +biblische Manna+ anlangt (d. h. _Chlorangium Jussuffii_ ~Link~ [_Lecanora esculenta_ ~Eversmann~, _Lecanora desertorum_ ~Krempelhuber~]), so kann ich mir darunter nur eine solche oder eine ihr doch ähnliche +Flechte+ vorstellen, die auch das scheinbar Wunderbare in der biblischen Darstellung sehr gut erklärt. Etwas Übertreibung muß man den Orientalen zugute halten, behaupten sie ja doch noch heute, daß diese Manna vom Himmel falle. Daß die Juden ihre Manna nur am Morgen, wenn der Nebel verschwunden war, sammelten, ist klar, weil dann die durch die Feuchtigkeit angeschwollenen Flechten leicht sichtbar waren; nach längerer Einwirkung der Sonnenstrahlen aber (2. Mos. 16, 21) schmolz sie, was wohl eine falsche Übersetzung ist, es hätte heißen müssen: «+verschwand+ sie», indem die austrocknende Flechte sich zusammenkrümmt und sich mechanisch mit Erde umhüllt (resp. nun zwischen den Steinen nicht mehr sichtbar ist. ~Tschirch~). Aus 4. Mos. II, 7-9 ersieht man, daß die Manna eine trockene, feste Substanz sein mußte, da sie in Mühlen gestoßen wurde. Daß die Manna sich nur in stets unkultiviert gewesenen Wüsten fand, wo sich Flechten in großer Menge bilden konnten, geht aus Josua 5, 12 hervor, weil dieselbe bei Annäherung an kultivierte Gegenden aufhörte. Daß die Flechte +unausgetrocknet+ in großen Massen aufgehäuft, sofort sich erhitzen und verderben mußte, ist selbstverständlich. Auch die Geschmacksangabe der Bibel paßt nur hierher «wie Semmel mit Honig», obgleich es richtiger gewesen wäre, wenn diese Stelle mit «+wie süßes Mehl+» oder «+wie süßes Brot+» übersetzt worden wäre, denn die Semmeln kannten sie ja damals ebensowenig als heute. Da ~Ehrenberg~ +Manna-Ausschwitzungen auf Tamarix in den Schluchten des Sinai+ beobachtet hat, so hat man seitdem allgemein und mit ziemlicher Bestimmtheit angenommen, daß diese auch die _Manna_ der Juden gewesen sei. Allein die Eigenschaften dieser _Manna_ widersprechen den Angaben der Bibel vollständig. Auch ist es gar nicht denkbar, daß die verhältnismäßig so geringe Ausschwitzung einem ganzen Heere zur Nahrung hätte dienen können. Bezieht man aber die Angaben auf diese Flechte, so kann man nicht umhin, nur in ihr die wahre Manna der Juden zu erblicken.» Auch ~Henry Castrey~ (La Nature 1898) teilt die Ansicht, daß es sich um eine Flechte handle. Er nennt das «Manna der Juden» _Sphaerothallia esculenta_ N. ab Es. und berichtet, daß noch heute die Araber, welche die Sandwüsten Arabiens durchqueren, diese Flechte, welche sich dort sehr häufig findet und nach jedem Regen große Haufen auf dem Sande bildet, zur eigenen Ernährung wie zum Futter der Kamele benutzen. Die erbsengroßen, auf dem Bruche mehligen Körner von ziemlich angenehmem, schwach süßem Geschmacke enthalten 14% Stickstoffsubstanz, 32% Kohlehydrate, 4% Fett, sind also wohl imstande eine Zeitlang als Nahrung zu dienen. Über einen neuerlich erfolgten «Mannaregen» bei Diabakr, bei dem die Flechte zu Brot von guter Beschaffenheit verbacken werden konnte, erhalten wir Nachrichten durch La Nature 1891. Das oben erwähnte _Chlorangium_ wird von den Persern gemahlen und zu Brot verbacken und ist auf den Bazaren in Isphahan unter dem Namen schirsad bekannt. Die Auffassung, daß das Manna mit dem Tau vom Himmel falle, finden wir auch bei ~Mesue~. Mit der _Tamarixmanna_ vielfach verwechselt wurde ein den gleichen Namen: ges-engebin (d. h. _Tamarixmanna_) tragendes Manna, das in Persien von =Astragalus florulentus= ~Boiss. et Haussk.~, =Astr. adscendens= ~Boiss. et Haussk.~ besonders im Westen von Ispahan gesammelt und viel benutzt wird. Es bedeckt wie ein Mehltau die Zweige und läßt sich abklopfen. Die beste Sorte trägt den Namen Ges Alefi oder Ges Chonsari. Es wird mit Mandeln, Pistazien, Gewürzen und Mehl zu eigenartigen, sehr beliebten Gebäcken verarbeitet (~Haussknecht~). Dies Manna enthält 30,95% Dextrin, 17,93% Invertzucker mit überschüssigem Fruchtzucker, 10,71% Gemenge von Dextrin und Invertzucker (~Ludwig~). =Lit.= II. Mose 16 und IV. Mose 11. -- Tamarix mannifera im Botan. Lexicon Kitâb aš-šaǧar (um 980). -- ~Antonius Martyr~, De locis sanctis cap. 39. -- ~Ritter~, Erdkunde von Asien XIV, 1846, 665-695. -- ~Tischendorf~, Aus dem heiligen Lande 1862. -- ~Ebers~, Durch Gosen zum Sinai 1872, S. 223-243. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Wellstedt~, London and Edinb. Phil. Mag. X 1837, p. 226. -- ~Berthelot~, Arch. Ph. 115 (1861) u. Jahresber. d. Chem. 1861, S. 751. -- ~Schweigg~, Journ. 29. -- ~Dierbach~, Magazin d. Pharm. 1826. -- ~Haussknecht~, Mannasorten des Orient. Arch. Pharm. 1870. -- ~Ludwig~, Über d. Bestandt. einig. Mannasort. d. Orient. Ebenda. -- ~Stolze~ und ~Andreas~, Handelsverhältnisse Persiens, Petermanns Mitt. Ergänzungsh. 77 (1885). Über +andere persische Mannaarten+ vgl. ~Haussknecht~ a. a. O. -- ~Polak~, Persien 1865. -- ~Vambery~, Reise in Mittelasien 1865. -- Ausland 1867, -- Jahresber. d. Pharm. 1869, -- Pharmacographia p. 415. Eine chem. Unters. der Mannaflechte bei ~Castrey~ (Bull. gén. de Thérap. 138, 942, Pharm. Zeit. 1899, 238). -- ~H. W. Reichardt~, Über die Mannaflechte _Sphaerothallia esculenta_ ~Nees~. Verh. Zool. Bot. Ges. 1864. III. Rohrzuckerfrüchte. Fructus Ceratoniae. =Syn.= Johannisbrot, Sodbrot, Soodschote, Bockshörndl, -- Siliqua dulcis -- Caroube, Carrouge (franz.) -- Locust been, Carob, St. Johns Bean or bread, Algaroba of Spain (engl.) -- caroba, frutto del carubbio (ital.) -- johannisbrood (holl.) -- johanneksen leipä (finn.) -- szentjánoskenyér (ung.) -- κεράτιον (n.-griech.). -- Kharnûb nûbti (ind.). Der Name Carobe wird auch für andere Dinge benutzt, z. B. für die von _Pemphigus cornicularius_ auf _Pistacia Terebinthus_ erzeugten Gallen. Carobenblätter sind die Blätter einer Anzahl von Bignoniaceen (_Jacaranda_-, _Bignonia_-, _Sparattosperma_-, _Kordelestris_-Arten). =Etym.= Die hieroglyphischen Inschriften nennen die Frucht der _Ceratonia_ darouga, ouâh und djari. Die beiden ersten Worte bedeuten ursprünglich (nach ~Loret~) einen gekrümmten Gegenstand mit spitz zulaufenden Enden (wie das Mondhorn = κρέας), besonders eine Schote (κεράτιον); der dritte bezeichnete die süße Pulpa der Frucht darouga hat die gleiche Wurzel wie die semitischen Worte quarouga und garouta (~Buschan~). Johannisbrotbaum, weil sich nach der Legende Johannes der Täufer von den Früchten in der Wüste ernährte. (Man zeigt in Palästina sogar den Baum!) Der Ausdruck +Johannisbrot+ findet sich (zuerst?) im Inventar der Ratsapotheke Braunschweig 1522. Ceratonia (so bei ~Galen~) von κερωνία, ion., sonst auch κερατεία, die Frucht in der Bibel: κεράτιον; auch ~Dioskurides~ schreibt: κεράτια, vielleicht von κέρας Horn, wegen der Form der Frucht, +neugriech.+ ξυλοκερατέα, -- +pers.+: charnûb, +arab.+: charrûb (bei ~Ibn Baithar~: chirnub), davon +ital.+ carrobo, carruba, +span.+ garrobo, algarobbo, +port.+ alfarroba, +franz.+ caroube, carouge. Im Albanes.: tšotšobanuze (= Ziegenhorn). Bei ~Plinius~ (XIII, 8): _Siliqua_, quam Jones cerauniam vocant; bei ~Columella~: _Siliqua graeca_; bei ~Scribonius Largus~: _S. syriaca_ -- _Siliqua_ vielleicht aus λόβος (Wickenfrucht) umgebildet und übertragen (~Koch~) --; _Siliqua dulcis_ zuerst bei ~Prosper Alpin~ (De plant. aegypt. 1591); bei ~Cordus~ findet sich: _Fructus ceratoniae_, _Xyloceratia_, _Xylocaracta_. Auch im Nördlinger Register steht _Xilo caracta_ (_Siliqua dulcis_). [Illustration: Fig. 44. _Ceratonia Siliqua._ A blühender Zweig, B männliche Blüte, C hermaphrodite Blüte, D Längsschnitt durch dieselbe mit dem hutförmigen Discus, E Hülse, F Längsschnitt durch die Basis derselben, G Längsschnitt und H Querschnitt durch den Samen. [Nach +Taubert+ in +Engler-Prantl+, Pflanzenfam.]] =Stammpflanze.= =Ceratonia Siliqua= L. (~Linné~, Syst. veget. ed. XIV, 1167, 1), Johannisbrotbaum, Johannsbrodbaum und Judasboom (mhd.) -- Caroubier. =Systemat. Stellung.= +Leguminosae+, Caesalpinioideae -- Cassieae. =Beschreibung.= Der Johannisbrotbaum besitzt paarig-gefiederte Blätter mit lederartigen, wenigjochigen Blättchen und sehr kleinen Nebenblättern. Er ist polygam diöcisch. Die Blüten stehen in seitlichen kurzen, gebüschelten Trauben (~Plinius~ sagt, die _Ceratonia_ trägt ihre Früchte am Stamm). Sie besitzen keine Corolle, sondern nur 5 kurze unscheinbare Kelchblätter, die männlichen Blüten fünf große epipetale Stamina und einen rudimentären Fruchtknoten, die hermaphroditen 5 kleine Stamina (Staminodien?) und einen großen gestreckten, kurzgestielten, in der Mitte eines hutförmigen, drüsigen Diskus inserierten behaarten Fruchtknoten mit kurzem Griffel, schildförmiger Narbe und zahlreichen Ovulis (Fig. 44). Die Frucht ist eine Hülse, ein +Legumen+. Daher ist die Bezeichnung _Siliqua_ (d. h. Schote) _dulcis_ falsch und irreführend. Sie stammt aber aus dem Altertum, wo man nicht zwischen Hülse und Schote unterschied, überhaupt nicht differenzierte. Übrigens spricht man auch heute noch fälschlich von Vanille+schoten+, Hülsen+früchten+ und unsere «+Schote+» (_Pisum_) ist bekanntlich auch eine Hülse. [Illustration: Fig. 45. _Ceratonia Siliqua_ mit Früchten. [Nach +Hamilton+.]] Die Früchte hängen in großen Büscheln an den Zweigen. Ein alter Baum (Fig. 45) vermag Tausende von Kilogramm Caroben zu liefern. Der Baum ist in Syrien und Palästina heimisch, nicht in Ägypten und Griechenland, auch nicht in Arabien (~Schweinfurth~), kam aber frühzeitig nach Ionien, Knidos, dem südwestlichen Kleinasien und Rhodus (~Theophrast~, ~Plinius~). Seine nördliche Grenze fällt jetzt etwa mit der der _Citronen_ und _Orangen_ zusammen (~Hehn~). Er ist empfindlicher als die _Olive_. Das südlichste Vorkommen ist Yemen. Jetzt ist er vielfach verwildert (in der Kyrenaica, Algier, Sicilien usw.). =Lit.= ~Bonzom~, ~Delamotte~ et ~Rivière~, Du Caroubier et de la caroube. Paris 1878. -- ~Taubert~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. III (Abbild.). -- ~G. Bianca~, Il carrubo, Monogr. storico-botan-agrar. L’Agricoltura italian. VII 1881. -- ~Hamilton~, Botanique de la bible 1871. -- Abbild. eines Caroubier auch in La Nature 1902, 316. =Pathologie.= Auf den Blättern von _Ceratonia Siliqua_ kommen mehrere Pilzarten aus den Gruppen der +Pyrenomyceten+ und Imperfekten vor, es ist auch nicht ausgeschlossen, daß dieselben auch auf die jungen Früchte übergehen, doch sind Angaben hierüber nicht bekannt geworden (~Ed. Fischer~). =Kultur.= Der Johannisbrotbaum, der in das Mittelmeerdrogenreich gehört, ist ein ziemlich hoher, weit ausgebreiteter, reichlich schattenspendender, immergrüner Baum (Fig. 45), der die Meeresnähe liebt. Er wird sehr oft Jahrhunderte alt, wächst langsam und trägt meist erst mit 20 Jahren Früchte. Behufs reichlicher Fruchtbildung muß er (wie _Ölbaum_ und _Weinstock_) beschnitten und am besten auch künstlich befruchtet werden. Meist besorgt jetzt der Wind die Befruchtung und es ist bekannt, daß aus gewissen Gegenden (offenbar solchen, wo männliche Bäume reichlich wachsen) wehende Winde den Fruchtertrag steigern. Erst neuerdings erhält man die männlichen Bäume, die von den Bauern Siciliens früher vernichtet oder nur zum Pfropfen benutzt wurden. Sein Anbau reicht nicht sehr weit zurück. Erst ~Palladius~ (I, S. 574) beschreibt Anbau und Fortpflanzung in Italien (späteres Einschiebsel? ~Hehn~). Die Araber gaben der Kultur ihre heutige Verbreitung über Spanien, Süditalien, Apulien, Sicilien, Sardinien, Griechenland und die Inseln. Er wird jetzt auch in Indien (Panjab, Madras) kultiviert (~O’Conor~ 1876). Er wurde dort 1840 durch ~Royle~ eingeführt. Die Kultur hat zahlreiche Varietäten ausgebildet, die sich durch ihre Süßigkeit, die Größe der Früchte, das Aroma, die Haltbarkeit unterscheiden. Durch Pfropfen wurde in Cypern, Chios und Candia eine große, fleischige, sehr süße Sorte erzielt (~Flückiger~). =Produktion und Handelssorten.= Hauptsächlicher Lieferant der Caroben ist seit mindestens 6 Jahrhunderten +Cypern+, das jährlich viele Millionen kg verschifft, teils vom Cap Karrubieh, unweit Larnaka an der Südküste, teils von Limasol im Westen und Cerigna im Norden, dann auch aus Mazota und Lefkara. Als beste gelten die ebenfalls in beträchtlicher Menge versandten italienischen, speziell die von Sicilien (Avola), von Bari (Puglia), Mola und die sog. Honig-Caroben. Auch die Levante, Kleinasien, Candia und Spanien liefern viel. Als die zuckerreichsten gelten die aus dem Küstengebirge von Algarve. In Bari heißen die schlechten Sorten Caballo. Die Gesamtproduktion wurde 1895 auf jährlich c. 10 Mill. kg geschätzt. 1910 war sie höher. Haupthandelsplatz für Caroben ist wohl +Triest+. =Handel.= +Deutschland+ importierte 1909: 37393 dz _Johannisbrot_, vorwiegend aus Cypern, Malta, Gibraltar, etwas auch aus Italien. +Hamburg+ importierte 1908 24689 dz _Johannisbrot_; davon aus Cypern 18878, Italien 2130, Griechenland und den Jon. Inseln 1690, der europäischen Türkei 921. +Italien+ exportierte 1907: 109269, 1908: 77645, 1909: 73331 Quint. Carrube. Von Bari, einem großen Carobenhandelsplatz, gehen ganze Schiffsladungen nach Rußland. +Frankreich+ importierte 1908 232147 Quintal. Carrobe (carouge), besonders aus der Türkei, aber auch aus Algier und Tunis. [Illustration: Fig. 46. _Ceratonia Siliqua._ Querschnitt durch die Frucht. MC. Mesokarp, EC. Endokarp, End. Endosperm, Cot. Cotyledonen, R. Radicula. [+Tschirch+]] [Illustration: Fig. 47. _Ceratonia Siliqua._ Längsschnitt (parallel der Fläche der Frucht) durch die Lücken in den Randwülsten der Frucht. [+Tschirch.+]] =Beschreibung der Droge.= Die zur Reifezeit tief braunvioletten Früchte sind besonders in jungen Stadien etwas hornartig gekrümmt (wohl darnach κεράτια s. oben auch in Bockshörndl und dem albanesischen Worte (s. oben) wird auf Horn angespielt). Sie reifen nicht immer. Sie sitzen einem kurzen Stiele auf und erreichen bisweilen eine Länge von 25 cm und eine Breite von 4 cm, variieren übrigens in der Größe sehr, je nach den Kulturvarietäten. Die Spitze, als kleines Zäpfchen erscheinend, ist etwas seitlich gegen die Bauchnaht herabgedrückt. Die Mitte ist beiderseits vertieft und zeigt zierliche, in gegen den Rand konvergierenden Fächerstrahlen (Fig. 44 E und 47) vom Stiele her aufsteigende Linien. Der Rand ist beiderseits wulstig verdickt und jeder der Wülste durch eine Mittelfurche geteilt, so daß der Querschnitt hantelförmig erscheint (Fig. 46). Der einen Furche entspricht die Bauchnaht, der andern die Rückennaht. In diesen Randwülsten liegen vier Reihen von Höhlungen. Schneidet man daher die Wülste parallel der Breitseite der Frucht an, so sieht man in jedem Wulst eine Reihe von ovalen, übereinander angeordneten Höhlungen mit ziemlich glatten Wänden (Fig. 47). Dort, wo die Samen liegen, ist die Mittelfläche etwas, aber meist nicht stark aufgetrieben. Dies tritt an jungen unentwickelten Früchten noch deutlicher hervor. Die Samen sind zahlreich, bis 15; sie liegen in ovalen, glatten, vom Endocarp ausgekleideten Höhlungen ziemlich dicht übereinander. Die Brücken zwischen ihnen sind nur schmal. Nicht immer sind alle gut entwickelt. Sie sind glatt, rotbraun, glänzend und mit einem ziemlich langen Funiculus an der Bauchnaht inseriert (Fig. 44F). Sie enthalten, in ein helles Schleimendosperm eingebettet, den gelblichen Keimling, der zwei netzaderige Cotyledonen besitzt (Fig. 44 F, G, H u. 46). Die Frucht bricht glatt, trotzdem sie sehr faserig ist. Der Querbruch erscheint infolge des Zuckerreichtums glänzend. =Schädlinge.= In den Früchten findet sich bisweilen die Larve von _Myelois Ceratoniae_. [Illustration: Fig. 48. _Ceratonia Siliqua._ Querschnitt durch die Randschicht der Fruchtwand. [K. H. Hällström gez.]] =Anatomie= (Fig. 48 u. 49). Das Epicarp ist eine einreihige Epidermis, deren Zellen außen stark verdickt und cuticularisiert sind. Von der Fläche gesehen sind sie gradwandig polyedrisch, 12-30 mik. breit. Sie enthalten einen braunen Inhaltskörper. Einige Spaltöffnungen sind über die Epidermis regellos verteilt, ebenso einige wenige Haare oder, da diese oft abgebrochen sind, deren Fußteile (~Vogl~). Die Behaarung wechselt sehr. Bisweilen fand ich gar keine, dann wieder viele und lange. Dann folgt das Mesocarp. Unter der Epidermis liegen zunächst etwa 6-8 Reihen parenchymatischer, mit braunem, phlobaphenartigem Inhalte vollständig erfüllter Zellen (Fig. 48, 2). Dann folgt ein unvollständiger gemischter Ring. Derselbe besteht vorwiegend aus reichgliederigen Bastzellgruppen, denen da und dort Brachysklereïden angelagert sind. Die Bastzellen sind ziemlich lang (nach ~Möller~ fast 1 mm, nach ~Vogl~ sogar bisweilen über 1,5 mm, und c. 18 [10-30] mik. breit), stark verdickt, mit meist stumpfen oder knorrigen Enden und nur wenig schiefgestellten Spaltentüpfeln versehen. Die Bastzellgruppen sind von Kristallkammerfasern begleitet. Die Kristalle stecken in einer Tasche. Dann folgt ein lockerer Kreis kleiner, im Längsverlauf bogig hin und her gekrümmter Bündel mit nicht sehr weiten, meist zu einer radialen Platte vereinigten Spiral-, Netzleisten- oder Tüpfelgefäßen. [Illustration: Fig. 49. _Ceratonia Siliqua._ Querschnitt durch den innersten Teil der Fruchtwand, dort wo ein Same liegt. [K. H. +Hällström+ gez.]] Soweit diese Bündel reichen, ist das Grundparenchym engzellig. Innerhalb des Gefäßbündelkreises wird es aber ziemlich unvermittelt weitzellig und die großen Zellen strecken sich sehr entschieden radial. In dieser Ausbildung reicht das Gewebe bis zum Endocarp. Die Zellen dieser Mittelschicht (Fruchtmus, Fig. 48, 5) enthalten (unter Alkohol betrachtet) entweder deutliche Kristalle oder unregelmäßig eckige Massen (von Zucker?). Diese Inhaltsbestandteile lösen sich daher meist in Wasser und es bleibt körniges Plasma zurück. Eingestreut in dies zuckerführende Gewebe finden sich sowohl in den äußeren kleinzelligeren als auch den inneren großzelligen Schichten zahlreiche +Gerbstoffzellen+, einzeln oder zu vielgliedrigen Gruppen vereinigt, in Form und Größe dem Zuckerparenchym gleichend. Sie enthalten neben anderen Substanzen vornehmlich Gerbstoff -- man kann sie daher als +Gerbstoffschläuche+ betrachten. In der frischen Frucht erfüllt die Masse die ganze Zelle. Beim Trocknen löst sich der solide Gerbstoffkörper als faltiger Sack von der Zellwand ab. Dadurch kommt dann ein sehr eigentümliches mikroskopisches Bild zustande. Die Inklusen fallen leicht aus den Zellen heraus und sind isotrop und nicht hohl, sondern solide (~Tichomirow~), aber nicht gleichartig in der Masse: in eine dunklere, gelatineartige Grundmasse ragen vom Rande her hellere, kugelige Gebilde (Fig. 50). Diese «Inhaltskörper», «Inklusen», sind von gelber, kupferroter oder violettroter Farbe, oft quergestreift. Sie werden durch Kali graublau bis violettblau, beim Erwärmen sofort tiefblau (die Färbung mit Kali ist abhängig von der Konzentration, Lauge von 25% und mehr färbt reinblau, schwache [bis 5%] rötlich-violett; dazwischen entstehen Mischfarben, ~Hällström~), durch Eisenchlorid violettblau bis tiefblau, fast schwarz, durch Jod und Jodschwefelsäure gelb, durch Vanillinsalzsäure rot (~Winckel~), durch Eau de Labaraque gelblich-rot (~Tichomirow~), durch Millons Reagens blaugrün, durch Orceïn rubinrot, durch Ammonmolybdat und Schwefelsäure tiefblau, mit Osmiumsäure blauschwarz (~Hartwich~ und ~Winckel~). Sie sind unlöslich in Wasser, Alkohol, Glycerin, Äther, verdünnten Säuren, fetten und äther. Ölen. Ammoniak färbt sie nicht. Starke Lauge bewirkt ein Hervorquellen blauer Tropfen (~Flückiger~). Der blaue Farbstoff ist in Alkohol und Äther unlöslich. Woraus die Masse besteht ist unbekannt. Sie scheint ein Phloroglukotannid zu enthalten. Die Inklusen werden sehr frühzeitig angelegt, schon 1 cm lange Früchte enthalten einige fertig ausgebildet, viele in Bildung begriffen. Schon in ganz frühen Stadien färben sich die Zellen mit Eisenchlorid, Osmiumsäure und Vanillinsalzsäure. Die Entwicklung des Inhaltes scheint zentripetal vor sich zu gehen. In jungen Inklusenzellen findet sich ein feines, gegen Kali resistentes Gerüst. Doch gibt dieses nicht die Kali- und Eisenreaktion, auch Jod und Millons Reagens färben es nicht, wohl aber Methylenblau (~Hällström~). In den äußeren Schichten sind die Gerbstoffsäcke klein, in den inneren groß, wie das Parenchym. Ähnliche Inklusen finden sich bei der _Dattel_ (s. d.) in den _Kaki_früchten u. and. _Diospyros_arten, bei _Anona reticulata_, _Zizyphus vulg._, _Elaeagnus angustifol._ (~Tichomirow~), in den _Fruct. Rhamni cathartic._ und den blauen Trauben, sowie in der Fruchtschale von _Glycyrrhiza glabra_ (~Stscherbatscheff~). Sie wurden von ~Flückiger~ bei _Ceratonia_ aufgefunden (Pharmakogn. I. Aufl.) und sind hier so charakteristisch, daß man an ihnen eine Beimengung von Caroben oder Carobenkaffee überall, besonders nach Zusatz von Vanillinsalzsäure, leicht erkennen kann. Die innerste Zone des Mesocarps ist oft kollabiert (Fig. 49, 7). Die leeren Randwulstlücken (s. oben) scheinen durch Schwinden des Gewebes zu entstehen. Jungen Früchten fehlen sie. Das Endocarp besteht vornehmlich aus stark in tangentialer Richtung gestreckten, stumpfendigen Bastzellen mit dicker Wand und longitudinalen oder sehr steil schiefgestellten Spaltentüpfeln. Diese Bastzellen verlaufen parallel der Kontur der Hohlräume, in denen die Samen liegen, nicht immer gerade, sondern oftmals gekrümmt und zu federnden Verbänden vereinigt, also anastomosierend. Sie werden begleitet von Schleimzellen, kristallführenden Zellen (Kristallkammerfasern) und einigen wenigen Sklereïden (Fig. 49, 8). Innerhalb dieser Hautschicht liegt noch eine mehrzellige Zone rundlichen Parenchyms (Fig. 49, 9). Diese Schicht verschleimt. An den Stellen, wo keine Samen liegen, berühren sich die Ränder der Fruchtwand für gewöhnlich und an den Seiten liegen hier eigenartige Haare (~Hällström~). Die +Samenschale+ besteht aus einer c. 150 mik. hohen Palisadenschicht, deren 4 mik. breite Lichtlinie 55 mik. unter der derben Cuticula verläuft. Die Außenwand der Palisadenzellen ist auf eine Strecke von 45 mik. außerordentlich stark verdickt, das Lumen der Palisaden selbst als feiner Spalt nur wenig über die Lichtlinie hinaus zu sehen. Die T-Trägerzone ist schmal, die Nährschicht dagegen breit und von zahlreichen Schichten kollabierter Zellen gebildet. [Illustration: Fig. 50. +Die Inklusen der Frucht von+ _Ceratonia Siliqua_. x Querdurchschnitte, die übrigen in Aufsicht oder längsdurchschnitten. [+Tschirch.+]] Das breite +Schleimendosperm+ enthält stark verdickte Zellen mit gestrecktem oder sternförmigem Lumen. Die Interzellularsubstanz (Mittelplatte, primäre Membran) der Zellen ist erst auf Zusatz von Reagentien und auch dann noch nicht immer deutlich zu sehen. Sie wird wohl in die Schleimmetamorphose einbezogen. Die sekundären Membranverdickungsschichten sind Schleimmembranen, die tertiäre Membran besteht aus Zellulose; nur diese färbt sich mit Jodschwefelsäure blau. Der Schleim, der hier den Charakter eines Reservestoffes trägt, verdankt also auch hier den sekundären Verdickungsschichten der Membran seine Entstehung und gehört zu den echten mit Jod oder Jodschwefelsäure sich nicht bläuenden Schleimen und zur Klasse der Zellulosine. Im Inhalte der Schleimendospermzellen findet sich Eiweiß und fettes Öl. Die +Cotyledonen+ enthalten gegen Wasser sehr resistente Aleuronkörner. Die palisadentragenden Seiten liegen aufeinander. Procambiumstränge durchziehen den mittleren Teil der Keimblätter. =Lit.= ~Flückiger~, Pharmakognosie I. Aufl. (hier die Gerbstoffsäcke zuerst erwähnt). -- ~Vogl~, Nahrungs- u. Genußmittel 1899. -- J. ~Moeller~, Mikroskopie. -- ~Fischer-Hartwich~, Handb. d. pharm. Praxis. -- ~Hartwich~ und ~Winckel~, Arch. Ph. 1904, 471 und ~Winckel~, Über d. angebl. Vorkomm. d. Phloroglucins in d. Pfl. Diss. Bern 1904. -- ~Tichomirow~, Die johannisbrotartigen Interzellular-Einschließungen im Fruchtparenchym mancher süßen Früchte usw. Bull. soc. imp. d. Natural. Moscou 1905. +Derselbe+: Bot. Jahresb. 1884. -- K. H. ~Hällström~, Zur Entwicklungsgeschichte der Fruchtwand von Ceratonia Siliqua L. und Tamarindus indica L. Ber. d. pharm. Ges. 1910. -- ~Stscherbatscheff~, Arch. Pharm. 1907. =Chemie.= Die Früchte enthalten bis 32% +Saccharose+ und c. 18% +Glukose+ (~Heckel~ und ~Schlagdenhauffen~). Den Rohrzucker, der bisweilen in den Samenfächern und den Randhöhlen auskristallisiert gefunden wird, erkannte schon ~Berthelot~ (1859) --. Der Zuckergehalt schwankt nach den Sorten (in den Analysen von ~Fürstenberg~, ~Anderson~, ~Völcker~ wird der Zucker auf 51,4-70,7% angegeben). ~Balland~ fand in Candia Caroben 21,74% +Saccharose+ und 21,36% +Glukose+, in Zypern Caroben 28,57 S. bzw. 14,53% G., in Creta Caroben 8,20 bzw. 26,04%, in Griechischen Caroben 29,4 bzw. 10,28%, in Mersina Caroben 27,10 bzw. 12,75%, in Portugal Caroben 15,76 bzw. 21%. Ferner ist nachgewiesen: +Wachs+, 1,82% +Gerbstoff+, +Pektin+. Die +Rohfaser+ beträgt 34%. ~Reinsch~ gibt an, daß die Fruchtschalen allein enthalten in Prozenten: 12 Wasser, 6,2 Faser, 41,2 Zucker, 20,8 Eiweiß und Pflanzenleim, 10,4 Gummi, 7,2 Pektin, 2 Gerbstoff. Die Samen allein: 44,8 Schleim, 33,7 Eiweiß, Gummi, Faser, 8 Stärke (?), Gerbstoff und Leim, 2,1 Zucker, 1,5 Öl. Neuere Untersuchungen haben den Zuckergehalt der Samen bestätigt (~Bourquelot~, ~Schulze~ und ~Frankfurt~). Man fand 0,11% reduz. Zucker und 1,58% Rohrzucker. Der +Wasser+gehalt wird auf 14,96-23,8% angegeben, das +Fett+ auf 0,55-1,28%, die +Asche+ auf 2,3-2,53%. Der Pentosangehalt beträgt c. 4,45% (~Wittmann~). Der sehr charakteristische Geruch wird durch etwa 1,5% +Fettsäuren+, besonders +Buttersäure+, bedingt. Auch Ameisensäure ist darin nachgewiesen. ~Grünzweig~ zeigte, daß die von ~Redtenbacher~ in den Caroben aufgefundene Säure, die ~Marsson~ daraus darstellen lehrte, +Isobuttersäure+: (CH₃)₂=CH.COOH, ist. Der Gehalt daran variiert nach dem Alter und der Aufbewahrung. Feuchtgehaltenes Johannisbrot enthält mehr davon. Junge Früchte riechen nicht nach Buttersäure. Dieselbe entsteht also erst im Reifungs-, bes. im Nachreifungsprozeß, wohl durch Buttersäuregärung des Zuckers unter dem Einfluß eines spezifischen Fermentes oder eines dem Protoplasma zugehörigen Enzyms. Die Buttersäure wird von Capronsäure, Ameisensäure (und Benzoësäure? +Grünzweig+) begleitet. Bei der Gärung der Caroben erhielt ~Beissenhirz~ Bernsteinsäure (1818). In unreifem Johannisbrot, das sehr herbe schmeckt, fand ~Rosenthaler~ ein kristallinisches +Phenol+ und einen Körper mit Alkaloidreaktionen. In +Carobenkaffee+ (s. hinten) wurde 44,2% Zucker, 2,4% Asche (in Wasser löslich 1,9%) gefunden. Die Extraktmenge schwankt: 46,9% (~Vogl~), 63,71% (~König~). ~König~ gibt an in Prozenten: Wasser 6,72, Stickstoffsubstanz 8,72, Ätherextrakt 3,51, stickstofffreie Extraktstoffe 70,81, Rohfaser 7,65, Asche 2,59, Wasserextrakt in der Trockensubstanz 58,13. Das Pericarp macht 88-90, die Samen 10-12% der Frucht aus. In den +Samen+ fand ~Effront~ 11,4% Wasser, 18,92% stickstoffhaltige Substanzen, 62% Kohlehydrate, 2,3% Fett. Sie enthalten das Kohlehydrat +Carubin+ (C₆H₁₀O₅), das ~Ritthausen~ bereits 1867 im Roggenmehl und in der Kleie gefunden und Secalin (Secalan) genannt hatte. Carubin wird durch das ebenfalls in den Samen nachgewiesene hydrolysierende Enzym, die +Carubinase+, in +Carubinose+, einen mit Mannose identischen Zucker übergeführt. Das Carubin (~Effronts~) ist ein Galaktomannan. Es liefert bei der Hydrolyse (neben wenig Galaktose) hauptsächlich d-Mannose (~Bourquelot~ und ~Hérissey~). ⅘ des Samens bestehen aus diesem Galaktomannan, vorwiegend im Zustande von Hemizellulose, ein Teil des Mannans auch als Mannozellulose. +Der Johannisbrotsame eignet sich zur Darstellung reiner krist. Mannose+ (~Ekenstein~). Es ist in ihm auch etwas Dextrozellulose vorhanden (~Bourquelot~). Bei der Keimung entsteht in allen Teilen des Embryos ein diastaseartiges Ferment, welches aus der Hemizellulose Mannose und Galaktose bildet, daneben treten Pektasen auf. Aus den von den Keimen befreiten Samen wird durch Ausziehen mit Wasser von 71-82° ein für Appreturen benutzter +Klebstoff+ bereitet. Die Gewinnung dieses Tragasolgummi aus Johannisbrotkernen ist durch D. R. P. geschützt (Jahresb. d. Ph. 1907, 32), doch hatte schon ~Grieumard~ 1834 für die Darstellung eines tragantähnlichen Gummis aus den Carobensamen ein Patent genommen. In der +Rinde+ von _Ceratonia Siliqua_ fand ~Mafat~ 50-55% Gerbstoff (sie dient als Gerbematerial). Stamm und Blätter sollen bisweilen (in +Sicilien+) Zucker ausschwitzen (~Klaproth~). =Lit.= ~König~, Nahrungs- u. Genußm. (dort die Analysen von ~Fürstenberg~, ~Anderson~ u. ~Völcker~). -- Neuere Analysen in ~Balland~, Analyses de caroubes de différentes provenances. Journ. pharm. chim. (6) 19, 1904, 569. -- ~Proust~, Gehlens N. Journ. II (erste Analyse). -- ~Reinsch~, J. p. Ph. 1842, 401 und Chem. Centralb. 1857, 85. -- ~Völcker~ und ~Kinsington~, Ebenda (u. Zeitschr. f. d. Landw. 1856). -- ~Berthelot~, Ann. d. chim. phys. 3 ser. 55, p. 269. Jahresb. d. Chem. 1858. -- ~Heckel~ und ~Schlagdenhauffen~, Rep. de pharm. 1892. -- ~Rossi~, Estrazione dell’ alcool dalle carubbe Ann. scuol. sup. agric. Portici Napoli 1881. -- ~Redtenbacher~, Lieb. Ann. 57, 177. -- ~Grünzweig~, Lieb. Ann. 158, 117 u. 162, 193, Bull. soc. chim. (2) 16, 177. -- ~Marsson~, Arch. Pharm. 48, 295. Vierteljahrsschr. über Fortschr. d. Nahrungs- u. Genußm. 1887, 450 (Analyse d. Frucht). -- ~Mafat~, Pharm. Journ. 1892. -- ~Klaproth~, Du sucre du caroubier. Mém. Acad. royale. Berlin 1804. -- ~Rosenthaler~, Über einen Bestandteil des unreifen Johannisbrotes. Arch. Pharm. 1903, 616. -- ~Marlière~, Sur la graine et specialement l’endosperme de Ceratonia Siliqua. La cellule 13, 7 (1897) (Pharm. Zeit. 1898, 396). -- ~Effront~, Compt. rend. 125, 38, 116 u. 309 (1897), Journ. pharm. chim. 1897. -- ~Ekenstein~, Compt. rend. 125, 38, 116, 309 u. 719. -- ~Bourquelot~ et ~Hérissey~, Compt. rend. 129, 228 u. 391 (1899) und Sur la composit. de l’albumen de la graine de Caroubier. Journ. pharm. chim. 1899, 153 u. 249. Germinat. de la graine de Caroubier, production de mannose par un ferment soluble. Ebenda 1899, 438. =Verfälschung.= Im Jahre 1888 wurde in London eine falsche _Ceratonia_ beobachtet. Es waren die Früchte von _Calliandra (Pithecolobium) Saman_ (vgl. Jahresb. d. Ph. 1888, 40). =Anwendung.= Die reifen Früchte dienen in Südeuropa und im Orient Tieren (Schweinen, Pferden, Eseln) und Menschen der ärmeren Klasse (Schweinehirten, Eseltreibern), als Nahrungsmittel, besonders wenn sie vorher geröstet oder gebacken wurden. Der verlorene Sohn begehrte sich περὶ τῶν κερατίων zu nähren (Lukas 15). Die Kreuzfahrer unter ~Richard I.~ griffen 1191 erst bei Hungersnot zu den Caroben (~Flückiger~). Die unreifen galten bei den Alten als schädlich, ebenso die unangenehm riechenden Blüten. ~Galen~ hält sogar die reifen Früchte für schädlich (?). Die Früchte waren ein alter Handelsartikel des ganzen Orients. ~Dioskurides~ hält die frischen Früchte für purgierend, die trockenen für ein Diureticum. Die Caroben dienen jetzt nur noch als Expectorans, als Zusatz zu Brusttees. Die Samen dienen in Fezzan als Gewicht (= 4 Weizenkörner). Sie wiegen etwa 0,18 g. Von κεράτιον wird gewöhnlich das Wort Karat (Einheit für Gold- und Edelsteingewicht) abgeleitet. Es scheint aber hier eine Verwechslung vorzuliegen mit dem _Abrus_samen (Jequirity), deren Name +rati+, +ratti+, +kirat+ auch dem Worte Karat zugrunde liegen könnte und die auch dem Karat (= c. 0,205) als Gewicht für Gold und Edelsteine näher kommen. Denn, wie es scheint, wurde Karat zuerst in Indien als Diamantengewichtseinheit, dann erst in Afrika als Goldgewichtseinheit benutzt. Andere beziehen Karat auf die Samen von _Erythrina abyssinica_ (= kuara) oder _Acacia nilotica_. Die Sache sollte einmal historisch-kritisch studiert werden. Die süßesten Varietäten der Caroben werden im Orient ausgepreßt und der so gewonnene «Honig» zum Einmachen benutzt. Als Leckerei der Kinder findet man die Früchte überall. Die gerösteten Früchte sind, meist mit Feigenkaffee gemischt, ein +Kaffeesurrogat+ (s. oben). (Analysen des Carobenkaffee bei ~König~.) Die Araber machten aus _Ceratonia_früchten einen +Roob+ (auch ~Alexander Trallianus~ [I, S. 591] gab eine Vorschrift zu einem solchen). Noch jetzt bereiten sie eine Limonade daraus und einen Sirup. In Portugal, auf den Azoren, in Italien und Triest werden die schlechteren Sorten auf Alkohol verarbeitet. Nach ~Rossi~ soll man nach dreitägiger Gärung 25% des Gewichtes der Früchte Alkohol erhalten. Da und dort werden sie auch zum Saucieren des Tabaks benutzt. Seit ~Völcker~ sie als Viehfutter von neuem empfohlen, werden sie oft, auch bei uns, als Mastfutter (Zusatz zu Viehmastpulvern) benutzt. =Lit.= ~Rossi~, Estrazione dell’ alcool dalle carrube. Ann. Sc. sup. d’agric. Portici Napoli 1881. =Geschichte.= Der Johannisbrotbaum ist die κερωνία des ~Theophrast~, der ceronische Feigenbaum des ~Plinius~. ~Theophrast~ erwähnt Johannisbrotpflanzungen auf Rhodos. Seine Früchte hießen im alten Griechenland auf den Märkten ägyptische Feigen. Schon ~Plinius~ erklärt dies für eine irrtümliche Bezeichnung «non enim in Aegypto nascitur sed in Syria Ioniaque et circa Gnidum atque in Rhodo». Im alten Ägypten finden wir aber kaum Spuren von ihm (vgl. ~Wönig~). Jetzt fehlt er dort ganz (~Ascherson~). Die Frucht aber kam frühzeitig von Syrien nach Ägypten und scheint in einem Grabe von Beni Hassan abgebildet zu sein (vgl. ~Wönig~). _Ceratonia_ hieß im Ägyptischen w’n, doch wird die Deutung bestritten. ~Joachim~ führt C. entgegen ~Lieblein~ im Papyrus Ebers nicht an. In Kleinasien und Syrien genießt der Baum noch heute religiöse Verehrung. Er ist dem heil. ~Georg~ geweiht (~Hehn~). ~Bianca~ hält _Ceratonia_ für einen der Lotos der Alten (~Theophrast~, hist. plant. IV, 3; vgl. auch I, S. 1070 und oben S. 61). In dem Alfabet des ~Ben Sira~ (XI. Jahrh., die Pflanzenliste selbst älter) wird unter den Pflanzen des königlichen Gartens des ~Nebukadnezar~ auch der Johannisbrotbaum (chārûbā) aufgeführt (~Immanuel Löw~). -- ~Strabon~ (I, S. 532) erwähnt _Ceratonia_. Bei den alten Juden, wie überhaupt in den Gegenden, wo der Baum gemein ist (Syrien) und die Früchte im April in Massen von den Bäumen fallen, waren sie von altersher Viehfutter. Im Gleichnis vom verlorenen Sohn (Lucas 15, 16) übersetzt ~Luther~ κεράτιον (in der Vulgata steht _siliqua_, bei ~Ulfilas~ haúrn, in der syrischen Übersetzung qĕratâ) mit Träbern. Diese falsche Übersetzung kam wohl daher, daß er für die harten, beim Auspressen der Früchte zurückbleibenden Teile der Frucht (Samen, Endocarp, Fasern) bei ~Dioskurides~ den Ausdruck στέμφυλα fand (oder von gelehrten Freunden erfuhr), dieses aber auch die Trester der Weintrauben und Oliven bedeutet. ~Luther~ wußte offenbar nicht, daß nicht nur diese, sondern die ganze Frucht im Orient Schweinefutter ist und konnte dies auch nicht ahnen, da die Früchte im Norden eine Leckerei waren (~Marti~ meint, daß ~Luther~ vielleicht in Gedanken an den Relativsatz ὦν ἤσθιον οἱ χοῖροι den Ausdruck Träber gewählt haben könne). _Fruct._ und _Sem. Siliquastri_ finden sich in der Taxe von Nordhausen 1657 (weitere Nachweise oben unter Etym.). =Lit.= ~Flückiger~, Pharmakognosie III. -- ~Hehn~, Kulturpflanzen usw. -- ~Wönig~, Pflanzen Ägyptens. -- ~De Candolle~, L’origine des plantes cultiv. -- ~Immanuel Löw~, Aramäische Pflanzennamen. 2. Trehalosegruppe. Trehala-Manna. Die Trehala oder Tricala (arab. scheker al aschaar, pers. scheker thigal oder tighal = Tierzucker, Nesterzucker) besteht aus den eigentümlichen Cocons, die die Larve eines Rüsselkäfers, =Larinus maculatus= ~Faldermann~ (nach ~Frauenfeld~, pers. Gūldigūl; -- _Larinus nidificans_ nach ~Guibourt~), der zu den Curculioniden gehört, in den Stengeln und Blütenköpfen verschiedener _Echinops_arten, bes. _Echinops persicus_ ~Fisch.~ erzeugt. Diese Cocons, die vorwiegend an den Stielen der Blütenkörbchen zu sitzen scheinen, sind rundlich-oval, 18-20 mm lang, gelblich-weiß, außen höckerig, innen glatt. Sie schmecken fade süßlich und kommen aus den unbebauten Steppen von Teheran und Kuum, sowie dem westlichen Persien (~Haussknecht~). Sie enthalten nach ~Ebert~ (1908) 17,5% +Trehalose+ (nach ~Apping~ 23,84, nach ~Guibourt~ 28,8%), ferner 27,08% +Schleim+ (nach ~Apping~ 18,58%) und 31,75% (nach ~Apping~ 24,9%) mit Jod sich rotviolett färbende +Amylodextrin-Stärke+ (sog. rote Stärke), die wohl aus der Pflanze stammt. Die Asche beträgt 2,6-2,8%. Die Trehala ist lange bekannt. Sie wird z. B. in der persischen Pharmakopoëe von 1681 (I, S. 808) beschrieben. Trehalose (C₁₂H₂₂O₁₁ . 2 H₂O) ist identisch mit Mycose, dem Pilzzucker, der zuerst von ~Wiggers~ und ~Mitscherlich~, dann auch von Müntz in Pilzen, die davon bis zu 10% der Trockensubstanz enthalten, aufgefunden wurde und wohl auch mit dem Tihalin. Sie schmeckt süß, dreht rechts: α_{D}=199° (wasserfrei) und bildet rhombische Kristalle. Sie reduziert ~Fehling~sche Lösung nicht. =Lit.= ~Guibourt~, Notice sur le Tréhala. Journ. pharm. 1858, Gaz. med. de Paris 1858 (Buchn. Repert. 1858, S. 413, Jahresber. d. Chem. 1858). -- ~Berthelot~, Trehalose. Ann. de chim. (3) 55, Gaz. med. de Paris 1857 (Buchn. Repert. 1858, S. 28). -- ~Haussknecht~, Arch. Pharm. 1870. -- ~Hanbury~, Zwei tierische Produkte Persiens. Buchn. Rep. 1859; Science papers p. 158 u. 159 (_Larinus_ abgebildet). -- ~Apping~, Unters. über d. Trehala-Manna. Diss. Dorpat 1885 (dort die Lit.). -- ~Böning~, Unters. d. Inversionsprodukte der aus Trehalamanna stammenden Trehalose. Diss. Dorp. 1888. -- ~A. Redlin~, Unters. über d. Stärkemehl u. d. Pflanzenschleim der Trehalamanna. Diss. Dorp. 1890. -- ~Dragendorff~, Über Trehalamanna. Sitz. Ber. d. Dorp. Naturf. Ges. 1890. -- ~Winterstein~, Z. Kenntnis d. Trehalose, Ber. d. d. chem. Ges. 1893, 3094 und Zeitschr. phys. Chem. 19, 1894, 70 (dort die Lit.). -- ~Tichomirow~, Das Glykogen der Ascomycetenpilze in seiner Bezieh. zu der Trehalose. Arch. Pharm. 1908. 3. Milchzuckergruppe. Milchzucker. =Syn.= Saccharum lactis -- sucre de lait, sel de lait (franz.) -- sugar of milk, milk sugar (engl.) -- zucchero di latte (ital.). =Vorkommen.= Der Milchzucker (Formel oben S. 114) ist zu c. 4-5% in der Kuhmilch enthalten. Der Gehalt ist von Rasse und Individualität, von der Dauer der Laktationsperiode, dem sexuellen Zustande, von der Art, der Menge und der Zusammensetzung der Nahrung, der Arbeitsleistung der Kuh, ihrer Pflege u. and. Umständen abhängig. Ferner sind auch tägliche Schwankungen und solche nach der Tageszeit zu beobachten (~Lippmann~). Milchzucker, und zwar immer derselbe, findet sich aber auch in der Milch anderer Säuger, in der der Hunde (1-4%), Kaninchen (2%), Renntiere (2,5-3%), Ziegen (3,2-6,6%), Schafe (3,4-6,6%), Stuten (4,7-7,3%), Kameele (5-5,8%), Eselinnen (5,2-7,6%) usw. Auch Frauenmilch enthält Milchzucker (4-7,5, selten bis 8%). Frauenmilch ist also am reichsten an Milchzucker. Gewisse Pflanzen (z. B. _Galega officinalis_) erhöhen die Milch- und Milchzuckerproduktion. Über den Ort der Bildung des Milchzuckers im Organismus ist wenig sicheres bekannt. Nach ~Bert~ entsteht der Milchzucker in der Leber und wird durch das Blut in die Brustdrüse gebracht, nach ~Cremer~ bilden ihn die Brustdrüsen aus d-Glukose und d-Galaktose, welch’ letztere den schleim- und gummihaltigen Bestandteilen der Nahrungspflanzen entstammen soll. Die Angabe ~Bouchardats~ (Compt. rend. 73), daß Milchzucker auch im Pflanzenreiche und zwar in _Achras Sapota_ vorkomme, hat keine Bestätigung gefunden. =Darstellung.= Der Milchzucker wurde bis vor kurzem, besonders in einigen viel Milch produzierenden Schweizer Kantonen (Bern, Luzern, bes. Emmenthal, Berner Oberland, Simmenthal), aus dem Molken der Kuhmilch dargestellt, der als Nebenprodukt der Käsefabrikation nach Abscheidung des Caseïns mittelst des Laabfermentes erhalten wird. Man dampfte den geklärten Molken zur Sirupkonsistenz oder weiter ein und ließ erkalten, und erhielt so zunächst feinkörnigen, etwas gefärbten Rohzucker (Zuckersand, Schottensand), der dann in einigen Fabriken durch Klären und Entfärben der Lösung -- auch wohl durch Ausfällen mittelst Alkohol raffiniert wurde. Vor den Käsereien und den Sennhütten sah man oft die Säcke mit Schottensand stehen, deren körniger Inhalt keineswegs angenehm duftete. Der Zuckersand ist ein gelbliches Pulver. ~Flückiger~ schätzte die Produktion der Schweiz 1888 auf 30000 kg. Seit 1910 ist dieser Fabrikationszweig in der Schweiz eingegangen, nachdem ~Lüdy~ (Burgdorf) 1909 noch 8000 kg Schottensand aufgekauft und im Ausland weiter verkauft hatte. Wegen der hohen Holzpreise (früher erhielten die Sennen das Holz gratis) ist die Fabrikation zu teuer geworden und die Sennen ziehen vor, die Schotte (den Molken) zur Schweinemast zu benutzen (~Lüdy~). Jetzt wird Milchzucker in ziemlich beträchtlicher Menge in Mecklenburg (Güstrow, Gielow), Lauenburg und Berlin (Meierei Bolle), ferner besonders in Holland und etwas auch in Italien (Lombardei bei Lodi) dargestellt -- stets nur in intensiv Viehzucht treibenden Gegenden. In größtem Stil fabriziert und exportiert Nordamerika. Der deutsche Export an Milchzucker betrug über +Hamburg+ 1907: 84900, 1908: 142600 kg. Der meiste in Deutschland fabrizierte Milchzucker wird im Lande verbraucht -- besonders für medizinische Zwecke. Der Import nach Deutschland ist wegen der hohen Zollansätze gering (s. unten). =Eigenschaften.= Milchzucker kristallisiert schwer und setzt sich in festen Krusten an eingehängten Stäben -- was in der Praxis exekutiert wird -- in derben Kristallmassen ab. Man kennt vom Milchzucker ein Monohydrat, mehrere wasserfreie kristallisierte und vermutlich eine wasserfreie amorphe Form. Der Milchzucker des Handels ist das Monohydrat C₁₂H₂₂O₁₁.H₂O, das in großen monoklinen Kristallen kristallisiert, schwach süß schmeckt, Tribolumineszenz zeigt, pyroelektrisch ist und sein Kristallwasser auch bei 24stündigem Erhitzen auf dem Wasserbade nicht abgibt. Milchzucker löst sich in 5,87 Teilen Wasser von 10° und in 2,5 Teilen von 100°, in starkem Alkohol und Äther ist er ganz unlöslich, auch in verdünntem Weingeist löst er sich nicht in bemerkenswerter Menge (Unterschied von Rohrzucker und Dextrin). Milchzucker verhindert die Koagulation vieler Kolloide. In wässeriger Lösung zeigt er Rechtsdrehung: α²⁰_{D} = +52,53°. Frisch bereitete Lösungen zeigen Multirotation. Die für die Beurteilung des Milchzuckers als Nahrungsmittel wichtige Verbrennungswärme beträgt bei wasserfreiem Milchzucker: 3951,5 Calorien für 1 g (und 1351,4 Cal. für 1 g Mol.), beim Monohydrat: 3736,8 Cal. ~Fehling~sche Lösung wird schon in der Kälte reduziert (Unterschied von Rohrzucker). Es ist also eine Aldehydgruppe und zwar in dem Glukoserest erhalten geblieben (s. S. 114). Echte Alkoholhefe aus Reinkulturen, Zymase, _Mycoderma_, _Aspergillus Oryzae_, _Saccharomyces apiculatus_ u. and. vergären Milchzucker nicht. Leicht und vollständig wird er von sog. «Milchzuckerhefen», sämtlich _Torulaceen_, dann den gemischten Kefir- und Kumysfermenten u. and. vergoren. Nicht alle Mikroorganismen, die den Trauben- und Rohrzucker in Milchsäuregärung versetzen, tun dies auch beim Milchzucker. Bei der Kumis- und Kefirdarstellung (vgl. I, S. 1018) entsteht sowohl Alkohol, wie Milchsäure. Verdünnte Schwefelsäure spaltet nach der Formel: C₁₂H₂₂O₁₁ + H₂O = C₆H₁₂O₆ + C₆H₁₂O₆. Milchzucker d-Glukose d-Galaktose =Handel.= +Deutschland+ importierte 1908: 137, 1909: 135 dz Milchzucker (aus den Niederlanden und der Schweiz) und exportierte 1908: 1432, 1909: 1650 dz (bes. nach Großbritannien und Japan). +Frankreich+ importierte 1908 129419 kg +Milchzucker+, besonders aus Italien und den Niederlanden, wenig (8402 kg) auch aus Deutschland. =Verfälschung.= Als Verfälschung ist neuerdings mehrfach Glukose (bis 28%, ~Patsch~) beobachtet worden (Proc. Am. ph. ass. 1906), dann auch Rohrzucker (~Ohliger~, ~Caspari~). =Prüfung.= Die schwach süße Lösung (1=1) ist neutral und schäume, erhitzt, beim Schütteln nicht. Mit Natronlauge erwärmt, nimmt sie rotbraune Färbung an und läßt bei nachherigem Zusatze von Kupfersulfat sogleich Kupferoxydul fallen. 1 ccm kalt bereitete Milchzuckerlösung (1=20) gebe mit 1 ccm Natronlauge und 10 Tropfen Kobaltnitrat eine rein blaue Flüssigkeit. Werden 1,2 g Milchzucker mit 12 ccm verdünntem Weingeist während einer halben Stunde häufig geschüttelt, so sollen 10 ccm des Filtrates beim Verdunsten auf dem Dampfbade nicht mehr als 4 cg Rückstand hinterlassen. Nach dem Verbrennen soll Milchzucker höchstens 0,2% Asche hinterlassen (Pharm. helv. IV). ~Dieterich~ fand nur c. 0,08%. Rohrzucker läßt sich im Milchzucker dadurch nachweisen, daß man eine Lösung mit Reinhefe stehen läßt. Da nur Rohrzucker nicht aber Milchzucker durch das Invertin der Hefe invertiert wird, tritt Gärung nur ein, wenn Rohrzucker zugegen ist. =Geschichte.= Der Milchzucker wurde zuerst von ~Fabricio Bartoletti~ in Bologna und Mantua (1581-1630 I, S. 883) unter dem _Namen Manna seu Nitrum seri lactis_ in der Enzyclopaedia hermetico-dogmatica 1615 beschrieben -- er erhielt ihn durch Eindampfen von Molken -- und 1700 von dem Venezianern ~Luigi Testi~ sowie 1715 von ~Vallisneri~ (in De praestantia lactis) als Arzneimittel empfohlen (~Flückiger~, ~von Lippmann~). ~Lichtenstein~ und ~Hermbstädt~ (I, S. 971) untersuchten ihn näher. Dargestellt wurde Milchzucker zuerst von ~Michael Ettmüller~ in Leipzig 1684. Im Kanton Bern wurde schon 1766 Milchzucker in größerer Menge fabriziert. Zu gleicher Zeit wohl auch im Kanton Luzern. ~Kunkel~ wieß Ende des XVII. Jahrh. nach, daß man aus Molken Alkohol gewinnen kann und ~J. G. Gmelin~ besprach (1732) den Kumis. Der Gebrauch gegorener Stutenmilch seitens der Mongolen Ostasiens reicht sicher bis ins XIII. Jahrh., wahrscheinlich aber in weit frühere Zeit zurück (~Flückiger~). =Lit.= ~Flückiger~, Pharmac. Chem. -- ~von Lippmann~, Chemie d. Zuckerarten. -- ~Nielson~, Proc. Amer. pharm. ass. 1906 (Techn. Meth. z. Milchzuckerbereit.). -- ~Patein~, Bull. soc. chim. 1906, 1022 (Best. der Lactose in der Milch). -- ~Leffmann~, Jahresb. d. Pharm. 1906 u. 1907 und ~Dekker~, Pharm. Weekbl. 1905 (Nachweis von Saccharose im Milchzucker). -- ~Riedels~ Ber. 1906 u. ~Helfenberger~, Annalen 1906 (Analys. von Milchz.). -- Ältere Lit. ~M. L. Willamoz~, de sale lactis essentiali 1756. -- ~G. A. Lichtenstein~, Abhandl. v. Milchzucker 1772. -- ~Cruikshank~, Scherers Allg. Journ. d. Chem. III, 293. C. Drogen, welche Trisaccharide enthalten. Die Trisaccharide oder Hexotriosen sind als durch Kondensation eines Disaccharides mit einem Monosaccharid entstanden zu denken, enthalten also drei Zuckerreste. Hierher gehört die +Raffinose+ (Melitriose, Melitose, Gossypose), die als Äther der Melibiose (eines Disaccharides aus Galaktose und Glukose) und Fruktose zu betrachten ist. Sie zerfällt bei der Hydrolyse nach der Gleichung: C₁₈H₃₂O₁₆ + 2 H₂O = C₆H₁₂O₆ + C₆H₁₂O₆ + C₆H₁₂O₆. Raffinose Fruktose Glukose Galaktose Raffinose kann man folgendermaßen schreiben: CH CH--- CH₂OH / | \ | \ \ | / HCOH \ HCOH\ O------C-- / | \ | | | \ O | \ | O | \ \ OHCH \ OHCH / OHCH \ \ | \ | / | O \ | \ |/ | / CH \ HC HCOH / | O | | / HCOH \ HCOH HC-- | \ | | CH₂OH CH₂ CH₂OH (Galaktoserest) (Glukoserest) (Fruktoserest) +Raffinose+ ist nicht süß, unlöslich in Alkohol, leicht löslich in Wasser und ziemlich löslich in absolutem Methylalkohol. Letztere Eigenschaft dient zur Trennung vom Rohrzucker. Sie dreht rechts [α]²⁰_{D} = 104,5° und reduziert ~Fehling~sche Lösung nicht. Raffinose findet sich in den Eukalypten-Mannasorten, in der Rübe und in der Rübenzuckermelasse. Hierher scheint auch die +Melezitose+, die ebenso süß ist wie Glukose, zu gehören. Sie hat die Formel C₁₈H₃₂O₁₆. 2 H₂O, Drehung (wasserfrei): [α]_{D} = 88,51°, reduziert ~Fehling~sche Lösung nicht, zerfällt beim Kochen mit verdünnten Säuren in Glukose und Turanose (C₁₂H₂₂O₁₁). Sie findet sich in der Lärchenmanna (daher Melezitose von mélèze = _Larix decidua_) und in dem Alhagi-Manna (s. d.). Zu den Trisacchariden gehört auch das von ~Tanret~ aus dem Eschen-Manna (s. d.) isolierte, ~Fehling~sche Lösung nicht reduzierende +Manninotrisaccharid+, das bei der Hydrolyse in 2 Mol. d-Galaktose und 1 Mol. d-Glukose zerfällt. =Lit.= ~Hans Mittelmeier~, Über die Melitriose. Diss. Bern 1890 (dort die Literatur). -- ~Scheibler~ und ~Mittelmeier~, Ber. d. d. chem. Ges. 22 u. 26. -- +Melezitose+ 1859 von ~Berthelot~ in d. Manna von Briançon gefunden. (Nouv. rech. sur les corps analog. au sucre de canne Ann. Chim. Phys. [3] 55 [1859] 269). -- ~Villiers~ fand sie in der Manne de l’Alhagi Maurorum (Rech. sur le mélézitose. Bull. Soc. chim. 27 [1877] 98), ~Alekhine~ in d. Pers. Manna (Bull. Soc. chim. [2] 46, 824). ~Maquenne~ im Miellée du tilleul (Bull. Soc. chim. [3] 9 [1893] 723). -- ~Bourquelot et Hérissey~, Sur l’hydrolyse du mélizitose par les ferments solubles. J. ph. 1896, 4, 385. a) Eucalyptus-Manna. Das _Eucalyptus-Manna_ ist ein Exsudat mehrerer australischer _Eucalyptus_-Arten. Es soll angeblich hervorgerufen werden durch _Cicada moerens_, besonders auf _Eucalyptus viminalis_ ~Labill.~, _Euc. mannifera_ ~Mudie~, _Euc. resinifera_ ~Smith~ und _Euc. Gunnii_ ~Hooker~. In dem von =Eucalyptus viminalis= (resp. _Euc. mannifera_) stammenden, zuerst 1832 von ~Virey~ erwähnten Produkte entdeckten ~Johnston~ und ~Thomson~ einen kristallinischen Zucker, den ~Berthelot~ +Melitose+ nannte, den ~Rischbieth~ und ~Tollens~, ~Scheibler~ und ~Mittelmeier~ für identisch mit Raffinose, aus Rüben-Melasse und der von ~Ritthausen~ aus Baumwollsamen isolierten Gossypose erkannten und dem sie die Formel C₁₈H₃₂O₁₆ · 5 H_{2}O gaben. Das Drehungsvermögen der Melibiose ist α_{D} = 103,47°. Ein anderes, von =Eucalyptus Gunnii= +Hook. var. rubida+ stammendes Exsudat untersuchten ~Passmore~ und ~Ebert~. Letzterer fand darin 68,49% Melitose (~Passmore~ c. 60%), 20,86% unkristallisierbare Glukose, 2,14% Invertzucker, 3,22% Schleim, 0,11% Wachs. Die Asche betrug 6,78%, die Feuchtigkeit 9,74%, der Rückstand 4,27%. Ein anderes Muster eines Eucalyptus-Manna, das von =Eucalyptus pulverulenta= ~Sims.~ stammte und gelblich-weiße, bröckelige, süß schmeckende, nach Eucalyptusöl riechende Stücke bildete, enthielt nach ~Ebert~: 21,35% Melitose, 16,15% Fructose und 60% Rohrzucker. Der Rückstand betrug 1%. =Lit.= ~Johnston~, Manna von Eucal. mannifera. Chem. Gaz. 1843 (Jahresb. d. Pharm. 1849). -- ~Thomson~, Ebenda. -- ~Berthelot~, Annal. d. chim. et phys. (3) 46. -- ~Rischbieth~ und ~Tollens~, Melitose aus Eucalyptus-Manna, Ber. d. d. chem. Ges. 18, S. 2615. -- ~Scheibler~ und ~Mittelmeier~, Ber. d. d. chem. Ges. 22, S. 1678. -- ~Passmore~, Manna von Euc. Gunnii Pharm. Journ. Transact 1891, p. 717. -- ~Maiden~, Chemistry of australian indigenous vegetation. Am. Journ. pharm. 1896. -- ~Ebert~, Beitr, z. Kenntn. seltener Mannasorten. Diss. Zürich 1908. Weitere Literatur s. oben. b) Lärchen-Manna. Das _Lärchenmanna_, Manna von Briançon, Manna brigantiaca, Manna brianzona (so in dem Frankfurter Catalogus von 1582 I, S. 817; in dem Pariser Zolltarif von 1542 steht: Manne de Dauphiné et de Provence I, S. 815; ebenso in den Edicts (I, S. 706), bei ~Pomet~ heißt sie auch _Manna laricaea_) tritt auf jungen Trieben aller Bäume von =Larix europaea L.= im Sommer auf und wird wohl nur in dem Dauphiné bei Briançon (Depart. des Hautes-Alpes) in beschränktem Maße gesammelt. Es diente in Frankreich früher als gelindes Abführmittel. Zur Zeit ~Geoffroys~ (I, S. 947), der es als +Manne de Melèze+ bezeichnet, war sie in Gebrauch. Jetzt scheint es auch in Frankreich ohne Bedeutung zu sein. Es bildet trockene weißliche Körnchen, die ihre kristallinische Beschaffenheit der Melezitose (~Berthelot~, ~Alechin~) verdanken. Ein, wie es scheint, ähnliches _Manna_ findet sich auf =Cedrus libanotica=. ~Pomet~ bezeichnet es als sehr selten und sehr geschätzt unter dem Namen «Manne masticine du Levant ou de Syrie». In der Brandenburgischen Taxe 1574 (I, S. 817) heißt es _Manna Syriaca, i. e. mastichina optima_, Manne de Levant. Es ähnelt dem calabrischen Manna und bildet Körner ähnlich dem _Mastix_. Es ist wohl dasselbe, welches ~Geoffroy~ Cédrine nennt und von dem er meint, daß es schon dem ~Hippokrates~ und ~Galen~ bekannt gewesen sei. Auch =Pinus excelsa= ~Wallich~ (und _P. longifolia_) liefert in Indien, besonders bei Simla im Himalaya (~Flückiger~) ein Manna. ~Watt~ bemerkt, daß dies in größerer Menge nur alle 20 Jahre auftretende _Manna_ die Zweige und Nadeln inkrustiere und auch auf den Boden tropfe. Er hält es für identisch mit dem Libanonceder-Manna (siehe oben). In Nordamerika liefert die +Zuckerfichte+ =Pinus Lambertiana= ein zuckerreiches _Manna_ (~Lloyd~). Vgl. auch ~Thurber~, California Manna, Ph. J. 1877, 893 (_Pinus Lambertiana_ liefert angebrannt «Pinit», ein Manna). Ähnliche Zuckeraussonderungen wurden beobachtet an _Libocedrus decurrens_ und einer and. californ. Conifere. =Lit.= ~Pomet~, Hist. gen. d. drog. p. 238. -- ~Geoffroy~, Tract. d. mat. med. 1757, IV, p. 142. -- ~Watt~, Dictionary. -- ~Berthelot~, Ann. chim. phys. (3) 55. -- ~Alechin~, Journ. d. russ. chem. Ges. 21, S. 420. -- ~Lloyd~, Californische Manna. Ber. d. pharm. Ges. 1897. Keine der oben (S. 131 bis 136, S. 147 und S. 151 bis 152) behandelten Mannaarten enthält +Mannit+. D. Drogen, welche Tetrasaccharide enthalten. Von den Tetrasacchariden ist nur die aus den Knollen von _Stachys_arten durch ~von Planta~ und ~E. Schulze~ 1890 isolierte +Stachyose+ bekannt, die mit der +Manneotetrose+ (Mannatetrasaccharid), die ~Tanret~ 1903 aus dem Eschenmanna isolierte (vgl. S. 109), identisch ist. Sie reduziert, besitzt die Formel C₂₄H₄₂O₂₁.4 H₂O und zerfällt bei leichter Hydrolyse in Manninotrisaccharid (Manninotriose oben S. 109) und Fruktose, bei vollständiger Spaltung in 1 Mol. Glukose, 1 Mol. Fruktose und 2 Mol. Galaktose. [Lit. in ~Lucien Piault~, Sur le Stachyose Thèse. Paris 1910.] E. Polysacchariddrogen. Zu den Polysacchariden gehören die Stärke, das Dextrin, das Inulin und die große Klasse der Membranine, zu der wir die Zellulose und ihre Modifikationen, z. B. die Hemizellulosen, Lichenin, die Membranschleime, das Pektin, das Gummi und verwandte Bildungen ziehen müssen, und denen wir dann auch Kork, Cutin, Pollenin, die Pilzzellulose und das Chitin angliedern können. Ihre Konstitution ist noch nicht bekannt. Wir gründen unsere Anschauungen auf die Tatsache, daß aus allen diesen Substanzen bei geeigneter Behandlung, besonders bei der hydrolytischen Spaltung, Körper der Zuckergruppen entstehen. [Eine ganz abweichende, sehr fragwürdige Anschauung vertritt neuerdings ~Jentys~ (Bull. Acad. Cracovie. 1907), der alle oben genannte Substanzen für kolloidale Tannidglykoside hält.] I. Stärkegruppe. +Stärkemehl+, +Stärke+, +Satzmehl+ -- amidon, fécule (franz.) (im Code franc. steht +amidon+ de blé und +fécule+ de pomme de terre) -- starch (engl.) -- zetmeel (holl.) -- amido (ital.) -- almidon (span.) -- amido (port.) -- amydonu (rum.) -- stärkelse (schwed.) -- tärkkelys (finn.) -- kemenyitő (ung.) -- ἄμυλον (griech.). Wenn wir auch nicht annehmen können, daß die Stärke das +erste+ Assimilationsprodukt der Pflanze ist -- das sind wohl andere Körper der Zuckergruppe --, so ist sie doch sicher das erste +sichtbare+, das in Form sehr kleiner Körnchen im Innern der Chlorophyllkörner auftritt (Assimilationsstärke). Ebenso +wandern+ die Kohlehydrate wohl auch nicht in Form von Stärke, obwohl wir in den Leitungsbahnen oder deren Nähe oft kleine Stärkekörnchen antreffen (transitorische Stärke), sondern ebenfalls in Form von anderen Gliedern der Zuckergruppe. [Die Ausfällung der löslichen Stärke in den Pflanzen soll (nach ~Wolff~ und ~Fernbach~) durch ein Ferment (Amylokoagulase) bewirkt werden.] Sicher aber ist die Stärke die Form, die die im Assimilationsprozeß gebildeten Kohlehydrate am häufigsten annehmen, wenn es sich darum handelt, das Material in Form von Reservestoffen zu deponieren (Reservestärke). Nicht nur in Vegetationsorganen, in den unterirdischen Reservebehältern (Knollen, Rhizomen, überwinternden Wurzeln), sowie im Stamm und immergrünen Blättern, sondern auch in den oberirdischen Reproduktionsorganen (Samen und Früchten) finden wir in unzähligen Fällen Reservestärke in großer Menge (60 bis 80, in einzelnen Teilen des _Mais_korns bis 93%) abgelagert, und gerade diese Organe sind es daher, die eine technische Ausbeutung der Stärke erlauben und denn auch in der Tat dazu herangezogen werden, während Assimilations- und transitorische Stärke in zu geringen Mengen vorkommen, um eine Darstellung lohnend erscheinen lassen. Aus Knollen wird die Kartoffelstärke, aus Rhizomen das St. Vincent Arrowroot, aus dem Stamm der Sago, aus dem Endosperm der Samen die verschiedenen Cerealienstärkesorten, aus den Cotyledonen die Leguminosenstärke dargestellt. Die Franzosen unterscheiden die Stärke der Samen als +Amidon+ von der Stärke der unterirdischen Organe, der +Fécule+, doch werden neuerdings (L. ~Planchon~ 1910) beide Worte auch als synonym promiscue benutzt. Der Gehalt der unterirdischen Reservebehälter an Stärke schwankt nach der Vegetationsperiode. Für die Fabrikation ist es wichtig festzustellen, wann das Organ die meiste Stärke enthält. Die Stärke ist bei den Drogen ein sehr verbreiteter Zellinhaltsbestandteil, ohne daß man sagen kann, daß die Wirkung vieler derselben auf die Stärke zurückzuführen ist. Sie fehlt _Rhiz. graminis_, _Rad. gentianae_, _Rad. Saponariae_, _Rad. Senegae_ und wird hier durch andere Reservestoffe vertreten. Bei den unterirdischen Organen der Compositen, Campanulaceen, Goodeniaceen und Stylidieen ist sie durch Inulin ersetzt. Beim Austreiben der Vegetationsorgane und beim Keimen der Samen wird die Stärke allmählich gelöst. Die Körner zeigen Korrosions- und Abschmelzungserscheinungen (Fig. 51). Man kann also anatomisch feststellen, ob z. B. gekeimtes Getreide vorliegt. Die Umwandlung der Stärke in Zucker erfolgt bei der Keimung durch Sekretionsdiastase, bei dem sog. Transport der (transitorischen) Stärke, wobei ebenfalls Lösung eintritt, durch eine besondere (?) Translokationsdiastase. [Illustration: Fig. 51. +Stärke aus gekeimtem Weizen.+ [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Daß die Stärke ein Polysaccharid ist, gründen wir auf ihr Verhalten zu Enzymen und bei der Hydrolyse. Läßt man Diastase auf Stärkekleister einwirken, so geht allmählich die Blaufärbung durch Jod verloren. Jod färbt zunächst purpurrot, dann braunrot und schließlich gar nicht mehr. Es entstehen zunächst Amylodextrine. Die Endprodukte sind Dextrin, Maltose und Dextrose. Das Enzym Amylase, richtiger Amylomaltase, verwandelt Stärkekleister (nicht unverletzte Kartoffelstärke) zunächst in ein hochmolekulares Dextrin und Maltose (Weizen- und Gerstenstärke werden direkt angegriffen, ~Dubrunfaut~). Unter Umständen werden beide durch Amyloglykase weiter in Dextrose übergeführt: (C₆H₁₀O₅)ⁿ + H₂O --> (C₆H₁₀O₅)ⁿ⁻² + C₁₂H₂₂O₁₁, Stärke hochmolekulares Maltose Dextrin (C₆H₁₀O₅)₂ + H₂O --> C₁₂H₂₂O₁₁, abgebautes Dextrin Maltose (vgl. S. 115) C₁₂H₂₂O₁₁ + H₂O --> 2(C₆H₁₂O₆). Maltose Dextrose (vgl. S. 6) Auch beim trocknen Erhitzen auf 150-180° verwandelt sich Stärke in Dextrin. Auch hier entsteht daneben Zucker. Es gelang ~Maquenne~, die Stärke vollständig zu verzuckern und so den Beweis zu erbringen, daß sie +ausschließlich aus Maltosanen+ besteht. ~A. Meyer~ nimmt an, daß die Stärkekörner neben sehr wenig Amylodextrin und etwas mehr (0,6-2,5%) nicht mit Jod sich bläuender α-+Amylose+ (Stärkezellulose, ~Nägeli~, ~Brown~, ~Hérou~) vornehmlich β-+Amylose+ (Granulose, ~Nägeli~) enthalten. Andere (~Syniewski~) halten sie für einheitlich, ~Fouard~ für ein Kolloid. ~Maquenne~ zeigte im Gegensatz zu ~A. Meyer~, daß der Hauptbestandteil der Körner α-Amylose (Amylose, ~Maquenne~) ist, die er durch Retrogradation als «künstliche Stärke» in reichlicher Menge daraus darstellte, besonders bei Anwendung von Amylokoagulase (~Wolff~ und ~Fernbach~). Die Stärke besteht nach ihm aus 80 bis 85% +Amylose+ (~Maquenne~) und 15-20% verschieden kondensierten +Amylopektinen+. ~Wolf~ und ~Fernbach~ nehmen (1906) an, daß die Stärke besteht aus +Amylosen+, die polymerisiert +und+ verzuckert werden können, aus +Amylosen+, die bloß verzuckert werden können und aus dem +Amylopektin+ von ~Maquenne~ und ~Roux~. +Alle+ diese Angaben sind aber noch +sehr unsicher+. ~Pfeiffer~ und ~Tollens~ geben der Stärke die Formel C₂₄H₄₀O₂₀, doch besitzt dieselbe nur vorläufigen Charakter, wie auch die Formel ~Syniewskis~ (C₅₄H₉₆O₄₈)ₙ - 3n H₂O,) der sie als ein hochmolekulares Anhydrid des Amylogens auffaßt. Das +Amylogen+ (C₅₄H₉₆O₄₈), das wasserlöslich ist und nicht reduziert, denkt sich ~Syniewski~ aus drei Maltoseresten und einem 18 Kohlenstoffe enthaltenden Dextrinrest aufgebaut, der aus drei Glukoseresten besteht, von denen zwei als Isomaltose darin enthalten sind. Die aus mit Jod auf 330° erhitzter Stärke erhaltenen +künstlichen+ Stärkekörner von +Rodewald+ und ~Kattein~ hatten ein Molekulargewicht von 32700. Reines Jod färbt reine trockene Stärke gelb. Die Stärke wird nur dann durch Jod blau gefärbt, wenn Wasser und Jodwasserstoff oder eine Verbindung desselben, oder eine Substanz die aus Jod HJ bildet, zugegen ist. Der Jodstärke kommt (nach ~F. Mylius~) die Formel (C₂₄H₄₀O₂₀J)₄.HJ zu. ~Küster~ und ~A. Meyer~ halten sie jedoch für eine Lösung des Jod-Jodwasserstoffs in der Stärkesubstanz. Das Verhältnis zwischen dem in die Stärke eingehenden und dem in wässriger Lösung verbleibenden Jod folgt dem ~Nernst~schen Verteilungsgesetze. Noch ⅕₂₈₀₀ Jod bewirkt in Stärkekleister Violettfärbung. Die Jodreaktion der Stärkekörner läßt sich dadurch fixieren, daß man die blaugefärbten Körner mit Silbernitrat behandelt, das Präparat der Sonne aussetzt und dann mit Hydrochinon «entwickelt», die Körner bleiben dann (durch Ag) dauernd braun (~Lagerheim~). Durch Jod wird von in der Natur vorkommenden Substanzen nur noch das Saponarin ~Bargers~ blau gefärbt (Ber. d. chem. Ges. 1902. Zuerst ~Dufour~ fand in den Epidermiszellen der Blätter von _Saponaria officinalis_ und _Bryonia dioica_ einen wasserlöslichen Körper, der mit Jod sich bläut.); wohl aber färben sich auch einige Membranine (s. Lichenin) und Spaltungsprodukte von Membraninen durch Jodpräparate blau bzw. violett, wie die Phellonsäure und das Glukosamin (vgl. auch unter Zellulose). Legt man verschiedene Stärkeproben auf eine Glasplatte, stellt ein Uhrglas mit einigen Kristallen Jod daneben, so färben sich nach 24 Stunden die einzelnen Stärkesorten verschieden: Maisstärke wird schwarzviolett, Getreidestärke taubengrau, Kartoffelstärke gelbgrau, Sago milchkaffeefarben (~Dubasc~). Bei einigen Stärkesorten gibt, da Oxydasen darin vorkommen, Guajaktinktur eine Blaufärbung (~Corsini~), doch tritt dieselbe niemals an den Stärkekörnern selbst ein. Das Stärkekorn ist farblos und durchsichtig. Die weiße Farbe der Mehle rührt von der Luft her, die zwischen den Körnern liegt. Stärke nimmt reichlich Wasser auf (sog. grüne Stärke enthält c. 55%), lufttrocken enthält Stärke 13-19% Wasser. Die Verkleisterungstemperatur ist bei den einzelnen Stärkesorten verschieden. Sie schwankt zwischen 50 und 77,5°. Die Bestimmung der Verkleisterungstemperatur wird zur Differentialdiagnose benutzt, ebenso das Verhalten zu Kalihydratlösungen verschiedener Konzentration (~Bellier~). ~Lenz~ benutzt die verschieden große Quellungsfähigkeit der Stärke durch Natriumsalycilatlösung zur Unterscheidung der einzelnen Stärkesorten. Die Stärke entsteht, wie es scheint, stets in (oder auch an?) Stärkebildnern (Amyloplasten, Chromatophoren). Reste derselben finden sich bisweilen noch (_Rhiz. iridis_, Kronenröhre von _Verbascum_, Anatom. Atlas Taf. 22). Sie findet sich stets in Form von Körnern, deren Größe in den Reservebehältern zwischen 4 (_Reis_) und 170 mik. (_Canna_) und deren Kubikinhalt zwischen 20 und 320000 Kubikmik. schwankt. Wenn ihre Größe 150 mik. erreicht, so sind sie mit bloßem Auge sichtbar. Die Größe schwankt für jedes Stärkemehl nur in bestimmten Grenzen. Man bestimmt die Grenzwerte der Längsdurchmesser und gibt außerdem die am häufigsten vorkommenden Werte an. Auch die Form ist für jedes Stärkemehl charakteristisch, wenigstens findet sich stets ein «Typus», der als «Leiter» dienen kann (~Tschirch~). Sehr oft ist auch die Schichtung und die Lage des Kerns diagnostisch wichtig, wie die Feststellung ob einfache, komplexe, solitäre, adelphische, monotone oder polytone Körner (~A. Meyer~) vorliegen. ~A. Meyer~ betrachtet die stets doppelbrechende Stärke als ein Organoid und zwar als einen aus zahllosen kurzen Amylosetrichiten aufgebauten Sphärokristall. ~Delbrück~ teilte (Chem. Zeit. 1901, 195) eine Methode zur Prüfung der Stärke auf Gesundheit mit. Lösliche Stärke kann man durch Erwärmen mit 2% Natriumperboratlösung darstellen, oder nach der ~Lintner~schen Methode: Erhitzen mit 7,5% Salzsäure während 3 Tagen auf 40°, Auswaschen der Säure und Trocknen. Kleine Mengen von Stärke erkennt man am besten mit Jod-Chloralhydrat. Die fabrikmäßige Darstellung der Stärke beruht im wesentlichen auf einer Zerkleinerung der stärkeführenden Gewebe, Auswaschen (Ausschlämmen) der Stärkekörner und Trennen derselben von den Zellresten und dem Wasser. Bei Knollen (z. B. Kartoffeln) verfährt man entweder in der Weise, daß man die Organe auf Reibezylindern in einen Brei verwandelt und diesen auf Sieben mit Wasser auswäscht (ausbürstet) -- auf dem Siebe bleibt die Pülpe -- oder die in Scheiben geschnittenen Knollen zunächst durch Gärenlassen in Haufen aufschließt (~Völcker~). Intakte Stärke widersteht der Gärung und Fäulnis. Bei Samen (z. B. Weizen) verfährt man entweder in der Weise, daß man die 10-15 Tage eingequollenen Samen zwischen Walzen zerquetscht und aus dem Brei die Stärke austritt (in Tretfässern) bezw. ausschlämmt, oder indem man den Brei zuerst gären läßt, oder aber -- und hierbei erhält man den Kleber als Nebenprodukt -- indem man vom Mehle ausgehend dieses mit Wasser ausknetet (~Martin~) bezw. zentrifugiert. Festere Samen werden auch zuvor mit Alkalien (Natron, Kalk, Ammoniak) aufgeschlossen. Das sich zunächst absetzende Satzmehl ist sehr wasserreich (grüne Stärke). Es wird gewöhnlich in Trockenkammern ausgetrocknet und dann in der Sonne oder künstlich gebleicht. Fabrikmäßig dargestellt werden nur verhältnismäßig wenige Sorten, da trotz der weiten Verbreitung der Stärke nur selten alle Bedingungen für lohnende technische Ausbeute -- Reichtum des Materials an Stärke, leichte Zerkleinerung, Abwesenheit störender Beimengungen, billige Gewinnung, gleichmäßige Beschaffenheit des Materials -- vorhanden sind. ⁹⁄₁₀ aller Samen sind stärkefrei! In großem Maßstabe werden Kartoffel-, Weizen-, Mais- und Reisstärke fabrikatorisch dargestellt. Da Stärke aus der Luft reichlich Wasser und Gerüche anzieht, muß sie an einem trockenen und geruchfreien Orte aufbewahrt werden. =Geschichte.= ~Dioskurides~ sagt vom _Amylum_, daß es diesen Namen trage, weil es ohne Mühle hergestellt werde (α privativum und μύλη Mühle). Er beschreibt die Darstellung aus +Sommerweizen+ (ἐκ πυροῦ σητανίου καθαροῦ). Derselbe wird 5 Tage in Wasser eingequollen, dann mit den Füßen zerquetscht und unter Wasserzusatz getreten. Die oben aufschwimmenden Hülsen werden entfernt, der Brei koliert und schnell auf Steinen in der Sonne getrocknet. Ein für arzneiliche Zwecke nicht verwendbares könne man aus Dinkel (ἐκ ζέας βραχείσης) bereiten. Er hält das ägyptische und kretische _Amylum_ für das beste. Ähnlich äußert sich über die Darstellung des _Amylums_ (appellatum quod sine mola fiat) ~Plinius~, der die Bewohner von Chios für die Erfinder des Verfahrens hält, das chiotische für das beste erklärt und es auch ex siligine herstellen läßt. Er kennt ferner das Hafermehl und die Verwendung der Amylacea bei Diarrhöen, die auch ~Rhazes~ erwähnt. ~Plinius~ bezieht sich auf ~Cato~. In der Tat findet man bei diesem (vgl. I, S. 572) die erste kurze Angabe über Darstellung des _Amylums_. Es heißt in ~Cato~, De re rustica im LXXXVII Capitel: «Amyllum sic facito. Siliginem purgato bene, postea in alveum indat, eo addat aquam bis in die. Die decimo aquam exsiccato, exurgeto bene, in alveo puro misceto bene, facito tanquam faex fiat. Id in linteum novum indito exprimito cremorem in patinam novam, aut in mortarium. It omne ita facito, et refricato denuo. Eam patinam in sole ponito, arescat. Ubi arebit, in aulam novam indito, inde facito cum lacte coquat.» Auch die Bezeichnung Satzmehl, Absatz, κατάστατον findet sich schon bei den Alten. Reismehl war ein beliebtes Heilmittel bei den alten Indern (I, S. 504) und wurde auch zu Liebestränken benutzt. Des Gersten-, Linsen- und Ervenmehles bediente sich ~Hippokrates~ (I, S. 541) als Hautmittel. Das waren aber wohl Mehle. In ~Scribonius Largus~ Compositiones (I, S. 576) steht amulum. ~Ibn Baithar~ (I, S. 608) führt es unter dem Namen Naschâ (pers. Naschâstadsch) auf (das garâ, garirâ wird von ~Elgafâki~ als ein Stärkemehl (?) aus einem wohlriechenden Samen -- Sison des ~Dioskurides~ -- bezeichnet). In der Tabula des ~Serapion~ (I, S. 605) steht amilum, in der Alphita (I, S. 641) und Circa instans: amidum (amitum) de tritico (Sinonoma ~Bartholomaei~). Die Alphita hat bekanntlich ihren Namen nach der damaligen Bezeichnung für farina hordei (vgl. I, S. 639). Bei ~Matthaeus Sylvaticus~ resp. ~Simon Januensis~ (I, S. 663) steht amilum vel apoyois. ~Cordus~ (I, S. 797) verwendete ein _Amylum_ und ein _Amylum assatum_. In der ersten brandenburgischen Taxe 1574 (I, S. 817) steht _Amylum vulgo amidum_ (Krafft melh). Der Ausdruck Kraftmehl kehrt dann später bis ins XIX. Jahrh. oft wieder. Die Satzmehle oder faecula früherer Jahrhunderte waren besonders: _Faecula Ari_, _Bryoniae_, _Colchici autumnalis_, _Elaterii_, _Orchidis_, _Pseudacori_, _Paeoniae_. Man schrieb ihnen spezifische Wirkungen zu. Wie ~Flückiger~ (Dokumente, s. d. Taxen) mitteilt, wurden im XVII. Jahrh. besonders vier Faecula in den Apotheken gehalten von den Wurzeln oder Knollen von _Arum maculatum_ L., _Bryonia alba_ L., _Iris florentina_ L. (und _I. Pseudacorus_) und _Paeonia officinalis_ L. Dazu kam dann noch das Mehl von _Rad. Serpentariae_ (_Polygonum Bistorta_ L.) und das _Amylum Mechoacannae_ (_Jalapae_). Bei ~Gren~ (System d. Pharmac. 1799) findet sich nur noch Weizenstärke. Auch ~Pomet~ und ~Lémery~ erwähnen nur das Amidon der Getreidefrüchte (nicht ein Arrowroot oder Kartoffelstärke). ~Dierbach~ (1841) Weizen- und Kartoffelstärke. Neuerdings werden für gewöhnlich nur fünf Stärkemehle in den Apotheken gehalten und zum Teil in den Pharmakopoëen aufgeführt: Reis-, Weizen-, Kartoffel-, Mais- und Maranta-Stärke, nur die japanische und die portugiesische Pharmakopoëe haben andere Stärkemehle (s. weiter unten). Die germanischen Völker bevorzugen die Weizenstärke. Die einzelnen Sorten vertreten sich jetzt vielfach. In Amerika spielt die Maisstärke die gleiche wichtige Rolle in Industrie und Pharmazie, wie in England die Reisstärke, auf dem Kontinent die Weizen- (und Kartoffel-)Stärke und in Japan die Stärke von _Erythronium Dens canis_ L. und _Pueraria Thunbergiana_ ~Benth~. Dies kommt auch in den Pharmakopoëen zum Ausdruck. Unter _Amylum_ schlechthin verstehen die Pharmakopoëen der romanischen Länder (und Deutschlands) Weizenstärke, die Pharmakopoëe von Nordamerika Maisstärke, die Britannika Weizen, Mais und Reis, die portugiesische _Mandioca_ oder _Manihot_, die Japonica die oben genannten Sorten. In der portugiesischen Pharmakopoëe steht auch noch _Amylum ari_. Die erste Stärke, die fabrikmäßig zunächst in Hausindustrie dargestellt wurde, ist die Kartoffelstärke, deren Fabrikation schon ~Friedrich der Grosse~ anregte (1765). ~N. C. Bloch~ begründete (1811) die Kartoffelstärkefabrikation im Elsaß. Auch Weizenstärke wurde zuerst von der Hausindustrie dargestellt. Schon ~Leeuwenhoek~ betrachtete 1716 Cerealien- und Bohnenstärke mit dem Mikroskop (Philos. Transact.). Da er sich selbst stärkere Linsen schliff wie sie ~Malpighi~ und ~Grew~ zur Verfügung standen, konnte er seine Beobachtungen auch auf kleinere Objekte ausdehnen. ~Luke Howard~ erkannte 1800 die Veränderungen der Stärkekörner durch Wasseraufnahme beim Erhitzen. Noch vor ~Schleiden~ zeigte 1838 ~Payen~ und 1842 ~Pereira~ (I, S. 340), daß sich die Stärkemehlsorten durch das Mikroskop unterscheiden lassen. Die umfangreichsten morphologisch-anatomischen Untersuchungen über die Stärkekörner finden sich aber in dem mit vielen Tafeln geschmückten Werke von ~C. Nägeli~, Die Stärkekörner. Zürich 1858. In ihm wurde auch die Theorie des Wachstums der Stärkekörner durch Intussuszeption verfochten, die jetzt als überwunden gelten kann (~A. F. W. Schimper~, ~Arthur Meyer~). ~Kirchhoff~ fand 1811 die Verzuckerung von Stärkekleister durch Malzauszug (Diastase). ~Collin~ und ~Gaulthier de Claubry~ beobachteten 1814 die Blaufärbung durch das wenige Monate zuvor entdeckte Jod. Die ältesten Hadernpapiere (VIII. Jahrh. n. Chr.) waren mit Weizenstärkekleister geleimt (~Wiesner~). =Lit.= ~C. von Nägeli~, Die Stärkekörner. 1858. -- ~Wiesner-Hübl~, Mikroskop. Untersuch. -- ~A. Meyer~, Unters. über die Stärkekörner. Jena 1895 (dort d. Lit.) und Grundlagen u. Method. f. d. mikrosk. Unters. v. Pflanzenpulv. Jena 1901, 24. -- ~Lutz~, L’amidon, Bull. sc. pharm. 1906. -- ~Syniewski~, Lieb. Ann. 199. Ber. d. d. chem. Ges. 30, 2415. -- ~Vogl~, Nahrungs- und Genußm. 1899. -- ~Jos. Moeller~, Mikroskopie d. Nahr. u. Genußmittel, 2. Aufl. -- ~Villiers~ et ~Collin~, Traité des altérations et falsifications des subst. aliment. Paris 1900. -- ~König~, Nahrungs- und Genußm. IV. Aufl. -- ~Tschirch~, Stärkemehlanalysen. Arch. Pharm. 1884 u. 1885 und Angew. Anatomie. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Frank~ und ~Tschirch~, Pflanzenphys. Wandtafeln. -- ~T. F. Hanausek~, Nahrungs- und Genußm. 1884. -- ~Schimper~, Anleitung. 2. Aufl. 1900. -- ~Rosen~, Anatom. Wandtafeln d. vegetab. Nahrungs- u. Genußm. -- ~Eug. Hess~, Unters. einig. trop. Stärkem. Zeitschr. öster. Apoth. Vereins 1906. -- ~Decrock~, Contrib. à l’étude des farines de l’Indo-Chine. Ann. Mus. col. Marseille 1908 u. 1909. -- ~Louis Planchon~ et ~Armand Juillet~, Etude de quelques fécules coloniales. Ann. mus. colon. Mars. 1910. -- ~von Weinzierl~, Qualitat. u. quant. mechan. mikrosk. Analyse, eine neue Unters.-Methode d. 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Ann. sc. nat. 1838, II, 27 (erster Versuch einer mikroskop. Diagnose). -- Eine ziemlich vollständige Liste der Stärke liefernden Pflanzen findet sich in ~Wiesner~, Rohstoffe I, S. 564. Einen Bestimmungsschlüssel gab ~Moeller~ (Mikroskopie). Die ~Dufour~sche Tabelle zur Bestimmung der Stärkesorten ist abgedruckt in Pharm. Praxis 1904, S. 54. -- ~von Hoehnel~, Die Stärke und d. Mahlprodukte. Allgem. Waarenk. Kassel 1882. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde. Berlin 1885. -- ~Berg~, Anatom. Atlas. -- ~Flückiger-Tschirch~, Grundlagen. -- ~Moeller~, Mikroskopie d. Cerealien. Pharm. Centralh. 1884 und Pharmakogn. Atlas 1892, Taf. 1-27. -- ~W. Lenz~, Eine neue mikrochem. Unterscheid. d. Roggen- und Weizenstärke. Apoth. Zeit. 1909 und Arb. aus d. pharm. Inst. d. Univers. Berlin VII, 1910. -- ~Bloemendal~, Bijdragen tot de Kennis van zetmeel. Pharm. Weekbl. 1906. -- ~Baur~ und ~Polenske~, Trennung von Stärke u. Glykogen. Arb. d. Kais. Gesundheitsamt. 1906. -- ~Fouard~, Sur les propriétés colloïdales de l’amidon et sur l’unité de sa constitution. Bull. soc. chim. 1908. -- ~Lintner~, Journ. pr. Chem. 34 (1886). -- ~Schlicht~, Verzuckerung d. Stärke. Jahresb. d. Schles. Ges. f. vaterl. Kultur. 1909. -- ~Dubasc~, Chem. Zeit. 1904, 1149. -- ~Lagerheim~, Zeitschr. f. Mikrosk. 14. -- ~Maquenne~, Bull. soc. chim. 1906. -- ~Wolff~ u. ~Fernbach~, Compt. rend. 137 u. 138. -- ~Corsini~, La guaiaco reazione nella diagnosa della farine. Riv. d’igiene e sanit. pubbl. 1905. -- ~Bellier~, Ann. de chim. analyt. 1907, 224 (Verwendung des KOH, auch in Rev. intern. des falsific. et d’analyse d. mat. aliment. 1907). I. Stärke aus unterirdischen Organen. a) Amylum solani. =Syn.= Kartoffelstärke, -- fécule de pomme de terre (franz.) -- potato starch (engl.) -- aardappelzetmeel (holl.) -- amido di patate (it.) -- potaatti tärkkelys (fin.) -- ἄμυλον γεωμήλων (n.-griech.). =Stammpflanze und systemat. Stellung. Solanum tuberosum L.= (~Linné~, Spec. plant. 183), Erdapfel, Erdbirne, Grundbirne, Potacke mit zahlreichen (c. 900) Varietäten, Sorten und Kulturrassen. +Solanaceae+, Solaneae -- Solaninae, Sect. Pachystemonum. =Etym.= Die Italiener nannten die Kartoffel wegen ihrer Ähnlichkeit mit der Trüffel tartufo, daraus entstand (zwischen 1650 und 1760) durch Dissimilierung das deutsche, noch jetzt im Elsaß gebräuchliche tartuffel (tuften, tüften in Mecklenburg). Unwahrscheinlich erscheint die Umbildung aus Erdapfel (mhd. ërtapfel = Trüffel?), Herdapfel (Erdtuffel, Artoffel) = pomme de terre. Auch der Name Grumbirn (= Grundbirne, Erdbirne) deutet auf das subterrane Vorkommen der Knollen. Das engl. potato ist angeblich haitischen Ursprungs (Pataken, ostfränk.) -- Nachtschatten = schwarzer Schaden --. Solanum von solari trösten, stärken oder von solo den Sonnenstich verursachen = verrückt machen (~Kanngiesser~). -- Der Strychnos der Alten war wohl ein Solanum. -- +Der+ Knollen besser wie +die+ Knolle. =Beschreibung.= _Solanum tuberosum_ ist ein vieljähriges, angedrückt behaartes, ästiges Kraut von 50-120 cm Höhe, mit unterbrochen fiederschnittigen Blättern -- Endlappen größer als die schiefherzförmigen Seitenlappen -- Blüten weiß oder violettrötlich mit flach radförmiger Krone in doldenartigen Wickeln. Früchte gelbgrüne, etwa kirschengroße Beeren. Die Pflanze wird nur durch die Knollen, nicht durch die Samen fortgepflanzt. In den Achseln der unteren Blätter der Pflanze, sogar der schrumpfenden Cotyledonen (ct in Fig. 52), entspringen unterirdische Ausläufer (Wandersprosse), welche mit Niederblättern (éc) besetzt sind und Nebenwurzeln (r’) treiben, jedoch, wenn sie ans Licht kommen, auch zu Laubsprossen werden können. Die Enden dieser unterirdischen Ausläufer werden durch Anschwellen zu knollenartigen Speichersprossen (tb). Diese bilden die Kartoffeln. In ihnen ist das stärkeführende Speicherparenchym des Markes stark vermehrt (Hypertrophie des Markes). Die einen randständigen Kreis bildenden Gefäßbündel sind nur klein. Außen ist der Knollen von einem mehrreihigen Kork umgeben, der das wasserreiche Knollengewebe vor dem Austrocknen schützt (Fig. 53). Da und dort finden sich am Knollen kleine schuppenförmige Niederblätter, in deren Achseln Knospen, die sog. «Augen» (br. Fig. 52) liegen, die austreiben können, bei der Vermehrung der Kartoffel dies auch tun und eine neue Pflanze erzeugen. Die Parenchymzellen der Randschichten sind kleiner als die der inneren Partien. Die roten Sorten enthalten in allen Zellen neben Stärke einen roten Zellsaft, die rotschaligen nur in den Randschichten. Die Kartoffel enthält 15-20% Stärke (zahlreiche Analysen bei ~König~). Doch steigt in einigen Sorten der Stärkegehalt bis 22 oder gar 24%. In Deutschland allein sind c. 3 Mill. Hektar unter Kartoffelbau. [Illustration: Fig. 52. _Solanum tuberosum._ Bildung der Knollen (Speichersprosse) an unterirdischen Wandersprossen. Unten Längsschnitt durch die Spitze eines jungen Knollen. [Aus +Sachs+, Lehrbuch.]] =Pathologie.= Prof. E. ~Fischer~ berichtet über die pflanzlichen Schädlinge: Die wichtigste Krankheit der Kartoffel wird hervorgerufen durch _Phytophthora infestans_ (~Mont~) ~de Bary~. Dieser Parasit bewirkt ein Absterben des Krautes, das natürlich auch ein Zurückbleiben der Knollenentwicklung zur Folge haben kann. Aber es geht der Pilz selber auch auf die Knollen über, Bräunung und Absterben ihres Gewebes bedingend. Sekundär hinzutretende Bakterien und Schimmel vollenden dann den Zersetzungsvorgang. Indes scheinen gewisse Schimmelpilze, namentlich _Fusarium Solani_ (~Mart.~) ~Sacc.~, auch selbständig Erkrankung (Trockenfäule), wenigstens bei verwundeten Knollen, hervorrufen zu können. Eine Chytridiacee _Chrysophlyctis endobiotica_ ~Schilbersky~ wird als Erreger einer +Schorfkrankheit+ der Kartoffel angesehen. Endlich sind in neuerer Zeit auch eine Reihe von primären Bakterienkrankheiten der Kartoffelknollen beschrieben worden. =Lit.= ~Appel~ und ~Kreitz~, Der derzeitige Stand unserer Kenntnisse von den Kartoffelkrankheiten und ihre Bekämpfung. Mitt. Kais. Biol. Anstalt f. Land- und Forstwirtschaft 1907, Heft 5. -- Über die Bekämpfung der Kartoffelkrankheit mit Bordeauxbrühe vgl. auch ~Tschirch~, Das Kupfer vom Standpunkt der Hygiene usw. Stuttgart 1893. Über tierische Schädlinge berichtet ~Israël~: 1. +Käfer.+ _Agriotes lineatus_ L.: Larve die Kartoffelknollen durchlöchernd, sonst an Getreide- und Graswurzeln. _Melolontha vulgaris_ L., der Maikäfer: Der Engerling lebt an den Wurzeln aller möglichen Pflanzen und Waldbäume, auch oft in großen Mengen an den Kartoffelknollen. 2. +Schmetterlinge.+ _Acherontia atropos_ L., der Totenkopf: Die in Mittel- und Norddeutschland vorkommenden Raupen stammen von Faltern, die im Mai aus südlicheren Ländern (Ungarn) zugeflogen sind. Sie leben meist auf Kartoffelkraut, doch auch, wenn sie häufiger auftreten, auf _Datura_, _Lycium_, _Hyoscyamus_, _Daucus_, _Syringa_, _Philadelphus_ usw. Schädlich wird die Raupe wohl niemals, da sie meist einzeln vorkommt. _Calocampa exoleta_ L.: Die polyphage, sehr schöne Raupe, lebt unter andern auch an Kartoffelkraut. 3. +Fliegen.+ _Sciaria vitripennis._ ~Klug~.: Die Made dieser Fliege lebt gern an faulenden Kartoffeln in Kellern. In Kartoffelstärke findet sich bisweilen die Milbe _Aleurobius farinae_. [Illustration: Fig. 53. Querschnitt durch die Randschicht des Kartoffelknollen. [+Tschirch+.]] =Darstellung von Kartoffelstärke.= Kartoffelstärke wird in größerem Stil seit 1846 fabrikmäßig dargestellt. Die in Trommeln gewaschenen Kartoffeln werden in Zerkleinerungsapparaten zerrieben und samt dem Kartoffelsaft (Fruchtwasser) durch Siebapparate geleitet (Fig. 54). Die zurückbleibende Pulpa wird entweder verfüttert oder auf Mühlsteinen vermahlen und durch die Siebapparate geschickt. Die Gemische von Fruchtwasser und Stärke werden vereinigt (Rohstärkemilch), durch mehrere Siebe (Fein- oder Raffiniersiebe) von den Fasern und Schalenteilchen befreit und in gemauerten Absatzkästen (Sedimenteurs) 6-10 Stunden sedimentiert (bisweilen unter Zusatz von Schwefelsäure) oder zunächst durch 20 m lange Rinnen (Flutensystem) geschickt, in denen sich die gröberen Stärkekörner absetzen und dann zum Absetzen der feinsten Körner in Bottiche geleitet. Nach dem Absetzen wird das Fruchtwasser abgelassen, die oft noch stark gefärbte Rohstärke herausgestochen und in Waschbottichen (Laveurs) mit Rührwerken gewaschen (Fig. 55). Es setzt sich dann am Boden reine Stärke (Schlemm-, Schabe-, Hinter-Stärke) und darüber gefärbte Schlammstärke ab, die nach dem Abziehen des Waschwassers vorsichtig von der reinen Stärke getrennt wird, die man entweder als +grüne Stärke+ in den Handel bringt bzw. auf Dextrin oder Traubenzucker verarbeitet oder durch Waschen noch weiter reinigt und nach dem Abcentrifugieren des Wassers (in Raffiniercentrifugen) auf Horden oder in mechanischen Apparaten trocknet. Die grüne Stärke enthält bis 50%, die centrifugierte c. 35%, die fließende oder kaufechte, bei gewöhnlicher Temperatur getrocknete 14-20%, die getrocknete 8-15, meist 12% Wasser. Letztere kommt in Stücken oder gemahlen als Pulver in den Handel. Das Trocknen erfolgt meist auf Gipsböden in großen Trockenkammern (Fig. 56) bei höchstens 40° in lebhaftem Luftzuge. Die Schlammstärke geht entweder in die Branntweinbrennerei oder wird, mit Wasser gemischt, in großen Behältern mit Rührwerk am Absetzen verhindert, dann auf Schüttelsiebe gebracht und nach dem Flutensystem durch Schlemmrinnen oder Schlemmtafeln geschickt. Aus dem Fruchtwasser wird meist noch Sekundastärke abgeschieden. Der Schlamm, die Pülpe (Kartoffelfaser, petit sous) und die Abwässer werden entweder zu Futtermitteln (Pülpekleie) verarbeitet oder zu Düngezwecken benutzt. (Vgl. auch die Darstellung in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas.) [Illustration: Fig. 54. +Stärkefabrik+, Grundriß (unten) und Durchschnitt (oben) (für Kartoffel- und Cassavestärkefabrikation). 1. Kocher (Boiler), 2. Maschine, 3. Wäscher, 4. Reiber, 5. Reiber Tank, 6. Pumpe vom Reiber Tank zum Sieb, 7. Zylindersieb, 8. Schüttelsieb, 9. Stärkeablagerungs-Tank, 10. Rühr-Tanks, 11. Milch-Tanks, 12. Milchpumpe, 13. Zentrifugal-Tank, 14. Zentrifuge, 15. Stärke-Elevator, 16. Trockenzimmer, 17. Pulp-Tank, 18. äußere Ablagerungs-Tanks, 19. Wasser aus dem Wascher, 20. Ausfluß zur Bewässerung (w. Frisch-Wasser-Pumpe). [Nach +Wiley+.]] Bei der ~Völcker~schen Methode werden die in Scheiben geschnittenen Kartoffeln in Haufen gären gelassen und der Brei ausgewaschen. Bisweilen werden beim Reinigungsprozeß außer Schwefelsäure auch Ammoniak, Soda, Pottasche, Natronlauge herangezogen und zum Bleichen Chlor benutzt. Man erhält jetzt etwa 15-18% Stärke aus den Kartoffeln. Mehr als 80% der in der Kartoffel enthaltenen Stärke läßt sich nicht gewinnen; selbst ein rationeller Betrieb erzielt meist nur 66-75%, da selbst die vollkommensten Reiber nicht alle Zellen öffnen. In den Kartoffelknollen finden sich auch Histidin, Lysin und Arginin (~E. Schulze~). Die Zusammensetzung ist der ähnlich, die wir bei etiolierten Keimpflanzen finden. Die Kartoffelstärkefabrikation wurde von ~N. J. Bloch~ 1811 im Elsaß (Düttlenheim) begründet. Vorher, im XVIII. Jahrh., bestand sie nur als Hausindustrie. Sie blüht jetzt besonders in Frankreich (Depart. Vosges, Oise, Loire, Sarthe, Seine) und Deutschland. Hier seit den dreißiger Jahren des XIX. Jahrh. In Deutschland bestehen 663 Kartoffelstärkefabriken, besonders in Preußen (630), Mecklenburg, Anhalt, Braunschweig, Hessen. Auch Nordamerika produziert jetzt viel Kartoffelstärke. [Illustration: Fig. 55. +Stärkewäscher+ (für Kartoffel- und Cassavestärkefabrikation) innere Ansicht. [Nach +Wiley+.]] [Illustration: Fig. 56. Stärketrockenraum (für Kartoffel- und Cassavestärke). [Nach +Wiley+.]] Die Jahresproduktion betrug 1897 c. 1 Mill. dz grüne und c. 3 Mill. dz trockene Stärke (~Saare~). +Nordamerika+ produzierte bereits 1899: 15500 tons Kartoffelstärke. Davon entfielen auf Maine und New Hampshire 9000, auf New York 400, auf Wisconsin und andere Weststaaten 6100 t. +Hamburg+ importierte 1908 seewärts 89613 dz +Kartoffelstärke+ und +Kartoffelmehl+, (davon 82388 dz aus den Niederlanden) und exportierte 123948 dz. +Deutschland+ exportierte 1909: 303032 dz Kartoffelstärke, etwa die Hälfte nach Großbritannien. =Handel.= Im Handel findet sich die Kartoffelstärke entweder in Pulverform oder in unregelmäßigen Stücken, Brocken (Brockenstärke, Schäfchen) oder in Form runder, gepreßter Stengelchen (Stengel- oder Kristallstärke). Die grüne Stärke heißt im Handel auch Naßstärke. Das Kartoffelmehl des Handels ist meist auch nichts anderes als Kartoffelstärke. Der Großhandel unterscheidet aber zwischen Kartoffelmehl und Kartoffelstärke (~Julius Grossmann~) -- letztere ist etwas teurer. Bei beiden, die in Säcken à 100 kg gehandelt werden, werden die Qualitäten superior und prima unterschieden. =Anatomie.= Die +Stärkekörner+ variieren in der Größe außerordentlich. Von ganz kleinen, wenige mik großen findet man alle Übergänge bis zu Körnern von 90, 100 mik und darüber (selten 110-145) Längsdurchmesser. Die größten erscheinen daher schon mit bloßem Auge als feine helle Pünktchen. In der Kartoffelstärke des Handels fehlen jedoch die ganz kleinen und oft auch die ganz großen, denn sie ist ja ein Schlämmprodukt. Die Fabrikation erzeugt jetzt oft durch sorgfältiges Schlemmen Kartoffel-Stärkesorten, die bald kleine, bald mittlere, bald große Stärkekörner enthalten. Die besten Sorten enthalten die größten Körner. So fand ~Saare~ den mittleren Durchmesser bei Superior 32,8-35,5, bei Prima 21, bei Sekunda 16,9, bei Tertia 12,5 mik. Alle Körner sind exzentrisch (⅓-⅙), was leicht durch das Polarisationsmikroskop festgestellt werden kann. Der Kern liegt am schmäleren Ende der entweder rein ovalen oder unregelmäßig rhombischen, keil- oder beilförmigen, oder ellipsoidischen Körner. Meist ist auch die Schichtung sehr deutlich: einige grobe und zahlreiche sehr feine Schichten. Als Nebenform findet man kleine rundliche und mittelgroße, halb- oder ganz- (zu 2-3) zusammengesetzte Körner mit oft tiaraförmigen Teilkörnern. [Illustration: Fig. 57. +Kartoffelstärke.+ y zusammengesetzte, x halbzusammengesetzte Körner. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Chemie.= Trockene Kartoffelstärke enthält durchschnittlich: 79,64% Stärke, 19,22% Wasser, 0,69% Stickstoffsubstanz, 0,33% Asche, 0,08% Rohfaser und 0,04% Fett. Grüne (feuchte) Kartoffelstärke enthält nach ~Saare~ im Durchschnitt: 48,5% Wasser, 50,5% Stärke, 0,12% Fruchtwasserreste, 0,22% Sand, 0,15% Faser. Kartoffelstärke reagiert schwach sauer (Schwefelsäure aus dem Sedimenteur oder Milchsäure vom ~Völcker~prozeß). Langes Auswaschen mit verdünntem Ammoniak entfernt die Säure (~Fesca~). ~Soxhlet~ fand (vor längerer Zeit) in der Kartoffelstärke 0,108 bis 0,765 (im Mittel 0,331)% freie Säure auf Milchsäure berechnet. Sehr selten reagiert Kartoffelstärke alkalisch. Der aus Kartoffelstärke bereitete Kleister ist klar (Unterschied von Weizenstärkekleister) und riecht unangenehm durch aus der Fabrikation herrührende Zersetzungsprodukte, die von den Körnern absorbiert wurden. Dieser sog. Krautgeruch tritt besonders beim Behandeln mit Schwefelsäure oder Salzsäure hervor. ~Payen~ isolierte den riechenden Körper, der nur höchstens zu 0,01% vorhanden ist. Er läßt sich durch Soda entfernen (~Martin~). Kartoffelkleister schäumt nicht, wie die kleberhaltigen Kleister der Cerealien. =Verfälschung.= Kartoffelstärke wird öfter zur Verfälschung anderer Stärke- oder Mehlsorten benutzt, doch ist beste Kartoffelstärke teurer als feinstes Weizenmehl. Daher findet man auch bisweilen umgekehrt Kartoffelstärke mit anderen Mehlen vermischt. Hier entscheidet das Mikroskop. Kartoffelstärke verkleistert mit Alkalien (z. B. 2-4% Ätzkali) leichter als Weizenstärke. Darauf wurde ein Nachweis der Kartoffelstärke im Weizenmehl gegründet (~Krüger~ 1885). Die mikroskopische Prüfung ist aber sicherer und rascher. =Prüfung.= Für die Prüfung kommt in erster Linie das Mikroskop in Betracht. Der Wassergehalt soll 16% nicht viel überschreiten (max. 18%), was entweder mit dem (übrigens nur unsichere Resultate gebenden) ~Bloch~schen Fekulometer oder durch direkte Trockengewichtsbestimmung (~Saare~) ermittelt wird. Die Asche darf 0,5% nicht übersteigen, der Rohfasergehalt nicht 0,2-0,3%. =Anwendung.= Kartoffelstärke ist ein wichtiges Appreturmittel und wird zum Stärken und Leimen des Papiers viel benutzt, neuerdings auch zur Herstellung von sog. deutschen Sago (Kartoffelsago, Kartoffeltapioka, imitierter Sago), minderwertigen Macaronis, Vermicelli usw. herangezogen. Sie wird in der Papierfabrikation, zum Stärken der Wäsche, zum Appretieren feiner Gewebe, zur Weberschlichte, beim Zeugdruck, zur Kleisterdarstellung, zur Fabrikation von Stärkezucker, Stärkesirup und Dextrin (Leiogomma), zur Herstellung von Puder (Poudre de riz, P. de serail, Blanc végétal) und Celluloid (C. A. ~Wolff~) und zum Auspudern der Formen der Metallgießereien benutzt. Sie dient auch für sich selbst und in Gemisch mit anderen Stärkesorten als Nährmittel (Kraftmehl, Amidon, Solanta, Semoule d’Igname) -- ist aber nur von wenigen Pharmakopoëen (franz., holl.) aufgenommen. Die +Waschblaukugeln+ bestehen aus Gips, Kartoffel- und Weizenstärke mit einem Zusatz von Ultramarin, Smalte oder einem anderen blauen Farbstoffe, die +Glanz+stärke enthält Stearinsäure, Walrat, Gummi, Borax u. a. mehr. =Geschichte.= Die Heimat der Kartoffel ist Chile und Peru (~De Candolle~). Es ist aber nicht sicher, ob wirklich das Mehl der in der Sonne getrockneten Kartoffeln bei den Eingeborenen von Peru und Chile seit Urzeiten in Gebrauch war. Die Chuña ist etwas anderes. Nämlich eine seit Jahrhunderten benutzte, noch heute dargestellte, aus gefrorenen +Kartoffeln+ (vielleicht von _Solanum Maglia_ ~Schlchtdl.~ oder _Sol. immite_ ~Dunal~?) in den Anden Südamerikas bereitete Konserve (~Hartwich~). Jedenfalls fand ~Pizarro~ 1526 in Peru und ~Diego D’Almagro~ 1535 in Chile Kartoffeln in reichlicher Benutzung, als sie das Land betraten und die Kultur der Pflanze bestand zu jener Zeit in Südamerika von Chile bis nach Neu-Granada. Möglicherweise, ~Acosta~ bestätigt dies für Peru, ~Cieca~ für Quito (I, S. 762), bestand diese Kultur dort schon seit langer Zeit, wie in Brasilien die Kultur des verwandten _Solanum Commersonii_, während sie in Mexiko unbekannt war. Die Europäer schenkten aber ebenso wie die Eingeborenen Chiles der Pflanze keine besondere Beachtung. Die Spanier brachten Mitte des XVI. Jahrh. die Pflanze nach Europa und sie scheint zuerst in Sevilla als Zierpflanze angebaut worden zu sein. ~Walter Raleigh~ und ~Thomas Herriott~, sowie ~Hawkins~ brachten 1585 (1586) Kartoffelknollen von Virginien (Carolina), wohin _Solanum tuberosum_ wohl aus Südamerika gekommen war, nach Europa (Island). ~Gerard~ (Herbal, vgl. I, S. 909) hatte die Pflanze 1597 in seinem Garten, vielleicht auch 1587 der Breslauer Arzt ~Scholz~. ~Clusius~, der sie 1588 von ~Philippe de Sivry~ erhielt und in Wien kultivierte, beschrieb sie und bildete sie unter dem Namen Papas Peruanorum ab (Rarior. plant. historia). Ende des XVI. oder Anfang des XVII. Jahrh. war die Kultur der Kartoffel in Toscana verbreitet (~Pater Magazzini~) und als ~Raleigh~ 1623 nochmals und mit besserem Erfolge als das erste Mal Anbauversuche machte, waren die Tartufoli schon in Spanien und Italien gut bekannt. 1588 kam die Kartoffel nach Wien, 1591 nach Dresden. Anfang des XVII. Jahrh. waren die Blüten bei der Pariser Hofgesellschaft sehr beliebt und 1616 kam der Knollen als besonderer Leckerbissen auf die königliche Tafel. Die Knollen, von denen diese Kultur ausging, stammten nicht von ~Raleigh~, sondern waren wohl direkt oder indirekt (über Spanien) von Südamerika importiert. In Europa wurde die Kartoffel besonders durch ~Francis Drace~ (I, S. 751), einem Verwandten von ~Hawkins~ gegen Ende des XVI. Jahrh. bekannt, doch ist es zweifelhaft, ob die von ~Drace~ ursprünglich eingeführte Knollenfrucht nicht die _Batate_ war. Von Italien kam die Kartoffel und ihr Name (s. oben) nach Deutschland und wurde dort Mitte des XVIII. Jahrh. heimisch. Ihre Kultur verbreitete sich aber nur langsam. 1678 fand sich die Pflanze in den Gärten des ~Grossen Kurfürsten~, 1680 baute sie der Bauer ~Hans Rogler~ in Selb (Nordost-Bayern) auf dem Felde. Und nun breitete sich in Bayern und im Vogtlande der Anbau aus, der von den Kanzeln herab empfohlen wurde. Noch ~Friedrich der Grosse~ mußte im Teuerungsjahr 1745 energisch für sie eintreten und festen Fuß hat sie bei uns eigentlich erst im Anfang des XIX. Jahrh. gefaßt. Die russische Regierung zahlte noch Mitte des XIX. Jahrh. Prämien für den Anbau. In größerem Maßstabe wird sie seit 1684 in Lancashire (England), seit 1717 in Sachsen, seit 1728 in Schottland, seit 1738 in Preußen (im größeren Maßstabe seit den Jahren 1770-1772), seit 1783 in Frankreich angebaut. Dort wirkte der Apotheker ~Parmentier~ für sie und noch heute heißt die Kartoffelsuppe in Frankreich Soupe Parmentier. Jetzt hat sich die Kartoffel sogar die Tropen (Gebirge in Java) und das arktische Gebiet (Hammerfest) erobert. Die Stammform von _Solanum tuberosum_ nennt ~Alph. de Candolle~: _S. tuberosum_ α _Chiloense_ (gefunden 1862 von ~Philippi~ auf der lnsel Chiloe). Er unterscheidet von ihr die Varietäten β _cultum_, γ _Sabini_ und δ _Maglia_. Doch faßt ~Baker~ den Begriff S. tuberosum weiter. Nach ihm erstreckt sich das Verbreitungsgebiet nicht nur über Chile und Peru, sondern auch über Ecuador, Columbia, Costarica, Mexiko und die südwestlichen Staaten von Nordamerika. =Lit.= Abbild. der Pflanze bei ~Wettstein~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien. -- ~Saare~, Fabrikation der Kartoffelstärke. 1897. -- ~Harvey W. Wiley~, The manufacture of Starch from potatoes and Cassava. U. St. Dep. Agr. Div. chem. Bull. 58 (1900). -- ~Tschirch~, Realenzyklop. d. Ges. Pharm. und ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~De Candolle~, Geogr. bot. raison. und L’origine des plant. cult. 4 edit. 1896 (dort die Literatur). -- ~Wiesner~, Rohstoffe. -- Zahlreiche Analysen bei ~König~. -- Zur Geschichte der Kartoffel. Prometheus 1910, S. 384. -- ~Hartwich~ u. ~Jama~, Chuña. Schweiz. Wochenschr. 1909, 313. -- H. ~Jumelle~, Les plantes à tubercules alimentaires (avec 15 Fig.). Paris 1910. Vgl. auch E. ~Schulze~, Vorkommen von Hexonbasen in d. Knollen d. Kartoffel. Landw. Vers. Stat. 1903. -- Über das +Solanin+ der Kartoffeln vgl.: ~Firbas~, Monatsh. d. Chem. 1889, 541. -- ~Schnell~, Apoth. Zeit. 1898, 775. -- ~Bauer~, Zeitschr. Angew. Chem. 1899, 99. -- ~Weil~, Pharm. Zeit. 1900. -- ~Wintgen~, Arch. d. Pharm. 1906, 360. -- Über das +Vanillin+ der Kartoffelschalen vgl. ~Bräutigam~, Pharm. Zeit. 1900, 165. -- Die Blüten der Kartoffelpflanze enthalten ein mydriatisches Alkaloid neben Betain (~Schütte~). b) Arrowroots. Unter diesem Namen, der aus arrow (= Pfeil) und root (= Wurzel) gebildet ist, begreift man alle aus tropischen Pflanzen, besonders den unterirdischen Organen derselben, hergestellte Stärkemehle. Das Arrowroot par excellence ist das _Amylum marantae_. Pfeilwurzel ist der Name der _Maranta arundinacea_ und scheint das englische Wort dafür Arrow root, das bereits 1791 (~Olaf Swartz~, Observat.) und schon früher üblich war und dann auf das Stärkemehl übertragen wurde, in die südamerikanischen Sprachen (brasil.: araruta) übergegangen (~Spruce~) und nicht, wie ~Martius~ will, aus dem indianischen aru aru (= Mehl, ursprünglich für _Manihot_ benutzt) oder aru (= Mehl) und ruta (= Wurzel), oder aruac, dem Namen eines Volksstammes am Rio Negro, oder, wie ~Roscoë~ meint, aus arri (dem Namen der Pflanze bei den Indianern Guianas) entstanden zu sein. Der Name Pfeilwurz soll vielmehr daher rühren, daß die Rhizome als Antidot gegen Pfeilgift von den südamerikanischen Indianern benutzt werden (~Sloane~ 1687). 1750 wurde ihr Saft, z. B. auf Barbados, als Gegengift getrunken (~Hughes~). Auch ~Brown~ erwähnt 1756 die Eigenschaften als Gegengift. «In der Tat wird der ausgedrückte Saft auch von manchen weißen Bewohnern des tropischen Amerika als Gegenmittel gegen Gift und als Heilmittel für schmerzhafte Bisse von Insekten und Reptilien noch heute empfohlen» (~Peckolt~, ~Semler~). =Lit.= ~Tschirch~, Arrowroot in Real-Enzyklop. d. ges. Pharm. -- Analysen seltener Arrowroots bei ~Balland~, Journ. pharm. chim. (6) 17, 476 (Jahresber. Pharm. 1903, 555). Die dazu gehörigen mikroskop. Bestimmungen in ~Hess~, Unters. trop. Stärken. Zeitschr. Öster. Apoth. Ver. 1906, 25 (mit Abbild.). -- Die etymologischen Angaben I, S. 1063, Z. 18 sind zu berichtigen. 1. Westindisches Arrowroot. =Syn.= Amylum marantae, Amylum Arrow, Ararutamehl -- Pfeilwurzelmehl, Kraftmehl --, +St. Vincent Arrowroot+, Natal-, Jamaika-, Bermudas-Arrowroot -- Arrowroot de la Jamaique. Auch: ostindisches, brasilianisches, afrikanisches Arrowroot. =Stammpflanze und Systemat. Stellung. Maranta arundinacea= L. (~Linné~, Spec. plant. 2.) nebst den Kulturformen: Maranta indica ~Tussac~ und M. ramosissima ~Wall~. -- +Marantaceae+, Maranteae. =Etym.= Maranta wurde von ~Plumier~ nach ~Bartolomeo Maranta~ (I, S. 851) benannt, dessen Werk Methodi cognoscendorum simplicium libri tres. Venet. 1559, schon den Versuch einer Organographie und einer Definierung des Artbegriffes enthält. Die Artbezeichnung arundinacea erinnert an den rohrartigen Habitus (arundo) -- Bez. Arrowroot s. oben. =Beschreibung.= _Maranta arundinacea_ ist eine 1½-3 m hohe Staude mit länglich-ei-lanzettlichen, schwach behaarten Blättern, weißen Blüten und violetten Samen (Fig. 58). Die Kulturform _M. indica_, die sich zuerst auf Jamaica gebildet hat und die jetzt viel in Vorderindien kultiviert wird, hat breitere, kahle Blätter und weiße Samen. Die Pflanze ist ursprünglich in Dominica heimisch, aber (schon im XVIII. Jahrh.) zunächst nach Barbados und Jamaica, dann auch nach St. Vincent, Haiti und Mexiko gebracht worden. Die Pflanze bildet ein ziemlich großes unterirdisches Sproßsystem mit zahlreichen, etwa daumenstarken Gliedern («Fingern»). Diese Speichersprosse, die wie die Kartoffeln aus den angeschwollenen Enden unterirdischer Achsen bestehen, sind keulenförmig, von gelblicher Farbe, in Abständen von 2-2,5 cm gegliedert und dort mit den faserigen Resten der Niederblätter besetzt (Fig. 59). Zur Zeit wo die Stengel absterben ist das Rhizom am stärkereichsten. Es enthält alsdann 25-27% Stärke (und ziemlich viel Kali und Phosphorsäure). Zu dieser Zeit wird es geerntet. Die Marantarhizome enthalten (nach ~Macdonald~, ~Leuschner~ und ~Watts~) c. 27% Stärke, 63% Wasser, 1,5% Stickstoffsubstanz, 2-4% Dextrin, Zucker usw., 2,8-3,9% Rohfaser, 0,3% Fett, 1,2% Asche, die sehr reich an Kali ist (54,06% K₂CO₃). =Pathologie.= _Sphaerostilbe repens_ ~Berk.~ et ~Br.~ ist als Parasit in dem Rhizom von _Maranta arundinacea_ aufgefunden worden, wo er in Form von Rhizomorphen auftritt (~Ed. Fischer~). =Kultur.= Die Kulturen auf den +Bermuden+ (bes. Long Island) liefern das feinste Arrowroot, da die Bereitung dort am sorgfältigsten betrieben wird. Noch Anfang der siebziger Jahre des XIX. Jahrh. standen sie in erster Reihe, dann ging die Produktion zurück und in den achtziger Jahren betrug der Export kaum 1000 kg. Dann hat sich aber die Produktion wieder gehoben und noch heute erzielt das Arrowroot der Bermuden die höchsten Preise. Das zweitbeste ist das von Jamaica, aber auch dort sind die Kulturen stark zurückgegangen. Gering ist der Anbau in Grenada und auf der Insel Montserrat. Auf Barbados, Tortola und Antigua ist er aufgegeben. Dagegen sind die Kulturen auf der kleinen englischen Insel +St. Vincent+, besonders in den Distrikten Coomera und Pimpana, ständig in die Höhe gegangen, so daß diese Insel jetzt wichtigste Quelle für Marantastärke geworden ist. Nur diese ist jetzt im Großhandel. Die Produktion erreicht 1 Mill. kg. Auch in Natal, der zweitwichtigsten Bezugsquelle, ist die Produktion im Steigen (c. 3000 Kisten im Jahr), ebenso in Südbrasilien (Rio de Janeiro, Espirito Santo, Sa. Catharina und Para) -- hier wird aber fast nur für den eigenen Bedarf fabriziert. Dies gilt auch für die Canarischen Inseln, Liberia, Lagos, Sierra Leone, Madagascar und das Capland. [Illustration: Fig. 58. _Maranta arundinacea._ [Koloniaal Museum Haarlem.]] Indien kultiviert in Madras, Bengalen, Bombay und Pondichery, sowie auf Ceylon und in Burma (wie es scheint ist das Rhizom hier stärkeärmer). Australien kultiviert in Queensland und Neu-Süd-Wales. ~Louis Planchon~ hatte 1909 Muster von Martinique, Annam, Cochinchina, Guadeloupe, Guyana, Madagascar in Händen. Die Kulturmethode hat mit der der Kartoffel viel Ähnlichkeit. Man setzt Abschnitte, besonders die knospentragenden Endstücke der Wurzelstöcke («Saatwurzeln») oder benutzt junge Schößlinge als Saatgut, die man in Abständen von 15 cm setzt. Nach 8-12 Monaten kann geerntet werden. Auf den Bermuden wird im Mai gepflanzt und im März und April geerntet. Man hebt die ganze Pflanze aus dem Boden, schneidet die Rhizome ab und benutzt das Kraut als Gründüngung. 1000 qm Land liefern etwa 6240 kg Knollen, die 1296-1370 kg Stärke geben. Die Kultur ist leicht zu erlernen, verlangt kein großes Kapital und gibt mit wenig Düngung bald Erträgnisse auf relativ schlechtem Boden. Nur ist ein frostfreies, tropisches oder subtropisches Klima erforderlich. [Illustration: Fig. 59. +Die unterirdischen Organe von+ _Maranta arundinacea_. Sps. Speichersproß, WS. Wandersproß, K. Knospe, BS. Blätter und Blüten bildender Sproß. [+Tschirch+.]] =Darstellung der Marantastärke.= Die Ausbeute an Stärke aus den Knollen, die etwa 52-83 g wiegen (~Peckolt~), ist 15-19% (~Eberhard~ erhielt 20,78%). Die Fabrikation ist auf den Bermuden teils Groß-, teils Hausindustrie. +Sie wird mit großer Sorgfalt betrieben.+ Die gewaschenen Rhizome werden zunächst sehr sorgfältig geschält (die Schale enthält einen Bitterstoff), dann nochmals gewaschen und zu einem Brei zerquetscht. Der Brei fällt dann in einen feindurchlöcherten Zylinder, in dem sich eine mit hölzernen Schaufeln besetzte Walze dreht. Die durch die Löcher gehende Stärkemilch wird in Sedimenteurs absetzen gelassen, die Stärke vom Wasser getrennt und in flachen Kesseln mehrmals gewaschen. Die Stärke wird alsdann, nachdem die obere Schicht entfernt wurde, mit neusilbernen Schöpflöffeln in flache Kupferpfannen gebracht, diese mit Gaze überbunden und in die Sonne gestellt. Die trockene Stärke wird in mit Papier ausgekleidete Fässer gebracht. In St. Vincent schält man die Rhizome nicht. Sie kommen nach dem Waschen in den Pulper. Die Pulpa wird handgesiebt und die Stärkemilch durch mehrere Siebkolonnen in mit weißglasierten Ziegeln ausgemauerte Senkbassins geschickt. Der Absatz wird dann wiederholt unter Schlagen mit hölzernen Stöcken mit Wasser gewaschen. Das Vortrocknen erfolgt auf Horden, dann legt man die halbtrockene Stärke in eigenen Trockenhäusern locker auf siebartig durchbrochene Drahtunterlagen. «Durch das Austrocknen brechen die zuerst auf die oberste Etage gelegten Stücke auf und fallen auf die nächste Etage, bis sie schließlich fein gekörnt auf die unterste Etage gelangen» (~Semler~). In drei Tagen muß die Trocknung beendet sein. Dann gelangt das Arrowroot in Zinnkästen oder in mit Papier ausgeklebte Fässer. Äußerste Sauberkeit wird beobachtet, alle Geräte sind von Kupfer, Messing, Neusilber usw., alle riechenden Substanzen werden ferngehalten. In +Hausindustrie+ stellten schon die westindischen Neger Arrowroot dar: durch Zerstampfen der Wurzelstücke in hölzernen Mörsern. Jetzt wird Arrowroot im Kleinbetrieb auch auf den Bermuden bereitet. Die gewaschenen und geschälten Rhizome werden in einfachen Reibmaschinen zerrieben, der Brei nacheinander auf drei Haarsieben von verschiedener Maschenweite mit Wasser ausgewaschen, die Stärkemilch absetzen gelassen und vom Satzmehl die obere Schicht mit einem neusilbernen Löffel abgekratzt, dann wird die Stärke nochmals gewaschen und schließlich in Horden auf Siebtuch mit Gaze bedeckt in der Sonne getrocknet. =Handel.= St. Vincent-Arrowroot ist in Barrels à 100 kg im Handel (extra prima 00 und prima 0) -- eine besonders gute Sorte auch wohl in Kisten mit vier Dosen à 20 kg. Das Tonkin-(Maranta-)Arrowroot (Bot-Hoang-Tinh) ist bisweilen in Papier gewickelt in kleinen Paketen von 15 mm Durchmesser im Handel (Abbild. bei ~Louis Planchon~). Der Arrowroot-Export aus St. Vincent erreichte 1908 einen Wert von 27713 Pfund Sterling. Die Einfuhr von _Arrowroot_ nach +London+ betrug 1906: 14772, 1907: 11087, 1908: 12337, 1909: 13936 barrels, und 1906: 255, 1907: 36, 1908: 109 boxes and tins. Pfeilwurz(-mehl?) ist auch Ausfuhrartikel von Deutsch-Ostafrika (~Braun~). [Illustration: Fig. 60. _Marantastärke._ [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Beschreibung.= Marantastärke ist dadurch ausgezeichnet, daß sie zwischen den Fingern gerieben ein eigentümliches knirschendes Geräusch hervorruft. Sie liefert mit siedendem Wasser einen farb-, geruch-, und geschmacklosen, durchsichtigen und schleimigen Kleister, der einen lichtbläulichen Schimmer besitzt. Der Grund, warum von vielen das westindische Arrowroot vorgezogen wird, ist der, daß es infolge seiner Bereitung immer neutral ist (Kartoffelstärke ist das nie, sie reagiert wie Weizenstärke immer sauer, Reisstärke alkalisch) und infolge der großen, auf die Herstellung verwendeten Sorgfalt die reinste Stärke des Handels ist. Marantastärke zeigt deutliches Aufquellen bei 66,2°, Beginn der Verkleisterung bei 66,2° und vollständige Verkleisterung bei 70° (~Lippmann~). =Anatomie.= Die +Stärkekörner+ (Fig. 60) sind sehr verschieden gestaltet. Rundliche, ovale, ei- oder birnförmige bilden die Hauptmasse, daneben finden sich dreieckige, spindelige, keulen- oder birnförmige, ja bisweilen sogar viereckige oder rhomboidische. Einige, die als «Leiter» dienen können, sind seitlich genabelt. Viele haben einen zentralen oder (häufiger) exzentrisch, meist am breiteren Ende, gelegenen Spalt. Die Exzentrizität des Kerns beträgt meist ½-⅓. Die Schichtung ist oft deutlich, aber zarter als bei der Kartoffelstärke. Die Körner sind dick-rundlich oder doch nur schwach abgeplattet. Die Größe variiert sehr, meist beträgt sie 30-40 mik. Die kleinen sind oft nur 7,5-15 mik., die großen erreichen 45-55, selten 60 mik. (St. Vincent A.) oder gar 70-75 mik. (Bermudas A.). Die größten Körner sind also mit der Lupe zu erkennen. Zusammengesetzte Körner fehlen (~Moeller~, ~Tschirch~). =Verfälschung.= ~Louis Planchon~ beobachtete 1910 _Maniok_, ~Mitlacher~ 1904 _Weizen_-, _Mais_-, _Bohnen_- und _Reisstärke_, ~Brown~ 1891 _Kartoffelstärke_, ~Waage~ 1893 Tahiti Arrowroot (von _Tacca pinnatifida_), ich selbst 1898 ostindisches Arrowroot (von _Curcuma_) als Verfälschung bzw. Ersatz des westindischen Arrowroot. Das Mikroskop läßt alle diese leicht erkennen. _Curcuma_stärke und _Manihot_ dürften der _Maranta_stärke ziemlich gleichwertig sein. _Maranta_stärke darf nicht über 15% Wasser und 0,5% Asche enthalten (~Hauke~). =Anwendung.= _Arrowroot_ wird ziemlich viel in der Schokoladefabrikation verbraucht. Dann als «Kraftmehl» in der Medizin (Kindernährmittel). Es ist das teuerste aller Stärkemehle. =Geschichte.= Die Pflanze wird zuerst von ~Sloane~ 1696 erwähnt, der sie _Canna indica radice alba alexipharmaca_ nennt. Sie wurde in Dominica entdeckt und schon 1756 in vielen Gärten auf Jamaika kultiviert. ~Hughes~ und ~Browne~ erwähnen bereits die Darstellung des Mehles und halten es für besser als Weizenstärke. Die Schrift ~Jos. Schneider~, Über Systemsucht unter den Ärzten nebst einem Anhang über Arrow Root und Crotonöl, Fulda 1823, scheint die erste Beschreibung und Empfehlung des Marantaarrowroot +für medizinische Zwecke+ zu enthalten. Wenigstens bemerkt ~Pfaff~ (System der Materia medica 1824), daß es Anfang der zwanziger Jahre des XIX. Jahrh. zuerst in den Handel gebracht worden sei. Er bemerkt auch bereits, daß es keine Vorzüge vor unserer heimischen Stärke besitze. Doch scheint es schon früher, Ende des XVIII. Jahrh. (1799), in beschränktem Maße von Jamaika exportiert worden zu sein (~Rennie~ Hist. of Jamaica). In England war es im Anfang des XIX. Jahrh. in Gebrauch. Die Rhizome und die Darstellung der Marantastärke beschrieben zuerst ~Tussac~ (Flore des Antilles 1808, 1, 183) und ~Lunan~ (Hortus jamaicensis 1814). ~Browne~ beobachtete 1756, daß der Wurzelstock der Pflanze auf Jamaica gemahlen als Nahrungsmittel benutzt wurde. Die erste Einführung der Pflanze nach England 1732 wird ~Houston~ zugeschrieben. Nach Indien (die Gattung _Maranta_ fehlt der alten Welt) kam sie (wahrscheinlich zunächst die Form _M. ramosissima_) ungefähr 1830 über das Capland (~Watt~, Diction.). Sie wird seitdem dort kultiviert, in größerem Maße seit 1840. Im XIX. Jahrh. kam sie auch nach der Küste von Guinea (~Hooker~, Nigerflora), nach Natal, Südafrika, Brasilien und den Bermuden, einer kleinen Inselgruppe nördlich von den Antillen, wo sie jetzt überall kultiviert wird. In St. Vincent befinden sich jetzt die umfangreichsten Kulturen. In Australien (Neu Süd Wales) wird die verwandte Art, _M. nobilis_ ~Moore~, gebaut. =Lit.= ~Körnicke~, Monograph. Marantear. Prodr. Bull. soc. imp. d. natur. Moscou 1862. -- +Abbild.+: ~Hayne~ 9 t. 25/26 (cop. nach ~Redouté~, Liliac. t. 57 u. ~Tussac~, Flore des Antilles t. 26). -- +Düsseldorfer+ Abbild. 13 t. 10/11. -- ~Roscoe~, Monandrous plants of the order Scitamineae. Liverp. 1828 t. 25. -- ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants t. 265. -- ~Petersen~, Marantaceen in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. -- Dann: ~Sloane~, Catal. plant., quae in insula Jamaica etc. London 1696, 122 und History of Jamaica 1707, 253. -- ~Browne~, Civil and nat. hist. of Jamaica 1756. -- ~Grisebach~, Flora of the Brit. West Ind. Islands 1864. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. Bereitung in Westindien: ~Leuschner~, Zeitschr. f. öffentl. Chemie 1902 (Pharm. Zeit. 1902, 200), Ber. d. pharm. Ges. 1904. ~Semler~, Trop. Agrikultur. ~Macdonald~, Pharm. Journ. 1887, 1042, -- in Queensland: Pharm. Journ. 1882, 224; -- in Brasilien: ~Eberhard~ (~Hirschberg~), Arch. Pharm. 134 (1868), 257. ~Wimmel~, Hamb. Gewerbebl. 1868 (Jahresb. d. Ph. 1869). ~Peckolt~, Brasilian. Nutz- u. Heilpfl. (Marantaceen), Pharm. Rundschau. New York 1894, 87; -- in Sansibar: Pharm. Journ. 1893, 789. -- In Indien: ~Watt~, Dictionary econ. prod. Ind. V, 182. Ferner: ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Hanausek~, Pharm. Centralh. 1889. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Tschirch~, Arrowroot in Realenzyklop. d. ges. Pharm. I. -- ~Jos. Moeller~, Mikroskopie. -- ~Macdonald~, Journ. soc. chem. ind. 6 (1887), 334. -- ~Watts~ Pharm. Journ. 1894, 624 (Kew Bulletin 84). -- ~Louis Planchon~ et ~Juillet~, Ann. Mus. col. Mars. 1910. -- Asche: ~Hauke~, Zeitschr. Österr. Apoth. Ver. 1902. Über andere stärkeliefernde Marantaarten s. ~Wiesner~, Rohstoffe. II. Aufl. 2. Maniok. =Syn.= Maniok und Mandioca (in Brasilien, Argentinien und Paraguay), Brasilianisches Arrowroot, Amylum brasiliense -- Bahia-, Rio-, Para-Arrowroot -- Cassava, Cassave oder Cassada (in Westindien und den Ver. Staaten) -- Yuca oder Juca (in Zentralamerika, Columbien, Venezuela, Peru, Ecuador, Bolivien) -- Pan de tierra caliente (in Chile), -- Fécule de Yuca, amidon de Yuca. -- Maravuli (in Indien) -- Marachini (malaiisch). -- Brasilian. Arrowroot ex parte. -- Moussache. -- Verarbeitet: Tapioca. =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Manihot utilissima= ~Pohl~ (Jatropha Manihot L., Janipha Manihot ~Kunth~ -- Mandioca brava [brasil.], Yuca amarga [Chile], bitterer Maniok) liefert vornehmlich den aus Südamerika exportierten Maniok. Dann auch =Manihot Aipi= ~Pohl~ (_M. palmata_ ~Müll. Arg.~, -- Mandioca mansa oder aipim [brasil.], Yuca dulce (Chile), süßer Maniok), vielleicht nur eine Varietät von _M. utiliss._ oder _M. palmata_ und endlich _M. carthaginiensis_ ~Müll.~ Arg. (_Jatropha Janipha_ L., _Manihot Janipha_ ~Pohl~). -- +Euphorbiaceae+ Platylobeae-Crotonoideae-Manihoteae. Beide Haupt-Manihotarten sind in den Tropen Südamerikas heimisch (_M. utiliss._ wohl im unteren Amazonastale), aber frühzeitig zunächst nach Westindien, dann nach Vorder- und Hinterindien (Malacca), dem malaiischen Archipel und endlich auch nach Polynesien und Afrika gebracht worden. =Kultur.= Ihre Kultur hat sich in allen diesen Ländern rasch ausgebreitet und Maniok wurde ein wichtiges Nahrungsmittel der Tropen. In Südamerika ist Maniok, der übrigens auch in Neugranada, Peru und Ecuador gebaut wird, so wichtig wie bei uns die Kartoffel. In Ostafrika findet man ihn in jedem Negerdorf. Neuerdings wird _Manihot utilissima_ auch im südlichen Florida in größerem Umfange kultiviert, sowie in Ceylon (hier in Mischkultur mit _Eleusine caracana_). _Manihot utiliss._ ist ein Strauch, dessen Blätter einige Ähnlichkeit mit den Blättern des ja auch zu den Euphorbiaceen gehörigen _Ricinus_strauches besitzen und dessen Früchte breit geflügelt sind (Unterschied von _M. Aipi_). Die Pflanze bildet zahlreiche (5-8) große, meist 25-45 cm lange Knollen, die bisweilen eine Länge von 60 cm und ein Gewicht von 4 kg erreichen können (~Semler~). Selten sind Knollen von 12-15 kg Gewicht. Im Durchschnitt liefert eine Pflanze nicht mehr als 4-6 kg Knollen. _M. Aipi_ mit kleineren Knollen wird im allgemeinen weniger (besonders in Paraguay und Neu-Caledonien) angebaut. Den meisten Manihot baut Brasilien, wo besonders in den Küstenprovinzen gegen 30 Spielarten kultiviert werden. Das Maniokmehl ist ein ebenso wichtiges Nahrungsmittel wie Reis, Sago und Weizenmehl. Die Kultur der Pflanze ist sehr einfach. Sie gedeiht am besten in der Nähe des Meeres und an Flußufern. Sie braucht tropisches Klima, besonders Luftfeuchtigkeit. Die Vermehrung geschieht durch Stecklinge. Die westindischen Pflanzer erzielen durch Unterdrückung der Blüte größere Knollen. In den Straits Settlements erntet man nach 9-10 Monaten. Dann ist der Knollen am stärkereichsten. Die Knollen enthalten 17-39% Stärke und 3,5% Eiweiß. Die Knollen des bitteren Maniok enthalten 0,0132-0,0442%, die des süßen 0,0102-0,0238% +Blausäure+. Ein Teil der Blausäure scheint sich in glykosidischer Bindung zu finden, denn die Giftigkeit auch der süßen Knollen steigt durch mehrtägiges Liegen oder durch Gärung (~Semler~). Während in den Tropen die Knollen von _Manihot utilissima_ sehr viel Blausäure enthalten, sind die im subtropischen Florida kultivierten Kulturformen so arm daran, daß man sie ohne weiteres genießen kann. Die Pflanze trägt dort den Namen «süße Cassava», da sie 17% Zucker enthält. In den Wurzeln, Blättern, Blüten und unreifen Früchten findet sich auch +Aceton+ (~Romburgh~). =Bereitung des Mehls und der Tapioka.= Brasilien produziert in den Nordprovinzen besonders Maniokmehl (Farinha), d. h. die ganze zerriebene und getrocknete Wurzel. Tapiokafabrikation wird (in Hausindustrie) besonders in Bahia, Minas und Rio de Janeiro betrieben. Gering ist die Produktion auf den Capverden und Mascarenen, sowie auf Réunion, wo auch Tapioka fabriziert wird, auf Martinique, Guadeloupe, Travancore, Guiana. Enorm ist der Anbau der Manihotpflanze durch das ganze tropische Afrika, z. B. im Kongogebiet, wo sie ein wichtiges Nahrungsmittel ist, aber keine Tapioka liefert. Neuerdings (1898) wird Manihot auch in Togo gebaut und Stärke daraus dargestellt. Merkwürdigerweise hat sich dagegen gerade in den Gegenden, wo Maniok von vornherein mit dem Sago in Wettbewerb treten mußte, d. h. in den Straits Settlements, bes. in Singapore (dann auf Malakka und in der Provinz Wellesley) nicht nur die Kultur der Pflanze, sondern auch die Bereitung der Sagoähnlichen Tapioka eingebürgert und ist die Fabrikation hier durch Einführung rationellen Maschinenbetriebes rasch zu großer Bedeutung gekommen. Sie liegt jetzt vorwiegend in europäischen Händen, doch fabrizieren auch Chinesen nach ihren alten Methoden. Das +Cassavemehl+ bereiten die Brasilianer, indem sie die gewässerten Knollen schälen, auf einem Reibeisen zerreiben, den Brei, nachdem er durch ein korbartiges Sieb gedrückt worden ist, in einem Sack, der unten ein Gewicht trägt, aufhängen und so von dem sehr giftigen Saft (der übrigens ein berauschendes Getränk, Tucupi, liefert) befreien. Die ausgedrückte Masse wird dann geröstet und gesiebt. Die +Maniokstärke+ wird in Brasilien wie Maranta-Arrowroot bereitet (s. d.). Sie ist bisweilen in Kügelchen (Carima) im Handel. Die Bereitung erfolgt in der Weise, daß die zermahlenen Knollen auf Gazesieben mit Wasser ausgewaschen werden, die Stärkemilch in Sedimenteurs geleitet und der Absatz wiederholt gewaschen wird. Die +Tapioka+ wird in der Weise dargestellt, daß man die gespitzten Knollen in großen Trommeln wäscht (I, Fig. 140), in Reibmaschinen zerreibt und den Brei auf Musselin- oder Messingdraht-Sieben mit Wasser auswäscht (die auf den Sieben bleibende Faser dient als Futtermittel). Die Stärkemilch wird aus dem Zylinder in eine Reihe von Bottichen gedrückt, in denen sie sich absetzt und wiederholt mit Wasser gewaschen wird (I, Fig. 141). Der Bodensatz wird herausgeschnitten und entweder auf durch künstliche Wärme geheizten flachen, viereckigen, zinnernen Behältern getrocknet (Tapiokamehl) oder noch feucht in tiefen Pfannen erwärmt, dann auf die Zinnplatten gebracht und mit hölzernen Rechen so lange gekrückt, bis durch Zusammenballen der Stückchen Schollen entstanden sind (I, Fig. 143), die man in Sortiermaschinen sortiert (Flake-[Flocken-]Tapioka) oder endlich (ähnlich wie beim _Sago_, s. d.) nach Hindurchpressen der feuchten Masse durch Siebe in dem bekannten, an zwei Schnüren aufgehängten Tuche durch zuckende Bewegungen gekörnt (geperlt) und dann auf erhitzten Schalen gerollt, d. h. oberflächlich verkleistert (I, Fig. 142, Pearl- [Perl-] Tapioka). Manche Fabriken perlen nur ohne zu rollen. Ich sah in Singapore drei Größen runder Tapiokakügelchen: Seed Tapioca (1-1,5 mm Durchmesser), med. Pearl (3 mm) und bulled Pearl (5 mm). Sorgfältig wird aller Staub abgehalten. Primitiver ist die Bereitung in den chinesischen Tapiokafabriken Singapores, die ohne oder mit sehr primitiven Maschinen arbeiten (Beschreibung bei ~Semler~). Auch Vorderindien und die französischen Kolonien (franz. Guayana, Martinique, Guadeloupe, Réunion, die Kolonien in Westafrika und Neucaledonien) produzieren etwas Maniokmehl. Frankreich fabriziert aus der Maniokstärke zahlreiche Produkte (Tapioka, T. Crécy, T. au cacao, T. julienne). Die Tapioka indigène ist jedoch Kartoffelstärkesago. Man erhält c. 33% der Knollen Tapiokamehl. =Handel.= Der Handel unterscheidet Perl, Graupen, Flocken, Mehl. Perl-Tapioka und Maniokmehl kommt aus Singapore in Säcken à 70 kg. Flake-Tapioka in solchen à 65 kg in den Handel. Die höchsten Preise erzielt Rio-Tapioka und beste Singapore. [Illustration: Fig. 61. _Manihotstärke._ x zusammengesetzte Körner. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Die Ausfuhr von Tapioka aus Brasilien beträgt c. 7 Mill. Liter, die von Maniokmehl c. 8 Mill. kg. Die Einfuhr von Tapioka in Hamburg wird in den Listen jetzt nicht mehr von der des Sago getrennt (vgl. S. 182). (1898 importierte Hamburg 13500 Sack Tapioka und Maniokmehl und 22400 Sack Sago und Sagomehl.) Deutsch-Ostafrika führte 1906: 59911, 1907: 42157 kg Maniok (Mhogo) aus. +Deutschland+ importierte 1909 Tapioka: 12935 dz aus Brit. Indien und 9999 dz aus Brit. Malacca. =Anatomie.= Die meisten Stärkekörner sind zusammengesetzt und zwar am häufigsten aus zwei Körnern, einem großen rundlichen und einem kleineren. Seltener sind die beiden Teilkörner gleich groß oder mehr wie zwei zu einem Korne vereinigt. Doch zerfallen die zusammengesetzten leicht in die Teilkörner (Fig. 61). Das Mehl besteht vorwiegend aus diesen, die oft die Form einer Kesselpauke besitzen. Einfache Körner sind selten. Die Körner haben fast alle einen zentralen, bisweilen sternförmigen Spalt. Die Großkörner messen 15-23 mik, erreichen aber eine Größe von 25-36 mik. Die Kleinkörner messen meist 5-15 mik. Bei der geperlten und gerollten Tapioka finden sich Körner in allen Stadien der Verkleisterung: mit vergrößertem Spalt, trichterförmig erweiterter Bruchstelle und mannigfachen Verquellungen (Fig. 61 z). Maniokstärke enthält im Mittel 84,36% Stärke, 14,47% Wasser, 0,74% Stickstoffsubstanz, 0,16% Fett, 0,06% Rohfaser und 0,21% Asche. =Geschichte.= ~Columbus~ traf bei den Eingeborenen der Antillen _Cassave_ in Benutzung (I, S. 745) und auch ~Cortes~ berichtet über _Yucas_ (I, S. 749), ebenso ~Petrus Martyr~ (I, S. 766) über Juca-Sorten und ihre Kultur, der auch schon ihre Schädlichkeit im frischen Zustande kannte und wußte, wie sie unschädlich zu machen sind (vgl. auch I, S. 1021). Die Pflanze hatte sich also schon in vorkolumbischer Zeit über Mittelamerika und die Inseln verbreitet. Aus Südamerika haben wir über _Yuca_ (Caçavi) Nachrichten von ~Jos. de Acosta~ (I, S. 762), aus Brasilien über _Aypi_ und _Maniot_ solche von ~Jean de Léry~ (Hist. d’un voyage faiet en la terre du Brésil etc. 1585). Nach Indien kam die _Manihot_pflanze schon Ende des XVI. Jahrh. durch die Portugiesen. Sie wurde dort besonders an der Westküste kultiviert. ~Linschoten~ (I, S. 743) erwähnt bereits 1596 ihre Kultur daselbst. Nach Calcutta kam sie 1794 von Südamerika, nach Ceylon 1786 von Mauritius. In Indien und auch in Assam dient sie als Heckenpflanze. Afrika erreichte sie ebenfalls sehr frühzeitig. Der _Cassave_ gedenken ~Fernandez~ (I, S. 755), ~Walter Raleigh~ (I, S. 714), ~Piso~ (I, S. 893) und ~Monardes~ (I, S. 779). ~Piso~ bildet eine Tapiokafabrik ab. Die Blausäure fand schon ~Henry~ 1834 in den Knollen. Über ein Bier der Indianer Guianas aus _Cassave_ vgl. I, S. 1019. =Lit.= ~Pohl~, Plant. Brasil. icones t. 23, 24. -- ~Pax~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. -- ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants t. 235 (dort auch weitere Literatur). -- ~Berg~, Charakteristik t. 24. -- Flora brasiliensis, Euphorbiac. t. 65 (1874). -- Abbild. auch in ~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpfl. Taf. 111. -- Die Kultur beschrieben in ~Semler~, Tropische Agrikultur. -- Die Bereitung auch in Flora 1869, 369 und ~Harvey W. Wiley~, Manufacture of starch from Potat. and Cassava. U. S. Dep. Agr. 1900. -- Verbreitung in Indien in ~Watts~ Dictionary. -- Kultur in Malacca: Pharm. Post 1882. -- ~Philippi~, Elem. de Botánica etc. en Chile 1869. -- ~Henry~, Journ. de pharm. 1834. -- ~Henry~ et ~Boutron Chalard~, Journ. de pharm. 22, 118. -- ~Lacerda~, Sur l’action toxique du suc de Manioc. Compt. rend. 92, 1116. -- ~Guignard~, Sur l’existence et la localisation de l’emulsine dans les plantes du genre Manihot. Bull. Soc. Bot. 41, 1894, 103. -- ~Romburgh~, Ann. jard. bot. Buitenz. 1899. -- ~Leuschner~, Ber. d. pharm. Ges. 1904. -- Anatomie in ~Louis Planchon~ et ~Juillet~, Ann. Mus. col. Marseille 1910. 3. Ostindisches Arrowroot. =Syn.= Amylum Curcumae, A. indicum, Farina Tik, Curcumastärke, Tikhur (hind.), Tickar, Tavakhir (Bomb.), Tikor, Kooa (Tam.), Ararut-ke-gadde (Dec.), -- Tikmehl, Travancorastärke. -- Bombay-, Malabar-, Tellichery-Arrowroot. -- Indian Arrowroot. =Etym.= Tikhur und Tavakhir (ind.) abgeleitet von tavakshiri und tavakshiryeka-pattrika, den Sanskritnamen einiger _Curcuma_spezies. =Stammpflanze= und =Systemat.= =Stellung: Curcuma angustifolia Roxb.= (Wild or East India Arrowroot, Narrow Leaved Turmeric); dann auch: _Curcuma leucorhiza_ ~Roxb.~ (und in beschränktem Maße (nach Pharmacogr. indica): _C. montana_ ~Rosc.~, _C. longa_ L., _C. aromatica_ ~Salisb.~, _C. rubescens_ ~Roxb.~, _Hitchenia caulina_ ~Baker~). +Zingiberaceae+ Hedychieae. =Beschreibung.= _Curcuma angustifolia_, die eigentliche Tikhur- oder ostindische Arrowrootpflanze, ist heimisch in Zentralindien, von Bengalen bis Bombay und Madras, besonders im tropischen Himalaya und Oudh, _C. leucorhiza_ in Behar und Tikar (Tikari, Tikhar oder Tikor, südlich von Patna, unweit Gaya). _C. angustifolia_ wird in Madras, Kanara, Cochin, Travancore, Malabar und anderen Gegenden Indiens, _C. leucorhiza_ an der Malabarküste kultiviert. Beide besitzen ein großes, nicht gelb gefärbtes unterirdisches Speichersystem, einen Zentralknollen und viele Nebenknollen, die in Indien als Nahrungsmittel benutzt werden und aus denen man dort, besonders in Travancore, auch reichlich Stärke bereitet, die jedoch nicht so gut ist wie die _Marantastärke_ -- sie reagiert z. B. stets etwas sauer. Sie gelangt in beschränktem Maße von Malabar und Bombay zur Ausfuhr. Die Stärkekörner sind flach scheibenförmig und besitzen am schmäleren Ende gewöhnlich einen nabelartigen Ansatz, in dem der Kern liegt, dessen Exzentrizität meist beträchtlich ist: ⅕-¹⁄₁₇. Ihr Umriß ist also, wenn man sie von der Fläche betrachtet, sackartig. Von der Seite betrachtet sind sie lineal-länglich. Die Schichtung ist sehr dicht und zart. Die typischen Körner sind 35-60 mik lang, 25-35 mik breit und 7-8 mik dick, doch steigt der Längsdurchmesser bisweilen auf 70-80, bei _C. leucorhiza_ sogar auf 105, ja 145 mik. Mit Sappanholzauszug gefärbt liefert Curcumastärke ein Färbemittel, den gelâl der indischen Bazare. Als ostindisches Arrowroot werden auch andere in Vorderindien gewonnene Stärkesorten (Maranta-, Cassave-, Canna-, Cycadeen-, Palmen-Stärke) bezeichnet. =Lit.= +Abbild.+: ~Roscoe~, Monandrous plants of the order Scitamineae Liverpool 1828. -- ~Petersen~, in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamil. -- ~Roxburgh~, Flora indica. -- ~Watt~, Dictionary. -- ~Dymock~, Veget. mat. med. of India. -- Pharmakographia indica. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~L. Planchon~ et ~Juillet~ a. a. O. [Illustration: Fig. 62. _Curcuma angustifolia_ Roxb. Zentralknollen mit Nebenknollen und angeschwollenen Wurzeln. [+Petersen+ in +Engler-Prantl+, Pflanzenfam.]] 4. Queensland-Arrowroot. =Syn.= Cannastärke, Tous les mois, Fécule de Tolomane oder Tulema (korrumpiert aus Tous les mois). Fécule de la Nouvelle Galle du Sud. =Stammpflanze= und =Systemat. Stellung=. =Canna edulis= ~Edw.~ (_C. edulis_ Ker. Bot. Reg. IX 775). Dann auch in beschränktem Maße: _Canna indica_ L. (Heimat unbekannt, wahrscheinlich aber wie alle _Canna_arten, Amerika, jetzt in Vorderindien allgemein verbreitet: Indian shot or bead, seit 1570 in Europa kultiviert), _C. discolor_ (liefert in Trinidat ein sehr gutes Arrowroot: Canna root), _C. coccinea_ ~Rosc.~ (Südamerika), _C. gigantea_ (Brasilien), _C. paniculata_ (Peru), _C. Achiras_ ~Gill.~ (Trop. Südamerika), _C. flaccida_ und _glauca_ (Carolina). +Cannaceae+ (früher Zingiberaceae). Im Großen für den Export wird nur _Canna edulis_ (Achira in Peru, Meeru in Brasilien) wegen der Blüten die «rote Arrowrootpflanze» genannt, kultiviert, deren Heimat Peru ist, die dort auch Adeira heißt und deren Knollen (eine Pflanze liefert bisweilen 50 Pfund davon) wie Kartoffeln gegessen werden. Sie ist schon vor langer Zeit zunächst nach Westindien, dann auch nach Queensland gebracht worden, wo sie bald die _Maranta_kultur verdrängte, da die Stärke aus ihren Knollen sehr leicht zu gewinnen ist. In Queensland waren 1909 etwa 200 acres mit _Canna_ bestellt, die 15-20 cwt Arrowroot pro acre lieferten; Queensland produziert jetzt jährlich c. 600000 pounds dieses Arrowroot, das im Gegensatz zur _Marantastärke_ (white A.) purple Arrowroot genannt wird. Die Rhizome sind in c. 6-8 Monaten reif, werden dann gewaschen. zu einem Brei zerrieben und dieser auf Metallsieben ausgewaschen. Die abgesetzte Stärke trocknet man auf Calicot. Der ganze Prozess wird in 24 Stunden zu Ende geführt. Von Queensland (Coomera, Pimpara) und aus St. Kitts (S. Christoph, einer der kleinen Antillen) kommt das _Canna_-Arrowroot jetzt in den Handel. Auf St. Kitts war die Produktion Mitte des XIX. Jahrh. ziemlich bedeutend, ist aber jetzt stark zurückgegangen. Die Cannastärke ist die grobkörnigste aller Stärkearten. Einzelne Körner treten schon mit bloßem Auge als helle Pünktchen hervor. Die Stärkekörner differieren in Form und Größe ziemlich, doch prävalieren die großen sackartigen, dicklinsenförmigen. Von der Fläche gesehen sind sie rundlich, eiförmig, breit-sackartig, das breitere Ende abgerundet, das schmälere breit genabelt. Der Kern liegt stark exzentrisch. Die Schichtung ist deutlich bei allen Körnern, oft grob. Halb zusammengesetzte Körner sind nicht selten. Der Längsdurchmesser beträgt 60-70-95 mik, doch steigt er nicht selten bis auf 110, ja 130 und sogar 145 mik. Unter dem Namen Queensland-Arrowroot geht auch die Stärke von _Zamia spiralis_. =Lit.= +Abbild.+: ~Bentley-Trimen~, Medicin. plants. t. 266 (_C. edulis_) und ~Rheede~, Hort. Malabar XI, t. 43 (_C. indica_). -- Pharmacogr. indica. -- ~Thompson~, Jahresb. d. Pharm. 1892, 121. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- ~Tschirch-Oesterle~, Atlas (dort die Stärke abgebildet). -- Pharm. Journ. 1909, 768, nach Agric. News 1909, 8, 119. 5. Tahiti-Arrowroot. Taccastärke, Fécule de pia, Fécule de Kabija, Williams Arrowroot. =Tacca pinnatifida ~Forsk~.= (_T. sitorea_ ~Rumph.~, _T. pinnatifolia_ ~Gärtn.~), +Taccaceae+, ist auf den Südseeinseln heimisch und wird auf Tahiti und den benachbarten Inseln +Pia+ genannt. Sie wird dort und neuerdings auch in China, Indien (in Bombay: diva kanda), dem malaiischen Archipel, Queensland und Sansibar in beschränktem Maße angebaut. Die großen, sehr stärkereichen (26-29% Stärke enthaltenden) Rhizome, die in Tahiti auf Stärke verarbeitet werden, schmecken sehr scharf, doch läßt sich die Schärfe durch mehrmaliges Auswaschen der abgeschiedenen Stärke beseitigen. _Tacca_ hat von allen den stärkemehlreichsten Knollen. =Lit.= ~Pax~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. -- ~Rumphius~, Herb. amb. V, t. 114 (Kopie in ~Engler-Prantl~ II, 5. 129.) -- ~Semler~, Tropische Agrikultur. -- ~Wohltmann~, Tacca pinnatifida, die stärkemehlreichste Knollenfrucht d. Erde. Tropenpflanzer 1905, 120. -- ~Tschirch-Oesterle~, Atlas (dort die Stärke abgebildet). -- ~Louis Planchon~ et ~Juillet~ a. a. O. 6. Guyana Arrowroot. Dioscorea-Stärke, Yamswurzelstärke, fécule d’Igname, Farinha de Cará, Cara. Die _Yams_- oder _Ignamen_wurzeln, die diese Stärke liefern, stammen von zu den Dioscoraceen gehörenden kletternden _Dioscorea_-Arten, von denen _D. alata_ L. und _bulbifera_ L. (inkl. _sativa_ L.) in den Tropen, _D. japonica_ (inkl. _Batatas_) in den Subtropen, besonders Chinas und Japans, viel als Nahrungspflanzen -- yam bedeutet im Dialekt der Neger von Guinea «essen», igname bei den amerikanischen Indianern «Brotwurzel» -- kultiviert werden. _D. alata_ stammt aus Südasien, _D. japonica_ aus Ostasien, _D. bulbifera_ scheint in beiden (?) Hemisphären heimisch zu sein. Andere Arten kommen in Afrika und Australien vor und werden dort kultiviert. In Kamerun kultiviert man _D. dumetorum_. Die größten Knollen von 15-18, ja 40-50 kg werden auf den Fijiinseln und auf Neu Guinea erzielt. _Yams_knollen enthalten 9-25% Stärke. Einige japanische Arten lassen sich sogar in Südeuropa anbauen, bieten aber kaum einen Ersatz für die Kartoffel. Für die Stärkegewinnung kommt in erster Linie =Dioscorea alata= L. (Wing Stalked Yam, white Yam; in Indien: Kham alu, sund.: Huwi lilien, auf den Südseeinseln: ubi) in Betracht, die in den Tropen große, mehrere Kilogramm schwere Knollen -- es sind solche von 10 kg und über ½ m Länge keine Seltenheit -- bildet, die meist etwa 17% Stärke enthalten (~Maisch~). Weniger wird dazu _D. sativa_ (mit 22% Stärke) benutzt. _D. bulbifera_ enthält nur 3,7% Stärke neben 16,9% Zucker. _D. alata_ wird in Brasilien, Guiana, Indien und den Südseeinseln kultiviert, aber, wie es scheint, nur in Guyana und Brasilien (_Farinha de Cará_) in etwas größerem Stil auf Stärke verarbeitet. Die Gewinnung scheint nicht sehr sorgfältig zu geschehen, denn das Handelsprodukt zeigt noch eine Menge Gewebsreste. Die Stärke ist abgebildet in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. ~Columbus~ traf (I, S. 754), als er die Antillen betrat, dort _Yams_ bereits in Kultur. =Lit.= Abbild. in ~Tschirch~, Ind. Heil- und Nutzpfl. t. 110 und dies. Handb. I, Fig. 46. -- ~Watt~, Dictionary. -- ~Wiesner~, Rohstoffe (dort weitere Lit.). -- ~Clerq~, Nieuw plantk. woordenb. -- ~De Candolle~, L’orig. des plant. cult. -- ~Louis Planchon~ et ~Juillet~ bilden a. a. O. die Stärke von _D. alata_ L., _D. eburnea_ Lour., _D. trifida_ L. (Fécule de Cousse-couche) u. _D. divaricata_ Blanco ab. Unter dem Namen Guyana-Arrowroot geht aber auch das +Stärkemehl der unreifen Früchte+ von =Musa paradisiaca= L. (_M. sapientum_ ~Brown~.). Während die _Banane_ (in Niederl. Indien: Pisang, in Engl. Indien: Plantain, franz.: Bananier) jetzt in den Tropen überall als Nahrungsmittel bez. Obst in zahlreichen Varietäten kultiviert wird, scheint nur in Britisch- und Französisch-Guyana, in Brasilien, Jamaika, Porto-Rico und den Bermuden, dann auch in Zentralafrika (am Ruwenzori, ~Stanley~) aus der Frucht Mehl bereitet zu werden. Deutsch-Ostafrika führte 1907: 1116 kg, 1908: 941 kg Bananenmehl aus. Man schält die unreifen Früchte, trocknet an der Sonne, vermahlt und siebt die zerkleinerte Masse. Das Mehl (conquintay, fou-fou), das also noch Gewebsreste enthält, bildet den Handelsartikel, doch scheint da und dort (Bermuden) auch die Stärke daraus abgeschieden zu werden. Das Mehl unreifer Bananen wird in England zur Brotfabrikation benutzt und zur Herstellung eines Bananenkakao. Bananenmehl (aus Jamaika) enthält: 78,32% stickstoffreie Subst. (bes. Stärke), 12,77% Wasser, 4,69% Eiweiß, 1,28% Rohfaser, 0,49% Fett, 2,45% Asche (~von Sury~). Die sehr eigenartigen Stärkekörner sind in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas abgebildet, vgl. auch ~Louis Planchon~ et ~Juillet~, a. a. O. Reife Bananenfrüchte enthalten nur 1-2% Stärke, unreife bis 80%. Bei der Reife verwandelt sich die Stärke in Zucker. Die _Banane_ (sansk. kadalī, so in Suśrutas I, S. 505) ist seit Urzeiten in Indien in Kultur. Die Griechen trafen sie auf dem Alexanderzuge (I, S. 430). ~Theophrast~ und ~Plinius~ beschreiben sie als pala, d. h. Blatt (hier pars pro toto), bei den Arabern hieß sie mouz oder mauwz (~Mesuë~, ~Ibn Baithar~) und im Koran talk. Sie ist so frühzeitig nach der neuen Welt gekommen, daß ~Humboldt~ sie als auch in Amerika heimisch betrachtete. =Lit.= ~Wiesner~, Rohstoffe. -- Pharmacograph. indic. -- ~De Candolle~, L’origine d. pl. cult. -- Über den Pisang vgl. auch ~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpflanzen (dort Abbild.). -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- Abbild. schon in ~Rheedes~, Hort. Malab. Vgl. auch I, Fig. 25. -- ~von Sury~, Chem. Zeit. 1910, Nr. 52. Als +Fécule de la chataigne de la Guayane+ wird endlich auch die Stärke der _Sterculiacee Pachira aquatica_ ~Aubl.~ bezeichnet (beschrieben bei ~Wiesner-Hübl~). 7. Batatenstärke. Fécule de batate ou patate, Brasilianisch.es Arrowroot ex parte. Die sog. weiße oder süße Kartoffel (sweet potato, ind.: míta-alú), =Batatas edulis= ~Chois.~ (_Ipomoea batatas_ ~Lamk.~, _Convolvulus Batatas_ L., _C. edulis_ ~Thunb.~), eine +Convolvulacee+, eine wichtige Nahrungspflanze der Tropen und Subtropen, besitzt spindelförmige Knollen, die oft 1-2 kg, selten bis 6 kg schwer werden. Sie hat sich von ihrer Heimat im tropischen Amerika, wo sie sich von Mexiko über die Antillen und Peru bis Paraguay hin seit Jahrhunderten in Kultur befindet -- ~Columbus~ traf sie (_Ages_) auf den Antillen (I, S. 745), ~Acosta~ (_Comores_) in Südamerika (I, S. 762), auch ~Petrus Martyr~ (I, S. 766) gedenkt ihrer -- über die meisten tropischen und subtropischen Gebiete, bis nach Japan hin, verbreitet; nach Neuseeland vielleicht «auf einer der uralten polynesischen Wanderungen» (~Semler~). Denn ihr Name kumara findet sich sowohl auf Neuseeland wie bei den Quichua-Indianern Perus. Sie verlangt nicht zu feuchtes Klima und leichten sandigen Boden. In den Tropen enthält der Knollen c. 10% Zucker und nur 9% Stärke, in den Subtropen c. 3% Zucker und 14-15% Stärke. Die Knollen werden in beschränktem Maße in Brasilien, auf Martinique, Guadeloupe und Réunion, in Cochinchina und Indien auf Stärke verarbeitet. Die Stärke ist abgebildet in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. =Lit.= ~Roxburgh~, Flor. ind. 162. -- ~Louis Planchon~ et ~Juillet~, Ann. Mus. col. Mars. 1910. -- Weitere Lit. in ~Wiesners~ Rohstoffen und ~Watts~ Dictionary. 8. Arumstärke. Die Knollen von =Arum maculatum= L. werden in Südeuropa hier und da in beschränktem Maße auf Stärke verarbeitet (Portland-Arrowroot), ebenso die Knollen des seit Jahrhunderten kultivierten =Arum esculentum= L. (inkl. _Arum Colocasia_ ~Willd.~, _Colocasia antiquorum_ ~Schott.~, neuseel.: taro, sansk.: kuchoo, mal.: kelady, talus, japan.: imo -- das _Arum aegypticum_ des ~Plinius~) auf Martinique, in Japan und den Südseeinseln. Letztere trägt den Namen Fécule de chou-choute, F. de chou caraïbe oder F. de chou-taró. Ob auch _Arum macrorhizum_ L. (Apé) auf Tahiti auf Stärke verarbeitet wird, konnte ich nicht in Erfahrung bringen. Die Bulbi Megarici von =Arum italicum= ~Lam.~ erwähnt schon ~Cato~ (I, S. 572). Auch ihre Stärke wurde viel in früheren Jahrhunderten (S. 156) und wird noch jetzt bisweilen abgeschieden (nach ~Höhnel~ in Italien und Algier). _Arum_stärke ist in Portugal offizinell. Die _Arum_-Stärkekörner sind abgebildet in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. Auch bei ~Louis Planchon~ und ~Juillet~ finden sich a. a. O. verschiedene Aroideenstärken abgebildet. 9. Costarica Arrowroot. Dies Arrowroot stammt von den Knollen der zentralamerikanischen =Yucca gloriosa= L. 10. Japanisches Arrowroot. Die japanische Pharmakopoëe hat (neben Kartoffelstärke) die Stärke der Zwiebel der japanischen Liliacee =Erythronium Dens Canis= L. (Katakuri) und der Wurzel der Papilionacee =Pueraria Thunbergiana ~Benth.~= (_Dolichos hirsutus_ ~Thunb.~), zweier in Japan und China vorkommender Pflanzen als Ersatz der in Europa üblichen Stärkesorten aufgenommen. (Abbild. der _Erythronium_stärke in ~Moeller~, Mikroskopie S. 138.) In Japan wird auch aus _Pteris aquilina_ (Warabi) und der Wurzel von _Conophallus Konjak_ (Konyaku) Stärke hergestellt. II. Stärke aus Stämmen. 1. Sago. =Etym.= Sagu bedeutet im Malaiischen sowohl Mehl wie die mehlliefernden (Sago)-Palmen (Sagu baduri ist _M. Rumphii_, Sagu ihur _M. silvestr._, Sagu makanaru _M. longispinum_) -- _Metroxylon_ von μήτρα = Mark und ξύλον = Holz -- Betr. ~Rumphius~ vgl. I, S. 899. =Stammpflanze.= Die Sagopalmen gehören zur Gattung _Metroxylon_, die auf die Tropen der alten Welt beschränkt ist und bilden wenige, schlecht charakterisierte, vielleicht gar nicht spezifisch verschiedene Arten (~Warburg~). Meist unterscheidet man: =Metroxylon Rumphii= ~Martius~ (Sagus Rumphii ~Willd.~, S. spinosus ~Roxb.~, S. genuina ~Blume~, die dornige Sagopalme, Bariam oder Bi (N.-Guin.), Karasula (Jav.), Kirai (Mal. Bat. Sund.), Lapia (Amb.), Rumijah (Atjeh), Sagu (Vulg. Mal.) Rambia). Dies ist der eigentliche Sagobaum der Molukken -- und =Metroxylon Sagu= ~Rottboell~ (M. Sago ~König~, M. inerme ~Mart.~, Sagus laevis ~Jack~, S. inermis ~Roxb.~, S. Rumphii ~Blume~), von den Eingeborenen vielfach mit den gleichen Namen wie der zuerst genannte Baum bezeichnet, da und dort aber auch davon unterschieden, über den ganzen Archipel verbreitet, aber mehr im Westen. Von ihm sowie von dem wohl dazugehörigen =M. laeve= (_Sagus laevis_) stammt wohl das meiste des nach Europa verschifften Sago. Weniger in Betracht kommen: _M. silvestre_ ~Mart.~, der wilde Sagobaum der Molukken und _M. longispinum_ ~Mart.~, der wenig Ausbeute liefert, _Sagus elata_ (Java) u. and. In den Tropen der neuen Welt (Brasilien, Guadeloupe) wird _Sagus farinifera_ kultiviert. =Beschreibung.= Die Sagopalmen gedeihen besonders auf feuchtem Boden, der periodischen Überschwemmungen ausgesetzt ist. Sie sind durch den malaiischen Archipel verbreitet, von Malakka und Sumatra bis zu den Fijiinseln gehend, mit Siam und Mindanao als Nordgrenze, den kleinen Sundainseln und Neu-Guinea als südlichste Punkte. (Vgl. die Karte im Kap. _Reis_, S. 189.) Sie fehlen in Australien. Es sind Palmen mit einem kriechenden Stamm, die in sumpfigen Niederungen wachsen und selten die ebenen Landstriche verlassen. Sie werden 25-30, selten bis 42 Fuß hoch, bleiben lange buschig und entwickeln erst spät, dann aber rasch den dicken Stamm. Sie sind monöcisch-polygam und blühen nur einmal, nach 10-15 Jahren, mit einem großen endständigen Blütenstand, der ungeheuere Massen von Blüten und Früchten bildet. Um diese ausbilden zu können, speichert die Pflanze große Mengen Stärke im Stamm. Meist stirbt die Palme bald nach der Fruchtbildung. Die Sagopalme ist eine der nützlichsten Pflanzen, die wir besitzen. Sie nimmt mit dem schlechtesten, sonst zu keiner Kultur brauchbaren Sumpfboden vorlieb; ein Stamm enthält, wenn er nach 15 Jahren reif zum Fällen ist, 400-900 (in der Regel 500-600) Pfund Sago, was für den jährlichen Unterhalt einer Person ausreicht; aus den im Boden bleibenden unterirdischen Organen erneuert sich die Pflanze leicht. =Kultur.= Die Sagopalmen sind jetzt auch in Kultur in Ost-Sumatra (Bengkalis), auf dem Rioux-Lingga-Archipel und Billiton, in West-Borneo (Sambas, Pontianak), in den Sümpfen von Celebes, auf Bunguran, der Hauptinsel der Groß-Natunas, westlich von Borneo und auf der Halbinsel Malakka, z. B. bei Singapore; zur Atapgewinnung der Blätter für die Dachbedeckung auch an den Flußläufen Javas (bes. _M. Sagu_). Die Kultur bietet keinerlei Schwierigkeiten. Die Anpflanzung erneuert sich selbst durch Wurzelschößlinge. Doch wird die Hauptmasse des in Südostasien produzierten Sago von wildwachsenden Pflanzen gewonnen. Die =Darstellung der Sagostärke= ist sehr primitiv (Fig. 63 u. 64, vgl. auch I, Fig. 139). Von den Eingeborenen wird, sobald eine _Sagopalme_ gefunden wurde, zunächst festgestellt, ob dieselbe etwa bereits blüht oder gar Früchte trägt. In diesem Falle ist sie für die Sagogewinnung nicht mehr tauglich. Blüht sie nicht, so stellt man fest, ob sie «klopbaar», d. h. so mit Stärke gefüllt ist, daß die Ausbeutung lohnt (der Eingeborene unterscheidet hier fünf Grade der «Reife»). Ist der Baum als «klopbaar» befunden, was zwischen dem fünften und zehnten Jahre der Fall zu sein pflegt, so wird er gefällt und der Stamm, nachdem Blätter und Scheiden entfernt, in mehrere Stücke zerschnitten und diese in der Mitte aufgespalten. Nun setzt sich ein Mann rittlings auf den gespaltenen Stamm und klopft mit einem axtartigen Instrumente (stani paluk, pemaluk), das an der Spitze bisweilen einen Stein trägt, oder auch wohl mit den Füßen, das ganze innere Gewebe (sog. «Mark», Grundgewebe nebst Gefäßbündeln) in Flocken heraus (Fig. 63). Diese werden nun, wenn Wasser in der Nähe ist, was, da die Sagopalmen Sumpfpflanzen sind, meist der Fall ist, an Ort und Stelle weiter verarbeitet oder in aus Sagoblattscheiden gebildeten Körben (timbil) zu einem Wasser getragen. Hier erfolgt die Auswaschung nun in der Weise, daß man über einem ausgehöhlten Sagostamme oder einem Kahne oder einer aus Rinde oder Sagoblattscheiden hergestellten langen, auf Stützen ruhenden Rinne am einen Ende ein eigenartiges «Filter» anbringt. Das zerfaserte «Mark» wird auf eine durch einen gebogenen Rottan- oder Bambu-Stecken straff gespannte beutelartige Seihvorrichtung, die oft aus der zerfaserten Blattscheide der _Cocospalme_ besteht, geschüttet und auf dieser durch Aufgießen von Wasser und Umrühren ausgewaschen (Fig. 64). Der eine hält die Seihvorrichtung, der andere gießt. Die Stärkemilch läuft für gewöhnlich nicht direkt in die lange Rinne, sondern erst in eine meist aus einer Blattscheide gebildete kurze und breite Rinne, die bisweilen unten eine Siebvorrichtung besitzt. Durch diese einfache oder doppelte Seihung werden die meisten Fasern zurückgehalten -- sie werden verfüttert -- und auf dem Boden der langen Rinne, die durch Fasern der _Sago_blätter, der _Cajuput_rinde oder _Aren_palme gedichtet wird, setzt sich das Stärkemehl ziemlich rein ab. Das Wasser fließt über den Rand der Rinne oder am Ende (durch ein weiteres Sieb) ab und wird schließlich ganz abgelassen. 800 kg Markmasse liefern 320-350 kg Sagomehl. Das Rohsagomehl wird dann in Massen von c. 30 Pfund in Blätter gewickelt und diese mit Rottan verschnürt oder in eigenartigen aus Sagopalmblättern gebildeten Körben (tuman, tamang) als Rohsago (sagumanta, lapia-manta) auf den Markt gebracht. Aus ihm werden die Hauptspeisen der Molukken dargestellt (~Warburg~). In Sumatra bringt man den Rohsago in Zuckerhutform in den Handel. Ein Baum kann 150-300 kg marktfähige Ware produzieren. [Illustration: Fig. 63 +Memukul Sagu+, d. h. Herausklopfen des Sagomarkes. [Nach der Zeichnung eines Malaien (+Tupamahu+) in Bull. Kol. Museum Haarlem Nr. 44.]] In Süd- und West-Neu-Guinea ist die Bereitung des Sago ähnlich wie auf den Molukken, auf Celebes, auf dem Lingga-Archipel und den Key-Inseln (siehe I, Fig. 139). Sonderliche Reinlichkeit scheint nirgends beobachtet zu werden, wie z. B. ~Martin~ von der Bereitung auf Ceram direkt betont. In Zentral-Borneo wird das «Mark» mit den Füßen getreten, während man Wasser darüberlaufen läßt. In Brit. Nord-Borneo wird sowohl _Metroxylon Sagu_ wie die dornige Sagopalme _M. Rumphii_ benutzt, letztere ist kleiner, ist mit Dornen bewehrt, wird daher von wilden Schweinen weniger zerstört. Sie geht weiter ostwärts und ist namentlich in Neu Guinea und der Moluccen verbreitet. In Singapore, wo besonders _Sagus Rumphii_ und _laevis_ kultiviert werden, werden die Stämme in 4-6 Fuß lange Stücke zerschnitten, dann geschält und mit einer primitiven Raspel geraspelt. Auch in Nordost-Sumatra wird das Stamminnere geraspelt. Die so erhaltenen Flocken werden durch Treten und Spülen mit fließendem Wasser von ihrer Stärke befreit; die Stärkemilch durch eine lange Rinne in ein längliches Becken geleitet. Die abgesetzte Rohstärke geht in die Sagofabriken. Hier wird sie zunächst durch wiederholtes Aufschlemmen und Durchseihen der Stärkemilch durch Tücher von den Fasern (Sagorefuse) befreit, dann die Stärkemilch wiederholt durch lange, am Ende durch Tücher geschlossene Rinnen geschickt, das Wasser abgelassen und die Stärke in Blöcken herausgenommen. [Illustration: Fig. 64. +Meramasdan menapis sagu+, d. h. Kneten und Auswaschen des Rohsagomehls. [Nach der Zeichnung eines Malaien (+Tupamahu+) in Bull. Kol. Mus. Haarlem Nr. 44.]] Sagomehl kann das ganze Jahr hindurch gewonnen werden. Der für den Außenhandel bestimmte Rohsago geht meist nach Singapore, dem eigentlichen Sagohafen der Welt, wohin er vom März bis Oktober gebracht wird. Hier (dann auch in Sarawak und Brunei, wo ebenfalls Fabriken bestehen) wird er, da er noch ziemlich viel Zellfragmente enthält, durch Schlämmen gereinigt (Sago flour, Sagomehl) oder gereinigt und granuliert, geperlt (Pearl Sago, Perlsago). Das Geschäft liegt fast ganz in den Händen von Chinesen. Das Perlen des Sago geschieht in der Weise, daß man die halbgetrocknete, durch Schlämmen eigener Art (Beschreibung bei ~Semler~) gereinigte Stärke zerbricht, die Stücke siebt und in ein Tuch bringt, das an zwei von der Decke herabhängenden Seilen befestigt ist (I, Fig. 142). Die Arbeiter führen die Stärke durch geschicktes, viel Übung erforderndes Rütteln des nur halb gefüllten Tuches in Kügelchen (Perlen) verschiedener Größe über. Diese werden durch Sortiersiebe nach der Größe getrennt und dann auf flachen heißen Schalen von ¾ m Durchmesser, die bisweilen mit einem vegetabilischen Fett bestrichen werden, unter Rühren mit einem hölzernen Instrumente mit gebogener Kante gerollt (gedämpft), dann nochmals durch Siebe sortiert und getrocknet. Durch das Erhitzen werden die Körner oberflächlich verkleistert. Manche Fabriken perlen nur ohne zu rollen. Meist werden kleinere Kügelchen von 1-1,5 mm (Small Pearl Sago) und große von 2,5-3 mm hergestellt. Bisweilen wird der Sago ein zweites Mal «geröstet». Der Perlsago aus Molukkensago ist immer rötlich. Auch durch Zuckerkouleur bräunlich gefärbter Sago ist im Handel, früher auch ziegelroter [durch Bolus (?) gefärbter]. =Handel.= Nach Singapore kam 1906 Rohsago besonders aus Sarawak (Nordwest-Borneo), dann aus Sumatra und Labuan und dem Niederl. Archipel, weniger aus Niederl. Borneo, Johore und Brit. Nord-Borneo, am wenigsten aus Pinang und Rioux. Die Molukken verbrauchen ihren Sago fast ganz als Nahrungsmittel. 1908 kamen nach Singapore: +Gereinigter Sago+ in kg: aus Djambi (Sumatra) 2600 kg, Bengkalis (Sumatra) 503236, Rioux 648580, Indragiri (Sumatra) 11852, Westborneo 3629800, Celebes 7316. +Ungereinigter, roher Sago+: Aus Ostsumatra 20500, Rioux 3461876, Indragiri 7430238, Westborneo 694398, Süd- und Ostborneo 14508, Celebes 390352 kg. Der Wert der Ausfuhr von Sagomehl aus +Singapore+ betrug 1906: 2030082 Singaporedollars (= M 2,20), von Pearl Sago (und Rohsago): 365769 Doll. Es wurden 715836 Pikuls Sagomehl und 77381 Pikuls Pearl Sago exportiert. Der meiste ging nach London, viel auch nach Italien. +Hamburg+ importierte 1908 33703 dz _Sago_ und _Tapioka_ (s. oben S. 173). Davon kamen 16077 von Singapore, 13877 von Brit. Ostindien, 2322 von Nied. Ostindien, geringere Mengen aus China und Brasilien. +Deutschland+ importierte 1909 «Pfeilwurzelmehl (Arrowroot), Sago und Sagomehl, Madioka und Sagoersatzstoffe»: 3654 dz aus Brit. Indien und 8616 dz aus Brit. Malacca. +Frankreich+ importierte 1908 «Sagou, Salep et fécules exotiques» 117844 Qintal. besonders aus Englisch- und Niederländ.-Indien, dann auch (30265) von Réunion und Brasilien. Sago und Sagomehl kommt in Kisten und Säcken à 85 kg in den Handel. =Anatomie.= Die Stärkekörner des Sago flour, der ein weißes oder grauweißes bzw. rötlichweißes Pulver bildet, sind entweder einfach oder zusammengesetzt. Die zusammengesetzten zeigen ein großes Hauptkorn von 30-68 (selten bis 80) mik Länge, dem meist an kurzen Ausstülpungen 1-5 (meist 2-3) Nebenkörner von meist 10-20 mik Durchmesser angesetzt sind. In der Handelsstärke sind die Nebenkörner meist abgefallen und man sieht am Hauptkorn nur die meist ebenen Ansatzstellen (Fig. 65). Das Hauptkorn ist sehr mannigfach gestaltet, länglich, trapezförmig oder dreieckig-rhombisch, stets mehr oder weniger rundlich, nicht abgeplattet. Der Kern liegt exzentrisch (meist ½-¼) und ist oft von einem ein- oder mehrstrahligen Stern durchzogen. Die Nebenkörner sind halbkugelig, mützen- oder tiaraförmig. Als +Nebenform+ kommen einfache, meist sehr große, 50-65 mik. messende, eirunde oder gestreckt oval-längliche mit exzentrischem Kern oder zwei- bis mehrstrahliger Kernspalte vor. Im geperlten und gerollten (s. oben) Sago findet man die gleichen Formen, daneben aber Körner in allen Stadien der Verkleisterung. Die Verkleisterung beginnt in den inneren, weicheren Schichten. In den ersten Stadien der Verkleisterung ist oft eine große, nach außen durch einen Kanal sich öffnende Zentralhöhle sichtbar, im letzten bilden die Körner einen unregelmäßig wulstigen Ballen mit zarter Kontur (Fig. 65, a-c). Der nur geperlte, nicht gerollte Sago zeigt diese verkleisterten Körner nicht. Er ist rein weiß, während der andere partiell hyalin erscheint. Bisweilen findet man im Sagomehl auch Körner in allen Stadien der Korrosion. Es scheint dies Stärke zu sein, die von Stämmen gewonnen wurde, die schon zu sehr der Blütenbildung sich näherten, bei denen also bereits die Stärke in Auflösung begriffen war. Unter dem Namen «Sago» kommen aber noch einige andere Produkte in den Handel: der deutsche oder französische (indigène) Sago aus Kartoffel- oder Weizenstärke, die Tapioca aus Maniok, der Portlandsago aus _Arum_stärke und der brasilianische Sago aus Batatenstärke. Diese alle sind leicht an dem Bau der Stärkekörner zu erkennen. =Eigenschaften.= +Sagostärke+ enthält im Durchschnitt 81,51% Stärke, 15,85% Wasser, 2,16% Stickstoffsubstanz und 0,48% Asche; Real Pearl Sago: 83,60% Stärke und 15,8% Wasser; Sago Ia Korrels sogar 84,9% Stärke. +Sagostärke+ beginnt bei 66,2° zu verkleistern und ist bei 70° vollständig verkleistert. =Geschichte.= Als die Europäer Südostasien betraten, fanden sie bereits das Mehl der Sagopalme als wichtigstes Nahrungsmittel in Gebrauch. ~Marco Polo~ (I, S. 726) beschreibt die sumatranische Sagopalme und die Gewinnung des Sago, ähnlich wie sie noch heute betrieben wird und auch ~Odorico di Porto Maggiore~ (I, S. 726) gedenkt der «Bäume, die Mehl tragen». Auch ~Wallace~ beschreibt die Sagobereitung. Sie wird in Singapore seit 1819 von Chinesen betrieben. [Illustration: Fig. 65. _Sagostärke_ mit verschiedenen Verkleisterungsformen. c ganz verkleistert. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Lit.= ~Rottboell~ in Nye Samling af K. Danske Vidensk. Selsk. Schr. 1783 p. 527. -- ~Griffith~, Palms of East India. -- +Abbild.+: ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants T. 278 und ~Blume~, Rumphia II, t. 126 u. 127. -- ~Valentini~, Museum muscorum (I, S. 914). -- ~Mohnike~, Blicke auf d. Pflanz.- u. Tierleb. in den Niederl. Malaienländ. 1883. -- ~Warburg~ in ~Tschirch~, Ind. Heil- und Nutzpflanzen (dort auch Abbild.). -- ~Wiesner~, Rohstoffe (dort die ältere Lit.). -- Am ausführlichsten (mit zahlr. Abbild.) +Sagoe en Sagoepalmen+, Bulletin 44 des Koloniaal Museums Haarlem 1909 (mit Beitr. von ~van Oljen~, ~Fortgens~ und [malaiisch] ~Tupamahu~). -- ~Veth~, Bijdragen tot de kennis van de voornaamste voortbrengselen van Nederl. Indie. IV. De Sagoe 1866. -- ~Semler~, Tropische Agrikultur. -- ~de Clercq~, Nieuw plantk. Woordenb. v. Ned. Ind. 1909. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Tschirch~, Artikel Arrowroot in Realenzyklop. d. ges. Pharm. 2. Andere Palmen- (und Cycadeen-)Stärke. Ebenfalls einen Sago bzw. ein sagoähnliches Mehl liefern (jedoch nur in beschränktem Maße) die Cycadeen: =Cycas circinalis= (paku adji) auf den Salomonsinseln, ferner: _Cycas revoluta_ in Japan und China, _Zamia integrifolia_ (Koonti) in Florida, _Z. spiralis_ in Australien, _Z. media_ in Ostindien, _Z. pumila_, _angustifolia_ und _tenuis_ in Westindien. Dann die Palmen: =Arenga saccharifera= ~Labill.~ (Zuckerpalme, Aren, s. S. 128) auf den Sangirinseln, auf Celebes und Ceylon, _Eugeissona tristis_ (bulang nanga), _Caryota purpuracea_ (bulang talang), _Caryota urens._ L. in Mysore, _C. Rumphiana_ ~Mart.~ auf den Molukken, _Borassus flabelliformis_ L. (Palmyrapalme, in Ostindien, Ceylon) und _B. tunicata_ ~Lour.~, _Guilielma granatensis_ ~Karst.~ in Neugranada und Venezuela, sowie einige _Cocos_-, _Oreodoxa_-, _Phoenix_- und _Chamaerops_-Arten (Nordamerika); ferner _Raphia vinifera_ und _Medemia nobilis_ auf Madagaskar u. and. Die Stärke der _Palmyra_palme ist der echten Sagostärke ähnlich, weicht aber doch in einigen Punkten ab. Namentlich sind hoch zusammengesetzte Körner hier häufiger (Näheres bei ~Wiesner~). ~Louis Planchon~ und ~Juillet~ bilden a. a. O. die Stärke von _Borassus flabelliformis_, _Caryota urens_, _Phoenix_ und anderen Palmen und Cycadeen ab. III. Stärke aus dem Endosperm von Samen. 1. Amylum tritici. Weizenstärke, -- amidon de blé ou froment (franz.) -- wheat starch (engl.) -- amido di frumento (ital.) -- tarwe zetmeel (holl.) -- hwetestärkelse (schwed.). -- vehnä tärkkelys (fin.) -- búza keményitő (ung.) -- σιτάμυλον (n.-griech.). =Stammpflanze: Triticum vulgare= ~Vill.~, Hist. pl. Dauph. II, 153 (T. sativum ~Lam.~ Encyc. meth. 1787) und Verwandte. =Etym.= «Triticum quod tritum e spicis» (~Varro~) -- von tero, trivi, tritum = reiben (mahlen) oder terere = treten (austreten, ausdreschen), -- πυρός (von πῦρ s. Geschichte) wegen der feuergelben Farbe der Früchte. Ein Weizenfeld erscheint im Herbst von Weitem gesehen rotorange. -- blé (franz.), biada (ital.) von spätlatein. bladum = Korn, oder +angels.+ blaed = Frucht, oder +kelt.+ blawd = Mehl. -- froment aus frumentum. -- +Weizen+ im got.: hwaiteis, germ.: hwaitja, ahd.: weizzi, mhd.: weitze, von hwîta = weiß, wegen der Farbe des Mehls. Davon auch engl. (common) wheat. Der Weizen heißt im Ägyptischen swt (die hieroglyphischen Zeichen, I, S. 470), koptisch suo; daraus entstand das griechische σῖτος als Lehnwort. =Systemat. Stellung.= +Gramineae+, Hordeae. ~Körnicke~ teilt die Weizensorten in folgende drei Gruppen: 1. +Triticum vulgare+ ~Vill~. Dazu _T. vulg._ (im engeren Sinne), _T. compactum_ ~Horst~ (Zwergweizen) _T. turgidum_ L. (englischer Weizen), _T. durum_ ~Desf.~ (Hartweizen). 2. +Triticum polonicum.+ 3. +Triticum monococcum.+ Abbild. der Ähren in ~Mull-Guyot~, Encyclop. d’Agriculture (einige auch bei ~Hackel~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam.). =Beschreibung.= _Triticum vulgare_ besitzt einen langen, schlanken, oberwärts hohlen Stengel und eine lange dichte, deutlich vierkantige Ähre. Die parallel der Spindel zusammengedrückten +Ährchen+ sind 4(-7)blütig, 3-4 Blüten sind fruchtbar. Sie werden an der Basis von 2 großen, bauchigen, kahnartigen, derben, gegenüberstehenden, in eine kurze gerade Stachelspitze (Granne) auslaufenden glumae (Hüllspelzen) bescheidet (Involukrum der Partialinfloreszenz). Jede der Blüten ist von 2 Paleis (Deckspelzen) behüllt. Die Palea inferior ist kahnartig bauchig, begrannt, die Palea superior ist zweikielig, auf der Rückenseite kahnartig vertieft, unbegrannt. Die Weizenfrucht fällt aus der Paleis heraus. Sie zeigt auf der einen Seite eine tiefe Rinne und an der Spitze einen «Bart», aus ziemlich stark verdickten Haaren bestehend. An der Basis liegt seitlich der kleine Keimling und sein Scutellum. Der Bau der Fruchtschale ist in ~Tschirch-Oesterle~ Anatom. Atlas beschrieben. Die Aleuronschicht des Samens ist einreihig. Der Kleber findet sich in dem Stärkeendosperm neben den Stärkekörnern. Die Keime enthalten 15,5% Öl (~de Negri~). _Triticum vulgare_ ändert ab: _var. aestivum_ (Sommerweizen), Ähre etwas locker, Deckspelzen nicht begrannt, gleich den Hüllspelzen sammetartig behaart oder kahl und _var. hibernum_ (Winterweizen), Ähre sehr dicht, Deckspelzen lang begrannt. Außer _Triticum vulgare_ wird oft auch _T. Spelta_ (Spelz, Dinkel, Korn) gebaut. Ährchen mit 5 Blüten, von denen die drei unteren fruchtbar. In Gebirgsgegenden baut man _T. monococcum_ (Einkorn) mit dreiblütigen Ährchen, bei denen nur die unterste Blüte fruchtbar ist. Selten kultiviert werden _T. dicoccum_ (Emmer) mit vierblütigen Ährchen, bei denen die zwei unteren Blüten fruchtbar. _T. polonicum_ (polnischer Weizen), mit nickender Ähre, _T. durum_ mit knorpeligen Hüll- und Deckspelzen und _T. turgidum_. Die Weizenernte der Erde wird pro Jahr auf 190 Milliarden engl. Pfund geschätzt. Die Frucht des Weizen enthält Rohrzucker (~E. Schulze~). Die Weizenkleie liefert bei der Hydrolyse Arabinose und Xylose (~Schulze~, ~Tollens~). =Pathologie.= Prof. ~Ed. Fischer~ berichtet über die pflanzlichen Schädlinge: Zunächst gibt es eine Reihe von parasitischen Pilzen, welche Stengel, Blätter und auch Spelzen befallen und dadurch auch auf den Körnerertrag ungünstig wirken, so die Rostpilze _Puccinia triticina_, _glumarum_, _graminis_, der Mehltaupilz _Erysiphe graminis_, dann _Melanospora damnosa_ (~Sacc.~) ~Lindau~, ~Ophiobolus graminis~ ~Sacc.~, _Septoria graminum_ ~Desm.~ u. andere. Die Körner selber werden namentlich von Brandpilzen zerstört, unter denen _Tilletia Tritici_ (~Bjerk.~) ~Wint.~ und _Tilletia laevis_ ~Kühn~ in erster Linie stehen. Es rufen dieselben den sog. +Steinbrand+, +Stink-+ oder +Schmierbrand+ des Weizens hervor. Äußerlich unterscheiden sich die erkrankten Ähren und die befallenen Körner wenig von den normalen, aber beim Öffnen der letzteren findet man sie vollständig von der schwarzen, nach Heringslake riechenden Sporenmasse des Parasiten erfüllt. Die ganze Blüte wird zerstört durch den Flugbrand _Ustilago Tritici_ (~Pers.~) ~Jens.~ In einer von diesem Pilz befallenen Ähre tritt zwischen den Spelzen der schwarze Sporenstaub sehr auffällig zutage. In dem Fruchtknoten des Weizens entwickelt sich ferner das Mutterkorn _Claviceps purpurea_ (s. den betreffenden Abschnitt), wiewohl es hier weniger häufig angetroffen wird als auf dem Roggen. -- Eine Deformation der Ähren bringt die Peronosporee _Sclerospora macrospora_ ~Sacc.~ hervor. Über tierische Schädlinge des Weizens berichtet ~Israel~: 1. +Käfer+: _Anisoplia fruticola_ ~Fabr.~, _Anisoplia agricola_ ~Fabr.~ Larven im Boden an Graswurzeln, Käfer an den Blüten, die Organe der Befruchtung zerstörend. _Lema melanopa_ L., _Lema cyanella_ L. Beide Käfer sind dem Volke als Getreidehähnchen bekannt. Die Larven dieser Käfer sind meist mit ihrem Kote bedeckt. Sie leben an den Blättern des Weizens, lange Streifen aus denselben herausfressend. _Agriotes lineatus_ L. Larve an den Wurzeln von Getreide. Oft schädlich. 2. +Falter+: _Hadena exclamationis_ L., _Hadena tritici_ L. Die Raupen dieser gemeinen Eulen werden, wenn sie in Massen auftreten, den Getreidefeldern verderblich. Sie sind im übrigen _polyphag_. 3. +Fliegen+: An _Triticum_ leben auch mehrere _Cecidomyia_arten, z. B. _C. tritici_, _destructor_, _flava_, _aurantiaca_ und andere. 4. +Gradflügler+: _Thrips frumentarius_ ~Beling~. Dieser Blasenfuß lebt oft gesellig an diversen Cerealien und schädigt besonders die sich entfaltenden Ährchen, welche samt den Spelzen von der gemeinsamen Spindel abfallen. 5. +Schnabelkerfe+: _Aphis cerealis_ ~Kalt~. Diese (grüne Kornlaus vom Volke genannte) Blattlaus lebt an den Ähren sehr vieler Gramineen, auch an Roggen, Weizen, Gerste und Rispengräsern (Hafer usw.). _Tylenchus tritici_, das sehr gefährliche Weizenälchen, ist sehr resistent. Es kann in Glycerin leben und wird von Belladonna, Morphin, Atropin, Curare und Strychnin nicht getötet. Über die +Kornmotte+ (I, Fig. 333) vgl. I, S. 375 u. 383. =Darstellung der Weizenstärke.= Weizenstärke wird in größtem Maßstabe in Europa (und Amerika) dargestellt, in Deutschland besonders in der Gegend von Halle a. S. -- meist aus den Früchten von _Triticum vulgare_, aber auch _T. durum_ und _turgidum_ (in Langenau, Württemberg) und _T. Spelta_ (Kernenstärke, s. w. u.) werden dazu benutzt. Entweder wird Weizenmehl auf Stärke und Kleber verarbeitet, oder man geht von dem ganzen Korn aus, zerquetscht dieses und verarbeitet den Brei auf Kleber und Stärke oder letztere allein. Geht man vom Mehle aus (~Martin~sche Methode), so wird dieses in einer Teigknetmaschine mit Wasser zu einer steifen Masse angemacht und diese in Sieben mit Wasser so lange ausgewaschen, bis dieses nicht mehr milchig abläuft. Das «Stärkewasser» läßt man in dem Absatzbottich schwach gären, um die letzten Reste des Klebers zu zerstören, läßt dann das Wasser ab und reinigt dann die Stärke durch wiederholtes Waschen und Absetzenlassen. Bei diesem Verfahren bleibt der größte Teil des sehr wertvollen Klebers auf den Sieben zurück und wird auf Futtermittel (Klebermehl, Kleberkörner) verarbeitet. Geht man von der unvermahlenen Frucht aus, so wird diese zunächst (im Quellstein, Quellstock) in Wasser aufgeweicht, dann zwischen Walzen zerquetscht, der Brei (das «Gut») mit Wasser angerührt und im Gutbottich (14 Tage bei 20°) gären gelassen. Hierbei wird der Kleber durch saure (faulige) Gärung zerstört und die Stärke fast vollständig abgeschieden (reif). Die hierbei erhaltene Masse wird, nachdem man das «Sauerwasser» abgelassen, in Waschtrommeln oder Tretmühlen gebracht, die aus diesen abfließende Stärkemilch wird in Bottichen absetzen gelassen und dann abgezogen (Sauerverfahren von Halle). Um den Verlust des Klebers zu vermeiden, werden die eingequollenen Weizenkörner bisweilen (Elsässer Methode) geschrotet, zerquetscht und auf Sieben, die die Hülsen und den Kleber zurückhalten, ausgewaschen. Die Waschwässer (Rohstärkemilch) läßt man in Absatzbottichen unter Zusatz von Sauerwasser sauer werden, wodurch die Reste des Klebers gelöst werden, die Stärke wird dann durch Waschen gereinigt. Der auf den Sieben zurückbleibende Kleber, der noch viel Hülsen und Stärke enthält, wird entweder auf menschliche Nahrungs- oder Futtermittel verarbeitet, oder dient als Klebe-, Steifungs- oder Verdickungsmittel. Bisweilen werden bei der Reinigung Ätzkali, Ammoniak oder Schwefelsäure benutzt. Bei der Herstellung der besten Handelssorten werden vor dem Trocknen die oberen Schichten des Stärkesedimentes abgeschabt. Das Verfahren aus Mehl liefert c. 45%, das Verfahren aus dem Korn mit Gärung c. 60%, ohne Gärung c. 52% der im Korn enthaltenen Stärkemenge. In einigen Gegenden wird Weizenstärke auch noch im kleinen in +Hausindustrie+ dargestellt, so z. B. wird in Tägerig, im Kanton Aargau, aus «Chorn» (_Trit. Spelta_) sog. +Ammelemähl+ (Ammermehl, Kernenstärke) in ziemlich primitiver Weise noch jetzt bereitet. Die Industrie reicht dort jedenfalls bis 1678 zurück und ehedem wurde fast in jedem Hause «g’ammelemählet». Das interessante Verfahren ist (von Abbildungen begleitet) ausführlich beschrieben von ~Meier~, Tägliger Ammelemähl (in Die Schweiz 1908, 105). =Handel.= Die Weizenstärke kommt im Handel in sehr verschiedener Form und Güte vor. Entweder findet sie sich in größeren oder kleineren unregelmäßigen Stücken (Bröckelstärke, Schäfchen) oder mannigfach, meist zu Stengeln, Stäbchen oder scharfkantigen Stücken geformt (Tafel-, Strahlen-, Kristall-, Stangen-, Stengel-, Zettelstärke) oder endlich als Pulver. Die Feinheit wird durch Bezeichnungen, wie feinste Tulleanglais, Musselinstärke, feinste weiße Patentstärke, mittelfeine und ordinäre Stärke abgestuft. =Anatomie.= Die Stärkekörner der Weizenstärke bilden zwei ziemlich scharf geschiedene, durch Mittelformen wenig miteinander verbundene Formen: Großkörner und Kleinkörner (Fig. 66). Die +Großkörner+ sind dick linsenförmig, von der Fläche betrachtet rund, aber sehr selten streng kreisförmig, bisweilen zum Oval übergehend oder mit geschweiften Umrißlinien, in der Seitenansicht länglich elliptisch mit einem Zentralspalt. Schichtung fehlt. Der zentral gelegene Kern ist undeutlich. Die Größe variiert. Die größten messen 30-38, ja sogar 45 mik. und mehr, die kleineren 15-25 mik. Die Großkörner der _Spelta_stärke sind etwas kleiner, meist 20-25 mik. Die +Kleinkörner+ sind meist rundlich oder oval, seltener polyedrisch oder in ein Spitzchen auslaufend. Die Größe beträgt 2-9,5, meist 6-7 mik. [Illustration: Fig. 66. _Weizenstärke._ x Körner von der Seite. y zusammengesetzte Körner. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Als +Nebenform+ finden sich zusammengesetzte Körner mit 2-25 Teilkörnern, sowie einige Zwischenformen der Groß- und Kleinkörner, auch wohl zusammengesetzte Großkörner oder sackartige Formen. =Chemie.= Weizenstärke enthält durchschnittlich 83 (82-85)% Stärke, 13 (12-16)% Wasser, 1,9% (die kleberarme nur 0,1-0,15%) Stickstoffsubstanz, 0,35 (0,1-0,5)% Asche, 0,31% (die schlechteren Sorten 1-1,5%) Rohfaser und 0,19% Fett. Weizenstärke reagiert schwach sauer (Milchsäure). ~Soxhlet~ fand (vor längerer Zeit) in Weizenstärke im Durchschnitt 0,141% freie Säure auf Milchsäurehydrat berechnet. ~Saare~ fand neuerdings den Säuregrad zumeist 1-1,4 (= ccm N/10 Natron). ~Patch~ beobachtete (1900) auch alkalische Reaktion. Bei 62,5° sind die Körner der Weizenstärke noch wohl erhalten, die der Roggenstärke aber schon verkleistert (~Wittmarck~). Der Weizenstärkekleister ist trübe, geruch- und geschmacklos. =Prüfung.= Die Prüfung erfolgt durch das Mikroskop. Die Weizenstärke muß auf Chloroform schwimmen. Mit kaltem Wasser angerieben darf das Filtrat mit Jod keine Bläuung geben, sonst ist Stärkeabkochung (zur Stengelformung) zugesetzt. Die saure Reaktion darf nur sehr schwach sein. Der Aschengehalt darf 0,5% nicht übersteigen (~Hauke~). =Anwendung.= Die Weizenstärke ist jetzt die in der Pharmazie am meisten angewendete (s. S. 157). Viele sog. Kraftmehle, Kindermehle, Amidons enthalten Weizenstärke (oder Weizenmehl) oder bestehen daraus. Ebenso Semolina, Semoule d’Igname, Nevilles Patent flour of lentills, Bullocks Semula, Baby food u. and. =Geschichte.= Während ~Buschan~ die Cerealien nur bis zur neolithischen Periode zurückverfolgen konnte, haben die Ausgrabungen von ~Piette~ gezeigt, daß schon der paläolithische Mensch im südlichen Frankreich in der älteren glyptischen Periode des Renntierzeitalters Cerealien kannte und wohl auch in roher Weise kultivierte (~Hoops~). Aus der Übergangszeit von der paläolithischen zur neolithischen Periode, also lange vor der Epoche der polierten Steinäxte, ist kultivierter Weizen und sind Getreidemühlen (von ~Piette~) sicher nachgewiesen. Auch nach ~Solms-Laubach~ ist die Kultur der Getreidepflanzen unendlich viel älter als man gewöhnlich annimmt. Wir wissen jetzt, «daß in Zentralasien schon Getreide gebaut wurde, als Sibirien und die turanischen Steppen noch vom Meere bedeckt waren und die Gobi sich eben aus einem Binnenmeere in eine Wüste verwandelte, daß die Weizenarten von Mittelasien aus sich über Persien und Nordafrika schon zur Eiszeit bis in das Mittelmeergebiet verbreiteten und schon vor dem Ende der pleistocänen Epoche bis nach Spanien und Südfrankreich gelangten». Auch in Mittel- und Nordeuropa reicht der Getreidebau bis in die neolithische Periode zurück. Die ältesten Getreidearten waren hier Weizen, Gerste und Hirse. _Triticum vulgare_, _T. dicoccum_ und _monococcum_, _Hordeum hexastichum_ und _distichum_ und _Panicum miliaceum_ wurden, wie Funde in Pfahlbauten, Aschengruben, Feuerherdresten usw. zeigen, schon zur Steinzeit dort überall gebaut. Das älteste Getreide der Indogermanen war die Gerste (~Hoops~). In Troja fand ~Schliemann~ Früchte von _Tr. monococcum_. Im alten Indien wurde hauptsächlich Reis (vrībíṣ), dann Weizen (godhūmas = Barbarenessen) und Gerste (yávas) gebaut (~Lassen~). Auch in China ist Weizenbau uralt (vgl. I, S. 522). Die Urform des Weizen ist entweder _Triticum Spelta_ oder _T. dicoccum._ Weizen (swt, beti, bet-t, bet) und zwar _Triticum vulgare_ ~Vill.~ (begrannten und unbegrannten) und wohl auch _T. dicoccum_ ~Scbr.~ und auch _T. turgidum_ L. wurde bereits vor 4000 Jahren auch in Ägypten in großem Stile angebaut. Die Weizenernte in allen ihren Phasen ist ausführlich dargestellt in einem Grabe von Chum el Achmar, an der Ostwand des Ti-Grabes in Saqqarah (III. Jahrtaus. n. Chr.) u. and. Ein 3500-4000 Jahre alter Ziegel enthält Weizenkörner. Solche sind auch in zahlreichen Gräbern gefunden worden. Weizenähren tragen die Herrscher oft auf den bildlichen Darstellungen in der Hand. Auch auf unzähligen Bildwerken späterer Zeit finden wir Getreideähren (oft mit Mohnköpfen vergesellschaftet, vgl. das Mekonopeignion I, S. 926) in den Händen der Götter und Fürsten. Die ὄλυρα der Griechen (~Herodot~) war wohl, wie der far der Römer, _Triticum dicoccum_, der Emmer (~Buschan~, ~Schweinfurth~). Der πυρός des ~Dioskurides~, der von der arzneilichen Anwendung des Weizenmehles viel zu berichten weiß, war wohl _T. vulgare_. Die ζειά des ~Dioskurides~ war wohl _T. dicoccum_ (δικόκκος) und _T. monococcum_ (ἅπλη). ~Hippokrates~ bediente sich gern des Weizens. Weizenstärke tritt auch als Appretur schon auf frühmittelalterlichen Papieren sowohl als Kleister, wie in Substanz aufgewalzt auf (~Wiesner~, ~Kobert~). =Lit.= ~Körnicke~, Getreidebau. -- Abbild. in Les grandes cultures du monde. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Moeller~, Mikroskop. d. Nahr. u. Genußm. 2 Aufl. (dort weitere Lit.). -- Analysen in ~König~, Nahr. u. Genußm. -- ~de Negri~, Chem. Zeit. 1898. -- ~Wönig~, Pflanz. im alt. Ägypt. -- ~Hoops~, Waldbäume u. Kulturpfl. im german. Altert. 1905. -- ~Solms-Laubach~, Weizen und Tulpe u. deren Geschichte. Leipzig 1899. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botan. 1895. -- ~Piette~, L’anthropologie. 1896. -- ~Lassen~, Ind. Altertumskunde. -- ~Kobert~, Zeitschr. f. angew. Chem. 1910, 1250. -- Abbild. d. Pflanze ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants t. 294. 2. Amylum Oryzae. Reisstärke, -- amidon de Riz (fr.) -- arroz (sp.) -- rice starch (engl.) -- amido di riso (ital.) -- rijstzetmeel (holl.) -- riisi tärkkelys (fin.) -- rizskeményitő (ung.) ἄμυλον ορύζης (n.-gr.). =Stammpflanze=: =Oryza sativa= L. (~Linné~ spec. pl. I, 333) mit den Kulturvarietäten: _montana_ (Bergreis), _glutinosa_ (Klebreis), _praecox_ (frühreif. Reis), _perennis_ (ausdauernd. Reis), _mutica_ (unbegrannter Reis), _minuta_ (kleiner Reis), _coarctata_ (gedrungenblüt. Reis). Im Museum in Calcutta finden sich Proben von über 1100 Spielarten. =Etym.= ὄρυζα (neben ὄρυζον) ist von +sansc.+ vrīhíṣ, +tam.+ arishi abzuleiten. Über das +altpers.+ brîzi und das arabische arruz (arrozz) gelangte das Wort in die europäischen Sprachen, in das Spanische, wie so oft, durch Agglutination des arabischen Artikels, in das Deutsche über +ital.+ riso. Im Sansc. heißt der Reis auch dhánya (d. h. Erhalter des Menschengeschlechts) (hind.: dhán, chával). =Systemat. Stellung.= Gramineae Oryzeae. [Illustration: Fig. 67. Die punktierten Stellen bezeichnen die Länder, in denen _Reis_kultur getrieben wird. ....... Polargrenze der _Mais_kultur. ---------------- Verbreitungsgebiet der _Sago_palme. [Vgl. auch +Langhans+, Kleiner Handelsatlas.]] =Vorkommen und Kultur.= Der Reis ist im warmen Südostasien, besonders in China und Indien, ferner im tropischen Australien und in Westafrika heimisch. Er verlangt ein warmes Klima, gedeiht aber noch in der Lombardei und Spanien, am besten freilich in tropischem Klima. Er verlangt viel Wasser. Die Kultur des _Reis_ (vgl. Fig. 67) ist in China uralt und noch jetzt über die ganze südliche Hälfte des Reiches sowie Cochinchina und Birma verbreitet. Die Sage berichtet, daß der Kaiser ~Shen Nung~, den man auf 2800 n. Chr. ansetzt (die Datierung ist aber sicher falsch), bei einer Zeremonie, bei welcher 5 Arten Getreide gepflanzt werden mußten, den Reis pflanzte, während die anderen 4 von den Prinzen gepflanzt wurden. Aber es ist wahrscheinlich, daß China die Pflanze vom Südwesten her erhielt, wo jetzt der beste Reis der Erde produziert wird (~Semler~). In Indien spielte die Reiskultur seit altersher eine große Rolle. Was der _Sago_ für den Osten, das ist der _Reis_ für den Westen Südasiens. Von Indien, das ¾ der Weltproduktion liefert, ist die Reiskultur nach dem Mittelmeergebiet (Italien: Poebene, Lombardei, Venezien, Piemont und Spanien: Andalusien, Valencia, Catalonien) und die Verein. Staaten gebracht worden. Obenan steht hier Süd-Carolina, dann folgen Louisiana und Georgia. «Wie nämlich mit dem Zucker und Kaffee und der Baumwolle geschah, so auch mit dem Reis: erst die Versetzung in die neue Welt hat ihn zu einem Weltprodukt gemacht. Europa war für diese Frucht nur die Haltestation, wohin sie die Araber, die alten Zwischenhändler des Ostens und Westens brachten und von wo andere sie weiter nach Neu-Indien jenseits des Ozeans schafften» (~Hehn~). Südamerika baut nur wenig. Im großen Stile wird Reis ferner in Japan, Hinterindien, Siam und auf Java gebaut, dann auch auf den anderen Inseln des malaiischen Archipels. In Afrika baut Ägypten Reis. Die Kultivateure unterscheiden +Wasserreis+ (+ind.+ aus) und +Bergreis+ (+ind.+ boro) und eine Zwischenform (+ind.+ amum), sowie den hier nicht in Betracht kommenden Klebreis. In Java, dessen Reiskultur hoch entwickelt ist, sah ich die beiden typischen Kulturmethoden, die in den Bergen übliche trockene Methode der gaga (tegal), wo der Bergreis (_O. montana_ = paddi tjereh) -- seltener Klebreis (p. ketan) -- auf trockene Felder ausgesät wird und die im ganzen Mittelland gebräuchliche der sawah (rawah, vgl. I, Fig. 24), bei der _Oryza sativa_ und _praecox_ in quadratischen, terrassenartig übereinander liegenden, periodisch bewässerten Feldern meist durch Einpflanzen von in Saatbeeten erzeugten Pflänzlingen (seltener durch Aussaat) gebaut wird. Die Reiskultur verursacht viel Arbeit. In Java heißt der Reis im Halme +paddi+, gedroschen +gaba+, geschält +bras+, gekocht +nassi+. =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Unter den Krankheiten, welche die ganze Reispflanze ergreifen, ist besonders die +Brusone-Krankheit+ zu erwähnen, mit der die in Japan auftretende +Imotsi+-Krankheit identisch zu sein scheint. Es handelt sich um eine Fleckenkrankheit, die auch völlige oder teilweise Sterilität der Rispen nach sich zieht. Die meisten Autoren sehen eine Imperfekte, _Piricularia Oryzae_ ~Cav.~ als Ursache an, doch halten andere das Auftreten dieses Pilzes für eine sekundäre Erscheinung. In den Blüten von _Oryza_ ist _Claviceps purpurea_ beobachtet worden; nahe verwandt mit derselben ist nach ~Brefelds~ Untersuchungen sehr wahrscheinlich _Ustilaginoidea Oryzae_ (~Pat.~) ~Bref.~, die in dem Fruchtknoten eine schwarze Conidienform bildet, welche man früher als einen Brandpilz (_Tilletia Oryzae_ ~Pat.~) ansah. [Illustration: Fig. 68. _Oryza sativa_. 1. Einblütiges, kurz begranntes Ährchen, die Spelzenhülle geöffnet. 2. Querschnitt durch eine von Palea inferior (pi) und Palea superior (ps) eng umschlossene Frucht. 3. Längsschnitt durch die Frucht. 4. Längsschnitt durch den Keimling: scut. Scutellum, pl. Plumula, rad. Radicula. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Beschreibung.= _Oryza sativa_ wird etwa 1 m hoch. Die einblütigen, etwas platten, von vier glumis behüllten Ährchen sind zu großen, meist ziemlich zusammengezogenen, seltener ganz lockeren Rispen vereinigt. Die Blüten besitzen sechs Stamina. Die meist etwa 6-7 mm lange Frucht ist von der Seite stark zusammengedrückt, zeigt zwei seitliche Furchen und wird von den miteinander verzahnten Spelzen (paleis) dicht und fest umschlossen (Fig. 68). Diese Spelzen sind knorpelig, lederig, reich an mechanischen Elementen, anliegend, rauhhaarig, die Palea inferior fünfrippig, begrannt, die Palea superior dreirippig. Bei dem wilden Reis fallen (wie bei den meisten wilden Getreidearten) die Früchte bei der Reife aus den Ähren heraus. Frucht- und Samenschale sind zart und obliteriert. Durch das +Schälen+ und +Polieren+ werden die Paleae und auch die Frucht- und Samenschale (Silberhaut) sowie die 1-2reihige Aleuronschicht und der stark exzentrisch gelegene, leicht sich ablösende Keimling entfernt, so daß das Korn dann nur aus dem Endosperm besteht. Der Bau der Spelzen und der Fruchtschale ist beschrieben in ~Tschirch-Oesterle~, Anatomischer Atlas. Die Größe der Reiskörner schwankt zwischen der eines Senfkornes und der eines Melonenkernes, die Farbe von hellgelb bis schwarz. Ungeschälter Reis heißt in Indien +paddy+, in Nordamerika +rough rice+. Durch Schälen in der Reismühle (im peeler, polisher, huller) wird das Gewicht auf die Hälfte oder zwei Drittel reduziert. Das Produkt heißt +Kochreis+. Das beim +Schälen+ abfallende ist die +Reiskleie+, die aber immer noch c. 25% Stärke, 6,5% Eiweiß und c. 5,5% Fett (daneben aber c. 46% Rohfaser) enthält. Das durch +Polieren+ des Kochreis abfallende ist noch stärkereicher (30-50%) und bildet daher ein gutes Ausgangsmaterial für die Darstellung der Reisstärke. Die Eingeborenen der verschiedenen Länder Asiens besorgen das Schälen des Reis nur selten in Mühlen. Ich sah in Südostasien den Reis in Mörsern stampfen, durch hölzerne Klöpfel schlagen und durch mechanisch mit den Füßen in Bewegung gesetzte breite Hämmer klopfen (vgl. auch Fig. 69). Geschälter Reis enthält 74,9-77% Stärke, 0,68% Rohfaser, c. 9,2% Eiweiß, ungeschälter c. 74% Stärke, 3,1% Rohfaser und 7,8% Eiweiß. [Illustration: Fig. 69. +Japanische Reisschälmethode.+ Stampfen des Reis in einem Mörser mit einem mit dem Fuß gehobenen, knieförmig gebogenen Holz. [Aus Les grandes cultures.]] =Produktion.= Die +Reisernte+ wird jetzt pro Jahr auf 175 Milliarden (engl.) Pfund (lb.) = c. 80 Mill. t. geschätzt. Britisch Indien produziert 60, China 50-60, Japan 15, Siam 6,75, Java 6,5, franz. Hinterindien 5, Korea 3, Formosa 2,75 Milliarden lb., Italien erzeugt 750 Millionen Pfund, je c. 500 Mill. lbs. erzeugen Spanien, Ceylon, die Philippinen, die Vereinigten Staaten (Louisiana, Texas, Süd-Carolina, Arkansas). In letzteren stieg 1908 die Produktion auf 608 Mill. lbs. (1907 erzeugte Nordamerika 18738000 Bushels Reis.) Es wird jetzt dort nicht nur Flußschlemmland, sondern auch Prairieland zum Reisbau herangezogen. Europa führt jährlich für 344 Mill. Mark Reis ein. Deutschland verbrauchte 1907 für 31743000 Mark. Der Jahresumsatz des +Weltreismarktes+ beträgt 600-800 Mill. M. Vom indischen Reis unterscheidet man drei Sorten: Tafelreis, Ballam und Moonghy. Den meisten Reis exportiert Burmah, dann folgt Bengalen und Madras. In Code franc. steht geschälter (décortiqué) Reis. Als =Schädling= der Früchte ist der +Käfer+: _Rhizopertha pusilla_ ~Fabr.~ zu nennen, dessen Larve vermutlich eingeschleppt wurde. Er ist namentlich in Hafenplätzen öfter schädlich aufgetreten (~Israel~). Über _Calandra Oryzae_ vgl. I, S. 383. Siehe auch unter _Mais_. =Darstellung der Reisstärke.= Reisstärke wird besonders in England, dann in Belgien, Frankreich, Deutschland (Altona, Ulm), Österreich (Fiume, Tirol), Italien und Amerika aus schlechteren Reissorten, aus +Bruchreis+, +havariertem+ Reis oder den beim Polieren des Reis erhaltenen Abfällen bereitet. Da die Stärkekörner die Zellen dicht erfüllen, genügt Einweichen und Zerquetschen der Früchte nicht, um die Körner zu isolieren. Sämtliche zur Anwendung kommende Verfahren (~Jones~, ~Ransford~, ~Berger~) laufen darauf hinaus, daß der die Körner verkittende Kleber durch Behandlung mit verdünnter Ätzlauge (z. B. 0,25% Natronlauge), Ammoniak oder Säuren oder durch ein «Gärverfahren» gelöst, das Reiskorn «aufgeschlossen», d. h. aufgelockert wird. Die weitere Behandlung ist wie bei der Weizenstärke (s. d.). Neuerdings wird in Frankreich auch der elektrische Strom herangezogen. Nach dem ~Stoltenhoff~schen Verfahren werden die Körner im Vacuum 6-8 Stunden mit fließender Natronlauge behandelt (die Lauge wird mit Säure gefällt, der gefällte Kleber ist als «Energin» im Handel). In Deutschland gibt es 12 Reisschälmühlen und Reisstärkefabriken. Über den Klebreis vgl. Amylodextrin. [Illustration: Fig. 70. _Reisstärke._ [Nach ~Tschirch-Oesterle~, Atlas.]] =Anatomie.= Das Endosperm des Reis ist bisweilen in ein Horn- und Mehlendosperm geschieden. Ein Teil und zwar die Hauptmasse erscheint alsdann glasig, ein Teil in der Nähe des Scutellums mehlig. Die Stärkekörner erfüllen die Zelle dicht. Zusammengesetzte Stärkekörner treten nur undeutlich hervor. Ihre Begrenzungslinie ist nie glatt (wie beim Hafer). Die +Stärkekörner+ der +Reisstärke+ (Fig. 70), die auch wohl (fälschlich) +Reismehl+ genannt wird, sind kristallartig scharfkantig-eckig, besonders häufig fünfeckig. Rundliche Körner sind selten. Sie sind ziemlich gleichartig in Gestalt und Größe, meist 4,5-6 mik lang, die größeren bis 8,5, nie über 10 mik, die kleinsten 3 mik. Bisweilen hängen noch einige Körner zusammen. Einige zeigen eine Kernhöhle. =Chemie.= Reisstärke enthält durchschnittlich 85,18% Stärke, 13,7% Wasser, 0,88% Stickstoffsubstanz, 0,3% Asche; Spuren Fett und Rohfaser. Reisstärke beginnt bei 53,7° aufzuquellen und bei 58,7° zu verkleistern, bei 61,2° (nach ~Dafert~ bei 73°) ist die Verkleisterung vollkommen (~Lippmann~). =Handel.= Im Handel ist die Reisstärke entweder in kantig-prismatischen Stücken als Strahlen-, besonders Kristallstärke oder aber (die schlechteren Sorten) in Form unregelmäßiger Brocken (Schäfchen) oder als Pulver. «Royal Anglais» ist belgische (Remy-)Stärke, Corn flour besonders feine Reisstärke. Die Gesamteinfuhr an +Reisstärke+ betrug in Hamburg 1908: 24661 dz, die Einfuhr an Reis 2354543 dz, der meiste (1810385 dz) kam aus Brit. Ostindien. Deutschland führte 1909 polierten Reis 851935 dz, enthülsten und Bruchreis 2178571 dz ein, letzteren vornehmlich aus Brit. Indien, dann auch aus Siam und französ. Indien (Reis in der Hülse nur 163958 dz) und exportierte +Reisstärke+ 53497 dz besonders nach Großbritannien. =Prüfung.= Reisstärke besteht fast nur aus Stärkekörnern (s. oben) mit sehr wenig Zellresten, bildet also ein sehr feines und gleichmäßiges Pulver. Die Beimengung von Spelzen ist leicht an der sehr charakteristischen Epidermis derselben zu erkennen, andere Stärke an den abweichenden Formen (am schwierigsten Haferstärke -- kommt aber in praxi kaum vor). Reisstärke reagiert stets alkalisch. Die medizinisch angewendete soll aber doch nur sehr schwach alkalisch sein, also mit Wasser geschüttelt ein nahezu neutrales Filtrat liefern (Ph. helv. IV). Die Asche übersteige 0,5% nicht (~Hauke~). =Anwendung.= Reisstärke ist in der Revalenta arabica (Revalescière du Barry), im Racahout des Arabes, in der Kaiffa, dem Palamoud des Turcs, der Palmycena und anderen Geheimmitteln enthalten. Reis wird gegen Diarrhoe angewendet. Die Reisstärke ist die wichtigste Poudre-Grundlage (poudre de riz). Reisstärke gibt, da sie vollständig, sehr gleichmäßig und gummiartig verkleistert, eine vorzügliche Appretur, wird aber wegen des hohen Preises nur zur Appretur feinerer Stoffe benutzt. Silberglanzstärke ist Reisstärke mit 10-15% Borax, Doppelstärke enthält neben Reis- und Kartoffelstärke 6-7% Borax und 2-2,5% Stearin. Crêmestärke ist mit Farbstoffen gefärbt. Reis ist das wichtigste Nahrungsmittel Südasiens (China, Indo-China, Indien, Malaiisch. Archipel) und großer Teile Afrikas, denn er enthält neben viel Kohlehydraten (vornehmlich Stärke) auch ziemlich viel Stickstoffsubstanz (s. oben), so daß man sich von ihm allein ernähren kann. Reis kann aber nicht verbacken werden. «In dem Kranze wertvoller Nutzpflanzen, die die Tropen ihren Bewohnern liefern, ist der Reis eines der schönsten Blätter, ja er bildet mit dem Coco und dem Pisang die Grundsubstanz aller Speisen, die der Eingeborene in Ceylon und Java, ja im ganzen malaiischen Archipel genießt» (~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpflanzen). Und auch der Holländer geht in Indien täglich um Mittag zur «Reistafel». In Asien werden aus Reis mehrere alkoholische Getränke hergestellt (vgl. I, S. 1019). Schon die alten Inder kannten ein Reisbier. =Geschichte.= Reis findet sich noch nicht in Rig-Veda, in Atharva-Veda ist er mit másha (_Phaseolus Roxburghii_) und _Sesam_ zusammen erwähnt. Die Alten des Abendlandes bauten Reis nicht, bezogen ihn aber aus Indien. Ein gebräuchliches Nahrungsmittel wurde er im Altertum des Abendlandes nicht. Selbst Reistisane war teuer (~Hehn~). Das Abendland wurde durch den Alexanderzug (I, S. 529) mit dem Reis bekannt. ~Theophrast~ beschreibt ihn gut. Damals wurde Reis in Sawahs (s. vorn) nicht nur im Indusdelta, sondern auch im Zweistromlande und am Oxus gebaut (~Strabo~). Im Periplus (I, S. 536) wird Reis als Ausfuhrartikel von Limyrike und Reiskulturen in Ostindien bei Barygaza und Ariake erwähnt. Nach Ägypten und Spanien brachten die Araber die Reiskultur, ins Mailändische und Venezianische kam sie Anfang des XVI. Jahrh. (~Hehn~). ~Albertus Magnus~ (I, S. 673) bespricht Rizum. Der Reis ist bei den Indern Symbol des Reichtums und der Fruchtbarkeit. Er spielt dort im Hochzeitsritus, bei den Ceremonien zur Erlangung von Kindern sowie als Liebesorakel und Aphrodisiacum, Allheilmittel, Schönheitsmittel eine Rolle. Auch in England wirft man der Braut Reiskörner nach. Reis ist die Pflanze der javanischen Ceres, Dewi Sri. Die Reiskultur hat aus den Malaien, orang malayu, d. h. herumschwärmenden Leuten, seßhafte gemacht. «Reis und Tee» heißt im Japanischen soviel wie bei uns «Essen und Trinken». Reismehl tritt als Appretur auf frühmittelalterlichen Papieren sowohl als Kleister wie in Substanz aufgewalzt auf (~Wiesner~, ~Kobert~). Die +Reisstärke+ ist ziemlich spät erst in Aufnahme gekommen. =Lit.= ~De Candolle~, L’origine des plantes cultiv. -- +Pharmacographia indica+ (dort die Geschichte des Reis in Indien). -- ~Watt~, Dictionary of econom. prod. India. -- ~K. Braun~, Der Reis in Deutsch-Ostafrika. Ber. über Land- u. Forstw. in Deutsch-Ostafrika. 1908. -- ~Hehn~, Kulturpfl. u. Haust., VII. Aufl. 1902. -- ~Tschirch~, Ind. Heil- und Nutzpflanzen (mit Abbild.: Sawah, Reismühlen usw.). -- +Les grandes cultures+ (zahlreiche Abbild. der Kultur und Ernte). -- ~Semler~, Trop. Agrikultur, 2. Aufl. -- ~Wiesner~, Rohstoffe (dort d. ältere Lit.). -- ~Tschirch~, Stärkemehlanalysen. Arch. Pharm. 1885. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas, Taf. 45 (dort eine ausführl. Beschreib. d. Frucht). -- ~Moeller-Winton~, Mikrosk. d. Nahrungs- u. Genußm. 1905 (Abbild.). -- ~van Gorkom~, Rijst in Beschreijvende Catalog. Kolon. Mus. Haarlem 1907 und Oostindische Cultures. -- ~Harz~, Landwirtschaftl. Samenkunde. -- +Abbild.+: ~Nees von Esenbeck~, t. 36, ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants t. 291, ~Berg~, Charakteristik t. 6 und ~Hackel~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. II. 2, 41. -- ~Kobert~, Zeitschr. Angew. Chem. 1910, 1249. -- Asche: ~Hauke~, Zeitschr. Österr. Apoth. Verein 1902. 3. Amylum Maidis. Mais- oder Mays-Stärke -- amidon de mays (franz.) -- maize starch (engl.) -- in Amerika: corn starch -- maïszetmeel (holl.) -- amido del mais (ital.) -- maissi tärkkelys (finn.) -- kukorica kemenyitő (ung.) -- ἄμυλον ἀραβοσίτον (n.-gr.). =Stammpflanze=: =Zea Mays= L. (~Linné~, Spec. plant. I, 971) mit mehr als 300 Spielarten, die sechs Gruppen bilden: Balgmais (huskcorn), Zahnmais (dentcorn), Weichkorn (softcorn), Steinmais (flintcorn), Zuckermais (sweetcorn), Puffmais (popcorn). Der Coyotemais Mexikos wird von einigen als die wilde Urform (?) betrachtet. In Deutschland unterscheidet man: Gemeiner Mais, Perlmais, Pferdezahnmais, Zuckermais, Cuzcomais, Balgmais. =Syn.= Indianisch Korn (~Cordus~), Indian Corn (engl.), Corn (in Amerika), Türkischer Weizen, Türkenkorn, Türkisch Korn (~Bock~, ~Fuchs~), Blé turc (franz.), Kukuruz (Österreich-Ungarn, Donauländer), Welschkorn (~Bock~), Türgga (Appenzell), Syrische Durrha (Ägypten), Ägypt. Korn (Türkei), Mekka Weizen (Persien), Arabisch Korn (Griechenland), Guineahirse (Portugal), Tureskorichljib (Rußland). Beim Mais sagt also die Länderbezeichnung nichts über die wahre Provenienz aus. =Etym.= Zea von ζέα, ζειά griech. Name eines _Triticum_ (s. S. 188), von ζῆν = leben -- Mais von haitanisch (Tupi) Mahiz, mahis. ~Columbus~ importierte auch das Wort. «Kukuruz» nach ~Lippmann~ vom spanischen Cucurucho. =Systemat. Stellung.= Gramineae, Maideae. =Beschreibung.= Der diclin monöcische Mais wird 60 cm bis 6 m hoch, je nach der Spielart. An der Spitze des Halmes finden sich die männlichen Blütenrispen. In den Blattwinkeln stehen 2-3 kolbenförmige, je nach der Spielart sehr verschieden große weibliche Ähren, von häutigen Hüllblättern umgeben. Die schwammige Achse trägt 8-10 Längsreihen zweiblütiger Ährchen, deren untere Blüte nur unvollständig entwickelt ist. Die Griffel sind sehr lang und hängen aus den Kolbenscheiden weit heraus. Sie werden neuerdings als +Stigmata Maidis+ arzneilich benutzt. Beim Heranwachsen platten sich die Früchte, die in geraden oder etwas schrägen Längszeilen liegen, etwas gegeneinander ab. Sie bilden den bekannten Maiskolben. Die Früchte sind von sehr verschiedener Größe, Form und Farbe. Letztere wechselt von weiß über gelb zu orange. Auf der einen Fläche der Frucht ist das große helle, ovale Scutellum deutlich und in seiner Mitte der gestreckt ovale Keimling. An das Scutellum grenzt das weiße Mehlendosperm, an dieses das glasige Hornendosperm (Fig. 71). In ersterem liegen die Stärkekörner locker gehäuft, in letzterem erfüllen sie die Zelle dicht und platten sich gegeneinander ab. Der Unterschied zwischen Horn- und Mehlendosperm wurde bereits von ~Raspail~ (1825) erkannt. Die Verschiedenheit der Stärke in den beiden Endospermen stellte dann ~Payen~ (1838) fest. Der Bau der Fruchtschale ist ausführlich beschrieben in ~Tschirch-Oesterle~, Anatomischer Atlas. =Pathologie.= Prof. ~Ed. Fischer~ berichtet über die pflanzlichen Schädlinge: Die wichtigsten Zerstörer der Früchte und Fruchtkolben der Maispflanze sind Ustilagineen: _Ustilago Maidis_ (~Dc.~) ~Tul.~ bildet an Stengeln, Blättern, männlichen und weiblichen Blütenständen beulenförmige Pilzgallen, die an den Stengeln die Größe eines Kindskopfes erreichen können. In denselben entstehen die Brandsporen; schließlich zerfallen sie in eine schwarze, brandige Masse. Daß dadurch die Körnerbildung mehr oder weniger unterdrückt werden kann, versteht sich von selbst. Die Sporen der _Ustilago Maidis_ werden neuerdings arzneilich benutzt. _Ustilago Reiliana_ ~Kühn~ bildet ihre Brandsporen in den Fruchtknoten. _Ustilago Fischeri_ ~Pass.~ entwickelt die Brandlager in der Kolbenspindel. Es gibt außerdem verschiedene Pilze, die die vegetativen Teile der Maispflanze befallen und dadurch indirekt die Körnerbildung beeinträchtigen können. Unter diesen ist eine der gefährlichsten die in Java auftretende Lijer-Krankheit, welche junge Pflanzen zum Absterben bringt. Sie ist auf eine _Peronospora_ (_P. Maidis_) zurückzuführen. Auch sind neuerdings Bakterienkrankheiten der Maispflanze beschrieben worden. [Illustration: Fig. 71. _Zea Mais._ 1. Längsschnitt durch die Frucht, frs Fruchtschale, HEnd Hornendosperm, MEnd Mehlendosperm, pl Plumula, Rad Radicula, cal Calyptra, col Coleorhiza, 2 einzelne Zelle des Hornendosperms, 3 einzelne Zelle des Mehlendosperms, 4 das Klebernetz zwischen den Stärkekörnern. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Kultur.= Der Mais besitzt ein großes Anpassungsvermögen, obwohl seine ursprüngliche Heimat wohl im tropischen Klima lag. Er braucht aber eine gewisse Menge Feuchtigkeit und gedeiht in trockenen Klimaten nicht. Schon ~Jos. Acosta~ (I, S. 754) beschrieb seine Kultur. Die Früchte werden in Amerika durch eigene «Maisschäler» vom Kolben abgelöst. Die größte Menge Mais, c. 80% der Gesamtweltproduktion, erzeugt jetzt Nordamerika: etwa 50 Mill. t. im Jahre, den meisten die nördlichen Mittelstaaten (bes. Iowa, Illinois, Kansas, Nebraska, Missouri, Ohio, Indiana). Auch Kanada, Mexiko, Zentral- und Südamerika (Argentinien) bauen viel Mais; in Afrika: Ägypten, Algier. Geringer ist die Kultur in Asien, beträchtlich in Europa, besonders in Italien, Deutschland, Ungarn, Rumänien, Schottland und in Rußland (vgl. auch die Karte auf S. 189). Die +Maisfrucht+ enthält 62 bis 74,5% Stärke, 8-12% Eiweiß, 4,5-6,5% Öl, 1,6-2,7% Rohfaser, 8-14,5% Wasser. Maiskleie liefert bei der Hydrolyse mit verdünnten Säuren u. a. Xylose. (Über die Eiweißkörper des Maiskornes vgl. ~Donard~ und ~Labbé~, Compt. rend. 1903.) =Darstellung der Maisstärke.= Die Maisstärke, welche das einzige Amylum der amerikanischen Pharmakopoëe ist, wird in großem Stile nur in Nordamerika dargestellt, in geringerer Menge in Brasilien, Neu Südwales, England, Frankreich, Deutschland, Niederösterreich und den Donaufürstentümern. Die eingequollenen Körner werden zerquetscht und der Brei in Cylindersieben ausgewaschen. Man verwendet hierbei, da das Korn ziemlich hart ist, das Natronverfahren (wie beim _Reis_, ~Leconte~) oder läßt den Brei gären (~Watt~) oder setzt ihm schweflige Säure zu. Die Lauge löst den die Körner miteinander verkittenden Kleber (Fig. 71). Die gemeine amerikanische Maisstärke in Brocken besteht aus Hornendospermkörnern, die Duryea Maizena, das feinste Maismehl, vorwiegend aus Mehlendospermkörnern. Beide werden aus dem großen Pferdezahnmais in großem Stil dargestellt; die St. Bernhardswerke in Cincinnati produzieren täglich 25000 kg. Die amerikanische Maisstärke heißt Corn flour oder Corn starch. Auch Mondamin ist Maisstärke. Ebenso Patent corn flour, Palamoud, Potage des Sultanes usw. [Illustration: Fig. 72. _Maisstärke._ [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anatomie.= Die Stärkekörner (Fig. 72) haben eine verschiedene Gestalt, je nachdem sie aus dem Hornendosperm oder dem Mehlendosperm (s. oben) stammen. Ihre Größe schwankt zwischen 8,5 und 31,5, meist beträgt sie 15 bis 20 mik. Die +Hornendospermkörner+ sind mehr oder weniger scharfkantig oder abgerundet kantig, isodiametrisch oft mit einem zentralen Spalt oder einer Zentralhöhle versehen, ungeschichtet, bisweilen noch zu mehreren zusammenhängend. Die Größe beträgt meist 10-18-23 mik, steigt aber auch bis 25 mik und darüber. Die +Mehlendospermkörner+ zeigen sehr unregelmäßige, aber stets abgerundete Formen, regelmäßige Kugeln sind selten, Schichten fehlen meist, der Zentralspalt bisweilen. Die Größe variiert sehr. Sie beträgt 9-23, meist 10-15 mik, steigt aber auch auf 25-30 mik. Daher erscheint das Mehlendosperm oft großkörniger als das Hornendosperm. +Nebenform+: Zu zweien zusammengesetzte gestreckte Körner oder deren Teilkörner und ganz kleine rundliche Körner von 2-10 mik und Übergänge zwischen Mehl- und Hornendospermstärke. =Handel.= Die Ausfuhr von «Starch» aus den +Vereinigten Staaten+ betrug 1907: 51334580, 1908: 48125851, 1909: 33228278 Pounds. Es handelte sich hierbei wohl hauptsächlich um Maisstärke. +Deutschland+ führte 1909 c. 7 Mill. dz Mais ein, den meisten aus Argentinien, dann aus dem europäischen Rußland, Rumänien und den Ver. Staaten. Deutschland führte 1909: 10850 dz Mais-, Weizen- und andere Stärke (aus Großbritannien und den Ver. Staaten) ein. Die Ausfuhr betrug c. 11000 dz. =Chemie.= +Maisstärke+ enthält durchschnittlich 84,14% Stärke, 13,95% Wasser, 1,53% Stickstoffsubstanz und 0,38% Asche. Sie enthält auch ein Gluko-Xylan (Storer). Maisstärke zeigt deutliches Aufquellen bei 50°, Beginn der Verkleisterung bei 55° und vollkommene Verkleisterung bei 62,5° (~Lippmann~). Maisstärke reagiert oft sauer. ~Saare~ fand den Säuregrad der Maisstärke oft sehr beträchtlich, besonders bei geringeren Sorten (Zeitschr. f. Spiritusfabrikat. 1901). Die _Stigmata Maidis_ sind reich an Zucker und Gummi (19,5%) enthalten c. 5,5% Fett und sowohl im Äther- wie im Alkoholauszuge neben Harz kristallinische Substanzen (~Fischer~, Am. Journ. Pharm. 1886). =Anwendung.= Der Mais, die Maismehle und die Maisstärke spielen in Nordamerika die gleiche Rolle wie bei uns Weizen- und Kartoffelmehl und Weizen- und Kartoffelstärke und in England Reisstärke (s. oben S. 157) und haben die anderen fast verdrängt. Maismehl und Maisschrot sind Futtermittel. Maiskolbenmehl (Cob meal) wird aus dem ganzen Fruchtstand inkl. der Spindel dargestellt. In großen Mengen wird Mais zur Glukosefabrikation benutzt, wofür er sich am besten eignet (man behandelt mit Salzsäure bei 60-80°); dann zur Maltosefabrikation (Behandeln mit Malz), zur Darstellung von Sirup (Behandeln mit schwefliger Säure), Dextrin usw. Auch die Brennereien verschlingen große Mengen. =Geschichte.= Der Mais, der schon in präkolumbischer Zeit fast durch ganz Amerika kultiviert wurde (Gräberfunde in Arizona, Ankona usw.) -- die Mexikaner hatten eine Maisgöttin -- ist das Gegengeschenk der neuen Welt für den Reis, den die alte ihr brachte. Er wurde von ~Columbus~ wahrscheinlich schon von seiner ersten Reise (1493) nach Europa gebracht (I, S. 745); jedenfalls schon 1500 in Spanien gebaut. Bei ~Hernandez~ (I, S. 761) ist dem Mais (Tlaoelli, +span.+ Maizio) ein großes, mit Abbildungen geschmücktes Kapitel gewidmet. Er hat sich außerordentlich rasch über Europa, Afrika und Asien verbreitet und bildet jetzt ebenso für Südeuropa und die Levante, wie für China und Japan, ja selbst für einige Negerstämme Afrikas, «die nie einen Europäer gesehen haben», ein wichtiges Nahrungsmittel. Die Venetianer verbreiteten den Mais im XVI. Jahrh. im Orient, nach Deutschland kam er im gleichen Jahrhundert aus Italien, wo die Polenta bekanntlich eine beliebte Speise ist. Nach Afrika brachten ihn im XVI. Jahrh. die Portugiesen und die Spanier brachten ihn von Osten her nach Südasien. Er wurde schon 1496 auf Java ausgesät. Im XVI. Jahrh. kam er auch nach China. Da Reisende ihn schon zu so früher Zeit überall in Asien fanden, glaubte man anfangs, daß er auch dort seine Heimat habe. =Lit.= Abbild.: ~Berg~, Charakteristik t. 6, ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants t. 296, ~Hackel~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. II, 2, 19. -- ~Bonafous~, Hist. nat. agric. et econom. du Maïs. Paris 1836. -- ~De Candolle~, L’origine des plantes cultiv. 4. Aufl. 1896 (dort weitere histor. Lit.). -- Abbild. der Kultur und Verarbeitung in Les grandes cultures du monde. -- ~Wittmack~, Über antiken Mais aus Nord- und Südamerika. Zeitschr. f. Ethnologie XII. -- ~Moeller-Winton~, Mikroskopie (dort viele gute Abbild. und weitere Liter.). -- Analysen in ~König~, Nahr.- u. Genußm. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde. -- ~Wiesner~, Rohstoffe (dort die ältere Lit.). -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas und ~Tschirch~, Stärkemehlanalysen. Arch. Pharm. 1884/85. -- ~A. Meyer~, Arch. d. Pharm. 1884, 912. 4. Fruct. Hordei. Gerste -- orge -- barley -- gerst. Im Code franc. steht oberflächlich geschälte Gerste (orge mondé) und ganz bis zum Endosperm geschälte (orge perlé), in der niederländischen Pharmakopoëe: Fruct. hordei decorticati (gepelde gerst). Die Stammpflanze der Fruct. hordei ist =Hordeum vulgare= L. (~Linné~, Spec. plant. 84). Gramineae -- Hordeeae, von der auch die zwei Unterarten, die sechszeilige Gerste (_H. hexastichum_) und die vierzeilige Gerste (_H. genuinum_) kultiviert werden. Auch _Hordeum distichum_ mit _var. zeocrithum_ wird sehr viel gebaut. In bezug auf die +Krankheiten+ der Gerste gilt im wesentlichen dasselbe, was für _Triticum vulgare_ gesagt wurde. Neben mehreren Pilzen, die indirekt den Körnerertrag beeinträchtigen (_Erysiphe graminis_, _Puccinia graminis_, _glumarum_, in Rassen, die zum Teil nicht auf Weizen übergehen; _Puccinia simplex_, _Melanospora damnosa_) finden wir als direkte Zerstörer der Früchte vor allem Ustilagineen, und zwar die beiden Flugbrandarten _Ustilago Hordei_ (~Pers.~) ~Kell.~ et ~Sw.~ und _Ustilago nuda_ (~Jens.~) ~Kell.~ et ~Sw.~ Auch _Claviceps purpurea_ kommt auf der Gerste vor (~Ed. Fischer~). Als tierische Schädlinge der Gerste nennt ~Israel~: 1. +Käfer+: _Sitophilus granarius_ L. Dieser kleine Rüsselkäfer legt seine Eier an die Körner aufgespeicherter Getreidevorräte. Die Larve höhlt die Körner des Weizens, der Gerste und des Roggens aus und tritt oft in Massen auf. _Sitophilus oryzae_ L., der Reiskäfer. Dieser Käfer ist mit Reis aus dem Oriente nach Europa verschleppt worden, nimmt aber bei uns auch die Körner von Mais, Weizen und Gerste an und tritt gelegentlich schädlich auf. Der sog. Springmais ist auf diesen Käfer zurückzuführen. 2. +Falter+: _Gelechia cerealella_ ~Oliv.~ Räupchen in Gerste und Weizenkörnern. In einigen Gegenden Deutschlands ist dieser Kleinschmetterling schon schädlich aufgetreten. _Orobena frumentalis_ L. Die Raupe lebt in den Halmen des Roggens, der Gerste und des Weizens. 3. +Fliegen+: _Cecidomyia destructor_ ~Say.~ Larve lebt wie die von _Orbona_ in den Halmen der Cerealien. Die Früchte der Gerste sind von den beiden Paleis dicht und fest umschlossen und fallen aus diesen nicht heraus (Anatom. Beschreibung in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas). Für den Arzneigebrauch werden sie geschält. Der Same zeigt drei Reihen Aleuronzellen. Die Stärke ähnelt sehr der Weizenstärke, doch sind die Großkörner etwas kleiner, meist 15-30 (am häufigsten um 25) mik. Die Gerste enthält c. 64,5% Stärke, 13,5% Wasser, 11,15% Stickstoffsubstanz, 2,1% Fett, 1,5% Zucker, 5,3% Rohfaser, 2,7% Asche. Die geschälte Gerste wird zu Tisanen und Gargarismen benutzt. Die gekeimte Gerste ist Grundlage der Bierbereitung (vgl. I, S. 1019) und Ausgangsmaterial für die Darstellung des +Malzextraktes+. Das Gerstenmehl wird aus den mehr oder weniger entspelzten Körnern dargestellt und spielt auch als Bestandteil einiger Kindernährmittel (~Timpes~ Kraftgries, ~Kobens~ Nährpulver, ~Gehrings~ Laktin) eine Rolle. Das präparierte Gerstenmehl, _Farina hordei praeparata_ (30 Stunden im Dampfbade erhitztes Gerstenmehl), war, da leicht verdaulich, früher sehr beliebt und ist der Vorläufer der sog. Kindermehle. Früher war das sog. ~Hufeland~sche präparierte Gerstenmehl bei den Ärzten sehr beliebt, das in der Weise bereitet wurde, daß man eine größere Portion Gerstenmehl in einen Beutel eingeschlossen, in ein Wasserbad hing, 14 Stunden -- unter öfterem Ersatz des Wassers -- in dem siedenden Wasser beließ, dann herausnahm, die schlüpfrige Randschicht entfernte und den «Kern» pulverisierte. Die Gerste heißt im Ägyptischen btt (die hieroglyphischen Zeichen I, S. 470). Bei antiken Räucherungen fand Gerstenmehl Anwendung (vgl. I, S. 1060). Alphita, das der berühmten Drogenliste (I, S. 639) den Namen gegeben hat, war _Farina hordei_. Die Gerste war das Hauptgetreide der alten Indogermanen, die (nach ~Hoops~) vor ihrer Trennung in Asiaten und Europäer ihre Stammsitze in Mitteleuropa westlich von der Linie Königsberg-Odessa hatten. =Lit.= ~Moeller-Winton~ a. a. O. -- ~Hoops~ a. a. O. -- Große Monographie: ~Lermer~ und ~Holzner~, Beitr. z. Kenntn. d. Gerste 1888 mit 52 Großfol. Taf. IV. Stärke aus den Cotyledonen von Samen. Leguminosenstärke. Die +Leguminosenstärke+ findet sich in den Cotyledonen der Samen der Bohne und der Erbse. Sie wird arzneilich nicht angewendet. (Beschreibung der Samen und der Stärke in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas, Taf. 48, 49 u. 53, bei ~Vogl~, ~Moeller-Winton~, ~Hanausek~ u. and. -- ~Tschirch~, Stärkemehlanalysen. Arch. Pharm. 1884). II. Amylodextringruppe. Behandelt man Stärke mit verdünnten Säuren oder mit Diastase, so wird zunächst Amylodextrin gebildet. Diesen Körper hatte ~Schulze~ (1848) zuerst in Händen. Er nannte ihn +Amidulin+. Der eigentliche Entdecker ist aber ~Musculus~ (1870), der ihn dextrine insoluble dans l’eau nannte. Den Namen +Amylodextrin+ gab ihm ~Walter Nägeli~ (1873), der den Körper auch kristallisiert in Sphärokristallen erhielt. Das Erythrodextrin und das Achroodextrin sind unreines, vorwiegend mit Dextrin verunreinigtes Amylodextrin. ~Lintners~ Amylodextrin ist mit viel Amylose (~Meyer~) verunreinigtes Amylodextrin. Von der Amylose (reiner Stärkesubstanz, s. oben S. 154) unterscheidet sich Amylodextrin (nach ~A. Meyer~) durch folgende Eigenschaften: +Amylose+ +Amylodextrin+ Bleiessig gibt Niederschlag in gibt selbst in 6% Lösung 0,05% Lösung keinen Niederschlag Tanninlösung gibt einen Niederschlag gibt keinen Niederschlag, noch in 0,005% Lösung selbst in 5% Lösung Jodlösung in verd. Lösung rein blau in verd. Lösung rein rot ~Fehling~sche wird nicht reduziert 100 g Amylodextrin Lösung reduziert so stark wie 5,6 g Dextrose (α)_{D} in Lösung von Ca(NO₃)₂ = +230° +195° Reines Amylodextrin kristallisiert in Nadeln, Tafeln und Sphärokristallen. Die Löslichkeit in kaltem Wasser ist gering, besser löst es sich in Wasser von 60°, noch besser bei 90°. Siedender Alkohol von 50% löst reichlich. Das Molekulargewicht ist sehr hoch. Die «Stärke, welche sich mit Jod rot färbt», die man bisweilen in Pflanzen findet, ist eine an Amylodextrin reiche Stärke. Sie wurde zuerst von ~Nägeli~ (1858) im Samenmantel von _Chelidonium majus_ beobachtet, dann von ~Gris~ (1860) im _Klebreis_ (_Oryza sativa_ var. _glutinosa_), von ~A. Meyer~ in _Panicum miliaceum_ var. _glutinosum_ und _Sorghum vulgare_ var. _glutinosum_ und von mir im Samenmantel von _Myristica fragrans_ gefunden, dessen Hauptbestandteil sie bildet. +Gepulverte+ _Macis_ +ist an ihr leicht zu erkennen+. In Embryonen fand sie ~Treub~, in phanerogamischen Parasiten ~Russow~. Diese durch Jod rot werdenden Stärkekörner enthalten neben Amylodextrin noch (Dextrin und) Amylose. Ich habe sie «+Amylodextrinstärkekörner+» genannt, ~Bütschli~ betrachtet sie als ein besonderes stärkeähnliches Kohlehydrat: +Amyloerythrin+. Zu ihnen gehört auch die sog. Florideenstärke (vgl. _Carrageen_). =Lit.= ~Musculus~, Zeitschr. f. Chem. 1869 u. 1870 u. Zeitschr. f. phys. Chem. 2. -- ~Walter Nägeli~, Beitr. z. näh. Kenntn. d. Stärkegruppe. Leipz. 1874. -- ~Shimoyama~, Beitr. z. Kenntn. d. japan. Klebreis. Diss. Straßburg 1886. -- ~Dafert~, Beitr. z. Kenntn. d. Stärkegruppe. Landw. Jahrb. 1886. -- ~Arth. Meyer~, Stärkekörner 1895. -- ~Tschirch~, Inhaltsbest. d. Arill. v. Myrist. fragr. Ber. d. Bot. Ges. 1888, 138. Artikel Amylodextrin in Realenzykl. d. ges. Pharm. u. Angew. Anatomie. -- ~Euler~, Grundlagen d. Pflanzenchemie 1908. Die einzige Droge, die hierher gehört, die =Macis=, deren Grundparenchymzellen dicht mit Amylodextrinstärkekörnern erfüllt sind (vgl. ~Tschirch~, Angew. Anatomie), wird weiter hinten bei _Myristica_ abgehandelt werden, da die _Macis_ besser zu den Riechstoffdrogen gestellt wird. In gewissem Sinne kann aber auch das _Trehalamanna_ (S. 147) hierhergezogen werden, da es 25-32% Amylodextrinstärke enthält, sowie die Rotalgen, in denen sich Florideenstärke findet. Der =Klebreis= ist nur aus Ausgangsmaterial für ein gegorenes Getränk (I, S. 1019) für uns interessant. III. Dextringruppe. Über das +Dextrin+ existiert keine Klarheit, wir wissen nur, daß es ein Polysaccharid ist. Aber ob es nur ein Dextrin gibt und die Formen Maltodextrin, Erythrodextrin, Achroodextrin, Amylozellulose usw. Gemische oder Individuen darstellen, wissen wir nicht. Die Dextrinliteratur bietet «ein trostlos verwickeltes, durch zahlreiche Widersprüche getrübtes, vorerst völlig unentwirrbares Bild» (~v. Lippmann~ 1904). Die jetzt vielfach reproduzierte Formel (C₁₂H₂₀O₁₀)₃.H₂O) trägt also nur vorläufigen Charakter. ~Skraup~ erteilte (1905) dem Erythrodextrin ein Molekulargewicht von 1700 bis 2000. ~Arthur Meyer~ nimmt nur ein Dextrin an und betrachtet alle Achroodextrine als Gemenge von Dextrin mit Maltose oder Isomaltose. Das reine Dextrin ~Meyers~ zeigte α_{D} = +192° und ein kryoskopisches Verhalten, das auf ein etwas größeres Molekulargewicht als 1223 ±25 hinweist. Es reduziert schwach ~Fehling~sche Lösung. Dextrin wurde zuerst von ~Vauquelin~ (1811) als ein besonderer Körper erkannt, dann zunächst von ~Persoz~ und ~Payen~ (1833) untersucht. =Lit.= Die neuere Literatur bei ~Lippmann~, Chemie der Zuckerarten. -- ~A. Meyer~, Stärkekörner. 1895. Dextrin. Das Dextrin (Dextrine, Dextrina) des Handels wird jetzt meist durch direktes Erhitzten von Stärke auf 150-200°, seltener durch Einwirkung von verdünnten Säuren oder Diastase auf Stärkekleister gewonnen. Die Darstellung des +Röstdextrins+ (Röstgummi, Leiokom), welches jetzt hauptsächlich im Handel ist und ein gelbliches Pulver bildet, erfolgt meist durch Erhitzen von luftrockener Kartoffelstärke in rotierenden, mittelst überhitzten Wasserdampf erwärmten Trommeln auf 180-200°, seltener durch Erhitzen von feuchter Stärke in flachen Kästen auf 160°. Bei der Darstellung des +Säuredextrins+, welches ein weißes Pulver darstellt, wird die Stärke mit 2-9 ‰ chlorfreier Salpetersäure und etwas Wasser vermischt, in dünner Schicht auf 110° im Luftbade erhitzt. Seltener wird Salzsäure, Schwefelsäure oder Oxalsäure benutzt. (Letztere muß nach der Behandlung entfernt werden.) Bei der praktisch nur selten ausgeführten Darstellung des +Diastasedextrins+ wird die Stärke bei 60-75° mit Malzaufguß behandelt. Endlich wird auch das auf eine der genannten Weisen erhaltene Rohdextrin dadurch gereinigt, daß man es mit Wasser auszieht, mit Alkohol ausfällt oder die Lösung eindampft und den Rückstand trocknet. [Illustration: Fig. 73. +Dextrinierte (Kartoffel-)Stärke+: a in Öl, die übrigen in Wasser. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] +Für medizinische Zwecke wird nur Röstdextrin verwendet.+ Die Pharm. helv. IV z. B. schließt ausdrücklich das mit Salpetersäure oder Oxalsäure bereitete und sog. chemisch reines Dextrin aus. Sie gibt z. B. an, daß die kalt bereitete Lösung durch Jod weinrot gefärbt werde, Kalkwasser und Diphenylamin keine Reaktion geben. Dies +Röstdextrin, das wir als eine Droge betrachten dürfen+, muß man aber richtiger +dextrinierte Kartoffelstärke+ nennen. Es besteht aus Stärkekörnern, die alle Stadien der Dextrinierung zeigen. Neben noch fast unveränderten finden wir solche, die schon in Amylodextrinstärke und andere, die schon ganz oder zum Teil in Dextrin übergeführt sind (Fig. 73). Äußerlich sind die Körner nur wenig verändert, denn wenn man sie in Öl betrachtet, zeigen sie noch die Umrißlinie der Kartoffelstärkekörner und im Polarisationsmikroskop das schwarze Kreuz. Nur eine kleine Luftblase an Stelle des Kerns (Fig. 73) verrät, daß nicht alles geblieben ist wie es war. Legt man die Körner aber in Wasser, so zeigt sich, daß tiefgreifende Veränderungen eingetreten sind. In den ersten Stadien der Dextrinierung hat sich der Spalt erweitert, die innersten Schichten sind gelöst, die Schichtung ist sehr deutlich geworden. In den späteren Stadien sind dann die äußeren Schichten und hier besonders die wasserreichen der Dextrinierung anheim gefallen. Sie lösen sich in Wasser auf und es bleiben zahlreiche übereinander geschichtete Häute übrig, die den dunkleren Schichten des unveränderten Kornes entsprechen. Am längsten widerstehen die mittleren Partien des Korns. Sie färben sich mit Jod blau, violett, rotviolett oder rot, sind also noch zum Teil unveränderte, zum Teil schon in Amylodextrin übergegangene Stärke (~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas, Taf. 52). +Deutschland+ fabriziert viel Dextrin. Hamburg exportierte 1908 22631 dz Dextrin (und geröstete Stärke) und importierte 21839 dz. +Frankreich+ importierte 1908 84187 kg +Dextrin+ aus Deutschland und etwa ebensoviel aus Österreich, nur wenig aus Belgien und den Niederlanden. IV. Inulindrogen. Die Vorstellung, daß auch das +Inulin+, das ~Valentin Rose~ 1804 zuerst als Absatz aus einem Dekokte von _Inula Helenium_ beobachtete und dem ~Thomson~ den Namen gab, zu den Polysacchariden gehört, gründen wir auf die Tatsache, daß es bei der Hydrolyse und der Einwirkung des Enzyms Inulase (~Bourquelot~) +Fruktose+ liefert. Die Formel wird sehr verschieden geschrieben. Die Angaben schwanken zwischen C₃₆H₆₂O₃₁ (= 6(C₆H₁₀O₅).H₂O, ~Kiliani~, ~Tanret~) und C₁₀₈H₁₈₀O₉₀ (~Düll~). Nur ~Béchamp~ erteilt ihm die einfache Formel C₆H₁₀O₅. Jedenfalls wird Inulin sowohl durch Inulase (nicht durch Diastase, Ptyalin, Emulsin, Invertin) wie durch Hydrolyse mit verdünnten Säuren +fast vollständig in d-Fruktose+ (Lävulose, Fruchtzucker, vgl. S. 7) übergeführt. Hefe vergärt Inulin nicht. Inulin reduziert Fehlingsche Lösung nicht, wohl aber ammoniakalisches Silbernitrat, dreht links (α_{D} = -36,57°, ~Lescoeur~ et ~Morell~) und färbt sich nicht mit Jodlösung. Im Gegensatz zur Stärke ist Inulin nicht in Körnerform in den Zellen abgeschieden, sondern (obwohl schwer löslich in reinem kaltem Wasser) im Zellsafte gelöst, also direkt wanderungsfähig. Beim Trocknen der Drogen scheidet es sich in Form von Schollen aus, beim Einlegen der frischen Pflanzenteile in Alkohol in Form von Sphärokristallen (Fig. 74), die sich in konzentrierter Schwefelsäure und auch in heißem Wasser, aber ohne Kleisterbildung, lösen. Es vertritt vielfach die Stärke als Reservestoff, besonders bei den Kompositen und benachbarten Familien (Campanulaceen, Lobeliaceen, Goodeniaceen, Stylidieen). Es findet sich hier vornehmlich in den unterirdischen Organen, ist aber auch in oberirdischen, z. B. bei _Cichorium_, _Taraxacum_, gefunden worden (vgl. _Rad. taraxaci_). Sodann auch (nach ~Chevastelon~) bei Monocotylen (_Narcissus_, _Hyacinthus_, _Allium_) und (nach ~Kraus~) in Violaceen (_Ionidium Ipecacuanha_). Bei den unterirdischen Organen schwankt der Gehalt an Inulin natürlich je nach dem Entwicklungsstadium oft in sehr weiten Grenzen. ~Rundquist~ machte neuerdings folgende Angaben über den Gehalt offizineller Wurzeln an Inulin: _Rad. artemisiae_ 9,66%, _R. bardanae_ 46,25, _R. carlinae_ 17,87, _R. cichorii_ 18,50, _R. farfarae_ 17,40, _R. helenii_ 35,10, _R. pyrethri germ._ 26,19, _R. pyrethri roman._ 35,66, _R. scorzonerae_ 31,64, _R. taraxaci_ 39,65, _Rhiz. arnicae_ 5,55. Die höchsten bisher beobachteten Ausbeuten erhielt man aus einer _Rad. helenii_ (44%) und einer _Rad. pyrethri_ (über 50% ~Dragendorff~, nach ~Koene~: 57,7%), ferner aus _Rad. cichorei_ (57,8%, ~Mayer~, 79%(?) ~Sayre~). [Illustration: Fig. 74. +Inulin-Sphaerokristalle.+ [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Das beste Material zur Darstellung des Inulins ist der _Dahlienknollen_, das billigste _Cichorium_- oder _Taraxacum_wurzel (s. d.). Der Inulingehalt der _Cichorium_- und _Taraxacum_wurzel bedingt in erster Linie deren Verwendung als Kaffeesurrogat. Nach ~Tanret~ wird es im _Alant_ von Pseudoinulin, Inulenin, Helianthemin und Synanthrin begleitet. =Lit.= ~v. Rose~, Gehlens N. Journ. d. Chem. III, 217. -- ~Thomson~, Syst. de chim. VIII, 82. -- ~Koene~, Ann. chim. phys. 1835. -- ~Dragendorff~, Material. z. einer Monogr. d. Inulins 1870. (Ausführl. Referat darüber in Arch. Pharm. 148 [1871] 82.) -- ~Prantl~, Das Inulin. 1870. -- ~Rundquist~, Farmac. Notisblad. Helsingfors 1904. -- ~Tanret~, Compt. rend. 116 und 117. -- Weitere Lit. in ~Tschirch~, Angew. Anatomie, in ~Lippmann~, Chemie d. Zuckerarten und ~Tollens~, Handb. d. Kohlenhydr. -- ~Tschirch~, Artikel Inulin in Realenzykl. d. ges. Pharm. Die Kompositenwurzeln. Von diesen, die alle hierher gehören, soll an dieser Stelle nur _Rad. cichorei_, _Rad. taraxaci_ und _Rad. bardanae_ abgehandelt werden, die anderen, _Rad. helenii_, _Rad. pyrethri_, _Rhiz. arnicae_ werden an geeigneter Stelle behandelt. Die Verwendung der hier abgehandelten Drogen als Kaffeesurrogate gründet sich vornehmlich auf ihren Inulingehalt. Einige der Kompositenwurzeln gehören auch zu den Bitterstoffdrogen. Rad. Cichorei. =Syn.= Cichorienwurzel -- chicorée, barbe de capucin (franz.) -- wild succory, chicory (engl.) -- radicchio, radice cicoria (ital.) -- cichoreiwortel (holl.) -- cigoria (ung.) -- sikurin juuri (finn.) -- ῥίζα κιχωρίον (griech.). -- +Wegwarte+ (so schon im Ortus Sanitatis I, S. 688), wilde Endivie, +Sonnenwirbel+ (ahd. Sunniwirpela, mhd. Sonworbel, Sundwerbel, Sunwirbel), bei ~Galen~: Seris, bei ~Plinius Valer.~: Cicinoria, bei ~Karl dem Grossen~: Solsequium. Bei ~Megenberg~ (I, S. 692): sunnenwerbel, bei ~Hildegard~ (I, S. 669): sunnenwirbel, bei ~Albertus Magnus~ (I, S. 673): cicorea, sponsa solis. In der +Alphita+ (I, S. 645): Cicoria, elitropia, mira solis, cicorea (B) solsequium, incuba. Ferner: Hindleufte, Hindlichte, Hundläufte, Wasserwart, Weigerein. Cichorie wird noch jetzt auch für _Taraxacum offic._ benutzt (Graubünden). Bei den Arabern: hindabâ (auch für Endivie benutzt). Die mittelalterlichen Namen solsequium, eliotropia (Heliotropium), mira (oder gira) solis, Sunniwerpila (Sonnenwirbel) umfassen auch die anderen Sonnenwendblumen (z. B. _Calendula offic._, _Taraxacum_, _Valerianella_ usw.). Im Mittelalter auch: ambubeia (ambula bei ~Plinius~), seris (die bittere, so schon bei ~Dioskurides~). -- In Indien: kàsni (pers., ind. Baz. ~Dymock~) -- pers.: tarkashkun (so auch bei ~Ibn Sina~). In China: kʿu tʿu, kʿu tsʿai, kʿu ku, ku-mai-tsʿai (auch für _Endivia_). =Stammpflanze und Systemat. Stellung. Cichorium Intybus L.= (richtiger Intubus). +Compositae.+ Cichorieae -- Cichorinae Sect. Eucichorium Dc. =Etym.= Cichorium aus κιχωριον (so bei ~Theophrast~) umgebildet, dies aus κίω = gehe und χωρίον = Feld (nicht arabischen Ursprungs, aber vielleicht daraus das arabische chikouryeh gebildet, ~Forskal~). Davon dann Cichorée, chicorée (franz.), chicory (engl.) und cichorei (holl.), und im Anklang an Zucker umgebildet: succory (engl.), suikerij (holl.), zuckerei (in Westfalen). Ferner: cichurien (in Mecklenburg), cikary (Eifel), -- Intubus auch Intybus ja sogar incuba (~Isidor~, Etym.: Intubus Graecum nomen est, -- Intubus auch bei ~Apicius~) wohl von ἔντομος = eingeschnitten, wegen der Blattform (~Kanngiesser~). Daraus das arabische hendibeh. Endivia ist die ital. Form für intubus. Ambubeia (s. oben) ist syrisch und aus ambui (= Geruch) und baia (= voll) gebildet. Ambuleja und Ambugia findet sich bei römischen Schriftstellern (s. oben). =Beschreibung.= _Cichorium Intybus_ ist perennierend und über Europa und das gemäßigte Asien verbreitet. Es findet sich vorwiegend an Acker- und Wegrändern, Rainen und unbebauten Plätzen. Seine Blätter erinnern etwas an die von _Taraxacum_ (s. d.), die unteren schrotsägeförmig, die oberen lanzettlich, sitzend. Die Infloreszenzachse trägt zahlreiche blaue Körbchen, der Hüllkelch ist zweireihig, die 5 inneren Blätter sind am Grunde verwachsen, Blüten zungenförmig, mehrreihig. Achaenen fast fünfkantig, kahl, mit 1-3reihigem Pappus. +Abbild.+ bei ~Hoffmann~ in ~Engler-Prantl~, Natürl. Pflanzenfam. -- ~Planchon-Collin~ a. a. O. =Pathologie.= Es sind auf _Cichorium Intybus_ eine ganze Anzahl von parasitären Krankheiten bekannt, unter denen wir _Erysiphe Cichoracearum_, _Phoma albicans_, _Puccinia Cichorii_ (Dc.) Bell. erwähnen. Inwieweit aber durch dieselben auch die unterirdischen Teile mit betroffen werden, dürfte noch festzustellen bleiben. An _Cichorium_wurzeln wurde _Sclerotinia Libertiana_ beobachtet (~Ed. Fischer~). Über die tierischen Schädlinge berichtet ~Israel~: 1. +Käfer+: _Anaspis frontalis_ ~Fabr~. Larve in den Stengeln von _Cichorium_, _Inula Conyza_ und _Eupatorium_. Jedenfalls in noch vielen anderen markigen Pflanzenstengeln. Käfer auf Blüten. _Mordella aculeata_ L. Die afterstachelige Larve im Marke von _Cichorium Intybus_ und _Lychnis_arten. Käfer auf Blüten. _Cassida sanguinolenta_ ~Fabr~. Larve skelettierend an den Blättern von _Cichorium Intybus_ und _Sonchus_arten. Wahrscheinlich auch noch auf anderen Pflanzen. 2. +Falter+: _Cucullia umbratica_ L. Die schwarze, nächtliche Raupe dieses sehr häufigen Falters lebt auf vielen Pflanzen, u. a. auf _Cichorium_, _Sonchus_, _Hypochaeris_ usw., vorzugsweise an den Blüten und Früchten. _Cucullia lactucae_ W. V., _Cucullia lucifuga_ W. V. Die Raupen dieser selteneren Falter leben an _Lactuca_- und _Sonchus_arten; auch an _Daucus_ und _Cichorium_. An _Cichorium_ leben ferner gelegentlich die behenden Raupen mehrerer +Bärenspinner+ (Arctiidae) und eine ganze Anzahl polyphager Eulenraupen, besonders aus der Gattung _Agrotis_. 3. +Schnabelkerfe+: _Aphis cichorii_. ~Dutroch~. Diese schwarze Blattlaus lebt oft in enormer Menge an den weicheren Teilen der _Cichorie_, namentlich an den jüngsten Trieben saugend. =Beschreibung der Droge.= Die Wegwartwurzel wird im Herbst von der wildwachsenden blühenden Pflanze gesammelt. Die einfache oder verästelte spindelförmige, etwa 1-1,5 cm dicke Wurzel wird, da _Cichorium_ eine tiefwurzelige Pflanze ist, mehrere Dezimeter lang. Sie ist ein- oder mehrköpfig, frisch fleischig und milchend, trocken hornig, hellbraun, fast geruchlos, schwach bitter. Medizinisch angewendet wird meist nur die Wurzel der wildwachsenden Pflanze. Diese (Racine de chicorée sauvage) ist in Frankreich offizinell. Die Wurzel der kultivierten Pflanze wird beträchtlich dicker als die der wilden Pflanze und daher, um sie besser trocknen zu können, meist in 2 oder 4 Längsstreifen oder dicke Querscheiben zerschnitten. =Anatomie.= Die Rinde macht etwa ⅙-⅓ des Gesamtdurchmessers aus. Sie ist +radial+ gestreift (Unterschied von _Taraxacum_). Der Holzkörper ist gelb und deutlich strahlig. Der primäre Bau der Wurzel ist diarch. Die aus wenigen Zellreihen bestehende primäre Rinde bleibt erhalten (~Holfert~). Im oberen Teile ist der strahlige Bau des Holzkörpers auf dem Querschnitte sehr deutlich. Hier ist auch die Cambiumlinie ziemlich regelmäßig. Weiter unten ist der Holzkörper zwar auch noch deutlich strahlig, aber die Cambiumlinie verläuft hier oft unregelmäßig in einer Bogenlinie. Der Holzkörper ist markfrei. Er enthält sehr viel Holzparenchym und in dasselbe eingebettet im Innern unregelmäßig, weiter nach außen bis zum Cambium in unterbrochenen radialen Reihen angeordnet, zahlreiche getüpfelte Gefäße, die im Längsverlaufe meist gekrümmt, oft sogar geschlängelt und sehr deutlich gegliedert sind. Das Gewebe der breiten Markstrahlen unterscheidet sich im Querschnitt kaum von dem Holzparenchym. Bisweilen (nicht immer) finden sich im Holzkörper linksschief getüpfelte, relativ dünnwandige Ersatzfasern (~Moeller~). In der sekundären Rinde liegen, zu radialen Strahlen angeordnet, Gruppen von gegliederten Milchröhren und Siebröhren. Die Milchröhren (Weite 6-10 mik) desselben Radialstrahles bilden infolge von Radialanastomosen ein reich verzweigtes Netz. Auch das Phloëmparenchym und das Parenchym der Rindenstrahlen ist mächtig entwickelt. Der äußere Teil der Rinde, der außerhalb der Sieb-Milchröhrenstrahlen liegt, ist sehr locker. Die Zellen sind hier tangential gestreckt und neigen zur Pektinisierung. Im obersten Teile der Wurzel ist diese ganze Schicht abgestorben und bedeckt als ein leicht abreibbarer Mantel die Wurzel. Zu äußerst liegt eine schmale, aus dünnwandigen Zellen bestehende Korkschicht. Alle parenchymatischen Zellen enthalten eine Inulinlösung, bei der Droge Inulinschollen. Die kräftige Hauptwurzel übernimmt die Befestigung. Die Nebenwurzeln sind ausschließlich Ernährungswurzeln (~Tschirch~ u. ~Radlauer~). Die Anatomie der Blätter bei ~Planchon-Collin~. =Lit.= ~Moeller-Winton~, Mikroskopie der Nahrungs- u. Genußm. 1905 (Abbild.). -- ~Planchon-Collin~, Drogues simples 1896, Fig. 642 u. 643. -- Vogl, Nahr.- u. Genußm. 1899, 334. -- ~Holfert~, Arch. Pharm. 1889. -- ~Rosen~, Wandtafeln. =Chemie.= Die Wurzel enthält +Inulin+, +Zucker+, +Pektin+ und einen (nicht untersuchten) +Bitterstoff+, sowie angeblich Harz, Gerbstoff und ein flüchtiges Öl (~von Bibra~), keine Stärke. Der +Inulin+gehalt beträgt in der Wurzel der wildwachsenden Pflanze bisweilen nur 11%, in der kultivierten 19% (~von Bibra~). ~Rundquist~ (a. a. O.) gibt ihn auf 18,5% an. Durch die Kultur wird der Gehalt stark gesteigert. ~Dragendorff~ fand (1870) in der Wurzel im Juni 4,82, Mitte Juli 36,53, Anfang August 44,01 und Anfang September 44,49% +Inulin+. Der Gehalt ist also ganz abhängig von der Vegetationsperiode. Der Inulingehalt der Wurzel kann 57,79% der Trockensubstanz erreichen (~A. Mayer~). Die +frische kultivierte Cichorienwurzel+ enthält 72,07-79,20% +Wasser+, 0,92-1,15% +Stickstoffsubstanz+, 0,11-0,60% Fett, 0,6-6,17% +Zucker+, im Mittel 15,30% stickstofffreie Extraktbestandteile, 0,65-1,11% Asche. In der Trockensubstanz im Mittel 84,37% stickstofffreie Extraktbestandteile (~H. Schulze~, ~von Bibra~, ~Hasall~, ~J. Wolff~). +Getrocknete kultivierte Cichorienwurzel+ enthält 6,89-15% +Wasser+, 10,5-22,2% +Zucker+, 52,59% +stickstofffreie+ Extraktbestandteile und 3-5% Asche (~Hasall~, ~Krauch~). ~Bibra~ verglich die wilde mit der kultivierten Wurzel. Er fand in ersterer 37,81%, in letzterer 22,08% Zucker. ~Storer~ fand bei der Hydrolyse auch Mannose, die Membranen enthalten also ein Mannan. Die +Asche+ beträgt 10,88% der bei 105° getrockneten Droge, bei 12,6% Wassergehalt (~Nygård~). In den +Blüten+ (nicht in der Wurzel) fand ~Nietzki~ ein schön krist. bitteres +Glykosid+, F. 215-220; C₃₂H₃₄O₁₉.4½ H₂O, auch das Aglukon desselben (C₂₀H₁₄O₉) kristallisiert. =Lit.= Ältere Analysen von ~Juch~ und ~Planche~. -- ~von Bibra~ (Analys. in ~Wittstein~, Handwörterb. d. Pharmakogn. 1882 mitgeteilt). -- ~König~, Nahr.- u. Genußm. -- ~A. Mayer~, Jahresb. d. Agrik. Chem. 1883. -- ~J. Wolff~, Bot. Centralbl. 1901, 85, 52. -- Chem. Centrbl. 1899 und 1900. -- ~Dragendorff~ a. a. O. -- ~Nietzki~, Über ein neues in den Blüten von Cichorium Intybus enthaltenes Glykosid. Arch. Pharm. (3) 8 (1876), 327. -- ~Storer~, Chem. Centralbl. 1902, 2, 1155. =Verwechslungen.= _Rad. taraxaci_ anatomisch gut zu unterscheiden. _Rad. belladonnae_ und _hyoscyami_ enthalten Stärke. =Anwendung.= Im alten Ägypten (I, S. 464) kultivierte man _Cichorium Intybus_ als Gemüse (~Plinius~). Sprosse und Blätter waren eine beliebte Magenspeise (~Plinius~). Sie dienen noch heute besonders in Frankreich zu diesem Zwecke. ~Rhazes~ hält die wilde Cichorie für heilkräftiger als die Garten-Cichorie. Die Araber benutzten den ausgepreßten Saft als allgemeines Antidot (~Ibn Amrân~). In Indien, wo die Pflanze kultiviert wird, werden die Früchte arzneilich benutzt. Die Frucht war auch einer der «quatuor semina frigida minora». In einer österreich. Taxe 1776 findet sich Infusum «seu sanguis Cichorii simplex», gemeiner Cichoryaufguss oder Cichoryblut (~Pruys~). Die Präparate der Wurzel sind besonders in Frankreich beliebt (s. ~Hartwich-Fischer~, Pharm. Praxis). Die italienische Pharmakopoëe hat sowohl Wurzel, wie Blätter aufgenommen. Die frischen +Blätter+ (folia cichorii, feuilles de chicorée, succory leaves) werden, wie die verwandte _Endivie_, als Salat (barbe de Capucins) und mit _Kresse_, _Gartenlattich_, _Fumaria_ zu Kräutersäften (suc d’herbes) bei sog. Frühlingskuren benutzt. Die trockenen bilden einen Bestandteil des Sirop d’Erysimum comp., sowie des Sirop de rhubarb comp. (~Hartwich-Fischer~, Pharm. Praxis I, 828). Schon bei ~Cordus~ steht ein Syr. è cichoreo und ein Syrupus de Cichoreo cum Rhabarbaro Nicolai Florentini. Wegwart steht auch in der Liste der ~Kneipp~-Mittel als Diuretikum und Magenmittel -- der Saft der Pflanze dient bei der «Blutreinigungskur». Äußerlich werden Kissen bei schmerzhaften Entzündungen empfohlen. =Geschichte.= Der Wegwart oder die Wegwarte ist eine alte germanische Zauberpflanze. «Um die Wegwarte ranken sich noch heutzutage Vorstellungen, die jener uralten Lust, die Pflanze zu vermenschlichen, sie mit dem Menschen gleichzusetzen, entspringen» (~Aigremont~). So heißt es in ~Vintlers~ +Blumen der Tugend+ (1411): «Die begwart sey gewessenn aine frawe czart und wart jrs pullen noch mit schwerzen». Auch ihr Name «Verfluchte Jungfrau» deutet auf ähnliche Vorstellungen. Sie dient denn auch beim Liebeszauber. ~Theophrast~ bespricht (Hist. plant. VII, 11) die _Cichorien_ im allgemeinen (τὰ δὲ κιχοριώδη πάντα). ~Horaz~ nennt sie als Nahrungsmittel: «me pascunt olivae me cicorea levesque malvae». ~Plinius~ bespricht beide Intubi, den wilden (_Cichorium Intybus_, in Ägypten, wo sie offenbar sehr geschätzt wurde (I, S. 464), _Cichorium_ genannt) und den zahmen (_C. Endivia_, in Ägypten _Seris_ genannt). Beide wurden kultiviert. ~Plinius~ erwähnt, wie ~Dioskurides~, bereits die Anwendung des Saftes bei Augenleiden, die wir auch noch in dem alten Verse: «Das edle Kraut Wegwarten macht guten Augenschein«(~Jacob Meyland~ um 1600) und bei ~Ibn Baithar~, der die Pflanze hindabâ nennt und ihr ein großes Kapitel widmet, wiederfinden. ~Dioskurides~ nennt die Pflanze seris (στενόφυλλος καὶ ἔμπικρος σέρις) und unterscheidet die wilde picris, auch _Cichorie_ genannt, von der zahmen _Gartencichorie_, von der er zwei Arten kennt. Er weiß mancherlei über ihre Heilkraft zu berichten, besonders bei Magenleiden. =Lit.= Pharmacographia indica. -- ~Pruys~, Über d. therapeut. Wert von usw. Cichorium. Pharm. Zeit. 1896. =Cichorienkaffee.= _Cichorium Intybus_ wird in ziemlich beträchtlichem Umfange zur Herstellung des Cichorienkaffee kultiviert in Mitteldeutschland (Magdeburg, Braunschweig), dann bei Freiburg, Ludwigsburg und Heilbronn, in Belgien und Nordfrankreich sowie in Indien. C. 11000 Hektar werden jetzt jährlich mit _Cichorie_ bebaut. 1909 bestanden c. 500 Cichorienfabriken. Davon c. 100 in Deutschland. Der jährliche Konsum Europas übersteigt 20 Mill. Pfund. Der Verbrauch an C. beträgt in Deutschland 1,85 kg pro Kopf und Jahr (Kaffee: 2,38 kg). Zur Bereitung des Cichorienkaffee werden die Wurzeln gewaschen und -- oft unter Zusatz von Fett -- in offenen oder geschlossenen Darren oder rotierenden Rösttrommeln gedörrt. Die ziemlich hygroskopische gebrannte Cichorie wird meist mit Wasser oder Sirup vermischt und in Formen gepreßt. Über die Bestandteile der ungerösteten Wurzel vgl. oben S. 204. Der Gehalt an wasserlöslichen Bestandteilen schwankt bei der +gerösteten Handelscichorie+ besonders infolge verschiedener Rösttemperatur (~Kornauth~) sehr, das Wasserextrakt von 60,2-85,5%, der Zuckergehalt von 8,2-23,3%. Als Mittel von zahlreichen Analysen gibt ~König~ folgende Prozentzahlen für +geröstete Cichorie+ an: +Wasser+ 11,76, +Stickstoffsubstanz+ 7,35, +Ätherextrakt+ 2,48, +Zucker+ 17,46, +Karamel+ 12,74, +Inulin+ 6,61, +sonstige stickstoffreie Extraktstoffe+ 26,58, +Rohfaser+ 10,03, +Asche+ 4,99, +Wasserextrakt+ 63,33. +Deutschland+ importierte 1909: 112788 dz +Cichorienwurzeln+, fast alles aus Belgien, etwas auch aus den Niederlanden, und exportierte 20605 dz, besonders nach Österreich-Ungarn. Gebrannte Cichorien importierte Deutschland 1909 22773 dz, besonders aus Frankreich. Deutschland produzierte 1907 für 5,75 Mill. M., Österreich 1906 für 3,73 Mill. Kr. (~Hueppe~). +Frankreich+ führte 1908 ungeröstete +Cichorie+ 1453 Quintal. ein, besonders aus Belgien, wenig aus Italien und Algier; geröstete Cichorie 42721 Qintal., fast ganz aus Belgien. Zur Unterscheidung von Cichorien- und Löwenzahnkaffee dienen die Gefäße, die bei _Taraxacum_ bis 80 mik weit und mit schmalen, langgestreckten Tüpfeln versehen sind. Die Gefäße bei _Cichorium_ sind bis 50 mik weit, die Tüpfel rundlicher (~Hartwich~). Über weitere Cichoriensurrogate (besonders Rübenkaffee aus Rübenschnitzeln) vgl. ~Moeller-Winton~, Mikroskopie, ~Vogl~, Nahrungs- n. Genußmittel, ~Fischer-Hartwich~, Pharm. Praxis. Geröstete Cichorienwurzel wurde schon vor Bekanntwerden des Kaffees als Genußmittel benutzt (~Hartwich~). ~Alpini~ vergleicht den Kaffee direkt mit Cichoriendecoct. Doch scheint der Brauch keine weite Verbreitung gefunden zu haben. Im XIX. Jahrh. wurde geröstete Cichorie zuerst von ~Timme~ in Arnstadt benutzt. Major ~von Heine~ und ~C. G. Förster~ führten 1763 den Cichorienkaffee ein und nahmen 1770 ein Privilegium für den Anbau und den Vertrieb der Wurzel in Preußen (~Moeller~). Die ersten Kulturen befanden sich bei Berlin, Breslau und Magdeburg. 1790-1797 entstanden dort 14 Fabriken des «Preußischen Kaffee» (~Hartwich~). _Cichorie_ ist das älteste und noch jetzt verbreitetste Kaffeesurrogat. Als Kaffeesurrogat wurde die geröstete Wurzel seit 1690 in Holland benutzt, in Preußen bürgerte sie sich namentlich durch die Bemühungen ~Friedrichs des Grossen~ ein, der alle Kaffeesurrogate begünstigte (I, S. 1024), in Frankreich seit 1771 (~Dorveaux~). =Lit.= ~König~, Nahrungsm. -- ~Schulze~, Landw. Vers. Stat. 1866, 203. -- ~von Bibra~, Der Kaffee u. seine Surrogate. 1858. -- ~Hasall~, Foods, its adulteration and the methods for their detection. London 1876. -- ~F. Hueppe~, Unters. über Zichorie 1908. -- ~Nicolai~, Der Kaffee u. seine Ersatzmittel. 1901. -- ~Boehnke-Reich~, Der Kaffee u. seine Bezieh. z. Leben. 1885. -- ~Trillich~, Die Kaffeesurrogate. München 1889 u. 1892. -- ~Hartwich~, Die menschl. Genußmittel. 1910. -- ~Wolff~, Ann. chim. anal. 1899. -- ~Krauch~, Ber. d. d. chem. Ges. 1878, II, 277. -- Zahlreiche Cichorienanalysen bei ~König~, 4. Aufl. I, 997. -- ~Vogl~ a. a. O. -- ~Moeller~ a. a. O. usw. Rad. Taraxaci. =Syn.= Löwenzahn-, Pfaffenröhrlein-Wurzel -- racine de dent de lion, pissenlit (franz.) -- dandelion root, blowball, cankerwort (engl.) -- paárdebloemwortel (holl.) -- gyermeklánczfű győker (ung.) -- ῥίζα πικραφάκης (n.-griech.) -- radice di tarassaco (ital.) -- in Indien: dudhal, baran, kánphúl. Einige der sehr zahlreichen deutschen Volksnamen s. unter Etymologie. -- Mhd.: Pipawe, Säuschnabel, -- mnd.: Pympanne, Soege- oder Sundistel. -- Im Mittelalter: corona monachi, custos hortorum, dens leonis, rostrum porcinum, solsequium minus, aphaca. Bei ~Simon Seth~: φάκη -- bei ~Matthioli~ auch: Dens caninus, ambugia, ambuleia (auch für Cichorium!), bei ~Gesner~: Hieracium minus. =Stammpflanze= und =Systemat. Stellung=. =Taraxacum officinale= ~Weber~ (in ~Wigg.~ Prim. Fl. Hols. 56) [Taraxacum officinale (~Withering~) ~Wiggers~, Taraxacum Taraxacum (L.) ~Karstens~, T. vulgare ~Schrank~, T. Dens leonis ~Desf.~, Leontodon Taraxacum L., L. vulgare ~Lam.~, L. officinalis ~With.~, Hedypnois Taraxacum ~Scop.~]. Die Pflanze variiert: a) _genuinum_ ~Koch~ (_Leontodon Taraxacum_ ~Poll.~), b) _Tarax. glaucescens_ M. B., c) _T. corniculatum_ ~Dc.~, d) _T. alpinum_ ~Hoppe~, e) _T. taraxoides_ ~Hoppe~, f) _T. lividum_ W. K., (_T. palustre_ ~Sm.~), g) _T. leptocephalum_ ~Rchb.~ +Compositae+, Cichorieae -- Crepidinae. =Etym.= Taraxacum ist wohl aus dem Arabischen: tarachakûn, tharachschakuk (so bei ~Ibn Baithar~) tarakshagan, tarascon (= eine Art wilder Cichorie), pers.: tarkhaskqun (so bei ~Ibn Sina~) umgebildet und dies aus dem Griechischen τάραξις (= eine Augenkrankheit) und ἀκέομαι (= heilen) entstanden, da alle sog. Cichorien, zu denen auch _Taraxacum_ gerechnet wurde (in Graubünden und in Salzburg heißt noch heute _Taraxacum_: Cichorien, in Bern: wilde Wägluëge), Augenheilmittel waren (s. Cichorium). Bei ~Bock~ heißt T. auch Augenwurzel. Andere leiten das Wort von ταράσσειν (= stören) ab und bringen es in Beziehung mit der abführenden Wirkung; noch andere von τράξυνον oder τρόξυνον (= Wilder Lattich). -- +Hedypnois+ von ἡδύς = süß und πνεῦμα = Atem. -- +Leontodon+ aus λέων (= Löwe) und ὀδούς (= Zahn) wegen der eigenartig gezähnten Blätter (daher auch der engl. Name hawkbit = Habichtsbiß). Wurde zunächst in dens leonis (so im Ortus sanitatis, in der Alphita und in den mittelenglischen Medizinbüchern, in der Alphita auch: doloroune) und dann in alle anderen Sprachen übersetzt: Lewenzahn, Löwenzehe (deutsch, so bei ~Bock~) -- dent de lion, Liondent (franz.) -- dandelion (engl., in ~Meddygon Myddfai~ [XIII. Jahrh. I, S. 683]: dent y llew). -- +Kettenblume+ (holl. Kettingbloem), weil die Kinder aus den ineinander gesteckten hohlen Stengeln Ketten bilden. -- +Pustblume+, weil die Kinder sich durch Abblasen der reifen, mit Flugapparaten versehenen Früchte belustigen (~Kanngiesser~). -- +Mönchshaupt+, +Pfaffen-+ oder +Mönchsblatten+ (so bei ~Fuchs~, im Gothaer Arzneibuch (I, S. 680): papenplatte; in den mittelenglischen Medizinbüchern: Capud monachi, franz.: Couronne de moine) wegen des Aussehens des kahlen, von den Fruchten befreiten Rezeptakulums. -- +Luchten+, +Lichter+, +Lampen+ wegen der Blütenstände. -- Milchbluome, Milchdistel, Milchrödel wegen des Milchsaftes. -- Wegen der diuretischen Wirkung: Seichblume, Pissblume (bei ~Matthioli~ und ~Anguillara~: pisciainletto, franz.: pissenlit, holl.: pis in t’bed, pissebloem). Verächtlich wegen der großen Häufigkeit und Lästigkeit: Knotenblume, Säublume (in der Schweiz), Kuhblume, Schäfchenblume, Pferdeblume (paardenbloem), Hundeblume (holl. hondsbloem, franz. pissechien), Lusblom. -- Butterblume, Ankeblume, Dotterblume (so bei ~Bock~) wegen der gelben Farbe. -- An den hohlen Stengel erinnern Bezeichnungen wie: Röhrlinkraut (bei ~Gesner~, Hort. germ.), Pfaffenröhrlein. -- Erotische Beziehungen verraten: Pampelblume, Bumbaumel u. and. =Beschreibung der Pflanze.= Die Pflanze ist über die ganze nördliche Halbkugel bis in die arktische Region verbreitet und in vielen Gegenden ein lästiges Unkraut der Äcker, Wiesen und Gärten. Sie findet sich ebenso in Europa wie in Nordafrika, in Vorderasien, Persien, Himalaya, Indien, China, wie auch, wohl dorthin verschleppt, in Nordamerika und geht nach Norden bis Grönland, Island und Novaja Semlja und weit hinauf auch ins Gebirge. [Illustration: Fig. 75. _Taraxacum officinale._ bl basale Blattrosette, rh Rhizom, hw Hauptwurzel, w Nebenwurzeln. [Aus +Karsten-Oltmanns+, Pharmakognosie.]] Der Habitus der perennierenden Pflanze wechselt etwas nach dem Standort. Die arktischen und Gebirgsformen (_T. palustre_ ~Dc.~ und _T. nudum_ ~Jord.~) sind z. B. kleiner. An trockenen Standorten bildet der Löwenzahn eine horizontal ausgebreitete Rosette tiefgesägter derber Blätter, an feuchten, zwischen hohem Gras, richten sich die dann nur schwach gezähnelten großen, zarten Blätter vertikal auf. Die lange, oft tief (5 dcm und mehr) in den Boden dringende, meist einfache Wurzel trägt ein kurzes, bisweilen mehrköpfiges Rhizom (Grundachse) (Fig. 75). Die lanzettlichen, kahlen oder wolligen Laubblätter bilden eine grundständige Rosette. Ihr Rand ist schrotsägeförmig («Löwenzahn»). Die Pflanze hat keine Winterruhe. Sie treibt auch über Winter Blätter. Daher fehlen die Knospenschuppen. Als Schutz der jungen Blätter mögen vielzellige Haare dienen, die in großen Mengen von deren Oberhaut gebildet werden (~A. Meyer~, ~Karsten-Oltmanns~). Die Vielköpfigkeit wird dadurch erzeugt, daß nach Absterben des Endsprosses in den Achseln der oberen Blätter seitliche Knospen sich entwickeln. Die Stengel sind kahl. Sie tragen keine Blätter, sondern an der Spitze nur ein Blütenkörbchen, dessen Hüllblätter lineal sind, die äußeren abwärts gebogen. Sämtliche Blüten des Körbchens sind hermaphrodite Zungenblüten, von goldgelber Farbe, mit einem Pappus (Kelch) am Grunde der Kronenröhre. Abends oder bei regnerischem Wetter schließen sich die Körbchen. Der zwischen Fruchtknoten und Pappus liegende Teil verlängert sich, wenn die Krone abgefallen ist, und so sitzt der sich horizontal ausbreitende Haarkranz schließlich mit langem Stiele, der dreimal so lang ist als die Frucht, dieser auf. Die Pappusteile der einzelnen Früchte orientieren sich zu einer Hohlkugel, so daß das reife Körbchen rund ist. Die lineal-keilförmigen, gerippten, hellbraunen Früchte lösen sich zur Reifezeit leicht vom kahlen, weißen Fruchtboden, der wie eine Glatze aussieht «Pfaffenplatte»), ab und werden, da der Pappus als Flugorgan dient, wie Luftschiffe, auf weite Strecken hin getragen, was wesentlich zur Verbreitung der Pflanze beiträgt. Bei _Taraxacum_ findet sich Parthenogenesis. Die frische Wurzel ist braungelb, fleischig und milcht stark beim Verletzen. Sie schrumpft beim Trocknen beträchtlich. Die trockene Wurzel milcht nicht. Die frische Wurzel bricht leicht, ist daher schwer auszugraben. Der bald mehr süßliche, bald mehr bittere Geschmack tritt in sehr verschiedener Weise hervor je nach dem Entwicklungsstadium, der Einsammlungszeit und, wie ~Flückiger~ meint, auch der Bodenbeschaffenheit. Während die Wurzel (wie überhaupt die ganze Pflanze) im Frühjahr reich an Milchsaft ist, ist sie im Herbst reich an Inulin. Das deutsche Arzneibuch schreibt die im Frühjahr vor der Blütezeit zu sammelnde Wurzel samt den Blättern vor (auch die Japanische Pharmakopoëe 1907 hat _Rad. taraxaci cum herba_), die österreichische Pharmakopoëe läßt die Blätter im Frühjahr, die Wurzel im Spätherbst sammeln, die schweizerische nur die Wurzeln, diese im Spätherbst. _Taraxacum_ wird in Indien in den Nordwest-Provinzen, besonders bei Saharanpur für die Government sanitary establishments angebaut. Wir benutzen nur die wildwachsende Pflanze, die in größeren Mengen z. B. in Thüringen gesammelt wird, aber auch in der Schweiz das gemeinste aller Unkräuter ist. Österreich exportiert _Rad. taraxaci_ (~Mitlacher~). =Lit.= Abbild.: ~Berg-Schmidt~, Atlas t. 8 (dort die florist.-Literatur), ~Pabst-Köhler~, t. 5 und ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants t. 159. -- ~Gilg~, Pharmakogn. 360. -- ~Karsten-Oltmanns~, Pharmakognosie. -- ~Gideon Weidemann~, Beitr. z. Morphol. d. perennier. Gewächse. Diss. Marburg 1871. -- ~Schübeler~, Pflanzenwelt Norwegens. 1875. -- ~Alice Henkel~, U. S. Dep. Agric. 1906, Nr. 89. -- ~Eberle~, Proc. Am. ph. assoc. 1905. -- ~Holmes~ (Stammpflanze). Pharm. Journ. 1900, 65, 419. -- Die Morphologie ausführlich in ~A. Meyer~, Drogenkunde. -- Einsammlung: ~Elborne and Wilson~, Pharm. Journ. (3) Nr. 773. =Pathologie.= Auf den oberirdischen Teilen von _Taraxacum officinale_ sind zahlreiche Parasiten bekannt, z. B. _Olpidium simulans_, _Synchytrium Taraxaci_, _Sphaerotheca Humuli_, _Puccinia Taraxaci_, _P. variabilis_, die Aecidienform von _Puccinia sitvatica_ u. a., doch dürften dieselben kaum in wesentlicher Weise die unterirdischen Teile schädigen. Auf letzteren wird _Torula rhizophila_ ~Corda~ _subsp. Taraxaci_ ~Desm.~ angegeben (~Ed. Fischer~). Über die tierischen Schädlinge berichtet ~Israël~: Auf Löwenzahn lebt eine große Anzahl von Schmetterlingsraupen. Der Lepidopterologe benutzt daher Löwenzahn als eine Art Universalfutter. Fast alle polyphagen Raupen, namentlich eine große Anzahl von Eulenraupen, nehmen in der Gefangenschaft gerne Löwenzahn als Futter an. In der Natur findet man auf dieser Pflanze viele Raupen, die nur wohl gelegentlich die Blätter als Futter annehmen, aber auch gerade so gern alle möglichen anderen Pflanzen annehmen. Es seien nur einige erwähnt. _Zygaena Filipendulae_ L. auch an _Trifolium_arten usw. _Bombyx trifolii_ W. V. _Bombyx rubi_ L. _Crateronyx dumi_ L. _Crateronyx taraxaci_ W. V. _Dasychira fascelina_ L., _Spilosoma mendica_ Cl., _Spilosoma luctifera_ W. V., _Spilosoma fuliginosa_ L., auch an allen möglichen anderen Pflanzen. Mehrere _Nemeophila_- und _Arctia_arten leben u. a. an Löwenzahn, _Mania maura_ L. auch an Erlen, Weiden, Epheu, Berberitze usw. _Hadena porphyrea_ ~Esp.~, _Orthosia humilis_ W. V. _Mamestra dentina_ W. V., _M. albicolon_ ~Hbn.~, _M. leucophaea_ W. V., _M. serena_ W. V. Mehrere _Agrotis_- und _Polia_arten leben an _Taraxacum_, ferner einige _Cucullia_- und _Orrhodia_- und _Hadena_arten usw. usw. Unter den Spannern sind es besonders _Acidalia_- und _Cidaria_arten, die die Blätter von _Taraxacum_ fressen. Die Droge unterliegt, wie die anderen Inulinwurzeln, sehr dem Wurmfraß (_Anobium paniceum_ u. and.). In ihr findet sich bisweilen _Tinea zeae_, die indische Mehlmotte (~Jackson~). =Beschreibung der Droge.= _Taraxacum_ gehört zu den tiefwurzeligen Pflanzen (s. oben). Die Wurzel ist spindelförmig, graubraun, grob-längsrunzlig mit nur wenigen oder keinen Nebenwurzeln besetzt, einfach oder wenige Fasern bildend und oben einen rundlichen, querrunzlichen Wurzelkopf (Rhizom) tragend. Dieses Rhizom ist meist nur kurz (Fig. 76, rh). Doch findet man bisweilen, wenn die Pflanze z. B. beim Umackern des Bodens mit Erde bedeckt worden war, längere gestreckte. Ältere Achsenstücke sind bisweilen durch tiefgreifende Peridermbildung in mehr oder weniger zahlreiche netzförmig miteinander zusammenhänge Stränge gespalten (~A. Meyer~). Nach dem Aufweichen quer durchschnitten zeigt die Wurzel eine breite Rinde, die mindestens den Durchmesser des Holzkörpers besitzt, in der man schon mit bloßem Auge, besser mit der Lupe, +zahlreiche konzentrische Zonen+ bemerkt (Fig. 76,1), die durch Gruppen von Milchsaftschläuchen und Siebröhren gebildet werden. Der gelbe marklose, undeutlich strahlige Holzkörper ist entweder regelmäßig als solider Zentralzylinder entwickelt oder, und dies besonders gegen die Wurzelbasis hin und bei dickeren Wurzeln, unregelmäßig zerklüftet (Ph. helv. Ed. IV). Die beiden primären Markstrahlen sind bei dünnen Wurzeln deutlich. Das Lupenbild des Rhizomquerschnittes (Fig. 76,2) zeigt ein zentrales Mark, einen darumgelegten Kreis von Gefäßbündeln und in der breiten Rinde die gleichen konzentrischen Zonen wie die Wurzel. Da und dort sind Blattspurstränge sichtbar. Am Rhizom findet man die Ansätze der tiefst inserierten Blätter oder deren Narben. Da der Wurzel mechanische Elemente fehlen, bricht sie gerade-körnig. [Illustration: Fig. 76. _Taraxacum officinale._ 1. Lupenbild des Wurzel-Querschnittes. 2. Lupenbild des Rhizom-Querschnittes. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Die Angabe ~Schrenks~ (Jahresb. Pharm. 1887, 67), daß die _Taraxacum_+wurzel+ Mark enthalte, beruht auf einem Irrtum. Er hat wohl den Rhizomteil mit der Wurzel verwechselt. Die oben noch die Blattrosette tragende Wurzel ist unter der Bezeichnung _Rad. taraxaci cum herba_ im Handel. =Lit.= ~Bentley~, On the characters of Dandelion root and the means whereby it may be distinguished from other roots (einiger Kompositen). Pharm. Journ. XVI, 1856/57, 304 (mit Abbild.). =Verfälschungen.= ~Giles~ fand (1851) in der Droge die Wurzeln von _Apargia hispida_. Als Verfälschungen werden auch genannt _Rad. cichorei_ (~Rusby~, s. oben S. 204) und die Wurzel von _Rumex crispus_. Die mikroskopische Untersuchung läßt diese Beimischungen leicht erkennen. Keine der genannten Wurzeln zeigt die konzentrische Zonung der Rinde. Die Rinde ist bei _Cichorium_ radial gestreift. =Lit.= ~Giles~, Root of rough hawkbit (Apargia hispida) substituted for Taraxacum. Pharm. Journ. XI, 1851/52, 107. [Illustration: Fig. 77. _Taraxacum officinale._ Querschnitt durch die Wurzel am Cambium (c), sb Siebröhren, obl obliterierte Siebröhren, m Milchröhren, g Gefäße, hp Holzparenchym. [Aus +Tschirch+, Angewandte Anatomie.]] [Illustration: Fig. 78. _Taraxacum officinale._ Milchröhrensystem der Wurzel. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anatomie.= Der primäre Bau der Wurzel, der an zarten Nebenwurzeln der Droge vom Durchmesser 0,12-0,20 mm noch kenntlich ist, ist diarch (oder triarch). Die primäre Rinde ist nur 2-5 Zellreihen dick. Sie führt Milchröhren, ebenso wie die primären Siebteile. Frühzeitig geht der primäre Bau in den sekundären über. Schon 0,25 mm dicke Wurzeln zeigen sekundäre Gefäße, die weiter zu sein pflegen als die primären, und bei einer 0,5 mm dicken Wurzel ist der Cambiumring kreisförmig geschlossen. Die primäre Rinde bleibt oft lange erhalten. Meist wird sie erst, wenn die Wurzel mehrere Millimeter dick ist, abgeworfen. Die dicke Hauptwurzel, aus der die Droge vornehmlich besteht, ist außen von mehrreihigem Pericambialkork bedeckt. Die sekundäre Rinde besteht zur Hauptmasse aus vom Cambium her sehr regelmäßig in Radialreihen angeordnetem Phloëmparenchym, dessen dünnwandige Zellen in die Länge gestreckt, alle gleichlang und gleichhoch sind und daher auch auf dem Längsschnitt in regelmäßigen Radialreihen liegen. In der sekundären Rinde liegen, eingebettet in das Rindenparenchym, 10-30 konzentrische Kreise kleiner Gruppen, die aus Siebröhren und Milchröhren bestehen (Fig. 79). Die letzteren gehören zu den gegliederten Milchröhren, wie sie für die Cichoraceen charakteristisch sind. Sie bilden ein in tangentialer Richtung anastomosierendes Netz (Fig. 78), das, sobald eine Stelle desselben bei der frischen Wurzel durch das Messer verletzt wird, seinen ganzen Inhalt ausfließen läßt. Der dabei reichlich austretende weiße Milchsaft wird bald schwarzbraun. Bei der Droge ist der Inhalt, der sich mit Alkannin-Essigsäure färbt und neben Eiweiß auch den Bitterstoff (Taraxacin) und die Gutta (Taraxacerin) enthält, jedoch geronnen und selbst relativ resistent gegen Alkohol geworden. Die Milchröhren besitzen eine Weite von 12-22 mik. Nie anastomosieren die Milchröhren zweier Zonen, stets nur die derselben in tangentialer Richtung. Bei einer 4,5 mm dicken Wurzel zähle ich 9, bei einer 6 mm dicken 14 Kreise. Durch dieselben bekommt die Rinde ihr charakteristisch gezontes Aussehn. Die Siebröhren und die Milchröhren sind etwa gleich weit, beide etwas enger als das umgebende Phloëmparenchym. Die Milchröhren prävalieren bei weitem, so daß sie die eigentlich leitenden Organe der sekundären Rinde sind. Sie sind häufig mit Ausstülpungen versehen (Fig. 78), an denen sie oft durch Resorption der trennenden Wände miteinander verschmelzen. Ihren körnigen Inhalt kann man sich sehr schön sichtbar machen, indem man die frische Wurzel in Alkohol legt und die Längsschnitte mit Jod tingiert. Bei dieser Behandlungsweise erhält man auch das in der Wurzel in reichlicher Menge im Zellsaft gelöst enthaltene +Inulin+ in prächtigen Sphaerokristallen (Fig. 74), Aggregaten zierlicher oft dentritisch verzweigter Nadeln und isolierten verzweigten Nadeln auskristallisiert, besonders schön in den großen Phloëmparenchymzellen. Rindenstrahlen sind in der Rinde nicht zu erkennen (Fig. 77). In dem zentralen Holzkörper sind Markstrahlen nicht zu sehen. Die Bildung des sekundären Holzes erfolgt also regellos und nicht strahlig, oder doch wenigstens sehr undeutlich strahlig. Zwischen den dicht gedrängten leiterartig oder netzleistenförmig verdickten (Fig. 79), 10-45 mik. weiten, im Längsverlauf schwachgeschlängelten, im Querschnitt eckig konturierten Gefäßen liegen schmale Holzparenchymbänder. Im Zentrum des Ganzen sieht man bisweilen noch die englumigen primären Gefäße. [Illustration: Fig. 79. _Taraxacum officinale._ Aus dem Längsschnitt durch die Wurzel. s Siebröhren, Mi Milchröhre, gf Gefäße, Er Ersatzfaser. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Im äußeren Teile der sekundären Rinde sind die Milchröhren spärlicher, auch weniger regelmäßig angeordnet. Die Milchröhren werden von Siebröhren begleitet, deren Glieder etwa so lang sind wie Phloëmparenchym- und Cambiumzellen. Bei den Sieb-Milchröhren-Gruppen der Rinde bemerkt man +Pektinisierung+ der Mittellamellen. Die Phloëmparenchymzellen zeigen bei Behandlung mit Chlorzinkjod oft eine feine Streifung, machen also den Eindruck von Ersatzfasern. Sie enthalten im Zellsaft gelöst das Inulin (s. oben S. 201), sehr selten Stärke. Innerhalb des mehrreihigen Cambiums liegt der Holzkörper, der zu innerst noch wenige zarte primäre Gefäße erkennen läßt. Die sekundären liegen ziemlich unregelmäßig eingebettet in Holzparenchym und zarte Ersatzfasern (Fig. 79). Sekundäre Markstrahlen treten nicht deutlich hervor -- nur bei jüngeren Wurzeln zwei breite primäre (Fig. 76, 1). Die engsten Gefäße sind spiralig verdickt, die weiteren zeigen Leiter- und Netzleistenverdickungen. Die Nebenwurzeln zeigen deutliche +Heterorhizie+ (~Tschirch~): Ernährungswurzeln und Befestigungswurzeln. Letztere besitzen einen zentralen Libriformzylinder. Das Rhizom besitzt die gleichen Elemente, jedoch ein mehr oder weniger großes Mark (Fig. 76, 2). In der Stärkescheide der Blätter findet sich Stärke. Milchröhren treten auch in die Blattnerven höherer Ordnung ein. Die Blätter tragen 6-8zellige, dünnwandige, oft kollabierte Haare und an den Rippen der Blattunterseite mehrzellige Borstenhaare mit spornartig ausgebogenen Enden (~Zörnig~). =Lit.= ~Hanstein~, Milchsaftgefäße 1864, Taf. IX. -- ~Dippel~, Entsteh. d. Milchsaftgefäße. Rotterdam 1865. Taf. V. -- ~De Bary~, Anatomie S. 489, 519, 533 u. 540. -- ~Flückiger-Tschirch~, Grundlagen. -- ~Arthur Meyer~, Wissensch. Drogenkunde (hier die Anatomie ausführlich). -- ~Vogl~, Interzellulars. u. Milchsaftgef. in der Wurzel d. gemeinen Löwenzahns. Sitzungsb. d. Wien. Akad. 48 (1863) u. Beitr. z. Kenntn. d. Milchsaftorg. d. Pfl. ~Pringsheims~ Jahrb. 5. und Nahrungs- und Genußm. -- ~Tschirch-Oesterle~, Atlas. -- ~Thouvenin~, Contribut à l’étude anatom. des racines de la fam. des Composées. Thèse Nancy 1884 avec 6 tabl. -- ~Holfert~, Primäre Anlage d. Wurzeln. Arch. Ph. 1889, 481. -- ~Zörnig~, Arzneidrogen 1909. -- ~Schrenk~, Amer. Drugg. 1887. -- ~Dohme~, Drug. Circ. 1897, 178. -- Pulver: ~Kraemer~, Proc. am. pharm. assoc. 1898, 305. -- Anat. Abb.: ~Planchon-Collin~, Les drogues simples II, Fig. 647, ~Moeller-Winton~ a. a. O. und ~Tschirch~, Angew. Anatomie, Fig. 601. =Chemie.= Der Hauptbestandteil der _Rad. taraxaci_ ist das +Inulin+, von dem ~Rundquist~ (1904) bis 39,65% fand (die Angabe von ~Sayre~, der 79,02% (!) Inulin gefunden haben will, beruht wohl auf einem Fehler der Bestimmungsmethode). ~Koch~ fand 15,6% in Handelsware, in selbst gegrabener 5,2%, neben c. 1% +Saccharose+, 0,46% +Glukose+, Harz und Schleim. Die Löwenzahnwurzel ist, wenn wir auf das Inulin abstellen, im Spätherbst zu sammeln, da sie zu dieser Zeit am reichsten an Inulin ist. Eine im Oktober gegrabene _Rad. taraxaci_ enthielt 24,3%, eine im März gesammelte 1,7% Inulin (~Dragendorff~). An Stelle des Inulins tritt im Winter bisweilen Stärke (~Dippel~), im Frühjahr ein +Zucker+ (bis 17%) und etwa ebensoviel Lävulin auf. Junge Wurzeln des Löwenzahn enthalten bis zu 20% des nicht süßen, optisch inaktiven +Lävulins+ (C₆H₁₀O₅)ₙ (+Synanthrose+ oder +Inulose+, ~Lefranc~, ~Popp~, ~Dragendorff~, vgl. S. 218). Der Zucker scheint zur Zeit der kräftigsten Entwicklung der Pflanze in größter Menge gebildet zu werden und gegen den Herbst abzunehmen, im Winter aber wieder reichlicher aufzutreten, da die Wurzel nach den Winterfrösten wieder süßer schmeckt als im Herbst. Fetter Kulturboden begünstigt die Zuckerbildung (~Dragendorff~). Die Zellwand beträgt 23,1% des Gewichtes, davon sind Hemizellulosen 13,7% und Zellulose 9,4% (~Albert Kleiber~). ~Storer~ fand bei der Hydrolyse +Mannose+. Die Membranen enthalten also ein Mannan. Es unterliegt keinem Zweifel, daß die frische stark milchende Wurzel, besonders wenn sie noch die Blätter besitzt (s. oben), eine ganz andere Wirkung hat wie die getrocknete, die wir übrigens als _Rad. taraxaconis_ erst in einer Taxe von Hamburg 1587 finden (I, S. 818) und die lange nicht so bitter ist, wie die frische. Der bittere Geschmack tritt vor und nach der Blütezeit am kräftigsten hervor, und besonders bei Pflanzen, die auf magerem Boden wachsen. Die Extrakte haben daher eine ganz verschiedene Zusammensetzung, je nachdem sie aus der frischen Wurzel (und dem Kraut) oder der trockenen Wurzel bereitet und ob sie im März, im Juli oder im Herbst dargestellt wurden (~Widnmann~, ~Frickhinger~). Die Extraktausbeute wechselt ebenfalls sehr, je nach der Zeit der Einsammlung (Angaben bei ~Pereira~). Der Extraktgehalt der _Rad. taraxaci_ beträgt nach ~Dieterich~ 19,9, nach ~La Wall~ 35% (s. unten). Der frische weiße Milchsaft, der zu einer braunen bröckeligen Masse (+Leontodonium+) gerinnt, ist eine Emulsion aus Eiweiß, Harz und einem guttaartigen (?) Körper, den man +Taraxacerin+ (C₈H₁₀O? Kautschuk ~Pfaffs~?) genannt hat (~Kromayer~), und enthält auch den wasserlöslichen, kristallisierbaren (~Squire~, ~Stoddart~) Bitterstoff, das +Taraxacin+ (~Polex~, ~Kromayer~), auf den wohl die Wirkung des Succus recens beruht. Taraxacin und Taraxacerin bedürfen jedoch erneuten Studiums. Stellen wir auf den Bitterstoff ab, so muß die Wurzel im Juli oder im März gesammelt werden. Das bittere +Taraxacin+, das ~Sayre~ aus dem Chloroformauszuge in Kristallen erhielt (es kristallisiert aus Aceton), ist zu 0,05% in der Droge erhalten (die bei der Behandlung des amorphen Taraxacins mit H₂O₂ entstehende Taraxacinsäure ist Oxalsäure). Es wird von einem scharfen Stoffe begleitet. Auch das wachsartige Taraxacerin (C₉H₁₅O) erhielt ~Sayre~ kristallinisch. ~Sayre~ glaubte (1898) auch 0,002% eines Alkaloides, +Taraxin+, gefunden zu haben. ~Zwaluwenburg~ und ~Gomberg~ konnten (wenigstens in im Oktober und November gesammelten Wurzeln) kein Alkaloid nachweisen, wohl aber einen nicht alkalisch reagierenden Körper mit Alkaloidreaktionen. Ob das aus dem Extractum taraxaci bisweilen auskristallisierende +Calciumlaktat+ in der Pflanze präformiert ist oder sich erst (aus Zucker, ~Ludwig~) nachträglich bildet, ist noch zu untersuchen. Der besonders in vergorenen, aber auch in frischen Auszügen der Wurzel auftretende +Mannit+ [~Widnmann~ (1832), ~Frickhinger~ (1840), T. u. H. ~Smith~ (1849)] ist wohl ein erst bei der Verarbeitung auftretendes Produkt. ~Hermbstädt~ glaubte +Weinstein+ (?) gefunden zu haben. Der in den Blättern, Blüten und Stengeln von ~Marmé~ gefundene +Inosit+ fehlt der Wurzel (~Stillé~, ~Maisch~). Doch glaubte ihn ~Marmé~ auch dort gefunden zu haben. Der Feuchtigkeitsgehalt beträgt 13,4% (~Nygård~). Die +Asche+ der Wurzel beträgt 7,8% im Frühjahr, 5,5% im Herbst (~Frickhinger~). Die im April gegrabene Wurzel lieferte bei 100° getrocknet nach ~Flückiger~ 5,24%, ~Nygård~ 4,85% Asche (Analyse der Asche bei ~Sayre~ 1897). ~Hauke~ fand 6,85-7,72%; obere Grenzzahl 8%. Die Pharm. austr. fordert für die Blätter höchstens 16%, für die Wurzel höchstens 8% Asche. In den Blättern findet sich neben Inosit Schleim, Zucker, Harz (~Sprengel~). Im Mai mit Blütenknospen gesammelte Blätter enthielten 2,81% Stickstoffsubstanz, 0,69% Fett, 7,45% stickstofffreie Extraktivstoffe (Zucker), 1,90% Asche (~Storer~ und ~Lewis~). ~Sayre~ konnte (1894) keinen Unterschied im Gehalt der Droge an Taraxacin, Harz und reduzierendem Zucker finden, ob die Pflanze im Hochlande Amerikas oder in der Ebene gesammelt wurde. +Die Septemberwurzel enthält das meiste Taraxacin, die Märzwurzel gibt das meiste Extrakt, die Augustwurzel enthält das meiste Inulin und die Oktoberwurzel das meiste Lävulin+ (~Sayre~). Der als Cichorienersatz verwendete =Löwenzahnkaffee= enthält 8,46% Wasser und in der Trockensubstanz: 65,74% wässriges Extrakt, 1,53% Zucker, 18,64% Rohfaser und in der Asche wasserlöslich 3,20%, unlöslich 4% (~Kornauth~). =Chemie.= Ältere Analysen von ~Delius~ (De taraxaco. Erlangen 1754), ~John~ (Chem. Unters. der Löwenzahnmilch. Chem. Schr. IV u. in ~Gmelin~, Handb. d. Chem. II, 1827) und ~Squire~ (~Brande~, Dict. of mat. med. 532). -- ~Pfaff~, Syst. d. Mat. med. VI. -- ~Pereira~, Elem. of mat. med. -- ~Polex~, Arch. Pharm. 19, 1839, 50, Pharm. Journ. I, 425. -- ~Jürgens~, Diss. Dorpat. -- ~Dragendorff~ a. a. O. -- ~Widnmann~, Buchn. Repert. 43 (1832), 281. -- ~Frickhinger~, Vgl. Analys. der im Herbst u. Frühj. gesammelten Wurzeln. Rep. 23, 45. Pharm. Jahresb. 1840. -- ~Buchner~, ebenda 1841. -- T. und H. ~Smith~ (mit ~Wilson~ u. ~Stenhouse~), On the extraction of mannite from the root of Dandelion. Pharm. Journ. 8 (1848/49), 480. -- ~Schweitzer~, Chem. News II (Arch. Pharm. 1861, 380). -- ~Ludwig~, Arch. d. Pharm. 107 (1861), 8. -- ~Marmé~, Lieb. Ann. 129 (1864). -- ~Symes~, Pharm. Journ. (3) 10 (1869), 361. -- ~Elborne~, Succus Taraxaci. Pharm. Journ. 15 (1884/85) (dort die ältere Lit.). -- ~Kromayer~, Arch. Pharm. 1861, 6 und die Bitterstoffe. 1862. -- ~La Wall~ (Extrakt), Amer. journ. pharm. 1896, 7. -- ~Sayre~, Amer. Journ. pharm. 1894, 505, 1895, 465, 1896, 518, 1897, 494 und The important constituents of Taraxacum root. Amer. journ. ph. 1897, 543. -- ~Sayre~, Alkaloid constituents of Taraxacum. Proc. Amer. pharm. Assoc. 1898, 341. -- ~Zwaluwenburg~ und ~Gomberg~, Amer. journ. pharm. 1899, 500 (Proc. am. ph. ass. 1899, 305). -- ~Stoddart~, Pharm. Journ. 1870/71, 882.-- ~Storer~ und ~Lewis~ (1877) bei ~König~ (dort auch weit. Lit). -- ~Nygård~, Pharmac. Notisblad Helsingfors 1909. -- ~Rundquist~, Farm. Notisbl. Helsingfors 1904. -- ~Koch~, Amer. journ. ph. 1892, 65. -- Pharm. Jahresb. 1892, 76. Bot. Jahresber. 1892 II, 408. -- Asche: ~Röders~ Handelsber. (Pharm. Post 1905). -- ~Kleiber~, Vers. z. Best. d. Gehaltes einiger Pfl. u. Pflanzenth. an Zellwandbestandteilen, Hemicellulosen u. Cellulose. Diss. Zürich 1900. -- ~Storer~, Chem. Centralbl. 1902, 1155. -- ~Havenhill~, West. Drugg. 1905 (Literaturübersicht). -- Vgl. auch ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia und ~Flückiger~, Pharmakognosie. =Anwendung.= Der harntreibenden Wirkung wegen (s. oben) nennt schon ~Lobelius~ das Kraut _Herba urinaria_, andere _seris_ (s. oben S. 203) _urinaria_. Der Saft der frischen, im Frühjahr gegrabenen ganzen Pflanze ist noch jetzt bei den sog. «blutreinigenden» Frühlingskuren in Gebrauch, galt von jeher auch in Indien schon als ein Heilmittel bei Leberleiden, und wird auch neuerdings wieder dafür warm empfohlen (~Fyfe~ 1906). Die Wirkung beruht wohl auf dem Taraxacin. _Taraxacum_ steht auch in der Liste der ~Kneipp~schen Mittel als Mittel gegen Hämorrhoiden, Leberleiden usw. -- Der Saft der frischen Pflanze auch gegen Gelbsucht. In Formosa ist _Taraxacum_ ein Antidot bei Schlangenbissen (~Jackson~). Auf Island werden die frischen Wurzeln gebraten gegessen (~Schübeler~). In England dienen die jungen Blätter als Gemüse. Die geröstete Wurzel ist ein Kaffeesurrogat. Hierbei kommt in erster Linie das Inulin in Betracht (s. oben). Dandelion Cocoa ist ein Gemisch von _Extr. taraxaci_ und löslichem Cacao (~Stoddart~). =Geschichte.= Die Griechen und Römer beachteten die Pflanze wenig. Sie ist vielleicht das πέρδιον (Perdikion) des ~Theophrast~ (~Parkinson~, Theatr. Botan.). Die ἀφάκη des ~Theophrast~, ~Dioskurides~ und ~Plinius~ kann nicht _Taraxacum_ gewesen sein, obwohl ja der Name aphaka der Pflanze im Mittelalter anhaftete und die Pflanze jetzt in Griechenland πικραφάκη heißt (s. oben S. 207). Die Deutung von aphake als _Vicia cracca_ oder _Lathyrus aphaca_ erscheint mir wahrscheinlicher, denn es steht zwischen lens und pisum. Eher deutet die Beschreibung von _Hedypnoïs_ als einer Art Cichorie, die sich bei ~Plinius~ findet, auf _Taraxacum_ und dieser Name findet sich auch unter den Synonymen der Pflanze bei ~Fuchs~ (t. 680) und ~Gesner~. Die Araber (~Rhazes~, ~Avicenna~) benutzten die Pflanze unter den oben (S. 207) angeführten Namen, aus denen dann _Taraxacum_ wurde, welcher Name aber erst wieder bei ~Lobelius~ und ~Lonicerus~ auftaucht (~Flückiger~). ~Haller~ benutzte ihn als Genus. Bei ~Ibn Baithar~ heißt die Pflanze, die als wilde Cichorie bezeichnet wird, +Tharachschakuk+ oder Marurijat. ~Simon Seth~ (XI. Jahrh.) verbreitet sich eingehend über ihre Heilkraft. Im Pen tsʿao kang mu (I, S. 519) steht _Taraxacum_ unter den sanften, schleimigen Pflanzen. ~Fuchs~ bildete die Pflanze ab, ebenso ~Bock~. ~Linné~ wählte (1762) den Namen _Leontodon Taraxacum_. Der Löwenzahn war der Liebesgöttin ~Freya~ geweiht. Sie wird noch heute (z. B. im Aargau) von den Mädchen zum Liebesorakel und Schönheitsmittel benutzt. In der Schweiz ist sie Kiltblume. In der Hamburger Apothekerordnung 1587 (I, S. 818) steht: _Rad. taraxaconis_. =Paralleldrogen.= Als «Substitutes for Taraxacum» führt die Pharmacographia indica auf: _Lannaea pinnatifida_ ~Cass.~, _Lactuca Heyneana_ DC., _Emilia sonchifolia_ DC., _Sonchus oleraceus_ ~Linn.~, _Echinops echinatus_ ~Dc.~, _Dicoma tomentosa_ ~Cass.~, _Notonia grandiflora_ ~Dc.~, _Tagetes erecta_ ~Linn.~, _Anaphalis neelgerriana_ ~Dc.~, _Carduus nutans_ L. und _Calendula officinalis_ L. Nach ~Dymock~ in Indien auch: _Brachyramphus sonchifolius_ ~Dc.~ und _Microrhynchus sarmentosus_ ~Dc.~ Nach ~Dragendorff~ in China: _Taraxacum sinense_ ~Dc.~ und _T. laevigatum_ ~Dc.~ Rad. Bardanae. Klettenwurzel -- glouteron, bardane (franz.) -- bur, burdock (engl.) -- klis (holl.) -- gobo, kitakisu, uma fuki (jap.) -- seta koroki (aino) -- ta-li-tzu, nin fang (chin.). =Syn.= Nach ~Sprengel~ (Hist. rei herb.) die ἀπαιρίνη des ~Theophrast~ (Hist. plant. VII, 14) und das ἄρκτειον des ~Dioskurides~. Das ἄρκτιον im Cod. Constant. ist jedenfalls ein Arctium (kein Verbascum!) +Althd.+: bletacha, chledda, cliba, kletta, kliba, letiche lettecha, pletecha -- +mhd.+: burres, chledden, clesse, crasse, klaten, klett, klobe, breit ledecha, sumerlatich -- +mnd.+: klive, krotenbleder. Die vielen alten deutschen Namen zeigen, daß die Pflanze diesseits der Alpen viel beachtet wurde. Im Mittelalter auch: Lappa (z. B. bei ~Isidor~), Lapathum, Personata. In der +Alphita+ (I, S. 642) steht: Bardana, Lappa maior, Lappa inversa, clote, burr, gert. Es wird Lappa major (bardona) von Lappa incisa (agrimonia) und Lappa caprina unterschieden. Bei ~Hildegard~ heißt die Lappa auch cletta. Lappa findet sich bei ~Albertus Magnus~ (I, S. 673). Bardana steht bei ~Cordus~ (I, S. 797), Bardane und Klyve im Gothaer Arzneibuch (I, S. 679). =Stammpflanze und Systemat. Stellung.= =Arctium L.= (Lappa ~Juss.~) Die Gattung Arctium hat vier Arten, die aber auch nur als Abarten einer Grundform (_Arctium Lappa_ L.?) betrachtet werden (~Schinz~ und ~Keller~ halten die Arten aufrecht): _Arctium tomentosum_ (~Lam.~) ~Schrank~ (_A. Bardana_ W., _Lappa tomentosa_ ~Lam.~), Köpfe doldentraubig, dicht spinnewebig, filzig, innere Hüllblätter mit gerader Stachelspitze, fast strahlend. _Arctium Lappa_ L. (ex parte. _A. majus_ ~Schrank~, _Lappa officinalis_ ~All.~, _L. major_ ~Gärtn.~). Sehr groß, bis 3 m, Köpfe doldentraubig, Hüllblätter grün, kahl, Körbe wallnußgroß. _Arctium minus_ ~Schrank~ (_Lappa glabra_ _Lam._, _L. minor_ ~Dc.~). Köpfe traubig, Hüllblätter an der Spitze rötlich, etwas spinnewebig. _Arctium nemorosum_ ~Lejeune~ (_Lappa macrosperma_ ~Wallr.~, _L. nemorosa_ ~Körn.~) mit rutenförmig übergebogenen Zweigen. Alle liefern _Rad. bardanae_. Die letztgenannte Art in Mitteleuropa, die drei anderen in Europa und Asien weit verbreitet, z. B. in Japan, namentlich auf Schutt und in Dorfstraßen, an Wegen und Hecken häufig, in Nordamerika eingeschleppt. (Abbild. bei ~Hoffmann~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien IV, 5, 319.) +Compositae+, Cynareae-Carduinae. =Etym.= +Lappa+ (Lapathum) von λαβεῖν (= ergreifen, vielleicht in Beziehung zum keltischen lapp, llap = Hand) wegen der an den Kleidern festhaftenden Früchte, welche Eigenschaft ihr bei den Griechen den Namen φιλάνθρωπος (quod vestibus hominum inhaeret ob asperitatem sagt ~Isidor~) und im Deutschen die Bezeichnung Klette eintrug und wohl auch mit dem französischen Namen grateron (von gratter = kratzen) und mit der englischen Bezeichnung bur (ags. burr, dän. borre) zusammenhängt, das mit borre (ital.) und borste in Beziehung gebracht wird. Unwahrscheinlicher erscheinen mir die Ableitungen von λάπη (= Schleim), obwohl in dem französ. Namen glouteron (glutinosus = klebrig) ähnliches anklingt. -- An die breiten Blätter erinnert: Oreille de géant (= Riesenohr), sowie viele Volksnamen (s. bei ~Pritzel-Jessen~) und auch im engl. burdock -- aus dem wohl das spätlatein. bardane entstand (?) -- steckt etwas ähnliches: dock, angs. docce ist der Name vieler breitblättrigen Stauden (~Kanngiesser~). Die Ableitung von Bardana von barda (ital. = Pferdedecke) oder gar von den Barden (~Wittstein~) erscheint mir abenteuerlich. -- Arctium, ἄρκτιον wohl von ἀρκτός (= Bär) wegen der wolligen Beschaffenheit. Die japan. Bezeichnungen seta (= Hund) und uma (= Pferd) bei Pflanzennamen, wie unser Hundszunge, Roßkastanie usw., halb verächtlich (wegen der großen Häufigkeit). -- Vielleicht war das kekel (?) der alten Juden (I, S. 489) Klettenwurzel. =Kultur.= Die Pflanze wird in Japan in umfangreichstem Maße kultiviert und die Wurzel als Gemüse von allen Bevölkerungskreisen gegessen. Japan erzeugte 1888: 72 Mill. pounds (~Nitobe~). =Beschreibung.= Die Kletten sind zweijährige Kräuter mit langer spindelförmiger Wurzel und bis über meterhohen aufrechten ästigen, mehr oder weniger wollig-behaarten Stengeln. Die großen dicken, am Rande buchtig-gezähnten Blätter sind unterseits mehr oder weniger weißlich-filzig. Die kugeligen Blütenkörbe besitzen hakenartig gebogene Deckblätter. Die Einschließung der Blüten in den Hüllkelch war schon den Alten aufgefallen. Bei ~Plinius~ steht «Notabile et in Lappa quae adhaerescit, quoniam in ipsa flos nascitur, non evidens, sed intus occultus et intra seminat, velut animalia, quae in se pariunt» (!). Die Wurzel wird im Herbste des ersten oder im Frühjahr des zweiten Jahres gesammelt. Sie ist fingerdick, dunkelgraubraun, innen grauweißlich, oft mit schwammig-fädigem Kern und riecht frisch widerlich narkotisch wie Mohnköpfe (~Wittstein~). Trocken ist sie fast geruchlos und schmeckt fade, schleimig-süßlich. Oben trägt sie oft einen weißlichen Schopf. Die deutlich strahlig gebaute Wurzel besitzt im Holzkörper schmale Gefäßstrahlen, Markstrahlen und viel Holzparenchym. In älteren Wurzeln findet sich Libriform (~Zörnig~). Die Gefäßstrahlen setzen sich nach außen in keilförmige Sieb-Milchröhrenstrahlen fort. Die Endodermis bleibt erhalten. Im Zentrum findet sich ein weißes, schwammiges, aus abgestorbenem Zellgewebe entstandenes, sehr zerrissenes, markartiges Gewebe, sog. «falsches Mark» (~Berg~). Im zweiten Jahre wird das Gewebe der Markstrahlen mehr oder weniger zerstört, so daß zuletzt nur noch schwammige Rindenreste und die von den Holzparenchymresten bekleideten Xylemplatten übrig bleiben (~Lürssen~). Sie enthält reichlich Inulin (bis 57% ~Kellner~, 70% ~Weckler~), 6,32% Zucker (~Nygård~), 0,065% flüchtiges Öl. Eine allgemeine Analyse teilte ~Weckler~ mit. Er fand 5% Glukose, 0,4% Fett, Schleim, einen Bitterstoff, Harz und Gerbstoff. Die frischen Wurzeln enthalten 73,8% Wasser, 5,6% Stickstoff, 10,5% Asche (~Nitobe~). In den Früchten fand ~Trimble~ ein bitteres Glykosid, Lappine. =Pathologie.= Über die tierischen Schädlinge der Pflanze berichtet ~Israël~: _Agrotis stigmatica_ ~Hübn.~: Raupe an _Lappa_-, _Lactuca_-, _Plantago_-, _Primula_-, _Geum_arten und anderen niederen Pflanzen. _Plusia gamma_ L.: Die Raupe dieser gemeinsten aller Eulen ist polyphag. Auf _Lappa_arten tritt sie häufig auf. Mitunter auf Kleefeldern und Rübenäckern verheerend. _Plusia jota_ L.: Raupe auch an _Anthemis_, _Lonicera_, _Vaccinium_, _Lamium_ usw. _Plusia chrysitis_ L.: Außer an _Lappa_arten auch an den verschiedensten anderen Pflanzen, _Dipsacus pilosus_, _Urtica_, _Stachys_ usw. _Polia flavicincta_ W. V.: Raupe an _Lappa_, _Artemisia_, _Rumex_arten usw. _Polia polymita_ L.: Raupe meist vereinzelt an _Primula_, _Lappa_ und anderen niederen Pflanzen. _Polia Chi._ L.: Raupe an vielen Krautgewächsen, als _Lappa_, _Aquilegia_, _Galium_, _Sonchus_, _Lactuca_ usw. _Gortyna flavago_ W. V., _Ochracea_ ~Hb.~: Die Raupe dieses schönen Falters lebt in den Stengeln (einzeln, selten zu mehreren in einer Pflanze) vieler markhaltiger Pflanzen. Sie bevorzugt in den verschiedenen Gegenden auch verschiedene Pflanzen. In Thüringen lebt sie hauptsächlich in _Lappa_arten, sonst auch in _Sambucus_, _Verbascum_, _Valeriana_, _Scrophularia_, _Petasites_, _Cirsium_, _Carduus_ usw. _Conchylis badiana_ L.: In Stengel und Wurzel von _Lappa_arten usw. _Conchylis posterana_ ~Hffg.~: Raupe in den Blütenköpfen von _Lappa_- und _Cirsium_arten, auch in anderen Kompositen, die Samen ausfressend. _Depressaria_arten: Verschiedene _Depressaria_arten leben in den Blütenköpfen und Stengeln von _Lappa_arten und anderen Kompositen. _Parasia Capella_ L.: Die Räupchen dieser Motte leben in dem Blütenboden von _Lappa_arten und anderen Kompositen, die Samen fressend. In der trocknen _Radix bardanae_ leben sehr gerne die Larven von _Anobium paniceum_ und _striatum_, ferner diejenigen von _Ptinus fur_ und _Ptinus latro_. Durch den Wurmfraß zerfällt die Wurzel alsbald zu Pulver. Es empfiehlt sich, die durch den Großhandel bezogene Ware, welche sehr häufig schon mit Käferbrut infiziert ist, erst in einem Holz- oder Blechkasten neben verdunstendem Chloroform einige Zeit liegen zu lassen, und sodann die absolut trockene Wurzel in gut schließenden Blech- oder Glasgefäßen aufzubewahren. Diese Vorsichtsmaßregel sei auch namentlich bei allen Umbelliferenwurzeln empfohlen und bei sonstigen Drogen, die ätherische oder riechende Stoffe enthalten (~Israël~). =Anwendung.= Die Klettenwurzel ist aus unbekannten Gründen ein altes Haarwuchsmittel. Das «Klettenwurzelöl» verlangt noch heute das Volk und im Bernischen heißt die Pflanze Haarballe oder Haarwachswürze. Sollte es sich hier nicht um eine Signatura handeln und die starke Behaarung der Pflanze sie zu einem Haarwuchsmittel gemacht haben? Medizinisch wird sie besonders in Nordamerika als Diureticum, Laxans und Sudorificum benutzt. _Rad. Bardanae_ ist auch ein Bestandteil des Spec. lignorum, des sog. Blutreinigungstees. Die Samen waren als Diuretikum und (nach ~Linné~, Mat. med.) als Purgans ehedem geschätzt. Auch die Blätter wurden früher benutzt. Die Klette steht auch in der Liste der ~Kneipp~schen Mittel und spielen hier sowohl die Blätter wie die Wurzel eine Rolle. Die «haarwuchsfördernde Kraft» der Wurzelabkochung wird auch von ~Kneipp~ behauptet. Als Verwechslungen werden _Rad. belladonnae_ (stärkehaltig) und die Wurzel von _Symphytum officinale_ L. angegeben. =Lit.= ~Berg~, Pharmakognosie. -- ~Luerssen~, Med. pharm. Botan. -- ~Wittstein~, Handwörterb. d. Pharmakognosie, S. 408. -- ~Inazo Nitobe~, Burdock as a vegetable. Am. journ. pharm. 1897, 416 (dort auch eine Aschenanalyse). -- Abbild. in ~Berg-Schmidt~, Atlas, 1. Aufl. t. XIX. und ~Hayne~, Arzneigew. II, t. 35 u. 36. -- Anatom. Abbild. in ~Oudemans~ Atlas, ~Berg~, Anatom. Atlas t. XIII., ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. II, Fig. 654 u. 655, ~Vogl~, Anatom. Atlas, und ~Hérail~ et ~Bonnet~, Manipulations pl. V. -- ~Tschirch~, Anatomie, S. 117. -- Anatomie in ~Zörnig~, Arzneidrogen. -- ~Weckler~, Analysis of burdock root. Am. journ. pharm. 1887, 393. -- ~Kellner~, Landw. Versuchsstat. 30 (1881), 42. -- ~Nygård~, Farm. Notisbl. 1909. -- ~Trimble~ and ~MacFarland~, Examinat. of burdock fruit. Am. journ. pharm. 1885, 127. -- ~Trimble~, The bitter principle of burdock fruit. Am. journ. pharm. 1888, 79. -- Anatomie der Frucht von Arctium Lappa bei ~Gerdts~, Bau u. Entw. d. Kompositenfr. Diss. Bern 1905 u. F. ~Ebert~, Beitr. z. Kenntn. d. chines. Arzneisch. Diss. Zürich 1907. V. Lävulindrogen. Die Lävuline oder Synanthrosen verhalten sich zum Inulin wie die Dextrine zur Stärke. Es sind wohl niedrigere Glieder von demselben Kondensationstypus. Lävuline finden sich oft in beträchtlicher Menge in _Rad. taraxaci_ (s. oben). VI. Triticindrogen. Das +Triticin+ (~H. Müller~) wird, da es bei der Hydrolyse mit verdünnten Säuren und der Einwirkung von Diastase (nicht von Invertin) +Fruktose+ liefert, ebenfalls zu den Polysacchariden gerechnet. Es spaltet Fruktose schon beim Kochen mit Wasser ab. Man gibt ihm die Formel C₃₆H₆₀O₃₀ = 6(C₆H₁₀O₅). Es wurde außer in _Triticum repens_ auch in der Wurzel von _Dracaena australis_ gefunden. Es dreht links, ist nicht gärungsfähig und reduziert ~Fehling~sche Lösung kaum. Es trägt gleichfalls den Charakter eines Reservekohlenhydrates. Es ist vielleicht mit dem +Irisin+ (~Wallach~), +Phleïn+ und +Graminin+ (~Ekstrand~ und ~Johanson~) identisch (~Tollens~, ~Keller~). Doch formulieren ~Ekstrand~ und ~Mauzelius~: +Triticin+ = C₃₆H₆₀O₃₀, +Graminin+ = C₄₈H₈₀O₄₀, +Phleïn+ = C₉₀H₁₅₀O₇₅, +Irisin+ = C₉₆H₁₆₆O₈₀. Alle liefern bei der Hydrolyse +Fruktose+. Rhiz. Graminis. =Syn.= Stolones graminis, Rad. agropyri, Rad. Cynagrostis, Rad. graminis albi, s. arvensis, s. canini, s. officinarum, s. repentis, s. vulgaris, +Queckenwurzel+, Graswurzel, Ackergras-, Ackermauer-, Laufquecken-, Päden-, Saatgras-, Bayer-, Feg-, Hundsgras-Wurzel -- petit chiendent (dent de chien), chiendent commun gramont, chiendent rampant ou officinal (chiendent wohl ursprünglich = _Cynodon Dactylon_) (franz.) -- couch grass, quitch grass, qu. root, dog grass, kwich (engl.) -- kweekgras, graswortel (holl.) -- gramegna (ital.) -- gramenha, grama (span.) -- ῥιζωμα ἀγρώστεως (griech.). +Ahd.+ Quecca, +mhd.+ graesch, graische, grasse, +mittelalt.+: herba graminis intuba. Volksnamen: Alescher- oder Apothekergras, Bättigras, Bochwurze, Fegwurz, Geech (Bern), Grammen (Wallis), Hundsgras, Knöpfligras, Knotengras, Kriechweizen, Laufquecken, Pärde (Niederlaus.), Quetsch, Rechgras, Sandklever, Suckerwuttel, Schnürligras, Spulwurz, Weißwurz, Wurmgras, Wullband, Zwecken. -- Bei ~Hildegard~: dorth (_Lolium temulentum_?); im Niederl. Herbar: gers; bei ~Cordus~: graß, quecken. -- Bei ~Tabernaemontanus~ steht: gramen caninum arvense seu gramen Dioscor. C. B. Gramen, Ruël. Dodo. gal. Cord. in Dios. Cast. canarium medicatum, Ad. Lob. caninum quod graecis ἄγρωστις, Dod. caninum vulgare, Lugdun. Graminis primi Dioscor. species major, Thalio. -- Einige Autoren nehmen an, daß _Agropyrum repens_ das ἄγρωστις der Griechen ἄγρωστις παρὰ τόν ἀγρὸν) und das gramen sowie die radix canaria der Römer sei (vgl. dazu unter Geschichte) und wohl auch des ~Steph. Magnetes~ radix agriae, des ~Ibn Baithar~: qutsami, des ~Abu Mansur~: tsîl, thîl. -- Synonyme des Agrostis bei ~Dioskurides~ (in [], also spätere Einschiebsel): Aigikon (= Ziegenpflanze), Hamaxitis, bei den Ägyptern: Anuphi, Asifolium, Sanguinalis, Viola, bei den Spaniern: Aparia, bei den Dakiern: Kotiata, bei den Afrikanern Jebal. -- Bei ~Ibn Baithar~ steht auch elnadschm oder elnadschir. -- Im Chinesischen heißt die Graswurzel: Siau hwanchai oder meh-huh (~Dragendorff~). =Etym.= Triticum s. S. 184. -- Repens wegen des langhinkriechenden Rhizoms -- danach sind auch Namen wie Schnürligras, Sehnengras, Spulwurz gebildet, sowie Päde (von pede = hinkriechend, verwandt mit Pfad; petten = treten), Pädergras, Pedengras, Pehdenzel, Peyer. -- Quecke von quecka, quick = lebendig, beweglich, deutet auf die Beweglichkeit im Wachstum des Rhizoms, wie die verwandten: Quäk, Quecken, Queke, Quetsch, Quitsch, Kweekgras. -- An die knotige Gliederung des Stengels erinnern Namen wie Knöpfligras, Knopgras. -- Chiendent = Hundszahn, weil die kranken Hunde es fressen sollen (~Littré~), vielleicht aber nur verächtlich, wie doggrass (~Kanngiesser~). -- Agropyrum von ἀγρός = Acker und πυρός = Weizen. =Stammpflanze. Agropyrum repens= ~Palisot de Beauvois~ (Argrst. 102) (Triticum repens L., Bromus glaber ~Scop.~, Elymus dumetorum ~Hoffm.~). Variiert: α vulgare ~Döll.~, β aristatum ~Döll.~ (davon auch als Arten: var. dumetorum ~Schreb.~, var. vaillantianum ~Wulfen~, var. sepium ~Thuill.~), γ majus ~Döll.~, δ glaucum ~Döll.~, ε caesium ~Pr.~ (auch als Art). Beschreibung in ~Luerssen~, Mediz. pharm. Botan. II. =Systemat. Stellung.= Gramineae, Hordeae. =Verbreitung.= Die Quecke ist über Europa, Nordafrika, Asien (Sibirien, Afghanistan, am Demavend bis 3000 m) und Nordamerika bis Patagonien und Feuerland verbreitet. Sie ist ein auf Äckern und an Wegen, besonders auf Sandboden (Norddeutschland) und auf Kulturland weit verbreitetes, wegen der Verfilzung des Bodens durch die zahlreichen Wurzeln (Fig. 80) sehr lästiges Unkraut. [Illustration: Fig. 80. _Agropyrum repens._ Rhizom (Wandersproß), K Knoten, JN Internodien, Nb Niederblätter, W Wurzeln. [+Tschirch+ gez.]] =Beschreibung der Stammpflanze.= Die Quecke bildet auf weite Strecken oft mehrere Meter durch den Boden kriechende Grundachsen (Rhizome) von Charakter der Wandersprosse, die an der Spitze eine derbe, spitze Niederblattknospe (Fig. 80) bilden, mit der sich der Sproß selbst durch festere Bodenschichten, ja sogar durch Baumwurzeln bohren kann. Aus der Achsel der an den Knoten sitzenden Niederblätter der Wandersprosse entwickeln sich da und dort oberirdische Achsen. Der runde Halm ist entfernt knotig gegliedert und kahl. Er kann eine Höhe von über 1 m erreichen, bleibt jedoch meist weit dahinter zurück. Die linealen an den Knoten inserierten, oberseits rauhen Blätter besitzen eine bis 10 cm lange Scheide und sehr kleine Blatthäutchen. Die endständige Blütenähre ist 10-13 cm lang, die Spindel zusammengedrückt und abwechselnd rechts und links ausgehöhlt, zickzackförmig hin- und hergebogen. Die Ährchen sind meist fünfblütig, die zwei Hüllspelzen (glumae) sind kürzer als das Ährchen, kahnförmig, lanzettlich, zugespitzt, am Rande fein gewimpert, die Deckspelze (palea inferior) zugespitzt oder begrannt, fünfnervig, die Vorspelze (pal. superior) dünnhäutig, zweikielig, an den Kielen bewimpert, kurz zweizähnig, die Schwellkörper (lodiculae) kaum 2 mm lang, der eiförmige Fruchtknoten am Scheitel behaart, die Frucht 6-7 mm lang. =Lit.= +Abbild.+ ~Berg-Schmidt~, Atlas II. Aufl., t. 139 (dort die florist. Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpflanzen, t. 86. -- ~Nees von Esenbeck~, pl. med. t. 32. -- ~Hackel~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien. -- ~Irmisch~, Bot. Zeit. 1859, 56. =Beschreibung der Droge.= Das Rhizom wird gelegentlich der Frühjahrsbestellung davon befallener Felder ausgepflügt und herausgeeggt, von der Erde gereinigt, von den Wurzeln und Stengeln befreit und dann geschnitten. 100 Teile frisches Rhizom geben 40 Teile Droge. [Illustration: Fig. 81. _Agropyrum repens._ Lupenbild des Rhizomquerschnittes. [Nach +Berg+, Atlas.]] Das bisweilen wiederholt verzweigte Rhizom ist 2-3 mm dick, selten dicker (bis 4 mm), frisch von rundem Querschnitt, getrocknet stark geschrumpft und mit Längsleisten versehen, +strohgelb, mit glänzender Oberfläche, innen hohl+. (Fig. 81). Die Internodien sind etwa 5 cm lang. An den Knoten sitzen zweizeilig alternierende häutige, am Rande zerfaserte Niederblätter (Fig. 80 Nb.), in deren Achseln Knöspchen sich finden und auf der Unterseite einige Wurzeln. Die letzteren fehlen den Internodien. Graswurzel schmeckt fade, schwach süßlich. =Pathologie.= Über Schädlinge von _Agropyrum repens_ berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Auf den oberirdischen Teilen von _Agropyrum repens_ leben verschiedene parasitische Pilze, wie _Erysiphe graminis_ ~Dc.~, _Ophiobolus herpotrichus_ ~Sacc.~, _Leptosphaeria culmiphaga_ (~Fr.~), _Laestadia canificans_ ~Sacc.~, _Phyllachora graminis_ ~Fckl.~, _Puccinia graminis_ (~Pers.~) und andere, die vielleicht auch indirekt die Rhizome schädigen mögen. Auf dem Rhizom selber wird als Parasit angegeben _Coniosporium rhizophilum_ (~Fr.~) ~Sacc.~, das möglicherweise als Nebenfruchtform zu _Ophiobolus_ gehört. =Anatomie.= Unter der derbwandigen Epidermis, die abwechselnd aus gestreckten Zellen mit dicker, wellig verbogener Wand (Langzellen) und zwei Kurzzellen mit dünner Teilungswand besteht, liegt ein mehrschichtiges, derbwandig-prosenchymatisches Hypoderm. In das dünnwandige Gewebe der Rindenschicht (Fig. 82 r) eingebettet finden sich einige (6) kleinere Bündel mit starken Bastzellbelegen (rb) und wenigen Bündelelementen. Die Endodermis [Zylinder- oder Kernscheide, (k)] besteht aus im Querschnitt fast quadratischen Zellen, die innen und an den Seiten verdickt sind. Der Gefäßbündelzylinder besteht aus ein oder zwei Reihen collateraler Bündel, die in Libriform (Bastzellen) eingebettet sind und von denen sich die kleineren an die Endodermis anlehnen, die größeren etwas nach innen gerückt sind. Sie zeigen den typischen Bau der Monocotylenbündel: zwei große getüpfelte Gefäße, dazwischen ein Spiralgefäß, außen eine Siebinsel. Der innere Teil des Markes ist geschwunden, der äußere in der Nähe der Bündel einige Zellreihen breit erhalten (m Fig. 82). [Illustration: Fig. 82. _Agropyrum repens._ Querschnitt durch das Rhizom. r Rindenschicht, rb Rindenbündel, k Endodermis, gfb Gefäßbündel, m Mark. [Aus +Tschirch+, Angewandte Anatomie.]] In den Knoten ist der Bau verwickelter. Die Knoten «bestehen zunächst aus einer Querlage von Parenchym, in dieser aber treffen nicht nur die Gefäßbündel des unteren Stengelgliedes zusammen, sondern nehmen auch die der folgenden ihren Ursprung; beide bilden eine beiderseits das Parenchym einschließende, selbst aber wieder nach außen von dem Parenchym des Markes begleitete, aus kurz gegliederten, horizontal verlaufenden, getüpfelten Gefäßen bestehenden Querwand, von der sich nach beiden Richtungen, nämlich nach den beiden durch den Knoten getrennten Stengelgliedern, die Gefäßbündel aufrichten und vertikalen Verlauf nehmen. Diese Gefäßbündel bilden Schleifen, aus denen zuerst in horizontaler Richtung die zu den Scheiden und Wurzeln dringenden Gefäßbündel hervortreten» (~Berg~). _Triticum repens_ hat Befestigungs- und Ernährungswurzeln. Die +Wurzeln+ sind, wenn 0,3 mm dick, nonarch. Die Endodermis verdickt sich bald stark und die Sklerose ergreift auch das benachbarte Gewebe der primären Rinde (~Holfert~). =Lit.= ~Berg~, Anatom. Atlas z. pharm. Waarenkunde. t. XVIII. -- ~Hérail~ et ~Bonnet~, Manipulations de botan. médic. 1891, Pl. VIII. -- ~A. Meyer~, Drogenkunde II, 43. -- ~Holfert~, Arch. Pharm. 1889, 505. -- ~Tschirch~, Anatomie, Fig. 436. -- ~Moberger~ und ~Hällström~ (Über d. Bau v. Rhiz. graminis). Nord. farm. Tidskr. 1896. =Chemie.= ~Marggraf~ erhielt keinen festen Zucker aus Queckenrhizom, wohl aber ~Graff~ (7 Lot aus 20 Pfund). ~Pfaff~ fand darin krist. «Graswurzelzucker», dessen Lösung gelatinierte und den ~Berzelius~ für +Mannit+ hielt. Den Befund bestätigte ~Völcker~ zum Teil, doch erscheint es ihm zweifelhaft ob Mannit vorgebildet ist oder erst sekundär entsteht. ~Stenhouse~ fand weder Mannit, noch krist. Zucker, wohl aber Kaliumoxalat und einen gärungsfähigen amorphen Zucker. ~Ludwig~ hält den Graswurzelzucker von ~Pfaff~ für ein Gemenge von Calciumlaktat und Mannit. Mannit kommt wahrscheinlich in frischem und gut getrocknetem Rhizom nicht vor (~H. Müller~, ~A. Meyer~). ~Rebling~ gibt den Zuckergehalt auf 22% (?) an. Andere fanden viel weniger, z. B. ~Geissler~ in Winterrhizom nur 0,6% Lävulose. ~Ludwig~ und ~Müller~ fanden 1872 einen stark +linksdrehenden Zucker+ (Fruchtzucker), einen +rechtsdrehenden Zucker+ (nicht Rohrzucker), ein eigentümliches, durch Spaltung Fruchtzucker lieferndes linksdrehendes +Gummi+, das durch Bleiessig nicht gefällt wird. Dieses durch Alkohol fällbare, nicht süße «Queckengummi» nennt ~H. Müller~ (1873) +Triticin+ (s. oben). ~H. Müller~, der das Triticin genau untersuchte und seine Darstellung beschreibt, erhielt davon 3,52 aus zuckerreicherer, 7-7,7% aus zuckerärmerer _Rhiz. graminis_. ~Keller~ erhielt davon 5% aus im Oktober gesammeltem Rhizom. Der süße Geschmack der Droge rührt nicht vom Triticin, sondern von Zucker her, der besonders im Frühjahr reichlicher im Rhizom aufzutreten scheint. Spätere Untersuchungen zeigten dann ~H. Müller~, daß ausschließlich +Fruchtzucker+ (keine Dextrose und kein Rohrzucker) in _Rhiz. gram._ vorkommt, und daß der Gehalt daran 2,45-3,33% beträgt. Auch +Inosit+ ist nachgewiesen (~Fick~). Er ist ebenfalls süß. Das +Triticin+, das schon durch Kochen mit Wasser in Fruchtzucker übergeht und den Reservestoff des Rhizoms darstellt, hält ~Reidemeister~ nicht für identisch mit Lävulin (vgl. S. 218) und Sinistrin (S. 224). Es vergärt mit Hefe schwerer. Ob es mit dem +Graminin+ (s. oben S. 218), das ~Ekstrand~ und ~Johanson~ aus den Rhizomen von _Phalaris arundinacea_, _Phleum pratense_ und den Knollen von _Dracaena australis_ erhielten und dem +Irisin+ (s. oben S. 218), das ~Wallach~ in den Rhizomen von _Iris Pseudacorus_ fand, übereinstimmt, bleibt noch zu untersuchen. Begleitet wird das Triticin von 10,5-11,5% eines +stickstoffhaltigen Gummis+ (Schleim), das näherer Untersuchung bedarf. ~Plauchud~ gibt [neben 3% krist. und 4% unkristall. Zucker] 13,9% +Stärke+ an und beschreibt die sich mit Jod blaufärbenden Körner eingehend (1877). Ich fand niemals Stärke in der Queckenwurzel. Auch ~A. Meyer~ fand weder Stärke noch Öl. Der Landwirt ~Barrel~ soll aber aus 100 kg _Rhiz. gram._ c. 65 kg «Mehl» dargestellt und als Viehfutter benutzt haben. Es wird hier wohl eine Verwechslung mit _Cynodon Dactylon_ vorliegen, dessen Rhizom Stärke enthält. «Was ~Rabourdin~ als eigentümliche stärkemehlartige Substanz beschreibt, dürfte wohl im wesentlichen Triticin sein» (~Wittstein~). ~Hermbstädt~ glaubte Weinstein (?), ~H. Müller~ +Malate+ nachgewiesen zu haben. Pektin und Harz fehlen (~Flückiger~). _Rhiz. graminis_ enthält 12,8% Wasser und 3,44% +Asche+ der bei 105° getrockneten Ware (~Nygård~). ~H. Müller~ erhielt 4,5%, ~Hauke~ 2,72-2,95% +Asche+. In dem Rhizom von _Cynodon Dactylon_ ~Pers.~ fand ~Semmola~ +Cynodin+ (wohl Asparagin oder etwas dem ähnliches). =Lit.= ~Marggraf~, Chym. Schrift II. Th. 70 (1767). -- ~Graff~, ~Trommsd.~ Journ. 1800, 7, 271. -- ~Pfaff~, Syst. d. Mat. med. 1808 I, 198; 1821, VI, 110. -- ~Stenhouse~, Ann. Chem. Pharm. 41, 354 (Pharm. Jahresber. 1844, 26). -- ~Völcker~, Ann. Chem. Pharm. 59, 1846, 380. -- ~Ludwig~, Arch. Pharm. 1857. -- Eingehende Analyse in ~H. Ludwig~ und ~H. Müller~, Über d. Bestandt. d. Queckenwurz. Arch. Pharm. 1872, 51, 132. -- ~Plauchut~, Et. sur le chiendent (Trit. repens). Journ. pharm. chim. 1877, 389 (dort auch eine Aschenanalyse). -- ~Rebling~, Arch. Pharm. 1855, 15. -- ~H. Müller~, Über den Graswurzelzucker und über das Triticin, ein neues Kohlehydrat im Rhizom von Triticum repens. Arch. Pharm. 1873, 500. Journ. pr. Chem. 1873, 832. -- ~A. Meyer~, Drogenk. II, 46 (~Keller~). -- ~Wittstein~, Handwörterbuch. -- ~A. W. v. Reidemeister~, Beitr. z. Kenntn. d. Levulins, Triticins und Sinistrins. Diss. Dorp. 1880 (Ph. Z. f. Rußl. 1880, 658. Referat in Botan. Jahresb. 1880, I, 438). -- ~Fick~, Pharm. Zeitschr. f. Rußl. 1887 und Ph. Jahresb. 1887, 324. -- ~Ekstrand~ u. ~Johanson~, Ber. d. d. chem. Ges. 1887, 3310 u. 1888, 594. -- ~Wallach~, Lieb. Ann. 234 (1886). 374. -- Oper. min. di ~Giov. Semmola~, Napoli 1841 (Chem. Jahresb. 1845, 535) Della Cinodina, nuovo prodotto organ. trov. nella gramigna offic. Cynod. Dactyl. -- ~Lippmann~, Chemie der Zuckerarten 1904. Als =Verfälschungen= werden genannt die Rhizome von _Carex arenaria_ L. (_Rhiz. caricis_), _Carex disticha_ ~Huds.~ (_C. intermedia_ ~Good.~), _Carex hirta_ L. u. and. _Carex_arten. Alle _Carex_rhizome führen Mark. Die Rindenschicht besitzt bei dem graubraunen, mit langen zerrissenen, bräunlichen Niederblättern besetzten Rhizom von _Carex arenaria_ große Luftlücken (abgebildet bei ~Berg~, Anat. Atlas t. VIII). Das Parenchym des Markes führt Stärke. Die Luftlücken fehlen bei den rotbraunen Rhizomen von _Carex hirta_, die ebenfalls Stärke führen, auch in der Rinde. Sie fehlt hier bei _C. disticha_. ~Moberger~ und ~Hällström~ halten Größe und Form der Endodermiszellen für das beste Unterscheidungsmerkmal. Sie messen bei _Rhiz. graminis_ 24-30, bei _Rhiz. caricis_ 8-14, bei _Carex disticha_ 10-12 mik. Die Ausläufer von _Lolium perenne_ besitzen Wurzeln auch an den Internodien. Ich habe sie nie in der Droge gefunden. Ich fand dagegen (1909) der Droge oft beträchtliche Mengen der Halme beigemengt, die aber anatomisch leicht erkannt werden konnten. ~Berg~, Pharmakognosie 1879, 97. -- ~Moberger~ und ~Hällström~ (Bau von Rhiz. gram. u. deren Substituten). Nord. farmaceut. Tidskr. 1896, 114 (Pharm. Zeit. 1896, 437). =Anwendung.= Beliebtes Blutreinigungsmittel und Diuretikum des Volkes. In der Medizin als Mellago (Fluidextrakt) und Ptisana besonders in Frankreich noch viel benutzt, in Deutschland auch als Extrakt. Die Quecke steht auch in der Liste der ~Kneipp~schen Mittel (als harn- und schweißtreibend) -- auch der Saft der frischen Wurzel zu Frühlingskuren als «Blutreinigungsmittel». In der Tierheilkunde dient _Rhiz. graminis_ bisweilen als Substituens von _Rad. althaeae_. ~Hofmann~ bemerkt (1787), daß man aus Graswurzel eine Art Wein, Bier, Weingeist und Essig darstellen könne. =Paralleldrogen.= Das Rhizom von _Cynodon Dactylon_ ~Rich.~ (_Panicum Dactylon_ L., _Digitaria stolonifera_ ~Schrad.~), einer in Südeuropa, Nordafrika, Persien, Kaukasien heimischen, aber auch in Süddeutschland, Österreich und der Schweiz vorkommenden, nach Peru, Kalifornien und Australien verschleppten Graminee (vgl. auch S. 218), als _Rhiz. graminis italici_, Gros Chiendent, Chiendent pied de poule, Ch. du Midi bekannt, ersetzt in Südeuropa das _Rhiz. graminis_. Die Rhizome sind dicker und derber als bei _Agropyrum repens_, trocknen nicht so stark ein, besitzen längere Internodien und an den Knoten reichlich Knospen. Die Rindenschicht ist schmal. An die Endodermis lehnt sich ein Bastzellpanzer, in den vereinzelte Bündel eingebettet sind. Zahlreiche isolierte Bündel sind über das reichlich Stärke führende Mark verstreut, das im Zentrum geschwunden ist (Abbild. in ~Braemer-Suis~, Atlas de micrographie Pl. 4). Die Endodermiszellen messen 20-24 mik. Die mehr maritimen _Agropyrum acutum_ R. u. S., _A. pungens_ R. u. S., und _A. junceum_ ~P. de Beauv.~ dürften gleichwertig mit _A. repens_ sein. =Geschichte.= ~Fraas~, ~Daubeny~ und ~Flückiger~ meinen, daß das gramen des ~Plinius~ (XXIV, 118) wie das ἄγρωστις des ~Theophrast~ und ~Dioskurides~ (IV, 30) wohl eher _Cynodon Dactylon_, die in Südeuropa häufige Paralleldroge unseres _Rhiz. graminis_ gewesen sei, doch stellt ~Plinius~ dem gramen, das er als süß beschreibt und dessen diuretische Wirkung er kennt, ausdrücklich ein gramen aculeatum gegenüber, das er Dactylon nennt und von dem er drei Arten kennt. Auch ~Theophrast~ bezeichnet die Graswurzel als süß (caus. plant. 6, 11, 10). Ich finde, daß das Rhizom von _Cynodon Dactylon_ weniger süß schmeckt als das von _Agropyrum repens_. ~Sprengel~ hält gramen und ἄγρωστις für _Triticum repens_, das jedoch im Süden seltener ist. ~Wimmer~ führt in seiner ~Theophrast~-Ausgabe (1866) unter ἄγρωστις beide (_Tritic. repens_ +und+ _Cynodon Dactylon_) auf und das dürfte das richtige treffen. Die Sache läßt sich nicht entscheiden, da beide zu den gleichen Zwecken benutzt wurden. ~Bonnet~ hält des ~Dioskurides~ ἄγρωστις für _Dactyloctenium aegypticum_. In der Tabula des ~Simon Januensis~ steht _Agrostis_ (I, S. 663). ~Plinius~ nennt eine Menge Krankheiten, gegen die Gramen angewendet werden könne (XXIV, 118). Die diuretische und lithotriptische Wirkung war auch ~Oribasius~ (I, S. 588), ~Marcellus Empiricus~ (de medicamentis XXVI), ~Aëtius~ (Tetrabibli sermo I) und ~Alexander Trallianus~ (I, 591) bekannt. Auch ~Galen~ erwähnt die Eigenschaft «Blasensteine aufzulösen». Sie wird auch in den mittelalterlichen Kräuterbüchern (z. B. dem Herbarius Pataviae 1485) erwähnt, wie von ~Dodonaeus~, ~Turner~ (Herball 1568), ~Gerarde~ u. and. Nördlich der Alpen dürfte es sich hierbei immer um _Agropyrum repens_ gehandelt haben; ebenso in den Sinonoma Bartholomei (I, 649: gramen radix), in dem Nördlinger Register (I, S. 813, graminis), in den Taxen von Frankfurt 1582 (I, S. 817), von Hamburg 1587 (I, S. 818) u. and. _Graminis radix_ steht auch bei ~Cordus~ (I, S. 799), der sie zu den Oxysacchara composita benutzte. =Lit.= ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. VII. Scillin- (Sinistrin-) Drogen. Das Sinistrin, ein linksdrehendes, nicht gärungsfähiges, beim Kochen ~Fehling~sche Lösung reduzierendes, wohl mit dem Triticin verwandtes Polysaccharid, findet sich in den =Bulbus Scillae=, doch werden diese, da wegen anderer Bestandteile benutzt, an anderer Stelle abgehandelt werden. =Lit.= ~Reidemeister~, Bot. Jahresb. 1880, I, 439. -- ~Schmiedeberg~, Ebenda 1879, I, 385. -- ~O. Hammersten~, Pflüg. Arch. 36, 373. VIII. Polysaccharide vom Charakter der Membranine. Membranindrogen. Früher hatte man den Inhaltsstoffen der Zellen fast allein Beachtung geschenkt. Mehr und mehr aber zeigte sich, daß auch die Membran zu chemischen Leistungen befähigt ist. Am deutlichsten trat dies bei der sog. resinogenen Schicht der Sekretbehälter hervor, die, zweifellos ein Teil der Membran, doch energische chemische Arbeit leisten kann. Schon früher war erkannt worden, daß die Schleime fast ausnahmslos Membranbildungen sind, und daß auch das Gummi und verwandte Substanzen zur Membran gehören, ebenso wie Lichenin, Amyloid und Pektin. Da war es denn keine besondere Überraschung mehr, daß Membranen auch den Charakter von Reservestoffen annehmen können. Pharmakologisch spielen die Membranen und ihre Bestandteile eine sehr verschiedene Rolle. Rein mechanisch wirken z. B. die Baumwollhaare, das Penawar Djambi, der Feuerschwamm, der Torfmull, das Holzmehl, die Kieselschalen der Diatomeen: sie saugen kapillar und osmotisch Flüssigkeiten auf. Die Substanz ihrer Membran kommt hierbei wenig in Betracht, tritt jedenfalls pharmakologisch nicht in Reaktion. Physikalisch ist auch die Wirkung des Korkes zu deuten, aber in Abhängigkeit von der chemischen Natur der Korklamelle. Anders bei der Gruppe der Schleime und des Gummis. Hier ist es die Substanz selbst, die das pharmakologische Individuum bildet. Chemisch umschließt der Begriff Membran sehr verschiedene Dinge. Wir wissen, daß er nicht identisch ist mit Zellulose, und daß der Begriff Zellulose seinerseits wieder vielerlei Verschiedenes umfaßt, wie auch, daß die nicht aus Zellulose bestehenden Membranen ihrerseits wieder recht verschieden aufgebaut sind. Wenn nun die Verhältnisse aller dieser Klassen chemisch vollkommen und in allen Punkten aufgeklärt wären, so könnte man auch hier wohl an eine chemische Gruppierung denken. Da dies aber nicht der Fall ist, müssen wir uns nach einer anderen Einteilung, die auch das morphologische Moment mit berücksichtigt, umsehn. Das allen diesen Dingen gemeinsame ist, daß sie Membranbestandteile sind, und so mögen sie denn alle, welche chemische Beschaffenheit sie auch zeigen, unter dem gemeinsamen Namen +Membranine+ zusammengefaßt werden. ~Cross~ und ~Bevan~ bilden die Gruppen: Lignozellulosen, Pekto- und Mukozellulosen und Adipo- und Cutozellulosen. Ich teile die Membranine zunächst in zwei große Gruppen, in die der Zellulosine, die die Membranine umfassen, welche wir nach dem Stande unserer Kenntnisse als Polysaccharide auffassen können, die jedenfalls bei der Hydrolyse irgend einen oder mehrere Zucker liefern -- und andererseits die Membranine, von denen wir dies vorläufig noch nicht annehmen können, bei denen jedenfalls andere Körper den chemischen Charakter der Membran bestimmen. So komme ich zu folgender Einteilung, die sich für unsere Zwecke besonders gut eignet, aber auch für den Phytochemiker vorläufig brauchbar sein dürfte. A. +Zellulosine, welche Polysaccharide enthalten+ (umfaßt die Zellulosen von ~Tollens~ und die Lignozellulosen, sowie Pekto- und Mukozellulosen von ~Cross~ und ~Bevan~). 1. Zelluloso-Membranine (reine oder fast reine Zellulose, schwer hydrolysierbar), 2. Reservezelluloso-Membranine (meist Hemizellulosen im Sinne von ~E. Schulze~), 3. Lichenino-Membranine inkl. Amyloido-Membranine, 4. Lignino-Membranine (Lignozelluloso-Membranine, schwer durch Säuren hydrolysierbar, leichter durch schweflige Säure [~Tollens~]), 5. Pektino-Membranine, 6. Koryzo-Membranine (oder Myco-Membranine, Membranschleime), 7. Gummo-Membranine. B. +Membranine, von denen noch nicht sicher ist, ob sie Polysaccharide enthalten+ (umfaßt die Adipo- und Cutozellulosen von ~Cross~ und ~Bevan~). 1. Suberino-Membranine (Kork), 2. Mycino-Membranine (Pilzzellulose), 3. Silico-Membranine (Diatomeenschalen), 4. Andere Kryptogamen-Membranine. A. Zellulosindrogen. ~Tollens~ nimmt vier Hauptgruppen der Zellulosen an: 1. die eigentlichen Zellulosen, 2. hydratisierte Zellulosen wie Hydrozellulosen und Hemizellulosen, die nicht reduzierend wirken, 3. Zellulosen mit Carboxylgruppen (dazu die sog. Pektinsäuren, die sog. Acidzellulosen), 4. Zellulosen, die Carboxyl- und zugleich auch Aldehyd- und Ketongruppen führen, daher reduzierend wirken (dazu die sog. Hydralzellulosen, das Oxybassorin und die Oxyzellulosen). ~Bumcke~ und ~Wolffenstein~ ziehen die Gruppen 2-4 zusammen als hydratisierte oder Hydrozellulosen und unterscheiden: a) reduzierende (Hydralzellulosen), b) reduzierende mit Carboxylgruppen, c) nichtreduzierende mit Carboxylgruppen (Acidzellulosen), d) nichtreduzierende ohne Carboxylgruppen (Laktone?). Jedenfalls stehen die Körper der Gruppe der Zellulosine, wie ich die ganze Gruppe nenne (s. oben), zu der Zuckergruppe in Beziehung und wir dürfen sie als hochmolekulare Polysaccharide betrachten, aber die Verhältnisse liegen bei ihnen viel komplizierter. Denn bei der Hydrolyse mit Säuren oder Enzymen (Cytasen) entstehen hier oft nicht nur +Hexosen+ (Glukose, Galaktose, Mannose) [und bei der Oxydation (aus Galaktose) Schleimsäure: OH H H OH COOH--C--C--C--C--COOH], H OH OH H sondern auch sich durch Entstehung von Furol bei der Destillation mit HCl verratende +Pentosen+ (Arabinose, Xylose), +Methylpentosen+ (Fukose) und +Furoide+ (Oxydationsprodukte von Hexosen- oder Pentosen-Monoformale), sowie (bei den Gummis) eigentümliche als Geddinsäuren bezeichnete Körper, so daß wir in den Zellulosinen nicht nur +einfache Hexosane+ (z. B. Glukosan, Galaktan, Mannan) und einfache Pentosane (z. B. Araban, Xylan), sondern auch +gemischte Hexosane+ (z. B. Gluko-Mannane, Frukto-Mannane, Galakto-Mannane und in vielen Hölzern: Manno-Gluko-Galaktane) und +gemischte Pentosane+, sowie +gemischte Hexoso-Pentosane+ (z. B. Galakto-Araban), +Furoido-Pentosane+ (wie z. B. in den Lignozellulosen) und +Furoido-Hexoso-Pentosane+, sondern bei einigen offenbar noch kompliziertere Kondensationsprodukte von Gliedern der Kohlehydratreihe und vielleicht auch anderen, nicht hierher gehörigen Körpern (?) vor uns haben. So besitzt die sonst wohl für pharmakognostische Zwecke, besonders in der Gruppe der Gummis und Schleime, brauchbar befundene Unterscheidung zwischen Schleimsäure liefernden und Schleimsäure nicht liefernden Zellulosinen jetzt nur noch vorläufig orientierenden Wert. Sie sagt uns nur, ob Galaktose bildende Gruppen darin vorhanden sind. Und auch eine Einteilung, etwa nach Glukosozellulosen, Mannosozellulosen, Arabinosozellulosen, läßt sich für pharmakognostische Zwecke nicht machen, da bei der Hydrolyse eben meist mehrere Zucker entstehen. Ja selbst die Hemizellulosen (~E. Schulze~, Zellulosegummi (~Hoffmeister~) oder lösliche Zellulose) sind mit den echten Zellulosen durch viele Übergänge verbunden. Auch nach der Ansicht von ~Schulze~, zu der dieser auf rein chemischem Wege kam, bilden Zellulose, Hemizellulosen, schleimgebende Zellbestandteile und Amyloid eine Reihe chemisch verwandter Substanzen, deren einzelne Glieder wohl durch noch unbekannte Zwischenformen miteinander verknüpft sind. Immerhin können wir doch den zuerst von ~E. Schulze~ hervorgehobenen Unterschied machen, daß die echten Zellulosen nur schwer hydrolysierbar sind, die Hemizellulosen aber relativ leicht. Ferner sind die echten Zellulosen stets Gerüstsubstanzen, die Hemizellulosen aber oft Reservestoffe. Den Charakter von Gerüstsubstanzen tragen aber auch die Lignino-Membranine, und die Korizo-Membranine sind, bisweilen wenigstens (z. B. bei den Schleimendospermen), ebenfalls Reservestoffe. Die Gummo-Membranine endlich machen oft ganz den Eindruck von Sekreten und die Pektino-Membranine scheinen zu dem Zucker der Früchte biologisch in Beziehung zu stehen. Nur eins ist, wie gesagt, allen Zellulosinen eigen: sie liefern bei der Hydrolyse einen oder mehrere Zucker. 1) Zelluloso-Membranindrogen. Der Name +Zellulose+ rührt von ~Payen~ her (1838), dem wir die ersten systematischen chemischen Untersuchungen über das Zellhautgerüst der Pflanzen verdanken. Er gab der Zellulose die Formel C₆H₁₀O₅. ~Schleiden~ fand 1838 die Jodschwefelsäurereaktion, ~Schulze~-Rostock die mit Chlorzinkjod. Die Löslichkeit der Zellulose in Kupferoxydammoniak entdeckte ~Schweizer~ 1857 und ~Gilson~ zeigte 1893, daß man aus dieser Lösung krist. Zellulose erhalten kann, doch erhielt weder ~Cramer~ noch ~Winterstein~ nach ~Gilsons~ Verfahren Kristalle mit Zellulosereaktion. Die Chemie der Zellulosen beginnt in den achtziger Jahren des XIX. Jahrh. mit dem Studium der bei der Hydrolyse der Zellwände auftretenden Zuckerarten. Die Zellulosezellwände geben bei der Hydrolyse mit fast konz. Schwefelsäure (~Flechsig~) ganz vorwiegend +Traubenzucker+ (Dextrose, vgl. S. 6), Galaktose entsteht hierbei nicht, Mannose, Arabinose und Xylose hin und wieder, meist jedoch in nicht großen Mengen. Es sind also +Glukosezellulosen+, gemischte Anhydride in denen der Glukose liefernde Bestandteil jedenfalls weitaus überwiegt. Glukosezellulose war es auch, die ~Gilson~ kristallisiert erhielt. Der Typus dieser Glukose(Dextrose-)zellulose ist die Baumwolle (s. d.). Bei der Hydrolyse der Zellulose entsteht als Zwischenprodukt ein mit Maltose isomeres Disaccharid, die +Zellose+ oder Zellobiose (~Skraup~ und ~König~), das sich also zur Zellulose verhält wie Maltose zur Stärke. Durch Nitrieren der Zellulose gelangt man (bei Annahme der Formel C₁₂H₂₀O₁₁) bis zu einem Hexanitrat (Kollodiumwolle, Schießbaumwolle). Salzsäure und Kaliumchlorat und andere Oxydationsmittel liefern Oxyzellulose (~Vignon~), Schwefelsäure Hydrozellulose (~Girard~), Natronlauge Natronzellulose (C₁₂H₂₀O₁₀.2 NaOH). Letzter Prozeß ist als Mercerisieren bekannt. Mit Laugen gequollene Zellulose gibt durch Behandeln mit CS₂ die wasserlösliche «+Viskose+» (~Cross~ und ~Bevan~). Glycerin verändert Glukosezellulose selbst bei 300° nicht -- Unterschied von anderen Zellulosen (~Wisselingh~). Schmelzendes Kali bildet beim Erhitzen über 180° Protokatechusäure und Brenzkatechin (~Hoppe-Seyler~), endlich Oxalsäure. Unter 180° soll Glukosezellulose unverändert bleiben (?). Darauf beruht das Verfahren ~Langes~ zur Bestimmung der Zellulose. (Über Zellulosebestimmung vgl. auch meinen Artikel: Zellulose in der Realenzykl. d. Pharm.) Die Möglichkeit der Überführung der Zellulose in Traubenzucker war bereits ~Gay Lussac~ und ~Braconnot~ bekannt. Aber trotz zahlreicher Arbeiten kennen wir die Struktur des Zellulosemoleküls noch nicht. ~Cross~ und ~Bevan~, die seit langer Zeit sich dem Studium der Zellulosen widmen, betrachten nur das Eine als sicher, daß Zellulose weder eine einfache Polyaldose, noch ein Anhydrid von Polyaldosen sein könne, sondern neben Aldosekernen unter anderem jedenfalls eine ketonartige Gruppe enthalte. Immerhin lassen sich aber schon jetzt zwei allerdings durch vielfache Übergänge miteinander verbundene Gruppen erkennen: die +echten Zellulosen+ und die +Hemizellulosen+ (~Schulze~ und ~Winterstein~), die sich durch ihr verschiedenes Verhalten zu 1-2% Mineralsäure unterscheiden. Die echten Zellulosen, zu denen z. B. die Zellulose der Baumwolle gehört, geben selbst bei andauerndem Kochen mit 1-2% Mineralsäuren nur geringe Mengen reduzierender Substanzen (Zucker). E. ~Schulze~ schlug 1889 vor, nur den in verdünnten Säuren unlöslichen, in Kupferoxydammoniak löslichen Bestandteil der Zellhäute Zellulose zu nennen, die andern leichter zu verzuckernden aber in Kupferoxydammoniak unlöslichen Hemizellulose. ~E. Schulze~ nennt die gewöhnliche Dextrose liefernde Zellulose: +Dextrosozellulose+. Ebenso nennt er den Mannose liefernden Zellwandbestandteil Mannosozellulose u. s. f. (die Mannosozellulose ist mit dem Paramannan ~Gilsons~ identisch). ~Cross~ und ~Bevan~ (Chem. News 65, 77) geben der Baumwollzellulose die Formel: C₁₂H₂₀O₁₀ und nehmen darin acht Hydroxyle an. ~Green~ hält die Zellulose für ein inneres Anhydrid des Traubenzuckers: CH(OH)--CH--CH--OH | \ \ | O O | / / CH(OH)--CH--CH₂ ~Nastjukoff~ erteilt ihr die Formel 40(C₆H₁₀O₅), ~Eder~: C₁₂H₂₀O₁₀, ~Vieille~, sowie ~Lunge~ und ~Bebie~: (C₇H₁₀O₅)₄, ~Mendelejeff~: (C₆H₁₀O₅)₈, doch sind das alles noch Hypothesen. Genaue Angaben über die Molekulargröße der Zellulose lassen sich derzeit noch nicht machen; vielleicht sind die Untersuchungen von ~E. Berl~ und seinen Mitarbeitern über Nitrozellulosen geeignet näheren Aufschluß über die Konstitution des Zellulosemoleküls zu bringen (~Winterstein~). =Lit.= ~Braconnot~, Ann. chim. phys. 1819. -- ~Payen~, Ann. sc. nat. 1839 u. 1840, Compt. rend. 1840, Mém. sur le develop. des végétaux. Paris 1842. -- ~Schleiden~, Pogg. Ann. 43 (1838) u. Lieb. Ann. 42 (1842). -- ~Schweizer~, Journ. pr. Chem. 76 (1857). -- ~Nastjukoff~, Über d. Veränd. d. physikal. u. chem. Eigenschaften d. Baumwollzellulose bei ihr. Umwandl. in Oxyzellulose. Bull. soc. ind. de Mulhouse 1892. -- ~C. Smith~, Über natürl. Oxyzellulosen. Chem. Zeit. 1894. -- ~Autenrieth~ und ~Bayerhammer~, Jahresb. d. Chem. I, 1822. -- ~Braconnot~, Ann. chim. phys. (2) 12, 1819 und ~Gilberts~ Ann. 1819. -- ~Gilson~, La cristallisation de la cellulose et la composition chimique de la membrane cellulaire. La cellule 9, 397 und La composit. chim. de la membr. cellul. végét. Cellule 11, 19. -- ~Hoffmeister~, Die Zellulose und ihre Formen. Landw. Jahrb. 1889 und Landw. Versuchsstationen 39, 462. -- ~Skraup~ und ~König~, Ber. d. d. chem. Ges. 34. -- ~E. Schulze~, Zur Kenntnis der in den pflanzl. Zellmembranen enthaltenen Kohlenhydrate. Landw. Jahrb. 1894 (Zusammenfassung). +Derselbe+, Zur Chem. d. pflanzl. Zellmembranen. Zeitschr. phys. Chem. 19 (1894). -- ~Renker~, Über Bestimmungsmethoden der Zellulose. 2. Aufl. -- ~Cross~ and ~Bevan~, Cellulose an outline of the chemistry of the structural elements of plants with reference to their natural history and industrial uses. Sec. edit. 1903. Ferner Researches on Cellulose. London 1901. -- ~Cross~, ~Bevan~ and ~Beadle~, Proc. chem. soc. 1901. -- ~Witt~ und ~Lehmann~, Chem. Technologie der Gespinnstfasern. -- ~Schwalbe~, Die Chemie der Zellulose. 1909. -- ~C. Piest~, Die Zellulose, ihre Verarbeitung und ihre chem. Eigenschaften. Stuttgart 1910. -- ~Lange~, Zeitschr. angew. Chem. 1895. -- ~T. F. Hanausek~, Artikel Zellulose in Luegers Lexikon d. ges. Technik. -- ~Tschirch~, Artikel Zellulose in Realenzyklop. d. Pharm. II. Aufl. -- ~Tollens~, Kurzes Handb. d. Kohlenhydrate. -- ~Czapek~, Biochemie (dort eine Liste des Rohfasergehaltes zahlreicher Objekte). -- Vgl. ferner die chem. Lit. unter Baumwolle. Die anatomischen Verhältnisse der Zellulosezellwände sind einfach. Bisweilen zeigen sie Schichten, die oft abweichende Struktur besitzen, bisweilen Plasmaeinschlüsse, die besonders bei wachsenden Membranen auftreten (~Krabbe~). Das Wachstum der Membran scheint sowohl durch Apposition (vorwiegend beim Dickenwachstum), wie durch Intussusception (beim Flächenwachstum) zu erfolgen. ~Wiesners~ Dermatosomentheorie erscheint nicht haltbar. Die Membran, besonders der Bastzellen, zeigt oft einen Aufbau aus mehreren Schichten, die sich deutlich, sowohl optisch wie durch abweichende Reaktion (z. B. gegen Jodschwefelsäure, die Verholzungsreagentien usw.) unterscheiden. Um diesen Unterschied zu markieren, habe ich die alte Bezeichnung, sekundäre und tertiäre Membran, wieder aufgenommen (Angew. Anatomie). =Lit.= ~Correns~, Dickenwachstum durch Intussuszeption bei einigen Algenmembranen. Diss. München 1889 und Z. Kenntnis d. inneren Struktur d. vegetabil. Zellmembranen. Pringsh. Jahrb. 23 (1891). -- ~Ambronn~, Über Poren in den Außenwänden von Epidermiszellen. Pringsh. Jahrb. 14 (auch Habilitationsschrift Leipzig 1882). -- +Derselbe+, Pleochroismus gefärbter Zellmembranen. Ann. d. Phys. 1888 und Ber. d. d. bot. Ges. 1888. -- ~Krabbe~, Beitr. z. Kenntn. d. Struktur u. d. Wachstums vegetabilischer Zellhäute. Pringsh. Jahrb. 18 (1887). -- ~Buscalioni~, Contribuz. allo studio della membr. cellulare. Malpighia 1892 u. 1893. -- ~Zacharias~, Entstehung u. Wachstum d. Zellhaut. Pringsh. Jahrb. 20, 1889 u. Flora 1891. -- ~Wiesner~, Sitzungsb. d. Wien. Akad. 1886, I, 17, Ber. d. d. bot. Ges. 1888 und Botan. Zeit. 1892 (Dermatosomen). -- ~Mikosch~, Ber. d. d. bot. Ges. 1891, 306. -- ~T. F. Hanausek~, Zur Struktur d. Zellmembran. Ber. d. d. bot. Ges. 1892, 1. -- ~Krasser~ (Eiweiß in Zellmembranen). Sitzungsb. d. Wien. Akad. 94 (1886) u. Bot. Zeit. 1888, 209. -- ~A. Fischer~, Zur Eiweißreaktion der Zellmembran. Ber. d. d. bot. Ges. 1887 u. 1888. -- ~Correns~, Jahrb. f. wissensch. Bot. 26 (1894). -- ~Solms-Laubach~, Über einige geformte Vorkommnisse oxals. Kalkes in lebenden Zellmembranen. Bot. Zeit. 29. -- Über die Schleimmembran s. diese (weiter hinten). Gossypium. Pili gossypii, Lana gossypina, Baumwolle -- coton (franz.) -- cotton, cotton wool (engl.) -- cotone (ital.) -- algodon (span.) -- algodâo (port.) -- katoen (holl.) -- bomull (schwed.) -- puuvilla (finn.) -- gyapot (ung.) -- βάμβαξ (n.-griech.) -- qutu (pers.) -- kapas (mal.) -- kapase (beng.). -- Die Pflanze: Cotonnier, cotton-plant. =Etym.= Zweifelhaft ist die Deutung von σίνδον, ξύλον, ὄθων, sowie von βίσσος, byssus, worunter wohl von den Alten ebenso Seide und Leinen, wie Baumwolle verstanden wurde (~C. Ritter~ und ~Regnier~, ~Paulys~ Realenzyklop. d. klass. Altert. 1897, V, S. 1108), und auch das semitische Wort keton (+altsem.+ kettân, +arab.+ alcuta, qutn, kutn), woraus dann coton, cotton, cottone, kattun wurde, bedeutete ursprünglich Leinen (~D. H. Müller~). -- Das ägyptische Wort schens (hebräisch šêš, schesch, buz), welches den Stoff bezeichnete, aus dem Kopfbinde und Leibrock des Hohenpriesters angefertigt wurde, kann Baumwolle aber auch Leinen bezeichnet haben. Der Baum pištim (Josua 2, 6) war nicht Baumwolle, sondern Flachs (~D. H. Müller~). -- Im Sansk. heißt die Baumwolle kârpâsa (die Baumwollpflanze kârpâsî). Doch wurden die Ausdrücke κάρπασος, carbasa, carpas im Munde der Griechen und Römer später mehrdeutig und schließlich auch für Leinen benutzt (~Wagler~). -- Bei ~Plinius~ steht gossipion oder Xylon. Gossypium entweder von gossum (= Wulst, Kropf?) oder, was wahrscheinlicher, von arab. goz (= seidenartig). ~Plinius~ sagt (XIX, 2): «Superior pars Aegypti in Arabiam vergens gignit fruticem, quem aliqui +gossipion+ vocant, plures +xylon+ et ideo lina inde facta +xylina+. Parvus est, similemque barbatae nucis defert fructum, cuius ex interiore bombyce lanugonetur. Nec ulla sunt eis candore mollitiave praeferenda.» (Vgl. auch ~Wiesner~, Rohstoffe.) =Stammpflanze.= Zahlreiche Kulturformen von mehreren Gossypiumarten besonders =Gossypium barbadense= L. [Spec. pl. ed. I (1753) p. 693] (G. vitifolium ~Lam.~, G. peruvianum ~Dc.~, G. punctatum ~Schum.~ et ~Thönn.~, G. acuminatum ~Roxb.~, G. religiosum ~Parl.~ non ~Linn.~) mit der Varietät _peruvianum_ ~Cav.~ (auch als Art, s. unten), und =Gossypium herbaceum= L. (Spez. pl. ed. I p. 693) (G. indicum ~Lam.~, G. album ~Wight~ et ~Arn.~, G. micranthum P. ~Dc.~, G. hirsutum L., G. punctatum ~Guill.~ et ~Perrott~, G. prostratum ~Schum.~ et ~Thönn.~) mit den Varietäten _religiosum_, _hirsutum_ und _Wightianum_ (diese auch als Arten). Die Systematik der Gattung Gossypium ist sehr unsicher. =Systemat. Stellung.= Malvaceae, Hibisceae. ~Parlatore~ betrachtet Birma und den indischen Archipel als Heimat, ~Masters~ hält das in +Sindh+ heimische _G. Stocksii_ für die Stammform von _G. herbaceum_. ~Schumann~ nimmt (in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam.) drei Arten kultivierter B. an: _G. barbadense L._ (heimisch auf den Antillen), _G. arboreum L._ (heimisch in Togo, Afrika) und _G. herbaceum L._ (seit Urzeiten in Indien kult.) mit den Varietäten _religiosum_ (China [oder Amerika?]) und _hirsutum_ (heimisch in Mexico und Westindien). In der Flora Brasiliensis stehen: _G. hirsutum L._, _G. barbadense L._, _G. religiosum L._, _G. pubescens_ ~Sphitg.~ ~Linné~ beschrieb 5 (6) _Gossypium_-Arten, ~De Candolle~ 16, ~Rohr~ (1807) 29 (34), ~Todaro~ (1877) 54, ~Parlatore~ (1866) 7 (9), nämlich: _Gossypium herbaceum L._, _G. arboreum L._, _G. sandvicense_ ~Parl.~ (= _G. religiosum_ ~Forst.~), _G. taitense_ ~Parl.~, _G. hirsutum L._, _G. barbadense L._ und _G. religiosum L._ ~Masters~ 7, ~Royle~ 4, ~Bentham-Hooker~ 3. Jetzt nimmt man meist 9-10 an. In Kultur sind aber nur fünf Arten. Von diesen stammen die drei wertvollsten, die groß- und weiß- bzw. gelbblütig sind, aus Amerika, nämlich: _Gossypium barbadense_ (+Sea Island Baumwolle+) aus Westindien (liefert unter andern Sea Island, Barbados und New Orleans Cotton), _G. hirsutum_ (+Upland Baumwolle+) aus Mexiko und _G. peruvianum_ (+Nieren-Baumwolle+) aus Südamerika (liefert die +Peru-+, +Kidney-+ und +Brasilbaumwolle+). Die vierte in Indien bevorzugte Kulturart _G. herbaceum_ (+Indische Baumwolle+) stammt aus Ostindien, und die fünfte, _G. arboreum_ (Purpurblütige Baumwolle, das Gossipion des ~Plinius~), wahrscheinlich aus Afrika. Letztere, die nur wenig in Ägypten, Arabien und Indien kultiviert wird, findet sich wild in Abyssinien und dem oberen Nilgebiet. Besonders von der Sea Island Baumwolle gibt es zahlreiche Spielarten. _G. religiosum_ (s. oben) stammt aus China und liefert die gelbe Nankingbaumwolle. Vielfach sind durch Kreuzung von Arten, Unterarten und Rassen, +Hybriden+, erzeugt worden, so z. B. zwischen der in Florida heimischen Art mit der Common okza genannten Kulturrasse. Auch die Caravonica scheint eine Hybride zu sein. _G. herbaceum_ wird in den Tropen 2 m, in der gemäßigten Zone 60-90 cm hoch. Sie wird in Südeuropa und in Zentralasien, in großer Menge in der Bucharei, in Ostasien bis Nordchina, Korea und Japan, auf Cypern, in Syrien und Kleinasien gebaut. Die vorderindischen Produkte heißen Surats. Der Stapel ist mäßig lang und stark, meist weich seidenartig. Die Nordwestprovinzen und Assam sind für die Produktion weniger wichtig. Die indische Art wird auch in Zentralasien und China gebaut, sowie in Afrika, den Mascarenen und etwas auch in Zentralamerika und Chile. «Von wenigen Ausnahmen abgesehen sind alle Baumwollpflanzen, welche in Asien angebaut werden, nur als verschiedene Formen von _G. herbaceum_ zu betrachten» (~Semler~). Die für Indien wichtigste Form ist _G. Wightianum_. Von den amerikanischen Arten liefert _G. hirsutum_, die in den Südstaaten gebaut und 2-2½ m hoch wird, die Upland-Baumwolle, die die größte Menge der Baumwolle des Welthandels liefert. Die Sorte Orleans wird mehr in Louisiana und Mississipi gebaut, die Sorte Georgian Upland (Boweds) in Georgia und Carolina. Die dritte ist die kurzstapelige Texasvarietät, die in geringer Menge auch im Mittelmeergebiet, Ägypten, Syrien, in Westafrika, den Mascarenen, in Süd- und Ostasien und in Queensland kultiviert wird, eine grünsamige Sorte in Westindien und Venezuela. Einige Sorten haben gelbe Wolle. In China und Hinterindien, aber auch in Ägypten und Italien wird _G. religiosum_, die Nangkingbaumwolle, gebaut. Den längsten und feinsten Stapel haben die Sorten der Sea Island-Baumwolle von _G. barbadense_, die 2-2½ m hoch wird und in den feuchten Küstengebieten von Georgia, Süd-Carolina und Florida und den Inseln (Sea Islands) gebaut wird. Sie wird auch in Westindien, Zentral- und Südamerika, Peru und in bedeutender Menge in Ägypten kultiviert, wenig in anderen Teilen des Mittelmeergebietes, Westafrika, Zentralafrika, Bourbon, Indien, Süd-China und den polynesischen Inseln. Im Stapel gegen diese zurückstehend ist _G. peruvianum_ (Nierenbaumwolle), die 2 bis 5½ m hoch wird. Sie wird besonders in Peru und Brasilien kultiviert, weniger im übrigen Südamerika und den Antillen, dem Mittelmeergebiet, Ägypten, Westafrika, Südasien. Maranham, Bahia, Maceio sind die beliebtesten Sorten. _G. arboreum_ L. ist baumartig. Sie wird in der Nähe der indischen Tempel angepflanzt. Sie ist bei den Hindus eine heilige Pflanze. Aus ihrer Baumwolle wird der heilige dreiteilige Faden der Brahmanen, «dieses Sinnbild ihrer göttlichen Dreiheit», gesponnen. Dieses _G. arboreum_ L. ist aber nicht identisch mit dem _Gossypium arboreum_ ~Aublet~ (_G. religiosum_ L., _G. vitifol._ ~Lam.~, _G. peruvian._ ~Cavan.~, _G. brasiliense_ ~Mac Fadyen~), die aus Guayana stammt. [Illustration: Fig. 83. _Baumwoll_ernte in Georgia U. S. A. [Nach +Stromeyer+ & +Wyman+.]] =Beschreibung der Stammpflanze.= Die Arten der Gattung _Gossypium_ sind Kräuter, Sträucher (I, Fig. 95-98) oder Bäume mit meist 3-9lappigen Blättern und großen ansehnlichen Blüten, die ein bleibendes Hochblattinvolukrum (Außenkelch) aus drei meist großen und gezähnten Blättern besitzen (Fig. 84). Die Staminalsäule unter dem Griffel meist nackt, der Griffel am Ende keulig, die Cotyledonen stark gefaltet (Fig. 87) mit der geöhrten Basis der Würzelchen umfassend. Die Früchte sind drei- (bis fünf-) fächerige, dunkelbraune, walnußgroße Kapseln, die fachspaltig aufspringen. Die 5-10 unregelmäßig nierenförmigen Samen sind mit langen weißen, einzelligen Haaren bedeckt. Nicht alle Epidermiszellen sind aber zu diesen langen Haaren ausgewachsen, ein Teil wächst nur zu kürzeren aus, die technisch auch nicht völlig wertlos sind. In der Union werden nämlich diese kurzen Haare der Grundwolle als +Linters+ (im Gegensatz zur +Lint+-Baumwolle) bezeichnet und dienen nach ~Schanz~ zur Herstellung von Hut- und anderen Filzen, Vigognegarne, gewöhnliche und Verbandwatte, Politurmaterial usw. Bei _G. barbadense_ und _peruvianum_ ist der Same nur mit langen Haaren bedeckt, bei _G. hirsutum_, _herbaceum_ und _arboreum_ sitzt zwischen den langen Haaren noch ein kurzer Filz («Grundwolle»), bei einer besonders in China kultivierten Varietät von _G. herbaceum_ sind die Haare gelb gefärbt (Nangkingbaumwolle), die Grundwolle sogar tiefgelb. Bei _G. barbardense_, wo die Grundwolle fehlt, erscheint daher der Same glatt und schwarz, bei _G. herbaceum_ und _arboreum_ weißfilzig, bei _hirsutum_ grünfilzig. Die Kapsel ist bei der ägyptischen Art drei-, bei der nordamerikanischen vier- bis fünfteilig. Zur Zeit der Reife ist das ganze Innere mit den haarbedeckten Samen erfüllt und diese sprengen schließlich die Kapsel auf, so daß der Wollbausch hervorquillt. Ob hierbei auch die fortschreitende spiralige Drehung, die von der Spitze des Haares her, die zuerst austrocknet, erfolgt, mitwirkt, wie ~Semler~ meint, ist noch zu erweisen. Sicher ist, daß die Torsionen des Haares erst im letzten Stadium der Reife eintreten, also bei sog. «unreifen Fasern» weniger zu finden sind, die sich überhaupt durch geringere Wanddicke, das Fehlen der verdickten Ränder und stärkeres Zusammenfallen von den reifen unterscheiden. Am vollkommendsten ausgebildet, d. h. am reifsten, sind die Haare der ägyptischen und nordamerikanischen Baumwolle. [Illustration: Fig. 84. _Gossypium spec._ Frucht zur Reifezeit. [Nach +Gilg+.]] Die Gattung _Gossypium_ ist über die Tropen beider Welten verbreitet, nicht aber die einzelnen Arten. _G. herbaceum_ L. (+sansk.+ karpassi, +hind.+ kapas) ist in Asien (Birma, Irawaddi, ind. Archipel, Sindh) heimisch. Über Europa gelangte es um 1770 nach Nordamerika. _G. arboreum_ L. ist im subtropischen Afrika zuhause (Guinea, Abyssinien, Sennar, Ober-Ägypten) und _G. barbadense_ L. in den Tropen Amerikas. =Lit.= ~Parlatore~, Le specie dei cotoni. Firenze 1866, mit Taf. -- ~Todaro~, Relatione della cultura dei cotoni in Italia seguit de una Monografia del genere Gossypium. Roma 1877/78, mit Taf. -- ~G. Watt~, The wild and cultivated Cotton plants of the world. London 1907 and Dictionary of economic products. -- ~Middleton~, Descript. of cert. indian botan. forms of cotton. Agricultur Ledger Nr. 8, 1895. -- ~Sadebeck~, Kulturgew. d. deutsch. Kolon. Jena 1898. -- Übersicht der Arten in ~Wiesner~, Rohstoffe, 2. Aufl. 1903. -- Abbild. bei ~Rumpf~, Herb. Amb., ~Parlatore~ und ~Todaro~ (s. oben), sowie ~Wight~, Illustr. Ind. Bot. t. 27 und 28. -- Ferner von Gossypium herbac.: in ~Berg-Schmidt~, Atlas t. 106 (dort auch d. system. Literatur). Abbild. von G. barbadens.: in ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 158 und ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants t. 37 (dort weitere Literatur). Alle drei Arten: in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. III, 6, S. 51. =Pathologie.= Auf der Baumwollpflanze sind zahlreiche parasitische Pilze beobachtet worden, von denen mehrere einen grösseren Schaden stiften. Zu diesen gehört _Neocosmospora vasinfecta_, eine Hypocreacee, welche die ganze Pflanze zum Absterben bringt; dasselbe wird auch von einem _Fusarium_ angegeben. Mehrere Pilzarten bilden sich auf den Kapseln aus, so rufen _Phyllosticta gossypina_ und _Alternaria macrospora_ Schwärzungen der Fruchtknotenwand hervor, auch kennt man eine Bakterienkrankheit der Baumwollfrüchte. -- Die einzige Angabe eines Pilzvorkommens speziell auf den Samen bezieht sich auf eine _Torula incarcerata_ ~Cke.~ (~Ed. Fischer~) Über die Schädlinge der Baumwollpflanze vgl. ~Semler~, Tropische Agrikultur. Der gefährlichste +tierische Schädling+ ist ein Verwandter der Seidenraupe, die sog. Baumwollraupe oder Baumwollmotte, eine Noctuidee, _Aletia xylina_ (Abbild. bei ~Semler~), dann die zur gleichen Familie gehörige Kapselraupe (Bollworm) _Heliothis armigera_ (Abbild. bei ~Semler~). =Kultur und Erntebereitung.= Die +Sea-Islandstaude+ wird jetzt kultiviert auf den Inseln an der Küste von Georgia und Florida und in Florida, in Ägypten (Messifieh), auf den Südseeinseln, in Venezuela und Peru; die +Uplandstaude+ in Georgia, Süd-Carolina, Alabama, Texas, Mississipi, Louisiana, Pernambuco, an der Nord- und Ostküste von Brasilien, Sao Paolo, San Salvador, den westindischen Inseln, Venezuela, Peru und in Ägypten (Siftah); die +indische Staude+ in Vorderindien, Natal, Ägypten (Zagazig, Mansurah, Beharah) Vorderasien und Griechenland. Die +australische Caravonica+, deren botanische Zugehörigkeit unbekannt ist, in Nordaustralien (Queensland), auf den neuen Hebriden, in Ostafrika, Ägypten, Mexiko und Peru. [Illustration: Fig. 85. +Walzengin+ der Sächsischen Maschinenfabrik +Hartmann+ in Chemnitz.] Die Baumwollstaude ist eine ziemlich tiefwurzelige, tropische und subtropische Tieflandpflanze, die eine möglichst gleichmäßige Temperatur (18-26° C.), viel Feuchtigkeit bei anhaltendem Sonnenschein verlangt, also am besten in Küstenländern angepflanzt wird. _G. barbadense_ wird besonders an den Küsten von Georgia und Florida, auf Sea Islands und in Westindien gebaut, gedeiht aber auch in Ägypten. Die nördlichen und südlichen Grenzen sind etwa der 36° n. und s. Br. (bzw. 30° s. Br. bis 41° n. Br.). Man pflanzt die in Samenbeeten erzogenen Pflänzlinge in Abständen etwa wie die Kartoffel (ein junges indisches Baumwollfeld sieht denn auch etwa wie ein Kartoffelfeld aus), oder legt Reihenpflanzungen (Kammkultur) oder sog. Hügelpflanzungen an, bei denen die Samen direkt an Ort gebracht werden. An jeder Pflanzstelle läßt man aber nur die kräftigste Pflanze sich entwickeln. Obwohl die Baumwollpflanze ein mehrjähriges Gewächs ist, zieht man es doch vor sie alljährlich neu auszusäen. 1 Hektar produziert 60-300 kg Baumwolle. Zwei Monate nach der Aussaat beginnt die Baumwollstaude zu blühen, nach weiteren 2½-3 Monaten ist die Kapsel reif. Die Carpelle rollen sich alsdann nach außen zurück und es tritt der große weiße lockere Ball der haarbedeckten Samen hervor (Fig. 84). Nicht alle Kapseln einer Staude öffnen sich gleichzeitig. Sobald so viel Kapseln aufgesprungen sind, daß ein Arbeiter 25 kg Baumwolle am Tage sammeln kann, wird mit der Ernte begonnen, die bei möglichst trockenem Wetter erfolgt (I, Fig. 96 u. 97). Ein Arbeiter kann im Maximum 75 bis 100, selten bis 150 kg sammeln. Eine Baumwollstaude liefert etwa 1¼ kg Baumwolle. Man hat auch mechanische Erntemaschinen eingeführt (vgl. I, S. 94), aber noch ist das Problem nicht gelöst. Der Arbeiter nimmt mit einem Griff den Bausch aus der geöffneten Kapsel (Fig. 83) und sorgt dafür, daß nicht Kapselteile, Blätter und anderes mit geerntet werden. Die die Baumwollbäusche enthaltenden Säcke werden dann auf Tennen entleert und der Inhalt getrocknet. Dann kommen sie in das Ginhaus, um dort zunächst eine Reinigungsmaschine (Seed Cotton Cleaner oder Exhaustorenreiniger) zu passieren und dann dem +Gin+ (abgekürzt aus engine = Maschine) zugeführt zu werden. Das +Ginen+ (Entkörnen, Egrenieren oder Egrainieren), d. h. das Trennen von Samen und Wolle, erfolgt ebenfalls durch Maschinen, deren älteste, jetzt meist durch neuere Systeme verdrängte, die churka (manganello) ist, die noch jetzt da und dort in Indien benutzt wird. Der +Sägegin+ wurde 1792 von ~Whitney~ erfunden. Neueren Datums ist der +Walzengin+ (Fig. 85). Die Maschinen enthalten entweder enggestellte +Walzen+ (Walzengin, in Ägypten und Indien in Gebrauch), die die Haare fassen, während die Samen, die nicht folgen können, abgeworfen werden oder stumpfe, kreisförmige +Sägeblätter+ (Sägegin, in Nordamerika in Gebrauch), deren Zähne durch ein enges Gitter greifen und die Haare von den auf dem Gitter hinabgleitenden Samen abreißen. Durch das Ginen wird die Samenbaumwolle zur +Lintbaumwolle+. Meist ist das Verhältnis von Samen zu Wolle wie 2 : 1, im besten Falle wie 6 : 4. Die egrenierte Baumwolle wird dann in Hanf- oder Jutesäcke oder Häute gefüllt und in hydraulischen oder Plattenpressen zu Ballen von 30 : 38 : 75 cm = c. 56 kg oder 135 : 70 : 80 cm = c. 180-220 kg gepreßt, die mit eisernen Bändern umschnürt werden (Fig. 86). [Illustration: Fig. 86. Mittelst hydraulischer Pressen hergestellte _Baumwollen_ballen zum Verladen bereit (St. Louis).] Die Baumwolle wird noch jetzt, trotzdem auch noch der letztjährige Spinnerkongreß wieder Handel nach Gewicht verlangte, meist nach Ballen gehandelt. Diese aber besitzen ein sehr schwankendes Gewicht. Bei Sea Island finde ich z. B. Gewichte von 373, 375, 377, 384, 388 lbs angegeben; bei Upland 400, 450, 500, 503.69, 510.24, 519, 535 lbs (engl. Pfund), bei afrikanischer 400, 441, 500, 513. Der +Standardballen+ wird zu 500 (engl.) lbs angenommen. +Der Wert der Baumwolle+ wird beurteilt nach der Länge des Fadens, dem +Stapel+, dem Grade der Seidigkeit (abhängig von der Glätte der Cuticula) und der Feinheit (abhängig vom Durchmesser), der Weichheit, der Reinheit und Homogenität (abhängig von der Anwesenheit toter Baumwolle und Frucht- bzw. Samenresten), von der Festigkeit und der Farbe. Als langstapelig wird eine Baumwolle bezeichnet, die über 3,5 cm, als mittelstapelig eine solche, die c. 2,5-3,5 cm, als kurzstapelig endlich eine solche, die unter 2 cm Stapellänge besitzt. Die Standardmuster zeigen folgende mittlere Stapellängen in mm: Sea Island 42, ägyptische (Mako, Jumel) 38, Pernambuco (brasil) 32, amerikanische (exkl. Sea Island) 28, Port Natal 28, indische 23 und 17. Der Stapel der indischen Baumwolle ist kurz aber fein, die Arboreumbaumwolle hat einen seidenartigen Stapel, doch ist die Wolle schwer vom Samen zu trennen. In Europa wird die eingeführte Rohbaumwolle mit besonderen Maschinen gereinigt, von allen Verunreinigungen befreit, gekrempelt und gekardet (kardiert) -- bisweilen unter Zusatz von _Olivenöl_ --, dann aufgelockert und durch Benzol oder verdünnte Natronlauge bzw. Soda vom Fett befreit, mit verd. Schwefelsäure, Seifenwasser und Wasser gewaschen und dann gebleicht, und in den sog. Wattemaschinen aufgelockert (coton cardé ou ouate). Um Baumwolle mit «knirschenden Griff» herzustellen, wird ihr +Stearinsäure+ zugesetzt. Die für arzneiliche Verwendung bestimmte +gereinigte Baumwolle+ muß stets entfettet werden. Nicht entfettete sinkt in Wasser nicht unter und saugt Wasser nur schwer auf, und in der guten Aufsaugefähigkeit beruht der Wert der Baumwolle. Auch der starke Luftgehalt hindert das Untersinken. Das Entfetten und Entlüften erfolgt durch Kochen mit verd. Sodalösung oder Seifenlauge (s. oben). Die +Darstellung der gereinigten Baumwolle+ (Coton dépuré, Purified cotton, Cotton wool, Wound dressing cotton) geschieht in der Weise, daß kardierte, möglichst langstapelige Rohbaumwolle in sehr verdünnte, siedende Pottasche oder Sodalösung getaucht und dann sofort ausgewaschen und ausgepreßt und darauf mittelst 5% Calcium- oder Natriumhypochloritlösung gebleicht wird. Dann wird mit Wasser gewaschen, bis Lackmuspapier nicht mehr verändert wird, getrocknet und gekrempelt. Zu +Verbandwatte+ werden meist die Abfälle der Baumwollspinnereien (die sog. Kämmlinge) verarbeitet. Sie werden auf dem +Öffner+ von Unreinigkeiten befreit, auf der +Krempelmaschine+ gekämmt und zu Vließen verarbeitet Die sog. +Rohwatte+ wird nacheinander mit Harzseife, Natronlauge oder Soda, Chlorkalk (oder Eau de Javelle), salzsäurehaltigem und reinem Wasser behandelt, getrocknet und zu Vließen verarbeitet (~A. Meyer~). Mit Benzin entfettete Baumwolle ist als Verbandstoff nicht verwendbar. =Lit.= ~Beckmann~, Vorber. z. Waarenkunde I. Göttingen 1793. -- ~Baines~, history of cotton manufacture in Great Britain. London 1835. -- ~Benno Niess~, Die Baumwollspinnerei in allen ihren Teilen. Weimar 1868. -- ~A. Oppel~, Die Baumwolle nach Geschichte, Anbau, Verarbeitung und Handel. Leipzig 1902. -- ~Semler~, Tropische Agrikultur. -- ~Eckardt~, Der Baumwollbau. 1906. Beiheft VII z. Tropfenpfl. -- ~Yves Henry~, Le Coton. Publ. d. Gouverm. génér. de l’Afrique occid. franc. 1906. -- ~Kick~ in ~Karmarsch~ und ~Heeren~, Technisches Wörterbuch 1876. -- ~von Kapff~, Über Wolle, Baumwolle, Leinen, natürliche u. künstliche Seide. Leipzig, ~Fock~. 1909. -- ~E. Frank~, Handb. d. Baumwollindustrie. -- ~C. Heine~, Die Baumwolle (nach Cotton von ~Burkelt~ and ~Hamilton~). -- ~Kuhn~, Die Baumwolle, ihre Kultur usw. 1892. -- ~H. Lecomte~, Le Coton. Paris 1899. -- ~Tobler~ in Kolonialbotanik. -- ~T. F. Hanausek~, Artikel Baumwolle in Realenzykl. d. Pharm. II, 590. -- ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Passon~, D. Kultur der Baumwolle mit besonderer Berücksicht. derjen. von Brasilien. Nach dem gleichnamigen Werke von ~d’Utra~, Stuttgart 1910. -- ~M. Schanz~, Die Baumwolle in d. Verein. Staat. Beiheft z. Tropenpflanzer 1908. -- ~Yves~, Le coton aux États-Unis-Journ. Agr. pr. pays chauds 1903 (mit einer Übersicht der Varietäten). -- ~M. Schanz~, Baumwollbau in deutschen Kolonien. Berlin 1910. -- ~Busse~, Zeitfragen d. Landw. im trop. Afrika m. bes. Berücks. d. Baumwollbaus. Tropenpflanzer 1907. -- Weit. Lit. unter Anatomie. -- Der Baumwollbau und -handel im Mittelalter bei ~Heyd~, Levantehandel II, 572. =Produktion.= Das wichtigste Produktionsland der Baumwolle ist +Nordamerika+, wo in Texas, Georgien, Alabama, Mississippi, Süd-Karolina, Arkansas, Louisiana, Nord-Carolina und Tennessee Baumwolle gebaut wird. Der Jahresertrag betrug: 1906 über 13 Mill. Ballen (vgl. I, S. 184). Hauptausfuhrhäfen sind New Orleans (nach Liverpool wichtigster Baumwollmarkt der Erde), Galveston, Savannah, Charleston, Wilmington, Mobile, Pensacola, New York, Norfolk, Boston, Baltimore. In +Mittelamerika+ baut Haiti, Portorico, Jamaika, Martinique, Guadeloupe. Die Produktion geht, obwohl das Produkt vorzüglich ist, zurück. In +Südamerika+ baut Guyana, Columbien, Venezuela, Peru und besonders Brasilien Baumwolle. Hauptausfuhrhäfen sind: Barranquilla und Sabanilla, Puorto Cabello, Pernambuco, Maceió, Ceará. In +Ostindien+, dem zweitwichtigsten Produktionslande besonders für ordinäre Sorten, baut +Britisch Indien+ in Bombay, Sind, Berar, Madras, den Nordwestprovinzen, Haiderabad, den Zentralprovinzen, Pandschab und Radschputana Baumwolle (am meisten Berar). Die wichtigsten Produktionsgebiete der Baumwolle in +Vorderindien+ liegen in den Ebenen von Guzerat und Katkiawar, dem Hochland von Dekkan, den tiefen Tälern von Berar und den Zentralprovinzen. Hier steht der Baumwollbau in Kleinbetrieb bei den eingeborenen Bauern und dies bedingt die Minderwertigkeit des Produktes gegenüber der amerikanischen und ägyptischen Baumwolle. Hauptausfuhrhäfen sind: Bombay, Calcutta, Karatschi, Tuticorin, Madras. In +China+ ist die Kultur umfangreich, reicht aber nicht zur Deckung des großen Bedarfes. Der Baumwollbau in China reicht bis ins XI. Jahrh. zurück. Er hat sich allmählich über große Teile des Reiches verbreitet, wird aber besonders in den Küstenländern betrieben. Die Kultur in +Japan+ ist ebenfalls beträchtlich, doch deckt sie nicht den Bedarf und muß Japan Baumwolle aus China importieren. In +Persien+ (Bezirk von Iphahan), +Transkaukasien+ und +Vorderasien+ ist die Kultur gering. In +Australien+ und den +Südseeinseln+ steigend. Australien (Queensland) baut die Caravonica. Von der vorzüglichen Caravonicabaumwolle ist jetzt (1910) sowohl wollige wie seidige im Handel. In +Afrika+ baut besonders +Ägypten+ viel Baumwolle im Nildelta, überhaupt im Küstengebiet. Zuerst _G. herbaceum_ aus Indien, dann Anfang des XIX. Jahrh. eine nubische Spielart (Jumel, Maho, Mako), jetzt die Sea-Island-Art und Caravonica. Die Baumwolle ist gegenwärtig die größte Finanzquelle Ägyptens. Der Ertrag beläuft sich auf über 200 Mill. Frs. Die ägyptische Baumwolle, die seidenartigen Glanz besitzt und japanischer Seide gleicht, macht der amerikanischen Baumwolle erfolgreich Konkurrenz. Die besten Baumwollsorten kommen jetzt aus Ägypten. Die Algerische Kultur hat aufgehört. In den +deutschen Kolonien+ breitet sich die Kultur aus. Die Baumwollnot im Jahre 1909, die den Preis der amerikanischen Rohbaumwolle von 9,25 auf 16,15 Cents hinauftrieb, hat die Aufmerksamkeit der deutschen Konsumenten auf die Baumwollkulturen in den deutschen Kolonien gelenkt (vgl. ~Supf~, Deutsch-koloniale Baumwollunternehmungen. Beihefte z. Tropenpflanzer. 1910). Deutsch-Ostafrika lieferte 1908 erst 1081 Ballen = 540298 Pfund, Togo 1908/09: 2337 Ballen à 500 Pfund. Die +europäische+ Kultur in Griechenland, Italien, Spanien und der Türkei ist ohne Bedeutung. Immerhin produziert z. B. Griechenland (von _G. herbaceum_) jährlich 3840000 kg (~Emmanuel~). Das Ansteigen der +Baumwollproduktion+ veranschaulichen folgende Zahlen. Die Weltproduktion betrug 1791: 213,4, 1834: 408,5, 1880/84: 2274,3, 1891/99: 3260,8 Mill. kg pro Jahr. Obenan in der Produktion steht jetzt Nordamerika, weit dahinter folgt erst Ostindien und dann mit etwa gleichen Mengen China und Ägypten. Die Baumwollernte der Erde erreichte 1906: 18,6 Mill. Ballen = 3682,8 Mill. kg. 1908/09 betrug die Baumwollernte in 1000 Ballen (à 400 engl. Pfund): Amerika: 13829, Indien: 4665, Ägypten: 910, Brasilien u. and. Länder: 3063. -- Total: 22467. Sie steht damit von allen uns interessierenden Produkten obenan («~King Cotton~»). Der Baumwollverbrauch der Erde betrug 1. Sept. 1907 bis 1. Sept. 1908 (exkl. ägyptischer B.): 15121281 Ballen (der Vorrat 1. Sept. 1908: 7574130 B.). Der Verbrauch ägyptischer B. im gleichen Zeitraum: 658256 B. 1909 liefen in der ganzen Welt 130795927 Baumwollspindeln, davon in Großbritannien c. 53½ Mill., in Nordamerika c. 27½ Mill., in Deutschland c. 10 Mill. 1909 entfielen von der Weltproduktion 66% auf die Vereinigten Staaten, 13% auf Ostindien, 10% auf Mittel- und Ostasien, 7-10% auf Ägypten und 4% auf alle anderen Länder. +Nordamerika+ exportierte +Sea Island+ B. 1908: 33042 bales (= 12699567 lbs), 1909: 25939 bales (= 9740806 lbs) und Upland and other 1908: 7401538 bales (= 3804299126 lbs), 1909: 8551789 bales (= 4438244396 lbs). Die Produktion Nordamerikas betrug 1908/09: 13829000 Ballen (1909/10 10-11 Mill.). Die +indische+ Baumwollernte betrug 1908/09: 3643000 Ballen (zu 400 engl. Pfund). Die indische Baumwollernte 1909/10 wird auf 4289000 Ballen geschätzt. +Ägypten+ produziert jetzt (1910) 5-6 Mill. Cantars pro Jahr. +Rußlands+ Baumwollenbau macht Fortschritte. 1907 lieferte russ. Zentralasien bereits c. 5750000 Pud, Transkaukasien 800000 Pud. +Java+ exportierte 1908 4221002 kg ungereinigte Baumwolle. +Deutschland+ importierte 1909: 4559207 dz +Roh-Baumwolle+ besonders aus den Ver. Staaten (3½ Mill.), dann aus Brit. Indien und Ägypten, geringere Mengen aus Niederl. Indien, der asiat. Türkei, China, Deutsch-Ostafrika, Togo, Peru und Haiti. +Hamburg+ importierte 1908 seewärts 1125919 dz Baumwolle, davon aus den Ver. Staaten: 491132, Brit. Ostindien: 486678, Ägypten: 80124, China: 17466, kleinere Mengen aus Ostafrika, Westafrika, Kleinasien, Haiti, Mexico, Peru, Brasilien, Venezuela, St. Croix, Niederl. Indien, den Gesellschaftsinseln, St. Thomas, Madagaskar, Nicaragua, Portorico, Jamaica, St. Domingo. Die Einfuhr an Baumwollsamen betrug 120492 dz. =Lit.= Tropenpflanzer 1907-1910. -- Jahrbuch u. Kalender für die Baumwollindustrie. Leipzig, ~Degener~ (1909, 30. Jahrg.). =Handelssorten.= +Nordamerikanische Sorten+ sind: +Sea Island+ (Lange Georgia) -- +Louisiana+ -- Alabama (Mobile) -- Florida (Pensacola) -- +Kurze Georgia+, +Upland+ -- +New Orleans+ -- Tennessee -- Texas. Ernte im September. +Mittel- und südamerikanische Sorten+ sind: Molinos (Mexiko) -- +Pernambuco+ (Brasilien) -- Ceara -- Maceio -- Bahia -- Maranham -- Surinam (Guyana) -- Demerary -- Berbice -- Cayenne -- Varinas (Columbia) -- Barcelona -- Cartagena -- +Lima+ und +Payta+ (Peru) -- Haiti -- +Barbados+ -- Portorico -- Guayanilla -- Cuba. +Asiatische Sorten+: Surate (Dollerah, Ostindien) -- Madras -- Bengal -- Persische -- Nangking. +Afrikanische Sorten+: +Maco+ (Jumel, Ägypten) -- Bourbon. +Australische Sorten+: Die beste australische Sorte ist Caravonica (woll- und seidenartig), die in Nordaustralien gewonnen wird. Von ihr werden Alpacca, Silk und Wool unterschieden. Caravonica gilt jetzt als die beste Baumwolle. Ihr gleichwertig ist die neue (1909) +Mamara+. +Levantinische Sorten+: Smyrna -- Makedonien. +Europäische Sorten+: Griechische -- Motril (Spanien) -- Castellamare (Italien). Ohne Bedeutung: neapolitanische, römische, sizilianische. Die +Hauptmärkte+ für Baumwolle in Europa sind: +Liverpool+, +Bremen+, Hamburg, Havre, Marseille, Antwerpen, Rotterdam, Dünkirchen, Barcelona, Triest, Venedig, Neapel, Genua. Bremen ist erster deutscher Baumwollhafen. Karte der Baumwollproduktion der Erde in ~Langhans~, Kleiner Handelsatlas 1895, Nr. 10 u. 11. =Anatomie.= Die +Baumwollsamen+ sind rundlich, 7-9 mm lang, 3-5 mm dick. Die Epidermiszellen der Samenschale sind zum Teil zu den Baumwollhaaren ausgewachsen. Der Haarfilz bedeckt entweder die ganze Samenoberfläche (_G. arboreum_ u. _hirtum_) oder liegt nur an der Basis und der Spitze (_G. religios._). Von der Fläche betrachtet erscheinen die Epidermiszellen etwas unduliert. Oft sind die derbwandigen, einen braunen Inhalt führenden, nicht zum Haar ausgestülpten Zellen sternförmig um die Haarzelle gruppiert (~Hanausek~). Bei Samen mit Grundwolle sind nahezu +alle+ Epidermiszellen zu Haaren ausgestülpt. Dann folgt die Pigmentschicht. Sie besteht aus 4-5 Schichten tangential gestreckter, farbstofführender Parenchymzellen. Auf diese folgt die Kristallzone, ein (oder zwei) Reihen verdickter, bisweilen gut ausgebildete Kristalle führender isodiametrischer Zellen. Die bis hierher beschriebenen Schichten gehen aus dem äußeren Integument hervor (~Schlotterbeck~). Die nächste Schicht besteht aus stark verdickten Palissaden-Sklereïden, deren kleines Lumen ziemlich weit außen liegt. Die dann folgende, reich durchlüftete Nährschicht ist stark obliteriert; außen führen die ziemlich dickwandigen Zellen Farbstoff. Die innerste Schicht des inneren Integumentes (~Schlotterbeck~) besitzt Zellen, die zierliche zentripetale Wandverdickungen zeigen (Fransenzellen ~Hanauseks~, cellules plissées ou frangées ~Perrot~). Dann folgt ein sehr schmaler Nucellusrest, ein meist nur einschichtiger Endospermrest und dann die außerordentlich stark gefalteten Cotyledonen, die im Querschnitt dunkel punktiert erscheinen, da sie zahlreiche, eine blau- oder grünlich-schwarze Masse enthaltende schizogene (~Perrot~ oder lysigene ~Hanausek~, ~von Hoehnel~) Sekretbehälter führen. Sie enthalten Oxalatdrusen, Öl und Aleuron. Auf der Oberseite liegt eine Palissadenschicht. Das Sekret ist nicht näher studiert. Es löst sich in konzentrierter Schwefelsäure mit trüb-blutroter Farbe (~T. F. Hanausek~). Auf der Epidermis der Cotyledonen sitzen Haare ähnlich den ~Mitscherlich~schen Körperchen (~Perrot~). =Lit.= ~Flückiger~, Über d. Baumwollsamen. N. Jahrb. f. Pharm. 1871. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde II, 741. -- ~Kobus~, Kraftfutter und s. Fälsch. Landw. Jahrb. 13, 1884. -- ~v. Bretfeld~, Anatom. d. Baumwolle- u. Kapoksamen. Journ. f. Landw. 35, 1887, 29. -- ~T. F. Hanausek~, Zur mikrosk. Charakt. d. Baumwollsamenprodukt. Zeitschr. Öster. Apoth. Ver. 1888, 569 u. Samen in ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Guignard~, Rech. sur le développem. de la graine etc. Journ. d. Botan. 1893. --~Zwaluwenburg~ and ~Schlotterbeck~, Anatomy of the cotton seed and the development of its seed coats. Proc. Amer. pharm. Assoc. 1899, 185 (mit 1 Taf.) (Entwicklungsgeschichte). -- ~Hanausek-Winton~, Microscopy of technical products p. 59. -- ~Perrot~, Bull. sc. pharmacol. 1902, 336. -- ~Greenish~, Struct. of cotton seed. Festschr. f. Vogl. -- Die Preßkuchen auch in ~Collin-Perrot~, Residus industriels 1904. [Illustration: Fig. 87. _Gossypium spec._ 1 Längsschnitt und 2 Querschnitt durch den Samen, C die gefalteten Cotyledonen, R Radicula. [Nach +J. Moeller+, Mikroskopie.]] Mikroskopisch betrachtet erscheint das +Baumwollhaar+ besonders bei den indischen Sorten als ein breites, bisweilen gekörneltes Band, das häufig um seine Achse korkzieherartig gedreht ist (Fig. 88) und drei- bis viermal breiter ist als dick. Bei den feineren, dünneren Sorten aus Nordamerika und Ägypten ist das Haar wenig oder gar nicht zusammengedrückt, nur schwach seilförmig gedreht, ja auf weite Strecken fast zylindrisch, sehr dickwandig mit schmalem Lumen und wulstigen Rändern. Nach ~Wiesner~ soll sich die Torsion bei _G. herbaceum_ über die ganze Länge, bei _G. arboreum_ und _barbadense_ nur auf den mittleren Teil erstrecken, bei versponnener Baumwolle ist bisweilen gar keine Torsion mehr zu bemerken. Durch Salpetersäure wird die Drehung aufgehoben. Das Lumen ist immer klein. Es enthält Reste des Plasmas. Bedeckt ist das Haar mit einer sehr feinen Cuticula, die glatt ist oder Körnelung bzw. Streifung zeigt und bisweilen zart spiralig oder netzförmig gezeichnet ist (näheres bei ~Wiesner~). Der wollige Charakter der Caravonicawolle wird durch eine sehr scharfe regelmäßige, feine spiralige Streifung, der seidige der Caravonicaseide durch dichte und feine wellige Streifung der Cuticula bedingt (~T. F. Hanausek~). Das Baumwollhaar ist in der Mitte am breitesten (~Wiesner~), an der Basis schmäler. Die Spitze ist spitzkegelförmig, spatelförmig, abgerundet oder kolbenförmig, meist sehr dickwandig (~von Höhnel~), bei der Caravonica oft schief abgeplattet (~T. F. Hanausek~). Die Dimensionen schwanken innerhalb bestimmter Grenzen, die +Dicke+ von 10-42 mik (bei _G. herbaceum_ 12-22, _barbadense_ 19-28, _arboreum_ 20-38, _religiosum_ 20-40 mik, ~Wiesner~). Die +Länge+ (der Stapel) von 10-40 mm (nach ~Bolley~: 25-60 mm, nach ~Wiesner~ bei _barbadense_: max. bis 51 mm, nach ~Sadebeck~ bei _Sea Island_: max. 41-52 mm). Genauere Angaben über Dicke und Stapellängen der Handelssorten bei ~Höhnel~. Die +Stapellängen+ betragen (nach ~Höhnel~) bei _G. barbadense_ (Sea Island) 40,5, _G. b._ (Brasilien) 40, _G. b._ (Ägypten) 38,9, _G. arboreum_ (Indien) 25, _G. herbaceum_ (Makedonien) 18,2, _G. herbac._ (Bengalen) 10,3 mm. Bei _Caravonica_ (nach ~T. F. Hanausek~) bis 45 mm. Bei der Breitenbestimmung gibt man das Breitenmaximum und die häufigste maximale Breite an (~Wiesner~). [Illustration: Fig. 88. _Baumwoll_haare, oben: Querschnitte. [Nach +von Hoehnel+.]] An der Basis ist das Haar, da es vom Samen abgerissen wird (s. oben), meist offen. Eine Ausnahme macht die _Caravonica_baumwolle, bei der (nach ~T. F. Hanausek~) die verholzte Haarbasis erhalten ist, das Haar wird bei ihr also aus der Epidermis herausgezogen, nicht abgerissen. In der Mitte, wo das Haar auch am breitesten ist, ist das Lumen am größten und die Wand relativ dünn; nach beiden Enden wird das Lumen enger und die Wand dicker. Die Dicke der Wand ist bei der Baumwolle beträchtlich. Sie beträgt ⅓-⅔ des Durchmessers der Zelle. Die Baumwolle besitzt daher eine sehr bedeutende Festigkeit. Der Querschnitt der Baumwollhaare, die nie zu Gruppen zusammenhängen (wie einige Bastfasern), ist elliptisch, eiförmig, lineal, mitunter nierenförmig oder halbmondförmig, gekrümmt (Fig. 88) -- niemals kreisrund oder polygonal; das Lumen der Umrißlinie entsprechend, linienförmig, schmal, länglich, niemals kreisrund. Schichtung fehlt oder ist nur schwach angedeutet. Nach Behandlung mit Jod-Schwefelsäure ist der Querschnitt meist breit-elliptisch oder unregelmäßig aufgequollen, das Lumen aber unverändert länglich; die Zellwand himmelblau, in den äußeren Partien dunkler; Cuticula und Inhalt undeutlich (~T. F. Hanausek~, ~von Höhnel~). +Verschiebungen+ (im Sinne ~von Höhnels~), die bei den gebrochenen Fasern (Lein, Hanf) stets vorkommen, fehlen der Baumwolle. Läßt man auf das Haar frisches konzentriertes, durch Auflösen frisch gefällten Kupferoxydhydrates in konz. Ammoniak bereitetes Kupferoxydammoniak einwirken (~Cramer~, 1857), so quillt die Wand und läßt Schichtung hervortreten. Die Cuticula zerreißt oder bleibt in Form von Ringen da und dort erhalten, zwischen denen die Zellulosewand bauchig hervorquillt (Fig. 89). Der Inhalt zeigt, da sich das Haar bei dieser Behandlung verkürzt, Querfaltungen, doch treten die bauchigen Hervorquellungen bisweilen nicht hervor, z. B. nicht bei _G. flavidum_ und _religiosum_ (~Wiesner~), nicht bei gebleichten Baumwollwaren (Zwirn, Kattun), deren Fasern die Cuticula fast vollständig fehlt, nicht bei Anwendung von zu wenig konzentriertem Kupferoxydammoniak. Die Cuticula ist nicht immer gleich ausgebildet. Sie ist bald dünn und glatt (Sea Island, Lang. Georgia von _G. barbadense_), bald derb, gekörnelt und rauh (die matten, dickfaserigen Sorten von _G. arboreum_, _herbaceum_, _religiosum_). Die unreife (todte) Baumwolle ist schwerer in Kupferoxydammon löslich, färbt sich mit Jodjodkali nur hellgelb und ist nicht doppelbrechend (~R. Haller~). Ihre Wand ist dünn, das Haar nicht gedreht, die Cuticula fein gestreift. Wird Baumwolle mit Kalilauge gekocht und dann ausgewaschen, so färbt sie sich mit Jodjodkalilösung rötlichbraun. Chlorzinkjod färbt die Wand, wenn sie dünn ist, so daß nur schwache Quellung eintritt, braunrot, bei starker Quellung violett bis blau (~A. Meyer~). Mit Jodjodkali behandelte Baumwolle wird durch konz. Schwefelsäure in eine blaue Gallerte übergeführt. Cuticula und Plasma werden hierbei gelbbräunlich. Phloroglucin-Salzsäure und Anilinsulfat-Schwefelsäure färben Baumwolle nicht. Nach Behandeln mit Ammoniak tritt auf der Cuticula feine Streifung hervor. Die seidenartig glänzende, besser färbbare +mercerisierte Baumwolle+, die dadurch erhalten wird, daß Baumwollgewebe oder Garne in stark gespanntem Zustande mit Ätzalkalien behandelt werden, besitzt keine Cuticula mehr, quillt daher mit Kupferoxydammon gleichmäßig, zeigt keine korkzieherartige Drehung und meist randlichen Querschnitt. Zur Herstellung der Schießbaumwolle eignet sich nur langstapelige Baumwolle (~Dawson~). Im polarisierten Lichte zeigt sich die Längsachse der Elastizitätsellipse in Baumwollfasern keineswegs parallel zu der Längsachse der Faser, sondern mehr oder minder stark in linksläufiger, seltener rechtsläufiger Windung gegen sie geneigt. Ausnahmsweise laufen streckenweise die Längsachse der Faser und der Elastizitätsellipse miteinander parallel (~Herzog~). [Illustration: Fig. 89. _Baumwoll_haar in frischem Kupferoxydammoniak. [Nach +von Hoehnel+.]] =Lit.= ~Reissek~, Die Fasergewebe des Leins, Hanfs, der Nessel u. der Baumwolle. Wien 1852. -- ~H. Schacht~, Die Prüfung der im Handel vorkommenden Gewebe durch das Mikroskop u. durch chemische Reagentien. Berlin 1853. -- ~Cramer~, Vierteljahrsschr. d. Naturf. Ges. Zürich 1857. -- ~Bolley~, Chem. Technologie der Spinnfasern. Braunschweig 1867. -- ~Vétillard~, Etudes sur les fibres végétales. Paris 1876. -- ~Wiesner~, Mikroskop. Untersuch. Stuttg. 1872 und Rohstoffe, 2. Aufl. 1903. -- ~A. Meyer~, Drogenkunde. -- ~Sadebeck~, Kulturgewächse d. deutsch. Kolonien. Jena 1898. -- ~von Höhnel~, Mikrosk. d. techn. verwend. Faserstoffe. 2. Aufl. 1905 und Über d. Baumwolle in Vortr. d. Vereins z. Verbreit. naturwiss. Kenntn. 1893. -- ~T. F. Hanausek~, Techn. Mikrosk. und Über die Caravonicawolle. Mitth. d. technolog. Gewerbemus. Wien 1910. -- ~Ed. Hanausek~, Über Mercerisierung und Deformation d. Baumwolle, Mitth. aus d. Labor. f. Waarenk. d. Wien. Handelsakad. 1897, dann Dingl. polytechn. Journ. 1898, 310 u. Zeitschr. f. Nahrungsm., Hyg. u. Waarenk. 1898. -- ~A. Fränkel~ und ~P. Friedländer~, Unters. über Seidenbaumw. Mitt. d. K. K. technol. Gewerbemus. Wien 1898. -- ~Bowman~, The structure of the Cotton fibre in its relation to technic. application. 2 edit. 1882. -- ~H. Kuhn~, Die Baumwolle, ihre Kultur, Struktur u. Verarbeit. Wien 1892 (mit ausführt. Bibliographie). -- ~O. N. Witt~, Chem. Technologie d. Gespinnstfasern. Braunschweig 1888. -- ~Berthold~, Zeitschr. f. Landw. Gew. Dobruschka 1883. -- ~Focke~, Mikrosk. Unters. d. bekannteren Gespinstfasern. Arch. Pharm. 1886, 224. -- ~Perrot~, Produits utiles des Cotonniers. Bull. sc. pharmac. 1902, p. 333 (m. anatom. Abbild.). -- ~Zetzsche~, Die wichtigst. Faserst. d. europäisch. Industr. 1904 (m. Mikrophotogr.). -- ~Buscalioni~, Sulle modificazioni provocate dai processi di mercerizzazione nei filati di cotone. Att. Ist. Univers. Pavia n. Ser. VII (dort die Literatur). -- ~Herbig~, Beitr. z. Unters. d. Vorgänge, die beim Mercerisieren d. Baumw. stattfind. Zeitschr. d. ges. Textilindustr. III, 1899, 17. -- ~Herzog~, Zur Kenntnis der Doppelbrechung d. Baumwollfaser. Zeitschr. Chem. u. Ind. d. Kolloide 1909, 245. -- ~Dawson~, Polytechn. Zentralbl. 1866, 75. -- ~R. Haller~, Chem. Zeit. 1908, 838. ~Cross~, ~Bevan~, ~King~ und ~Joynson~, Rep. on Indian Fibres and fibrous substances. London 1887. =Chemie.= Die Baumwolle besteht aus fast reiner Zellulose. In den farbigen Sorten findet sich eine Spur eines gelben Farbstoffes. ~Church~ und ~Müller~ fanden in roher Baumwolle 91,15-91,35% Zellulose, 0,4-0,5% Fett und Wachs, 0,5 bis 0,67% stickstoffhaltige Substanz, 7-7,56% Wasser und 0,10-0,12% Asche. Cuticula 0,75%. Die Asche schwankt zwischen 0,1-0,5% (die Angabe von ~Wiesner~: 1,85% ist zu hoch). Gute gereinigte Baumwolle soll nicht über 0,3% Asche enthalten (Ph. helv. IV). Baumwolle ist sehr hygroskopisch. Das spez. Gewicht der lufttrocknen Baumwolle beträgt 1,47-1,50, die Festigkeit 2-5 g bei direkter Belastung. +Farbstoffe+ sind in der Baumwolle in sehr wechselnden Mengen enthalten, am wenigsten in den amerikanischen Sorten, am meisten in den chinesischen. Der Farbstoff scheint nicht in allen Baumwollsorten der gleiche zu sein. Sehr verdünnte Natronlauge löst beim Kochen 0,3-0,5% Fett. Das +Fett+ ist wohl mit dem der Samen identisch. Es liefert beim Verseifen Ölsäure, Stearin- und Palmitinsäure (~O. N. Witt~). Das +Wachs+ (0,3-0,5%) ist ein typisches Pflanzenwachs (~Schenck~). Die Baumwolle wird erst durch konz. Schwefelsäure hydrolysiert (~Flechsig~). Dabei entsteht als Endprodukt reine krist. Glukose (neben sehr wenig Xylose, ~Voswinkel~ und ~Link~; die aus Baumwolle dargestellte krist. Zellulose gibt +nur+ Glukose, ~Gilson~). ~Schwalbe~ und ~Schulz~ erhielten aus Baumwollzellulose bei der Hydrolyse im Autoklaven 44% Traubenzucker (Dextrose). Bei der Hydrolyse reiner Baumwollzellulose erhält man nicht genau die theoretisch berechenbare Zuckermenge, wenn man die Zuckerbestimmung nach ~Allihn~ ausführt und auf d-Glukose umrechnet. Vielleicht hängt dies mit einer «Reversion» zusammen (~E. Winterstein~). Daneben entsteht etwas Mannose, Xylose und Arabinose. Baumwolle enthält nur sehr wenig Xylan (~Schulze~, ~Voswinkel~ und ~Link~, ~Suringar~ und ~Tollens~). Der Pentosangehalt der Baumwolle, bestimmt nach dem ~Tollens~schen Verfahren, beträgt c. 1% (Holzschliff c. 12%!). +Baumwolle ist also vorwiegend Glukosezellulose+, sie besteht aus einem Glukosan. Von den Abbauprodukten der Baumwollzellulose, soweit solche durch starke Schwefelsäure entstehen, sind verhältnismäßig eingehend studiert die Schwefelsäureester (~Hönig~, ~Schubert~ und ~Stern~), die Zellulosedextrine (~Hönig~ und ~Schubert~) und die Bildung von Traubenzucker (~Flechsig~). Wenig bekannt sind Pergament (Amyloid), ~Guignets~ Zellulose und ~Ekströms~ Acidzellulose. ~Guignets~ Cellulose soluble färbt sich mit Jodschwefelsäure blau, ebenso ~Flechsigs~ «Amyloid», das also eigentlich kein pflanzliches Amyloid ist. Kupferoxydammon, d. h. ammoniakalische Lösung von Kupferoxyd (~Power~), löst Baumwolle so gut wie vollständig (s. oben), aus der Lösung fällen Säuren und Salze die Zellulose aus. Auch Chlorzink-Salzsäure (1 : 2) löst Baumwolle (~Cross~ und ~Bevan~). Konzentrierte 92%ige Schwefelsäure führt Baumwolle in Amyloid über. Kalte konz. Salpetersäure bildet Nitrozellulosen (Trinitrozellulosen liefern die Kollodiumwolle, vorwiegend Hexanitrozellulosen die Schießbaumwolle, Octonitrozellulosen die künstliche Seide ~Chardonnets~). Die Baumwolle bleibt dabei in Form und Farbe erhalten (Wolle wird gelb). Ausführliches findet man in den Arbeiten ~E. Berls~. Konzentrierte Kalilauge löst Baumwolle nicht (Wolle löst sich), macht sie durchscheinend und für Farbstoffe aufnahmefähiger (Mercerisation, benannt nach ~John Mercer~ 1844). Solche alkalisierte Baumwolle nimmt durch starke Spannung einen seidenartigen Glanz an (~Thomas~ und ~Prevost~). Aus basischen Erd- und Schwermetallsalzlösungen schlägt Baumwolle ein stark basisches Salz auf der Faser nieder (Beizen). Direkt wird Baumwolle angefärbt von Safflor, Orlean, Curcumin-Glaubersalz-Schwefelsäure (Unterschied von Wolle, ~Ganswindt~) und den Azoxyfarbstoffen, sowie von Congo (~Böttiger~) und von anderen Farbstoffen der Benzidinreihe. Auch +Hämatoxylin+ färbt Baumwolle direkt (~Giltay~). Jetzt kennt man schon über 500 substantive Baumwollfarbstoffe. Gegen nichtbasische Metallsalzlösungen ist die Baumwolle indifferent. Um Metallsalze binden zu können muß die Baumwolle zuvor mit Gerbsäuren und Fettsäuren (Türkischrotöl) «präpariert» werden. Basische Farbstoffe nimmt Baumwolle wenig auf, ebensowenig saure. Um letztere zu binden wird Baumwolle «animalisiert», d. h. mit Albumin, Kaseïn, Leim oder Gelatine imprägniert, oder durch Behandeln mit Ammoniak in sog. «Amidozellulose» (~Vignon~) übergeführt. Mercerisierte Baumwolle (Natronzellulose, s. oben) ist fester und zeigt Farbstoffen gegenüber eine größere Affinität. Der Baumwollfaden wird durch Behandeln mit starken Alkalien verkürzt. Streckt man ihn dann auf die ursprüngliche Länge, so nimmt er Seidenglanz an. Zur Erkennung mercerisierter Baumwolle empfiehlt ~Lange~ eine Lösung von 30 Teilen Chlorzink, 5 Teilen Jodkali, 1 Teil Jod und 24 Teilen Wasser, die nur mercerisierte, nicht reine Baumwolle nach dem Auswaschen blau färbt. =Lit.= Vgl. auch die Lit. unter Zellulose (oben S. 228). -- ~Ganswindt~, Artikel Baumwolle in Realenzyklop. d. Pharm. II, 594. -- ~Church~ und ~Hugo Müller~, Die Pflanzenfaser in ~Hofmanns~ Ber. über d. Entwickl. d. chem. Industr. Braunschweig 1877. -- ~Otto N. Witt~, Chem. Technol. d. Gespinnstfasern. -- ~Leo Vignon~, Die Zellulosen der Baumwolle, des Flachses, Hanfs und des Ramié. Compt. rend. 131, 558. Derselbe, Zellulose, mercerisierte Z., gefällte Z. und Hydrozellulose. Ebenda p. 708. -- ~C. Piest~, Die Zellulose usw. 1910. -- ~Hönig~ und ~Schubert~, Monatsh. f. Ch. 6 u. 7. -- ~Stern~, Journ. Chem. Soc. 67 (1895). -- ~Schwalbe~ u. ~Schulz~, Ber. d. d. chem. Ges. 1910, 913. -- ~Guignet~, Compt. rend. 108 (1889), 1258. -- ~Flechsig~, Zeitschr. phys. Chem. 7 (1882), 524. -- ~Lange~, Chem. Zeit. 1903, 592 u. 735. -- ~Gilson~, Chem. Zentralbl. 93 b, 531. -- ~Winterstein~, Landw. Versuchsstat. 1894. ~Cross~ und ~Bevan~, Journ. chem. soc., Ber. d. d. chem. Ges. und Cellulose an outline of the chemistry of the structural elements of plants 1895-1906. =Anwendung.= Baumwolle wird in der Medizin in erster Linie als Verbandwatte benutzt. Die Haare saugen die Flüssigkeiten kapillar und osmotisch auf. Vom Blutserum z. B. das 10-11 fache ihres Gewichtes. Sodann wird Baumwolle oft mit Medikamenten imprägniert (Verbandstoffe). Und endlich dient Baumwolle auch als Filtriermaterial, um Keime abzuhalten oder Luft zu filtrieren. Die durch Kochen mit Natriumhypochlorit erhaltene hygroskopische Watte wird als Ersatz für Charpie empfohlen. Ein entfetteter und gebleichter Baumwollstoff ist unter dem Namen Tela depurata, hydrophiler Verbandstoff, gereinigter Mull in Benutzung. (Prüfung in Pharm. helv. IV.) Baumwolle ist aber auch, hauptsächlich wegen der eingeschlossenen Luft, ein sehr schlechter Wärmeleiter und wird auch aus diesem Grunde benutzt. Als Verbandwatte brauchbar ist im Notfall auch hydrophiler Baumwollendocht, Lint, Baumwollflanell, englischer Mull (Cambric), appretierte Gaze, Mull. +Hauptsache ist, daß alle Verbandstoffe sterilisiert sind.+ =Lit.= ~Zelis~, Die medizin. Verbandmaterialien. 1900. -- ~Barth~ a. a. O. (s. unten). =Prüfung.= Der Stapel der gereinigten Baumwolle oder Verbandwatte betrage mindestens 3 cm. Die mikroskopische Untersuchung ergebe +nur+ Haare. Die gereinigte Baumwolle sei rein weiß, geruchlos, frei von Fruchtschalresten und Samenteilen. Sie darf beim Drücken mit der Hand nicht knistern, knirschen (Stearinsäure) und mit Wasser durchfeuchtet Lackmuspapier nicht verändern (Alkali und Säure vom Reinigungsprozeß, s. oben). Der wässerige Auszug (1 : 10) darf nicht opalisierend oder seifig (von der Behandlung mit Seifenlauge, s. oben) oder gefärbt erscheinen. Der mit siedendem Wasser bereitete Auszug (1 : 10) darf weder durch Silbernitrat, noch durch Baryumnitrat oder Ammoniumoxalat mehr als opalisierend getrübt werden. (Chloride, Sulfate, Kalk vom Reinigungsprozeß mit Chlor etc.). Die in 10 ccm dieses Auszuges nach Zusatz von einigen Tropfen Schwefelsäure und 3 Tropfen Kaliumpermanganat entstehende Rotfärbung soll innerhalb einiger Minuten nicht verschwinden (reduzierende Substanzen, z. B. schweflige Säure und Sulfite vom Bleichprozeß). Wird gereinigte Baumwolle auf Wasser geworfen, so soll sie sich sofort mit Wasser vollsaugen und dann untersinken (Fett). Durch Trocknen bei 103° darf gereinigte Baumwolle nicht mehr als 7% an Gewicht verlieren (unzulässig hoher Wassergehalt). Wird der ätherische Auszug von 5 g Baumwolle verdunstet, so soll das Gewicht des getrockneten Rückstandes nicht mehr als 3 cg betragen (höchstens 0,6% Fett und Stearinsäure), doch vermindert selbst ein Gehalt von 1-5% Fett bzw. Fettsäure die Aufsaugefähigkeit der Verbandwatte nicht erheblich. Die Asche betrage nicht mehr als 0,3% (Ph. helv. IV) bzw. 0,5% (Ph. austr.). Völlig von Fettsäuren freie Baumwolle ist nicht im Handel (~Budde~). Die käuflichen Verbandwatten enthalten 0,2-0,4%. Jedenfalls muß aber eine obere Grenze festgesetzt werden, da Baumwolle vor dem Kardieren nicht selten geölt wird (s. oben). Ausgeschlossen vom medizinischen Gebrauch ist die in 2-4 cm dicken, beiderseits geleimten Platten vorkommende Handelswatte. =Lit.= ~Barth~, Herst. und Beurteilung von Verbandwatte. Schweiz. Wochenschr. 1910, 321. -- ~Budde~, Unters. entfetteter Watte. Veröffentl. auf d. Geb. d. Militär-Sanitätswesens 1905. =Geschichte.= ~Herodot~ berichtet (III, 16), daß die Inder eine Pflanze haben, die statt der Frucht Wolle trage, ähnlich wie die der Schafe, doch feiner, und ~Strabo~ wußte bereits, daß man den harten Kern herausnehmen müsse, um die Fäden rein zu erhalten, kannte also das Egrenieren. Die Griechen trafen auf dem Alexanderzug in Indien Baumwolle (I, 530) und die Gangesstoffe (γαγγητικοὶ), die ~Alexander~ mitbrachte, sollen Baumwollgewebe gewesen sein. ~Strabo~ erwähnt sie (I, S. 532), ebenso der Periplus (I, S. 534) als κάρπασος. Daß sich im allen Indien Baumwollkulturen, wohl von _Gossypium herbaceum_, befanden, ist zweifellos. Der Occident (Römer und Griechen) wie Araber, Perser und Ägypter bezogen während des Altertums den Baumwollrohstoff und Baumwollgewebe aus Indien. Sicher erwähnt wird Baumwolle (kârpâsa) nach ~von Schröder~ zuerst in den jüngsten vedischen Schriften, den sûtras (500-600 n. Chr.). ~Theophrast~ erwähnt Baumwollanpflanzungen auf den Bahreininseln im persischen Golf (Hist. pl. 1, 4, 9). Es handelt sich hier wohl um _G. herbaceum_ (~De Candolle~). Noch in der Kaiserzeit baute fast nur Indien, besonders das Gangestal, Baumwolle. Nach ~Plinius~ sollen schon die Phönikier auf Tylos große Baumwollplantagen besessen haben(?). Der ~Pharao~ schenkte ~Joseph~ als Zeichen seiner besonderen Zuneigung ein baumwollenes Gewand. Es scheint also Baumwolle damals noch selten gewesen zu sein. In altägyptischen Gräbern finden sich denn auch nur leinene Binden und Gewänder. Baumwolle wurde in Ägypten erst nach der Einwanderung der Perser (c. 525 n. Chr.) in größerem Maßstabe kultiviert (~Brandes~). ~Plinius~ erwähnt die Anpflanzungen in Oberägypten (s. oben S. 230), ebenso ~Pollux~ ein Jahrhundert nach ~Plinius~ (im Onomastikon). In den oberen Regionen des weißen und blauen Nil ist die Kultur der Baumwolle wohl noch älter (~Woenig~). In Abyssinien reicht sie in undenkliche Zeiten zurück (~Schweinfurth~). Merkwürdigerweise wird im Mittelalter nirgends Baumwolle aus Ägypten erwähnt (~Heyd~). Die Mumienbinden der Ägypter, die ~Herodot~ βύσσος nennt, waren, wie mikroskopische Untersuchungen von ~Bauer-Thomson~ (1849) und ~Unger~ (1859) gezeigt haben, +nicht+ aus Baumwolle, sondern aus Lein gefertigt. Ebenso bestand die charta bombycina der Alten wie das alte arabische Papier aus Leinen und Hanf, nicht aus Baumwolle (~Wiesner~, ~Karabaček~). ~Prosper Alpin~ sah im XVI. Jahrh. Kulturen von _G. arboreum_ in Ägypten. Von Indien kam die Kultur (im XIII. Jahrh. n. Chr., nach ~Bretschneider~ im IX. oder X. Jahrh. n. Chr.) nach China. Größere Verbreitung fand die Baumwollkultur in China erst nach der Eroberung des Landes durch die Tataren (1368). Aus dem Jahre 1765 besitzen wir ein chinesisches Werk über Baumwollkultur (mien hua tʿu). Die Araber brachten Baumwollkultur und Industrie nach Spanien. Sie legten im IX. Jahrh. Pflanzungen bei Valencia in Spanien an. Die Mauren errichteten in Granada, Cordova, Sevilla, Barcelona und Fez (Marocco) Baumwollmanufakturen. ~Ibn Alawām~ (XII. Jahrh., I, S. 611) beschreibt die Kultur in Spanien, Sizilien und dem Orient, ~Edrisi~ (I, S. 617) die in Südostmarocco, ~Istachri~ (X. Jahrh.) die Kultur in Mesopotamien (I, S. 616). Auf Kos und Malta scheinen schon im Altertum Baumwollmanufakturen bestanden zu haben. Bis zum Ende des XVIII. Jahrh. kam alle Baumwolle Europas aus der Levante. ~Marco Polo~ (I, S. 724) traf Baumwollkulturen im XIII. Jahrh. bei Mosul, in Persien, bei Kaschgar und südlich vom Tarim und in Indien. Am Ende des XVI. Jahrh. brachten die Holländer rohe Baumwolle nach Europa, die in Gent und Brügge verwebt wurde; von 1772 an entwickelte sich auch in England eine Baumwollindustrie. Die Gewebe wurden aus indischer Baumwolle, später auch aus solcher der Levante, aus Macedonien, Cayenne, Surinam, Guadeloupe und Martinique hergestellt. In Frankreich beginnt die Baumwollindustrie gegen Ende des XVII. Jahrh. in Amiens. Die ersten italienischen Baumwollmanufakturen befanden sich in Venedig und Florenz (XIV. Jahrh.), von dort gelangten sie nach Zürich und Augsburg. Die ersten größeren deutschen Fabriken wurden in Plauen i. V. errichtet. Nach England kam die Baumwollindustrie vielleicht durch niederländische Protestanten; nach den Vereinigten Staaten kam sie 1643. Als die Spanier Amerika betraten, fanden sie die Baumwolle (_G. barbadense_) in Kultur und Benutzung sowohl auf den Antillen als in Mexico, Peru und Brasilien. In Peru ist die Baumwollkultur sehr alt. 1532 stand sie, als die Spanier das Land betraten, in hoher Blüte, und in alten peruanischen Gräbern findet man viele Baumwollgewebe und Gespinste. Die Expedition des ~Hojeda~, die Venezuela entdeckte, traf dort Baumwolle (I, S. 746). ~Cortez~ fand sie in Mexico (1519), ~Vacca~ in Louisiana (1536). Bei ~Hernandez~ heißt die Baumwolle Xchcaxihuitl. Sie wird von ihm auch abgebildet. In Nordamerika reichen die Anbauversuche bis 1621 zurück, _Gossypium herbaceum_ kam 1770 dorthin und in diesem Jahre begann man auch dort mit der Kultur. Virginia baute B. von Mitte des XVII. Jahrh. auf Betreiben von ~Wyatt~, in Carolina führte sie 1733 der Schweizer ~Peter Purry~ ein, in Georgia 1784 der Schweizer ~Anspurger~, 1784 begannen die amerikanischen Baumwollausfuhren. 1791 begann der Anbau in größerem Stil in Georgia, 1811 in Nord-Carolina, Louisiana und Tennessee, 1821 in Mississipi und Alabama, 1826 in Arkansas, 1826 in Texas und Florida. Heute bauen 14 Staaten der Union Baumwolle. 1800 produzierte Nordamerika schon 9 Mill. kg (~Semler~). Jetzt bevorzugt man dort _G. barbadense_. In Brasilien begann der Anbau in den Nordstaaten, besonders Bahia und Para, und verbreitete sich darauf nach Pernambuco, Maranhao usw. Jetzt wird dort die meiste Baumwolle im Munizipium Tatuhyan gebaut. Zur Zeit des amerikanischen Bürgerkrieges, der Periode des «Baumwollenhungers», warf sich alles auf die Baumwollkultur, z. B. in Süditalien, und auch in andern subtropischen und tropischen Ländern begann man mit dem Anbau, der aber nicht überall aufrecht erhalten werden konnte. =Lit.= ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Woenig~, Pflanz. d. alt. Ägypt. -- ~Thomson~, Mumienbinden. Lieb. Ann. 69 (1849). -- ~Unger~, Botan. Streifz. auf d. Geb. d. Kulturgesch. D. Pfl. d. alt. Ägypt. Sitzber. d. Wien. Akad. 1859. -- ~Wiesner~, D. mikrosk. Unters. d. Papiers usw. und ~Karabaček~, Arab. Papier. Mitt. aus d. Samml. d. Papyr. Rainer. Wien 1887. -- ~Wagler~, Artikel Baumwolle in ~Paulys~ Realenzyklop. d. klass. Altert. -- ~Brandes~, Über d. antik. Namen u. d. geogr. Verbreit. d. Baumwolle im Altertum. Leipzig 1866. -- ~Blümner~, Technol. u. Terminologie d. Gewerbe u. Künste bei den Griechen u. Römern I (1875). -- ~Wittmack~, Über d. Nutzpflanzen d. alten Peruaner. Compt. rend. du Congr. int. des American. Berlin 1888. -- ~Brandes~, Über die antiken Namen u. d. geographische Verbreitung d. Baumwolle im Altertum. Jahresb. d. Freunde d. Erdkunde 1866. -- ~De Candolle~, L’origine des plant. cultiv. 4. Aufl. 1896, p. 323. -- ~Masters~ in ~Oliver~, Flora of tropical Africa. -- ~Hooker~, Flora of Brit. India. -- ~Bretschneider~, Study and value of chinese botanical works. -- ~C. Ritter~, Die geograph. Verbreit. d. Baumwolle. -- ~De Lasteyrie~, Du Cotonnier. -- ~Schweinfurth~ und ~Ascherson~, Aufzählung usw. -- ~Reynier~, Economie des Arabes et des Juifs. -- ~Brandis~, Die Baumwolle im Altertum. 1866. -- ~Hemsley~, Biologia central.-american. Die =Samen= (_Sem. G._ oder _Sem. bombacis_) wurden früher ähnlich wie Leinsamen in Abkochung als Schleim benutzt, jetzt meist auf Öl verarbeitet. In der Brandenburgischen Taxe 1574 (I, S. 816) steht Sem. Gossypii i. e. Coto vulgo v. Bombasum = Baumwollensat., und Sem. Bombacis in der Frankfurter Reformatio 1656 (I, S. 824) ist ebenfalls Sem. Gossypii. Der früher als Ölsaat unbeachtet gebliebene oder (z. B. in China und Mittelasien) gemahlen nur als Viehfutter benutzte Same wurde zuerst 1783, aber erst seit 1852 in größerem Stil auf Öl verarbeitet. Jetzt bestehen zahlreiche große Baumwollsamenölfabriken bes. in Nordamerika (1894 dort bereits 252) und 1897 exportierte dies Land schon über 27 Mill. Gallonen Öl und verbrauchte noch mehr für den eigenen Bedarf als Ersatz des Olivenöls. Nächst Amerika exportiert Ägypten viel Baumwollsamen (1897 bereits 7½ Mill. hl). Der amerikanische Baumwollsamen enthält 15-30, meist 20-25% +Öl+, der ägyptische im Mittel 25%. Beim Pressen erhält man 13-14%. Das Öl enthält neben Phytosterin Glyceride der Palmitin- und Ölsäure (besonders viel von letzterer, ~Slessor~, Chem. Zentralbl. 1859, 140), der Linolsäure und Linolensäure; ferner geringe Mengen Oxyfettsäure, Cottonölsäure, einen aldehydartigen Körper und einen schwefelhaltigen, widerlich riechenden. Aus geschälten Samen bereitete +Baumwollsamenpreßkuchen+ enthalten 43,3% Proteinstoffe, 14,3% Öl und 16,7% stickstoffreie Extraktivstoffe. Er ist also ein vorzügliches Futtermittel. (Mikroskopie bei ~Perrot~, Bull. sc. pharm. 1902). Die Samen enthalten aber eine in Öl unlösliche (~Cornevin~), in kaltem Wasser lösliche giftige Substanz, die ein Alkaloid sein soll und die die Baumwollsamen-Preßkuchen zu einem nicht ganz ungefährlichen Futtermittel macht. Man hat denn auch Vergiftungen beobachtet (~Kobert~, Intoxikationen). Der Same enthält neben Cholin und Betaïn Melitriose (~Ritthausen~). In der Pharmazie wurde Baumwollsamenöl etwa seit 1880 als Ersatz des Olivenöls zuerst in Nordamerika benutzt. ~Marchlewski~ fand im Baumwollsamen krist. Gossypol (C₁₃H₁₂O₂(OH)₂?), das den Charakter einer Oxysäure besitzt (Chem. Zeit. 1898, 11). Die Cotyledonen der Samen von _Goss. herbac._ färben sich mit konz. HCl hellgrün, die Sekretbehälter an ihrem Innenrande dunkelgrün. Phloroglucin-Salzsäure färbt die Sekreträume violett. ~Winkel~ führt die Reaktion auf Gossypol zurück (Apoth. Zeit. 1905, 211). Die Halphensche Reaktion ist eine Reaktion auf Baumwollsamenöl. =Lit.= Cotton seed and its products U. S. Dep. of agric. Farmers Bull. No. 36 (1896). -- Über das Baumwollsamenöl vgl. auch Pharm. Jahresber. 1908, 391 und ~Wiedemann~, Dingl. polyt. Journ. 232, 190. -- Weitere Lit. über die Baumwollsamen in ~Bentley-Trimen~, Medicinal plants. -- Bez. Analysen der Baumwollsamen vgl. Jahrb. d. Pharm. 1885, 95. -- Gewinnung des Baumwollsamenöls: ~Lewis~, Diss. Philadelphia 1896 (Pharm. Zeit. 1896, 129). -- ~Marchlewski~ (Gossypol). Journ. pr. Chem. 60 (2), 1899, 84. -- ~Halphen~, Journ. pharm. 1894 u. 1897. -- ~Schweinitz~ (Öl). Journ. Am. chem. soc. 1885. -- ~Cornevin~, Ann. agron. 22, 353 (Chem. Zentralbl. 1897, I, 515). -- Das Anatomische oben S. 238. Die Araber benutzten den Saft der =Blätter= medizinisch bei Koliken, die Samen bei Brustkrankheiten, das Öl bei Hauterkrankungen. Die Blätter von _G. barbadense_ sollen die Milchsekretion befördern (~Anderson~, Jahrb. d. Pharm. 1881/82, 242). In Amerika wird =Cort. radicis gossypii= auch vom Volke verwendet. Sie soll eine ähnliche Wirkung wie _Secale cornutum_ besitzen. In Ostindien gilt sie als Diuretikum. ~Staehle~ fand in der Rinde c. 8% Harz, Kautschuk, Zucker, keinen Gerbstoff. ~Drueding~ fand in der Rinde ein rotes und ein gelbes Harz, Öl, Gummi, Zucker, Gerbstoff und Chlorophyll. ~Hartwich~ und ~Morgan~ erwähnen Sekretbehälter in ihr. =Lit.= ~William C. Staehle~, Chem. and microscop. examinat. of Cotton Root Bark. Am. journ. pharm. 1875, 457. -- ~Ch. C. Drueding~, Analysis of cotton root bark. Amer. Pharm. Journ. 1877, 49, p. 386. -- ~Hartwich~, D. neuer. Arzneidrogen usw. S. 164. -- ~Morgan~, Amer. Journ. 1898 (anatom. Beschr. d. Rinde). -- Weitere Literatur über _Rad. gossypii_ in ~Bentley~ and ~Trimen~, Medicinal plants. Über den Farbstoff der =Blüten= vgl. ~Perkin~, Journ. chem. Soc. 75 (1899) 825. Ebenso wie Baumwolle und aus dem gleichen Grunde, d. h. wegen ihrer Aufsaugungsfähigkeit für das Blutserum, werden die Spreuhaare einiger tropischer Baumfarne benutzt, die also gewissermaßen als +Paralleldrogen der Baumwolle+ betrachtet werden können. Pili haemostatici. =Syn.= Paleae cibotii s. stypticae, s. haemostaticae, Pili cibotii s. filicum, Farnhaare, blutstillende Spreuhaare, Farnkrautwolle, Teufelszwirn, Wundfarn, vegetabilische Schafwolle. Im Handel finden sich von Farnhaaren folgende Sorten: 1. =Penawar Djambi= auch =Penghawar Djambi= (Pengawar Jambie, Pingh-war-har-Yamby, Pennober Jamby oder Pennawar dschambi; in China kau-tsib -- Djambi liegt in Westsumatra) von =Cibotium Barometz= ~Link~ (~J. Sm.~) (Polypodium Baromez L., Aspidium Baromez ~Willd.~), und den nach ~Smith~ wohl dazu zu ziehenden _Cibotium glaucescens_ ~Kz.~, _C. Cumingii_ ~Kz.~, _C. assamicum_ ~Hook.~ und _C. Djambianum_, sowie anderen Baumfarn Sumatras. _Cibotium Barometz_ heißt in +Madur.+: bar djambe oder bulu djambe, in +Bali+: djampi, +javan.+: penawar djambe, +mal.+: penawar djambi (~de Clercq~). Man sollte also nicht Penghawar djambi, sondern Penawar djambi schreiben, wie dies übrigens die Pharm. austr. VIII tut (Penawar hitam ist _Goniothalamus giganteus_, P. merah: _Ximenia americana_, P. pahit: _Eurycoma longifolia_, P. putieh: _Sonchus picta_, P. radja: _Sonchus insignis_). 2. =Paku kidang= (Pakoe ist die holländ. Schreibweise) von =Alsophila lurida= ~Bl.~, =Balantium chrysotrichum= ~Hasskarl~ (Dicksonia Blumei Mett., D. chrysotricha Moore, B. Magnificium Hook., Chnoophora tomentosa Bl.) u. and. Baumfarn Javas. Die _Alsophila_arten heißen im +Sundanes.+ paku tihang, im +Mal.+ paku tijang (~de Clercq~). Man sollte also wohl den Namen so und nicht paku kidang schreiben. Kidang bedeutet Hirsch. 3. =Pulu-Pulu= von =Cibotium glaucum= ~Hook.~ et ~Arn.~, =C. Chamissoi= ~Kaulf.~, =C. Menziesii= ~Hook.~ u. and. Baumfarn der Sandwichinseln und benachbarter Gebiete. Ferner die Haare der südamerikanischen _Lophosoria (Alsophila) affinis_ ~Presl.~ (_Alsophila pruinata_ ~Klfs.~), der brasilianischen _Alsophila armata_ ~Prsl.~ (_Polypodium aculeatum_ ~Raddi~) und des südmexikanischen _Cibotium Schiedei_ ~Cham.~ et ~Schlecht~. =Systemat. Stellung.= _Balantium_, _Dicksonia_, _Cibotium_: Pteridophytae, Filicales, Eufilicineae, +Cyatheaceae+, Dicksonieae. _Alsophila_, _Cyathea_: Pteridophytae, Filicales, Eufilicineae, +Cyatheaceae+, Cyatheeae. _Cybotium Barometz_ ist über das ostasiatische Monsungebiet verbreitet: Hinterindien, Hongkong, Formosa, Java, Sumatra, die Unterart _C. Cumingii_ auf den Philippinen heimisch; _C. Menziesii_ auf allen Inseln der Sandwichgruppe (bei den Eingeborenen Hapu Ji oder Heii), ebenso _C. glaucum_ und _Chamissoi_. Die Wedelbasen und besonders der Vegetationspunkt zahlreicher tropischer Baumfarn (Fig. 90) sind dicht besetzt mit Spreuschuppen oder Spreuhaaren (paleae), die diesen Organen ein gelb-bräunliches, wolliges Ansehn verleihen. Es sind ziemlich lange, bei _Cibotium_ 2-3, manchmal sogar 7 oder gar 9 cm Länge erreichende einreihige, bisweilen gedrehte und zusammengefallene seidigglänzende +Haare+, die aus Reihen gestreckter, bräunlichgelber, dünnwandiger Zellen bestehen. Oft ist besonders bei _Paku kidang_ in ziemlicher Regelmäßigkeit jede zweite Zelle obliteriert. Die Spitze ist stumpf kegelig, die Querwände wellig gebogen. In _Paku kidang_ findet man bisweilen echte Paleae, die Zellflächen bilden und Randzähne haben. [Illustration: Fig. 90. Baumfarn (_Alsophila_?) am Rande des Urwaldes am Gedeh (Mitteljava). [+Tschirch+ phot.]] Läßt man Jodschwefelsäure darauf einwirken, so tritt die Cuticula als scharf begrenztes Häutchen, der Zellinhalt als ein faltiger Sack hervor. Nur selten sah ich hierbei Blaugrünfärbung der Wand eintreten. ~Vogl~ gibt an, daß die Wand aus Zellulose bestehe. (~Winterstein~ erhielt bei der Hydrolyse von Zellulosepräparaten aus _Aspidium Filix mas_ und _Athyrium Filix femina_ Traubenzucker und Mannose.) ~Vogl~ gibt (1864) an, daß die braungelbe Zellwand durch kochende Kalilauge unter starker Quellung entfärbt und dann in den inneren Schichten durch Jodschwefelsäure blau gefärbt wird. Die Farbe der Droge ist bei den einzelnen Sorten etwas verschieden. _Penawar Djambi_ ist am hellsten, braunrötlichgelb, _Pulu-Pulu_ gelb-bräunlich, _Paku kidang_ fast kaffeebraun. Pharm. austr. VIII nennt sie «seidenartig oder fast metallisch bronzeartig schimmernd». Kali färbt sie dunkler, die gelben Haare von _Penawar_ z. B. rotbraun. Die Breite der Haare beträgt c. 20-45 mik. bei _Penawar Djambi_, bei _Pulu_ etwa 40-60, bei _Paku kidang_ bis 100 oder 150 (~Tschirch~), oder gar 300 mik. (~Vogl~). Übrigens ist die Breite sehr wechselnd. ~Vogl~ gibt für _Penawar Djambi_ z. B. die größte Breite auf 100-140 mik. an. Bei _Penawar Djambi_ sind die Haare lang und auf weite Strecken gerade, bei _Pulu_ durcheinander gewirrt und fast stets bandartig zusammengefallen, bei _Paku kidang_ entweder walzenrund oder obliteriert. ~Vogl~ fand in den _Pulu_-Haaren und auch bei _Paku kidang_ Stärkekörner. Auch ~Oudemans~ und ~Hartwich~ geben kleine Stärkekörner an. Ich fand solche nur in _Paku kidang_. Außerdem enthalten sie bisweilen eine vakuolige Masse als Wandbeleg, oder sind leer und führen Luft. ~de Vrij~ fand «eene groote hoeveelheid Sal Ammoniak en een eigenaardig zuur» (bei ~Oudemans~). _Penawar Djambi_ und _Pulu-Pulu_ enthalten 1,53%, _Paku kidang_ 6,74% +Asche+. Der Wassergehalt beträgt c. 12%. Die Farnhaare werden seit 1851 hauptsächlich als Stopfmaterial für Kissen benutzt. Zu diesem Zwecke wurden noch 1908 große Mengen _Pulu_ von den Sandwichinseln nach Nordamerika exportiert. Während 1851 die Ausfuhr nur 2479 Pfund betrug, stieg sie 1858 bereits auf über 300000 Pfund. 1845 machte man in England den Versuch, die Farnhaare mit Seide vermengt zu verweben. Die hämostatischen Eigenschaften der _Alsophila_- und _Cibotium_haare sollen schon im Mittelalter bekannt gewesen sein (~Barillé~). In Java und Sumatra werden sie seit Jahrhunderten (nach ~Vogl~ seit den ältesten Zeiten?) als Hämostatika benutzt. 1843 führte ~Hasskarl~ zuerst die mit den Spreuhaaren besetzten Wedelbasen zu diesem Zweck aus Java (Wälder am Gedeh) in Holland ein. Die Holländer machten sie also im XIX. Jahrh. von neuem in Europa bekannt und sie standen schon in der Pharmac. néerlandica vom Jahre 1856 -- noch heute übrigens in der Pharmac. austr. VIII. Die Verwendung der Farnhaare an Stelle der Charpie (daher: charpie fougère) beruht wohl, wie schon ~Vinke~ annahm, +nur+ auf der Aufsaugefähigkeit derselben und der geringe, von ~Franchie~ behauptete, von ~van Bemmelen~ bestrittene Gehalt an Gerbstoff kommt kaum hierbei wesentlich in Betracht. Da _Penawar Djambi_ niemals steril ist, ist vor der Anwendung zu warnen. Sterilisierte Baumwolle ist sicherer. Man sollte _Penawar_ jedenfalls sterilisieren. Immerhin ist die Aufsaugefähigkeit der Farnhaare beträchtlich, da sie ein großes Lumen und eine nur dünne Wand besitzen, und alle Beobachter stimmen darin überein, daß sie ein +vorzügliches Blutstillungsmittel+ sind. Neuerdings (1902) empfahl sie ~Lubet-Barbon~ als Hämostatikum bei Nasenoperationen. Vielleicht kommt die Wirkung weniger durch kapillare Aufsaugung, die ja, da die Haare gegliedert sind, also nur kurze Röhrchen in Aktion treten können, nur gering sein kann -- als vielmehr dadurch zustande, daß die Zellen osmotisch das Blutserum aufsaugen und die Blutkörperchen durch Filtration abtrennen. Läßt man nämlich Blut zu den Haaren treten, so sammelt sich im Lumen Flüssigkeit, die Wand quillt und die Blutkörperchen lagern sich an der Außenseite der Zellen ab und verkleben hier. ~Vogl~ dachte sich (1866) die Wirkung anders, aber auch nicht durch Kapillarität bedingt. Er nimmt an, daß der Inhalt der Haare dem Blute Alkali, die Wand ihm Wasser entziehe und dadurch die Koagulation des Blutes zustande komme. Daß auch die kurzen Paleae von _Polypodium aureum_ blutstillend wirken, fand ~Seubert~ schon 1844. Als Verfälschung wird Kapok angegeben (~Prollius~). Als Surrogat des _Penawar_ empfiehlt ~Gawalowski~ einen eigenartig behandelten Torfmull (Näheres in Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1898, 671). Eine Zeitlang benutzte man das Dekokt bei Hämorrhagien (~Molkenboer~, ~Gaupp~). Es enthält nach ~Barillé~ neben Harz und einem santelartig riechenden Körper einen +Gerbstoff+. ~van Bemmelen~ bestreitet, daß Gerbstoff darin vorhanden ist. Er konnte mit dem Dekokt nicht die mindeste Wirkung auf das Blut konstatieren. Er fand in den Haaren: Pflanzenwachs, indifferentes und elektronegatives Harz, eine eisengrünende Säure, Quellsäure, Quellsalzsäure (?), Humussäure. Es fehlten: Stärke, Zucker, Alkaloide, Gerbsäure, Bitterstoff, ätherisches Öl. In früheren Jahrhunderten kamen nicht die Haare, sondern das Stammende oder ein großer Blattwedel oder ein Stammstück mit einer Blattwedelbase als _Agnus scythicus_ (Frutex tartareus, plantanimal, Vegetable lamb, im chines.: keu tsie, im cochin.: cau tieh) in den Handel. Man gab wohl auch durch Einstecken von Holz- oder Bambusstücken, die die Beine vorstellen sollten, dem Ganzen ein noch tierähnlicheres Ansehn. Aber nur ein sehr blödes Auge konnte dadurch sich täuschen lassen. In den Beschreibungen der Wunder Indiens spielte der _Agnus scythicus_ immer eine Rolle. So weiß ~Odorico di Porto Maggiore~ (I, S. 726) im XIV. Jahrh. viel über dies merkwürdige Pflanzentier zu berichten und ~Erasmus Francisci~ widmet ihm im +Ost- und West-Indianischen+ Lustgarten eine weitläufige Beschreibung. Jetzt findet man es nur noch in Sammlungen. Ich besitze in meiner Sammlung ein hübsches skythisches Lamm, das sogar ein rotes Bändchen um den «Hals» trägt und dessen «Beine» aus Bambusstäbchen bestehen (das Exemplar des British Museums ist abgebildet in ~Rymsdyks~ Museum britannicum, London 1791 tab. XV, Fig. 2). Barometz soll ein altrussischer Name für Lamm sein. Das ist möglich, denn heute noch heißt das Lamm im Russischen baraschek (baramek) von baran = Schaf. Der Name Barometz (Baramets, Boramez) wurde dem _Agnus scythicus_, wie es scheint, von ~Cardanus~ gegeben (~Vogl~), der die Heimat des Gebildes -- fälschlich -- in die Gegend zwischen Wolga und Jaik verlegt. Das «Pflanzentier» war ein bewurzeltes Tier, das sich solange im Kreise um die Anheftungsstelle drehte, bis es alles Erreichbare verschlungen hatte. Dann mußte es sterben. Diese Fabel finden wir auch bei ~Joh. von Maudeville~. Eine andere Version lautete, daß sich im Lande Chadissa eine Frucht fände, die aufgeschnitten ein Lamm zeige, das mit der Frucht genossen werde. ~Harsdörffer~ spricht daher von einem «Fruchttier». ~Deursingio~ nennt es _Agnus vegetabilis_. Bei ~Scaliger~, ~Baco von Verulam~, ~Joh. Bauhin~ u. and. findet sich die Fabel dahin modifiziert, daß aus einem Samen, ähnlich jenem der Melone, ein Kraut hervorwachse, das die Gestalt eines jungen Lammes besitze. Sein Stengel stelle gleichsam die Nabelschnur dar (Abbild. nach ~Kircher~ in ~Valentinis~ Museum museorum) und seine reife Frucht enthalte unter dem wollenen Fließ ein süßes Fleisch. ~Kämpffer~ (I, S. 907) ist der schon von ~Wormius~ (1694) geäußerten Ansicht, daß es sich um das Fell unreifer, aus dem Mutterleibe herausgeschnittener Lämmer handele und in der Tat scheinen derartige Felle in Sammlungen als Barometz bezeichnet und mit dem eigentlichen _Agnus scythicus_ verwechselt worden zu sein. Auch ~Valentini~, der ~Kämpffers~ Ansicht teilt, handelt das Gebilde beim Schaf, also unter den tierischen Objekten ab. ~Guillaume Saluste~ (in der franz. Übers. des ~Clusius~ durch ~Antoine Colin~ 1619) besang den _Agnus scythicus_ in Versen (abgedr. bei ~Hanbury~). Bereits Anfang des XVII. Jahrh. scheint er in Europa als Blutstillungsmittel in Benutzung gewesen zu sein (~Vogl~). _Penawar Djambi_ war aber seit 150 Jahren aus dem Handel verschwunden. ~Pomet~ erwähnt es nicht, ebensowenig ~Linné~ (in seiner Mater. medica), ~Spielmann~ u. and. ~Linné~ gab einer ihm aus China unter der Bezeichnung Baromez zugekommenen «wolligen Wurzel» den Namen _Polypodium Baromez_. Die Pflanze selbst sah zuerst ~Loureiro~ (I, S. 903). Er bestätigte, daß es sich um ein stark behaartes _Polypodium_ handele. Aber noch ~Archer~ hielt die Haare für den Pappus einer Distel, bis ein 1852 von den Freundschaftsinseln nach Liverpool gelangtes Wedelstück die Sache endgültig aufklärte. Damals scheinen diese oder ähnliche Spreuhaare auch nach Deutschland gekommen zu sein, wo sie für eine Alge gehalten und als _Conserva aureofulva_ ~Kützing~ beschrieben wurden. 1856 fanden sich im Londoner Handel die behaarten Stammstöcke und Blattbasen. Später kamen dann nur die Haare in den Handel. Die genaue botanische Provenienz stellte dann ~Smith~ fest. =Lit.= ~Kämpffer~, Amoenitates. -- ~Valentini~, Museum museorum, I, p. 458. -- ~Diels~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. I, 4 (dort die Abbild. einer Alsophila). -- ~Hanbury~, On Penghawar Djambi a new styptic. (1856), Science papers, p. 120. -- ~Seubert~, Buchn. Repert. 86. -- ~Franchie~, Vierteljahrschr. f. prakt. Pharm. 1854, 577. -- ~van Bemmelen~, Chem. Unters. d. Pengh. Dj. Vierteljahrschr. f. prakt. Pharm. 1856, 321. -- ~Vogl~, Ges. d. Ärzte 1864, Über blutstillend wirkende Spreuhaare d. Farne, Wien. Med. Jahrb. 1865 (Jahresb. d. Pharm. 1865) und Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 3 (1865), 539 (Jahresber. d. Ph. 1866, 28), dort auch die histor. Notizen, sowie ~Vogl~, Kommentar 1908. -- ~Vinke~, Ausführl. Ref. in Pharm. Jahresb. 1860, 15 und ~Wittsteins~ Vierteljahrschr. 9, 235 (dort auch die früheren Arbeiten besprochen). -- ~Prollius~, Über die sog. palea cibotii. Pharm. Zentralh. 1884, 170. -- ~Greshoff~, Bull. pharm. de Lyon 1891. -- ~Barillé~, Etudes des fibres textiles. Thèse Straßb. 1868 und Note sur le Penghawar Djambi et le Paku kidang Rep. de pharm. 1892, 49. -- ~Lubet-Barbon~, Arch. intern. de laryngologie 1902, No. 6. -- ~Oudemans~, Aanteekeningen, Rotterdam 1854 und Handleiding 1880. -- ~Wiesner~, Rohstoffe II, 466. -- ~Gawalowski~, Ersatz für Penghawar. Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1898, 671. -- ~Brückner~, Russ. Revue 21 (1882), 131 (Histor. -- Nicht gesehen). -- ~Smith~, Genera filicum 1841. -- ~Kunze~ in Schkuhrs Supplement t. 31. -- ~Miquel~, Analecta botan. indic. II, 36 und Sumatra 1862. -- ~Dodge~, Descript. Catal. of useful fiber plants etc. Washington 1897. -- Abbild. d. Haare im Atlas zu ~Oudemans~ Aanteekeningen, Pl. B, bei ~Planchon-Collin~, I, S. 47, ~Hager-Fischer-Hartwich~, Handb. d. pharm. Praxis I, S. 827, ~Vogl~, Atlas t. 60, bei ~Barillé~ a. a. O. und ~Prollius~ a. a. O. -- Unters. über d. Zellmembr. d. Farne und Moose: ~Winterstein~, Zeitschr. phys. Chem. 21 (1895), 152. Die Fasern. Die Fasern gehören nicht zu den Arzneidrogen im engeren Sinne, sondern eigentlich zu den technischen Rohstoffen. Da sie aber auch für den Pharmakognosten wichtig sind, vielfach in der Pharmazie verwendet werden, und auch sonst in pharmakognostischen Handbüchern Erwähnung finden, mögen sie wenigstens +kurz+ an dieser Stelle aufgeführt werden. Die Pflanzenfasern sind nur selten (_Lein_) reine Zellulose. Die _Jute_ z. B. enthält, wenn reif, 20-30 % Nicht-Zellulose (~Cross~ und ~Bevan~). Die technisch verwerteten pflanzlichen Fasern. Unter dem Namen «Fasern» versteht man jetzt sehr verschiedenartige Dinge. In erster Linie gehören hierher die +Textilfasern+ (Flachs, Hanf, Jute, Baumwolle, Pflanzenseide, Chinagras, Nesselfaser usw.) und die zur Papierfabrikation verwendeten +Papierfasern+ (außer Flachs, Hanf, Baumwolle noch Esparto, Strohfaser, Holzzellen, Bambusfaser, Hopfenfaser u. and.), dann sind aber auch noch, wenn man den Begriff ganz weit faßt, den Fasern zuzuzählen: die als +Stopf-+ oder +Polstermaterial+ verwendeten Pflanzendunen, édredon végétal, das vegetabilische Roßhaar, Holzwolle; die +Bürstenmaterialien+: Coir, Pite, Piassave, Esparto, Reisbesen; die +Seilermaterialien+: Hanf, neuseeländ. Flachs, Manilahanf, Jute, Pitahanf, Coir, Piassave; die zu gärtnerischen und anderen Zwecken verwendeten +Bindematerialien+: Lindenbast, Raphiabast, Ulmenbast, Cubabast; die +Flechtmaterialien+: spanisches Rohr, Bambus, Esparto, Pitafaser. Ihren morphologisch-anatomischen Charakter nach stellen diese Fasern sehr verschiedenartige Dinge dar: Pflanzenhaare (Baumwolle, Pflanzenseide, Pappelwolle, Wollgrasfaser), einzelne Bastfasern (Lein, Hanf, Jute, Chinagras), Bastfasergruppen (Manilahanf, neuseeländ. Flachs), subepidermale Baststreifen des Blattes (Raphiafaser), Bastfasern mit anhängenden anderen Elementen (Lindenbast), Gefäßbündel mit Bastbelegen (Aloëhanf, Sisalhanf, Sanseveria und Coirfaser), Gefäßbündelgruppen (Piassave, Kitoolfaser, crin végétal), ferner zerkleinertes (geschliffenes) Holz (Holzstoff, Holzzellulose), ganze Wurzeln (Reiswurzelfaser), ganze Blätter (Espartostroh), ja sogar ganze Pflanzen (Seegras). Die tierischen Fasern zerfallen in +Tierwollen+ und +Haare+ (Schafwolle, Ziegenhaare, Angora Ziegenhaar, Tibetwolle, Kalb- und Kuhhaare, Kamelhaar, Kamelziegenwolle, Rehhaare, Schweinsborsten, Roßhaare u. and.) und +Fäden+ (Seide). Sie sind sowohl morphologisch als mikrochemisch leicht von den pflanzlichen Haaren zu unterscheiden. Sie geben z. B. niemals auch nach vorheriger Behandlung mit ~Schulze~scher Macerationsflüssigkeit die sog. Zellulosereaktion. Zur Unterscheidung der Tier- und Pflanzenfaser benutzt ~Molisch~ α-Naphthol (Jahresb. d. Pharm. 1886, 16). Wenn wir von den ganzen Pflanzen (Seegras, _Zostera marina_ und _Carex brizoides_) absehen, so können wir die Fasern einteilen: 1. in solche, die pflanzliche +Haarbildungen+ darstellen und 2. solche, die entweder ausschließlich oder doch vorwiegend aus +Bastfasern+ bestehen. Bei der Untersuchung pflanzlicher Fasern ist in Betracht zu ziehen: 1. Die Form der Faserzellen: Basis, Lumen, Dicke der Wand, Art der Verdickung, Spitze, Form des Querschnittes, 2. Länge und Breite der Faserzellen; 3. Mikrochemisches Verhalten. Außer einer genauen mikroskopischen Feststellung der morphologischen Verhältnisse spielt also bei derartigen Untersuchungen das Messen mit dem Mikrometer, sowie die Einwirkung von Reagentien eine große Rolle. Bei der Anwendung der letzteren ist zu berücksichtigen, ob man eine rohe Faser oder eine verarbeitete vor sich hat. Denn durch zahlreiche Verarbeitungsprozesse (besonders das Bleichen) wird die Faser chemisch verändert oder erleidet durch aufgetragene Farbstoffe Farbenveränderungen. So wird bei den meisten Bleichprozessen das Lignin, wo es vorhanden war, aus der Membran entfernt, dieselbe reagiert also, auch wenn sie einer verholzten Zelle angehörte, wie Zellulose. An stark gefärbten Fasern lassen sich mikrochemische Reaktionen überhaupt nicht anstellen. Dimensionsverhältnisse Länge, Dicke, Verhältnis der Dicke zur Länge der wichtigsten Fasern -- nach den Angaben von ~Wiesner~, ~Vétillard~ und ~von Höhnel~. -----------------------+------------------+----------------+---------- | Länge mm | Breite in mik |Verhältnis Name der Faser | | (mmm) |der Dicke | Min.| Max.|Mittel|Min.|Max.|Mittel|zur Länge =======================+=====+=====+======+====+====+======+========== Lein von Linum | | | | | | | usitatissimum | 4 | 66 |25-30 | 15 | 37 |20-25 | 1200 Hanf von Cannabis | | | | | | | sativa | 5 | 55 |15-25 | 16 | 50 | 22 | 1000 Hopfenfaser von | | | | | | | Humulus Lupulins | 4 | 19 | 10 | 12 | 26 | 16 | 620 Nesselfaser von | | | | | | | Urtica dioica | 4 | 55 |25-30 | 20 | 70 | 50 | 550 Chinagras, Ramié von | | | | | | | Boehmeria nivea | 60 | 250 | 120 | 16 | 8 | 50 | 2400 Papiermaulbeerbaumfaser| | | | | | | 240- von Morus papyrifera | -- |10-25|6-15 | -- | -- |25-35 | 430 Sunnfaser von | | | | 25 | | | Crotalaria juncea | 0,5 | 12 | 7-8 |(20)| 50 | 30 | 260 Besenginster von | | | | | | | Sarothamnus vulgaris | 2 | 9 | 5-6 | 10 | 25 | 15 | 330 Pfriemenfaser von | | | | | | | Spartium junceum | 5 | 16 | 10 | -- | -- | 20 | 500 Steinkleefaser von | | | | | | | Melilotus alba | 5 | 18 | 10 | 20 | 36 | 30 | 330 Gambohanf von | | | | | 33 | | Hibiscus cannabinus | 2 |6(12)| 5 | 14 |(41)| 21 | 240 Lindenbast von | | | | | | | Tilia europaea, | | | | | | | platyphyllos |1,25 | 5 | 2 | 14 | 20 | 16 | 125 Jute v. Corchorus | | | | | | | capsularis, | 0,8 |(4,1)| 2 | 20 | 25 | 22,5 | 90 olitorius etc. | | 5 | |(16)|(32)| | Faser von Lagetta | | | | | | | linteria | 3 | 6 | 5 | 10 | 20 | -- | 500 Bast von Salix alba, | | | | | | | capraea u. a. | -- | 3 | 2 | 17 | 30 | 22 | 90 Esparto oder | | | | | | | Alfafaser von Stipa | 0,5 |(1,9)| 1,5 | 7 | 18 | 12 | 125 tenacissima | | 3,5 | | | | | Faser von Lygaeum | | | | | | | Spartum | 1,3 | 4,5 | 2,5 | 12 | 20 | 15 | 160 Ananasfaser von | | | | | | | Ananassa sativa | 3 | 9 | 5 | 4 | 8 | 6 | 830 Faser von Bromelia | | | | | | | Karatas | 2,5 |10 | 5 | 20 | 32 | 24 | 210 Faser von Bromelia | | | | | | | Pinguin | 0,75| 2,5 | 2 | 8 | 16 | 13 | 150 Neuseeländischer | | | | | | | Flachs von | 2,5 |(5,6)| 8-10 | 8 | 20 | 16 | 550 Phormium tenax. | |15 | | | | | Faser von Yucca sp. | 0,5 | 6 |3,5-4 | 10 | 20 | -- | 170 Sanseveria-Faser v. | | | | | | | Sanseveria | | | | | | | zeylanica | 1,5 | 6 | 3 | 15 | 26 | 20 | 150 Pite-Faser von Agave | | | | | | | americana | 1,5 | 4 | 2,5 | 20 | 32 | 24 | 100 Manilahanf von Musa | | | | | | | textilis | 3 |12 | 6 | 16 | 32 | 24 | 250 Manilahanf von Musa | | | | | | | paradisiaca, M. | | | | | | | Sapientum | -- | -- | 5 | 20 | 40 | 28 | 180 Faser von Phoenix | | | | | | | dactylifera | 2 | 6 | 3 | 16 | 24 | 20 | 150 Faser von Corypha | | | | | | | umbraculifera | 1,5 | 5 | 3 | 16 | 28 | 24 | 120 Faser von Elaëis | | | | | | | guineensis | 1,5 3,5 | 2,5 | 10 | 13 | 11 | 230 Faser von Raphia | | | | | | | taetigera | 1,5 | 3 | 2,5 | 12 | 20 | 16 | 160 Faser von Mauritia | | | | | | | flexuosa | 1 | 3 | 1,5 | 10 | 16 | 12 | 130 Coïr-Faser von Cocos | | | | | | | nucifera | 0,4 | 1 | 0,7 | 12 | 24 | 20 | 35 Tillandsia-Faser | 0,2 | 0,5 | -- | 6 | 15 | -- | -- Piassava | 0,3 | 0,9 | -- | --| --| -- | -- Abelmoschus | | | | | | | tetraphyllos, Bast | 1 | 1,6 | -- | 8 | 20 | -- | -- Sida retusa, Bast | 0,8 | 2,3 | -- | 15 | 25 | -- | -- Urena sinuata, Bast | 1,1 | 3,2 | -- | 9 | 24 | -- | -- Baumwolle (Gossypium) |10 |52 | -- | 12 | 42 | -- | -- Wollbaumwolle (Bombax) |10 |30 | -- | 19 | 42 | -- | -- Wolle von Ochroma | | | | | | | Lagopus | 5 |15 | -- | 16 | 35 | -- | -- Vegetabil. Seide v. | | | | | | | Asclepias | | | | | | | curassavica |10 |30 | -- | 20 | 44 | -- | -- „ „ „ | | | | | | | Calotropis | | | | | | | gigantea |20 |30 | -- | 12 | 42 | -- | -- „ „ „ | | | | | | | Marsdenia |10 |25 | -- | 19 | 33 | -- | -- „ „ „ | | | | | | | Strophanthus |10 |56 | -- | 49 | 92 | -- | -- „ „ „ | | | | | | | Beaumontia |30 |45 | -- | 33 | 50 | -- | -- Aloë perfoliata, | | | | | | | Aloëhanf | 1,3 | 3,7 | -- | 15 | 24 | -- | -- Calotropis gigantea, | | | | | | | Bastfaser | 7 |30 | -- | 18 | 25 | -- | -- Bauhinia racemosa, | | | | | | | Bast | 1,5 | 4 u.| -- | 8 | 20 | -- | -- | |mehr | -- | 8 | 20 | -- | -- Thespesia Lampas, | | | | | | | Bast | 0,92| 4,7 | -- | 12 | 21 | -- | -- Cordia latifolia, | | | | | | | Bast | 1 | 1,6 | -- | 15 | 17 | -- | -- Sterculia villosa, | | | | | | | Bast | 1,5 | 3,5 | -- | 17 | 25 | -- | -- Holoptelea | | | | | | | integrifolia, Bast | 0,9 | 2,1 | -- | 9 | 14 | -- | -- Kydia calycina, Bast | 1 | 2 | -- |16,8|24,2| -- | -- Lasiosyphon | | | | | | | speciosus, Bast | 0,42| 5,1 | -- | 8 | 29 | -- | -- Sponia Wightii | -- | 4 | -- | --| --| -- | -- Pandanus | | | | | | | odoratissimus | 1 | 4,2 | -- | --| --| -- | -- Pflanzliche Fasern, die von Haaren gebildet werden. Die die Epidermis überziehende Cuticula breitet sich auch über die Anhangsorgane der Epidermis, die Haare. Es werden daher alle pflanzlichen Fasern, die von Haaren gebildet werden, von einer Cuticula bedeckt sein. Doch ist zu bemerken, daß durch die eigentümliche Behandlungsweise, die gewisse weiche Fasern bei ihrer Verarbeitungsweise erfahren, bisweilen die charakteristische Reaktion der Cuticula verloren geht. So zeigt z. B. gut gebleichter Baumwollenzwirn an den Fäden keine Cuticula. Ferner pflegen die Haare keine gegabelte Spitze, wie sie viele Bastzellen zeigen, zu haben, sind dagegen oft verzweigt und an der Basis abgebrochen -- also nicht beiderseits zugespitzt, wie die Bastzellen (Ausnahme s. oben S. 239). Da jedoch von letzteren meist nur Fragmente zur Untersuchung kommen, so fällt dies nicht sehr ins Gewicht. Tüpfel besitzen die Haare nur an ihrer Basis, wo sie an das Gewebe angrenzen. Meist führen sie Luft, doch ist bei ihnen ausnahmslos ein zartes Plasmahäutchen, der Innenwand anliegend, nachzuweisen. Einzellig sind die Haare der Baumwolle, der Pflanzenseiden und Dunen, von einer einfachen Zellreihe wird die Pulufaser, von mehreren Reihen das Wollgras, die Typhafaser u. and. gebildet. 1. Baumwolle. wurde schon oben S. 229 behandelt. 2. Pflanzendunen. Als Pflanzendunen bezeichnet man die Samen und Fruchthaare der Wollbäume (Bombaceen). Es gehören hierher: +Ceibawolle+, édredon végétal, +Bombaxwolle+, Kapok, patte de lièvre. Sie dienen vorwiegend als Stopfmaterial. Folgende Arten kommen in Betracht: _Bombax Ceiba_ E., _B. heptaphyllum_ L., _B. malabaricum_ ~Roxb.~, _Cochlospermum Gossypium_ ~Dc.~, _Ochroma Lagopus_ ~Sw.~, ~Chorisia speciosa~ ~St. Hil.~, _Eriodendron anfractuosum_ Dc. (_Bombax pentandrum L._) Die Pflanzendunen sind einzellige konische Haare mit bisweilen angeschwollener oder zusammengeschnürter Basis und rundem Querschnitt. Die Länge beträgt 1-3 cm. Die Wandung ist verholzt; die Cuticula glatt und dünn. Die wichtigsten Pflanzendunen sind: Die +Bombaxhaare+ von _Bombax_arten und _Eriodendron anfractuosum_, schwach verholzt, bisweilen 3 cm lang und 19-43 mik dick, an der Basis netzförmig verdickt. Die sog. +patte de lièvre+ von _Ochroma Lagopus_, 0,5-1,5 cm lang, sehr dickwandig (5-8 mik), braun. 3. Pflanzenseiden. Als Pflanzenseide bezeichnet man wegen ihres seidenartigen Glanzes die +Samenhaare+ zahlreicher Asclepiadaceen und Apocyneen: _Asclepias curassavica_ E., _Calotropis gigantea_ ~R. Br.~, _Marsdenia_, _Beaumontia grandiflora_, _Strophanthus hispidus_ u. and. Die Fäden der Pflanzenseiden sind 1-3 cm lang, steif, bis 80 mik dick. Die meist dünne verholzte Wandung zeigt im Querschnitte deutliche, mehr oder weniger nach innen vorspringende Längsleisten. Der Querschnitt des Haares ist rund. 4. Einheimische Wollhaare. Als Stopfmaterial werden bisweilen die bis 3,5 mm langen, einzelligen, zylindrischen Samenhaare von _Populus_ (Pappelwolle), die einreihigen mehrzelligen Perigonhaare der Früchte von _Typha angustifolia_ (Rohrkolbenwolle), die 2-4 cm langen, mehrzelligen, zweischichtigen Haare des Haarschopfes der Früchtchen von unseren _Eriophorum_arten u. and. mehr verwendet. Pflanzliche Bastfasern. Die pflanzlichen Bastfasern werden fast ausnahmslos von Bastzellen oder Bastzellgruppen gebildet, denen in einigen Fällen noch andere Gewebselemente anhängen. Sehr selten werden auch Libriformzellen technisch verwertet. Die Bastzellen sind ringsum geschlossen und laufen beiderseits mehr oder weniger spitz zu oder sind an den Spitzen mit kleinen Seitenspitzchen versehen. Sie sind niemals verzweigt, meist sehr stark verdickt, von rundlichem oder polyedrischem, übrigens sehr charakteristisch variierendem Querschnitte. Die Tüpfel sind stets einfach, meist spaltenförmig. Bei den Bastzellen der Dicotylen sind die Tüpfel meist sehr undeutlich oder fehlen, bei denen der Monocotylen sind sie zahlreich. Einige Handelsfasern sind auch noch durch die von ~Höhnel~ richtig gedeuteten eigentümlichen +Wandverschiebungen+ (Knoten, Querbruchstellen, Sprunglinien, plis de flexion) ausgezeichnet, die aber erst bei der Bearbeitung der Faser entstehen (~Schwendener~), mit Chlorzinkjod sich dunkler färben, und den Fasern, die sie besitzen (Flachs, Lein, Ramieh, Nessel) ein sehr charakteristisches Ansehn geben. Sie fehlen der Jute, die nicht «gebrochen» wird. Das wichtigste Hilfsmittel der Diagnose ist der Querschnitt der Faser (~Vétillard~, ~von Höhnel~). Niemals besitzen natürlich Bastfasern eine Cuticula (Unterschied von den Haaren). Der Inhalt besteht meist aus Luft, ein Plasmahäutchen ist fast ausnahmslos vorhanden, anderer Inhalt selten. Sie sind stets sehr lang. Die die Bastfasern da und dort begleitenden Gewebselemente sind Parenchymzellen, Kristallzellen, Gefäße, Tracheïden, Sklereïden, Siebröhren. Parenchymzellen finden sich bei den Rohbastfasern (z. B. Hanf, Flachs) fast ausnahmslos, denn da der Prozeß der Gewinnung der Faser auf einer mechanischen Herauslösung derselben aus den übrigen Geweben beruht, so ist es erklärlich, daß der (auf diese Weise) isolierten Faser noch Reste der begleitenden Gewebe anhängen. Dort wo die Bastfasern überhaupt nicht eigentlich isoliert werden, sondern samt dem umgebenden Gewebe verwendet werden (Manilahanf, Coir), sind sie natürlich stets deutlich nachzuweisen. 1. Leinfaser. Die Flachsfaser wird von den zu, einen konzentrischen Panzer bildenden, Gruppen vereinigten Bastfasern der Stengelrinde des Lein, _Linum usitatissimum_ L., gebildet, die nach dem Ausreißen und Riffeln der Stengel durch Rösten (Faulen in Wasser), Brechen (Zertrümmern und Herauslösen des spröden Holzkörpers), Hecheln (Abstreifen des begleitenden Rindenparenchyms und der Epidermis) und Schwingen von den übrigen Elementen des Stengels losgelöst werden. Der Rohflachs enthält daher stets noch Parenchym- und Epidermiszellen, ja sogar Holzelemente, die gereinigten besten Sorten bestehen dagegen nur aus Bastfasern. Die Bastzellen des Lein sind gänzlich unverholzt, bestehen also aus reiner Zellulose, sehr stark und gleichmäßig verdickt und mit engem, fadenförmigem, plasmaerfülltem Lumen versehen. +Die Enden sind sehr spitz und lang ausgezogen+, die Wandung zeigt deutliche Verschiebungen (Sprunglinien), Poren sind kaum oder garnicht zu bemerken. Die Bastzellen des Lein sind entweder isoliert oder zu weniggliederigen Gruppen vereinigt. Der Querschnitt ist meist eckig-polygonal, eine Mittellamelle tritt bei Behandlung mit Schwefelsäure nicht deutlich hervor. Die Schichtung der Wand ist undeutlich. Bez. der Länge und Breite vgl. die Tabelle (S. 251). Das Geschichtliche des Lein wird bei den Schleimdrogen unter _Linum_ besprochen werden. 2. Hanffaser. Die Bastzellen des Hanf liegen in großer Zahl zu vielen Gruppen vereinigt in der Rinde des Stengels der Hanfpflanze, _Cannabis sativa_ L. Sie sind schwach verholzt, nicht so gleichmäßig verdickt wie die des Lein, und mit zahlreichen Verschiebungen versehen. Das Lumen ist meist weit, verengert sich jedoch gegen die sehr dickwandige, +stumpfe+, bisweilen mit seitlichen Auszweigungen versehene, gegabelte +Spitze+ linienförmig. Die Bastzellen stehen hier stets in Gruppen. Der Querschnitt der einzelnen Bastzelle ist abgerundet, oft tangential gestreckt, nicht eckig, das Lumen erscheint spaltenförmig oder polygonal und inhaltsleer, die Membran geschichtet. Bei Behandlung mit Jodschwefelsäure tritt die Mittellamelle scharf hervor, sowohl bei den Gruppen als auch -- als anhängende Fetzen -- bei der einzelnen Faser (~von Höhnel~). Nach ~Höhnel~ genügt der anatomische Befund der Faser selbst zur Unterscheidung der Lein- und Hanffaser. ~Cramer~ zieht zur Diagnose noch die begleitenden Gewebselemente -- Epidermis, Haare, Spaltöffnungen, Kristallzellen, Gerbstoffzellen -- herbei. Dieselben dienen ihm als «Leiter». Haare, Kristall- und Gerbstoffzellen hat nur der Hanf. ~T. F. Hanausek~ fand (1908), daß sich der Plasmaschlauch der Hanffaser bei Behandeln mit Chromsäuregemisch anders verhält wie bei der Leinfaser. Während er bei letzterer oft gewunden (ähnlich wie bei der Baumwolle, Fig. 89) erscheint, ist er beim Hanf niemals wellenförmig verbogen, sondern gerade und tritt sehr plastisch hervor. ~R. Korn~ hält die Unterscheidung mit Cuoxam für besser (1910). Der Hanf ist dem semitisch-ägyptischen Kulturkreise fremd. (Im übrigen vgl. _Fruct. cannabis._) Der Hanffaser sehr ähnlich ist die: 3. Sunnfaser. Dieselbe entstammt den rindenständigen Bastbündeln von _Crotalaria juncea_. Die Unterschiede beruhen in einem breiten, nicht spaltenförmigen, inhaltführenden Lumen und breiten verholzten äußeren Membranpartien, die sich von den inneren nicht verholzten sekundären Verdickungsschichten leicht ablösen (~von Höhnel~). 4. Nesselfaser. Die Bastfasern von _Urtica dioica_ L. finden sich ebenfalls in der Stengelrinde. Sie sind unverholzt, unregelmäßig gebaut, die nicht sehr dicke Wandung ungleichmäßig gestreift. Das breite Lumen enthält oft Inhalt. Die Enden sind ausgezogen, abgerundet, meist löffelförmig erweitert, manchmal quer abgeschnitten oder gegabelt. Der Querschnitt der Bastzellen ist oval, abgeplattet, ja bandförmig, bisweilen mit einspringenden geschichteten Wandungen versehen (~von Höhnel~). 5. Chinagras. Das Chinagras oder die Ramié (Ramiehfaser) wird von den rindenständigen, einzelnen oder zu kleinen lockeren Bündeln vereinigten Bastzellen der Stengel von _Boehmeria nivea_ (L.) ~Hook.~ et ~Arn.~ gebildet. Die Bastzellen sind sehr ansehnlich (vgl. Tabelle S. 251), gänzlich unverholzt und zeigen häufig Verschiebungen. Das bisweilen Inhalt führende Lumen ist sehr breit, verschmälert sich aber gegen die Enden linienförmig; die Spitze ist dickwandig und abgerundet, der Querschnitt ist länglich oder flach zusammengedrückt, an den breiteren Stellen bandartig, die Wandung zeigt Schichtung. Sehr ähnlich ist die Roafaser von _Pipturus argenteus_. 6. Jute. Die Jute wird von den rindenständigen, relativ kurzen, stets zu Gruppen vereinigten Bastzellen der Stengel von _Corchorus capsularis_ L., _C. olitorius_ L. u. and. _Corchorus_arten gebildet. Die Jutebastfasern sind stark verholzt, im Querschnitt isodiametrisch-polygonal, scharfkantig, mit schmaler Mittellamelle. Das Lumen ist, trotzdem die Wandung stark verdickt ist, relativ weit, rundlich oder oval, bei ein und derselben Zelle oft an bestimmten Stellen verengert, an den Enden dagegen weit. Letztere sind relativ dünnwandig, kegelförmig oder abgerundet, Verschiebungen fehlen, ebenso Streifung (~von Höhnel~). Der Jute morphologisch sehr ähnlich ist der: 7. Gambohanf. Derselbe stammt von den Stengeln von _Hibiscus cannabinus_ u. and. _Hibiscus_arten. Von der Jute unterscheidet er sich durch eine breitere Mittellamelle, dickwandige, bisweilen schwach gegabelte Enden und eine bisweilen bis zum Verschwinden des Lumens vorschreitende partielle Verdickung der Wand. Der Jute ähnlich sind auch die +Abelmoschusfaser+ (von _Abelmoschus tetraphyllos_) und die +Urenafaser+ (von _Urena sinuata_). Dicotylenfasern sind ferner: Die +Hopfenfaser+ (v. _Humulus Lupulus_), die +Papiermaulbeerbaumfaser+ (v. _Broussonetia papyrifera_), die +Ginsterfaser+ (von _Sarothamnus vulgaris_), sowie die Daphnefaser (von _Lagetta lintearia_) -- alle vier zur Papierfabrikation viel verwendet. Monocotylenfasern sind: 8. Neuseeländischer Flachs. Derselbe wird vorwiegend gebildet von den Bastbelegen der Gefäßbündel der Blätter von _Phormium tenax_. Die vollständig verholzten Bastfasern sind gleichmäßig aber stark verdickt, das Lumen rund oder oval, leer, im Verlaufe der Fasern gleich breit. Die Enden sind scharf zugespitzt. Der Querschnitt ist rundlich oder polygonal mit abgerundeten Ecken. Mittellamelle undeutlich. Gefäße sind selten als Begleiter aufzufinden. Dem _Aloëhanf_ und der _Sanseveria_faser sehr ähnlich. 9. Manilahanf. Unter dem Namen Manilahanf, Abaca, Plantainfibre, Siamhemp, white rope kommen die Bastfasern von _Musa textilis_ ~Nees~ in den Handel. Dieselben sind stark verholzt, gleichmäßig aber nicht sehr erheblich verdickt, mit glatter Wand und großem, rundlichem, bisweilen inhaltführendem Lumen. Der Querschnitt der stets zu mehr oder weniger lockeren Gruppen vereinigten Bastfasern ist rundlich-polygonal. Mittellamelle undeutlich. Die Fasern werden von 30 mik langen verkieselten Zellen (Stegmata) begleitet. 10. Pitafaser. Die Pitafaser, Pite, Sisal, Matamoros, Tampicohanf, besteht aus den Bastbelegen der Gefäßbündel der Blätter von _Agave americana_ L. u. a. _Agave_-Arten. Die verholzten, stets zu Gruppen vereinigten Bastzellen (s. Tabelle) sind in der Mitte oft breiter, besitzen ein sehr weites (viel breiter als die Wand), polygonales Lumen und eine dünne Wand. Die breiten, stumpfen, selten gegabelten Enden sind stets verdickt. Die Mittellamelle ist undeutlich. Der Querschnitt der Bastzellen ist polygonal. Die Fasern werden begleitet von zahlreichen großen, spiraligen Gefäßen und Kristallzellen mit bis 0,5 mm langen Oxalatprismen oder deren Trümmern. 11. Aloëhanf. Der Aloëhanf, Aloëfaser, Mauritiushanf sind gleichfalls Bastzellbündel von Blättern, und zwar von _Aloë_arten (bes. _Aloë perfoliata_). Die dünnen Bastzellen sind meist sehr stark verdickt, die Wandung (s. Tabelle) zeigt sehr steil linksschief gestellte Tüpfel, die Enden sind spitz oder kegelförmig, der Querschnitt ist polygonal, das Lumen rund, wenig breiter als die Wand. Die Faser wird von Gefäßen begleitet. Sehr ähnlich gebaut ist die +Sanseveriafaser+ von _Sanseveria ceylanica_. 12. Coirfaser. Die braune Coirfaser entstammt der Fruchtschale der Cocosnuß (_Cocos nucifera_) und wird von den Gefäßbündeln derselben gebildet, die starke Sklerenchymbelege besitzen und von Stegmata begleitet sind. Monokotylenfasern sind ferner: +Ananasfaser+, Silkgras, pine-apple fibre von _Ananasa sativa_. +Yuccafaser+ von _Yucca gloriosa_. +Alfafaser+, Esparto von _Stipa tenacissima_ und _Ligaeum Spartum_ (das ganze Blatt). +Pandanusfaser+ von _Pandanus odoratissimus_ (Bastbündel der Blätter). +Tillandsiafaser+, vegetabilisches Roßhaar von _Tillandsia usneoides_ (Bastbündel der Stengel). +Palmenfasern+ und zwar: Piassave, Piassaba, Monkeygras von _Attalea funifera_ ~Mart.~ (Bahia-Piassave) und _Leopoldinia Piacaba_ ~Wall.~ (nach ~T. F. Hanausek~ Paragras, Para-Piass.) (Bastbündel aus den Battscheiden). +Palmettofaser+, orin végetal, orin d’Afrique, von _Chamaerops humilis_ (geschlitzte Blätter). +Dattelpalmenfaser+ von _Phoenix dactylifera_ (Blätter). +Talipotfaser+ von _Corypha umbraculifera_. +Raphiabast+, Raphiastroh von _Raphia taedigera_ (subepidermale Bastbelege der Blätter und Blattstiele). Kitool, Siamfaser von _Caryota urens_ u. and. m. +Analytische Tabellen zur mikroskopischen Bestimmung der Fasern+ teilte ~Höhnel~ (a. a. O. und Beitr. zur techn. Rohstofflehre. Dingl. Polytechn. Journ. 1884, S. 251 u. 273) mit. Ich verweise auf diese und bemerke nur, daß er folgende Gruppen bildet: A. Fasern, die durch Jodschwefelsäure blau, violett oder grünlich gefärbt werden. a) Dikotyle Bastfasern und Baumwolle -- ohne Gefäße (Flachs, Hanf, Sunn, Chinagras, Roafaser von _Pipturus argenteus_). b) Monokotyle Fasern, mit Gefäßen, ohne Verschiebungen (Alfa [Esparto] und Ananasfaser). B. Fasern, die durch Jodschwefelsäure gelb gefärbt werden. a) Dikotyle Fasern, ohne Gefäße, Lumen mit Verengerungen (Jute, Abelmoschusfaser, Gambohanf, Urenafaser). b) Monokotyle Fasern, mit Gefäßen, Lumen keine Verengerungen (Neuseeländ. Flachs, Manilahanf [oft ohne Gefäße], Sanseveriafaser, Aloëhanf von _Aloë perfoliata_, Pitahanf, Yuccafaser von _Yucca gloriosa_). Zur =Papierfabrikation= werden verwendet (bez. der Einzelheiten vgl. ~von Höhnel~, ~Wiesner~, ~T. F. Hanausek~): Lein, Hanf, Baumwolle, Weizen-, Roggen-, Hafer-, Reis-, Maisstroh, Esparto, Bambusrohr, Jute, Papiermaulbeerbaumfaser und Holzstoff (bes. das geschliffene Holz von Coniferen). Die Alten bedienten sich zum Beschreiben der +Tempelwände+ (Ägypten), der +Tontafeln+ (Assyrien), der +Wachs-+ und +Holztafeln+ (Rom), der +Tierhäute+ (+Pergament+, verbessert in Pergamon II. Jahrh. n. Chr., verdrängte vom IV. Jahrh. an die Charta, dann wichtigster Schreibstoff des Mittelalters), des +Leders+, monokotyler +Blätter+ (Bambus [China], Palmen [Indien, dort auch heute noch üblich]), einiger +Rinden+ (z. B. des Birkenperiderm bes. in Asien, in Kaschmir bis ins XVI. Jahrh.), dann der Lindenbaststreifen (Rom) und des +Papyrus+ (Charta: in dünne Blätter geschnittenes Mark der Papyrusstaude, die [zu dritt] übereinander gelegt und mit Stärkekleister miteinander verklebt wurden, bes. in Ägypten schon 2000 n. Chr. nachgewiesen, die ägyptische Papyrusfabrikation erlosch in der zweiten Hälfte des X. Jahrh., die sizilianische im XIII. Jahrh.), sowie später (in Asien) des +Reispapier+ (Araliamark). Das +gefilzte Papier+ ist eine Erfindung der Chinesen (c. 105 n. Chr., vgl. I, S. 523). Ein mittelalterliches Baumwollpapier gab es nicht (~Wiesner~, ~Karabaczek~, ~Kobert~). Die ältesten Papiere der Chinesen aus den ersten Jahrhunderten unserer Zeitrechnung bestanden aus den Fasern der _Broussoneiia papyrifera_ ~l’Hérit~ (Papiermaulbeerbaum). Einige Jahrhunderte später traten dann auch noch das Chinagras (Ramie, Nesselfaser) von _Boehmeria nivea_ ~Hook.~ et ~Arn.~, die Hanffaser und die Faser von _Edgeworthia papyrifera_ ~Salzm.~ dazu (~Wiesner~). Die in Turfan und Khotan kürzlich gefundenen Papiere aus dem VI-IX. Jahrh. bestanden vorwiegend aus _Broussonetia_- und _Boehmeria_fasern (~Kobert~). +Hadernpapier+ ist (nach ~Karabaczek~ und ~Wiesner~) eine Erfindung der Araber (VIII. oder IX. Jahrh.), wurde aber im X. Jahrh. von den Chinesen angenommen (oder selbständig erfunden?). Die Papiergewinnung kam c. 850 durch die Mauren nach Spanien. In Italien entstanden im XI., in Deutschland im XIV. Jahrh. Papiermühlen. Die ältesten europäischen Papiere sind gleich den arabischen stark mit Stärkekleister geleimt. Diese Leimungsart läßt sich bis zum Ende des XIII. bzw. Anfang des XIV. Jahrh. verfolgen. Dann folgt der Leim. Erst im XIX. Jahrh. begann die Harzleimung kombiniert mit Stärkeleimung. Bis zum XIV. Jahrh. sind die europäischen Papiere sehr langfaserig, nach und nach treten kurzfaserige an ihre Stelle, was auf eine tief eingreifende Umgestaltung des Papiererzeugungsverfahrens hinweist (~Wiesner~). =Lit.= ~von Hoehnel~, Die Mikroskopie d. technisch verwendeten Faserstoffe. 2. Aufl. 1905 (mit guten anatom. Abbild. und einem erschöpfenden Literaturverzeichnis). -- ~Wiesner~, Rohstoffe d. Pflanzenreiches. I. u. II. Aufl. 1873 und 1903. -- ~Vétillard~, Etudes sur les fibres végétales textiles, employées dans l’industrie. Paris 1876. -- ~T. F. Hanausek~, Lehrb. d. techn. Mikroskopie. 1900. -- ~Hanausek-Winton~, Microscopy of techn. prod. 1907. -- ~Schlesinger~, Mikrosk. Unters. d. Gespinstfas. Zürich 1873. -- ~Jos. Moeller~, Pflanzen-Rohstoffe. Ber. über d. Weltausstell. in Paris. 1878, Wien. -- ~Frank-Tschirch~, Pflanzenphys. Wandtafeln. -- ~Hassak~, Wandtafeln. -- Abbild. auch in ~Hager-Fischer-Hartwich~, Handb. d. pharm. Praxis I, S. 1244 und den betr. Artikeln in Realenzyklop. d. Pharm. -- ~Focke~, Mikrosk. Unters. d. bekannt. Gespinstf. Arch. Pharm. 1886 (m. Abbild.). -- ~Barillé~, Etudes des fibres textiles. Thèse Straßburg 1868. -- ~Cramer~, Programm d. Zürich. Polytechnik. 1881; vgl. mein Refer. in Pharm. Zeit. 1881, Nr. 73. -- ~von Hoehnel~, Über den Einfluß des Rindendruckes. Pringsh. Jahrb. XV, S. 311. -- ~Schwendener~, Über d. Verschiebung d. Bastfasern im Sinne ~von Hoehnels~. Ber. d. d. Bot. Ges. 1894, 239. -- ~T. F. Hanausek~, Eine neue Methode zur Unterscheid. d. Flachs- und Hanffaser. Zeitschr. Farben-Industr. 1908. -- ~Greshoff~, De qualitatieve en quantitatieve bepaling van katoen naast kapok. Pharm. Weekbl. 1908. -- ~J. Aisslinger~, Beiträge z. Kenntnis wenig bekannter Pflanzenfasern. Diss. Zürich 1907. -- ~Cross~, ~Bevan~, ~King~ and ~Joynson~, Report on Indian fibres and fibrous substances. London 1887. Über +Papier+ vgl. ~Valenta~, Das Papier, seine Herstellung, Eigenschaften, Verwendung usw. Halle 1904, -- ~Carl Hofmann~, Prakt. Handb. d. Papierfabrikat. I. B. 1891, II. B. 1897 Berlin. -- ~Herzberg~, Papier-Prüfung. I. Aufl. 1888, II. Aufl. 1902 und D. heutige Stand d. Papierprüfung. Papier-Zeit. 1892. -- ~Mierzinski~, Handb. d. prakt. Papierfabrikation und Anleit. z. Unters. d. in d. Papierfabrik. vorhand. Rohprodukte in ~Hartlebens~ Chem. techn. Biblioth. B. 138-142. -- ~Hoyer~, D. Papier, seine Beschaffenheit u. Prüf. 1882. -- ~E. Kirchner~, Das Papier I, Geschichte d. Papierindustrie 1897. -- ~A. Meyer~, Grundlagen 1901. -- ~Kobert~, Über einige echte gefilzte Papiere des frühen Mittelalters. Zeitschr. Angew. Chem. 1910, 1249. -- ~T. F. Hanausek~ in Real-Enzykl. d. ges. Pharm. VII und IX und Über einige besondere Papierbestandteile in Papierfabrikant 1910. -- ~Wiesner~, Die mikroskop. Unters. d. Papiers mit bes. Berücks. d. ältesten oriental. u. europäisch. Papiere. Mitt. aus d. Samml. d. Papyrus Erzherz. Rainer 1887. Die Geschichte des Papiers in ~Wiesner~, Rohstoffe II, S. 429 -- die bei der modernen Papierfabrikation benutzten Fasern sind ebenda aufgeführt und bei ~von Hoehnel~ a. a. O. =2) Reservezelluloso-Membranindrogen= (+Hemizellulosedrogen+). Die Membranen des Endosperms vieler Samen bestehen aus sog. +Reservezellulose+, die beim Keimen der Samen gelöst wird. Sie erweist sich verdünnten Säuren gegenüber als sehr verschieden resistent. Einige dieser Reservezellulosen lassen sich relativ leicht mit Säuren oder Enzymen hydrolysieren, wie die gemischten Mannane der Samenendosperme der Datteln, Palmkerne, Cocosnüsse, sowie von _Ceratonia_, _Strychnos potatorum_, _Siliqua_ und _Trigonella Foenum graecum_, die sich als vornehmlich aus Galaktomannanen bestehend erwiesen, und die des Endosperms von _Phytelephas macrocarpa_, das viel Fruktomannan enthält -- andere Mannosozellulosen, wie die der Kaffeebohnen, sind Säuren gegenüber sehr resistent. ~Reiss~ fand bei der Hydrolyse Mannose (Seminose) liefernde Reservezellulose bei den Samen von _Phytelephas_, _Phoenix dactylifera_, _Chamaerops humilis_, _Lodoicea Seychellarum_, _Elaëis guineensis_, _Allium Cepa_, _Asparagus_, _Strychnos nux vomica_, _Coffea arabica_, _Foeniculum officinale_. Während echte Zellulose nur Glukose liefert, liefert also die +Reservezellulose+, die sich leichter spalten läßt, andere Hexosen und oft Pentosen. Die bei der Hydrolyse mit verdünnten Mineralsäuren leicht in Lösung gehenden und dabei Galaktose, Mannose, Arabinose und Xylose liefernden Zellulosen nennt ~E. Schulze~ +Hemizellulosen+. Man nennt die Atomgruppen der Hemizellulosen, welche Galaktose oder Mannose, oder Arabinose oder Xylose liefern, Galaktane, Mannane, Arabane oder Xylane. Dementsprechend sind auch die Namen Pentosane und Hexosane gebildet (~Tollens~). Bei der Hydrolyse der Hemizellulosen entstehen die Monosen in so großen Mengen, daß sie zweifellos die Hauptprodukte der Umwandlung sind (~E. Schulze~). Hemizellulosen sind bei 300° in Glycerin löslich, aber nicht immer in Kupferoxydammoniak. ~Euler~ teilt die Hemizellulosen in zwei Gruppen: 1. +Reservezellulose+ in den Samen sowohl bei Monokotylen (Palmen, Liliaceen, Iridaceen), wie bei Dikotylen (Rubiaceen, Oleaceen, Convolvulaceen, Plantagineen, Primulaceen, Sapotaceen, Balsaminaceen, Tropaeolaceen, Ranunculaceen, Leguminosen, Myrtaceen). Die Lösung bei der Keimung bewirkt ein Enzym, die Cytase. Das Ferment führt die Hemizellulosen in verschiedene Zucker über, dadurch werden die aus Reservezellulose bestehenden Zellwände gelöst. Bis jetzt wurden bei der Aufspaltung der Reservezellulose erhalten: d-Mannose, dl-Galaktose, seltener d-Fruktose und d-Glukose. Sie enthalten also Galaktomannane. Die Membranen der Dattel z. B. liefern bei der Keimung durch den Einfluß der Enzyme Galaktose, d-Glukose und d-Mannose (~Grüss~). Die Endosperme der Palmensamen enthalten vorwiegend +Mannane+. Dattelsamen z. B. liefern fast ausschließlich d-Mannose, die Reiss Seminose nannte, wie viele Liliaceensamen, die Samen von _Phytelephas macrocarpa_ Mannose und Fruktose. Die meisten Palmensamen geben auch Galaktose und enthalten daher Mannogalaktane, die sich auch bei _Strychnos_, Umbelliferen, Leguminosensamen (_Ceratonia_, s. d.) finden. Den Namen «Reservezellulose» habe ich 1888 (Angewandte Anatomie S. 171) eingeführt und dort auch ihre Rolle geschildert. Daß die Membranen einiger Samen beim Keimen gelöst werden, stellten zuerst ~Sachs~ (1862 bei der Dattel) und ~Frank~ (1866 bei _Tropaeolum_) fest. 2. +Hemizellulosen+, die nicht den Charakter von Reservezellulose tragen, sondern Gerüstsubstanzen sind (Samenschalen usw.), enthalten vorwiegend Galaktane und Pentosane. Über die Bildung und Auflösung der Reservezellulose äußert sich ~Grüss~ (1896) dahin, daß z. B. beim Dattelsamen zuerst Mannan gebildet wird und dann erst das Galaktan, und daß auch bei der Auflösung gelegentlich der Keimung der eine Bestandteil früher gelöst wird als der andere. ~Grüss~ meint, daß Galaktan und Araban durch die Enzyme nicht sofort in Galaktose und Arabinose, sondern zunächst in gummiartige Körper (Galaktin und Arabin) übergeführt werden (?) und auch als solche wandern können. Die Auflösung der Reservezellulosewände geschieht nach ~Reiss~ (1889) entweder durch Abschmelzen von innen her (_Phoenix_, _Chamaerops_), durch intralamellare Lösung (_Asparagus_), durch intralamellare Verflüssigung (_Foeniculum_), durch intralamellare Lösung mit gleichzeitiger Korrosion (_Allium_, _Cyclamen_), durch Korrosion unter gleichzeitigem Abschmelzen (_Iris_) oder nur durch Korrosion (_Tropaeolum_, _Impatiens_). Auch in Rhizomen, Knollen und Zwiebeln finden sich Mannane als Reservezellulose. Die zu 80% in den Sklerotien von _Pachyma Cocos_ als Membranablagerung vorkommende +Pachymose+ (~Winterstein~), die durch Jodschwefelsäure gelb wird und bei der Hydrolyse Glukose liefert, scheint ebenfalls ein Reservemembranin zu sein. =Lit.= Zahlreiche Arbeiten von ~Tollens~ und seinen Mitarbeitern, sowie von ~E. Schulze~ und seinen Mitarbeitern (~Winterstein~, ~Frankfurt~, ~Schellenberg~, ~Castoro~, ~Godet~ u. and., Verzeichnis in Journ. f. Landwirtsch. 1904) und ~Bourquelot~ et ~Hérissey~ und Mitarbeitern [Journ. ph. chim. 11 u. 12 (1900), Compt. rend. 130 (1900), usw.]. -- ~E. Schulze~, Über die zur Gruppe d. stickstofffreien Extraktstoffe gehörenden Pflanzenbestandt. Journ. f. Landwirtsch. 1904. -- ~Kleiber~, Vers. z. Best. d. Geh. einiger Pflanz. u. Pflanzent. an Zellwandbestandt. Hemizellulosen u. Zellulose. Diss. Zürich. 1900. -- ~Sachs~, Sitzungsber. d. Wien. Akad. 1859. -- ~Tschirch~, Angewandte Pflanzenanatomie. 1888. -- ~Godfrin~, Ann. sc. nat. (6), 19, 1. -- ~Reiss~, Über die Natur der Reservezellulose usw. Landw. Jahrb. 1889 u. Ber. d. d. chem. Ges. 22. 609. Ber. d. d. bot. Ges. 1889. -- ~Green~, Phil. Transact. London 178 (1887), 38. -- ~Brown~ u. ~Morris~, Journ. chem. soc. 1890, 458. -- ~Elfert~, Auflösungsvers. d. sekund. Zellm. d. Samen. Bibl. bot. 30, 1894. -- ~Grüss~, Lös. u. Bild. der aus Hemizellulose bestehenden Zellwände u. ihre Bezieh. z. Gummosis. Bibl. botan. 39, 1896 u. Bot. Zentralbl. 70. -- ~M. Goret~, Et. chim. et physiol. de quelqu. album. cornés de Graines de Légumineuses Thèse. Paris 1901. -- ~E. Schulze~, Ber. d. d. chem. Ges. 24, 2277. -- ~Schellenberg~, Ber. d. d. bot. Ges. 1904, 9 und 1905. -- ~Czapek~, Biochemie (dort auch die Liste der Familien, bei deren Samen Reservezellulose vorkommt). -- Zusammenfassung: ~E. Schulze~ u. ~Ch. Godet~, Unters. über d. in den Pflanzensamen enthalt. Kohlenhydrate. Zeitschr. phys. Chem. 61 (1909), 279. Steinnuß. Vegetabilisches Elfenbein (= Phyt-elephas) -- corozo, morphil végétal, ivoire végétal (franz.) -- yvory nut (engl.) -- tagua, cabeza de negro (port.). Die =Stammpflanze= der Steinnüsse ist =Phytelephas marcocarpa= ~Ruiz~ et ~Pavon~ (Syst. veg. 1798), dann wohl auch: _Ph. microcarpa_ ~Ruiz~ et ~Pav.~ und einige andere Arten (_Ph. Ruizii_, _Ph. Pavonii_ u. and.). Der Kew Index führt 15 Arten auf. ~Drude~ sagt: wenigstens drei. =Systemat. Stellung.= Palmae-Phytelephantinae (Palmae anomalae). ~Robert Brown~ stellt _Phytelephas_ zu den Pandaneen, ~Kunth~ zu den Typhinen, ~Martius~ bildete aus ihnen eine besondere Familie: Phytelephantaceae (Phytelephasieae ~Brongniart~). =Beschreibung.= Die _Phytelephas_arten finden sich im tropischen Südamerika zwischen dem 9° n. B. und 8° s. B., sowie 70-79° w. L., an den Ufern der Ströme und Bäche, an der Küste und in der Bergregion. _Ph. macrocarpa_ bildet einen bis 2 m hohen Stamm; _Ph. microcarpa_ ist stammlos. Die Palme ist diklin-diöcisch. Der Fruchtkolben besteht aus sechs oder mehr aneinander gedrückten, beerenartigen Einzelfrüchten (Syncarpium), die außen hartholzige Protuberanzen zeigen. Jede Frucht hat 4-6 Fächer und ebensoviel Samen. Der Same ist von einer harten, bei den einzelnen Sorten verschiedenfarbigen, oft schwarzbraunen, aber häufig mit einer lehmfarbigen, abreibbaren Schicht (Mesocarprest) bedeckten Steinschale (Endocarp) umgeben, in der ein Keimdeckel sichtbar ist. Bricht man die sehr spröde Schale auf, so sieht man auf der braunen Samenschale ein grobes Netzwerk (Raphenetz). Sägt man den Samen der Länge nach durch, so findet man am einen Ende, etwas seitlich von dem Nabel, in einer konischen, durch einen Deckel geschlossenen Höhlung den kleinen Keimling. Die Hauptmasse des Samens besteht aus dem mehr oder weniger rein-weißen, steinharten Endosperm, das im Innern einen groben Längsspalt oder eine gestreckte Höhlung zeigt, die besonders bei den großen Colon- und Guajaquil-, weniger, bei den kleinen Savanilla- und Tumaco-Sorten hervortritt und die Verwertung der Steinnüsse zur Knopffabrikation sehr beeinträchtigt. Das Endocarp zeigt in der schwarzen Zone Palissadensklereïden, die Kieselkörper enthalten (~Molisch~). Dann folgt eine Zone kleiner Sklereïden und die innerste Schicht besteht aus braunen Inhalt führenden Faserzellen. Die bisweilen abgescheuerte, oben aufsitzende Deckschicht (Mesocarprest) besteht aus netzig verdicktem, luftführendem Parenchym (~T. F. Hanausek~). Die +Samenschale+ besteht aus verschieden langen und verschieden orientierten gestreckten Sklereïden mit braunem Inhalt (Abbild. bei ~Vogl~). Das +Endosperm+ ist steinhart. Seine Zellen sind außerordentlich stark verdickt und zeigen große Porenkanäle, die sich an der Trennungsplatte keulig erweitern. Die Trennungsplatte ist von feinen Plasmafäden durchzogen, die eine offene Kommunikation der Zellen hervorrufen (aggregierte Verbindungen), aber auch die ungetüpfelte Membran ist von feinen Plasmafäden durchzogen (solitäre Verbindungen, Abbild. bei ~Kohl~, Ber. d. d. bot. Ges. 1900, Taf. X). Die primäre Membran sowie die Schichtung der sekundären treten erst beim Behandeln mit Kali hervor. Die Wand wird durch Jod-Schwefelsäure blau. Im Lumen sieht man beim Präparieren in Öl große Aleuronkörner. [Illustration: Fig. 91. Zellen aus dem Endosperm der Samen von _Phytelephas macrocarpa_. [Aus +Tschirch+, Angewandte Anatomie.]] =Chemie.= ~Reiss~ fand in der Steinnuß 11,04 Wasser, 3,1-4,2 Proteïn, 1,51 Fett, durch heißes Wasser extrahierbar (exkl. Zucker) 7,5, Dextrose 0,49, Zellulose 74-75, Asche 1,3%. Bei der Hydrolyse erhielt er einen neuen Zucker, den er +Seminose+ nannte und den ~Emil Fischer~ dann mit der d-Mannose (Rechts-Mannose, vgl. S. 6) identifizierte, die er bei der Oxydation des Mannits neben Fruktose erhalten hatte. Er ist auch identisch mit der Isomannitose, die ~Tollens~ und ~Gans~ bei der Hydrolyse des Salepschleims erhielten, und wohl auch mit der Carubinose. Der +Pentosan+- (nach ~Ivanow~ Araban-)gehalt beträgt 1,29% der Trockensubstanz. Die Seminase der Leguminosensamen vermag die Reservezellulose im _Phytelephas_- (u. and. Palmen-)Samen nicht direkt zu spalten -- wohl aber, wenigstens teilweise, nach 24stündigem Digerieren 60% Schwefelsäure. Die Samen von _Phytelephas_ enthalten ein +Fruktomannan+, das auf einen Teil +d-Fruktose+ (Lävulose) 20 Teile +Mannose+ liefert. ~Ivanow~ fand Hemizellulosen (Hexosane und Pentosane) und zwar 2,16% Pentosane und 1,55% Methylpentosane, viel Mannosezellulose und den dritten Teil davon Dextrosezellulose (?). Die Wände bestehen jedenfalls vorwiegend aus Mannanen. +Mannane+ finden sich in der Reservezellulose der Samen der _Dattel_, von _Ceratonia_ und _Phytelephas_, im _Salep_schleim, in _Cichorium_, _Taraxacum_ und _Helianthus_wurzeln, in _Oliven_, _Äpfeln_, _Bananen_, _Mandeln_ (~Storer~) -- +Galakto-Mannane+ in den Samen von _Ceratonia_, _Foenum graecum_, _Phoenix canariensis_, _Strychnos potatorum_, -- +Gluko-Mannane+ im Samen von _Ruscus aculeatus_ -- +Frukto-Mannane+ (Manno-Fruktosan) in vegetabilischen Elfenbein. ~Storer~ betrachtet das Mannan als einen weitverbreiteten Reservestoff. Das Endosperm von _Phytelephas macrocarpa_ enthält 8,8% Wasser und 5,48% der Trockensubstanz Rohfaser, d. h. durch Schwefelsäure während einer Stunde nicht verzuckerbare Substanz (~Liebscher~). Der +Gesamtstickstoffgehalt+ beträgt nur 0,619% (bei der Erdnuß: 8,132%, ~Stutzer~), davon unverdaulich 0,082%, der +Rohproteïngehalt+ 7,31% (~Formenti~, beim Dattelsamen 4,4%, ~Georges~). Nach ~Liebscher~ soll in den _Phytelephas_samen ein Alkaloid, +Phytelephantin+, vorkommen. ~Méhu~ gibt Zucker (in den frischen Samen Rohrzucker) als Bestandteil an und den Eiweißgehalt auf 1,165-1,51%. Die Asche beträgt bei _Phytelephas_ 1,40 (1,70 ~Holdefleiss~), bei der _Tahitinuß_ (s. d.) 2,62% (~Harz~). Die Asche enthält 33,58% SiO₂. Die Steinschale gibt 14,6% Asche, vorwiegend aus Kieselsäure bestehend (~Méhu~). Nach ~Harz~ besitzen die Samen von _Phytelephas_ eine Härte von 2,6, die Tahitinuß (s. weiter hinten) von 2,82 (tierisches Elfenbein 2,8, _Areca Catechu_ 2,3). =Handel.= Die Steinnüsse bilden einen bedeutenden Exportartikel des Magdalenenstromgebietes. Die Steinnüsse werden besonders aus Guajaquil und Manta (Ecuador) via Magellan oder Colon in Säcken von 100 kg exportiert. Columbien liefert die Corozos de Savanille. +Handelssorten+ (nach ~Jos. Moeller~): +Marcellino+, walnußgroß, c. 23 g schwer. +Panama+, größer, c. 53 g. +Tumaco+, von San Lorenzo, von Kugelausschnittform, Gew. 70 g. +Palmyra+, Kern graubläulich. +Carthagena+, 50-55 g schwer, Steinschale dunkelschwarzbraun. +Guajaquil+, Steinschale lehmfarbig, c. 45 g schwer. +Esmeralda+, kaffeebraun, Kern gelblich oder bläulich-weiß, Gew. 80 g. +Colon+, Gew. 80 g. +Amazonas+, taubeneigroß, Gew. 35 g, Kern elfenbeinweiß. +Savanilla+ in vier Sorten (vgl. +Wiesners+ Rohstoffe II, 691). Der Großhandel unterscheidet besonders zwischen +Guajaquil+ mit kleinem Spalt, 1000 geschälte Samen gehen auf 95-100 kg, und +Savanilla+ mit großem Spalt, 1000 auf 5,5-7,5 kg (~Planchon~). Meist werden sie in der Steinschale (en coque) versandt. Die eine Hälfte des europäischen Bedarfes importiert Hamburg, die andere Le Havre und Genua. Hamburg importierte 1908 aus Ecuador (Guajaquil-Manta, Esmeraldas, Tumacos in Columbien) 87950 dz, aus Columbien (Savanilla, Cathagena, Panama und Colon) 30300 dz. =Anwendung.= Die Steinnuß wird in Deutschland, z. B. in Schlesien, dann in Böhmen, Wien, Frankreich und Nordamerika auf Knöpfe verarbeitet. Sie läßt sich färben. Die gemahlenen Abfälle werden zur Fälschung von Gewürzen und Kaffeesurrogaten benutzt. Gemahlene Steinnuß ist 1907 auch als Verfälschung von Mehl (~Voy~, ~Bertarelli~), sowie auch als Verfälschungsmittel des Knochenmehles und Palmkernmehles beobachtet worden (~Harz~) und 1909 als Beimischung des Pulvers der _Sem. strychni_ (~Louis Planchon~ und ~Juillet~). Der Vorschlag von ~Liebscher~ (1885), sie auf Albumin für Färbereizwecke zu verarbeiten, scheint nicht befolgt worden zu sein. Sie geben ein gutes Ausgangsmaterial zur Darstellung von Mannose. =Lit.= Abbild.: ~Tschirch~, Ind. Heil- und Nutzpfl. t. 102 und ~Drude~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. II, 3, 89. -- ~Seemann~, Die Palmen (Deutsch von ~Bolle~). 2. Aufl. 1863. -- ~T. F. Hanausek~ in ~Wiesner~, Rohstoffe und Zeitschr. f. Nahrungsm. Hyg. u. Warenk. 1893, 197. -- ~Morren~ (cit. bei ~Wiesner~, I. Aufl. S. 792. Erste anatom. Beschreibung). -- ~Jos. Moeller~, Mitt. d. k. k. technol. Gewerbemus. Wien 1880. -- ~Kohl~, Ber. d. d. bot. Ges. 1900, 364. -- ~Louis Planchon~ et ~A. Juillet~, Le Corozo, Bull. mens. de l’Acad. d. sc. et lettres. Montpellier 1909 und Encore le Corozo, Bull. de Pharm. de Sud-Est. 1910. -- ~Bertarelli~, Zeitschr. Unters. Nahr. u. Genußm. 1907. -- ~Voy~, Journ. pharm. 1907. -- ~Molisch~, Die Kieselzellen in d. Steinschale der Steinnuß. Zentralorgan f. Warenk. und Technologie 1891, 103. -- Anatom. Abbild. in ~Planchon-Collin~, Drogues simples I, 141. -- ~Vogl~, Nahrungs- u. Genußm. S. 554. -- ~Hanausek-Winton~, Microsc. of technical products p. 412. -- Chem. Lit. s. oben S. 259. Ferner: ~Ivanow~, Über die Kohlehydrate der Steinnußsamen, Journ. f. Landw. 1908, 217; Chem. Zeit. 1908, 32 Rep. 654. -- Ältere Analysen: ~Connell~, Journ. pr. Chem. 1844. -- ~Loges~, Wochenbl. f. Schlesw.-Holst. 1886. -- ~Johnson~, Jahresber. f. Agrikulturchemie 1880, 413. -- ~Holdefleiss~, Landwirt 1879, Nr. 39 und Zentr. Agr. Chem. 1880, 234. -- Dann: ~Reiss~, Über d. Natur d. Reservezellulose u. über ihre Auflösungsweise bei d. Keimung d. Samen. Landw. Jahrb. 1889 und Über d. in d. Samen als Reservestoff abgelagerte Zellulose u. eine daraus erhaltene neue Zuckerart, die Seminose. Ber. d. chem. Ges. 22 (1889), 609. -- ~Emil Fischer~ und ~Hirschberger~, Ber. d. chem. Ges. 22 (1889), 365 u. 1155. -- ~Tollens~ u. ~Gans~, Ber. d. chem. Ges. 21, 2150. -- ~Storer~, Chem. Zentralbl. 1902, 2, 1155. -- ~Mehu~, Jahresb. d. Pharm. 1887, 114. -- ~Harz~, Bot. Zentralbl. 18 (1884). -- ~Wolff~, Aschenanalysen. -- ~Stutzer~, Zeitschr. phys. Chem. 11 (1887), 207. -- ~Formenti~, Chem. Zentralbl. 1902, II, 536. -- ~Liebscher~, Journ. Landw. 33 (1885), 470. Bot. Jahresber. 1885, 84. -- ~Baker~ u. ~Pope~, Proc. chem. soc. 16 (1900), 72. -- ~Liénard~, Et. d. hydrates de carbone de réserv. d. quelqu. graines d. Palmiers. Thèse Paris 1903. Unter dem Namen =Tahiti-= oder =Fidschinüsse=, Australische und Wassernüsse kommen, übrigens weder von Tahiti noch von anderen Freundschaftsinseln, sondern von den Karolinen und Salomonsinseln, seit 1876 zu dem gleichen Zwecke die ebenfalls steinharten Samen einer anderen Palme in den Handel, welche Palme ~Wendland~, ohne sie zu kennen, _Sagus amicarum_, ~Dingler~ _Coelococcus carolinensis_ ~Dingl.~ nannte. ~Warburg~ stellte dann fest, daß außer dieser Palme auch _Coelococcus salomonensis_ ~Warb.~ Tahitinüsse liefert, und nach ~Louis Planchon~ kommen auch die Samen von _C. vitiensis_ ~H. Wendl.~ in den Handel. Die Carolinennuß ist glatt und glänzend, die Salomonsnuß ist dunkelrotbraun und matt und zeigt zehn meridional verlaufende Wülste. Der Same von _C. carolinensis_ ist 4-6 cm hoch und 5,5-8 cm breit, der Same von _C. salomonensis_ 4,5-5 cm hoch und 5,5-7 cm breit, der Same von _C. vitiensis_ 3 cm hoch und 4 cm breit (~Warburg~). Die Tahitinüsse sind die bisweilen über 200 g schweren kugeligen Samen der Pflanze, die namentlich dadurch ausgezeichnet sind, daß sie nach dem Durchsägen in der Längsrichtung becherartig erscheinen. Der Keimling liegt an der Außenseite mehr oder weniger exzentrisch. Die Keimhöhlung ist durch einen Deckel verschlossen. Der anatomische Bau des Endosperms der Tahiti-Steinnuß ist dem der _Phytelephas_-Steinnuß ähnlich, doch treten die Zellkonturen hier deutlich hervor und im Inhalt der Zellen finden sich prismatische Oxalatkristalle (~Hanausek~). Man kann aus den Tahitinüssen größere Objekte drechseln, als aus den amerikanischen Steinnüssen. Hamburg importierte 1907: 5000, 1908: 4150 dz australische Steinnüsse. =Lit.= ~Wendland~, Bonplandia 1862. -- ~T. F. Hanausek~ in ~Wiesners~ Rohstoffen. II. Aufl., Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1880, 360 und Zur Anatomie d. Tahitinuß, Zeitschr. f. Nahrungsmittel-Unters. 1893, 197. -- ~Dingler~, Bot. Zentralbl. 1887. -- ~Warburg~, Verbreit., System. u. Verwert. d. polynes. Steinnußpalmen. Ber. d. d. bot. Ges. 1896, 133. -- ~L. Planchon~ et ~Juillet~, Encore le Corozo, Bull. de Pharm. Sud-Est. 1910. 3) =Lichenino-Membranindrogen= (inkl. Amyloid-Membranine). Durch Jod sich direkt blau färbende Membranine. Der Name +Amyloid+ wurde 1844 von ~Vogel~ und ~Schleiden~ für die mit Jod sich direkt blau färbenden Membranen einiger Endosperme angewendet. +Amyloid+ findet sich in den Cotyledonen der Samen von _Hymenaea Courbaril_, _Tamarindus indica_ u. a. und in den Endospermen der Samen von Primulaceen, Tropaeolaceen, Linaceen, z. B. in _Primula_, _Impatiens_, _Tropaeolum_, _Cyclamen_, _Linum_ u. and., und _Paeonia_. Amyloid liefert bei der Hydrolyse +keine+ Mannose (~Reiss~). Es läßt sich mit kochendem Wasser extrahieren. Es liefert Glukosen (Galaktose) und Pentosen. Es enthält reichlich ein Galaktoaraban (~Winterstein~). Auch +ein in den Essigbakterien gefundenes Kohlehydrat+ gibt Amyloidreaktion (~Beijerinck~), sowie das Amylomycin einiger Hyphenwände. Bei längerer Berührung mit konz. Schwefelsäure (oder HCl) oder dreistündigem Kochen mit Wasser bei 20 Atmosphären Druck, geht Zellulose in +Hydrozellulose+ über, die identisch sein soll mit dem +Amyloid+ genannten Körper, den man erhält, wenn man Zellulose in 30 Teilen Schwefelsäure (4 H₂SO₄.1 H₂O) löst und mit Wasser fällt, aber nicht mit dem in den Membranen einiger Pflanzensamen (_Paeonia_, _Linum_) vorkommenden Amyloid, mit dem es nur die Eigenschaft teilt sich +mit Jod direkt blau zu färben+, von dem es sich aber dadurch unterscheidet, daß Hydrozellulose bei der Hydrolyse glatt d-Glukose liefert, währenddem die die genannten Membranen bildenden Substanzen dabei Galaktose, Glukose und Xylose (keine Mannose) liefern, also zu den Hemizellulosen gehören. Das =Pergamentpapier=, das ja durch Einwirkung von Schwefelsäure auf Zellulosepapier dargestellt wird, färbt sich mit Jod direkt blau. Einen Amyloid genannten Körper (diffus und in Körnern) fand ~Virchow~ in degenerierter Leber, Milz, Niere, Lunge, Gehirn. Es wird mit Jod oder Jod-Schwefelsäure blau, enthält aber Stickstoff (~W. Kühne~, ~C. Schmidt~). Es scheint den Eiweißstoffen näher zu stehen als der Stärke (~Friedreich~) oder gar nicht zu den Polysacchariden zu gehören. Auch sonst scheint es bei Tieren vorzukommen, wie die Lerpmanna (s. d.) zeigt. =Lit.= ~Vogel~ und ~Schleiden~, Beitr. z. Botanik 1844, I, Poggend. Ann. 1839, Flora 1840. -- ~Frank~, Journ. pr. Chem. 95, 479. -- ~Kabsch~, Pringsh. Jahrb. III. -- ~Nägeli~, Botan. Mitteil. I und Stärkekörner. -- ~Tschirch~, Anatomie S. 173. -- ~Heinricher~, Flora 1888, 163. -- ~Winterstein~, Zeitschr. phys. Chem. 17 (1892), 353, Ber. d. chem. Ges. 25 (1892), 1237. -- +Derselbe+, Über das pflanzliche Amyloid. Zeitschr. phys. Chem. 17, 353. -- ~Reiss~, Ber. d. chem. Ges. 24, 1842, Landw. Jahrb. 18, 761. -- ~Schulze~, Zeitschr. phys. Chem. 19, 38. -- ~Virchow~, Arch. path. Anat. 11, 188. Auch in dem =Lichenin= steckt ein sich mit Jod direkt blau färbender Körper. Wie die mikroskopische Untersuchung lehrt, gehört das +Lichenin+ zu den Membraninen. Es bildet die Substanz der Hyphenwände gewisser Schichten des Flechtenthallus, besonders des isländischen Moos. Man gibt ihm gewöhnlich die Formel (C₆H₁₀O₅)ₙ. Das durch Jod sich gelb färbende Lichenin wird im _Lich. islandicus_ begleitet von +Dextrolichenin+ (+Isolichenin+, ~Errera~, ~Hoenig~, ~Schubert~). +Nur dies reagiert mit blauer Farbe auf Jod+ (daher Flechten- oder Licheninstärke). ~Vogel~ nannte dies «Moos-Amylum» Amyloid. Lichenin ist optisch inaktiv. Dextrolichenin dreht rechts. Das +Lichenin+ läßt sich aus dem _Lichen islandicus_ dadurch darstellen, daß man die mit Alkohol, Äther, schwacher Sodalösung und Salzsäure extrahierte Flechte, nach dem Auswaschen mit kaltem Wasser, mit Wasser auskocht. Die Lösung gesteht zu einer Gallerte, aus der sich durch Alkohol oder Ausfrierenlassen das Lichenin abscheiden läßt. Aus der wässrigen Mutterlauge kann das Dextrolichenin (s. oben) abgeschieden werden. Lichenin löst sich in Kupferoxydammon, Dextrolichenin nicht. Das +Lichenin+ (Flechtenstärke, Moosstärke, Stärkemembran) und das Isolichenin liefern bei der Hydrolyse d-Glukose (nach ~Escombe~ auch d-Galaktose?). =Lit.= ~Bauer~, Journ. pr. Chem. II, 34. -- ~Stenberg~ und ~Klason~, Ber. d. chem. Ges. 19, 2541. -- ~Hönig~ und ~Schubert~, Monatsh. d. Chem. 8, 452. -- ~Errera~, Compt. rend. 101, 253. -- ~Nilson~, Chem. Zentralbl. 93b, 942. -- ~Escombe~, Zeitschr. phys. Chem. 22. -- ~Vogel~, Linnaea 15, 63. -- ~Tschirch~, Artikel Flechtenstärke in Realenzyklop. d. Pharm. V, 366. Wohl mit dem Lichenin identisch, jedenfalls mit ihm verwandt, ist die durch Jod sich blau färbende Substanz der Apothecien der Flechten. Mit dem Lichenin verwandt, aber wohl nicht damit identisch, sind die ebenfalls in kochendem Wasser löslichen +Everniin+ (in _Evernia Prunastri_ ~Stüde~) und das +Usneïn+ (in _Usnea barbata_), die bei der Hydrolyse Glukose liefern. Usneïn dreht rechts und wird durch Jodschwefelsäure rotviolett. Nach ~Ulander~ und ~Tollens~ enthält die Cetrariagruppe Lichenine, die Cladoniagruppe ist frei davon, liefert also keine wasserlöslichen Membranine. Sie gibt bei der (schwierigen) Hydrolyse d-Mannose und d-Galaktose neben etwas Glukose, sowie Pentosen und Methylpentosen. =Lit.= ~Ulander~ und ~Tollens~, Ber. d. d. chem. Ges. 39, 401. -- ~Stüde~, Lieb. Ann. 131. Lichen islandicus. =Syn.= Fucus islandicus, Muscus catharticus, Isländisch Moos, Lungenmoos, Haideflechte, Kramperltee, Tartschenflechte -- lichene ou mousse d’Islande (franz.) -- iceland moss (engl.) -- lichene islandico (ital.) -- ijslandsmos (holl.) -- islannin jäkälä (fin.) -- izlandizuzmo (ung.) -- λειχὴν ὁ ἰσλανδικός (n.-griech.). =Etym.= Isländisch Moos, obwohl weder ein Moos noch aus Island exportiert (kommt aber in Island vor). Mos, mossa (mosi, mus) ist der skandinavische Ausdruck für alle laubigen Kryptogamen, nicht nur für die Moose (~Jenssen-Tusch~, Nordiske Plantenavne. Kopenhagen 1867). =Stammpflanze.= =Cetraria islandica= ~Acharius~ Method. 293 (Lichen islandicus L. [Flor. suec. 1085, Spec. pl. 1611], Physcia islandica ~P. Dc.~, Parmelia islandica ~Sprengel~, Lobaria islandica ~Hoffm.~). Bisweilen werden var. _crispa_ ~Ach.~ mit schmalen, verbogen-krausen Thalluslappen, var. _subtubulosa_ ~Fr.~ durch zusammengeneigte Thallusränder röhrig und var. _platyna_ ~Ach.~ mit breitem, flachem Thallus unterschieden. Auch andere Varietäten sind bekannt. =Systemat. Stellung.= +Lichenes.+ Ascolichenes -- Parmeliaceae. =Etym.= Cetraria ist aus cetra, dem kleinen, leichten, runden Lederschild des römischen Fußvolkes, gebildet und spielt auf die runden schildförmigen Apothecien an. =Beschreibung.= _Cetraria islandica_ gehört zu den heteromeren, gymnocarpen Strauchflechten (Thamnoblasti). Es handelt sich hier um eine eigenartige Symbiose vom Charakter eines parasitären Konsortiums zwischen einem Discomyceten und einer Palmellacee (s. unten). Der krause, aufrechte, strauchige Thallus (Thallom, Lager, Laub) ist mittelst kurzer, fadenförmiger Rhizoiden (Rhizinen) am Boden befestigt. Er ist blattartig, vielfach gelappt, aufrecht bis aufsteigend (Fig. 92), beiderseits berindet und kahl, bis 10 cm hoch. Bisweilen sind mehrere Individuen miteinander verwachsen oder verklebt. Am Grunde ist der Thallus verschmälert, rinnenförmig oder fast röhrenförmig und dort oft rötlich gefärbt. Nach oben verbreitert er sich und ist dort wiederholt gabelig oder unregelmäßig gelappt. Im frischen Zustande ist der Thallus häutig-lederig, auf der dem Lichte zugewendeten Seite olivengrün, auf der anderen blaß grün-weißlich oder grau-weißlich mit weißen, oft grubigen Flecken. Getrocknet ist der Thallus knorpelig, oberseits grünlich-braun, unterseits hell bis weiß. Am Rande zeigt der Thallus zahlreiche lange, bisweilen gegabelte, im Querschnitt rundliche Fransen, die an ihrer Spitze je ein +Spermogonium+ tragen, in dem sich zahlreiche, stäbchenförmige Spermatien befinden, die bisweilen durch die terminale Öffnung ausgetreten sind und sich dort bisweilen als ein kleines Häufchen angesammelt haben (Fig. 93). Apothecien finden sich in der Droge selten. Ich habe ganze Zentner von Isländisch Moos durchsucht ohne eins zu finden. (Die im Handel vorkommende Form _Cetraria island. var. crispa_ ~Ach.~ ist stets unfruchtbar, ~Krasser~). Sie sitzen einzeln oder zu zweit am Ende der Thalluslappen, der Oberseite schief angewachsen. Sie messen bis 1 cm in der Breite, sind rundlich oder oval und schildförmig (daher _Cetraria_, s. oben), frisch grünbraun, trocken bisweilen kastanienbraun. Sie besitzen einen niedrigen, bisweilen gekerbten Rand. [Illustration: Fig. 92. _Cetraria islandica._ [Aus +Luerssen+, Med. pharm. Bot.]] [Illustration: Fig. 93. _Cetraria islandica._ Spermogonien, die Spermatien entlassend. [Aus +Luerssen+, Med. pharm. Bot.]] =Lit.= ~Cramer~, Diss. de Lichene Islandico Erlang. 1780. -- ~Olafsen~, Reise durch Island I, 85. -- +Abbild.+ bei ~Nees von Esenbeck~, Plant. med. t. 10, ~Berg-Schmidt~, Atlas t. 159, ~Bentley-Trimen~, Medic. plants t. 302 und ~Luerssen~, Mediz. pharm. Bot. Ältere: ~Plenck~, Icon. t. 744, ~Dill~, Hist. musc. t. 28, Fig. 111, Flor. Dan. t. 155 u. and. =Vorkommen.= Die über die gemäßigte und kalte Zone beider Hemisphären verbreitete Flechte findet sich nur auf der Erde zwischen Moos, Gras und Heidekraut, im Norden in der Ebene, im gemäßigten Klima meist in lichten Gebirgswäldern. Häufig in Europa, Asien (Sibirien), im arktischen Amerika und weiter südlich bis Virginien und Nord-Carolina. In Skandinavien steigt sie bis zum Meeresstrande herab, in den Alpen bis 3260 m (Monte Rosa), ja über 3454 m (~Schröter~), also weit über die Baumgrenze empor. =Pathologie.= Prof. ~Ed. Fischer~ berichtet über die Parasiten: Auf dem Thallus von _Cetraria islandica_ können sich parasitische Ascomyceten ansiedeln, unter denen besonders der Discomycet _Abrothallus Parmeliarum_ (~Sommerf.~) ~Nyl.~ zu nennen ist: Die Fruchtkörper desselben sind zuerst in die Marksubstanz der Flechte eingesenkt und bewirken blasige Wucherungen des Thallus, später brechen sie als rundliche schwarze Fruchtscheiben hervor (siehe ~H. Rehm~, Discomyceten in ~Rabenhorsts~ Kryptogamenflora. Pilze, Abt. III, p. 359). Außerdem wird (in ~Saccardo~ Sylloge) auch der Discomycet _Scutula oxyspora_ ~Karst.~ und der Pyrenomycet _Sphaerulina cetraricola_ (~Nyl.~) ~Karst.~ als auf _Cetraria_ vorkommend angegeben. =Einsammlung und Handel.= Die Flechte wird im Harz, Fichtelgebirge und Riesengebirge, in Niederösterreich, auf dem Schneeberg und der Rax, in den Voralpen (Kant. Bern und Luzern, I, S. 98), in Tirol, Frankreich, Skandinavien und Spanien, sowie in Nordamerika gesammelt. Island scheint nichts zu liefern, jedenfalls nicht regelmäßig zu verschiffen (~Wight~). _Lichen islandicus_ wird in gepreßten Ballen à 120 kg gehandelt. =Lit.= ~Wight~, Pharm. Journ. 17 (1887), 689. -- Pharmacographia. =Anatomie.= Der bis 0,5 mm dicke Thallus zeigt drei Schichten: die Randschicht, die Mittelschicht und die Markschicht. Die Randschicht besteht aus einem lückenlosen pseudoparenchymatischen Gewebe dicht miteinander verflochtener, dickwandiger, kurzer Hyphen (Paraplectenchym, ~Lindau~), deren Wände sich mit Jod nicht oder nur schwach blau färben. Die Mittelschicht besteht aus einer sehr verschieden dicken Schicht, vorwiegend parallel der Oberfläche gestreckter Hyphen mit dicker Wand und engem Lumen. Sie ist es in erster Linie, die sich mit Jod direkt blau färbt und beim Kochen mit Wasser sich löst bzw. in eine Gallerte übergeführt wird. Die Färbung mit Jod, die stets nur an den Wänden auftritt, bleibt auch bei alter Droge nur selten aus, wenn man den Schnitt in Jod-Jodkaliumlösung einlegt und dann mit Wasser auswäscht. Die Mittelschicht ist also die eigentümliche Licheninschicht. Die innerste oder Markschicht besteht aus locker verschlungenen Hyphen (Plectenchym, ~Lindau~), die reichlich Luft zwischen sich lassen, daher meist erst dann deutlich werden, wenn man zum Schnitte Alkohol zutreten läßt. Die Hyphenwände färben sich in dieser Schicht nicht mit Jod. Nur die äußersten Schichten zeigen bisweilen schwache Färbung. Zwischen den Hyphen dieser Markschicht liegen, meist der Mittelschicht genähert, die +Gonidien+, die Algenzellen des Flechtenthallus. Die c. 10-12 mik breiten, rundlichen, bisweilen in Teilung begriffenen Gonidienzellen sind bei der lebenden Flechte grün und enthalten ein fast hohlkugelförmiges Chromatophor, das ein Pyrenoid einschließt, bei der Droge sind sie bräunlichgrün. Sie sind der einzige chlorophyllhaltige Bestandteil der Flechte. Sie sind in größerer Zahl an der morphologischen Oberseite (Lichtseite) des Thallus zu finden, der demnach auch stärker gefärbt erscheint, doch finden sich auch der Unterseite (Schattenseite) genähert stets eine Anzahl Gonidien. Die Verteilung verleiht dem _Cetraria_thallus den Charakter eines heteromeren Flechtenthallus (bei den homöomeren sind die Gonidien über den ganzen Thallus verteilt). Die Gonidien gehören zu der Protococcaceen- (Palmellaceen-Gattung), _Chlorococcum humicola_ (_Cystococcus humicola_ ~Naeg.~), die auch freilebend auf Baumstämmen und andere Flechten bildend bekannt ist. In den blasigen weißen Flecken, welche der Unterseite ein so charakteristisches Aussehn verleihen, finden sich luftreiche Wucherungen des Markes, die die Rindenschichten blasig hervorwölben und schließlich sogar aufsprengen, so daß das Mark da und dort zutage tritt. Da das hervortretende Hyphengewebe Gonidien mitnimmt, haben wir diese Bildungen als +Soredien+ anzusehen. Die abgeschnürten Knäuel bilden die ungeschlechtliche Fortpflanzungsform der Flechte. (Es sind nicht Cetrarinablagerungen wie ~Knop~ meinte.) Die +Spermogonien+ bilden ovale Höhlungen an der Spitze der Randfransen. Sie sind ausgekleidet mit einer dichten Schicht gegliederter schwach verästelter zarter Hyphen, die in Basidien auslaufen, welche die stäbchenförmigen, c. 6 mik langen +Spermatien+ (s. oben) abschnüren. Früher hielt man die Spermatien für die männlichen Organe. Jetzt weiß man nur, daß ihnen diese Bedeutung nicht zukommt. Vielleicht sind die Spermogonien funktionslos gewordene (männliche?) Organe. Die Spermatien vermögen auszutreiben und ein neues Mycel zu erzeugen. Die +Apothecien+ zeigen ein stark entwickeltes Hymenium mit zahlreichen Ascis. Der flechtenbildende Pilz, der sich zu einer bestimmten Gattung nicht stellen läßt, ist ein +Discomycet+. Die keulenförmigen Asci mit 6-8 ovalen Ascosporen werden von den Paraphysen überragt. Die Wand der Asci, bisweilen auch die der Hyphen des Hypotheciums, färben sich mit Jod blau (enthalten also auch Lichenin), die Paraphysen gelb oder gelbbräunlich. =Lit.= ~Payen~, Compt. rend. 1837, 145. -- ~Pereira~, Heilmittellehre. -- ~Vogel~ a. a. O. -- ~Knop~, Chem. Zentralbl. 1872, 173. -- ~Luerssen~, Med. pharm. Botan. I, 223. Abbild. auch in ~Oudemans~ Atlas 1854 (erste anatom. Abbild.), ~Berg~, Anatom. Atlas t. II, 4 und ~Hérail-Bonnet~, Manipulat. t. 36. -- ~Stahl~, Beitr. z. Entwicklungsgesch. d. Flechten. Leipzig 1877. -- ~Tschirch~, Artikel Lichen islandicus in Realenzykl. d. Pharmac. =Chemie.= Isländisch Moos enthält eine gallertebildende Substanz und einen Bitterstoff, der sich durch Extraktion mit schwachen Alkalicarbonatlösungen entfernen läßt (L. i. ab amaritate liberatus). «Man hat es daher in der Hand, aus der Droge ein Amarum purum, ein Amarum mucilaginosum oder (aus der entbitterten Droge) ein Nutriens mucilaginosum darzustellen» (~Jos. Moeller~, 1906). +Den Gallerte bildenden Stoff+ isolierte bereits ~Ebeling~ (1779), ~Cramer~ (1780) und ~Proust~, sowie ~Pfaff~ (1808) in unreiner Form und ~Proust~ erkannte schon seine Eigenart. ~Pfaff~ bemerkt, daß der Cetrariaschleim, von dem er 33% erhielt, am meisten mit der Stärke übereinkomme, obwohl er die Jodreaktion noch nicht kennen konnte, da das Jod noch gar nicht entdeckt war. ~John~ scheint ihn 1821 für Inulin gehalten zu haben. ~Berzelius~, der (neben 36,2% stärkeartigem Skelett) 44,6% Gummi und Moosstärke (laf stärkelse) erhielt, nannte den Stoff, der die Gallerte liefert, zunächst Moosstärke, dann +Lichenin+ oder +Flechtenstärke+. ~Payen~ glaubte mit Jod sich bläuende Körnchen zu sehen, aber bereits ~Pereira~ fand keine stärkeähnliche Körner und so scheint bereits ihm klar gewesen zu sein, daß es hier die Membran ist, die sich mit Jod bläut. Lichenin ist +nur+ in den Membranen enthalten (~Tschirch~), nicht, wie ~Knop~ und ~Schnedermann~ meinten, im Inhalt und zwischen den Hyphen. Die Wände der Hyphen von _Cetraria islandica_ scheinen kein Chitin zu enthalten (~Escombe~, ~Wester~). ~Hoppe Seyler~ und ~Tanret~ hatten es als darin vorkommend angegeben. ~Th. Berg~ fand 1872, daß das Lichenin aus zwei Isomeren der Formel C₆H₁₀O₅ besteht. Er nennt den in kalten Wasser löslichen, aber nicht durch kaltes Wasser aus der Flechte ausziehbaren jodbläuenden Stoff, der 10-11,5% der Flechte beträgt, «+wahre Flechtenstärke+» -- jetzt (nach ~Flückigers~ Vorschlag) als +Dextrolichenin+ bezeichnet --, den in kaltem Wasser unlöslichen, durch Jod nicht gebläuten, der 20% ausmacht, +Lichenin+. Der letztere scheidet sich aus der Abkochung der Flechte beim Erkalten als Gallerte ab. ~Berg~ gab beiden die Formel (C₆H₁₀O₅)ₙ. Die Hydrolyse mit Mineralsäuren lieferte ihm aus beiden gärungsfähigen Zucker. Diastatische Fermente verzuckern nicht. Lichenin (s. oben, S. 263) bildet eine Gallerte, aber keinen bindenden Kleister. Es liefert mit Salpetersäure Oxalsäure (+nicht+ Schleimsäure). Das durch Auskochen mit Wasser, Fällen mit Alkohol usw. gewonnene Lichenin ist optisch inaktiv und liefert bei der Hydrolyse mit verd. Schwefelsäure d-Glukose. Die Kohlehydrate der _Cetraria islandica_ betragen im ganzen 80%. Sie bestehen etwa zur Hälfte aus dem in heißem Wasser löslichen Lichenin. Die in Wasser unlöslichen Kohlehydrate sind +Hemizellulosen+, die Dextrane, Mannane und Galaktane und etwa 3% Pentosane, sowie ein wenig echte Zellulose (?) enthalten. Werden nämlich die wasserlöslichen Kohlehydrate durch Auskochen entfernt, so bleibt ein Rückstand, der bei der Hydrolyse viel d-Glukose und daneben weniger d-Mannose und d-Galaktose und etwas Pentosen und Methylpentosen liefert (~Ulander~ und ~Tollens~). Selbst durch anhaltendes Kochen ist man aber nicht imstande, dem unlöslichen Rückstande ganz die Eigenschaft zu nehmen, sich durch Jod blau zu färben (~Pereira~). Entbittertes, d. h. von der +Cetrarsäure+ befreites +Isländ. Moos+, enthält: N-freie Extraktivstoffe, Lichenin usw. 79,2%, N-haltige Stoffe 2,81%, Rohfett 0,4%, Rohfaser 4,6%, Asche 6,99% (~Hansteen~). Zu Brot verbacken wurden 50% der Flechtenkohlehydrate vom Körper resorbiert und verbrannt. ~Poulson~ empfiehlt es als Nahrungsmittel für Diabetiker. Es gelingt, bis 70% gallertbildende Stoffe aus _Cetraria islandica_ durch Auskochen darzustellen, die im Verhältnis 1 : 20 eine steife Gallerte bilden (~Flückiger~). Bereits ~John~ erkannte (1821) +den Bitterstoff+ als einen eigentümlichen Bestandteil. ~Berzelius~ und besonders ~Rigatelli~ stellten die Substanz dann dar und einige Zeit spielte «~Rigatellis~ Salz» (unreines Cetrarin) als Fiebermittel in Italien eine Rolle. ~Herberger~ isolierte den Bitterstoff (1837) in reinerer Form und nannte ihn +Cetrarin+ (Moosbitter). Diese Forscher benutzten Alkohol als Extraktionsmittel. Doch wußte bereits ~Berzelius~, daß man Isländisch Moos mit Pottasche entbittern kann. ~Schnedermann~ und ~Knop~, die sich ebenso wie ~Payen~ der Alkalien zur Extraktion bedienten, erhielten (1845) das Cetrarin kristallinisch in Form intensiv bitter schmeckender Nadeln, erkannten seine Säurenatur und nannten es +Cetrarsäure+. Sie gaben ihm die Formel C₃₄H₃₂O₁₅ (resp. C₁₈H₁₆O₈); ~Hilger~ und ~Buchner~ formulierten C₃₀H₃₀O₁₂. +Cetrarsäure+, nach ~Simon~: C₂₀H₁₈O₉, ist zu etwa 2-3% (nach ~Simon~ +sicher+) in der Flechte +vorgebildet+ enthalten neben +Fumarsäure+ (~Simon~) und +Protocetrarsäure+ (~Hesse~). Cetrarsäure reduziert Fehlingsche Lösung in der Wärme, löst sich sehr wenig in siedendem Wasser, leicht in Alkalien und Alkalikarbonaten. Auch die Salze schmecken sehr bitter. Wird die Lösung in alkoholischer Salzsäure einige Stunden gekocht, so färbt sie sich erst gelb, dann grünlich, rötlich fluoreszierend, violettrot und endlich blau (~Simon~), eine sehr charakteristische Reaktion. Bei der Spaltung mit Natronlauge und Zinkstaub entsteht Orcin (Zopf) und 1,2-Dimethylphendiol-3,5 (~Simon~): CH₃ /\\ CH₃ / \\ H || | || | OH \ // OH \// H Cetrarsäure ist nach Simon methoxylhaltig und enthält wohl neben einem Carbonyl ein Carboxyl und ein Hydroxyl, jedenfalls zwei durch Metalle vertretbare Wasserstoffatome. Sie ist vielleicht der Methyläther von ~Hesses~ Protocetrarsäure. ~Hesse~ betrachtete sie früher fälschlich als Triäthylprotocetrarsäure (C₅₄H₃₁O₂₄(OC₂H₅)₃). ~Zopf~ und ~Hesse~ sind entgegen der oben vertretenen Auffassung der Ansicht, daß Cetrarsäure in der Flechte nicht vorgebildet ist, sondern erst aus der Fumar-Protocetrarsäure bei der Extraktion entsteht. Diese Ansicht teilt ~Simon~ nicht. Die blaugrüne bis blaue Färbung durch Salzsäure-Alkohol (s. oben) kommt außer der Cetrarsäure auch anderen Flechtensäuren, wie der Protocetrarsäure, Ramalinsäure (wohl identisch mit Protocetrarsäure), Kullensissäure, Caprarsäure und Physodalsäure zu, die alle ebenfalls bitter schmecken (vgl. ~Zopf~, Die Flechtenstoffe). Auch +Protocetrarsäure+ (C₁₈H₁₄O₉ oder C₁₉H₁₆O₉) und +Fumarprotocetrarsäure+ (Cetrarsäure ~Zopf~ = 2(C₄H₄O₄). C₅₄H₄₂O₂₇) werden als vorgebildete Bestandteile der _Cetraria islandica_ angegeben (~Zopf~, ~Hesse~, ~Simon~). Bereits ~Berzelius~ gab an, eine Lichensäure in der Flechte gefunden zu haben (an Kalk und Kali gebunden). Später strich er diese wieder und erklärte sie, als +Fumarsäure+ gefunden wurde, mit dieser identisch. (~Pfaffs~ Flechtensäure ist von ~Demarçay~ und ~Schröder~ als Fumarsäure erkannt worden). Vielleicht hatte er aber die +Lichesterinsäure+ in Händen, die zuerst von ~Schnedermann~ und ~Knop~ in Kristallen in einer Ausbeute von 1% isoliert worden war. Sie gaben ihr die Formel C₂₉H₂₅O₅ (~Strecker~: C₁₄H₂₄O₃, ~Hilger~ und ~Buchner~: C₄₃H₇₆O₁₃, ~O. Hesse~: C₁₇H₂₈O₄, später C₁₈H₃₀O₅, noch später C₁₈H₃₀O₄), die dann ~Sinnhold~ in C₁₉H₃₂O₄ umwandelte, welche Formel ~R. Böhme~ adoptierte und in: COOH | C₁₄H₂₇--CH--CH₂--CH--CO | | -------------O auflöste. Diese Lichesterinsäure soll aber in _Cetraria islandica_ nicht vorgebildet sein (~Zopf~, ~Hesse~). ~Zopf~ und ~O. Hesse~ isolierten nämlich als angeblich wahre Bestandteile +Proto-α-Lichesterinsäure+ C₁₈H₃₀O₅, F. 106-107 und +Proto-Lichesterinsäure+ (C₁₉H₃₂O₄ ~Zopf~ oder C₁₈H₃₀O₄ ~Hesse~). Wohl isomer mit letzterer ist die oben erwähnte +Lichesterinsäure+, die aber, wie gesagt, in der Flechte nicht vorgebildet sein, sondern erst beim Kochen mit Alkohol aus der Protolichesterinsäure entstehen soll. Auch +α-Lichesterinsäure+ (C₁₈H₃₀O₅) soll in der Flechte nicht vorgebildet sein, sondern aus der Proto-+-Lichesterinsäure beim Kochen mit Alkohol entstehen. ~R. Böhme~ ist jedoch der Ansicht, daß es nur +eine+ Lichesterinsäure (F = 124-125°) gibt. Seine Lichesterinsäure gab beim Kochen mit Alkali +Lichesterylsäure+ (~Sinnhold~): C₁₄H₂₇--CH--CH₂--CH₂--COOH | OH und beim Behandeln mit Jodwasserstoff und Reduktion λ-Iso-Stearinsäure (C₁₈H₃₆O₂) und einen gesättigten Kohlenwasserstoff. ~Hilger~ und ~Buchner~ erhielten bei der Oxydation Caprinsäure. Ferner ist in einer Varietät der _Cetraria islandica_ eine +Paralichesterinsäure+ (C₂₀H₃₄O₅) in sehr kleiner Menge gefunden worden (~Hesse~). Was ~Hesse~ als β- und γ-Lichesterinsäure beschrieb, muß (nach ~Hesse~) gestrichen werden; ebenso Hesses Dilichesterinsäure. _Cetraria islandica_ aus Vorarlberg enthielt 0,62% Proto-α-Lichesterinsäure; die Flechte aus Tirol ein Gemisch dieser Säure mit Protolichesterinsäure. Regelmäßig war bei Exemplaren verschiedenster Provenienz +Cetrarsäure+ vorhanden. _Cetraria islandica_ erzeugt Fumarprotocetrarsäure wie Protolichesterinsäure sowohl in Mitteldeutschland wie in Süddeutschland und den Alpen, auf Kalk sowohl wie auf Urgestein (~Zopf~). Ferner werden +Oxalsäure+ und +Weinsäure+ (?) angegeben (Pharmacographia). Bereits ~Berzelius~ fand +Blattgrün+ in der Flechte. Obwohl ~Knop~ und ~Schnedermann~ angeben, daß ihr +Thallochlor+ vom Chlorophyll abweiche, ist es doch wohl nichts anderes. Die Unterschiede rühren von Verunreinigungen her. Mit gespanntem Wasserdampf destilliert gibt _Cetraria islandica_ 0,051% +ätherisches Öl+, das beim Stehen Kristalle abscheidet, bald rechtsdrehend, bald inaktiv ist und ein spezifisches Gewicht von 0,8765 besitzt (~Haensel~). Der Aschengehalt beträgt 1 bis 2% (nach ~Hauke~ 1-1,4%). ~Wittstein~ verglich die +Asche+ der _Cetraria_ mit der Zusammensetzung des Bodens, auf dem sie wuchs. Er fand in der Asche 43,2% Kieselsäure, 13,2% Kali und 13,7% Kalkerde. Sie enthält auch 4% Aluminium. In der lufttrockenen Flechte findet sich 0,0198% Eisen (in der frischen: 0,0176%). Sie enthält also mehr Eisen als z. B. Spinat (~Baldoni~). =Lit.= Ältere Analysen von ~Proust~, ~Ebeling~, ~Cramer~, ~Trommsdorff~, ~Crell~ (vgl. ~Murray~, Appar. medic. 1790, V, 499, und ~Schwartze~, Pharmakolog. Tabellen 1819). -- ~Pfaff~, Syst. d. Mat. med. 1808, II, 75. -- ~John~, chem. Schriften 5 (1821), S. 41. -- ~Berzelius~, Schweig. Journ. 7 (1813), 342 (Analyse abgedruckt in Lehrb. d. Chemie 1838, VII, 446). -- ~Guérin-Varry~, Ann. Chem. Phys. 56. -- ~Mulder~, Journ. prakt. Chem. 15 und Lieb. Ann. 28, 279. -- ~Payen~, Ann. sc. nat. (bot.) 14. -- ~Pereira~, Heilmittellehre (d. von ~Buchheim~). -- ~Davidsohn~, Journ. pr. Chem. 20. -- ~Schmidt~, Lieb. Ann. 51. -- ~Maschke~, Journ. pr. Chem. 61. -- ~Herberger~, Über d. Bitterstoff d. isländ. Flechte (Cetrarin, Moosbitter), Buchn. Rep. 36 (1830), 226 u. 56 (1836), 273. Über das Cetrarin, Lieb. Ann. 21 (1837), 137. -- ~Schnedermann~ und ~Knop~, Lieb. Ann. 54, 143 und 55 (1845), 144 (Jahresber. d. Pharm. 1845, 13). -- ~Stenberg~, Oefvers. Akad. Forb. 1868. Pharm. Jahresb. 1868, 31. -- ~Th. Berg~, Zur Kenntnis des in Cetraria islandica vorkommenden Lichenins u. jodbläuenden Stoffes. Diss. Dorpat 1872 und Pharm. Zeitschr. f. Rußl. XII (1873), 129; Journ. pr. Chem. 1873, 848; Ref. in Pharm. Jahresb. 1873, 19. -- ~Wittstein~, Schweiz. Zeitschr. f. Pharm. VII (1862), 237. -- ~Weigelt~, Journ. pr. Chem. 1869, 106 u. 193. -- ~Billey~, Lieb. Ann. 86. -- ~Flückiger~, Arch. Pharm. 196 (1871), 14. -- ~Stenberg~ und ~Klason~, Ber. d. d. chem. Ges. (19) 1886, 2541. -- ~Errera~, Dissert. Brüssel 1882. -- ~Bauer~, Arch. Pharm. 224 (1886), 803. -- ~Hönig~ u. ~Schubert~, Monatsh. f. Chem. 8 (1887), 452. -- ~Hilger~ u. ~Buchner~, Chem. Charakt. d. Bestandt. d. isländ. Mooses. Ber. d. d. chem. Ges. 23 (1890), 461. -- ~Sinnhold~, Lichesterinsäure. Arch. Pharm. 236 (1898), 504. -- ~O. Hesse~, Journ. pr. Chem. 57 u. 58 (1898), 62 (1900), 68 (1903), 70 (1904), 73 (1906), 113; 76 (1907) 1. -- ~Zopf~, Lieb. Ann. 300, 323 u. 324 (1902). -- ~Guesdon~, Lichen d’Islande. Journ. pharm. 1901, 373. -- ~Tschirch~, Artikel Lichen islandicus und Cetraria in Realenzykl. d. Ges. Pharm. VI, 286. -- ~Simon~, Cetrarsäure. Arch. d. Pharm. 240 (1902), 521 und 244 (1906), 459. -- ~R. Böhme~, Lichesterinsäure. Arch. Pharm. 241 (1903), 1. -- ~Hänsel~, Bericht 1903. -- ~Hansteen~, Chem. Zeit. 30 (1906), 638. -- ~Ulander~ und ~Tollens~, Ber. d. d. chem. Ges. 39 (1906), 401. -- ~Poulson~ (Nord. Tidskr. of terapi 1908). Pharm. Zentralh. 1908, 208. -- ~Zopf~, Die Flechtenstoffe. Jena 1907. -- ~Hauke~, Aschengehalte. Wien 1902. -- ~Baldoni~, Arch. exp. Path. 52 (1904). =Geruch und Geschmack.= Getrocknetes Isländisch Moos riecht sehr eigenartig (Flechtengeruch!) und schmeckt fade, bitter-schleimig. =Prüfung.= _Cetraria islandica_ darf nicht fremde Pflanzenteile (Moose, Coniferennadeln, andere Flechten) enthalten. Diese sind, wenn vorhanden, durch Auslesen zu entfernen. =Anwendung.= Isländisch Moos wird als Tonicum, Stromachicum, bei Lungenleiden und bei Chlorose empfohlen (s. S. 272). Offenbar ist die Cetrarsäure (Cetrarin) an der tonischen Wirkung des _Lichen islandicus_ beteiligt (~Husemann~, das Cetrarin prüfte auch ~Köhler~ und ~Ramm~). +Cetrarsäure+ ist auch ein mildes Laxans, das die Peristaltik reizt. Sie wurde neuerdings auch als Mittel gegen die Seekrankheit empfohlen. Die alkoholische, Cetrarsäure enthaltende Tinktur besitzt jedenfalls antiemetische Eigenschaften (~Deguy~ und ~Brissemoret~, ~Guesdon~, ~Gigon~). Lichesterinsäure und Protolichesterinsäure besitzen hämolytische Wirkung (~Kobert~). Am meisten hat sich aber die sog. Isländisch-Moos-Pasta (~Engelhardt~), eine aus entbittertem Isländisch Moos dargestellte Gelatine, als den Hustenreiz milderndes Mittel eingebürgert. In Island, wie überhaupt in der arktischen Zone, soll _Cetraria islandica_ noch jetzt als Nahrungsmittel, zu Brot verbacken, oder als Gemüse von der ärmeren Bevölkerung benutzt werden. Jedenfalls ist sie ein gutes Renntierfutter. Für Zeiten der Not empfahl es ~Zimmermann~ 1817, ~Bouchardat~ 1842 entbittertes _Lichen islandicus_ als Nahrungsmittel. Auch neuerdings empfiehlt ~Hansteen~ mit Alkalicarbonaten entbitterte _Cetraria islandica_ gemahlen als Volksnahrungsmittel. Sie enthält ja 79,2% Lichenin u. and. stickstofffreie Extraktivstoffe (_Cetraria nivalis_ sogar 90,2% stickstofffreie Extraktstoffe). Längere Zeit im Kochen erhaltenes Dekokt von _Lich. islandicus_ soll seine Bitterkeit verlieren (?). Durch Tierkohle verliert es nicht nur seine Bitterkeit, sondern auch seine Eigenschaft zu gelatinieren (~Peretti~). _Cetraria islandica_ liefert bei der Säurehydrolyse bis 70, ja sogar 72% der lufttrockenen Substanz gärungsfähigen Zucker. Der Sirup besitzt aber einen unangenehmen Geschmack. Der daraus dargestellte Alkohol riecht angenehm (~Stenberg~). Auf die Tatsache, daß aus _Cetraria_ Zucker gewonnen werden kann, haben ~Stenberg~ und ~Müller~ den Vorschlag gegründet, diese Flechte (und die Renntierflechte), in Gegenden wo sie häufig sind, zur Alkoholgewinnung heranzuziehen. _Cetraria islandica_ und andere Flechten (_Cladonia rangiferina_) werden denn auch zur Darstellung von Alkohol benutzt. Doch soll nicht viel dabei herauskommen (~Schübeler~). Ähnliche Versuche sind in Finland, Petersburg und Archangel gemacht worden (~Flückiger~). =Lit.= ~Fortunatoff~, Arbeit. pharm. Instit. Dorpat 1890. -- ~Guesdon~, Le Lichen d’Islande. Thèse Paris 1901, Journ. de pharm. 1901 (14), 373. -- ~Deguy~ und ~Brissemoret~, Journ. des practiciens 1897. Rep. Pharm. IX, 461. -- Pharm. Journ. 1897, 378. -- ~Gigon~, Mercks Ber. 1905, 50. -- ~Tapie~, Essai sur le Lichen d’Islande (Sep. Abdr.). -- ~Bouchardat~, Bull. gen. de Therap. 1842, 42. -- ~Dragendorff~, Heilpflanzen. -- ~Husemann-Hilger~, Pflanzenstoffe. -- ~Köhler~, Prager Vierteljahrsschr. 120, 49, 1873. -- ~Rigatelli~, Gazz. eclett. 1835 und Pharm. Zentralbl. 1835, 858. -- ~Ramm~, Bittermittel in ~Kobert~ Studien II, 1890. -- ~K. J. Zimmermann~, Über d. isländ. Flechte, als Nahrungsmittel zur Zeit des Mangels und der Not usw. Bamberg 1817. -- Vgl. auch ~Schweiggers~ Journ. d. Chem. VII, 317. -- ~Hansteen~, Nord. Flecht. als Nahrungsm. Chem. Zeit. 1905, 1286 und 1906, 30, 638. -- ~Stenberg~, Jahresb. d. Pharm. 1868 u. 1869. -- ~Peretti~, Jahresb. d. Pharm. 1843, 88. -- ~Schübeler~, Pflanzenwelt Norwegens 1873. Arch. d. Pharm. 1872, 243. -- Über die Renntierflechte und eßbare Flechten vgl. auch ~Krasser~ in ~Wiesner~, Rohstoffe, II. Aufl. -- Über +eßbare Flechten+ vgl. auch ~Senft~, Über einige in Japan verwendete vegetabil. Nahrungsm. usw. Pharm. Praxis 1906 u. 1907. Über +giftige Flechten+: ~Kobert~, Lehrb. d. Intoxikationen. =Geschichte.= Den Alten war das isländische Moos unbekannt. Das, was ~Dioskurides~ λειχὴν, das einige βρῦον nennen (IV. Kap. 53) nennt, ist nach ~Sprengel~ _Peltigera canina_ oder _P. aphthosa_, nach ~Fraas~ _Lecanora Parella_ und des ~Plinius~ (XXVI, 10) +Lichen+ ist wohl _Marchantia polymorpha_, die gleiche Pflanze, die auch ~Fuchs~ unter Lichen abbildet. Ob sich unter einem _Muscus terrestris_ oder _Lichen_ von ~Bauhins~ Pinax (I, S. 855), worunter auch _Lycopodium_ inbegriffen ist, _Lichen islandicus_ verbirgt, ist schwer zu sagen. Ebensowenig vermag ich in einer der in der Pharmacia des ~Corbeius~ (1656) abgehandelten _Muscus_arten das isländische Moos mit Bestimmtheit zu erkennen. Das, was ~Geoffroy~ (Tractatus 1742, vgl. I, S. 946) unter Lichen abhandelt und von dem er eine Analyse mitteilt, war es keinesfalls. ~Krempel-Huber~ ist der Ansicht, daß sich die folgende Stelle in des ~Valerius Cordus~ +Sylva+, in der ~Cordus~ seine Reise nach Schwaben und Böhmen (1542) beschreibt, auf _Cetraria_ bezieht: «Muscus quidam, Crispe lactuce similis, minor et per ambitus leniter aculeatus, cespite latiusculo diffusus, nascitur in Taedacea sylva inter Suetachiam et Lauffam.» Vielleicht ist auch das Lichen in der Pharmakopoëe von Bergamo (1580) isländisch Moos (~Flückiger~) sowie das Lichen der ~Cordus~-Liste (I, S. 800). Eine Abbildung des _Muscus Eryngii folio_ findet sich in ~Breynes~ Miscellanea usw. Nat. Curiosor. III (1672), Nr. 289. Die Namen _Lichen terrestris foliis Eryngii_ (~Buxb.~), _Lichenoides rigidum Eryngii folia referens_ (~Dillen.~) finden sich auch anderwärts. In ~Valentinis~ Museum (I, S. 912) ist die Beschreibung des Lichen, den er ganz richtig zwischen die Lungenflechte und das _Lycopodium_ einreiht, konfus, und die beigegebenen Abbildungen betreffen _Mandragora_, mit der er es verwechselt. Bei ~Pomet~ fehlt _Lich. islandicus_. _Muscus latifolius_ id est _pulmonaria_ (Lungenkraut) in der Brandenburgischen Taxe 1574 ist wohl die Lungenflechte. Denn _Lichen islandicus_ hieß Lichen pulmonarius minor angustifolius spinis tenuissimis ad margines ornatus (~Mich.~ Gen. 83 t. 44 f. 4; auch ~Bartholini~ sagt: «Costis hinc inde spinosis horridulus»). Der _Lichen terrestris cinereus_, den ~Mead~ 1702 gegen Hundswut empfahl, ist wohl ebenfalls eine andere Flechte. Dagegen ist der _Muscus carthaticus islandicus_ des Copenhagener Catalogus 1672 (I, S. 826) Isländisch Moos. Denn 1671 wurde _L. i._ von ~Borrichius~ als Abführmittel empfohlen (in ~Bartholini~ Act. med. Hafn. I, 1671, 126). Die medizinischen Eigenschaften waren zuerst den Isländern bekannt. «Ab Islandis primam virtutis medicae notitiam profectam esse probabile est, qui ipsi in phthisi aliisque quibusdam pectoris morbis lichenem magni faciunt» (~Olafsen~ bei ~Murray~). Auch ~Hiärne~, ~Scopoli~ und ~Schoenheyder~ empfehlen sie gegen Phthise (und Hämoptysis). ~Linné~, der die Pflanze _Lichen islandicus_ taufte (~Bartholini~ nannte sie _Muscus islandicus purgans_), empfahl (1737) ihre Anwendung warm. Er bezeichnet sie in seiner Materia medica als farinacea, eccoprotica, nutriens, hectica, und auch ~Bergius~, der der Droge ein Kapitel in seiner Materia medica 1782 widmet, nennt sie eccoprotica, obwohl ~Olafsen~ die purgierende Wirkung in Abrede stellte. Ende des XVIII. Jahrh. war _L. i._ als Medikament hochgeschätzt. ~Murray~ sagt im Apparatus medicaminum (I, S. 952): «inter praestantissima igitur hodie medicamina splendet» und bespricht eingehend die Anwendung (a. a. O. V, p. 499). Siehe auch das bekannte Gedicht ~Freiligraths~. Die ersten Analysen sind von ~Hiärne~ und ~Fuchs~. Unreines Cetrarin wurde bereits 1835 von ~Rigatelli~ unter dem Namen «Salino antifebbrile» und «Lichenino amarissimo» gegen Wechselfieber usw. empfohlen (vgl. oben S. 268). Der beim Kochen entstehende Schleim von Flechten der Art der _C. i._ scheint auch zur Appretur frühmittelalterlicher Papiere benutzt worden zu sein (~Kobert~). Daß _Lichen island._ als Nahrungsmittel (s. oben) brauchbar ist, berichtete schon ~Borrichius~ (vgl. auch ~Troils~, Resa til Island). Kapitän ~John Franklin~ und seine Begleiter benutzten es, als sie in Amerika aller übrigen Nahrungsmittel beraubt waren, als solches (Narrative of a journey to the shores of the polar sea 1823). In der Krain wurden Schweine, Pferde und Ochsen damit gefüttert (~Murray~). Im XVIII. Jahrh. scheint _Cetraria islandica_ auch als Färbeflechte benutzt worden zu sein (~Westring~ 1805). =Lit.= ~A. von Krempelhuber~, Geschichte u. Literat. d. Lichenologie I (1867), 13, 502. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie III und Arch. d. Pharm. 226 (1888), 1020. -- ~Schübeler~, Viridarium norvegicum 1885. -- ~Joh. Th. Ph. Ch. Ebeling~, Diss. de Quassia et Lichene Islandico. Glasgow 1779. -- ~Trommsdorff~, Diss. de Lich. Island. -- ~Borrichius~ in ~Bartholini~, Act. med. et phil. Hafn. 1671 (1674) I, 126. -- ~Hiärne~, Vet. Acad. Handl. 1744, 176. -- ~Fuchs~, Crells chem. Ann. 1787. -- ~Murray~, Apparatus medicaminum 1790, V, 499. -- ~R. Kobert~, Über einige echte gefilzte Papiere des frühen Mittelalters. Zeitschr. Angew. Chem. 1910, 1249. =Paralleldrogen.= Ähnlich wie _Cetraria islandica_ werden (nach ~Dragendorff~) benutzt: _Cetraria nivalis_ ~Ach.~ (in den Alpen) und _C. aculeata_ ~Fr.~ _Cetraria nivalis_ ist in der Schauberg-Rax-Ware des Wiener Handels stets enthalten (~T. F. Hanausek~). _Cetraria nivalis_ enthält Usninsäure und 90,2% der Trockensubstanz stickstofffreie Substanzen (Zellulosine). Aus dem Mehl der von der Usninsäure befreiten Flechte kann ein Gebäck dargestellt werden. Lerp-Manna. Die _Lerp-Manna_ entsteht durch _Psylla Eucalypti_ auf _Eucalyptus dumosa_ ~Cunningham~ (_Euc. incrassata_?) in Australien, besonders auf Tasmania. Sie wird in der Weise erzeugt, daß die genannte Hemiptere mit Hilfe ihres gabeligen Schwanzes weiße Fäden absondert, welche nachher durch einen aus den Leibesringen des Insektes austretenden Sirup verklebt werden (~Dobson~) und die das Gespinst darstellen, worin das genannte Insekt seinen Puppenzustand durchlebt (~Flückiger~). Durch kaltes Wasser geht der Zucker in Lösung und die Fäden bleiben zurück. Der Gehalt an +Fruchtzucker+ beträgt nach ~Flückiger~ 53,1% (nach ~Anderson~ 49%). Die Grundsubstanz der Fäden besteht aus einer von ~Flückiger~ +Lerp-Amylum+ genannten Substanz, +die sich durch Jodlösungen blau färbt+, in kaltem Wasser kaum, in Wasser von 135-150° reichlich löslich ist und sich beim Erkalten dieser Lösung wieder abscheidet. Die Substanz, die ihrer Zusammensetzung nach (C = 43,4, H = 6,5%) zwischen Stärke und Zellulose steht, ist dem Lichenin ähnlich. Sie ist unlöslich in Kupferoxydammoniak. Die von ~Anderson~ in der _Lerpmanna_ angegebenen anderen Substanzen: Gummi, Stärke, Inulin und Zellulose sind nicht darin nachzuweisen (~Flückiger~). Der Feuchtigkeitsgehalt beträgt 14-15%. =Lit.= ~Anderson~, Journ. prakt. Chem. 47, 449 (Jahresb. Pharm. 1849, 68). -- (~Dobson~ und) ~Flückiger~, Wittsteins Vierteljahrsschr. 17 (1868), 161 und 18, 32. -- ~Flückiger~, Über Stärke und Zellulose. Arch. Pharm. 1871 (mit Abbild.). 4. Lignino-Membranindrogen. Unter dem Namen +Ligninomembranin+ mag die +Holzsubstanz+ bezeichnet werden, d. h. der Körper, der die Membranen der Elemente des Holzkörpers bildet und der mit Jodreagentien nicht wie Zellulose reagiert. ~Tollens~, dem ich meine Einteilung vorgelegt, schlägt vor, die Zelluloso-Membranine und die Lignozelluloso-Membranine als zwei Abteilungen einer Klasse zusammenzufassen und den übrigen voranzustellen, was viel für sich hat. Daß im Ligninomembranin ein Zellulosin steckt ist sicher, denn bei der Hydrolyse entstehen Zucker. Daß die Holzfaser durch Kochen mit Schwefelsäure Traubenzucker liefert, ist seit 1819 bekannt (~Autenrieth~ und ~Bayerhammer~, ~Braconnot~). ~Ekström~ erhielt aus Holz 50-75% Glukose. Daneben treten aber auch (außer Galaktose und Mannose) Pentosen auf. Es sind also neben Manno-Gluko-Galaktanen auch +Pentosane+ vorhanden. Diese +Pentosane+, die wohl niemals den Charakter von Reservestoffen tragen, spielen in den +Gerüstsubstanzen+ der Pflanze eine große Rolle, besonders +Xylane+ finden sich ganz allgemein in den Wänden der Zellen des Holzkörpers und verholzter Bastzellen, den harten Geweben von Früchten (_Cocos_) und Samen (_Gossypium_), wie überhaupt in den Zellen, die ich unter dem Namen «+Sklereïden+» zusammengefaßt habe. Während aber die Nadelhölzer nur wenig davon enthalten (2-9%), sind die Laubhölzer reich daran (20-33%). Jute enthält 15%. Methylpentosane sind in Samenschalen und Rinden nachgewiesen. Xylan wird (nach ~Thomson~) in der Weise bestimmt, daß man die mit Ammoniak digerierten und ausgewaschenen Holzmehle mit 5% Natronlauge behandelt und das Filtrat mit Alkohol fällt. Xylan ist in Kupferoxydammon und Wasser löslich. Es dreht links. ~Cross~, ~Bevan~ und ~Claud Smith~ nehmen an, daß die Pentosane (z. B. im Stroh) an Ameisensäure zu einem Pentosemonoformal, O / \ C₅H₈O₃ CH₂, \ / O gebunden sind. Vielleicht sind die Xylane in der Membran mit Zellulose verestert. Bemerkenswert ist, daß d-Glukose und l-Xylose ähnliche Strukturformeln haben: H H OH H { d-+Glukose+ = CH₂OH--C--C--C--C--COH { OH OH H OH { { H OH H { l-+Xylose+ = CH₂OH--C--C--C--COH OH H OH und denn auch häufig nebeneinander als Produkte der Hydrolyse von Zellmembranen erhalten werden, ebenso wie: H OH OH H { d-+Galaktose+ = CH₂OH--C--C--C--C.COH und { OH H H OH { { OH OH H { l-+Arabinose+ = CH₂OH--C--C--C.COH. H H OH ~W. Hoffmeister~ nennt die aus den nicht zuvor von den inkrustierenden Stoffen befreiten Zellmembranen durch 5% Natronlauge extrahierbaren Stoffe +Holzgummi+. Dieses Holzgummi ist wohl mit Xylan identisch. Da der reinen Zellulose Pentosane fehlen -- sie gibt bei der Hydrolyse niemals Pentosen --, so kann die Bestimmung des Holzstoffgehaltes eines Gewebes durch Bestimmung des Pentosangehaltes nach der Methode von ~Tollens~ erfolgen, die darauf beruht, daß Pentosane bei der Destillation mit Salzsäure α-Furfurol: CH----CH || || || || CH C.COH \ / \ / O liefern, das als Phloroglucid gefällt und gewogen werden kann. Den +Holzstoff+, das +Lignin+ oder +Lignon+ (~Cross~, ~Bevan~, ~Beadle~) faßt man meist als ein methoxylreiches Oxyderivat der Zellulose (Oxyzellulose) auf, das sowohl freie wie veresterte Hydroxyl- und wahrscheinlich auch Acetyl- und Formyl-Gruppen (vielleicht stammt die Essigsäure im Acetum pyrolignosum daher!), nach ~Klason~ 4 CH₃ und ein OH enthält. Es ist kohlenstoffreicher (55% C) als Zellulose (44,4% C). Dem Jutelignin geben ~Tollens~ und ~Lindsey~ die Formel: C₁₇H₁₆O₇(OCH₃)₂. ~Klason~, der (C₄₀H₄₂O₁₁)ₙ formuliert, bringt es zum Coniferylalkohol, ~Euler~ zu den Gerbstoffen in Beziehung. Die unten erwähnten Farbstoffreaktionen beziehen sich nach der jetzigen Auffassung nicht auf das Lignin. Daß in der Holzmembran eine zelluloseartige Substanz die Grundlage (meist 50 bis 64% der Substanz) bildet, ist also sicher (~Payen~, ~Hoppe Seyler~, ~Lange~). Die abweichenden Reaktionen der Holzmembran rühren von einer «Inkruste» her. Die Vorstellung, daß in der Holzzellmembran die Zellulose «inkrustierende» Substanzen (matières incrustantes, Xylogen, nach ~De Candolles~ Vorgang früher +Lignin+ genannt) vorkommen, rührt von ~Payen~ her. Daß diese Substanzen zum Teil aromatische sind, kann keinem Zweifel unterliegen, denn es gelingt aus der Sulfitablauge der Holzfaserbearbeitung +Vanillin+, +Brenzkatechin+ und +Methylfurfurol+ abzuscheiden (~Grafe~), Verbindungen, die in ihrer Gesamtheit wohl das +Hadromal+ ~Czapeks~ bilden und auf die sich die zahlreichen Holzreaktionen (mit Phloroglucin, Anilinsulfat usw.) beziehen -- auch +Protokatechusäure+ wurde unter den Abbauprodukten gefunden (~Erdmann~, ~Bente~). Aber es unterliegt ebenso keinem Zweifel, daß dieselben nicht als +Beimengungen+ der Zellulose zu betrachten sind, sondern offenbar in Bindung mit den Polysacchariden der Zellulose sich finden. Übrigens faßte schon ~F. Schulze~ (1857) die Holzsubstanz als einheitliche Substanz auf, die er +Lignin+ nannte und C₃₈H₂₄O₂₀ formulierte und auch ~Erdmann~ betrachtete die Holzsubstanz als eine einheitliche komplexe Verbindung, C₃₀H₁₆O₂₁ (Glykolignose), mit zuckerbildenden, aromatischen und Zellulosegruppen. ~Cross~ und ~Bevan~ nehmen in der Holzsubstanz (Zellulochinon) Zelluloseester und einen Aldehyd oder ein Keton an. Nach Behandeln mit saurem Calciumsulfit (~Mitscherlichs~ Sulfitverfahren) bleibt in Kupferoxydammon lösliche Zellulose zurück, die bei der Hydrolyse Traubenzucker, Galaktose und Mannose liefert. Die Zellulose wird von Xylan (die Hydrolyse liefert daher auch Xylose, ~Tollens~) begleitet und außerdem scheinen darin (ob präformiert?) 12-14% +Ligninsäuren+, (C₂₀H₁₁O₈? mit 61-62% C), enthalten zu sein (~Lange~). Auf die wohl erst bei der Kalischmelze (s. oben) entstehenden Ligninsäuren bezieht sich wohl ~Mäules~ Manganatreaktion des Holzes, eine mikrochemische Reaktion, die in der Weise ausgeführt wird, daß man Kaliumpermanganat zufließen läßt, mit Wasser auswäscht, dann Salzsäure zusetzt und nach abermaligem Auswaschen Ammoniak zufließen läßt: die Holzmembran färbt sich rot. +Auf die aromatischen Holzstoffbestandteile beziehen sich die mikrochemischen Reaktionen+ mit Phenol-Salzsäure: blaugrün (~Runge~), Phloroglucin- (oder Resorcin-) Salzsäure: kirschrot bzw. violett (~Wiesner~), Pyrogallol-Salzsäure blaugrün (~Ihl~), Naphthol-Salzsäure: grün (~Ihl~), Indol-Salzsäure: kirschrot (~v. Baeyer Niggl~), Orcin-Salzsäure: rotviolett (~Lippmann~), Skatol-Salzsäure: kirschrot (~Mattirolo~), Pyrrol-Salzsäure: rot (~Ihl~), Thiophen: grün (~Ihl~), Anilinsulfat: gelb (~Runge~, ~Schapringer~); ebenfalls tritt Gelbfärbung ein durch p-Toluidin (~Singer~), α- und β-Naphtylamin (~Nickel~), α-Bromphenetidin (~Piutti~). Die empfindlichste Reaktion ist die mit Pyrrol, die am häufigsten angewendete die mit Phloroglucin. Nicht nur Amylschwefelsäure (~Kaiser~) und Isobutylschwefelsäure (~Grafe~), sondern alle Alkylschwefelsäuren und aromatischen Sulfosäuren färben Holzstoff (nicht Zellulose) rot oder blau (~Hertkorn~), ebenso auch Isobutylaldehydschwefelsäure (~Grafe~). Nicht alle Membranen, welche auf Permanganat (s. oben) reagieren, geben auch mit Phloroglucin Reaktion und umgekehrt (~v. Faber~). In den meisten Fällen fallen aber die Reaktionen zusammen (~Aisslinger~). ~Cross~ und ~Bevan~ halten die Jutefaser (s. oben S. 255) für «+typische Lignozellulose+». Sie unterscheiden darin drei Bestandteile, deren Anhydroaggregat die Faser bildet: eine der Baumwollzellulose nahe verwandte Substanz, eine Pentazellulose, die Furfurol und Essigsäure liefert und einen Chinon liefernden Bestandteil. Durch Behandeln mit Sulfitlaugen (s. weiter hinten) werden oft ⅔ der im Holzstoff enthaltenen Substanzen, jedenfalls alle aromatischen Gruppen, entfernt und es bleiben 39,5-63% «Zellulose» zurück. Die Verholzung erhöht die Festigkeit der Membran nicht (~Sonntag~). Wir sind berechtigt anzunehmen, daß alle die oben genannten Substanzen in der Membran nicht gemengt, sondern chemisch miteinander verbunden sind (~Tollens~). =Lit.= ~Autenrieth~ und ~Bayerhammer~ (in Berzel. Jahresber. 1822). -- ~Braconnot~, Ann. chim. phys. (2) 12 (1819). -- ~Runge~, Poggend. Ann. 31 (1834). -- ~Payen~, Compt. rend. 1838 und 1839. -- ~Schapringer~, Einfaches Mittel, um Holzstoff in Druckpapier zu erkennen. Dingl. polyt. Journ. 176 (1865) (Anilinreaktion). -- ~Erdmann~, Lieb. Ann. 138, 1 und Supplem. 5, 233. -- ~Bente~, Ber. d. d. chem. Ges. 1875. -- ~v. Höhnel~, Histochem. Unters. über das Xylophilin und das Coniferin. Sitzungsber. d. Wien. Akad. 76 (1877). -- ~Lippmann~, Sitzungsber. d. Wien. Akad. 77. -- ~Wiesner~, Karstens bot. Unters. I, 120 (1866) und Sitzungsb. d. Wien. Akad. 1878 (Phloroglucinsalzsäurereaktion). -- ~Singer~, Ebenda 1882. -- ~Lange~, Zeitschr. phys. Chem. 1899. -- ~Schellenberg~, Beitr. zur Kenntn. d. verholzten Zellmembran. Pringsh. Jahrb. 29, 1896. -- ~Czapek~, Zeitschr. f. phys. Chem. 27 (1899). -- ~Grafe~, Unters. über d. Holzsubst. Sitzungsb. d. Wiener Akad. 113 (1904) und Neue Reihe von Holzreaktionen. Öst. bot. Zeitschr. 1905. -- ~Zetsche~, Beitr. z. Unters. d. verholzt. Membr. Zeitschr. f. angew. Mikrosk. II. -- ~Seliwanoff~, Bot. Zentralbl. 1891. -- ~v. Faber~, Zur Verholzungsfrage. Ber. d. d. bot. Ges. 22, 177. -- ~Aisslinger~, Beitr. z. Kenntn. wenig bekannt. Pflanzenfas. Diss. Zürich 1907. -- ~Thomsen~, Chem. Unters. über d. Zusammensetz. d. Holzes. Journ. pr. Chem. 19, 146. -- ~de Chalmot~, Ber. d. chem. Ges. 27. -- ~E. Fischer~, Ebenda 27, 3230. -- ~Tollens~ und ~Lindsey~, Lieb. Ann. 267. -- ~Euler~, Pflanzenchemie. -- ~Klason~, Ark. f. Kemi. 1908. -- ~G. Lange~, Zeitschr. phys. Chem. 14. -- ~Cross~, ~Bevan~ and ~Beadle~, Cellulose, an outline of the chemistry of the structural elements of plants London 1895. -- ~Mäule~, Verhalt. verholzt. Membr. gegen KMnO₄. Habilitationsschr. Stuttgart 1901. -- ~Niggl~, Flora 1881, 545. -- ~Czapek~, Biochemie. -- ~Ihl~, Chem. Zeit. 1885, 266 und 1890, 1571. -- ~Nickel~, Bot. Zentralbl. 38, 754 (1889) u. Farbenreaktionen der Kohlenstoffverbind. Berlin 1890. -- ~Mattirolo~, Zeitschr. wiss. Mikrosk. II (1885), 354. -- ~Kaiser~, Chem. Zeit. 1902. 335. -- ~Tollens~, Pentosen u. Pentosane u. ihre Bezieh. zur Papier-Industrie. Papier-Zeitung 1907. -- ~Stackmann~, Stud. über d. Zusammensetz. d. Holzes. Diss. Dorpat 1878. -- ~Schuppe~, Beitr. z. Chem. d. Holzgewebes. Diss. Dorpat 1882. -- ~Wieler~, Landw. Versuchsstat. 1885. -- ~Henze~, Unters. über d. spez. Gew. d. verholzten Zellwand u. d. Zellulose. Diss. Göttingen 1883. -- ~Sonntag~, Beziehungen zwischen Verholzung, Festigkeit u. Elastizität vegetabil. Zellwände. Landw. Jahrb. 1892. -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie. In die Gruppe der Ligninomembranindrogen gehören viele +Pflanzenfasern+, die aus äußeren Gründen schon oben (S. 253) abgehandelt wurden, ferner alle Hölzer, die nicht, sei es durch ihren Gehalt an einem Farbstoff (_Campeche_), einem Harz (_Guajac_) oder einem Bitterstoff (_Quassia_) oder einem anderen differenten Stoffe in eine andere Gruppe gebracht werden müssen. Diese sog. +indifferenten Hölzer+ spielen aber in der Medizin so gut wie gar keine Rolle mehr. Das einzige, das noch da und dort verwendet wird, ist das =Lignum juniperi= (über _Juniperus_ vgl. S. 44). Neuerdings haben =Holzwolle= und +Holzmehl+ zu anderen Zwecken, nämlich als +Verbandmaterialien+ einige Bedeutung erlangt. Zu =Holzwollwatte= wird Holzschliff verwendet, zu =Zellstoffwatte= sog. Holz- oder Strohzellulosen. Die =Waldwolle= wird als Nebenprodukt der Kiefernadelöl- und Kiefernadelextraktbereitung gewonnen. Sie besteht aus den «destillierten» Kiefernadeln. Über =Torfwatte= orientiert eingehend ~Royer~, L’ouate de tourbe et ses applications in Trav. d. labor. de mat. méd. Paris VI. 1910 (m. zahlr. anatom. Abbild.). In der Technik spielt die Holzsubstanz eine große Rolle bei der Herstellung von =Papier=, zu dessen billigen Sorten (Zeitungspapier) ausschließlich oder als Hauptbestandteil +Holzschliff+ verwendet wird, die daher stets auf Phloroglucin und Anilinsulfat reagieren. Neben diesem sog. Holzstoff wird aber auch «chemischer Holzstoff» sog. «Zellulose» benutzt, die aus dem Holzstoff (meist geraspeltem Coniferen- aber auch Laub-Holz) durch Behandeln mit Natronlauge unter Druck oder Calciumbisulfitlösung (~Mitscherlich~), oder Kalkmilch und schwefliger Säure unter Druck (~Archbold~), oder Magnesiumsulfit (~Eckman~), oder Schwefelnatrium erhalten wird. Die Erfinder des Holzschliffs sind ~F. G. Keller~ in Kühnheida (Erzgebirge) und ~H. Völter~ in Heidenheim (1852), der Erfinder der Natronzellulose ist ~A. Ungerer~ in Semmering bei Wien (1869-1871), der Erfinder der Sulfitzellulose der Amerikaner ~Tilghman~ (1866). Das Verfahren wurde dann Anfang der siebziger Jahre praktisch durchgeführt von ~A. Eckmann~, ~C. Kellner~ und ~A. Mitscherlich~, die unabhängig voneinander arbeiteten (~Wiesner~). In den heutigen +Papieren+ findet man neben Lein, Hanf, Alfa (Halfa), Jute und Baumwolle, Nadelholz-Holzschliff, Laubholz-Holzschliff, Nadelholzzellulose und Laubholzzellulose. (Über Papier vgl. auch oben S. 256.) Dann ist auch nicht ohne Erfolg versucht worden aus Holz +Alkohol+ darzustellen, was an sich keinen Schwierigkeiten begegnet, da ja die Zellulosine bei der Hydrolyse Zucker liefern. Das Verfahren ist aber zurzeit noch nicht billig genug. Auch die Verarbeitung auf Zucker ist versucht worden, jedoch ohne jeden Erfolg (~Lippmann~). =Lit.= ~Schubert~, Zellulosefabrikation 1897 und Holzstoff- u. Holzschlifffabrikation 1898, sowie Praxis d. Papierfabrikation 1897. -- ~Wilhelm~ und ~Zeisel~ in Wiesner, Rohstoffe. 2. Aufl. -- ~A. Meyer~, Grundlagen u. Methoden f. mikrosk. Unters. d. Pflanzenpulver 1901. -- ~C. Piest~, Die Zellulose, ihre Verarbeitung u. ihre chem. Eigensch. 1910. -- +Der technisch verwendeten Hölzer+: ~Nördlinger~, Technische Eigenschaften d. Hölzer. Stuttgart 1860. -- ~Sanio~, Vgl. Unters. über die Zusammensetz. d. Holzkörpers. Bot. Zeit. 1863. -- ~de Bary~, Vgl. Anatomie. -- ~Krah~, Über d. Verteil. d. parenchymat. Elemente im Xylem u. Phloëm d. dikotylen Laubbäume. Berlin 1883. -- ~Moeller~, Die Rohstoffe d. Tischler- und Drechslergewerbes 1883, Nutzhölzer in ~Dammers~ Lexikon und Artikel Holz in Realenzyklopädie d. ges. Pharm. -- ~R. Hartig~, Die anatom. Unterscheidungsmerkmale d. wichtigeren in Deutschl. wachsend. Hölzer. 1890. -- ~Wiesner~ a. a. O. -- ~Meyer~ a. a. O. -- ~Hanausek~ a. a. O. 5. Pektino-Membranindrogen. Der Name Pektin rührt von ~Braconnot~ her, der (1825) die Gallertsubstanz der Früchte erst +Pektinsäure+ (von πηκτός = geronnen), dann (1831) +Pektin+ nannte (~Guibourt~ sprach von Grosselin). Ob das Pektin eine Membransubstanz ist oder nicht, war bis vor kurzem noch nicht ganz sicher. Einige suchten es im Zellinhalte, andere in verschiedenen Teilen der Membran. Die Untersuchungen, die ich 1907 mit ~Rosenberg~ durchgeführt habe, haben die Zweifel beseitigt: +es geht aus der Interzellularsubstanz hervor+, weder die sekundäre Membran noch der Zellinhalt sind an seiner Bildung beteiligt. Außer ~Payen~ verlegen auch ~Mangin~, ~Kabsch~, ~Vogl~, ~Wiesner~, ~Herzfeld~ die Pektinbildung in die Mittellamelle. Die Interzellularsubstanz muß nahe verwandt mit dem Pektin (der Pektinsäure der Autoren) sein. Aber nicht immer geht sie in Pektin über. Es scheint, daß dazu bestimmte Bedingungen erfüllt sein müssen, wie sie besonders in reifenden Früchten und einigen Wurzeln eintreten. Gewöhnlich bezeichnet man die in Pektin übergehende Substanz als Pektose (~Frémy~). Ich nenne sie +Protopektin+. Darnach würde also die Interzellularsubstanz vielleicht immer, wenigstens bei den pektinbildenden Pflanzenteilen, aus Protopektin bestehen. In reifenden Früchten kann man den Übergang des Protopektins, das in Wasser und auch in Kupferoxydammoniak unlöslich, in 2% Natronlauge (nach Vorbehandlung mit Salzsäure) und in Ammoniumzitrat aber löslich ist, in Pektin, das sich in konz. Zuckerlösungen löst, durch mikrochemische Reagentien verfolgen. Während sich nämlich Protopektin (Pektose ~Frémy~, pektinsaurer Kalk ~Mangin~) leicht mit Jodgrün, ~Hofmanns~ Violett, Naphthylenblau, Ammoniumrutheniumsesquichlorid (Rutheniumrot, Ru₂Cl₆·4 NH₄Cl) färbt (~Mangin~) -- am besten reagiert Neutralviolett und Rutheniumrot in sehr verdünnter Lösung (~Rosenberg~) --, verschwindet das Farbstoffspeicherungsvermögen mit fortschreitender Pektinbildung. Wenn die +Pektinmetamorphose+, wie ich diesen Vorgang genannt habe, abgeschlossen ist -- was beim Reifen der Früchte eintritt --, so ist das Endprodukt in Zuckerlösung löslich bzw. gelatiniert nach dem Erhitzen mit Zuckerlösung (~Tschirch~ und ~Rosenberg~). Über die chemische Beschaffenheit des Pektins, das wohl mit der Pektinsäure anderer Autoren bzw. dem sog. Calciumpektat identisch ist, sowie des Protopektins wissen wir wenig, doch verhalten sie sich jedenfalls wie Zellulosine. ~Scheibler~ erhielt bei der Hydrolyse der Metapektinsäure der Rüben Arabinose (Pektinose), ~Herzfeld~ aus Rübenpektin, ~Javillier~ aus Quittenpektin +Arabinose+ und +Galaktose+. Ebenso fand ~Müntz~ Galaktose. Auch das Pektin der Enzianwurzel und der Hagebutte lieferte diese beiden Zucker, das der Apfelsinen d-Glukose, Galaktose und l-Xylose; das der Kirschen, Äpfel, Johannisbeeren, Reineclauden, Rhabarberstengel und Mohrrüben noch andere Hexosen und Pentosen (~Tromp de Haas~ und ~Tollens~). Jedenfalls erhält man bei der Oxydation z. B. des Rübenmarks mit Salpetersäure viel Schleimsäure, das Oxydationsprodukt der Galaktose. Etwas Xylan enthält das Pektin der Äpfel (~Bauer~) und in vielen anderen Pektinen ist ein d-Galaktoxylan enthalten (~Bauer~, ~Prinsen-Geerligs~). Die Pektine liefern also bei der Hydrolyse Pentosen und Hexosen, enthalten also Pentosane und Hexosane, vorwiegend Galaktoaraban und Arabangruppen, sind also zu den Hemizellulosen zu rechnen. Sie reagieren schwach sauer und man trifft daher auch Säuren unter den Spaltungsprodukten. ~Tollens~ vermutet, daß die Pektine ursprünglich neutrale Laktone oder Ester den Glykosidosäuren nahestehender, kohlehydratartiger Substanzen sind, die in Berührung mit Alkalien leicht in die Salze der betreffenden Säuren übergeben. ~Cross~ hält sie eher für lösliche, unbeständige Übergangsformen der Hemi-, Oxy- und Lignozellulosen. Welche Rolle die Erdalkalien spielen, ist noch unaufgeklärt. Wahrscheinlich ist Kalk, der ja auch in vielen Schleimmembranen (_Laminaria_, _Linum_, _Cydonia_), in der resinogenen Schicht und den Gummis auftritt, ein regelmäßiger Bestandteil der Pektine. ~Mangin~ ist der Ansicht, daß die Pektosen junger Zellwände mit der Zeit in Pektinsäuren übergehen, die Kalk aufnehmen und in Calciumpektate übergehen; ~Devaux~ meint jedoch, daß auch ältere Mittellamellen aus Pektosen bestehen. Durch andauerndes Kochen des Pektins (oder der Pektose) mit Wasser entsteht das sauer reagierende +Parapektin+, das mit Wasser aufquillt und 30% Schleimsäure, sowie 14,2% Furol liefert, also ebenfalls Galaktose und Arabinose liefernde Gruppen enthält (Araban, γ-Galaktan?). Der Pektinsäure gibt ~Frémy~ die Formel: C₃₂H₄₄O₃₀, ~Regnault~: C₁₂H₁₆O₁₁, ~Mulder~: C₁₂H₁₆O₁₀, ~Chodnew~: C₁₄H₂₂O₁₄. +Pektosen+ werden schon in der Kälte leicht hydrolysiert, wobei +Pektinsäuren+ und Arabinose entsteht. Ebenso wirkt die +Pektinase+, die auch das Calciumpektat weiter spaltet (~Bourquelot~ und ~Hérissey~). Der unlösliche Membranbestandteil, der aus Pektin, Parapektin und Metapektinsäure entsteht, wurde, wie erwähnt, Pektose genannt. Der Name ist irreführend, da er eine Zuckerart vermuten läßt, und sollte fallen gelassen und durch Protopektin ersetzt werden. Pektin wird durch Alkohol koaguliert, auch zahlreiche Pflanzenauszüge (wie solche der Kartoffeln, der Zuckerrüben usw.) koagulieren das Pektin, wobei ein Enzym (Pektase) in Aktion treten soll (?), das aber nur in Gegenwart von Ca-, Sr- oder Ba-Salzen und nicht in saurer Lösung wirkt. Die Pektinase soll das Gelatinieren hindern (~Bourquelot~). Doch bewirken schon die Calciumsalze allein die Fällung in Form von Pektinaten. ~Frémys~ und ~Herzfelds~ Pektin ist optisch-inaktiv, ~Andrliks~ Pektin dreht 3-4 mal stärker rechts als Rohrzucker, und die Pektine von ~Bourquelot~ und ~Hérissey~ zeigen Rechtsdrehungen von +82,3 bis +194,1. Alle halten Pektin für in Wasser löslich. ~Rosenberg~ und ich konnten weder durch kalte noch durch heiße Extraktion von Früchten ohne weiteren Zusatz eine in der Kälte gelatinierende Lösung erhalten -- auch nicht wenn die Lösung eingedampft wurde. Wohl aber erhält man leicht eine Gelatine, wenn man die Früchte oder einen heißen Auszug derselben unter Zuckerzusatz kocht und die Flüssigkeit erkalten läßt. Diese Pektingelatine ist entweder eine feste Pektinzuckerlösung oder eine Pektinzuckerverbindung. Immerhin scheint es besonders nach ~Frémys~ Versuchen möglich, daß auch andere Substanzen, wie Zucker, Gelatinebildung bewirken; ob jedoch das Enzym Pektase ein solcher Körper ist, erscheint noch zweifelhaft. Für die Praxis der Fruchtgeleefabrikation kommt aber wohl nur Zucker in Betracht. Da Zuckerlösung das Pektin in der Pflanze zum Quellen und Gelatinieren bringt und dadurch die Zellen des Fruchtfleisches voneinander gelöst werden, so hat vielleicht die Zuckerbildung in den Früchten den Zweck, das Fruchtfleisch aufzulockern und so den Zerfall der Frucht und das Herauslösen der Samen zu beschleunigen. Die sog. «Auskleidungen der Interzellularen», die oft als Knöpfe oder Stäbchen in den Interzellularraum ragen (s. hinten Lit.), sind ebenfalls Pektin (pektinsaurer Kalk, ~Mangin~) und auch die resinogene Schicht der schizogenen Sekretbehälter (~Tschirch~) muß Beziehungen zum Pektin haben. Da Pektin meist als Protopektin die Zellen miteinander verkittet, müssen alle Substanzen, welche Protopektin lösen, z. B. ~Schulze~sche Macerationsflüssigkeit, die Zellen isolieren. Aber auch Bakterien vermögen dies zu tun. Bei der sog. Flachsröste (s. S. 254) werden die Leinstengel in faulendes Wasser gestellt und hier wirken nun die Bakterienprodukte lösend auf das Protopektin. Es entsteht eine Auflockerung des Gewebes und eine Isolierung der Fasern. ~Winogradsky~ fand, daß der Bazillus der Flachsröste alle Pektinsubstanzen in Gegenwart stickstoffhaltiger Nährböden «vergärt». Beziehungen des Gummis zu den Pektinsubstanzen zeigt die Metapektinsäure, die ~Scheibler~ durch Behandlung von «Rübenmark» (d. h. des Grundparenchyms der Rübe) mit Alkalien erhielt -- sie entsteht auch beim Kochen von Rübenmark mit verdünnter Oxalsäure -- und die er für identisch mit Arabinsäure hält. Zu den Pektinstoffen steht jedenfalls auch das Pararabin ~Reichardts~ (s. _Agar_), dem er die Formel C₁₂H₂₂O₁₁ gibt, in Beziehung und ~Thomsens~ Holzgummi ist wohl identisch mit dem Pektin (aus Holz) von ~Poumarède~ und ~Figuier~, die glauben, daß Pektin und Zellulose ursprünglich von gleicher Zusammensetzung waren. Die Grenze zwischen Pektin- und Schleimmetamorphose der Interzellularsubstanz ist oft verwischt (vgl. _Fruct. Sambuci_, Fig. 19). Überhaupt finden sich mancherlei Übergänge in den Membranen, die offenbar nur selten ganz einheitlich sind. Ein solches Übergangsgebilde scheint die +Callose+ ~Mangins~ zu sein, die er zuerst im Callus der Siebplatten fand. Sie ist unlöslich in Kupferoxydammoniak, gibt keine Chlorzinkreaktion, ist leicht löslich in 1% Natronlauge, unlöslich in kalter Alkalikarbonatlösung; die Protopektinreagentien (s. oben) versagen, Korallinsoda und Anilinblau färben. =Lit.= ~Payen~, Ann. chim. phys. (2), 26 (1824), 329; Rec. sav. étrang. (2) IX (1846), 148, Compt. rend. 1856. -- ~Braconnot~, Ann. chim. phys. 28 u. 30 (1825); dann ebenda 47 (1831) und 50 (1832). -- ~Guibourt~, Schweigg. Journ. 1825. -- ~Frémy~, Journ. pharm. chim. 26 (1840), 568, Lieb. Ann. 67 und Compt. rend. 1847. Hauptarbeit: Ann. chim. phys. (3) 24 (1848) 5; Compt. rend. 48, 203; Journ. pharm. (3) 36 (1859) 5. -- ~Chodnew~, Lieb. Ann. 51, 355. -- ~Mulder~, Journ. pr. Chem. 14, 285. -- ~Poumarède~ et ~Figuer~, Compt. rend. 1847 u. Journ. pr. Chem. 12, 31. -- ~Stüde~, Lieb. Ann. 131, 250. -- ~Scheibler~, Ber. d. chem. Ges. I (1868), 58 und 108; 6 (1873) 612. -- ~Müntz~, Sur l’existence des éléments du sucre de lait dans les plantes. Ann. phys. chim. 10 (1887), 566. -- ~Herzfeld~, Chem. Zentralbl. 1891, 618. -- ~Bauer~, Landw. Versuchsst. 38 (1891) und 41 (1892), 477. -- ~L. Mangin~, Compt. rend. 107 (1888), 109 (1889), 110 (1890), 111 (1891), 115 (1892), 116 (1893); Bull. soc. bot. 36 (1889), 274, 38 (1891), 39 (1892). Journ. de bot. 1891, 1892 und 1893 und Sur la callose, nouvelle substance fondamentale existant dans la membrane. Compt. rend. 110 (1890). -- ~Bourquelot~, Compt. rend. 128 (1899), 1241. -- ~Bourquelot~ et ~Hérissey~, Compt. rend. 127 (1898), 191; Compt. rend. soc. biol. 1898, 777; Journ. chim. phys. 9; Journ. pharm. 7 (1898) und 9 (1899) 281. -- ~Bertrand~ u. ~Mallèvre~, Compt. rend. 119, 120, 121. -- ~Bauer~, Chem. Zentralbl. 1901, 196. -- ~Devaux~, Soc. phys. et nat. de Bordeaux 3 (1903). -- ~Tschirch~, Über Pektin und Protopektin. Ber. d. pharm. Ges. 1907, 237. -- ~E. Rosenberg~, Über d. Pektinmetamorphose. Diss. Bern 1908 (mit 9 Taf.). -- +Pektinanalysen+ bei ~Reichardt~, Arch. d. Pharm. 209 (1876), 97 und 210 (1877) 116, ~Martin~ in ~Sachsses~ Phytochem. Untersuch. 1880, ~Bauer~, Journ. pr. Chem. 30, 369 und ~Tromp de Haas~ und ~Tollens~, Lieb. Ann. 286 (1895), 278. -- ~Tollens~, Kurzes Handb. d. Kohlenhydrate. 2. Aufl. 1898. -- ~Lippmann~, Chemie der Zuckerarten 1904. -- ~Czapek~, Biochemie (dort die Lit.). -- +Auskleidungen der Interzellularen+: ~de Bary~, Anatomie. -- ~Russow~, Über d. Auskleid. d. Interzellularen. Sitzungsb. d. Dorpat. Naturf. Ges. 1884, 19. -- ~Gardiner~, Nature 1885, 390. -- ~Schaarschmidt~, Bot. Zentralbl. 18 und 19. -- ~Schenck~, Ber. d. d. bot. Ges. 3 (1885) (dort weitere Literatur). -- ~van Wisselingh~, Sur les revêtements des espaces intercellulaires. Arch. Néerland. 21. Die vornehmlich als Genußmittel benutzten =Fruchtgelees=, die sämtlich pektinreich sind (s. oben), werden in der Medizin nur als diätetische Heilmittel benutzt. Ihr Heilwert beruht nur zum Teil auf dem Pektin. Besonders kommt Quitten- und Himbeergelee in Betracht. (~Dioskurides~ nennt eine Menge Krankheiten, bei denen z. B. Quitten benutzt wurden.) Man kann durch richtiges Abstimmen des Zuckerzusatzes die Ausbeuten an Gelee vermehren und sich pektinreiche Geleegrundlagen durch Aufkochen der Preßrückstände der Früchte mit Zuckerlösung darstellen. Man kann die Fruchtgelees auf einen unzulässigen Zusatz von +Gelatine+ dadurch prüfen, daß 5-10 g Gelee mit dem gleichen Gewicht Wasser gelöst, die Lösung mit 100 ccm Alkohol versetzt und im getrockneten und gewogenen Niederschlag der Stickstoff bestimmt wird. Während der getrocknete Niederschlag bei normalem Gelee nur 13 bis 28% Stickstoffsubstanz enthält, steigt der Gehalt bei Gelatinezusatz auf 45% (~Bömer~, Chem. Zeit. 19). Ungereinigtes Agar ist durch Diatomeen nachweisbar (~Marpmann~). Gereinigtes Agar dadurch, daß man 10-20 g Gelee mit dem gleichen Gewichte Wasser verdünnt, mit 100 ccm Alkohol versetzt, den Niederschlag mit Alkohol wäscht, trocknet und wiegt und dann mit soviel heißem Wasser löst, daß eine 1% Lösung entsteht. Entsteht beim Erkalten eine steife Gallerte, so soll dies Agar anzeigen. 6. Koryzo-Membranindrogen. =Etym.= Korizo von κορίζα = Schleim -- Schleim mhd. slîm. Die Wurzel slī = glatt, schlüpfrig steht in Beziehung zu lat. lîmare = glätten. Daß die vegetabilischen Schleime, soweit sie entwicklungsgeschichtlich genau verfolgt werden konnten, alle ohne Ausnahme zur Membran, also zu den Membraninen gehören, ist namentlich durch die Untersuchungen von ~Frank~, mir und meinen Schülern ~Nadelmann~ und ~Walliczek~ nachgewiesen worden. Ich habe daher die Bezeichnungen +Schleimmembran+ und +Membranschleim+ eingeführt. Die ersten, die einige Schleime als Membranverdickungen erkannten, waren ~Nägeli~ und ~Cramer~ (1855). Doch finden sich zwei wesentlich verschiedene Typen der Schleimmembranbildung, je nachdem entweder die sekundären Membranschichten +oder+ die Interzellularsubstanz als Schleimmembran auftreten. Die Schleimschichten der sekundären (und tertiären) Membran werden der Regel nach schon als solche angelegt (Fig. 94, 1-5). Es findet hier also nicht, wie man früher glaubte, eine Schleimmetamorphose ursprünglich als Zellulose angelegter Schichten statt. Wie dies bei den Interzellularsubstanzschleimen ist, bleibt bei den einzelnen Fällen noch zu untersuchen. Hier scheint eine Umbildung der primär gebildeten Interzellularsubstanz in Schleim zu erfolgen -- ähnlich der Pektinbildung aus Protopektin. Und daß endlich auch an an Interzellularen grenzenden Zellen eine Schleimmembran sich bilden kann, habe ich bei den Cycadeen-Schleimkanälen nachgewiesen (Fig. 94, 11 u. 12) und geht auch daraus hervor, daß die resinogene Schicht der schizogenen Harzkanäle ebenfalls als Schleimmembran aufzufassen ist. Es liegen also hier ähnliche Verhältnisse vor wie bei der Pektin- und Gummibildung (s. d.). [Illustration: Fig. 94. +Schleimmembranen und ihre Entwickelung.+ 1-5 Entwicklung einer Schleimzelle aus dem Internodium von _Tilia grandifolia_. 6 Junge Schleimzelle aus der Stammrinde von _Rhamnus Frangula_. 7 Junge Epidermiszelle aus dem Blatte von _Althaea officinalis_. 8 Schleimzellen aus der Epidermis von _Cassia angustifolia_. 9 und 10 Schleimepidermis der Blätter von _Barosma vulgaris_, zwischen die Schleimschichten sind Zelluloselamellen (m) eingeschoben (1-10 nach +Walliczek+). 11 und 12 Schleimmembranen in schizogenen Kanälen von _Cycas_ (+Tschirch+).] Fast alle untersuchten Schleime geben bei der Hydrolyse +Arabinose+ und +Galaktose+ (verhalten sich also wie Hemizellulosen und ähnlich wie Pektin, s. d.), einige (_Linum_, ~Hilger~) auch +Dextrose+ und +Xylose+. Arabinose und Xylose sind Pentosen: H OH OH H OH H l-Arabinose = COH--C--C--C--CH₂OH, l-Xylose = COH--C--C--C--CH₂OH, OH H H OH H OH Dextrose und Galaktose dagegen Hexosen (vgl. S. 6). Alle untersuchten +echten+ Schleime geben bei der Oxydation mit Salpetersäure +Schleimsäure+ (zuerst von ~Vauquelin~ 1811 beim Leinsamenschleim beobachtet), ein weiterer Beweis, daß Galaktosegruppen darin enthalten sind (s. oben S. 226). OH H H OH d-+Galaktose+ = CHO--C--C--C--C--CH₂OH H OH OH H OH H H OH +Schleimsäure+ = COOH--C--C--C--C--COOH. H OH OH H Man hat daher wohl auch zwischen Schleimsäure bildenden und keine Schleimsäure bildenden Schleimen unterschieden. Doch will ich diesen Unterschied hier nicht zur Einteilung verwerten. Ebensowenig die Reaktion mit Jodschwefelsäure oder Chlorzinkjod. Einige Schleimmembranen (Epidermis der _Cydonia_samen, _Salvia_früchte, _Viscum_) färben sich nämlich mit diesem Reagens blau (+Zelluloseschleime+, ~Tschirch~), andere (+Echte Schleime+, ~Tschirch~) gelb (Endosperm von _Trigonella_, Schleimzellen von _Rad. althaeae_). Im Zusammenhang mit dieser Erscheinung steht die Beobachtung von ~Tollens~, daß einige Schleime (_Agar_, _Linum_, _Cydonia_, _Salep_, _Psyllium_) bei der Hydrolyse eine Abscheidung von Zellulose zeigen. Der «Zellulosegehalt» wird bei Meeresalgen auf 3,10% (_Gracilaria confervoides_), 4,40% (_Fucus vesiculosus_) und 8,89 (_Vaucheria Pilus_) angegeben (~Sestini~, ~Bomboletti~ und ~della Torre~). ~Mangin~ unterscheidet, gestützt auf das verschiedene Tinktionsvermögen gegenüber den «Pektin färbenden» (vgl. oben S. 277) Lösungen (Methylenblau, Rutheniumrot): Zelluloseschleim, Pektinschleim, Kalloseschleim und gemischte Schleime. Wie schon die letzte Gruppe zeigt, gibt es hier mancherlei Übergänge. Eher läßt sich das morphologische Moment benutzen (s. unten). Ich habe schon in der Angewandten Anatomie die Schleimepidermen der Samen den endogenen Schleimzellen und den Schleimendospermen gegenübergestellt. Ihre Funktion ist sehr verschieden. Die Schleime der Schleimendosperme der Samen (_Trigonella_) sowie die Schleimzellen unterirdischer Reservestoffbehälter (_Orchis_) besitzen den Charakter von Reservestoffen. Die Schleimepidermen der Samen (z. B. _Linum_, _Cydonia_) dienen verschiedenen Zwecken: Festhalten von Wasser, Befestigung der Samen am Boden zur Sicherung der Keimung usw. (~Tschirch~ und ~Lüdtke~). Die Schleimepidermen der Blätter (_Bukku_) sind als Wasserspeicher aufzufassen. Welche Funktion die endogenen Schleimzellen der Vegetationsorgane, der Samenschalen (_Cacao_), der Kelch-, Blüten-, Staub- und Fruchtblätter der Sterculiaceen, Malvaceen und Tiliaceen besitzen, wissen wir nicht. Daß auch die +resinogene Schicht der Sekretbehälter+ zu den Membraninen gehört, zeigt nicht nur der anatomische Befund, sondern auch die Untersuchung des Gummis der Gummiharze, welches ja der resinogenen Schicht entstammt (~Tschirch~). Sie liefern bei der Hydrolyse Galaktose, Glukose und Arabinose, das Gummi der _Myrrhe_ Galaktose und Arabinose, sowie etwas Xylose, es enthält also Galakto-Arabino-Xylane. Nur wenig untersucht ist der sog. +Inhaltsschleim+. Dieser wird hier gar nicht berücksichtigt. Echte Schleime als Bestandteile des Zellinhaltes sind jedenfalls selten und immer wenn entwicklungsgeschichtliche Untersuchungen ihnen näher traten entpuppten auch sie sich als Membranschleime. So wurden die lange (~Lauterbach~) als Inhaltsschleime betrachteten Cacteenschleime ebenfalls als Membranschleime erkannt (~Walliczek~) und das gleiche gilt von dem Schleime von _Viscum_ (~Czapek~). Nur bei _Orchis_ ist mir die Sache auch heute noch zweifelhaft. Mit Wasser bilden die Schleime kolloidale Lösungen. Einige (_Althaea_, _Linum_, _Cydonia_) lassen sich mit Ammonsulfat aussalzen (~Pohl~). Offenbar haben wir es aber bei den Koryzo-Membraninen nicht mit einer Substanz, sondern mit einer ganzen Klasse von Substanzen zu tun. Das zeigt schon das verschiedene Verhalten zu Wasser: einige quellen kaum, andere stark, noch andere lösen sich darin. =Lit.= ~Tschirch~, Kapitel Schleimmembran in Angew. Anatomie 1888, S. 193. (Dort eine zusammenfassende Darstellung). Ferner Chemie u. Biologie d. pflanzl. Sekrete. Leipzig 1908. -- ~Kützing~, Grundzüge t. 4. -- ~Hofmeister~, Über die zu Gallerte aufquellenden Zellen der Samenepidermis. Ber. der Sächs. Ges. d. Wissensch. 1858. -- ~Nägeli~ u. ~Cramer~, Vorkommen u. Entstehen einiger Pflanzenschleime. Zürich 1855 (Arch. d. Pharm. 1857, 190) -- ~Wigand~, Desorganisation der Pflanzenzellen. Pringsh. Jahrb. 3, 1863. -- ~Frank~, Anatom. Bedeut. u. Entsteh. d. vegetabil. Schleime. Pringsh. Jahrb. 5 (1865). -- ~Trécul~, Des mucilages chez les Malvacées, le tilleul, les Sterculiacées, les Cactées et les Orchidées indigènes. Compt. rend. 1862. -- ~Radlkofer~, Monographie der Gattung Serjania. München 1875. -- ~Klebs~, Organisat. d. Gallerte bei einigen Algen usw. Arb. d. bot. Inst. Tübingen II. -- ~Guignard~, Observat. sur l’appareil mucifère des Laminariées Ann. sc. nat. (8) 15, 1892. -- ~Uloth~, Pflanzenschleim und seine Entstehung. Flora 58, 809. -- ~Abraham~, Bau u. Entwickl. der Wandverdick. in d. Samenoberhautzellen einiger Cruciferen. Pringsh. Jahrb. 16. -- ~Flückiger~ (Buccu). Schweiz. Wochenschr. f. Pharm. 1873. -- ~Marktanner-Turneretscher~, Z. Kenntn. d. anatom. Baues unserer Loranthaceen. Sitzungsb. d. Wien. Akad. 1885. -- ~van Tieghem~, Sur les canaux à gomme des Sterculiacées. Bull. soc. bot. de France 1885. -- ~Hartwich~, Schleimzellen d. Althaea. Pharm. Zentralh. 1891, 586 und (Orchis). Arch. Pharm. 1890. -- ~A. Meyer~ (Orchis). Arch. Pharm. 1886, 325. -- ~Lauterbach~, Bau u. Entwickl. d. Sekretbeh. bei d. Cacteen. Bot. Zentralbl. 1889. -- ~de Bary~, Anatomie. -- ~Radlkofer~, Monogr. v. Serjania 1875. -- ~Mangin~, Bull. soc. bot. 1894. -- ~Tschirch~, Harze und Harzbehälter. Botanischer Teil. -- ~H. Walliczek~, Studien über die Membranschleime vegetativer Organe. Pringsh. Jahrb. 25 (1893), 227 (auch Diss. Bern 1893). Dort weitere Literatur. -- ~Nadelmann~, Über Schleimendosperme der Leguminosen. Pringsh. Jahrb. 21, 1890 (auch Diss. 1890). -- ~Popovici~, Strukt. u. Entw. eigenart. Wandverd. Diss. Bonn 1893. -- ~Czapek~ Biochemie und in ~Gjokic~, Sitzber. d. Wien. Akad. 105, I (1896), 451 (Viscum). -- ~Hoehnel~, Ebenda 1881. +Chem. Untersuch.+: ~Vauquelin~, Ann. de chim. 80 (1811), 314. -- ~Tollens~, Handb. d. Kohlenhydrate. -- ~Czapek~, Biochemie. -- ~Cullinan~, Bot. Jahresber. 1884, I. 71. -- ~Gans~ und ~Tollens~, Lieb. Ann. 249 (1889), 245. -- ~Pohl~, Zeitschr. phys. Chemie 14 (1890), 151. -- ~Bauer~, Landw. Versuchsstat. 40 (1892) 480. -- ~Yoshimura~, Agric. Coll. Tokio 1895. -- ~Hilger~, Ber. d. d. chem. Ges. 36 (1903) 3198. -- ~Harlay~, Journ. pharm. chim. 1902. -- ~Sestini~, Zentralbl. Agric. Chem. 1878. -- ~Frischmuth~, Chem. Zeit. 21, R. 289. -- ~Valenta~, Klebe- und Verdickungsmittel. 1884. -- Weitere Lit. bei den einzelnen Abschnitten. ~Hérail~ benutzt, ~Mangin~ folgend, in Traité de pharmacologie 1901, die Färbbarkeit der Schleimsubstanzen durch organische Farbstoffe zur Einteilung und teilt sie in mucilages simples, m. mixtes und m. indéterminés und die m. simples wieder in +mucilages cellulosiques+ (färbbar durch Orseilline BB und Naphtholschwarz in saurem Bade und Congorot und Benzopurpurin in alkalischem Bade -- nie durch sog. basische Farben), +mucilages pectosiques+ (färbbar durch basische Farben in neutralem Bade, z. B. Bismarckbraun, Methylenblau, Bleu de Nil und Rutheniumrot) und +mucilages callosiques+ (färbbar durch Anilinblau in essigsaurem Bade und durch Corallin-Soda). Da alle uns interessierenden Schleime, mit Ausnahme des _Salep_, in die zweite Abteilung (m. pectosiques) gehören, hat diese Einteilung für uns keinen Wert. Ich führe die weitere Einteilung auf morphologischer Grundlage durch. Die erste Gruppe der Koryzo-Membranindrogen bilden die, bei denen der Schleim von der +Interzellularsubstanz+ gebildet wird. Hierzu gehören alle Kryptogamen-Schleimdrogen. Die zweite Gruppe umfaßt die, bei denen der Schleim von den +sekundären Membranverdickungsschichten+ gebildet wird. Bei ihnen finden wir entweder Schleimepidermen oder Schleimendosperme oder Schleimzellen im Innern der Organe. 1. Schleime der Interzellularsubstanz. Cryptogame Schleimdrogen. Carrageen. =Syn.= Caragaheen, Carragheen, Karragaheen, Lichen Caragaheen, Fucus crispus s. hibernicus -- Irländisches oder Perlmoos, Seeperlenmoos, Krauser Knorpeltang, Knorpelmoos, Krausmoos, Gallertmoos, Seemoos, Felsenmoos -- mousse d’Irlande, goémon, mousse perlée (franz.) -- irish Moss, pearl moss (engl.). -- fuco carageo (ital.). -- jersch mos (holl.) -- karagén (ung.) -- λειχὴν ὁ ἰρλανδικός (n. griech.). =Etym.= Carrageen ist der in der irländischen Volkssprache aus Corigeen oder Carraigeen (= Felsenmoos) entstandene Name der Alge. Daß Corigeen aus κορίζα (= Schleim) und γίγνομαι (= entstehen) entstanden sei (wie ~Wittstein~ meint), ist sehr fraglich. Carraigeen ist wohl ein keltisches Wort (Stamm: car = Fels). Nach Aussage eines Irländers ist die richtigste Schreibweise: Carraigeen (~Hanbury~), Carraig (irisch = Fels, daher Felsenmoos). Mos, mossa (mosi, mus) ist der skandinavische Ausdruck für alle laubigen Cryptogamen (nicht nur für die Moose). =Stammpflanze=: =Chondrus crispus= (L.) ~Stackhouse~ (Chondrus crispus ~Lyngbye~, Chondrus polymorphus ~Lamouroux~, Fucus crispus L., Sphaerococcus crispus ~Agardh~) und =Gigartina mamillosa= (~Goodenough et Woodward~) ~J. G. Agardh~ (Sphaerococcus mammillosus ~Agardh~, Mastocarpus mammillosus ~Kützing~). Letztere Alge tritt in der Droge meist stark zurück. =Etym.= χόνδρος = Knorpel, crispus = kraus, σφαῖρα = Kugel, κόκκος = Kern, γίγαρτον = Weinbeerenkern, ρόδον = Rose, φῦκος = Tang. -- χονδρός bei ~Dioscurides~ ist, wie ich durch Vergleich der Abbild. im Cod. constantinopol. ersehe, ein _Hordeum_. =Systemat. Stellung.= Euphyceae -- Rodophyceae -- Gigartinaceae oder Klasse: Rhodophyceae -- Unterklasse: Florideae -- Reihe: Gigartinales -- Familie: Gigartinaceae -- Gigartineae. [Illustration: Fig. 95. _Chondrus crispus._ A. Starkgeteilter Thallus mit schmalen Lappen B. Anderes Extrem, breitblattartiger Thallus, der nur an der Spitze Teilungen zeigt. [+Tunmann+ gez.]] =Beschreibung der Stammpflanzen.= +Chondrus+ (= Knorpeltang) und +Gigartina+ (= Kerntang) sind etwa 7-15 cm hohe, +rote Meeresalgen+, deren Farbe von rein rosenrot über purpurrot, rotviolett zu blauviolett variiert, und deren laubiger, einer Haftscheibe aufsitzender Thallus (Lagerstämmchen) einen ganz außerordentlichen +Polymorphismus+ zeigt (Fig. 95). Bald ist er nur wenig geteilt, bald in zahlreiche Lappen zerschlitzt, bald sind die Abschnitte breit, bald schmal, bald sehr schmal, bald reicht die Zerschlitzung bis zur Basis, bald findet sie sich nur an der Spitze breiter Lappen. Diese Variabilität war der Grund, weshalb man früher zahlreiche (über 40) Varietäten unterschied. [~Turner~ z. B. unterschied 9 Spielarten: virens, stellata, aequalis, filiformis, patens, lacera, samiensis, geniculata und plana.] Die Verzweigung, die stets rein dichotom ist, ist oft so groß, daß das Ganze ein krauses Durcheinander bildet. Der Thallus zeigt sehr deutliche Fadenstruktur. Die Fortpflanzungskörper sind zweierlei Art: ungeschlechtlich entstehende +Tetrasporen+ und durch einen Geschlechtsakt gebildete +Cystocarpien+. Die Tetrasporen sind paarweise geteilt und bilden Gruppen (Sori). Das weibliche Organ, das +Procarp+, besteht aus 4 Zellen. Die kleinste und innerste Zelle desselben, das +Carpogon+, bildet einen fadenförmigen, über die Lageroberfläche heraustretenden Fortsatz, die +Trichogyne+ (Fig. 96 A tr). An diese legt sich zur Zeit der Fortpflanzung eines der in krugförmigen, an der Thallusoberfläche zu Krusten vereinigten +Antheridien+ gebildeten, unbeweglichen +Spermatien+ (Spermatozoiden) an. Es erfolgt Kopulation. Die befruchtete Carpogonzelle kopuliert durch einen sehr kurzen Ooblastemfortsatz mit einer zweiten Zelle des Procarps, der +Auxilarzelle+. Diese sendet nunmehr in das Thallusgewebe ein Büschel von gegliederten Fäden, den +Gonimoblasten+, dessen Endzellen und oberen Gliedzellen sich schließlich zu +Sporen+ entwickeln. Diese Sporen, die den von der Thallusrinde umhüllten +Fruchtkern+ bilden, werden entweder vom +Cystocarpium+ durch Poren ausgestoßen und keimen alsdann im Wasser oder die Keimung erfolgt schon im Cystocarpium. [Illustration: Fig. 96. A. _Endocladia vernicata._ Dreizelliger Carpogonast einer Auxiliarzelle. c Carpogon. tr Trichogyne. [Nach +Hauptfleisch+.] B. _Chondrus crispus_ mit Cystokarpien. [Nach +Kützing+.]] [Illustration: Fig. 97. _Gigartina mamillosa_ mit Cystokarpien. [Nach +Kützing+.]] Bei +Gigartina+ ~Stackhouse~ (inkl. Mammillaria ~Stackhouse~ [Mastocarpus ~Kützing~], inkl. Chondrodictyon ~Kützing~, inkl. Chondroclonium ~Kützing~ [Chondracanthus ~Kützing~], inkl. Sarcothalia ~Kützing~) liegen die ebenfalls durch Poren sich öffnenden Cystocarpien in kleinen, zitzenartig über den Thallus hervortretenden Fruchtzweigchen (Fig. 99). Der Fruchtkern ist hier von einer Faserhülle umgeben. Bei +Chondrus+ (~Stackhouse~) ~J. Agardh~ sind die Cystocarpien oval, meist einseitig schwach vorspringend, über die Hauptsprosse des Thallus verteilt. =Lit.= Chondrus crispus ~Stackhouse~ apud ~Lemouroux~ in Ann. Mus. XX, 126. -- ~Lyngbye~ Hydr. dan. p. 15, Tab. 5, A. B. -- ~J. G. Agardh~ Florid. 246 und Alg. med. p. 104. -- ~Schmitz~ Sitzungsber. d. Berl. Akad. 1883, 223. -- ~Schmitz~ und ~Hauptfleisch~ in Engler-Prantl Nat. Pflanzenf. I (2), 356 u. 357 (dort die übrige botanische Literatur). -- ~Berg-Schmidt~, Atlas S. 75 t. 162 (dort die systematische Literatur). +Abbild.+ ~Morison~, Plant. hist. univers. Oxoniae (1699), III tab. 11 (Erste Abbild. von Chondr. crisp.) -- ~Berg-Schmidt~, Atlas, Taf. 162. -- ~Pabst-Köhlers~ Medizinalpflanzen 80. -- ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. p. 15. -- ~Bentley-Trimen~, Medic. plants IV, Taf. 305. -- ~Rabenhorst~, Cryptogamenflora. -- ~Lyngbye~ a. a. O. =Vorkommen.= Die Carrageenpflanzen sind Meeresalgen, die an den Westküsten des Atlantischen Ozeans von Norwegen (Nordkap) bis Spanien, besonders reichlich bei Irland, aber auch bei den Azoren vorkommen und an der nordamerikanischen Küste sich überall dort finden, wo die Küstenkonfiguration Westküsten erzeugt (Kap Cod Bay). _Chondrus crispus_ fehlt im Mittelmeer und der Ostsee. =Pathologie.= Auf marinen Algen sind parasitische Pilze im allgemeinen selten, doch sind solche auch auf _Chondrus crispus_ beobachtet worden. Unter denselben ist besonders der Pyrenomycet _Leptosphaeria Chondri_ ~Rosenvinge~ (_L. marina_ ~Rostr.~ non ~Ell. et Ev.~) zu nennen, der seine Perithecien, vermischt mit _Phoma_-Conidien, auf den Tetrasporangiensori und Cystocarpien bildet (s. ~L. Rosenvinge~ in Botanisk Tidsskrift Bd. XXVII 1906 p. 33 ff.) Außerdem wird von ~Jones~ eine _Sphaerella Chondri_ beschrieben (Ed. Fischer). Über die Überzüge von _Flustra_ vergl. unten unter Beimengungen. =Einsammlung.= Gesammelt wird das europäische Carrageen im Norden und Nordwesten Irlands, gelangt nach Sligo und von dort nach Liverpool. Ferner in neuerer Zeit in der Bretagne zwischen Plougreseant und Perros-Guirec im Tréguier. Über Port Blanc gelangt das Produkt nach Hamburg. Die französische Regierung hat 1890 Maßregeln ergriffen, dem unsinnigen Ausreißen des Knorpeltangs Einhalt zu tun. Das amerikanische, meist vortreffliche Carrageen bildet die Hauptmenge des Handels. Es besteht fast nur aus _Chondrus crispus_. Es wird in Plymouth (Massachusetts) bei Scituate und Cohasset an der Cape Cod Bay gesammelt. Das Geschäft betreiben dorthin eingewanderte Irländer. Man sammelt die Alge entweder mit der Hand bei der großen Ebbe vor den Springfluten (die besten Sorten) oder mit einem eisernen Rechen bei den kleinen Ebben (die schlechteren, technischen). Dabei wird der Thallus fast immer von der Haftscheibe abgerissen. Die abgelösten Pflanzen werden dann an der Sonne gebleicht, um den roten Farbstoff zu entfernen, in mit Süßwasser gefüllten Fässern gerollt und nochmals an die Sonne gebracht (~Melzar~, ~Bates~), wohl auch mit schwefliger Säure nachgebleicht (~Guéguen~). Durch diese Behandlung wird die schön rote schlüpfrige Alge gelblich weiß und knorpelig hart. Die Haupternte, die den Preisgang bis zum Frühjahr reguliert, beginnt Mitte September. ~Krämer~ berichtete (1899) über die Einsammlung in Amerika. Die Ufer der Bucht von Scituate, die etwa 10000 Pfd. Carrageen p. a. exportiert, fallen allmählich gegen die brakige Marsch ab. Dort wird das Carrageen von Ende Mai bis September gesammelt, am meisten im Juni und Juli. Die Sammler und Sammlerinnen arbeiten oft mit den an langen Stangen befestigten schweren eisernen Rechen von 4 Uhr morgens bis 8 Uhr abends. Die Segler gehen mit der Halb-Ebbe hinaus und kommen mit der Halb-Flut zurück. Ein Sammler kann 50 Pfd. pro Tag sammeln. Das frische Carrageen wird in zwei Fuß im Durchmesser haltende hölzerne Tröge (boxes) geschüttet, dann ausgebreitet und eine Woche der Luft und Sonne ausgesetzt. Dann ist es schon hellpurpurgelb. Nun wird es in halbe «hogsheads» (Fässer von 50-70 Gallonen) getan und mit Segeltuch zugedeckt. Diese Fässer werden an klaren Tagen zu den brakigen Marschen gerollt. Sie werden dann mit Wasser gefüllt, die Leinwand wieder darüber getan und das Ganze wieder hinaufgerollt. Dann wird das Carrageen wieder ausgebreitet und unter öfterem Umwenden weiter gebleicht. Schließlich wird es in Fässern oder Ballen verpackt. =Lit.= ~Melzar~, Proc. am. pharm. assoc. 1860, p. 165. -- ~Bates~, Gathering and curing of carag. in Massachusetts, Amer. journ. ph. 1868, p. 417, Ph. Journ. XI (1869) 298 und VIII (1878) 304. -- ~Krämer~, Am. journ. pharm. 1899, p. 481, Pharm. journ. 1899 Nr. 1527. -- ~Guéguen~, Le carag., ses emplois pharm. et industr. et sa recolte en Bretagne. Bull. sc. pharmac. X (1904) p. 225. =Handelssorten, Handelswege, Verpackung.= Der Handel unterscheidet C. naturale -- depuratum -- electum albissimum. Nur das letztere ist für Heilzwecke brauchbar. Der Großhandel bezeichnet: elect (⅟₁ und ¾) -- fein A -- fein B -- fein C -- 0000 -- 000 -- 00 -- ff. naturell 0 -- fein nat. 1 -- gut. (=Grossmann=) Haupteinfuhrhafen und Handelsplatz für Carrageen ist Hamburg. Carrageen kommt meist in gepreßten Ballen zu 50 und 100 kg in den Handel. Es wird im Großhandel meist als Lichen (!) Carragheen bezeichnet, von allen Bezeichnungen die unrichtigste, denn es ist doch keine Flechte, ebensowenig wie ein Moos. [Illustration: Fig. 98. _Chondrus crispus_. A. Querschnitt durch ein Cystokarpium, schwach vergrößert. B. Ein Stück stärker vergrößert. r Rindenschicht, m Markschicht, s Sporen. [Nach +Luerssen+.]] =Morphologie der Droge.= _Chondrus crispus_ besitzt einen kurzen, fast zylindrischen Stiel und einen kleinen, höchstens handgroßen, 4-15 cm hohen, fleischigen, knorpeligen (daher _Chondrus_, s. oben Etym.), flachen, gallertartigen, laubartigen, am Rande etwas wellig krausen, wiederholt gabelig, in breitere und schmälere Lappen +dichotom+ zerteilten, nach oben fein zerschlitzten, an der Spitze gestutzten, ausgerandeten, bei der Droge gelblichen, hornartig durchscheinenden Thallus. Die +Gestalt und die Zahl der Lappen ist sehr variabel+ (s. oben). Dieselben sind entweder schmal, linealisch, gespreizt mit den äußersten Ästen durcheinander geschoben, am Ende abgerundet, gestutzt oder seicht ausgerandet (so der Typus) oder sie sind stark verbreitert, bedecken einander zum Teil, sind an den Rändern wellig gekräuselt oder unregelmäßig gelappt. Der Thallus ist am Grunde mit einer kleinen, am Gestein fest haftenden Scheibe (Haftscheibe) versehen, die jedoch, da die Droge beim Einsammeln von dem Boden abgerissen wird, derselben so gut wie immer fehlt. Eine Haftscheibe trägt oft mehrere Sprosse. Der laubartigen Form des Thallus verdankt die Pflanze die Bezeichnung +Moos+ (s. oben Etym.). Bei weitem nicht alle Exemplare der Droge enthalten Fortpflanzungsorgane. Die +Cystokarpien+ (Sporenfrüchte) sind in Form von oval-halbkugeligen, aus der Ebene des Thallus nur wenig buckelig hervorragenden, flach warzenförmigen Erhebungen an der Thallusoberseite sichtbar (Fig. 98). Unterseits entsprechen ihnen (besonders an der trockenen Droge) oft flache Vertiefungen. Sie enthalten zahlreiche Karposporen (Fig. 98). Die +Tetrasporen+ finden sich im Thallus zerstreut in kleine, die Thallusfläche schwach vorwölbende Häufchen vereinigt. Sie sind an der Droge sehr viel seltener zu finden als die Cystokarpien. Der gallertig-fleischige, verschieden verzweigte Thallus von _Gigartina mamillosa_ ist nicht flach, sondern durch Aufwärtsbiegen der Ränder rinnenförmig (nur selten ist auch hier der Thallus flach riemenförmig). Die Abschnitte sind schmäler. Die meist in großer Anzahl vorhandenen +Cystokarpien+ sitzen in kurzen, umgekehrt eiförmig-ellipsoidischen, papillösen (daher mamillosus = zitzenförmig) und kurz gestielten Exkreszenzen der Thallusoberfläche (Fig. 99). In der Droge erscheinen diese «Fruchtzweigchen» oft etwas umgebogen und gleichen Dornen (Fig. 97). Den häutigen Haftscheiben entspringen mehrere bis 20 cm hohe Sprosse. Im Habitus ist _Gigartina_ dem _Chondrus_ ähnlich und wie dieser in der Zerteilung des Laubes variierend. Die Farbe dieser Florideen ist im frischen Zustande prächtig rot und wird erst durch den Bleichprozeß (s. oben) in die charakteristische gelbliche Farbe übergeführt, doch zeigen hier und da besonders die Spitzen des Laubes und die Tetrasporenhäufchen auch in der trockenen Droge noch eine schön rote Farbe. Die Farbe der trockenen Droge ist weiß oder gelblich oder gelblich weiß. [Illustration: Fig. 99. _Gigartina mamillosa._ Längsschnitt durch einen Thalluslappen mit einem Cystokarpium. [Nach +Luerssen+.]] Die trockene Droge ist fast geruchlos. Mit kaltem Wasser angequollen (wobei Carrageen seine ursprüngliche Gestalt wieder annimmt), entwickelt es den charakteristischen sogenannten Seegeruch, der Geschmack ist schleimig fade, besonders bei den schlechteren Sorten etwas salzig. Kocht man es mit dem 30fachen Gewicht Wasser, so erhält man einen beim Erkalten erstarrenden, gallertigen Schleim. =Anatomie.= Der Thallus des Carrageen besteht aus zwei Schichten, der zentralen Markschicht und der beiderseits dieser aufliegenden Rindenschicht. «Von einem mittleren Strange dünner, längsverlaufender, hier und da gegabelter Markfäden (Leitungsgewebe) zweigen auswärts zahlreiche, wiederholt gegabelte Rindenfäden ab, die einwärts etwas lockerer, aber doch ziemlich dicht geordnet, auswärts dicht seitlich zusammenschließen zur Bildung einer kleinzelligen, antiklinreihigen Außenrinde» (Assimilationsgewebe). Die Vegetationsspitze zeigt eine fächerförmig strahlende Faserstruktur. Die sich leicht von der Markschicht ablösende Rindenschicht besteht aus 4-5 Reihen außen sehr englumiger, nach innen zu allmählich weiter werdender kleiner rundlicher Zellen (+Rindenfäden+). Die äußerste, sehr enge Zone ist von einem in Schwefelsäure unlöslichen Häutchen das in seinem Verhalten etwas von der Cuticula der höheren Pflanzen abweicht (~Tunmann~), sowie bisweilen von ausgetretenen Schleimmassen bedeckt. Die Zellen der Rindenschicht stehen bisweilen, wie Behandeln des Schnittes mit Jodschwefelsäure lehrt, durch zarte Plasmafäden in offener Kommunikation miteinander, aber nur in radialer Richtung. Bisweilen sitzen auf einer weiten Zelle an der Grenze von Rinde und Markschicht zwei, auf jeder dieser wiederum zwei Zellen und so fort, so daß baumartige Bildungen entstehen, deren Elemente untereinander kommunizieren. Der Inhalt der Rindenzellen wird durch Jodwasser und Osmiumsäure nicht verändert, Jodjodkali färbt stark gelb, Millons Reagens rötlich. Er enthält hauptsächlich die Reste der Chromatophoren neben Amylodextrin. Die Lumina der Rindenzellen sind rundlich oder oval. Je weiter nach innen zu, um so weiter werden die Zellen, um so unregelmäßiger ihr Lumen und um so reichlicher das Amylodextrin im Inhalt. In der breiten Markschicht ist das Lumen selten rundlich, meist oval, schlauchartig gestreckt. Durch schmale geschlossene Tüpfel, neben denen die Membran derber ist, stehen die Lumina benachbarter Zellen miteinander in Verbindung (Siebhyphen ~Wille~). Bisweilen schien es mir, als ob die dünne Tüpfelmembran mittelst sehr feiner Kanälchen durchbrochen sei, so daß also auch hier eine offene Kommunikation hergestellt sein würde. (Also Makroporen mit Mikroporen, ~Wille~.) Die großen Markschichtzellen (+Markfäden+) besitzen wie die 5-10mal kleineren Rindenzellen eine das Lumen auskleidende, nicht sehr dicke sekundäre, aus mehreren z. T. amyloidischen (~Tunmann~) Lamellen bestehende Membranverdickungsschicht und eine außerordentlich breite, durchweg verschleimte Interzellularsubstanz (+Kollode+). Die letztere löst sich schon in kaltem Wasser leicht. +Sie liefert in allererster Linie den Carrageenschleim.+ Die das Lumen umgebende, bisweilen, besonders in der Nähe der Tüpfel, Schichtung zeigende Innenhaut löst sich wenig oder gar nicht, sie besteht aus einer eigenartigen Cellulose, wird durch Jodschwefelsäure blau, durch Chlorzinkjod zunächst hellblau, dann dunkelblau, durch Jodjodkali, nach längerem Liegen, blau -- was alles bei der verschleimten Interzellularsubstanz nicht der Fall ist, die auch auf Chlorzinkjod nicht reagiert und auch Farbstoffe wenig aufnimmt, doch färbt sie sich mit den sog. Pectinfärbemitteln: Methylenblau, Naphtylenblau und Bismarckbraun (~Tunmann~). Nach ~Wisselingh~ wird die verschleimte Interzellularsubstanz durch Glyzerin bei 300° zerstört. Rutheniumrot färbt alle Membranteile rot. Der aus zahlreichen kleinen rundlichen oder ovalen Körnchen bestehende Inhalt der Markzellen färbt sich mit Chlorzinkjod rotviolett, mit Jod violett bis rotbraun. Erwärmt man einen mit Jod gefärbten Schnitt, so verkleistern die Körnchen und in der Zelle liegt ein rotvioletter Ballen. Der Inhalt der Zellen der Markschicht verhält sich also wie +Amylodextrinstärke+ (vergl. oben S. 199). Ich habe sie denn auch bereits 1888 als solche bezeichnet. Gewöhnlich wird sie +Florideenstärke+ genannt. Werden dünne Schnitte im geschlossenen Rohr einen Tag lang mit alkoholischer Kalilauge erwärmt und nach dem Abwaschen einige Stunden in Jodjodkali gelegt, so färbt sich der Inhalt der Zellen, nicht die Wand, blau (~Flückiger~). Die Markschicht macht die Hauptmasse der Droge aus. Ihre Zellen sind in Größe und Form sehr unregelmäßig. In der Nähe des Fruchtkerns der Cystokarpien, die man ziemlich häufig an der Droge antrifft, sind sie kurz. Der Fruchtkern (s. oben) des Cystokarpiums bildet bei der Droge meist ein unregelmäßiges Flechtwerk geschrumpfter Stränge, dessen Lücken zahlreiche, zusammengehäufte, an Amylodextrin reiche Sporen eingelagert sind. Dieser dem Thallus eingesenkte Fruchtkern ist bei _Chondrus_ nicht von einer besonderen Faserhülle umgeben. Die Sporen der Cystokarpien sind rundlich, oval, birnförmig oder unregelmäßig und bilden Häufchen, die oft zu mehreren vereinigt in der Markschicht liegen und eine oft beiderseitige flache Hervorwölbung der Rindenschicht erzeugen, so daß die Cystokarpien durch runde Warzen auf der Thallusoberfläche sich bemerkbar machen. Die Sporen bilden die Endglieder kurzer, oft mehrmals gabelig verzweigter Zellreihen. Bei _Gigartina_ liegen die Cystokarpien in dornartigen Ausstülpungen des Thallus (s. oben). Um die anatomischen Verhältnisse zu studieren, präpariert man am besten in Alkohol und läßt allmählich verdünntes Glyzerin zufließen. Durch Wasser quillt der trockene Querschnitt auf die doppelte Breite. =Lit.= ~Vogl~, Komment. z. österr. Pharmak. VIII. 1908. -- ~Tschirch~, Angew. Anat. S. 100. -- ~Berg~, Anat. Atl. t. II. -- ~Schmitz-Hauptfleisch~ in Engler-Prantl, Pflanzenfam. I, 2. -- Für die _Florideenstärke_: ~Nägeli~, Stärkekörner, S. 533. -- ~van Tieghem~, Compt. rend. 61, p. 804. -- ~Schmitz~, Chromatophoren, S. 151. -- ~Schimper~, Pringsh. Jahrb. XVI, S. 199. -- ~N. Wille~, Bidrag til algernes physiologiske anatomi. Svensk. Vetensk. Akad. Handling. 1885. -- ~Hansen~, Mitth. zool. Stat. Neapel XI. -- ~Bruns~, Flora 1894, Ergänzb. S. 173. -- ~Kolkwitz~, Ber. d. Bot. Ges. XVII, S. 247, Zeitschr. wiss. Mikrosk. XVII, S. 263. -- ~Tunmann~: Anatomie und Inhaltsstoffe von Chondrus crisp. Apoth. Zeit. 1909, Nr. 17. -- Erste Abbild.: ~Oudemans~ Atlas 1854. =Chemie.= Carrageen enthält meist c. 1% +Stickstoff+ (= 6,3% +Proteïnsubstanzen+), bisweilen auch mehr (bis 9,4% Proteïnsubstanzen, ~Church~). Andere Meeresalgen enthalten 1-1,8% N (~Marchand~). Mit zwanzig Teilen Wasser gekocht liefert Carrageen beim Erkalten eine Gallerte, die durch Jod nicht blau wird (Unterschied von Isländischmoosgallerte) und sich nicht in Cuoxam. löst. Carrageenschleim wird durch Ammoniumsulfat, Ammonphosphat und Kaliumacetat gefällt (~Pohl~). Mit 50 Teilen Wasser gekocht erhält man eine Lösung, aus der Alkohol den +Schleim+ (Carrageenin ~Pereira~, Caragin ~Berzelius~, Goëmin ~Blondeau~ -- Goëmon ist der nordfranzösische Name der Alge -- Gelin) in Fäden fällt, die hornartig eintrocknen, c. 0,8% Stickstoff und bis 16% Mineralsubstanzen enthalten, sich nicht in Kupferoxydammon lösen und durch metallisches Jod sich rötlich färben. Dieser Schleim liefert mit schwacher Salpetersäure Weinsäure, Oxalsäure und Zuckersäure, mit starker 14 bis 23% +Schleimsäure+ (~Flückiger~, ~Obermeier~, ~Sebor~). Er gleicht dem Pararabin ~Reichardts~. Durch Kochen mit Schwefelsäure entsteht neben Ameisensäure +Lävulinsäure+ (~Bente~). ~Schmidt~ erhielt bereits 1844 hierbei auch Zucker. Bei der Hydrolyse lieferte Carrageen +Mannit+, Hydroxylmethylfurfurol und d-+Galaktose+, sowie auch Fruktose und Glukose. Carrageen enthält also außer Methylpentosen- und Glukosegruppen ein +Galaktan+, +Fruktosan+ und wenig +Pentosan+ (~Muther~ und ~Tollens~). ~Sebor~ erhielt bei der Hydrolyse ebenfalls Galaktose, dann d-Glukose, Fruktose und Arabinose. Die gefundene Menge Schleimsäure (23,4%) entspricht 29,6% Galaktose (~Tollens~ berechnet 20-28%), die mit Salzsäure erhaltene Menge Furfurol (1,2%) entspricht 2,5% Pentosen. ~Sebor~ hält den Schleim für eine sehr komplizierte, wohl aus +Galaktan+, +Glukosan+ und +Fruktosan+ bestehende Kohlenhydratkombination von hohem Molekulargewicht, in dem auch ein d-Galakto-Xylan steckt. Der Stickstoff, den schon ~Blondeau~ im Schleime fand -- er fand 2% (~Flückiger~ und ~Obermeier~ 1%) neben 2,5% Schwefel -- und der sehr schwer aus ihm zu entfernen ist, ist natürlich auf eine Verunreinigung mit Eiweißsubstanzen zurückzuführen. Der reine Schleim entspricht der Formel C₆H₁₀O₅ (~C. Schmidt~). ~Giraud~ fand nur Spuren N darin. Auch die Mineralsubstanzen sind schwer aus dem Schleim zu entfernen. Selbst nach 20-30 maligem Fällen sind noch beträchtliche Mengen darin (~Morin~). Die Menge des Schleimes beträgt c. 80% (nach ~Church~ 55,5%, ~Herberger~ 79,1%). Er ist +ausschließlich+ Membranschleim (Kollode). Zucker fehlt im Carrageen (~Guibourt~). Durch Destillation des Carrageen mit Schwefelsäure und Wasser erhält man im Destillat +Fukusol+, ein Gemenge von Furfurol und Methylfurfurol (s. bei _Laminaria_). C. enthält etwas +Fett+, aber keine Stärke, wohl aber einen mit Jod rotbraun sich färbenden Inhaltskörper der Zellen, der mit dem +Amylodextrin+ verwandt oder damit identisch ist (s. oben). C. enthält etwas +Jod+ (~Steinberg~ (1842), ~Sarpati~, ~Grosse~, ~Ebers~), das sich schon in der Asche von 10 g leicht nachweisen läßt (~Flückiger~, ~van Itallie~, vergl. auch unter _Laminaria_), und +Brom+ (~Dupasquier~ 1843, ~Grosse~) in Form von Jodiden und Bromiden des Na, Ca und Mg, aber wohl auch (oder nur?) organisch gebunden. ~Tunmann~ gelang es in 0,5-1,0 Carrageen Jod auf mikrochemischem Wege nachzuweisen. Die +Asche+ beträgt 9,5-18% (14,15% ~Church~, 15,9% ~Jolles~). Sie ist reich an Sulfaten, z. B. Natrium- und Calciumsulfat und Chloriden. ~Czapek~ gibt 20,61% Reinasche an und darin 17,32% K, 18,73 Na, 7,16 Ca, 11,35 Mg, 2,21 Phosphorsäure, 41,24 SO₃, 3,79 Cl. Nach meinen Erfahrungen, die mit denen von ~Caesar~ und ~Loretz~ und ~Hauke~ übereinstimmen, kann man 18% Asche (als Maximum) verlangen. ~Hauke~ fand 15,32 bis 17,7%. ~Church~ fand, daß käufliches Carrageen mehr Schwefel enthält als dessen Asche. Der +Farbstoff+ ist in der Droge meist vollständig oder nahezu vollständig durch Bleichen zerstört. Er ist in Chromatophoren enthalten und ein Mischfarbstoff. Dieser Mischfarbstoff, den ~Cohn~ (1867) Rhodophyll nannte, besteht aus einem roten Farbstoff, der von ~Kützing~ (1843) als +Phycoërythrin+ bezeichnet wurde, und der schon beim Übertragen der Pflanze in Süßwasser in dieses diffundiert, einem gelben, dem Carotin ähnlichen Farbstoff (~Hansen~) und Chlorophyll. Das Phycoërythrin hat im Spektrum 4 Bänder: 590-620, 550 bis 570, 520-540, 485 bis 585 (~Schütt~). Das +Phycoërythrin+, das ~Molisch~ in hexagonalen Kristallen erhielt, scheint ein gefärbtes Protein oder eine Eiweißverbindung ähnlich dem Hämoglobin zu sein. [Illustration: Fig. 100. Thallus von _Chondrus crispus_ mit _Flustra pilosa_ (_Fl. pil._) besetzt. [+Tunmann+ gez.]] =Lit.= Die ersten Analysen sind von ~Herberger~ (~Buchner’s~ Rep. 49, 134 auch in ~Wiggers~ Pharmakognosie 1840 und in ~Pereira~ Heilmittellehre) und ~Feuchtwangen~ (Amer. journ. of sc. and arts XXVI). -- ~Dierbach~, Die neust. Entdeck. 1837 und Mat. med. 1841. -- ~Blondeau~, Journ. ph. 1865, II, 159. -- ~Rochleder~, Chem. u. Phys. d. Pflanz. -- ~C. Schmidt~, Ph. Jahresb. 1844. ~Lieb.~ Ann 51, S. 29. -- ~Steinberg~, Journ. p. Chem. 25, 379. -- ~Dupasquier~, Journ. pharm. chim. méd. 1843, 113. -- ~Grosse~, Pharm. Zentralbl. 1839, S. 125. -- ~Church~, Journ. of Botany 1876 und Proc. Amer. pharm. assoc. 25, (1877), 177. -- ~Marchand~, Ann. chim. phys. VIII (1866), p. 320. -- ~Giraud~, Etude compar. des gommes et mucilag. Thèse Paris 1875. -- ~Guibourt~, Journ. chim. méd. VIII, 663. -- ~Tollens~, Kohlenhydrate. -- ~Bente~, Ber. chem. Ges. 8, 417, 9, (1876), 1158. -- ~Pereira~, Heilmittellehre. -- ~Sebor~, Österr. Chem. Zeit. 3 (1900), 441 und Zeitschr. f. Zuckerindustrie in Böhmen 25, 94. -- ~Hädecke~, Über die aus C. entstehenden Zuckerarten, Diss. Göttingen 1887. -- ~Hädecke~, ~Bauer~ und ~Tollens~, ~Lieb.~ Ann. 238, (1887), 302. ~Hädecke~, Diss. Göttingen. -- ~Muther~ und ~Tollens~, Ber. d. chem. Ges. 1904, 298. -- ~Hansen~, Journ. pharm. 1896, 3, p. 462, Ann. agronom. 1896. -- ~Wheeler~ and ~Stanford~, Pharm. Journ. XII, p. 642. -- ~Stanford~, ibid. XII, p. 1019 u. XIV, p. 1009. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. 3. Aufl. -- ~Flückiger~ und ~Obermaier~, Schweiz. Wochenschr. 1868, 85. -- ~Tschirch~, Artikel Carrageen in Realenzyklopädie. -- +Rhodophyll+ siehe ~Czapek~, Biochemie I, und ~Molisch~, Bot. Zeit. 52 (1894) 177. -- Mikrochem. Jodnachweis: ~Tunmann~ Pharm. Centralh. 1907, 506. ~van Itallie~, Arch. Ph. 1889, 1132. Ned. Tijdschr. 1889. Pharm. Zentralh. 1901. =Geruch und Geschmack.= Der Geruch der Droge ist tangartig, der Geschmack fade-schleimig, schwach salzig. =Beimengungen.= In gutem Carrageen findet man fremde Algen nur in sehr geringer Menge, da die Droge von diesen, sowie von Schnecken, Korallen, Muscheln und Steinchen durch Auslesen befreit wird. Einige Exemplare der Droge zeigen weiße oder grauweiße Überzüge von _Flustra pilosa_ (Fig. 100), einer kleinen Bryozoë oder weißliche körnige Calciumkarbonatreste einer Blätterkoralle. «Reichlich mit Polypen besetztes C. ist zu verwerfen» (Pharm. helvet. IV.) In schlechter Droge finden sich bisweilen: _Ceramium rubrum_ ~Ag.~, _Fucus canaliculatus_, _Furcellaria fastigiata_ ~Lam.~ (_Fucus fastigiatus_ ~Huds.~), _Laurencia pinnatifida_ ~Lam.~, _Chondria obtusa_, _Polysiphonia_arten, _Hypnea confervoides_, _Stilophora rhizodes_, _Sphorochnus rhyodes_, _Haleseris polypodioïdes_, _Porphyria laminata_, sowie (was ich für zulässig halte): _Chondrus canaliculatus_ ~Grev.~, _Gigartina acicularis_ ~Lamour.~ (mit zylindrischem gabelteiligem Thallus, ist bis zu 40% im französischen Carrageen gefunden worden) und _Gigartina pistillata_ ~Lamour.~, sowie andere _Chondrus_- und _Gigartina_arten. =Prüfung.= Die Prüfung erstreckt sich, da die Droge nur in toto verwendet wird, auf eine Durchmusterung. Bei zweifelhaften Stücken empfiehlt sich Aufweichen in Wasser. Die 1 = 30 bereitete Gallerte darf durch Jod nicht blau werden. Mit schwefliger Säure gebleichtes Carrageen -- solches ist im Handel -- sollte nicht medizinisch verwendet werden. Man prüft darauf in folgender Weise: Wird C. mit 20 Teilen Wasser übergossen und eine Viertelstunde lang mazeriert, so darf die davon abfiltrierte Flüssigkeit blaues Lackmuspapier nicht röten. 20 ccm des Filtrates sollen durch einen Tropfen n/10 Jod gelb gefärbt werden. =Anwendung.= Das C. gehört zu den +Schleimdrogen+, also neben _Althaea_, _Linum_, _Traganth_ und _Salep_. Es rangiert zudem unter die schleimigen Vehikel. Die Ärzte brachten und bringen dem Carrageen wenig Interesse entgegen. Man verwendet es als Nährmittel bei Phthisikern (seit 1831), bei Katarrhen (~Stollwerks~ Brustbonbons, Gelatina Carrageen, Pasta cacao carragenata, Saccharolatum carragenat.) und zur Herstellung haltbarer Leberthranemulsionen, dann zum Cataplasma artificiale von ~Lelièvre~ (Ersatz der unsauberen Leinsamenbreiumschläge). Nur in Irland scheint es seit langem als Heilmittel (bei Schwindsucht, Skrofeln, ~Kolb~) und als geringwertiges Nahrungsmittel, z. B. zum Mästen von Kühen und Kälbern, benutzt worden zu sein. Die größte Menge, besonders des amerikanischen Carrageens, wird technisch verwendet und bildet ein wichtiges Ersatzmittel des Gummis in der Zeugdruckerei, der Appretur, der Papierfabrikation, der Textilindustrie (~Laboulaye~) und wird auch bei Herstellung der Stroh- und Filzhüte, sowie zum Klären (Schönen) von Bier und Honig benutzt. In der Kosmetik bedient man sich seiner zum Befestigen der Haare (+Bandoline+). Neuerdings benutzt man es auch zur Herstellung von Nährböden für bakteriologische Zwecke (~Miquel~). Das Kesselsteinmittel +Végétaline naturelle+ enthält auch Carrageen. =Lit.= ~S. Brown~, On the mucilage of the fungi with remarks on its application to economical ends. New. Edinb. philos. journ. 26 (1839) p. 409. -- ~Mérat~, Dict. scienc. medic. 1816. Fucus und Suppl. 1846. -- ~Tschirch~, in Realenzykl. 2. Aufl. -- ~Laboulaye~, Dict. d. arts et manufact. 1907 Lichen. ~Wolffsheim~, Journ. prakt. Heilk. 1836. -- ~Meyer~, De fuco crispo, Dissert. Berlin 1835. -- ~Mouchon~, Journ. de méd. de Lyon 1844. -- ~Hager~, Manuale. -- ~Pereira~, Heilmittellehre. =Geschichte.= Carrageen ist noch nicht lange in Anwendung, in England seit 1831 (durch ~Todhunter~ in Dublin empfohlen), etwas später in Deutschland (durch ~Gräfe~ aus England gebracht und durch ~Jobst~ empfohlen 1837), in Frankreich seit 1846 (empfohlen durch ~Guibourt~ 1832, ~Béral~ 1835). Die Anwendung zur Herstellung von Cataplasmen empfahl ~Lelièvre~ 1875 (~Guéguen~). Die Anwendung in der Industrie ist noch jüngeren Datums. Sie kam eigentlich erst auf, als infolge der Sudanaufstände das Gummi knapp zu werden anfing. Nur in Irland dürfte es als Heilmittel schon seit langem im Gebrauch sein (~Flückiger~). =Lit.= ~Todhunter~, Monthl. gaz. of health, Jan. 1831. -- ~Pereira~, Elem. of mat. med. II (1845) part. I. 9. -- ~Dierbach~, Die neuest. Entd. d. Mat. med. I (1837) 50, II S. 271. -- ~Flückiger~, Pharmak. 3. Aufl. und Pharmakographia. -- ~Guibourt~, Sur le Carragaheen, Journ. chim. méd. VIII, 1832. -- ~Béral~, Ebenda, XI, 1835 u. Bull. gén. de thérap. VIII, 1835. =Paralleldrogen.= Als solche können alle Florideen aus der Verwandtschaft von _Chondrus_ und _Gigartina_ betrachtet werden, besonders _Gigartina acicularis_ (s. oben unter Beimengungen), denn alle diese liefern, wenn sie zuvor gebleicht werden, einen farblosen Schleim ähnlicher Eigenschaften. Als Carrageenersatz werden speziell genannt: _Gelidium cartilagineum_ ~Gaill.~, _Gracilaria compressa_ ~Grev.~, _Cyclocladia articulata_ ~Grev.~ und _Gloiopeltis_arten. Dazu gehören auch die _Agar-Agar_ liefernden Algen (s. d. und ~Dragendorff~, Heilpflanzen). Stipites Laminariae. =Syn.= Alga digitata, Riementang -- Laminaire digitée (franz.). =Stammpflanze.= =Laminaria Clustoni= (~Edmonston~) ~Le Jolis~ als besondere Art oder als Varietät von L. digitata (L.) ~Lamx.~ (Fucus digitatus L., Hafgygia digitata Ktz.): =Laminaria digitata= (L.) ~Lamouroux~ β =Clustoni= ~Edmonston~ (-- auch Cloustoni oder Cloustonii -- geschrieben). Die älteste Bezeichnung (1772), die vielleicht die Priorität verlangt, ist: =Laminaria hyperborea= ~Gunnerus~. ~Cohn~ zeigte, daß unter _Laminaria digitata_ zwei Arten gehen: _L. flexicaulis_ ~Le Jolis~ und _L. Clustoni_ ~Edmonston~, daß aber nur die zweite Stäbchen liefern kann, da der Stipes der erstgenannten zu dünn ist. =Systemat. Stellung.= Phaeophyceae (Fucoideae) -- Phaeosporeae -- Laminariaceae. =Beschreibung der Stammpflanze.= Die Laminarien sind große, braune Meeresalgen, deren Thallus in ein vielfach gegabeltes, an den Enden mit Haftscheiben versehenes wurzelartiges Haftorgan -- das ursprüngliche Haustorium wird durch sog. Hapteren verdrängt --, einen langen Stil (Stipes) und einen blattartig (daher _Laminaria_ von Lamina = Blatt) ausgebildeten oberen Teil (Laubteil) gegliedert ist. Sie wachsen interkalar, mit lokalisiertem, zwischen Stengel und Blatt liegendem, interkalarem Vegetationspunkt. Das Haftorgan und der Stipes perennieren, das Blatt wird alljährlich regelmäßig erneuert, das alte abgestoßen (Fig. 101). Bei der _L. Clustoni_ tritt die eigentümliche Blattform sehr früh auf. Die einfächerigen Sporangien sind in großen Sporangienständen (Sori) vereinigt, die auf dem Blattkörper zerstreute Flecke bilden (Fig. 101). [Illustration: Fig. 101. A-C _Laminaria Clustoni_. A Habitusbild eines im Blattwechsel begriffenen Exemplars. B Querschnitt durch den Stipes 2 cm oberhalb des Haftorgans. C Siebhyphen des Stammes. D Längsansicht kürzerer Zellen: die Interzellularsubstanz verschleimt. E-F _Lamin. saccharina_. [E Querschnitt durch einen fertilen Blatteil. F Drei Sporangienstände mit einem entleerten und einem vollen Sporangium. AB nach +Foslie+, C nach Wille, D nach +Luerssen+, EF nach +Thuret+.]] _Laminaria Clustoni_ -- ~Flückiger~ will sie als besondere Art, _L. hyperborea_ ~Gunn.~, betrachtet wissen -- geht weit in die See ins Tiefwasser hinaus. Sie hat oft recht beträchtlich lange, starre, aufrechte, runde, an der Basis sehr verdickte, gegen die Spitze allmählich verdünnte, hellbraune Stipites, die plötzlich in den recht ansehnlichen, bis 70 cm langen, hellbraunen, handförmig (daher digitata) in breite Lappen geteilten, lederigen, kastanienbraunen Laubteil übergehen. Der alte Laubteil wird alljährlich oben abgestoßen, nachdem von unten her ein neuer gebildet worden ist. Man findet die Laminarienstipites nach einer stürmischen Nacht oft in riesigen Massen am Strande. Da sie rasch faulen, verbreiten diese Haufen rasch einen sehr üblen Geruch. Die an den Küsten der Hebriden ausgeworfenen Laminariastipites waren oft 7-8 Fuß lang, an der norwegischen Küste wurden sogar 5 m lange Stipites beobachtet. Die nahe verwandte _L. flexicaulis_ ~Le Jolis~ (_L. digitata_ (L.) var. α _flexicaulis_, _L. stenophylla_ ~Harvey~, _L. digitata_ var. _stenophylla_ ~Harv.~, _L. ensifolia_ ~Ktz.~) hat einen schmalen, in wenig Lappen geteilten Laubteil und einer dünnen, biegsamen, nicht starren, dunkelbraunen, fast schwarzen Stipes. Nach ~Foslie~ fehlen dieser Art, die ruhigere Standorte und geringere Tiefe vorzieht, im Stipes die Hohlräume und die Schichten, die Blätter erneuern sich nicht so regelmäßig und das Blatt nimmt erst später seine endgültige Form an. Die Auswitterungen bestehen bei dieser Alge aus Mannit. _Lam. Clustoni_ findet sich in den nordischen Meeren, z. B. bei Nordost-Finmarken, längs der norwegischen Küste, bei Dänemark, in der Nordsee an den Küsten von Deutschland, Nordfrankreich, England, Irland und Schottland, bei Spitzbergen und Grönland. Sie geht weiter in die See hinaus als _L. flexicaulis_. =Lit.= ~Clouston~ in ~Anderson~, Guide to the highlands and islands of Scotland. London 1834. Append. VI, 721. (~Clouston~ studierte zuerst die Entwicklung.) -- ~Foslie~ s. unten. -- ~Lamouroux~, Dissert. sur plus. esp. de Fucus. Agen 1805. -- ~Harvey~, Phycologia britannica. London 1846-51, t. 223. -- ~de Toni~, Sylloge algarum omnium hucusque cognitarum. Vol. III Fucoideae. -- ~Le Jolis~, Exam. d. espèc. confond. sous le nom de Laminaria digitata Mém. soc. sc. nat. Cherbourg 2 ed. 1855 u. Nov. act. Ac. Leop. Carol. 1856 (Flora 1855. Jahresb. d. Pharm. 1867, 23). -- ~Edmonston~, Flora of Shetland. Aberdeen 1845, 54. -- ~Agardh~, Spec., genera et ordin. algarum. Lund 1848. -- ~Kützing~, Phycol. gener. Lips. 1843. -- ~Grabendörfer~, Diss. Straßb. 1885. Bot. Zeit. 1885. -- ~Haaxmann~, Tijdsch. v. wetensch. Pharm. III, 33. -- ~Esper~, Icones Fucorum I, t. 48. -- ~Hartwich~, Laminaria in Realenzyklopädie. -- ~Cohn~, Arch. Pharm. 179 (1867), 113. -- Weitere Lit. bei ~Kjellmann~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. +Abbild.+: ~Luerssen~, Medic. pharm. Botan. I, 98, Fig. 23. -- ~Karsten~, Deutsche Flora 275. -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. -- ~Kjellmann~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzfam. Alle Formen in: ~Foslie~, D. Laminar. Norwegens. Christiania. Vidensk. Selsk. Forhandl. 1884. 10 Taf. (Bot. Jahresb. 1884, 379.) -- ~Harvey~ a. a. O. -- ~Postels~ u. ~Ruprecht~, Illustrat. algar. oceani pacifici. Taf. 12. -- Anatom. Abb. ~Planchon-Collin~, Dr. s. p. 13. -- Erste Abbildung unter dem Namen Fuco giganteo in ~Ferrante Imperato~, Dell’ historia naturale 1599, Fol. 743. =Pathologie.= ~Rostrup~ (Mykologiske Meddelelser (V). Botanisk Tidsskrift Vol. 19, 1895) beschreibt eine _Dothidella Laminariae_, welche den Stipes von _Laminaria longicruris_ befällt. Ferner geben ~Cooke~ und ~Massee~ auf _Laminaria flexicaulis_ ein _Heterosporium Algarum_ und auf faulenden Laminarienspreiten ein _Phoma Laminariae_ an; indes bleibt, namentlich im letztgenannten Falle, die Frage offen, ob es sich wirklich um einen Parasiten handelt (~Ed. Fischer~). Die Polypen und Florideen pflegen die Stipites der _Laminaria flexicaulis_ zu meiden, während sie sich oft in großer Zahl auf denen der _L. Clustoni_ finden. Über die Epiphyten der Laminarien vgl. auch ~F. Tobler~, Englers Botan. Jahrb. 44 (1909). =Morphologie.= Die Droge bildet verschieden lange, von der Seite fast bandartig zusammengedrückte, hornartig harte, derbe Stücke, die glatt brechen und außen grob längsrunzelig sind. Sie sind außen schwarzbraun, innen grauweiß. Der Querschnitt ist länglich oval mit tiefbuchtigem Umriß -- beim frischen Stipes kreisrund --, der Durchmesser c. 10 : 6 mm (frisch meist 25-30 mm, aber bis 40 mm). Die Stücke quellen in Wasser auf und sind außen meist mit kleinen roten Florideen (_Ceramium_, _Polysiphonia_, _Dictyosyphon_) und mit Kristallkrusten oder Effloreszenzen besetzt, die vorwiegend aus Natrium-Sulfat und Chlorid bestehen -- bei _Lam. flexicaulis_ enthalten die letzteren Mannit. Das Lupenbild läßt eine schmale Rindenschicht, eine breite Mittelschicht und eine dunkele, bisweilen geschwundene Markschicht unterscheiden. +Aus diesen eingetrockneten Stipites, und zwar besonders aus der mittleren Schicht derselben, werden Voll- und Hohlstifte+ (Laminariastifte, Laminariakegel, Quellmeißel) +gedrechselt+. Legt man dieselben in Wasser, so schwellen sie langsam auf das vier- bis fünffache ihres Durchmessers an. Die unbearbeiteten Stipites selbst sind nicht in Gebrauch. [Illustration: Fig. 102. Schleimkanal aus der Rindenschicht eines _Laminaria_-Stipes. C. Meristem. [+Tschirch+.]] =Anatomie.= Ich beschränke mich auf die Anatomie der allein offizinellen Stipites. Der frische Stipes ist 3-4 cm dick. Die Randpartie des Stipes ist engzellig und enthält, da sie das +Assimilationsgewebe+ repräsentiert, reichlich Chromatophoren, die auch in den folgenden Schichten, dort aber in geringerer Zahl auftreten. Der Zellinhalt dieser und der anderen Schichten kann, wie schon ~Wille~ hervorhob, nur an ganz frischen lebenden Exemplaren studiert werden. Er ist äußerst empfindlich. An frischen Exemplaren -- mir lagen solche aus Helgoland vor -- findet man gut wahrnehmbare (bisweilen auch noch am trockenen Stipes deutliche) rundliche oder gelappte braungrüne Chromatophoren, deren brauner Farbstoff leicht in das Wasser diffundiert. Alsdann bleiben die Chromatophoren grün gefärbt zurück. In der nächstfolgenden Schicht liegt eine Reihe von Schleimhöhlen. Dieselben entstehen in der Weise, daß zunächst an einer zentralen Zellgruppe durch Aufquellen der Interzellularsubstanz (Mittellamelle) ein schmaler, schleimerfüllter, schizogener Gang entsteht. der Gang sich dann erweitert und schließlich die Randzellen thyllenartig in den Gang hineinwachsen (~Tunmann~), vgl. Fig. 102. Lysigene Erweiterung, die ich auf Grund analoger Beobachtungen bei Phanerogamen annahm (Angew. Anatomie Fig. 600), scheint nicht vorzukommen oder doch selten zu sein. Ich fand gelegentlich losgelöste Zellen im Innern. Die Schleimhöhlen sind langgestreckte, verschieden breite Kanäle. Sie fehlen ganz jungen Stipites, in der Handelsware sind sie ausnahmslos zu finden, nie in den Stiften. In der Nähe dieser Schleimhöhlenschicht, sowohl außerhalb wie innerhalb derselben, fand ich in den Zellen frischer Stipites der Wandung ansitzende wulstig-traubige, cystolithenartige Körper, die bei näherer Betrachtung sich als Bläschenhaufen erwiesen, bei denen jedes Bläschen eine dünne, wahrscheinlich von Öl oder Plasma gebildete Haut und einen wässrigen Inhalt führt. Tritt gewöhnliches (nicht Meer-) Wasser hinzu, so fließen die zahlreichen Bläschen zu einer großen, mit einer stark lichtbrechenden Flüssigkeit erfüllten Blase zusammen. Schließlich platzt auch diese und man sieht an der Stelle dann nur einige Öltröpfchen liegen. Die Schleimhöhlenschicht besitzt eine braungrüne Farbe, das ganze Innere ist farblos und hebt sich erstere als sog. Rindenschicht auch noch dadurch relativ scharf von dem zentralen Gewebe stark ab, daß innerhalb der Schleimhöhlen ein Meristem zu liegen kommt, welches durch seine cambialen Teilungen das sekundäre Dickenwachstum der Stiele bewirkt. ~Reinke~ nennt die außerhalb des Meristems liegende Zone Außenrinde. In der Zone, wo die einen ringsumlaufenden Kranz bildenden Schleimhöhlen liegen, reißt das Gewebe leicht, so daß sich oft die ganze braune Rindenschicht als Röhre ablöst. Die Zellen der mittleren, an das sog. Cambium nach Innen zu angrenzenden Partie sind rundlich eckig, in der Organsachse gestreckt und lassen sich von der Initialzelle aus oft auf weite Strecken in radialen Reihen verfolgen. Die Zellen der äußeren Reihen sind kurz, an den Enden stumpf oder spitz oder mit querverlaufender Wand. Nach innen zu werden sie immer länger und spitzer. An der radialen Längswand sind große Tüpfel häufig (Fig. 101, D). Die zwischen der Zuwachszone und dem «Mark» liegende Partie (~Reinkes~ Innenrinde), die oft die Hauptmasse des Stipites ausmacht, zeigt häufig konzentrische Zonen engerer Zellen, wodurch ein Querschnittsbild ähnlich den Jahresringen eines Coniferenstammes entsteht (Fig. 101 B). Nicht selten kann man 8-20 solcher «Jahresringe» zählen. Einige Autoren halten sie auch für echte Jahresringe. Es sind aber wohl nicht echte Jahreszuwachszonen, sondern nur abwechselnde Schichten mechanischen und Speicher-Gewebes. Wie ~N. Wille~ 1885 gezeigt hat, besitzen auch die höheren Algen ein Assimilations-, ein Speicher-, ein Leitungs- und ein mechanisches Gewebe. Das Assimilationssystem befindet sich bei _Laminaria_ vornehmlich in den blattartig ausgebreiteten Thalluslappen und in der Randschicht der Stipites, das Leitungssystem auch im Stipes und das mechanische und Speichersystem vorwiegend in diesem. [Illustration: Fig. 103. Querschnitt durch einen aufgequollenen Laminaria-Stipes. m Markschicht. [+Luerssen+].] Gegen das Zentrum des Stipes hin geht das Gewebe ziemlich unvermittelt in ein krauses Durcheinander fädiger, hyphenartiger Zellen über. Diese Schicht ist die sog. Markschicht (Fig. 103, m). In ihr liegen die leitenden Organe, die Siebhyphen (Fig. 101, C). Die von ~H. Will~ zuerst bei _Macrocystis_ beobachteten +Siebhyphen+ (Siebröhren) fand ~N. Wille~ auch bei Laminarien. Hier sind die Enden der relativ englumigen Röhrenglieder, ähnlich wie bei den Siebröhren der höheren Pflanzen, angeschwollen. Die Querwände sind fein perforiert, der Inhalt plasmareich. Die längsverlaufenden Siebröhren stehen durch zahlreiche Queranastomosen in Verbindung. Das Siebröhrensystem des Stammes setzt sich auch in die Gewebelamelle zwischen den beiden assimilierenden Schichten der Blätter fort. Besonders in der Mittel- und Markschicht sind die Membranen stark verschleimt und zwar ist es fast ausschließlich die Mittellamelle (Interzellularsubstanz), welche den Schleim liefert. Dieselbe schwillt oft bis zu einer erheblichen Dicke an, während die sekundären Membranverdickungsschichten stets dünn bleiben oder nur schwach quellen. Doch sei bemerkt, daß die schleimige Interzellularsubstanz als solche von vornherein angelegt wird und nicht etwa nachträglich aus einer Zellulosemembran umgebildet wird. Durch Einlegen in Kupferacetat läßt sich der Schleim härten (~Tunmann~). Die Schleimmembran ist eine besondere chemische und morphologische Form der Membran vom Charakter der (schleimartigen) Hemizellulosen. Die breite Interzellularsubstanz gibt mit Jodschwefelsäure keine oder nur sehr schwache Zellulosereaktion, mit ~Hansteins~ Anilinviolett färbt sie sich nur schwach. Die schmale sekundäre Membran zeigt starke Zellulosereaktion und färbt sich auch mit ~Hansteins~ Anilinviolett intensiv. Besonders tritt Bläuung mit Jodschwefelsäure dann auf, wenn die Schnitte vorher mit verd. Kali behandelt werden. Die Wandungen nehmen erst beim Trocknen braune Farbe an (~Wille~). Die starke Quellung der Lamarienstiele ist auf die Quellung der verschleimten Zwischenzellsubstanz zurückzuführen. +Er ist also eine Schleimmembranquellung.+ Die Schleimhöhlen der Rindenschicht haben gar nichts damit zu tun, übrigens schon deshalb nicht, da diese sich niemals in den gedrechselten Stielen, die nur aus den inneren Schichten hergestellt werden, findet. In den Zellen von lebendem Material fand ~Tunmann~ Zucker. Die kleinen mit Osmiumsäure sich bräunenden Bläschen reagierten auch mit Vanillinsalzsäure, Jod- und Eisensalzen (~Tunmann~). Kristallbildungen fehlen, doch erhielt ~Tunmann~ durch Einlegen frischer Stiele in Alkohol Calciumoxalatkristalle. Er nimmt an, daß die Zellen des Markes gelöstes +oxalsaures Natrium+ enthalten, das sich mit dem Kalk zu Calciumoxalat umsetzt. Florideenstärke (Amylodextrin) ließ sich mikrochemisch nicht nachweisen. Die eigenartigen Körnchen, die man besonders in dem Speichergewebe antrifft, scheinen Eiweißcharakter zu besitzen, jedenfalls kein Kohlenhydrat zu sein und einen gerbstoffartigen Körper einzuschließen (~Tunmann~). Diese Körnchen, die ~Hansteen~ +Fucosan+, ~Schimper~ Phaeophyceenstärke, ~Crato~, der sie für amöboid bewegliche, plasmatische Bildungen erklärt, +Physode+ nannte, zeigen nämlich auch Phenolreaktionen, besonders mit Vanillinsalzsäure (~Crato~, ~Bruns~). Der Ausdruck Phaeophyceenstärke ist also jedenfalls verfehlt und irreführend. [Illustration: Fig. 104. Querschnitt durch einen eingetrockneten _Laminaria_-Stipes. [+Luerssen+.]] An den Stipites der ähnlich gebauten _Alaria esculenta_ (L.) ~Grev.~ kann man nach ~Wille~ vier Zonen unterscheiden. Die äußerste Zone ist das Assimilationsgewebe, in dem sich die Chromatophoren finden und das zugleich als Bildungsgewebe fungiert, sich auch, wenn abgestoßen, leicht wieder regeneriert. Dann folgt die Hauptmasse, die zugleich mechanischen, Leitungs- und Speicher-Zwecken dient und die wenige Chromatophoren, aber viel Reservestoffe (Fucosankörner) enthält. Dann folgt die Schicht der Verbindungshyphen und das Zentrum ist wieder mechanisches Gewebe. Gestreckte (den Siebröhren der höheren Pflanzen entsprechende) Siebhyphen -- bisweilen mit Callus auf der Siebplatte -- sind (nach ~Will~ und ~Wille~) besonders im Inneren reichlich vorhanden, ebenso wie die der gleichen Funktion dienenden Verbindungshyphen (true sieve tubes, trumpet hyphae, ~Oliver~). In den zugleich mechanischen und speichernden Zellen finden sich neben Chromatophoren +Fucosankörner+. Da die Stipites dieser Alge wegen des zentral gelegenen mechanischen Gewebes viel biegungsfester sind als die _Laminaria_stipites, _Alaria esculenta_ (L.) ~Grev.~ zudem in den norwegischen Meeren häufig ist, so dürfte es sich empfehlen, auch aus dieser Alge Stifte zu drehen. (Sie soll übrigens -- nach ~Krämer~ -- bereits hierzu benutzt werden.) =Lit.= ~Tschirch~, Angew. Anat. und Über d. Entwicklungsgeschichte einiger Sekretbeh. Ber. d. bot. Ges. 1888, S. 5. -- ~Grabendörfer~, Beitr. z. Kenntn. d. Tange. Dissert. Straßburg 1885 (auch Botan. Zeit. 1885). -- ~Kützing~, Phycol. gen. Taf. 31. -- ~Ruprecht~, Bem. über d. Bau u. d. Wachsth. einiger großer Algenstämme u. d. Mittel d. Alter ders. zu bestimmen. Mém. de l’acad. Petersb. 1848. -- ~Luerssen~, Med. pharm. Bot. I, S. 100-102. -- ~Vogl~, Kommentar 1892. -- ~Guignard~, Observ. sur l’appar. mucif. des Lamin., Ann. sc. nat. ser. 7, T. 15 (1892). -- ~Hansteen~, Stud. z. Anat. u. Phys. d. Fucoid. Pringsh. Jahrb. 24 (1892). -- ~Crato~, Ber. d. bot. Ges. 11 (1893) u. bot. Zeit. 1893, 157. -- ~Bruns~, Flora 1894, Ergb. S. 173. -- ~J. Reinke~, Atlas der Meeresalgen. 1889-92, Beitr. z. Kenntn. d. Tange. Pringsh. Jahrb. 10 (1875) und Unters. über d. Quellung einiger vegetabil. Subst. ~Hansteins~ bot. Abh. IV (1879). -- ~Wille~, Siebhyphen bei d. Algen. Ber. d. d. bot. Ges. 1885. Bidrag til Algernes physiolog. Anat. Svensk. Vetensk. Akad. Handl. 1885 u. Beitr. z. phys. Anatom. d. Laminariaceen. Festschr. z. Kön. Oscars Reg. Jubil. 1897. -- ~Tunmann~, Zur Kenntn. d. Laminaria. Pharm. Zentralh. 1907, 241 u. 505. Schweiz. Wochenschr. 1910, 537 (dort die Reaktionen des Fucosans). -- ~Kraemer~, Textbook 1907. -- Anatom. Abbild. auch in ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. I, 13. =Chemie.= Die Interzellular- oder Bindesubstanz, die so gut wie ausschließlich die quellende Substanz der Stiele repräsentiert, enthält stets Calcium. ~Wille~ und ~Kreftling~ betrachteten sie als Calciumpektinat (~Frémy~) resp. als das Calciumsalz einer +Tangsäure+, die offenbar nahe Beziehungen zur Pektinsäure ~Gireauds~ besitzt. Extrahiert man den Kalk aus der Interzellularsubstanz durch Salzsäure, so quillt der Schleim mit verdünnten Alkalien gewaltig und löst sich dann rasch (~Wille~), viel rascher als ohne diese Vorbehandlung. Er zeigt nun ausgesprochenen saueren Charakter. ~A. Kreftling~ nimmt daher an, daß die Interzellularsubstanz aus der Kalkverbindung der +Tangsäure+ besteht, die 39% C und 5% H enthält und in Wasser ohne sich zu lösen außerordentlich stark quillt. ~Kreftlings~ Tangsäure ist N-frei und soll der Formel C₁₃H₂₀O₁₄ entsprechen. Sie bindet 97% Wasser und löst sich nur in Substanzen mit denen sie Verbindungen eingeht. Die Tangsäure lieferte ~Kreftling~ einen reduzierenden Zucker. Auch ~Mangin~ hält die Bindesubstanz der Zellen für einen Pektinkörper. In der Tat bestehen ziemlich viele Beziehungen zu den Pektinsubstanzen der Früchte (~Tschirch~). Die Zellwände enthalten +Zellulose+ (~Wisselingh~), nach ~Warrington~ 9,33%, die Mittellamelle auch einen mit Jod und 1% H₂SO₄ sich blaufärbenden Körper (Fucin, ~Wisselingh~). Das beim Erhitzen von _Fucus_ mit Schwefelsäure übergehende +Fucusol+ (~Stenhouse~) ist ein Gemisch von Furfurol und Methylfurfurol (~Maquenne~). Die Entstehung dieser Körper deutet auf das Vorhandensein von Pentosanen und Methylpentosanen. In der Tat erhält man bei der Hydrolyse von _Fucus_ eine Methylpentose, die +Fucose+ (die optische Antipode der Rhodeose, ~Tollens~ und ~Günther~) von der Formel: H H OH CH₃.CH(OH)--C--C--C--COH. OH OH H Die Membran enthält also ein Fucosan. ~Bieler~ und ~Tollens~ erhielten auch aus _Laminarien_ Methylfurfurol: CH----CH || || || || CH C.COH \ / \ / O so daß wohl anzunehmen ist, daß die _Fucus_- und _Laminaria_-Membranen im wesentlichen übereinstimmen. Auch +Glukuronsäure+ (vgl. S. 77) scheint in der _Laminaria_ vorzukommen (~Tollens~). _Laminaria_schleim gibt bei der Hydrolyse Dextrose (~Bauer~). ~König~ und ~Bettels~ erhielten aus _Laminaria japonica_ (und einer anderen _Laminaria_art): Glukose, Fruktose, Pentosen und Methylpentosen (aber keine Galaktose). ~Schmiedeberg~ erhielt aus _Laminaria_ zwei den Kohlehydraten nahestehende Substanzen des +Laminarin+ (C₆₀H₁₀₂O₅₁) und die stark quellbare +Laminarsäure+ (C₁₂H₁₈O₁₁). In den beim Liegenlassen von Laminarien an der Luft bei Regenwetter austretenden Schleimblasen fand ~Stanford~ +Algin+, das Ca-Na-Mg-Salz der +Alginsäure+. Das Natriumalginat kommt in den Handel. Es ist eine außerordentlich zähe Masse (37mal zäher als Gummi arabicum). Das Algin des Handels wird durch Ausziehen der Laminarien mit Sodalösung dargestellt. Schon eine 2%ige Lösung ist dick, eine 5%ige gelatinös. Auch hier treten also Beziehungen zum Pektin hervor. Die +Tangsäure+ (~Kreftling~), die +Laminarsäure+ (~Schmiedeberg~), die +Alginsäure+ (Algin, ~Stanford~), die Alginicinsäure und die sog. Pektinsäure (?) sind wohl dieselbe Substanz in verschiedenen Reinheitsgraden. Die reine Substanz ist aber noch nicht erhalten worden. Im lufttrockenen Stipes von _Lam. digit._ finden sich nach ~Axel Kreftling~: in kaltem Wasser lösliche Schleimsubstanz 47,4%, Tangsäure 19%, Zellulose 10,9%, in Wasser lösliche Salze 8,6%, in Wasser unlösliche anorganische Salze 4,4%, Wasser 7,8%. Nach ~König~ und ~Bettels~ enthält luftrockene _Laminaria_ in Prozenten: 6,16 Wasser, 8,19 Gesamtstickstoffsubstanz, 5,68 wasserlösliche Stickstoffsubstanz, 0,5 Ätherauszug, 36,04 stickstofffreie Extraktstoffe, 6,66 Pentosane, 1,12 Methylpentosane, 11,27 Rohfaser, 30,06 Asche, 16,47 Chlornatrium. Durch Dämpfen wird in Wasser löslich: 29,39% anorganische und 50,85% organische Substanz. Von den Meeresalgen sind die _Porphyra_arten sehr reich an Proteïn, _Laminaria_, _Cystophyllum_ und _Enteromorpha_ reich an Pentosanen. +Die Elastizitätsgrenze sinkt bei steigendem Wassergehalt.+ Das Elastizitätsmodul beträgt bei 40% Wassergehalt 24,5, bei 90%: 9, bei 140%: 3, bei 230%: 1,7, bei 350%: 1,5 (~J. Reinke~). Durch Einlegen in Wasser vergrößert sich der Durchmesser der Laminarienstäbchen um 72%, ein Kanal von 50 mm wird auf 147 mm erweitert (~Cohn~). Auch +Mannit+ (5-6%, ~Stenhouse~) und +Dextrose+ sind aus Laminarienstipites (von _L. flexicaulis_, weniger von _L. Clustoni_) erhalten worden. Es scheint aber, daß diese Körper erst in den abgestorbenen Tangen auftreten [~Phipson~ (1856), ~Soubeiran~ (1857)], also wohl erst abgespalten werden (_Laminaria saccharina_ ~Lamx.~ enthält bis 12% Mannit). Nach ~Bruns~ kommt +Fett+ und +Phloroglucin+ (?) im Inhalte vor. Über das Fucosan vgl. oben S. 298. Der +Farbstoff+ der Chromatophoren +trockener+ Laminarien (der sich aber vorwiegend in dem Blatteile, weniger im Stipes findet) ist ein Mischfarbstoff. Er wurde von ~Cohn~ +Phaeophyll+ genannt. Er besteht aus braunem, wasserlöslichem +Phycophaein+ (~Millardet~), das keine Absorptionsbänder besitzt, sondern nur kontinuierliche Absorption des Rot bis 0,680 µ und des übrigen Spektrums bis 0,620 µ zeigt (~Schütt~), gelbem, alkohollöslichem +Phycoxanthin+ (~Millardet~), das wohl mit dem Carotin bzw. Xanthocarotin, d. h. dem Xanthophyll der Autoren ex parte, verwandt oder damit identisch ist (~Hansen~, ~Gaidukow~) -- ich nannte den Körper η-Xanthophyll -- und grünem +Chlorophyll+ (~Millardet~, ~Ardissone~, ~Hansen~). Chlorophyll und Phycophain sind vielleicht chemisch miteinander verbunden (~Engelmann~). Die +lebenden+ Phaeophyceen enthalten kein wasserlösliches Pigment (Phycophaein). Ihre Chromatophoren sind nach ~Tswett~ durch Chlorophyll, Karotin, Fucoxanthin und Fucoxanthophyll tingiert. Die +Asche+ beträgt 14,02% (~Flückiger~), 14-18% (~Stanford~), 18,64% (~Goedichen~). Darin sind 11,86% Kalk (sie ist also kalkreich), 22,4% Kali, 24,09% Na, 7,44% Magnesia, 0,62% Eisen, 2,56% Phosphor, 13,26% SO₃, 1,56% SiO₂, 17,23% Cl, 3,08% J; nach ~Flückiger~ kein Mangan. ~Stanford~ fand in der Asche Jodide und viel Calciumcarbonat (20%), im ganzen 40% Salze. Nach ~Wolff~ differiert Menge und Zusammensetzung der Asche je nachdem man die Stipites im Frühling oder Herbst untersucht ziemlich beträchtlich, nur Phosphorsäure und Jod bleiben etwa gleich. Er fand Jod: 1-1,2%, Chlor in Frühlingsmaterial 28,35%, in Herbstmaterial 38,67% der Asche. Wichtig ist besonders der Jodgehalt, da die +Laminarien der nördlichen Meere noch jetzt zur Jodgewinnung herangezogen werden+. [+Nur+ Laminarien nicht _Fucus_arten liefern den Kelp (Drift Kelp)]. Um Jod nachzuweisen, darf man nicht veraschen, sondern muß unter Zusatz von Zinkstaub, Bimstein oder Kieselgur verkohlen (~Flückiger~) oder man destilliert mit Braunstein und Schwefelsäure das Jod ab (~Jones~). Es enthalten +Jod+ (nach ~Stanford~) in Prozenten der Trockensubstanz: _Laminaria digitata_ (Stamm) 0,4535, (Laub) 0,2945; _Lam. stenophylla_ (Stamm) 0,4028, (Laub) 0,4777; _Lam. saccharina_ 0,2794, _Lam. bulbosa_ 0,1966, _Fucus serratus_ 0,0856, _F. nodosus_ 0,0572, _F. vesiculosus_ 0,0297. ~Marchands~ Angabe, daß _Laminaria_ 5% Jod enthalte, ist ein Irrtum. [Japan. eßbare Meeresalgen enthalten 0,3171 J, _Chondrus crispus_ Spuren, _Gelidium corneum_ dito, _Gigartina spinosa_ nichts.] Nach ~Gautier~ enthält _Laminaria_ 12 mg Jod auf 100 g frische und 60 mg auf 100 g trockene Substanz. _Laminaria_ enthält das Jod fast ausschließlich in organischer Form, in ähnlicher wie es im Jodothyrin (oder Jodospongin ~Hundeshagens~ aus Spongien) enthalten ist und zwar scheinen mehrere organische Jodverbindungen in Betracht zu kommen, solche, welche sich in Wasser, Alkohol, Aceton, Alkalien und Säuren lösen und solche, die in diesen Lösungsmitteln unlöslich sind. Letztere bilden die Hauptmenge (~Eschle~). Wahrscheinlich bedingen diese organischen Jodverbindungen die Benutzung der Fucoideenextrakte (Extr. fucus vesiculos., Extr. Laminariae) zu Entfettungskuren. Der Gehalt der Asche an +Brom+ beträgt wohl selten mehr als 0,2%. Entdeckt wurde in den Tangen das Jod 1813 durch ~Courtois~ (mitgeteilt von ~Desormes~ und ~Clément~, Schweigg. Journ. 9, 339), das Brom 1826 durch ~Balard~. Der Jodgehalt beträgt in % bei _Ecklonia cava_ (Kajime), Stengel 0,14831; _Ecklonia cava_ (Kajime), Laub 0,00177; _Ecklonia bicyclis_ (Arame) 0,00028; _Cystophyllum_ spec. (Nagahijiki) 0,00506; _Arthrothamnus bifidus_ (Neckoashi Kombu) 0,223; _Laminaria japonica_ (Ma-Kombu) 0,106; _Laminaria religiosa_ (Hosome Kombu) 0,127; _Laminaria longissima_ (Naga Kombu) 0,173; _Laminaria angustata_ (Mitsuishi Kombu) 0,180, (Rijiri Kombu) 0,188; _Laminaria diabolica_ (Oni Kombu) enthält auch Jod (~Davidsohn~). Der Jodgehalt beträgt bei _Ecklonia cava_ in den einzelnen Monaten (nach ~Davidsohn~): In den Stengeln: Jan. Febr. März April Mai Juni 0,092 0,167 0,061[*] 0,067[*] 0,147[†] 0,255 Juli Aug. Sept. Okt. Nov. Dez. 0,216 0,142 0,267[†] 0,144 0,145 0,099 Im Laub: 0,81 0,167 0,063[*] 0,060[*] 0,076[†] 0,294 0,294 0,142 0,232[†] 0,081 0,112 0,097 [*] Junge Stengel und Laub. [†] Alte Stengel und Laub. ~Tunmann~ fand im Stipes von _Lamin._ 0,059-0,108%, im Blatteil 0,071-0,154% Jod der Trockensubstanz. Der Blatteil ist also jodreicher. Das weiß auch bereits die Industrie. ~Allazy~ fand, daß Varech aus der ganzen Pflanze 0,06, aus dem alten Blatte 0,057, aus dem unteren Teile des altes Blattes 0,108, aus dem neuen Blatte 0,122% Jod enthielt. ~Tunmann~ gelang es auch noch in 1-2 mgr Substanz Jod mikrochemisch nachzuweisen. Er legte neben die Schnitte Stärke und ließ starke Salpetersäure zufließen. Auf diese Weise gelingt noch der Nachweis von ²⁄₁₀₀₀ mgr Jod. ~Tunmann~ fand Jod besonders in der Mark- und Rindenschicht und nur im Zellinhalte. Die Jodverbindung ist leicht in Wasser und Alkohol löslich. Die Effloreszenzen auf den trockenen Stipites sind vorwiegend Natriumsulfat. =Lit.= ~Stenhouse~, Lieb. Ann. 74 (1850), S. 278. -- ~Maquenne~, Compt. rend. 109 (1889). -- ~Stanford~, Econom. applicat. of seaweed. Pharm. Journ. 1884, XIV, 1009 u. flgd. (Pharm. Zeit. 1884, 507) und Chem. news 1883; auch Pharm. Journ. XIII (1883), 1019, 1037. Journ. chem. soc. 1886, 218. -- ~Bauer~, Über eine aus Laminariaschleim entstehende Zuckerart. Ber. d. chem. Ges. 22 (1889), 618. -- ~Günther~ u. ~Tollens~, Über d. Fucose. Ebenda 23 (1890). -- ~Mangin~, Sur la callose, Compt. rend. 110 (1890). Rech. sur l. compos. pectiques. Journ. de bot. 1893. -- ~Bieler~ und ~Tollens~, Ber. d. d. chem. Ges. 22, 3063. -- ~Muther~ u. ~Tollens~, Ber. chem. Ges. 1904, 298 u. 306. -- ~Tollens~ (Glukuronsäure-Reaktion), Ber. d. d. chem. Ges. 1908, 1789. -- -- ~Schmiedeberg~, Tagebl. Naturf. Vers. 1885, 231 (Pharm. Jahresber. 1885, 23). -- ~Wille~ a. a. O. -- ~Jones~, Chem. News. 48, S. 296. -- ~Gautier~, Compt. rend. 129 (1899), 189 und ebenda 1900. -- ~Eschle~, Zeitschr. phys. Chem. 1897, 23, 30 (Ph. Zeit. 1897, 607). -- ~König~ und ~Bettels~, Die Kohlehydrate der Meeresalgen. Zeitschr. Unters. d. Nahrungs- u. Genußm. 10. -- ~Warington~, Chem. News 40, 195. -- ~Marchand~, Ann. chim. phys. 8 (1866), 320. -- Farbstoff: ~Hansen~, Bot. Jahresber. 1885, I, 404. -- ~Reinke~, Beitr. z. Kenntn. d. Phycoxanthins. Pringsh. Jahrb. 10, 399. -- Analysen von _Laminaria japonica_ von ~Kellner~, ~Nagai~ und ~Murai~ bei ~König~, Nahrungsm. -- ~Czapek~, Biochemie. -- +Nachweis des Jods in den Algen+: ~Flückiger~, Arch. d. Pharm. 225 1887), 519 und Pharmakogn. III (Zinkstaub). -- ~Jones~, Ber. d. chem. Ges. 17, Ref. S. 53 (1884). -- ~Weis~, Chem. Centralbl. 1903, I, 1158. -- ~Riegler~, Ebenda 1903, II, 772. -- ~Tunmann~, Über d. J. u. d. Nachweis desselb. in d. Laminaria. Pharm. Centralh. 1907, 505. -- ~Justus~, Virchows Arch. 170 (1902), 501. -- ~Davidsohn~, Imp. inst. Tokio in Pharm. Journ. 1906, 346. =Anwendung.= In der Medizin finden die aus den Stipites gedrechselten Stifte (Laminariastifte, L.-Kegel, Quellmeißel) Verwendung -- zur Erweiterung von Öffnungen, zum Offenhalten von Wunden und als Quellmeißel und Sonden -- an Stelle des Preßschwammes. Sie quellen sehr langsam und erreichen in 24 Stunden ihr Quellungsmaximum. Da das Quellungsvermögen in der Markschicht am größten ist und nach außen hin abnimmt, müssen die Stifte, damit sie gleichmäßig quellen, möglichst genau in der Längsachse der Stiele gedrechselt werden. Die Stifte quellen in destilliertem oder kochsalzhaltigem Wasser besser als in kalkhaltigem. Die Laminariastäbchen sind entweder solide (Vollstifte) oder hohl (Hohlstifte). Es werden jetzt im Handel angeboten: +Vollstifte+ von 1,5, 2, 3, 4, 5, 6, 7 und 8 mm Durchmesser und 8, 10, 20 und 30 cm Länge, +Hohlstifte+ von 4, 5, 6, 7 und 8 mm Durchmesser und 8 bzw. 10 cm Länge, sowie conische 4,5 cm lang (~Caesar~ u. ~Loretz~, 1910). Neuerdings kommen sie auch sterilisiert (~Stich~) und imprägniert in den Handel. Auch ein Blutstillungscharpie wird aus den getrockneten Stipites hergestellt. Sonst werden die Laminarien auch als Viehfutter und Düngemittel benutzt. Die mannithaltigen Teile der _Lamin. flexicaulis_, besonders die unteren Enden der Stiele, werden gegessen, ebenso _Lam. saccharina_ (und _Sargassum_) im Mittelmeergebiet. _Laminaria saccharina_ enthält 7,79% des Trockengewichtes N-haltige Substanzen (~Warington~). Die japanische Algenkonserve, Naga-Kiri-Kombu (kombu = Seekraut), besteht aus der in Streifen geschnittenen Lamina von _Laminaria japonica_ ~Aresch.~ (~Senft~). Die umfangreichste Verwendung ist die zur Jodbereitung (s. unten). Neuerdings dienen Fucusextrakte als Entfettungsmittel (s. oben). In Lahore und Kaschmir wird _Lamin. saccharina_ als Galhár-Kapalta gegen Kropf, im Himalaya bei Syphilis benutzt. +Hai-tao+ ist eine der _Laminaria digitata_ nahestehende Meeresalge, wahrscheinlich _L. bracteata_, 1 m und darüber lange, etwa 6 cm breite Streifen mit von Salzauswitterungen weiß bestäubter, schmutzigbrauner Oberfläche. Die Alge verleiht mit Wasser gekocht diesem eine schlüpfrige Beschaffenheit, weshalb sie zur Appretur Verwendung findet. In Japan und China wird sie gegessen. Sie dürfte identisch sein mit der _Laminaria_, die in China als «Hai-tai» und «Kwanpu» oder «Kai-wan» bei Menstruationsbeschwerden zur Erhöhung der Uterustätigkeit verwendet wird (~Gehe~ 1898). Die +Tang-Jodgewinnung+ wird in Japan besonders in Hokkaido betrieben. Man benutzt außer _Laminaria_ auch _Eclonia_-, _Sargassum_-, _Arthrothamnus_- und _Cystophyllum_-Arten. Die Fischer ziehen mit ihren Booten zu den Kelp-grounds und reißen die Algen mittelst Gabeln von den Felsen (I, Fig. 100, S. 102). Die getrockneten Algen werden dann in Höhlungen oder Herden verbrannt -- richtiger verkohlt -- der Kelp mit Wasser ausgezogen, die Lösung eingedampft und mit Braunstein und Schwefelsäure erhitzt. Zur Jodfabrikation werden an den Küsten von Frankreich (Normandie) und Schottland besonders _Laminaria_-, _Alaria_- und _Fucus_-Arten benutzt. Der Jodgehalt sinkt beim Verbleiben der Algen im Wasser. Man bringt daher die von Booten aus mit an langen Stangen befestigten Sicheln geernteten samt den bei stürmischem Wetter vom Meere ausgeworfenen Laminarien sofort an Land und verkohlt bald. 22 t Tang liefern 1 t Varech oder Kelp (Tangasche). Die Verarbeitung der Tange geschieht jetzt nicht mehr überall in den früher üblichen Gräben der Varechbrenner, sondern zum Teil nach dem Verfahren von ~Pellieux~ und ~Maze-Lannay~. «Es beruht auf der Verarbeitung von Schnittalgen. Zur Trocknung der Tange dienen drei terrassenartige Erhöhungen. Die beiden unteren sind mit Cement belegt. Auf der obersten Terrasse beläßt man die Algen 4-5 Tage zum Abtropfen und oberflächlichen Trocknen. Auf der zweiten Etage läßt man sie in Gärung kommen; dabei entlassen sie eine Menge Flüssigkeit von einem im Vergleich zu den getrockneten Tangen höheren Jodgehalt. Diese Flüssigkeit wird daher gesammelt und abgedampft. Der Abdampfrückstand gelangt schließlich mit den auf der untersten Terrasse vollständig getrockneten Tangen behufs Veraschung in den Calcinierofen.» In 1000 kg Varech sind enthalten bei _Laminaria stenoloba_ 0,57-1,22, bei _L. digitata_ var. _stenophylla_ 0,99, bei _L. saccharina_ 0,44, bei _Araria esculenta_ 0,10 kg Jod (~Allazy~). ~Kreftling~ gewinnt für technische Zwecke ~Stanfords~ Alginsäure jetzt im Großen aus Laminarien Norwegens. Er nennt sie Tangsäure. Ihre Alkalisalze sind stark klebrig (s. oben S. 300). =Lit.= ~Stanford~ a. a. O. -- ~Kreftling~, Über wichtige organ. Produkte aus Tang. Chem. Industrie 1897, Nr. 20 (Bot. Centralbl. Beihefte 1898, 519). -- ~Senft~, Über einige in Japan verwendete vegetabil. Nahrungsm. usw. Pharm. Praxis 1906 u. 1907 (dort ein Verzeichnis der Laminariakonserven). -- ~Krasser~ in ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Allazy~, Bull. soc. chim. 38, 11. -- Jodgewinnung in Japan: Govern. Rep. on the investig. on Marine Res. of Hokkaido und ~Kingo Miyabe~, On the Laminariaceae and Laminaria Industries of Hokkaido (Pharm. Journ. 1906 Sept.) =Geschichte.= ~Wilson~ empfahl zuerst die Anwendung der Laminariastäbchen in der Chirurgie. Aber schon 1834 hatte ~Häberl~ die Laminariastäbchen mit den zu gleichem Zwecke empfohlenen aus _Enzianwurzel_ verglichen (~Winckel~). Sie werden etwa seit 1863 in der chirurgischen Praxis benutzt. Man hat es für möglich erklärt (~Dragendorff~), daß das _Erythrodanon_ des ~Marcellus Empiricus~ eine _Laminaria_ war. =Lit.= ~Häberl~, Neue Zeitschr. f. Geburtskunde I, S. 50. -- ~Winckel~, Göschens deutsche Klinik XIX (1867), 270; -- Pharm. Jahresber. 1864, 280. -- Vgl. auch ~Russel~, Fucus vesiculosus. Dissert. Oxon. 1750. =Paralleldrogen.= Seit dreihundert Jahren ist die Eigenschaft der Wurzeln von _Gentiana lutea_ in Wasser stark aufzuquellen bekannt. Dieselben wurden daher seit langem wie heute die Laminariastifte benutzt. Neuerdings (seit 1879) wird das durch Pressen leicht auf ein geringes Volumen zu bringende Holz (_Tupeloholz_, _Lign. Nyssae_) der in den südlichen Vereinigten Staaten, besonders Südkarolina heimischen Cornacee, _Nyssa aquatica_ L. (_Nyssa multiflora_ ~Wangenh.~ und die verwandte _N. biflora_ ~Mich.~), einer Sumpfpflanze, in gleicher Weise zu Quellstiften benutzt. Nach ~Maisch~ eignet sich _Nyssa grandidentata_ noch besser dazu. Die daraus dargestellten sehr leichten, gelblich weißen sog. +Tupelostifte+ quellen +rasch+ auf ihr ursprüngliches Volumen, behalten dasselbe dann aber auch nach dem Trocknen bei. Der Vorgang beruht hier auf etwas ganz anderem wie bei den Laminariastiften, nämlich darauf, daß die Zellen des ungewöhnlich dünnwandigen Holzes (~Moeller~) die Fähigkeit besitzen, durch Wasserentzug und Zusammendrücken stark zu kollabieren und durch Wasserzufuhr wieder auf das ursprüngliche Volumen zu gehen. =Lit.= Nyssa: Pharm. Jahresber. 1879, S. 54 und 1884, S. 249, Arch. d. Pharm. 1879, S. 355 u. Pharm. Centralh. 1879, Nr. 6 (~Haubner~). -- ~Haaxmann~, Ned. Tijds. 1879, S. 145. -- ~J. Moeller~, Afrikan. Drogen, Lign. Nyssae. -- Pharm. Centralh. 1883, S. 545 u. 581 (mit Abbild.). -- Ph. Zeit. 1884. S. 59. -- ~Maisch~, Am. journ. pharm. 1883, p. 631. -- ~Gehe~, Handber. 1880. -- ~Engler-Prantl~, Pfl.-Fam. Agar-Agar. Unter dem Namen Agar-Agar werden sowohl einige kleine Meeresalgen der Abteilung der Florideen wie auch ein aus indisch-japanischen Florideen dargestellter eingetrockneter Schleim bezeichnet. +Im Handel versteht man aber nur letzteren unter diesem Namen.+ Der Name Agar-Agar taucht in der europäischen Literatur zuerst bei ~Crawford~ auf (History of the Indian Archipelago vol. III p. 46). Agar-Agar ist der malaiische Name für _Gracilaria lichenoides_. _Gr. lichenoides_ var. _tenuis_ heißt malaiisch: Agar-Agar Kuning, Javan.: Bulong, Makass.: Dongi-Dongi. Im Hind. Bomb. Bengal. bedeutet +Agar+ etwas ganz anderes, nämlich _Lignum Aloës_! (~Dymock~). Im Japan. heißt Agar: kantén = kalter (klarer) Himmel, weil man es nur bereiten kann, wenn das Wetter kalt und trocken ist. I. Unbearbeitete Algen. 1. Agar-Agar von Ceylon. =Syn.= Ceylonmoos, Jafnamoos, Mousse de Jaffna, Alga ceylanica s. amylacea, Fucus amylaceus s. ceylanicus -- shih-hwa-tsʾai (chin.) -- chini-ghás (Ind. Bazars, bomb.) -- kadal-pach-chi (tam.) -- samudrapu-páchi (tel.) -- kujáv-poen (burm.). =Stammpflanze.= =Gracilaria lichenoides= ~Greville~ (Sphaerococcus lichenoides ~Ag.~, Fucus amylaceus ~O’Shaugn.~, F. lichenoides L., F. gelatinosus ~König~, Plocaria candida ~Nees~, Gigartina lichenoides ~Lamour.~) in ~Greville~ Alg. brit. 50, ~Turner~ Fuci t. 118. =Systemat. Stellung.= Florideae -- Rhodymeliales -- Sphaerococcaceae -- Gracilarieae. Die zierliche (gracilis, daher _Gracilaria_), in der Tat einer Flechte (daher _lichenoides_) äußerlich ähnliche Meeresalge, die im Indischen Ozean, an den Küsten von Ceylon, den Sundainseln und Burma vorkommt, bildet runde, nach dem Trocknen und Bleichen weiße oder grauweiße (lebend: blaß-purpurrote), wiederholt gabelig verästelte (daher _Plocaria_, von πλόκος, Geflecht) Fäden, deren Dicke zwischen der eines Zwirnfadens und der dünnerer Bindfäden schwankt. Der Thallus wird bis über 20 cm lang. In der Droge ist er meist stark zertrümmert. Jod färbt den Schnitt braunrot, beim Erhitzen rotviolett (daher: amylaceus). Die Randschicht besteht aus kleinen derben Zellen, die Markschicht aus großen weiten. In der kleinzelligen subepidermalen Zellschicht und vereinzelt auch in des großen Markschichtzellen finden sich kleine +Stärkekörner+ und Körnchen, die mit Jod violett werden (Amylodextrinstärke?). Die Wände, besonders der Markzellen, färben sich mit Jod rot, beim Erhitzen geht die Farbe in violett über, ähnlich wie beim Amylodextrin. Auch der durch Auskochen der Droge erhaltene Schleim wird durch Jod violett. Die Fäden knirschen beim Drücken mit der Hand, quellen in Wasser nur wenig, entwickeln dabei aber den typischen Tanggeruch. Mit dem 50fachen Wasser gekocht liefern sie eine Gallerte. Der _Fucus amylaceus_ wurde 1834 von ~O’Shaughnessy~ empfohlen und 1837 von ~Previté~ unter dem Namen Ceylonmoos in England eingeführt. Im deutschen Handel ist er seit 1841 (~Martius~, Jahresber. d. Pharm. 1842, 241). Er wird in Indien als Nahrungsmittel benutzt, kann aber auch wie Carrageen (s. d.) benutzt werden (~Crawford~). Im indischen Archipel und in China ist er längst in Gebrauch. Er ist wohl eine der von ~Rumphius~ im Herbar. Amboinens. unter dem Namen _Alga coralloides_ beschriebenen Pflanzen. In der Pharmakopoëa indica (1868) steht eine Decoction of Ceylon Moss [und (non officinal) +Gillur ka putta+ von _Laminaria saccharina_]. Beigemengt ist der Droge bisweilen: _Gracilaria confervoides_ ~Grev.~ Als Paralleldroge gilt _Gelidium cartilagineum_ ~Gaill.~ und _Gigartina selacea_ ~Lamx.~ (Weitere Angaben in der Pharmakographia.) 2. Agar-Agar von Makassar. =Syn.= Agar-Agar von Java, Alga spinosa, ostindisches Carrageen. =Stammpflanze.= =Eucheuma spinosum= (L.) ~J. Agardh~ (Fucus sp. L., Sphaerococcus sp. ~Ag.~). =Systemat. Stellung.= Florideae -- Gigartinales -- Rhodophyllidaceae -- Solicrieae. Die im chinesischen Meere vorkommende Alge hat einen trockenen, etwa 2 mm dicken, stielrunden, rötlich-gelblichen, knorpeligen Thallus, der ziemlich reichlich mit dornigen Auswüchsen, den Cystocarpien, besetzt ist. In Wasser quillt sie auf die doppelte Dicke und wird hyalin. Sie zeigt oft weiße Salzinkrustrationen, dient auch zur Agar-Agar-Bereitung (s. unten) und in Japan zur Herstellung von Gelees (Abbild. nach ~Kützing~ bei ~Krasser~ in ~Wiesner~, Rohstoffe I, 645). 3. Japanisches Moos. =Stammpflanze.= =Gloiopeltis coliformis= ~Harv.~, =G. cervicornis= ~Schmitz~. =Systemat. Stellung.= Florideae -- Cryphonemiales -- Gloiosiphoniaceae. Diese in dem chinesisch-japanischen Meere vorkommenden Algen dienen den Japanern als billiges Nahrungsmittel und liefern einen zähen Schleim. Viele Algen dienen in Japan als Nahrungsmittel. ~Senft~ gibt folgende japanische Namen eßbarer Algen an: _Laminaria japonica_ = Konbu, Kobu, Hirome; _Porphyra vulgaris_ = Asakusa-nori, Ama-nori, _Alaria pinnatifida_ = Wakame, _Chondrus_ spec. = Hijiki, _Gelidium corneum_ = Tokoro Tengusa, _Gracillaria confervoides_ = Ogo nori, _Enteromorpha compressa_ = Ao nori, _Phycoceris smaragdina_ = Ao sa, Tisanori, _Hallymenia dentata_ = Tasaka nori, _Halochtoa macrantha_ = Hondawara, Kawaramo (vgl. auch Useful plants of Japan, Edible Algae). Über eßbare Algen vgl. auch oben S. 303, 307 und 313. II. Aus Algen dargestellte Gelatinen. Agar-Agar von Japan. =Syn.= Vegetabilischer Fischleim, japanische oder chinesische Gelatine, japanische oder indische Hausenblase, Gelose -- japanese isingglaß, vegetable gelatine, sea-weed -- in Japan: kanten -- dschin-dschen, tjen-tjan (das quadratische), dschindschom, tientjan, tjientjan, tientjow, thao, lothaho, haitao, haitsai, haitsau, yang-tsai. In den ind. Bazars: chinighás. In den Preislisten auch: Gelatina japonica Tjen-Tjan. -- ~Marchand~ schlägt vor das Agar Phycocolla zu nennen (im Gegensatz zu Ichthyocolla). =Stammpflanze.= Die beste Sorte japanisches Agar-Agar wird von _Gelidium_-Arten gesammelt, hauptsächlich wohl von =Gelidium Amansii= ~Lamx.~ (= G. Swansii?), =G. polycladum= ~Kütz.~, =G. elegans= ~Kütz.~ (G. rigidum) -- weniger von Gelidium japonicum ~Okam.~ und G. subcostatum ~Schmitz~ -- [Florideae, Nemalionales, Gelidaceae], in neuerer Zeit auch von Acanthopeltis japonica ~Okam.~, ebenfalls ein Gelidiacee. Andere Arten, welche zur Herstellung von Agar-Agar dienen, sind: _Gracilaria confervoïdes_ und _G. lichenoïdes_, _Campyloeophora hypneoïdes_, _Ceramium rubrum_. Ferner werden als ein Agar liefernd angegeben: _Gelidium corneum_ (~Hudson~) ~Lamour.~ (_G. capillaceum_ ~Ktz.~, _Fucus corneus_ ~Huds.~, _Sphaerococcus corn._ ~Ag.~); _Gelidium cartilagineum_ ~Gaillon~ (_Fucus cartilagineus_ L., _Sphaerococc. cart._ ~Ag.~); _Gloeopeltis tenax_ (~Turner~), ~J. Agardh~ [Florideae -- Cryptonemiales -- Gloiosiphoniaceae]; _Eucheuma spinosum_ (L.) ~J. Agardh~ (_Fucus spinosus_ L., _Sphaerococcus spinos._ ~Ag.~); _Eucheuma gelatinae_ ~Ag.~ (_Sphaerococcus gelat._ ~Ag.~). _Eucheuma speciosum_ ~Ag.~ (_Gigartina speciosa_ ~Sond.~). [Illustration: Fig. 105. _Gelidium Amansii._ [+Holmes+, Pharmaceut. Journal 1906.]] ~Payen~ betrachtete _Gelidium corneum_ ~Lam.~ und _Gracillaria lichenoides_ ~Gr.~ als Stammpflanze des Agar. Ersteres wird sicher von den Chinesen gebraucht. (~Hanbury~ fand es 1860 in einer Sammlung chinesischer Algen.) Doch werden nach ~Hanbury~ auch _Laurencia papillosa_ ~Gr.~, _Laminaria saccharina_ ~Lamx.~, _Porphyra vulg._ ~Ag.~ und _Gracillaria_ (_crassa_?) sowie _Eucheuma spinos._ benutzt. ~Marchand~, der die Streifen und vierkantigen Stücke (Würfelagar) mikroskopisch untersuchte, fand hierbei besonders _Gelidium polycladum_ ~Kütz.~, unter dem sich aber zwei Algen verbergen. ~Holmes~ bildet das japanische _Gelidium polycladum_ ~Sonders~ ab, das die Hauptmasse der Tengusa bildet. ~Marchand~ hält _Gloiopeltis_ für den Hauptbestandteil in dem Würfelagar und _Gelidium corneum_ var. _acanthocladum_ (nach ~Holmes~ _var. pinnatum_) für den Hauptbestandteil der schmalen Streifen und erwähnt auch eine _Endocladia_. ~Matsumura~ nennt: _Gelidium corneum_ var. _pinnatum_, _G. cartilagineum_, _G. repens_, _G. rigidum_; ~Okamura~ beschreibt andere Arten. ~Davidsohn~, der in Japan lebte, teilte dann (1906) mit, daß hauptsächlich _Gelidium Swansii_, soll wohl heißen: _Amansii_ (= Tengusa) gutes Kantén liefere, dann ein unbekanntes _Gelidium_ (= Higekusa), schlanker als Tengusa und _G. japonicum_ (= Onigusa); geringeres Kantén aber von dem an der Küste wachsenden _G. subcostatum_ und den besonders als Beisatz benutzten _Campyloeophora hypneoides_ (= Ego) komme. Beinahe so gut wie Tengusa bezeichnet er _Acanthopeltis japonica_ (= Toriaschi -- in Shikoku). Als Substitute und Beisätze werden auch benutzt: _Gracillaria confervoides_ (= Ogo) und _Ceramium Boydeni_ (= Igisu). ~Holmes~ fand in Tengusa (1879): _Gelidium elegans_ und _G. polycladum_ (nicht _G. subcostatum_ und _divaricatum_). ~Davidsohn~ führt noch als Kantén liefernd an: _Campyloeophora hypneoides_, _Gracillaria confervoides_ (wohl _compressa_), _Sarcodia_ spec. ign. ~Tunmann~ fand 1909 in den feinsten Sorten Agar _Gracillaria confervoides_. Nach ~Marchand~ u. a. werden außer den Hauptalgen (s. oben) noch folgende zur Agar-Agar-Bereitung benutzt: _Sphaerococcus compressus_ ~Ag.~, _Gloiopeltis coliformis_, _Gelidium capillaceum_, sowie Arten von _Streblonema_, _Scytosiphon_, _Sporanthus_, _Ceramium_, _Centroceras_, _Endocladia_ _Nitophyllum_, _Polysiphonia_, _Gracillaria_. ~Eug. Collin~ fand in Agar Reste von _Gelidium_, _Gloeopeltis_, _Gracillaria_, _Laurencia_ und _Ceramium_. Er bemerkt: «Il est probable que les Japonais utilisent pour la préparation +toutes les algues+ de leur littoral, qui peuvent se transformer en gélose.» =Etym.= Gelidium von gelare gefrieren, gerinnen, gelu (für Gelée schon im Wiener Dispensatorium) bedeutet Frost, Kälte. -- Eucheuma von εὐ = wohl, schön, χεῦμα = Guß, Gußarbeit -- Gloeopeltis von γλοία = Leim, Gallerte, πέλτη = Schildchen. Die Gelidiaceen sind Rhodophyceen mit meist zartem verzweigtem, stielrundem Thallus mit deutlicher Fadenstruktur. Die Cystocarpien in Gestalt kleiner Anschwellungen bald endständig, bald intercalar an den letzten Auszweigungen des Thallus verteilt. Die Gelidieen haben Sprosse mit Zentralachse und eine dicht geschlossene Rinde. Die Zentralachse mit quergegliederter Scheitelzelle, Rindenfäden wirtelig angeordnet. Die vielgestaltigen Arten der Gattung _Gelidium_ ~Lamouroux~ (_Cornea_ ~Stackhouse~) finden sich in sämtlichen wärmeren Meeren, oft weit verbreitet, _Gelidium corneum_ (~Hudson~) ~Lamourx.~ z. B. im atlantischen, indischen und stillen Ozean. _Gelidium_ ist fiederig seitlich verzweigt, von sehr dichtem und zähfestem Gefüge. Die Außenrinde ist kleinzellig, die Innenrinde längsfaserig durch zahlreiche, dicht zusammenschließende, dünne, längslaufende Fäden, welche die dünne Zentralachse fast vollständig verdecken und deren Gliederzellen sich vielfach querüber vertüpfeln. Bei _Gelidium corneum_ findet sich ein ausgesprochenes Assimilationssystem in der Peripherie, das durch Sammelzellen mit dem weiter innen gelegenen Leitungssystem in Verbindung steht (Abbild. nach ~Agardh~ in ~Haberlandts~ Anatomie S. 265). =Andere aus Algen hergestellte Gelatinen sind=: =Satsuma Funori=, ein statt Gummi oder Leim von den Japanern und Chinesen als Klebemittel und zum Wäschestärken benutzte Gallerte, wird besonders aus _Gloeopeltis tenax_ ~Ag.~ hergestellt (s. weiter unten). =Nori=, ein japanisches Nahrungsmittel, wird aus _Porphyra laciniata_ und _coccinea_ dargestellt (~Senft~). [Illustration: Fig. 106. Assimilationssystem von _Gelidium corneum_ (Zellumina schwarz); darunter Sammelzellen, die mit dem Leitungsgewebe in Verbindung stehen. [Nach +Agardh+ aus +Willes+ Algernes physiologiske Anatomi.]] Unter dem Namen «Sea weed jelly from China», «chinesische Pflanzengallerte», befinden sich in meiner Sammlung braune Würfel, die einen Caramelgeruch besitzen, süßlich fad schmecken und stark in Wasser quellen. Weitere Angaben in ~Dragendorff~, Heilpflanzen. Über =Hay-Thao= und =Ly-chô= vgl. ~Valenta~, Klebe- und Verdickungsmittel. =Lit.= ~Rennie~, Essays on the nat. hist. and orig. of Peat moss. Edingb. 1810. -- ~Meyer~, De Fuco crispo. Berolin. 1835. -- ~Herzer~, De fuco crispo. Turici 1836. -- ~Sigmond~ and ~Farre~, Essay of the Ceylon Moss. London 1840. -- ~Lovén~, Om Geléers. Lund 1841. -- ~Archer~, Pharm. Journ. XIII, 312, 1854. -- ~Simmonds~, Ebenda 355. -- (~Wiggers~ bespricht ~Archers~ u. ~Simmonds~ Arbeit, Pharm. Jahresb. 1854, 10). -- ~Payen~, Compt. rend. 1859 u. 1860. -- ~Hanbury~, Science papers 1860. -- ~Marchand~, Note sur le Phycocolla ou gelatine végétale produite par les algues. Bull. soc. bot. France 27 (1879), 287 und 1880, 207. -- ~C. A. J. A. Oudemans~, Bijdrage tot de kennis van het Agar-Agar vlugtige opmerkingen omtrent Fucus amylaceus en Tjentjau. Haaxm. Tijds. 1856 (gute morpholog. u. anatom. Abbild. von _Eucheuma spinos._ u. _Gracillaria lichenoides_), auch Arch. Pharm. (2) 87, 283 (mit einer Tafel). -- ~J. Agardh~, Spec. gen. et ordines algarum. Lund 1848-76. -- ~Suringar~, Algae japonicae. -- ~De Toni~, Sylloge algarum omnium hucusque cognitarum. -- Useful plants of Japan. -- ~Bornet~ et ~Thuret~, Rec. d’observ. sur les alg. Paris 1876-1880. -- ~Okamura~, Neue japan. Florideen. Hedwigia 1894. -- ~Yatabe~, Iconographia flor. japon. I. -- ~Matsumara~, Catal. of the plants of Japan. -- ~Holmes~, The japanese sea weed industry (Pharm. Journ. 1906, 319 (besonders nach ~Davidsohn~, Wakayama Sea weed industr. Bull. Imper. Inst. IV, 2, 125; mit Abbild.) -- ~Dymock~, Vegetable Mater. med. -- ~Filet~, Plantkundig woordenboek. -- ~Hartwich~ in Realenzykl. d. ges. Pharm. I, 322. -- ~Krasser~, Algen in ~Wiesner~, Rohstoffe. -- Die +Gelidiaceen+-Literatur bei ~Schmitz-Hauptfleisch~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. I, 2,340. -- +Abb.+ von _Gracillaria_: ~Bentley-Trimen~, pl. 306. -- ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. I, Fig. 10 u. 11 (auch anatom.). =Darstellung und Handelssorten.= Die Auskunft, die ~Holmes~ (1906) von einem Japaner erhielt, lautete dahin, daß die gereinigten Algen zu einem steifen Gelee gekocht werden, welches in Formen ausgegossen wird. Die erkaltete Masse wird, in Streifen geschnitten und, der Sonne einen Tag ausgesetzt, langsam trocknen gelassen. Der Hauptsitz der Agarfabrikation sind (nach ~Davidsohn~) die Distrikte von Osaka, Kioto, Nagano und Hiogo (besonders Hokaido, Wakayama, Miye, Shozuoka, Chiba), woselbst die Gewinnung namentlich während der Wintermonate betrieben wird. Die Pflanzen werden bereits vom Mai bis August gesammelt, während welcher Zeit sie am ergiebigsten sind. Die Hauptalge ist _Gelidium_ «_Swansii_» (= _G. Amansii_), in Japan «Tengusa» genannt. Sie ist 10-20 cm lang und wird mittelst Haken und Schaufeln bzw. Schleppnetzen, auch durch Taucher aus dem Meere gesammelt, da die am Ufer wachsenden Algen von geringerem Werte sind. Es werden aber auch andere Arten (s. oben) zur Agarbereitung herangezogen; man setzt diese gewöhnlich dem Tengusa-Agar in größerem oder geringerem Maße zu (vgl. oben S. 306), wodurch die Qualität natürlich entsprechend beeinflußt wird. Die frisch gesammelten Algen werden von den Fischern am Strande sorgfältig getrocknet und hierbei zum Teil schon gebleicht; dies geschieht häufig (z. B. in der Provinz Izu) auf über den Boden erhöhten Bambusmatten. Das Produkt wandert nun in die «Kanten»-Fabriken, wo es in einer Art von steinernen Mörsern unter fortwährendem Wasserzusatz von anhaftenden Verunreinigungen, wie kleinen Muscheln und dergleichen, befreit wird. Dann wird es in Bambuskörbe in fließendes Wasser gestellt, um die letzten Unreinlichkeiten zu entfernen. Dann wird gebleicht, unter fleißigem Begießen und Wenden (zumal bei trockenem Wetter), wozu in der Regel 24 Stunden, bei ungünstiger Witterung aber auch mehrere Tage erforderlich sind. Das erste Bleichen beginnt im August oder September. Die Algen werden in dünner Schicht auf Bambusmatten ausgebreitet. Schließlich hängen die Algen zu Bündeln zusammen und diese Bündel werden verspeichert. Zur eigentlichen Herstellung des Agars, die vom November bis März erfolgt, weicht man die bearbeiteten Algen in Wasser ein, kocht sie über freiem Feuer (in 790 gallons haltenden Kesseln) oder behandelt sie mit Wasserdampf. Hierbei werden von den Fabriken bestimmte Gewichtsmengen Wasser und Algen (es kommen z. B. 165 engl. Pfund Algen auf 950-1000 Gallonen Wasser) eingehalten. Verwendet man geringwertigere Algen als Zusatz, so läßt man diese länger kochen, d. h. man gibt sie früher in den Kessel als die gute Sorte. Die ganze Masse bringt man zum Kochen, rührt innerhalb fünf bis sechs Stunden häufig um, gibt dann ein bestimmtes Quantum Essig oder Schwefelsäure zu und läßt nun wieder frisches Wasser zufließen. Etwa eine halbe Stunde nach dem erneuten Aufkochen ist der Prozeß beendigt. Die gelatineartige Flüssigkeit (japan.: Tokoroten) wird durch ein Hanf- oder Baumwollgewebe gepreßt (in Pressen oder durch Beschweren mit Gewichten) und zum Erkalten beiseite gestellt; nach etwa 18 Stunden ist sie zu einer Gallerte erstarrt. Die Preßrückstände werden wiederholt mit Wasser behandelt und auf die gleiche Weise nochmals auf Agar verarbeitet. Die Gallerte wird schließlich (im November bis Februar) der Nachtkälte ausgesetzt, wodurch die Masse nach etwa 18 Stunden bis drei Tagen völlig erstarrt und fest wird. Man läßt hierbei den filtrierten Schleim in genau wagerecht gestellte hölzerne Tröge laufen, die 61 cm lang, 30,5 cm breit und 7,5 cm tief und bisweilen in Kolonnen geteilt sind von 46 cm Länge, 3,5 cm Breite und 3,8 cm Tiefe. Dann erst zerschneidet, bzw. trocknet man sie unter wiederholtem Wenden an der Sonne und bringt die Droge in die handelsübliche Form. Das Schneiden in Längsstreifen geschieht mittelst eiserner «frames», das Trocknen auf Bambusmatten oder auf Böcken in Holzverschlägen unter Abhaltung des Staubes, bei kaltem Wetter (35° F.). Der größte Teil des japanischen Agar-Agar geht nach China und +Hongkong+ und nur eine verhältnismäßig kleine Menge gelangt direkt nach Europa (~Davidsohn~ 1906, ~Holmes~). [Illustration: Tafel VI a. Agar-Agar-(Kanten-)Fabrik in Suwa Gori (Japan). 1. Die in dem hinten sichtbaren Bottich gekochte Masse wird auf die Filter geschöpft und die filtrierte Masse dann auf die rechts sichtbaren Rahmen gebracht. 2. Die gefüllten Rahmen werden ins Freie getragen. 3. Die starker Winterkälte ausgesetzten, in Reihen angeordneten Rahmen. [Clichés Salle & Co. aus +Perrot-Gatin+, Les Algues marin. utiles 1911.]] Die Güte des Agar ist wohl nicht abhängig von den verwendeten Arten, sondern von der mehr oder weniger sorgfältigen Bereitungsweise. Es wird in folgenden Sorten hergestellt: 1. In c. 3-5 mm breiten, c. 35 cm langen, hyalinen oder grauweißlichen zerknitterten, meist zu Bündeln verschnürten Streifen. Selten erreichen diese, an die sog. Seele der Federkiele erinnernden, Streifen Fingerdicke und eine Länge von 50 cm. 2. In 2,5-4 cm dicken, c. 25-30 cm langen, gelblichweißen, leichten, vierkantigen, knitterig-blätterigen Stücken, die an den Kanten ebenfalls durchscheinend hyalin sind. 3. In c. 3 cm breiten und c. 30 cm dicken hyalinen Platten. ~Hanbury~ hatte schon 1859 sowohl die vierkantigen Stücke, wie die dünnen Streifen in Händen (Science papers). Der Großhandel unterscheidet Agar in +Fäden+ -- A.-+Schnitzel+ -- A.-+Stangen+ und A. in +Linealform+. Fäden, Schnitzel, Stangen kommen in Packen von c. 90 kg in den Handel, Linealform in Kisten à 100 Stangen. Von Fäden, der besten und wichtigsten Sorte, unterscheidet ~Grossmann~ 1910 primaweiß 000, prima 00 und prima 0, eine minderwertige Sorte nennt er courant. Der Export von Agar-Agar aus Japan betrug in den ersten 9 Monaten 1909: 1708353 Kin. 1904 exportierte Japan 10657 dz, 1906: 8377 dz. ⅓ der Ausfuhr geht nach China. Deutschland importierte 1906: 1064 dz, 1909: 919 dz. +Funori+ (sea weed glue s. oben S. 307) wird aus _Gloiopeltis tenax_ (Yanayo-Funori) und _G. coliformis_ und einigen anderen noch nicht bestimmten Algen dargestellt -- das beste in Nagasaki und Kogoschima. Es wird auf dem Boden ausgebreitet, mit Händen und Füßen geknetet, in Körben gewaschen, dann zum Bleichen und Trocknen unter Bespritzen mit Wasser gleichmäßig ausgebreitet. Wenn ein zäher Saft auszutreten beginnt, wird kein Wasser mehr aufgespritzt. Man läßt dann eine Nacht liegen und trocknet. Das fertige Produkt ist also +kein extrahierter Schleim, sondern wird von den verschleimten verschlungenen Thallusstücken+ gebildet. Es kommt in sheets (Blättern), die 4½ : 2½ Fuß lang sind, oder in Rollen in den Handel. Es löst sich fast ganz in kochendem Wasser (Pharm. Journ. 1906, Sept.). (Einige andere Algen, wie _Chondrus_ spec. = tsuno-mata, _Iridoea_ spec. = Ginantso, werden vorher in Wasser eingeweicht und erhitzt, dann mit Wasser bearbeitet und zum Trocknen ausgebreitet.) =Lit.= Bereitung: ~Davidsohn~ a. a. O. -- ~Holmes~ a. a. O., -- Pharm. Zeit. 1907, 1078. =Beschreibung.= In kaltem Wasser quillt Agar-Agar auf, in heißem löst es sich größtenteils zu einem klebrigen Schleim, der abgekühlt zu einer Gelatine erstarrt. Der Schleim wird durch Jod violett. Die Droge quillt in Kali stark, kaum in Kupferoxydammoniak. [Illustration: Fig. 107. Auf chinesischen Meeresalgen gefundene Diatomeen. [Aus +Villiers-Collin+, Traité des alterations et falsifications. Doin et fils Paris.]] Im ungereinigten Agar-Agar finden sich neben plasmatischen und verkleisterte Florideenstärke enthaltenden Zellinhalten, die den einzelnen Algenzellen entsprechen, und intakten Zellen, besonders des Leitungsgewebes, stets zahlreiche +Diatomeenschalen+ und +Spongillennadeln+ (~Marpmann~, ~Senft~, ~Tunmann~) (vgl. Fig. 107 u. 108). Man kann sich dieselben dadurch sichtbar machen, daß man einäschert, die Asche mit Salzsäure behandelt, sedimentieren läßt und das Sediment unter das Mikroskop bringt oder das Gelee mit Schwefelsäure und etwas Kaliumpermanganat dünnflüssig macht, sedimentieren läßt und das Sediment untersucht: Die besseren Sorten enthalten weniger Diatomeen und Spongillennadeln als die schlechten Sorten. Auf diese Weise kann man rohes, ungereinigtes Agar auch in Fruchtgelees nachweisen. Es finden sich namentlich Arten der Gattungen _Cocconeis_ und _Grammatophora_, dann auch _Arachnoidiscus_ und _Campyloneis_ (~Senft~), seltener die von ~Marpmann~ angegebenen _Amphiprora_, _Licmaphora_, _Stauroneis_, _Rhabdonema_, _Chaetoceras_, _Triceratium_, _Amphitetras_ und _Biddulphia-_Arten. Auf _Gelidium_ fand ~Menier~ _Arachnoidiscus ornatus_ ~Ehrb.~ Die Spongillennadeln sind einfache Nadeln oder Nadelsterne (~Tunmann~). ~Tunmann~ fand im Agar auch Kalkalgen Polypen und (von den Preßsäcken herrührend) Baumwolle und Hanffasern. =Lit.= ~Menier~, Falsific. de l. gelée de groseille du comm. decouv. p. les Diatom. Nantes 1879. -- ~Marpmann~, Über Agar-Agar und dessen Verwendung und Nachweis. Zeitschr. angew. Mikrosk. 2, 1897. -- ~Senft~, Über Agar-Agar-Diatomeen. Zeitschr. Allg. öster. Apoth. Ver. 1902, 229 (mit Abbild.). -- ~Tunmann~, Einige Bemerk. über Agar-Agar, Pharm. Centralh. 1909, 233. -- Abbild. der Diatomeen auch in ~Villiers~ et ~Collin~, Altérat. et falsificat. 1900, p. 833. [Illustration: Fig. 108. 1. _Grammatophora angulosa_ Ehrenb.: a Schalenseite. 2. _G. oceanica_ Ehrenb. 3. _G. oceanica_ f. _macilenta_. 4. _G. serpentina_ Ralfs. 5. _Arachnoidiscus ornatus_ Ehrenb. 6. Nicht punktierte _Cocconeis_. 7. _Cocconeis Scutellum_ Ehrenb.: a obere, b untere Schalenseite. b f. _minor_. 8. _Campyloneis Grewillei_ Grun. 9. Kieselnadeln. [+Senft.+]] =Chemie.= Nach ~König~ und ~Bettels~ enthält lufttrockenes _Gelidium cartilagineum_ in Prozenten: Wasser 13, Gesamt-N-Substanz 17, wasserlösliche N-Substanz 7,37, Ätherauszug 0,8, N-freie Extraktstoffe 40,16, Pentosane 3,35, Methylpentosane 0,91, Rohfaser 12,9, Asche 11,88, Chlornatrium 0,3. Durch Dämpfen wird in Wasser löslich: 9,37 anorganische und 54,22% organische Substanz. Nach ~Greenish~ enthält _Ceylonmoos_ 36,71% Gelose (s. unten). ~Nagai~ und ~Murai~ fanden in lufttrockenem Agar-Agar (Tungusa) in Prozenten 9,8 Stickstoffsubstanz, 52,2 stickstoffreie Extraktivsubstanz, 5 Rohfaser, 18,5 Wasser und 14,5 Asche. ~Kellner~ fand nur 3,4% Asche. Auch bei den Agar-Analysen von ~Greshoff~, ~Sack~ und ~van Eck~ finden wir große Schwankungen, in einem Falle 18,96%, im andern 2,89% Asche. ~Davidsohn~ fand in bestem japan. Agar 21,79% Wasser, 5,95% N-haltige Subst., 64,59% Kohlehydrate, Gelose, 3,54% Zellulose, 4,13% Asche. ~Greenish~ gibt in Agar 7 Kohlehydrate an: wasserlöslicher Schleim, Gallerte bildende Substanz, Stärke, Metarabin, Pararabin, Holzgummi, Zellulose. Die Zusammensetzung der «Strohhalmform» und der sog. «vierkantigen Form» des Agar unterscheiden sich nur wenig, sie enthalten (vgl. bei ~König~) 2,5 (6,1)% Protein, 0,85 (0,58)% Fett, 70,58 (63,96)% Kohlehydrate, 3,06 (3,18)% Pentosane, 0,44 (0,42)% Rohfaser, 3,46 (3,4)% Asche. ~König~ und ~Bettels~ fanden bei der Hydrolyse von _Gelidium cartilagineum_ u. and. _Gelidien_: d-Galaktose, Fruktose und Pentosen. Die gleichen Zucker liefert _Agar-Agar_. Bei der Hydrolyse von _Agar_ wird Zellulose abgeschieden und es scheint auch das dem Glukose-Dextrin entsprechende Anhydrid der Galaktose (Galaktan) aufzutreten (~Tollens~). Nach ~O’Shaughnessy~ enthält _Jafnamoos_ 54,5% Pflanzengallerte (Pektin), 15% Stärkemehl (?), 0,5% Wachs, 4% Gummi, 18% Faser und Salze. Ferner ist Jod darin gefunden worden (~Wonneberg~ und ~Kreyssig~). ~Greenish~ fand 36,71% Gelose -- daneben Metarabin (1,32%), Paramylan (6,52), Holzgummi (3,17), Zellulose (10,17). Das Kohlehydrat des Agar-Agar wurde als +Gelose+ (~Payen~ 1859) bezeichnet und zur Pektingruppe gerechnet. Gelose ist nicht identisch mit Fucin, Lichenin, Pararabin. Bei der Hydrolyse liefert Gelose u. a. Arabinose (~Greenish~). Reine Gelose gibt noch 1 : 500 eine steife Gallerte und unterscheidet sich von der tierischen Gelatine dadurch, daß sie von Tannin nicht gefällt wird, vom Carrageenschleim, daß sie gelatiniert, und vom Gummi, daß sie sich nicht in kaltem Wasser löst. Das +Gelosin+ ~Guérins~ (1886), das zu 20% aus _Gelidium corneum_ erhalten werden kann und dem Fucin und der Pektose nahestehen soll, ist wohl identisch mit Gelose. Nach ~Payen~ stimmt die Gelose von _Agar-Agar_ mit der des _Jafnamoos_ überein. ~Morin~ und ~Porumbaru~ gaben ihr die Formel C₆H₁₀O₅. Sie wird durch Jod rotviolett. _Agar-Agar_ liefert bei der Behandlung mit HNO₃ Schleimsäure und Oxalsäure. Es enthält also ein +Galaktan+ (~Greenish~, ~Morin~, ~Bauer~). Bei der Oxydation lieferte _Agar_ Strohhalmform 25,44-25,91%, _Agar_ vierkantige Form 27,06% Schleimsäure -- entsprechend 33,05-36,57% Galaktose. Ein wesentlicher Bestandteil sowohl des _Agar-Agar_ wie des _Ceylonmoos_ (~Reichardt~, ~Greenish~) ist, wie es scheint, das +Pararabin+ (C₁₂H₂₂O₁₁)ₙ. Pararabin quillt in Wasser und besitzt im Gegensatz zur Arabinsäure keine sauren Eigenschaften. Bei längerer Berührung mit Alkalien geht es in Arabinsäure über. Das Pararabin des _Agar-Agar_ liefert bei der Hydrolyse Galaktose (~Bauer~), das des _Ceylonmoos_ Galaktose und d-Glukose (~Greenish~). Bei der Hydrolyse des +Nori+ (s. oben) wurde l-Galaktose, d-Mannose, Glukose und etwas Fucose erhalten (~Oshima~ und ~Tollens~). Es enthält also +Mannan+. Nach ~Tollens~ enthält _Agar_ 1,66% der Trockensubstanz +Pentosan+. Die wichtigsten Gelatine gebenden Algen und aus Algen gewonnenen Substanzen zeigen folgendes Verhalten (~Stanford~). Mit 1000 T. Wasser geben eine Gelatine: Die erhaltene Gelatine Von Teile Also Proportion schmilzt bei Gelose aus China 4 1 31,0° Gelidium corneum 8 2 31,0° Chondrus crispus 30 7,5 26,5° Hausenblase 32 8 21,0° Gelatine 32 8 15,0° Caragheenin 36 9 21,0° Agar-Agar 60 15 31,0° =Lit.= Ältere chem. Unters. des Fucus amylaceus und Agar in ~Pereira~, Heilmittellehre, zitiert. -- ~O’Shaughnessy~, Ind. Journ. of med. sc. Calcutta 1834 und London, Med. Gaz. 1837, 566, Royal. Med. Bot. Soc. 1837, 618. -- ~Sigmond~ and ~Farre~, On the Ceylonmos 1840. -- ~Bley~, Jahrb. f. pr. Pharm. 1843. -- ~Riegel~, Ebenda. -- ~Kreyssig~ u. ~Wonneberg~, Artus allgem. pharm. Zeitschr. Heft 1. -- ~Gonnermann~ u. ~Ludwig~, Arch. d. Ph. 111, S. 204, -- ~Guibourt~ (1842). -- ~Archer~ u. ~Simmonds~, Pharm. Jahresber. 1854, 10. -- ~Martius~, Ebenda 1858 u. N. Jahrb. f. Pharm. 1858. -- ~Payen~, Ebenda 1860, 13. Sur la Gelose Compt. rend. 1859, 523. -- ~Hanbury~, Note on manufactur. prod. of sea-weed called japanese ising glass. Ph. Journ. (2), 1, 1859, 508 und Science papers 206. -- ~Reichardt~, Arch. d. Pharm. 209 (1876), 107. Ber. d. chem. Ges. 8, 807. -- ~H. G. Greenish~, Pharm. Zeitschr. f. Rußl. 20, 501. Ber. d. chem. Ges. 1881, 2253 und 1882, 2243. Chem. Centrbl. 81, 649. -- +Derselbe+, Die Kohlehydrate von Fucus amylaceus. Arch. d. Pharm. 17, 241, 321. Dort die ältere Literatur. -- ~Morin~, Compt. rend. 90 (1880), 924, Bull. soc. bot. france (2), 1. -- ~Porumbaru~, ibid. p. 1081. -- ~Bauer~, Journ. pr. Ch. 30 (1885), 367. N. Zeitschr. f. Rübenzuckerind. 14, 154. -- ~Oshima~ u. ~Tollens~, Ber. d. chem. Ges. 34 (1901), 1422. -- ~Cooke~, Pharm. Journ. 1860. 504. -- ~Holmes~, Pharm. Journ. IX (1878), 45. -- ~Tollens~, Kohlenhydrate und Journ. Landw. 1896. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Vogl~, Kommentar. -- ~Pereira~, Handbuch. -- ~Porter-Smith~, Contrib. t. Mat. med. etc. of China. Shanghai 1871. -- ~Oudemans~, Haaxm. Tijds. 1856 u. Arch. d. Pharm. (2) 87, 283 (mit Tafel). -- ~Stanford~, Algin, Chem. Zeit. 1885. -- ~Kellner~, Jap. chem. anal. of a collection of agric. specim. Intern. agr. exhib. New Orleans 1884. -- ~Nagai~ und ~Murai~, Jap. intern. health. exhib. London 1884, Catal. -- ~König~ und ~Bettels~, Die Kohlehydrate der Meeresalgen und daraus hergestellte Erzeugnisse. Zeitschr. Unters. d. Nahrungsm. 10. -- ~König~, Nahrungsm. =Anwendung.= Agar-Agar wird etwas in der inneren Medizin, viel zu Gelees, (Ersatz der Gelatine), dann (zum Teil mit Gelatine gemischt) zur Herstellung von Nährgelatine für bakteriologische Zwecke -- sie bleibt auch bei c. 40° noch fest und und in der Industrie als Appretur und für Stempelkissenmasse benutzt; neuerdings in der chirurgischen Praxis als Prothese (~Kramer~). Auch (das gepulverte) für Vaginalkugeln, Stuhlzäpfchen und Medizinalstäbchen. Zu arzneilichen Zwecken empfahl es zuerst ~Previté~ anfangs der vierziger Jahre des XIX. Jahrh. Die Mikroskopiker benutzen sie als Einbettungsmittel. In Japan und China werden die vierkantigen Stücke zu Gelees, Süßigkeiten usw., die schmalen Streifen im Haushalt wie Stärke, z. B. zum Stärken, Nori auch zum Leimen des Papiers und der Laternen benutzt. Die Gallerte aus _Ceramium Loureirii_ ~Ag.~ wird als Nahrungsmittel und bei Brustkrankheiten gebraucht (~Dragendorff~). Agar dient auch zur Appretur feiner Gewebe, denen man einen geschmeidigen Griff geben will. =Lit.= ~Heilmann~, Bull. soc. ind. Rouen 1875, 263. -- ~Dinglers~ Polyt. Journ. 218, 522. -- ~Dragendorff~, Heilpflanzen. -- ~Senft~, Über einige in Japan verwendete vegetabil. Nahrungsm. usw. Pharm. Praxis 1906 und 1907. -- ~Watt~, Diction. econ. prod. IV, 174. -- ~Mason~, Burma and its People. -- ~Balfour~, Ciclop. I -- +Pharmacogr. indica+ III, 635 u. 638 (dort die Verwend. in d. Technik). -- ~Dymock~, Veg. mat. med. West. ind. -- Verwend. in d. Chirurgie: ~Kramer~, Mercks Bericht 1901. An dieser Stelle mag auch der in Ostasien als Leckerbissen hochgeschätzten =Salanganen-=, =Tunkin-= oder =indischen Vogelnester= gedacht werden, da dieselben auch noch neuerdings (~Dragendorff~ 1898, ~Leunis~, ~Karsten~) mit den Meeresalgen in Beziehung gebracht werden. Sie haben aber mit denselben nichts zu tun, denn sie werden von Turmschwalben der Gattung _Collocalia_ (bes. _C. fuciphaga_, _esculenta_ und _nidifica_) aus einem von den Vögeln ausgewürgten Schleime aufgebaut, der von zwei Speicheldrüsen sezerniert wird, die sich während der Brutzeit zu einer bedeutenden Größe entwickeln (~Marshall~). Sie enthalten +Neossin+, eine dem Mucin verwandte Substanz (~König~ und ~Bettels~). Nach den Analysen von ~Greshoff~, ~Sack~ und ~van Eck~ enthalten die Salanganennester im Mittel 55,57% «Protein» (neben 0,6% Fett, 7,16% Asche und 18,63% Wasser). Sie gehören also eigentlich zu den Mucindrogen (neben den tierischen Leim). 2. Schleime der sekundären Membran. Schleime in Vegetationsorganen und Blüten von Phanerogamen. a) Schleime in Samen. 1. Schleimepidermen. Zu den Drogen, welche Schleimepidermen an der Samenschale besitzen, die also auch, ohne zertrümmert zu werden, mit Wasser einen Schleim liefern, gehören in erster Linie die Samen von _Linum usitatissimum_ und _Cydonia vulgaris_, dann die Flohsamen von _Plantago Psyllium_; ferner die Samen zahlreicher Cruciferen (z. B. _Sinapis_, _Brassica_), endlich die von _Collomia grandiflora_, _Citrullus Colocynthis_ und einiger Acanthaceen und Polemoniaceen (~Hofmeister~) (und die Pericarpien einiger Labiaten, z. B. _Salvia Hormium_, _Ocymum Basilicum_). Hier werden nur _Linum_, _Cydonia_ und _Psyllium_ abgehandelt, die Cruciferensamen unter den Glykosiddrogen. Die Schleimepidermen der Samenschalen dienen dadurch, daß sie außerordentlich viel (s. _Cydonia_) Wasser zurückzuhalten vermögen und den keimenden Samen im Boden befestigen, zur Sicherung der Keimung, wie Versuche von ~Lüdtke~ und mir bei _Linum_ (1889) gezeigt haben, scheinen aber auch für die Ernährung des keimenden Samens von Bedeutung zu sein (~Ravenna~ und ~Zamorani~ 1910). Semen Lini. =Syn.= Leinsamen, Flachssamen (Glix im Oberengadin), liri, giglio rosso (im Tessin) -- semence ou graine de lin (usuel) (franz.) -- lin (commun), flax (linseed) (engl.) -- lino (ital.) -- lijn (holl.) -- lenmag (ung.) -- linfrö (schwed.) -- pellavan (fin.) - λίνον, λινάρι (n.-griech.). -- Im Ägyptischen hieß der Lein sꜢrἰ, Leinsamen dšr, psn. Bei ~Dioskurides~ stehen in [] noch die Synonyma: linokalamis, annon, linon agrion, bei den Römern: linomyrum, linum agreste, bei den Afrikanern: zeraphoïs. -- Bei ~Ibn Baithar~ (arab.): kattān (bazr al kattān = sem. lini -- «Elbazr heißt der Same jeder Pflanze», sagt ~Abu Hanifa~) -- kutan, zaghu (pers.) -- atasí (sansc.), masina (beng.) -- alsí, tisí (hind.) -- alishi virai (tam.). -- Wu-ma, Hu-ma-jin, Hsiao-hu-ma-ta-ku-ma (chin.). =Etym.= «Der Name Lein gehört sicher zum uralten Sprachgut der europäischen Indogermanen und es kann demnach auch nicht zweifelhaft sein, daß der Flachsbau den germanischen Völkern schon in der Urzeit bekannt war» (~Hoops~). +kelt.+ lin (= Faden), +goth.+ lein-jô -- +angels.+ lêne -- +ir.+ lín -- +cymr.+ llin -- +ad.+ lína -- +ahd.+ lîna -- +mhd.+ lyn (so im Gothaer Arzneibuch, neben vlas), lyne, leyne -- +lat.+ lînum -- +griech.+ λίνον. Bei der ~Hildegard~: linsamo, linsame; bei ~Megenberg~ (I, S. 693): linsât. Der Stamm ist li. Schon in vorhistorischer Zeit finden sich in den Sprachen der europäischen Indogermanen Ableitungen von dieser Wurzel, welche Flachs und primitive Gewebe bezeichneten (~Schrader~). Vgl. auch I, S. 1059. +Flachs+ (mehr für die Fasern wie für die Pflanze in Gebrauch), von der indogerm. Wurzel plek = flechten (gr. πλέκειν) -- +ahd.+ flahs -- +mhd.+ vlahs, vlaes -- +ag’s.+ fleax -- +nd.+ flaß -- Flachs auch im Ort. sanitat. -- Endlich auch (bes. für die Faser): +ahd.+ haro, hara; +mhd.+ har; +nhd.+ haar; +anord+. horr = Haar. -- Die im Altertum viel gebräuchliche Bezeichnung carbasos ist vielleicht (~Plinius~) iberischen Ursprungs und steht mit dem sansc. karpasam (pers. kirbas, korfas), das ursprünglich Baumwolle bedeutete (s. Gossypium, S. 229) in Verbindung. =Stammpflanze Linum usitatissimum L.= (Spec. plant. ed. I 277). Man unterscheidet die Kultur-+Varietäten+: _Lin. usit._ var. _crepitans_ ~Schübl.~ et ~Mart.~ (_L. usit._ β _humile_ ~Mill.~, _L. crepitans_ ~Boenningh.~), den sog. +Klanglein+, +Klenglein+ oder +Springlein+ (arab. kettân), mit niedrigerem, mehr verzweigtem Stengel, größeren, mit Geräusch aufspringenden Kapseln und hellbraunem Samen. -- _L. usit._ var. (oder forma) _vulgare_ ~Schübl.~ et ~Mart.~ (_L. u._ forma _indehiscens_ ~Neilr.~, _L. vulgare_ ~Boenningh.~), der sog. +Schließlein+ oder +Dreschlein+ mit höheren, weniger ästigen Stengeln und geschlossen bleibenden kleineren Kapseln. -- _L. usit._ var. (forma) β. _hiemale_ ~A. Dc.~ (_L. bienne_ ~Mill.~), zweijährig, mit zahlreichen gekrümmten Stengeln. -- Zwischen den Hauptrassen steht als Übergangsform _Lin. ambiguum_ ~Jordan~. -- Nahe verwandt ist _Lin. angustifolium_ ~Hudson~ (s. weiter unten), das von den kanarischen Inseln über das Mittelmeergebiet bis zu den Alpen, zum Balkan, Kaukasus und Libanon und bis nach England verbreitet ist. Möglicherweise sind dies alles Rassen oder Formen +einer+ Art (~De Candolle~). Wild ist _Linum usitatissimum_ nicht mehr nachzuweisen (~Wettstein~ 1903). =Systemat. Stellung.= +Linaceae+, Lineae -- Eulinum. =Beschreibung der Stammpflanze.= Der Lein ist ein ein- oder zweijähriges Kraut. Der +stielrunde+, einfache oder verästelte, bis 1 m hohe Stengel ist kahl und innen hohl. In der schmalen Rinde desselben liegen, die Rinde fast ausfüllend, zahlreiche Bündel langer Bastfasern. Sie liefern die Leinfaser (vgl. S. 254 und die Theorie der Flachsröste). Die spiralig angeordneten Blätter sind schmal lanzettlich, beiderseits verschmälert, sitzend. Der Blütenstand ist ein Wickel. Die aktinomorphen, pentazyclischen, pentameren, nur einen Vormittag blühenden, an naßkalten Tagen sich überhaupt nicht öffnenden +Blüten+ besitzen einen fünfblättrigen, 5-6 mm langen, grünen, quincuncial deckenden +Kelch+, dessen Blätter oblong-eiförmig und an den Rändern zart gewimpert sind. Die fünf umgekehrt-eiförmigen, kurz genagelten, oben etwas gekerbten, bis 13 mm langen, schön blauen, etwas dunkler geaderten Blumenblätter besitzen eine gedrehte Knospenlage, die fünf episepalen, am Grunde ringförmig verbundenen +Stamina+ besitzen blaue Antheren. Auch die Filamente sind im oberen Teil blau. Die Antheren sind in der Mitte des Rückens aufgehängt. Die Pollenkörner sind ellipsoidisch und besitzen drei meridionale Längsfalten. (Man findet sie bisweilen im Honig, vgl. ~Villiers~ et ~Collin~, Altérat. et falsificat.) Zwischen den fertilen Staubfäden sitzen fünf epipetale Spitzchen, die als Staminodien aufzufassen sind. Auch die fünf schlanken, keulenförmigen, anfangs links zusammengedrehten +Griffel+ sind blau -- so dass die leider sehr vergängliche Blüte einen außerordentlich lieblichen Anblick gewährt. Weiches Grün den Stengel zieret Blüte trägt des Himmels Helle; Leis vom Westhauch angerühret Wogt sie sanft in blauer Welle. (~Just. Kerner.~) _Linum_ zeigt oft Selbstbestäubung. Der +Fruchtknoten+ ist eiförmig und kahl. Er wird von fünf epipetalen Fruchtblättern gebildet. Da die Außenwand derselben aber nach innen zu eine Längsleiste, eine sog. falsche Scheidewand bildet, erscheint der Fruchtknoten zehnfächerig und enthält denn auch 10 Ovula, in jedem echten Fache zwei. Die bis zur Reife vom Kelche umhüllte ~Frucht~ (Flachsknoten) ist eine 7-8 mm lange, fast kugelige Kapsel, die je nach der Varietät entweder wand- oder fachspaltig aufspringt (Springlein s. oben) oder geschlossen bleibt (Schließlein s. oben). =Lit.= ~Reiche~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien (dort die botan. Lit. d. Familie). +Abbild.+ ~Nees v. Esenbeck~, Pl. med. 389. -- ~Hayne~, Arzneigew. VIII, t. 17. -- ~Berg-Schmidt~, Atlas, 2. Aufl. t. 102 (dort die systemat. Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. -- ~Bentley-Trimen~, Medic. plants t. 39 u. in zahlr. and. Werken. =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Unter den Parasiten, welche den Flachs schädigen, ist vor allem _Cuscuta Epilinum_ ~Weihe~, die Flachsseide, zu erwähnen, welche mit ihren fast fadenförmig dünnen Stengeln den Stengel ihres Wirtes umwächst und Haustorien in denselben entsendet. -- Gefährliche +Pilz+krankheiten sind besonders die sog. Flachsmüdigkeit oder Flachswelke, hervorgerufen durch _Fusarium Lini_ ~Boll.~ und der Flachsbrand, dessen Urheber eine Chytridiacee, _Asterocystis radicis_ ~Marchal~ ist, die sich in den Wurzelzellen ansiedelt. Beide Parasiten können den Flachs zum Absterben bringen. (~Bolley~, H. L. in North Dacota Agric. Coll. Gov. Experim. Stat. Bulletin No. 50, 1902 und No. 55, 1903. ~Marchal~, E., Recherches biologiques sur une Chytridinée parasite du Lin. Bull. de l’Agric. Belg. 1901). Neuerdings wird als arger Schädling auch der Flachsrost, _Melampsora Lini_ (~Pers.~) ~Desm.~, genannt. Die Krankheiten des indischen Lein in ~Watt~, Dictionary. Über die tierischen Schädlinge berichtet ~Israël~: 1. +Käfer+: Den Leinfeldern fügen mehrere _Haltica_arten, besonders wenn die Pflanzen noch jung sind, erheblichen Schaden zu. 2. +Falter+: _Plusia gamma L._ Die Raupe dieser gemeinsten aller Eulen ist polyphag. Sie lebt unter anderen auf _Leontodon_, _Urtica_, _Beta_, _Trifolium_arten usw. 1899 traf ich sie verheerend auf Leinfeldern im Odenwalde, woselbst sie hauptsächlich die unreifen Samenkapseln verzehrte. Auch auf _Radiola linoides_, _Linum perenne_ und _catharticum_ fand ich dieselbe fressend. _Mamestra pisi_ L. Die polyphage Raupe lebt auch auf _Linum usitatissimum_. _Calocampa exoleta_ L. Die fast polyphage, prachtvolle Raupe lebt auf den verschiedensten Pflanzen. Sie ist sehr häufig von Parasiten bewohnt. Ich traf sie außer auf _Linum usitatissimum_ auf _Phragmites_, _Typha_, _Euphorbia Esula_ und _Cyparissias_, _Lamium_arten, _Leontodon_, _Cytisus sagittalis_, _Sarothamnus_, Garten_rhabarber_, _Lactuca sativa_ und vielen anderen Pflanzen. _Conchylis epilinana_ ~Zell.~ Die kleine Raupe lebt nach ~Taschenberg~ in den Samenkapseln von _Linum_arten. Ferner werden genannt: _Engerlinge_ und die Made der Flachsfransenfliege (_Thrips linaria_ ~Uzel~). Im gepulverten Leinsamen findet sich oft die Milbe _Glyciphagus domesticus_ ~Geer~. Einige Zeit aufbewahrtes Leinmehl enthält nach meinen Erfahrungen, wenn es nicht ganz trocken ist, immer Milben. Auch ~Tunmann~ beobachtete sie (Pharm. Centralh. 1906). Er nennt besonders _Glyciphagus spinipes_ ~C. L. Koch~ und _G. domesticus_. Die Milben fressen in erster Linie den Schleim. =Kultur und Handel.= Der Lein verlangt feuchte Wärme mit häufigem Wechsel zwischen Wärme und Feuchtigkeit. Er verträgt weder große Hitze noch Dürre, noch Fröste. Er gedeiht am besten an Seeküsten, in Niederungen und Gebirgen mit vielen Niederschlägen oder reichlichem Tau und Nebel auf flachgründigem, feuchtem Boden. Der Lein wird sowohl im subtropischen wie im gemäßigten Klima gebaut. Seine nördliche Grenze fällt im allgemeinen mit der der Gerste zusammen, ja geht in einigen Gegenden noch weit über den Polarkreis hinaus (~Schübeler~), wo der Getreidebau bereits zurückbleibt. Als +Gespinstpflanze+ wird der Lein sowohl als bäuerliche Hauspflanze im Kleinbetrieb, wie auch als Industriegewächs im Großen gebaut. Es bauen Lein: Mitteleuropa (bis 1500 m), Rußland, Ägypten, Algier, Abessynien (bis 3300 m), Ostindien (die kälteren Gegenden), Nordamerika, Argentinien, Uruguay, Brasilien, Australien. Besonders viel baut +Belgien+ (Westflandern, Ostflandern und Namur), wo c. 600000 ha mit Lein bestellt sind, dann das nördliche europäische Rußland, Irland, Holland (I, S. 67), Preußen, Thüringen, Schlesien, Österreich (Böhmen, österr. Schlesien, Kärnthen, Tirol), Frankreich und Italien. In der Lombardei wird Lein wegen der Fasern, in Apulien der Samen wegen kultiviert (~Ravasini~). Der Anbau erfolgt hauptsächlich zum Zwecke der Gewinnung der Leinfaser und zu diesem Zwecke wird (besonders seit den siebziger Jahren des vorigen Jahrhunderts) fast ausschließlich der einjährige Schließlein (s. oben) gebaut. Die Länder, die +Leinsaat+ (d. h. keimfähige Leinsamen zur Aussaat für Faserflachs liefern), wie in erster Linie Rußland (Riga, Pernau), dann neuerdings auch Tirol (Ötzthal) und Holland bauen daher jetzt nur diesen. Aus russischem Saatgut in erster Aussaat in Deutschland erhaltenen Leinsamen nennt man +Rosenlein+. Dort, wo der Lein der Samen wegen, d. h. zur Gewinnung von +Ölsaat+ im Großen gebaut wird, kultiviert man dagegen den Springlein (s. oben). +Leinsamen+ liefert jetzt vornehmlich Argentinien und Südrußland, dann Indien, die russischen Ostseeprovinzen, Belgien, Ägypten und Nordamerika, weniger Japan, Marocco, Österreich, Deutschland und Holland. Vom Schließlein unterscheidet man die keimfähigen, also als Saatgut benutzbaren Samen, die +Leinsaat+ (s. oben) -- +nur diese ist für pharmazeutische Zwecke brauchbar+ -- und die nicht keimfähigen, nur zur Ölgewinnung tauglichen Samen, die vor völliger Reife gesammelt wurden oder ihre Keimfähigkeit wegen langen Lagerns verloren haben, die +Schlagsaat+. Der Lein wird nämlich in vielen Gegenden, um eine gute Faser zu erzielen, vor der Reife der Früchte aus dem Boden gezogen. Schließlein muß natürlich gedroschen werden. Zur Gewinnung des Öls wird meist Schlagsaat verwendet, für die feinsten Sorten aber eigens gebauter Springlein. Dieser ist auch, neben der Leinsaat, für pharmazeutische Zwecke allein anzuwenden, eventuell ausgereifte Samen, die ihre Keimkraft verloren haben. Unausgereifte Samen sind auszuschließen. Die Kultur von Lein zur +Linseed+- (Flaxseed-)Gewinnung ist in Indien, wo fast nur Samen und nur sehr wenig Fasern produziert werden, beträchtlich. Schon 1887 waren über 3½ Mill. Acres zu diesem Zwecke mit Lein bestellt. Besonders viel baut Bengalen und die Zentralprovinzen, weniger Berar, die Nordwestprovinzen und Oudh, Bombay und Sind, am wenigsten Panjáb, Madras und Burma (~Watt~). In Indien unterscheidet man whit-seeded und red-seeded, d. h. hellgelbe und rotbraune Samen. Die Ausfuhr +Indiens+ an Linseed nach England (und englischen Besitzungen) betrug 1907/08: 2290185, 1908/09: 1405467 cwts; nach anderen Ländern: 1907/08: 3907697, 1908/09: 1804080. Besonders Frankreich ist Abnehmer indischer Leinsaat. Es empfing 1908/09 c. 1 Mill. cwts. +Deutschland+ importierte 1909: 4368667 dz Leinsamen, vorwiegend aus Argentinien (3708478), dann aus dem europ. Rußland und brit. Indien, weniger aus Uruguay, den Ver. Staaten und Japan, Marocco, Österreich und den Niederlanden und exportierte 68280 dz, besonders nach den Niederlanden, Dänemark und Norwegen. +Frankreich+ führte 1908: 1876721 Quintal. +Leinsamen+ ein, vorwiegend aus Argentinien (1138909 Quint.) und engl. Indien, dann auch aus Rußland, den Ver. Staaten, Uruguay, Tunis, Marocco und Algier. Von europäischen Staaten lieferte besonders Belgien viel, dann die Niederlande. Die Einfuhr von Linseed in die +Ver. Staaten+ von +Nordamerika+ betrug 1909: 597671 bushels. Die Ausfuhr 1908: 4277313, 1909: 882899 bushels. Die wichtigsten +Handelssorten+ sind jetzt: +Russischer+ Leinsamen und zwar baltischer (baltic linseed) und südrussischer oder asowscher (black sea linseed). Der reinste ist der baltische. Er liefert auch das am besten trocknende Öl. Der südrussische enthält 5% und mehr Hanf- und Ravisonsamen. Russischer L. enthält 32-38% Öl. +Argentinischer+ L., sog. +La Plata-Saat+, neuerdings in großer Menge im Handel, aber ziemlich unrein (Unkrautsamen, Pflanzenfasern) mit 35-36% Öl. +Indischer+ L. (s. oben), auch ziemlich unrein (s. hinten), mit 37-41% Öl. +Marocco+ L., +Canadischer+ L., +Nordamerikanischer+ L. in geringer Menge. Maroccoleinsamen (jetzt als Medizinalleinsamen viel im Handel) wird in Säcken à 100 kg gehandelt (~Jul. Grossmann~). Leinsamen wird leicht ranzig. Er sollte nicht über ein Jahr aufbewahrt werden. =Lit.= ~Langer~, Flachsbau. Wien 1893. -- ~Knight~, Flax and Linseed industry. Journ. Dep. Agr. Victoria 1906. -- ~Schindler~, Flachsbau in Rußland 1898. -- ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~T. F. Hanausek~, Ebenda. -- ~Watt~, Diction. econ. pr. of India. -- ~Schübeler~, Viridar. norwegic. II (1888), 439. -- Über die Leinsamen-Sorten vgl. ~Nobbe~, Handb. d. Samenkunde. ~Holmes~, The varieties of linseed in english commerce. Pharm. Journ. 12 (1881). -- Über den Umfang, Zunahme und Rückgang des Leinbaus finden sich Zahlen in der Zeitschrift «+Flachs und Leinen+». Wien u. Trautenau. -- Karte der Verbreitung der Flachskultur in ~Scobel~, Handelsatlas. =Morphologie der Droge.= Die Leinsamen sind flachgedrückt-eiförmig, 4-6,5 mm lang (europäische meist etwa 5 mm), 2,5-3 mm breit und 1-1,5 mm dick. Die größten finden sich bei indischen Sorten. Europäische Leinsamen wiegen meist 0,004 bis 0,0054 g. Doch schwankt das Gewicht (wie die Größe) nach den Sorten. Russische L. wiegen oft 0,01, türkische 0,009. Die Durchschnittssorte Mitteleuropas wiegt 0,0047, weiße indische von Malva 0,0088, gelbbräunliche von Indore (Zentralindien) 0,0093 (~Flückiger~), schwedische 0,004, dalmatinische 0,0053, persische 0,0054 (~Harz~). ~Holmes~ fand (1881), daß von russischem, holländischem, englischem und Calcutta-Lein 12-14 Stück auf 1 grain gehen, von großem Calcutta, Bombay, Sizilischem und Lein von den ionischen Inseln 6-7 Stück auf 1 grain (= 64,8 mg). Der Handel unterscheidet klein- und großkörnigen Lein. ~Caesar~ und ~Loretz~ führen jetzt auch (zum Kauen) eine Sorte von der doppelten Größe der kuranten deutschen Samen. Sie sind an dem unteren Ende abgerundet, am oberen durch eine Caruncula (crista) genabelt (Fig. 109, 3 X) und unterhalb der stumpfen, etwas schiefen Spitze, dort, wo das als feiner Punkt sichtbare Hilum liegt, leicht eingedrückt. Die glatte (infolge der eingetrockneten Schleimschicht), glänzende, dünne und spröde Schale ist meist gelbbraun bis dunkelrotbraun gefärbt, beim Springlein heller; bei den whit seeds Indiens gelb, bei den red seeds lichtbräunlich. Sie erscheint, mit der Lupe betrachtet, sehr feingrubig infolge der von der Sclereïdenschicht (s. unten) gebildeten kleinen flachen Mulden. Die Raphe läuft vom Hilum aus an der schmalen Kante entlang bis zu der äußerlich nicht sichtbaren, am abgerundeten Ende liegenden Chalaza. [Illustration: Fig. 109. _Linum usitatissimum_ L. 1 Querschnitt und 2 Längsschnitt durch den Fruchtknoten, 3 Same von außen, 4 Same parallel der Fläche und 6 rechtwinklig dazu längsdurchschnitten, 5 Same in der Mitte querdurchschnitten, 5 a und 5 b Same oben querdurchschnitten, 7 Same an der Kante querdurchschnitten. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] In Wasser gelegt umgibt sich der Leinsamen rasch mit einer hyalinen Schleimhülle, da die Schleimepidermis (s. unten) stark quellbar ist. Spaltet man den Samen der Länge nach parallel der Fläche auf, so sieht man die herzförmigen Cotyledonen (Fig. 109, 4), die die Hauptmasse des Samenkernes ausmachen und in der Spitze des Samens die kurze kegelige Radicula (Fig. 109, 4); spaltet man ihn parallel den Schmalseiten, so erblickt man mit der Lupe zwischen Radicula und Cotyledonen die kleine Piumula. Durchschneidet man ihn in der Mitte quer, so sieht man, daß die plankonvexen Cotyledonen nur von einem schmalen Endosperm umgeben sind (Fig. 109, 7). [Illustration: Fig. 110. _Linum usitatissimum_ L. 1-4 Entwicklung der Samenschale. Querschnitt, ia äußeres, ii inneres Integument. 5 Nährschicht (bei Nr. 4 zusammengefallen). 5 Längsschnitt durch Samenschale und Endosperm. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anatomie.= Die Samen gehen aus hängenden, anatropen Ovulis hervor, deren Mikropyle nach außen und oben gewendet ist und von einem papillösen Pollenzuführungsapparat überdeckt ist (Fig. 109, 2 X), der, aus dem Funiculargewebe hervorgehend, später zur Caruncula wird, die das Spitzchen des Samens (s. oben) bildet. Das äußere Integument liefert die Schichten 1 und 2 der Samenschale, das innere die Schichten 3-6 (Fig. 110). Das äußere bleibt zunächst zweischichtig und wird dann durch Teilung der inneren Zellreihe dreischichtig, das innere Integument vergrößert sich stark und die Zellen füllen sich mit Stärke. Es wird zur +Nährschicht+ (~Tschirch~). Bei der Weiterentwicklung entleeren sich die parenchymatischen Zellen aber wieder in dem Maße wie sie ihre Reservestoffe an die sich verdickenden Hartschichten zum Aufbau der Membranen abgeben und im reifen Samen besteht die Nährschicht fast nur aus der äußeren und inneren Epidermis. Das ganze mittlere Gewebe ist zu einer hyalinen Schicht zusammengefallen oder ganz resorbiert. Der Schleim ist auf die Epidermis beschränkt (Schleimepidermis ~Tschirch~). Er wird direkt als Membranschleim aber ziemlich spät, erst wenn der Embryo schon Grünfärbung zeigt, angelegt, vorwiegend an der Außenseite unter der Cuticula und den Seitenwänden, gar nicht auf der Innenwand. Stärkekörner, die in den Schichten 1 und 2 auftreten, liefern das Baumaterial. Die Schleimmembran besteht aus drei Schichten: einer hyalinen Stäbchenschicht, deren Struktur erst bei der Quellung sichtbar wird, einer körnigen Zone und der sehr breiten, beim Quellen deutliche Schichtung zeigenden Hauptschicht (Details in ~Tschirch-Oesterle~, Atlas). Beim trockenen Samen ist die Schleimepidermis stark zusammengefallen (die primären, Zellulosereaktion gebenden, Trennungsmembranen wellig verbogen). Beim Einlegen in Wasser quillt sie stark, oft auf das fünffache, die primären Membranen strecken sich und die Zellen erscheinen nun prismatisch; schließlich platzt die Cuticula und der Schleim tritt aus. Am leichtesten löst sich die körnige Mittelschicht, dann folgt die breite geschichtete Partie, am längsten widersteht die Stäbchenschicht. Sie löst sich bisweilen mit der Cuticula zusammen spiralig ab (Details bei ~Koran~). Die Verhältnisse lassen sich am besten an Tuschepräparaten studieren. Von der Fläche gesehen erscheinen die Zellen der Schleimepidermis polyedrisch. Die Stäbchenschicht macht sich durch feine Körnelung bemerkbar (Fig. 110 u. 111, 4 a). Wenn man einen Samen mit Wasser schüttelt -- am besten unter Hinzufügen von Glasperlen --, so löst sich die ganze Schleimepidermis los und der Schleim verteilt sich im Wasser. Die zweite, aus der zweiten Zellschicht des äußeren Integumentes hervorgehende, Schicht ist meist zweireihig, auf der Rapheseite fünfreihig. Ihre Zellen sind etwas verdickt, in der Flächenansicht erscheinen sie rundlich (Fig. 111, 2). Interzellularen sind reichlich vorhanden. In dieser Schicht verläuft das Raphebündel. Von den beiden Epidermen des inneren Integumentes wird die äußere zur +Sklereïdenschicht+. Im Querschnitt des reifen Samen erscheinen die reichgetüpfelten Sklereïden verschieden hoch, je nachdem sie an den Kanten oder Flächen des Samens liegen, auch verschieden stark verdickt (Fig. 110, 3). Stets sind sie in der Längsrichtung des Samens gestreckt (Fig. 111, 3 u. 3 a), bis 250 mik lang und c. 10 mik breit. Die Außenlinie der Sklereïdenschicht zeigt Mulden (s. oben). Die innere Epidermis des inneren Integumentes wird zur +Pigmentschicht+, deren Zellen im reifen Samen tangential gestreckt, dickwandig und getüpfelt sind und einen mit Eisenchlorid blauschwarz werdenden Phlobaphenballen enthalten, dessen braunrote Farbe die Farbe der Samenschale bedingt. Bei den hellen indischen Leinsamen fehlt diese Pigmentschicht. Das +Endosperm+ ist schmal, nur wenige Zellreihen breit an den Flächen des Samens, an den Kanten und dort, wo die Radicula liegt, breiter. Die ~Cotyledonen~ bestehen aus zarten Zellen, deren Wände (ebenso wie die der Endospermzellen) durch Jod gebläut werden, also Amyloid enthalten. Die Palissadenseiten der beiden Blätter liegen auf der Innenseite, also einander gegenüber. Das Mesophyll ist von Procambiumsträngen durchzogen. Die Zellen der Cotyledonen enthalten meist 2-5 große, etwa 10-19 mik lange und zahlreiche sehr kleine Aleuronkörner. Nach ~Lüdtke~ beträgt die Größe der großen elliptischen Aleuronkörner 10,5 mik in der Randpartie der Cotylen, 15 mik im übrigen Cotyledonargewebe und dem Endosperm. Meist sind bei den größeren Körnern ein Globoid und ein oder mehrere undeutlich eckige, durch Jod sich stark gelb färbende Kristalloide vorhanden, neben Grundmasse und deutlicher Hüllhaut. Eingebettet sind die Aleuronkörner in eine Grundmasse, die sich beim direkten Einlegen in Osmiumsäure gleichmäßig braun färbt und die ich als +Ölplasma+ bezeichnet habe. Die Aleuronkörner des Endosperms weichen etwas von denen der Cotyledonen ab. Sie sind häufig lappig. Der Keimling enthält auch Zucker (~Raspail~sche Reaktion). Die +Keimung+, bei der zuerst das Endosperm entleert wird, erfolgt epigä. Die Schleimepidermis der Samenschale -- und dies ist in erster Linie ihre Funktion -- klebt hierbei den Samen am Boden fest und sichert das Eindringen der Wurzel in den Boden (~Tschirch~ und ~Lüdtke~, vgl. auch oben S. 314). Das +Pulver+. Der Leinkuchen (_farina lini_, _placenta seminis lini_), entweder der gemahlene oder der gemahlene und ausgepreßte Leinsamen (Preßkuchen), der Preßrückstand der Leinölfabrikation, zeigt alle Elemente des Samens mehr oder weniger zerkleinert. Schon mit bloßem Auge lassen sich die braunen Samenschalfragmente von den hellgelblichen der Cotyledonen unterscheiden. Bei den Samenfragmenten (Fig. 111) fallen besonders die getüpfelten, quadratischen, mit rotbraunem Inhalt versehenen Zellen der Pigmentschicht (Fig. 111, 6) und die gestreckten Sklereïden (Fig. 111, 3 u. 3 a) auf, weniger Schicht 2 und die Schleimepidermis. Das Gesamtbild ist ein sehr charakteristisches und mit dem keiner anderen Samenschale zu verwechseln. Die hellen Fragmente bestehen aus dem dünnwandigen Gewebe der Cotyledonen, in dem man leicht (im Öl- oder Alkoholpräparat) die Aleuronkörner sichtbar machen kann. +Stärke fehlt+ oder kommt doch nur in Spuren vor (s. auch unter Verunreinigungen). [Illustration: Fig. 111. _Linum usitatissimum_ L. Succedane Flächenschnitte durch die Samenschale. Die Zahlen bezeichnen die gleichen Gewebe wie in Fig. 110. Links: Aleuronkörner in Jodlösung. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Lit.= ~Arthur Meyer~, Drogenkunde. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde 1885. -- ~Sempolowski~, Beiträge z. Kenntn. d. Baues d. Samenschale. Dissert. Leipzig 1874. -- ~Herlant~, Caract. microscop. de quelqu. graines officinal. Ann. Univ. Libr. Brux. 1882, m. Taf. -- ~Guignard~, Rech. sur l. dével. d. l. graine et en partic. du tégum. semin. Journ. d. botan. 1893 (m. Abbild.). -- ~Vogl~, Commentar 1908 (m. Abbild.). -- ~Tschirch-Oesterle~, Atlas t. 58 (~Schlotterbeck~) (dort die Entwicklungsgeschichte). -- ~Moeller~ in Realenzyklop. und Pharmakognosie. -- ~T. F. Hanausek~ in ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Nobbe~, Handb. d. Samenkunde. -- ~Cramer~, Vorkommen u. Entsteh. einiger Pflanzenschleime in ~Nägeli-Cramer~, Pflanzenphys. Unters. 1855. -- ~Hofmeister~, Ber. d. Sächs. Ges. d. Wissensch. 1858. -- ~Frank~, Pringsh. Jahrb. 5 (1866), 161. -- ~Mangin~, Observations sur l’assise à mucilage de la graine de Lin. Bulletin de la Soc. bot. de France 40 (1893), 119 (Bemerkungen dazu: ~Guignard~, l. c. 59). -- ~Kořan~, D. Austritt d. Schleimes aus d. Leinsamen. Pharm. Post. 1899, 221. -- ~Lüdtke~, Beschaffenh. d. Aleuronk. einiger Samen. Ber. d. pharm. Ges. I, 53. -- Abbild. der Aleuronkörner bei ~Lüdtke~, Beitr. z. Kenntn. d. Aleuronk. Pringsh. Jahrb. 21 (1889) (auch Dissertat.). -- Über d. chem. Natur der Aleuronkörner vgl. ~Kritzler~, Mikrochem. Unters. über d. Aleuronk. Dissert. Bern 1900. -- ~Nelson~, Mercks Rep. 1906. -- Nährschicht: ~Tschirch~, Anatomie 1889, 459 (die Angabe in ~Schneiders~ Illustriert. Handwörterb. d. Botan., daß der Name von ~Frank~ herrühre, ist unrichtig. ~Lohde~ (Entwicklungsgesch. u. Bau ein. Samensch. Dissert. 1874) drückt sich über die Nährschicht nicht klar aus, er ahnt aber ihre physiologische Bedeutung); vgl. besonders ~Holfert~, Flora 1890 (und Dissert. 1890) m. Taf. -- ~Ravenna~ und ~Zamorani~ (Bedeut. d. Schleims f. d. Keimung). Att. R. Accad. d. Lincei (5) 19, II, 247. -- Erste anatom. Abbild. im Atlas zu ~Oudemans~ Aanteekeningen t. JJ., dann auch in ~Berg~, Anatom. Atlas t. 46. -- Schleimepidermis abgebild. (nach ~Mangin~) in ~Hérail~, Traité de pharmacolog. 1901. -- +Leinkuchen+ (tourteau): ~Collin~ et ~Perrot~, Les résidus industriels de la fabricat. des huiles etc. 1904. -- +Pulver+: Mikroskop. Charak. bei ~Kraemer~, Proc. Am. pharm. ass. 1898, 331 und ~Koch~, Mikrosk. Anal. d. Drogenpulv. 1906, IV, t. 3. =Chemie.= ~König~ teilt zahlreiche +Analysen des Leinsamen+ mit. Er gibt folgende Prozentzahlen (das Mittel aus allen Analysen in Klammern) in der lufttrockenen Substanz: +Wasser+ 5,47-14,20 (8,96), +Stickstoffsubstanz+ 16,83-30,77 (22,77), +Öl+ (+Fett+) 22,45-40,48 (34,38), +stickstofffreie Extraktstoffe+ 17,58-28,80 (22,86), +Rohfaser+ 4,18-11,59 (6,78), +Asche+ 2,54-8,04 (4,25); in der Trockensubstanz: Stickstoffsubstanz 18,49-33,8 (25,01), Fett 24,66-44,46 (37,76), Stickstoff 2,96-5,21 (4,0). +Leinpreßkuchen+ enthalten (nach ~König~) noch im Mittel 9,88% Öl (3,78-16,34), der Gehalt an stickstoffhaltigen Substanzen beträgt im Mittel 29,48 (19-36,18)%, die Asche 9,69 (5,13-16,5)%. Leinsamen liefert 3 (~Uloth~) bzw. 5,1-5,9% (~Kirchner~ und ~Tollens~) +Schleim+. Der rohe Schleim enthält oft 7-10% und mehr Asche; unter 0,7% konnte auch ~Tollens~ die Asche nicht herabdrücken. Der Schleim wird nach Zusatz von etwas Salzsäure mit Alkohol gefällt und durch Auswaschen mit Ätheralkohol rein gewonnen. Die konz. wässrige Lösung des Schleims gibt mit Kupfersulfat, ~Fehling~scher Lösung, Bleiacetat, Bleiessig und Quecksilbersalzen unlösliche Niederschläge. Er gibt mit Jodschwefelsäure keine Blaufärbung. Kupferoxydammon bildet eine feste Gallerte. Der Linumschleim läßt sich mit Ammonsulfat aussalzen (~Pohl~). Er ist unlöslich in Alkalien. ~Schmidt~ fand im stickstofffreien Schleim unter Abrechnung der Asche 44,97% C, 6,26% H und 48,77% O. Er entspricht also in der Zusammensetzung anderen Pflanzenschleimen. ~Schmidt~ gab ihm die Formel C₁₂H₂₀O₁₀, welche Formel ~Kirchner~ und ~Tollens~ (1874) bestätigten, ~Tollens~ schreibt die Formel jetzt C₆H₁₀O₅. Die Hydrolyse des Schleims mit 1¼% Schwefelsäure liefert, neben einem «Gummi», 4% Zellulose (~Tollens~) und c. 60% d-Glukose. Mit Magensaft entsteht eine zum Teil kristallisierende Glukose, die keine Schleimsäure liefert (~Fudakowski~). Ein Teil des Leinsamenschleimes liefert bei der Oxydation mit Salpetersäure Schleimsäure (~Guérin~, ~Vauquelin~, ~Cullinan~). Bei der Hydrolyse liefert er denn auch +Galaktose+ und neben +Dextrose+ (d-Glukose, ~Bauer~, ~Hilger~) tritt dann auch +Arabinose+ und +Xylose+ auf (~Hilger~). Er enthält also wohl ein Galakto-Gluko-Arabino-Xylan. Der +gereinigte+ Schleim hat (nach ~Hilger~) die Zusammensetzung: 2(C₆H₁₀O₅).2(C₅H₈O₄), dreht rechts, ist schwach sauer und gibt bei der Destillation mit Salzsäure Furol. Nachdem schon früher beobachtet worden war, daß bei längerem Aufbewahren von gepulvertem Leinsamen dieser sauer wird (~Pelouze~ fand 5-6% freie Säure) und sich Blausäure entwickelt (~Senior~, ~Jorissen~; ~Senior~ betrachtet die Blausäure als ein Gärungsprodukt), gelang es ~Jorissen~ und ~Hairs~ (1891) aus keimendem Leinsamen 1,5% eines krist. Glykosides (F. = 134°) zu isolieren, das sie +Linamarin+ nannten und das sich (durch das im Leinsamen enthaltene Enzym, verd. Mineralsäuren usw.) in einen reduzierenden, gärungsfähigen Zucker, Blausäure und einen Körper mit Acetonreaktionen spaltet. Es löst sich in Schwefelsäure farblos (Unterschied vom Amygdalin). Dasselbe erwies sich als identisch mit dem +Phaseolunatin+ von ~Dunstan~ und ~Henry~, das diese aus den Samen von _Phaseolus lunatus_ isolierten, dem sie die Formel C₁₀H₁₇O₆N geben (F. = 141°) und das sich nach der Gleichung C₁₀H₁₇O₆N + H₂O = C₆H₁₂O₆ (Dextrose) + HCN (Blausäure) + (CH₃)₂CO (Aceton) spaltet. Wird Leinsamenmehl mit warmem Wasser angerührt bei 25° einige Zeit stehen gelassen und dann destilliert, so erhält man ein blausäurehaltiges Destillat. 100 g liefern 8 mg HCN (gekeimte Samen mehr als doppelt so viel. Es findet bei der Keimung auch eine Neubildung von HCN statt [~Ravenna~ und ~Zamorani~]). Auch die Stengel liefern Blausäure (~Jorissen~). Das +fette Öl+ (Leinöl) ist in seiner Zusammensetzung noch nicht genau bekannt. Die Elementarzusammensetzung gibt ~Sacc~ wie folgt an: C = 76,8-78, H = 11-11,2, O = 11-12%. Es soll 10-15% +Glyzeride fester Fettsäuren+ (+Stearinsäure+, +Palmitinsäure+ und +Myristicinsäure+) und 85-90% flüssige Glyzeride enthalten. Die flüssigen Fettsäuren bestehen nach ~Hazura~ und ~Grüssner~ aus 5% +Ölsäure+, 15% +Linolsäure+ (C₁₈H₃₂O₂), 15% +Linolensäure+ (C₁₈H₃₀O₂) und 65% +Isolinolensäure+. Ob aber Ölsäure darin enthalten ist, ist noch fraglich. ~Fahrion~ gibt folgende prozentische Zusammensetzung an (1903): Unverseifbares 0,8, Palmitin- und Myristicinsäure 8, Ölsäure 17,5, Linolsäure 26, Linolensäure 10, Isolinolensäure 33,5, Glycerinrest 4,2. ~Lewkowitsch~ hält diese Zahlen aber nicht für richtig und meint, daß ~Folkins~ Angabe wohl zutreffend sei, daß Linolsäure vorherrsche und die Linolensäure nur 22-25% der Fettsäure ausmache. Er hält für wahrscheinlich, daß Linolen- und Isolinolensäure 14%, Linolsäure 78,5% betrage. Das Öl gibt von allen fetten Ölen die größte Menge flüchtiger Säuren (~Dieterich~). Das Öl gehört zu den +trocknenden Ölen+. Es absorbiert an der Luft leicht Sauerstoff und trocknet schließlich zu einer in Äther unlöslichen Substanz ein (Linoxin, superoxydiertes Leinöl). ~Orlow~ gibt dem Linoxin die Formel: O O--O / \ | | [CH₃.CH₂.CH--CH.CH₂.CH.CH(CH₂)₁₀CO]O. Diese Veränderung erleidet es auch im Leinmehl beim Erhitzen desselben auf 100-110° (~Klopsch~). Pressung lieferte in Indien bei whit seed 35,1, bold red 31,2, small 29,6% Öl; im Durchschnitt also ⅓ des Gewichtes des Samen. Durch Extraktion erhielt ~Flückiger~ 35,5%, aus weißen indischen Samen 39,2-40% Öl. ~Hauke~ fand in den Samen 3,2 bis 4% +Asche+. Er bezeichnet als obere Grenzzahl 5%. ~König~ fand im Mittel 3,69% (Phosphorsäure: 41,5, Kali: 30,63, Magnesia: 19,29%), ~Dey~ und ~Cowie~ 1,93 (holl.) bis 4,0% (südamer.). Die Asche enthält Kupfer (~Meier~). In lufttrockener _Placenta sem. lin._ fand ~Peters~ 7% Asche und 8,32 Wasser. =Lit.= Die älteste eingehende Analyse der Samen von ~L. Meier~ (in ~Gmelins~ Handb. d. Chem. II, 1251). -- Viele Analysen in ~König~, Nahrungs- u. Genußm. 4. Aufl., bei ~Hooper~, Agricultur Ledger No. 12. Calcutta 1899 und bei ~W. Lawson~, Pharm. Journ. 16 (1885), 245. -- Ältere Analysen des Schleimes von ~Bostock~ (Nicholsons Journ. 18, 31), ~Vauquelin~ (Ann. de chim. 80, 314), ~Guérin Varry~ (Journ. de chim. méd. 7, 739), ~C. Schmidt~ (Lieb. Ann. 51, 29). -- +Schleim+: ~Guérin~, Ann. chim. phys. (2), 49. -- ~Fudakowski~, Ber. d. chem. Ges. 11, 1073. -- ~Cullinan~, Bot. Jahresb. 1884, I, 71. -- ~Hilger~, Ber. d. chem. Ges. 36 (1903), 3198. -- ~Bauer~, Journ. pr. Chem. II, 30, 367. -- ~Hilger~ und ~Rothenfusser~, Ber. d. chem. Ges. 35, 1841. -- ~Kirchner~ und ~Tollens~, Unters. über Pflanzenschleim. Journ. f. Landw. 1874, 502; Lieb. Ann. 175 (1874), 205. -- ~Pohl~, Zeitschr. phys. Chem. 14 (1890), 151. ~Pelouze~ et ~Boudet~, Ann. chim. phys. (2) 69, 43. -- ~Pelouze~, Ebenda 45 (1855), 319. -- ~Jorissen~ et ~Hairs~, Sur la linamarine, glucoside cyanhydrique retiré du Lin. usitatiss. Bull. Ac. roy. belg. (3) 21, 1891 (Journ. pharm. chim. 24 [1891], 259) und 1907, 793. Auch Bull. ac. roy. belg. (3) 5 (1883), 750; (3) 6 (1884), 718; (3) 7 (1884), 736. -- ~Dunstan~ und ~Henry~, Proc. Royal soc. 72, 285 und 78, 145. -- ~Senior~, Brit. Pharm. Conf. 1885 (Pharm. Zeit. u. Jahresber. d. Pharm. 1885). -- ~Jouck~, Beitr. z. Kenntn. d. HCN abspalt. Glyk. Diss. Straßb. 1902. -- ~Th. Greenish~, Further contrib. of the pharm. of linseed. Pharm. Journ. 15 (1884), 169 (Leinsamenmehl). -- +Gehalt an Öl+: ~König~ a. a. O. Dann: Chem. Drugg. 1899, 522. -- ~La Wall~ and ~Pursel~, Am. journ. pharm. 1899, 393. -- ~Patch~, Proc. am. pharm. assoc. 1906, 339. -- ~Dey~ und ~Cowie~, Pharm. Journ. 25 (1895), 1037. -- Über das Öl vgl. bes. ~Lewkowitsch~, Chem. Technol. u. Analyse d. Öle, Fette usw. 1905 (dort die Literatur). -- Dann auch ~Dieterich~, Helfenb. Ann. 1887, 89. -- ~Klopsch~, Zeitschr. anal. Chem. 1888, 452. -- +Asche+: ~Hauke~ a. a. O. -- ~Laudreau~, Ann. agronom. 6, 315. -- ~Moor~ and ~Priest~, Pharm. Journ. 1900. -- ~Peters~, Apoth. Zeit. 1909, 538. -- Zahlreiche Aschenanalys. d. Samen, Früchte u. d. ganzen Pflanze in ~Wolff~, Aschenanalysen 1871, 106. =Verfälschungen und Prüfung.= Leinsamen ist oft mit anderen Samen vermischt, doch dürfen nicht mehr als höchstens 4% darin sein (~Flückiger~), bei Ölsaat beträgt der Gehalt bisweilen 30-50% (z. B. in Telquel aus Calcutta). ~Nobbe~ fand in einem 2,84% fremde Samen enthaltenden Lein die Samen von 41 Phanerogamen. ~Völcker~ fand in russischem Leinsamen 3%, in bestem indischen 1,75% fremde Samen. In dem hellen indischen Lein verraten sich dunkle Samen leichter, als in dem rotbraunen russischen. Im Leinsamen wurden oft Cruciferensamen und die Samen des in Leinfeldern häufigen _Lolium arvense_ ~Schrad.~ beobachtet, im Leinmehl oft +Rapskuchen+ (bei Revisionen noch 1910 beobachtet, durch den abweichenden Bau der Samenschale leicht kenntlich) und Weizenmehl (~Beringer~). ~Tunmann~ beobachtete (1906) Kieselguhr als Verfälschungsmittel. ~Holmes~ fand in englischem Lein: _Lolium_, _Polygonum Persicaria_, _Chenopodium glaucum_; in holländischem L.: _Chenopodium album_; in russischem L.: _Camelina sativa_, _Spergula arvens._, _Lolium_, _Polyg. Persicar._; in littauischem L.: _Centaurea Cyanus_; in Odessa-L.: _Polygonum_, _Convolvulus_, _Agrostemma Githago_, _Sinapis_, _Panicum_, _Setaria_; in indischem L.: _Sesamum_, _Ervum_, _Sinapis_, _Medicago_; in sizilian. und ionischem L.: _Galium spur._, _Ervum_. (Er bildet ab: _Lolium_ spec., _Polygon. lapathifol._, _Spergula arvens._, _Chenopod. alb._, _Silene inflata_, _Camelina sativa_, _Centaurea Cyanus_, _Panicum miliac._, _Setaria_, _Sinapis_, _Agrostemma Githago_, _Sesam. indic._, _Ervum_, _Medicago_, _Galium spur._) ~Collin~ et ~Perrot~ erwähnen und beschreiben (in Les Residus industriels 1904) eine große Anzahl von Verfälschungen der +Leinpreßkuchen+. Sie bilden ab die Elemente der Fruchtschalen des Lein und die besonders häufigen Samenschalen von _Spergularia arvensis_, _Chenopodium polyspermum_, _Cerastium triviale_ und von Leguminosen (_Luzerne_ u. and.), sowie _Lychnis_, _Githago_ und Reisspelzen. Nicht unbedenklich ist eine Beimengung von _Lolium temulentum_. Daß davon bis 25% in einem Leinsamen vorkamen, ist aber wohl nur eine Fabel oder ein Zufall. Aus der oben mitgeteilten Entwicklungsgeschichte der Samenschale geht hervor, daß beim unreifen Samen sowohl in der Schleimzellenschicht wie in der darunter liegenden, als auch in der Nährschicht Stärke vorkommt; die Körner sind relativ groß in den äußeren, klein in den inneren Samenschalschichten. Demnach wird man, da dem reifen Samen in der Regel Stärke gänzlich fehlt, die Beimengung unreifen Samens im +Leinmehl+ an den Stärkekörnern erkennen können. Doch fand ~Tunmann~ bei einer Sorte Springlein auch im reifen Samen Stärke, ebenso ~Schürhoff~ und ~Ebert~ (in der Schicht zwischen Schleimepidermis und Faserschicht). Die mikroskopische Prüfung gibt hierüber Aufschluß. Doch kann man auch, da kleine Stärkemengen, die ja auch von geringen zufälligen Beimengungen stärkehaltiger Samen stammen können, toleriert werden dürften, nach ~Lloyd~ in der Weise verfahren, daß man 1,0 Leinmehl mit 20 ccm Wasser kocht, erkalten läßt und zu 8 ccm des Schleims eine Mischung von 0,2 ccm Jodlösung (1 : 50) und 10 ccm 10%ige Schwefelsäure hinzufügt. Hierbei soll Blaufärbung nicht auftreten (weniger als 0,5% Stärke). Fragmente von Cruciferen- (_Brassica_-, _Sinapis_-) Samen färben sich mit Kalilauge dunkel (Lein nicht, ~J. Lehmann~). Auch der Nachweis von Schwefel im Destillat oder dem alkalischen Filtrat kann benutzt werden (~Corenwinder~), da die Cruciferen schwefelhaltige ätherische Öle liefern. Neuerdings (Amer. Drugg. 1900) ist beobachtet worden, daß entöltes Leinmehl durch Zusatz von Mineralöl auf den alten «Ölgehalt» gebracht wurde. Da sich in der Ölsaat neben Leindotter- und Cerealien- besonders Cruciferen-Samen finden, enthält das Leinöl meistens etwas Cruciferenöl. Zur Erkennung fremder Beimengungen im Leinmehl wird neuerdings (Ann. d. falsif. 1910) Benzin empfohlen. Leinmehl sinkt unter, die meisten Beimengungen schwimmen oben. =Lit.= ~Haselhoff~, Fabrik. u. Beschaffenh. d. Leinkuch. bzw. d. Leinmehls. Landw. Versuchsstat. 41 (1892) 55. -- ~von Pesch~, Ebenda S. 73. -- ~Nobbe~, Handb. d. Samenkunde 1876, 439. -- ~Völcker~, Journ. Roy. agr. soc. 9, 5. -- ~Holmes~, Pharm. Journ. 12 (1881), 137. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Beringer~, Amer. journ. pharm. 1889, 167. -- ~Roger~, Ann. chim. anal. 1906, 136. -- ~Corenwinder~, Journ. chem. soc. 1882/83. -- ~Lloyd~, Amer. journ. pharm. 1895, 463. -- ~Cullivan~, Pharm. Journ. 14 (1884), 983. -- +Stärke+: ~Schürhoff~, Pharm. Zeit. 1906, 658, ~Rustung~, Chem. Zeit. Rep. 1906, 449, ~Tunmann~, Pharm. Centralh. 1906, 725, ~Ebert~, Chines. Arzneischatz. Diss. Zürich 1907. =Anwendung.= _Sem. lini_ ist ein Bestandteil der Spec. emollientes. Der Leinsame gehört zu den schleimigen Vehikeln und den einhüllenden, reizmildernden und resorptionshemmenden Mitteln. Die Placenta sem. lini dient zu meist heißen Breiumschlägen (Cataplasmen von καταπλάσσειν = Brei auflegen). Aus Laienkreisen (~H. W. Vogel~) ist dem Leinsamen hervorragende Wirkung bei Diabetes nachgerühmt worden und er findet sich auch unter den Mitteln des Pfarrer ~Kneipp~. Er wird auch in der Zeugdruckerei benutzt. -- «Statt Decoctum sem. lini ist die Kolatur einer halbstündigen Maceration zu dispensieren» (Pharm. helvet. IV). Außer den Samen werden auch die aus den Ölmühlen stammenden gemahlenen (sehr harten) Preßkuchen (Placenta sem. lini, Leinkuchen, pain ou gâteau de lin, Linseedcake) benutzt. Da bei ihnen für die medizinische Anwendung der Schleim die Hauptsache ist (ihm verdanken sie auch die Fähigkeit viel Wasser zu binden), können sie wohl an Stelle der noch alles Öl enthaltenden Sem. lini pulveratum benutzt werden, doch erhält man bessere Cataplasmen mit gepulvertem (gemahlenem) Lein. Wegen des hohen Stickstoffgehaltes (s. oben) sind die Leinsamenpreßkuchen auch ein vorzügliches Futtermittel. In Westindien wird die unreife Frucht als Gemüse benutzt. Leinpreßkuchen ist neuerdings als Verfälschungsmittel von Gewürzpulvern beobachtet worden. Die früher so viel verwendete +Charpie+ (Linteum carptum, linamentum) wurde vorwiegend durch Zerzupfen von Leinwand dargestellt. =Lit.= Wasserbindung: ~Carles~, Journ. ph. chim. 10, 244. =Geschichte.= Der Flachs ist eine der ältesten Kulturpflanzen. Wie Gräberfunde zeigen, wurde im alten Ägypten sicher im III., vielleicht schon im IV. Jahrtausend n. Chr. Lein gebaut (I, S. 457). Auf Grabgemälden der XII. Dynastie (2400-2200 n. Chr.) ist der Flachsbau und die Verarbeitung des Lein in allen Details dargestellt (Abbild. bei ~Wönig~). Wir treffen dort sowohl _Linum usitatiss._ var. _vulgare_ (gewöhnlicher L., Schließlein) wie auch _L. u._ var. _crepitans_ (Klenglein) (~Braun~, ~Schweinfurth~, ~Buschan~). Die gefundenen Fruchtproben der letzteren stimmten in +allen+ Punkten mit dem noch jetzt in Ägypten gebauten Klenglein überein. ~Körnicke~ meint, daß sich der gewöhnliche Lein (_L. usit._ var. _vulgare_) aus _L. angustifolium_ ~Hudson~, einer nur wenig von ihm verschiedenen, durch Übergänge mit ihm verbundenen, über das ganze Mittelmeergebiet von den Kanarischen Inseln bis Palästina und den Kaukasus wildwachsend verbreiteten, sowohl einjährigen wie perennierenden Art mit zahlreichen, vom Grunde aus aufsteigenden, bei der Reife sich öffnenden Kapseln und kleinen Samen entwickelt habe. Auch ~Wettstein~ bemerkt (1903), daß die Stammform unseres Lein perenn gewesen sein müsse, aufspringende Früchte und niedrigere Stengel gehabt habe und im Süden oder Osten Europas heimisch gewesen sei. Diese Umbildung muß sich schon vollzogen haben, bevor die Pflanze (durch die Prosemiten (?), ~De Candolle~) nach Ägypten kam. Die Mumienbinden des Königs ~Menkara~ (IV. Dynastie um 3600 n. Chr.) bestehen noch aus Wolle, leinene traten in der XII. Dynastie auf (2400-2200 n. Chr.). ~Thomsens~ (1834) und ~Ungers~ (1860) mikroskop. Untersuchungen zeigten, daß der Byssus der alten Ägypter Lein war (nicht Baumwolle). Auch in Mesopotamien bestand schon vor vier- bis fünftausend Jahren oder noch früher Flachsbau. Später nennt ~Strabo~ die Stadt Borsippa als Sitz der Leinwandindustrie Babyloniens. Flachs tritt aber bereits in altchaldäischen Gräbern der vorbabylonischen Zeit auf (~Maspero~, ~De Candolle~). Zur Zeit, als die Kinder Israels aus Ägypten zogen, waren die Gefilde des Landes am Nil reich mit Flachs bestellt (2. Mos. IX, 31). Als die Juden nach Palästina kamen, fanden sie dort bereits den Flachs (= pischta) in Kultur. Sie bedienten sich viel des Flachs. Die Priester trugen feine, das Volk grobe leinene Gewänder (~Buschan~). Dies finden wir auch bei anderen Völkern und noch heute schreibt die katholische Kirche leinene Chorhemden den Priestern vor. Durch ~Pausanias~ wissen wir, daß die Landschaft Elis Flachs baute und _Linum_ findet sich auch in der mykenischen Periode (~Schliemann~). In Italien ist der Flachsbau sehr alt, geht aber nicht in die vorarische Zeit zurück. ~Herodot~ bezeichnet leinene Kleider als Luxus. Auch für Panzerhemden wurde Lein verarbeitet. Die Pfahlbauer der Steinzeit in Oberösterreich, Oberitalien und der Schweiz bauten Lein und zwar _Linum angustifolium_ (~Heer~; die Schweizer Pfahlbauer bauten die perennierende Varietät). Auf der iberischen Halbinsel ist er zur Bronzezeit nachgewiesen. Die Indogermanen brachten wohl +diese+ Art und ihre Kultur aus ihren Kleinasien und Thrakien benachbarten Stammsitzen mit (~Schrader~). Wann das _L. angustifol._ in Europa durch unseren heutigen Lein verdrängt wurde, ist unbekannt. Vielleicht geschah dies zu Anfang unserer Zeitrechnung (~Neuweiler~). Zu ~Plinius~ Zeiten wurde letzterer jedenfalls schon gebaut. Neuerdings hat ~Neuweiler~ die Ansicht zu begründen gesucht, daß der +Pfahlbaulein+ eine Form von _L. austriacum_ sei. «Wir haben es mit einer Varietät oder Rasse einer perennierenden Leinart (_L. usitatiss._ ist einjährig), die _L. austriacum_ am nächsten stand, zu tun, aus der sich die jetzigen auch in Kultur vorkommenden perennierenden Leinarten, _L. austriacum_ und _L. perenne_, entwickelt haben können. Als Stammform wird auch für diese Reihe (wie für _L. usitatiss._) _L. angustifol._ anzunehmen sein» (~Neuweiler~). Bei den germanischen Völkern lag die Leinkultur und Verarbeitung in den Händen der Frauen. Sie verzierten die Leingewebe mit Vorliebe mit roter Farbe. Und noch heute wird die Wäsche rot gezeichnet. Der Flachs ist die heilige Pflanze der ~Frigga~, der Gemahlin ~Odins~ und Schutzgöttin der Ehe. Ihr Katzengespann war mit Strängen blühenden Leins angeschirrt. Sie war Schirmerin der Flachsbearbeitung und wurde (unter dem Namen Frau Holle) als spinnende Frau dargestellt (~Reling~ u. ~Bohnhorst~). ~Tacitus~ erwähnt in der Germania (Kap. XVII) deutsche Leinwand. ~Unger~ betrachtet (gestützt auf ~Herodot~) die sumpfigen Niederungen im Südwest-Kaukasus als das Vaterland des Lein; ~Hoops~ Kleinasien und die Kaukasusländer als Heimat des Flachsbaues. Nach ~Schrader~ scheint der Flachs schon in der Heimat der Indogermanen Kulturpflanze gewesen und als +solche+ bei dem Zuge nach dem Westen gebracht worden zu sein, denn die gemeinsame Grundwurzel aller Idiome der europäischen Indogermanen ist die Silbe li (s. oben), die sowohl Flachs wie Gewebe bedeutet. In Abessynien dienen die Samen eines niedrigen Berglein seit undenklichen Zeiten mit Salz und Pfeffer zerrieben als Fastenspeise (~Braun~, ~Schweinfurth~). ~Joachim~ übersetzt an mehreren Stellen des Papyrus ~Ebers~ (I, S. 463) ein Wort mit Leinsamen, setzt aber ein Fragezeichen dazu. Wir wissen, daß sie die Ägypter wie die Assyrer besonders mit Honig (I, S. 480) viel als Arzneimittel benutzten. Und auch bei den alten Juden spielten Leinsamen (kasno?) und Leinsamensuppe (ḳaṣchā?) eine Rolle unter den sog. diätetischen Mitteln (I, S. 489). In der chinesischen Medizin scheint Lein (huma) keine große Rolle gespielt zu haben. Ich finde ihn z. B. im Pentsʿao kang mu nicht. Das gleiche gilt von der indischen Medizin, wo bei ~Sušrutas~ der Name akasa für _Linum_ steht (I, S. 506). Dagegen bediente sich ~Hippokrates~ (I, S. 542) der Leinsamen gern -- unter den Schleimmitteln des Corpus Hippocraticum steht λίνον obenan. -- Die Sitte Leinsamen (sowie Mohn- und Sesam-Samen) auf das Brot zu streuen, die auch für den Norden bezeugt ist, erwähnt der lydische Dichter ~Alkman~ (670-640 n. Chr.). Der erste, der Schleim und Fett der Samen und ihre Anwendung bei Husten erwähnt, ist ~Theophrast~ (Hist. plant. III, 18, 3: γλισχρότητα καὶ λίπος). ~Dioskurides~ (II. cap. 125) vergleicht den Samen mit dem ebenfalls schleimigen Samen des _Foenum graecum_. Er nennt eine Menge Krankheiten, gegen die er innerliche oder äußerliche Anwendung (als Clysma und Sitzbad) der Leinsamen empfiehlt. ~Plinius~ bespricht im XIX. Buch eingehend die Leinkultur, die Faserbereitung (das Asbestinum Linum, der «unverbrennliche Lein» war aber Asbest) und die medizinische Anwendung der schleimigen Samen, bei der, wie es scheint, meist der Honig (und zur Verdeckung des faden Geschmackes auch Pfeffer, s. oben) mit im Spiele war -- so z. B. auch bei ~Crescenzi~ (I, S. 677). Geröstete Leinsamen erwähnt ~Galen~ und _Lini semen_ wie _Farina seminis lini_ steht bereits in den Compositiones des ~Scribonius Largus~ (I, S. 577), der Leinsamen bei trockenem Husten zur Beförderung der Expectoration empfahl. ~Celsus~ brauchte ihn mit süßem Wein gemischt bei Geschwüren im Halse, ~Andromachus~ bei Harnbeschwerden, ~Moschion~ bei Menstruationsstörungen in Form von Leindekokt-Bädern. Auch zu Speisen und Backwerken fand er im Altertum Verwendung (~Dierbach~). Im Edikt ~Diocletians~ (I, S. 569) steht λινόσπερμον und auch ~Alexander Trallianus~ (I, S. 592) benutzte die Leinsamen oft (sie heißen bei ihm ebenso). Die Leinkultur erwähnen die römischen Landwirtschaftsschriftsteller (z. B. ~Columella~). Die Griechen bauten λίνον, die Römer _Linum_. Alle Operationen der Erntebereitung der Flachsfaser finden wir schon bei den Römern, das Raufen (vellere), Rösten (macerare), Brechen (frangere), Hecheln (digerere). Bei ~Ibn Baithar~ (I, S. 610) sind zahlreiche Krankheiten angeführt, bei denen Leinsamen anzuwenden ist. ~Elgâfaki~ vergleicht die schmerzstillende Wirkung mit der der Kamille. Auch Fumigationen und Leinsamenumschläge waren beliebt und der geröstete Same diente als Adstringens. Doch scheint das Mittelalter im allgemeinen die Leinsamen wenig beachtet zu haben (im Regimen sanitatis und der Flos medicinae (I, S. 629) sowie im Hortulus fehlt _Linum_), doch finden wir in der Alphita (I, S. 651) _Lineolum_ (oleum de semine lini) und das Breviarium ~Karls~ (I, S. 621, +nicht+ das Capitulare, wie ~Flückiger~ angibt), die ~Hildegard~ (I, S. 670), die den Samen zu Kataplasmen empfiehlt, ~Megenberg~ und das Gothaer Arzneibuch (I, S. 680) gedenken des Leinsamen. Flachs steht auch im Zolltarif von Accon (I, S. 699) und dem von Messina (~Sella~) und die Abtei Saint Germain des-Prés erhob im VIII. Jahrh. Leinsamen als Abgabe (I, S. 715). Die Wirkung der Leinsamen als Aphrodisiacum, die ~Matthioli~ betont und die auch dem Volke bekannt ist, erwähnt schon ~Dioskurides~. Der Leinsamen dient noch jetzt zum Liebes- und Eheorakel (Vogtland, Österreich) und spielt auch bei den Hochzeitsbräuchen der Südslaven eine Rolle (~Krauss~). Wie ausgedehnt der Flachsbau im XVI. Jahrh. in Deutschland war, zeigt der Umstand, daß es in Augsburg damals 3500 Weber gab. Die Fugger verdanken ihren Reichtum zum Teil der Weberei. Ehemals wurde Leinsamendekokt (zusammen mit Bockhornsamen- und Altheeschleim) zur Bereitung des _Empl. diachylon_ benutzt, das seinen Namen (= Pflaster mit Saft) daher hatte (~Peters~). Das _Emplastrum Diachylon_ des ~Mesuë~ z. B. enthält in allen seinen verschiedenen Vorschriften (vgl. ~Cordus~ Dispensatorium. I, S. 795) _Mucilago seminis Lini_. «Die von den Alten nicht geübte Ölmalerei, welche sich wesentlich auf die Verdickungsfähigkeit der sog. trocknenden Öle stützt, mag einen weiteren Aufschwung der Wahrnehmung verdankt haben, daß jene Eigenschaft des Öles durch Besonnung noch mehr erhöht wird. Dieser Behandlung unterwarf man das Leinöl (ebenso wie Mohnöl und Rizinusöl) schon im IV. Jahrh. Das erstere wurde zum gleichen Zwecke vom X. Jahrh. an, wenn nicht schon früher, auch mit Bleioxyd gekocht (~Ilg~). Solcher Firniß scheint wohl lange Zeit vorzüglich in Danzig bereitet worden zu sein; manche Taxen des XVI. Jahrh. nennen _Vernisium Dantiscanum_ und aus ~Valerius Cordus~ (Annot. ad. Dioscor.) ist ersichtlich, daß damit Leinölfirniß gemeint ist» (~Flückiger~). Die ältesten Papiere (s. oben S. 256) sind Hadernpapiere. In den alten arabischen, d. h. islamitisch-orientalischen und auch in den ältesten europäischen Papieren spielt die Leinfaser die Hauptrolle. Sie tritt in den Papieren viel häufiger auf als Hanffaser (~Wiesner~). =Lit.= ~Heer~, Pfl. d. Pfahlbaut. 1865 u. Flachs u. Flachskultur im Alterthum. Zürich 1872. -- ~Unger~, Bot Streifzüge auf d. Geb. d. Culturgesch. Sitzungsb. d. Wiener Akad. IV-VII. -- ~Wönig~, D. Pflanz. d. alt. Ägypt. 1886. -- ~Schweinfurth~, Ber. d. d. bot. Ges. 1883 u. 1884. -- ~Körnicke~, Bemerk. über d. Flachs d. heut. u. alt. Ägypt. Ber. d. d. bot. Ges. VI, 388. -- ~Thär~, Altägyptische Landwirtsch. 1881. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botan. 1895. Prähistor. Gewebe u. Gespinste 1889 und die Weberei der Vorzeit. Verh. d. Berl. Anthropol. Ges. 1889. -- ~Neuweiler~, Prähist. Pflanzenreste Mitteleuropas. Zürich 1905. -- ~A. Braun~, Pflanzenreste aus altägypt. Gräbern. Zeitschr. f. Ethnolog. 1877. -- ~Schrader~, Sprachvergleichung und in ~Hehn~, Kulturpflanz. u. Haust. -- ~De Candolle~, L’Orig. des plant. cultiv. -- ~Maspero~, Hist. anc. d. peupl. de l’Orient 1878. -- ~Blümner~, Technol. u. Terminolog. d. Gewerbe u. Künste bei Griechen und Römern 1875. -- ~H. Vogel~, Über d. Culturgesch. d. Flachses u. seinen Kampf mit d. Baumwolle. Darmstadt 1869. -- ~Sella~, Pandetta delle gabelle e dei diritti della curia di Messina Torino 1870 (Miscellanea di storia italiana t. X). -- ~Earle~, Bot. and mat. med. of linseed. Pharm. Journ. 14 (1884), 979. -- Sagen und Volksgebräuche in ~Reling~ und ~Bohnhorst~, Unsere Pflanzen. 4. Aufl. 1904. -- ~A. Braun~, Flora 1848, 94. -- ~Schweinfurth~, Petermanns Mitth. 1868, 168. -- ~Hildebrandt~, Zeitschr. f. Ethnologie. Berlin 1874, 327. -- ~Dierbach~, Synopsis mat. med. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Ilg~, Von den Farben u. Künsten d. Römer in ~Eitelbergers~ Quellenschr. f. Kunstgesch. u. Kunsttechn. d. Mittelalt. IV (1873). -- ~Jul. Wiesner~, Rohstoffe und Die mikroskop. Unters. d. Papiers. Mitt. aus d. Samml. d. Pap. Rainer 1887. =Paralleldrogen.= Schleimepidermen besitzen auch die Samen von _Linum perenne_ L., _L. Levisii_ ~Pursh.~, _L. austriacum_ L., _L. angustifolium_ ~Huds.~, _L. maritimum_ L. und können (nach ~Dragendorff~) wie _Linum usitatissimum_ gebraucht werden. In Vorderindien darf _Sem. lini_ durch die Samen von _Plantago ovata_ ersetzt werden (I, S. 22). Sem. Cydoniae. =Syn.= Quittensamen, Quittenkerne -- in Tirol: Kittenbaum, in der Schweiz: Schmeckbirn, in Osnabrück: quie -- coing (franz.) -- quince (engl.) -- kwee, quee (holl.) -- cotogno (ital.) -- membrillo (span.) -- marmeleiro (port.) -- birsalma (ung.) -- κυδώνια (plur. n.-griech.) -- armud, aiva (russ.) -- bihí-danah (hind., bomb.) -- shimai-dalavirai (tam.) -- safarjal (arab.). =Etym.= Quitte (früher [XI. Jahrh.] Quidde); +mhd.+ quiten, kitten und küten (bei ~Brunschwyg~, ~Bock~, bei ~Megenberg~, I, S. 693: kütenbaum); +ahd.+ chutina (chotin, chutinbaum, chutinboum) von gemeinroman. cotônea (cottanum, bei ~Plinius~: mala cotonea). Dies aus κυδώνεα (bei ~Dioskurides~: κυδώνια). Aus cotônea dann auch coing (+franz.+ so z. B. im Inventar ~Lefort~ [I, S. 805] 1439) und kwee (+holl.+). Die spätgriech. Namen bei ~Langkavel~, Botan. d. spät. Griech. Im Mittelalter: cedonia, citonium, coctanus, cotoneum, quotanum, im +ital.+: cotegra. -- Im IX. Jahrh. auch coronopus (= Krähenfuß). Bei ~Serapion~ und in der Alphita (I, S. 645): cithonia, mala citonia; bei ersterem auch: tuffa, suffargel. In den Sinonoma (I, S. 639): cottana, citonia. -- Bei ~Megenberg~ heißen die Früchte: pirn küten, gemain küten. Bei der ~Hildegard~ (I, S. 670): Quitdenboum, quotanus -- bei ~Albertus Magnus~ (I, S. 674): coctanus, citonius. -- In den mittelengl. Medizinbüchern (I, S. 684): quyns -- im Gothaer Arzneibuch (I, S. 681): quede. «Die lateinische Form cotonea wird auf einer Vermischung mit Namen der Feige beruhen, die auch in dem kleinrussischen (und poln.) Namen für Quitte pigva hervortritt» (~Schrader~) -- cottana waren kleine Feigen. -- Von dem portugiesischen Worte für Quitte: marmeleiro (ordinario) ist das Wort marmelade abgeleitet. =Stammpflanze.= =Cydonia vulgaris= ~Persoon~ (Enchirid. II, 40) [+Pirus+ (nicht Pyrus) +Cydonia+ L., Cydonia Cydonia ~Karst.~, C. europaea ~Sroi~, Sorbus Cydonea ~Crantz~], Quittenbaum, Cognassier, coigenassier. Mit den Varietäten: var. _maliformis_ ~Mill.~, Apfelquitte, apfelförmig, beiderseits genabelt, -- var. _oblonga_ ~Mill.~, Birnquitte, Quittenbirne, birnförmig, nur auf dem Scheitel genabelt (das malum strutheum ~Catos~). -- var. _lusitanica_ ~Med.~, portugiesische Quitte, sehr groß und gerippt und noch einigen anderen Sorten (vgl. ~Mataicu~, Nomenclator pomolog. 1889). Schon ~Plinius~ erwähnt fünf Sorten. ~Columella~ nennt struthia, chrysomelina und mustea. ~Theophrast~ (Hist. plant. 2, 2. 5) unterscheidet zwischen der wilden (verwilderten) Quitte, κυδώνιος und der zahmen, die er στρούθιον nennt, eine Bezeichnung, die sich (neben στρουτόμηλον) ebenso bei den späteren Griechen und auch bei den Römern findet. Der Autor von ~Makhzan~ beschreibt drei Arten Quitten (Safayal): die süße, die saure und die säuerliche (arab. muzz) (Pharmacogr. ind.). =Systemat. Stellung.= +Rosaceae+, Pomoideae -- Pomariae -- Eucydonia (~Focke~). =Beschreibung.= Die Quitte ist meist ein kleiner Baum, der selten 3 m Höhe überschreitet, mit abstehenden dornenlosen Ästen, oft ohne einen eigentlichen Hauptstamm (das steht schon bei ~Plinius~) und kurzgestielten, eiförmigen oder eilänglichen, ganzrandigen, alternierenden +Blättern+, die unterseits, ebenso wie die jungen Zweige und der Fruchtknoten zottig-graufilzig sind. Nebenblätter laubig, länglich, drüsig gesägt. Die einzeln terminal stehenden +Blüten+, die größer sind als die des Apfels und bis 7 cm Durchmesser erreichen, besitzen fünf oblonge, drüsig-gesägte, filzige, unterseits zottig behaarte Kelchblätter, fünf damit alternierende, rötlichweiße oder weiße und rötlich geaderte Kronenblätter, die eine gedrehte Knospenlage besitzen und 15-20 Stamina, die in drei Kreisen angeordnet sind -- bei 20 Staubfäden ist der äußere Kreis zehnzählig und die beiden inneren sind je fünfzählig. Das Gynaeceum ist unterständig, die fünf Griffel sind frei. Die aufsteigenden anatropen Ovula liegen in zwei collateralen Reihen. Die goldgelbe, stark und eigentümlich lieblich riechende, herb und sauer schmeckende Frucht ist apfel- bzw. birnförmig (s. oben), von dem vergrößerten laubigen Kelch bekrönt [vielleicht rührt der Name _Coronopus_ (s. oben) von den auf der Frucht sitzenbleibenden Kelchzipfeln her, ~Fischer-Benzon~], gelb oder grünlich-gelb -- «quittegelb» ist im Sprachgebrauch eine besondere Nuance des Gelb --, oft noch stellenweise von einem leicht abreibbaren Filze bedeckt, den Resten der Behaarung des Fruchtknotens, daher spinnwebig filzig (~Martial~ vergleicht den Flaum auf der Wange eines Kindes mit diesem Flaume). Das Fruchtfleisch ist derb, hartfleischig, wenig saftig, sehr herbe und sauer. Das Kerngehäuse pergamentartig knorpelig. Das Kerngehäuse entsteht aus den fünf Carpellen, die mit dem Receptaculum verwachsen. Das Fruchtfleisch (Mesocarp) und die Schale (Exocarp) sind also Bildungen des Receptaculums, wie dies bei der Gruppe der Pomoideen stets der Fall ist. Die Frucht ist also eine Scheinfrucht vom Typus der Apfelfrucht. In der Mittelschicht der Frucht finden sich viele Sklereïdengruppen (Reste der Drupa), die sich zumal gegen das Gehäuse zu sehr eng zusammendrängen. Jedes der fünf Fächer umschließt einen Ballen von 6-15 (selten mehr) Samen (Fig. 112). Die Frucht bleibt auch zur Zeit der Reife hart. Die Quitte blüht im Mai oder Juni. Die Quitte wächst wild im Kaukasus, in Transkaukasien (bis 1300 m), den kaspischen Provinzen Persiens, Talysch und Asterabad, in Armenien, Syrien und Kleinasien (~Engler~). Verwildert findet sie sich im ganzen Mittelmeergebiet. Für uns kommen jedoch nur kultivierte Quitten in Betracht. Die Quitte ist von ihrer ursprünglichen Heimat, den transkaukasischen, südkaspischen, ostiranischen, turanischen und südostarabischen Ländern über Persien und Syrien zunächst nach dem Mittelmeergebiet gebracht worden. In Kultur ist die Quitte jetzt im ganzen warmen und gemäßigten Europa, sowie in Afrika, in Ägypten, Tripolis, auf Teneriffa und am Cap. In Italien z. B. findet sie sich im Valle Pantena bei Verona, bei Marsano, Bologna und in Sardinien spontan und kultiviert (~Ravasini~), doch trägt sie reicher im Süden. Ihre Früchte reifen noch in England, nicht mehr in Schottland (~Hanbury~), wohl aber in einigen Gegenden im Süden Schwedens und Norwegens (~Schübeler~). Im Süden ist sie ein Baum, im Norden wird sie oft strauchartig. Nach Amerika ist sie wohl frühzeitig gebracht worden. Sie wächst (halb wild?) in Chile (~Philippi~), Guatemala (~Smith~), Mexiko und Florida und wird auch dort kultiviert. Die Kultur hat, wie es scheint, die Frucht der Quitte wenig verändert. =Lit.= ~Boissier~, Flor. orient. II, 656. -- ~Baillon~, Hist. des plantes. Monogr. d. Rosac. -- ~Decaisne~, Mem. sur la fam. d. Pomacées. -- ~Luerssen~, Medic. pharm. Botan. -- ~Morgenthaler~, Beitr. z. Entwicklgesch. der Quitte, Dissert. Zürich 1897 (dort die Lit. über die Verbreitung). -- ~De Candolle~, L’origine d. plant. cult. -- ~Schübeler~, Pflanzenw. Norwegens. -- ~Tschirch~ in Real-Enzyklopädie. -- +Abbild.+: ~Hayne~, Arzneigew. IV, t. 47. -- ~Nees von Esenbeck~, Pl. med. t. 305. -- ~Dodel~, Anatom. physiolog. Atlas (Blüte). -- ~Berg~, Charakteristik t. 63, f. 479. -- ~Berg-Schmidt~, Atlas I. Aufl. -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 34. -- ~Bentley-Trimen~, Medicin. plants t. 106. =Pathologie.= Über die Krankheiten der Quitte berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: In großer Zahl fallen in gewissen Jahren die jungen Quittenfrüchte der _Sclerotinia Cydoniae_ ~Schellenb.~ zum Opfer. Das Mycel dieses Pilzes überwintert in den Zweigen, wächst dann im Frühjahr in die jungen Blätter, die gelbbraun bis schwarzbraun werden und absterben. Auf diesen erkrankten Blättern erscheint die sog. +Monilia+form des Pilzes, welche durch mandelartigen Geruch wahrscheinlich Insekten anlockt, die diese Sporen auf die Narben der Quittenblüten übertragen. Hier findet die Keimung statt; die Keimschläuche wachsen durch den Griffelkanal in den Fruchtknoten. Dieser bleibt, statt zu einer normalen Frucht heranzuwachsen, klein, verwandelt sich in ein Sclerotium und fällt im Herbst ab. -- Übrigens kann das Mycel auch direkt aus einem erkrankten Zweige in eine Blütenknospe hineinwachsen und diese zum Absterben bringen (s. ~H. C. Schellenberg~: Über die Sklerotienkrankheit der Quitte. Berichte der deutschen botan. Gesellschaft Band XVII, 1899). -- Eine Fleckenkrankheit der Quittenfrüchte wird durch _Trichoseptoria fructigena_ ~Maublanc~ hervorgerufen. Über die tierischen Schädlinge berichtet ~Israël~: Die Feinde von Apfel-, Birn- und Quittenbaum lassen sich nicht trennen. 1. +Käfer+: _Liopus nebulosus_ L.: Larven unter der Rinde von Obst- und Waldbäumen. _Anobium striatum_ ~Ol.~: Die Larven dieses sehr gemeinen und in Möbeln und Gebälk sehr schädlichen Käfers lebt auch im Holze alter und kranker Obstbäume. _Bostrychus dispar._ ~Fabr.~: Larven im Splinte diverser Obstbäume. Die Larven der Bostrychiden veranlassen sowohl an Laub- als auch an Nadelhölzern die sog. Wurmtrocknis. Mehrere _Eccoptagaster_- und _Magdalinus_arten leben als Larven im Splinte von Pflaumen-, Apfel-, Birn- und Quittenbäumen. Auch in Kirschen und Schlehen usw. _Otiorhymhus_arten werden schädlich durch das Benagen junger Triebe. Häufig an Obstbäumen usw., auch an dem Weinstocke gelegentlich schädlich. _Phyllobius calcaratus_ ~Fabr.~, _P. pyri_ L., _P. argentatus_ L., _P. oblongus_ L., _Polydrusus_arten: Diese Grün- und Glanzrüsselkäfer werden gelegentlich lästig und schädlich durch das Benagen von Knospen, Blättern und krautartigen Stengelorganen der Obstbäume. Von den _Rhynchites_arten (Rebenstecher) sind es ganz besonders _Rh. cupreus_ L., _bacchus_ L., _alliariae_ L., _aequatus_ L., _aureus_ ~Scop.~ und andere, die oft sehr lästig werden können. Die Larven leben entweder in den Früchten oder den jungen Trieben. Auch _Anthonomus_arten (Blütenstecher) treten gelegentlich schädlich auf. Die Larven fressen die Geschlechtsorgane der Blüten aus und verpuppen sich in den verdorrenden Blüten. Auch _Apion_arten (deren Larven meist in den reifenden Hülsen von Leguminosen leben) schaden als Käfer durch das Benagen der Knospen usw. 2. +Falter.+ _Papilio podalirius_ L.: Raupe an Apfel-, Birn-, Quitten-, Aprikosenbäumen, besonders an Schlehen und Pflaumen. _Aporio crataegi_ L.: Raupe an Obstbäumen und Schlehen. _Vanessa polychloros_ L.: Raupe an Ulmen, Apfel-, Birn- und Quittenbäumen, auch an Weichsel und Kirsche. _Lycaena argiolus_ L.: Raupe an _Rhamnus Frangula_, _Pirus communis_, _P. malus_, _Mespilus germanica_. _Smerinthus tiliae_ L.: Raupe an Linde, Eiche, Birke, Ulme, Maulbeere, seltener an Apfel, Quitte, Syringe. _Smerinthus ocellata_ L.: Raupe an Weiden, Pappeln, Aspen, seltener an Apfel, Quitte, Birne. _Zeuzera aesculi_ L., _Cossus cossus_ L.: Raupen in Wald- und Obstbäumen. _Cossus_ oft zahlreich in einem Stamme und denselben baldigst vernichtend. Die Raupen verraten sich oft durch den starken Geruch nach Holzessig. _Zeuzera_ mehr im Holze der Zweige, gelegentlich auch in den Wurzeln, seltener im Stammholze. _Saturnia pyri_ W. V., _S. spini_ W. V.: Raupen hauptsächlich in Ungarn an diversen Obstbäumen, z. B. an Apfel, Birne, Quitte, Schlehe, Aprikose usw. _Saturnia pavonia_ L.: Raupe ziemlich polyphag, auch an Obstbäumen. _Ocneria dispar_ L., _Aglia tau_ L.: Raupen an Wald- und Obstbäumen. _Orgyia gonostigma_ F., _Or. antiqua_ L., _Dasychira pudibunda_ L., _Porthesia chrysorrhoea_ L., _P. similis_ ~Fussly~, _Psilura monacha_ L. und viele andere Spinner leben an diversen Laubhölzern, auch in Gärten oft mehr oder minder schädlich auftretend. _Bombyx_arten (namentlich _crataegi_, _neustria_, _lanestris_) und _Lasiocampa_arten (namentlich _quercifolia_) tun in Obstgärten oft enormen Schaden. Die in Nestern lebenden Raupen sind im ersten Frühjahre leicht zu finden. Man muß die Nester abschneiden und verbrennen. Wenn sich die Raupen erst über den ganzen Obstbaum verstreut haben, ist es meistens zu spät, um einen Kahlfraß zu verhüten. Die Zahl der +Eulen-+ und +Spannerraupen+, die unter andern auch an Obstbäumen leben, ist sehr groß, ohne daß man diese aber als Spezialfeinde ansehen könnte, da sie gegenüber den schädlichen Spinnern bedeutend weniger in Frage kommen. Unter den +Microlepidopteren+ überwiegen die +Tortricineen+ und die +Carpocapsen+. _Carpocapsa pomonana_ S. V. frißt die Kerngehäuse aus und ist in manchen Jahrgängen stellenweise so häufig, daß man kaum einen Apfel oder eine Birne oder Quittenfrucht findet, in der nicht eine Wicklerraupe gefressen hätte. Die Früchte fallen im Zustande einer Notreife oft vorzeitig ab. 3. +Schnabelkerfe.+ Unter den Schnabelkerfen ist, von einigen lästigen Blatt- und Schildläusen (unter diesen befinden sich mehrere aus Amerika eingeschleppte Schädlinge) abgesehen, die +Blutlaus+, ein furchtbarer Zerstörer der Obstbäume. Die Stämme werden meist krebskrank. Das Kalken der Bäume ist wohl (obgleich es von den Behörden angeordnet wird) nicht so sehr zu empfehlen, da man an den weißen Stämmen neue Brutherde zu leicht übersieht. In neuerer Zeit hat sich das Anstreichen der Stämme mit Carbolineum (mit gleichen Teilen Wasser verdünnt) gut bewährt. Übrigens ist die Zahl der Blutlausvertilgungsmittel, die mehr oder minder gut sind, sehr groß. Auch Auflösungen von roher Schmierseife in Wasser sind zu empfehlen. Als +Schädlinge der getrockneten Früchte+ (Quittenschnitzel, Ringäpfel usw.) kommen neben verschiedenen Käfergattungen (_Anobium_, _Ptinus_ usw.) von Microlepidopteren u. a. in Betracht: _Ephestia kuehniella_ Z. Diese jedenfalls aus Nordamerika eingeschleppte Phycitinaee lebt in Weizenmehl und vielen anderen amylumhaltigen Drogen, besonders lästig werdend durch die Gespinstfäden. Sie nimmt mit Vorliebe aber auch getrocknete Quittenschnitzel, Ringäpfel, Pflaumen und Eßkastanien an. Sie scheint sich in den letzten Jahrzehnten sehr ausgebreitet zu haben. _Ephestia calidella_ ~Gr.~, _E. figulilella_ ~Gregs.~, _E. afflatella_ ~Mn.~, _E. cautella_ ~Wlk.~, _E. elutella_ ~Hb.~, _Pyralis farinalis_ L.: Die spinnenden Räupchen leben gerne (oft in sehr großer Anzahl) in allen möglichen getrockneten Früchten und stärkehaltigen Samen, besonders gerne in Feigen, Datteln, Johannisbrot, Mehlvorräten usw., auch in Pflaumen, Quittenschnitzeln, Ringäpfeln. In der Droge findet sich oft _Sitodrepa panicea_ (I, S. 379). =Handel.= _Sem. Cydoniae_ kommen in den Handel aus +Südrußland+ (Krim), +Spanien+, Portugal, +Südfrankreich+, Teneriffa, +Capland+. Die russischen Samen sind voller, fester zusammenhängend, von fast violettschwarzer Farbe und reich an Schleim (~Flückiger~). Sie erzielen jetzt die höchsten Preise. Indien, das viel verbraucht, bezieht _Sem. Cydon._ (vermutlich seit undenklichen Zeiten, ~Flückiger~) vom persischen Golf sowie auch aus Afghanistan, Kabul, Bokhara, Kaschmir. Als +russische+ Quittenkerne kommt in den letzten Jahren in der Hauptsache +persische+ Ware in den Handel, die sowohl von den russischen Stapelplätzen wie auch über London und Hamburg zugeführt wird. Als sog. +spanische+ (rötliche) Quittenkerne rangieren die spanischen, französischen und Kap-Sorten, welch letztere meist über London kommen (~Caesar & Loretz~). [Illustration: Fig. 112. _Cydonia vulgaris_ L. Isolierter Same. a und b Samenballen eines Faches: a von außen, b von innen. [+Tschirch.+]] =Morphologie der Droge.= Die Samen eines Faches sind für gewöhnlich um eine kurze Mittellinie in zwei Vertikalreihen orientiert und durch den Schleim zu einem ziemlich regelmäßigen Ballen verklebt (Fig. 112), so daß sie auch noch in der Droge oft zu mehreren zusammenhängen. Sie sind hart, rotbraun, mit einem Ton ins Violette, durch den eingetrockneten, bisweilen abschilfernden Schleim matt weißlich, spitz-eiförmig, halbherz- oder keilförmig, durch gegenseitigen Druck unregelmäßig-kantig, oft miteinander verzahnt. Der helle Nabel (Hilum) liegt am spitzen Ende, von ihm läuft die Raphe als ein scharfer, gerader Kiel zu der als erhöht-gerandeter Fleck seitlich hervortretenden Chalaza. Der der Raphe gegenüberliegende Rand beschreibt eine seichte Kurve (Fig. 112). Die Samen sind +frisch+ etwa 8 mm lang, 4 mm breit und 2 mm dick und wiegen etwa 0,052 g; +trocken+ messen sie etwa 7 mm (nicht über 10 mm) und wiegen im Durchschnitt 0,029 g (~Morgenthaler~). Die Samen schmecken zuerst schleimig, ist die Schleimschicht entfernt herb-adstringierend, beim Zerkauen tritt schwacher Bittermandelgeschmack hervor. Legt man die Samen in Wasser, so umgeben sie sich mit einer Schleimhülle, schüttelt man sie mit Wasser -- am besten unter Zusatz von einigen Glasperlen --, so löst sich die Schleimepidermis von der Schale ab und man erhält einen zähen Schleim. Der Embryo besteht aus zwei dicken plankonvexen, ölig-fleischigen, deutlich geaderten, wellenförmig zusammengelegten Cotyledonen und einer kleinen und kurzen, gegen das Hilum gerichteten geraden Radicula. [Illustration: Fig. 113. _Cydonia vulgaris_ L. Querschnitt durch die Randschicht des Samens an der Stelle, wo das Raphebündel liegt. +Sep+ Schleimepidermis, in einigen Zellen kleine Stärkekörnchen. P Pigment- (Hart-)Schicht. +NS+ Nährschicht. +Psp+ Perispermrest. +End+ Endosperm. +Qu+ Quellschicht. [+Tschirch.+]] =Anatomie.= Der trockene Same ist mit einer hellen derben, abschilfernden Schicht bedeckt, die unter Glycerin betrachtet keine Struktur erkennen läßt, aber im polarisierten Lichte glänzt. Läßt man zu dem in Glycerin liegenden Querschnitte langsam Wasser zufließen, so quillt diese Schicht mächtig (bis 0,170 mm) und nunmehr tritt die Struktur deutlich hervor. Es zeigt sich, daß sie aus einer Reihe prismatischer Zellen besteht, die deutlich geschichtete Schleimmembranen (Fig. 113, Sep) und auf der Innenseite ein kleines, etwas Plasma und oft noch kleine Stärkekörner enthaltendes Lumen besitzt. Die Schleimmembran, die sich mit Jodschwefelsäure blau färbt (~Kützing~, ~Cramer~), also zu den Zelluloseschleimen (~Tschirchs~) gehört, ist aber so empfindlich gegen Wasser, daß sie rasch ihre Struktur verliert und sich in dem umgebenden Wasser verteilt. Der Schleim wird durch Hämatoxylin prächtig violett, durch Jod gelb bis rosa, bei viel Reagens rot bis braunrot. Diese große +Schleimepidermis+ der Samen ist sehr charakteristisch für _Cydonia_, besonders zum Unterschiede von _Pirus_ (doch haben die Samen von _Pirus lomonii_ auch eine solche, ~Dutailly~). Bisweilen unterbleibt in einzelnen Zellen die Schleimbildung, diese erscheinen dann seitlich zusammengedrückt. Die kappenförmige Ablagerung der Schleimschichten beginnt erst ziemlich spät (im August) an der Innenseite der Außenwand der Epidermiszellen und schreitet dann rasch bis zum Grunde fort (~Frank~, ~Luerssen~). Auf die Schleimepidermis folgt eine mehrreihige, an den Ecken dickere, an den Flächen schmälere, hier meist nur 3-4reihige, derbe +Pigmentschicht+ (Fig. 113, P), die zugleich die Hartschicht bildet, deren verdickte, in der Längsrichtung des Samens gestreckte Zellen einen braunen Phlobaphenklumpen enthalten, der sich mit Eisensalzen färbt und deren Wand gegen Schwefelsäure resistent ist. Dann folgt die +Nährschicht+ (Fig. 113, NS). Sie ist entweder ganz obliteriert (zum Teil sogar resorbiert), so an vielen Stellen an der Fläche des Samens oder es ist ihre äußere Zellreihe, oder -- an den Kanten -- mehrere Reihen erhalten. In ihr verläuft das +Raphebündel+ (Fig. 113). Die Wände der Nährschicht sind gebräunt. Beim ganz jungen Samen besitzt die Nährschicht eine große Mächtigkeit und enthält, wie auch die junge Pigmentschicht und die Epidermis, reichlich transitorische Stärke. Bis hierher reicht die Samenschale. Dann folgt eine obliterierte Zone, die zu äußerst von einer Zellreihe begrenzt wird, deren dicke Außenwände gelbgefärbt sind. Wir dürfen die Zone wohl als einen +Perispermrest+ betrachten (~Morgenthaler~). An ihn schließt sich das mehrreihige +Endosperm+, das zu innerst von einer obliterierten Schicht begrenzt wird (+Quellgewebe+, ~Tschirch~ und ~Hirsch~). Die Hauptmasse des Samens bilden die dickfleischigen Cotyledonen, deren Palissadenschicht deutlich ausgebildet ist und die so orientiert ist, daß die Palissadenseiten aufeinander liegen. Das Mesophyll ist von Procambiumsträngen durchzogen. Endosperm und Cotyledonen sind mit +Aleuronkörnern+ erfüllt, die in +Ölplasma+ (~Tschirch~) eingebettet sind und von denen die größeren, wenigstens in Cotyledonen und Endosperm, neben Globoiden auch meist ein oder mehrere Kristalloide enthalten. Die größten Aleuronkörner (bis 28 mik) finden sich im Endosperm, die in den Cotyledonen sind etwas kleiner (bis 15 mik), die der Radicula sind am kleinsten (bis 7 mik, ~Morgenthaler~). =Lit.= ~Kützing~, Grundz. d. philos. Bot. t. 4. Fig. 4. -- ~Cramer~ a. a. O. (1855). t. 22. Fig. 3 u. 4. -- ~Hofmeister~, Ber. d. Sächs. Ges. d. Wiss. 1858. -- ~Frank~ a. a. O. -- ~A. Michelis~, Zur Anatom. schleimhalt. Samensch. Progr. d. städt. Realschule Königsberg 1877 (m. Abbild.). -- ~Tschirch~, Artikel Cydonia in Realenzyklop. d. Pharm. -- ~Hirsch~, Einricht. behufs Überführ. d. Reservestoffe in d. Embryo. Dissert. Erlangen 1890. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~J. Morgenthaler~, Beitr. z. Entwicklungsgesch. d. Quitte. Diss. Zürich 1897 (dort auch die Keimungsgeschichte). -- ~Marloth~, Mechan. Schutzmitt. d. Samen. Engl. bot. Jahrb. IV, 236. -- ~Dutailly~, Un pirus à graines mucilagineuses. Bull. soc. Linn. 1898. -- Nährschicht: ~Holfert~, Flora 1890 (~Morgenthaler~ bringt Nähr+schicht+ und Nähr+gewebe+ durcheinander). -- +Anatom. Abbild.+ in ~Oudemans~ Atlas (1854). -- ~Berg~, Anatom. Atlas t. 46. -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie Fig. 36 u. 196. -- ~Hérail-Bonnet~, Manipulat. t. 35. -- ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. 1896. -- Anatom. Abbild., die Pektinbildung in der +Fruchtschale+ der Quitte betr., in ~Rosenberg~, Über d. Pektinmetamorphose. Diss. Bern 1908 (mit 9 Taf.). Vgl. auch ~Tschirch~, Pektin u. Protopektin. Ber. d. pharm. Ges. 1907. =Chemie.= Die Samen enthalten so viel +Schleim+ (Cydonin, ~Pereira~), daß sie das Vierzigfache ihres Gewichtes Wasser aufzunehmen imstande sind. Sie liefern denn auch c. 20% (lufttrockenen) Schleim (~Flückiger~). Der Rohschleim enthält viel Kalk und Eiweißsubstanzen -- oft 10,4% Asche (~Schmidt~). Der Schleim bildet eine kolloidale Lösung. ~Tollens~ und ~Kirchner~ (1874) lösen zur Reinigung in Wasser, filtrieren, dampfen ein, versetzen mit Salzsäure und fällen mit Alkohol; getrocknet quillt er, wird aber erst auf Kalizusatz gallertig. Sie geben ihm die Formel C₁₈H₂₈O₁₄ (= 3(C₆H₁₀O₅) − H₂O), ~Schmidt~: C₆H₁₀O₅, ~Mulder~: C₂₄H₃₈O₁₉.(= 4(C₆H₁₀O₅) - H₂O). Die geringere Menge H₂O erklären ~Kirchner~ und ~Tollens~ durch Esterbindung im Molekül. Der _Cydonia_schleim ist unlöslich in Alkalien und verd. Säuren, wird mit Jodschwefelsäure blau und gibt mit Salpetersäure Oxalsäure, nicht Schleimsäure (~Cramer~, ~Frank~), enthält also +kein+ Galaktan, ebenso liefert er hierbei keine bemerkenswerten Mengen Zuckersäure, enthält also auch kein Dextran (?). Er wird nicht durch Borax verdickt. Der lösliche Teil wird durch Alkohol und Metallsalze niedergeschlagen, ebenso durch Alkaloide. Gerbsäure verändert nicht, Kreosotwasser fällt nicht (Unterschied von Gummi- und Kirschgummischleim, ~Reichenbach~), Bleizucker fällt flockig (Unterschied von Acacien- und Carrageenschleim). Er läßt sich mit Natriumsulfat (~Flückiger~) und Ammonsulfat (~Pohl~) aussalzen. Mit kaltem Wasser bilden Quittensamen eine sehr zähe Flüssigkeit, welche durch Filtrieren in dünnere und dickere Anteile sich trennen läßt (~Tollens~). Durch Erwärmen mit verdünnten Säuren wird Quittenschleim dünnflüssig und es scheiden sich c. 34% einer wie +Zellulose+ reagierenden Substanz (auf der die Zellulosereaktion des Schleimes beruht) flockig ab. Das Filtrat enthält ein Gummi und einen rechtsdrehenden Zucker, der Arabinose oder Xylose zu sein scheint (~Tollens~). Vielleicht entsteht hierbei auch etwas Traubenzucker (~Bauer~ und ~Tollens~) bei der Destillation mit verd. Schwefelsäure entsteht Furfurol. Im Quittenschleim sind also (wie im Schleime von _Plantago Psyllium_) Pentosane enthalten (Araban und Xylan oder ein verwandter Stoff, ~Gans~ und ~Tollens~). Der _Cydonia_schleim hat viel Ähnlichkeit mit dem _Traganth_schleim. Vor der Reife enthält der Same in der Samenschale +Stärke+, Spuren finden sich auch bisweilen im reifen Samen (s. oben und Fig. 113 rechts). Quittensamen liefern (ebenso wie die Rinde und die jungen, frischen Triebe) bei der Destillation mit Wasser ein blausäurehaltiges Destillat (~Stockmann~). Die Samen enthalten, neben +Emulsin+, nur wenig (0,4%) +Amygdalin+ (~Jouck~, ~Lehmann~ gibt 1,2-1,5% an), das vollständig mit dem der Mandeln übereinstimmt. ~Wicke~ gab bereits 1851 an, daß das Amygdalin in vielen Pomaceen und Pruneen (_Malus_, _Sorbus_, _Amelanchier_, _Cotoneaster_, _Crataegus_, _Cydonia_, _Eryobotrya_, _Prunus_) vorkomme, hatte aber reines Quittenamygdalin nicht in Händen. Die Samen enthalten in der Samenschale eine +gerbstoffartige Substanz+ und im Samenkern 15% Öl (~Brand~). Das Öl der Samen enthält als Hauptbestandteil Myristicinsäure, C₁₄H₂₈O₂, dann eine mit Isopentadecylsäure isomere und eine ungesättigte, flüssige Säure, C₁₈H₃₄O₂ (= C₁₇H₃₂OH.COOH), sowie 4,1% Glycerin (~R. Herrmann~). ~Hauke~ gibt die +Asche+ der Samen zu 4,45% an, ~Warnecke~ zu 3,55%. Die Asche ist reich an Phosphorsäure (42%, ~Souchay~). =Lit.= +Schleim+: ~Pereira~, Heilmittellehre (dort Reaktionen des Schleims). -- ~Bostock~, Nichols. Journ. VIII, 31. -- ~C. Schmidt~, Lieb. Ann. 51, 29. -- ~Kirchner~ u. ~Tollens~, Lieb. Ann. 175. -- ~Mulder~, Journ. pr. Chem. 37. -- ~Frank~, Pringsh. Jahrb. 5 u. Journ. pr. Chem. 95. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Gans~ und ~Tollens~, Lieb. Ann. 249 (1889), 245. -- ~Schulze~ u. ~Tollens~, Ebenda 271 (1890). -- ~Tollens~, Kurz. Handb. d. Kohlenhydr. 2. Aufl. 1898. -- ~Pohl~, Zeitschr. phys. Chem. 14 (1890), 151. -- +Blausäure+: ~W. Wicke~, Lieb. Ann. 79 (1851) und 81 (1852). -- ~Jouck~, Beitr. z. Kenntn. d. Blaus. abspalt. Glycos. Diss. Straßb. 1902. -- ~E. Lehmann~, Beitr. z. vergl. Unters. über Vork. u. Verbreit. d. Amygdalins usw. Pharm. Zeitschr. f. Rußland 1895, 352. -- +Öl+: ~R. Herrmann~, Über d. fette Öl d. Quittens. Arch. Pharm. 237 (1899), 358. -- +Asche+: ~Hauke~, Zeitschr. österr. Apoth. Ver. 1902. -- ~Souchay~, Jahresb. d. Ph. 1845, 66. +Quittensaft+ enthält nach ~Trouchon~ und ~Claude~ g in 100 ccm: Invertzucker 7,59, Gesamtsäure auf Weinsäure berechnet 0,96, durch Alkohol fällbare Stoffe 0,46, Asche 0,42. Quitten enthalten keine Saccharose, wohl aber +Weinsäure+. Nach ~Riekher~ soll neben Zucker, Pektin und Gummi 3,5% +Apfelsäure+ darin vorkommen. ~Lancaster~ erhielt 1,6 g +Bleimalat+ aus 453 g Frucht. Die Säuren der Quitte bedürfen einer erneuten Untersuchung. ~Wöhler~ erhielt bei der Destillation reifer Quitten mit Wasser einen +Oenanthäther+, ~R. Wagner~ hält jedoch das Arom für Pelargonsäureäthylester. Künstliche Quittenessenz besteht aus Äthylpelargonat. Das Pektin der Quittenfracht ist stark rechtsdrehend (α_{D} = +188,2) und enthält ein Galaktoaraban. Es gibt bei der Hydrolyse Arabinose und mit Salpetersäure Schleimsäure. Der Pentosangehalt der wilden Quitte beträgt 3,23, der der Kulturquitte 1,78% der Trockensubstanz (~Wittmann~). =Lit.= ~Wöhler~, Lieb. Ann. 41, 239. -- ~Lancaster~, Am. journ. pharm. 31, 198. -- ~Truchon~ et ~Claude~, Journ. pharm. chim. 13 (1901), 171. -- ~Javillier~, Ebenda 9 (1899), 513. -- ~König~, Nahrungs- u. Genußm. -- Über das Pektin der Frucht vgl. oben S. 280 unter Pektino-Membranine. =Anwendung.= In der Volksmedizin (als Aphrodisiacum, zur Erzeugung kluger Kinder) und im Volksaberglauben (Liebeszauber) spielt die Quitte von jeher eine (allerdings beschränkte) Rolle. Die Nützlichkeit der Quitte schildert schon der alte Vers: Auch die rauhen Quitten hegen zum vergnügen unsrer Brust wenn wir ihr gewächs erwägen nahrung, kühlung, nutz und lust (~Brockes~). «Quittenkern in Rosenwasser geweicht geben ein glattes feines sälblein zu allerhand brand und breune der zungen, darmit bestrichen», steht in ~Bocks~ Kräuterbuch. Unter den schleimigen Mitteln des ~Hippokrates~ steht _Cydonia_ (κυδωνέα). Er benutzte also wohl schon die Samen. Nach ~Matthioli~ war Quittensamen in Spanien Antidot gegen _Helleborus_. Auch bei ~Athenaeus~ (Deipnosophist. III, 21) wird die Quitte als Gegengift genannt. Quittensamen sind seit langer Zeit ein Bestandteil der chinesischen Materia medica. Die Benutzung ihres Schleims scheint vornehmlich von den Arabern ausgegangen zu sein. Doch ist die Benutzung der schleimigen Samen wohl ein auf die hochasiatische Heimat des Baumes zurückzuführender Brauch (~Flückiger~). In Turkestan hat sie noch jetzt beträchtliche Ausdehnung. In dem Liber fundamentorum des ~Abu Mansur Muwaffak~ (X. Jahrh.) wird die Benutzung des Samen der Safardschal bei Husten erwähnt. Im Altertum war ein fettes Quittenöl (durch Enfleurage oder Maceration der Früchte mit Öl bereitet) als Arzneimittel beliebt (~Dioskurides~). Auch ~Mesuë~ kennt ein zunächst durch Maceration, dann durch Auskochen mit Öl bereitetes _Ol. Cydoniorum_, das dann ~Cordus~, der ja vielfach noch auf ~Mesuë~ fußt, in sein Dispensatorium aufgenommen hat. ~Dioskurides~ nennt eine Menge Krankheiten, bei denen Quittenfrüchte innerlich und äußerlich anzuwenden sind. Man bereitete aus ihnen einen Wein und ein κυδωνόμελι sowie sog. Honigäpfel (melimela). In dem von ~Cordus~ aufgenommenen _Syrupus de Absinthio maior_ des ~Mesuë~ findet sich _Succus Cydoniorum_. In der Pharmacia simplicium des ~Corbeius~ (1656) werden eine Menge Krankheiten genannt, die durch Quitten zu heilen sind. In Indien, wo der Same Handelsartikel ist, ist er außerordentlich beliebt in der Volksmedizin. Der Schleim wird bei Husten und Darmleiden benutzt, äußerlich bei Verbrennungen der Haut. Bei den Arabern sind auch Blätter, Blüten und Rinde des Baumes Hausmittel. Die persischen Karabádins (Grabadins [I, S. 599], d. h. Pharmakopoëen) kannten Konserven aus Frucht und Blüte (Pharmac. indica). ~Geiger~ führte (Handb. d. Pharm. 1830) folgende Quittenpräparate an: Saft, Sirup, Mus (Roob, Pulpa), Marmelade, Quittenbrod (_conditum s. panis c._), _Extr._ und _Tinct. ferri cydon._ und _Mucilago sem._, endlich Quittenliqueur und Quittenwein. Die _Poma Cydoniorum_ (_Cydonia exsiccata_), das _Extr. ferri cydoniati_, der _Syr. Cydoniorum_ (nach Art des Kirschsaftes dargestellt) und der frische Quittensaft sind noch jetzt, besonders in Frankreich und Österreich, beliebt. Der Schleim wird noch heute bei Hautleiden und oft auch als Zusatz von Augenwässern benutzt. Er findet auch in der Zeugdruckerei Anwendung. Eine Abkochung der Samen dient in Indien als Tonicum und Antidyssentericum (~Dymock~, Dict. econ. prod. u. and.). =Verfälschungen.= Als solche werden besonders die Samen der +Birne+ und des +Apfels+ genannt. In der Form sind sie ähnlich, aber gerundet, niemals unregelmäßig abgeplattet, da sie in dem Fruchtfache isoliert oder zu zweit liegen und daher auch niemals miteinander verklebt sind. Sie umgeben sich auch in Wasser nicht mit einer breiten Schleimhülle, sind sehr wenig schleimig und +glänzend+ dunkelbraun. Ihre Schleimepidermis ist sehr schmal, die Zellen sind kaum radial gestreckt. +Rosinenkerne+ besitzen eine ganz andere Form und sind leicht kenntlich. ~Hager~ gibt als Verfälschung (bis 50%) «die Schale einer Frucht von brauner Farbe oder braun gefärbt und schwach weißlich bestäubt» an. Neuerdings sind in +Amerika+ kleine Fragmente getrockneter Quittenfrüchte als Verfälschung beobachtet worden. =Geschichte.= Die goldenen Äpfel (χρύσεα μῆλα, χρυσομήλα) der Hesperiden und der Atalante, «der der Aphrodite geweihte, in Mädchen- und Liebesspielen aller Art und zu bräutlichen Gaben dienende Apfel» (~Hehn~), der Apfel des Paris, der Erisapfel, das alles waren wohl «idealisierte» Quitten. Auf die Angabe in des ~Ben Sira~ Alphabet (XI. Jahrh.), daß der Garten ~Nebukadnezars~ auch Quittenbäume enthalten habe, ist nichts zu geben, obwohl die Pflanzenliste älter ist (~Löw~). Dem semitisch-ägyptischen Kulturkreise scheint die Quitte in älterer Zeit fremd geblieben zu sein (~Schrader~). In der Bibel fehlt die Quitte (bei dem goldenen Apfel in den Sprüchen handelt es sich vielleicht nicht einmal um eine Frucht, sondern nur um ein Ornament) und das Althebräische hat keinen Namen für Quitte, erst im Aramäischen finden wir einen solchen, nämlich _ỉ_spargᵉlîn (~Löw~). Da die Griechen die Quitte μήλον κυδώνιον, d. h. Apfel von Κύδων (untergegangene Stadt, wahrscheinlich unweit des heutigen Canea auf Creta) nannten, erhielten sie sie wohl von Creta, wo sie entweder ursprünglich zu Hause oder frühzeitig aus Kleinasien eingeführt war. ~Isidor~ bemerkt im Etymologicon: «Malus Cydonia nomen sumpsit ab oppido, quod est in insula Creta, de qua dicere solent, urbium Cretensium matrem Cydoniam, ex cuius pomo Cydonitum conficitur» -- auch der Talmud spricht von kretensischen Äpfeln. Jedenfalls wurde sie in Creta, dem Eldorado der Arzneipflanzenkultur des Altertums, besonders eben bei Κύδων (κυδώνεια -- κυδώνιος = kretisch) in großem Umfange kultiviert. (Jetzt fehlt sie auf Creta). Die Griechen lernten sie schon in sehr früher Zeit kennen, denn sowohl der Dichter ~Alkman~ (650 n. Chr.), wie der Italiot ~Ibycus~ (VI. Jahrh. n. Chr.), wie der Sikuler ~Stesichoros~ (c. 550 n. Chr.) erwähnen die Quitte aus Lydien bzw. aus Rhegium und Sizilien (bei ~Alkman~ heißt sie κοδύμαλον). Die Kulturquitte muß also schon im VII. Jahrh. den griechischen Kolonisten in Kleinasien, Sizilien und Unteritalien bekannt gewesen sein (~Hoops~). Die Quitte war wegen ihres Duftes und ihrer zahlreichen Samen bei den Griechen Symbol der Schönheit, Liebe und Fruchtbarkeit und der Aphrodite heilig. ~Solons~ Gesetz verordnete, daß die Braut, ehe sie sich ins Brautgemach begab, eine Quitte essen mußte, um sich unter den Schutz der Aphrodite zu stellen (~Plutarch~). Und auch bei den Deutschen wurde sie später Sinnbild der Fruchtbarkeit und einer glücklichen Ehe (~Aigremont~). Bei den Liebes- und Hochzeitssitten spielt sie in den Balkanstaaten, Dalmatien und Siebenbürgen noch jetzt eine Rolle. Auch zu den Römern kam die duftige Quitte, die sie _malum cotoneum_ (_m. aureum_) nannten, frühzeitig und spielte bei ihnen im Kultus und Volksleben eine große Rolle. ~Plinius~, der eine Menge Krankheiten nennt, die die Quitte heilt, sagt, man bewahre sie wegen ihres Duftes in den Besuchszimmern auf und das ist heute noch Sitte in Italien. Zur Zeit ~Galens~ kam spanische Marmelade (= Quittengelee, s. oben) nach Rom. Das _malum cydonium_, findet sich im Edikt ~Diocletians~ (s. oben) und alle Scriptores rei rusticae von ~Cato~ bis ~Palladius~ (I, S. 574) widmen ihr ihre Aufmerksamkeit. Wir finden sie denn auch auf den pompejanischen Wandgemälden (I, 575) und auf den Wandbildern der Villa Livia in Primaporta (~Möller~, D. Bot. in d. Fresk. d. Villa d. Livia. Mitt. d. kais. Archäolog. Inst. Rom 1890). _Cydonia mala_ stehen auch bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 577) und werden bei ~Athenaeos Naucratites~ (III. Jahrh. I, 574) erwähnt. Die Römer brachten sie dann mit den übrigen Obstbäumen nach den nördlichen Provinzen des Reiches. Doch fehlt es an alten Funden daselbst, obwohl die Samen nicht vergänglicher sind als die des Apfels. «Der althd. Name kutina, dem wahrscheinlich eine lateinische Form cudonia oder codonea = germ, kudinjō (?) zugrunde liegt, deutet wegen der Verschiebung von d zu t auf Entlehnung in den ersten Jahrhunderten» (~Hoops~). Den Angelsachsen scheint die Quitte erst auf britannischem Boden bekannt geworden zu sein. Sie wird bereits im Corpus-Glossar erwähnt. Nördlich der Alpen wird sie sich dann wohl besonders durch die Benediktiner (I, S. 619) eingebürgert haben. Wir finden die cotonarios im Capitulare ~Karls~ (I, S. 620) und dem Breviarium, im St. Galler Klosterplan (hier als: guduniarius I, S. 622), bei der ~Hildegard~, ~Albertus Magnus~ und in dem Opus ruralium des ~Crescenzi~ (I, S. 678). Auch die spanische Landwirtschaft kennt sie. Im Kalender des ~Harib~ (I, S. 612) steht beim September: apparent citonia. Die Zeit der Einführung der Quitte nach England läßt sich nicht mehr feststellen. Gebackene Quitten werden (nach ~Hanbury~) 1466 gelegentlich der Installation des Erzbischofs von York, ~Nevill~, erwähnt (~Leland~, De reb. brit. collectan. VI [1774] 5). Die _Semina cytoniorum_ wurden von ~Mesuë~ für viele Sirupe, wie den _Syrupus de Prassio_, den _Syr. de Jujubis_, den _Syr. violarum_ und _Syr. de Hyssopo_ benutzt, die alle ~Cordus~ in sein Dispensatorium (I, S. 795) aufgenommen hat. In dem _Empl. diachylon_ aber, das in seinen verschiedenen Vorschriften (bei ~Mesuë~ und ~Cordus~) alle möglichen Schleime (von _Linum_, _Psyllium_, _Althaea_, _Malvawurzel_, _Fenum graecum_, _Ficus_, _Passulae_ (!), _Ulmusrinde_) enthält, fehlt der _Cydonia_schleim. ~Bock~ empfiehlt die Samen mit Rosenwasser ausgezogen bei Bräune. Im Frankfurter Catalogus von 1582 steht: Cydonia mala de Bengala condita, eine frembde Art der eyngemachten Kütten aus India -- was darauf deutet, daß auch eingemachte indische Quitten damals in Benutzung waren -- in der Taxe von Eßlingen 1571 (I, S. 816): _Sem. citoniorum_. Auch in der ~Berlu~-Liste (1724, vgl. I, S. 951) stehen _Sem. cydon_. =Lit.= ~Hanbury~, Pharmacogr. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- Pharmac. indic. -- ~Hehn~, Culturpfl. -- ~Koch~, Bäume u. Sträucher d. alt. Griechenl. 1879. -- ~Stesichoros~ in Poetae lyrici graec. ed. Bergk. -- ~Löw~, Aramäische Pflanzennamen. -- ~De Candolle~, L’origine des pl. cult. Semen Psyllii. von _Plantago Psyllium_ L., die +Flohsamen+ (bei den Griechen: Kynops, Psyllion, Buprestis, bei den Römern: Pulicaria) sind medizinisch kaum noch in Anwendung. Der auch hier als Schleimepidermis auf der Samenschale vorkommende Schleim (Xylin, ~Bauer~) soll der Formel C₃₆H₅₈O₂₉ entsprechen. Analyse auch bei ~Schmidt~ (Lieb. Ann. 51). Er liefert bei der Hydrolyse mit 1,5% Schwefelsäure neben Zellulose [~Kirchner~ und ~Tollens~, Lieb. Ann. 175 (1875), 205]. bis 108,3% Glukosen, mit Salpetersäure aber keine oder nur sehr wenig Schleimsäure (~Braconnot~). Flohsamenschleim wird wie Leinsamenschleim in der Zeugdruckerei, in der Buntpapierfabrikation, als Appreturmittel für verschiedenartige Stoffe verwendet (~Valenta~). Auch die in Indien in hohem Ansehn stehenden +Ispaghúl-Samen+ oder Spogel seeds (arab. bazre qatúná) von _Plantago decumbens_ ~Fork.~ (_P. Ispaghula_ ~Roxb.~), die sich sogar in der Pharmakopoea indica (1868) fanden, enthalten eine Schleimepidermis auf der Samenschale (vgl. ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia p. 490). 2. Schleimendosperme. Samen mit +Schleimendosperm+, wie ich 1888 in der Angewandten Anatomie diese Gruppe von Nährgeweben genannt hatte, finden wir besonders bei den Leguminosen (_Trigonella_, _Ceratonia_, _Gymnocladus_, _Cassia_, _Schizolobium_, _Gleditschia_, _Tetragonolobus_, _Indigofera_, _Medicago_, _Trifolium_, _Colutea_, _Genista_). Es handelt sich hier nicht, wie ~Haberlandt~ meinte, um «Quellschichten» oder «innere Quellapparate», sondern um Reservebehälter. Denn, wie Versuche, die ich mit ~Nadelmann~ 1889 angestellt habe, gezeigt haben, wird der Schleim, der hier ebenfalls in Form sekundärer Membranverdickungsschichten auftritt, und zwar für gewöhnlich schon als solcher angelegt wird, bei der Keimung gelöst. Dadurch treten diese Endosperme an die Seite der Endosperme bei denen Reservezellulose als Reservestoff auftritt (Palmensamen), mit denen sie durch mancherlei Übergänge (z. B. die Samen der Strychnaceen) verbunden sind, und wir werden auch +chemisch+ mancherlei Beziehungen zwischen diesen beiden Gruppen finden. Ich habe denn auch oben im Kapitel Reservezelluloso-Membranine die Leguminosensamen mit erwähnt. ~Bourquelot~ und seine Mitarbeiter fanden in der ganzen Gruppe der «Albumens cornés» (vornehmlich der Leguminosen) +Mannogalaktane+ (Galaktine, ~Müntz~), d. h. sie erhielten bei der Hydrolyse der Endosperme Mannose und Galaktose. So erhielten ~Bourquelot~ und ~Hérissey~ z. B. bei der Hydrolyse des Schleimendosperms von _Ceratonia Siliqua_ (S. 145) einen reduzierenden Zucker, aus dem sie 72,56% Mannose und 20,37% Galaktose in kristallinischer Form isolierten; in dem Hydrolysezucker des Luzernenendosperms war 51,38% Mannose und 49,49% Galaktose, in dem der _Strychnossamen_ 11,02% Mannose und 35,45% Galaktose enthalten und die gleichen Zucker erhielt ~Goret~ bei _Gleditschia_, _Medicago_, _Melilotus_, _Lotus_ und _Indigofera_. Jedenfalls besitzen also die Schleime der Schleimendosperme den Charakter von Polysacchariden. Der Biolog würde sie mit den Reservezelluloso-Membraninen zusammen abhandeln, pharmakologisch-pharmakognostisch gehören sie aber neben die Lein- und Quittensamen, aber in eine besondere Abteilung, da sie ihren Schleim erst nach dem Pulvern hergeben, die Samen mit Schleimepidermen dagegen schon durch Schütteln der unzerkleinerten Samen mit Wasser. =Lit.= ~Tschirch~, Angew. Pflanzenanatomie S. 204. -- ~Nadelmann~, D. Schleimendosperme der Leguminosensamen. Ber. d. d. bot. Ges. 1889, 248 u. Pringsh. Jahrb. 21 (m. Taf.). -- Schleimendosperm des _Johannisbrot_: ~Effront~, Compt. rend. 125 (1897), ~Marlière~, La cellule 13 (1897), ~van Ekenstein~, Compt. rend. 125 (1897), 719, ~Bourquelot~ et ~Hérissey~, Journ. pharm. chim. 10 (1899), 153 u. 249 und Compt. rend. 129 (1899). -- _Cassia fistula_: ~Bourquelot~, Vol. jubilaire de la soc. de Biologie 1900, 388. -- _Luzerne_: ~Müntz~, Ann. chim. phys. (5) 26 (1882), 121 und (6) 10 (1887), 566, ~Bourquelot~ et ~Hérissey~, Journ. pharm. chim. 11 (1900). -- _Gleditschia_, _Medicago_, _Lotus_, _Melilotus_, _Indigofera_: ~Goret~, Et. chim. et. phys. de quelques albumens cornés d. graines léguminos. Thèse Paris 1901. -- +Strychnaceen+: ~Bourquelot~ et ~Hérissey~, Journ. pharm. chim. 12 (1900). -- _Trigonella_ s. w. u. Semen Fenugraeci. =Syn.= Sem. Faenugraeci oder Foenugraeci, Sem. Faeni graeci, Sem. Foeni graeci, Sem. Trigonellae -- Bockshorn (so schon bei ~Bock~ und ~Cordus~), Bockshornklee, Kuhhornklee, Griechisches Heu, Fänne-Zwock -- trigonelle, fenugrec (franz.) -- trigonel, fenugreec (engl.) -- hoornklaver (holl.) -- trigonella (ital.) -- τριγονέλλη (n.-griech.) -- méthi (sansk., hind.) -- hulbah (arab.) -- shamlit (pers.) -- lu-pa, hu-lu-pa (chines.). Bei ~Theophrast~ (Hist. u. caus. plant.): βούκερας, bei den späteren Griechen auch βουκέριν, bei ~Dioskurides~: τῆλις (bei d. spät. Griech. auch τίλις, τύλη; τῆλις auch noch bei ~Alexander Trallianus~), im Edict Diocletians (I, S. 569): τῆλις βούκερας. Weitere Namen bei ~Langkavel~ und ~Dioskurides~ in []. Im Mittelalter auch aspaltea, brindelia. =Etym.= Fenum (auch faenum oder foenum) = Heu, Fenugraecum also = griechisches Heu. -- Trigonella von τρίγωνος = dreieckig, wegen der dreieckigen Blumenkrone (~Kanngiesser~). Vielleicht hat ~Linné~, der den Namen zuerst in dem Hortus upsalensis benutzt, eher an die Blumenblättchen (?) oder, wie +mir+ scheint, an die Blätter gedacht. -- ~Grassmann~ bezieht auch Zwock auf die keilförmigen Fiederblättchen. Nach ~Flückiger~ bezieht sich der Name auf die dreieckigen Blumenblätter von _Trigonella ruthenica_ L. Der Name Foenum Graecum wohl zuerst bei ~Porcius Cato~ (De re rustica XXVII, vgl. I, S. 572); bei ~Columella~ (I, S. 573) wird Siliqua (bei ~Plinius~: Silicia) als synonym mit faenum graecum (vulgär lat.: fenum graecum) bezeichnet, was darauf deutet, daß die Pflanze viel kultiviert wurde (Katexochenbegriff!), denn es waren den Römern ja viele Hülsenfrüchte bekannt. Bei ~Caelius Aurelianus~ (III. Jahrh. n. Chr.), sowie den Spätlateinern findet sich denn auch die zusammengezogene Form fenugraecum, im Deutschen volksetymologisch umgebildet: fine grethe (daraus dann wieder: schöne Margret, schöne Marie). Im Gothaer Arzneibuch (I, S. 680) findet sich fenum grotum neben fenum grecum, in Inventaire ~Lefort~ (I, S. 804) fin ogre (~Dorveaux~). Graecum nach der Herkunft, erhalten in griechisch Heu (gresches houw, gekeshew, krichishew, kriechshöwe, crischowe); römischer Klee deutet, da im Althd. als Römsklee(oder diolde) nachgewiesen, auf die Einführung aus dem Süden. -- Bockshorn wegen des unangenehmen Geruches und der hornartigen Form der Frucht. Auch der Name Siebengezeit (Siebengezide Ort. san., im XV. Jahrh. Sybengetzeyt, Zeytkraut [XVI. Jahrh.], Stundenkraut) soll nach ~Tabernämontanus~ auf den (siebenmal im Tage verschwindenden und wiederauftretenden) Geruch anspielen. Der holländische Name bedeutet Hornklee. Und an Horn knüpfen an: bukeros (= Ochsenhorn), aigokeros (= Ziegenhorn), keraïtis (= hornähnlich), kallikrea, Kuhhorn (bei Bock) u. and. =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Trigonella Foenum-graecum L.= [Sp. plant. ed. I (1753) p. 777] (Foenum graecum officinale). +Leguminosae+, Papilionatae -- Trifolieae, Eutrigonella, Gladiatae. =Beschreibung der Stammpflanze.= Einjähriges Kraut mit einfachen oder vom Grunde verzweigten, 20-60 cm hohen, gegen oben hin behaarten, runden Stengeln und zweizeiligen, dreizähligen Fiederblättern, deren Endblättchen größer und länger gestielt ist als die Seitenblättchen. Blättchen kahl, umgekehrt eiförmig, im oberen Teile mit spitzen Zähnen besetzt. Nebenblätter zart, zweispitzig. Die hermaphroditen, zygomorphen Schmetterlingsblüten sitzen einzeln oder gepaart in den Achseln der oberen Laubblätter, der gamosepale, röhrenförmige Kelch ist in fünf gleiche lanzettliche Zipfel geteilt. Die gelblich weiße Corolle hat eine oblong-umgekehrt-eiförmige, tief ausgerandete Fahne, einseitig geöhrte Flügel und einen kurzen Kiel. Die Staubfadenröhre ist oben offen und wird durch das freie Stamen geschlossen. Die Narbe ist polsterförmig. Die aufrechte +Frucht+ erreicht 13 cm Länge und ist 4-5 mm breit, lineal, sehr +lang schnabelförmig zugespitzt+, meist nach unten flach +hornförmig+ gekrümmt und seitlich zusammengedrückt. An der Spitze der Frucht findet man bisweilen die Reste der Corolle. Die Pflanze wächst wild in Punjab, Kaschmir (~Baker~), Mesopotamien und Persien (~Boissier~, Flor. oriental.), sowie Kleinasien (?). Verwildert findet sie sich in Griechenland, Italien und Spanien, wohl auch in Ägypten und Kleinasien auf Schuttplätzen, «überhaupt in der Nähe menschlicher Wohnungen oder Kulturstätten als Flüchtling». Blüht im Juni-Juli. =Lit.= ~Luerssen~, Mediz. pharm. Bot. -- ~Battandier~, Bull. soc. bot. France 1884, 378. -- +Abbild.+: ~Berg-Schmidt~, Atlas. 2. Aufl. t. 52 (dort die florist. Literatur). -- ~Bentley-Trimen~, Medic. plants. t. 71. -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpflanz. t. 155. Auch schon im Ortus sanitatis, Mainz (vgl. I, Fig. 303), bei ~Pomet~ u. and. =Pathologie.= Auf _Trigonella foenum graecum_ sind unseres Wissens nur Parasiten bekannt, die Stengel und Blätter befallen: _Uromyces Anthyllidis_ (~Grev.~), _Uromyces Trigonellae_ ~Pat.~ und _Erysiphe Polygoni_ ~Dc.~ (~Ed. Fischer~). =Kultur und Handel.= _Trigonella_ wird jetzt in +Marokko+ (Ausfuhrhafen besonders Mazagan, dann auch Mogador), dann in +Ägypten+ (und Abessynien) und +Indien+ (hier in ziemlicher Menge, Ausfuhrhafen: Bombay), sowie China kultiviert, weniger in Südfrankreich (Montpellier), der Schweiz, +Deutschland+ (Elsaß, Thüringen: Erfurt, Großengottern, Mühlhausen, Cölleda, dann im Vogtland und in Söflingen b. Ulm, früher zwischen Nürnberg und Bamberg), +Mähren+ (Znaim) und Italien (in Ligurien, Toscana, Sizilien und Sardinien kultiviert und verwildert, ~Ravasini~). Sie gedeiht noch bis 70° n. Br. in Norwegen (~Schübeler~). Ich sah sie auch in Bauerngärten. Allein in Bombay und Madras waren (1889) 1358 acres mit _Fenugreec_ bestellt (~Watt~, Dict.) und 1890 kamen aus den höheren Inlandprovinzen c. 14000 cwts. nach Bombay. Die Ausfuhr Indiens von _Fenugreec_ betrug 1906/07: 43941, 1907/08: 27285 und 1908/09: 9627 cwts., geht also zurück. Für indischen Samen ist Hamburg Haupteinfuhrshafen. =Morphologie.= Die Früchte werden ausgedroschen. Sie enthalten eine wechselnde Menge an langen Funiculis befestigte Samen (5-20, meist 5-12). Eine Anzahl von Samenanlagen pflegt unentwickelt zu bleiben oder bald zu verkümmern. Die hellzimtbraunen oder gelbbräunlichen, mit der Lupe betrachtet feinhöckerig erscheinenden, Samen sind vierseitig-prismatisch oder rhombisch-rautenförmig, 3,5-5 mm lang und 2-3 mm breit (die chinesischen kleiner, die indischen größer), sehr hart und entweder glatt oder wenig runzlig. Bei längerem Verweilen in Wasser quellen die Samenkerne auf das Mehrfache und sprengen die Schale, die sich nun leicht ablösen läßt. Die Quellung erfolgt im Schleimendosperm. Durch eine tiefe Furche wird der Same in zwei Hälften geteilt, eine kleinere dreieckige, die Radicula enthaltende und eine größere mehr trapezförmige, in der die Cotyledonen und das Schleimendosperm liegen. An der Spitze der kleineren Hälfte liegt das Hilum. Das Lupenbild des aufgeweichten, in der Mitte durchschnittenen Samens (Fig. 114, 2) läßt in dem schmalen, runden Abschnitt die Radicula in dem breiteren ovalen die Cotyledonen, eingebettet in Schleimendosperm, erkennen. Während die Testa nur c. 170 mik dick ist, erreicht das gequollene Endosperm eine solche von 680-720 mik. Im trockenen Samen sind beide etwa gleich dick (Fig. 114, 1). [Illustration: Fig. 114. _Trigonella Foenum-graecum._ 1 Same trocken, querdurchschnitten. 2 Same aufgeweicht, querdurchschnitten. 3 Same längsdurchschnitten, Keimling herausgelöst. 4 Same längsdurchschnitten mit Keimling. 5 Same von außen. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anatomie.= Die Samenschale ist bedeckt von einer von der Cuticula bedeckten Schicht +Palissadensklereïden+, die etwa 65-80 mik hoch sind und an der inneren Seite ein weites Lumen besitzen, das sich nach außen stark verengert (Fig. 115). Das Lumen ist umgeben von einer derben, auf polarisiertes Licht stark reagierenden, im äußeren Teile getüpfelten Zellulosemembran, die nach außen hin zapfenartig in eine helle Schicht vorspringt, die indifferent gegen polarisiertes Licht ist, sich mit Jod graublau färbt, mit Jodschwefelsäure nur schwach auf Zellulose reagiert, sich in Kali löst und die wohl aus einer «gallertigen Zellulosemodifikation» besteht. Die Zapfenenden der inneren Membranschicht dringen ungleichweit nach außen vor und bilden da und dort bis zur Cuticula vordringende Gruppen, die die feinen Höcker der Samenschale (s. oben) bedingen. Die «Lichtlinie», die ich lieber «+Lichtzone+» nennen möchte und die sich bei der Sklereïdenschicht vieler Leguminosensamenschalen findet, verläuft hier ziemlich tief innen (Fig. 115, Ll) und ist relativ breit. Der Inhalt der Palissadenzellen ist körnig, färbt sich mit Jod gelb, gibt Gerbstoffreaktion mit Eisenchlorid und Osmiumsäure. Unter der Palissadenschicht liegt eine Schicht +Säulenzellen+ (T-Zellen, Träger-, Sanduhr-, Spulenzellen), die eine, durch breite, besonders auf dem Flächenschnitt hervortretende, Längsstreifenverdickungen ausgezeichnete, Membran besitzen und große Interzellularen zwischen sich lassen. An den Flächen des Samens sind diese Zellen niedrig, am Radicularende hoch und dort, wie bei vielen Papilionaceensamen, knochenförmig. Dann folgt die, im unreifen Samen transitorische Stärke enthaltene, +Nährschicht+ (vgl. oben S. 321). Sie ist sehr verschieden mächtig, auch verschieden stark obliteriert. Die äußeren Schichten pflegen keine Obliteration zu zeigen. Am Hilum und zwischen diesem und der Chalaza hat die Samenschale einen abweichenden Bau. Neben der Mikropyle, gegen die die Spitze der Radicula hin gerichtet ist, liegt in der Mulde eine doppelte Palissadenreihe und über der Raphe sind die Palissadensklereïden höher und die Säulenzellen fehlen. Unter der Ansatzstelle des Funiculus liegt, wie bei vielen Leguminosensamenschalen, die +Nabelspalte+ und eine Gruppe von Tracheïden (+Tracheïdeninsel+, ~Tschirch~) und unter dieser ein braunes Parenchym, welches die auch äußerlich hervortretende braune Farbe der ganzen Partie um das Hilum bedingt. Von der Tracheïdeninsel läuft in einer wenig hervortretenden Schwiele die kurze Raphe zu der äußerlich am Samen wenig hervortretenden Chalaza. Innen liegt der Testa ein, besonders an der Spitze der Radicula hervortretendes, Häutchen an, das wohl der Rest des Perisperms ist. [Illustration: Fig. 115. _Trigonella Foenum-graecum._ Querschnitt durch die Samenschale und den Rand des Schleimendosperms. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Das +Endosperm+ ist bedeckt von einer einreihigen Aleuronschicht (Fig. 115, 5), deren Zellen einschlußfreie Aleuronkörner enthalten. Die Hauptmasse besteht aus Zellen, die eine zarte, aus Zellulose bestehende Mittellamelle erkennen lassen, im übrigen aber außerordentlich dicke, sekundäre Schleimmembranen besitzen, die sich mit Jodschwefelsäure nicht bläuen, also aus echtem Schleim bestehen. Sie zeigen bei geeigneter Behandlung Schichtung. Beim Keimen werden sie gelöst. Gegen die Cotyledonen ist das Endosperm durch ein Quellgewebe abgeschlossen. Die +Cotyledonen+ führen an der einander gegenüber liegenden Seite 2-4 Reihen Palissaden und sind an der Grenze dieser und des Merenchyms von zarten Procambiumsträngen durchzogen. In der +Radicula+ liegt ein Kranz von Procambiumsträngen, in denen da und dort zarte Gefäße sichtbar sind. Die Zellen enthalten, eingebettet in +Ölplasma+, kleine +Stärkekörnchen+ und zahlreiche +Aleuronkörner+, von denen die größeren, 10-20 mik messenden, ein Kristalloid enthalten. Die Globoide sind nicht in Körnerform, sondern als Balkengerüst ausgebildet (Details in ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas). [Illustration: Fig. 116. _Trigonella Foenum-graecum._ Succedane Flächenschnitte durch die Randschichten des Samens, besonders die Samenschale. Die Zahlen 1-5 bezeichnen die korrespondierenden Schichten in Fig. 115. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Das +Pulver+ (nur durch Mahlen herzustellen) ist charakterisiert durch die Elemente der Samenschale (Fig. 116) -- besonders charakteristisch sind die Säulenzellen --, die Schleimzellen und das Aleuron und Öl führende Gewebe des Keimlings. Haare fehlen. Stärke ist nur in geringer Menge vorhanden. Form, Bau und Größe der Aleuronkörner bieten gute diagnostische Hilfsmittel (Abbild. des Pulvers in ~Koch~, Atlas d. Drogenpulv. IV. t. 2). =Lit.= ~Schleiden~, Über d. Album. bes. d. Leguminosen 1838. -- ~Sempolowski~, Beitr. z. Kenntn. d. Baues d. Samensch. Diss. Leipzig 1874. -- ~de Lanessan~, Struct. d. graines du Trig. F. gr. Bull. soc. Linn. Paris 1877. -- ~Godfrin~, Etud. histolog. s. l. tégum. sém. d. Angiosp. Soc. sc. Nancy 1880. -- ~Scrobischewski~, Embryogénie d. Papilionac. Congr. internat. de Bot. Petersb. 1884. -- ~Godfrin~, Anat. comp. d. cotyl. et de l’album. Ann. sc. nat. (6) 19 (1884) 5. -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie Fig. 126, 193 und ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas t. 5. -- ~Nadelmann~, Schleimendosperme, Pringsh. Jahrb. 21 (dort die Keimungsgeschichte) u. Ber. d. d. Bot. Ges. 1889. -- ~Lüdtke~, Beitr. z. Kenntn. d. Aleuronk. Pringsh. Jahrb. 21 (auch Dissert.). -- ~Holfert~, Nährschicht. Diss. 1890. -- Über Nabelspalte und Tracheïdeninsel vgl. auch ~Pfäfflin~, Bau u. Funkt. d. Nabelspalte u. Tracheïdeninsel. Diss. Bern 1897 (m. 2 Taf.). -- ~Hartwich~, Foenumgraecum in Realenzyklopädie V, 407. -- ~Hassall~, Food. London 1876. -- +Anat. Abbild.+ auch in Pharmacographia trad. p. ~Lanessan~ 1878, 345 (ungenau), ~A. Meyer~, Drogenkunde, S. 139 (dort auch eine Schleimzelle), ~Harz~, Landw. Samenkunde II, 631, ~Moeller-Winton~, Microscopy of vegetable foods 1906, 216, ~Moeller~, Pharmakognosie 2. Aufl., Fig. 153 und Mikroskop. d. Nahrm., ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. II, Fig. 1063, ~Gilg~, Pharmakogn. Fig. 182. =Chemie.= Aus dem wässrigen Auszuge der zertrümmerten Samen fällt Alkohol Schleim, der getrocknet 28% der Samen ausmacht (~Flückiger~). Die Schleimmembranen des Endosperms enthalten als Reservekohlenhydrat ein +Mannogalaktan+, liefern also bei der Hydrolyse +Mannose+ und +Galaktose+ (~Bourquelot~ und ~Hérissey~). Sie verhalten sich ähnlich wie das Endosperm von _Ceratonia_ (s. d.). In 2,5 g des bei der Hydrolyse erhaltenen Zuckers waren 1,249 Mannose und 0,978 Galaktose enthalten. Die Samen enthalten ferner 0,13% +Trigonellin+, C₇H₇NO₂, ein kristallisierendes, +nicht alkalisch reagierendes+, ungiftiges +Alkaloid+, das der Göttinger Apotheker ~Jahns~ als das Methylbetain der Nikotinsäure erkannte: H C / \\ / \\ HC C---CO || | | HC CH | \ // | \ // | N------O CH₃ und das ~Hantzsch~ (aus nikotinsaurem Kalium und Jodmethyl mit AgO) künstlich darstellte. Es löst sich nicht in Äther, Benzol, Chloroform, die Lösung in Wasser wird durch Eisenchlorid rötlich. Trigonellin findet sich auch in den Samen von _Pisum sativum_, _Cannabis sativ._, _Avena sativ._, _Strophanthus hispidus_ und _Kombe_ (~Schulze~ und ~Frankfurt~, ~Thoms~), von _Coffea arabica_ (~Polstorff~) und _liberica_ (~Gorter~). Daneben findet sich 0,05% +Cholin+ (Amanitin, Sinkalín, Bilineurin): CH₂.CH₂OH / (CH₃)₃≡N , \ OH das also als Trimethyloxyäthylammoniumhydroxyd aufzufassen ist und das beim Zerfall der in den Pflanzen weitverbreiteten Lecithine (Ester der Glycerinphosphorsäure mit Fettsäuren und Cholin): CH₂.O--R OH | | CH.O--R OCH₂.CH₂.N(CH₃)₃ | / CH₂.O--P==O \ OH entsteht. Es ist vielleicht auch hier ein sekundäres Produkt, denn +Lecithin+ ist in den Samen nachgewiesen. +Seminase+ scheint erst bei der Keimung aufzutreten. Der Träger des sehr eigenartigen Geruches, der sich dem fetten Öle mitteilt, ist unbekannt. Den «sehr starken Geruch nach Cumarin», den ~Harz~ erwähnt, kann ich nicht bemerken. ~Flückiger~ erhielt auch bei Wasserdestillation von 4 kg Samen keinen +Riechstoff+. Auch der Träger der Bitterkeit ist unbekannt (das Alkaloid?). In der Samenschale findet sich ein +Gerbstoff+, in ihr und in den Cotyledonen ein gelber +Farbstoff+ (s. auch unter Anwendung). Der Gehalt an +Öl+ beträgt (mit Äther extrahiert) 6% (~Flückiger~). Es enthält neben Lecithin (s. oben), wie viele Samenöle, ein +Phytosterin+ (~Heckel~ und ~Schlagdenhauffen~). Amylalkohol extrahiert auch etwas +Harz+. Der +Stickstoffgehalt+ beträgt 3,4% (= c. 22% Eiweiß), der +Wassergehalt+ 10,4%, die +Asche+ 3,7% (~Jahns~, 2,67% ~Hauke~). Sie enthält c. 25% Phosphorsäure. -- Asche des Pulvers: c. 5% (~Hauke~). =Lit.= ~Bourquelot~ et ~Hérissey~, Les hydrates de carbone de réserve des graines de Luzerne et de Fenugrec. Journ. pharm. chim. 11 (1900), 589, Compt. rend. 130 (1900), 731. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Jahns~, Ber. d. d. chem. Ges. 18 (1885), 2518, 20 (1887). 2840, Arch. Pharm. 225 (1887), 985. -- ~Hantzsch~, Ber. d. d. chem. Ges. 19 (1886), 31. -- ~Heckel~ und ~Schlagdenhauffen~, Journ. pharm. chim. 16 (1886), 213, Jahresb. d. Pharm. 1886, 15. -- Weitere Angaben über Trigonellin und Cholin in ~Oesterle~, Pharmakochemie. =Anwendung.= Daß es schon den Alten bei der Verwendung der Bockshornsamen besonders auf den Schleim ankam, ersehen wir daraus, daß z. B. ~Dioskurides~ nur das Bockshornmehl (ἄλευρον τήλεως) aufgenommen hat, das er seiner schleimigen Beschaffenheit wegen zu Umschlägen und als Erweichungsmittel empfiehlt. Es steht bei ihm neben Leinsamen, denen dieselbe Wirkung zugeschrieben wird. Auch die Verwendung des Bockshornsamen zum _Empl. diachylon spl._ und _cps._ (s. oben S. 337) beruht auf dem Schleim. Sie geht bis auf die Araber zurück (~Mesuë~). «Es läßt sich denken, daß der Zusatz von Schleim die Pflasterbildung begünstigt, indem die Verflüchtigung des Wassers dadurch verzögert wird» (~Flückiger~). Auch jetzt noch sind sie Bestandteil des _Empl. frigidum_ (_Empl. foenugraeci cps._). Und auf dem Schleim beruht auch die Verwendung in der Tuchfabrikation. Im Mittelalter figuriert der Same unter den Speisewürzen (Rezept zu einer Fischspeise des Klosters St. Gallen, IX. Jahrh., ~Dümmler~) und auch schon im Altertum wurde er in Rom in der Küche angewendet (~Apicius Caelius~, De re coquinaria, III. Jahrh.). Jetzt benutzt man die ganze Pflanze (aber noch mehr _Trigonella coerulea_) als eine der Würzen des «Kräuterkäse» (Schabzieger). In Indien sind die gerösteten Samen noch jetzt ein beliebtes Volksmittel bei Dyssenterie (~Ainslie~). Zahlreiche aromatische Faenugraec-Präparate in der alten indischen Literatur (methi modaka, svalpa methi modaca) deuten auf eine umfangreiche Anwendung (Pharmac. ind.) und auch die Araber benutzten Samen, Blätter und Öl zu den verschiedensten Zwecken. In Indien wird Bockshorn auch diätetisch als Aphrodisiacum und als Arzneimittel benutzt, die Blätter sind kühlend. Ganz junge Pflanzen werden dort (obwohl sie bitter schmecken) als Gemüse benutzt. Die Samen werden für eine Carmin-Contrefaçon benutzt und das gelbe Dekokt derselben gibt mit Kupfersulfat ein Permanentgrün (Pharmacogr. indic.). +Das fette Öl wird in Madras gepreßt und in Indien viel benutzt.+ In Europa werden die Samen besonders in der Tierheilkunde benutzt (Schweizer Viehmastpulver, Schweinefraßpulver, Holländisches Butterpulver. Vgl. auch ~Schlagdenhauffen~ et ~Reeb~, Un. pharm. 43, (1902), 97). Sie sind auch ein Bestandteil des Curry powder und der Cattle Foods. Bockshornklee ist eines der Hauptmittel ~Kneipps~. Der Samenbrei wird als «unübertreffliches Mittel» bei offenen Wunden, Geschwüren usw. gerühmt und auch die ganze Pflanze viel benutzt (vgl. ~Dinand~, Heilpflanzen [~Kneipps~]. Eßlingen 1910). Sie gelten als Carminativum und werden bei Brust- und Milzleiden gebraucht. ~Dioskurides~ läßt auch mittelst Olivenöl ein Öl aus Bockshorn bereiten, mit Kalmus- und Cyperngras-Zusatz (I, cap. 57: περὶ τηλίνον σκευασίας), das gleiche «telinum» erwähnt ~Plinius~ und noch bei den Arabern (I, S. 648) wird thilinum benutzt, ja sogar noch heute ist ein huile de fenugrec in Frankreich in Gebrauch und ist Bestandteil eines _Ungt. althaeae_. Bei ihm spielt der Schleim natürlich keine Rolle. Der Same wird gepulvert auch gegen Ungeziefer (Läuse) benutzt. =Verfälschung.= Im Pulver ist früher oft Erbsenmehl gefunden worden. Auch jetzt noch (1910) findet sich oft ein Leguminosenmehl darin oder andere Stärkesorten. =Geschichte.= Die ägyptische Medizin scheint sich des _Faenugraecum_ bedient zu haben. Wir finden šbt (šebet) in einer Vorschrift des Papyrus ~Ebers~ (ed. ~Joachim~) zur Heilung von Brandwunden und auch eine Kyphivorschrift (I, S. 473) enthält sie. Doch ist die Deutung zweifelhaft. Bei ~Dioskurides~ steht (in []) der ägyptische Name itasin. Das biblische Wort hhatzir bezieht sich wohl kaum auf Bockshorn (~Tristam~). Daß die Römer die Droge vom Osten (aus Griechenland) erhielten, zeigen die Bezeichnungen +F. graecum+, die sich in griechisch Heu erhalten hat (s. oben). Die Pflanze ist noch jetzt in Griechenland sehr häufig. Sie stammt aber weiter von Osten, aus Arabien und Indien, denn die arabische Bezeichnung hulba (holba) ist nicht nur in ganz Nordafrika, sondern auch in China gebräuchlich, und der Sanskritname methi (erst in der späteren Sanskritliteratur auftretend, ~Flückiger~) ist vielleicht das Stammwort von τῆλις (~De Candolle~). So wird man wohl Indien als ursprüngliche Heimat annehmen dürfen. Von dort hat sie sich aber frühzeitig als Kulturpflanze nach Westen verbreitet und wurde schon im Altertum in vielen Gegenden des Mittelmeergebietes kultiviert, wie wir von ~Theophrast~ und den römischen Agronomen erfahren. _Fenum graecum_ war vielleicht einer der Lotus der Alten (?) und zwar der Gruppe der Lotus, die wir die Kleegruppe nennen können (_Lotos agrios_ wohl = _Trigonella corniculata_). Sie wurde in Griechenland und Italien als Futterpflanze gebaut (griechisches Heu!). Nach ~Dierbach~ findet sich der Bockshornsame im Corpus Hippocraticum. _Faenum graecum_ steht bei ~Celsus~ (I, S. 587), ~Scribonius Largus~ (I, S. 577) und ~Plinius~, der seine Kultur beschreibt und, ebenso wie ~Galen~, ~Aretaeus~ u. a., viele Krankheiten nennt, die damit geheilt werden können. _Sem. Faenugraec._ benutzte ~Mesuë~ für den _Syr. de Marubio_, den wir noch bei ~Geoffroy~ finden. Bei ~Ibn Baithar~, der eine Menge arabische Schriftsteller nennt, die sich ihrer bedienen, heißt die Pflanze hulbat, bei ~Qutsamî~ h’olbadt (die Pflanze h’ab al-holb, ~Meyer~). In der Flos medicinae scholae Salerni (I, S. 629) findet sich _foenugraecum_ und der Same steht auch in der Alphita (I, S. 648), den Tabulae, bei ~Platearius~ und ~Serapion~ (mit Synon.: oiba). Die Salernitanische Schule übernahm also die Pflanze von den Arabern. Durch die Benediktiner kam sie nach dem Norden. Der _Fena graeca_ ist im St. Galler Klosterplan (I, S. 622) ein Beet eingeräumt und in ~Karls~ Capitulare (I, S. 620) wird der Anbau von _Fenigrecum_ verlangt. Auch die ~Hildegard~ und ~Albertus Magnus~ kannten die Pflanze. Von den Arzneibüchern des Mittelalters finden wir chriechschez heu in dem Tegernseer und Züricher (I, S. 678), sowie im Gothaer (I, S. 679). Ihr Anbau drang schon im Mittelalter über Hannover bis nach Mecklenburg. Im XVI. Jahrh. fand sich die Pflanze allenthalben in den Gärten Deutschlands und Italiens (~Gesner~) und auch in England. Im XVIII. Jahrh. war _Sem. fenugr._ sehr beliebt. ~Geoffroy~, der sie der pyrochemischen Analyse unterwarf, teilt im Tractatus de Mat. med. 1742 p. 259 eine Menge Vorschriften mit, in denen der Same oder der daraus bereitete Schleim vorkommt, meist zusammen mit anderen Mucilaginosis. ~Pomet~ bildet fenugrec. («fälschlich senegré genannt») gut kenntlich ab. =Lit.= ~Flückiger-Hanbury~, +Pharmacographia+. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Ainslie~, Mat. med. ind. -- ~Tristam~, Nat. hist. of the bible. =Paralleldrogen.= ~Dioskurides~ verwendete auch in gleicher Weise die Samen von _Trigonella elatior_ ~Sibth.~, (_T. corniculata_ L., λωτός ἄγριον?), des wilden oder Kuhhornklee, den auch die Araber beachteten (bei ~Ibn Baithar~: handakuâ elbarri). b) Schleimzellen in der ganzen Pflanze verteilt. Die Schleimmembranen der Schleimzellen von Vegetationsorganen (Wurzeln, Stengeln, Blättern) und Blüten tragen nicht den Charakter von Reservestoffen. Wir dürfen sie wohl, da sie sich wie einige Beobachtungen, besonders an _Althaea_, zeigen, auf trockenen Standorten vermehren, als +Wasserspeicher+ auffassen. Darauf deutet auch das Vorkommen in der Epidermis der Blätter, welches bei den =Fol. Buccu= (s. d.) seine extremste Ausbildung erhält und hier zu einem ganzen Wasserspeichersystem wird (Fig. 94, 9 u. 10). Rad. Althaeae. =Syn.= Rad. Bismalvae, R. Hibisci, R. Malvae visci, -- Altheewurzel, Eibischwurzel, Fliestkrautwurzel, Gilfwurz, Hilfswurzel, Schleimtee, Weiße Süßholzwurzel, Heilwurz, Heilkraut, Samt- oder weiße Pappel, große wilde Pappel oder Malve, -- guimauve officinale ou ordinaire (franz.) -- (common) marshmallow (engl.) -- weatweed, mortification root (in Amerika) -- heemst (holl.) -- malwischio, malvaccioni, bismalva, radice di altea (ital.) -- malvavisca (span.) -- ibis rot (schwed.) -- altee juuri (fin.) zilizgyőkér (ung.) -- ῥίζα ἀλθαίας, auch μολόχη, νερομολόχα (n.-griech.). khairu, khitmi-ká-jhár, khaira-ka-jhor (pers., hind., duk., bomb.). Die Wurzel heißt in Indien und Persien: rishah-i-khitmi; die Frucht: tukm-i-khitmi; die Blüten: gul khairu. -- Bei ~Theophrast~ ἄλθαια. -- +athd.+ grozpapel, -- +mithd.+ ebich, ebiche, eibisch, ibsche (so noch jetzt in Bern) ipsch, ybeske, ybesch, ybischa, ybize, ywesche -- +mnd.+ homes, witte hümst, witte malve, wilt pippeln, rockwort. Bei ~Ortolf~: weiße Pappel. -- Jetzt auch Arteawurzel und Theewurzel (Rendsburg), Eibich (Österreich), Hüffwurzel (Schlesien). -- Im Mittelalter: bismalva, eviscus, ibiscus, flos siliaci s. syriaci; dann auch: althaea ibiscus, malva ibiscus, m. silvestris, m. palustris. =Etym.= Althaea aus ἀλθαία umgebildet; dies wohl mit ἄλθος (= Heilmittel) und ἄλθομαι (= gesunden) zusammenhängend. Schon ~Dioskurides~ leitet das Wort von πολυαλθὲς (= viel heilend) ab («ὠνόμασται δὲ ἀλθαία διὰ τὸ πολυαλθὲς καὶ πολύχρηστον αὐτῆς»). Heilwurz ist also die Übersetzung von ἀλθαία. -- Eibisch (athd. ibisca, mhd. ipsch, bei der ~Hildegard~: ybischa, ibiscum, bei ~Brunschwyg~ und ~Bock~: ibisch, bei ~Fuchs~: eibesch) aus dem Lat. ibiscum, hibiscum (hibiscus bei ~Virgil~) und dem griech. ἴβισκος (ἔβισκος). «Ebich geht an Apium = Eppich und Hedera = Epich sehr nahe hinan» (~Pritzel-Jessen~). Im Corpus-Glossar steht: euiscus, ibiscus (~Fischer-Benzon~). ~Grassmann~ bemerkt von ibiscus: «schwerlich ist es ein ursprünglich griechisches oder lateinisches Wort, da es in diesen Sprachen keine verwandten Wörter hat und auch die Lautform auf eine Entlehnung hindeutet.» Bei ~Dioskurides~ ἀλθαία, Synonyma bei ~Dioskurides~: ἐβίσκον, μολόχη (μαλάχἠ) ἀγρία, ἀθίσκον (bei den Römern Hebiscum). Bei den späteren Griechen (vgl. ~Langkavel~) ἀλθαία, ἀσπρομολόχη, ἀλκέα, βύσκος, ἐβίσκη, ὀνομαλάχη. Bei ~Plinius~: Althaea, d. h. Malva silvestris «cui grande folium et radices albae». -- Malvaviscus aus malva viscida (wegen des Schleimes) umgebildet, aus viscida malva entstand dann auch bismalva und guimauve (gui = viscus). -- mauve aus malva. Bez. Pappel vgl. I, S. 1064 und unter Malva. =Stammpflanze.= =Althaea officinalis= L. (Spec. pl. ed. I, 686). =System. Stellung.= +Malvaceae+, Malveae -- Malvinae -- Althaeastrum. =Beschreibung der Stammpflanze.= Die Pflanze ist mehrjährig. Das oft vielköpfige bis 3 cm dicke +Rhizom+ geht nach unten in eine einfache oder mehrweniger verzweigte Wurzel über und trägt oben 60-125 cm hohe einfache oder ästige, stielrunde, unten stark verholzte, innen markige, kaum hohle +Stengel+, die in der Rinde reichlich Bastfasergruppen besitzen und außen mit einem dichten Filz von Büschelhaaren bedeckt sind. Die spiralig gestellten +Blätter+ besitzen einen kurzen, bis 4 cm langen Stiel; sie sind im oberen Teile des Stengels eiförmig, werden dann weiter nach unten größer und dreilappig, am Grunde gerundet bis herzförmig, und sind im untersten Teile, wo sie am größten sind, fünflappig mit meist vorgezogenen Endlappen, die Lappen spitz, am Rande ungleich kerbig-gezähnt bzw. kerbig-gesägt. Am Grunde ist die dicht graufilzig behaarte Spreite fünfnervig, beiderseits vom Mittelnerven gehen 3-5, besonders unterseits stark hervortretende Seitennerven ab. Die zweispaltigen Nebenblätter sind lineal oder lanzettlich-pfriemlich, lang zugespitzt, behaart, bis 8 mm lang, und, wie die Vorblätter der Blüten, hinfällig. Die wickeligen +Blütenstände+ stehen in den Achseln der Laubblätter; sie erscheinen durch Zusammendrängung der Blüten büschelig, die Büschel bilden im oberen Teile der Stengel bei Verkürzung der Blätter wieder traubige Verbindungen, sind also oberwärts gehäuft. Die Blütenbüschel sind kürzer als die Blätter. Die aktinomorphe, fünfzählige +Blüte+ besitzt einen +Außenkelch+ (Hochblattinvolukrum), der bis fast zum Grunde in meist 9-10 (selten 6, 7 oder 11) pfriemliche zugespitzte, behaarte Zipfel geteilt ist, die etwas kürzer sind als der 8-9 mm lange eigentliche fünfzählige +Kelch+, dessen eiförmige, zugespitzte, beiderseits filzige Zipfel eine klappige Knospenlage zeigen. Die 5 spreizenden, in der Knospenlage gedrehten, asymmetrischen, hellrosenroten (fleischfarbenen), dunkel geaderten +Blumenblätter+ sind fast 2 cm lang, schief umgekehrt eiförmig, oben etwas ausgerandet, am Grunde genagelt und hier beiderseits mit einem Haarbüschel versehen, mittelst der Staubgefäßröhre an der Basis unter sich verbunden. Die zahlreichen +Stamina+ sind zu einer unten verbreiterten Röhre verwachsen, die Filamente sind schwach behaart, die monothecischen, mit einem Scheitelspalt aufspringenden, dunkelpurpurnen Antheren in der Mitte angeheftet, die Pollenkörner groß, mit grobstachliger Exine. Die 15-18 +Fruchtblätter+ bilden eine niedrige, am Rande gekerbte, feinbehaarte Scheibe, aus deren Mitte sich der kräftige Griffel erhebt, dessen in der Zahl den Fruchtblättern entsprechende Narbenschenkel anfangs zusammenneigen, später aber auseinander spreizen. Jedes Fruchtknotenfach enthält ein aufsteigendes, anatropes Ovulum mit nach unten gewendeter Mikropyle. Die oben gewölbte, mit abgerundeten Rändern versehene +Frucht+ bildet eine vom bleibenden Kelch und Außenkelch behüllte, niedergedrückte, am Rande gekerbte, behaarte, von der Mittelsäule überragte Scheibe, die einem Emmenthaler Käse ähnlich ist (daher: Käsepappel). Die +Samen+ sind kahl, braun und enthalten, eingebettet in Endosperm, einen gekrümmten Keimling, dessen nach Innen geschlagene Keimblätter an der Spitze nochmals eingeknickt sind. Blüht im Juli und August. =Verbreitung.= _Althaea officin._ ist ursprünglich eine Pflanze der Steppen und Salzsümpfe. Sie ist über ganz Europa von Mittelrußland bis Frankreich (Südküste, Montpellier), Spanien (Salzmarschen von Saragossa), an der Nordsee, an der Ostsee bis zur Peenemündung, am Schwarzen Meer, am Mittelmeer, an den atlantischen Küsten bis Südengland und Irland, mit Ausnahme Skandinaviens und des höheren Nordens, auch in Griechenland und Macedonien, sowie über das gemäßigte Westasien (z. B. Syrien, Persien, Afghanistan), Zentralasien (Kaschmir), im Panjáb Himalaya, Sind und Nordasien (Alataugebirge in Südsibirien, südlich vom Balkasch-See) verbreitet. Aus Europa eingeschleppt findet sie sich jetzt auch in den Salzmarschen der Küste von Massachusetts, New York und Pennsylvania (~Henkel~). Sie findet sich an den Rändern von feuchten Gebüschen, Gräben, Zäunen besonders auf salzigem Boden oder in der Nähe salzhaltiger Stellen. Auf trockenem Boden wird sie schleimreicher. In Norddeutschland ist die Pflanze zerstreut und ziemlich selten, in der Schweiz scheint sie zu fehlen. (Bei ~Schinz-Keller~ finde ich nur die einjährige _A. hirsuta._) Für Baden, Wetterau, Nassau, Franken, Westfalen, Oberhessen durch Thüringen und Sachsen, sowie Böhmen wird sie angegeben, in Ungarn scheint sie häufig zu sein. Im Alatau steigt sie bis 3000 Fuß (~Semenoff~). =Lit.= ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Sibthorp~, Prodr. flor. graec. II, 42. -- ~Luerssen~, Med. pharm. Bot. -- ~Alice Henkel~, U. S. Dep. Agr. Bulletin 89. 1906. -- ~Garcke~, Flora v. Deutschland. -- +Abbild+. in ~Berg-Schmidt~, Atlas, 2. Aufl. t. 103 (dort die systemat. Lit.). -- ~Berg~, Charakteristik, t. 81. -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 59. -- ~Hayne~, Arzneigew. II. t. 25. -- ~Nees von Esenbeck~, plant. med. t. 417. -- ~Bentley-Trimen~, Med. pl. t. 35 u. and. =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Auf _Althaea officinalis_ tritt, wie auf anderen Malvaceen, die Uredinee _Puccinia Malvacearum_ ~Mont.~ auf, welche an allen grünen Teilen ihre kompakt polsterförmigen braunen Teleutosporenlager ausbildet. Es gehört dieselbe zu den sogenannten +Lepto+puccinien, d. h. sie besitzt nur Teleutosporen, welche sofort nach der Reife zu Basidien auskeimen. Die Basidiosporen infizieren sofort wieder junge Blätter. Nach meinen Beobachtungen erfolgt die Überwinterung auf den Malven einfach so, daß durch die ungünstigen Temperaturverhältnisse im Winter die Keimung der Teleutosporen zurückgehalten wird und erst eintritt, wenn wieder günstigere Temperaturverhältnisse vorliegen, in welchem Zeitpunkte dann meist auch Teile der _Malva_arten sich in infizierbarem Zustande befinden. (Eine ähnliche Beobachtung hat auch schon ~J. Schröter~ gemacht.) Da der Pilz sowohl auf _Althaea_ wie auch auf _Malva_ und anderen Malvaceen lebt, so kann _Althaea_ auch von befallenen Malven aus infiziert werden. Der Pilz ist ursprünglich in Chile einheimisch. In Europa wurde er 1869 zum ersten Male beobachtet und zwar in Spanien, dann 1872 in Frankreich. 1873 fand man ihn an verschiedenen Punkten von Frankreich, im Elsaß und Baden, sowie bei Erfurt. (Siehe ~E. Ihne~, Studien zur Pflanzengeographie: Geschichte der Einwanderung von _Puccinia Malvacearum_ und _Elodea canadensis_. Dissertation. Gießen 1880.) _Puccinia Malvacearum_ ist bereits 1874 auf den _Althaea_kulturen bei Nürnberg und Erlangen beobachtet worden. (~Rees~, Sitzungsb. d. phys. med. Soc. Erlangen 1874). Der Schaden ist weniger groß als man anfangs fürchtete (~A. Schwarz~ 1910), immerhin werden die Blätter bei stärkerem Auftreten unverkäuflich. Zur Bekämpfung wurden Spritzmittel vorgeschlagen, doch können solche jedenfalls da nicht angewendet werden, wo die Blätter als Droge in Betracht kommen. Auf den Blättern der Althaeen sind außer _Puccinia Malvacearum_ noch mehrere Imperfekten beobachtet worden, welche Blattfleckenkrankheiten hervorrufen. Unter denselben tritt namentlich _Colletotrichum Althaeae_ ~Southworth~ (_Stirochaete Malvarum_ ~A. Br.~ et ~Casp.~) (s. ~Southworth~, Ad new hollyhock disease. Journal of Mycology 1890, p. 45 und 115) unter Umständen so verheerend auf, daß die Kultur der Malven und Althaeen in Frage gestellt wird (~Lindau~). Pilze als direkte Schädlinge der Wurzel sind uns nicht bekannt. Über die tierischen Schädlinge von _Malva alcea_, _moschata_, _silvestris_, _neglecta_, _rotundifolia_ und _Althaea officinalis_ berichtet ~Israel~: 1. +Käfer+: _Haltica rufipes._ L., _H. fuscipes._ ~Fabr.~ und _H. malvae_ ~Ill.~ Larven und Käfer an den verschiedensten Malvaceen, letzterer mehr in den Donauländern. _Lixus angustatus_ ~Fabr.~ Larven meist in Kompositen, auch in _Malva_arten. _Apion aeneum_ ~Fabr.~, _A. malvae_ ~Fabr.~ und andere _Apion_arten leben als Larven in den Früchten von _Malva_- und _Althaea_arten. _Trachys pygmaea_ ~Fabr.~ Larven minierend auf _Althaea_- und _Malva_arten. 2. +Falter+: _Spilothyrus alceae_ ~Esp.~, _S. althaeae_ ~Hübn.~ Raupen auf diversen Malvaceen. _Acontia lucida_ ~Hufn.~, _A. luctuosa_ W. V. Die Raupen beider, nicht überall häufigen Falter leben auf diversen Malvaceen. _Gelechia malvella_ ~Hb.~ Räupchen in den Früchten vieler Malvaceen. 3. +Schnabelkerfe+: _Aphis cardui_ L. soll außer an verschiedenen Kompositen auch an _Malva_arten leben. 1894 trat eine Raupe auf den Stecklingen der bayrischen Kulturen auf, die dieselben stark schädigte (~Gehe~ & Co.). Die Droge ist sehr der Zerstörung durch _Sitodrepa panicea_ (I, S. 379) ausgesetzt. Man tut gut, von Zeit zu Zeit ein offenes Gefäß mit etwas Chloroform in den Vorratskasten zu stellen. =Kultur und Einsammlung.= Die deutsche Altheewurzel stammt nur aus den Kulturen. Wilde _Althaea_ liefert überhaupt weniger gute Wurzeln. Hauptkulturort für deutsche _Althaea_ ist Gochsheim, eine Stunde von Schweinfurt, dann die Umgegend von Nürnberg. Die Kulturen befinden sich nördlich von +Nürnberg+ (Groß- und Klein-Reuth, Lohe, Schnepfenreuth, Almoshof, Poppenreuth, Höfles, Rohnhof, Bislohe, Kraftshof, Boxdorf, Stadeln, Gr. Gründlach, Neunhof usw.) und südlich von Nürnberg (Schweinau, Groß-Reuth, Sündersbühl). In der Umgebung von +Schweinfurt+ sind Gochsheim, Schwebheim, Sennfeld zu nennen, bei Ulm Söflingen; kleinere liegen bei Jenalöbnitz, Rüdenhausen (Amt Kitzingen), Schlauraf. Bei Bamberg wird keine _Althaea_ mehr gebaut (~Kraft~ 1910). ~A. Schwarz~ in Nürnberg schreibt mir 1910: «_Althaea_ ist die hauptsächlichste Arzneipflanze, welche bei Nürnberg gebaut wird. Der Anbau ist am stärksten zwischen Nürnberg und Erlangen. Die Länge des Anbaugebietes darf auf 7, die Breite auf 2 Stunden angegeben werden. Der Eibisch wird hier in mäßig großen Feldern neben Gemüsen, Spargel usw. gebaut.» Wie ~Unger~ berichtet pflanzen die Bauern die Wurzeln in andere Felder unter Zwiebeln, Möhren, Kraut u. dergl. und im Oktober, November, eventuell auch im Dezember, wenn alles andere abgeerntet ist, wird die Eibischwurzel gegraben, geschält und getrocknet. Im Laufe des Winters wird dann von den Wurzelschneidern im Orte die Wurzel gespalten und geschnitten. Nicht alle Bauern haben Trockenschränke. Die Wurzelschneider feuchten oft die Wurzeln an und legen sie in den Keller, bis sie sich gut schneiden lassen, was aber unzulässig ist (~Unger~). Die Ernte in den Ämtern Nürnberg und Fürth beträgt pro Jahr etwa 3000 Zentner. Das meiste liefert: Neunhof, Kraftshof, Buch, Boxdorf, Klein- und Groß-Reuth hinter der Veste und Sündersbühl. _Althaea_ verlangt besonders im August bis Oktober Feuchtigkeit. Anhaltende Trockenheit schädigt die Felder, ebenso anhaltende feuchte Witterung oder gar Überschwemmung, wie 1898 in Belgien. Nebeliges trübes Wetter liefert graue Wurzeln. Da die Asche der _Althaea_ reich an Phosphaten ist, sollten die Kulturen mit Thomasmehl gedüngt werden. Die Erntebereitung erfordert ziemlich viel Arbeit und viele Bauern wendeten sich 1898-1900 anderen Kulturen zu, doch wurden, da wieder bessere Preise erzielt wurden, die Kulturen in Unterfranken 1907 wieder erweitert. Nur die größeren Wurzeln geben gute Ware, nicht die Zasern. Sorgfältige Trocknung eventuell Nachtrocknung bei nicht zu hoher Temperatur ist erforderlich, da die Wurzel sonst leicht einen widerlichen Geschmack annimmt und gelblich wird. 5 Teile frische Wurzel liefern 1 Teil geschälte und getrocknete. Die Kultur von _Althaea_ gelang 1887 ~Labler~ in Böhmen nicht gut. In der von Prof. ~Páter~ geleiteten staatlichen Versuchsstation für die Kultur der Arzneipflanzen in Klausenburg (Kolozsvár) in Ungarn wird _Althaea_ zu Wurzel-, Blätter- und Blütengewinnung kultiviert. Sie findet sich auch in vielen ungarischen Privatpflanzungen (z. B. der ~Gebr. Neumann~, Dr. ~Skiczák~ u. a.), die zum Teil mit ganz modernen Trocknungseinrichtungen versehen sind (~Mitlacher~). Die Rentabilität scheint nicht sehr beträchtlich zu sein, immerhin lohnt die Kultur. Ungarn sammelt aber auch _Althaea_ in größerem Maßstabe von wildwachsenden Pflanzen (~Páter~). Österreich-Ungarn exportiert größere Mengen _Rad. Althaeae_ (~Mitlacher~, 1910). Ich sah _Althaea_ oft in Bauerngärten Deutschlands und der Schweiz. Auch in +Frankreich+, +Belgien+ und +Italien+ wird _Rad. althaeae_ gesammelt und exportiert. Es befinden sich Kulturen in Nordfrankreich und im Hennegan (Belgien). Die Gärtnereien von +Milly+ (Depart. Seine et Oise) kultivieren auch _Althaea_ (~Planchon~, 1892). Die A. gallica war früher von vorzüglicher Qualität. Die belgischen Pflanzungen sind beträchtlich. +Ganze+ belgische Wurzel ist beliebt. Frankreich bezog 1909 _Althaeawurzel_ aus Italien und Belgien. In Italien wird die Droge nur von wildwachsenden Pflanzen gesammelt und zwar bei Mondoví in Piemont und Solesine in Venezien (~Ravasini~). Kulturen finden sich auch in Madras (~Watt~), aber die meiste _Althaea_ wird von Persien nach Indien importiert. /# =Lit.= ~Unger~, Apoth. Zeit. 1890, 14. -- ~Mitlacher~, Kultur von Arzneipfl. in Österr.-Ungarn. Pharm. Post 1909 (dort weitere Lit.) und Z. Produkt. v. Arzneipflanz. in Österreich-Ungarn. Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1910, 459. -- ~Scherfel~, Medizinalpfl. Ungarns. Beih. z. Bot. Centralbl. 1897. -- ~Augustin-Lengyel~ Vezérfonal Pharmakobotanikai Gyàkorlatokhoz 1908. -- ~A. Schwarz~, Briefl. Mittheil. 1910. -- ~Labler~, Prager Rundschau 1887 und Zeitschr. Österr. Apoth. Ver. 1889. -- ~Planchon~, Rep. d. Pharm. 1892, 375. -- ~F. von Müller~, Select. extratrop. plants readily eligible for Industrial Cultur 1885. =Handelssorten.= Der Handel unterscheidet besonders deutsche und belgische Wurzel, zu denen dann noch die weniger wichtige französische tritt. Die ungarische Althaeawurzel ist bisweilen ungeschält (~Vogl~). =Morphologie der Droge.= Die Droge wird nur von zweijährigen Pflanzen gesammelt, ältere sind zu holzig, jüngere zu dünn. Sie ist stets geschält im Handel. Die Wurzel des ersten Jahres bleibt entweder erhalten und entwickelt sich, zahlreiche Verzweigungen bildend, weiter oder geht zugrunde und an ihrer Stelle treten aus dem kurzen Rhizom zahlreiche, etwa gleichdicke Zasern. Das Rhizom entwickelt entweder nur einen Stengel oder wird mehrköpfig und treibt alsdann zahlreiche Stengel. Die hellgraubräunliche, nicht selten 0,5 m lange Hauptwurzel ist oft bis 3 cm dick, bisweilen um die Achse gedreht, die Zasern dagegen erreichen nur eine Dicke von 1 cm. Die Droge wird meist aus den Hauptwurzeln dargestellt. Man schneidet die Nebenwurzeln ab, schält sie durch Abschaben des Korkes und der äußersten Schichten der Rinde und trocknet dann. So erhält man verschieden (meist c. 2 dcm) lange, c. 1,5 cm dicke, weißliche Stücke, die auf der Oberfläche wenige aber grobe Längsrunzeln bzw. Furchen und zahlreiche dunklere Narben, von den Nebenwurzeln herrührend, erkennen lassen, sowie viele feine Fäserchen: freigelegte Bastfasergruppen der Rinde (s. unten). Der Bruch ist im Holzkörper uneben körnig, in der Rinde faserig. Der Durchmesser des Holzkörpers beträgt das fünf- bis sechsfache der Rinde, die nach dem Aufweichen etwa 3 mm dick zu sein pflegt. Das +Lupenbild des Querschnittes+, der sich mit Jod stark bläut, zeigt deutlich hervortretend die ringsumlaufende bräunliche Cambiumlinie. Innerhalb derselben treten feine Radialstrahlen, im Zentrum unregelmäßige Punktierung hervor. Die Rinde läßt zarte konzentrische Zonen erkennen (Fig. 117). Die Gefäßgruppen erscheinen beim Betupfen des Querschnittes mit Phloroglucin-Salzsäure als rote Punkte. Die Droge ist viel in Würfel geschnitten im Handel. _Rad. alth._ riecht eigenartig und schmeckt süßlich, fade-schleimig. [Illustration: Fig. 117. _Rad. althaeae_, Lupenbild des Querschnittes. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anatomie.= _Althaea_ besitzt Befestigungs- und Ernährungswurzeln (~Tschirch~ und ~Radlauer~, ~Stscherbatscheff~). Die Befestigungswurzeln führen Libriform im Zentralzylinder, die Ernährungswurzeln nicht. Der primäre Bau der Wurzel ist radial-diarch, wird dann oft tri- und tetrarch, seltener pentarch. In der Rinde findet sich meist eine endotrophische Mycorhiza. Schon bei einer 1,3 mm dicken Wurzel ist die primäre Rinde abgeworfen. Der Bau des Wurzelbündels ist collateral geworden und es ist ringsum Perikambialkork entstanden und in der Rinde Bastzellgruppen und Schleimzellen. [Illustration: Fig. 118. _Rad. althaeae._ Querschnitt am Cambium. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] [Illustration: Fig. 119. _Rad. althaeae._ Längsschnitt am Cambium. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Der (der Droge fehlende) Kork besteht aus etwa 8 Reihen tafelförmiger Korkzellen. Darunter folgt ein großzelliges Parenchym. Die sekundäre Rinde wird in radialer Richtung von breiten, schon mit der Lupe sichtbaren Markstrahlen durchzogen. Die Tangentialstreifung (s. oben) der Rinde rührt von zahlreichen, kleinen, in tangentialen Zonen angeordneten kleinen Bastzellgruppen her (Fig. 118, B), deren äußerste bei der geschälten Droge als Fäserchen sichtbar werden. Mit letzteren alternieren Siebröhrengruppen (s. Fig. 117, 5). Die wenig oder gar nicht verholzten Bastzellen sind meist nicht sehr stark verdickt, ihre Enden kegelig oder gabelig oder knorrig. Sie sind 10-27 (meist 18 bis 20) mik breit und meist etwa 600 mik lang. Safranin färbt die Membran der Bastzellen und der Gefäße rot (~Vogl~), Chlorzinkjod die inneren Lamellen der Bastzellen blau (~A. Meyer~). Das Rindenparenchym (Phloëmparenchym) und die Markstrahlen führen viel Stärke, etwas Asparagin und kleine Öltröpfchen (letztere besonders in den Markstrahlen), einige Zellen auch etwa 25 mik (18-30) messende Calciumoxalatdrusen mit oft stacheligem Rande. Die Kristalle liegen in einer Tasche (~Wittlin~). Eingestreut in das Rindenparenchym finden sich zahlreiche rundliche oder in der Organachse gestreckte Schleimzellen mit sehr dicken geschichteten Schleimmembranen (Schichtung wird deutlich beim Zufließen von Alkohol), die sich weder mit Jod, noch mit Chlorzinkjod und Jodschwefelsäure blau färben. Beim Chloralpräparate fand ~Vogl~ in den Schleimzellen 15-36 mik große prachtvolle Sphärite, oft traubig aggregiert, zerklüftet, rissig, geschichtet und radial gestreift, bald der Zellwand aufsitzend, bald frei in der Zelle liegend. Einige sind kugelig, andere eirund oder elliptisch, oder traubig gehäuft, nicht selten in langer Reihe der Zellwand aufsitzend. In dem innerhalb des Reihenkambiums liegenden Holzkörper ist das +Speicherparenchym+ (Holzparenchym) sehr stark entwickelt. Es führt Stärke, Asparagin (in deutlichen Kristallen meist nur nach Einlegen frischer Wurzeln in Alkohol), fettes Öl und Rohrzucker. Konz. Schwefelsäure färbt rot, Kali zitronengelb. Die Stärkekörner, der hauptsächlichste Reservestoff der Wurzel, sind sehr mannigfaltig gestaltet: rundlich, oval, gestreckt, gekrümmt, verbogen oder gelappt (Fig. 120). Der Spalt ist nicht immer deutlich, zusammengesetzte Körner sind selten. Die Größe beträgt 3,5-27 mik. Eingestreut in das Speicherparenchym finden sich Schleimzellen und Zellen mit Calciumoxalatkristallen. Die 25-80 (meist 50-60) mik weiten +Leiter-+ oder +Netzleistengefäße+, entweder einzeln oder zu Gruppen vereinigt, liegen ziemlich zerstreut. Sie zeigen manchmal Thyllenbildung (Fig. 119). Bisweilen sieht man innerhalb des Cambiums einzelne, meist Wundgummi führende Gefäß- und Tracheïdengruppen von einem Korkmantel ganz oder teilweise umgeben (~Lanessan~ 1877, ~Hartwich~ 1906). Die Gefäße sind oft von einem Tracheïdensaume umgeben und von Bastfaser-(Libriform-)gruppen begleitet. Letztere finden sich aber auch isoliert im Gewebe verstreut. Die meist sehr hohen Markstrahlen des Holzes ähneln denen der Rinde, zeigen auch die gleichen Inhaltskörper. Im Zentrum des Holzkörpers findet man bisweilen noch die Protoxylemgruppe, deren Libriformzellen verholzt sind (~Vogl~). Im +Pulver+ prävalieren die Stärkekörner, deren charakteristische Form (Fig. 120) für die Diagnose brauchbar ist. Im Alkoholpräparate erscheinen die Inhalte der Schleimzellen als helle Schollen, die beim Zufließenlassen von Wasser zu hyalinen Blasen werden. Im Chloralpräparate treten neben Parenchymfetzen die sehr charakteristischen Bastzellen und Gefäße oder deren Fragmente deutlich hervor, sowie die Calciumoxalatdrusen oder deren Kristallsplitter. Da das Pulver nur aus geschälter Droge dargestellt wird, fehlen die Korkzellen oder sind doch nur in sehr geringer Menge vorhanden, herrührend von den Stellen, wo die Nebenwurzeln abgeschnitten wurden. [Illustration: Fig. 120. _Rad. althaeae_, Stärkekörner. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Lit.= ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas t. 30 (dort das Detail). -- ~Tschirch~, Angew. Anatom. -- ~A. Meyer~, Drogenkunde (Fig. 195). -- ~Berg~, Anatom. Atlas t. 11. -- ~Karsten-Oltmanns~, Lehrbuch, Fig. 107-109. -- ~Moeller~, Lehrbuch, Fig. 320. -- ~Gilg~, Lehrbuch, Fig. 237. -- ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. II, Fig. 1189. -- ~van Tieghem~, Ann. sc. nat. (7) 1 (1885), 76. -- ~Dumont~, Anat. comp. d. Malvac., Ebenda (7) 6, 138. t. IV. -- ~Kuntze~, Vergl. Anat. d. Malv. Bot. Centralbl. 1891. -- ~Solereder~, System. Anat. d. Dicotylen S. 166 (dort weitere Lit). -- ~Frank~, Pringsh. Jahrb. V, t. XV. -- ~de Bary~, Anatomie 151. -- ~Walliczek~, Dissertat. Bern 1893. -- ~Guiraud~, Bot. Centralbl. 61 (1895) 376. -- ~Holfert~, Prim. Anlage d. Wurzeln. Arch. Pharm. 1889. -- ~Lanessan~, Bull. Soc. Linn. Paris 1877 (u. Hist. d. drog. I, Fig. 59). -- ~Hartwich~, Schleimzellen von Althaea, Verh. d. Naturforschervers. Halle 1891 (Pharm. Zeit. 1891, 609) und Eigenthüml. Bild. von Wundkork in d. Wurz. v. Althaea offic. Schw. Wochenschr. 1906, 137, sowie Althaea in Realenzyklop. d. Pharm. -- ~Freidenfeldt~, Anatom. Bau d. Wurzel. Bibl. bot. Heft 61, 1904. -- ~Jost~, Zerklüftung einiger Rhizome u. Wurzeln. Bot. Zeit. 1890. -- ~Radlauer~, Dissert. Bern 1911. -- ~Stscherbatscheff~, Arch. Pharm. 1907, 48. -- ~Wittlin~, Bot. Centralbl. 67 (1896), Taf. 1 Fig. 35. -- Das Pulver ausführlich in ~Koch~, Atlas d. Drogenpulver II, t. 12, ~Greenish-Collin~, Atlas veget. powders pl. 109 und ~Kraemer~, Powdered drugs. Amer. Pharm. Assoc. 1898, 312. -- Stärke: ~Bastin~, The Apothecary 1893 (Pharm. Journ. 1893, 747). -- Mikr. Nachweis des Asparagins: ~Pfeffer~, Pringsh. Jahrb. 1872, 533. Vgl. auch Borodin, Bot. Zeit. 1878, 801. =Chemie.= Der Apotheker =Bacon= fand 1826 in der _Rad. alth._ +Gummi+, +Zucker+, +fettes Öl+, +Stärke+, +Eiweiß+, +Althaein+ und «malate acide d’althéine». Letzteres erklärte ~Plisson~ für identisch mit dem von Robiquet 1805 in _Asparagus_ entdeckten +Asparagin+, dem Monoamid der Amidobernsteinsäure: (NH₂)--CH--COOH | CH₂--CO(NH₂) (F. wasserfrei = 234-235°). Dieses Asparagin, das glänzende, rhombische, in heißem Wasser lösliche, in Alkohol und Äther unlösliche Prismen bildet, ist linkshemiëdrisches, optisch-linksdrehendes l-Asparagin [rechtshemiëdrisches, süßschmeckendes Asparagin erhielt ~Piutti~ aus Wickenkeimlingen, doch geht dies wohl aus l-Asparagin hervor (~Pringsheim~)]. l-Asparagin ist im Pflanzenreich weit verbreitet. _Rad. alth._ enthält davon 0,8-2%. ~Rebling~ fand in _Rad. althaeae_ 10-11% Zucker, den ~Wittstock~ für Rohrzucker erklärte. Die von ~L. Meier~ angegebene Apfelsäure hat keine Bestätigung gefunden. ~Buchner~ fand 35,64% Schleim, 37,51% Stärke (nach ~Flückiger-Hanbury~ etwas mehr als 25%), 8,29% Zucker und Asparagin, 1,26% fettes Öl, 1,81% glutinöse Materie, 11,05% Pflanzenmark (Pektin). Der +Althaeaschleim+, von dem ~Flückiger~ 25% erhielt, ist in Wasser löslich. Er läßt sich durch Ammonsulfat aussalzen (~Pohl~), ist in Kupferoxydammon unlöslich und färbt sich weder mit Jod noch mit Jodschwefelsäure (Echte Schleime, ~Tschirch~). Bleiacetat schlägt ihn nieder. Da der Schleim, dem die Formel C₁₂H₂₀O₁₀ gegeben wurde (~Schmidt~, ~Mulder~), bei der Oxydation Schleimsäure liefert, muß er +Galaktose+ liefernde Gruppen enthalten. Vielfach wird kalte Extraktion der Wurzel an Stelle des Dekoktes gesetzt, doch treten auch neuerdings warme Verteidiger des Abkochens auf (~Unger~ 1890), da der heiße Auszug haltbarer ist. Der kalte Auszug enthält nur Schleim, keinen Stärkekleister, wird daher von Jod nicht gebläut, der heiße wird blau. Wenn es sich nur um den Schleim handelt, genügt kalte Extraktion. Pharmac. helvet. IV sagt: «Statt Decoctum rad. alth. ist die Kolatur einer halbstündigen Maceration zu dispensieren.» ~Orlow~ fand +Betain+ (Trimethylglycin, Oxyneurin): CH₂--CO | | + H₂O (CH₃)₃≡N----O und einen dem Lecithin (vgl. S. 342) ähnlichen Körper. Die Wurzel enthält auch ein +Enzym+. Gerbstoff findet sich nur in den Randschichten der ungeschälten Wurzel. Die +Asche+ beträgt 4,88% (~Flückiger~), 3,2-5,5% (~Hauke~), im Pulver oft etwas mehr. Die obere Grenzzahl beträgt 6%. Die Asche ist rein weiß. ~Nygård~ gibt den Wassergehalt auf 11% an. ~E. Dieterich~ fand (1891) 9,95% H₂O, 4,8% Asche und in letzterer 7,08% Kaliumcarbonat, -- im Pulver 6,20-9,10% H₂O, 5,8 bis 6,5% Asche, darin 17,0% K₂CO₃. Die Asche ist reich an Phosphaten. =Lit.= Ältere Lit. ~Link~, Schweigg. Journ. XIII, 186, ~Pfaff~, Mat. med. VI, 78, ~Colin~ und ~Gaultier~, Schweigg. Journ. XIII, 453, ~Gmelin~, Handb. d. Chem. II, 1251, ~Pereira~, Heilmittellehre II. -- ~Wittstock~, Poggend. Ann. 20 (1830) 346 (Pharm. Centralbl. 1831, 277). -- ~Buchner~, Rep. 41 (1832) 368 u. Pharm. Centralbl. 1832, 511. -- ~Leo Meier~, Jahrb. f. d. Pharm. 12, 2 (1826) 75 (vollständ. Analyse). -- ~Guérin Varry~, Ann. de chim. II 49, 264. -- ~Schmidt~, Lieb. Ann. 51, 29. -- ~Hilger~ und ~Rothenfusser~, Ber. d. chem. Ges. 35, 1841. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Pohl~, Zeitschr. phys. Chem. 14 (1890) 151. -- +Asparagin+: ~Robiquet~ jun., Ann. chim. 55 (1805) 152. -- ~Vauquelin~ et ~Robiquet~, Ebenda 57 (1806) 88. (~Delaville~, Ebenda 41 (1802) 298). -- ~Bacon~, Althéine, nouvelle substance végétale. Ann. chim. phys. 34, 201 (1827), Journ. chim. med. II, 551. -- ~Plisson~, Sur l’identité du malate acide d’althéine avec l’asparagine. Ann. chim. phys. 36 (1827) 175. -- ~Piutti~, Ber. d. chem. Ges. 22, Ref. 241 u. 243. -- ~Pringsheim~, Zeitschr. physikal. Chem. 66 (1910). ~N. Orlow~, Betain als Bestandt. d. Wurz. von Alth. offic. Pharm. Zeitschr. f. Rußl. 36 (1897) 631 (Journ. ph. 1898, 7. 108 u. 305) und Lecithin Farmac. Journ. 1900, Nr. 22 (Chem. Zeit. und Pharm. Zeit. 1900, 268). -- ~Rebling~ (Zucker) Arch. Ph. 134 (1855). -- ~Nygård~, Farmac. Notisbl. 1909. Über den sich abweichend verhaltenden Schleim (Gombine) von _Hibiscus esculentus_ (sog. Gombo) vgl. ~Landrin~, Journ. ph. chim. 22 (1875) 278, ~Popp~, Arch. Pharm. 1871, 140. =Verfälschungen und Prüfung.= Eine solche mit der holzigen, zähen Wurzel der _Althaea rosea_, die früher (~Wittstein~) angegeben wurde, scheint nicht mehr vorzukommen, ebenso wenig die Wurzel von _A. narbonensis_ ~Cav.~ Eine sehr häufige, ja beinahe regelmäßige Verunreinigung des grob gepulverten _Rad. alth._ ist seit Jahren und bis auf den heutigen Tag die billigste Sorte Schwarzmehl. Auf den ersten Blick könnte man oft meinen es nur mit letzterem zu tun zu haben (~Döll~). Als Kuriosität sei erwähnt, daß von Getreidemehl freies _Althaea_pulver bisweilen als «stärkefrei» angeboten wird. Während früher die geschnittene Eibischwurzel häufig (mit Kalkmilch, Kreide, Gips) gekalkt wurde, wird sie jetzt vielfach mit Stärke, Getreidemehl oder _Althaea_pulver bestäubt. 1885 wurden mit Talcum geschminkte, geschnittene _Althaea_ im Handel beobachtet, die über 1% davon enthielt (~Bernbeck~). Doch kommt Kalken auch jetzt noch vor. Die Prüfung auf gekalkte Wurzel durch Ausziehen mit Salzsäure (2 g _Rad._ auf 5 ccm 1% HCl, ~Fromme~, ~Caesar~ & ~Loretz~ Handelsbericht 1898) und Prüfen des filtrierten Auszuges mit Ammoniumoxalat ist, da auch das in der Wurzel vorkommende Calciumoxalat sich in Salzsäure löst, von der Pharm. helvet. IV durch Prüfung eines mit +Essigsäure+ dargestellten Auszuges ersetzt worden, die auch die auf Bleiweiß einschließt. «Schüttelt man geschnittene Eibischwurzel mit verdünnter Essigsäure, so darf Ammoniumoxalat im Filtrate nach dem Übersättigen mit Ammoniak nur höchstens eine Trübung und Schwefelwasserstoff keine Veränderung hervorrufen» (Pharm. helvet. IV). Gekalkte Wurzel enthält niemals weniger als 0,5% Kalk. Bisweilen ist so viel Kalk vorhanden, daß man ihn mit Wasser abschlämmen und den Bodensatz untersuchen kann. Auch Bleichung mit schwefliger Säure und Chlor scheint früher (1862) vorgekommen zu sein. Nicht ordentlich getrocknete, feucht aufbewahrte oder sonst feucht gewordene Wurzel riecht oft dumpfig oder schimmelt, sie enthält kein Asparagin mehr, bildet Ammoniak und gibt einen gelben Auszug (~Selle~), der bisweilen nach Buttersäure riecht (~Flückiger~). Es empfiehlt sich, Blecheinsätze in die Vorratskästen zu machen. Wurzeln, welche nach längerem Lagern geschnitten werden, liefern oft trübe, wenig schleimige Auszüge (~Hager~). Der Schleim (1 = 10) soll farblos und neutral sein und weder sauer, noch ammoniakalisch riechen. Durch Kalilauge oder Ammoniak soll er rein gelb, nicht braun oder rötlich werden. =Lit.= Jahresber. d. Pharm. 1861, 65 (~Selle~) und 1885, 94 (~Bernbeck~). =Anwendung.= _Rad. althaeae_ wird besonders als demulzierendes Mittel bei Katarrhen der Respirationsorgane und Reizzuständen der Verdauungswerkzeuge benutzt, dann als Vehikel für scharfe Arzneistoffe und als Konspergierungsmittel für Pillen. Beliebte Arzneiformen sind: _Decoctum althaeae_, _Syr. althaeae_, _Spec. bechicae_, _Spec. pectorales_, _Spec. pro infantibus_, _Pastilli althaeae_, _Pasta althaeae_, die aber oft keine _Althaea_ enthält. (Weitere Formen und Spezialitäten in ~Hager-Fischer-Hartwich~, Pharmac. Praxis). Die Witterung und ein damit verbundenes größeres oder geringeres Auftreten von Katarrhen hat, wie die Handelsberichte lehren, auf den Verbrauch von _Rad. althaeae_ großen Einfluß. Mit Altheepulver und Wasser allein angestoßene Pillen werden bald steinhart und passieren den Magendarmkanal ohne zu zerfallen. _Althaea_wurzel ist auch ein Hauptmittel des Pfarrer ~Kneipp~. Die Wurzel wird roh und geschält von den Kalmücken gegessen. Die Stengel enthalten Bastfasern in der Rinde und diese wurden als Faserstoff empfohlen (~Cavanilles~). Ziemlich viel Fasern liefert _Althaea narbonensis_ (span. cañamera) in der Nähe von Narbonne. =Geschichte.= Dem indischen, babylonischen und ägyptischen Kulturkreise scheint die Verwendung der _Althaea_ unbekannt gewesen zu sein. _Alcea ficifolia_ L. (feigenblättrige Malve), noch heute Hauptschmuck der arabischen Gärten, war im alten Ägypten (1600 n. Chr.) eine der Blumen der Totenkränze. Die ἄλθαια des ~Theophrast~ ist vielleicht _Alth. offic._ (~Fraas~) oder _A. acaulis_ (~Sprengel~), doch nennt er die Farbe der Blüten μήλινος (Pharm. ind. denkt daher eher an _Abutilon Avicennae_). Er beschreibt sie (Hist. plant. 9, 18) als der μαλάχη (_Malva silvestr._ und _Lavatera arborea_) ähnlich und erwähnt ihre Benutzung gegen Husten, sowie ad fracturas et ad ulcera. ~Dioskurides~, der viele Krankheiten nennt, gegen die _Althaea_ innerlich und äußerlich angewendet wurde, nennt die Wurzel der ἀλθαία schleimig und innen weiß. ~Plinius~, der viel besonders über die äußerliche Anwendung der wilden Malve mit großen Blättern und weißer Wurzel zu berichten weiß, aber auch die Abkochung der Wurzel mit Milch als Hustenmittel kennt, erwähnt, daß die A. auch _Plistolochia_ (_Plistolycia_) heiße (von πλεῖστος = am meisten und λοχεῖα = Kindbettreinigung). Daß die Wurzel in dem I. Jahrh. n. Chr. arzneilich benutzt wurde, geht aus des ~Scribonius Largus~ Compositiones (I, S. 576) hervor, bei dem sich _Ebisci_, s. _Hibisci radix_ findet. _A. offic._ steht dann auch im Kitâb aš šaǧar (X. Jahrh.). Im Capitulare ~Karls~ steht (neben _malvas_) _mismalvas_ [wohl ein Schreibfehler für uismalvas (~Fischer-Benzon~)] _ibicha_ id est _alteas_. Beide finden sich auch im Breviarium (I, S. 621). Die Benediktiner empfahlen und betrieben also ihre Kultur auch im deutschen Norden. Bei ~Albertus Magnus~ steht Altea, im Gothaer Arzneibuch (I, S. 679): wylde poppele, auch bei ~Megenberg~: papel. In den +Sinonoma Bartholomei+ (I, S. 639) steht: Altea, holihocke; in der +Alphita+ und den +Tabulae+: bismalva und bimalva (altea); die ebendaselbst erwähnte _Malva silvestris_ (malva uiscus, merch[e] malue, caulis sancti Cutberti, alta malua Seynt Cutbertscole) ist wohl auch _Althaea_; wie das gleichfalls in der Alphita sich findende _Alphaea_ (bismalva, enflos, eviscus, malvaviscus, hibiscus). Bis malue findet sich auch in der Frankfurter Liste (1450) und dem Nördlinger Register (1480). Bei ~Cordus~ findet sich _Althaeae flos_, _rad. (Rad. Hibisci) et mucilago_; sowie die Namen Bismalva und Sammetpappeln. Der _Althae_aschleim war Bestandteil des _Empl. diachylon_ (s. S. 337). Auch _Ungt. dialthaea simpl._ und _comp._ ~D. Nicolai~ (z. B. in ~Cordus~, Dispensator.) enthalten (neben _Sem. lini_ und _Sem. foenugraec._) _Rad. althaeae_. =Paralleldrogen.= Die Wurzel des in allen Teilen sehr schleimreichen _Hibiscus esculentus_ geben geschält ein schneeweißes, schleimreiches Pulver (Pharm. Rev. 1897). Die Wurzel wurde als Ersatz der _Althaea_ empfohlen (~Della Sudda~, Rép. d. pharm. 1860. Über die Früchte der Pflanze vgl. die Pharmakographia). ~Dragendorff~ führt (Heilpflanzen, S. 422) als ebenso wie _Althaea officin._ benutzt an: _Althaea taurinensis_ ~Dc.~, _A. narbonensis_ ~Pourr.~, _A. cannabina_ L., _A. pallida_ W. et ~Kit.~, _A. meonantha_ ~Lk.~, _A. chinensis_ ~Cav.~, _A. ficifolia_ ~Cav.~ Von den Portugiesen in Goa wird die Wurzel von _Grewia scabrophylla_ ~Roxb.~ als Substituens für _Althaea_ benutzt. Ebenso in Cochinchina und Indien die Wurzel von _Hibiscus Rosa sinensis_, die Ketmie von Cochinchina (Pharmacogr. indica). Folium Althaeae. Eibischblätter -- feuilles de guimauve -- marshmallow leaves -- foglie di altea. Die Beschreibung der Stammpflanze s. oben S. 345. Die Blätter werden an den gleichen Orten wie die Wurzel, aber in viel geringerem Maße, besonders im Juni und Juli vor (Pharm. helv. IV) oder während der Blütezeit, bisweilen auch von der wildwachsenden Pflanze gesammelt. 8 Teile frische liefern 1 Teil trockene. Sie gelangen vornehmlich aus Bayern und Österreich-Ungarn, dann auch aus Belgien, Frankreich und Thüringen in den Handel. Bei Nürnberg werden Eibischblätter besonders in Almoshof, Klein-Reuth, Neunhof und Buch gesammelt (~Fr. Wagner~). [Illustration: Fig. 121. _Althaea officinalis_, längliche Blattform. [Aus +Jos. Moeller+, Lehrb. d. Pharmakogn.]] Die beiderseits graufilzigen, ungleich kerbig-gezähnten Blätter, deren Form oben (S. 345) beschrieben ist und von denen es längliche und runde Formen gibt (~J. Moeller~), sind namentlich durch die fast dreieckigen, ungleich großen +Blattzähne+ ausgezeichnet. Auf relativ kleine folgen weit hervortretende von fast länglich-herzförmigen Bau. Ein kräftiger Nerv tritt von unten her in den Zahn und verzweigt sich pinselartig. Von seiner Spitze gehen zwei Randnerven ab, die mit dem von den Hauptzahnnerven abgehenden Sekundärnerven je ein Dreieck bilden. Längs der Randnerven zeigt sich noch je ein zweiter, sehr schwach ausgebildeter Nerv (~Virchow~). Die meist kleineren Blätter der wilden Pflanze haben im allgemeinen einen schärfer gezahnten Rand und spitzere Formen (~Zörnig~). Die im allgemeinen starke Behaarung wechselt nach dem Standorte etwas. Sie ist auch bei der wilden Pflanze oft stärker als bei der kultivierten. Es finden sich vornehmlich Büschelhaare mit 2-6, seltener 8, spreizenden langen, dickwandigen Strahlen, die von der Fläche betrachtet einen 2-8strahligen Stern bilden («Sternhaare»). Die Haarwurzeln, die Basen der Büschelhaarstrahlen, sind reich getüpfelt. Auf Gewebspolster sind die Büschelhaare für gewöhnlich nicht erhoben. Daneben finden sich, besonders an den Nerven, Drüsenhaare mit einer Basalzelle, mehreren Stielzellen und einem 1-2zelligen Köpfchen, sowie am Blattrande einzellige, etwas gekrümmte Haare mit angeschwollener Basis. Die Epidermiszellen beider Blattseiten sind schwach wellig verbogen. Sie sind wegen der starken Haarbedeckung nicht gut zu sehen. Spaltöffnungen mit 3-4 Nebenzellen finden sich auf beiden Blattseiten. Zahlreiche Epidermiszellen sind als Schleimzellen ausgebildet. Die Schleimmembranverdickung ist besonders auf der Innenseite stark (Fig. 94, 7). Der Schleim färbt sich mit Safranin rot, mit Methylenblau blau (~Vogl~). Unterhalb der Büschelhaare finden sich oft Oxalatzellen (~A. Meyer~). Die Palissadenschicht der Blattoberseite ist einreihig, selten an einzelnen Stellen durch Teilung der Zellen zweireihig. Das Merenchym ist wenig-reihig und reich durchlüftet. Der stark nach unten ausladende Mittelnerv führt oben und unten Collenchymstreifen, ein großes strahliges Gefäßbündel und im Nervenparenchym Schleimzellen und Zellen mit Calciumoxalatdrusen, doch ist vornehmlich die Epidermis Sitz des Wasser zurückhaltenden Schleimes, die dadurch zu einem epidermalen «Wassergewebe» wird. An den Nerven höherer Ordnung ist die Spreite meist etwas eingezogen. Blätter, auf denen sich _Puccinia Malvacearun_ (vgl. oben S. 347) findet, sind zu verwerfen. Das +Pulver+ ist besonders an den sehr zahlreichen Haarbildungen zu erkennen, von denen selbst im feinsten Pulver wenigstens die Basen der Büschelhaare noch gut erhalten sind. Die Haarstrahlen sind oft zertrümmert. Stengel und Blütenteile, die sich nicht selten im Handelspulver finden, verraten sich durch reichliches Vorkommen von Pollenkörnern (einige finden sich auch im reinen Blattpulver), von Antherenfragmenten und Kelchhaaren und den großen Gefäßen des Stengels (~Koch~). Eine Beimengung von _Fol. malvae_ verrät sich durch zahlreiches Auftreten von einzelligen Borstenhaaren, die bei _Althaea_ seltener sind. [Illustration: Fig. 122. _Althaea officinalis_, Querschnitt durch den Mittelnerven des Blattes. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Von den Bestandteilen kommt nur der Schleim in Betracht. Die Asche beträgt 13-15% (~Hauke~). Die _Fol. alth. germanicae_ von kultivierten Pflanzen sind schwächer behaart als die im südlichen Ungarn von wildwachsenden Pflanzen gesammelten _Fol. alth. hungaricae_ (~Vogl~). Die _Fol. althaeae_ werden meist in Form von Auszügen zu Gargarismen und Collutorien, Klystieren und, in Verbindung mit anderen erweichenden Kräutern, zu Cataplasmen benutzt (~Husemann~). Sie sind ein Volksmittel gegen Husten und Bestandteil vieler Teemischungen (_Spec. althaeae_, _Spec. emollient._, _Spec. ad gargarisma_, _Spec. pectoral._). [Illustration: Fig. 123. _Althaea officinalis_, Epidermis des Blattes. Flächenansicht. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Lit.= ~Tschirch-Oesterle~, Atlas t. 71. -- ~A. Meyer~, Drogenkunde II, Fig. 415-421. -- ~Planchon-Collin~, Drog. simpl., Fig. 1184 bis 1186. -- ~Vogl~, Commentar 1908 und Atlas t. 15. -- ~Moeller~, Pharmakogn. Atlas t. 23 und Lehrbuch Fig. 62 u. 63. -- ~Hartwich~ in Realenzyklop. d. Pharm. -- ~Zörnig~, Arzneidrogen S. 130. -- ~Virchow~, Bau, u. Nervat. d. Blattzähne etc. Arch. Pharm. 1896. -- ~Hauke~, Aschengehalt 1902. -- ~Schwarz~, Briefl. Mitth. -- ~Walliczek~, Membranschl. vegetativ. Org. Pringsh. Jahrb. 25 (1893) 227. -- ~Nestler~, Die Schleimzellen d. Malvaceen. Öst. bot. Zeitschr. 1898. -- ~Dumont~ a. a. O. -- ~Kuntze~ a. a. O. -- ~Solereder~ a. a. O. (vgl. S. 351). -- Das Pulver ausführlich in ~Koch~, Anal. d. Drogenpulv. III, 82 (dort auch die Pollenkörner). Flos Althaeae. Die Beschreibung der nur wenig noch angewendeten, fast geruchlosen, süßlich-schleimig schmeckenden Blüten s. oben S. 346. Sie werden in einigen Gegenden, wo Eibisch kultiviert wird, nebenher gesammelt, z. B. bei Nürnberg (Almoshof, Klein-Reuth, Großgrundlach, Schnepfenreut 1910). Sie enthalten in allen ihren Teilen Schleimzellen. Die großen (60 mik breiten) Pollenkörner besitzen eine grobstachlige Exine, die durch Jodchloral sich gelb färbt, während der Inhalt blau wird (~Vogl~). Die Entwicklungsgeschichte des Samens und der Frucht bei ~Stscherbatscheff~, Arch. Pharm. 1907, 60. -- Die Nährschicht bei ~Holfert~ a. a. O. Die Blüten liefern 0,024% ätherisches Öl (~Hänsel~), welches kristallinisch erstarrt. Der Farbstoff der _Althaea_blüten soll ein durch verdünnte Säure hydrolysierbares Glykosid sein, das in der Kalischmelze Protocatechusäure und Brenzcatechin liefert (~Weigert~, Jahresber. d. önolog. Lehranst. Klosterneuburg 1894/95). Folium et Flos Malvae. =Syn.= Herba malvae, Malvenblätter, Pappel- oder Papelkraut, Hanfpappel, St. Johannispappeln, Schwellkraut, Käsepappelkraut, Gäns-, Roß- oder Hasenpappelkraut, kattenkēs (= Katzenkäse), kerskes, in der Schweiz: chäslichrut, nüsserli, zigerli -- feuille de mauve -- mallow leaves -- in Indien und Arabien: khubázi und khitmi. Flores malvae silvestris, vulgar. s. coerulei, blaue Pappelblumen, wilde Malvenblüten, -- fleur de mauve -- mallow flowers. Bei den alten Griechen und den Römern: malache. -- _Malva silvestris_ hieß bei den späteren Griechen: μολόχη, μαλάχη, ὑπερστρόγγυλος -- _Malva rotundifolia_: ἀγριομάλαχων, τεμποράξ, γλυκάνησσος. -- +althd.+ papula, pappala, pappula, papilla, pampila, babilla, wengebapeln -- +mhd.+ pippole, pipelde, baippel -- +mnd.+ pippulencrut, poplencrut, popele, popel, pope, pöppol -- bei der ~Hildegard~ (I, S. 669): babela -- bei ~Megenberg~ (I, S. 693): malva haizt papel. -- Im Gothaer Arzneibuch: wylde poppele (poppele, popplione, popplionie -- den italienischen Ursprung verratend! -- ist Populus). -- Im Colmarer Glossar: popele, -- bei ~Bock~: keespappeln. -- Im Ortus sanitatis und bei ~Brunschwyg~: bappeln -- bei ~Brunfels~ und ~Fuchs~: Gansspappel, rosspappeln. =Etym.= ~Kluge~ bemerkt: «Pappel = Malve, mhd. papel, papele; ahd. (mlat.) papula, dunklen Ursprungs; wohl aus lat. pappus Samenkrone gebildet.» Das scheint mir sehr unwahrscheinlich. Ich leite es, ebenso wie ~Grassmann~ u. and., von pampe, pappe, mhd. pap = Kinderbrei, Kleister (aus ital. mlat. pappa und pappare = essen) ab, wegen der Schleimigkeit. (Im ald. bedeutete pappala schleimig.) Bei ~Bock~ heißt es: «pappel ist im Westerich ein gemeiner Nam, dann es werden alle breite Kreutter sonderlich, die man nit vol kennet, mit dem namen pappel genannt, aber zu underscheid der andern nennen sie die klein malvam um des schnübelechten (scheibenförmigen) Samens willen käszpappeln und Hasen- oder Ganspapellen». In der Tat wird in Baiern auch die Betonien- und Pfingstrose, in Nassau der Sumpfhahnenfuß Pappel genannt (~Grimm~). Das Wort +Pappel+ als Bezeichnung für den aus Italien stammenden Baum (zuerst bei ~Megenberg~ und ~Cordus~) ist aus populus umgebildet (früher stets als Pappel+baum+ unterschieden). Es liegt also nur ein zufälliger Gleichklang vor (I, S. 1064). Popel als Baumname bedeutete ursprünglich die im Mittelalter über die Alpen gebrachte Schwarzpappel (_P. nigra_). Die Pyramidenpappel kam erst Ende des XVIII. Jahrh. aus der Lombardei nach Deutschland (~Hoops~). -- Malva aus μαλάχη und dies von μαλαχός = erweichend, weich, auch in bezug auf den Schleim, und wohl nicht, wie ~Grassmann~ will, von der weichen Beschaffenheit der Pflanze. -- Malve erst nhd. aus lat. (ital.) malva. In England wurde der lat. Pflanzenname sehr früh heimisch, daher angls. mealwe, engl. mallow (~Kluge~). -- Der aramäische Name für Malve ist ru’ānā (~Löw~). -- Bei den Persern: nân-i-ku-lagh (= Krähenbrod) und khitmi-i-kuchak (= kleines khitmi) --~Maulána Nafis~ (nach ~Dymock~) unterscheidet bei den Malven: kultivierte (Malokhia) große wilde (khitmi), und kleine wilde (khu-bázi). =Stammpflanze.= =Malva silvestris= L. (Spec. pl. ed. I, 689) (Althaea silvestr. ~Alefeld~). Roßpappel, wilde Malve oder Käsepappel, große Hasenpappel, Hanfpappel, Pferdepappel, Waldmalve -- mauve sauvage, meule, grande mauve -- wild mallow -- mallowe -- katost -- μαλάχη -- und =Malva neglecta= ~Wallroth~ [Syllog. Ratisb. I, 140 (1824)] (M. rotundifolia ~C. Bauhin~ et ~Auct.~ nicht L., M. vulgaris ~Fries~, M. littoralis ~Dethard~, Althaea vulgaris ~Alef.~). Gemeine Malve, Käsepappel, Kässelpappel -- mauve à feuilles rondes, petite mauve fromagère, fromageon -- common mallow. [Illustration: Fig. 124. _Malva silvestris_ L. 1. Infloreszenz und Laubblätter. 2. Frucht. [Aus +Schmeil+, Lehrb. d. Botanik.]] Die ~Linné~sche M. rotundifolia umfaßt zwei jetzt getrennte Arten: M. neglecta ~Wallr.~ (s. oben) und M. rotundifolia ~Fr.~ (M. borealis ~Wallm.~, M. pusilla ~With.~, M. parviflora ~Huds.~). +Die Blätter werden von beiden Arten+ (M. silvestr. und neglecta) +benutzt, die Blüten meist nur von Malva silvestris+. Die Wurzel und Samen sind nicht mehr in Gebrauch. =Systemat. Stellung.= +Malvaceae+, Malveae -- Malvinae (neben _Althaea_). =Beschreibung der Stammpflanzen.= _Malva silvestris_ ist ein selten einjähriges, meist zweijähriges oder andauerndes Kraut. Aus der kräftigen, innen weißen Pfahlwurzel erheben sich mehrere aufsteigende, bis meterhohe, ziemlich kräftige, runde, behaarte, verästelte, unten holzige, innen Mark und eine Höhlung führende +Stengel+. ~Flückiger~ sah 1878 4 cm dicke Stämme aus den gallizischen Bergen in Nord-Spanien. Die jüngeren Teile sind rauhhaarig fast zottig. Die später vertrocknenden Nebenblätter sind 7 mm lang, halbeiförmig. Die +Blätter+ besitzen einen 5-10 cm oder noch längeren, oben runden, unten abgeflachten, meist stark behaarten Stiel. Die nur spärlich behaarte, von 5-7 Hauptnerven durchzogene, 5-12 cm, ja bisweilen 18 cm breite Spreite der Laubblätter ist nierenförmig (Fig. 124), bisweilen an der öfter purpurn gefärbten Basis gestutzt, der kreisrunde Rand in 5-7 meist stumpfe, gesägte oder gekerbte Lappen geteilt. Die aktinomorphen, fünfzähligen, hermaphroditen +Blüten+ bilden achselständige Wickel, sie sind 1,5-3 cm lang. Ihre zur Blüte- und Fruchtzeit aufrechten Stiele sind kürzer als die Blattstiele. Der Hüllkelch (das Hochblattinvolukrum) besteht aus drei freien, schmal spatelförmigen, spitzen, behaarten, c. 5 mm langen Blättern, die kürzer als die Kelchblätter sind. Der Kelch ist unten verwachsen, glockenförmig, oben in fünf fast gleichseitig dreieckige, innen kahle, außen behaarte Zipfel geteilt. Die hellpurpurroten, von dunklen Adern durchzogenen Blumenblätter sind drei bis viermal länger als der Kelch, c. 20-25 mm lang, keilförmig bis verkehrt eiförmig, an der Spitze sehr tief ausgerandet, am verschmälerten Grunde mit zwei dichten Haarbüscheln versehen (Fig. 125, 2), an der Basis allmählich in die Staubgefäßröhre übergehend. Das dunkelpurpurrote, behaarte Staubgefäßbündel ist 10-12 mm lang, die monothezischen Antheren sind quer aufgehängt und öffnen sich mit einem Querriß. Die Pollenkörner besitzen eine kurzstachelige Exine (Fig. 125, 3). Die 8 bis 11 (meist 10) Griffel sitzen dem niedergedrückt-scheibenförmigen Fruchtknoten auf. Sie sind unten verwachsen und teilen sich auf halber Höhe in die fädigen Narbenschenkel. Das Bündel der letzteren bleibt entweder in der Staminalröhre eingeschlossen (bei der sog. männlichen, kurzgriffligen Form der Blüte) oder tritt aus letzterer hervor (bei der sog. weiblichen, langgriffligen Form). Die Ovula sind anatrop-epitrop. Die vielfächerige, vom bleibenden Kelche behüllte Frucht bildet eine niedergedrückte, vom Stempelrest nicht überragte, mehr oder weniger stark behaarte, strahlig-gefurchte Scheibe von 6-7 mm Durchmesser (Fig. 124, 2). Die 8-11 (meist 10) Teilfrüchtchen sind durch tiefe Furchen geschieden und stark netzgrubig skulpturiert. Sie trennen sich zur Zeit der Fruchtreife. Die Samen sind nierenförmig, der Embryo gekrümmt. Die Behaarung der Pflanze wechselt sehr. Bald findet man reich, ja sogar sehr reich behaarte, bald fast kahle Blätter. Die stärker behaarten Formen finden sich im Süden und Osten (~Schumann~). [Illustration: Fig. 125. _Malva silvestris_ L. 1. Längsschnitt durch die Blüte. 2. Corollenblatt mit den basalen Haarstreifen. 3. Pollenkorn. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] _Malva silvestris_ ist eine über ganz Europa, mit Ausnahme des äußersten Nordens, verbreitete und ziemlich häufige Ruderalpflanze. Sie findet sich auch am Cap, in Nordafrika, Kleinasien, Cypern, dem südlichen Kaukasus, Südsibirien, Persien, Afghanistan, Vorderindien und über den Ural bis zum Altai. Sie ist jetzt auch nach Nordamerika verschleppt, ebenso nach Brasilien, wo sie jetzt überall vorkommt (~Peckolt~ 1900). Sie wird in Indien (Bombay) kultiviert. Sie findet sich auf Schutt, an Zäunen, Acker- und Wegrändern, sowie auf Waldschlägen, und steigt bis in die mittleren Gebirge. Blüht vom Juni bis Herbst. Sie heißt daher auch Herbst-Rose (~Uhland~ besang «des Herbstes Rose, der gesunk’nen Sonne Kind»). _Malva neglecta_ ist ein einjähriges oder ausdauerndes Kraut. Die einjährige Pflanze bildet einen niederliegenden Stengel mit spärlichen Verzweigungen, die ausdauernde eine bleibende Grundachse, die nach allen Seiten Stengel treibt. Die ganze Pflanze hat einen schmächtigeren, dürftigeren Wuchs wie _M. silvestris_, auch Blätter und Blüten sind kleiner (daher _neglecta_). Die Nebenblätter sind bis 6 mm lang, schief oblong, spitz, hinfällig. Die +Blätter+ pflegen sehr lang gestielt zu sein, man findet bis 27 cm lange behaarte Blattstiele. Die meist 3-7,5 cm breite Spreite ist nierenförmig bis kreisförmig, schwach 5-7lappig, von 5-7 Nerven durchzogen, mit gerundeten, gekerbten, mehr oder weniger behaarten Lappen. Am Grunde ist die Behaarung stärker. Die langgestielten +Blüten+ stehen in achselständigen, gedrängten Wickeln. Ihr Stiel verlängert sich später noch (bis 3 cm). Der Hüllkelch besteht aus drei freien, c. 5 cm langen, lanzettlichen, besonders am Rande behaarten Blättern. Der Kelch ist kaum länger als 1 cm und etwa bis zur Hälfte in fünf fast gleichseitig-dreieckige, spitze, außen behaarte, innen kahle Zipfel gespalten. Die hellrosenroten, fast weißen, dunkel geaderten Blumenblätter sind klein, etwa 12-13 mm lang, 2-3mal länger als der Kelch (bei der var. _decipiens_ ~Aschs.~ ebenso lang), umgekehrt eiförmig, oben tief ausgerandet, unten mit dem Nagel der Staubfadenröhre angewachsen. Die Staubfadenröhre ist 6 mm lang, dunkelrot, spärlich behaart. Fruchtknoten fein behaart, aus 11-15 Carpellen gebildet. «Im weiblichen Stadium der Blüte ragen die spitzen, innen papillösen Narbenschenkel über die Röhre hinaus, krümmen sich nach unten und berühren die bläulichen Staubbeutel; dabei können sie den Pollen aus den geöffneten Beuteln entnehmen und somit bei ausgebliebener Fremdbestäubung eine Selbstbefruchtung bewirken» (~Berg-Schmidt~, Atlas). Die kreisrunde, scheibenförmige, 6-7 mm breite Frucht ist vom bleibenden Kelche und Hüllkelche behüllt und zeigt auf der eingesenkten Oberseite ein kleines Spitzchen. Griffelpolster fast so breit als die glatten, am Rande abgerundeten Früchtchen. Die Teilfrüchtchen sind schwach gerunzelt. Der Same zeigt feine Punktierung. Die Behaarung der Pflanze wechselt auch bei _M. neglecta_ sehr. Bisweilen sind die Blätter nur sehr spärlich behaart, der Blattstiel dagegen stets stärker. _M. neglecta_ bildet mit _M. rotundifolia_ L. einen Bastard, dessen schwach runzelige Früchtchen einen wenig hervortretenden Rand besitzen. _M. neglecta_ ist eine durch ganz Europa, von Rußland und Schweden bis Spanien und Portugal verbreitete Ruderalpflanze. Sie findet sich auch in Nordafrika von Marokko bis zum Sinai, dann in Syrien, Armenien, dem Kaukasus, Altai, Persien, Tibet, Vorderindien. Nach Nordamerika und Chile, wo sie jetzt auch vorkommt, ist sie wohl eingeschleppt, ebenso nach Australien. Sie findet sich an Wegen, auf Schutt und an gedüngten Stellen in der Nähe menschlicher Wohnungen, z. B. auf Dorfstraßen. Blüht Mai bis Herbst. Die Droge wird meist von der überall häufigen, weil durch Menschen und Tiere leicht verschleppten, wildwachsenden Pflanze gesammelt. Doch werden die Malven in beschränktem Maße auch für den Handel kultiviert, z. B. in Belgien und Ungarn, und man sieht sie bisweilen auch in Bauerngärten. Die Blätter beider Malven werden in Österreich-Ungarn gesammelt (~Mitlacher~ 1910). Pharmac. helvetic. IV u. and. Pharmac. lassen die Blätter beider Malven zu. Aus Algier wird etwas (1891: 3000 pounds) _Fol. et Flos Malvae_ (von _M. silvestr._, _macrocarp._ und _nicaeensis_) ausgeführt (~Simmonds~, Useful pl. of Algeria. Am. journ. ph. 1891, 9). Die Blätter und Blüten sind fast geruchlos, beide schleimig. Die Blüten verfärben sich beim Trocknen in blau, das sehr beständig ist. =Pathologie.= Auf _Malva neglecta_ und _Malva silvestris_ tritt an allen grünen Teilen _Puccinia Malvacearum_ ~Mont.~ auf. (Näheres über dieselbe siehe unter _Althaea officinalis._) -- Außerdem treten auf den Malven noch verschiedene Imperfekten, besonders _Colletotrichum Althaeae_ ~Southworth~ (s. unter _Althaea officinalis_) auf (~Ed. Fischer~). «=Blätter=, welche die braunen Sporenhäufchen von _Puccinia Malvacearum_ ~Montagne~ zeigen, dürfen nicht verwendet werden» (Pharm. helvet. IV). [Illustration: Fig. 126. _Malva silvestris_ L. Epidermis der Oberseite des Laubblattes. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anatomie.= Bzw. der Nervatur der Blattzähne vgl. ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas (nach ~Virchow~). Das Blatt von _M. silvestris_ besitzt auf beiden Seiten Spaltöffnungen, die in der Flächenansicht eigenartige Zapfen zeigen und 3 (bis 4) Nebenzellen besitzen. Die Epidermiszellen sind wellig verbogen. Die Haare bevorzugen den Rand und die Nerven. Sie sind meist einzellige, derbe, etwas gekrümmte Borsten (Fig. 126), die oft auf Gewebepolstern sitzen, daneben finden sich Köpfchenhaare und 2-7strahlige Büschelhaare (Sternhaare), ähnlich wie bei _Althaea_, aber viel spärlicher und meist nur auf der Blattunterseite. Die Basis der Blätter ist am stärksten behaart. Im Mesophyll liegt eine Reihe Palissaden und ein relativ dichtes Merenchym. Da und dort finden sich Calciumoxalatdrusen, Schleimzellen sowohl im Mesophyll wie in der Epidermis. Im Hauptnerven liegt ein kollaterales, radial-strahliges Bündel. Das Blatt von _M. neglecta_ hat fast nur einzellige Haare. Die Blätter des Hochblattinvolukrums der +Blüte+ von _M. silvestris_ sind besonders am Rande, dann auch auf der Außenseite stark behaart. Die derbwandigen, meist ein- selten zweistrahligen, oft bis 2 mm langen Haare sitzen meist auf mehrzelligen Polstern. Im Mesophyll liegen Calciumoxalatdrusen und Schleimzellen. Die Haare der Kelchblätter sind denen des Hochblattinvolukrums ähnlich, doch treten hier daneben zahlreichere, mehrstrahlige Büschelhaare auf mit 2-9 Haarstrahlen, die bald der Epidermis direkt eingefügt, bald auf mehr oder weniger hohen Zellpolstern emporgehoben sind. Dazwischen finden sich Köpfchenhaare. Diese sind auch auf der Innenseite der Kelchblätter anzutreffen, die im übrigen einzellige, stark gekrümmte Wollhaare besitzt. Spaltöffnungen liegen auf beiden Seiten. Im Mesophyll findet sich, neben Schleimzellen, unter der Epidermis der Oberseite eine Schicht Calciumoxalatzellen. Die nur wenige Zellschichten dicken Blumenblätter enthalten den Farbstoff im Zellsaft gelöst. Die Epidermiszellen der Unterseite haben wellig verbogene Wände, die der Oberseite sind ziemlich gerade. Auf beiden Seiten, besonders reichlich an der Basis der Corolle, sitzen ziemlich viel Köpfchenhaare. Dort finden sich auch, die Einbuchtung zwischen je zwei Corollenblättern ausfüllend, zwei Haarstreifen, deren Haare einzellig und gerade sind. Von den Schleimzellen des Mesophylls sind bisweilen mehrere durch Resorption der trennenden primären Wände zu Schleimhöhlen zusammengeflossen. Auch die in der unteren Hälfte zu einer Röhre verwachsenen Filamente führen Büschelhaare und im Innern Schleimzellen. In der Antherenwand findet sich eine Faserschicht. Die Pollenkörner besitzen zahlreiche Austrittstellen für den Pollenschlauch, die Exine Stacheln und eine Stäbchenschicht. Der Griffel führt so viel Bündel als Narbenschenkel vorhanden sind, das leitende Gewebe liegt in der Mitte. Die Narbenschenkel zeigen Papillen nur an ihrer Innenseite und im Innern einen Streifen mechanisches Gewebe, das dem Krümmungsmechanismus der Narben (s. oben) dient. In jedem Fruchtknoten liegt ein anatropes, epitropes aufsteigendes Ovulum. [Illustration: Fig. 127. _Malva silvestris_ L. 1. Querschnitt durch ein Kelchblatt. 2. Querschnitt durch ein Blumenblatt am Nerven. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Chemie.= Die beiden Malven enthalten in allen Teilen +Schleim+. Der Farbstoff der Blüten wird durch Säuren rot, durch Alkalien grün. Die Asche des _Fol. malvae_ beträgt c. 16% (~Hauke~). Alle Laubblätter pflegen bekanntlich aschereich zu sein. Die Früchte enthalten einen Bitterstoff. =Verfälschungen.= _Folium Malvae_ fand ~Mitlacher~ 1910 mit den Blättern von _Xanthium strumarium_ verfälscht. Auch _Malva moschata_ wird angegeben, doch ist diese leicht schon am Geruch zu erkennen. [Illustration: Fig. 128. _Malva silvestris_ L. Haarbildungen (t) an der Außenseite des Kelchblattes. × Haarpolster. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anwendung.= Man benutzt die beiden Malven ähnlich wie _Althaea_ als Aufguß oder Beisatz zu Species (_Spec. emollientes_, _Spec. pectoral._, _Spec. ad gargarisma_, _Spec. althaeae_, _Spec. puerperarum_), auch als _Ptisana de floribus malvae_. Als Schleimmittel sind sie auch seit langem schon in Indien, Arabien und Persien in Benutzung (~Dymock~). Malvaceenblattpulver ist als Verfälschung des Pulvers der _Fol. digitalis_ beobachtet worden (1907). ~Hippokrates~ verwendete Malven neben anderen schleimhaltigen Mitteln. Die Früchte von _M. silv._, die noch jetzt viel in Indien benutzt und dahin aus Persien gebracht werden (~Dymock~), galten schon den Griechen als Aphrodisiacum, auch ~Plinius~ hält sie dafür, ebenso die Mohammedaner Indiens; ~Macer Floridus~ verwendete sie bei Frauenkrankheiten. Der schleimige Brei dient noch heute beim Volke, um die verhärtete Gebärmutter zu erweichen. «Die Malve, die unter dem Zeichen der Venus steht, macht die brünstige Katze, die sich an ihr reibt, fruchtbar auch ohne Kater» -- sagt der Volksmund. =Geschichte.= Die μαλάχη ἀγρία des ~Theophrast~ ist (nach ~Sprengel~) _Malva silvestris_. Die μαλάχη des ~Theophrast~, die baumförmig wird und als Gemüse dient, ist vielleicht auch _Malva silvestris_ oder die ebenso benutzte _Lavatera arborea_ (~Fischer-Benzon~). Ebenso erwähnt ~Hesiod~ das Malvengemüse, ~Palladius~ gibt eine Anleitung zum Anbau und ~Horaz~ singt: «me pascunt olivae, me cicorea levesque malvae» -- und auch noch später dienten auch im Norden Malvenblätter als Gemüse. Bei ~Hans Sachs~ steht: «wir essen pappeln, kraut und grasz». _M. silvestris_ wurde im Mittelalter von den Angelsachsen als Gemüse gebaut (~Hoops~). ~Plinius~, der _Malva sativa_ (Gartenmalve) und _M. silvestris_ (wilde Malve) unterscheidet, erwähnt, daß von den Gartenmalven zwei Arten unterschieden werden, die Malope (_Lavatera arborea_ und _Althaea rosea_?) und die Malache (_Malva silvestris_ und _rotundifolia_); die wilde Malve mit großen Blättern ist _Althaea_ (s. d.). Im Edict ~Diocletians~ (I, S. 570) stehen _Malvae maximae et sequentes_. ~Prosper Alpin~ beschreibt und bildet unter dem Namen melochia _Corchorus olitorius_ ab. Bei den Alten standen die Malven auch als diätetische Abführmittel in Gebrauch. ~Scribonius Largus~ benutzte die Samen, ~Caelius Aurelianus~ Samen und Wurzeln, die ~Hildegard~ ein aus dem «slimechten» Kraute bereitetes Mus. ~Albertus Magnus~ erwähnt beide: _Malva neglecta_ (= malva) und _M. silvestris_ (= arbor malvae, hier +nicht+ die Stockrose, ~Fischer-Benzon~). Die Chubbâza des ~Ibn Baithar~ ist jedenfalls eine Malve (wohl _M. rotundifolia_ oder _silvestris_). Bei ~Aruch~ und ~Raschi~ steht: Eine Pflanze, deren Blätter sich nach der Sonne wenden und die malva heißt (~Löw~). _Malva silvestr._ und _nicaeensis_ steht auch in dem Botan. Lexikon Kitâb aš-šaǧar (~Nagelberg~, Diss. Zürich 1909). In der Alphita (in der Tabulae und bei ~Serapion~) steht: _Malva hortensis_ (melochia) et _agrestis_ (minor), _Succus_ et _sem. malvae_ -- chubeze. Malven stehen bei ~Macer Floridus~ (I, S. 626) und in der Flos medicinae scholae Salerni (I, S. 629). Im Regimen sanitatis beginnt _Malva_ den speziellen Teil. Die erste Abbildung von _Malva silvestris_ finden wir bei ~Brunfels~ (I, S. 320, Fig. 310). ~Fuchs~ bildet _Malva hortensis_ (_Althaea rosea_), _M. silvestris pumila_ (_M. neglecta_) und _M. sylvestris elatior_ (_M. silvestr._) ab. Daß die Blüten der _M. silvestris_, die ~Cordus~ als _M. s. recta_ abbildete, größer sind als die der _M. neglecta_ («_vulgaris_»), wußte schon ~Bock~. _Flor. malv. commun. s. vulgaris_ finden sich in dem Catalogus von Straßburg 1685 (I, S. 827), der Taxe von Leipzig 1689 u. and. =Lit.= ~Berg-Schmidt~, Atlas 2. Aufl. t. 104 und 105 (dort die systemat. Liter.). -- ~Pabst-Koehler~, Medizinalpflanzen t. 59. -- ~Nees v. Esenbeck~, Pl. med. t. 415. -- ~Luerssen~, Med. pharm. Bot. S. 664 (dort die botan. Lit. der Familie). -- ~Arthur Meyer~, Drogenkunde. -- ~Karsten-Oltmanns~, Pharmakogn. Fig. 315-318. -- ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. II, 1, Fig. 99 E und III, 6, Fig. 17. -- ~Rauter~, Denkschr. Wien. Akad. 31 (1872) 23, t. 7 (Entwickl. d. Haare). -- ~Dumont~, Ann. sc. nat. bot. VI (1887) 138. t. 4. -- ~Kuntze~, Bot. Centralbl. 1891. -- ~Solereder~, System. Anat. der Dikotylen (dort weit. Lit.). -- ~Adolf Meyer~, Anat. Char. offiz. Blätter, Halle 1882. -- ~Lemaire~, Déterm. histol. d. feuilles médicin. Paris 1882. -- ~Tschirch~, Anatomie und ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas (dort das anatom. Detail). -- ~Lohde~, Entwicklungsgesch. u. Bau einiger Samensch. Diss. Leipzig 1874. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde 1885, II. 749. -- ~Holfert~ (Nährschicht). Flora 1890. -- Entwicklungsgesch. d. Samens in ~Bochmann~, Beitr. z. Entwicklungsgesch. offizin. Samen u. Früchte. Dissert. Bern 1901. -- ~Grassmann~, Pflanzennamen. -- ~Kluge~, Etymol. Wörterb. -- ~Flückiger~, Pharmak. -- ~Hauke~, Aschengehalte 1902. Flos Malvae arboreae. =Syn.= Stockrose, Stockmalve, Winterrose, Pappelrose, Schwarze Malve -- passe rose, rose trémière, rose d’outremer, bâton de Saint-Jacques (franz.) -- garden mallow (engl.) -- english hollyhock (in Indien) -- stokroos (hol.) -- vörösmályvarirag (ung.) -- ἄνθη μαλάχης τῆς δενδροειδοῖς (n.-gr.) -- fu-sang (chin.). -- Bei ~Megenberg~: Weizpappel -- im Ortus sanitatis: felris -- Soll das chatmi des ~Qutsâmî~ und and. pers.-arab. Autoren sein, das auch Schahm-el-marah genannt wird (~Dragendorff~). =Stammpflanze Althaea rosea= (L.) ~Cavanilles~ (Alcea rosea L.). +Malvaceae+ -- Malveae -- Malvinae. =Etym.= Alcea, αλκέα (von αλκέειν = heilen) in der Orphischen Argonautika und bei ~Dioskurides~, bei letzterem «eine Art wilder Malve», d. h. die in Griechenland häufige _Malope malacoides_. =Beschreibung und Kultur.= Die zwei- oder mehrjährige, einen prächtigen Gartenschmuck bildende Pflanze besitzt eine innen weiße, schleimige Wurzel (vgl. S. 354) und treibt im zweiten Jahre einen geraden, bis 3 m hohen, runden, einfachen oder wenig verästelten, blütentragenden Stengel. Die gestielten, runzeligen, rundlich-herzförmigen, gekerbten, steifhaarig-filzigen Blätter sind unten 5-7lappig, oben 3lappig und kürzer gestielt. Auch die Blattstiele sind stark behaart. Die Nebenblätter sind ziemlich breit und in mehrere Zipfel gespalten. Die großen Blüten, die bisweilen einen Durchmesser von 7,5 cm erreichen, sitzen einzeln oder zu mehreren in den Achseln der Blätter. Das Hochblattinvolukrum (der Außenkelch) ist 6-9spaltig, halb so lang als der Kelch, stark behaart. Der Kelch ist unten verwachsen, oben in 5 Zipfel gespalten. Die Farbe der Korolle wechselt nach den Varietäten von weiß zu gelb, braun, blau, purpurn bis schwarz. Die 5 Kronenblätter sind geschweift oder ausgefressen gekerbt, breit-herzförmig oder rundlich-dreieckig, etwas wellig verbogen, an der Basis genagelt. Bei den gefüllten Varietäten ist ihre Zahl durch Umbildung der äußeren Stamina oft stark vermehrt. Die Staubfadenröhre geht oben in zahlreiche Filamente über, die monothecische Antheren tragen. Der vielfächerige Fruchtknoten ist zusammengedrückt, gefurcht und behaart. Die Griffel sind kürzer als die Staubfäden. Die Frucht ist von dem Kelche behüllt, in der Mitte genabelt. Sie besteht aus 20-40 rinnenförmigen, am Rücken tiefrinnenförmigen einsamigen, nicht aufspringenden Früchtchen. _Althaea rosea_ wächst wild im Orient. Sie findet sich (wohl verwildert?) auf den Bergen Italiens, Griechenlands, Syriens und der benachbarten Länder. Sie wird im größten Teile von Europa bis nach Norwegen (Throndhjem) hinauf als Gartenpflanze gezogen, in einigen Mengen bei Nürnberg (stark zurückgegangen, ~Schwarz~ 1910) und in Württemberg; dann auch in Ungarn, z. B. in der Versuchsstation in Klausenburg (~Pater~), im Komitat Neutra (~Agnelli~), in Eger u. and. Orten (vgl. ~Mitlacher~ 1909). Mittelfranken soll jährlich 50000 kg ausführen, besonders nach Frankreich, England und der Türkei (~Glan~ 1892). In Griechenland sammelt man auch von der wildwachsenden Pflanze (~Heldreich~). ~Morison~ erwähnt _Alth. rosea_ unter den Arzneipflanzen der südlichen Mandschurei. Die Stockrose wird in allen Farben -- blau, purpurn, fast schwarz, gelb, braun, weiß -- gezogen. Sie findet sich fast regelmäßig in den Bauerngärten Deutschlands und der Schweiz, wird aber auch anderwärts, z. B. in Vorderindien kultiviert. Arzneilich und als Farbstoff liefernd wird nur die blauschwarze Varietät und vorwiegend die mit gefüllten Blüten benutzt. Sie findet sich im Handel cum calyce und sine calyce. =Pathologie.= _Puccinia Malvacearum_ ~Mont.~ und die verschiedenen Imperfekten, welche die Blätter von _Althaea rosea_ schädigen, können auch auf dem Außenkelch und auf dem Kelche der Blüten zur Entwicklung kommen (~Ed. Fischer~). =Anatomie.= Der etwa 2,5 mm dicke +Blütenstiel+ zeigt ein großes Mark, einen schmalen Gefäßbündelzylinder, einen ununterbrochenen peripherischen, etwa 10 Zellen breiten Collenchymring und an der Grenze desselben nach Innen einen Kreis von meist isolierten Schleimzellen. Die letzteren sind 13-35 mik breit, besitzen ein sehr enges Lumen und breite, treffliche Schichtung zeigende sekundäre Membranverdickungsschichten. Der Epidermis der Blütenstiele sitzen zahlreiche einfache oder Büschelhaare auf. Die Blätter des +Außenkelches+ sind innen (oben) glatt und dort größtenteils unbehaart. Die Epidermiszellen sind hier sehr stark verdickt. Nur an den Blatträndern, sehr selten auch auf der Blattfläche, treten einzelne Haare auf. Dieselben sind stets einfach, entweder gerade oder vielfach gewunden, gekrümmt und durcheinandergeschlungen. Die Blatt-Außen-(Unter)-Seite ist dicht filzig behaart. Die Haare sind hier nur selten einfach, meist sind es Büschelhaare (Sternhaare). Dieselben sind mit ihrem breiten Fuße entweder der Epidermis direkt oder einem flachen Gewebshöcker eingefügt und besitzen meist 8 Strahlen. Ihre Größe variiert sehr, sie kommt in der Länge der Strahlen zum Ausdruck, die bis zu mehreren Millimetern steigen und bis auf 50 mik herabgehen kann. Diese Sternhaare sind für die Droge sehr charakteristisch. Eingestreut in das reich durchlüftete Mesophyll der Hochblätter finden sich zahlreiche Schleimzellen und Schleimzellgruppen und Gefäßbündel (Nerven). Die Blätter des Kelches sind ähnlich wie die Hochblätter des Außenkelches gebaut, d. h. sie sind außen sehr stark behaart -- fast noch stärker als die Außenkelchblätter und innen kahl oder doch nur an den Rändern behaart. Ihr Mesophyll ist dichter, Schleimzellen sind seltener und meist isoliert. Kalkoxalatdrusen finden sich im Mesophyll häufig, besonders in den Schichten unter der Epidermis der Blattoberseite. Die Blätter der +Korolle+ zeigen beiderseits eine Epidermis, die an den unteren Teilen des Blattes aus gestreckten, geradwandigen, an den oberen aus Zellen mit wellig verbogenen Seitenwandungen besteht. Die Zellen, beiderseits gleichgestaltet und nicht sehr hoch, enthalten ein Plasmanetz, deutlichen Zellkern und eine intensiv blaue Farbstofflösung. Das Mesophyll ist nur im basalen Teile des Blattes viele (10) Zellschichten dick, in dem überwiegenden Teile desselben besteht es nur aus wenigen Reihen und ist fast vollständig verschleimt. Die Verschleimung ist eine so starke, daß oft der gesamte Zwischenraum zwischen den Gefäßbündeln (Nerven) eine einzige große Schleimhöhle bildet. Diese Schleimhöhlen kommen dadurch zu stande, daß eine Gruppe benachbarter Zellen ihre Membranen verdickt, also jede Zelle auf der primären Membran sekundäre, aus Schleim bestehende Membranverdickungsschichten ablagert. Dies geschieht in so ausgiebigem Maße, daß das Lumen auf einen kleinen Raum reduziert wird. Läßt man zu einer solchen Gruppe Wasser hinzutreten, so tritt zunächst an jeder einzelnen Zelle die Schichtung deutlich hervor. Die Zellen dehnen sich dann stark aus, sprengen die primären Zellulosemembranen, die Schleimschichten der einzelnen Zellen fließen zusammen und es entsteht so eine große, oft 400-550 mik weite, oft von Bündel zu Bündel reichende mächtige Schleimhöhle. Auch in der lebenden Pflanze findet ein solches Aufquellen der Zellen und ein Zusammenfließen der Schleimzellen statt und tritt hier (wie bei den Tiliaceen) bisweilen noch eine nachträgliche Auflösung der primären Membranen ein. Die fertigen Höhlen lassen bisweilen (freilich selten) noch eine ganze Anzahl nebeneinanderliegender geschichteter Schleimklumpen erkennen, meistens ist jedoch das Ganze zu einer homogenen Schleimmasse zusammengeflossen. An der Basis sind besonders am Rande die Blumenblätter mit einem Haarbesatz bekleidet. Die Haare desselben sind sehr lang. =Chemie.= Die Blüten enthalten viel +Schleim+, einen eisengrünenden +Gerbstoff+ und +Farbstoff+. Der wässrige Auszug der Stockrosenblüten ist stark schleimig. Die Blumenblätter geben mit verdünntem Alkohol (1 = 10) einen violettroten Auszug, der noch in 1 cm dicker Schicht undurchsichtig ist (~Flückiger~). Mit Ätzkalk liefert dieser Auszug einen grünen Bodensatz und ein (fast) farbloses Filtrat. Alaun färbt violett, schüttelt man darauf mit Calciumkarbonat, so wird die Farbe der Lösung bleibend blau. Brechweinstein färbt violett. Rotweinfarbstoff verhält sich ganz anders. Bei Gemischen beider werden aber die Reaktionen undeutlich. Die Lösung des Farbstoffes von _Alth. ros. rubr._ wird mit Ammoniak, Natronhydrat und Soda grün, durch Salzsäure und Salpetersäure rot, durch Essigsäure rotviolett, durch Eisenchlorid braunrot, durch Zinnchlorür violett, durch Alaun und Soda entsteht ein grüner Niederschlag, das Filtrat ist farblos; ebenso durch Bleiazetat und Bleiessig. Der Farbstoff der _Flos alcaeae_ verhält sich ähnlich, doch ist bei den Bleifällungen das Filtrat grün (~van der Driessen~). Konzentrierte Kupfersulfatlösung färbt die Farbstofflösung violett (Rotwein wird dadurch entfärbt, ~Böttger~). Der Malvenfarbstoff gibt in Lösung in sehr verdünntem Alkohol ein breites Band zwischen F und D ~Fraunhofer~, das nach Zusatz von Ammoniak nach dem roten Spektrumsende rückt und dann zwischen D und C liegt, nach Zusatz von Alaun liegt das Band auf D und ist gegen Rot scharf begrenzt, gegen Grün verwaschen (~Phipson~, ~H. W. Vogel~). Das Malvenband kommt nach Zutröpfeln von Alaun bei noch schwach saurer Reaktion, das Ammon-Rotweinband erst bei völliger Neutralisation zum Vorschein. Aus sauer reagierendem Wein nimmt Amylalkohol zuerst den Malvenfarbstoff auf, dann erst den Rotweinfarbstoff. Malvenwein färbt sich mit Kupfersulfat schön violett, Bleiessig fällt grün. Gärung verändert den Farbstoff nicht wesentlich. Ein Zusatz von Malvenfarbstoff beeinträchtigt die Haltbarkeit des Weines. Der Malvenfarbstoff ist unbeständig. Er bildet mit dem des Flieders eine Gruppe, die bestimmt von der der Kirsche und der Heidelbeere verschieden ist (~H. W. Vogel~). Der Farbstoff läßt sich in einen wasserlöslichen und einen in Wasser unlöslichen, alkohollöslichen trennen, die sich durch Farbe und Reaktion unterscheiden. Der letztere, der bei der Kalischmelze Hydrochinon und Brenzkatechin liefert, hat die Formel C₁₄H₁₆O₆ (mit 2 OH-Gruppen), der erstere ist ein Glykosid (~Grafe~). Man hat den Malvenfarbstoff auch zur Herstellung von Reagenspapier empfohlen (Vorschrift in ~Fischer-Hartwich~, Pharm. Praxis II, 346). Das Papier wird durch Säuren rot, durch Alkalien grün. Die Empfindlichkeit gegen HCl ist 1 : 13000, die zu NH₃ 1 : 20000. Der Farbstoff ist nicht nur ein spezielles Codeinreagens (~Benezech~), sondern reagiert auch mit einigen anderen Alkaloiden (z. B. Atropin, Brucin, Nikotin) mit grüner, mit Chininsulfat mit Purpurfarbe. Er ist aber indifferent gegenüber Morphin, Cocain, Kaffein und Cinchonin (~Woolsey~). =Anwendung.= Man benutzt die _Flor. malv. arbor._ zur Herstellung schleimiger Dekokte und Gurgelwässer, z. B. bei Angina. Der Farbstoff wird jetzt nur noch wenig zum Auffärben von Rotweinen benutzt, da sich hierfür haltbarere Pflanzenfarben besser eignen (Kermesbeeren, Liguster, Orseille, Cochenille). =Geschichte.= Die Stockrose scheint im Altertum und Mittelalter nicht bekannt gewesen zu sein, die Malven des ~Theophrast~, ~Dioskurides~ und ~Albertus Magnus~ sind andere Pflanzen (vgl. oben S. 363). ~Galens~ Baummalve (δενδρομαλάκη nach ~Fraas~ die μαλάκη δενδρώδης des ~Theophrast~) ist wohl _Lavatera arborea_ L. Erst im XVI. Jahrh. begegnen wir ihr sicher, bei ~Bock~ (sowie ~Tabernaemontanus~, ~Matthioli~) heißt sie Herbst- oder Ernrose, weil sie erst zur Erntezeit blüht, oder römische Pappeln, _Malva romana_, auch _Rosa ultra marina_. ~Bock~ und ~Gesner~ beschreiben sie und bilden sie ab. Sie war schon damals in zahlreichen Farbenvarietäten bekannt (vgl. ~J. D. Host~, Malva arborescens lutea Gissae 1654). ~Fischer-Benzon~ ist der Ansicht, daß sie durch die Türken nach Europa kam. Auch der sich bei ~Bock~ und ~Gesner~ findende Beisatz _romana_ deutet ihren fremden Ursprung an. Sie war wohl im XVI. Jahrh. diesseits der Alpen noch selten (~Flückiger~). Doch finden wir bei den patres botanices Abbildungen und Beschreibungen von ihr. Der Vergleich mit einer (geruchlosen) Rose findet sich bereits bei ~Porta~ (Villae), ~Bock~ («nobilem hunc rosam») und ~Matthioli~, der Ausdruck _Malva rosea_ bei ~Lobelius~ (Adversaria 293); später finden sich dann auch noch die Bezeichnungen _Malva rosacea hortensis_, _Rose di Francia_ (bei Neapel). Möglicherweise bezieht sich auch der Ausdruck _Rosa syriaca_ auf die Stockrose (?) und ihre Herkunft aus der Türkei. Die Bezeichnung _ros syriacus_ (Flos malvae vel orni id est querci) in der Alphita (I, S. 657), an anderer Stelle (I, S. 648): _flos syriacus_, _flos malvae_, _ros syriacus_ = _flos orni_ ist unklar, bezieht sich aber wohl nicht auf die Stockrose. In der Alphita oxoniensis (I, S. 652) steht _Malua siriaca_ (molochia, malua domestica siue ortulana). In den mittelengl. Medizinbüchern (I, S. 683) _flos siriacus_, _malew_, _malowys_ (~Henslow~ deutet dies als _M. silvestris_). Nach dem Pinax ~Bauhins~, in dem sich auch eine _Alcea arborescens Syriaca_ befindet, ist die syrische Malve eine von _A. rosea_ verschiedene Art (?). In der Reformatio von Worms von 1582 (I, S. 817) finden sich: _Flos malvae arb._ = Finrosen, Halsrosen oder Brennrosen. _A. ros._ steht auch im Pen tsʿao kang mu (I, S. 518). =Lit.= Abbild. in ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 19, ~Nees von Esenbeck~, Pl. med. t. 416 und ~Berg-Schmidt~, Atlas (I. Aufl.) t. 21. -- ~Morison~, Jahresber. d. Pharm. 1885, 12. -- ~Mitlacher~, Arzneipflanzenkultur. Pharm. Post 1909. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- Nährschicht: ~Holfert~, a. a. O. =Farbstoff=: ~H. W. Vogel~, Absorptionsspektra. Ber. d. d. chem. Ges. 1875, 1246 u. 1876, 1906 und Spektralanalyse. -- ~Phipson~, Chem. News 20, 229 (Zeitschr. anal. Chem. 9, 121). -- ~Böttger~, Zeitschr. anal. Chem. 15, 102. -- ~van der Driessen~, Ned. Tijdskr. 1900. -- ~Grafe~, Stud. über d. Anthokyan. Anz. d. Wien. Akad. 1909. -- ~Benezech~, Pharm. Zeit. 1892, 547. -- ~Woolsey~, Althaea rosea. Bulletin of pharm. 1897, 342. -- ~Glan~, Über d. Farbstoff d. schw. Malve. Dissertat. Erlangen 1892 (Beih. z. Bot. Zentralbl. 1893, 292). -- ~Weigert~, Jahrb. d. önolog.-pomolog. Lehranst. Klosterneuburg 1894. -- Empfindlichkeit des Malvenpapiers: Pharm. Post 1895, Nr. 1. -- ~Hasterlik~, Mitt. aus d. pharm. Instit. Erlangen 1890. -- Vgl. auch ~Linsbauer~ in ~Wiesner~, Rohstoffe II, 656. Spektralanalyt. Verhalten verschieden behandelter Lösungen des Farbstoffes in ~König~, Nahr.- u. Genußm. III. B. (1910), 584. Flos Tiliae. =Syn.= Lindenblüte -- tilleul (franz.) -- linden oder lime tree (engl.) -- linde (holl.) -- tiglio (ital.) -- tilo (span.) -- niinipuun kucka (fin.) -- hársfa (ung.) -- ἄνθος φιλύρας (n.-griech.). +ahd.+: lin, lind, linda, linta -- +mhd.+: linde, leynde, lindeboumen -- +anord.+: lind -- +ags.+: lind -- +serb.+, russisch, böhm. +wend.+: lipa (davon Leipzig!) -- arab.: uglamur -- jap.: badaisin. =Etym.= Linde ist ein uralter Name und in vielen, sehr alten Ortsnamen enthalten. Linter (lin = Lein, ter, tera, tra = Baum, also Leinbaum, wegen der faserigen Rinde), «der uralte deutsche Bast- oder Gewandbaum», noch jetzt in St. Gallen: Bastholz. Das ahd. linta bedeutet sowohl Linde wie Bast, das altnord. lindi Gurt, das schweiz. linte Flachs und Hanf, das schwedische linda auch Binde -- alle Bezeichnungen hängen also mit Binden und Bast zusammen. Im Isländischen bedeutet lind Baum schlechthin (Katexochebegriff, vgl. I, S. 1066). (Vielleicht (?) in Beziehung zu ἐλάτη, lentâ = Fichte, vgl. den Wandel in der Bedeutung von Baumnamen in ~Kluge~, Etymol. Wörterbuch). Mit «gelinde» hat es jedenfalls nichts zu tun, wie ~Lonicerus~, ~Adelung~ u. and. meinen. Übrigens kommt auch der Name ~Linné~ von Linde (und zwar von einem bestimmten Lindenbaum). Tilia (von θήλεια) wird meist mit πτίλον (= Flügel) zusammengebracht, wegen der flügelartigen Bractee. Andere bringen es mit τίλος (= Faser) zusammen und dies scheint mir das wahrscheinlichere. Auch zu φιλύρη (= Linde +und+ Bast -- verwandt mit φλόος = Bast) -- was auch einiges für sich hat -- ja sogar mit πτελέα (= Ulme) ist tilia in Beziehung gebracht worden (~Kanngiesser~). =Stammpflanze.= =Tilia Europaea= L. (Spec. pl. ed. I, 514) wird jetzt in folgende Arten gespalten: =Tilia ulmifolia= ~Scopoli~ Fl. Carn. I, 374 (1772) [T. europaea L. ex parte (γ), T. parvifolia ~Ehrhart~, T. microphylla ~Ventenat~, T. silvestris ~Desf.~, T. cordata ~Mill.~], Spät-, Winter-, August-, wilde, Wald- oder Steinlinde. Bei ~Bock~: wild Lindenbaum (T. silvestris), -- blüht Ende Juni bis Mitte Juli (in Süddeutschland c. 10. bis 25. Juli) -- mit der Form +intermedia+ ~Dc.~ [T. europaea L. ex parte (α), T. hybrida ~Bechst.~, T. vulgaris ~Hayne~] und die für uns weniger wichtige =Tilia platyphyllos= (auch platyphylla ~Ascherson~) ~Scopoli~ Fl. Carn. I (1772) [T. europaea L. ex parte (β), T. grandifolia ~Ehrhart~, T. pauciflora ~Hayne~, T. cordifolia ~Bess.~], Früh-, Sommer-, Gras-, Hamburger oder holländische Linde. Bei ~Bock~: zam Lindenbaum (T. sativa), -- blüht Anfang bis Ende Juni oder Anfang Juli, c. 14 Tage früher als T. ulmifol. (doch kehrt sich in Italien das Verhältnis um, ~Flückiger~). -- Nebst Hybriden zwischen beiden Arten. Bei den Tiliaarten muß der Autor beigesetzt werden. Es gibt drei grandifolia und drei platyphyllos (~Holmes~). =Systemat. Stellung.= +Tiliaceae+, Tilieae. =Etym.= Auf die kleinen Blätter bezieht sich: parvifol. (von parvus) und microphylla (von μικρός), auf die großen Blätter: grandifolia, auf die wenig zahlreichen Blüten pauciflora. =Beschreibung.= Die Linde wird bis 50 m hoch und bis 600 und mehr Jahre alt. Sie trägt eine dichte, gerundete Krone mit weit ausladenden Ästen. «Die jüngsten Zweigchen sind deutlich zweizeilig wie eine Steigeleiter angeordnet» (~Schumann~). Die leicht abziehbare Rinde ist reich an Bastfasern. Das helle Holz ist sehr gleichmäßig gebaut. In Mark und Rinde liegen Schleimzellen. Die deutlich zweizeilig, abwechselnd dorsiventral angeordneten Blätter sind gestielt, schief herzförmig, zugespitzt, ungleich gesägt bei _T. ulmifolia_, oberseits kahl und dunkelgrün, unterseits blaugrün, bei _T. platyphyllos_ ist die Farbe der beiden Blattseiten fast gleich. In den Achseln der Nerven sitzen bei _T. ulmifolia_ rotgelbe, bei _T. platyphyllos_ weißliche Haarbüschel. Diese Haarbüschel sind Domatien für Milben. Die Milben halten als «Dank» für die Unterkunft, die ihnen das Blatt gewährt, bei ihren Exkursionen während der Nacht -- am Tage bleiben sie im «Milbenhäuschen» -- das Blatt von Pilzsporen u. and. Schädlingen frei (Symbiose). _T. ulmifolia_ hat meist kleinere Blätter als _T. platyphyllos_, auch sind die Blätter kahl, während sie bei der anderen Art weichhaarig zu sein pflegen. Die Nebenblätter werden beim Austriebe abgeworfen, nachdem sie als Knospenschuppen gedient haben. Die bei _T. ulmifolia_ vorgestreckte, bei _T. platyphyllos_ hängende +Infloreszenz+ zeigt folgenden Bau. Das Laubblatt der blühenden Zweige (l, Fig. 129) trägt in seiner Achsel auf der einen Seite eine gestielte Infloreszenz mit einem, dem Stiele halb angewachsenen flügelförmigen Blatte (a, Fig. 129), auf der anderen eine kleine Knospe (b). Die Infloreszenz ist als der Achselsproß des Laubblattes l aufzufassen, das Blatt a ist das eine, das Deckblatt der Knospe (b) das andere Vorblatt dieses Achselsprosses. Das Blatt a bleibt steril, in der Achsel von b entsteht eine (überwinternde) Knospe. Diese Knospe (b, Fig. 129) ist eine Laubblattknospe, nicht eine Blütenstandknospe wie bei ~Flückiger~ u. and. steht (vgl. den Querschnitt Fig. 129). Die Blütenstände entstehen erst an den Jahrestrieben, daher blüht die Linde so spät. Die Infloreszenz selbst schließt mit einer Gipfelblüte (t), der drei zarte Hochblättchen c, d und e vorangehen, die in einer Spirale angeordnet sind (Fig. 129), c bleibt steril, die beiden anderen d und e entwickeln in ihren Achseln Blüten, deren Stielen sie eine Strecke weit angewachsen sind. Diese Blüten haben zwei sehr zarte, ungleich hoch inserierte, hinfällige Vorblättchen. Aus diesen kann sich die Verzweigung fortsetzen. Bei _T. platyphyllos_ +beträgt die Zahl der Blüten+ 3-7, +bei+ _T. ulmifolia_ +bis+ 13 (+oder gar+ 15). Die sekundäre Verzweigung der Infloreszenz ist dichasialwickelig. Die etwa 6-8 cm lange Infloreszenz ist besonders ausgezeichnet +durch das der Infloreszenzachse ein Stück weit+ -- meist etwa bis zur Mitte -- +angewachsene große+, lineal-längliche, zungenförmige, stumpfe, ganzrandige, häutige, netzadrige, bleich-grüngelbliche +Deckblatt+ (sog. Bractee -- es ist aber ein Hochblatt). Die proterandrische +Blüte+ ist fünfzählig. K 5, C 5, A (30-40)/5 G. (̲5). Die zahlreichen Stamina sind als aus fünf epipetalen Primordien entstanden zu denken. [Illustration: Fig. 129. _Tilia platyphyllos._ 1. Infloreszenz in der Aufsicht. 2. Dasselbe im Grundriß. Die Buchstaben bezeichnen die korrespondierenden Teile. 3. Blüte im Längsschnitt. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Der +Kelch+, der besonders beim Aufblühen sehr angenehm riechenden (bei _T. platyphyllos_ ansehnlicheren) Blüten besteht aus fünf in der Knospenlage klappigen, leicht abfallenden, oval-oblongen, kahnartigen, c. 5 mm langen, grau-grünen, behaarten Blättern. Die fünf mit den Sepalis alternierenden Kronenblätter sind länger als die Kelchblätter, grünlich-gelb (bei _T. plat._ gelb), oblong-spatelförmig, an der Spitze abgerundet oder zugespitzt, in der Knospenlage gedreht. Sie besitzen an ihrer Basis auf der Innenseite ein drüsiges Nectarium (~Schnitzlein~), weshalb die Blüten viel von Bienen und Fliegen besucht werden, die vom Dufte angelockt, oft zu hunderten die blühende Linde umschwärmen. Die zahlreichen (30-40), freien Staubgefäße sind kaum länger als die Blumenblätter. Sie stehen in fünf epipetalen Phalangen und sind alle fruchtbar. An der Spitze ist das Filament gegabelt und trägt an den Gabelästen die beiden gesonderten Thekae (Antherenhälften), die am Rücken angeheftet sind und mit Längsspalten aufspringen. Der oberständige Fruchtknoten ist kugelig, dicht filzig. Er besteht aus 5 (selten 3 oder 4) Carpellen und ist meist fünffächerig. In jedem Fach liegen zwei anatrope, aufstrebende Ovula. Von allen zehn wächst aber nur eins (oder zwei) zu dem endospermhaltigen Samen heran, die anderen verkümmern und werden beiseite geschoben. Der einfache Griffel ist kürzer als die Staubgefäße und trägt an der Spitze eine fünflappige, papillenfreie Narbe, deren Lappen vielfach zerschlitzt sind. Die nußartige, einsamige Frucht ist 7-8 mm breit, fast kugelig, mit kurzer, schiefer Spitze versehen. Die Früchte sind bei _T. ulmifolia_ dünnschalig, zerbrechlich, undeutlich-kantig, bei _T. platyphyllos_ größer (oft 4 mm), fünfkantig, mit holziger Schale. Der Fruchtstand trägt noch die Bractee (s. oben). Dies «Flügelblatt» dient ihm als Flugapparat. Der Same enthält reichlich Endosperm und einen Keimling mit gefalteten, blattartigen, fünflappigen Keimblättern, sowie einer dicken Radicula. =Verbreitung.= _T. platyphyllos_ erreicht ihre Polargrenze schon in Mitteldeutschland (~Willkomm~), wo sie übrigens ursprünglich nicht heimisch war (~Grisebach~). _T. ulmifolia_ dagegen, die nach den Moorfunden zu schließen, als alteinheimische Pflanze Nordwestdeutschlands anzuerkennen ist (~Hoops~, vgl. auch ~Bock~ oben S. 367) und die sich im größten Teile von Europa findet, geht wildwachsend in Norwegen und im Ural bis zum 62°, in Schweden bis zum 63° (in Anlagen bis zum 68°, ~Schübeler~). Im Süden findet sie sich mehr in den Bergen (bis 1200 m). Sie fehlt in Süd-Spanien, Süd-Italien und Griechenland, findet sich aber in den südlichen Kaukasusländern und geht über den Ural bis zum Altai. Im russischen Gouvernement Kostroma finden sich Linden noch auf dem 68°. _T. platyphyllos_ ist wohl im Südosten (Donauländer, Griechenland, Unteritalien, Spanien) heimisch. Wälder bildend ist die Linde in Deutschland nie gewesen und ist sie auch heute nicht, im Osten dagegen, z. B. am Dnjepr, finden sich große Lindenwälder. Beide Linden finden wir oft als Alleebäume, in Anlagen, auf Friedhöfen, am Dorfteich, «am Brunnen vor dem Tore», -- sowie als «Gedenklinden» angepflanzt. _T. platyphyllos_ ist stärker und langlebiger als _T. ulmifolia_. =Lit.= ~Berg-Schmidt~, Atlas II. Aufl. t. 108 (dort die systemat. Liter.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 15. -- ~Szyszylowicz~, Syst. d. T. Englers Jahrb. VI (1885). -- ~J. Moeller~, Pharmakogn. Fig. 108 u. 109 und Artikel Tilia in Realenzykl. d. Pharm. -- ~Eichler~, Blütendiagr. -- ~Schumann~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. -- ~Tschirch-Oesterle~, Atlas. -- ~Schübeler~, Pflanzenwelt Norwegens. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Grisebach~, Vegetat. d. Erde I, 142. -- ~Willkomm~, Forstl. Flora. -- ~Schnitzlein~, Das Honigorgan d. Lindenblüte. Ber. Naturhist. Ver. Augsburg 1858. -- ~Holmes~, Pharm. Journ. 1900, 418. =Einsammlung.= Lindenblüten werden gesammelt in Deutschland (Franken, Elsaß) -- der Elsaß liefert jährlich 2-3000 kg (~Rosenthaler~) -- der Schweiz, speziell in den Kantonen Bern, Solothurn, Luzern, Uri, Wallis, St. Gallen (~Schürmann~), Österreich (z. B. Mähren), Ungarn (~Pater~) und den Balkanländern. Montenegro führte 1907 für 20900 Kronen _Flos tiliae_ aus (~Tunmann~); auch Österreich exportiert (~Mitlacher~), ebenso Belgien (I, S. 100) und das Gouvernement Poltawa (Rußland). Durch, wegen der Beschädigungen der Bäume durch vandalisches Abreißen ganzer blütentragender Zweige, erlassene polizeiliche Verfügungen ist das Einsammeln von Lindenblüten in Deutschland sehr erschwert. Die Handelsware besteht (nach ~A. Meyer~) meist aus den Blütenständen von _T. platyphyllos_, obwohl die von _T. ulmifolia_ höher geschätzt werden. 4 Teile frische Blüten geben 1 Teil trockene. Will man oxydasehaltige Blüten, so muß man bei niedriger Temperatur im Schatten trocknen, da die Oxydase durch scharfes Trocknen und Sonnenlicht zerstört wird (~Carles~). Der Vorrat ist jährlich zu erneuern, da die Blüten sich rasch verriechen. Der Geruch nimmt schon beim Trocknen stark ab. Es ist auch _Fl. Til._ +sine+ _bracteis_ im Handel. =Lit.= ~Mitlacher~, Pharm. Post 1909. -- ~Rosenthaler~, Apoth. Zeit. 1909. -- ~Schürmann~, Schw. Wochenschr. 1908. -- ~Tunmann~, Apoth. Zeit. 1910. =Pathologie.= Auf den Blättern der Linde kommen verschiedene parasitische Pilze, namentlich Pyrenomyceten und Imperfekten vor. Dieselben können sicherlich auch mitunter das Deckblatt der Infloreszenzen oder letztere selber befallen. Es wird dies angegeben für _Gloeosporium tiliaecolum_ ~Allescher~, welches nach ~Laubert~ (Zeitschrift f. Pflanzenkrankh. Bd. 14, 1904) auch auf diesen Teilen auftreten kann (~Ed. Fischer~). Über die tierischen Schädlinge der Linde berichtet ~Israel~: +Käfer+: _Pogonocherus hispidus_ L. Die Larve dieses Bockkäfers lebt in dürren Zweigen von _Tilia_- und _Acer_arten. _Bostrychus tiliae_ ~Fb.~ Larve unter der Rinde von Lindenbäumen. _Aegosoma scabricorne_ ~Scop.~ Die Larve dieses selteneren Käfers lebt im Holze der Linde und anderer Laubbäume. _Rhynchites betuleti_ ~Fabr.~ Larve auf Linde, Birke, Haseln usw. _Dorcus parallelepipedus_ L. Larve in kernfaulen Linden, Buchen, Hainbuchen, Nuß- und Obstbäumen usw. _Osmoderma eremita_ ~Scop.~ Die Larve dieses Käfers lebt meist zu mehreren in kernfaulen Linden, Erlen, Eichen usw. _Anobium tessellatum_ ~Fabr.~ Larve gesellig in Lindenstöcken usw. +Falter+: _Vanessa antiopa_ L., _Smerinthus tiliae_ ~Hb.~ an Lindenblättern. _Zeuzera aesculi_ L. Im Holze der Äste. _Cossus ligniperda_ O. Im Stammholze und den starken Wurzeln von _Tilia_, _Salix_, _Populus_, _Prunus_, _Quercus_ usw. usw. _Aglia tau._ ~Hb.~, _Gastropacha lanestris_ ~Hb.~, _Notodonta camelina_ ~Hb.~, _Stauropus fagi_ ~Hb.~, _Phalera bucephala_ ~Hb.~, _Orgyia pudibunda_ ~Hb.~, _Ocneria dispar._ L., _Liparis monacha_ ~Hb.~, _Liparis auriflua_ ~Hb.~, _Laria V. nigrum_ F., _Miselia aprilina_ L., _Acronycta alni_ ~Hb.~ und andere _Acronycta_-Arten. _Orthosia_ und _Xanthia_-Arten, _Amphipyra pyramidea_ ~Hb.~, _Crocalis elinguaria_ ~Hb.~ und viele andere +Spanner+. _Tortrix_- und _Penthina_-Arten usw. usw. +Schnabelkerfe+: An den Trieben der Linde und ihren Blättern leben auch eine Anzahl schwer zu bestimmender Aphiden. [Illustration: Fig. 130. _Tilia platyphyllos._ Epidermis der Ober- (Innen-)Seite des Kelchblattes. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Anatomie.= Die ziemlich dicken (270-330 mik) +Kelchblätter+ besitzen auf der Oberseite große polyëdrische Epidermiszellen und zahlreiche lange, dünne, einzellige, gerade oder hin- und hergebogene Haare (Fig. 130) und Büschelhaare mit 2-5, bisweilen ungleich langen Strahlen und oft gekrümmter Spitze. Am Blattrande liegen zweistrahlige Büschelhaare mit oft stark verbogenen und durcheinander geschlungenen Strahlen. Besonders die subepidermale Zellreihe führt Calciumoxalatdrusen. Im Mesophyll finden sich zahlreiche, oft zu Gruppen vereinigte Schleimzellen, deren trennende primäre Wand oft auch verschleimt, so daß große Schleimhöhlen entstehen. Die sekundäre Schleimmembran zeigt (besonders beim Präparieren in Alkohol) schöne Schichtung. Die Epidermis der Unterseite ist kleinzelliger und trägt keine oder doch nur wenige Haare. Die viel dünneren (105-140 mik) +Korollenblätter+ sind oft nur 3-5 Zellreihen dick. Die gestreckten, nur wenig wellig verbogenen Epidermiszellen beider Seiten zeigen eine gefaltete Cuticula. Im Mesophyll liegen zahlreiche Schleimzellen und große Schleimhöhlen (s. oben), die am unzerkleinerten Blatte bei durchfallendem Lichte schon mit bloßen Augen sichtbar sind, sowie Zellen mit Oxalatdrusen. Die Lamina ist im allgemeinen haarfrei, doch finden sich an der Blattbasis Köpfchenhaare und am Blattrande (Fig. 131) Büschelhaare mit 2-5, oft gewundenen Strahlen. Auch in den +Filamenten+, dem +Connectiv+ und der +Antherenwand+ finden sich Schleimzellen. Die Antherenwand ist dreischichtig. Die fibröse Schicht bildet die Mittelschicht. Die Pollenkörner, die man bisweilen im Honig findet (s. d.), sind tetraëdrisch, 27-34 mik groß und besitzen drei Austrittsstellen für den Pollenschlauch. Sie besitzen eine Stäbchenschicht und zeigen daher eine feine Punktierung. Die +Fruchtknotenwand+ ist von vielen 2-vielstrahligen Büschelhaaren mit oft bizarr verkrümmten Strahlen bedeckt, auf die parenchymatische Randschicht folgt eine obliterierte braune Zone, in der die Bündel verlaufen, und dann die Schleimzellenschicht. In der Fruchtknotenwand findet sich in besonderen Zellen ein eisenbläuender, im übrigen Gewebe ein eisengrünender Gerbstoff. Auch die +Ovula+ werden durch Eisenchlorid blau (~Vogl~). Selbst der +Griffel+ führt Schleimzellen und Oxalatdrusen und in der Mitte das leitende Gewebe. Ebenso finden sich in Mark und Rinde des +Infloreszenzstieles+ Schleimzellen. Der im Querschnitt ovale Holzkörper ist hier umgeben von einem zarten Siebteil, in den hinein von dem breiten Bastzellpanzer aus Sklereïdenzapfen ragen. Das dem Infloreszenzstiel angewachsene, von zahlreichen bastzellreichen Bündeln durchzogene, derbe Flügelblatt (sog. Bractee) führt an den Nerven ebenfalls Schleimzellen. Die Bastbelege sind von Kristallkammerfasern begleitet, die rhomboëdrische Kristalle und Drusen führen (~Vogl~). Das außerordentlich reich durchlüftete Mesophyll zeigt an der morphologischen Oberseite palissadenartige Streckung. Auf der Unterseite finden sich Spaltöffnungen. Es ähnelt also im Bau einem Laubblatte. Im Glycerinpräparat frischer Brakteen finden sich Sphaerokristalle, die ~Tunmann~ für Hesperidin hält. Die Oxalatdrusen sind bei _Tilia_ von einer Haut umgeben, die nachträglich mit der Membran verwächst, liegen also in sogenannten Taschen (~Wittlin~). [Illustration: Fig. 131. _Tilia platyphyllos._ 1. Querschnitt durch den Rand des Kronenblattes. 2. Querschnitt durch ein Kelchblatt. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Lit.= Weitere Details in ~A. Meyer~, Drogenkunde und ~Tschirch-Oesterle~, Atlas t. 11. -- ~Karsten-Oltmanns~, Pharmakogn., Fig. 308-314. -- ~Vogl~, Kommentar 1908, S. 149. -- ~Trécul~, Mucilages. Adansonia VII (1866). -- ~Frank~, Beitr. z. Pflanzenphys. Leipzig 1868. -- ~Dumont~, Ann. sc. nat. bot. 5 (1887), 135. t. VI. -- ~Mattirolo~, Sviluppo e natura dei tegumenti seminal. nel gen. Tilia Nuov. Giorn. bot. 1885. -- ~Holfert~, Nährschicht. Flora 1890. -- ~Schwarz~ und ~Wahsarg~, Pringsh. Jahrb. 1884, t. III. -- ~Wittlin~, Kalkoxalattaschen. Bot. Centralbl. 1896. -- ~Solereder~, System. Anat. d. Dikotylen. S. 176 (dort weit. Lit.). -- Über Lindenbast und Lindenholz vgl. ~Wiesner~, Rohstoffe 2. Aufl. =Chemie.= Die Blüten der Linde enthalten viel +Schleim+, dann +Zucker+ -- die mit Wasser gegorenen Blüten geben Weingeist (+Marggraf+) --, +Wachs+, etwas eisengrünenden +Gerbstoff+ und +ätherisches Öl+. Der Schleim bläut sich nicht mit Chlorzinkjod, wohl aber mit Kupfersulfat und Kalilauge (~A. Meyer~). Sie enthalten auch eine +Oxydase+ (~Carles~, die Brakteen nur wenig davon) und in der Asche Spuren Mangan. Der Brei frischer Blüten bläut Guajaktinktur. ~Roux~ fand einen gelben und einen roten +Farbstoff+, ~Herberger~ +Malate+, +Tartrate+, einen +Bitterstoff+, ~Siller~ «ein Balsamharz von gewürzhaftem Geschmack». In den Brakteen ist mehr Gerbstoff und -- wie es scheint -- kein Riechstoff vorhanden. Das +ätherische Öl+ ist in den Lindenblüten nur in geringer Menge vorhanden. Doch gibt ~Winckler~ (1837) an, daß er aus 25 Pfund +frischen+ Blüten 80 g (d. h. 0,64 %) farbloses, dünnflüssiges, in Wasser relativ leicht lösliches Öl erhalten habe. Andere sprechen von 0,1, 0,05, 0,042, 0,038 % (~Marggraf~ erhielt gar nichts). ~Haensel~ hat das Öl neuerdings fabrikmäßig dargestellt. Es ist -- offenbar durch ausgeschiedene, mit übergehende Fettsäuren -- bei gewöhnlicher Temperatur fest und eine sehr teure Substanz. Sein Wert ist zehnmal so hoch wie der des Rosenöls. Er übertrifft alle übrigen ätherischen Öle an Feinheit des Geruches (~Landerer~). Der Unterschied in den Eigenschaften und der Ausbeute des Öles bei ~Winckler~ einerseits und bei ~Haensel~ andererseits dürfte darauf zurückzuführen sein, daß ~Haensel~ mit gespanntem Dampf arbeitete, ~Winckler~, der frische Blüten verarbeitete, nicht. Gespannter Dampf scheint das Öl zu verändern und treibt feste Fettsäuren mit über. Es findet sich im Handel (~Haensel~ 1902). Nur frische Blüten geben gutes _Aqua tiliae_. Die Blüten enthalten auch einen in farblosen Blättchen kristallisierenden Kohlenwasserstoff C₂₈H₅₈; F. 54-56° (~Klopp~, ~Garnier~ und ~Ehrwein~). Die schweißtreibende Substanz ist unbekannt. Das +fette Öl+ der Samen wurde zuerst von ~Massi~ durch Pressen gewonnen, dann von ~Marggraf~ (1772) untersucht und von ~Geiger~ als Ersatz des _Mandelöls_ warm empfohlen. Es ist in den lufttrockenen Samen zu 59 % enthalten (~C. Müller~) und gehört zu den nichttrocknenden, schwer ranzig werdenden Ölen. Die +Asche+ der Blüten beträgt 5,5-7% (~Hauke~, ~Vogl~ gibt 8% als Grenzzahl an). Sie ist meist etwas grünlich. Die +Blätter+ enthalten das Glykosid Tiliacin, das in Glukose und Tiliaretin zerfällt. Letzteres liefert Anissäure (~Latschinow~). Die Blätter der _Tilia parvifolia_ enthalten auch Inosit (~Fick~). In der +Rinde+ der Linde fand ~Bräutigam~ (1898) einen phytosterin+artigen+ Körper (Tiliadin, C₂₁H₃₂O₂), der aber kein echtes Phytosterin ist, sowie Vanillin. Beim Anbohren des Stammes im Frühling erhält man einen süßen Saft, der dem _Ahorn_safte ähnlich ist (~Geiger~). Das bisweilen auf den Laubblättern auftretende (~Langlois~) +Manna+ enthält (nach ~Boussingault~) 20 bis 30% Dextrin (?), 25-29% Invertzucker, 49-55% Rohrzucker, sowie freie Säuren (Apfelsäure?), ähnelt also dem Tamarix-Manna (S. 135). Der Algenbelag der Rinde (_Pleurococcus vulg._) enthält nadelförmige Kristalle (~Bräutigam~). =Lit.= +Ältere Literatur+ in ~Schwartzes~ Tabellen (1819) I, 198, und ~Johns~ Chem. Tab. d. Pfl. S. 15. -- Erste Analyse von ~Marggraf~, Mém. de l’ac. sc. Berlin 1772, 3 (auch in ~Pfaff~, Mat. med.). -- ~Geiger~, Handb. d. Pharm. 1830, 1017. -- ~Herberger~ und ~Siller~ in ~Dierbach~, Mat. med. 1841. -- ~Fick~, Jahresb. d. Pharm. 1887, 11.-- ~C. Müller~, Über Lindenöl. Ber. d. pharm. Ges. I, 60. -- ~Carles~, Rep. de pharm. 1904, 1. -- ~Tunmann~, Schweiz. Wochenschr. 1909. -- ~Bräutigam~, Arch. Pharm. 1900, 555 u. Pharm. Zeit. 1898 Nr. 105. -- ~Latschinow~, Chem. Zeit. 1890, 14, 126. -- +Äth. Öl+: Ältere Arbeiten (~Brossat~, ~Landerer~, ~Buchner~, ~Herberger~) in ~Gmelins~ Handb. d. Org. Chem. IV (1862) 343. -- ~Winckler~, D. äth. Öl d. Lindenblüte. Pharm. Centralbl. 1837, 781. -- ~Haensel~, Berichte 1902. -- ~Klopp~, ~Garnier~ und ~Ehrwein~, Bull. soc. chim. (4) 7, 940. -- ~Zeller~, Ausbeute u. Darst. äther. Öle aus offizin. Pfl. N. Jahrb. d. Pharm. I-III und separat Stuttg. 1855. -- +Lindenmanna+: ~Langlois~ Journ. pr. Chem. 29, 444 (Arch. Pharm, 89 [1844], 320). -- ~Boussingault~, Journ. pharm. 15 (1872), 214. =Verfälschungen.= Beobachtet sind (~Perrot~) die Infloreszenzen von _Tilia argentea_ ~Desf.~ (_T. alba_ W. et K., _T. tomentosa_ ~Mönch~), einem aus Ungarn, Kleinasien und Südsibirien stammenden, vielfach in Anlagen angepflanzten Zierbaum, der wenigblütige Blütenstände hat und dessen Staubfäden halb so lang als die Blumenblätter und wenig länger als der Fruchtknoten sind. _T. argentea_ gehört zu der Abteilung der Dekapetalae, d. h. bei ihr sind 5 der innersten Glieder des Staubfadenkreises zu petaloiden, noch mit Antherenspur versehenen Staminodien umgebildet. Zu dieser Gruppe gehört auch die nordamerikanische _T. americana_. 1896/98 waren, von Italien importiert, Lindenblüten von _Tilia americana_ L. (_T. canadensis_ ~Michx.~, _T. glabra_ ~Vent.~, _T. nigra_ ~Brockh.~, Schwarzlinde) im Handel. Sowohl das Dekokt wie das destillierte _Aqua tiliae_ weichen von dem aus _T. europ._ bereiteten stark ab (~Caesar~ & ~Loretz~). +Die Verwendung von Lindenblüten aus der Reihe der Decapetalae, die ganz anders riechen als unsere Lindenblüten, ist unzulässig+, dagegen dürfen die Blüten der Hybriden und Formen der beiden deutschen Linden gesammelt werden. =Lit.= ~Perrot~, Bull. sc. pharm. 1907, 346. =Anwendung.= Lindenblüten sind ein viel verwendetes Diaphoreticum, das meistangewendete Schweißtreibemittel des Volkes. Sie wurden schon von ~Murray~ (wie noch jetzt von ~Kneipp~) auch als schmerzstillendes und krampflinderndes Mittel empfohlen. _Flos tiliae_ ist Bestandteil der Spec. laxant. St. Germain. Daneben bedient man sich (wie im Altertum) auch der schleimreichen Rinde, besonders äußerlich, z. B. bei Brandschäden, Schußwunden, Augenentzündungen u. dgl., was noch heute in Rußland beim Volke üblich ist (~Henrici~). Das Lindenblütenwasser wird vom Volke gegen Sommersprossen und als Haarwuchsmittel benutzt. Die eigenartig aromatischen Blüten der _T. argentea_ liefern ein Champagnerarom (~Landerer~). ~Mérat~ und ~Lens~ sagen im Dictionnaire (I, S. 217) von der Lindenblüte: «C’est l’antispasmodique le plus universellement mis en usage par toutes les classes des malades.» Das übrigens ziemlich weiche Holz dient zur Herstellung der _Carbo Tiliae_. Die Bastfasern der Rinde dienten schon im Altertum als Fasermaterial zu Stricken, Sattelzeug usw. Die bekannten Bastschuhe (lapti) der Russen und Polen werden noch heute aus Lindenbast (liko) gemacht, ebenso Decken und Flechtwerk. Auch der nahe verwandte _Corchorus_ (Jute, vgl. S. 255) ist eine Tiliacee. Lindenbaststreifen dienten in Rom als Papier (S. 256). =Lit.= Ältere Lit. in ~Murray~, App. medic. -- ~Henrici~, Volksheilm. Rußlands in ~Koberts~ Studien IV. -- ~Landerer~, Amer. journ. pharm. 1883. =Geschichte.= Den alten Deutschen war die Linde ein heiliger Baum. Sie war der ~Frigga~, der nordischen ~Venus~ geweiht und fehlte in keinem heiligen Haine, keinem Dorf- und Marktplatze, keinem Friedhofe. (Sie ist auch der russischen Liebesgöttin ~Krasogani~ und der slavischen ~Ostara~ heilig.) Sie schützte gegen Blitzgefahr und ihre Teile wurden gegen zahlreiche Leiden angewendet. Sie war der Frühlings-, Freuden- und Liebesbaum, aber auch der alte Rechts- und Dingbaum, unter dem sich die Gemeinde versammelte und Recht gesprochen wurde. Sie ist der deutsche Baum par excellence und noch heute der Lieblingsbaum des deutschen Volkes, den zahllose Dichter besangen, von ~Walther von der Vogelweide~ bis auf ~Heinrich Heine~, und der auch in den Volkssitten eine große Rolle spielte. Lindenblüten und Lindenblütenwasser gelten noch heute als Schönheitsmittel. In den Schweizer Pfahlbauten fanden sich Reste beider Linden. Des ~Theophrast~ (hist. pl. III, 10; V, 4) φίλυρα ist wohl eine Tilia (~Sprengel~), denn die Linde heißt auch heute noch in Griechenland so (s. oben S. 366). Vielleicht war es _T. ulmifolia_, vielleicht auch (~Fraas~) _T. argentea_. Des ~Theophrast~ κλέθρη ist aber wohl eine _Alnus_- oder _Acer_art (~Dragendorff~). ~Plinius~, dessen Tilia wohl _T. argentea_ ~Desf.~ ist (er unterscheidet merkwürdigerweise eine männliche und eine weibliche) erwähnt nur die Verwendung der Blätter und des Bastes. Auch ~Virgil~ gedenkt einer Tilia. Die Blüten scheinen aber erst seit dem Mittelalter in Gebrauch zu sein. Tilia steht bei der ~Hildegard~ (I, S. 671) und ~Albertus Magnus~ (I, S. 675), die Lind bei ~Megenberg~ (I, S. 693), ~Cordus~ (I, S. 803) verwendete _Flos tiliae_. _Aqua Tiliae_ findet sich bei ~Brunschwyg~ (1500) und ~Fuchs~ rühmte seine antiepileptische Wirkung. _Flor. tiliae_ finden sich in der Taxe von Eßlingen 1571 (I, S. 816). In ~Murrays~ Apparatus medicaminum (I, S. 218) stehen außer den Flores noch Semen, Cortex und Folia. Die Angabe des französischen Arztes ~Massi~, daß man aus Blüten und Samen der Linde ein Getränk bereiten könne, «das der besten Schokolade nichts nachgebe» (!), veranlaßte ~Friedrich den Grossen~, der alle Surrogate der Purindrogen begünstigte, ~Marggraf~ aufzufordern, die Bedingungen für die Herstellung eines solchen Surrogates zu studieren, dieser Aufforderung resp. diesem Befehl verdankt die Untersuchung ~Marggrafs~ (s. oben) ihre Entstehung. =Lit.= ~Reling~ und ~Bohnhorst~, Unsere Pflanzen. 4. Aufl. -- ~Perger~, Deutsche Pflanzensagen 1864. c) Schleimzellen in Knollen. Während bei den Dikotylen die typische Ausbildung der Schleimmembranen die Regel ist, zeigen die Monocotylen ein abweichendes Verhalten und es kommt hier in der Regel nicht zur Bildung einer deutlich geschichteten Schleimmembran. Der Grund, weshalb ich auch die monocotylischen Schleimdrogen, speziell _Orchis_, bei den Membraninen abhandle, ist der, daß nach meiner Auffassung hier ein Übergangsgebilde vorliegt, welches sich chemisch an die typischen Membranine anschließt, morphologisch allerdings noch nicht jene normale Ausbildung erlangt hat, die wir z. B. bei der Gruppe der Malvales (Tiliaceen, Malvaceen, Sterculiaceen) antreffen. Nur selten findet sich bei _Orchis_ ein deutliches zentrales Lumen, das ringsum von Schleim umgeben ist (Fig. 133). Dagegen treffen wir bei der benachbarten _Herminium monorchis_ (L.) ~R. Br.~ eine typische Schleimmembran (~Birger~). Es macht bisweilen den Eindruck, daß eine peripherische, parietal gelagerte Plasmaschicht die normale Auflagerung des Schleims in Form von normalen Schleimmembranschichten hindert. Tuber Salep. =Syn.= Rad. Salep, Salepknollen -- Knabenkraut (weitere deutsche Namen unter Synom. und bei ~Pritzel-Jessen~) -- saleb (holl.) -- saleprot (schwed.) -- Salep (franz. und engl.) -- saalāb, salap (arab. pers.). -- Orchis militaris heißt auch in den Volkssprachen: Soldaten-O., O. guerrrier ou militaire, military-O., Soldaat-O. -- wegen der helmförmigen Blüte; wie Orchis Morio (von μωρός = Narr): O. bouffon, harlekijns -- wegen der bunten Blume. -- Der handförmige: Rad. palmae Christi, Rad. palmata. Bei ~Theophrast~ ὄρχις und bei ~Dioskurides~ ὄρχις und σατύριον, so auch bei ~Plinius~ (s. Geschichte). ~Bonnet~ deutet des ~Dioskurides~ ὄρχις als _O. papilionacea_ und _mascula_, das σατύριον als _Ophrys anthropophora_ (s. hinten). Bei ~Alhervi~ (pers.): bûzeidan, bei ~Ibn Baithar~ (arab.): būzīdān. -- Satyrion bei ~Constantinus Africanus~ (XI. Jahrh.) und in Circa instans (XII. Jahrh. I, S. 637). -- In der +Alphita oxoniens.+ steht: saturion (iarus, priapiscus, leporina -- Kukkowspitte), Satirion (stondengousse); und in den +Sinonoma Bartholomei+: satyrion = herba leporina und ~Isidor~ bemerkt in seinem Etymologicon: Satyrion vulgus vocant stingum. Item et Orchis item et Leporina. -- Bei ~Albertus Magnus~: satiria (Orch. mil.) testiculus vulpis, t. canis (O. mascula), so auch (-- neben Rad. satyrionis --) bei ~Crescenzi~ (I, S. 677), ~Serapion~ (I, S. 605). -- Im Liber Dynamidorum sind als Synonyma von Satyrion angegeben: priapiscum, tentaticon, mazinium, extingum, gartcolon. -- Bei ~Cordus~ (I, S. 802) steht: Satyrion (Rad. orchios, testiculi vulpis). Es waren dies vielleicht die Knollen von _Platanthera bifolia_. Doch bezogen sich wohl, darin stimme ich ~Dragendorff~ bei, die arabischen und anderen allen und mittelalterlichen Namen nicht auf spezielle Arten (_Orchis Morio_ und _undulatifolia_ [~Leclerc~], _O. anthropophora_ [~Fraas~], _O. papilionacea_ [~Sibthorp~, ~Sontheimer~]), sondern bezeichneten alle Arten der Gattung _Orchis_ und verwandter Gattungen, deren Systematik ja noch heute eine sehr künstliche ist (~Ascherson~). =Etym.= ~Grimm~ (Deutsch. Wörterb. V [1873] 1465) sagt: Knolle (masc.) ungenau: Knollen. ~Kluge~ (Etymolog. Wörterb.): Knollen (m) aus mhd., Knolle (m). Ich schließe mich der Schreibweise «der Knollen» an (~Flückiger~ schreibt: der Knolle; die meisten Autoren: die Knolle). An die Hoden erinnern die Ausdrücke: Bocks- oder Fuchshödlein, Hasen-, Narren-, Pfaffenhoden, Bällchenwurz (angels.), sowie ὄρχις (= Hoden, bei ~Theophrast~ -- ὀ. κυνός, bei ~Dioskurides~ -- von ὀρέχειν begehren), testiculus vulpis, leporis, canis, sacerdotis etc., -- dog-, fox-, hare-, goat-stones. An die Verwendung als +Aphrodisiacum+ erinnert: Bocksgeil, Erdgeile und Geilwurz (so z. B. bei ~Cordus~), Heiratsblume oder -wurzel, Kinder- oder Knabenkraut (so im Ort. sanit.), Raynwurz, Stendelwurz, Höswurz, Venusblume; Kuckucksblume (der Kuckuck ist der Vogel der Liebe), sowie die alten Bezeichnungen: priapismus (priaspiscus), satyrion. (Weitere erotische Beziehungen bei ~Aigremont~, Volkserotik). An die +handförmige Teilung der Knollen+ einiger Arten (s. weiter hinten) erinnern Ausdrücke wie Palmachristi, Pentadactilus, Marien-, Christi- oder Gotteshand (im Gothaer Arzneibuch [I, S. 680]: godeshant), Glücks- oder Teufelshand, Händechen. Im Arabischen heißt testiculi canis: ḫuṣa ʾl-kalb (das ḫ ist ein hartes ch) und testiculi vulpis: ḫuṣa ʾṯ-ṯaʿlab (das t in ta wie das englische th zu sprechen), der Singular testiculus vulpis lautet: ḫuṣjat at-ṯaʿlab (~Marti~). Aus diesem ṯaʿlab wurde das noch jetzt im Osten gebräuchliche salap und unser salep. -- Die Bezeichnung für Salep kâtil ahîhi bedeutet «Mörder seines Bruders» und bezieht sich wohl darauf, daß der alte Knollen zu Grunde geht, während der neue «Bruder»-Knollen heranwächst. Die Ausdrücke busidân, bûzeidan, būzīdan stammen aus dem Indischen. =Stammpflanzen.= Salep wird vorwiegend von Orchidaceen der Ophrydeenabteilung, besonders von Orchisarten gesammelt. In Mitteleuropa kommen vor und liefern Salep: =Orchis militaris= (L. ex parte) ~Huds.~ (O. =militaris ~Jacq.~=, O. =galeata ~Poir.~=, O. Rivini ~Gouan.~), =O. purpurea= ~Huds.~ (O. fusca ~Jacq.~), =O. ustulata= L., =O. Morio= L., =O. mascula= L., =O. latifolia= L., =O. incarnata= L. (O. angustifolia ~Wimm.~ et ~Grab.~), =O. maculata= L., =Anacamptis pyramidalis= ~Rich.~ [Aceras pyramidalis (L.) ~Rchb.~ fil.], =Gymnadenia conopéa= [die Form conopsea ist grammatisch nicht zu erklären, ~Ascherson~] (L.) ~R. Br.~ Auch Aceras anthropophora und Ophrys arachnites werden genannt. In Thessalien, Macedonien und Epirus liefern (außer O. Morio und mascula) =Orchis saccifera= ~Brongniart~, =O. coriophora= L. und =O. longicruris= ~Link~ Salep. In Griechenland werden besonders die Knollen von O. Morio und =O. papilionacea=, dann auch O. undulatifolia, mascula, palustris gesammelt (~Landerer~). In Kleinasien ist die Gattung Orchis durch c. 30 Arten vertreten. Es ist nicht bekannt, welche speziell zur Salepgewinnung herangezogen werden. Von den 32 Arten, die in ~Boissiers~ Flora orientalis aufgeführt sind (~Tchihatcheff~ nennt 36 kleinasiatische), sind für Gebiete des westlichen Kleinasiens angegeben: _Orchis Morio_ β _picta_ (Anatolien, Cilicien), _O. comperiana_ (Lydien), _O. coriophora_ β _fragrans_ (Anatolien), _O. sancta_ (Pamphylien, Smyrna), _O. tridentata_ (Anatolien), _O. palustris_ (ebenda.), _O. pseudosambucina_ (ebenda), _O. papilionacea_ (Pamphylien), _O. provincialis_ β _pauciflor._ (Smyrna), _O. anatolica_ (Carien, Lycien), _O. Simia_ (Pamphylien) und weiter im Norden _O. maculata_ und _fusca_ (in Cappadocien). In Algerien werden die sehr großen Knollen von =Orchis Munbyana= und =O. Robertiana= benutzt (~Landerer~, Pharm. Jahresb. 1878, ~Simmonds~, Am. journ. pharm. 1891). In Nordpersien werden die Knollen besonders von =Orchis latifolia= L., dann auch von =O. laxiflora= ~Lamck.~ gesammelt und unter dem Namen Salapmisri nach Indien gebracht (~Aitchison~, ~Stolze~ und ~Andreas~). _Orchis_ und _Anacamptis_, sowie _Ophris_ und _Aceras_ gehören zu der Abteilung Monandrae -- Ophrydinae -- Serapiadaceae; _Gymnadenia_ zur Abteilung Monandrae -- Ophrydinae -- Gymnadenieae. In Nordindien sind die großen Knollen (man-kand, amber-kand) von =Eulophia campestris= ~Lindl.~, =Eul. herbacea= ~Lindl.~, in Südindien die kleinen von =Habenaria pectinata= ~Don~ und etwa fünf anderen Arten Salep liefernd (~Watt~, Dict. of econ. prod. ~Lindley~, ~Royle~). Pharmac. ind. nennt auch Eulophia virens ~Br.~, Eu. campestris ~Wall.~, Eu. nuda ~Lindl.~ _Eulophia_ gehört zur Abteilung Monandrae -- Cyrtopodiinae, _Habenaria_ zur Abteilung Monandrae -- Ophrydinae -- Habenarieae. Die Gattung Orchis mit ihren 70 vorwiegend in der alten Welt vorkommenden Arten wird jetzt eingeteilt in: Sect. I. _Herorchis_ ~Lindl.~ a) Papilionaceae: _O. papilionacea_. b) Moriones: _O. Morio_. c) Militares: _O. militaris_, _purpurea_, _tridentata_ (_variegata_), _ustulata_. d) Ibericae: _O. iberica_. Sect. II. _Anderorchis_ ~Lindl~. a) Globosae: _O. globosa_. b) Saccatae: _O. saccata_. c) Masculae: _O. mascula_, _palustris_, _pallens_. d) (Latifoliae): _O. latifolia_, _incarnata_, _maculata_. Ausführlichere Angaben in ~Luerssen~, Mediz. pharm. Botan. Die ~Linné~sche _O. militaris_ umfaßt: _O. purpurea_, _tridentata_, _Simia_ und _Rivini_. _O. militaris_ ist von England, Nord- und Mittelspanien, sowie Italien über Deutschland bis Mittelrußland und Sibirien, sowie Ost-Dahurien, _O. Morio_ durch Europa und auch im westlichen Asien, _O. maculata_ durch ganz Europa und Sibirien, _O. mascula_ in Europa bis zum Ural, _O. latifolia_ von Europa bis Kamtschatka heimisch. Diese sind bei uns die häufigsten, _O. papilionacea_ und _saccata_ sind im Mittelmeergebiet, _O. purpurea_ in Mittel- und Südeuropa, _O. ustulata_ in Europa bis zum Ural, _O. iberica_ im Gebiet des Kaukasus, _O. incarnata_ von Europa bis Kamtschatka heimisch. Die _Orchis_arten sind Wiesenpflanzen und sog. «Magerkeitszeiger», die gedüngte Stellen fliehen und vom Weidevieh gemieden werden. Folgende Standorte werden in ~Garckes~ Flora von Deutschland angegeben: _O. purpurea_ ~Huds.~ schattige Gebirgswälder, gern auf Kalk, am häufigsten in Mittel- und Südwestdeutschland, namentlich in Thüringen, bei Hannover, auf Rügen. _O. militaris_ (L.) ~Huds.~, Wald- und Moorwiesen, sonnige Kalkberge, in Nordwestdeutschland fehlend. _O. ustulala_ L., Bergabhänge, Wiesen niedriger und gebirgiger Gegenden, in den Alpen verbreitet. _O. Morio_ L. (die kleinste unserer Arten), Wiesen, trockene Abhänge, häufig. _O. mascula_ L., Wiesen, Wälder, häufig in Süd- und Mittel-, selten in Norddeutschland. _O. maculata_ L., sumpfige Wiesen, Wälder häufig. _O. latifolia_ L., feuchte Wiesen, häufig. _O. incarnata_, torfige, sumpfige Wiesen, zerstreut. Diese Standorte wären bei der Anlage einer Kultur zu beachten. Man hört oft aus den Handelsberichten, daß Trockenheit die Ernte beeinträchtigt. =Beschreibung der Stammpflanze.= Die _Orchis_arten sind sämtlich ausdauernde Kräuter, die ihre unterirdischen Organe ziemlich tief im Boden bilden. Aus dem Samen bildet sich im ersten Jahre ein Knöllchen, das der Wurzel entspricht, an ihm sitzt ein aus Niederblättern und der Laubblattanlage gebildetes Knöspchen (Fig. 132, AB). Im nächsten Jahr entwickeln sich 2-3 Laubblätter und in der Achsel einer der Niederblätter ein Knöspchen, das eine Adventivwurzel bildet (Fig. 132, CD). «Diese verdickt sich knollenförmig und wird durch die vergrößerte röhrenförmige Scheide seines untersten Blattes wie durch ein Rohr tiefer in den Boden gesenkt» (Fig. 132, FG). Dieser kleine Knollen bildet den Grundstock für eine neue Pflanze, die sich dann im nächsten Jahre entwickelt (Entwicklung des Knollens ausführlich bei ~Irmisch~ und ~Arthur Meyer~). [Illustration: Fig. 132. A-K _Orchis militaris_. a junge Keimpflanze nach der Blüte, B stärker vergrößerter Längsschnitt durch A, CD ältere Keimpflanze mit hervortretender Wurzel. E Längsschnitt durch eine solche Keimpflanze. FG Keimpflanze im nächsten Frühjahr, die Wurzel hat einen Knollen gebildet. H Anlage des aus einem Seitensproß und einer Adventivwurzel kombinierten Knollen an der erwachsenen Pflanze. Die Wurzel steckt noch in der Scheide (v). J Basis einer erwachsenen Pflanze im Sommer. K dasselbe im Längsschnitt. L _Orchis latifolia_. Basis einer erwachsenen Pflanze. (A-H nach +Irmisch+, J-L nach +Luerssen+.)] Die blühende Pflanze besitzt zwei Knollen (Fig. 132, JKL). Der ältere Knollen hat seine Reservestoffe an die oberirdische Pflanze abgegeben und erscheint daher mehr oder weniger geschrumpft und außen bräunlich, das Gewebe ist entleert. Der helle junge Knollen dagegen, der ähnlich wie der Knollen an der Keimpflanze aus der Adventivwurzel einer Knospe des vierten oder fünften Niederblattes entstanden ist, ist mit Reservestoffen prall gefüllt. Er ist ziemlich frühzeitig innerhalb der Achse entstanden, deren Gewebe ihn noch eine Zeitlang wie ein Sack umgibt (Fig. 132, H), sitzt, wenn ganz entwickelt, was schon im Juni erfolgt ist, einem kurzen Aste an und trägt oben ein Knöspchen (Fig. 132, K). Aus ihm entwickelt sich die neue Pflanze im nächsten Jahr. Der Knollen trägt ganz den Charakter einer Speicherwurzel. Daneben finden sich noch am Grunde der Achse Ernährungswurzeln. _Orchis purpurea_ und _militaris_ (Fig. 132, JK), sowie _Platanthera bifolia_ haben ovale oder eiförmige, _O. ustulata_, _Morio_, _mascula_ und _coriophora_ und die _Ophrys_-Arten rundliche, _O. tridentata_, _laxiflora_ und _globosa_ längliche, _O. sambucina_ zylindrische oder spindelförmige, _Orchis maculata_, _latifolia_ (Fig. 132, L), _incarnata_ und _saccifera_, sowie _Gymnadenia conopea_ handförmig geteilte Knollen. Der krautige Stengel ist einfach. Er wird bei den einzelnen Arten verschieden hoch. Die Niederblätter sind scheidenartig, und soweit sie im Boden stecken weiß. Die Blätter tragen bei _O. militaris_ auf einer Scheide eine oblong-lanzettliche, stumpfliche, etwas fleischige, 4-5 cm breite, 8-16 cm lange Spreite, die getrocknet nach Vanillin riecht. Der Blütenstand ist eine Ähre, die bei _O. militaris_ 7-10 cm lang wird. Die Deckblätter sind breit eiförmig, rot. Der sitzende einfächerige, unterständige Fruchtknoten ist gedreht und dadurch die zygomorphe Blüte resupiniert, d. h. die oberen Teile der Blüte nach unten gekehrt. Die drei äußeren Perigonblätter sind ziemlich gleich, eilanzettlich, bei _O. militaris_ außen rötlich weiß, an den Nerven rot, zwei Perigonblätter des inneren Kreises etwas kleiner, schmaler, dunkler, alle fünf nach oben gerichtet, einen Helm bildend, das dritte (ursprünglich das hintere obere) Blatt des inneren Kreises aber als Labellum entwickelt und nun nach unten gerichtet, aus der Blüte heraushängend. Er trägt einen hohlen Sporn, der als Nektarium wirkt, obwohl er keine eigentlichen Nektarien bildet (der süße Saft muß «erbohrt» werden) und bildet eine breite, tief dreispaltige, als Anlockungsmittel für Insekten dienende Lippe, die länger ist als die übrigen Perigonblätter und deren Mittellappen wieder zweigespalten erscheint mit einem kleinen Zwischenläppchen (bei _O. Morio_ ist die Lippe dreilappig, der Mittellappen abgestutzt-ausgerandet, bei _O. papilionacea_ ganzrandig, bei _O. mascula_ tief dreilappig mit breiten gezähnten Lappen, bei _O. latifolia_ breit-keilförmig, dreilappig). Die Farbe der Lippe ist bei _O. militaris_ weiß mit purpurnen Haarpinseln (bei _O. ustulata_ weiß, rot punktiert, bei _O. coriophora_ purpurn geadert, am Grunde weiß, purpurn punktiert, bei _O. Morio_ purpurn mit grünen Adern). An die eigenartige Insektenform und den Geruch gewisser _Orchis_blüten erinnern die Bezeichnungen: conopea (von κώνωψ = Mücke), muscifera (= Fliegenträger), coriophora (von κόρις = Wanze) und Fliegenblumen. Das Androeceum ist mit dem Griffel verwachsen und bildet das Gynostemium, das aus der Columella, dem Clinandrium und dem Rostellum besteht. Die Griffelsäule ist sitzend, vorn flach, hinten gewölbt; die Narbe am Grunde der Säule quer gestellt, umgekehrt herzförmig. Über ihr liegt die kleine Bursecula und in dieser die beiden Klebscheiben (retinacula) der zwei gestielten, keulenförmigen Pollinien, die aus der verklebten Pollenmasse bestehen. Die Anthere ist also dithecisch. Senkt nun ein Insekt seinen Rüssel in die Blüte, so schiebt es, wie ~Charles Darwin~ zuerst beobachtete, die Bursecula beiseite, der Rüssel kommt mit den Klebscheiben in Berührung, diese kleben sich am Rüssel fest und wenn nun der letztere aus der Blüte herausgezogen wird, so werden die Pollinien aus ihrem Behälter herausgerissen (vgl. auch I, S. 389). Sie stehen zunächst senkrecht auf dem Rüssel, senken sich aber dann herab und wenn nun das Insekt eine zweite Blüte besucht, so treffen die Pollinien direkt auf die Narbe: das klassische Beispiel einer an Insektenbefruchtung angepaßten zoidiophilen Blüte. Die Frucht ist eine sechskantige Kapsel, die mit drei Klappen aufspringt. Der Fruchtknoten stellt sich später wieder richtig, die Resupination der Blüte wird aufgehoben. Die sehr kleinen Samen haben einen ungegliederten Keimling. Sie werden zur Reifezeit durch den Wind verstreut. Die _Orchis_arten blühen bei uns meist im Mai bis Juni. Die Knollen werden vor der oder zur Blütezeit der Pflanze gesammelt. =Lit.= +Abbild.+: ~H. G. Reichenbach~, Orchideae in Flora germanica recensitae etc. 170 col. Taf. 1851 (B. 13 u. 14 der Icones flor. germ.). -- +Abbild.+ von _O. militaris_ in ~Berg-Schmidt~, Atlas taf. 134 (dort die system. Lit.), ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 61, ~Luerssen~, Med. pharm. bot. (dort die systemat. Lit. der Familie). ~Hayne~, Arzneigew. t. 17. ~Giesenhagen~, Botanik 1910, Fig. 367. -- Von _O. ustulata_ in ~Hayne~, Arzneigew. t. 16. -- Von _O. Morio_ in ~Hayne~, Arzneigew. t. 24 und ~Nees von Esenbeck~, Plant. med. t. 72. -- Von _O. mascula_ in ~Nees von Esenbeck~, Plant. med. t. 71. und ~Giesenhagen~, Botanik 1910. Von _O. latifolia_ im Bonner Lehrb. d. Bot. u. in ~Garckes~ Flor. v. Deutschl. -- ~Pfitzer~, Entwurf eines natürlich. Syst. d. Orchid. und Orchidaceae in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. II, 6, S. 52 (dort die Literatur d. Familie). -- ~Irmisch~, Morph. d. monokotyl. Knollen usw. Berlin 1850, Beitr. z. Biolog. u. Morph. d. Orchid. 1853 u. ein. Beobacht. an einheim. Orchid. Flora 1854. -- ~A. Meyer~, Knollen der einheim. Orchideen. Arch. Pharm. 1886 (m. zahlr. Abbild. u. Literaturnachweisen) und Wissensch. Drogenkunde. =Pathologie.= Über die tierischen Schädlinge berichtet ~Israel~: Die Orchideen scheinen unter den Insekten sehr wenige Feinde zu haben, doch trifft man gelegentlich polyphage Eulenraupen auch an Orchideen, ohne daß sie jedoch Feinde derselben genannt werden könnten. Bei Jena fand ich eine Dipterenmade (vermutlich eine _Cortdylura_species) auf _Orchis mascula_, die Blätter minierend. =Einsammlung und Handel.= Im Handel dominiert der kleinasiatisch-türkische (anatolische) Salep. Der türkische, auch der aus Macedonien, wird meist Levantiner Salep genannt. In +Kleinasien+ wird Salep im Süden bei Mersina (Rhodus gegenüber), Milas (Melassa) und Mugla (südöstlich von Smyrna) gewonnen (~Scherzer~ 1874), im Norden bei Kastamuni und Angora (Ber. über die Wiener Weltausstellung 1873), neuerdings (1895) werden auch Castambol, Tokat und Egin genannt. Der südliche geht nach Smyrna, der nördliche nach Konstantinopel. Dorthin, zum Teil über Saloniki, wird auch der in Macedonien und Thessalien gesammelte Salep gebracht. Seit den achtziger Jahren des XIX. Jahrh. ist Konstantinopel Hauptausfuhrort für Salep. 1892 betrug die Ausfuhr von dort 19000 kg, die Vorräte 10000 kg. Die Ausfuhr von Smyrna wurde 1879 auf 5000 Oka (zu 1283 g) geschätzt. Die Levantiner Ernte betrug 1893: 200-250 Sack à 80-90 kg. Smyrna exportierte 1905: 4690, 1906: 2926, 1907: 1806 und 1908: 1162 kg. Die Türkei braucht selbst viel Salep, nur ⅕ der Ernte gelangt zur Ausfuhr (~Gehe~). Die Zufuhren von der Levante treffen im Oktober bis November ein. In +Deutschland+ wurde Salep früher namentlich in Bayern, Nassau (Taunus und Westerwald), Fulda (Rhön und Vogelsberg), sowie im Odenwald gesammelt (~Wiggers~ 1863), jetzt scheint nur noch bei Kaltennordheim in der Rhön, bei Meiningen und etwas auch im Taunus und Odenwald gesammelt zu werden (~Flückiger~ 1891). Für den Großhandel kommt deutscher Salep nicht in Betracht. In den Preislisten finde ich _S. german._ höher im Preise notiert als _S. levantin._ Die deutschen Knollen pflegen kleiner zu sein. Auch in +Frankreich+ scheint etwas Salep gesammelt zu werden. Der beste +persische+ Salep wird auf dem Idjerûdplateau westlich von Zāndjân gesammelt. Nach der Blütezeit im Juli schicken die Teheraner Apotheker (attâr) Leute dorthin, um die Knollen zu graben und die Bewohner von Idjerûd verpachten den Salepsuchern ihre Wiesen (~Schindler~). In Nordpersien wird sálāb bei Mesched (Meschhed) gegraben. Der bessere persische Salep heißt Panjeh-i-sálāb (= Handsalep), der schlechtere Abushaheri oder Lasaniya (Pharmakogr.). Der persische Salep geht über Buschir besonders nach Indien, kommt aber auch bisweilen nach Europa. Die großen indischen Salepknollen stammen aus Bengalen, den Nilagiris und Ceylon, sowie aus Afghanistan, Belutschistan, Kabul, Bokhara und dem Pandschab (Pharmakographia). Die gegrabenen prallen Tochterknollen werden vom Stengel, dem Mutterknollen und den Wurzeln befreit, gewaschen, mit Tüchern abgerieben, dann -- oft auf Fäden gereiht -- in siedendes Wasser getaucht, um sie abzutöten und bei gewöhnlicher Temperatur oder bei künstlicher Wärme getrocknet. Bisweilen findet sich auch die Handelsware noch auf Fäden gereiht. Nur an der Luft getrocknete Knollen treiben, da der Schleim reichlich Wasser zurückhält, leicht an feuchter Luft aus. In Kultur werden die Knollen besonders in gutem Boden viel größer und schöner (~Valta~, ~Beissenhirz~) und es sollte daher der Anbau (Anzucht aus Samen) versucht werden. Es dürfte sich lohnen, da die Handelsberichte fortgesetzt über schlechte Ernten und geringe Zufuhren aus der Levante berichten, auch fehlt es dort oft an Transportmitteln zu den Hafenplätzen. Die Bedingungen der Kultur müßten aber erst studiert werden. Immerhin bildet die Pflanze aus dem Samen erst im dritten Jahre brauchbare Knollen. Die _Orchis_arten lieben kalkhaltigen Boden. Eine spontane Aussaat ist bei wildwachsenden oft beobachtet worden, da sehr zahlreiche kleine, leicht verbreitbare Samen gebildet werden (s. oben). =Lit.= ~Heldreich~, Nutzpflanz. Griechenlands. Athen 1862. -- ~Tchihatcheff~, Asie mineure Bot. II, 1860. -- ~C. v. Scherzer~, Smyrna, mit bes. Rücks. auf d. geograph., wirtschaftl. u. intellektuell. Verhältn. Wien 1873 (auch Arch. ph. 53 [1874] 53). -- (Anonym), Pharm. Post 1890, 22. -- ~Schindler~, Reis. im nordwestl. Persien 1880-82. Zeitschr. d. Ges. f. Erdk. 18. -- ~Stolze~ und ~Andreas~, Handelsverhältn. Persiens. ~Petermanns~ Mitteil. Ergänzungsheft 77 (1885). -- ~Aitchison~, Some plants of Afghanistan and their medic. prod. Pharm. Journ. 17 (1886) 467 und Notes on products of W. Afghanist. and N. E. Persia. -- ~Lindley~, Journ. Linn. Soc. 1859. -- ~Royle~, Illustrations of the Botany of the Himalayan mountains 1839. -- ~Powell~, Economic products of the Punjab 1868. -- ~Stewart~, Punjab plants 1869. -- ~Holmes~, Catalog. p. 135. =Beschreibung der Droge.= Die Droge besteht aus den durch Abreiben oft von der äußeren Schicht, besonders dem Korke, befreiten, gebrühten und dadurch hornartig-hart gewordenen +Tochterknollen+, deren Form nach der Art wechselt (s. oben S. 377). Neuerdings sind auch viel handförmige im Handel. Der die Pflanze tragende Mutterknollen kommt nicht in Betracht. Er schrumpft beim Trocknen zusammen. Zugelassen sind (z. B. von Pharmac. helvet. IV) sowohl die europäischen wie die vorderasiatischen, sowohl die kugeligen wie die länglich-eiförmigen und handförmig geteilten Knollen (s. oben). Im allgemeinen gibt man den kleineren Knollen den Vorzug, doch läßt z. B. Pharm. helvet. IV noch solche von 4 cm Länge zu. Die Knollen tragen an der Spitze eine Knospe, sowie bisweilen die Reste des «Stieles», mit dem sie an der Mutterpflanze befestigt waren (Fig. 132, JK). Nicht selten wird jedoch bei dem Abreiben der Knollen das Knöspchen, das sich leicht ablöst, entfernt, so daß dann der Knollen in der Handelsware an der Spitze eine Narbe bzw. eine kleine Mulde zeigt. Das Knöspchen ist das Endknöspchen der Achse, in deren Gewebe die Nebenwurzel ursprünglich entstanden war (~A. Meyer~, Fig. 132, H). Der deutsche Salep ist durchscheinend-gummiartig. Frische Knollen schmecken etwas bitter und haben einen eigenen Spermageruch. [Illustration: Fig. 133. Querschnitt durch den gebrühten Salep. Die großen Schleimzellen sind von Stärkekleister enthaltenden Zellen umgeben. Links oben (St) eine Stärkezelle aus dem ungebrühten Knollen, links unten eine Schleimzelle aus dem alten Knollen während der Entleerung. [+Tschirch+.]] =Anatomie.= Der ausgewachsene Tochterknollen zeigt den typischen Bau unterirdischer Speicherorgane: kleine zerstreute Bündel und reichlich entwickeltes Speicherparenchym. Er ist bedeckt von einer Epidermis, die oft noch Wurzelhaare trägt. Dann folgt eine sehr schmale Rindenschicht und dann eine verkorkte Endodermis (~A. Meyer~). Diese Schichten pflegen bei der Droge zum Teil durch Abreiben entfernt zu sein. Innerhalb der Endodermis liegt ein lockerer Kreis von etwa 30 (~Meyer~) zarten, radialen, von einer Bündelscheide umgebenen, in der Droge oft stark zusammengefallenen Gefäßbündeln und auch im Innern des Knollen finden wir solche. Sie führen 2-4 zarte alternierende Gefäß- und Siebstränge (Abbild. bei ~Meyer~). Die schmalen Gefäße sind Spiral- und Netzleistengefäße. Mechanische Zellen fehlen. Da +jedes+ «Bündel» seine eigene Endodermis besitzt, die einen kleinen Kreis radialer Gefäßbündel umschließt, so nehmen einige an, daß hier nicht eine Wurzel, sondern ein Bündel miteinander verwachsener Wurzeln vorliegt. Das Speicherparenchym ist stark entwickelt. Es besteht aus dünnwandigen Zellen, die bei den frischen Knollen reichlich bis 35 mik große, eiförmige oder rundliche Stärkekörner enthalten (Fig. 133, St). Größe und Gestalt der Stärkekörner variiert etwas nach der Art. Sie sind nach ~Vogl~ bei _O. militaris_ klein, unregelmäßig zusammengesetzt, bei _O. Morio_, _variegata_ und _pallens_ einfach kugelig oder eirund, meist mit einer Kernhöhle versehen, bei _O. maculata_ verlängert und mit deutlichen Schichten versehen. ~Vogl~ gibt den Durchmesser auf durchschnittlich 8 mik an. Bei der Droge findet sich aber in den Zellen infolge des Brühens ein Kleisterballen (Fig. 133), der nur in den seltensten Fällen noch intakte Körner erkennen läßt. Durch Jod färbt sich der Kleisterballen violett bis rotbräunlich, die Stärke ist also zum Teil in Amylodextrin übergeführt. Eingebettet in dies Stärkeparenchym finden sich zahlreiche, bis 700 (im Mittel 250-350) mik große +Schleimzellen+ (~Lindleys~ «Knötchen»), meist einzeln, selten auch in übereinander stehenden Reihen, die ziemlich regellos im Gewebe verteilt sind oder doch wenigstens nur um die Bündel herum eine etwas regelmäßigere Anordnung zeigen. Meist trennt die Schleimzellen nur eine Reihe Stärkeparenchym (Fig. 133). Der Schleim wird durch Jod und Jodschwefelsäure gelb (echter Schleim). Eosin färbt den Schleim junger Zellen gelbrot, den alter Zellen rosa, welche Färbung stehen bleibt, wenn man kurze Zeit Alkohol auf den Schnitt wirken läßt (~Hartwich~). Kongorot färbt orange (~Heinricher~). ~Hansteins~ Anilingemisch färbt nach schnellem Abspülen mit Alkohol rot. Rosolsäure in Sodalösung orangerot (~Hartwich~). In der Handelsware enthalten die Schleimzellen der ausgewachsenen Knollen nur selten noch Raphidenbündel von Calciumoxalat [~Raspail~ (Nouv. trait. syst. org. 1838) hielt die Kristalle für Calciumphosphat] -- am meisten noch die der Randschicht. Der Schleim entsteht im Inhalt. Die Schleimbildung beginnt um (~Hartwich~) oder in der Nähe (~Kohl~) eines kleinen Raphidenbündels. Dann erscheint er die Zwischenräume eines Plasmanetzes erfüllend und schließlich erfüllt er das ganze Innere der Zelle. Nur selten sieht man an der fertigen Schleimzelle einen zentralen Hohlraum, oft ein feines regelmäßiges Plasmanetz an der Peripherie der primären Wand anliegend, in dem sich dann auch wohl die bizarren Reste des Zellkerns (Fig. 133, Ke) bemerklich machen (~A. Meyer~, ~Hartwich~, ~Birger~). ~Kohl~ beschreibt die Sache so, daß im Zentrum in einer Plasmascheide das Kristallbündel liegt und dieses Zentralplasma mit dem Randplasma durch den Schleim durchziehende Fäden verbunden ist. Beide sollen Netzstruktur zeigen (ähnlich ~A. Meyer~). Die Kristallnadeln werden meist, aber nicht immer aufgelöst (Fig. 133, Kr₁). In den jungen Schleimzellen liegen Stärkekörner, die aber mit fortschreitender Ausbildung des Schleimes zunächst in ihrer Substanz verändert (sie färben sich mit Jod erst blau, dann violett, dann rot, endlich gar nicht mehr), dann aufgelöst werden. Sie liefern das Material für die Schleimbildung. Schleim und Stärke sind Reservestoffe. Sie werden aufgelöst, wenn die Knospe im Frühjahr austreibt (s. oben) -- zuerst die Stärke, dann der Schleim. Noch lange findet man in dem schon fast entleerten Knollen große korrodierte Schleimklumpen: die in Auflösung begriffenen Inhalte der Schleimzellen (Fig. 133, a). Wenn bei dem Knollen das Knöspchen an der Spitze erhalten ist, pflegen sich auch Reste des Stieles resp. der Tute vorzufinden, mit der der Knollen an der Pflanze befestigt war und in der das Knöspchen steckte (Fig. 132, K). Es kommt sogar vor, daß auch die Scheide, in der das junge Knöllchen ursprünglich sich entwickelte (s. oben S. 376), lange erhalten bleibt und auch den fertigen Knollen noch teilweise umgibt. Sowohl im Gewebe des Knöspchens als in dem der Tute finden sich sehr zahlreiche, oft dicht beieinander liegende Zellen mit Raphidenbündeln. Über den primären Bau der Wurzel vgl. ~Holfert~, Arch. Pharm. 1889. Die Wurzeln enthalten eine endotrophe Mycorhiza. Im +Pulver+ der Salepknollen prävalieren die oft maschige Struktur zeigenden Kleisterballen und deren Fragmente, die sich mit Jod violett färben, sowie die Inhalte der großen Schleimzellen oder deren Fragmente, die Jod gar nicht oder gelb bis braunrot färbt und die oft noch das periphere Plasmanetz, seltener die zentrale Höhle mit dem kleinen Raphidenbündel zeigen und Parenchymfetzen. Gefäßfragmente treten auch im Chloralpräparat wenig hervor. Das Gleiche gilt von den Raphidenbündeln, die den peripheren Schichten der Knollen und der Knospe entstammen. Nur halb verkleisterte Stärke, wie sie ~Koch~ abbildet, habe ich niemals gesehen, auch intakte Stärkekörner sind höchst selten. Jede Verfälschung des Pulvers mit anderen Stärkemehlen (s. unten) ist daher leicht zu erkennen. «Legt man das Pulver in Weingeist, so erscheinen die Schleimzellen als helle Schollen, läßt man dann Wasser zufließen, so verwandeln sie sich in helle, runde Blasen» (Pharm. helv. IV). =Lit.= ~Arthur Meyer~, Drogenkunde (dort das Detail). -- ~Berg~, Anat. Atlas t. 23. -- ~Vogl~, Kommentar (1908). -- ~Karsten-Oltmanns~, Pharmakognosie, Fig. 128-133. -- ~Moeller~, Pharmakogn., Fig. 291-293. -- ~Hartwich~, Artikel Salep in Realenzyklop. d. Pharm. XI. -- ~de Bary~, Anatomie 146, 151 u. 377. -- ~Johann E. Weiss~, Anat. u. Phys. fleischig verdickt. Wurz. Flora 1880. -- ~Prillieux~, Ann. sc. nat. 4 (1865), 265. -- ~Lindley~ (Bem. über die Anat. d. Ophryd. Wurz.), Transact. Linn. Soc. V, 18, 423 (Arch. Pharm. 39 (1844), 178, Okens Isis. 1843, 449, älteste mikroskop. Unters. d. Salep). -- ~Kohl~, Unters. über d. Raphidenz. Bot. Centralbl. 79 (1899), 273, Fig. 14-18. +Schleimzellen+: ~Schmidt~, Pflanzenschl. u. Bassorin. Lieb. Ann. 1844, 41. -- ~Lindley~ a. a. O. -- ~Behrens~, Hilfsb. z. Ausf. mikr. Unters. S. 311. -- ~Cramer~, Pflanzenphys. Unters. 1855. -- ~Wigand~, Pringsh. Jahrb. III, 149. -- ~Kützing~, Grundz. d. philos. Bot. 1883, 194. -- ~Meyen~, Sekretionsorg. -- ~Frank~, Pringsh. Jahrb. V, 161. -- ~Arth. Meyer~, Knoll. d. einheim. Orchideen. Arch. Pharm. 1886, 325 und Drogenkunde. -- ~Hartwich~, D. Schleimz. d. Salepknollen. Arch. Pharm. 1890, 563 (m. Abbild.). -- ~Birger~, Om tuber Salep Arkiv för Bot. 6 (1907) u. Bot. Centralbl. 105, 31. -- Das +Pulver+ ausführlich in ~Kochs~ Atlas II, t. 11. -- +Anatom.+ d. Eulophia in Pharmacogr. indic. =Chemie.= ~Dragendorff~ fand in Prozenten: +Schleim+ (Arabin und Dextrin) 48,14, +Stärke+ 27,30, +Zellstoff+ 2,43, +Zucker+ 1,21, +Eiweiß+ und +Albuminate+ 5, +Fett+ 0,44, +Weinsäure+ Spuren, Wasser 8,5, Asche 2,1. ~Nygård~ gibt den Zuckergehalt auf 1% an. Im Knollen von _Orchis purpurea_ fand ~Harley~ im Mai 0,41% Saccharose und 0,51% reduzierenden Zucker. Die Menge des Schleims variiert etwas. Er ist schwer zu reinigen und hält hartnäckig Stickstoff und Asche zurück. 1 : 100 erhält man mit Saleppulver einen dicken Schleim, 2 : 100 eine Gallerte. Der Schleim wird durch Jod rot und nach dem Eindampfen violett, da neben Schleim auch Amylodextrin aus den Stärkezellen in Lösung geht. Er wird durch Bleiessig und Alkohol gefällt, nicht durch Bleizucker. Magnesia und Borax verdicken ihn. Der Schleim färbt sich mit Chlorzinkjod nicht blau und quillt in Kupferoxydammon ohne sich zu lösen (~A. Meyer~). Er wird gefällt durch MgSO₄, Na₂SO₄, (NH₄)₂SO₄, (NH₄)₂HPO₄ (~Pohl~). ~Giraud~ betrachtete den Salepschleim als ein Umwandlungsprodukt der Stärke und zwar als «eine in Wasser schwellende Varietät des Dextrins». ~Schmidt~ nennt den Schleim Salepbassorin, gibt an, daß er mit verd. Schwefelsäure Gummi und Zucker liefere, bei gleichzeitiger Abscheidung von Zellulose und fand ihn zusammengesetzt = 47,20-47,28% C und 5,94-6,10% H. Er hielt ihn für ein Übergangsprodukt vom Gummi zur Zellulose, ~Frank~ für eine Modifikation der Zellulose. Aus dem Salepschleim wird durch Zusatz von Salzlösung und nachher festem Salz zunächst ein schwerer löslicher, die Gallertebildung des Schleims bedingender Körper (α-Schleim) und dann erst ein gummiartiger β-Schleim gefällt (~Pohl~). Im deutschen Salep ist α-Schleim nicht vorhanden. Mit Salpetersäure gibt Salepschleim Oxalsäure und +keine+ Schleimsäure. Bei der Hydrolyse liefert er neben Dextrin +Mannose+ und +Glukose+ aber +keine Galaktose+ oder Arabinose, Furfurol entsteht nicht (~Gans~ und ~Tollens~). Dabei wird Zellulose abgeschieden (~Tollens~). Daß Dextrose vorhanden schlossen ~Gans~ und ~Tollens~ daraus, daß sich bei der Oxydation +Zuckersäure+ bildet, «so daß er zur Stärkereihe gerechnet werden könnte» (~Tollens~). (Sie erhielten aber auch ein Glukosazon.) Bei der vollständigen Hydrolyse liefert der Salepschleim ausschließlich +Mannose+ (~Hilger~), die unvollständige liefert zunächst ein Mannotetrasaccharid und eine Mannobiose. Der Salepschleim enthält also ein +Mannan+. Bei der Oxydation mit H₂O₂ entsteht neben Formaldehyd, Ameisensäure und Kohlensäure d-Mannozuckersäure und d-Trioxyglutarsäure. ~Hauke~ fand meist 1,5-2,5% Asche. Obere Grenzzahl 3% (Niederländ. Pharmakop.: 1,5 minim., 4% max.). Die Asche enthält viel Phosphate. Frische Knollen enthalten ein flüchtiges Öl, das von ~Mathieu de Dombaste~ durch Destillation isoliert wurde. Beim Trocknen der frischen Knollen «entwickelt sich ein feiner an Cumarin erinnernder Wohlgeruch» (~Flückiger~). =Lit.= Ältere Untersuchungen von ~Berzelius~, ~Caventou~, ~Guillemin~, ~Guibourt~, ~Raspail~, ~Payen~, ~Linley~. -- ~Giraud~, L’Union pharm. 16, 249. -- ~Schmidt~, Lieb. Ann. 51, 29. -- ~Dragendorff~, Pharm. Z. f. Rußl. 1865, 145. -- ~Harley~, Thèse. Paris 1905. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Gans~ u. ~Tollens~, Ber. d. d. chem. Ges. 21 (1888), 1806 und 2150, Lieb. Ann. 249, 256. -- ~Tollens~, Kohlenhydrate. -- ~E. Fischer~ u. ~Hirschberger~, Ber. d. d. chem. Ges. 21, 1805 u. 22, 365. -- ~Pohl~, Zeitschr. phys. Chem. 14, 150. -- ~Hilger~, Ber. d. d. chem. Ges. 36 (1903), 3198. -- ~Thamm~, Salepschleim, Diss. München 1903. =Anwendung.= Salep dient, da ein Mucilaginosum, als reizmilderndes und einhüllendes Mittel bei Diarrhöen und Darmkatarrhen besonders der Kinder. Als Mucilago, Dekokt, Gallerte, Mixtura Salep, auch äußerlich zu Klystieren oder deckendes Mittel (~Unnas~ Salepbassorinfirniß). Salep gilt auch als Nährmittel und wird auch z. B. in der Form der chocolat analeptique au salep mit Milch, Bouillon und Wein angewendet. Die, wie es scheint, durch nichts begründete Ansicht des Volkes, daß die _Orchis_knollen Aphrodisiaca seien, beruht auf der Signatura (Hodenform, Spermageruch). Anrühren des Saleppulvers mit Alkohol erleichtert die Erzielung klümpchenfreien Schleims. Den besten Salepschleim erhält man (nach ~Fromme~) weder mit feinem noch mit mittelfeinem Saleppulver, sondern mit der Griesform (Sieb 5). Ähnliches beobachteten schon ~Fenner~ und ~Winckler~ (1843). Zuckerzusatz konserviert den Schleim (~Vulpius~). In Indien wird Salep viel für Süßigkeiten benutzt. Die Orientalen bereiten aus dem Salep ein Getränk, das an Stelle von Tee im Winter in großen Mengen genossen wird (~Gehe~, Handelsber. 1896). Salepdekokt mit Honig gemischt wird in der Türkei und Griechenland als erfrischender Frühtrunk genossen (~Heldreich~). Aber auch zur Speiseeis-Bereitung dient dort der Salep. Mit Gewürz und Wein gibt das Dekokt ein angenehmes Krankengetränk. Salep dient auch als Klebemittel, zur Appretur statt Gummi arabicum. Nach ~Ainslie~ soll Salep Salzwasser seines Salzgeschmackes berauben. =Verfälschungen.= Als Verwechslung werden die Bulbotubera von _Colchicum_ angegeben, die aber entweder in weißen Querscheiben oder mit dem braunen Niederblatt umgeben im Handel sind, auch eine seitliche Rinne haben, also ganz anders aussehen. Immerhin kommen Salepknollen bisweilen vor, die eine seitliche Rinne besitzen (~Hockauf~). Die anatomische Untersuchung läßt die Beimengung sofort erkennen. Die Stärke ist bei _Colchicum_ niemals verkleistert. Als die Einsammlung des deutschen Salep in den fünfziger Jahren des XIX. Jahrh. in der Rhön und im Westerwald in Blüte stand und im Jahr bis 14000 Pfund der Droge nach Frankfurt kamen, beobachtete ~Mettenheimer~ nicht nur Beimengung geschälter _Colchicum_knollen, sondern einmal bestand die ganze als «weißer Salep» angebotene Masse aus diesen Knollen. In Indien fanden sich vor einiger Zeit unter dem Namen banawati salap oder salam künstliche Salepknollen aus Gummi und Kartoffelstärke. ~Hockauf~ fand in einem Salepknollen ein Steinchen, das der wachsende Knollen eingeschlossen hatte. Das Saleppulver wird oft mit Stärke, z. B. Weizenstärke (~Hartwich~), verfälscht angetroffen. =Lit.= ~Mettenheimer~, N. Jahrb. f. prakt. Pharm. II, 165. -- ~Hockauf~, Ein interessant. Salepknollen. Pharm. Centralh. 1905, 83. =Geschichte.= Der Unterschied zwischen den beiden Knollen war schon den Alten aufgefallen und sie schrieben ihnen eine verschiedene Wirkung zu. ~Theophrast~ sagt, der größere vermehre die facultas coëundi, der kleinere vermindere sie. ~Dioskurides~ sagt, daß der größere Knollen vom Manne verzehrt, die Geburt von Knaben bewirke, der kleinere, von der Frau genossen, die Geburt von Mädchen, und erwähnt, daß in Thessalien die Frauen den zarteren vollsaftigen (bei ~Plinius~ den größeren, härteren) Knollen als Aphrodisiacum, den festeren trockenen (bei ~Plinius~ den kleineren weicheren) als Antiaphrodisiacum benutzen. Die in dem von der Form hergenommenen Namen ὄρχις zum Ausdruck kommende Beziehung zu den Geschlechtsorganen und die entsprechende Verwendung zeigt, daß hier den Alten wie in so manchen Fällen eine Signatura (vgl. I, S. 886) vorschwebte. Auch der eigenartige Geruch frischer Knollen mag hier wegleitend gewesen sein. ~Dioskurides~ unterscheidet ὄρχις (ὀ. κυνὸς), ὀ. ἔτερος (Serapias), σατύριον und σ. ἐρυθρόνιον. Von diesen wird das letztere nicht auf eine Orchidee bezogen, die übrigen sind _Orchis_- bzw. _Ophrys_arten. Ähnlich ~Plinius~, der Orchis (Serapias), zwei Arten Satyrion (Männchen und Weibchen) und ein Satyrion erythraicon unterscheidet, und auch Krankheiten nennt, gegen die sie angewendet wurden. Blüten und Knollen der _O. serapis_ (_muscifera_) spielten bei den üppigen Serapisfesten in Canopis eine Rolle. Im germanischen Altertum waren _Orchis_arten der Göttin der Liebe ~Freya~ geweiht («Friggagras»), andere der Riesin ~Brana~ («Brönnagras») und in zahlreichen, zum Teil sehr alten Namen (z. B. hiônarôt = Heiratswurzel, gradrôt = Gierwurzel), tritt auch hier die Beziehung zum Geschlechtsleben, die man besonders der Wurzel der Pflanze zuschrieb, hervor. Sie wurden denn auch damals viel zu Liebeszauber und als Aphrodisiacum benutzt (I, S. 1009), wie auch später noch im XV. und XVI. Jahrh. (vgl. d. Kräuterbücher). Eine alte Sage läßt sie aus dem verspritzten Samen von Vögeln hervorgehen (daher wohl Kuckuckspeichel, s. oben). Die Unterscheidung zwischen männlicher und weiblicher _Orchis_ finden wir auch noch in späterer Zeit. In Sušrutas fehlt _Salep_. Die Araber des Mittelalters (z. B. ~Avicenna~) verwendeten die _Orchis_knollen wohl vorwiegend ungebrüht und brachten die Droge aus Persien nach dem Abendlande, wo sie bis dahin wenig beachtet worden war und nur die ungebrühten Knollen heimischer Orchideen ein wenig benutzt worden waren. Satyrion steht im Nördlinger Register (1480); Rad. satyrii sive testiculus vulpis, Staudelwurtz in der Hamburger Taxe von 1587 (I, S. 818), in Zucker eingekochter _Salep_ im Braunschweiger Register (I, S. 814) und in ~Schröders~ Pharmakop. vom Jahre 1649 (~Flückiger~). Abbildungen und Beschreibungen der _Orchisarten_ lieferten die Patres botanices, z. B. ~Fuchs~ (Fig. 134), dann auch ~Gerarde~ (1636). ~Claude Joseph Geoffroy~ zeigte (1740), daß der bis zum XVIII. Jahrh. fast allein benutzte orientalische _Salep_ ein _Orchis_knollen ist, wie schon vor ihm ~Gerarde~ (I, S. 909) und ~Jos. Miller~ (Botanicon officinale, I, S. 948) erkannt hatten, und ~Buxbaum~ (1733) auf seiner orientalischen Reise bestätigt fand, und +daß man von den europäischen Arten der Gattung+ _Orchis_ +gleichwertigen Salep gewinnen kann+. =Lit.= ~Buxbaum~, Plantar. minus cognitar. Cent. III. Petropol. 1740. -- ~Claude Jos. Geoffroy~, Mém. de l’acad. d. sciences 1740. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. [Illustration: Fig. 134. Aus +Fuchs+, New Kräuterbuch. Basel 1543. [Phot. verkleinert.]] =Paralleldrogen.= In Mexico werden die Knollen der Orchideen _Blettia campanulata_ und _coccinea_, _Epidendron pastoris_ und _Arpophyllum spicatum_ wie _Salep_ benutzt (~Maisch~). 1888 kam als Ersatz des _Salep_ die Wurzel von _Asparagus ascendens_ aus Ostindien nach England (~Dymock~). Die zuerst 1865 im Handel erscheinende und als Ersatz für _Salep_ empfohlene _Rad. corniolae_, die ~Strielack~ Nourtoak (von nourriture und toak = Wurzel) nannte, stammt von _Asphodelus Kotschyi_ (? nicht im Kew Index). Sie weicht in der Zusammensetzung stark von dem _Salep_ ab, denn sie enthält, neben 52% Schleim, 8-14% Zucker und +keine+ Stärke, sowie 10% «unlöslichen Pflanzenschleim» (~Dragendorff~). Der _Königs-Salep_ (Padischah-, Badschah-, Radja-Salep) der indischen Bazare (~Hanbury~) ist die amylumfreie Zwiebel von _Allium Macleanii_ (~Aitchison~, abgeb. in Bot. Mag. 1883, t. 6707), nicht die Zwiebel der Orchidee _Pholidota imbricata_ ~Hook.~ (~Dymock~) oder die der Amaryllidacee _Ungernia trisphaera_ ~Bunge~ (~Baker~). Sie schmeckt bitterlich. =Lit.= ~Maisch~, Jahresb. d. Pharm. 1885, 104. -- (~Dymock~) Pharm. Journ. 1887/88. -- ~Dragendorff~, Ph. Z. f. Rußl. 1865, 145. -- Jahresb. d. Pharm. 1865, 87. -- ~Paschkis~, Pharm. Post 13. -- ~Hanbury~, Pharm. Journ. 17 (419) und Science papers, p. 155 (m. Abbild.), Journ. pharm. chim. 33 (1858). -- ~Aitchison~, Ann. of botany 1889, Pharm. Zeit. 1888, 744. d) Schleimzellen in Rinden. Viele Rinden enthalten Schleimzellen mit typischen Schleimmembranen, wie z. B. die =Zimtrinden=, die um so weniger geschätzt werden, je schleimreicher sie sind, da die schleimreichen Rinden ölarm zu sein pflegen. Ich habe die Sache aufgeklärt. Es ließ sich zeigen, daß Schleim- und Ölzellen in ihrer primären Anlage sich nicht unterscheiden. Später werden dann die einen zu Ölzellen, indem die Schleimplasmaschicht resinogen wird (~Tschirch~ und ~Rud. Biermann~), die anderen bleiben Schleimzellen und bilden die typische geschichtete Schleimmembran aus (Fig. 281). Wie viele zu Ölzellen werden, scheint vom Klima und Standort abzuhängen. Zu den Rinden mit Schleimzellen gehört auch die jetzt nur wenig benutzte =Cort. ulmi= von _Ulmus effusa_ ~Willdenow~, unserer Rüster, die neben Schleim auch Gerbstoff enthält und die im Sommer bisweilen sogar reichlich Schleim ausschwitzt (~Flückiger~, Pharmakognosie S. 513). Noch schleimreicher ist die Rinde der nordamerikanischen _Ulmus fulva_ ~Michaux~ (Pharmacographia p. 557). Die Chinesen bedienen sich außer der Lein- und Quittensamen gern auch der Ulmenrinde als Mucilaginosum (I, S. 521). 7. Gummo-Membranindrogen. Die Gummis. Das Gummi schließt sich an die Schleimdrogen (Koryzomembranindrogen) an. Das _Traganth_ bildet den Übergang zwischen den typischen Schleimdrogen, wie sie z. B. bei den Malvales vorliegen, und dem _Gummi arabicum_, denn bei ihm findet Schleimmembranbildung statt, ähnlich wie bei den oben (S. 314 bis 374) behandelten Schleimdrogen. Doch liegen hier die Schleimzellen nicht isoliert, sondern bilden ein ganzes Schleimgewebe, das bei Verletzungen herausgequetscht wird. +Die Bildung selbst ist nicht pathologisch.+ Bei den Gummis im engeren Sinne dagegen scheinen pathologische Produkte vorzuliegen. ~Sorauer~ und ~Grüss~ haben freilich neuerdings nachzuweisen versucht, daß die Gummosis aus einem normalen Stoffwechselprozesse hergeleitet wird und nicht ein dem gesunden Organismus ganz fremder Prozess sei, aber auch sie geben doch zu, daß Wundreiz, Störungen in der Ernährung, Bakterieninfektion u. a. dazu beitragen, daß dieser Prozeß irregulär verläuft und eine starke Steigerung erfährt. Jedenfalls ist eine irgendwie +ergiebige+ Gummibildung ohne pathologische Eingriffe nicht beobachtet worden, eine +Steigerung+ der Gummibildung durch den äußeren Reiz zweifellos. Damit tritt die Gummosis in Parallele zur Resinosis. Denn wir beobachten ja, daß eine Verwundung die bei vielen Pflanzen normale Harzproduktion durch Ausbildung neuer sekretbildender Organe stark steigert (Gesetz des Harzflusses, I, S. 363). Ebenso fand ~Mikosch~, daß die das Gummi bildenden Gewebeinseln («Gummiparenchym») bei den Amygdalaceen erst infolge der Verwundung im Cambium angelegt werden, und zwar zunächst als schizogene Gänge, die sich dann lysigen erweitern -- ganz ähnlich wie bei den Harzpflanzen. Diese Analogie wird noch dadurch größer, daß wir in beiden Fällen, der Gummi- wie der Harzbildung, eine Membranschicht beteiligt sehen und der Unterschied eigentlich nur darin besteht, daß in dem Falle der Gummibildung die betreffende Membranschicht +gummogen+, bei der Harzbildung aber +resinogen+ ist, bei der Harzbildung in der resinogenen Schicht das Sekret entsteht, während bei der Gummibildung die ganze Membranpartie «vergummt» -- womit übrigens nichts gesagt sein soll, daß hier eine als Zelluloseschicht angelegte Membranpartie nachträglich in Gummi übergeführt werden müsse, das Gummi kann auch sogleich als solches angelegt werden, wie wir dies ja auch bei den Schleimmembranen beobachten. Über die +Gummosis+ wird im Zusammenhang unter _Gummi arabicum_ berichtet. Auch die chemische Untersuchung läßt keinen Zweifel darüber, daß die Gummis zu den Membranindrogen gehören. Sie besitzen durchaus den Charakter von Polysaccharid-Membraninen. Die Hydrolyse liefert für gewöhnlich Galaktose und Arabinose (über die nahen Beziehungen dieser beiden Zucker vgl. S. 274). Dies gilt auch für den Gummianteil der Gummiharze. Eine Einteilung der Gummis in Arabin-, Cerasin- und Bassorinhaltige (vgl. ~Tschirch~, Artikel Gummi in der Realenzyklopädie) hat wenig inneren Wert. Die Unterscheidung in ganz oder nur teilweise in Wasser lösliche besitzt jedoch praktische Bedeutung (vgl. _Gummi arabicum_). Ein Verzeichnis der Gummi liefernden Pflanzen in ~Wiesner~, Rohstoffe. =Lit.= ~Tschirch~, Artikel Gummi in Realenzyklop. d. Pharm. und Angew. Anatomie. -- ~Wiesner~, Rohstoffe. Die weitere Lit. unter Gummi arabicum. Traganth. =Syn=. Gomme adragante (franz.) -- tragacanth (engl.) -- tragacánth (holl.) -- gomma adragante, g. dragante (ital.) -- goma tragacanto (span.) -- dragant (schwed.) -- τραγάκανθα (griech.) -- pers. und arab. (auch in Indien und Afghanistan): kathîra, katâd, kettira, katira, kutera, katera, chitira, halusia -- kurdisch: guini -- bei den Türken: ketereh. -- Der Traganthstrauch in Kleinasien: ketré oder τραγακάνθινος, in Persien (z. B. im Harirud-Tale, ~Aitchison~): kon (_A. strobilif._) oder gabina (_A. heratens._). -- In Afghanistan heißt schlechtes Traganth: anserus. -- Das nechóth, nᵉkhōth der Bibel (Genes. 37 u. 43) ist wohl = nakaʿat (arab.), nakamâti (assyr.), d. h. als Traganth anzusprechen; ~Luther~ übersetzt (jedenfalls fälschlich) Würze, ~Kautzsch~ Traganth. =Etym.= Da Lehnwort aus dem griechischen τραγάκανθα Traganth und nicht Tragant. Ebenso auch Traganthon, nicht Traganton. Eigentlich muß man +die+ Traganth sagen, denn ~Theophrast~ schreibt ἡ τραγάκανθα, doch ist jetzt der oder das Traganth gebräuchlicher. Ich schreibe +das+ Traganth (scil. gummi). -- τραγάκανθα von τράγος (= Bock) und ἀκάνθα (= Horn oder Dorn) entweder in Beziehung zu der dornigen Beschaffenheit des Strauches oder der oft bockshornartigen Form des herausgedrückten Schleims -- ἀστράγαλος = Würfel, Halswirbel. Beziehung zweifelhaft, von einigen auf Stengel und Wurzeln, von anderen auf die Samen bezogen. =Stammpflanzen= des kleinasiatischen Traganth (nach ~Haussknecht~, 1879, und ~Planchon~, 1892): =Astragalus gummifer= (nicht gummifera wie der Autor schreibt) ~Labillardière~ (A. erianthus ~Willd.~), vom Libanon durch die zentralen Gebirge Kleinasiens, um Kaisarieh bis nach Armenien, ferner im Ala-dagh und in den nördlichen Gebieten des Euphrat und Tigris. =A. microcephalus= ~Willd.~ Ebenda und auch im südwestlichen Teile Kleinasiens (von Lycien bis Armenien und Iberien, Cappadocien, Paphlagonien). =A. stromatodes= ~Bunge~, besonders in Höhen von 1500 m im Achyr dagh (Akker-dagh, Taurus) nördlich von Marasch in Nord-Syrien und zwischen Marasch und Aleppo. Liefert viel Traganth. =A. kurdicus= ~Boiss.~ Gegend von Aintab zwischen Marasch und Aleppo, dann im südöstlichen und zentralen Kleinasien und Kurdistan (Nordsyrien, Cilicien, Cappadocien). Liefert viel Traganth. =A. verus= ~Olivier~ in Kleinasien (und Nordwestpersien, Kermanchah). Stammpflanzen des persischen Traganth (nach ~Haussknecht~, ~Brant~ und ~Aitchison~): =A. pycnocladus= ~Boiss.~ et ~Hausskn.~ in den Avroman- und Schaho-Bergen in der Provinz Ardilan, überhaupt in den Gebirgen Westpersiens (Zagrosketten) weit verbreitet (Kurdistan). -- Sehr reichlich Traganth gebend. =Astragalus adscendens= (ascendens) ~Boiss.~ et ~Hausskn.~ (nicht im Kew Index), in den südwestlichen Gebirgsgegenden Persiens in Höhen bis 3000 m. =A. leiocladus= ~Boiss.~, im mittleren und westlichen Persien, bei Isphahan und Hamadan. =A. brachycalyx= ~Fischer~, in den gleichen Gegenden, besonders in persisch Kurdistan, in Luristan 1300-2600 m. =A. heratensis= ~Bunge~ und =A. strobiliferus= ~Royle~ (resp. eine diesem verwandte Art) im Harirud(Heri-Rud)-Tale und in den Bergen Chorasans im nordöstlichen Persien (~Aitchison~). =A. eriostylus= ~Boiss.~ et ~Hausskn.~, wird in Luristan (Südwestpersien) 2 m hoch und 1 cm dick (~Haussknecht~). =Stammpflanze= des griechischen (Morea) Traganth (nach ~Heldreich~, 1862). =Astragalus Parnassi= ~Boiss.~ =var. cyllenaeus= (A. cyllenaeus ~Boiss~. et ~Heldr.~) bei Vostizza und Pratras, im nördlichen Peloponnes, auf dem Boïdias, Taygetos und Phteri. Auf den höheren Bergen Griechenlands wächst auch A. creticus, A. aristatus und cephallonicus. Die Sekretion bei A. creticus ~Lam.~ (Tragacantha cretica incana ~Tournef.~) ist zu gering, um für den Handel in Betracht zu kommen (~Olivier~), ebensowenig liefert A. massiliensis ~Lam.~ (A. Tragacantha L.) Traganth. =Systemat. Stellung.= Astragalus gehört zu den Leguminosae, Papilionatae -- Galegeae -- Astragalinae (in die Nähe von Glycyrrhiza); die Traganthsträucher zu der Sectio VII Tragacantha ~Bge.~ und zwar zu den Gruppen Brachycalyx, Platonychium, Stenonychium und Rhacophorus. (Näheres bei ~Taubert~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam.) Die Gattung _Astragalus_ ist eine der artenreichsten der Leguminosen (über 1200). Sie ist über die ganze Erde außer Australien und dem Cap verbreitet und auch bei uns mit einigen dornlosen Arten (_A. excapus_, -- früher in Gebrauch: _Rad. astrag. excapi_ -- _A. Cicer_, _A. glycyphyllos_, _A. danicus_ usw.) vertreten. Die _Traganth_ liefernden Arten finden sich aber nur in Kleinasien, Syrien und Persien (sowie in Griechenland). «Ihre Heimat sind die ausgedehnten Gebirgszüge, welche östlich von der Linie aufsteigen, die man von der Insel Rhodus etwa durch Angora nach Sinope am schwarzen Meere zieht. Diese zahllosen Ketten umfassen den Südrand Kleinasiens, die syrische Küste, umfassen Mesopotamien bis zu den großen armenisch-persischen Seegebieten von Wan und Urmia, verzweigen sich bis in die Gegend von Kaschan und Isfahan und endigen unweit des persischen Golfes im Gebirge von Mohamed Senna, nordwestlich von Schiras» (~Flückiger~). Die _Traganth_sträucher bilden eine +charakteristische Vegetationsform+ des östlichen Mittelmeergebietes und der angrenzenden persischen Gebiete, die eigenartigste Form des Dornbusches der Steppen. «Durch keine Pflanzenform», sagt ~Grisebach~, «wird das persisch-anatolische Hochland bestimmter charakterisiert als durch die _Traganth_sträucher, deren gedrängte, zierliche Fiederblätter in Dornen auslaufen und deren Stämme, nachdem die Blättchen abgefallen, durch die stechenden Blattstiele, die sich dauernd erhalten, noch viel stärker bewaffnet sind.» Im Steppengebiet ist _Astragalus_ mit c. 800 Arten vertreten (~Bunge~). +In der Gummibildung haben wir eine Anpassung an das Steppenklima, eine Ausnutzung auch geringer und vorübergehender Niederschläge durch Ausbildung eines Wasser speichernden Gewebes zu sehen.+ Die Bildung des Gummis im Mark erfolgt schon dicht unter der Vegetationsspitze (~Solms~). -- Die geringe Größe der Sträucher «verschafft ihnen den Vorteil der winterlichen Schneedecke». =Beschreibung der Stammpflanze.= Die Traganthsträucher (engl. Gum-bearing-milk-vetch) sind weiß behaarte Dornsträucher. Der Beschreibung mag _Astragalus gummifer_ ~Labill.~ zugrunde gelegt werden. Die Pflanze bildet einen sehr sparrigen, reich verästelten Strauch, der bis 80 cm hoch wird und dessen obere blühbare, stark verkürzte Zweige ein sehr hartes, gelblich-weißes Holz und eine borkenbildende Rinde besitzen. An den vorjährigen, dicht weiß behaarten Zweigen sitzen die paarig-gefiederten, 5-7jochigen +Blätter+, deren +frühzeitig verholzende, gelbe, oben zugespitzte, stechende Spindel lange erhalten bleibt und dem Strauche das dornige Aussehn verleiht+. Die oblong-lanzettlichen, 7-8 mm langen Blättchen fallen bald ab. Auch die spitzen, dem Blattstiele angehefteten Nebenblättchen sind sehr hinfällig. Die hermaphroditen, zygomorphen Schmetterlingsblüten stehen gepaart in den Blattachseln und werden von einem gekielten Deckblatte gestützt. Der 7 mm lange Kelch ist bis zur Hälfte fünfteilig, die dicht seidig-zottige Röhre kreiselförmig. Die gelblich-weißen Blüten besitzen eine oben ausgerandete, 14-16 mm lange Fahne, die 12-14 mm langen Flügel sind mit schmalem Nagel der Staubgefäßröhre angewachsen. Der Kiel ist schmal und stumpf, die weiße, geschlitzte Staubgefäßröhre ist nur wenig gekrümmt. Das obere Staubgefäß ist frei. Der schopfig behaarte Fruchtknoten enthält etwa 10 Ovula. Die Frucht ist eine Hülse. _A. adscendens_ wird 1,5 m, _A. kurdicus_ 1,3 m, _A. eriostylus_ 2 m, _A. brachycalyx_ 1 m hoch (Beschreibung der Arten bei ~Luerssen~, Mediz. pharm. Bot. und in ~Pabst-Köhler~, Medizinalpflanzen t. 119). =Lit.= ~Bunge~, Gener. Astrag. Spec. Gerontog. Mém. acad. imp. Petersb. (7) 11 und 15. -- ~Boissier~, Flora orient. II. -- ~Lindley~, Flor. med. 247 und Botan. regist. 1840. -- ~F. B. Fischer~, Synopsis Astragalorum Tragacantharum Mosquae 1853. -- ~Haussknecht~, Briefl. Mitth. (1879) in ~Flückiger~, Pharmakogn. (auch: ~Kiepert~, Haussknechts Routen im Orient (1865 bis 1869). 4 Bl. Berlin 1882). -- ~Aitchison~, Pharm. Journ. 17 (1886), 467. -- ~Grisebach~, Vegetation der Erde 1872. -- ~Hartwich~ in Realenzyklop. -- Die sonst verwendeten Astragalusarten in ~Dragendorff~, Heilpflanzen. -- +Abbild.+ von _Astrag. gummifer_(_a_) in ~Labillardière~, Observat. sur la Physique 36 t. 1, copiert in ~Nees von Esenbeck~, Suppl. t. 62. ~Berg-Schmidt~ Atlas, 2. Aufl. t. 54 (dort die systemat. Lit.). ~Bentley-Trimen~, Medic. pl. t. 73. ~Baillon~, Bot. méd. I, Fig. 2200 u. 2201. ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. II, 491 und ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. III, 295. -- Von _A. adscendens_ in ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 119. -- Von _A. creticus_ ~Lam.~ in Flora Graeca t. 736 und in ~Berg-Schmidt~, I. Aufl. t. 31. -- Von _A. Tragacantha_ in ~Giesenhagen~, Botanik. -- Von _A. verus_: ~Olivier~ in Oliviers Voyage Emp. Ott. t. 44. ~Nees von Esenbeck~, t. 329 und ~Gilg~, Botanik, Fig. 404. =Pathologie.= Auf _A. leiocladus_ ~Boiss.~ findet sich eine kleine parasitische Phanerogame, nämlich die Rafflesiacee _Pilostyles Haussknechtii_ ~Boiss.~ (~Solms Laubach~, Bot. Zeit. 1874. Abgebildet auch in ~Berg-Schmidt~, Atlas, 2. Aufl.). =Gewinnung.= Gute Traganthe kommen nur aus Gebirgsgegenden (~Schlimmer~). Der Austritt erfolgt durch Wunden, die spontan, z. B. durch weidendes Vieh, entstehen oder künstlich angebracht werden. +Hauptproduktionsdistrikte für anatolisches Traganth+ sind (~Gehe~ 1898) die Distrikte im mittleren Kleinasien: +Kaisar+ (Kaisarie, das Caesarea der Alten) produziert am meisten, dünn, kleinblätterig, sehr ausgiebig, leicht zerbrechlich. -- +Everek+ größer wie Kaisar, sehr ausgiebig. -- +Nidé+ produziert viel, nach Kaisar das meiste, große kräftige, dicke Blätter von schönem Aussehn. -- +Angora+, dünnes, glänzendes, etwas glasiges Blatt (ähnlich dem syrischen), Weißblatt blank, die blonden und gelben Sorten meist befleckt und sandig. -- +Joskat+ glasig, Blätter etwas kleiner als Angora und geringelt. -- +Sillé+ glänzend und glasig, sehr dickes Blatt, schwer löslich. Daneben finden sich noch sog. +Mischlinge+, d. h. zwischen den genannten Distrikten gesammelte Sorten. Auch ~Maltass~ nennt bereits 1855 Kaisarie und Angora neben Yalavatz (Jalowadj, Jabolatsch), Isberta (Isparta), +Burdur+ (Buldur) als Hauptplätze der kleinasiatischen Traganthgewinnung. Andere auch die Berge von Ala-dagh zwischen Kaisarie und Tarsos im Süden (vgl. die Karte I, S. 440/41) und das Hochland von Bingöl-Dhag zwischen Erserum und Musch ganz im Osten (in West-Kurdistan). Nach Smyrna gelangte das Traganth (1874) besonders aus Jalowadsch und Burdur (Prov. Hamid). Haupterzeugungsgebiete sind jetzt (1910) Kaisarieh und Everek, weniger wird in Nigde, Angora, Josgad, Erzinghian, Siwas, Caraman und Guran gewonnen. [Illustration: Fig. 135. Der Austritt des Traganth. [Nach +Planchon-Collin+, Drog. simpl.]] Schon ~Hamilton~, der die Traganthsträucher 1836 auf den Bergen bei Buldur beobachtete, berichtet, daß Einschnitte nahe an der Wurzel gemacht werden. Im Juli und August entfernen die Bauern in Kleinasien von dem unteren Stammteile die Erde und machen mit einem Messer Längseinschnitte in die Rinde. Aus diesen tritt das Blättertraganth aus, das in 3-4 Tagen erhärtet ist. Wird die Rinde nur mit der Spitze des Messers verwundet, so wird Faden- und Wurmtraganth erhalten. Aus natürlichen Wunden tritt Traganth in Form von gelblichen Tropfen oder wulstigen Massen, die meist stark gefärbt sind, aus. Bei trocknem Wetter ist das Traganth weiß, bei nebeligem wird es leicht gelb und bräunlich. +So kann also ein und dieselbe Pflanze alle im Handel unterschiedenen Sorten von ganz weißem Blättertraganth bis zu bräunlichem Traganth in Knollen liefern. Beim Traganth spielt daher das Sortieren eine große Rolle.+ Es geschieht dies meist nicht in den Produktionsorten, sondern in Smyrna, wohin das anatolische Traganth in Säcken gebracht wird (hier früher [1874] besonders durch spanische Juden), Konstantinopel, Kermanchah und (beim persischen und syrischen) in London. In Smyrna rechnet man, daß in dem Rohtraganth im Durchschnitt 40-50% Weißblatt, 15-25% Gelbblatt, 10-15% Vermicelli und 10-25% Traganthon enthalten ist (~Valenta~). Im westlichen Kleinasien werden die Sträucher im Frühjahr und Sommer angeschnitten, die Ernte ist im September im wesentlichen beendet. Anhaltender Regen schädigt die Ernte beträchtlich, da das Gummi abgewaschen wird. So lieferten die nassen Jahre 1907 bis 1909 nur wenig Traganth. Eine gute Getreideernte in Anatolien entzieht der Traganthsammlung oft viele Arbeitskräfte und der Ertrag bleibt dann gering. Als +Produktionsgebiete des westlichen persischen Traganth+ werden die Gebiete zwischen Hamadan und Isfahan und dem Nordende des persischen Golfes angegeben. Auf dem Markte von Kermanchah (Kermanshah) im westlichen Persien, gab es 1904 vier Qualitäten. Die erste Qualität (Katyra) erhält man aus Kermanchah, Nehawend und Burujird (Burudjird), sie wird in drei Preisklassen geteilt; die zweite Qualität kommt aus den gleichen Orten und Kurdistan, sie wird in fünf Klassen geteilt; die dritte Qualität (Zardeh) ist in Persien unter dem Namen Arrehbor (= mit einer Säge geschnitten) bekannt, sie kommt aus dem Delahu-(Dalaho-)Gebirge, Pusht-I-Kuh (Pisch-Kuh), Khorremabad (Chorremabad) und Burujird; die vierte Qualität (Steingummi) als Kurreh (Kora) bekannt, kommt von den gleichen Orten. Diese Sorten gehen nach Bagdad und auf dem Tigris zum Persischen Golf. Sie werden erst in London sortiert, das etwa ⅞ der Menge erhält (1904). Bei den persischen Nomaden heißen die Traganthsträucher Geesen, Gavan oder Gäwann schire (= milchgebende Sträucher, da sie zerkleinert verfüttert werden, ~Schindler~). Katyra wird von der Pflanze Gavansefid (= weißer Gavan) gesammelt, in die Einschnitte gemacht werden, die zweite Qualität von der Pflanze «Gelber Gavan». Sie ist größer. Die Spitze der Pflanze wird verbrannt; wenn die Blätter alle vernichtet sind, löscht man das Feuer und macht die Einschnitte. Am folgenden Morgen wird das ausgeschwitzte Gummi gesammelt. Diese Operation wird drei- oder viermal wiederholt. Die Qualität wird jedesmal besser. Das Arrehbor-Gummi kommt von einem kleinen Baume, die Spitze desselben wird verbrannt und die Zweige werden drei- oder viermal mit einer Säge abgeschnitten. (Die Pflanze, die Koragummi liefert, wird in derselben Weise behandelt.) Die Operation wird dreimal wiederholt und das Gummi wird jedesmal besser. Nach 7 Jahren vertrocknet die Pflanze. Ähnlich ist die Gewinnung in Fars, doch ist das Traganth von dort etwas weniger gut (das beste entspricht der zweiten Qualität von Kermanchah). Um Kermanchah gab es schon 1904 nur noch wenig Traganthsträucher, da die Pflanzen sehr geschädigt werden. Nach ~Haussknecht~ soll das persische Traganth eine spontane Exsudation sein, wenigstens wurden 1869 in Persien und Kurdistan keine Einschnitte gemacht. ~Stolze~ und ~Andreas~ nennen im +Westen+ die Gebirge des persischen Kurdistan, Khārähan und Tâläkân (?), dann das Kehris-Kohrud-Gebirge zwischen Kaschan und Isfahan (in Irakadjmi) und die Höhen um Abadeh nördlich von Fars (Farsistan). ~Schindler~ gibt 1881 als +Produktionsorte für südpersisches Traganth+ an: Feridûn zwischen den Chan-i-Surch-Paß und Deh-i-Dáwâi in Kirman (Südpersien). Auch ~Stolze~ und ~Andreas~ erwähnen Gebiete von Kirman, besonders die Landschaft Sirdjan als reich an Traganth. Für den in diesen bis 8000′ hohen Gebirgen gesammelten Traganth ist +Paris+ (Parîz c. 30° n. B.) Stapelplatz. Nach ~Aitchison~ wird in +Nord-Persien+ im Herirudtale und in Chorassan Traganth (Katira) gesammelt, besonders in der Nähe des Dorfes Kalla-roving bei Bezd in Chorassan. Dies Traganth geht an die Küste oder über Herat nach Indien. 1894 wurde von einem Aufschwung des Traganthhandels in Persien und Sulimania berichtet. Neuerdings störten aber die politischen Unruhen die Tragantheinsammlung in Persien beträchtlich. (Vgl. auch die Karte von ~Tunmann~ im Kap. Pharmacogeographie I, S. 440/441). Das +griechische oder Morea-Traganth+ wurde in den Bergen in Nord-Morea gesammelt (~Heldreich~ 1862). =Lit.= ~La Billardière~, Journ. d. phys. 36, 46 (1790) (Acad. sc. 1789). -- ~Olivier~, Voyag. dans l’emp. ottom. Paris an IX. -- ~Hamilton~, Research. in Asia min. etc. I, 192 (Pharm. Journ. 1842, 540). -- ~Maltass~, Pharm. journ. 15 (1855) 18. -- ~Soubeiran~, Not. s. l. récolte d. gomme adragante en Asie Min. Journ. pharm. 1856 u. 1857. -- ~Heldreich~, Nutzpfl. Griechenlands. Athen 1862. -- ~Boissier~, Flor. orient. -- ~Scherzer~, Smyrna. Wien 1873 (Auszug in Arch. Pharm. 205 [1874], 48). -- ~Schlimmer~, Terminol. Teheran 1874. -- ~Schindler~, Reisen im nördl. Persien. Zeitschr. Ges. f. Erdkunde 1881, 362. -- ~Stolze~ und ~Andreas~, Handelsverhältnisse Persiens. Petermanns Mitth. Ergänzungsh. 77 (1885), 15. -- ~Hanbury~, Scienc. pap. 117. -- ~Simmonds~ Bull. of pharm. Detroit 1891. -- ~G. Planchon~, Les Astragales Journ. pharm. chim. 1891, 24, 473 und 1892, 169. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Valenta~, Klebe- u. Verdickungsmittel. -- ~Gehe~ & Co., Handelsbericht 1898. -- (British. Consularagent) Persian Tragacanth. Pharmac. Journ. 1904, 2, 40. -- ~Guibourt~, Hist. d. drogues. =Handelssorten.= Die höchsten Preise erzielte 1910 das +syrische+ Traganth, dann das +anatolische+ (+türkische, levantinische+), geringere das +persische+, die geringsten das minderwertige +Traganthon+. Das syrische ist in Kisten à 75 und 80 kg und in Säcken à 100 kg, das anatolische in Säcken à 100 und 120 kg und Kisten à 130 und 160 kg, das persische in Ballen à 50, 70 und 100 kg und Kisten à 60 kg, Traganthon in Ballen à 120 und 130 kg im Handel (~Grossmann~ 1910). Doch ist zu bemerken, +daß die Bezeichnung syrisches Traganth irreführend+ ist, denn dieses Traganth stammt aus West-Persien und Ost-Kleinasien und kommt über Bagdad nach London. Syrien liefert überhaupt nur wenig Traganth und die syrischen Häfen exportieren nicht viel. Die frühere Einteilung in Blätter-, Stengel- und Körner-Traganth, französische und englische Qualität usw., ist jetzt nicht mehr üblich. 1. Das sog. +syrische Traganth+ zeigt die schönsten weißen Blätter. Die ausgelesenen Stücke meiner Sammlung sind wahre Prachtstücke. Die als extraweiß bezeichnete Handelsware (1910 ~Caesar & Loretz~) bildet relativ kleine, +dünne+, weiße, gestreifte Blätter oder gezonte Stücke. Bei Ia weiß sind die Stücke größer, bei Ia gelblich etwas gefärbt und dicker, die Bänder fehlen, gezonte Stücke bilden die Regel. Auch IIa weiß ist noch eine sehr gute Ware. Ia naturell bildet derbe gelbliche, gezonte Stücke oder fächerartige Blätter. IIa naturell ist gelblich gefärbt. 2. Die beste Sorte des +anatolischen+, +türkischen+ oder +Levantiner Traganth+, die aber jetzt oft im Handel fehlt, erhält große Blätter. Die als weiß bezeichnete Handelsware (1910, ~Caesar & Loretz~) bildet +kleine+, etwas gefärbte Blätter und gezonte Stücke von nicht sehr schönem Aussehn, noch mehr gefärbt ist die Sorte fein hellblond und blond I. Alle Sorten stehen den entsprechenden syrischen nach. Sie zeigen ein schmutziges Aussehn. Die Stücke sind zertrümmert, was auf unsorgfältigen Transport schließen läßt. 3. Im +persischen Traganth+ des Handels (1910) fehlen die dünnen Blätter ganz. Es besteht selbst bei der Sorte Ia aus ziemlich großen, gelblich gefärbten, derben, +dicken+, gezonten oder fächerförmigen Stücken, die oft konzentrische Wülste zeigen, und bei der Sorte IIa an der Ansatzstelle Reste der Rinde erkennen lassen. 4. Das +griechische oder Morea-Traganth+ ist jetzt fast gar nicht mehr zu finden. (Er fehlte 1910 in den deutschen Preislisten.) Es repräsentiert im allgemeinen den Typus des Wurm- oder Fadentraganth (Fig. 137). Das beste +Moreatraganth+ meiner Sammlung bildet +wurmförmige+ oder knollige oder traubige Stücke, oder kurze, derbe, fächerartige Blätter. Die schlechteren Sorten sind mehr oder weniger gelb-bräunlich gefärbt, die besseren hellgelb. Das mir kürzlich durch ~Emmanuel~ aus Kreta zugesandte Traganth bildet relativ dicke gelbliche Blätter und knollige Stücke. Es ähnelt den schlechteren Sorten des persischen Traganth. Kreta und Griechenland lieferten 1910 kein Traganth mehr für den Handel (~Emmanuel~). [Illustration: Fig. 136. Die Auslese des Traganth (Working traganth) in London. [+Heap+ in +Greenish+, Textbook.]] 5. Unter +Traganthon+ versteht der Handel die schlechtesten ausgelesenen Stücke, die eine gelbe, rötlichgelbe oder gelbbräunliche Farbe besitzen. In den Mustern meiner Sammlung prävalieren die kugeligen, knolligen, traubigen und wurmförmigen Stücke. Zu dieser minderwertigen Sorte ist auch das +Kuteragummi+ (auch kurzweg Kutera oder Kutira genannt) zu rechnen, ein aus Nordpersien von _A. heratens._ und _strobiliferus_ stammendes T. (s. oben) mit deutlichen Membranresten, das früher bald von _Acacia leucophloea_ (~Th. Martius~), bald von einem _Mesembryanthemum_ (~Virey~), bald von einem _Cactus_ (~Desvaux~ et ~Damart~) abgeleitet wurde. Kuteragummi löst sich in Wasser unter Druck bei 120° und zeigt dann die Eigenschaften des arabischen Gummi, ist also nach ~Giraud~ identisch mit dem unlöslichen arabischen Gummi von ~Gélis~ und dem Cerasin ~Guérins~. Auch das +Mosul-Gummi+ (Moussoli) ist wohl nur ein schlechteres Traganth (~Hanbury~, nach anderen Pruneengummi). Zu den echten Traganthen gehört auch, wie die mikroskopische Untersuchung lehrt, das +Bombay-Traganth+, das in Indien eine Rolle spielt. Die Muster meiner Sammlung bilden gelbliche oder gelbbräunliche, knollenförmige oder traubige oder wurmförmige, im Querschnitte oft rundliche Stücke, Blätter sind selten. Unter dem Namen +gomme de Sassa+ (Lassa) und +Pseudoadragante+ beschrieb ~Guibourt~ (Journ. chim. méd. 1832, 419 und Hist. d. drog. 7 ed. III, 450) zwei nach der mikroskopischen Untersuchung von Traganthsträuchern stammende T., von denen er das eine für identisch hält mit dem Gomme de Sassa von ~Bruce~ (Voyage en Abysinie), von der Pflanze _Inga Sassa_ ~Willd.~, das andere zum Bassoragummi zieht, das er, sowie ~Mérat~ et ~Lens~ (Diction. III, 403, I, 80), als von _A. gummifer_ abstammend ansieht. Beide enthalten viel Stärke. Das in meiner Sammlung als _Inga Sassa_ (?) bezeichnete, aus im Querschnitt runden, langen Fäden oder Stäben bestehende T. ist durch eine feine helle netzleistenartige Zeichnung der Oberfläche ausgezeichnet, die aus Gefäßbündelresten besteht. Es scheint sich hier um den ganzen isolierten verschleimten Markzylinder nebst den umgebenden Resten des Holzkörpers zu handeln, der vielleicht nach Dekapitieren der Stengel herausgequetscht wurde. Auch ~Hanbury~, der die Traganthsträucher am Libanon beobachtete, berichtet, daß, wenn man einen Traganthstrauch dekapitiert, aus dem Marke ein langer Gummifaden hervortrete. =Handel.= Es wurden nach +Deutschland+ eingeführt 1905 (1904) Traganth aus +Persien+ 815 (471), aus +Arabien+ 390 (46), +Syrien+ 382 (507), +Ägypten+ 345 (78), +Kleinasien+ 700 (388), +Brit. Ostindien+ 116 (24) dz. (~Grossmann~). Wir ersehen aus dieser Liste nur die Ausfuhr-, nicht die Produktions-Länder. 1909 importierte Deutschland 6148 dz., davon die Hälfte aus der asiat. Türkei, viel auch aus Persien, etwas aus Brit. Indien. Für den Import kommen in Betracht: New York, London, Marseille, Hamburg. Die Einfuhr nach +Hamburg+ betrug 1904: 2618, 1905: 3340, 1906: 4616, 1907: 4747, 1908: 4613, 1909: 4346 dz. Nach Hamburg kommt viel _Traganth_ via London, dann aus Persien, Arabien, Brit. Ostindien, Kleinasien, wenig aus Ägypten, Syrien und der europäischen Türkei. Die Einfuhr von _Gum Traganth_ nach +London+ betrug 1906: 13994, 1907: 13495, 1908: 13225, 1909: 13856 packages (Ballen). Amerika ist ein starker Abnehmer für anatolisches, Rußland für persisches T. Die Einfuhr von _Traganth_ nach +Nordamerika+ betrug 1908: 1309759, 1909: 1315091 pounds. Traganthmarkt ist für den Export von anatolischem T. +Konstantinopel+, dann: Smyrna, Mersina, Samsoun. Jetzt geht ⅔ nach Konstantinopel, ⅓ nach Smyrna (1892: 80% nach Konstantinopel, 20% nach Smyrna). T. wird in Kleinasien nach Oka gehandelt (1 Oka = 1283 g). Die Ausfuhr Smyrnas betrug 1874: 4500 cwt (~Scherzer~), 1905: 59794, 1906: 44142, 1907: 51310, 1908: 34566 kg. (Im Durchschnitt 4-5000 Sack.) Die anatolische Ernte betrug 1894: 480000 kg, 1908: 475000 kg, 1909 nur 400000 kg, d. h. nur ⅔ des früheren Durchschnitts (~Gehe~). 1904 und 1905 wurden in Anatolien 400000 Oka geerntet. Das persische T. gelangt zum Teil via Bagdad über die Häfen des persischen Golfes, ein Teil auch über Ostindien nach Europa. Bagdad empfing 1903: 1496 Kharvar (1902: 1410) Traganth. Nach Rußland wurde via Tâbris (in Nordwestpersien) und Resht (am Caspimeer) etwa ein Drittel dieser Menge exportiert. Persisches Traganth wird meist nach Batman (I, S. 185) gehandelt. Man sortiert in Persien in 5 Qualitäten, davon gelangen die 3 besten zur Ausfuhr (1903). Für persisches (und syrisches) T. bildet jetzt London den Haupthandelsplatz. =Morphologie der Droge.= Die Form des Traganth ist abhängig von den Öffnungen, aus denen es austritt: Aus Längseinschnitten tritt das Blättertraganth aus, dessen mehr oder weniger derbe, oft auf weite Strecken hin genau parallel verlaufende Streifung (Fig. 137, 1) von der Konfiguration der Wundränder, an denen es vorbei geschoben wird, bedingt wird, aus Löchern tritt das Traganth in Form von Tropfen, Fäden oder trauben- bzw. wurmförmigen Massen aus. Die Blätter zeigen oft eine eigenartige Zonenbildung. Dementsprechend zeigt das Traganth folgende typische Formen: 1. In ihrem Verlaufe nahezu gleich breite, bei größerer Länge spiralig gedrehte, «gelockte», relativ dünne, aber überall fast gleich dicke +Bänder+, die parallele Streifung und oft einen wellig verbogenen Rand zeigen (Fig. 137, 1). 2. An den Enden mehr oder weniger breit ausladende +gezonte Blätter+ von verschiedener Dicke mit oft deutlicher, rechtwinklig zu den Zonen verlaufender Streifung (Fig. 137, 2). Die Zonen deuten wohl auf einen durch Wechsel in der Witterung, der Temperatur oder Belichtung hervorgerufenen +stoßweisen+ Austritt. 3. +Fächerförmige+ Stücke mit deutlichen Zonen und Radialstreifen (Fig. 137, 3). 4. Dicke, +wurmförmige+, hin und her gebogene, knollige Stücke, mit glatter, unter der Lupe oft rissig erscheinender Oberfläche (Fig. 137, 4). 5. Gekrümmte, mehr oder weniger dicke, im Querschnitt oft rundliche +Fäden+ (Fig. 137, 5). 6. Zu unförmlichen Massen +zusammengeschlungene+, gelockte oder gekräuselte Fäden und Würmer (Fig. 137, 6). 7. Tropfenartige, meist ovale Stücke von verschiedener Größe, bisweilen zu derben, knolligen Massen vereinigt (F. 137, 7). Die ersten drei Formen bilden das +Blättertraganth+ (adragante en plaques, leaf-gum, flaky-g.) und aus diesem bestehen die besten Sorten. Die Bänder sind oft c. 10-15 mm breit und c. 1 bis 1,5 mm dick. Ihre Länge variiert. Ich besitze in meiner Sammlung 21 cm lange Bänder! Sie sind bald hell und durchsichtig wie Glas, bald weiß, bald gelblich, bald gelb oder gar bräunlich gefärbt. Man unterscheidet daher im Handel: +Weißblatt+, +Blondblatt+ und +Gelbblatt+. Weißblatt hat stets ein dünneres Blatt als die beiden anderen und bildet die besten Sorten des Handels. [Illustration: Fig. 137. Formen des _Traganth_ (vgl. den Text). 1 Typus 1, 2 Typus 2, 3 Typus 3, 4 Typus 4, 5 Typus 5, 6 Typus 6, 7 Typus 7. [+Tschirch.+]] Die drei weiteren Formen (4-6) bilden das +Wurmtraganth+ (vermicelli, T. vermicularis), +Stengeltraganth+, +Sesam seed+ und +Fadentraganth+ (adragante en filets), die letzte das +Knollentraganth+. Diese Formen finden sich nur in minderwertigen Sorten, wie besonders im +Traganthon+ und +Skardo+ (common, sorts). =Bildung und Anatomie.= Die Ausscheidung des Traganth wurde zuerst von ~Tournefort~ an _A. creticus_ auf dem Ida in Creta studiert (I, S. 907, Fig. 411). Er hält das Traganth für den durch die Hitze im Juni und den folgenden Monaten verdickten Nahrungssaft, der durch Zusammenziehung der Holzfasern herausgepreßt werde. Er, wie ~Olivier~, der die Ausscheidung in Persien an _A. verus_ beobachtete, glauben, daß die als Austrittsstellen dienenden Wunden durch Tritte von Tieren hervorgebracht werden. ~Olivier~ gibt die Zeit der größten Sommerhitze als Zeit des Austretens an. ~Labillardière~ beobachtete die Ausscheidung auf dem Libanon an _Astragalus gummifer_ im August, ~Landerer~ an _A. aristatus_ im August und September. Schon in ~Ritters~ Erdkunde findet sich die Angabe, daß bisweilen Einschnitte gemacht werden. ~Labillardière~ gibt an, daß auf dem Libanon wolkige Nächte und starker Tau zum Austreten des Gummis nötig sind, daß dasselbe nur während der Nacht und kurze Zeit nach Sonnenaufgang reichlich ausfließt und daß auf den tiefer gelegenen Stellen des Libanon wachsende Sträucher, die zwar starker Tageshitze, aber wenig nächtlicher Feuchtigkeit ausgesetzt sind, nur wenig Traganth liefern. Auch ~Fraas~ hält das Ausfließen für abhängig von der Witterung und meint, daß die größte Ausscheidung erfolgt, wenn auf kalten Regen große Hitze folge. ~Treviranus~ spricht von einer gesteigerten Sekretion. Die Ansicht von ~Kützing~, daß das Traganth ein Pilz sei, hat dann ~Mohl~, der die Bildung des Traganth durch Untersuchung der Zweige zahlreicher _Astragalus_-Arten im wesentlichen richtig ermittelte, widerlegt. Er zeigte, daß es einer Vergummung des Markes und den Markstrahlen seine Entstehung verdankt. Er fand die Reste der Wand und die Stärke im Blätter- und Wurmtraganth, weniger im syrischen, der mehr und größere Stärkekörner enthält. ~Wigand~, ~Wiesner~ und ich haben dann die Sache weiter verfolgt. Bereits ~Unger~ setzte übrigens das Traganth in Parallele zu den sekundären Schleimmembranen bei _Linum_ und _Cydonia_, und schon ~Schmidt~ sah 1844 Reste von Zellmembranen und Stärkekörner im Traganth. ~De Candolle~ meint, daß das Aufschwellen des T. in Wasser davon herrühre, daß das Gummi «in Zellen eingeschlossen» sei. [Illustration: Fig. 138. Querschnitt durch einen Sproß von _Astragalus gummifer_. Mark und einige primäre Markstrahlen in voller Gummose, an einer Stelle ist das _Traganth_ ausgetreten. Schh Schleimhöhlen der Rinde. [+Tschirch.+]] [Illustration: Fig. 139. Querschnitt durch das Mark und den inneren Teil des Holzkörpers von _Astragalus gummifer_ mit Hauptmarkstrahl im Mark. 0-4 die sukzessiven Stadien der Schleimbildung. [+Tschirch+, Angew. Anatomie 1888.]] [Illustration: Fig. 140. _Blättertraganth._ Querschnitt in Alkohol unmittelbar nach dem Zufließenlassen von Wasser. [+Tschirch.+]] Das Traganth entsteht durch Bildung von Schleimmembranen in den Zellen des Markes und der Markstrahlen der Stammorgane der Traganth liefernden Pflanzen und Zusammenfließen der Zellen zu Schleimmassen, wobei die Mittellamelle entweder erhalten bleibt oder mit zugrunde geht, schließt sich also an die Bildung der Schleimhöhlen bei den Malvaceen, Tiliaceen und Sterculiaceen an. Durchschneidet man einen mehrjährigen Sproß von _Astragalus gummifer_, so erhält man folgendes Querschnittsbild. Die Rinde ist außerordentlich reich an großen Bastzellgruppen, innerhalb welcher eine nicht eben mächtige Innenrinde (Siebteil) liegt. Der Bastzellpanzer ist schon bei den einjährigen Zweigen so gewaltig, daß er bei weitem den größten Teil der Rinde einnimmt. Der Holzkörper besteht aus sehr zahlreichen Gefäßen, breiten Libriformgruppen und wenig Holzparenchym. Er wird durchzogen von nicht eben sehr zahlreichen, ein- oder zweireihigen Nebenmarkstrahlen und großen und bisweilen bis zehn Zellen breiten Hauptmarkstrahlen, deren Zellen die bekannte Radialstreckung der Markstrahlzellen zeigen. Durch die Markstrahlen wird der Holzkörper in im Querschnitte keilförmige Abschnitte geteilt (Fig. 138). Im Innern liegt das Mark. In diesem findet die Bildung der Schleimmembranen in erster Linie statt. Dieselbe beginnt im Zentrum des Markes und schreitet nach der Peripherie zu fort. So kommt es, daß man schon bei zweijährigen Zweigen alle Stadien der Vergummung nebeneinander zu sehen bekommt (Fig. 139). Die zu äußerst liegenden Markzellen sind noch gänzlich normal. Ihre unverdickten Membranen geben die Zellulosereaktion. Weiter nach innen zu werden die Membranen dicker. Bei den noch tiefer liegenden Schichten ist schon kaum noch das Lumen zu erkennen (vorausgesetzt, daß der Schnitt mit Wasser benetzt war und in Glycerin betrachtet wurde). Das oft verzerrte Lumen läßt häufig noch kleine Stärkekörner erkennen, die nur zum Teil zum Aufbau der Membranen aufgebraucht werden. Die Membran gibt nur noch eine geringe Zellulosereaktion, Schichten sind in ihr oft sehr deutlich zu erkennen. In der einzelnen Zelle schreitet die Vergummung der Wand von außen nach innen fort, so daß man also in den innersten Schichten eine deutliche Zellulosereaktion auch dann noch erhält, wenn die mittleren bzw. äußeren sie nur noch sehr schwach zeigen. Bei den noch tiefer liegenden Schichten ist nur noch die Mittellamelle als zartes Häutchen erkennbar, alles übrige ist vergummt, mit einziger Ausnahme einiger Stärkekörnchen. Ganz im Innern ist alles vergummt, doch sind selbst hier noch die Zellkonturen schwach zwar aber doch erkennbar erhalten. Bei den älteren Zweigen schreitet die Gummose immer weiter zur Peripherie des Markes vor und dringt nun auch in die breiten Hauptmarkstrahlen ein. Auch hier beginnt die Vergummung in den innersten Partien und schreitet gegen den Rand hin fort. Auch die Nebenmarkstrahlen scheinen der Vergummung bisweilen (aber jedenfalls selten) anheimzufallen. Ja selbst im Holzkörper sind bisweilen einige Gefäße nebst ihrer Nachbarschaft in Gummose begriffen und in dickeren Stengeln sah ich auch Gummidrusen in der Rinde (Fig. 138 Sch h). In erster Linie jedoch entsteht das Traganth, wie schon ~Mohl~ erkannte, durch eine +zentrifugal fortschreitende+ Metamorphose der Zellmembranen des Markes und der primären Markstrahlen der Stengel. (In der Wurzel scheint das Traganth anders zu entstehen, ~Lutz~.) Tritt nun die Regenperiode ein, und nimmt die Pflanze reichlich Wasser aus dem Boden auf, so quellen die vergummten Partien stark auf und werden, wenn nun Trockenheit folgt, durch die schmalen, ebenfalls vergummten Hauptmarkstrahlspalten herausgepreßt, die Rinde durchbrechend: sie werden also als breite, +senkrecht gestellte+ Bänder aus der Rinde hervortreten und diese Form besonders dann annehmen, wenn Längseinschnitte gemacht wurden. Ist der Übergang von Feuchtigkeit zur Trockenheit ein allmählicher, so werden die Bänder in langen gekrümmten Streifen hervortreten, ist der Übergang ein plötzlicher, so wird die Schleimmasse in Klumpen herausgedrückt. In beiden Traganthen kann man jedoch, wenn man dünne Querschnitte herstellt, noch deutlich die organische Struktur erkennen: nicht nur die Reste der Zellhäute, sondern ganze Zellen, sowie einzelne oder zu länglichen oder runden Gruppen vereinigte Stärkekörner sind noch, namentlich bei Anwendung von Jodlösung, im Lumen der Zellen gut nachzuweisen (Fig. 140). Die Stärkekörner gehören also den Schleimzellen an und sind nicht aus anderen Geweben beim Herausquellen des Schleims mitgerissen worden. Die wenigste Stärke enthält das kleinasiatische und syrische, schon mehr das persische, am meisten das Moreatraganth, bei dem auch die meisten, zum Teil ziemlich hoch zusammengesetzten, Körner vorkommen. Bei dem persischen Traganth steigt die Größe der Stärkekörner bis auf 20 mik und mehr. Bei Herbarmaterial von _Astragalus brachycalyx_ ~Fisch.~ fand ~Weyland~ in den Zellen der Markperipherie, der primären Rinde und der Markstrahlen einen festen, durchscheinenden, vom Plasmaschlauch umschlossenen Zellinhalt, der sich mit Jod blau färbte. (War das Material vielleicht erhitzt?) Die Schichtung der herausgequetschten Schleimzellen ist beim syrischen, anatolischen und persischen Traganth vorzüglich zu sehen, wenn man zu dem in Alkohol liegenden Schnitte durch das Traganth Wasser vorsichtig zufließen läßt, wenig deutlich fand ich sie beim Moreatraganth. Bombaytraganth und Kuteragummi (abgeb. bei ~Wigand~) zeigen ebenso wie Traganthon auch geschichtete Membranen und Stärkekörner im Lumen. Sie entstehen also auch wie kleinasiatisches. Eine ähnliche Schleimbildung scheint übrigens bei den Malvaceen _Kydia calycina_ (Rinde) und _Bombax malabaricum_ (Rinde) vorzukommen (Pharmac. indica). Bei _Bombax_ scheint es sich um einen pathologischen Gummifluß zu handeln. Auch das Gummi der indischen Moringacee, _Moringa pterygosperma_ ~Gärtn.~ (gomme de benailé) zeigt typische Schleimzellen mit geschichteter Membran, aber keine Stärke (~Wiesner~). In der Regel zeigen die Traganthschleimmassen keine Zellulosereaktion mehr. Doch beobachtete ~Mohl~ bei einigen _Astragalus_arten, die allerdings niemals Traganth liefern, eine vorübergehende Blaufärbung mit Chlorzinkjod. Da sich aber die jungen Schleimmembranen stets mit Chlorzinkjod färben, die alten nicht, so findet also beim Traganth eine Umbildung des Zelluloseschleims in echten Schleim statt, was wir bei den Malvaceenschleimzellen niemals beobachten, bei denen die Schleimmembran sofort als echter Schleim aufgelagert wird. =Lit.= ~Tournefort~ (vgl. I, S. 907). -- ~Olivier~, Reise durch d. türk. Reich III, 293. -- ~Labillardière~ a. a. O. -- ~Fraas~, Synops. plant. flor. class. p. 59. -- ~de Candolle~, Astragalogia 1802. -- ~Treviranus~, Physiol. II, 21. -- ~Kützing~, Philosoph. Botan. I, 203 und Arch. Pharm. 8 (1851), -- ~Unger~, Anatom. u. Phys. d. Pfl. -- ~Mohl~, Unters. über d. Entstehungsweise d. Traganthgummi. Botan. Zeit. 1857, 33. -- ~Wigand~, Desorganisat. d. Pflanzenz. Pringsh. Jahrb. f. wiss. Bot. 3 (1861), 115. -- ~Wiesner~, Gummi u. Harze 1869 und Rohstoffe. -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie 213 u. Fig. 214. -- ~Solms-Laubach~, Bot. Zeit. 1874. -- ~Weyland~ bei ~Solereder~, Systemat. Anatomie, S. 301. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacograph. -- ~Hartwich~, Artikel Traganth in Realenzykl. d. Pharm. -- ~Lutz~, Sur le mode de formation de la gomme adragante. Compt. rend. 1910, 1184 und Bull. soc. bot. France 57 (1910), 250. Betrachtet man das +Pulver+ in Alkohol, so sieht man zwischen einer körnigen Masse viele unregelmäßige helle Schollen. Läßt man alsdann Wasser zufließen, so quellen diese auf und lassen, bevor sie undeutlich werden, zunächst oft sehr deutliche Schichtung erkennen (Fig. 140). Tritt dann Jodlösung hinzu, so sieht man zahlreiche einzelne oder zu rundlichen bzw. gestreckten Gruppen vereinigte Stärkekörner zwischen unregelmäßigen Häuten. Die Körner sind meist rundlich, einfach oder zu zwei bis vielen zusammengesetzt, klein, 2-4 mik breit, doch kommen auch größere (bis 25 mik) vor (4-15, ~Wiesner~). ~Koch~, der auch verquollene sah, fand sie 1-20, meist 6-10 mik breit mit oft auffallender Kernhöhle. Bisweilen fand ich im Traganthpulver auch einige Fragmente der Bastfasern und Gefäße der Traganthpflanze, seltener Rindenparenchymfetzen. =Lit.= ~Moeller~, Pharmakogn. Atlas t. 43. -- ~Koch~, Atlas IV, S. 193, Fig. 16. -- ~Kraemer~, Proc. amer. pharm. assoc. 1898, 306. =Chemie.= Über die Chemie des Traganth herrscht keine Klarheit, da es sehr verschiedene Sorten gibt und selten klar gesagt ist, welche untersucht wurde. Daß die einzelnen Sorten chemisch verschieden sind, ist zweifellos, denn die Menge der bei der Hydrolyse auftretenden Produkte ist verschieden (~Dreyfus~). ~J. Ogle~ fand z. B. in +syrischem+ Traganth neben 18,92% Feuchtigkeit 35,94% lösliches «Gummi», das durch Alkohol, bas. und neutrales Bleiacetat fällbar war (nicht durch Borax), und nach dem Kochen mit Salzsäure +Fehling+sche Lösung reduzierte, 42,39% «unlösliches Gummi», löslich in Kalilauge und 2,75% Asche. ~Masing~ fand in +Smyrnaeer+ Traganth 3,34 (1.84)% Asche, 12,11 (10,91)% Feuchtigkeit und 23,08 (19,14)% lösliche Substanz. ~Gerstner~ in +Kutera+ 14% H₂O, 44,6% Bassorin, 27,5-30% lösliches Gummi, 3,2-4% Asche. Nach ~Williams~ beträgt die Gesamtkaliabsorption 11,05-11,98, das Verseifungsäquivalent 468-508, Kali zur Neutralisation der freien Säure 0,14, Jodabsorption keine bzw. 0,16, Verlust bei 100° 13,52-16,86, Asche 2,64-2,69. Traganthschleim läßt sich mit Ammonsulfat aussalzen (~Pohl~). Traganth gilt als der typische Vertreter der sog. +Bassorin-Gummis+, d. h. der mit Wasser nur quellenden, sich nicht darin lösenden. Bassorin gibt mit Salpetersäure 22,5% Schleimsäure (~Guérin-Varry~). Es wird mit Alkalien dünnflüssig (~Frémy~). Zuerst ~Guérin~ nannte den Schleimstoff des Traganth +Bassorin+, ~Guibourt~ +Adragantin+, ~Pereira~ nennt den löslichen Teil +Tragacanthin+ oder Adragantin, den unlöslichen Bassorin. Nach ~Giraud~ enthält Traganth 60% «composé pectique», (Adragantin, Pektose), 8-10% lösliches Gummi, 3% Zellulose, 2-3% Stärke, 3% Asche, c. 20% Wasser und Spuren von stickstoffhaltigen Substanzen. Das Adragantin enthielt 40,6% C, 5,35% H und 53,8% O. Nach ~Guibourt~ enthält das Traganth weder Arabin noch Bassorin, sondern ist eine organisierte gallertige Materie sui generis. Auch ~Giraud~ meint, daß Traganth nicht, wie ~Guérin-Varry~ angibt, aus Arabin und Bassorin, sondern hauptsächlich aus einer pektinartigen Substanz (Pektose ~Frémy~) bestehe, der 7-10% lösliches Gummi beigemengt ist. Verdünnte Mineralsäuren bilden Glukose und Pektin, Alkalien und alkal. Erden Pektin, Pektinsäure und Metapektinsäure. Alkal. Erden bilden Niederschläge, die bei schwachem Erwärmen hart und eigelb werden (~Girauds~ Nachweis von Traganth). ~Schmidt~ fand in rohem Traganth 45,63% C und 6% H, in reinem Traganth 45,10-45,33% C und 6,16-6,27% H. Traganth soll der Formel C₂₄H₄₀O₂₀ entsprechen. ~Hilger~ und ~Dreyfus~ formulieren jedoch: (C₁₁H₂₀O₁₀)ₙ. Sie fanden 42,4% C und 6,5% H. Das das Traganth vorwiegend bildende Polysaccharid nennen auch ~Hilger~ und ~Dreyfus~ +Bassorin+. Es reduziert weder ~Soldainis~ Reagens noch ~Fehling~sche Lösung, wohl aber ammoniakalische Silberlösung beim Kochen. Kalte 30-40% Alkalilauge führt das Bassorin in +Oxybassorin+: (C₁₁H₂₀O₁₀)₂O über, welches rechts dreht, ~Soldainis~ Reagens und ~Fehling~sche Lösung reduziert und mit den Metallen unlösliche Verbindungen bildet. Wird T. in Stücken mit kaltem Wasser maceriert, so erhält man bisweilen ein Filtrat, in dem Alkohol, in geringer Menge zugesetzt, weiße Flocken abscheidet (~Maisch~). Auch Bleizucker scheidet zunächst eine Gallerte ab, erst später entsteht ein Niederschlag. Die Ansicht, daß der lösliche Teil des Traganths Arabin bzw. Arabinsäure sei (~Sandersleben~), ist nicht richtig (~Frémy~, ~Pohl~). T. enthält kein Arabin (~Dreyfus~). Es ist neutral und wird durch Borax, Eisenchlorid und Wasserglas nicht gefällt. Bleiessig und Bleiacetat geben eine Gallerte, die beim Erwärmen sich trübt und dann einen Niederschlag bildet. Mit Salpetersäure gibt Traganth +Oxalsäure+, +Weinsäure+, +Zuckersäure+ und besonders +Schleimsäure+ (~Giraud~). Die Menge der erhaltenen Schleimsäure wechselt. ~Tollens~ erhielt nur sehr kleine Mengen, ~Dreyfus~ 11,5-17%, ~Giraud~ 20%. Die Hydrolyse lieferte ~Giraud~ (1876) einen reduzierenden Zucker. Auch ~Schmidt~ erhielt bei der Hydrolyse gärungsfähigen Zucker und ein Gummi, das mit dem aus Salep identisch war. Nach ~Sandersleben~ ensteht neben viel Sirup kristallisierbare Arabinose. Bei der Hydrolyse verschiedener Traganthsorten erhielten in neuerer Zeit ~Widtsoë~ und ~Tollens~ +Pentosen+, aus einigen Sorten +Arabinose+, aus anderen +Xylose+, aus allen +Fukose+ (Methylpentose, s. S. 299) und (in geringer Menge) +Glukose+ und (wechselnde Mengen) +Galaktose+. Einige Traganthsorten enthalten 38,1-51,8% +Xylan+ (~Tollens~ und ~Widtsoë~). Möglicherweise bildet also entweder ein +Galakto-Xylan+ oder ein +Galakto-Araban+ den wichtigsten Bestandteil der Traganthe, denn das Traganth enthält (s. oben) auch oft beträchtliche Mengen eines bei der Oxydation +Schleimsäure+ liefernden Bestandteils (~Guérin-Varry~, ~Ogle~, ~Pohl~) -- der Galaktosegehalt beträgt oft 15-21,5% (~Dreyfus~). Die Hydrolyse gewisser Traganthsorten soll ähnlich wie beim Gummi arabic. (s. d.) verlaufen. Als Hauptprodukt der Hydrolyse des wasserlöslichen Anteils entsteht zunächst eine linksdrehende +Polyaraban-Trigalaktan-Geddinsäure+ (11 C₁₀H₁₆O₈.3 C₁₂H₂₀O₁₀.C₂₃H₃₆O₂₀.H₂O), die bei weiterer Hydrolyse 72% +Arabinose+ und etwas +Galaktose+ liefert (~O’Sullivan~). Das +Bassorin+ einiger Tragantharten gibt mit überschüssigem Alkali die α- und β-+Traganthan-Xylan-Bassorinsäure+. Die α-Säure (C₂₄H₃₄O₂₀.H₂O) ist in kaltem Wasser löslich, dreht rechts (α_{D} = +138,6°) und zerfällt bei der Hydrolyse mit verd. Schwefelsäure in +Traganthose+ (eine linksdrehende Pentose, Fukose?) und +Xylan-Bassorinsäure+: C₁₉H₂₈O₁₇, die fast unlöslich in kaltem Wasser ist, rechts dreht und bei weiterer Hydrolyse in +Xylose+ und +Bassorinsäure+ (C₁₆H₂₀O₁₃) zerfällt, eine Substanz, die in kaltem Wasser unlöslich ist und in alkalischer Lösung stark rechts dreht (α_{D} = +225°). Die in kaltem Wasser nicht lösliche β-Säure gibt ähnliche Hydrolysierungsprodukte (~O’Sullivan~). Ich kann aus den Publikationen meist nicht klar ersehen, ob besonders die in allen Traganthen enthaltene Stärke, die primären Zellulosemembranen und die übrigen Beimengungen vor der Untersuchung des Schleims abgetrennt worden waren. Meist scheint dies nicht geschehen zu sein. Denn Traganth enthält ja auch +Stärke+ (c. 3% ~Dreyfus~, 2,3% ~Giraud~, aber in einigen Sorten viel mehr, ~Tschirch~), +Zellulose+ (die Reste der primären Membran, c. 4%), kleine Mengen +stickstoffhaltiger Körper+ (~Tschirch~), +Dextrin+ und +Invertzucker+, sowie etwas +Chlorkalium+ (~Dreyfus~). Die +Stärkemenge+ im Traganth ist gering. Filtriert man daher einen kalt bereiteten Traganthschleim nach Verdünnung mit Wasser, so färbt sich der Filterrückstand mit Jod nicht schwarzblau, da die Stärkekörnchen in große Mengen unlöslichen Schleim eingebettet sind (doch sieht man bei Betrachtung mit dem Mikroskop die schwarzblau gefärbten Körnchen). Besser gelingt die Jodprobe, wenn man zu dem Traganthschleim direkt Jod zusetzt. Die suspendierten Teilchen färben sich alsdann blaugrau und nach dem Filtrieren erhält man einen blaugrauen Rückstand auf dem Filter und ein farbloses Filtrat. Die meisten Traganthsorten werden durch Natronlauge nicht in der Kälte, sondern erst bei gelindem Erwärmen gelb. Der diese Färbung bedingende Körper ist nicht derselbe, der die geringeren Sorten gelb färbt; denn auch, wenn man diesen mit 91% Alkohol entfernt, tritt trotzdem die Gelbfärbung mit NaOH ein (~Reuter~). Durch Alkohol wird den schlechtesten gelben Sorten ein Substanzgemenge entzogen, das ein +Fett+, einen +Bitterstoff+ und einen +Zucker+ enthält (~Reuter~). Wurmtraganth liefert nach ~Ludwig~ 4,234% weingeistiges Extrakt (mit Spuren Zucker), Blättertraganth 1,557% (zuckerfrei). T. gibt beim Erhitzen mit KOH die Pyrrolreaktion (Rotfärbung des mit HCl befeuchteten Fichtenspans) und die Dämpfe färben Lackmus blau, gibt aber +nicht+ die Oxydasereaktion (~Tschirch~ und ~Stevens~), enthält also im Gegensatz zu den Gummis und entsprechend seiner ganz anderen Bildungsweise +keine Oxydase+. Guajakharzlösung wird direkt auch nach 3 Stunden nicht gebläut (erst nach 10 Stunden tritt geringe Bläuung ein, ~Runne~). ~Ludwig~ gibt den +Wassergehalt+ auf 16,2% (Blättertraganth) bis 16,5% (Wurmtraganth), ~Hilger~ und ~Dreyfus~ auf 9,42-15,4%, ~Peters~ (im feinem Pulver) zu 13,7-14,98%, ~Wiesner~ zu 11-17% an. Nach ~Hilger~ und ~Dreyfus~ soll die +Farbe+ der verschiedenen Sorten wesentlich durch verschiedenen Wassergehalt bedingt sein (?) und die wasserreichsten besten Sorten auch die meiste Asche enthalten. Fadentraganth enthielt 3,1-3,57% +Asche+ (~Löwenthal~ und ~Hausmann~, ~Hilger~ und ~Dreyfus~). In anderen Sorten wurde gefunden 3,16% (~Flückiger~), 2,89-2,95% (~Röder~), 2,68-2,85% (~Dreyfus~), 2,42-2,57% (~Peters~), 1,75% (~Schmidt~) (s. auch oben), obere Grenze 3,5% (Pharm. helv. IV). +In der Asche findet sich mehr Kalk als in der aller anderen Gummis+: 76,3% CaCO₃, aber relativ wenig Kali (11,9% K₂CO₃) und Magnesia (8,89% MgCO₃), sowie 4,74% Calciumphosphat (~Rideal~ und ~Youle~). =Lit.= ~Vauquelin~, Ann. de chim. 54, 312. Bull. d. pharm. 3, 56. -- ~Bucholz~ in ~Gmelins~ Handb. II, 779. -- ~Guérin-Varry~, Ann. chim. phys. (2) 49 (1832) 248 und 51, 522 und Journ. chim. méd. 7, 742. -- ~Frémy~, Journ. pharm. (3) 37, 81. Jahresb. d. Chem. 1860, 504. -- ~H. Ludwig~, Pharmakogn. Beitr. (Gummi) Arch. Pharm. 132 (1855), 33. -- ~Frank~, Chem. Centralbl. 1865, 902. -- ~Hermann~ in ~Pereiras~ Handbuch. -- ~Giraud~, Etud. comp. d. gommes et d. mucilages. Journ. pharm. chim. 1875, 485, 1876, 462. Compt. rend. 80, 477 u. l’Union pharm. 16, 249. -- ~Pohl~, Zeitschr. phys. Chem. 14, 156. -- ~v. Sandersleben~ in ~Sachsses~ Phytochem. Unters. 1880. -- ~Schmidt~, Über Pflanzenschleim und Bassorin. Lieb. Ann. 51, 29. -- ~Gerstner~ in ~Valenta~, Klebe- u. Verdickungsm. 1884. -- ~Williams~, Chem. News 1888, 224. -- ~Ogle~, Pharm. Journ. 20, 1889, 3, Chem. Zeit. 13, R. 224, Arch. Ph. 1889, 905. -- ~O’Sullivan~, Proc. Chem. Soc. 17(1901), 156 (Chem. Zeit. 25, 569, Chem. Drugg. 1901). -- ~Maisch~, Am. journ. pharm. 1889, 72. -- ~Tollens~ und ~Widtsoë~, Ber. d. chem. Ges. 33, 132. -- ~Hilger~, Naturforschervers. München 1899. -- ~Hilger~ und ~Dreyfus~, Ber. d. d. chem. Ges. 33 (1900). -- ~Dreyfus~, Dissert. München 1900. -- ~L. Reuter~, Apoth. Zeit. 1890, 644. -- ~Tschirch~, Gummasen. Pharm. Centralb. 1905, 504. -- Aschenanalysen: ~Rideal~ und ~Youle~, Chem. Drugg. 1891, 788. -- ~Phil. Röder~, Pharm. Post 1906, 298. -- ~Peters~, Apoth. Zeit. 1909, S. 538. -- ~Löwenthal~ und ~Hausmann~, Lieb. Ann. 89, 112. -- ~La Wall~, Amer. journ. pharm. 1897, 141. -- Asche, Löslichkeit, Wassergehalt: ~E. Masing~, Vgl. Unters. d. wichtigst. Handelss. d. Traganth u. sein. Surrogate. Arch. Ph. 1880, 41. =Physikalische Eigenschaften.= Traganth zeigt +Doppelbrechung+ (~Wiesner~). Im Polarisationsmikroskop treten bei gekreuzten Nikols Polarisationsfarben hervor. Die Frage, ob diese Anisotropie auf Zusammensetzung der Substanz aus anisotropen Micellen beruht (~Schwendener~), oder durch Zug und Druck zustande kommt (~v. Ebner~, ~Wiesner~), wird von ~Ambronn~ im erstgenannten Sinne beantwortet. «Die optischen Eigenschaften des Traganth im gequollenen Zustande sind auf das Vorhandensein optisch und räumlich anisotroper Micellen zurückzuführen», sagt ~Ambronn~, doch beobachtete ~Ebner~, daß trockenes Traganth sich wie Glas verhält, d. h. durch Zug positiv, durch Druck negativ doppelbrechend wird; umgekehrt verhält sich gequollenes Traganth. Bei trockenen Traganthfäden ist das Elastizitätsellipsoid quergestellt (~Schwendener~). Das +spez. Gew.+ des Traganth beträgt 1,384 (Watts Dict. und Enc. britt.). Es ist schwer genau zu bestimmen, da wenigstens die Blätter oft Luft einschließen. Mit Wasser übergossen quillt Traganth stark auf; gepulvert liefert es mit dem 50fachen Wasser einen trüben schlüpfrigen, geschmack- und geruchlosen Schleim. Mit dem 200fachen Wasser häufig geschüttelt, zerfällt Traganth erst nach Wochen zu einem gleichmäßigen, trüben Schleim, der sich nur sehr langsam klärt (~Flückiger~). ~Pohl~ hält den Traganth für löslich in Wasser, allerdings für sehr schwer löslich (1 : 1000). ~Dreyfus~ fand dagegen in Fadentraganth nur 0,06% wasserlösliche Bestandteile, ~Flückiger~ erhielt 0,47, ~Maiden~ 7,7, ~Giraud~ 8,10%; andere Sorten scheinen aber bis 50% und mehr (~Bucholz~, ~Guérin-Varry~) Lösliches zu enthalten. +Traganth verhält sich im allgemeinen wie ein Kolloid.+ Traganthlösung gibt keinen osmotischen Druck, aber es konnte nur eine sehr verdünnte Lösung benutzt werden (~Moor~ und ~Row~). Eine «Lösung» des Traganth 1 : 1000 läßt sich filtrieren. Der wasserlösliche Anteil des Traganth zeigte ~Flückiger~ im Polarisationsapparat keine Drehung. Die unter Zusatz von Ammoniak, das die Löslichkeit erhöht, hergestellte Lösung (~Flückiger~) des Traganth drehte rechts. In Chloralhydrat löst sich Traganth, aber es bleibt eine wolkige Trübung in der Flüssigkeit, die wohl von den Zellulosehäuten herrührt (~Wiesner~). Die schön gelb gefärbte Lösung in verdünntem KOH bleibt auch nach Zusatz einer Säure klar, erst auf Zusatz von Alkohol entsteht eine Fällung. Diese besitzt keine sauren Eigenschaften. Traganth bleibt auf 100° erwärmt hell und zeigt auch dann keine Risse. Traganth ist weicher als Akazien- und Kirschgummi, zähe und hornartig, schneidbar. Der Bruch ist eben. Die helle weiße Farbe der besten Sorten wird besonders durch reichlich eingeschlossene Luft bedingt. Die luftarmen Sorten erscheinen glänzend und gefärbt, die hellen matt. Traganth ist stets geruchlos. =Lit.= ~Wiesner~, Gummi u. Harze 1869 und Rohstoffe. -- ~Schwendener~, Sitzungsb. d. Berl. Akad. 1889 u. 1890. -- ~v. Ebner~, Unters. über d. Urs. d. Anisotropie organ. Subst. 1882 u. Sitzungsber. d. Wien. Akad. 1888. -- ~Ambronn~, Ber. d. d. Bot. Ges. 7 (1889), 103. -- ~Moor~ and ~Row~, Bioch. journ. 2, 34. -- ~Pohl~ a. a. O. -- ~Dreyfus~ a. a. O. =Verfälschungen.= Die guten Traganthsorten sind leicht kenntlich und mit nichts anderem zu verwechseln. Bei den schlechteren kommen Vermischungen oder Substitutionen mit falschen Traganthen und (s. d.) und anderen Gummis vor; die von ~Klenke~ erwähnten, aus Mehl, Brot oder Kleister und Gummi geformten «künstlichen» Traganthe habe ich nicht gesehen. Der «+Traganthersatz+» von ~Carl Boschan~ besteht aus: Stärke 20, Leim 6, Glyzerin 2, mit Wasser erhitzt. Neuerdings (1909) wurde T. mit indischem Gummi von _Sterculia urens_ ~Roxb.~ und _Cochlospermum Gossypium_ ~Dc.~ verfälscht gefunden (~Scoville~). Traganth muß geruch- und geschmacklos sein. (1905 [~Francis~] und 1907 [~Stoepel~] waren bittere in Handel). Das Bombaxgummi ist adstringierend. Mit _Gummi arabic._ vermischtes Traganth gibt dünnere Schleime als reines Traganth in entsprechender Konzentration (~White~). Die Unterschiede zwischen _Sterculiagummi_ und echtem T. beschrieb ~Maiden~: Mit kaltem Wasser bleibt _Sterculiagummi_ farblos und bildet eine körnige Gallerte, wenig oder gar nicht klebrig, _Traganth_ opaleszierend, weiche, zähe klebrige Masse. Beim Kochen in verdünntem Alkali ist _Sterculiagummi_ unlöslich. _Traganth_ löst sich fast ganz. Bei Behandlung mit Natronhydrat und Erwärmen zeigt _Sterculiagummi_ keine Farbenänderung. _Traganth_ bekommt eine kanariengelbe Farbe, die beim Abkühlen verblaßt. Beim Kochen mit verdünnter Säure ist _Sterculiagummi_ löslich, bildet Arabin; _Traganth_ löslich, bildet Pektin (~Giraud~). Fügt man obiger Flüssigkeit Alkohol hinzu, so bildet _Sterculiagummi_ einen weißen Niederschlag, _Traganth_ eine eiweißähnliche Masse. Das spez. Gew. beträgt bei dem _Sterculiagummi_ über 1,4, der Aschengehalt ist ziemlich hoch: 5,83% (_St. urens_), 7,8% (_St. Tragac._), 8,19% (_St. diversifol._), 9% (_St. rupestris_). +Stärke enthalten die Sterculiagummis nicht.+ ~Hanbury~ beobachtete 1855 +Bleiweiß+ als «Schönungsmittel» von Traganth. Auch ~Kick~ und ~Gintl~ berichten bei minderwertigen Sorten von «Bestreichen mit Bleiwasser», um die gefärbten Sorten den weißen ähnlicher zu machen (?). +Im Pulver ist fremde Stärke+ (Mais- und Weizenstärke, 1906 ~Ohliger~), +getrockneter und gemahlener Stärkekleister+ (~Kick~ und ~Gintl~), +Dextrin+ (1905 in Amerika) und +Gummi arabicum+ beobachtet worden. Fremde Stärke und Stärkekleister sind durch das Mikroskop leicht nachzuweisen, ebenso Dextrin (vgl. S. 200, Fig. 73). Die Schollen von etwa beigemengtem _Gummi arabicum_ lösen sich rasch in Wasser. ~Caesar~ und ~Loretz~ (Jahresber. 1910, 121) weisen beigemengtes _Gummi arabicum_ durch die Oxydasereaktion des letzteren (mit Guajacol-Wasserstoffperoxyd) nach. Die Methode rührt von ~Payet~ her. Es ist aber eine seit langem bekannte Erscheinung, dass Guajacharz und Guajactinktur wohl durch (mit +kaltem+ Wasser bereiteten) Gummischleim, nicht aber durch Traganthschleim gebläut wird (~Berg~, Pharmakogn. 1869) und die Guajactinktur ist schon von ~Planche~ zur Unterscheidung der beiden empfohlen worden. Auch ~Runne~ bezeichnet sie als das geeigneteste Reagens zum Nachweise von _Gummi arab._ im Traganth. Weniger eignen sich Benzidin-Wasserstoffperoxyd-Essigsäure und α-Naphthylamin. Auch der Umstand, daß _Gummi arabicum_ mit Pyrogallol Purpurogallol liefert, Traganth nicht, ist zur Erkennung eines Gummizusatzes benutzt worden (~Flückiger~). Traganth bräunt sich nur mit Pyrogallol. Indisches Gummi (s. oben), das auch im Pulver beobachtet wurde (1909), läßt sich folgendermaßen nachweisen. Setzt man zu einem Schleime (2 auf 100) 2,0 Borax und läßt über Nacht stehen, so wird die Mischung nach 24 Stunden klebrig und fadenziehend, wenn mehr als 5% indisches Gummi beigemischt wurde (~Scoville~). 2,0 Traganth geben, wenn rein, mit 5,0 Wasser einen Teig, der beim Drücken nur wenig an den Fingern klebt (~Hager~) und der ~Fehling~sche Lösung nicht merklich reduziert. =Lit.= ~Scoville~, Pharm. Journ. 28 (1909), 493. -- ~Stoepel~, Apoth. Zeit. 1907, 1064. -- ~Francis~, Bull. Pharm. Detroit 1905. -- ~White~, Pharm. Journ. 1905, 133. -- ~Payet~, Rep. de Pharm. 1904, 301 (Ann. chim. anal. 1905). -- ~Runne~, Z. Prüfung des Traganths. Apoth. Zeit. 1909, 389. -- ~Ohliger~, Proc. Michig. Pharm. Assoc. 1906, 48 und ~Peint~, Oil and Drug. Rep. 1905. -- ~Maiden~, Amer. journ. pharm. 1890. -- ~Kick~ und ~Gintl~, Techn. Wörterbuch IX (1888), 567. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Hanbury~, Science papers, p. 117. =Anwendung.= In der Pharmazie spielen jetzt (1910) die besten syrischen und persischen Sorten die Hauptrolle. Die schlechteren anatolischen Sorten werden besonders für technische Zwecke benutzt (~Caesar~ und ~Loretz~). Traganth dient als Bindemittel bei Herstellung von Pillen, Stäbchen, Pastillen, Dragées, Räucherkerzen, Sprengkohle. (Mit Traganth angestoßene Pillen werden rasch steinhart, wenn nicht Glycerin zugesetzt wurde.) Dann als Stypticum (als Klystier), zu _Ungt. glycerini_, zu Emulsionen als Ersatz des Gummis. (1 Teil Traganth besitzt die Bindekraft von 12 bis 15 Teilen Gummi arabicum.) ~Böhm~ empfahl (1850) für den Schleim ein Gemisch von Traganth und Zucker. Man kann unlösliche Pulver mit Traganth in Suspension halten. Traganth wird auch zur Appretur von Kattunen, Seidenwaren und Spitzen, zur Herstellung von Dampffarben im Zeugdruck und in der Zuckerbäckerei verwendet. Es klebt nicht, bindet aber, wenn eingetrocknet, stark. Es läßt sich schwer pulvern, am besten, nachdem es zuvor bei 40-60° getrocknet ist. Man bewahrt Traganth am besten in mit weißem Papier ausgeklebten Holzkästen mit dicht schließenden Deckeln auf. Es zieht leicht Staub an und wird dann grau. Manna liefert außer den S. 136 genannten _Astragalus_arten auch _A. chartostegius_ B. et H. Ob Kunjudy-Gummi, Ansarut, Gujar und Sarcocolla von _Astragalus_arten kommen, ist noch unsicher (Sarcocolla wird auch von _Panaea mucronata_ abgeleitet). Die Samen einiger _Astragalus_arten (_A. baeticus_ L. -- schwedischer Kontinentalkaffee, Stragel-K., _A. excapus_ im Kanton Wallis, ~Hartwich~) dienen als Kaffeesurrogate. Die Blätter und Samen von _A. glycyphyllos_ L. (_Herb. et semen Glycyrrhizae silvestris_) sind als Diureticum und Purgans in Anwendung (~Planchon~). Weitere in ~Dragendorff~, Heilpflanzen. =Geschichte.= Die τραγάκανθα des ~Theophrast~ [nach ~Sprengel~, ~Sibthorp~ und ~Fraas~ = _Astragalus aristatus_ ~l’Hérit~ und _A. creticus_ ~Lmk.~ (_A. echinoides_ ~Willd.~)] wird als nicht nur auf Kreta, sondern auch in Achaia, dem Peloponnes und in Asien (Medien) vorkommend beschrieben -- «truncis ramisque inhaerent lacrimae». Der Austritt des Gummis soll spontan erfolgen. _Astragalus_ ist bei ~Theophrast~ und and. eine andere, (nach ~Koch~) nicht bestimmbare Pflanze. Der _Astragalus_ des ~Galen~ soll _A. excapus_ oder _Orobus sessilifolius_ gewesen sein. Bei ~Dioskurides~ (III, 20), der ja in Kleinasien lebte, bedeutet τραγάκανθα sowohl die Wurzel der dornigen _Astragalus_sträucher wie das Gummi-Traganth. Er vergleicht die klebende Kraft des letzteren mit dem Gummi und nennt einige Krankheiten, bei denen es benutzt wird (z. B. Husten). Er beschreibt die Pflanze korrekt. Unklar drückt sich ~Plinius~ (XIII, 36) über _Tragion_ und _Tragacanthe_ aus. Die Pflanze nennt er _Spina alta_. Bei ~Celsus~ (I, S. 588) steht _Tragacantha_, ebenso bei ~Oribasius~, ~Aëtius~ und ~Paulus Aegineta~. Bei ~Vegetius Renatus~ (c. 400 n. Chr.) steht _dragantum_. Auch ~Istachri~ (I, S. 606) und ~Constantinus Afrikanus~ (I, S. 633) kennen T. Ebenso hat ~Galen~: tragacantha (die Pflanze: δάκρυον), ~Scribonius Largus~ unterscheidet die Präparate _tragacanthum album_ (mit Alaun abgeriebener T.) und _candidum_. _Tracantha_ steht im Kitâb aš-šaǧar (X. Jahrh.), bei ~Masih~, ~Ibn Sina~ u. and. ~Haji Zein~ (1368) beschreibt den Gebrauch des Katira, das Gummi des katád genannten Baumes. Der Perser ~Burhán~ nennt den arabischen Namen für den Baum: miswák el abbas. Der Autor des Makhzan el Adwija erwähnt den persischen Namen kon. Die Gelehrten der Schule von Salerno bereiteten ein _Diatrugacanthum frigidum_ und ein _D. calidum_. «An einer Stelle der sog. Bible des ~Guiot von Provins~, wo dieser Dichter seine Satyre ausgießt über die teuren Arzneien, welche die Ärzte von Montpellier verschreiben, ist auch ein Trank des Namens _diadragum_ erwähnt» (~Heyd~), _Diadragagantum_ wurde als kühlendes Mittel verwendet. Im Mittelalter wurde T. auch bei der Auftragung des Azurblaus und der Vergoldung benutzt (~Heyd~). 1305 war T. zollpflichtiger Einfuhrartikel in +Pisa+ (~Flückiger~). Zur Zeit des ~Pegolotti~ (I, S. 702) kam Draganti (chitirra) von Romania (Griechenland) und Turchia (Kleinasien). Hauptmarkt war Satalia (in Pisidien, das heutige Adalia an der Südküste Kleinasiens), dann auch Cypern und Alexandrien (~Heyd~). ~Belon~ (I, S. 771) erwähnt die gleichen Gegenden und Brussa als Markt. Er wurde verwendet «pour donner lustre à la soye». ~Olivier~ fügt noch Armenien, Kurdistan und Nordpersien als Produktionsländer hinzu. ~Aitchison~ erwähnt dann noch Chorassan und Afghanistan. Persisches T. ging schon Ende des XVIII. Jahrh. nach Bagdad und Bassora und nach Rußland über Baku. In Deutschland begegnen wir 1340 draganti als Bestandteil einer Augensalbe (~Flückiger~ nach ~Pfeiffer~). Im Inventaire ~Lefort~ (1439) steht Pouldre de Diadragan und Diadragant (Electuar. Diatragacanthum). Dann findet sich T. auch in der Taxe von Ferrara (1424) und der Frankfurter Liste (1450). ~Belon~ (I, S. 772) traf 1550 auf Kreta zwei Arten _Traganth_sträucher, erfuhr aber, daß T. in Nordwest-Kleinasien gesammelt und zur Appretur der Seide benutzt werde (vgl. bei ~Flückiger~). Die Form Dragagantum steht bei ~Otho Cremonensis~ (dragantum i. e. vitriolum!) Traganthum +neben+ Dragagantum bei ~Cordus~ (I, S. 803). The rates of marchandizes (1635, I, S. 921) führt Gum Tragagant auf und gum Tragacanthum steht bei ~Berlu~ 1724 (I, S. 950). Die erste Beschreibung des Austrittes des T. gab ~Tournefort~ (I, S. 907, Fig. 411). Die erste Beschreibung einer Traganthpflanze ~Labillardière~ 1790 (oben S. 389). Bei ~Pomet~ (I, S. 942), der in der 2. Aufl. auch Stalie (Satalia) als Ausfuhrhafen angibt, findet sich eine recht gute Abbildung eines _Traganth_strauches. ~Pomet~ erwähnt Einschnitte in Stamm und Wurzel und bemerkt, daß die Pflanze in Syrien (um Aleppo) wachse. Er erwähnt vom gomme adragan die drei noch heute üblichen, besonders durch ihre Farbe unterschiedenen Handelssorten. St. F. ~Geoffroy~ (I, S. 947), der eine pyrochemische Analyse mitteilt, bemerkt: «ex Creta, Asia et Graecia affertur». Die von ~Briquet~ behauptete Traganth- und Harz- und kombinierte Traganth-Harz-Leimung des alten Papiers, welcher der Leimung mit Tierleim vorangegangen sein sollte, konnte von ~Wiesner~ in keinem Falle konstatiert werden. Doch fand ~Kobert~ Traganth in der Appretur frühmittelalterlicher Papiere aus Turfan und Khotan. =Lit.= ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Heyd~, Levantehandel II, 654. -- ~Wiesner~, Papyr. Rainer 1887. -- ~Kobert~, Zeitschr. Angew. Chem. 1910, 1249. -- ~Tristam~, Nat. hist. of the bible 1898. Falsche Traganthe. Das sog. =Bassoragummi= (Bassoratraganth) hat seinen Namen von der Handelsstadt Bassora (Basra) am Schat el arab, nördlich vom persischen Golf (vgl. die Karte S. 429) erhalten. Es kommt aber nicht viel von dort. (Basra exportierte 1905: 7679 cwts «Gummi».) Jetzt heißen alle minderwertigen, meist stark gefärbten Traganthe in Indien Bassoragummi, =Hog-gum=, Hog-Traganth oder =Caramaniagummi=. Die Herkunft des Bassoragummi ist unbekannt. Einige (~Niemann~, ~Martius~) leiten es von _Acacia leucophloea_ ~Willd.~ ab, andere (~Hanbury~) betrachten es als ein Mandel- oder Pflaumengummi, andere als von _A. gummifer_ stammend (~Guibourt~). Ein Bassoragum, das 1903 aus Südpersien in den Handel kam, stammte vom wilden Mandelbaum. Von einem _Traganth_strauch stammt es nicht; jedenfalls zeigen die Muster meiner Sammlung keinerlei geschichtete Membranen oder Stärkekörner -- +zwei sichere Merkmale echter Traganthe+. Das +Bassora-Traganth+ meiner Sammlung bildet knollige oder traubige Stücke von rötlich-gelber Farbe, unter denen sich oft große eiförmige Stücke finden, die als Tropfen aus runder Öffnung hervorgequetscht wurden. ~Guibourt~ betrachtet das Bassoragummi als identisch mit dem Kuteera (Hist. d. drog. 7 ed. III, 453, Pharm. Journ. 15, 57), rechnet es also zu den _Astragalus-Traganthen_ (s. oben S. 393). Da er darin Stärke fand, muß er ein anderes Produkt in Händen gehabt haben wie ich. Es gehen eben unter dem Namen Bassoragummi sehr verschiedene Produkte. Über ein Bassoragummi aus Cycadeen vgl. ~Blackett~, Pharm. Journ. (3) 13, 104. In Indien werden als Substituentien für Traganth die zum Teil ähnlichen Sekrete von _Cochlospermum Gossypium_ ~Dc.~ = kúmbi, gaddi (in Amerika Gum-Hogg) und _Sterculia urens_ ~Roxb.~ = guhu, gular, kurí, sowie von _Prunus Amygdalus_ (sog. Hog Tragacanth) benutzt. Ferner nennt Diction. of econom. prod. of India folgende andere Hog-gums (India Bassora gums): Der Gummi von _Saccopetalum tomentosum_, _Moringa pterygosperma_, _Bombax malabaricum_, _Ailanthus excelsa_, _Stereospermum suaveolens_ und als amerikanisches Gum-hog das von _Symphonia globulifera_. Vgl. auch ~M. C. Cooke~, the gums, resins, oleo-resins and resinous prod. in the India museum. London 1874. ~Lemeland~ fand im G. von _Cochlospermum Gossyp._ 97,3% Unlösliches, 22,7% Wasser, 5,9% Asche, 45,2% Galaktane, 33,3% Pentosane. Es lieferte Galaktose und drehte -77°, 152. Besonders =Sterculiagummis= sind häufig mit dem Namen Traganth bezeichnet worden. +Sie riechen oft sauer+ (Essigsäure?). Über diese von _Sterculia_arten stammende traganthähnlichen Gummis aus Indien, Afrika und Australien und ihre Unterscheidung von echtem T. (s. S. 403) vgl. besonders ~Maiden~, Sterculia gum its similarities and dissimilarities to Tragacanth (Pharm. Journ. 1889 Nov. p. 381 und Am. journ. pharm. 1890, 20). ~Maiden~ erwähnt von indischen _Sterculia_arten, die Gummi liefern, _St. urens_ ~Roxb.~, _St. campanulata_ ~Wall.~, _St. ornata_ ~Wall.~, _St. foetida_ L., _St. villosa_ ~Roxb.~, _St. ramosa_ und _piperifolia_, von afrikanischen _St. Barteri_ ~Mast.~, _St. Tragacantha_ ~Lindl.~ -- von australischen _St. diversifolia_ ~G. Don.~, _St. rupestris_ ~Benth.~ +Das Sierra-Leone Traganth+ von der in Westafrika (Senegambien bis zum Congo) heimischen _Sterculia Tragacantha_ ~Lindl.~ (und wohl auch von _St. Barteri_ ~Mast.~) enthält keine Stärkekörner, und zeigt auch keine geschichteten Membranen, dagegen 20,5% Feuchtigkeit und 7,8% Asche (besonders Calciumkarbonat). Es gibt an Wasser keine durch Bleizucker oder Alkohol fällbare Substanz ab, liefert aber mit Salpetersäure reichlich Schleimsäure. Es löst sich nicht in Kupferoxydammon. (~Flückiger~, Über afrikan. Traganth. Pharm. Journ. 1869, 641 und Arch. Pharm. 1869, 81). Es entspricht der Formel C₂₄H₄₄O₂₂.10 H₂O (~Kraushaar~). Das T. von _Sterculia Tragacantha_ ~Lindl.~ meiner Sammlung (Leg. Barker, Nigerexpedition) bildet an Rindenstücken ansitzende spröde, glasige, hell-gelbliche oder weiße Massen, +die sauer riechen+. Ein anderes Muster (1872, auch aus Westafrika) schokoladenbraune feste Massen. ~Mangin~ leitet auch das Kuteragummi (s. oben) von _St. Tragac._ ab (Compt. rend. 125 [1897], 725). Ein +traganthähnliches Gummi+ aus Ostafrika beschreibt ~Hartwich~ (Arch. Pharm. 1894, 43). Es war dem Kuteragummi ähnlich und stammte wohl von einer Sterculiacee, die ja große Schleimzellen mit Schleimmembran und durch Resorption der trennenden primären Membran Schleimkanäle und Schleimhöhlen besitzen. Ein traganthähnliches, im Senegal viel benutztes, dem Gummi von _Cochlospermum_ ähnliches stärkefreies Gummi vom Spez. Gew. 1,416 kommt von _Sterculia tomentosa_ ~Heckel~. Es heißt im Sudan und in Senegambien Gomme de M’beppe, kongosita, komikosita, M’boborg; in Port. Loanda chixé oder Ici io chixé (~Heckel~, Rep. pharm. 1899). Gummis von _Sterculia cinerea_ (tartar gum) und _St. tomentosa_ (da or kandi gum) sind kürzlich im 3 Report of the Wellkome Research laboratories Khartoum (1908) beschrieben worden. Auch sie zeigten einen hohen Aschengehalt (5,48-7,05%) und eine hohe Säurezahl (13-14,59). Auch unter den Kuteeras (s. oben S. 393) scheinen sich bisweilen _Sterculiagummis_ zu finden, denn ~Boullay~ (Bull. de pharm. 5, 166) und ~Guibourt~ (Hist. d. drog.) berichten von einem sauren Geruche. Ein traganthähnliches Gummi, Goma de oaxixa aus Brasilien, von _Sterculia Chicha_ St. Hil. erwähnt ~Peckolt~ (Ber. d. pharm. Ges. 1900). Bei den Sterculiaceen ist Gummibildung überhaupt häufig. Ich erinnere nur an die Schleimzellen in der Samenschale von _Theobroma Cacao_. Eines Traganth von der im Trockenwald Ostafrikas vorkommenden Leguminose _Berlinia Eminii_ ~Taub.~ gedenkt ~Busse~ (Ber. d. pharm. Ges. 1904, 202). Auch das Gummi von _Acacia usambarensis_ ist traganthartig (~Mannich~). Weitere unter _Gummi arabic._ Ein traganthähnliches Gummi aus Südamerika, «Goma de Tuna» von _Opuntia Ficus indica_ ~Mill.~ beschrieb ~T. F. Hanausek~ (Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1877, 113). Es enthält Kristalle und Stärkekörner. Gummi arabicum. =Syn.= Gummi acaciae -- arabisches Gummi -- gomme arabique (franz.) -- gum arabic, acacia gum (engl.), in Amerika: acacia -- gomma arabica, gomma acacia (ital.) -- arabische gom (hol.) -- arabiskt gummi (schwed.) -- arabian kumi (fin.) -- arabmézga (ung.) -- ἀραβικόν κόμμι (griech.). Arab.-Pers. und in Ägypten: samagh-i-arabi (bei ~Ibn Baithar~: samag). -- Aar oder Czar von Arabien, Arabischer Zaher (bei ~Megenberg~). -- Gunde (gundi) heißt in Ostafrika jeder Klebstoff, also auch Gummi arab. ~Dragendorff~ bemerkt bei _Acacia vera_ (_arabica_): «Bei den pers. arabischen Autoren findet man für die Pflanze: Schankat-ul-misrija und Qaraz, für Gummi: Samgul (jetzt in Turkestan Samag arabi) und Agâqija, für Acacia überhaupt: Dschaschmîzadsch, für die Frucht von _Ac. gummifera_ etc.: Omm Gilân, für die ganze Pflanze: Thalh, für die Frucht der _Ac. nilotica_: Chirnub kibthi und karats. In Indien wird das Gummi Mas-wai-gond und Maklai-gond genannt.» =Etym.= Im alten Ägypten: qmyt (die hieroglyphischen Zeichen I, S. 470), komi (k[o]mi), q(o)mi, qmy (kmy) qema oder quemi -- im Koptischen kome. Daraus dann κόμμι (zuerst bei ~Herodot~) und (lat.) commis, cummis, cummi und später gummis und gummi, im Deutschen zuerst: gumme -- +franz.+ gomme, +engl.+ gum etc. Das ägyptische Wort soll nicht in Ägypten bodenständig, sondern der Sprache von Punt entlehnt sein (~Reinisch~). Die im Altertum gebräuchliche Bezeichnung Gummi acanthinum von ἄκανθα = Dorn, Dornbusch. =Stammpflanzen.= =Acacia Senegal= ~Willdenow~ Spec. pl. IV, 1077 [~A. Verek Guill.~ et ~Perrot.~, A. rupestris ~Stocks~, Mimosa Senegal L., M. Senegalensis ~Lam.~ (~Ait.~)]. Trop. Afrika, in Cordofan, Sennaar, Khartoum, bei Kassala und Gedaref, im südlichen Nubien, am Atbara und Astaboran, in der Landschaft Gezireh; ferner im Westen in dem auf dem gleichen Breitengrade von Cordofan liegenden Senegambien und den Gebieten zwischen Cordofan und Senegambien (Bornu), sowie in Ostafrika, endlich auch in Arabien (Maskat, Aden, Dschidda) und Beludschistan, Indien (Sind, Ajmir). Die Flora von Sind hat große Ähnlichkeit mit der der afrikanischen Wüste. Der Baum heißt im Senegal: +Verek+, in Cordofan: +Hashaba+, plur. +Hashab+ oder cheschâb, in Indien: Khor, Kúmta, in Bornu: Kol-Kol. Diese Pflanze liefert sowohl das beste Cordofangummi (~Schweinfurth~, ~Heuglin~, ~Beam~), das Hashab von Khartoum und Sennaar, wie das meiste gute Senegalgummi, besonders die Sorte bas du fleuve. Weniger wichtig sind: +Acacia arabica+ ~Willd.~ (Acacia vera ~Willd.~, Mimosa nilotica L., M. arabica ~Lam.~) in Indien: Kikar, Babúl und die von einigen dazugezogene, jedenfalls nahe verwandte +Acacia nilotica+ ~Del.~, der Sont- oder Ssantbaum. Trop. Asien und Afrika; im Sudan und oberen Senegal, Mosambique und Natal, Arabien und Indien (Sind). Liefert das Sunt-Gummi des Sudans, Marocco-, Mogador- und berberisches Gummi (~Maben~) und einen Teil des Galam Senegambiens, sowie indisches Gummi. ~Bentham~ unterscheidet von _A. arabica_ ~Willd.~ die var. _tomentosa_ (im Senegalgebiet), die var. _nilotica_ (im Nilgebiet), die var. _indica_ (in Indien) und die var. _Kraussiana_ (in Port-Natal). +Acacia Seyal+ ~Del.~, Sejal, Ssoffar, in Palästina: seijāl, ṭalḥ, mit der var. +fistula+ (A. Fistula ~Schweinf.~) im tropischen Afrika, in Nubien, Sennaar, in Kassala östlich von Khartoum und der italienischen Kolonie Erythraea, sowie in Deutsch-Ostafrika. Liefert Talh-Gummi (~Beam~), Gedarefgummi (~Busse~) und Ssoffargummi (~Schweinfurth~). +A. stenocarpa+ ~Hochst.~, Talg, kitr, kakul oder suak, in den Nilländern, Abyssinien, Nubien und Deutsch-Ostafrika. Ebenfalls Talhgummi (talha) liefernd (~Schweinfurth~), sowie Gedarefgummi (~Busse~) und Suakimgummi (~Maben~). +A. Giraffae+ ~Burch.~ (= A. erioloba ~Willd.~?), Camelthorn, in den Nilländern und in Deutsch-Südwestafrika, in den trockensten und heißesten Gegenden. Liefert Capgummi (weich) und deutsch-südwestafrikanisches Gummi. +A. horrida+ ~Willd.~ (A. Karoo ~Hayne~, wohl auch = A. capensis ~Burch~). Extratrop. Südafrika, in Deutsch-Südwestafrika und am Cap (z. B. an den Ufern des Kariep). Liefert seit 100 Jahren viel Capgummi (hart) (~Burchell~) und deutsch-südwestafrikanisches Gummi. +A. abyssinica+ ~Hochst.~ Tschéa und +A. glaucophylla+ ~Steud.~ (nahe mit A. Senegal verwandt), in Abyssinien und dem Somalilande, das Somali-Gummi (Karami) liefernd. +A. Neboued+ ~Guill.~, in Senegambien, und +A. albida+ ~Del.~, Anabaum, in Deutsch-Südwestafrika und im Senegalgebiet, hier Galamgummi liefernd. +A. gummifera+ ~Willd.~ in Marocco. +A. pycnantha+ ~Benth.~ (golden wattle) in Neusüdwales, Victoria und Südaustralien. Liefert australisches Gummi (Wattlegum). Ohne größere Bedeutung sind: _Acacia Ehrenbergiana_ ~Hayne~ und _A. tortilis_ ~Hayne~ (A. Raddiana ~C. Savi~, A. fasciculata G. P.) Haraz, in Palästina: seijāl, ṭalḥ, im Nilgebiet, Nubien, Abyssinien und in Arabien -- _A. Adansonii_ ~Guill.~ et ~Perrott.~ in Senegambien -- _A. verugea_ ~Schweinf.~ liefert das Kukgummi (~Beam~) -- _A. Suma_ ~Kurz~ (_A. campylacantha_ ~Hochst.~) liefert das Kakamut oder Sinlingummi. _A. Farnesiana_ ~Willd.~ (in Indien: vilayati kikar, guya babúla, in Palästina: ghilān, ảnbar, ḳarz) in Vorderindien (heimisch in Westindien) -- _A. spirocarpa_ ~Hochst.~ und _Stuhlmanni_ ~Taub.~ in den Nilländern und in Deutsch-Ostafrika -- _A. usumbarensis_ ~Taub.~ in Deutsch-Ostafrika -- _A. Catechu_ ~Willd.~ (in Indien: khair, khair-babúl, katha) im Nilgebiet, z. B. in Faschoda, in Indien und Burma, im Himalaya -- _A. decurrens_ ~Willd.~ (_A. mollissima_ ~Willd.~, _A. dealbata_, ~Link~), _A. homalophylla_ ~Cunn.~, _A. vestita_, _A. pendula_, _A. Sentis_, _A. binervata_, _A. elata_, _A. glaucescens_, _A. penninervis_ und _A. retinoïdes_. ~Schweinfurth~ nennt im Nilgebiet 24, ~Taubert~ in Ostafrika 22, ~Watt~ (Dict.) in Indien 18 Arten. _A. Angico_ ~Mart.~ liefert brasilian. G. (~Symes~), _A. micrantha_ ~Benth.~ venezuelanisches (~Ernst~). _A. paniculata_ ~Willd.~ liefert die Goma de tiamo von Venezuela (s. weiter hinten). ~Dragendorff~ führt (in Heilpflanzen) 65 _Acacia_arten als benutzt auf. Alle, jedenfalls alle afrikanischen _Acacia_arten, sind imstande Gummi zu liefern. =Systemat. Stellung.= Leguminosae -- Mimosoideae -- Acacieae. Die gegen 450 Arten der Gattung _Acacia_ ~Willd.~ sind besonders zahlreich in Afrika und Australien vertreten, etwa 300 entfallen auf Australien. Die afrikanischen Arten gehören zu den Sekt. Gummiferae und Vulgares (_A. Senegal_ zu letzterer Gruppe). =Beschreibung der Stammpflanze.= _Acacia Senegal_ ist ein niedriger Baum mit einem nicht über 6 m hohen, mehr oder weniger geneigten, 12-25 cm dicken Stamm, knorrigen, gewundenen, spreizenden Ästen und einer dünnen Schirmkrone («Schirmakazie»). In Bornu ist _A. Senegal_ strauchartig. Das Holz ist sehr hart und weiß, die sehr faserige, daher zum Binden benutzte Rinde außen grau, innen rostfarbig, Die 2 (bis 3) kurzen Stacheln sind hakenförmig nach unten gekrümmt. Es sind metamorphosierte Nebenblätter. Sie sitzen daher an der Basis der Blattspindel (Taf. VII). Die doppelt und paarig gefiederten, an der Spindel gemessen, 2-3 cm langen Blätter besitzen 3-5 Paare Fiedern, die Fiederchen sind 10-15 jochig, schmal lineal, graugrün, kahl, bis 5 mm lang, gegenständig, sehr kurz gestielt. Die oberseits rinnige Spindel zeigt einige gelbe, fleischige Drüsen. Die Blätter zeigen die Erscheinung des Transversalheliotropismus, sie stellen bei starker Belichtung und Verdunstung die Fiederblättchen senkrecht und geben vom Januar an keinen Schatten (~David~). (Die australischen Acacien besitzen oft durch Drehung des Blattstiels senkrecht gestellte Phyllodien.) Die in den Blattachseln entspringenden Blütenstände werden bis 10 cm lang. Es sind walzenrunde, mäßig dichte Ähren (Taf. VII). Die Blüten sind +weiß+ (nicht gelb wie bei vielen anderen Arten). Der fünfzählige Kelch ist becherförmig, die ebenfalls kleinen 5 Blumenblätter lanzettlich, die zahlreichen, doppelt so langen Stamina am Grunde einbrüderig verbunden, in den Thekae nur wenige Pollinien. Der lineale Fruchtknoten wird zu einem bis 10 cm langen, flachen Legumen mit 5-6 braunen, glänzenden Samen, die einen langen Funiculus besitzen. (Beschreibung der anderen Arten in ~Luerssen~, Mediz. pharm. Botan.) [Illustration: Tafel VII. Acacia Senegal Willd. Nach Tafel 56 des Flor. Senegamb. Tentam. von Guillemin, Perrottet et Richard verkleinert.] Die Acacien verlangen ein +heißes+ und +trockenes+ Klima. Cordofan hat ein Jahresmittel von 28° C. (Maximum im Schatten 44° C. im Mai und September). «Dornen und immer wieder Dornen sind das Wahrzeichen von Cordofan. Ein dornenreicheres Geschäft als Gummisammeln läßt sich nicht wohl denken» (~David~). Die Gummiacacien haben den Habitus von Erlen. In Cordofan bilden die Acacien lichte Haine, in Ostafrika eine besondere Vegetationsform, die ~Engler~ «Baumgrassteppe mit Vorherrschen der Acacien» nennt (Abbild. in ~Engler~, Pflanzenwelt Ostafrikas, S. 59). Bei Bara fand ~David~ neben _A. Senegal_ auch _A. stenocarpa_, weiter nördlich bei Kagmar +nicht+ _A. Senegal_, sondern nur _A. Seyal_, _A. spirocarpa_ und _stenocarpa_. _A. stenocarpa_ und _fistula_ bilden ausgedehnte Wälder im Gebiete des Atbara und Bahr-el-Azrak. =Lit.= ~G. Schweinfurth~, Aufzähl. u. Beschreib. d. Acacienarten des Nilgebiets. Linnaea 35. 1867/68 m. 19 Taf. und Im Herzen Afrikas 1874. -- ~A. F. Broun~, Catal. of the flowering plants of the Sudan. -- ~Taubert~, Die Gummi liefernden Pflanzen Ostafrikas in ~Engler~, Pflanzenwelt Ostafrikas 1895. -- ~Delile~, Flore d’Egypte. -- ~Forscal~, Flor. aegypt. arab. -- ~Unger~, D. Pfl. d. alt. Ägypt. -- ~Gerh. Rohlfs~, Drei Monate in d. Libysch. Wüste. 1875. -- ~Heuglin~, Reise in d. Gebiet d. weißen Nil u. Reise nach Abyssinien. 1868. -- ~Hildebrandt~, Zeitschr. Ges. f. Erdkunde 1875, 279. -- ~Oliver~, Flora of tropical Africa II, 338. -- ~Guillemin, Perrottet et Richard~, Florae senegambensis tentamen. -- ~Bentham~, Transact. Linn. Soc. 30, 516. -- ~C. Martins~, Bull. Soc. Bot. France 1875, 20. -- ~Burchell~, Travels in the interior of south Africa 1822/24. -- ~Haggenmacher~, Reise im Somalilande. Peterm. geogr. Mitth. Ergänzungsh. 47 (1876). -- ~Sadebeck~, Kulturgewächse der deutschen Kolonien. 1899. -- ~Brandis~, Forest flora of North-West and Centr. India. -- ~F. von Müller~, Select plants for industrial culture in Victoria. 1876 und Iconographia of acacias. -- ~Luerssen~, Mediz. pharm. Bot. +Abbild.+ von +A. Senegal+ ~Willd.~: ~Guillemin~ et ~Perrottet~, Flor. Senegamb. tent. 1830, t. 56 (reproduziert in ~Flückiger~, Gummi u. Bdellium, Schweiz. Wochenschr. 1869); ~Berg-Schmidt~, Atlas II. Aufl.; ~Bentley~ and ~Trimen~, Med. plants t. 94, ~Schweinfurth~ a. a. O. t. 22, Reliquiae Kotschyan. t. 3; ~Taubert~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam.; von +A. nilotica+: bei ~Rohlfs~ t. 13; +A. arabica+: ~Roxb.~ Pl. Coromand. H t. 149, kopiert bei ~Nees von Esenbeck~ t. 333; +A. Seyal+: ~Nees~ t. 336, ~Schweinfurth~ t. 11-14, ~Berg-Schmidt~, I. Aufl. t. 6 d.; ~Busse~ in ~Engler-Drude~, Vegetat. d. Erde IX, I, S. 274; +A. horrida+: ~Hayne~ X t. 33; +A. horrida+ und +erioloba+: ~Warburg~, Zeitschr. f. trop. Landwirtsch. 1898; +A. stenocarpa+: in ~Busses~ Bericht VI.; +A. spirocarpa+: ~Busse~ a. a. O. =Pathologie.= Schädlinge scheint die Gummiacacie nicht zu haben. Beeinträchtigt wird gelegentlich der Gummiertrag durch Antilopen und Paviane, die das Gummi fressen, Elefanten, die die Bäume umreißen (~Baker~) und Kameele, die die Dornen abnagen (~David~). =Lit.= ~Baker~, Die Nilzuflüsse in Abessinien. Braunschw. 1868. =Bildung des Gummis in der Pflanze (Gummosis).= Das Gummi arab. entstammt der +Rinde+ der Acacien. Eine mir vorliegende Probe von mit Gummi reichlich besetzter Rinde von _Acacia Senegal_, ausgelesen aus der Handelsware, zeigt folgenden Bau. Eine dicke Schicht typischen farblosen Korkes bedeckt das Ganze. Die sekundäre Rinde besteht aus miteinander abwechselnden tangentialen Streifen von Keratenchym (~Wigand~), d. h. obliterierten Siebbündeln (~Moeller~) nebst begleitendem Phloëmparenchym und Bastzellbündeln, oft in sehr regelmäßiger Alternanz. In radialer Richtung wird die Rinde von ein- bis dreireihigen Markstrahlen durchzogen. In den Phloëmparenchymzellen findet sich bisweilen eine die Zellen meist ausfüllende, lichtgelbliche-dunkelbräunliche Masse. Die Gummosis, welche zur Entstehung großer gummierfüllter lysigener Höhlen führt, geht, nach ~Moeller~, von den jungen Keratenchymbändern und dem Phloëmparenchym, oder, wie ich vermute, von Stellen, die diesen entsprechen würden, aus. An dem mir vorliegenden Material ließ sich sicher nicht feststellen in welchem von beiden sie zuerst eintritt, jedenfalls werden die Membranen des Keratenchymbandes und die der Phloëmparenchymgruppen in Gummi übergeführt. So findet man in der Rinde von Zweigen, die Gummidrusen reichlich tragen, gummierfüllte Höhlen (cavernes de résorption, ~Trécul~) ringsum von in Auflösung begriffenen Zellen umgeben. In den äußeren Rindenschichten der _Acacia_ fand ~Moeller~ ein kirschgummiartiges, unlösliches Gummi. [Illustration: Fig. 141. Gummibildung in der Acacienrinde nach +Moeller+.] [Illustration: Fig. 142. Entstehung des +Pruneengummi+. Zwei Gummidrusen, die im Jungholz entstanden und durch sekundäres Dickenwachstum des Holzkörpers ins Innere gerückt sind. Die Gefäße mit Wundgummi gefüllt. [+Tschirch.+]] Nach dem Sitze der Gummimassen zu urteilen muß die ergiebigste Gummibildung +in den inneren Teilen der sekundären Rinde+ stattfinden. Und es bleibt noch durch Versuche an der lebenden Pflanze festzustellen, ob nicht infolge der Verwundung zur Gummose vorgebildete Zellgruppen, sei es nun ein besonderes Gewebe oder zur Gummose neigende Phloëmpartien, direkt in der äußeren Partie des Cambiums im Jungleptom erzeugt werden. Es erscheint mir dies deshalb wahrscheinlich, weil ~Jadin~ und ~Boucher~ bei _Moringa_ nach Verwundungen das Auftreten von Gummiräumen im Jungleptom beobachteten. Auch ~Moeller~ beobachtete die Anfänge der Gummibildung bei _Acacia pterygocarpa_ «in einer sehr tiefen Schicht der sekundären Rinde nahe dem Holzkörper» und ~Corre~ und ~Louvet~ verlegen sie sogar «zwischen Holz und Rinde», also in das Cambium. Das deutet darauf, daß auch hier (wie beim Harzfluß) der Anstoß zur Gummibildung im Cambium und seinen jüngsten Produkten erfolgt. -- Andere Beobachtungen machen es wahrscheinlich, daß (wie beim Harzfluß) ein Verwundungsreiz das erregende Moment ist. Während aber bei der Gummose der Amygdalaceen, wie ~Mikosch~ gezeigt hat, infolge der Verwundung im +Neuholz+ (Junghadrom) Gruppen abnormen Parenchyms («Gummizellen») entstehen, die der Gummose anheimfallen, müßte sich hier der Effekt des Reizes im +Jungleptom+ äußern. Nach den Beobachtungen von ~Lutz~ besteht zwischen der Gummose der Acacien und der Amygdalaceen eine ziemlich weitgehende Übereinstimmung. Er sah übrigens Gummose bei den Acacien auch im Jungholz auftreten. Da ~Wigand~ einmal auch eine Gummidruse im Holzkörper fand, scheint in der Tat bei den Acacien auch dort unter gewissen Umständen Gummibildung möglich. Nach ~Louvet~ entstehen auch Lücken im Zuge der Markstrahlen. Bisweilen erreicht der Gummifluß riesige Dimensionen. ~Naudin~ fand 1889 ein Exemplar der _Ac. dealbata_ ganz eingehüllt von Gummimassen. ~Lutz~, der (nach ~Mangin~) mit Färbemitteln die Gummose bei den Acacien verfolgte -- er benutzte Doppelfärbung mit Neutralrot ~Cassella~ und Vert acide JEEE ~Poirrier~ -- verlegt den Beginn der Gummose direkt ins Cambium, in dessen Wänden er eine Umwandlung in Gummi konstatieren konnte. Auch ~Trécul~ und ~Cotton~ verlegen den Beginn der Gummibildung dorthin, führen sie aber auf Saftstauung und Überernährung zurück. Aus den Beobachtungen von ~Lutz~ möchte man den Schluß ziehen, daß Gummibildung auch ohne Verwundung +möglich+ ist, da die Membranen des Cambiums gewisser Pflanzen Neigung zur Umbildung in Gummomembranine zeigen, Gummi+fluß+ aber +nur+ infolge von Verwundungen entsteht. Auch ~David~, der die cordofanischen Gummidistrikte besuchte, beobachtete, «daß der Gummosis immer Veränderungen, Risse oder Spalten in den geplatzten Borken» zugrunde lag, und bemerkt, «gewiß ist das Gummi ein vortrefflicher Wundverschluß um das Ausdörren zu verhindern». ~Beam~ berichtet (s. weiter hinten) sogar von der Anbringung +großer+ Wunden (vgl. Taf. VIII u. IX). ~Busse~ sagt (III. Bericht über die Reise in die ostafrik. Steppen 1900) über die Gummiausscheidung bei _Acacia stenocarpa_, «daß das Gummi in keinem Falle freiwillig, d. h. ohne äußere Eingriffe, der Rinde entfließt». Alle Erfahrungen deuten darauf, daß eine +Verwundung+, sei sie nun künstlich von Menschenhand angebracht oder spontan durch Tiere oder Astbruch oder Bersten entstanden, für das Zustandekommen des Gummi+flusses+ auch bei den Acacien notwendig ist, die Gummose also eine Reaktion auf die Verwundung darstellt, wobei unentschieden bleiben mag, ob die Verwundung nur als Reiz wirkt, oder ob durch sie fremde Substanzen wie Bakterien oder Pilzsporen und ihre Produkte oder Gase (Sauerstoff) den inneren Geweben der Rinde zugeführt werden. Es würde also die Gummibildung in den Acacien mit der bei den Amygdalaceen und indirekt mit der Resinosis in Parallele gestellt werden können. Halten wir diese Analogie aufrecht, so wird klar, daß das Gummi nicht +nur+ durch Metamorphose der loco vorhandenen Membranen entstehen wird, sondern daß diese einen +Herd der Gummibildung+ erzeugen werden, in dem auch das weiter zugeführte gelöste Kohlenhydratmaterial, ohne den Umweg über eine typische Membran zu machen, eine Umbildung in Gummi erfährt, ähnlich wie dies auch ~Frank~ und ~Karsten~ annehmen. Dies macht den Prozeß auch von anderen Faktoren als nur der Verwundung abhängig. Und in der Tat lehrt die Erfahrung, daß die Gummiacacien nur zu einer bestimmten Zeit Gummose zeigen, zur Zeit der Blattbildung z. B. nicht, und daß auch gewisse Standortsverhältnisse, z. B. trockener Boden, für das Zustandekommen der Gummose nötig sind. Dieselbe Art bildet in der einen Gegend Gummi, in einer andern keins (~Hildebrandt~, ~Schweinfurth~, ~Beam~), sie kann in einer Gebirgsgegend reichlich Gummi liefern, in größerer Höhe aber gar nichts geben. Auch die Temperatur spielt eine Rolle. An einem heißen Tage wurden in Cordofan (1908) von drei Bäumen 1,3, an einem kalten nur 0,63 rotls geerntet (~Beam~, vgl. auch unter Gewinnung). In Cordofan tritt die Gummose nicht während der Regenzeit ein, sondern erst wenn die fürchterliche Trockenheit einsetzt. ~Jos. Moeller~ hält die Gummibildung der Acacien für einen normalen, in seiner physiologischen Rolle der Borkenbildung vergleichbaren Prozeß; ich habe die Gummose schon 1888, ebenso wie ~Frank~ und ~Maiden~, für einen pathologischen angesprochen, da es viele Bäume und andere Teile des gleichen Baumes gibt, die keine Gummosis zeigen und bisher +nur+ an Wunden wirklicher Gummi+fluß+ beobachtet wurde. Auch ~Planchon-Collin~ nennen das Gummi «une production morbide». Nach ~Savaitana~ ist nicht nur bei den Amygdalaceen, sondern auch bei den Aurantieen die Ergiebigkeit des Gummiflusses proportional der Stärke der Verletzungen. Bisweilen wurde allerdings bei den Gummiacacien auch sog. +freiwilliger+ Gummiaustritt beobachtet, sowohl im Sudan (~Chevallier~) wie in Senegambien (~Guillemin~ und ~Perrottet~), ja dies Gummi trägt im Sudan sogar den besonderen Namen hashab wady. Aber auch hier werden Wunden entstehen, denn der Gummiaustritt erfolgt, wenn unter dem Einfluß der trockenen Westwinde nach einer Regenperiode sich die Rinde zusammenzieht, also +spontane Risse+ entstehen. Daß auch +Parasiten+ den Wundreiz auszuüben bzw. zu unterstützen vermögen, wird allgemein zugegeben. Man hat aber auch die Gummosis direkt auf Parasiten +zurückgeführt+. So nahm ~Martins~ an, daß der phanerogamische Parasit _Loranthus senegalensis_ ~Mart.~ den Gummifluß der Acacien verursache (von ~Louvet~ und ~Corre~ widerlegt) und ~Beijerinck~ meinte, daß ein Pyrenomycet _Pleospora gummipara_ ~Oudemans~ bei den Gummiacacien (_Coryneum Beijerinckii_ bei Pfirsich, Aprikose, Pflaume und Kirsche) Gummifluß hervorrufe. Neuerdings hat ~Greig Smith~ zu zeigen versucht, daß +Bakterien+ die Ursache der Gummosis sind. Die bakteriologischen Untersuchungen dieses Autors wurden an _Acacia penninervis_ und _binervata_ in Australien gemacht. Von den Zweigen isolierte er zwei Bakterien, _Bacterium acaciae_, die vorherrschende Art, produzierte auf künstlichen Nährböden einen Schleim der Arabino-Galaktanklasse (d. h. Arabin), der also qualitativ mit dem Gummi von _A. binervata_ übereinstimmte, _Bacterium metarabinicum_ dagegen, eine Varietät des anderen, einen Metarabin haltigen Schleim. Das Gummi von _A. penninervis_ ist denn auch ein Metarabin haltiges. ~G. Smith~ kommt daher zu der Hypothese, daß die Differenzen zwischen den einzelnen Gummiarten auf der Verschiedenheit der produzierenden Bakterien beruhen. Als Bildungsmaterial nimmt er Lävulose und Maltose an. Festgestellt ist, daß im Punjabgummi und dem australischen Wattlegummi andere Mikroorganismen vorkommen wie im Sudangummi (~Edie~, ~Prebble~, Pharmac. ind.). ~Smith~ bleibt aber den Beweis dafür schuldig, daß die von ihm gezüchteten Bakterien am Baume die ihnen zugeschriebene Wirkung ausüben und beachtet nicht, daß sein Wattlegum nur +0,9°, sein Bakterienschleim aber +43° drehte, beide also Araban und Galaktan offenbar in ganz verschiedenen Verhältnissen enthalten. Zudem ist Schleim- oder Gummibildung bei Bakterien eine weit verbreitete Erscheinung. Doch wissen wir über die Natur der gebildeten Produkte wenig. Das von _Streptococcus mesenterioides_ produzierte Gummi ist Dextran (~Scheibler~), wie das eines Spaltpilzes einer Zuckerfabrik (~Andrlik~). Ein anderer Spaltpilz produzierte Lävulan (~Maassen~), ein dritter Galaktan. Auch ~Brzezinski~ hat die Identität seines Gummis mit dem entsprechenden Bakterienschleim nicht nachgewiesen. ~Ruhland~ bezweifelt den bakteriellen Ursprung der Gummis. Er erhält mit aus Kirschbäumen isoliertem _Bacillus spongius_ auf Nährböden einen Arabinoseschleim. Der gleiche Bacillus erzeugt an Kirschbäumen eine von starkem Gummifluß begleitete Krankheit. Das austretende Gummi ist aber ein Araban-Galaktangemisch. ~Edie~ wiederholte die Versuche von ~Smith~. Er sterilisierte außen die Zweige der Gummiacacie in Khartoum, zerschnitt sie, impfte Gelatine damit und übertrug die Kultur auf Kartoffelagar. Er erhielt ein Bakterium, das auf mit Gerbsäure versetzte Lävulose übertragen, nicht gut wuchs, aber auf Lävulose allein Schleim bildete. Allerdings noch nicht abschließende Impfungsversuche von ~Edie~ ergaben aber, daß mit Bakterien «geimpfte» Bäume +weniger+ Gummi lieferten als «ungeimpfte» (aber verwundete). (Das «Impfen» wurde in der Weise ausgeführt, daß der Schnitt, um die Mikroben besser hineinzubringen, vorher mit Wasser eingerieben wurde). ~Garros~ brachte einen hefeartigen Pilz, der die Fähigkeit besitzt, den unlöslichen Teil des Kirschgummis in Lösung überzuführen, mit der Gummibildung in Beziehung. Daß sog. «Schleimflüsse» an Laubbäumen (Eiche, Ahorn, Pappel) infolge von Pilzinfektionen entstehen können, zeigte ~Ludwig~, daß jedoch z. B. die sog. «gommose bacillaire» von ~Prillieux~ an der Rebe +keine+ Bakterienerkrankung ist, ~Rathay~. Der von einigen angenommene, zum mindesten bisweilen förderliche Einfluß der Bakterien auf die Gummibildung kann sehr verschiedene Gründe haben. Ich erinnnere daran, daß die Bakterien sehr oft +Enzyme+ produzieren. Diese können direkt oder indirekt die Gummibildung beeinflussen oder Prozesse einleiten, die zur Gummibildung führen. Auch ~Beijerinck~ denkt daran, daß die von ihm beobachteten Pilze ein Ferment bilden, da Gummibildung auch entfernt von der Wunde eintrete. Dann erinnere ich daran, daß der _Bacillus spongiosus_ von ~Aderhold~ und ~Ruhland~ auf den Nährböden auch reichlich organische Säuren (Essigsäure, Ameisensäure, Milchsäure, Buttersäure) bildete und ~Grüss~ und ~Sorauer~ eine günstige Beeinflussung der Gummose durch Säuren (spez. Oxalsäure) beobachtet haben. Vielleicht wirken die Oxydasen besonders energisch in saurer Lösung. Auch +Tiere+ sind +als Erreger des Gummiflusses+ betrachtet worden. ~Zimmermann~, der an _Acacia decurrens_ arbeitete, brachte die Gummibildung mit Verletzungen durch Käfer in Beziehung. Nach ~Busse~ entstammt das G. der _Ac. stenocarpa_ in Deutsch-Ostafrika ausschließlich Verwundungen, die durch +Ameisen+ hervorgebracht wurden. Jeder Gummitropfen entspricht einem Bohrloch. Doch beteiligen sich bisweilen auch größere Tiere (bes. Insekten). Auch ~David~ spricht bei den Gummiwäldern Cordofans von «massenhaft zuwandernden Ameisen», und davon, daß diese beständigen Begleiter der Gummiacacien an den Gummiklumpen naschen. Ebenso sah ~Muriel~ bei _A. Seyal_ Insekten. ~Gentz~ fand bei der _Acacia horrida_ (nicht bei _A. Giraffae_) in Südwestafrika Bohrgänge einer Raupe und eines Käfers. ~Guibourt~ glaubte, da er im Innern der +Marrons de gomme+ (gomme lignirode) eine große eiförmige «Zelle» fand, dies G. sei durch ein Insekt erzeugt und die Morrons seien die Behälter der Larven, was aber unrichtig ist. Auch bei der Bildung des Sonoragummi (s. d.) scheinen Tiere beteiligt und eine +Begünstigung+ der Gummibildung durch Verwundung +durch ein Tier+ nimmt ja auch ~Wiesner~ bei der Bildung des +Chagualgummis+ an (Rohstoffe, S. 124), dessen Stammpflanze aber auch normalerweise Gummigänge bildet. +Die meisten Autoren betrachten also die Gummosis als eine Krankheit.+ ~Grüss~ und ~Sorauer~ dagegen, welche den Wundreiz für eine häufig vorhandene, keineswegs aber für die einzige Veranlassung der Gummosis der Amydalaceen ansehen, halten den Gummifluß für eine physiologische Störung, die auf einem Übermaß der abbauenden gegenüber den aufbauenden Enzymen beruhe. Die im Plasma gebildeten abbauenden Enzyme rufen sowohl die Umwandlung des Reservematerials (Stärke, Hemizellulosen) als die Schmelzung der Membran hervor. «Ein solches Übermaß kann sowohl durch absolute Vermehrung der lösenden Enzyme zustande kommen, als auch durch Gleichgewichtsstörungen entstehen, indem die koagulierenden Enzyme nicht rechtzeitig in genügender Menge zur Wirksamkeit gelangen» oder lahmgelegt werden und die hydrolysierenden die Oberhand gewinnen. ~Sorauer~, der Gummiherde auch im unverletzten Gewebe sah (waren nicht doch vielleicht Wunden in der Nähe?), verlegt die Gummosis in die Membran und sieht, gestützt auf Versuche, einen erhöhten Gehalt der Gewebe an Säure (bes. Oxalsäure) als begünstigenden Umstand an. Es gelang ihm künstlich, durch Oxalsäure Gummifluß zu erzeugen. Er sieht den Gummifluß als einen speziellen extremen Fall einer allgemein verbreiteten Neigung gesunder Gewebe an, bei bestimmten Wachstumsverhältnissen, die eine Hemmung der Wirksamkeit der koagulierenden Enzyme veranlassen, Wandquellungen- und Lösungen einzugehen. ~Grüss~ nimmt an, daß die Gummisubstanz aus dem Zerfall von Zellwänden herrührt, die Hemizellulosen enthalten und zwar speziell aus dem Galaktan derselben hervorgeht unter dem Einfluß von Enzymen (Cytasen, Diastasen). Bei mangelhafter Ableitung des verflüssigten Gummis kann eine Gummilücke entstehen, da schließlich die Grundsubstanz der sekundären und weiterhin die primäre Membran angegriffen wird. ~Grüss~ denkt sich die Gummibildung in der Weise verlaufend, daß die Gruppe COH in dem Zucker- oder Saccharo-Colloid-Molekül durch Sauerstoffüberträger in die COOH-Gruppe verwandelt wird und so Arabin- resp. Galaktinsäuren entstehen. Als Sauerstoffüberträger würden die Oxydasen fungieren. ~Grüss~ zeigte, daß die Cytase des Kirschgummi Hemizellulosemembranen zu verschleimen und zu lösen vermag. Bei der Gummibildung im Kirschholz, der normalen und der pathologisch gesteigerten, ist die Cytase beteiligt. «Jeder Gummibildungsprozeß setzt die Anwesenheit von Hemizellulosen im Holzkörper voraus.» Sitz der Cytocoagulase sind die ~Mikosch~schen Gummiparenchymzellen. Nach ~Beijerink~ und ~Rant~ beruht der Gummifluß bei den Amygdalaceen auf einer durch Wundreiz verursachten anormalen Entwicklung des embryonalen Holzgewebes, die schließlich zur «Verflüssigung» desselben führt und die verursacht wird durch einen cytolytischen Körper. Cytolytische Substanzen werden von nekrobiotischen Zellen, wie man sie in der Nähe von Wunden findet, deren Plasma tot, deren Enzyme aber erhalten sind, vielleicht in besonders großer Menge abgeschieden. Die Autoren sind der Ansicht, daß alle Ursachen, welche zur Nekrobiose führen, Gummifluß veranlassen und zwar um so heftiger, je umfangreicher die nekrobiotischen Prozesse sind. Quecksilberchlorid erzeugt auch dort noch Gummifluß, wo er sonst ausbleibt (Aber HgCl₂ tötet doch alle Enzyme!) _Coryneum_ u. and. Parasiten führen zur Gummibildung, weil sie ein Gift ausscheiden, Saprophyten (_Dematium pullulans_, _Phyllosticta Persicae_) verstärken die Gummibildung, weil sie einzelne Zellen abtöten. Die genannten Autoren betonen, daß der Gummifluß bei den Amygdalaceen wirklich bedeutungsvoll nur im sekundären Jungholze auftritt, wo auch normalerweise die Cytolyse am ausgiebigsten auftritt. Demgegenüber hält ~Ruhland~ die Gummose für eine allgemeine Eigenschaft embryonaler Zellen, die aber im normalen Leben nicht zur Auslösung kommt, sondern erst infolge eines äußeren Anstoßes. Er leugnet das regelmäßige Auftreten von nekrobiotischen Zellen und die Diffusion von zellstofflösenden Körpern aus nekrobiotischen Zellen in das embryonale Gewebe und führt durch zahlreiche Versuche den Nachweis, daß, +sobald der Sauerstoff bei der Verwundung abgeschlossen wird, die Gummose unterbleibt+. In den embryonalen Zellen wird, wenn Sauerstoff hinzutritt, statt Protopektin (S. 277) Gummi gebildet, das normale Wandbildungsmaterial in die sauerstoffreichere Gummisubstanz übergeführt. Danach würde also weder der Wundreiz allein, noch die durch die Wunde in die Pflanze gelangenden Parasiten und ihre Produkte +Primärerreger+ der Gummosis sein, sondern der zutretende Sauerstoff chemische Prozesse in der Pflanze einleiten oder auslösen, die zur Gummibildung führen. Wie diese Prozesse verlaufen, ist noch unklar. Aber das vorstehend Mitgeteilte weist doch wieder auf +Oxydasen+ und +Peroxydasen+, die wir bekanntlich ja noch in den Gummis selbst antreffen, hin. Daß _Gummi arabic._ Enzyme enthält, ist lange bekannt. Doch sprach erst ~Wiesner~ 1885 von einem «Gummiferment» und schrieb ihm die Eigenschaft zu Zellulose in Gummi verwandeln zu können. Aber schon ~Reinitzer~ zeigte 1890, daß das Gummiferment wenigstens außerhalb der Pflanze nicht hierzu imstande ist, sondern nur aus Stärke Zucker bildet, also ein diastatisches Enzym enthält. Als solches erkannte diesen Teil des Enzymgemisches auch ~Béchamp~ (1893), der ihm den Namen Gummizymase gab, und ~Grafe~ (1907). Daß aber neben dem diastatischen Ferment auch eine Oxydase im Gummi vorkommen muß, zeigt ja schon der Versuch mit Guajaktinktur, zeigen dann die Beobachtungen von ~Bourquelot~ über die oxydierenden Wirkungen verschiedener Gummiarten, sowie meine eigenen über die «Gummasen» und sprach endlich ~Reinitzer~ aus, der den Nachweis führte, daß im _Gummi arab._ neben einer Amylase sowohl eine Oxydase wie eine Peroxydase vorkommt. Mir erscheint nun nach allem die Frage sehr diskutabel, ob wir in diesem Enzymgemisch, dem ich, da ich der ~Duclaux~schen Nomenklaturregel nicht folgen konnte, den Namen Gummase gab, nicht wirklich die Gummibildner vor uns haben, die in der +gummogenen Schicht der lebenden Pflanze+ unter dem Einfluß von durch die Wunde zugeführten Sauerstoff (die Oxydasen wirken als Sauerstoffüberträger) aus den z. Z. unbekannten Gummibildnern, die wir aber wohl unter den Sacchariden und Polysacchariden zu suchen haben, das Gummi erzeugen. Ein Beweis ist dafür aber noch nicht erbracht. Für die Bildung des Kirschgummis nimmt ~Mikosch~ die Beteiligung von Enzymen an. Daß Gummifluß durch Reize hervorgerufen werden kann, bei denen Mikroorganismen +nicht+ beteiligt sind, unterliegt jetzt aber keinem Zweifel mehr (~Aderhold~, ~Ruhland~, ~Beijerinck~, ~Rant~). Über die Gummibildung bei den Amygdalaceen bemerkt ~Mikosch~: «Das Gummi entsteht in der lebenden Substanz der Gummiparenchymzellen, wird von dem Plasma als Lösung zwischen Hautschicht und primärer Membran ausgeschieden und hier unter dem Einflusse des Plasmas zum Teil in Wasser unlösliches, aber darin quellendes Gummi umgewandelt. Der Prozeß geht in der Zelle zentripetal vor sich. Die primären Membranen bleiben lange erhalten und werden erst später gelöst.» «Die kambialen Gummiräume werden bei fortschreitender Gummosis auch noch dadurch erweitert, daß die angrenzenden Markstrahlen in den Umwandlungsprozeß mit einbezogen werden.» «Die Gummibildung beginnt in der Membran stets in den Verdickungsschichten, zuletzt werden die primären Membranen gelöst.» Zur Membran brachten die Gummibildung zuerst ~Karsten~, ~Trécul~, ~Wigand~, ~Frank~ und ~Prillieux~ in Beziehung. Auch die Bildung des G. a. ist an Membranen geknüpft. Sie beginnt vielleicht schon in den Membranen der Cambiumzellen (~Lutz~) und wird deutlich in einer Vergummung der Membranen der Siebröhren und Cambiformzellen (Hornbastprosenchym, Keratenchym ~Wigands~) der sekundären Rinde (~Wigand~, ~J. Moeller~), einem Vorgange, den ~Wigand~ «rückschreitende Metamorphose der Zellmembran» nannte. Immerhin müssen sich -- das nahm schon ~Trécul~ an -- an der Gummibildung auch noch zugeführte Inhaltsstoffe beteiligen, denn wie von ~Höhnel~ an einem bestimmten Falle zeigte, hatte der an einem Zweige von _A. Senegal_ ansitzende Gummiknollen einen Inhalt von 41 000 cbmm, während der Spalt, aus dem er hervorgequollen war, nur 84 cbmm maß. ~Höhnel~ schließt daraus, daß die Beteiligung der Membranen auf die ersten Anfangsstadien beschränkt sein müsse und 99,8% ohne ihre Beteiligung entstehe. (Ähnlich hatte sich bereits 1866 ~Frank~ ausgesprochen.) Es verhielte sich dann mit der Bildung des _Gummi arabicum_ ganz ähnlich wie mit der des Kirschgummi und der Gummis bei Combretaceen, z. B. _Terminalia Bellerica_ und _Catappa paniculata_ (~v. Höhnel~) und Bromeliaceen (~Boresch~). Denn wie neuerdings ~Mikosch~ zeigte, beginnt in der Regel die Kirschgummibildung durch Bildung von Kappen an den einen schizogenen Raum umgebenden Zellen (solche Kappen sah ich auch bei schizolysigenen Harzbehältern). Diese Randzellen, sowie ihre Umgebung gehen alsdann zu grunde, es entsteht ein «schizolysigener (~Tschirch~) oder auch rein lysigener Raum», und in diesem kann nun eine enorme Gummibildung dadurch Platz greifen, daß alles zugeführte Kohlehydrat-Baumaterial (durch die reichlich auftretenden Enzyme) direkt in Gummi übergeführt wird: die aus den Membranen hervorgegangene Masse wird «gummogen». Ähnlich muß es beim G. a. sein. Es scheint, daß beim G. a. zunächst die Membranen einiger obliterierter Siebröhren und Geleitzellen (oder die Zellen einer «Gummizellen»-Gruppe?) vergummen und daß von diesem Herde aus die Vergummung fortschreitet. «Die Einwände, welche ~Höhnel~ gegen die Entstehung des Gummis aus Zellmembranen erhebt (s. oben), können übrigens leicht beseitigt werden, wenn man überlegt, daß es sich bei der Gummosis um pathologische Hyperplasie handelt» (~Czapek~). Die Ansicht von ~Vogl~ und ~G. Kraus~, daß das G. a. aus dem Siebröhren+inhalte+ stamme, ist durch nichts bewiesen. (~Kraus~ sah bei _Acac. melanoxylon_ aus den Siebröhren eine gummöse Flüssigkeit austreten.) ~Mangin~ setzt die Gummibildung zur Pektinbildung in Beziehung. Er betrachtet sie als eine pathologische Mehrproduktion pektinartiger Substanzen. Da das G. durch Erhitzen in Metarabinsäure übergeht und diese zum Bassorin und der Pektinsäure Beziehungen zeigt, so werden wohl auch Beziehungen des Gummis zum Protopektin (S. 278) bestehen. In der Tat scheint die Gummibildung bei den Gummiacacien in der Interzellularsubstanz (d. h. dem Protopektin) ihren Anfang zu nehmen (~Jos. Moeller~) und die an den Interzellularraum angrenzende Membranpartie bei den Pruneen gehört ja ebenfalls zum Protopektin («Auskleidungen der Interzellularen», S. 280). Endlich sieht man oft noch in vergummenden Geweben die mit der sekundären bzw. tertiären Membran umgebenen Lumina der Zellen, durch Gummi voneinander getrennt (Fig. 141 u. 142). Eine ganz besondere Bildung ist das Gummi im Kernholz und das Gummi im Schutzholz (~Gaunersdorfer~, ~Frank~, ~Temme~, ~Praël~). Bei der Bildung des +Kernholzgummi+ (Kerngummi) und +Wundgummi+ beteiligt sich die Membran nicht (~Böhm~, ~Prillieux~, ~Gaunersdorfer~, ~Frank~), es wird vielmehr eine bestimmte zarte Plasmaschicht «bassorinogen» (~Tschirch~ u. ~Will~). Diese Gummiverschlüsse der leitenden Organe des Holzkörpers scheiden die damit versehenen Gewebe aus dem Saftverkehr aus. Sie sind in Wasser unlöslich und verhalten sich wie Bassorin (~Tschirch~ u. ~Will~). [Illustration: Fig. 143. Stamm von _Acacia Senegal_ mit Gummiausscheidungen, aus der Baumgrassteppe von Ugogo [+Busse+ phot.]] +Holzgummi+ erhielt ~Fr. Koch~ (Pharm. Zeit. f. Rußl. 1886) vorwiegend aus dem Holze der Laubbäume. Die Coniferen sowie ligninfreie Gewebe ließen kein Holzgummi gewinnen. Es lieferte bei der Hydrolyse Xylose und enthielt 82 bis 86% Xylan, hat mit dem eigentlichen Gummi also nichts zu tun. =Lit.= ~Karsten~, Bot. Zeit. 1857, 313. -- ~Trécul~, Maladie de la gomme, Compt. rend. 1860, 621 u. 1862, 248. -- ~Frank~, Pringsh. Jahrb. 5, (1866) 25. -- ~Prillieux~, Compt. rend. 78 (1874); Ann. sc. nat. (6) I (1875), 176. -- ~Jos. Moeller~, Über d. Entsteh. d. Acacieng. Sitzungsb. d. Wien. Akad. 72 (1875), 219 u. Buchn. Rep. 1876, 323. -- ~Corre~, Notes sur les gommes du Sénégal. Journ. pharm. 1876, 318. -- ~Wigand~, Desorganisation d. Pflanzenzelle. Pringsh. Jahrb. 3, 136. -- ~von Hoehnel~, Über das Material, welch. z. Bild. d. arab. G. in d. Pfl. dient. Ber. d. d. bot. Ges. 1888 und (Combretaceen) Bot. Zeit. 1882. -- ~Czapek~, Biochemie. -- ~Louvet~, Etud. sur la mode de production de la gomme arab. faites pend. plus. voyages dans les forêts de gommiers. Journ. pharm. 1876, 405. -- ~Greig Smith~, The bacterial origin of the gums of the arabin group, Proceed. Linn. Soc. New South. Wales 1902-1904. Journ. soc. chem. ind. 23, 1904. (Centralbl. f. Bacteriol. 10 und 11, 1903. Zeitschr. Angew. Chemie 1905). -- ~Ruhland~, Arabinbild. durch Bacter. u. der. Bez. z. Gummi d. Amygdalac. Ber. d. d. bot. Ges. 1906, 393 und zur Physiolog. d. Gummibild. bei d. Amygdalaceen. Ebenda 1907, 302. -- ~Edie~, Bacterial origin of gum im III. Report Wellcome Research Laborat. Khartoum 1908. -- ~Martins~, Sur une mode particul. d’excrét. d. g. arab. Rev. sc. nat. Montpellier 1875, 553. -- ~G. Kraus~, Entstehungsweise d. G. a. Sitzungsber. d. Naturf. Ges. 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B. bei Djédid, Bara und el Obeïd) gefunden wird, weniger in Gezireh und Gedaref, sowie in Sennaar zwischen blauem und weißem Nil und bei Kassala (~Beam~). (Vgl. die Karte auf S. 429.) In dem Bezirke Bara Tajara el Obeïd in Cordofan besteht etwa ⅓ des lichten Buschwaldes aus Gummiacacien. ~Muriel~ unterschied zwei Sorten: +Gummi aus «Gärten»+ (+hashab geneina+ oder genaineh) und +wildes Gummi+ (+hashab wady+ oder ouadi) -- ersteres von angeschnittenen Bäumen, die einen Besitzer haben, letzteres von unangeschnittenen Bäumen, die keinen Besitzer haben. Von einer eigentlichen Pflege, Anpflanzung oder +geregelten+ Besitzverhältnissen ist aber meist nicht die Rede (~David~), so daß also die Bezeichnung «Garten» und «Besitzer» nicht wörtlich zu nehmen ist: die Genainas sind lichte Haine. Immerhin kommen, seit die Engländer sich in Khartoum festgesetzt haben (1900), die Gegenden in geregeltere Verhältnisse. Schon jetzt gibt es kaum noch Wady-Gummi. Alles Gummi stammt von angeschnittenen Bäumen, selten von solchen, wo es aus natürlichen Wunden austritt. Jetzt ist Wady der Name für dunklere Gummitränen. Die Gummigewinnung ist abhängig vom Vorhandensein von Brunnen, da die Sammler in den sehr zerstreuten, lichten Gummigärten sich ihr Wasser, ihre Nahrung und endlich auch das Gummi tragen müssen. (Fig. 144.) Da die Einsammlung in der heißesten Zeit stattfindet, so gehen die Sammler nur so weit wie nötig. [Illustration: [Genehmigter Abdruck aus dem Dritten Bericht der Wellcome Untersuchungs-Laboratorien Khartum 1908.] Fig. 144. Gummisammler in Cordofan, ausgerüstet mit Wasserschlauch und Beutel für Gummi und Mundvorrat, sowie mit Speer zum Schutze gegen wilde Tiere.] [Illustration: Tafel VIII. Anschneiden des Baumes zur Gummigewinnung. (Genehmigter Abdruck aus dem dritten Bericht der Wellcome Untersuchungs-Laboratorien Khartum 1908.)] [Illustration: Tafel IX. Ausschwitzen des Gummis neben der angeschnittenen Stelle. (Genehmigter Abdruck aus dem dritten Bericht der Wellcome Untersuchungs-Laboratorien Khartum 1908.)] Die Bäume werden nach dem Aufhören der Regenperiode, also vom Oktober an angeschnitten und das Anschneiden (tapping, barking) fortgesetzt bis zum Februar. Das Anschneiden erfolgt mit einer kleinen Axt. (Taf. VIII.) Es werden zunächst transversale Einschnitte gemacht, dann reißt man einen dünnen Streifen Rinde ab. Dieser Streifen sollte nicht länger als 2-3 engl. Fuß lang und 1-3 engl. Zoll breit sein (~Muriel~ vgl. Taf. IX), je nach der Dicke des Stammes. Größere Wunden schädigen den Baum, auch tritt weniger Gummi aus, ebenso bei kleineren Wunden oder Einschnitten. Es wird Sorge getragen, daß der Schnitt nicht bis in den Holzkörper geht. Wenn die Einschnitte an einem kühlen Tage gemacht werden und mehrere kühle Tage folgen, so tritt beinahe kein Gummi aus. Die Einschnitte müssen an heißen Tagen gemacht werden. Nach 60 Tagen kann, wenn das Wetter kühl ist, das erste Gummi gesammelt werden, bei warmem Wetter geht es schneller. Man läßt das Gummi zwei Wochen am Baum zum Erhärten. Vor dieser Zeit ist die Träne im Innern noch flüssig, läuft beim Sammeln aus und man erhält dann hohle Schalen, die leicht zerbrechen. Jeden vierten Tag kann das Gummi abgesammelt werden, bis die neuen Blätter erscheinen und der Regen einsetzt. Man sammelt (Fig. 144) in einer Saison meist 7-8 Mal (~Beam~). Besonders sammeln Frauen das Gummi. Verwundet werden 3 Jahre alte und ältere Bäume. Schon Bäume von 8-10 Fuß Höhe und 6-8 Zoll Umfang können Gummi produzieren. Ältere Bäume, wie solche von 15 Jahren, liefern kein Gummi, das beste solche von 8-12 Jahren. Dann beginnt die Kernholzbildung und sobald diese eingetreten, wird kein Gummi mehr erzeugt. Belaubte Bäume liefern kein Gummi, ebenso durch Feuer beschädigte. Während der Ernte muß trockenes heißes Wetter sein. Starke Bodenfeuchtigkeit und Schatten beeinträchtigen die Gummiproduktion; so ist z. B. in Agari, wo der Khor Agari im Sande verläuft, keine Gummiproduktion zu finden, trotzdem überall Hashab geneinas sich finden. Die Bildung des Gummis wird begünstigt durch einen leichten sandigen, eisenschüssigen Boden und gute Drainage. Während der trockenen Jahreszeit darf _A. Senegal_ nicht befeuchtet werden (_A. arabica_ dagegen verträgt Wasser gut). Die größte Gummiproduktion erfolgt, wenn auf eine gute Regenperiode eine ungewöhnlich heiße und trockene folgt. Bodenfeuer sistiert die Produktion in der Geneina für eine Saison. Man kann bei der jetzt üblichen Verwundungsart jeden Baum nur alle zwei Jahr verwunden. Ein großer Baum liefert ungefähr 1,9 rotl (2,166 rotl = 1 kg), ein mittlerer 1,33 und ein kleiner 0,75 (~Beam~). +Gummi von Bäumen, die angeschnitten wurden, ist heller als aus natürlichen Wunden austretendes.+ Das Gummi des ersten Gummiausflusses nach dem Anschnitt ist gewöhnlich weniger löslich, besonders bei älteren Bäumen, doch wird es beim längeren Liegen löslicher. Gegen das Ende der Sammelzeit wird das Gummi allmählich härter und glasiger, und die Lösung zeigt eine immer geringere Viskosität. Im allgemeinen fand ~Beam~, daß, entgegen der Meinung der Sammler, eine Lösung des Gummis älterer Bäume eine etwas größere Viskosität besitzt als das aus jüngeren. Das Gummisammeln wird sehr schlecht bezahlt. Es wird von den Bauern nur als Nebenbeschäftigung betrieben, und nur wenn sie _Sesam_ und _Dura_ geerntet haben. Sie kommen daher oft erst im Januar und Februar dazu die Bäume anzuschneiden. Die Gummiausscheidung ist dann im Mai beendigt. [Illustration: [Genehmigter Abdruck aus dem Dritten Bericht der Wellcome Untersuchungs-Laboratorien Khartum 1908.] Fig. 145. +Verlesen des Gummis+ in Omdurman.] Als der Khalif gefallen (1900), bereiste ~David~ aus wissenschaftlichem Interesse und um Gummi aufzukaufen Cordofan von Dongola aus. Er besuchte Bara, Khursi, Tajara im Osten von el Obeïd, Khor Hable, Schekkan und Kattero im Süden und Nehoud im Westen, wo die Bewohner ihre freie Zeit mit Gummisammeln ausfüllen. Sein Bericht ergänzt das Obige. Das Anschneiden im Dezember und Januar geschieht meist in den oberen Regionen des Stammes, die mindestens 4-5jährig sind. «Die eingeborenen Jungen und Mädchen bringen durch Anritzen der Rinde mit Lanzenklingen und Messern das Gewebe zu stärkerem Ausscheiden», doch wird in den von ~David~ (1900) besuchten Gegenden die Prozedur nur beiläufig vorgenommen. Die Bäume schwitzen vom Dezember bis Februar, also 2-5 Monate, nach der auf die Regenzeit folgenden Vegetationsaufflackerung bei Beginn der Trockenzeit Gummi aus. Niemals findet man an den Bäumen altes Gummi, nur diesjähriges. Je weiter ab der Baum vom Flusse liegt, um so besser ist das Gummi. Die Gummiausscheidungen sitzen meist an 10-20 cm dicken Ästen, spärlicher an dünnen Zweigen (~David~). Das Gummi ist anfangs weich und schmeckt dann recht erfrischend. Es erhärtet am Baume und erhält dann die charakteristischen Risse. Das Gummi von _A. Senegal_ bildet kleine runde oder wurmförmige Klümpchen von höchstens 3 cm Durchmesser. Als Instrument zum Ablösen des Gummis wurde in den von ~David~ besuchten Gegenden das breite Blatt der Lanze benutzt. ~David~ schlägt vor, Brunnen zu graben und Gummi als Abgabe für Benutzung derselben zu erheben, sowie Acacienhaine anzulegen. Die Geneinas müssen als +lichte+ Haine gehalten werden (18-100 Bäume per acre). Nach ~Beam~ lieferte eine 10 acre große Geneina bei Sher geila bei der ersten Sammlung 75-100 lbs, bei der zweiten und dritten 60, dann mehrmals 50 und am Ende der Saison 10 lbs. Die jährliche Produktion dieses Gartens betrug 12-15 Kantar (d. h. 1200-1500 lbs). Unzeitiger Regen, der aber in der heißen Zeit kaum vorkommt, schädigt die Ernte sehr. Ein niedriger Preisstand vertreibt die Lust zum Sammeln, alsdann geht die Produktion rasch zurück. Von März bis Mai kann Gummi gesammelt werden. In dieser Zeit, ja bis zum Juli, bringen die Sammler das Gummi in kleinen Portionen (5-7 lbs) den Händlern, die bei den Brunnen ihr Zelt aufgeschlagen haben. Die Chefs lassen ihre Sklaven und Weiber sammeln (~David~). Dies rohe Sammelprodukt enthält stets das Gummi mehrerer Acacien, doch scheidet schon der Händler beim Ankauf die dunklen Knollen von Seyal- und Kitrsorten aus. [Kitr (_A. stenocarpa_) bildet bis 150 g schwere braune Knollen.] Einige Sammler bringen das Gummi nach Mandjura, el Duem oder Fakischowa am weißen Nil, andere nach Dabbe am Nil in Dongola. Dort erwarten sie die arabischen Händler (gellabas). Die Nubier transportieren das Gummi in Ziegenfellsäcken. Die Händler bringen es dann in oben verengte Bastkörbe (llahâwi), die c. 125 kg fassen und auf Kamelen transportiert werden. [Im Durchschnitt ladet man 3-4 Cantar (à 100 Rottoli) auf ein Kamel (~Pallme~).] In Khartoum werden sie dann bis zu 200 kg aufgefüllt. In den Nilstationen wird das Gummi von der anglo-ägyptischen Regierung mit der Regaltaxe von 20% ad valorem belegt. (Schlechte Sorten zahlen weniger.) Während früher das Rohgummi des Sudan zunächst auf dem Rücken der Kamele, dann auf dem Nil über Berber, Dongola, Mokrat und Wadi Halfa nach Kairo und Alexandrien oder von Berber über Land nach Suakim bzw. von Kassala nach Massaua an das Rote Meer gebracht wurde, strömt es jetzt fast ganz in Khartoum resp. dem gegenüber gelegenen Omdurman (am Zusammenfluß des weißen und blauen Nil) zusammen. (Fig. 146.) Auch die Ghezireh-, Gedaref- und Talhasorten werden jetzt dorthin gebracht und während früher das Gummi unsortiert nach Europa kam und sich z. B. in Triest die Gummiauslese zu einem besonderen Beschäftigungszweige entwickelt hatte, wird jetzt viel Gummi schon in Omdurman vorläufig ausgelesen (Fig. 145), sortiert und bisweilen auch, wenn nötig, in der Sonne gebleicht -- in Omdurman befinden sich große Bleichanlagen. Immerhin ging noch 1908 die Hauptmenge des Gummi unsortiert nach dem Norden. In Hamburg hat sich seit Ende des XIX. Jahrh. die Triage entwickelt. [Illustration: [Genehmigter Abdruck aus dem Dritten Bericht der Wellcome Untersuchungs-Laboratorien Khartum 1908.] Fig. 146. +Gummihändler in Omdurman.+] Als beste Sorten gelten: Picket turkey gum und white sennaar gum. Die Haupthandelssorten werden im Sudan und Ägypten nach der Größe der Tränen unterschieden: bold, large, medium und granular, dann nach der Qualität: hard gum (in Triest: Khartumgummi), hart, glasig von hoher Viskosität, meist im bold und large Gummi prävalierend, bleached gum, d. h. in der Sonne gebleichtes Gummi, brüchig und heller infolge der zahlreichen Risse, von geringerer Viskosität. Glasige Sorten werden nicht gebleicht. Das Bleichen verändert die Farbe übrigens nur wenig; sorts ist unsortiertes Gummi. -- Die Viskosität hängt nicht von der Grösse der Körner ab (~Beam~). Das weniger wichtige +Talh gum+ wird von zwei Varietäten von _Acacia Seyal_ in Kassala am blauen Nil, bei Karkoj mamuria im südlichen Teile des Wad-el-abbas-mamuria und im Roserires Distrikt gesammelt, nämlich von der Talha hamra (= roter talh) und von der Talha beïda (= weißer talh) oder soffar, _A. Seyal_ var. _fistula_. Bei diesen handelt es sich um natürlich austretendes geringeres Gummi. ~Muriel~ berichtet von Insekten die diese Bäume bewohnen. Das Gummi von _A. vera_ ~Willd.~ (_Acacia arabica_), im Sudan santa (plur. sant oder sunt) genannt, ist weniger benutzt. Das Verwunden wird hier durch Herausschneiden von 2-3 Zoll großen Stücken aus der Rinde bewirkt und die Wunde geschlagen. Es vergehen für gewöhnlich 6 Monate bis die ganze Ernte des Sudangummi nach den ägyptischen Ausfuhrhäfen und dort zur Verschiffung gelangt (~Gehe~). Auch im +Somalilande+ werden die Acacien angeschnitten (~Vaughan~, ~Miles~) und unterhalb der Schnittwunde eine Bastbinde angelegt. Dies erfolgt Anfang März, die Ernte beginnt einen Monat später und dauert bis zum September (~Paulitschke~). In Abyssinien wurde auch noch 1905 Gummi ganz vernachlässigt, obwohl dort die gleichen Arten wie im Somalilande vorkommen. [Illustration: [Genehmigter Abdruck aus dem Dritten Berichte der Wellcome Untersuchungs-Laboratorien Khartum 1908.] Fig. 147. +Verladen des Nilgummis auf Leichter.+] =Lit.= ~C. E. Muriel~, Rep. on the forests of the Sudan. 1901. -- ~David~, Kordofang. Apoth. Zeit. 1901, Nr. 97. -- ~Beam~, in III Rep. Wellcome Research Laborat. Khartoum 1908. -- ~Hartmann~, Reise d. Freih. v. Barnim. Berlin 1863. -- ~Pallme~, Beschreib. von Cordofan (Jahresber. 1842, 339). -- ~Vaughan~, Jahresb. d. Pharm. 1852, 86. -- ~Miles~, Journ. R. geogr. Soc. 22 (1872) 64. -- ~Paulitschke~, Ethnographie Nordostafrikas. 1893. -- ~Haggenmacher~, Reise im Somaliland. Peterm. geogr. Mitt. 1876. Daß Cordofan- und Senegalgummi identisch sind und daher von derselben _Acacia_art stammen müssen, bemerkte zuerst ~Flückiger~ (1869), nachdem ~Cienkowsky~ (1848) festgestellt hatte, daß _A. Senegal_, die ~Guillemin~ und ~Perrottet~ (1824 bis 1829) am Senegal gefunden, auch im Stromgebiete des Nil vorkommt und ~Schweinfurth~ (1867) gezeigt hatte, daß das beste Cordofangummi in der Tat von _A. Senegal_ stammt. Aber wie auch beim Sudangummi einige Sorten +nicht+ von _A. Senegal_ stammen, so stammt auch nicht alles Senegalgummi von dieser Pflanze. Nur das gomme du bas du fleuve wird hiervon abgeleitet, das Galamgummi dagegen von anderen Arten (_A. vera_, _A. albida_, _A. Neboued_). [Illustration: Fig. 148. +Die Distrikte des Senegalgummi.+ [~Tschirch~ gez.]] Über die =Gewinnung des Senegalgummi= sind wir durch zahlreiche französische Forscher orientiert worden. _Acacia Senegal_ bildet im Senegalgebiete lichte Bestände. Sie geht bis an die Grenze der großen Wüste, in die Oasen derselben und nach Bornu (~Rohlfs~). Die bedeutendsten Gummiwälder (+Krabbas+) finden sich in Sahel im Gebiete des maurischen Stammes der Trarsa, (Fig. 148) der sich von der Küstenlandschaft am rechten Ufer des Senegal aufwärts bis Dagana und tief ins Innere erstreckt. Dann liegen Krabbas bei Alfatak zwischen dem See von Chomak (Kayak) und der Stadt Podor am Senegal und im Lande des Braknastammes. «Diese nördlich vom Strome liegenden Gehölze liefern das vorzüglichste Gummi in reichlichsten Mengen, doch sind eigentlich auch die den Franzosen unterworfenen linksuferigen Gebiete Walo (Ualo) und Cayor (15° n. B.), welche vom Negervolke der Dhioloffen (Djoloi) bewohnt sind, nur ein ungeheuerer Gummiwald» (~Flückiger~). Ferner sind zu nennen die Wälder von Dimar, Toro (am linken Ufer des Senegal), Chamana (am rechten), Diubuldu, Djeuleuss, Ndombo, Sanente, Bokol, Ndiaïen, Lérabé, Diambur (~Louvet~). Das Einsammeln betreiben im Unterlande (bas du fleuve) besonders die maurischen Nomadenstämme der Trarsa, Brakna und Duaisch am rechten Senegalufer bis Bakel (15° n. B.), dann die Negerstämme im Galam- oder Gadingalande und oberhalb Galam (Kadschaga, en haut du fleuve) am Falemefluß die Bewohner der Landschaften Bondu und Bambuk, sowie die der Fulah- und Guidimakhadistrikte. Die Gegenden am +Gambia+ (Rivières du Sud), am Cazamonce, Rio Grande, Rio Pongo und Mélacorée, welche Flüsse alle in den Ferlobergen entspringen, liefern +kein+ Acaciengummi (~Cotton~). Die Franzosen, die den ganzen senegalensischen Gummihandel in Händen haben, unterscheiden die +gommes du bas du fleuve+, vom Unterlauf des Senegal (Dagana, Podor, Wüste von Bunun, Gebiet der Brakna) und die +gommes du haut du fleuve+ oder Galam, vom Oberlauf (Galam, Bakel, Medine). Der Unterlauf des Senegal, das Unterland, reicht ungefähr bis Mafu, bis wohin der Strom auch bei niederem Wasserstande schiffbar ist. Das weiter aufwärts liegende Gebiet ist das Oberland. Für reichliche Gummiproduktion scheint ein vorhergehender regelmäßiger Regenfall von mindestens 40-50 cm im Juli, August und September und dann im Dezember und Januar (nach ~Guillemin~ und ~Duveyrier~ im Oktober und November) folgende anhaltende, starke und heiße Ostwinde (mbohio, harmattan) aus der Wüste unerläßlich («Wenn der Scirocco fehlt, kommt es auch nicht zu einer Gummibildung», ~Cotton~). Die letzteren trocknen die Rinde aus und bringen sie zum bersten (~Louvet~, ~Pergolotte~). Je stärker und anhaltender der Wind, um so stärker ist auch der Gummifluß (~Guillemin~). Einschnitte scheinen nirgends gemacht zu werden. Das Gummi tritt aus den natürlichen Wunden aus. +Nach dem im Sudan gemachten Erfahrungen+ (s. S. 417) +würde das Senegalgummi wesentlich verbessert werden, wenn man die Eingeborenen veranlassen könnte, Einschnitte zu machen+, denn das natürlich austretende Hashab wady ist ja auch in Cordofan minderwertig (s. oben). Die Pflanze blüht im Unterland im Januar bis März, im Oberland im November bis Februar. Das Gummi tritt vornehmlich zur Blütezeit des Baumes oder unmittelbar nachher aus. Der Gummifluß erreicht seinen Höhepunkt zwischen Mitte März und Mitte April kurz vor Eintritt der Belaubung. Die Einsammlung (+Traite+) erfolgt vom Dezember oder Januar an. Die Bäume liefern Gummi vom 6. bis 7. Jahre. Wenn sie 3-4 Jahre Gummi lieferten, tritt eine Ruhepause ein. Im Januar und Februar treten bisweilen Seewinde, die reichliche Taubildung oder gar Regen bedingen, ein. Sie erzeugen eine zweite Saftfülle und (im März) unter Umständen eine zweite geringere Sekretion, können aber auch die ganze Ernte schädigen oder vernichten. Auch ~Cotton~ berichtet (1893) von einer zweimaligen Einsammlung: die beste Sorte im April bis Juni (grande traite), eine geringwertige im Dezember bis Februar (petite traite). Die leicht erreichbaren Gummitropfen werden mit der Hand, die schwer zu erreichenden an den oberen Teilen des Stammes mit an Stangen befestigten scheren- oder löffelartigen Werkzeugen abgebrochen (~Guillemin~). Die Einsammlung soll besonders durch Sklaven oder durch Kriegsgefangene der nomadisierenden Stämme am rechten Ufer des Senegal erfolgen. Die Sammler ernähren sich, sobald ihnen die mitgenommenen Nahrungsmittel ausgehen, von dem Gummi. Der Ertrag wird oft durch Epidemien unter den Eingeborenen und durch Feuer vermindert. Das gesammelte, meist in ganze Ochsenhäute (zu 70-120 kg) verpackte Gummi wird auf Kamelen, Ochsen und Eseln nach den Stationen gebracht. Die Kamele tragen c. 300 kg, die Ochsen 120-150 kg, die Esel c. 80 kg. Das Gummi wird von den Franzosen an bestimmten, nach gegenseitigem Einverständnis gewählten Uferstellen (+Escales+) gegen Tauschartikel wie Getreide, Zucker, Reis, Quincaillerie, Waffen, Schmuck, Pulver, Gewebe und besonders einen blauen Baumwollstoff, genannt «la guinée», eingetauscht. Diese Escales oder Handelsstationen am Senegal, bei denen die Kamelkarawanen oft erst nach 50-60 tägigem Marsch eintreffen und auf denen man oft hunderte von Kamelen sieht, sind (Fig. 148) für Gomme du bas du fleuve: Dagana (167 km von der Küste), Podor (267 km), Salde (461 km) und Matam (601 km). Zwischen Matam und Bakel wird ein Gemisch von gutem Gummi mit Galam an den Fluß gebracht und bei Bakel (850 km) beginnt die Region des Galam. Sie reicht bis Medine (1150 km), wo der Fluß einen großen Wasserfall bildet, der der Schiffahrt eine Grenze setzt (~Cotton~ 1893). Das Gummi geht dann auf dem Senegal nach der Hafenstadt St. Louis an der Mündung des Senegal, wo jetzt eine vorläufige Sortierung durch die Société des Importateurs-Trieurs erfolgt (weniger nach Rufisque und Freetown), und von dort (in Jutesäcken à 80-90 kg) nach +Bordeaux+. Dort erfolgt die eigentliche Triage, die Sortierung. Es wird das viele Rindenreste enthaltende Trümmergummi (baquaques ou marrons rôtis), sowie etwa beigemengtes Harz (z. B. _Bdellium_) entfernt und der Rest durch die +Trieurs+ in die üblichen Handelsorten (s. unten S. 431) sortiert. Der Aufschwung des Senegalgummihandels datiert von der Einführung der Triage in Bordeaux. 1905 war die Produktion des Senegalgummi bedeutend zurückgegangen, da sie sich durch den niedrigen Preisstand des Sudangummi als nicht mehr lohnend erwieß. Auch hinderte die Besetzung der nördlichen Landstriche am rechten Ufer des Senegal, Podor und Kaëdi, durch französische Truppen die Eingeborenen von den Stämmen der Trarsa und Brakna an der Einsammlung und in manchen Gegenden wurde sie ganz aufgegeben. Das über Timbuctu ausgeführte deckte nicht einmal die Transportkosten (~Gehe~). =Lit.= ~Guillemin~, ~Perrottet~ et ~Richard~, Flor. Seneg. tent. I, 246. -- ~Duveyrier~, Les Touareg du Nord I (Paris 1864) 164. -- ~Soubeiran~, Des gommes du Sénégal. Journ. pharm. 1856, 53. -- ~Louvet~, Voy. d. 1. forêts de gommiers. Journ. pharm. 24 (1876), 405. -- ~Corre~, Journ. pharm. 24 (1876), 318. -- ~Flückiger~, Gummi u. Bdellium. Schweiz. Wochenschr. 1869. -- ~Berenger-Feraud~, Les peuplades de la Senegambie. 1879 (Einsammlung). -- ~Cotton~, La traite des gommes au Senegal. Journ. ph. 1893, 598. -- (D. Gummihandel am Senegal). Bull. Soc. ph. Sud-Ouest (Pharm. Post 1896). -- ~Gehe~, Handelsberichte. =Handelssorten.= Im Folgenden werden die Sorten in zwei getrennten Gruppen behandelt: Acaciengummi und Gummi von anderen Pflanzen. Das +Rohgummi+ ist ein Gemisch sehr verschiedener Qualitäten, stammt auch bisweilen von verschiedenen Stammpflanzen. Schon ~Ehrenberg~ bemerkt, daß ein und derselbe Baum oft durchscheinendes, mattes, helles und gefärbtes Gummi liefert. Wie beim _Traganth_ (s. d.) werden die verschiedenen Handelssorten durch Auslesen (triage, picking, scelta) des Rohgummi hergestellt. Diese Auslese geschah bei Sudangummi früher fast ausschließlich in Triest, jetzt zum Teil schon in Khartoum (Fig. 145), beim Senegalgummi besonders in Bordeaux (s. oben), bei den anderen Gummis in London, Hamburg u. and. Häfen. Prof. ~Morpurgo~-Triest schreibt mir (1911): «Die alten, patriarchalischen Geschäftsverbindungen der Triestiner mit den ägyptischen Händlern haben aufgehört, so daß jetzt die Vermittlung des Triester Marktes im Gummihandel nur noch wenig Bedeutung hat. Das Geschäft entwickelt sich entweder direkt zwischen den ägyptischen Häusern und den Konsumenten, oder die Ware wird von deutschen, französischen und speziell englischen Spekulanten eingekauft, und infolgedessen konzentriert sich das Geschäft mit ägyptischen Gummi immer mehr in Hamburg, Bordeaux und London. Auch nach New York wird direkt viel _Gummi arabicum_ exportiert. Was die Gummiauslese betrifft, so hat noch immer Triest dafür ein Renommee, es gibt nämlich noch eine Menge von Arbeiterinnen (Sessolote genannt), welche in der «Scelta della gomma» eine außerordentliche Praxis besitzen.» +Für pharmazeutische Zwecke eignen sich nur die besten Sorten Cordofan- und Senegalgummi.+ I. Acaciengummi. Acaciengummi kommt aus Afrika, Indien, Australien und Amerika. Doch liefern die einzelnen Arten ein sehr verschiedenwertiges Produkt. Unter den afrikanischen Sorten befinden sich die besten Gummis und das vorwiegend für pharmazeutische Zwecke brauchbare von _Acacia Senegal_. A. Afrikanisches Gummi. =a) Nilgummi= aus dem Stromgebiete des oberen Nil südlich vom 20° n. B. =1. Westliches Gummi, Cordofan- oder Sudangummi=, das +Hashab geneina G.+ (S. 417). Die beste Sorte: +Picked Turkey+ oder +Picked Cordofan+, diese nur von _Ac. Senegal_ [der Name turkey oder türkisches Gummi ist vielleicht aus torg-Gummi (gomme turique), einem alten Namen für Sudangummi korrumpiert, Torg soll ein Hafen bei Suez gewesen sein, ein Tor liegt auf der Sinaihalbinsel]. Cordofan liegt westlich vom weißen Nil zwischen dem 10. und 15.° n. B. (s. die Karte S. 429). Gewinnung oben (S. 417) beschrieben. +Bestes Gummi des Handels, zum pharmazeutischen Gebrauch geeignet+ (Gummi arabicum officinale), klar löslich, linksdrehend (S. 427), Lösung farb-, geruch- und geschmacklos. Weiches helles Gummi, wird am höchsten geschätzt, hartes, besonders gefärbtes weniger. Die besten Sorten sind fast farblos. Die rundlichen oder wurmförmigen Stücke haben selten mehr wie 2,5 cm Durchmesser, sie sind innen mehr oder weniger glasig, +außen stark rissig+ und trübe. Das Cordofangummi kam früher nach verschiedenen Stationen am Nil (vgl. S. 420), jetzt fast ganz nach Khartoum bzw. Omdurman am Zusammenfluß des weißen und blauen Nil und geht entweder auf dem Nil oder zum Teil auf Karawanenstraßen unter Umgehung der Nilkatarakte nach nördlicheren Nilstationen, wenig erst auf der Eisenbahn Khartoum–Kairo nach Alexandrien. Cordofangummi findet sich in Schilfmatten von pyramidenförmiger Gestalt, die außerdem mit Sackleinen umnäht sind und im Handel deshalb die Bezeichnung Ballen führen (~Weigel~ 1905). Man unterscheidet beim Sortieren (nicht in Cordofan) hartes (hard) und weiches (soft) Gummi. Das harte wird in der Färberei und Seidenfabrikation, das weiche in der Confiserie und Pharmazie benutzt. Die +Commercial grades+ des Kordofan +Gummi Hashab+ sind (nach ~Beam~ in Khartoum): Grossgum as it is gathered (Natural Turkey sorts), -- Sifted and cleaned sorts -- sifted and cleaned sorts. Medium -- partly cleaned and sifted sorts -- bleached gum Selected Bold, -- bleached gum. Selected Medium -- Half bleached gum, -- Selected sorts. Bold, -- Selected sorts, Large, -- Hard selected sorts, -- Granular sorts cleaned, -- Pickings, partly cleaned, -- Pickings, uncleaned, -- Siftings. Die ersten 8 geben helle Lösungen, die 3 folgenden gelbliche, die 3 letzten dunkle. In +Triest+ wird sortiert in: Chartum und Cordofan, das erstere hell, hart wie Senegal und eine viskose Lösung gebend, das zweite, das höher bezahlt wird, (bianca scelta, bionda scelta, rossa scelta) ist weicher, zeigt Risse und verliert in der Sonne die Transparenz, eine blasse Lösung gebend von geringerer Viskosität. Weitere Sorten sind: granis crivellato, bianca friabile naturale, mezzo friabile nat., dura nat. und granello naturale. Der +österreichische+ Drogenhandel unterscheidet daher: Natur. Cordofan weich; Natur. Khartoum hart; Natur. Granis grob; elect. albiss.; alb.; flav.; granello. Der +deutsche+ Großhandel unterscheidet (1910) (nach dem Preise geordnet): +Cordofan electum+: mittelstückig, +albissimum+ -- +blondweiß+, weich, groß- und mittelstückig -- +weiß+, mittel- und kleinstückig -- +blond+, großstückig -- +granello+, weiß-fein-grob -- +granis+, hochfein-fein-grob -- +naturell+. -- Kolli à 100 kg. Die beste Sorte (albissimum) ist etwa viermal teuerer als granis und naturell. ~Fromm~ fand bei Cordofangummi: -------------+-------+--------+----------+------------+ Lösung, |Schäumt| ccm |Viskosität|Säuregrad, | spezifisches | |Schleim | bei 20° |ccm Zehntel-| Gewicht 1,035| |aus 50 g| |Normal- | | | | |Natronlauge | =============+=======+========+==========+============+ hell u. klar | wenig | 15 | 2,21 | 2,5 | hell | mäßig | 20 | 2,0 | 2,4 | „ | „ | 15 | 2,17 | 4,45 | „ | wenig | 52 | 2,23 | 2,35 | sehr hell | mäßig | 11 | 1,59 | 2,3 | -------------+----------------+----------------+-------+-------------- Lösung, |Drehungsvermögen| Alkalische |Drehung|Klebefähigkeit spezifisches | α_{D} | Kupferlösung | % | Gewicht 1,035| | wird | | | | | | =============+================+================+=======+============== hell u. klar | -2°28′ | etwas reduziert| 2,29 | 14,1 hell | -2°23′ | kaum reduziert | 2,20 | 14,6 „ | -2°29′ | etwas „ | 2,10 | 15,2 „ | -2°47′ | kaum „ | 2,13 | 15,3 sehr hell | -2°36′ | deutlich „ | 2,10 | 11,3 ~Lemeland~ fand in Cordofang. 15% Wasser, 2,5% Asche, 35,7% Galaktane, 41,1% Pentosane. Es lieferte Arabinose. Die Analysen von ~Beam~ s. unten (S. 444), die von ~Martina~ S. 437. Weitere in Bullet. Imper. Instit. London. 1908. Das Sudangummi scheint im Altertum und Mittelalter unbekannt gewesen zu sein. Es ging früher meist auf der Karawanenstraße von Berber (am oberen Nil) nach Suakim am Roten Meer und nach Kairo (Berber und Suakim sind jetzt durch eine Eisenbahn verbunden). Auch damals schon war Khartoum ein wichtiger Gummiplatz. Dort strömten z. B. 1876 10000 cwts Gummi zusammen. Der blühende Sudangummihandel wurde aber zunächst gelähmt -- die Zufuhren von Triest z. B. sanken von 20637 Kolli (1880) auf 10383 Kolli (1883) --, dann fast ganz zerstört, als 1882 die sudanischen Wirren begannen und der Sudan 16 Jahre in Aufruhr sich befand, der jeden regulären Verkehr, namentlich auf der Route Khartoum–Kairo, unmöglich machte. ~Neufeld~, der 1887 nach Cordofan reiste, um Gummi zu erwerben, büßte sein Unternehmen mit zwölfjähriger Gefangenschaft. Bis zum September 1898 befand sich Khartoum, bis November 1899 ganz Cordofan in den Händen der Mahdi (Kalif ~Abdullahi~). Der Kalif hatte den Export von Gummi bei hohen Strafen verboten, da er es zur Verproviantierung seiner Truppen brauchte, auch der Abgang von Kamelen von Berber und Suakim nach Cordofan war untersagt. Gummi gelangte daher nur auf Schleichwegen aus dem Sudan nach Europa. 1888/89 war kein Cordofangummi im Handel. 1888-1890 erschien zunächst Ghezireh als Ersatz und nun machten die anderen Gummi produzierenden Länder (Indien, Australien, Kap, deutsche Kolonien) Anstrengungen, ihr Gummi einzuführen, was besonders dem Senegalgummi überraschend schnell gelang, so daß es bald den Platz des Cordofangummi einnahm. 1890 wurde der Sudanhandel zwar wieder freigegeben, aber es erschien auch 1891 noch kein Gummi und 1892 nur schlechtes sog. Chartumi. Die Verhältnisse blieben bis 1899 schwierig. Der 1896 einsetzende Feldzug der Engländer, der ~Gordon~ das Leben kostete, endete mit dem Falle des Mahdi (1899) und nun kamen allmählich die großen aufgespeicherten, zum Teil vergrabenen Gummivorräte in den Handel. Während Alexandrien, das nun Gummiexporthafen wurde, 1898 nur 257149 lbs Gummi (jeder Provenienz) ausführte, betrug der Export von Cordofangummi 1899 schon: 4160100, 1900: 6042050, 1901: 16937550, 1902: 21791000, 1903: 18939747, 1908: 17 Mill. lbs und erreichte 1909 die enorme Höhe von 26 Mill. lbs, trotzdem seit 1. September 1904 laut Verfügung des Generalgouverneurs des Sudan der Ausfuhrzoll 20% des Wertes beträgt. Aber die Handelsverhältnisse haben sich verschoben. Von der Ausfuhr von +Cordofangummi+ 1902 gingen nunmehr nach Hamburg c. 1 Mill. kg, nach Frankreich c. 3 Mill. kg, nach England c. 1½ Mill. kg, nach New York 1¼ Mill. kg, +nach Triest aber nur+ 787050 kg. Deutschland, das sich in der kritischen Zeit mit Senegalgummi beholfen, importierte 1902 Cordofangummi c. 2 Mill. kg, ostindisches Gummi c. 1⅓ Mill. und anderes Gummi c. 1¼ Mill. kg. Seit 1906 verdrängt nun wieder das Cordofangummi, das heute ein beliebtes Spekulationsobjekt geworden ist, das Senegalgummi. Ein Teil des arabischen Gummi geht auch nach Bombay und kommt von dort mit den indischen Gummis nach Europa (s. unten). =2. Östliches Gummi.= Unter diesem Namen werden von mir hier G. verschiedener Gegenden östlich vom weißen Nil zusammengefaßt. =Sennaargummi.= Die Landschaft Sennaar (Sennâr) liegt in dem Dreieck zwischen dem weißen Nil (Bahr el Abjad) und blauen Nil (Bahr el asrak), südlich vom Zusammenfluß beider (s. die Karte S. 429). Die +Sennaarg.+ gelangen jetzt gleichfalls nach Khartoum, früher vielfach über Land via Berber und Kassala nach Suakim und Massaua, besonders von Ghezireh und Gedaref (östlich von Khartoum, südwestlich von Kassala, 14° n. B.) und von Distrikten zwischen Sennaar und dem roten Meer. Obwohl sie im Aussehn dem Cordofanischen G. gleichen, müssen sie von anderen Arten stammen, denn sie drehen meist rechts. Die linksdrehenden stammen wohl von _A. Senegal_. Gute Sorten heißen meist Gedaref (auch hashab geneina gedaref). Jedenfalls ein Teil des gelblichen =Gedarefgummi= kommt von _A. fistula_, einem Baume, der z. B. im Lande Schilluk (10° n. Br.) ganz außerordentlich verbreitet ist und dort so kolossale Gummimengen produziert, daß ein Einzelner leicht 1 cwt täglich sammeln könnte. _A. fistula_ +und+ _A. stenocarpa_ finden sich am linken Ufer des Atbara bei Gedaref und weiter südlich im Distrikt Kalabat und im oberen Stromgebiete des blauen Nil (~Schweinfurth~ 1874). In +Faschoda+ wird das G. von _A. verugera_ ~Schwf.~ gesammelt. Gedaref gum Hashab (1908) sifted and cleaned sorts enthielt 8,52% Wasser und 1,12 Unlösliches. Die Acidität war = 2,95. Die Viskosität betrug 34° Retardation entsprechend einer 60% Rohrzuckerlösung. Die Lösung war braun (~Beam~). Auch das hierher gehörige =Ghezirehgummi=, das auch heute noch (1911) im Handel ist und gute Preise erzielt -- es bildet relativ kleine, fast glashelle, hell-gelblich-weiße Körner -- muß von einer anderen _Acacia_ als _A. Senegal_ abstammen. Sein ganz anderes Drehungsvermögen deutet darauf (~Fromm~ fand es zu +3°). In den Distrikten südlich von Djesirat fand ~David~ _A. Seyal_, _A. spirocarpa_ und _stenocarpa_. In Khartoum gilt «gezira» jetzt als Sekundasorte, da sein Schleim weniger konsistent ist als der des Cordofang. Gezirah (Ghezireh, Gezira, Jerise, Djesire, Djesirat, Dschesire) liegt gegenüber der Mündung des Atbara, 17-18° n. Br., also ziemlich weit nördlich. Etwas Ghezirehg. des Handels stammt aber auch von der Hochsteppe der Bischari zwischen Nil und rotem Meer. ~Lemeland~ fand in vollständig löslichem Gezirehg., das α_{D} +45° drehte, 9% Wasser, 4,1% Asche, 27,8% Galaktane, 47,6% Pentosane. Das G. lieferte Arabinose. Als während des Mahdiaufstandes die Ausfuhr von Cordofang. ganz sistiert war, gelangte Ghezirehg. auf dem Landwege zum roten Meer und bildete z. B. 1888/89 die Ersatzsorte für das Cordofang. Jetzt steht es im Preise den schlechteren Cordofansorten gleich. Das samagh savakumi ist eine schlechte Sorte des Ghesirehg. Das minderwertige G. aus der Landschaft zwischen Sennaar und dem roten Meer wird von _A. fistula_ und _stenocarpa_ abgeleitet (~Heuglin~). In Triest wurde 1911 von Gheziri unterschieden: in sorte, granello und granis. [Illustration: Fig. 149. +Die Distrikte des Nilgummi.+ [~Tschirch~ gez.]] =Talhgummi= (Talha, Talch, Talka) von _A. Seyal_ (oder _A. stenocarpa_ und _fistula_ abgeleitet, vgl. S. 407), geht zum Teil nach Suakim, bildet kleine, zerbrechliche, verschieden von weiß bis rotbraun gefärbte Stücke oder ein Pulver und hat eine hohe Säurezahl, ja ist manchmal sogar relativ stark sauer. Die Lösung ist gefärbt und wird an Luft und Licht dunkler. Angeschnittene Bäume liefern ein besseres Gummi, dessen Lösung nicht nachdunkelt, wie Versuche in Khartoum zeigten. Talhg. gilt in Khartoum, wohin es jetzt ebenfalls gebracht wird, als Tertiasorte. Bei Talhg. von Kassala schwankte die Acidität zwischen 2,75 und 6,29, die Asche zwischen 2,42 und 4,42%, die Viskosität (im Torsionsviskosimeter) zwischen 29,2° und 43° Retardation entsprechend einer 61,3-63,8% Rohrzuckerlösung. Talh-Gum sorts enthielt 7,77% Wasser, 2,87% Unlösliches. Acidität = 4,50, Viskosität: 34° Retardation entsprechend einer 62,2% Rohrzuckerlösung (~Beam~). Das wenig benutzte =Santa-= oder =Sunt-Gummi= wird von _A. arabica_ in Sennaar gesammelt. Es ist von guter Beschaffenheit und löst sich zu einem hellen geschmacklosen Schleim (~Beam~). Ein Gummi von _Acacia arabica_ von Sennaar enthielt 11,65% Wasser, 2,02% Asche, die Acidität betrug 2,09. Ferner fanden sich 1908 in Khartoum: Das =Kuk-Gummi= von _Acacia verugea_ ~Schwfth.~, dunkler, löst sich nicht ganz. Es bleibt eine Gelatine zurück. Und das Gummi von _Acacia Suma_ ~Kurz~ (_A. campylacantha_ ~Hochst.~), das =Kakamut= oder =Sinein= der Eingeborenen, ist dunkler, aber vollständig löslich. Die Lösung schmeckt widerlich, etwas nach Terpentin. =Kadab= heißt in Khartoum ein schmutziges wertloses G. (~Muriel~). Auch das als Mittelsorte geltende, aber oft recht schlechte =Suakimgummi= (Savakim, Savakumi, Sauakim, Hafen am Roten Meer) zum Teil von der Hochebene von Taka und angeblich von _A. stenocarpa_ und _fistula_, gesammelt, ist hierher zu ziehen. Es ist sehr brüchig, im Handel fast pulverig, hell oder gefärbt, oft rötlich, bisweilen rissig. Das Muster meiner Sammlung ist sehr unrein. Von allen Acacieng. fand ~Wiesner~ das von _A. fistula_ am schlechtesten. Es bildet meist ziemlich stark gefärbte Körner und dreht rechts. In Ägypten heißt das schlechteste G. Samagh Savakumi (= G. von Suakim, ~Flückiger~). Es ist nicht regelmäßig als Sorte im Handel und wird vielfach mit dem Talkag. (s. oben) zusammengeworfen. =Somaligummi.= Im Somalilande wird ziemlich viel und gutes G. gesammelt, z. B. in der Gegend von Mieh im Innern (~Revoil~), im Jahre 2-3000 t (~Paulitschke~), besonders von _A. abyssinica_ und _glaucophylla_. Es geht wohl hauptsächlich nach Berbera, das 1904 viel G. exportierte und Bender Felek, und von dort nach Aden oder Dschidda (Gedda) und hierher gehört also wohl ein Teil des Adengummi und des Geddag. (s. unten). Das Rohg. wird von den Somalis sortiert (safi = Auslese). Gute Sorten sind wordi (= feinkörnig) und adad (= grobkörnig), dunklere heißen djerjun, schlechte lerler (~Haggenmacher~). Ich habe in meiner Sammlung zwei Muster Somalig., das eine, +Karamg.+ (Karam ist ein Hafen in der Nähe von Berbera), bildet große hellgelbe Knollen, die nicht ganz löslich sind, das andere, +Jairieg+., ist ein buntes Gemisch farbloser, gelber und dunkelbrauner, rundlicher Stücke. Das Somaligummi ist wohl das G., das die Ägypter vor 4000 Jahren aus dem Lande +Punt+ holten. Das G. des in Ägypten heimischen Sontbaumes (s. oben S. 407) scheinen sie weniger benutzt zu haben. Auch das =erythräische Gummi=, das unter diesem Namen kaum noch nach Europa kommt, von der erythräischen Kolonie stammt und südlich von Arkiko (bei Massaua) längs der Samharaküste gesammelt wird (die ganze Samharaküste ist voller Gummibäume, ~Munziger~), geht oft nach Dschidda und kommt dann als Geddag. (s. d.) zu uns. Es stammt von _A. Senegal_ und _A. Seyal_ (~Schweinfurth~). In Triest wurde 1911 eine Sorte als =Massauagummi= unterschieden. =Adengummi.= Nach Aden gelangt außer Somalig. auch Zeylag. Unter dem Namen Adeng. geht wohl vorwiegend ersteres. Ein Teil stammt aus Arabien. Das +Adeng.+ meiner Sammlung besteht aus ungewöhnlich großen, bis 5,5 cm breiten, innen glasigen, außen grobrissigen Stücken, die oft im Innern eine Höhlung haben. +Adeng.+ lieferte 3,7% Asche und enthielt nur 3,92% Unlösliches. Aden exportierte 1905/06: c. 10000 cwts G., das meiste nach Indien. Das nach dem Hafen von Mekka Djidda (Djedda) oder Gedda (Jidda, Jedda) genannte =Geddagummi=, das bisweilen auch nach der Landschaft Hedschas (Hidschaz), in der Mekka und Djidda liegt, +Hedschas-Gummi+ (samagh hidschazi oder hejazi) benannt wird, findet sich noch jetzt bisweilen im Handel. Es war wohl das Gummi des Mittelalters. Es ist sehr verschiedenen Ursprungs. Nach ~Munzinger~ stammt die Hauptmenge von der Samharaküste zwischen Bab el Mandeb und Massaua, und gelangt über Massaua (und Suakim) nach Djidda. Djidda ist also nur Durchgangshafen. Dann kommt auch aus Berbera (Somali) G. nach Djidda, so daß sich für Geddag. auch der Name =berberisches= findet. Neben dem Namen Geddag. finden sich auch andere Namen für arabisches G., wie Mekkag., El wisch-Gummi u. and. In Triest wurde 1911 Gedda eletta, bianca, rosa und rossa unterschieden. Alle sind großstückig. Im Geddag. fand ~O’Sullivan~ eine andere Gummisäure, wie im Cordofang., die Geddinsäure (s. unten S. 445). Es stammt also jedenfalls nicht von _A. Senegal_. Die Herkunft des neuerdings aus dem Innern von =Arabien=, wo verschiedene Acacien wachsen, nach Makalla, Aden, Djidda oder über Land nach Damaskus gebrachten Gummis ist unbekannt, Südarabien sammelt wenig (~Hanbury~). Doch traf ~Glaser~ 1887 im Innern von Yemen vorzügliches G. Die in Triest 1911 gehandelten, früher über Gedda, jetzt über Aden exportierten Sorten =Litty=, =Sarki= (Schiarky), =Fachmi= und =Mecca Fachmi= stammen aus Arabien (~Morpurgo~). Auch im Altertum scheint Arabien Gummi erzeugt zu haben (~Diodorus Siculus~, zur Zeit des Kaisers ~Augustus~), oder doch wenigstens Gummi über arabische Häfen ins Mittelmeergebiet gekommen zu sein. Der uralte Name _Gummi arabicum_ deutet aber keineswegs mit Sicherheit darauf, daß Arabien das +Produktionsland+ war. =b) Senegalgummi=. Das Senegalgummi des Unterlandes (bas du fleuve), d. h. das nach dem Unterlauf des Senegal gebrachte Gummi, stammt von _A. Senegal_, das des Oberlandes auch von anderen Arten (_A. Noboued_, _A. vera_, _A. albida_, _A. Adansonii_, _A. Seyal_ u. and.). Die Gewinnung des Senegalgummi ist oben (S. 423), die chemischen Eigenschaften S. 437 geschildert. Hauptausfuhrhafen ist St. Louis an der Senegalmündung. Das meiste Gummi geht nach Bordeaux, wo die zweite Sortierung (triage) durch die trieurs erfolgt (s. oben). Der Gummihandel am Senegal ist Monopol französischer Firmen. Auch die Royal-Niger-Compagnie exportiert Gummi. (1906: 6080 cwts) Die Verpackung geschieht in Säcken aus Ochsenhaut à 70-120 kg. Das Senegalgummi nimmt nach dem von Jahr zu Jahr steigenden Export an Erdnüssen (_Arachis hypogaea_) unter den Produkten Senegambiens meist den ersten Rang ein. Es geht frei nach Frankreich. Auch beim Senegalgummi unterscheidet man harte (dures) und weiche (molles, friables) Sorten. +Rohes Senegalgummi+ wird in drei Hauptklassen eingeteilt: 1. +Hartgummi.+ +Gomme du bas du fleuve+ (Pudor). Besteht aus ziemlich großen, runden, wurmförmigen oder unregelmäßig geformten Tränen, variierend von fast farblos bis dunkelgelb. 2. +Gomme du haut du fleuve+ (Galam). Kommt vom oberen Senegal. Die Tränen sind kleiner als die von «Bas du fleuve» und im ganzen dunkler. Der Ausdruck +Galam+ wird übrigens sehr verschieden benutzt, meist bezeichnet er schlechtere Qualitäten und nicht nur solche vom Oberland. Galam (oder Kadschaga) ist der Name der Landschaft bei Bakel (s. die Karte S. 423) am linken Ufer des Senegal. Beide, besonders aber 2., werden oft mit glasigen Stücken von rötlicher Farbe und bitterem Geschmack vermischt gefunden, die wohl von dem Gummi von _A. arabica_ und anderen Acacienarten herrühren. 3. +Gomme friable+ (Salabreda). Dies ist besonders das Produkt von _A. albida_ (weißer Baum = Cedra beida oder korrumpiert Sadra-beida, Sadra-brada und Sala-breda). Das Gummi ähnelt rohem Salz. Es ist sehr bröcklich und seine Lösung hat weniger Viskosität als die der oben erwähnten Gummis. Gewöhnlich besteht es aus kleinen Fragmenten oder wurmförmigen Tränen. Letztere sind oft fast farblos, aber die Fragmente sind gewöhnlich dunkel gefärbt. Die Varietät korrespondiert in der Qualität mit dem Talhgummi vom Sudan. 4. Ein Gummi vom mittleren Laufe des Senegal trägt bisweilen den Namen Gomme Mediné. Nach der in Bordeaux vorgenommenen Sortierung unterscheidet man: 1. +Gomme blanche.+ Bildet farblose bis schwach gefärbte, aber nie so schön weiße Stücke wie Cordofang., von sehr verschiedener Größe (1-4 cm). Die meisten derselben haben 1 cm im Durchmesser und sind kugelig bis ellipsoidisch geformt, innen glasig und oft hohl und weisen bisweilen eine netzförmig von Rißlinien durchzogene Oberfläche auf, welche, mit der Lupe betrachtet, eine feine Parallelstreifung erkennen läßt. Die einzelnen Stücke haben auch im Gegensatz zu den besten Sorten des arabischen Gummis geringen Glanz, was die Unterscheidung von letzterem leicht macht. Eine zweite, dem Gomme blanche fast in allen erwähnten Eigenschaften analoge Sorte bildet das: 2. +Gomme petite blanche.+ Die einzelnen Stücke sind viel kleiner und haben nur einen Durchmesser von 0,5-1,5 cm, wurmförmige, sind häufig. 3. +Gomme blonde.+ Weingelbe Stücke mit einem Stich ins Rötliche, in der Größe jenen der Sorte Gomme blanche ähnlich, die Oberfläche ist rauh; mit der Lupe betrachtet zeigen sich viele Runzeln und Streifen, hingegen wenige Sprunglinien. Innen glasig, bernsteinartig. 4. +Gomme petite blonde.+ Diese Sorte hat kleinere Körner als die frühere, ist aber in bezug auf die Eigenschaften mit derselben identisch. Der Durchmesser der einzelnen Körner ist 0,5-1,5 cm. 5. +Gomme vermicellée blanche.+ Weißlich bis blaßgelb gefärbte, stalaktiten- oder wurmförmige Stücke. 6. +Gomme forte à fabrique+ ist eine mit dem Gomme blonde im allgemeinen übereinstimmende Sorte, welche jedoch dunkler gefärbt ist und aus ungleichen Stücken besteht, daher ebenso wie die folgenden Sorten den bereits erwähnten als minderwertig nachsteht. 7. +Gomme boules+ wird aus Stücken bis zur Größe einer Orange gebildet, ist blaßgelb gefärbt und dürfte wohl künstlich geformt sein (für Reklameauslagen in Schaufenstern in Frankreich benutzt). 8. +Galam en sorte+ besteht aus sehr ungleich, von hellgelblich bis rotbraun gefärbten Stücken von sehr verschiedener Größe; es finden sich neben runden auch wurmförmige Körner vor, sowie öfters Rindenstückchen, welche die Ware verunreinigen. 9. +Gomme du bas du fleuve en sorte.+ Weingelb oder dunkler gefärbte, dicke, wurmförmige, gestreifte oder gerunzelte Stücke, meist 1-3 cm lang, 0,5-0,8 cm stark. Oft ist die Oberfläche mit dünnen Rindenstückchen bedeckt. 10. +Salabréda en sorte+ (Sadrabeida). Dünne, ast- bis wurmförmige Körner, welche eine weiße bis gelbe Farbe zeigen und von kleinen, sehr verschieden gefärbten Bruchstücken und Rindenteilchen durchsetzt sind. Die Sorte ist sehr ungleich und stammt vielleicht von verschiedenen Stammpflanzen. 11. +Baquaques et marons.+ Diese Sorte ist von sehr geringem Werte, stark verunreinigt; es finden sich Rindenstückchen und andere nicht gummöse Substanzen vor, so daß der Gehalt an Gummi gewöhnlich 73% nicht überschreitet. Die Lösungen zeigen geringe Klebkraft und die einzelnen Stücke sind ungemein verschieden gefärbt (licht weingelb bis rötlichbraun, graulich, sogar schwarz), oft vakuolig. Der Geschmack der Lösung ist ein rein süßlicher und erinnert an Karamel. Die sogenannte Bruchware wird ebenfalls sortiert, und kommen im französischen Handel folgende Sorten vor: 12. +Gomme gros grabeaux.+ Körner bis 8 mm Durchmesser, auch astförmige Stückchen, welche etwas länger sind. 13. +Gomme moyen grabeaux.+ Körner bis 8 mm Durchmesser, kommt im österreichischen Handel unter dem Namen Granisgummi vor. 14. +Gomme menus grabeaux.+ Körner 2-3 mm im Durchmesser; enthält keine wurmförmigen Stücke. 15. +Gomme poussière grabeaux.+ Diese Sorte stellt ein ziemlich homogenes grau-gelbliches Pulver dar, dessen Körner weniger als 1 mm Durchmesser zeigen. Oft findet man auch die Namen: Gomme grosse blanche -- Grosse blonde, -- Petite blanche -- Petite blonde -- Blonde larmeuse -- Damienne blonde ou rouge -- En sorte en bas du fleuve -- Galam -- Salabréda, Sadrabeida (unrein) -- Baquaques ou marrons rôtis = Trümmergummi (mit Bastfasern und Rindenstücken verunreinigte verklebte Massen [G. lignirode]) -- Außer Gros, Moyens und Menus grabeaux auch Fabrique grabeaux -- Poussière de gomme. -- +Gomme pelliculée+ (~Guibourt~) ist ein Senegalg., dessen Stücke an einer Stelle von einem gelblichen undurchsichtigen Häutchen bedeckt sind. Der deutsche Großhandel unterscheidet: +Senegal elect.+, weiß, mittelgroß -- +naturblond+, großstückig, hell -- Granen und Granellen +hell+ -- +naturell+. Der österreichische Handel: Grosse blanche, Grosse rouge und Granello. Auch die besten Sorten erreichen nicht die Preise der besten Sorten Cordofan. ~Fromm~ fand bei Senegalgummi: -------------+-------+-----------+----------+------------+ Lösung vom |Schäumt|ccm Schleim|Viskosität|Säuregrad, | spezifischen | |aus 50 g |bei 20° |ccm Zehntel-| Gewicht 1,035| | | |Normal- | | | | |Natronlauge | =============+=======+===========+==========+============+ hell | mäßig | 3 | 1,94 | 2,1 | gelblich | „ | 9 | 2,0 | 2,1 | gelblich | „ | 10 | 1,64 | 2,0 | hell | stark | 10 | 1,7 | 1,95 | gelblich | mäßig | 12 | 2,0 | 1,95 | sehr hell | „ | 30 | 2,13 | 2,4 | sehr hell | „ | 35 | 2,41 | 2,3 | hell | stark | 8 | 1,87 | 2,15 | hell | „ | 10 | 1,69 | 2,1 | gelblich | mäßig | 35 | 1,9 | 2,0 | hellbraun | „ | 18 | 1,58 | 2,25 | -------------+----------------+---------------+----------+------------ Lösung vom |Drehungsvermögen| Alkalische |% Dehnung|Klebfähigkeit spezifischen | α_D | Kupferlösung | | Gewicht 1,035| | wird | | | | | | =============+================+===============+=========+============= hell | -2°26′ |etwas reduziert| 2,16 | 13,0 gelblich | -2°20′ | „ „ | 2,06 | 14,1 gelblich | -1°25′ | „ „ | 1,99 | 12,6 hell | -1°19′ | „ „ | 1,93 | 12,9 gelblich | -2°16′ | „ „ | 2,23 | 14,0 sehr hell | -2°28′ | „ „ | 2,17 | 14,4 sehr hell | -2°47′ | kaum „ | 2,13 | 14,8 hell | -2°51′ | deutlich „ | 2,19 | 13,0 hell | -1°44′ | etwas „ | 2,12 | 11,2 gelblich | -2°27′ | „ „ | 2,15 | 12,7 hellbraun | c. 1° | kaum „ | 1,99 | 11,0 Möglicherweise brachten schon 1365 Kaufleute von Dieppe und Rouen, die «Pfeffer» holten, Gummi von der westafrikanischen Küste, St. Louis wurde schon zu dieser Zeit gegründet, aber erst 1449 tritt Gummi wirklich als Handelsartikel der portugiesischen Insel Arguim am Cap Blanco auf (~Kunstmann~), welche Insel von 1638 an Stützpunkt des Gummihandels der Holländer wurde, die die Insel eroberten, aber 1678 an die Franzosen, die schon vor 1664 sich am Senegal festgesetzt hatten, abtreten mußten, von welcher Zeit an die Franzosen mit geringen Unterbrechungen Herren des Gummihandels wurden. 1555 erwähnt ~Sebastian Münster~ Senegalgummi in seiner Cosmographie. Der Gummihandel war Sache der Compagnie des Indes occidentales (I, S. 919), dann seit 1674 der Compagnie d’Afrique u. and. Gesellschaften. 1758 bis 1779 war England im Besitze der Kolonie, die aber 1785 wieder an die Franzosen überging. Damals wurde eine Compagnie de la Gomme gegründet, der 1786 die Comp. du Sénégal folgte (~Durand~). Bereits 1760 erschienen 18000 cwt Senegalgummi am Markt. Der Aufschwung datiert von der Einführung der Triage in Bordeaux durch ~A. Doris~ père 1832. 1865 erreichte die Ausfuhr von Senegalgummi den Wert von fast 4½ Mill. frs., der Export betrug 2,4 Mill. kg, 1880: 3013624 kg. 1884 wurde, als wegen der Erfolge des Mahdi im Sudan das Cordofangummi ausblieb, das Senegal-Konsortium gegründet. 1893 betrug die Produktion bereits c. 8 Mill. kg (~Cotton~). 1894 betrug die Ernte: 40000 Ballen, 1895: Bas du fleuve 35000 Ballen, Galam 10000 Ballen. Das Senegalgummi war das herrschende Gummi des Weltmarktes geworden. 1896 importierte Bordeaux 38600 Säcke. 1897 betrug die Ernte: 29000 Ballen Bas du fleuve und 21000 Ballen Galam, 1898: 20000 Ballen Bas du fleuve und 18 000 Ballen Galam. 1902 wurden 3 Mill. kg exportiert (20000 Ballen Bas du fleuve, 12000 Ballen Galam). Die Preise für Senegal gingen aber stark zurück, seit Cordofan in bester Qualität wieder erschien (1902) und die Einsammlung wurde, da weniger lohnend, eingeschränkt. 1903 erscheinen nur 6000 Ballen Galam im Handel und 1904 exportierte +St. Louis+ nur 2370031 kg, davon 1842610 kg Hartgummi von den nördlichen Distrikten des Senegal, 484095 kg vom Sudan und Senegambien, 37396 kg Bruch und 5930 kg Staub; 1905: 49482 cwts. 1905 betrug der Export: 49482 cwts. +Marseille+ empfing 1908 noch 6522 dz Senegalg., 1909 nur 4565, 1910 nur 2250 dz gegenüber 10094, 12204 und 10781 G. anderer Provenienz (bes. Nilgummi). Neben Bordeaux kommen auch Hâvre und Paris als Stapelplätze in Betracht. Das Senegalgummi scheint allmählich seine Bedeutung zu verlieren. Die Produktion schwankt jetzt zwischen 2 und 4 Mill. kg. Es findet in der Hauptsache nur technische Verwendung (~Caesar-Loretz~). =c. Maroccogummi= (Mogador, Barbarisches, braunes Barbary) aus Mogador, Saffi und Mazagan verschifft, wird von _A. gummifera_ ~Willd.~ (nach ~Jackson~ = altalch) abgeleitet (~Hooker~), spielt jetzt aber keine große Rolle mehr. Marocco verschiffte nach England 1905: 1731, 1906: 2073 cwts. Von dem Maroccogummi wurde (1891) die bessere Sorte als Mogador, die schlechtere als Amrad unterschieden (~Maben~). Es kam früher besonders aus den Provinzen Sûs und Abda, weniger aus Shedma und Duguella, jetzt auch aus Fessan. Es ist nicht immer ganz in Wasser löslich (~Pereira~, ~Guibourt~). Neben diesem fanden sich auch unter dem Namen weißer Mogador helle, vollkommen wasserlösliche Tränen, die wohl aus dem Sudan und von _A. Senegal_ stammten. _A. gummifera_ wächst in den Provinzen Blad Hamar, Rahamma und Sûs. 1888, zur Zeit der Gumminot, lieferte Mogador bessere Sorten. Bisweilen bilden Marocco, Mogador und Brown Barbary drei unterschiedene Sorten. Maroccogummi dreht rechts und soll von allen Gummis die geringste Menge Schleimsäure liefern (doch fand ~Martina~ 1894 c. 18%, vgl. S. 437). Vom Sudan wurde 1878 auch das Gummi von _A. arabica_ nach Marocco gebracht (~Hooker~). Es löst sich. gut zu einer hellen geschmacklosen Lösung. =d. Tunisgummi= ist meist besser als das Maroccogummi. Es stammt von _A. horrida_ (~Doumet-Adanson~). Die Ausfuhr ist gering. Die Ausfuhr von =Tripolis= erreichte 1890-1900 nur den Wert von £ 150-250 pro Jahr. =e. Capgummi= und =Orange River Gummi= wird besonders von der im Hererolande weit verbreiteten _Ac. horrida_ ~Willd.~ (Dornbaum) gesammelt, dann auch von _A. Karoo_ ~Hayne~ (Karoobaum), die wohl mit _A. capensis_ ~Burchell~ identisch oder nahe verwandt ist (dies Gummi stammt vorwiegend vom Orangefluß) und von _A. Giraffae_, die in Groß-Namaqua und Damaraland häufig ist. Capgummi kommt auch als hartes und weiches Gummi im Handel vor. Sein Aufschwung datiert von der Zeit der Gummimisere. Es ist gefärbt und viele Stücke lösen sich nicht klar in Wasser zu einem dicken Schleim (~Vée~). =f. Gummi aus den deutsch-afrikanischen Kolonien.= Neuerdings -- besonders als die Gumminot Ende des XIX. Jahrh. am höchsten gestiegen war -- hat man versucht, Gummi sowohl aus Deutsch-Ostafrika (Usambara), wie aus Deutsch-Südwestafrika (Angra Pequena, Namaqualand) in den Handel zu bringen. Deutsch-Ostafrika liefert noch wenig (kaum für M. 1000 jährlich), Deutsch-Südwestafrika aber (nach dem Cap und direkt) viel (für M. 10000 und mehr. 1897: 5000 kg, ~Worlée~). Das Gummi der deutschen Kolonien ist von sehr ungleichem Werte. Zum Teil mag dies darauf zurück zu führen sein, daß man die guten Gummilieferanten noch nicht kennt oder doch von den schlechten nicht genügend unterscheidet, zum Teil darauf, daß die Auslese (Triage) noch in den Kinderschuhen steckt. -- Man findet oft in dem gleichen Handelsmuster helle und dunkle, lösliche und unlösliche Stücke. Für pharmazeutische Zwecke ist es unverwendbar. _A. horrida_ vermag jedenfalls ein gutes Gummi zu liefern, das von _A. usambarensis_ und _Giraffae_ scheint jedoch minderwertig zu sein. In =Deutsch-Ostafrika= sind besonders _A. stenocarpa_, _A. usambarensis_ und _A. spirocarpa_, vielleicht auch _A. arabica_, _A. Seyal_, _A. verugera_, _A. Stuhlmanni_, _A. Kirkii_ gummiliefernd. Die gummiliefernden Acacien Ostafrikas hat ~Taubert~ zusammengestellt (in ~Engler~, Pflanzenwelt Ostafrikas und Notizbl. d. Bot. Gart. Berlin Nr. 14, 1898). Das Gummi aus =Deutsch-Südwestafrika= ist, da die gleiche Stammpflanze und zum Teil wohl auch die gleichen Provenienzen in Betracht kommen, mit einem Teile des Capgummi identisch. Jedenfalls stammt der größte Teil des südwestafrikanischen Gummi von _A. horrida_ (~Warburg~, ~Marloth~) und nur ein kleiner Teil von _A. erioloba_, _A. Giraffae_, _A. albida_ und _A. dulcis_. ~Gessert~ empfahl daher die Anpflanzung der _A. horrida_, des Dornbaums. +Die Vegetationsbedingungen in Deutsch-Südwestafrika, das sonst fast nichts hervorbringt, eignen sich in der Tat ganz außerordentlich für die Kultur von Gummiacacien und außer+ _A. horrida_ +möchte ich auch+ _A. Senegal_ +und+ _A. arabica_ +zur Kultur empfehlen+. Das Gummi von =Angra Pequena=, das ~Hartwich~ (1898) untersuchte, stammte wohl von _A. horrida_ ~Willd.~ Es besitzt eine starke Viskosität, dreht rechts, hat eine geringe Aschenzahl (1,997-2,722%) und löst sich in Wasser. Gummi aus dem Hinterlande von Angra Pequena drehte bald rechts: G. Tlach (= braun), bald links: G. Amrad (~Dieterich~). Eine dritte Sorte war als Auruar bezeichnet. ~Hefelmann~ bestimmte in sog. Heiragummi von _A. horrida_ den Pentosangehalt zu 20,65-51,21% (bestes Cordofan 29,4%), das Wasser zu 8,5-17%. Neuerdings untersuchtes Gummi von _A. horrida_ ~Willd.~ aus Südwestafrika (Angra Pequena) erwies sich als bestem G. arabicum gleichwertig (~Meininger~ 1908). Ein Gummi von _A. detinens_ ~Burch.~ vom nördlichen Hererolande (Watersberg) löste sich in Wasser und besaß starke Klebkraft, war aber gelbbraun gefärbt (~Mannich~). Das Gummi aus =Deutsch-Adamaua=, das 1909: 274110 kg exportierte, wird in 3 Sorten: Falli und Marrua von _A. Senegal_ (und _xanthophloea_?) und Mumuye (von einem _Combretum_) gehandelt (~Dalziel~, Bull. Kew Gard. 1910). Auch die deutsche Kolonie =Togo= liefert etwas Gummi. Das Gummi von der Station Sansanne Manga in Togo, von einer mit _A. arabica_ verwandten Art, untersuchte ~Fendler~. =g.= Das Gummi von =Angola=, der an Deutsch-Südwestafrika im Norden angrenzenden Kolonie, stammt nach ~Moller~ von _A. horrida_ ~Willd.~, _A. etbaica_ ~ Schwf.~, _A. erubescens_ ~Welw.~, _A. albida_ ~Del.~ (Cócótó, Capollo, Espinheira). =h.= Das Gummi von =Nord-Nigeria= (aus den Provinzen Bornu und Yola) stammt besonders von _Acacia Senegal_ (Kol-Kol), _A. Seyal_ (Karumga), _A. Suma_ (kara kaia) und _A. Sieberiana_ (Katalabu u. Farin kaia). Die Ausfuhr betrug 1905: 4140, 1906: 6080 cwts. (Beschreibung und Analyse in Bullet. Imper. Instit. 1910). =i.= Auf =Réunion= wird von _A. dealbata_ und _A. Lebbeck_ G. gesammelt (~Bocquillon~ 1899). B. Indisches Acaciengummi. Die Pharmacographia indica bemerkt 1890, daß das aus Ostindien, besonders Bombay, exportierte G. arabicum ausschließlich «vom Roten Meer» stammt, also ostafrikanisches Gummi ist. «No part of it being the produce of India.» Von dem arabischen Gummi unterscheidet der indische Markt zwei Sorten: maklai (große runde oder wurmförmige Stücke, ähnlich dem Senegalgummi) -- nach dem Hafen Makala genannt -- und maswai (eckige oder wurmförmige Stücke) -- nach dem Hafen Massaua genannt -- (~Dymock~). Auch die Namen Bombay pink und Aden pink sind für Sudangummi in Indien in Gebrauch (~Prebble~). Es wird aber seit 1893 auch Acaciengummi, das aus Indien selbst, und zwar den Wüsten im Nordwesten, stammt, exportiert. Das Gummi von Sind (Karachigummi) liefert besonders _A. Senegal_, dann auch _A. arabica_, die beide in der Wüste wachsen. Das Oomarkoteggummi stammt jedenfalls von _A. Senegal_ (~Prebble~ 1893). Die besten Qualitäten +ostindisches+ oder Bombaygummi sind blaßbräunlich oder rötlich und vollkommen in Wasser löslich. Das Pondicherygummi ist weniger gut. Das Gummi von _Acacia arabica_ aus Ostindien ist das +Amrad+-, Amraoti-, oder Oomrawatti-gummi (von hamra = rot). Es bildet ziemlich große, zum Teil stark gefärbte Tränen und gibt einen schwachen reduzierenden Schleim. Die dunkleren Stücke enthalten Gerbstoff. ~Fromm~ fand die Drehung -1° 12′. Auch ein Teil des =Ghatti, Ghátí oder Gatti gum= aus Indien wird von _A. arabica_ gewonnen (~Atkinson~). Das Gummi der von Penjáb bis Behar vorkommenden _A. arabica_ heißt in Indien +Babul gum+ (babúl-kí-gónd, kikar, ki-gónd, babúl-gónd) und ist ein minderwertiger Ersatz für Cordofangummi. Man sammelt es im März und im April. Ein Baum liefert 2 lbs (~Watt~, Dict.). Das Gattigummi meiner Sammlung (1888) bildet relativ große, hellgelbliche, glasige Knollen. Der Namen Ghátí (das Adjektiv ghati bedeutet: aus dem Lande Desh stammend, ~Dymock~) wird aber auch für das Gummi von _Anogeissus latifolius_ benutzt (s. weiter hinten S. 437). Weniger Bedeutung besitzen die Gummis von _Acacia leucophloea_ (ist in Wasser reichlich löslich), von _Ac. Catechu_ (auch fälschlich unter dem Namen babul gum gehend), hauptsächlich in rundlichen, gefärbten Tränen (reichlich in Wasser löslich), von _A. modesta_ ~Wall.~, kommt aus Nordindien unter dem Namen Amritsargummi in kleinen Tränen oder wurmförmigen Stücken (sehr löslich in Wasser) und von _Acacia Farnesiana_ aus Sind, rundliche Stücke, hellgelb-rötlichbraun, (in Wasser teilweise löslich); enthält oft einen Pilz (Ascomycet?) und Kristalle. Auch das Gummi von _Ac. ferruginea_ ~Dc.~, _A. Jacquemontii_ ~Benth.~, _A. lenticularis_ ~Ham.~ und _A. Suma_ ~Kurz~ wird in Indien gesammelt. Das indische Gummigeschäft wird oft durch Pest und Hungersnot ungünstig beeinflußt. Gummi wird neuerdings auch sortiert in: glasig, blaß, ostindisch fein, ostindisch-rot Amrad. Vorderindien exportierte Gummi arabic. 1905/06: 3967, 1906/07: 2684, 1907/08: 3010, 1908/09: 1119 cwts. C. Australisches Acaciengummi. Aus Australien, das ja sehr reich an Acacien ist, wurde besonders seit der Gumminot Gummi exportiert (1899: 2186, 1905 aber nur 98 cwts). Obenan steht hier das Gummi des Golden oder Common Wattle Tree, _A. pycnantha_ ~Benth.~, das sog. +Wattle gum+ aus Victoria. Es bildet große, gelbliche oder rötliche, wasserlösliche Tränen, ist aber bisweilen gerbstoffhaltig; dann das ebenfalls wasserlösliche Gummi (+Sidneygummi+) von _A. decurrens_ ~Willd.~ (_A. mollissima_ ~Willd.~), des Black oder Green Wattle tree und die G. von _A. homalophylla_ ~A. Cunn.~, _A. pendula_ ~Cunn.~, _A. sentis_ ~F. v. M.~ Als gummiliefernd werden auch _A. excelsa_, _A. Farnesiana_, _A. harpophylla_, _A. neriifolia criophylla_ und _A. microbotrya_ angegeben. Die Gummis von _A. binervata_ ~Dc.~, _A. dealbata_ ~Lk.~, _A. elata_ ~Cunn.~, _A. glaucescens_ ~Willd.~, _A. penninervis_ ~Sieber~, _A. vestita_ ~Ker. Gawl.~ sind nicht ganz löslich und lassen 4-41% ungelöst. Exportiert wird zurzeit vornehmlich das Gummi von _A. pycnantha_. Die Eigenschaften der australischen Gummis gehen aus folgender Tabelle ~Maidens~ hervor. --------------------+--------+------------+---------+---------+------- +I. Gruppe+ | Arabin | Metarabin |Feuchtig-| Asche | (Arabin-Gruppe) | | (Bassorin) | keit | | ====================+========+============+=========+=========+======= Acacia homalophylla | 79,84 | ---- | 16,83 | 2,86 | „ pendula var. | | | | | glabrata | 79,5 | ---- | 17,51 | 2,39 | „ sentis | 76,97 | ---- | 7,88 | 4,59 | --------------------+--------+------------+-----------+---------+----- +II. Gruppe+ | Arabin | Metarabin | Holz- |Feuchtig-| Asche (Übergang zu III) | | (Bassorin) | substanz| keit | ====================+========+============+===========+=========+===== Acacia binervata | 76,57 | 4,24 | 1,62 | 16,01 | 0,771 „ dealbata | 76,37 | 4,163 | 1,0 | 16,3 | 1,12 „ elata | 74,20 | 6,85 | ---- | 17,73 | 0,581 „ glaucescens | 66,59 | 12,30 | 0,5 | 16,48 | 3,18 „ penninervis | 70,30 | 11,42 | ---- | 16,67 | 0,66 --------------------+--------+------------+---------+---------+------- +III. Gruppe+ | Arabin | Metarabin | Holz- |Feuchtig-| Asche (Metarabin-Gruppe) | | (Bassorin) | substanz| keit | ====================+========+============+=========+=========+======= Acacia decurrens | | | | | (Cambewarra) | 41,07 | 32,96 | ---- | 23,26 | 2,38 „ decurrens | | | | | (Rydalmere) | 23,45 | 49,88 | ---- | 25,45 | 1,706 „ decurrens | | | | | (Gosford) | 30,10 | 44,45 | ---- | 20,57 | 3,418 „ decurrens | | | | | (Valley) | 29,10 | 46,20 | ---- | 21,02 | 2,827 „ decurrens | | | | | (Sydney) | 17,20 | 56,14 | ---- | 23,83 | 2,08 „ mollissima | 23,82 | 52,10 | ---- | 21,66 | 2,081 „ mollissima var.| | | | | Leichhardtii | 9,20 | 66,59 | ---- | 21,20 | 2,28 „ mollissima var.| | | | | Leichhardtii | 7,90 | 63,80 | ---- | 23,83 | 3,80 „ vestita | 38,99 | 46,40 | 1,2 | 11,63 | 0,954 D. Amerikanisches Acaciengummi. Ohne große Bedeutung ist z. B. das sog. +Paragummi+ aus Brasilien, das von _A. Angico_ ~Mart.~ gesammelt wird und dem Arab. G. ähnlich ist. ~Lemeland~ fand in einem Gomme de Brésil (Angico) 7,8% Unlösliches, 12,75% Wasser, 2,2% Asche, 20,6% Galaktane, 70,2% Pentosane. Es lieferte Arabinose und drehte α_{D} = +46°94. Auch ~Vée~ analysierte (1888) brasilianisches G. Das +Cujigummi+ aus Caracas wird von _A. micrantha_ ~Benth.~ abgeleitet. Wasser löst nur 26%. Eine gute Übersicht über die Beschaffenheit der +Acaciengummis+ gibt folgende Tabelle von ~Martina~. --------------+---------------+------+-------+---------+------------ Name des | Ort der | Asche|Kalk in| Kalk in |Schleimsäure Gummis | Herkunft | | Gummi |der Asche| | | % | % | % | % ==============+===================================================== Arabisches | Arabien | 3,60 | 1,04 | 28,88 | 22,98 „ | Senegal | 3,25 | 0,90 | 27,69 | 19,72 „ | Ghezireh | 2,75 | 0,94 | 34,13 | 12,42 „ | Senegal | 3,30 | 0,95 | 28,70 | 15,13 „ | „ | 7,16 | 1,21 | 16,89 | 22,68 „ | „ | 3,30 | 1,07 | 29,39 | 12,30 „ | Aden | 3,70 | 1,33 | 35,40 | 18,68 „ | Mogador | 3,50 | 0,78 | 22,30 | 18,10 „ | Neu-Holland | 0,50 | -- | -- | 45,82 „ | Egypten | 3,60 | 0,64 | 17,77 | 14,95 „ | Keggias | 3,15 | 1,17 | 37,14 | 10,27 G. Chartum | Obernil | 3,05 | 1,22 | 40,00 | 5,67 G. bianca | Sudan | 3,30 | 1,00 | 30,30 | 6,72 Arabisches | Ostindien | 4,16 | 0,97 | 23,31 | 14,75 G. Galam | Senegal | 3,00 | 0,53 | 17,66 | 15,15 G. Adansonii | „ | 4,05 | 0,61 | 15,06 | 4,00 A. Senegal | „ | 3,30 | 0,78 | 23,63 | 10,03 A. nilotica | Egypten | 2,80 | 1,36 | 45,00 | 5,91 „ „ | „ | 2,60 | 0,77 | 29,61 | 13,40 A. homaloph. | Melbourne | 2,20 | 0,78 | 35,45 | 55,41 A. Lebbeck | Isle d. France| 3,25 | 0,49 | 15,07 | 22,99 A. dealbata |Van Diemensland| 0,65 | -- | -- | 39,09 A. della Vesta| Australien | 0,75 | -- | -- | 45,49 A. Angico | Brasilien | 2,89 | -- | -- | 1,23 --------------+---------+--------+--------+--------------+--------- Name des |Galaktose|Furfurol|Pentosen|Gesamtglukosen|Galaktose Gummis | | | | |+Pentosen | % | % | % | % | % ==============+==================================================== Arabisches | 30,66 | 13,57 | 27,14 | 58,30 | 57,80 „ | 26,29 | 12,97 | 25,94 | 57,58 | 52,23 „ | 17,89 | 19,32 | 36,62 | 60,66 | 54,52 „ | 20,17 | 16,75 | 33,50 | 60,59 | 53,67 „ | 30,24 | 16,58 | 33,16 | 64,34 | 63,40 „ | 16,68 | 22,40 | 44,80 | 61,53 | 61,48 „ | 24,90 | 15,26 | 30,52 | 56,90 | 55,42 „ | 24,13 | 13,90 | 27,80 | 50,31 | 51,93 „ | 61,09 | 10,85 | 21,70 | 43,75 | 82,79 „ | 19,93 | 15,56 | 31,12 | 55,10 | 51,05 „ | 13,69 | 21,06 | 42,12 | 57,72 | 55,81 G. Chartum | 7,56 | 24,60 | 49,20 | 63,90 | 56,76 G. bianca | 8,96 | 17,60 | 35,20 | 42,76 | 44,16 Arabisches | 19,66 | 17,68 | 35,96 | 56,52 | 55,62 G. Galam | 20,20 | 13,91 | 27,82 | 47,16 | 48,02 G. Adansonii | 5,34 | 21,10 | 42,20 | 46,11 | 47,54 A. Senegal | 13,37 | 13,89 | 27,78 | 43,80 | 41,15 A. nilotica | 7,88 | 21,44 | 42,88 | 49,13 | 50,16 „ „ | 17,86 | 30,10 | 60,20 | 70,80 | 78,06 A. homaloph. | 73,77 | 9,75 | 19,50 | 71,57 | 93,27 A. Lebbeck | 30,75 | 17,10 | 34,20 | 66,20 | 64,90 A. dealbata | 52,12 | 8,89 | 17,68 | 73,93 | 69,80 A. della Vesta| 60,65 | 10,27 | 20,54 | 59,86 | 81,19 A. Angico | 1,63 | 40,35 | 80,70 | 74,22 | 82,33 II. Gummi von Pflanzen, die nicht zur Gattung Acacia gehören. A. Indische Gummis. Außer den oben genannten G. von +Acacia+arten produziert Vorderindien noch eine ganze Anzahl anderer G. und bringt einige auch zur Ausfuhr. (1887 schon 60000 Quint.) Obenan steht hier das G. von _Feronia Elephantum_ ~Corr.~, einer in Vorder- und Hinterindien, Ceylon und Java vorkommenden baumartigen Aurantiee, die viel G. aus der Rinde ausschwitzt. +Dies Wood apple gum+ ist das +wertvollste indische G.+ Es findet sich in kleinen farblosen bis rötlich-braunen unregelmäßigen Tränen oder großen Klumpen oder Stalaktiten oder hornförmigen Stücken, ist, wenn nicht mit anderen G. vermischt (was öfter vorkommt), ganz (oder doch zu 75%) in Wasser löslich und gibt eine Lösung, die stärker viskos ist als die des _G. arab._ Die Lösung rötet Lakmus, dreht rechts (+0,4°, ~Flückiger~) und wird gefällt durch Alkohol, Ammonoxalat, Alkalisilikat, Eisenchlorid, Bleiacetat und Bleiessig, Ätzbaryt, nicht durch Borax und Pottasche. Es enthält 17% Wasser und 5,12% Asche und gibt mit HNO₃ Schleimsäure. Es ist mit _G. arab._ nicht identisch. Feroniableiarabat gab z. B. 14,76% PbO. Bleiarabat 30,6% PbO. ~Lemeland~ fand im G. von _Feronia Eleph._ 8,4% Unlösliches, 17,7% Wasser, 4,3% Asche, 51,8% Galaktane, 40,1% Pentosane. Es lieferte Galaktose und drehte α_{D} = -6°41′. Es ist das beste indische Ersatzmittel für_G. arab._ und wird als solches von der Pharmacopoea indica empfohlen. Da es keine Oxydasen enthält, ist es also in mancher Hinsicht besser als jenes (~Goris~ et ~Lefèvre~). Ein anderes wichtiges G. ist das auch unter dem Namen =Ghattigummi=, G. indicum Gháti oder Dhaurag. (s. oben S. 435) im Handel vorkommende G. der Combretacee _Anogeissus latifol._ ~Wall.~ (und _A. pendula_ ~Edzw.~). Es bildet jedenfalls die Hauptmasse des Ghati von Bombay (Pharm. indic.) und wird in großen Mengen exportiert, etwas auch aus franz. Indien und Nord-Nigeria. Es bildet rundliche oder wurmförmige, bernsteingelbe oder farblose, opake Stücke mit glasigem Bruch, frei von Rissen, löst sich, wenn rein, in Wasser, hat die doppelte Viskosität wie G. a., ist also sehr wertvoll, seine besten Sorten auch für pharmazeutische Zwecke wohl brauchbar. Weniger wichtig sind dann die folgenden indischen G. (vgl. Pharmacogr. indic.). Zunächst das G. von _Melia Azadirachta_ L. (Meliacee) in großen Tränen oder wurmförmigen Stücken, farblos bis bernsteinfarben, leicht löslich in Wasser, die Lösung gelatiniert durch Eisenchlorid und Bleiessig, nicht durch Borax oder Bleiacetat (wird auch in Réunion, Gouadeloupe und Franz. Indien gesammelt, ~Bocquillon~). _Swietenia Mahagoni_ (Meliacee) aus der Rinde, helle Fragmente, löst sich leicht in Wasser, Lösung reduziert ~Fehling~sche Lösung. -- _Pithecolobium dulce_ (Mimosee) in rundlichen Tränen von rotbrauner Farbe; in Wasser löslich. -- _Pithecolobium Saman_ (Mimosee) liefert ein schlechtes G., das in Wasser aufquillt. -- _Prosopis spicigera_, viele Risse, sehr brüchig, gibt eine dunkel gefärbte viskose Lösung, ein wertvolles Gummi, ähnlich dem Mesquileg. -- _Albizzia procera_ wächst bei Bombay. Das G. bildet rötlich-braune, glatte Tränen, wird beim Liegen opak und löst sich dann nicht mehr vollständig, enthält oft Hyphen, Kristalle und Gewebetrümmer. -- _Albizzia stipulata_ gibt ein dunkelgefärbtes G., das in Wasser nur aufquillt und nur wenig löslich ist. -- _Albizzia Lebbeck_ bildet glatte Stalaktiten, ist nicht immer ganz löslich. -- _Albizzia odoratissima_, große transparente Tränen von Bernsteinfarbe, quillt nur mit Wasser. -- _Albizzia amara_ ~Boiv.~, süßlich, mit hoher Klebkraft. -- _Anacardium occidentale_ L. (Acajoug. Cashawag.), gelbe bis rotbraune Stalaktiten, trübe löslich, reduziert Fehlingsche Lösung, dreht links. Wird auch in Brasilien, Martinique und Guadeloupe gesammelt (~Bocquillon~, Beschreibung in ~Wiesner~, Rohstoffe). _Semecarpus Anacardium_ in Cochinchina, Indien, Neucaledonien, Réunion (enthält 96% Bassorin) -- _Spondias Mangifera_, gelblich bis rotbraun, mit viel Wasser einen Schleim gebend. -- _Odina Wodier_ ~Roxb.~ in großen brüchigen, rissigen Tränen und Stalaktiten von heller bis Bernsteinfarbe. -- _Mangifera indica._ ~Lemeland~ fand im G. von _Mangifera indica_ 60,64% Unlösliches, 16,5% Wasser, 4% Asche, 30,36% Galaktane, 42% Pentosane. Das G. lieferte Arabinose. Es drehte α_{D} = -25°33′. _Buchanana laitifol._ ~Roxb.~ völlig löslich. -- _Bauhinia purpurea_ wenig löslich. -- _B. variegata_ L., enthält viel Stärke und Calciumoxalat, unregelmäßige Stücke, nicht vollständig löslich. -- _Cedrela Toona_ (Meliacee) von den Nilagiris, bildet einen dicken Schleim. Wird beim Aufbewahren unlöslich. -- _Terminalia Belerica_ in Tränen und wurmförmigen Stücken, schwillt nur in Wasser, enthält Kristalle. -- _Terminalia tomentosa_ ~Wight~ et ~Arn.~, nur zum Teil löslich. -- _Aleurites moluccana_, teilweise löslich, enthält oft Pilzhyphen. -- _Poinciana regia_, enthält viel Kalkoxalatsphärokristalle, löslich in Wasser zu einem dicken Schleim, reduziert etwas ~Fehling~. -- _Chloroxylon Swietenia_ aus Bangalore, in Wasser kaum löslich. -- _Eriodendron orientale_, ähnlich dem Cochlospermumg. (~Wiesner~). -- _Bombax malabaricum_ ~Roxb.~ und _B. pentandrum_ L., Malabargummi. -- _Aegle Marmelos._ -- _Diospyros melanoxylon._ -- _Moringa pterygosperma_ (gomme de ben ailé Moscherus, G. Shega, auch aus Réunion), wohl eher ein Traganth (s. d.), wie das von _Cochlospermum Gossypium_ (s. unter Traganth). Beschreibung bei ~Wiesner~. -- Über die Sterculiaceeng. siehe unter Traganth (S. 406) und Bull. Imp. Inst. London 1910, 361. Unter den ostindischen Sorten finde ich 1910 bei ~Grossmann~ auch Camporeg. (Cownpore ist eine der besten technischen G. Sorten Indiens, ~Morpurgo~), in der Liste von ~Fritz~ ein Elas-India (?) aufgeführt. Übersicht der Löslichkeit und der Reaktionen von indischen Gummis. (Nach Pharmacographia indica.) A. Dem arabischen ähnliche Gummis, in Wasser löslich. ---------------------+------------------+---------------+------------- | Neutrales | Eisenchlorid | Borax | Bleiacetat | | =====================+==================+===============+============= Acacia arabica | -- | -- |Gelatinisiert „ leucophloea? | -- | -- |Gelatinisiert Anogeissus latifolia | -- | -- |Gelatinisiert Acacia modesta | Wird | Gelatinisiert | -- | niedergeschlagen | Gelatinisiert | -- Feronia Elephantum | Wird | Gelatinisiert | -- | niedergeschlagen | Gelatinisiert | -- Swietenia Mahagoni | Wird | Gelatinisiert | -- | niedergeschlagen | Gelatinisiert | -- Acacia Catechu | -- | Gelatinisiert |Gelatinisiert Pithecolobium dulce | -- | Gelatinisiert |Gelatinisiert Melia Azadirachta | -- | Gelatinisiert | -- Prosopis spicigera | Wird | Gelatinisiert |Gelatinisiert | niedergeschlagen | Gelatinisiert |Gelatinisiert B. Gummis, die sich leicht in Wasser lösen, aber einen mehr oder weniger trüben Schleim bilden, infolge unlöslicher, suspendierter Substanzen. ----------------+------------------+---------------+------------------ | Bleiessig | Eisenchlorid | Suspendierte | | | Substanzen ================+==================+===============+================== Anacardium | -- | -- | Ein gelbliches Öl occidentale | -- | -- | Ein gelbliches Öl Odina Wodier | -- | Gelatinisiert | Ein gelbliches Öl Bauhinia | Wird | Gelatinisiert | Stärkekörner variegata | Wird | Gelatinisiert | Stärkekörner | niedergeschlagen | Gelatinisiert | Stärkekörner Poinciana regia | -- | Gelatinisiert | Calciumoxalat in | | | Sphaero- | | | Kristallen Keines dieser Gummis wurde durch Borax gelatinisiert. C. Gummis, die unvollkommen löslich sind und einen mehr oder weniger gelatinösen Schleim bilden mit einer großen Menge Wasser. --------------------+------------------+---------------+-------------- | Neutrales | Eisenchlorid | Borax | Bleiacetat | | ====================+==================+===============+============== Cedrela Toona | -- | -- | -- Albizzia Lebbeck | -- | Gelatinisiert | -- Acacia Farnesiana | -- | Gelatinisiert | -- Albizzia procera | -- | Gelatinisiert | -- Spondias mangifera | Wird | Gelatinisiert | -- Spondias mangifera | niedergeschlagen | Gelatinisiert | -- Aleurites moluccana | Gelatinisiert | -- | Gelatinisiert D. Gummis, die zu einer gelatinösen Masse aufschwellen, sehr wenig löslich. Albizzia odoratissima -- Albizzia stipulata -- Bauhinia purpurea -- Terminalia belerica -- Chloroxylon Swietenia. Auch ~Lühn~ bestimmte bei zahlreichen indischen Acacien- u. and. Gummis Viskosität, Klebkraft, Asche, Verhalten zu Alkohol, Eisenchlorid und Bleiacetat. Ebenso untersuchte ~Masing~ (1880) zahlreiche indische Sorten. (Siehe Lit.) B. Javanische Gummis. In Java finden sich wenige Gummis, das Klima ist zu feucht. Das beste ist das wasserlösliche Mimbagummi von _Azadirachta indica_ ~Juss.~ (~Prinsen Geerligs~). C. Australische Gummis. Das Gummi der australischen Meliacee _Flindersia maculosa_ ist vorzüglich; es enthält c. 80% Arabin, 16,5% Wasser und 2,6-2,7% Asche (~Maiden~). Dann liefern _Eucalyptus_arten (~Wiesner~), z. B. _Euc. rostrata_ (~Brownscombe~) Gummi, sowie _Grevillea_arten, z. B. _Gr. robusta_ (~Röser~ und ~Pnaux~). Weitere australische Gummis erwähnt ~Maiden~. Sie stammen von _Mezoneurum Scortechinii_ ~F. v. M.~, einer Caesalpiniee (Barristergummi, quillt nur in Wasser), _Panax dendroides_ var. _angusta_ ~F. v. M.~, einer Araliacee (nur quellbar), _Panax Murrayi_ ~F. v. M.~ (löslich). Auch andere _Panax_arten (_P. elegans_, _P. sambucifol._ var. _angustum_) werden angegeben (~Hartwich~). D. Amerikanische Gummis. Das +Cajougummi+ (s. oben S. 438) ist das Gummi von _Anacardium occidentale_ L. Es ist löslich in Wasser. -- Das +Mesquitég.+ (Mezquite, Misquit, Miquit) aus den südlichen Vereinigten Staaten, Mexiko und Südamerika, besonders von Texas bis Kalifornien, von der Mimosee _Prosopis glandulosa_ ~Torrey~ u. and. _Prosopis_arten (vgl. ~Wiesner~, Rohstoffe), ist eine untergeordnete Sorte, die nur in der Technik und Malerei brauchbar ist. Einige Sorten sind löslich in Wasser, von süßem Geschmack, andere lösen sich nur teilweise (~Wiesner~). ~Valenta~ und ~Stohmann~ stellen diesem Gummi ein günstiges Prognostikon. -- Das amerikanische Chewing gum stammt von _Prosopis dulcis_ ~Schiede~. -- Das +Sonorag.+ Mexikos, früher von _Mimosa coccifera_ abgeleitet (~Soubeiran~), ist wohl auch ein Prosopisg. Bei seiner Bildung ist, wie es scheint, ein Tier (_Coccus_?) beteiligt. Die Mexikaner nennen es auch tzinacantuitlatl (= stercus vespertilionum). Ebenso wird das +Goma de cujé yaque+ aus Venezuela von _Prosopis_arten abgeleitet. Außer den angeführten _Prosopis_arten werden noch besonders genannt: _P. horrida_ ~Kunth~, _P. inermis_ ~H. B. K.~, _P. pubescens_ ~Benth.~ -- Das +Ciruela+gummi aus Caracas stammt von _Bunchosia glandulifera_ ~H. B. K.~ Es ist vollständig in Wasser löslich (~Hartwich~). -- Das +Guaramachog.+ aus Caracas von _Pereskia Guamacho_ ist nur zu 48% löslich, das +Cederng.+ aus Caracas von _Cedrela odorata_ sogar nur zu 25%. -- Das +Chagual+- oder +Maguey+gummi aus Chile, das lösliche und nur zum Teil lösliche Stücke, meist Hohlzylinderfragmente, enthält und bei dessen Bildung auch ein Tier (_Castnia elegans_) beteiligt ist, stammt von Bromeliaceen, und zwar _Puya-_(_Pourretia_)-Arten (~Wiesner~, ~Hartwich~). Es löst sich meist nur zu c. 16-18% in +heißem+ Wasser (~Hartwich~), ist daher eines der bassorinreichsten. Die Gallerte färbt sich mit Soda gelb. Es enthält 13,46% Wasser und 2,43% Asche (~Wiesner~). Doch kommen sehr verschiedenartige Produkte unter dem Namen im Handel vor. Die Farbe schwankt zwischen farblos und schwarz. -- Das «Goma de orore» von Venezuela stammt von _Pithecolobium hymenaeaefol._ ~Benth.~, das «Goma de caro» von ebenda von _Enterolobium cyclocarpum_ ~Gris.~ (~Ernst~, vgl. bei ~Wiesner~), das «Goma de tuna» von Venezuela und den Antillen von _Opuntia ficus indica_ (~Ernst~, ~Hanausek~). -- ~Domimguez~ beschreibt zwei +argentinische+ G.: +Cebil+ von _Piptadenia Cebil_ ~Griseb.~ (enthielt 80,78% Arabin) und +Brea+ von _Caesalpinia praecox_ R. et ~Pav.~ (mit 77,9% Arabin). Er erwähnt auch ein +brasilianisches+ G. von _Piptadenia rigida_ ~Benth.~, das 80,7% Arabinose aber nur 1,63% Galaktose und 1,2% Schleimsäure lieferte. Die Herkunft des +Perugummi+ ist unbekannt. Einige (~Gintl~, ~Hoehnel~) leiten es von einer _Asphodelus_art ab, ~Wiesner~ bestreitet die Ableitung. =Lit.= +Cordofang.+: ~David~ a. a. O. -- ~Beam~, III Rep. Wellc. res. Labor., Khartoum 1908. -- +Senegalg.+: ~Soubeiran~, Des gommes du Sénégal. J. ph. chim. 1856. -- ~Flückiger~, Schweiz. Wochenschr. 1869. -- ~Vuillet~, Gommes etc. du Sénégal. Bull. jard. col. Paris 1901. -- +Somalig.+: ~Revoil~, Voyages au Cap des Aromates. Paris 1880. -- ~Durand~, Voyage au Sénégal. 1802. -- ~Corre~, Journ. pharm. 1876. -- Pharm. Post 1896 und Bull. soc. pharm. du Sud Ouest. -- ~Wördehoff~ und ~Schnabel~, Zeitschr. trop. Landwirtsch. 1897. -- +Somalig.+: ~Miles~, Roy. geogr. Soc. 1872. -- +Capg.+: ~Vée~, Thèse. Paris 1888. -- ~Hahn~, Zeitschr. Ges. f. Erdkunde. 1868, 214. -- +Tunisg.+: ~Doumet-Adanson~, Note sur l’acac. gommifère de la Tunesie. Rep. pharm. 1874. -- +Mogadorg.+: ~J. D. Hooker~ und ~John Ball~, Journal of a tour in Marocco and the Great Atlas etc. London 1878. Bot. Jahresb. 1878, 899. -- G. aus +Deutsch-Südwestafrika+: ~Hartwich~, Apoth. Zeit. 1897 u. 1898, Nr. 22. -- ~Thoms~, Tropenpfl. 1898. -- ~Siedler~, Ber. d. pharm. Ges. 1898. -- ~K. Dieterich~, Ebenda 1898. 87. -- ~Warburg~, Zeitschr. trop. Landw. 1898. -- ~Mannich~, Tropenpfl. 1901, 284. -- ~Gessert~, Zeitschr. f. trop. Landwirtsch. 1898. -- G. aus +Deutsch-Ostafrika+: ~Volkens~, Notizbl. d. K. Bot. Gart. Nr. 14 (1898). -- ~Busse~, Reisebericht V, 1900. Naturw. Wochenschr. 1901. Ber. d. pharm. Ges. 1904. -- ~Waage~, Ber. d. pharm. Ges. 1893. -- ~Thoms~, Notizbl. d. Bot. Gart. 1899. -- ~Mannich~, Gummiarten Deutsch-Ostafrikas. Tropenpfl. 1902, 201. -- +Togo+: ~Fendler~, Tropenpflanzer 1903, 228. -- +Angola+: ~Moller~, Tropenpfl. 1898. -- +Nord-Nigeria+: G. from North. Nig. Bullet. Imper. Instit. London 8 (1910). -- +Indische+ G.: ~Flückiger~, Pharm. Journ. 10 (1869) 641. -- ~Hanbury~ a. a. O. -- ~Prebble~ (East Ind. gums). Pharm. Journ. 1892, 683 u. 1893, 22. -- ~Goris~ et ~Lefèvre~, Ghati-Gummi. Bull. Sc. pharmacol. 1904, 17. -- ~Lemeland~ (G. von Mangifera indica). Journ. pharm. 1904, 584. -- ~Masing~, Vergl. Unters. einiger indischer Handelssorten d. arab. G. 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Indien 13590 dz). +Triest+ importierte 1908: 8487, 1909: 4484 dz Nilgummi. +Frankreich+ importierte 1908: 74145 Quint.; davon entfielen auf Ägypten 30550, auf den Senegal 28525. +Bordeaux+ importierte 1909: 24807 quint. Senegal und 5804 quint. Nilgummi. Die Einfuhr von _Gummi arabicum_ +aller Art+ nach +London+ betrug 1906: 12779, 1907: 10776, 1908: 8540, 1909: 10733 packages. Die britische Einfuhr an _Gummi arabicum_ betrug 1908: 63786, 1909: 84710, 1910: 107367 cwt (die Ausfuhr 1909: 20440, 1910: 33068 cwt). +Nordamerika+ importierte _G. arab._ 1907: 7084468, 1908: 4895897 und 1909: 4153958 pounds. Nordamerika importierte _G. Senegal_ 1907: 298258, 1908: 148618, 1909: 111942 pounds. Die +Ausfuhren+ s. bei den einzelnen Sorten. =Morphologie und Anatomie der Droge.= Bestes Cordofangummi bildet mehr oder weniger rundliche, seltener wurmförmige, helle, weißliche oder höchstens gelbliche Stücke von verschiedener Größe (bis nußgroß), die außen matt und +von zahlreichen Rissen durchzogen+ sind und leicht in kleinmuschelig-eckige, scharfkantige, glasglänzende, zuweilen leicht irisierende Fragmente brechen. Bei 100° erweitern und verlängern sich die Risse und das Gummi wird bröckelig. Das Senegalgummi ist meist etwas rötlich, was besonders bei Betrachtung in größerer Masse hervortritt, und zeigt weniger Risse. Es wird aber im Schwefelsäureexsikkator auch stark rissig (~Flückiger~). Wurmförmige Stücke sind bei ihm häufiger. Während die Risse beim Cordofangummi stets bis in tiefere Schichten reichen, sind sie beim Senegalgummi auf eine oberflächliche Schicht beschränkt. Dadurch lassen sich selbst die besten Sorten Senegalgummi von dem Cordofangummi unterscheiden (~Wiesner~). Mikroskopisch zeigen die Fragmente des Gummipulvers bisweilen eine leichte Streifung (~Wiesner~, ~Koch~) und bei beginnender Lösung Körnelung, eine eigentliche Struktur, etwa wie beim _Traganth_, oder Zellwandreste sind nicht wahrzunehmen. Nur sehr selten finden sich in den guten Sorten kleine Stärkekörner oder mit Stärke erfüllte Rindenzellen. Wenn man sehr große Mengen löst, verdünnt und lange absetzen läßt, findet man bisweilen dergleichen, häufiger sind, auch in den guten Sorten, Bastfasern, wie überhaupt Fragmente des Rindengewebes. Gummischleim muß stets coliert werden. In aus schlechteren Sorten hergestelltem Pulver fand ~Koch~: Bastfasern, Holzelemente, Kork, Pilzmyzel, Pollenkörner, Haare, Blattfragmente und Gesteinstrümmer, aber Stärke auch nur in Spuren. +Abbild.+: ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Koch~, Mikr. Anal. d. Drogenpulver IV, S. 169. -- =Chemie.= ~John~ führte den Namen +Cerasin+, ~Chevreul~ den Namen +Arabin+ ein, ~Guérin~ fügte dann noch das +Bassorin+ hinzu und so haben sich bis heute die drei Gruppen erhalten, obwohl schon ~Berzelius~ darauf hinwies, daß dies keinen tieferen Einblick in die Chemie dieser Gruppe zu tun erlaube. Arabin ist in Wasser löslich, Cerasin und Bassorin quellen nur darin. Die letzteren unterscheiden sich nur dadurch, daß Cerasin mit Alkalikarbonaten gekocht Calciumkarbonat abscheidet und in Lösung geht, Bassorin scheidet bei gleicher Behandlung keinen Kalk ab. Cerasin kann also als metarabinsaurer Kalk betrachtet werden. Beide reduzieren ~Fehling~sche Lösung nicht und geben bei der Hydrolyse Arabinose und Galaktose. +Im G. arabicum ist nur Arabin enthalten+, im Kirschgummi Cerasin, im Traganth (s. d.), Chagual- und Moringagummi Bassorin. ~Neubauer~ und ~Frémy~ gelang es Cerasin in Arabin überzuführen. ~Guérin~ fand im G. arabicum kein Bassorin, 79,4% wasserlösliches Arabin, 17,6% H₂O und 3% Asche; im Senegalgummi kein Bassorin, 81,1% wasserlösliches Arabin, 16,10% Wasser und 2,8% Asche. Auf 150° erhitzt wird G. arabicum zum Teil unlöslich, nimmt also die Eigenschaften des Kirschgummis an (~Gelis~). Mit Natronlauge färbt sich Gummi nicht, nach einigen Stunden wird es gelblich, damit erwärmt rasch schwarz (~Flückiger~). Alkohol von 52 vol % löst Gummi nicht, verdünnter etwas, im Verhältnis zu seinem Wassergehalt. In dem doppelten Gewichte Wasser löst sich G. arabicum +langsam aber vollständig+ (Unterschied von den bassorin- und cerasinhaltigen Gummis) zu einem klebenden, aber nicht fadenziehenden, hellgelblichen Schleim von saurer Reaktion. Das Verhalten zu Wasser wechselt bei den einzelnen Sorten sehr. Nur die Gummis, welche sich in Wasser, bis auf einige beigemengte Pflanzenreste, +vollständig+ zu einem filtrierbaren oder doch kolierbaren Schleime lösen, sind für pharmazeutische Zwecke brauchbar. Andere Gummis «geben einen scheinbar völlig homogenen Schleim, der aber nicht filtrierbar ist, andere eine mehr oder weniger konsistente Gallerte, bei anderen wieder quellen die einzelnen Körnchen so weit auf, daß scheinbar ein gleichmäßiger Schleim entsteht, in dem aber bei genügender Verdünnung die einzelnen Körnchen sich erkennen lassen, bei anderen trennt sich der Schleim bald in zwei Teile, einen gewöhnlich sehr konsistenten dicken und einen wässrigen, dünnen, und schließlich kommen Sorten vor, die nur mehr oder weniger aufquellen» (~Hartwich~). Bleichen mit Chlor oder schwefliger Säure vermindert die Löslichkeit. Der Gummischleim wird durch Beimischung eines gleichen Volumens Alkohol weiß und gallertig, klärt sich aber auf weiteren Zusatz des fünffachen Volumens Wasser wieder vollständig. Auch durch Wasserglas, Eisenchlorid, Ferrisulfat (~Lassaigne~) und Boraxlösung (~Lambert~ und ~Gieseke~) wird der Schleim zu +einer steifen Gallerte verdickt+. Der Gummischleim ist eine kolloidale Lösung. Er ist +mit Bleiacetat ohne Fällung mischbar+ (Unterschied von den Schleimen), +erleidet dagegen selbst in einer Verdünnung 1 : 50000 durch Bleiessig noch eine Fällung+ (~Lassaigne~). Gerbsäure fällt Gummilösung nicht (Unterschied von Leim). G. arabicum läßt sich aus der Lösung mit Ammoniumsulfat, Ammoniumphosphat oder Kaliumacetat nicht aussalzen (~Pohl~). Die bei der Gärung des Gummischleims entstehende Säure ist Milchsäure (Arabinsäure liefert hierbei fast nur Milchsäure, ~Bourquelot~). Gummischleim neigt nicht zur Schimmelbildung. Bei längerer Aufbewahrung bildet sich Zucker. Die Jodabsorption des G. arabicum bestimmte ~Grélot~ (100 g absorbierten 7 mg J). Jod und Natriumbicarbonat bilden aus G. arabicum etwas Jodoform, mit Kalk erhitzt entsteht neben Aceton auch Metaceton (~Frémy~). Essigsäureanhydrid bildet Acetylarabine (~Schützenberger~ und ~Naudin~). Hefe und Diastase sind ohne Einfluß auf Arabin. G. arabicum reduziert ~Fehling~sche Lösung auch bei 60-70° nicht. ~Vauquelin~ fand bereits, daß das G. arabicum ein organisches Kalksalz ist. Die Säurenatur des Arabins (der Arabinsäure) erkannte ~C. Neubauer~ (1857). Er betrachtete das Arabin als das +saure+ (Kali-, Magnesium- und) +Kalksalz der Arabinsäure+. Das Calcium läßt sich durch Oxalsäure fällen oder nach Zusatz von HCl durch Dialyse entfernen. Auch ~Frémy~ betrachtete das Gummi als das Kalksalz einer sehr schwachen wasserlöslichen Säure (acide gummique), die durch Hitze in ein unlösliches Isomeres (acide metagummique, Metarabinsäure) übergeht. Kalk verwandelt die unlösliche Säure wieder in Calciumgummat. Auch Calciumgummat wird durch Hitze unlöslich. ~Graeger~ stellte die Metarabinsäure zu den Pektinen. Ob die Metapektinsäure (Zellulosesäure ~Frémys~) mit der Arabinsäure ~Scheiblers~ aus Rüben und diese mit der Arabinsäure ~Neubauers~ identisch ist, erscheint im Lichte der neueren Untersuchungen zweifelhaft. Das G. arabicum wird seit ~Scheibler~ als ein wechselndes +Gemenge+ von zwei Bestandteilen, einem rechts- und einem linksdrehenden aufgefaßt (Rechts-Arabin und Links-Arabin). Im normalen Kalksalz der Arabinsäure sind 2,15 bis 2,50% CaO enthalten (~Neubauer~). Zur Darstellung der +Arabinsäure+ (~Neubauer~, ~Scheibler~) wird das Gummi in Wasser gelöst, filtriert, mit Essigsäure (~Béchamp~) angesäuert und dialysiert -- es dialysieren Zucker und anorganische Salze --, die eventuell mit Essigsäure angesäuerte im Dialysator verbleibende Lösung wird mit Alkohol fraktioniert gefällt. Eine so dargestellte Arabinsäure enthält aber, wie ich gezeigt habe, stets Stickstoff und alle bisherigen Analysen sind, da es unmöglich ist, die stickstoffhaltige Substanz quantitativ abzutrennen, mit N-haltigem Material gemacht worden (~Tschirch~ und ~Stevens~). Die übrigens vorwiegend in den ersten Alkoholfällungen enthaltenen N-haltigen Bestandteile lassen sich zum Teil auch dadurch entfernen, daß man die mit Kochsalz versetzte Lösung zunächst mit einer mit Essigsäure angesäuerten Tanninlösung fällt. Der +Arabinsäure+, dem +Arabin+ der Autoren, das auch im Tierreich gefunden wurde (? ~Städeler~), wird bald die Formel (C₁₂H₂₂O₁₁)ₙ resp. C₁₂H₂₀O₁₀.H₂O (~Neubauer~, ~Scheibler~), bei 120° getr. C₆H₁₀O₅, bald die viel kompliziertere C₈₉H₁₄₂O₇₄ oder C₉₁H₁₄₂O₇₄ (~O’Sullivan~) gegeben. Jedenfalls ist ihr Molekulargewicht sehr groß (über 2000, ~Gladstone~ und ~Hibbert~). Sie löst sich, nur wenn sie feucht ist, in Wasser leicht, trocken quillt sie in Wasser nur langsam auf. Die wässrige Lösung reagiert sauer und dreht links. Das Drehungsvermögen wird sehr verschieden angegeben (-25,5° bis -98,5°, ja sogar Rechtsdrehung) und steht im Zusammenhang mit der relativen Menge der bei der Hydrolyse abgespaltenen Araban- und Galaktangruppen (~Guichard~), neben denen auch zuweilen bei gewissen Gummis Glykosan- (nicht aber Fruktosan- und Mannan-) Gruppen vorhanden sind. ~Rümpler~ erhielt sie in mikroskopischen Nadeln. Durch Erhitzen über 100° geht sie in Metarabinsäure über, die in Wasser nur froschlaichartig aufquillt. Bei höherem Erhitzen entsteht Furol (~Schiff~), beim Erhitzen mit Kalk viel Aceton neben wenigen Furanderivaten, mit Salpetersäure +Schleimsäure+, bei der Kalischmelze CO₂, Ameisensäure, Essigsäure, Propionsäure, Oxalsäure und Bernsteinsäure (~Hlasiwetz~ und ~Barth~), durch Destillieren mit starker Salzsäure Furol (aus den linksdrehenden Arten das meiste, ~Herzfeld~). Da die Lösung der +Arabinsäure+ sauer reagiert, hat man daher in der +Bestimmung der Acidität+ ein Mittel der Identifizierung in der Hand. Die Säurezahl einiger G. bestimmte zuerst ~Williams~. ~Beam~ fand bei +Cordofan+ hard variety: 9,89-12,15% Wasser, 2,66-3,28% Asche, Acidität (mg KOH auf 1,0) 2,66-2,93, bei Cordofan softer: 11,69-12,14% Wasser, 2,77-2,86% Asche, Acidität 2,48-2,57. Bester Hashab grosse gum (Turkey) enthielt: 9,03% Wasser und 0,34% Unlösliches und zeigte eine Acidität von 3,14. -- Granular sorts cleaned: 8,70% H₂O und 2,67% Unlösliches, Acidität = 2,95. -- Siftings: 7,45% H₂O und 20,12% Unlösliches, Acidität = 1,95. ~Beam~ fand bei +Senegalgummi picked+: 9,18-11,20% Wasser, 2,45-3,33% Asche, Acidität 2,45-3,33. Bei +Senegal crude+ gomme du bas du fleuve: 9,60-10,50% Wasser, 3,33-3,41% Asche, Acidität 2,14-2,50. +Galam+: 10,19-10,57% Wasser, 3,22-3,39% Asche, Acidität 2,50-2,54. +Salabreda+: 11,51% Wasser, 2,81% Asche, Acidität 3,56. Daß bei der Hydrolyse des Gummis ein Zucker entsteht, fand bereits ~Ludwig~ (1859). +Bei der Hydrolyse der Gummis (und der Arabinsäuren) entstehen neben Gummisäuren+ (~O’Sullivan~) +Pentosen und Hexosen+. Sie enthalten also Hexoso-Pentosane. Es entstehen aber selbst bei derselben Handelssorte wechselnde Mengen der Zucker, woraus man schließen muß, daß es verschiedene Arabinsäuren gibt oder wechselnde Gemenge vorliegen. Unter den Hydrolysierungsprodukten wurde in erster Linie +Arabinose+ (S. 274) (~Guérin Varry~, ~Scheibler~, ~Claësson~, ~von Lippmann~, ~Kiliani~) und +Galaktose+ (S. 274) (Kiliani) gefunden, bisweilen auch etwas +Glukose+ (~Votocek~ und ~Vondracek~) und +Xylose+ (~Hauers~ u. ~Tollens~); nach ~Ullik~ soll auch ein +Mannan+ in einigen Gummis enthalten sein, was der Bestätigung bedarf. Doch herrschen stets Arabinose und Galaktose beträchtlich vor. Daß arabisches Gummi bei der Oxydation mit Salpetersäure Schleimsäure gibt, fand bereits ~Guérin Varry~. Entsprechend der wechselnden Menge Galaktose zeigt auch die bei der Behandlung mit Salpetersäure entstehende +Schleimsäure+ verschieden hohe Beträge [bis 66,7%(?) ~Maumené~]. Man kann aus der Menge der gebildeten Schleimsäure (S. 282) die Galaktosemenge berechnen (~Tollens~, ~Kiliani~) (75 Schleimsäure = 100 Galaktose). Die rechtsdrehenden Gummiarten liefern meist weniger Schleimsäure als die linksdrehenden. ~Kiliani~ erhielt bei verschiedenen Gummis 14,3-38,3% Schleimsäure, bei Cordofan- und Senegalgummi 20,7-24%, (vgl. auch die Tabelle von ~Martina~ S. 437). Daneben treten Oxalsäure, Weinsäure (~Liebig~), Mannozuckersäure, Trioxyglutarsäure, Zuckersäure, Arabonsäure, Galaktonsäure auf. Den Pentosanen kommt die Phloroglucin- und die Orcin-Reaktion zu. Phloroglucin in Salzsäure (20%) gibt beim Erwärmen eine kirschrote Lösung (~Ihl~), die einen Absorptionsstreifen zwischen D und E ~Fraunhofer~ zeigt (~Tollens~, ~Wheeler~ und ~Allen~). Orcin in Salzsäure gibt in der Kälte eine blauviolette, beim Erwärmen erst rötliche dann violette Färbung, zuletzt blaugrüne Flocken, die in Alkohol gelöst ein Band zwischen C und D geben (~Reichl~, ~Reinitzer~, ~Allen~ u. ~Tollens~). Ebenso kommt die Eigenschaft des Gummis beim Kochen mit 12% Salzsäure Furfurol (S. 274) zu liefern (~Stone~ und ~Tollens~) den Pentosanen zu, und man kann aus der Menge des gebildeten Furfurols die Arabinose berechnen. G. arabicum ergab c. 28% (~Günther~), Kirschgummi 45,5-59% (~Chalmot~, ~Flint~ und ~Tollens~). Der Pentosangehalt des Gummis schwankt in weiten Grenzen zwischen 20,65% im australischen und 51,21% im argentinischen Gummi (~Hefelmann~). Die Cerasingummis enthalten mehr Pentosane als Galaktane (~Lemeland~). (Bei der Furfurolreaktion tritt auch Lävulinsäure und Ameisensäure auf.) ~Hefelmann~ fand keine Beziehung zwischen der Menge der Pentosen und dem Handelswert. (Vergl. auch die Tabelle von ~Martina~ S. 437). Im Gummi von _Acacia Senegal_ und anderen _Acacia_arten fand ~Rosenthaler~ neben Pentosen auch +Methylpentosen+ und ~Widtsoë~ und ~Tollens~ konnten Methylpentosane nicht nur in _G. arabicum_ und _Traganth_, sondern auch im Gedda-, Brasil- und Kirschgummi nachweisen. Möglicherweise enthält das _G. arabicum_ auch +Fucosan+. (S. 292). ~Edie~ erhielt (nach ~Kroeber~ und ~Rimbach~ bestimmt) Pentosen, als Arabinose berechnet, bei Cordofan: 33,52-35,49%, bei Senegal 33,66-34,59%. Die Galaktose (bestimmt durch Hydrolyse mit Essigsäure und Reduzieren mit Fehlingscher Lösung, enthält wohl auch die Pentosane, ~Tollens~) betrug bei Cordofan: 50,52-53,04%, bei Senegal: 51,72-53,17% (~Beam~). In dem rechtsdrehenden Gummi von _Acacia arabica_ ~Willd.~ fand ~Meininger~ 21,85% Galaktan und 50,43% Pentosane (die Hydrolyse lieferte Galaktose und Arabinose), in dem rechts- (+53,94°) drehenden Gummi von _Acacia horrida_ ~Willd.~: 27,36% Galaktan, 36,5% Pentosane und 2,83% Methylpentosane (die Hydrolyse lieferte Galaktose und Arabinose), in dem links- (-19,37°) drehenden Gummi von _Acacia pycnantha_ ~Benth.~: 58,72% Galaktan, 16,98% Pentosane und 2,92% Methylpentosane (die Hydrolyse lieferte Galaktose und Arabinose). Auch das Opuntiag. liefert Arabinose und Galaktose (~Harlay~), ebenso alle anderen untersuchten Acaciagummis (~Martina~, vgl. S. 437, ~Stone~) und das Pfirsich-, Kirsch- und Pflaumengummi (~Stone~, ~Bauer~) -- Kirschgummi ist ein gutes Material zur Arabinosedarstellung (~Bauer~, ~Kiliani~) -- ferner das Rübengummi (~Lippmann~), das Gummi von _Mangifera indica_ (~Lemeland~), das Weingummi (~Hubert~). Der G. von _Cochlospermum Gossypium_ und das von _Feronia elephantum_ liefern bei der Hydrolyse Galaktose und eine Pentose, die mit Arabinose nicht identisch ist (~Lemeland~). Das +Chagualgummi+ liefert Xylose und i-Galaktose (~Winterstein~), ebenso das Laplatagummi, aber kein Acacieng. gab Xylose (~Hauers~), Es enthalten Ostafrikan. G.: 22,59% Galaktan, 29,53% Pentosane; _Cochlospermum Gossyp._: 45,28% Galaktan, 32,97% Pentosane (~Lemeland~); _Feronia elephantum_: 51,84% Galaktan, 40,16% Pentosane; Aprikosengummi: 23,6% Galaktose, 48,57% Arabinose (~Lemeland~); Chagualgummi lieferte: 28,47% Galaktose, 45,29% Pentose (~Winterstein~); _Mangifera indica_ G. 30,36% Galaktose, 42,06% Pentose; Laplatag.: 0,62% Galaktose, 55,31% Pentosen. Nach ~O’Sullivan~ sind aber Arabinose und Galaktose nur die +End+produkte der Hydrolyse und es entstehen zunächst Zwischenprodukte, beim arabischen Gummi inaktive, beim Geddagummi rechtsdrehende. Diese sauren Zwischenprodukte zerfallen dann in Arabiose (Arabinon) bzw. Arabinose und in einfachere Säuren und diese dann erst bei mehrstündiger Hydrolyse in d-Galaktose und eine stark rechtsdrehende +Gummisäure+, die ~O’Sullivan~ +Geddinsäure+ (C₂₃H₃₈O₂₂) nannte. Im arabischen Gummi sind vielleicht Arabinose und Galaktose als Ester einer +Isogeddinsäure+ (~Zeisel~, ~O’Sullivan~ nennt sie +Arabinsäure+) (C₂₃H₃₈O₂₂) vorhanden. Die Gummisäuren sind starke Säuren, werden nur durch abs. Alkohol aus ihren Lösungen gefällt und +geben bei weiterer Hydrolyse keine Zucker+. ~O’Sullivan~ nimmt an, daß die Gummis resp. die Arabinsäure +gemischte Glykosidogummisäuren+ der allgemeinen Formel: C₂₃H₃₈₋₂ₙO₂₂₋ₙ.n C₁₂H₂₀O₁₀.p C₁₀H₁₆O₈ Gummisäure Galaktan Araban (Geddinsäure) enthalten, bei denen n eine konstante, p eine variable Zahl ist. Die Arabinsäure des G. arabicum faßt ~O’Sullivan~ als +Diaraban-Tetragalaktan-Isogeddinsäure+ auf = C₂₃H₃₀O₁₈.4 C₁₂H₂₀O₁₀.2 C₁₀H₁₆O₈ = C₉₁H₁₄₂O₇₄ (Mol.-Gew. 2418). Werden diese Araban-Galaktan-Geddinsäuren vorsichtig hydrolysiert, so wird zunächst der Arabanrest als Arabinon (C₁₀H₁₈O₉ α_{D} = +198,5°) abgespalten (s. oben) und es entsteht eine n-+Galaktangummisäure+, die dann in Galaktose und die entsprechende Gummisäure (Geddinsäure oder Isogeddinsäure) gespalten wird. Andere (~E. Fischer~) halten die Arabinsäure für eine der Lakto- und Maltobionsäure analog konstituierte Glykosidosäure. Die ~Sullivan~sche Formel kann übrigens nicht richtig sein, da auch Methylpentosane im Gummi nachgewiesen sind (s. oben). Alle Gummis enthalten (durch Dialyse zu entfernenden) reduzierenden Zucker, bei Cordofan Hashab von einer Spur bis 0,15% (~Edie~). Der +Zucker+gehalt des G. arabicum des Handels schwankt ebenfalls, im allgemeinen beträgt er 0,6-1,1% (~Reinitzer~). Im Acaciengummi sind mindestens vier +Enzyme+ (Gummifermente, Gummasen) vorhanden, eine +Oxydase+, eine +Peroxydase+ und eine +Amylase+ (Malzdiastase) (~Wiesner~, ~Bourquelot~, ~Tschirch~, ~Reinitzer~, s. oben S. 414), sowie +Emulsin+ (Amygdalin spaltend), das ~Volcy-Boucher~ in allen Gummis und Gummiharzen auffand. ~Bertrand~ hält die Gummioxydase für Lakkase. Eine große Menge von Reaktionen des Gummis sind auf diese Enzyme zurückzuführen, z. B. wird Pyrogallol durch Gummi in Purpurogallin übergeführt (~Struwe~ 1872 -- darauf gründeten ~Clermont~ und ~Chautart~ 1882 eine fabrikatorische Darstellung des Purpurogallins). Daß Guajaktinktur durch G. arabicum gebläut wird, erkannten zuerst ~Göttling~ und ~Boulay~ (1809). Auch die Unverträglichkeit des G. arabicum mit zahlreichen Arzneimitteln [Pyramidon (~Tanzi~), Chinaextrakt, Pyrogallol, Guajakol, Vanillin, Thymol, Phenol, Creosol, Eserin, Adrenalin, Morphin] beruht auf dem Gehalt an Enzymen, besonders Oxydasen, ~Traubes~ Oxydationsfermenten (~Bourquelot~) und deshalb läßt die Pharmac. helvetica den Gummischleim eine halbe Stunde im Dampfbade erhitzen und dadurch die Enzyme «abtöten». Ein so behandelter Schleim bläut Guajak nicht mehr. Gummipulver eignet sich aus dem gleichen Grunde +nicht+ zum Verdünnungsmittel zu starken Opiums. Die Oxydase wird im +trockenen+ G. arabicum selbst durch zweistündiges Erhitzen auf 100° nicht zerstört, ja nicht einmal durch einstündiges Erhitzen auf 115°. Erst beim Erhitzen auf 120° ist sie abgetötet, das Gummi löst sich dann aber nicht mehr in Wasser und quillt nur darin auf. Auf die Oxydasen haben Aldehyde (z. B. Formalin) keinen Einfluß (~Seligmann~). Daß im Gummi +stickstoffhaltige Bestandteile+ sich finden, war bisher übersehen worden, nur ~Guérin~ gibt einmal 0,14% N an. Ich habe mit ~Stevens~ gezeigt, daß bei vielen Gummis zwar die ~Lassaigne~sche Stickstoffprobe mit Na negativ ausfällt, daß dagegen mit KOH sich stets Ammoniak entwickelt und Pyrrol gebildet wird. ~Bach~ zeigte dann, daß die von ihm abgeänderte ~Lassaigne~sche Reaktion gelingt, wenn man statt Na viel K nimmt. ~Meininger~ fand in allen Acaciengummis (_A. Senegal_, _A. pycnantha_, _horrida_, _Adansonii_, _arabica_) Stickstoff und zwar zwischen 0,71 und 2.19% (in Senegal z. B. 1,81%. ~Rideal~ fand bei Acaciengummis nur 0,031 bis 0,082% N). Das Gummi von _Melia Azadirachta_ enthält 4,49%, das von _Feronia elephantum_ 1,57, das von _Anacardium occident._ 0,92% N. Woher der Stickstoff stammt ist unbekannt, vielleicht sind die Enzyme Glukoproteïde. Ob das Schäumen der Gummilösungen auf den Enzymen beruht (~Wiesner~) wissen wir nicht bestimmt. In den schlechteren Gummisorten finden sich auch +Gerbstoff+, +Harz+, +aromatische Substanzen+ (der Art von ~Czapeks~ Hadromal), +Farbstoffe+. ~Bourquelot~ führt die Färbung gefärbter Gummis darauf zurück, daß die Oxydasen die aus der Rinde mit aufgenommenen Gerbstoffe im feuchten Zustande oxydieren und dunkler färben. Gegenden mit vorwiegend trockenem Klima sollen daher weniger gefärbtes Gummi liefern. Niemals enthält reines G. arabicum von +Stärke+ mehr wie Spuren (s. oben S. 441), Kristalle oder Reste von Zellhäuten. ~Fromm~ stellte experimentell fest, daß längeres Lagern die Eigenschaften des Gummis verändert. Bei den guten Gummisorten schwankt der +Wasser-+ und +Aschegehalt+ nur in sehr engen Grenzen (s. oben S. 444). ~Hauke~ fand 1,7-3,1 (~Flückiger~ 2,5 bis gegen 4) Asche und gibt als obere Grenzzahl 3,5% an. Oberste Grenze für Wasser 15%, für Asche 4% (Pharm. helv. IV), 5% (D. A. V). Die Asche ist rein weiß. 100 g Cordofangummi enthielten 0,198-0,266 Mg, 0,596-0,730 K und 0,773-0,818 Ca (~Beam~). Über die Zusammensetzung der Asche gibt folgende Tabelle von ~Rideal~ und ~Youle~, die auch andere Gummis berücksichtigt, Aufschluß. -------------------+------+------+-------+-------+-------+---------- | | | | | | Calcium- |Asche | NaCl | K₂CO₃ | CaCO₃ | MgCO₃ | phosphat | | | | | | usw. -------------------+------+------+-------+-------+-------+---------- Aden-Gummi | 3,29 | 0,29 | 17,2 | 53,9 | 29,48 | -- Cap-Gummi | 3,05 | 1,14 | 15,4 | 57,9 | 28,89 | -- Indisches Gummi | 2,00 | 0,37 | 12,6 | 58,5 | 29,82 | -- Eastern-Gummi | 2,98 | 0,24 | 26,8 | 43,5 | -- | -- Senegal-Gummi | 3,03 | 0,14 | 21,5 | 54,9 | 15,96 | -- Bestes arab. Gummi | 3,01 | 0,94 | 24,2 | 57,25 | -- | -- Gutes arab. Gummi | 3,15 | 2,30 | 29,9 | 46,23 | -- | -- Amrad arab. Gummi | 2,24 | 0,14 | 7,39 | 67,2 | 16,62 | 4,86 Ghatti arab. Gummi | 2,45 | 0,25 | 7,8 | 53,5 | 8,4 | 33,8 Austral. Gummi | 2,09 | 1,91 | 3,21 | 20,8 | 0,45 | 65,9 Brasil. Gummi | 1,39 | 0,46 | 17,74 | 11,8 | 0,45 | 67,14 Das Verhalten zahlreicher Gummis zu Reagentien studierten ~Masing~ (1879), ~Holfert~ (1888), ~Martina~ (1894, bestimmte auch die Schleimsäuremengen, vgl. S. 437) und ~Hirschsohn~ (1904). Es ist aber dabei nicht viel herausgekommen: eine scharfe Charakterisierung ist zurzeit noch nicht möglich. =Lit.= Älteste Untersuchungen der Gummiarten: ~Fourcroy~ et ~Vauquelin~, Ann. d. chim. 6 (1790) 178, ~Vauquelin~, Ebenda 54 (1805), ~Cruikshank~, Scher. Journ. 3, 289, ~Laugier~, Ebenda 72 (1909) 81, Gilb. Ann. 42 (1812) 228. Ältere Analysen von ~Berzelius~ (Ann. de chim. 95, 77), ~Prout~ (Phil. transact. 1827), ~Guérin-Varry~ (Journ. d. chim. méd. 7, 742), ~Guibourt~, (Ann. Pharm. 9, 221 und Drog. simpl.), ~Mulder~ (Journ. pr. Chem. 16, 246. Pharm. Centralbl. 1839, 137), ~Goebel~, ~Gay-Lussac~ u. ~Thénard~, ~Berthollet~, ~Saussure~, -- die Analysen wiedergegeben in ~Pereira~, Heilmittellehre II, 618 und bei ~Meininger~ (s. unten). -- ~John~, Schweigg. Journ. 6 (1812) 374. -- ~Guérin~, Ann. chim. phys. (2) 49 (1832) 248, Schweigg. Journ. 65 (1832) 220, Pogg. Ann. 29 (1833) 50. -- ~Lambert~ u. ~Gieseke~, Schweiggers Journ. 1826. -- ~Lassaigne~, Arch. Pharm. 1852. -- ~Neubauer~, Journ. pr. Ch. 62 (1854) 193 und Lieb. Ann. 102 (1857) 105. -- ~Gelis~, Compt. rend. 44, 144. -- ~Urrn~ in Gmelins Handb. 1862, IV, 642. -- ~Frémy~, Sur la compos. et la mode de production des gommes dans l’organisat. végét. Journ. pharm. 1860, 81. -- ~L. Patrouillard~, Rech. sur la gomme arabique, sur la transformat. en dulcite. Journ. pharm. 1879, 532. -- ~Graeger~, N. Jahrb. d. Pharm. 38, 129. -- ~Städeler~, Lieb. Ann. 121, 26. -- ~Hekmeyer~, Rép. chim. appl. 1858, 214. -- ~Jolly~, Et. sur les gommes Thèse. Paris 1870. -- ~Giraud~, Thèse Paris 1875. L’Union pharm. 16, 249. -- ~E. Masing~, Vergl. Unters. d. wichtigsten Handelssorten d. arab. Gummis u. seiner Surrogate. Arch. Ph. 15 (1879) 216 u. 17 (1881) 34. -- ~Koch~, Über Holzgummi. Sitz.-Ber. d. Dorp. Nat. Ges. 1886 und Holzgummi u. dessen Verbreitung im Pflanzenreiche. Ph. Z. f. Rußl. 1886. -- ~Vée~, Et. sur les gommes dit. arab. Thèse Paris 1888. -- ~Lutz~, Contribut. à l’étude chimique et botanique des gommes. Thèse Paris 1895. -- ~Gelis~, Journ. pr. Chem. 71, 378. -- ~Williams~, Chem. News 58, 224. -- ~Scheibler~, Ber. d. chem. Ges. 1, 58 u. 108, 6, 612, 17, 1729. -- ~von Lippmann~, Ebenda 17, 2238. -- ~Tollens~, Handb. d. Kohlenhydrate, Landw. Versuchsstat. 39, 416 und Chem. Zeit 25, 857. -- ~Wheeler~ und ~Tollens~, Ber. d. chem. Ges. 22, 1046 und Zeitschr. d. Ver. f. Rübenzuckerind. 39, 848. -- ~Allen~ und ~Tollens~, Lieb. Ann. 260, 289. -- ~Widtsoë~ und ~Tollens~, Ber. d. chem. Ges. 1900, 143. -- ~Hauers~ u. ~Tollens~, Ebenda 1903, 3306. -- ~Herzfeld~, Zeitschr. Ver. f. Zuckerind. 41, 667. -- ~Guichard~, Bull. soc. chim. (3) 19, 9. -- ~Maumené~, Bull. Soc. chim. (3) 9, 138. -- ~Garros~, Contrib. à l’étude d. acid. gumm. etc. (Prunose) Thèse, Paris 1894. -- ~Ullik~, Chem. Centralbl. 92, 432. -- ~Rümpler~, Ber. d. chem. Ges. 33, 3475 -- ~Béchamp~, Bull. soc. chim. III, 7, 586, Compt. rend. 51, 255. Journ. pharm. 1878, 51. -- ~Reichl~, Dingl. Polyt. J. 235, 232. -- ~Reinitzer~, Zeitschr. phys. Chem. 14, 453. -- ~Hefelmann~, Wasser- u. Pentosangeh. d. G. a. Zeitschr. f. öffentl. Chem. 1901. -- ~O’Sullivan~, Journ. chem. soc. 1884, 41 und 1891, 1029 (Chem. Centralbl. 1890 u. 1892). Chem. News 48, 301; 61, 23; 64, 271. Chem. Zeit. 25, 569. -- ~Zeisel~, Gummi in Wiesner, Rohstoffe. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Tschirch~, Gummi in Realenzyklop. d. ges. Pharm. 2. Aufl. -- ~Kröber~ und ~Rimbach~, Zeitschr. Angew. Chem. 15 (1902) 477. -- ~Grélot~, Journ. pharm. 1906. -- ~Kiliani~, Ber. d. chem. 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Sud-Est 1907. -- ~Bourquelot~, L’orig. d. l. color. d. cert. gommes. Journ. pharm. 1897; 164. =Enzym=: ~Göttling~, Bull. d. pharm. 1 (1809), 220. -- ~Boulay~, Ebenda, p. 225. -- ~Planche~, Journ. de pharm. 6 (1820), 16. -- ~Struwe~, Lieb. Ann. 163 (1872), 162. -- ~Clermont~ und ~Chautard~, Compt. rend. 94. -- ~Wiesner~, Über d. Gummiferment. Sitzungsber. d. Wien. Akad. 92 (1885), 40 (Monatshefte f. Chem. 6 [1885] 592). -- ~Béchamp~, Faits pour serv. à l’hist. d. l. g. a. Bull. soc. chim. 9 (1893) 45. -- ~Lutz~, Contrib. à l’étud. chim. et bot. des gommes Thèse. Paris 1895. -- ~Bertrand~, Compt. rend. 120 (1895), 268. -- ~Bourquelot~, Sur la pres. d. ferm. oxyd. dans quelqu. subst. médicam. C. r. Soc. d. biolog. 4 (1897), 25. -- ~Grafe~, Stud. über d. Gummiferm. ~Wiesner~ Festschrift 1908. -- ~Mikosch~, Sitzungsb. d. Wien. Akad. 115 (1906) 911. -- ~Grüss~, D. Oxydasen u. d. Guajacreaktion. Ber. d. d. Bot. Ges. 1898, 134. -- ~Tschirch~ und ~Stevens~, Japanlack. Arch. Pharm. 1905, 532 und über d. Gummienzyme. Pharm. Centralh. 1905, 501. -- ~Bach~, Stickstoffgeh. d. Oxydationsferm. Ber. d. d. chem. Ges. 1908, 226. -- ~Reinitzer~, Über d. wahre Natur d. Gummifermentes. Zeitschr. phys. Chem. 14 (1890) 453 u. über d. Enzyme d. Acacieng. Ebenda 61 (1909) 352. -- ~Tschirch~, Chem. u. Biolog. d. pflanzl. Sekrete. Leipzig 1908. -- ~Volcy-Boucher~ (Emulsin). Bull. soc. Pharm. Sud-Est 1908, 297. -- ~Firbas~, Einw. von G. auf Morphin. Pharm. Post 1905. =Physikalische Eigenschaften.= Das Gummi verhält sich im allgemeinen wie ein +Kolloid+ (~Graham~), doch zeigt die Lösung =osmotischen Druck=, verhält sich also nicht wie ein typisches Kolloid (~Lineburger~). Aus dem kryoskopischen Verhalten leiten ~Gladstone~ und ~Hibbert~ ein Molekulargewicht der Arabinsäure von c. 2000 und ~Lineburger~ ein solches von 2400 ab, was mit der ~O’Sullivan~schen Formel (s. oben S. 445) gut stimmen würde. Der +osmotische Druck+ einer 6% Lösung von Cordofangummi betrug, bestimmt im Osmometer von ~Moor~ und ~Roaf~, bei 32° C.: 152-170 mm Quecksilber, bei 22° C.: 141 mm. Beim Senegalgummi betrug der osmotische Druck bei 16,5° C. 114 mm Quecksilber. Das =spezifische Gewicht= ist wegen der oft eingeschlossenen Luft nicht leicht zu bestimmen. Reines Gummi hat bei 15° ein spez. Gewicht von 1,487, bei 100° getrocknet: 1,525 (~Flückiger~). Ein anderes Muster Sudangummi zeigte ein spez. Gewicht von 1,316-1,482 (~Pereira~). Das spez. Gewicht des Angra-Pequenagummi war = 1,123-1,134 (~Hartwich~). Die =Härte= ist verschieden -- man unterscheidet ja im Handel hartes und weiches Gummi --, im Durchschnitt ist sie etwa die des Steinsalzes. =Brechungsvermögen.= Das G. arabicum ist infolge innerer Spannungen doppelbrechend. Wichtig für die Unterscheidung der Sorten ist die Bestimmung der =optischen Aktivität=, des Drehungsvermögens. Sie variiert bei Cordofan- und Senegalgummi bei einer 10% Lösung im 100 mm-Rohr zwischen -1° und +3°21′, in abnormen Fällen zwischen -5° bis +9°. Die besten Sorten sind stets linksdrehend (~Fromm~). ~Edie~ fand bei Untersuchung zahlreicher Muster, daß +alle+ Cordofan-Hashab-Gummis +linksdrehend+ sind und die Drehung in engen Grenzen schwankt. Auch von anderen Beobachtern wurden Cordofangummi und Senegalgummi so gut wie ausnahmslos linksdrehend gefunden (~Wiesner~, ~Scheibler~, ~Flückiger~). (In der Literatur ist meist die direkte Drehung α_{D}, nicht die spezifische α_{D} angegeben.) Die +Drehung+ des Cordofangummi schwankte nach ~Edie~ bei 10% Lösung und 100 mm Rohr zwischen -2,77 und -3,14°, +also in sehr engen Grenzen+ und betrug bei 10% Lösung und 100 mm Rohr nach der Hydrolyse: +5,35 bis +5,56° (22 Muster). Bei Senegalgummi betrug die Drehung vor der Hydrolyse: -2,70 bis -2,93, nach der Hydrolyse: +5,42 bis +5,48°, bei Gedarefgummi -3,09° (nachher +5,33°). Wie hieraus ersichtlich, ist auch die Bestimmung der Drehung nach der Hydrolyse von Wichtigkeit. ~Lemeland~ fand linksdrehend außer Cordofang. auch Aprikosengummi -1° 93, _Mangifera indica_ -25° 33, _Feronia elephantum_ -6° 41, ~Mannich~ (10% Lös. 100 mm Rohr) die Gummis von _A. Senegal_ -1,1°, _A. spirocarpa_ -2,6°, ~Dieterich~: Amradgummi linksdrehend, ~Fromm~ Cordofang.: von -2° 23′ bis -2° 47′, Senegal: 1° bis 2° 51′, ~Meininger~ das Gummi von _A. pycnantha_ -19,37°. Doch kommen Anomalien vor. So beobachtete ~Fromm~ Rechtsdrehung: bei arab. Gummi +1° und bei Senegal +9° 8′, +3° 21′, +8° 31′ und -4° 52′ und ~Flückiger~ und ~Wiesner~ fanden das _Feronia_gummi rechtsdrehend, aber das ist beim Cordofan- und Senegalgummi -- ich zweifle nicht daran -- auf Vermischung mit Gummis, die nicht von _A. Senegal_ stammten, zurückzuführen. Andere Gummis zeigen dagegen +stets+ Rechtsdrehung. ~Scheibler~ fand (1873), daß unter den Sennaargummis rechtsdrehende sich finden, was ~Flückiger~ bestätigte. Geddagummi ist stets rechtsdrehend. Die Drehung schwankt zwischen α_{D} +45 und +54° (~O’Sullivan~) ~Guichard~ fand Salabreda- und berberisches Gummi rechtsdrehend. Ebenso dreht Ghezirehgummi regelmäßig rechts (c. +3°) wie Mogadorgummi (~Flückiger~). Das Gummi von _A. horrida_ (Angra Pequena-G.) drehte + 2° 20′, +3° und +3° 20′, nach Extraktion mit Alkohol +3°, +3° 40′ und +4° 20′ (~Hartwich~). ~Lemeland~ fand rechtsdrehend (α_{D}?): Gezireh +45°, Brasil +46° 94′, _Cochlosperm. Gossyp._ +77° 152′. ~Mannich~ fand rechtsdrehend das Gummi von _Acacia Kirckii_ +2,6°, _A. Seyal_ +5,1°, _A. arabica_ +7,98°, _A. stenocarpa_ +4,75°. Weitere Angaben im Kapitel Handelssorten (S. 436 u. 437). Im allgemeinen findet man angegeben, daß die Gummis, die relativ wenig (bis 20,7%) Schleimsäure bilden, rechts drehen, die, welche über 21% Schleimsäure bilden, dagegen links (~Wiesner~). Das scheint aber nicht richtig zu sein. Es fehlt eine speziell hierauf gerichtete Untersuchung. Eine der wichtigsten Methoden zur Wertbestimmung des Gummis ist die Bestimmung der =Viskosität=. Sie erfolgt im Viskosimeter. Der erste, der Bestimmung der Viskosität der Gummata vorschlug, war ~Sacc~ (1857). Er benutzte das Viskosimeter von ~Ochs~ (Bestimmung der Zeit des Einsinkens eines Senkkörpers). ~Duclaux~ bediente sich des Compte-gouttes de Salleron, dem er die Form einer Pipette gab. Dann beschrieben ~Vée~ (1888) und ~Lunge~ (1892) Viskosimeter für Gummilösungen. ~Lunges~ Viskosimeter ist eine Spindel von bestimmter Schwere. Man bestimmt die Zeit, die diese braucht, bis sie bis zu einer bestimmten Marke eingesunken ist. Andere Viskosimeter bestimmen die Ausflußgeschwindigkeit des Schleims aus einer Bürette mit bestimmter Ausflußöffnung. So beruhen z. B. das +Viskosimeter+ von ~Engler~, das ~Reischauer~sche und das nach letzterem konstruierte von ~E. Schmid~ darauf, die Ausflußgeschwindigkeit aus einem Rohre bestimmter lichter Weite (2 mm) zu messen. Zum Vergleich dient entweder Wasser, Rüböl oder eine Rohrzuckerlösung bestimmter Konzentration. ~Fromm~ benutzte ~Englers~ Viskosimeter für Gummilösungen. Das sehr gute Ausfluß-Viskosimeter von ~Merveau~ (Fig. 151) berücksichtigt den Einfluß, den Druckhöhe, Temperatur und Querschnitt der Ausflußöffnung besitzen. Seltener benutzt wird das ~Ostwald~sche +Viskosimeter+. Das teuerste, aber beste, ist das +Torsionsviskosimeter+ (Fig. 150). Die +Bestimmung der Viskosität+ mit dem Torsionsviskosimeter wurde von ~Beam~ mit einer 20 oder 30% Lösung gemacht. [Illustration: Fig. 150. Torsionsviskosimeter.] [Illustration: Fig. 151. Viskosimeter von +Merveau+.] Groß ist die Zahl der für Öle und Firnisse vorgeschlagenen Viskosimeter. Ich nenne nur die von ~Huguet~, ~Schubler~, ~Redwood~, ~Allen~, ~Schmid~, ~Engler~, ~Barbey~, ~Valenta~. Dann seien die Viskosimeter von ~Neumann~, ~Wender~, ~Mayer~, ~Hess~, ~Yvon~, +Grorert+ und ~Demichel~ und das Laktoviskosimeter von ~Micault~ genannt. Sie sind auch für Gummilösung brauchbar. ~Beam~ fand 1906 mit dem Torsionsviskosimeter von ~Doolittle~, bei 90° F. gemessen, die +Viskosität+ bei Cordofan hard bei 10% Lösung = 94-112, bei 20% Lösung = 93,5-111, bei Cordofan softer bei 20% Lösung = 87,5-92. Bei Senegalgummi bei 10% Lösung = 83-98, bei 20% Lösung = 92,5-104 (bez. der Umrechnung der Grade vgl. bei ~Beam~. Die Temperatur muß genau beachtet werden). Bestes Cordofan gross gum (Turkey) zeigte im Torsionsviskosimeter 32° Retardation entsprechend der Viskosität einer 61,85% Rohrzuckerlösung. ~Merveau~ bestimmte (1910) mit einem von ihm konstruierten Ausflußviskosimeter (Fig. 151) bei 15° die Viskosität von Cordofangummi zu 5,27, die des Gomme pelliculée de l’Inde zu 7,9, die des Gomme d’Aden Mokri zu 3,81. Mit steigender Temperatur geht die Viskosität herab. Sie beträgt z. B. im obigen Falle beim Cordofangummi bei 30°: 4,12, bei 40°: 3,87 und bei 50° nur noch 3,28. Die Viskosität des Angra Pequena-G. betrug 1,72, 2,052, 3,39 und 3,67 (~Hartwich~). Bei gewöhnlicher Temperatur bereitete Lösungen haben eine größere Viskosität, wie heiß bereitete gleicher Konzentration. Beim Aufbewahren des Gummis nimmt die Viskosität ab. Gummis mit hoher Klebkraft zeigen auch eine hohe Viskosität, einen hohen Säuregrad und eine negative Drehung (~Fromm~). Methoden zur +Bestimmung der+ =Klebefähigkeit= rühren von ~Dalén~ und ~Hirschsohn~ her. Die Klebefähigkeit des Gummi prüfte ~Hirschsohn~ in der Weise, daß er eine bestimmte Menge Gips mit einer bestimmten Menge 10% Gummilösung verrieb und die Masse zu Stangen formte. Diese wurden durch unten angehängte Gewichte auf ihren Zerreißungspunkt geprüft. G. arabicum riß bei 1000 g Belastung, Senegalgummi bei 1600 g, australisches Gummi bei 1400 g, ostindisches Gummi bei 1500 g («Kunstgummi» erst bei 1800-2000 g) Belastung. Die ~Dalén~sche Methode beruht darauf, daß man Saugpapier von bekannten Festigkeitseigenschaften mit der zu prüfenden Gummilösung tränkt, trocknet und von neuem nach den bekannten Methoden die Festigkeit prüft. Auch die Bestimmung der =Emulgierungsfähigkeit= ist praktisch nicht ohne Bedeutung. ~Hirschsohn~ hat sie bei verschiedenen Gummis bestimmt. =Lit.= +Osmometer+: ~Moor~ and ~Roaf~, Biochemic. Journ. 7, 34. -- +Viskosimeter+: ~Sacc~, Essai des gommes employées pour épaissir les couleurs. Journ. d. pharm. 1867, 119. -- ~Duclaux~, Ann. chim. phys. 21 (1870) u. 25 (1872). -- ~Vée~, Etude sur les gommes dites arabiques. Thèse 1888. -- ~Lunge~, Nouv. viscos. pour l’examen des gommes. Ann. chim. an. 1896, 411. -- ~Beam~, Second Report of Wellcome Res. Labor. 1906, 232. -- ~M. J. Merveau~, Recherches sur la viscosité et en particulier sur la viscosité des gommes. Thèse Paris 1910 (hier d. Literatur). -- ~Lunge~, Zeitschr. angew. Chem. 1895, 437. Apoth. Zeit. 1897, Nr. 75, 1898, Nr. 22. -- ~Fromm~, Zeitschr. anal. Chem. 40 (1901) 143. -- +Drehung+: ~Graham~, Lieb. Ann. 121, 56. -- ~Gladston~ u. ~Hibbert~, Chem. News 59, 277. -- ~Linebarger~, Am. journ. sc. (3) 426. -- ~Guichard~, Bull. soc. chim. (3) 9, 19. -- ~Dieterich~, G. vom Hinterland von Angra Pequena a. a. O. -- ~Béchamp~, Compt. rend. 51, 255. -- ~Scheibler~ a. a. O. -- ~Wiesner~ a. a. O. -- ~Flückiger~ a. a. O. -- ~Mannich~, Gummiarten Deutsch-Ostafrikas. Tropenpfl. 1902, 201. -- ~Fromm~, Zeitschr. Anal. Chem. 40 (1901), 143. -- ~Dalén~, Mitt. d. k. techn. Versuchsanstalt 1894, 149. -- ~Hirschsohn~, Pharm. Zeitschr. f. Rußl. 1893, 803. =Verfälschung und Prüfung.= Für pharmazeutische Zwecke kommen +nur+ die +besten+ Cordofan- und Senegalsorten in Betracht. Als Klebstoff sind alle anderen guten G. zulässig. Das _Gummi arab. officin._ muß sich zu einem hellgelblichen, schwach sauer reagierenden, geruchlosen Schleime langsam aber vollständig lösen, der die oben (S. 442) angegebenen Eigenschaften besitzt und Fehlingsche Lösung kaum sichtbar reduziert. Jodlösung darf auch in der heiß bereiteten Lösung weder eine blaue (Stärke) noch eine weinrote Färbung (Dextrin) geben. 10 ccm des Gummischleims (1 = 10) sollen sich z. B. mit einem Tropfen n./10 Jod rein gelb färben (Pharm. helv. IV). Auch nach dem Kochen und Wiedererkalten darf die Mischung durch einen weiteren Tropfen der Jodlösung keine Violettfärbung annehmen. Dextrinhaltiges Gummi dreht stark rechts. Auf +Dextrin+, das öfter im Gummi vorkommt, kann mit Anilinsulfat (~Pietro~) oder auch in der Weise geprüft werden, daß man 3 ccm einer Lösung, die aus 15 gtts Liqu. ferr. sesquichlor., 15 gtts einer gesättigten Lösung von +rotem+ Blutlaugensalz, 5 gtts verd. Salzsäure (sp. Gew. 1,165) und 60 ccm Wasser besteht, mit 6 ccm einer 20% Lösung des G. vermischt. Die Lösung von reinem G. wird gelb und bleibt es 10-12 Stunden lang, bei Anwesenheit von Dextrin wird die Lösung blau. Die Prüfung auf +Gelatine+ (Leim) gründet ~Gautier~ auf die Eigenschaft derselben durch Formaldehyd in der Wärme unlöslich zu werden (G. wird nicht angegriffen). G., das mit +schwefliger Säure+ gebleicht wurde (Verfahren ~Piciotto~), gibt mit Baryumchlorid eine Fällung, solches, das mit +Chlor+ gebleicht wurde, mit Silbernitrat. ~Piciotto~ empfahl auch Reinigung gefärbter G. mit Alaun und KOH, so daß auch hierauf zu prüfen wäre. Auch mit Schwefelsäure soll G. gereinigt werden (?). Reines Cordofang. erhärtet mit Borax zu einer gummiähnlichen Masse, dasselbe geschieht mit bas. Bleiacetat und Eisenchlorid, mit Kalisilikat gelatiniert es. Eine Mischung von Traganthschleim mit Acaciengummi ist dicker als die entsprechende reine Mischung (~White~). ~Vée~ empfiehlt als bestes Mittel, Verfälschungen aufzudecken, Bestimmung des +Rotationsvermögens+, und dem möchte ich beistimmen (vgl. oben S. 449) +und außerdem Bestimmung der Drehung nach der Hydrolyse vorgeschlagen+. +In der Pharmazie sollte nur schwach linksdrehendes G. zugelassen werden.+ Für die Technik ist das wichtigste die Bestimmung der +Viskosität+ (~Hefelmann~). ~Fromm~ hält für die Wertbestimmung wichtig festzustellen: Löslichkeit, Viskosität, Säuregrad, Drehung, Dehnung und Klebfähigkeit, sowie Feststellung, ob die Lösung schäumt und ob sie reduziert (s. oben S. 427 u. 433). ~Rideal~ und ~Youle~ (1891) halten auch die Bestimmung des Wassergehaltes für ein gutes Mittel zur Charakterisierung und Aufdeckung von Fälschungen. ~Jaksch~ u. and. empfehlen Bestimmung der Löslichkeit. Auch die Bestimmung der Emulgierungsfähigkeit ist bei _G. a. officinale_ nicht ohne Bedeutung (~Hirschsohn~). Mit dem Mikroskop lassen sich die meisten Fälschungen des +Pulvers+, besonders bei Anwendung von Jodlösung, erkennen: +Traganth+ (vgl. Fig. 140, S. 397), +Dextrin+ (schon von ~Hager~ 1869 beobachtet, und oft vorkommend) (vgl. Fig. 73, S. 200), +Stärke+ (Reisstärke, ~Wilson~), +Mehle+ (Maismehl, bis 50%! ~Fernau~). Man geht von einem Glycerinpräparat aus. Die Fragmente von beigemengtem wasserlöslichem Dextrin färben sich mit etwas jodhaltigem verd. Glycerin violett-rötlich, bevor sie sich lösen (~Koch~). Als anorganische Verfälschung des Pulvers wurde Borax (5%, ~Fernau~) beobachtet. Im Senegalg. findet sich bisweilen _Bdellium_ (s. oben S. 425), ein Gummiharz, das zu 70% in Alkohol und Äther löslich ist. Als Ersatzmittel des G. a. kommen jetzt nur in Betracht: Capgummi, Berberisches G. und die blassen Varietäten vom indischen Amradg. und Ghattig. (~Maben~). Nur für technische Zwecke kommen in Betracht (für pharmazeutische Zwecke auszuschließen!) die +Surrogate+: Gummi aus _Mesembryanthemum_früchten (1898), Kunstgummi aus Dextrin, durch NaOH und Na₂CO₃ löslich gemachtes Kirschgummi, der gummöse Rückstand der Myrrhentinkturbereitung (gibt einen vorzüglichen Klebleim! ~Alcock~). Ein neueres Gummiersatzmittel besteht aus mit Stärke versetztem eingetrocknetem Carageenschleim (Tropenpflanzer 1905, 282). =Lit.= ~Hopff~ (Verhalten gegen Reagentien), Jahrb. prakt. Pharm. 15, 234. -- ~Hirschsohn~, Vgl. Vers. mit Natur- und Kunstgummi. Pharm. Zeitschr. f. Rußl. 1893 und Zeitschr. Allg. Österr. Ap. Ver. 1904. Ph. Centr. H. 1904, Nr. 20. -- ~Maben~ (Reagentien), 1891 a. a. O. -- ~Karl Dieterich~, Wertbestimmung. Zeitschr. anal. Ch. 40, 408. -- ~Gautier~, Compt. rend. 1898. -- ~White~ (Vergleich mit Traganth). Brit. Pharm. Conf. 1904. -- ~Wilson~, Reisstärke. Pharm. Journ. 1889, Nr. 988. -- ~Masing~, Arch. Ph. 1879/80. -- ~Holfert~, Jahrb. d. Ph. 1888. -- ~Rideal~, ebenda 1892. -- ~Martina~, ebenda 1894. -- ~Jaksch~, Chem. Zeit. 1891, 77. -- ~Rideal~ und ~Youle~, Chem. Drugg. 1891, 788. -- ~O. Fromm~, Wertbest. v. G. a. Zeitschr. anal. Chem. 40 (1901), 143. -- ~Hartwich~ in Pharm. Praxis. -- ~Koch~, Atlas. -- ~A. Fernau~, Untersuchungsergebn. b. offiz. Präp. u. Drog. im Jahre 1902/1903 in Östr. Jahresb. f. Pharm. IV, 1903, 150. -- ~Mitlacher~, Zeitschr. d. allg. Östr. Apoth. Ver. 1904, 1480. -- ~Pietro~, Proc. Am. ph. assoc. 1894, 901. -- ~Sollmann~, Response of gums etc. to Moores Reaction. Am. journ. pharm. 1911, 176. =Anwendung.= G. arabicum ist das am meisten in der Medizin gebrauchte Mucilaginosum. Es wird als einhüllendes Mittel, dann besonders bei Katarrhen, aber auch bei Diarrhöen angewendet. Gummi ist Bestandteil vieler Hustenmittel (Gummibonbons) und wird auch als Bindemittel für Emulsionen benutzt. Man benutzt es auch als Hilfsmittel beim Pulvern einiger Drogen (_Fruct. Capsici_, _Fruct. Colocynth._). Vor dem Pulvern ist das Gummi zu trocknen, dies darf nicht über 30-40° und länger als einen Tag geschehen, da sich sonst das Gummi verändert. Da Gummi aus der Luft Feuchtigkeit anzieht, ist es in gut verschlossenen Gefäßen aufzubewahren. Lösungen des G. arabicum dürfen nicht zugesetzt werden: Mineralsäuren, Metallsalze, Bleiessig, Brom- oder Eisensalze, Sulfate, Oxalate, Silikate, Alkohol und alkoholische Tinkturen, sowie, es sei denn, daß die Lösung «sterilisiert» wurde, die oben (S. 446) genannten Substanzen. +Technisch+ wird es als +Klebemittel+ (Briefmarken! die Reichsdruckerei braucht jährlich über 60000 kg) und bei Appreturen (bes. der Seidenwaren), in der Färberei, Druckerei, bei der Bereitung von Tinte, Farben und Zündhölzern, die feinsten Sorten auch in der Liqueurfabrikation und der Confiserie (Pasta gummosa) benutzt. Mit Kaliumchromat gibt Gummi eine lichtempfindliche Masse (~Eder~). G. arabicum ist ein gutes +Nahrungsmittel+, denn die Verbrennungswärme der Arabinsäure beträgt bei konstantem Volum 4004 Cal. für 1 g (1369,4 Cal. für 1 g-Mol.). Salzsäurehaltiger Magensaft wirkt glykosebildend (~Fudakowski~), mindestens 46% werden verdaut (~Voit~). In Australien leben die Eingeborenen in der trockenen Jahreszeit fast nur von Acaciengummi oder Koljang (~Preiss~). Auch die Tuaregs der Sahara verzehren das Gummi (~Duveyrier~), ebenso die Eingeborenen in Ostafrika (~Holst~). Im Somaliland wird das «süße» Gummi (d. h. _G. arab._, das «bittere Gummi» ist _Myrrha_) gekaut und dient bei langen Märschen oft als einzige Nahrung. Während des Mahdiaufstandes im Sudan lebten die Heere besonders von Gummi (s. oben S. 427). Frisches vom Baume gebrochenes G. stillt auch den Durst. ~David~ schützte sich in Cordofan durch Gummigenuß vor dem Verdursten. =Geschichte.= G. a. findet sich nicht bei den Sanskritschriftstellern, die arabisch-persischen beschreiben es unter dem Namen Samgh-i-arabi (~Dymock~). Der Autor des +Makhzan+ beschreibt G. a. als das G. des Baumes ammughilán oder mughilán, gelblich-weiß, durchscheinend und gänzlich löslich in Wasser (Pharmacogr. ind.). In der Schatzkammer des ~Rhapsenit~ in Medinet-Abu finden sich Darstellungen von Gummibäumen und fand sich Gummi (kami-en-punt) selbst, das die Ägypter seit den ältesten Zeiten aus dem Lande Punt (vgl. I, S. 459) holten. In zahlreichen Rezepten des Papyrus ~Ebers~ wird die ägyptische _Acacia_ und Gummi erwähnt. ~Theophrast~ erwähnt einen Wald der Gummiacacie in der Thebais in Ägypten. Und auch in dem botanischen Lexikon Kitâb aš šaǧar (X. Jahrh.) stehen die Nilacacien. Die ἄκανθα des ~Theophrast~ (hist. pl. IV, 2, 8), von der er sagt «γίνεται δὲ ἐκ ταύτης καὶ τὸ κόμμι καὶ ῥέει καὶ πληγείσης καὶ αὐτόματον ἄνευ σχάσεως», wie des ~Dioskurides~ ἀκακία aus Ägypten (I, cap. 133), die er als gummilieferndes Dorngewächs beschreibt, und des ~Plinius~ Spina (XIII, 20) war die Nilacacie, der Sontbaum (altägypt. cant, sont, šent [die hieroglyph. Zeichen I, S. 468], arab.: charad, śeģer fetna, sense-locht): _Acacia nilotica_ ~Del.~ (_A. vera_), deren vorzügliches Holz und deren schöne Blumen zu Kränzen und medizinisch in Ägypten angewendet wurden, und die auch Gummi lieferte. Auch ~Strabo~ (VII, 1) erwähnt Haine der thebaischen Akantha und ~Herodot~ (II, 96) gedenkt des Gummi unt. and. bei der Einbalsamierung der Leichen, und vergleicht den Baum mit dem kyrenäischen Lotus (_Diospyros Lotus_). In Kyphivorschriften (I, S. 473) finden sich Acacienfrüchte (sannâr), deren Zeichen bei den hieroglyphischen Inschriften oft als Determinativ hinter Leguminosenfrüchte gesetzt wird (I, S. 466), und die noch heute in Ägypten zum Gerben dienen. Die Blüten, deren Duft die Ägypter im Zimmer liebten, waren Ingredienz von Heilmitteln, z. B. der ägyptischen Salbe (αἰγυπτίον μύρον das μύρον λευκὸνwurde mit den Blüten der _A. Senegal_ bereitet). Blühende Zweige finden sich auf Tempelwänden dargestellt (~Wönig~, Fig. 140). Das Gummi der Nilacacie, das heute in Ägypten nur noch für den Hausbedarf gelegentlich gesammelt wird, war auch in alter Zeit, wie es scheint, kein großer Handelsartikel, denn schon im XVI. Jahrh. n. Chr. bezogen die Ägypter das Gummi, das sie unter anderem zur Bereitung von Malfarben benutzten (mu-nu-qemi = Gummiwasser zum Malen steht z. B. im Totenbuche), aus dem Lande Punt, d. h. von der Somaliküste, aus (oder über?) Süd-Arabien (Cane), vom Roten Meer oder der Küste von Suakim (~Krall~). Das ānte von Punt war arabisches Gummi (~Krall~). Im römischen Altertum und im Mittelalter kam alles Gummi von der Somaliküste oder über Yedda. Im Periplus (I, S. 535) fehlt das Gummi merkwürdigerweise, oder verbirgt es sich unter dem Worte mocrotu (?). ~Plinius~ bemerkt, daß das ägyptische Gummi 3 Denare das Pfund koste und daß schlechte Gummisorten von dem Mandel- und Kirschbaume, das schlechteste von der Pflaume stamme. Das beim Tabernakelbau viel benutzte Holz shittah, shittim (Exodus 25, 30), war das sehr harte Holz einer _Acacia_, entweder _Seyal_ (~Tristram~) oder _arabica_ (~Charpenter~) oder _horrida_, mit rundlichen Blütenständen. Der brennende Busch des Moses (seneh) wird von ~Tristram~ für _Acacia nilotica_ gehalten. Auch von einem «Tal der Acacien» ist in der Bibel die Rede. Karaz ist die Frucht der _Acac. nilotica_ ~Del.~ Die Alten verwendeten ihr Extrakt. ~Delile~ (Flore d’Egypte) hält die ἄκανθα διψὰς des ~Theophrast~ (hist. pl. IV, 8) für _A. Seyal_ (= spina sitiens des ~Plinius~, Lib. 13, 1). Des ~Hippocrates~ Acacia (ἄκανθα) war (nach ~Dierbach~) _A. Senegal_, «die weiße Acacie», da sie weißes Holz, weiße Rinde und weiße Blüten besitzt, nach anderen _A. arabica_. Arzneilich benutzte das G. auch ~Hippocrates~, doch nur wenig, und im ganzen Altertum und Mittelalter wurde es medizinisch und technisch nicht viel beachtet. Doch kennt z. B. ~Scribonius Largus~ Acacia. Bis zum XIV. Jahrh. scheint nur ostafrikanisches G. benutzt worden zu sein. Mit der Erschließung Westafrikas im XV. Jahrh. (I, S. 729) erscheint dann auch das Senegalgummi im Handel. Es erlangt aber erst im XVII. Jahrh. in Frankreich Bedeutung und ist erst seit den dreißiger Jahren des XIX. Jahrh. ein ernstlicher Konkurrent des arabischen. Es setzte sich am Ende des XIX. Jahrh. ganz an seine Stelle, als während der blutigen Unruhen im Sudan der sudanische Gummihandel ganz aufhörte. Jetzt hat das cordofanische G. wieder die Führung (vgl. oben S. 428). Das Mittelalter brauchte nicht viel G. ~Pegolotti~ (I, S. 702) erwähnt das G. ar. unter den Drogen, die nach Pfund, nicht nach Quintal gehandelt wurden. Die arabischen Ärzte benutzten das Gummi und von ihnen übernahm es die Schola salernitana. In der +Alphita+ (I, S. 640) steht _Acacia cirra_ (Acassia cira id est dura), bei ~Serapion~ _Arbor gummi arabici_ = _Acacia_, _Spina babylonica_, _achachie_. Die Abbildung des Baumes bei ~Pomet~ (I, S. 942) ist unkorrekt. Er nennt als Synonyme des Gomme arabique: G. thebaique, Sarracene, de Babylone ou Achantine ou d’Acacia d’Egypte. Das G. kam Ende des XVII. Jahrh. via Arabien nach Marseille, war aber damals selten und wurde durch die «gomme du Senega» ersetzt. Außer diesem unterscheidet ~Pomet~ noch ein G. turique, G. vermiculée und G. d’Angleterre. Das Altertum unterschied die Gummis nicht von den Harzen. Auch noch im Mittelalter gingen unter dem Namen Gummi auch die Harze (z. B. gumma colofonia, gummi pini in der +Alphita+, und auch noch später [Nördlinger Register 1480]: gumi pini, in der +Berluliste+ [1724]: gum copal). Das hat sich bis heute erhalten. In den Grossistenlisten figuriert immer noch Gummi Benzoes, G. Mastix, G. Elemi. Die Jahrtausende sind über diese falsche Bezeichnung hinweggegangen, ohne Spuren zu hinterlassen. Ja, unter Gummi par excellence versteht man heutzutage oft -- Kautschuk! Daß G. a. von dem Amygdalaceeng. (gummi qui exit de arbore ceraso vel pruno) verschieden ist, war schon im XII. Jahrh. bekannt. Der Bezeichnung Gummi +arabicum+ begegnen wir schon im Altertum, bei ~Diodorus Siculus~, bei ~Nicolaus Damascenus~ (I, S. 573), ~Oribasius~ (I, S. 589) u. and. Und auch in der Alexandrinischen Zolltafel (I, S. 569) steht onyx (commis [?] oder gummi) arabicum -- bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 577) dagegen commi alexandrinum und bei ~Alexander Trallianus~ κόμμι λευκόν. -- Die Bezeichnung blieb dann durch das ganze Mittelalter erhalten. Sie findet sich z. B. bei ~Serapion~ (I, S. 605). Gomarabische steht unter den Einfuhrartikeln von Pisa (1305) und Telamone (1379), dann in der Liste von Paris (1349, I, S. 706) und ~Paxi~ erwähnt gomma rabica unter den Artikeln des venetianischen Handels (~Flückiger~). In der Alphita (I, S. 649), in den Tabulae, bei ~Platearius~ sowie den Sinonoma ~Bartholomei~ steht: gummi arabicum -- Sanig, Sanag arabicum. Im Inventaire ~Lefort~ (I, S. 804) steht: «2 onces de gomme arabique tauxée 2 blancs», was auf keinen großen Bedarf schließen läßt. Im Droits de courtage établis à Paris au XVᵉ siècle (ed. ~Dorveaux~) steht «gomme arabic VI d. t. la bale». ~Cordus~ (I, S. 799) unterschied: _G. splendidum_, _arabicum_ und _vermiculatum_ (Traganth?). Er verwendete auch _Succus_ et _fructus arboris Acaciae_. Gummi arabic. steht in der Frankfurter Liste (I, S. 812), dem Eßlinger Drogenverzeichnis (I, S. 815) und zahlreichen Taxen. In der Taxe von Hamburg 1587 steht Gummi arabicum = Dinten Gummi. Die Berluliste (I, S. 950) hat neben gum arabicum auch gum cerasorum. Aber die Bezeichnung arabicum bedeutet nicht, daß Arabien das Land ist, wo das G. produziert wurde, ebenso wenig wie wir aus dem häufigen Beisatz aegypticum, indicum, aethiopicum, romanum irgend welche Schlüsse auf das Produktionsland ziehen dürfen. +Über+ Arabien kam G. aber sicher schon im Altertum und Mittelalter. Auch ~Ibn Kordadbah~ (I, S. 616) nennt es bei Yemen. _Acacia Senegal_ ist schon von ~Prosper Alpin~ (I, S. 770) beschrieben, sodann von ~Adanson~ (XVIII. Jahrh.) und endlich von ~Guillemin~ und ~Perrottet~ (a. a. O.). =Lit.= ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Wönig~, Die Pfl. d. alt. Ägypt. -- Die Acacien Ägyptens in ~Joret~, Les plant. dans l’antiquité I, 144. -- ~Pereira~, Heilmittellehre. Prunoideengummi. Amygdalaceengummi, Kirschgummi, gummi nostras, gomme du pays, cherry gum. Zu technischen Zwecken wurde der Gummi der +Kirsche+ (_Prunus Cerasus_) und +Pflaume+ (_P. domestica_ u. and.) schon im XII. Jahrh. benutzt (~Theophilus~ oder ~Rogker~ Schedula divers. art. in ~Eitelberger~, Quellenschr. f. Kunstgesch. 1874) und die ~Hildegard~ (I, S. 667) erwähnt ein +Gummi de Persico+ (_Pr. Persica_?) als Heilmittel. Außer diesen wird auch das Gummi des +Mandelbaumes+ (_Prunus Amygdalus_) und der +Aprikose+ (_P. armeniaca_) gesammelt und in Böhmen das G. von _Amygdalus spartioides_ (~Hoffmeister~). 1891 kam aus Buschir ein Prunus-G. von _P. Bopkarensis_ ~Royle~ und _P. Puddum_ ~Roxb.~ (~Sickenberger~), 1906 +persisches+ G. besonders von _Amygdalus leiocarpa_ ~Boiss.~ in den Handel (~Hillier~). ~Schindler~ bemerkt (1881), daß das Djedk-i-ardjin genannte Gummi Persiens von dieser Pflanze bei Kerman gesammelt wird und in Afghanistan sammeln die Eingeborenen Pflaumen- und Aprikoseng. (~Aitchison~). Der cherry gum Indiens wird von _Prunus Puddum_ abgeleitet (~Cooke~) und mindestens ein Teil des Bassorag. und des Hog gum (vgl. S. 405) ist ebenfalls Amygdalaceeng. In China wird Pfirsichg. (táu-kian) gesammelt, ebenso in Indien (aru, reck, mandala, ~Dragendorff~). Jetzt ist Prunoideeng. nur wenig in Gebrauch (unter anderem beim Kattundruck), da es nur wenig löslich ist und mit Wasser aufquillt. Es ist der Typus des Cerasingummis. Die Bildung des Prunoideengummis erfolgt in, infolge von Verwundungen vom Cambium im Jungholz gebildeten, Gummiparenchyminseln (~Mikosch~), aber auch in der Rinde (~Wigand~, ~Tschirch~), s. auch oben S. 410-416. Prunoideengummi ist blaßgelb bis rötlichbraun, doppelbrechend, hat glänzende, muschelige Bruchflächen, außen ist es meist trübe. Es wird durch Alkalien braun, durch Salzsäure rotviolett. Es enthält 13-14% Wasser und 2-3,5% Asche. Während sich alle Arabingummis in Chloralhydrat (60%) klar lösen, hinterlassen die Cerasingummis einen gequollenen Rückstand, die Bassoragummis (Traganth) geben eine klare Lösung, über der sich eine klare gequollene Masse absetzt (~Mach~, ~Wiesner~). Das Prunoideeng. wird meist als metarabinsaurer Kalk betrachtet (~Frémy~). Der lösliche Teil des Kirschg., der (nach ~Schmidt~) bis 52,1% betragen kann, ist kein Arabin (~Garros~), er wird durch Bleiessig nicht gefällt. Pfirsich- und Mandelg. scheint mehr lösliches G. zu enthalten als Kirschgummi. Pfirsich- und Pflaumengummi geben bei der Oxydation Schleimsäure. +Kirschgummi+ enthält c. 39,96% Pentosane und liefert bei der Hydrolyse +Galaktose+ und (bis 50%) +Arabinose+ (~Hauers~) -- die Arabane überwiegen also. Die gleichen Produkte lieferten neben unbekannten Zuckerarten auch das Pfirsich- und Aprikosengummi (~Lemeland~, ~Stone~). Kirschgummi gibt bei der Hydrolyse +keine+ Xylose (Kirschholz viel!) oder doch nur sehr geringe Mengen (~Browne~ und ~Tollens~). Über das Cerasin vgl. oben S. 442. Das Cerasin der Kirsche soll sich durch ein in der Kirsche befindliches (nicht durch ein anderes Amygdalaceen-) Enzym in Arabin überführen lassen (~Garros~). Oft enthält das Kirschg. auch Zucker und Gerbstoff (~Schmidt~), stets eine Oxydase. Bei der Hydrolyse des Pflaumeng. erhielt ~Garros~ eine neue (?) Pentose, die +Prunose+. ~Lemeland~ fand im +Aprikoseng.+ 8,83% in Wasser Unlösliches, 16,1% Wasser, 3,3% Asche, 23,6% Galaktane, 48,5% Pentosane. Es lieferte Arabinose und drehte -1°93. In +Pflaumeng.+ waren dagegen 20,8% Unlösliches, 15,4% Wasser, 2,5% Asche, 13,3% Galaktane und 76,3% Pentosane enthalten. Es lieferte Arabinose und drehte kaum. ~Martina~ gibt folgende Übersicht: ---------+-------+------+--------+------------+---------+ Art des | Asche | Kalk | Kalk |Schleimsäure|Galaktose| Gummis | | im | in der | | | | |Gummi | Asche | | | | % | % | % | % | % | =========+=======+======+========+============+=========+ Aprikosen| 4,20 | 1,85 | 44,04 | 9,16 | 12,21 | Pflaumen | 2,15 | 1,07 | 49,76 | 5,19 | 6,92 | Kirschen | 2,50 | 1,00 | 40,00 | 6,13 | 8,17 | ---------+--------+--------+--------------+---------- Art des |Furfurol|Pentosen|Gesamtglykosen|Galaktose Gummis | | | |+ Pentosen | | | | | % | % | % | % =========+========+========+==============+========== Aprikosen| 17,27 | 34,54 | 43,48 | 46,75 Pflaumen | 31,03 | 62,06 | 66,47 | 68,98 Kirschen | 23,07 | 46,14 | 56,38 | 54,31 Durch eine Lösung von 1% NaOH und 2,5% Na₂CO₃ löslich gemachtes Kirschg. ist als «Kunstgummi» im Handel. Auch durch Erhitzen mit Wasser unter Druck werden unlösliche G. löslich. =Lit.= ~Mikosch~, Sitzungsb. d. Wien. Akad. 1906, 911 (dort die Lit.). -- ~Wigand~, Pringh. Jahrb. 3. -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie S. 210, Fig. 211. -- ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Sickenberger~ (Prunusg.). Chem. Zeit. 1890, 350. -- ~C. Hoffmeister~, Amygdalusg. Ber. d. d. bot. Ges. 1898. -- Aprikoseng.: ~Lemeland~, Journ. pharm. 1905, 443. -- ~Hillier~, Kew Bull. 1906, 109. -- ~Huerre~ (G. d. Mandelbaums). Journ. pharm. chim. 1908, 561. -- ~Hauers~, Dissert. Göttingen 1902. -- ~Lemeland~, Journ. pharm. chim. 21, 443. -- ~Stone~, Ber. d. d. chem. Ges. 23, 2574. -- ~Garros~, Journ. ph. 1892, 535. Bull. soc. chim. (3) 7, 625. -- ~Allen~ und ~Tollens~, Lieb. Ann. 260, 289. Ber. d. chem. Ges. 23, 137. -- ~Martina~, Apoth. Zeit. 1894. B. Drogen, welche vorwiegend aus Membraninen bestehen, die keine Polysaccharide enthalten oder von denen es nicht sicher ist, ob sie solche enthalten. Zu dieser Gruppe gehören Kork, Pollenin, Pilzzellulose und die Diatomeenschalen. Neuere Untersuchungen haben es zweifelhaft gemacht ob in diesen Polysaccharide vorkommen, da die als Beweis angeführte Reaktion, daß die mit Kali behandelten Membranen mit Jodreagentien (z. B. Jod-Schwefelsäure, Chlorzinkjod) sich violett färben, auch auf andere Substanzen, beim Kork auf die Phellonsäure, bei der Pilzzellulose auf Chitosan zurückgeführt werden kann. Die Drogen dieser Gruppe mögen also den Zellulosindrogen gegenüber gestellt und ihnen hier angehängt werden. 1. Suberino-Membranindrogen. Ein höchst eigenartiges Membranin ist der Kork, der hier als +Suberinomembranin+ bezeichnet werden mag, da er eine Bildung sui generis ist. Die ältere Annahme ging dahin, daß die Korkmembran eine durch Suberin (~v. Höhnel~) «inkrustierte» Zellulosemembran sei. Daß dies nicht richtig ist, wissen wir jetzt bestimmt. Ob die Suberinlamelle überhaupt Polysaccharide enthält ist unsicher und neuerdings bestritten worden (~Gilson~, ~Wisselingh~). Die älteren Beobachtungen von ~Payen~, ~Mohl~, ~Frémy~ und ~Urbain~, ~Kügler~, ~Wiesner~, ~Haberlandt~ und ~von Höhnel~ stützten sich auf die Tatsache, daß die Korkmembran nach Behandeln mit kochendem Alkali sich mit Chlorzinkjod und Jodschwefelsäure violett färbt, was als «+Zellulosereaktion+» angesprochen wurde. Aber es ist zu berücksichtigen, daß auch die Phellonsäure und ihre Salze, die beim Behandeln von Kork mit kochenden Alkalien entstehen, durch Chlorzinkjod violett werden (~Gilson~), also die Zellulosereaktion vortäuschen können. ~v. Wisselingh~ bestreitet daher das Vorkommen von Zellulose in der Suberinlamelle. Bemerkenswert ist auch, daß bisher aus Kork allein weder Hexosen noch Pentosen isoliert werden konnten. Charakteristisch für den Kork sind jedenfalls andere Verbindungen als Polysaccharide, besonders Fettsäureester, weniger aromatische Reste. Die wichtigste Gruppe ist die der Fettsäuren, die ~Kügler~ zuerst darin (1884) nachwies und die dann ~Gilson~ und ~v. Schmidt~ näher studierten. Gefunden wurde neben +Stearinsäure+, besonders +Phellonsäure+, +Suberinsäure+ und +Phloionsäure+. Der Phellonsäure schreibt ~Schmidt~ die Formel: H--C₇H₁₅ C / \ H₂C C(OH).CH₃ | | H₂C CH.COOH \ / C H--C₇H₁₅ zu. Sie wäre dann eine hydroaromatische Verbindung. Bei der Aufspaltung des Ringes bei Behandeln mit HNO₃ entsteht Korksäure: CH₂CH₂CH₂COOH | CH₂CH₂CH₂COOH. Wie diese Säuren gebunden sind, ist noch nicht aufgeklärt. Die geringe Menge +Glycerin+, die ~Kügler~ bei der Verseifung erhielt (auf 30% Säuren nur 2,65% Glycerin, ~v. Schmidt~ fand mehr), deutet darauf, daß nur relativ geringe Mengen der Säuren als Glycerinester vorliegen können, das meiste ist wohl anders gebunden. ~Gilson~ denkt an zusammengesetzte Ester, Kondensations- und Polymerisationsprodukte verschiedener Säuren, ~Czapek~ auch an laktonartige Anhydride, ~v. Schmidt~ an Anhydride und Polymerisationsprodukte. Keinesfalls können wir den Kork als ein +Gemisch+ von Fett und Zellulose auffassen, wie man dies früher tat und Zellulose findet sich, wenn überhaupt, nur als Ligninomembranin in der Mittellamelle (und der Innenlamelle, ~Gilson~). Daneben finden sich auch +aromatische Reste+ im Kork. Korkzellmembranen speichern Chlorophyll, Alkanna (~Correns~), Cyanin (~Zimmermann~) Sudan III (~Lagerheim~), was auf die Fettsäuren zurückzuführen ist und färben sich mit Osmiumsäure, müssen also ungesättigte Verbindungen enthalten. Mikrohistochemisch ist die Korkmembran dadurch ausgezeichnet, daß sie in konz. Schwefelsäure, selbst nach längerer Einwirkung, sich nicht löst (~Mitscherlich~, 1850). Ebenso ist sie in Kupferoxydammon, in kaltem und heißem ~Schultze~schen Gemisch (chlorsaures Kali und Salpetersäure), in kalter Chromsäurelösung unlöslich. Konz. Kalilauge färbt besonders beim Erwärmen gelb, dabei tritt zuerst Körnelung auf und dann gelbe Tropfen. Ich habe schon 1888 darauf aufmerksam gemacht, daß nicht alle in konz. Schwefelsäure unlöslichen Membranen als «verkorkt» zu betrachten sind. Besonders bei Drogen kommen oft durch postmortale Infiltration mit Phlobaphenen mehr oder weniger gefärbte Membranen vor, die sich nicht in Schwefelsäure lösen und doch nicht verkorkt sind. Vgl. ferner das mikrohistochemische Verhalten bei Suber. Suber. =Syn.= Suber quercinum, Kork, -- liège (franz.) -- cork (engl.) -- corcho (span.) -- sughero (ital.) -- kurk (holl.) -- korkki (fin.) -- para (ung.) -- suberin (russ.) -- plutovina (kroat.) -- korek (böhm.) -- φελλός (griech.). Die Korkeiche (Korkbaum, Korg- oder Karchbaum [~Cordus~], Gorckenbaum, Sohlenholz, Pantoffelholz) heißt +franz.+ chêne liège, +engl.+ Cork-tree, +holl.+ Korkboom, vlothout, +ital.+ sughero, suvero, +port.+ sobro, sobrereiro, +span.+ alcornoque (in Catalonien suro, surera, in Galicien subreiro), in +Algerien+, +Tunis+ und +Marocco+: kerrouch oder fernan. Den Baum nannten die Römer Suber (so schon bei ~Virgil~) oder _corticis arbor_, den Kork vielfach kurz _Cortex_ (Katexochebegriff!), da von allen Rinden die wichtigste -- das deutet also auf vielfache Benutzung (~Flückiger~). =Etym.= Sûber von sub (= unter) und suere (= nähen) wegen der Verwendung zu Schuhsohlen (s. Geschichte), aus dem gleichen Grunde auch zu subire in Beziehung gebracht. Kork, seit ~Schottel~ 1663 gebucht (~Kluge~) -- ich finde Kork aber schon 1659 im Rostocker Catologus (s. Taxen, I, S. 825) --, aus span. corcho = Korkholz, Pfropf, frühengl. cork, dies von cortex über scorzia, scorza (ital. von excortea) -- liège von levis, also = der leichte Stoff -- Pantoffelholz wegen der schon von ~Plinius~ erwähnten Benutzung für Schuhe -- Pantoffel aus ngr. παντοφελλός = Ganzkork. =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Quercus Suber= L. Fagaceae -- Castaneae. -- (Quercus Sect. Lepidobalanus Endl. c. Suber.) Sehr ähnlich und fast nur durch zweijährige Fruchtreife, einjährige, etwas breitere Blätter unterschieden ist die einen in geringerer Menge in den Handel gebrachten, übrigens guten Kork liefernde, in Südostfrankreich (zwischen Gironde und Adour), Portugal und Spanien heimische, härtere (über den 45° hinausgehende) _Quercus occidentalis_ ~Gay.~ (in Frankreich: Corcier), die einige für eine Varietät der Korkeiche halten (_Querc. Suber_ var. _latifolia_). Der Kork der in Mittelitalien und der Provence häufigen _Qu. Pseudo-Suber_ ~Santi~ (Bastard von _Q. Suber_ und _Cerris_?) ist minderwertig (~Mathieu~). Als +Faux lièges+ gelten (in +Algier+) die Hybriden: _Qu. numidica_ ~Trabut~ (_Qu. Suber_ × _Qu. Afares_ = _Qu. Pseudo-Suber_ ~Dc.~ ex parte) und _Qu. Fontanesii_ (_Qu. Suber_ × _Qu. Cerris_). =Beschreibung der Stammpflanze.= Die Korkeiche bildet einen bis 10, ja 16 selten 20 m hohen +immergrünen+ Baum von 3-5 m Stammumfang, mit großer, unregelmäßiger, aufgelöster, zerzauster, meist nicht sehr reich belaubter Krone (vgl. I, Fig. 86 u. 89 u. Taf. X). Die jüngeren Zweige sind grau oder gelblich-filzig, die jüngeren Stämme und Äste sind mit einem glatten, rotbraunen Kork bedeckt, der mit den Jahren sehr dick und rissig und grauweiß wird und sich schließlich vom 50. Jahre an zum Teil in kleinen Schuppen ablöst. Die 2-3 Jahr dauernden Blätter sind elliptisch, eiförmig, eiförmig-länglich bis länglich (wie bei anderen immergrünen Eichen von erstaunlicher Vielgestaltigkeit, ~Rickli~), 3-7 cm lang, 1,5-3 cm breit, auf 5-12 mm langem Stiel, meist scharf bis dornig-gezähnt, selten ganzrandig, in der Jugend graufilzig. Die männlichen Kätzchen mit filzigen Spindeln, stumpf sechslappigem Perigon und behaarten Antheren. Die weiblichen Infloreszenzen fast sitzend. Früchte im ersten Jahr reifend. Cupula verkehrt-eiförmig-halbkugelig mit locker angedrückten graufilzigen Schuppen. Eichel zweimal länger als die Cupula, glänzend hellbraun. Der Baum blüht meist im April und Mai. Die Samen reifen vom September bis Januar. Sie sind bitter und als Viehfutter weniger brauchbar als die von _Q. Ilex_ var. _Ballota_, doch kommen auch Varietäten mit süßen Samen vor. Die Wurzel treibt reichlich Schößlinge. =Verbreitung.= Größere Bestände der Korkeiche lassen sich nördlich vom 45. Breitengrade nicht halten. Ihre Polargrenze fällt zusammen mit der Isotherme von 13,5° C. Sie gedeiht am besten auf Hügeln und mittleren Gebirgen (200-800 m in Algier, 400 bis 600 m in Spanien). In Spanien geht der Baum bis 1200 m, in Algerien bis 1300 m. Sein Alter übersteigt nicht 200 Jahre. Die Korkeiche findet sich in der +Westprovinz des Mittelmeerdrogenreiches+ (s. die Karte) in Südostfrankreich, Spanien, Portugal, Balearen, Sardinien, Korsika, Sizilien, Italien, Istrien, Dalmatien und Nordwestafrika, besonders Algier und Tunis, aber bis ins Innere von Marocco. Sie bildet Wälder oder ist (selten) in Alleekultur (I, Taf. V). Sie wurde neuerdings in die Südstaaten Nordamerikas und an die atlantische Küste südwärts von Virginien eingeführt. [Illustration: Die Verbreitung der Korkeichenwälder in der Westprovinz des Mittelmeerdrogenreiches. Mit Benutzung der Karten von Müller und Lefebvre gezeichnet von A. Tschirch.] In =Spanien= sind c. 300000 ha der regenreicheren Provinzen mit Korkwald bedeckt, meist als Mischwald (mit Steineiche) an niederen Gebirgshängen in einer Meereshöhe von 500-600 (800) m, vornehmlich in +Catalonien+, +Nieder-Andalusien+ und +Estremadura+. +Catalonien besitzt die schönsten und bestkultivierten Korkwälder des ganzen Korkgebietes+ (Abhänge der Pyrenäen und des catalonischen Gebirges, Ebene von Ampurdan). Besonders schön sind die 80000 ha großen Wälder der Provinz +Gerona+, zwischen +Junquera+ und +Figueras+, an den Abhängen der Sierra de las Gabarras (La Bisbal) und im östlichen Bergland (Gerona bis Arbucias) sowie an der Küste (Blanes, Calonge) (s. die Karte). Die Korkeichenwälder +Nieder-Andalusiens+, die 112000 ha bedecken, befinden sich in den Provinzen +Huelva+, +Sevilla+, +Cadiz+ und +Cordoba+, die meisten in der Provinz Huelva: in der westlichen Sierra Morena, der sog. +Sierra Aracena+ (Aracena im Quellgebiet des Odiel, Huelva und Murtija) und im Süden (Lepe, Ayamonte, Almonte) in der Provinz Sevilla: zwischen Sevilla und Utrera und in der Sierra de Pedroso, in der Provinz Cadiz: auf den Bergen zwischen Guadiaro und Guadalete und den Sierras de Gazules, de Algeciras, de Palma und de Tarifa -- hier fast reine Bestände bildend, weiter oben Mischwald (mit _Qu. Lusitanica_ und _Ilex_). Schöne Korkwälder liegen auch bei San Roque und in den Tälern des Guadiaro, Jogerganta und Rio Guadarranque, zwischen Arcos de la Frontera und Medina-Sidonia (dort die «Lomas de alcornoque» = Korkhügel); in der Provinz Cordoba: Sierra de Cordoba bis zum Guadalquivir. Von den andalusischen Korkdistrikten liefert Cortes den meisten Kork (1896: 11005 t), dann Jerez und Alcalá, weniger Huelva, Easares und Cadiz u. d. and. Distrikte. In der Sierra Aracena bildet die Korkeiche in Höhen von 400-600 m gemischte Bestände mit _Q. Ilex_ und _Q. Ballota_ (~Rein~). Die Korkwälder +Granadas+ liegen in der Provinz Malaga (Sierra de Antequera, Hochebene von Ronda, Sierra de Bermeja zwischen Marbella, Estepona und Gaucin, Sierra Contraviesa), die von +Estremadura+ in der Provinz Cáceres (zwischen Mérida und Cáceres bis zum Rio Tiétar und Toril). Auch die Provinz Burgos in Altkastilien hat Korkwälder, sowie Asturien, weniger Galicien. Die Korkwälder =Portugals= umfassen (1911) c. 500000 ha (~Weber~), sie liegen besonders im Süden in den Gebirgsketten von +Algarve+ (z. B. den Tälern der Serra de Monchique) im südlichen +Alemtejo+, in +Estremadura+ (Tal des Sado, Palmella), endlich im südlichen Beira -- weniger in Mittel- und Nordportugal (Serra de Cintra). Die Korkwälder längs der Westküste bestehen besonders aus _Quercus occidentalis_. =Frankreichs= Korkwälder umfassen 1911 c. 150000 ha. Die meisten liegen in der Provence (Var, Alpes maritimes), weniger in der Gascogne (Landes, Lot-et-Garonne, Gironde -- fast ausschließlich _Q. occidentalis_), in Languedoc (Roussillon) und auf Corsica (Bavella). In Corsica bildet die Korkeiche besonders im Süden (Portovecchio, Monaccia) ausgedehnte Wälder (~Rickli~). Die Korkwälder der Landschaft Roussillon umfassen nur 1928 ha, liefern aber den besten französischen Kork. Die Korkwälder der Provence bedecken 113600, die der Gascogne 24100, die Corsicas c. 9000 ha (1911: 15000 ha, ~Weber~). =Italien= hat nur noch wenige Korkeichen (immerhin 80000 ha ~Weber~), mehr Sardinien und besonders Sizilien, die wenigsten +Dalmatien+. In Italien wurde früher unerhörter Raubbau getrieben und viele Korkeichen für Bauholz geschlagen. Jetzt forstet man wieder auf. In =Algerien= findet sich die Korkeiche besonders in der Kabylie du Djurdjura und im Gebiete des Tell (Atlas tellien), einem hügeligen bzw. gebirgigen Landstrich von 100-150 km Breite mit mediterranem Klima, wo das von ihr bestandene Gebiet (in einer Höhe von 10 bis 1300 m, bes. 200-800 m [~Trabut~] -- zone de chêne-liège --) 1900: 480000 ha einnahm, davon waren 273713 ha Staatswaldungen, der Rest Privat- und Gemeindewald. 1911: 508000 ha (~Weber~). Viele Korkeichen finden sich in den Depart. +Oran+ (Tlemcen, Oran, Ammi-Moussa, Tiaret, Mascra, Sidi bel Abbes) und +Alger+ (Djurdjuraberge, Tizi Ouzou, Azazga, Sahelthal, Djebel-Djurdjuraberge, bes. Bouïra und Aumale, dann Ténes, Cherchel, Alger, Tenied el Hâad, Orleansville, Medéa u. and.). Die meisten und schönsten aber in +Constantine+ (von +Bougie+ bis +La Calle+: Djidjelli, El Milia, Taher, Collo, von +Philippeville bis Bône+, St. Croix (Edoughberge) im Innern: Constantine, Souk-Arrhas). In Algier bildet _Q. Suber_ mit andern Eichen die Zone der Bergwälder (~Trabut~). Sie findet sich mit _Qu. Afares_ besonders in der mittleren Region dieser Zone. In =Tunis= beträgt das Korkwaldareal 116000 ha. Es ist alles Staatsdomäne. Die schönsten Korkwälder liegen im Bergland +Khoumirie+ (Tabarka bis La Calle, Beja bis Bizerta und Cap Blanc). Dann an der algerischen Grenze Ghardimaou bis Souk Arrhas, ferner von Souk el Arba bis Fernana. In =Marocco= finden sich enorme aber wenig zugängliche Korkeichenwälder (c. 1 Mill. ha, ~Weber~). Viel im Er Riff bis zur Muluja (Tetuan, Andjira, Ceuta), ferner zwischen Tanger und Rabat (Mamora, El Araisch u. and.). +Marocco könnte also, wenn erschlossen, fast soviel liefern wie alle übrigen Länder zusammengenommen.+ (Nach der Zusammenstellung in ~E. A. Müller~, Über die Korkeiche, Abh. d. Wien. Geograph. Ges. II [1900] Nr. 7 mit Karte.) Vgl. auch ~Lefebvre~, Les forêts de l’Algérie 1900 (dort sind auch die übrigen Länder berücksichtigt) und ~Lapie~, Etud. phytogéogr. de la Kabylie du Djurjura 1909. Über die Höhengrenzen vgl. ~Koch~, Beitr. z. Kenntn. d. Höhengrenzen d. Vegetation im Mittelmeergebiet. Halle 1910.) Die Korkeiche flieht Kalk und gedeiht am besten auf silurischem Schiefer und verwittertem Granit. Viele Korkeichen wurden durch Brände und unverständige Ausbeutung auf Gerberlohe vernichtet. In Frankreich und Algerien sind neue Korkwälder angelegt worden. Meist wird zunächst Mischkultur mit reichbelaubten Bäumen oder Wein bevorzugt. Die ursprüngliche Heimat ist wohl Nordafrika, über die übrigen Länder ist die Korkeiche vielleicht durch eine sehr alte Kultur verbreitet (? ~Flückiger~). Doch ist auffällig, daß ~Plinius~ sie weder in Spanien noch in Nordafrika erwähnt, die er doch als Beamter bereiste. Über die Kultur der Korkeiche vgl. ~Semler~, Tropische Agrikultur II, 230. =Lit.= ~Gay~, Not. sur une nouv. espèce de chêne franc. Ann. sc. nat. 4, 7 (1856), 223. -- ~De Candolle~, Ebenda 4, 18, 49. -- ~Kotschy~, Die Eichen Europas und des Orients. Wien 1859-1862 m. 40 Taf. -- ~Prantl~, Fagaceae in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. -- ~Mathieu~, Flore forestière. Paris 1877. -- ~Lamey~, Le chêne-liège en Algérie 1870. -- ~Trabut~, Les Hybrides du Quercus Suber. Associat. franc. p. l’avenc. Paris 1889. -- ~Luerssen~, Mediz.-pharm. Bot. -- ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Müller~, Die Korkeiche 1900 (dort auch die Reiseliteratur). -- ~Battandier~ et ~Trabut~, Flore de l’Algérie 1888/89. -- ~Trabut~, Les zones botan. de l’Algérie. Assoc. franc. p. l’avenc. 1888 und De Djidjelli aux Babors. Bull. Soc. bot. France 1889. -- ~Trabut~ et ~Mares~, l’Algérie agricole en 1906. Alger 1907. -- Corsica: ~Rickli~, Bot. Reisestud. auf ein. Frühlingsf. durch Corsica. Zürich 1903. -- +Derselbe+: Bot. Reisestud. von d. span. Mittelmeerküste. Zürich 1907. -- ~Flückiger~, Arch. Pharm. 1879. -- +Abbild.+: Erste in ~Clusius~, Rariorum plant. historia 1601, 22 (Suber latifolium); dann auch bei ~Matthioli~ (der eine Suberis consideratio schrieb) und ~Nees von Esenbeck~, Plant. med. Supplem. -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 152. -- +Abbild.+ des Baumes bei ~Pomet~, Hist. gen. d. Drog. p. 136 (stilisiert), von ~Valentini~ im Museum kopiert. -- Gute Abbildung des Baumes auch in ~Kotschy~, Die Eichen Europas u. d. Orients 1862, taf. 33. Vgl. ferner I, Fig. 86 u. 89 und Tafel V. -- Abbild. von algerischen Korkwäldern in: ~Lapie~, Etude phytogéograph. de la Kabylie du Djurjura. Paris 1909. Cap. I Les forêts de chêne-liège. =Pathologie.= Wie andere Bäume, so wird auch die Korkeiche von holzzerstörenden Hymenomyceten besiedelt. Es wurden auf ihr _Agaricus melleus_, verschiedene _Polyporus_-, _Fomes_-, _Trametes_-, _Lenzites_-, _Stereum_-Arten und andere beobachtet (~E. Fischer~). Die Insekten behandelt ~Lamey~ (Le chêne liège Paris 1893). Eine Liste der wichtigsten auch in ~Müller~, Korkeiche (Abhandl. d. Wien. Geogr. Ges. 1900). Sehr gefürchtet ist _Formica ligniperda_ ~Latr.~ (vgl. bei ~Kügler~ a. a. O. weiter unten). [Illustration: Tafel X. Zweimal geschälte Korkeiche aus dem Korkeichenwald Hafir bei Tlemcen (Algier). (Basinger phot.)] =Gewinnung.= Nicht überall wo Korkwälder vorkommen wird marktfähiger Kork erzeugt, der beste in der spanischen Provinz +Catalonien+, besonders im Nordosten bei Junquera, Gerona und näher am Meer bei Toca, Palaforgell und San Feliu de Guixols an der Küste, dann in der +Sierra Aracena+, dem Quellgebiete des Odiel, der sich in den Busen von Cadiz ergießt, des Huelva eines Nebenflusses des Guadalquivir und des Murtija, der in den Ardila, einen Nebenfluß des Guadiana mündet. Mittelpunkt der Korkproduktion ist in diesem Gebiet Aracena und Fuente Heridos. Die sehr ausgedehnten Korkwälder Portugals (s. die Karte) werden ebenfalls stark ausgebeutet. Schon 1879 wurden fast 9½ Mill. kg Kork von dort ausgeführt. Eine von Jahr zu Jahr wachsende Korkproduktion befindet sich in +Algier+, wo sich die Korkwälder, sowohl die staatlichen wie die privaten, durch vernünftige Schutzeinrichtungen zu großer Blüte entwickelt haben, besonders im Departement Constantine bei Bona, Calle und weiter westlich. Auch Tunis produziert jetzt viel Kork. In +Frankreich+ produziert das Depart. du Var, les Alpes maritimes, Lot-et-Garonne, des Landes, Pyrénées-Orientales und Corsica; in +Italien+: außer dem Festlande, Sardinien und Sizilien. Der Dalmatinische und der Istrianer ist minderwertig. Über die Produktion +aller+ Länder orientiert ~Lefebvre~, Les forêts de l’Algérie. Paris 1900. Die Korkeiche wird erst, wenn sie 8-25 (in Algier 15) Jahre alt ist, zur Korkgewinnung herangezogen. Die besten Korkplatten liefern Bäume im Alter von 5-100 Jahren auf magerem, steinigem Boden. Derselbe Baum kann in Pausen von 8-10 Jahren immer wieder Kork liefern bis er 150 Jahre und älter geworden ist. Eine vernünftige Korkproduktion scheint dem Baume nichts zu schaden. [Illustration: Fig. 152. Lager von Rohkork des Schweiz. Konsuls +Borgeaud+ in Algier. [Auf der Ricklischen Studienreise phot. von +Businger+.]] Die Korkeiche produziert im normalen Laufe ihrer Entwicklung eine ziemlich mächtige Korkschicht, die bei einem 130 mm dicken Stamm schon 15 mm erreichen kann. Diese Korkschicht wird mit der Zeit rissig und wird außen partiell abgestoßen, so daß eine außerordentlich unregelmäßige Umrißlinie entsteht. Dieser Kork ist, da stark zerklüftet, jedenfalls wenig zusammenhängend und kaum elastisch, auch in der Richtung der Jahresringe leicht zerreißbar, zur Stöpselfabrikation nicht zu brauchen und wird nur für Schwimmhölzer (Netze), zur Bedachung, zur Bekleidung von Gefäßen, für Gartenmöbel, zu Korkstaub und zur Kohle- und Spanischschwarz-Bereitung, ja bisweilen nur als Feuerungsmaterial benutzt. Dieser normale Kork trägt den Namen liége mâle, kurz: le mâle, +männlicher Kork+ oder +Jungfernkork+, in Spanien: corcho bornio oder virgin, in Portugal: cortiça virgem. Er zeigt eine deutliche Schichtung, aber die Schichten, die wohl als vom normalen Phellogen erzeugte Jahreszuwachszonen zu betrachten sind, sind nur sehr schmal: 0,9 mm, ja gar nur 0,5 mm (~De Candolle~) oder schmäler, besonders die innersten. Die Zellen sind zum größten Teil typische Korkzellen, d. h. im Querschnitt tafelförmig und der Kork daher wenig elastisch. Sklereïden sind häufig, oft enthalten die Zellen braune Phlobaphenmassen. Dieser männliche Kork wird von den Bäumen mit der Axt entfernt. Dieser Prozeß, der als +démasclage+ (span. descorcho) bezeichnet wird, wird zum ersten Male meist an 25-30 Jahre alten Bäumen von mindestens 35-40 cm Umfang nicht eben sehr sorgfältig ausgeführt. Da die Schälung etwa bis zum Phellogen erfolgt, so bleibt der Rest der primären und die ganze sekundäre Rinde am Baum. Sie färbt sich nach dem Ablösen an der Oberfläche erst rosenrot, dann rotbraun. Sie trägt den ganz passenden Namen +mère+, +Korkmutter+, denn in ihr erfolgt die Neubildung des Sekundärkorkes. Bald in der primären, bald in einer mehr oder weniger tiefen Schicht der sekundären Rinde, also in sehr verschiedener Tiefe, entsteht ein +neues+ Phellogen und bald setzt nun eine sehr ausgiebige Neubildung von Kork ein. Der neugebildete Kork trägt den Namen +liège femelle ou de réproduction+, +weiblicher Kork+, in Spanien: corcho segundero oder fino. Er ist viel gleichmäßiger, und da die Jahreszuwachszonen viel breiter sind, auch viel mächtiger als der männliche. Außen ist er mehr oder weniger rissig und trägt hier als schmale braune Schicht die mère extérieure, die abgestorbenen Reste der primären oder der primären und des äußeren Teiles der sekundären Rinde -- je nach dem Orte seiner Bildung. Seine Zellen sind relativ groß und weit, Sklereïden sind selten, daher ist er sehr elastisch. Er kann schon im ersten Jahre eine Dicke von 2, im dritten schon eine Dicke von 19 mm erreichen. Für gewöhnlich läßt man ihn aber 9-12 Jahre am Baum. Die Regierung in Algier ordnete an, daß in den Staatswäldern der Kork nicht eher geschält werden darf, als bis er eine Mindestdicke von 25 mm erreicht hat. Kork für Champagnerkorke muß 15 Jahre alt werden (~Hartwich~). Bisweilen werden Stamm und Äste geschält; in Gerona nur der Stamm. Mit der +Schälung+ (+démasclage+) wird in Algier Ende Mai oder Anfang Juni, in Spanien, Portugal und Frankreich einige Wochen später kurz nach dem ersten Safttrieb begonnen. Zu dieser Zeit löst sich der Kork am leichtesten ab. Sie erfolgt in der Weise, daß der Arbeiter (rusquier, tireur) mit der Axt (franz. picasson, hachette de démascleur, span. dastral) in bestimmten Abständen (c. 1 m) zunächst Horizontalschnitte (Gürtel- oder Ringelschnitte) macht und diese durch ein oder zwei Längseinschnitte verbindet, dann hebt man den Kork an einer Stelle etwas ab, schiebt den am Ende meißelartig zugeschärften Axtstiel dazwischen und löst meist mit einem Rucke die ganze Schicht von der am Baume bleibenden mère intérieure ab. Klopfen befördert die Ablösung (I, Fig. 86 u. 89). Mit der Axt nicht erreichbare Stellen werden mit der burxa abgelöst, einem 2 m langem zugeschärften Hebel. Der neugebildete Kork löst sich meist leicht in der Phellogenschicht ab. Wurde +ein+ Längsschnitt gemacht, so erhält man Röhren (canon), bei zwei Schnitten Platten (planches, planchas). Obwohl oft empfohlen wurde den Baum nach dem Schälen mit einer Schutzhülle von Gras oder Moos zu umgeben (ähnlich wie bei der Erzeugung der Renewed barks der Cinchonen, vgl. I, Taf. XXXIII), scheint dies in der Praxis doch nirgends zu geschehen. Die Ernte muß vor Eintreten der starken Hitze oder der Regenzeit beendet sein. Die großen, etwas gekrümmten Korkplatten werden dann aus dem Walde in die Fabrik gebracht (I, Fig. 87) und die außen ansitzenden Reste der Korkmutter (mère extérieure, s. oben) abgeschabt. Dieser Prozeß heißt +démérage+ (I, Fig. 91). Dann werden die Platten (liège démérés) in großen kupfernen Pfannen ½-¾ Stunden in siedendes Wasser getaucht (I, Fig. 88) und schließlich übereinander geschichtet möglichst flach gepreßt (Fig. 152 u. I, Fig. 90). Das Kochen entfernt viel Gerbstoff und andere Stoffe (20-30% des Kork) und macht die Platten elastisch. Der Kork schwillt hierbei um 30% auf. Das Kochen und Abkratzen unterbleibt bisweilen (lièges bruts), alsdann werden die frischen Platten nur durch Beschweren flach gestreckt. Bisweilen wird die äußere Schicht erst nach dem Sieden mit dem Kratzeisen (raclette, raspador) oder dem Hobeleisen (doloire, dolatero) oder mit Maschinen abgekratzt (raclage) oder mit Feuer abgesengt (flambage). Die fertigen Platten werden durch den classeur (viseur) klassifiziert und oft durch hydraulische Pressen zu Ballen von 70 bis 80 kg zusammengepreßt und mit Alfagras oder eisernen Reifen umschlossen. [Illustration: Fig. 153. Lager von fertig bearbeitetem Kork des Schweiz. Konsuls +Borgeaud+ in Algier. [+Businger+ phot.]] Wird der Kork auf einmal vollständig weggenommen, so erneuert er sich langsamer aber in besserer Qualität als nach einer nur teilweisen Schälung. Gebirgige Gegenden liefern weniger, aber besseren Kork, als das Tiefland, wärmere besseren als kältere. Die Güte des Korkes ist also auch abhängig vom Klima und Standort aber auch von einer nicht zu engen Pflanzweite, vom Boden und dem Wetter. Der 9-12 Jahr nach der Entfernung des männlichen Korkes geerntete erste erneuerte Kork ist ziemlich schwammig, mit jeder neuen Ernte, die immer in Pausen von 8-12 (Algier-Tunis 8-9, Spanien-Portugal 10, Frankreich 12) Jahren am gleichen Baume, wie es scheint sehr lange, erfolgen kann -- in Algier schält man zehnmal --, verbessert sich der Kork und ist schon nach der vierten oder fünften Ernte, wenn der Boden mager und trocken ist, tadellos. In der spanischen Provinz Gerona wird der Kork Ende Juni und Anfang Juli gesammelt. Jeder Stamm wird dort nur alle 10-12 Jahre geschält. Bisweilen ist es vorteilhaft, dem Baume 18 Jahre Ruhe zu gönnen. Bei älteren Bäumen (von 120-150 Jahr Alter) werden die Jahreszuwachszonen sehr schmal, so daß man die Pausen auf 14-16 Jahr erhöhen muß, bei 200 Jahr alten Bäumen lohnt die Produktion nicht mehr (~Lamey~). Bei jüngeren Bäumen wird nur der Stamm, bei älteren auch die dickeren Äste, die den feinsten Kork liefern, dem démascler (descorchar) unterworfen. Um die gefürchtete Rissebildung zu verhindern, macht man nach dem Ablösen des Korkes in die Korkmutter einen Längseinschnitt (Taf. X), bisweilen auch 2-4, aber niemals an der Nordseite des Baumes. Der Ertrag der Bäume wechselt nach Alter und Umfang. Jüngere Bäume liefern 3-10, sechzig- bis hundertjährige 15-36, noch ältere 44-55 kg Rohkork (~Lamey~). Ernten von 100 bis 600 kg pro Baum gehören zu den großen Seltenheiten, sind aber beobachtet (~Artigas~, ~Lamey~). Der Rohkork heißt im Großhandel +Korkholz+. Die Démasclage schädigt den Baum nicht, soll seine Lebensdauer sogar erhöhen. Die Größe der Rohkorkplatten schwankt meist zwischen 0,3 und 0,8 qm und 5 und 20 cm Dicke, doch sah ~Hartwich~ Platten von 135 cm im Quadrat. Der andalusische Kork ist hell und meist sehr weich, der katalonische rötlich und härter, der portugiesische gelbrot. Zur Stöpselfabrikation werden meist nur Platten von wenigstens 22 mm Dicke benutzt. Man stellt aus den zuvor eingeweichten Platten (mit der Hand oder mit Maschinen) zunächst Parallepipeda her und schneidet daraus dann die Korke. Bei Maschinenschnitt -- eine Korkschneidemaschine kann in 10 Stunden 20-25000 Korke schneiden -- erhält man mehr Abfall (bis 50%) wie bei Handschnitt. In Spanien wird viel Kork in Hausindustrie geschnitten. Die Jahresringe müssen auf dem Stöpselkopf als Querstreifen sichtbar sein, d. h. der Kork muß so geschnitten werden, daß eventuelle Lentizellenkanäle rechtwinklig zur Achse des Korkes stehen. Bei sehr breiten Korken ist dies nicht der Fall. Dieselben schließen daher auch nicht luftdicht. Die bedeutendsten deutschen Stöpselfabriken liegen in Bremen und Delmenhorst (Oldenburg), Raschau (Sachsen), Berlin, dann finden sich auch solche in Thüringen, Baden, Hessen, ferner der Schweiz (Genf) und in England, Österreich (Wien), die größten Fabriken aber in Spanien und Frankreich (Bordeaux). Die fertigen Korke passieren Sortier- und Zählmaschinen. Vor dem Sortieren werden die Korke bisweilen mit Salzsäure oder Oxalsäure oder schwefliger Säure behandelt (Oxalsäure gibt ihnen eine rötliche Färbung). ⁹⁄₁₀ des Korkes wird auf Stöpsel verarbeitet, ⅒ auf anderes (s. hinten). Die 19% Gerbstoff enthaltende +Rinde+ nicht zur Korkgewinnung tauglicher Bäume wird in Sizilien, Algerien und Tunis auf Gerberlohe verarbeitet. Viele Korkbäume wurden z. B. in Sardinien geopfert, um die Rinde zu gewinnen. In Marocco wird noch viel Korkrinde zu Gerberlohe und Holzkohle verarbeitet, da die Regierung die Ausfuhr des Korkes verboten hat. Die Rinde der Korkeiche ist reicher an Tannin wie die aller anderen Eichen. Die Produktion beträgt jetzt 60-70000 quint. (~Lefebvre~). Auch der nach der ersten démasclage gebildete Kork, der 18% Gerbstoff enthält, dient in Algier als Gerbematerial. Die Früchte (Tardias, Palomeras) dienen zur Schweinemast. Der Wohlgeschmack der Schinken von Bayonne wird auf die Mast mit Eicheln von _Querc. occidentalis_ zurückgeführt. =Lit.= ~Jaubert de Passa~, Mem. soc. d’agric. d. l. Seine 1837. -- ~Willkomm~, Jahrb. Akad. Tharand 1859. -- ~Torrent~, Le liège. Boulon. 1880. -- ~Casimir de Candolle~, De la product. nat. et artific. du liège dans le chêne liège. Mém. Soc. d. phys. et d’hist. nat. Genève 16 (1861) 1. -- ~P. Artigas y Teixidor~, El Alcornoque y la industria taponera Madrid 1875. Alcornocales, industria taponera Madrid 1885 und Alcornocales é industria corchera Madrid 1895 (New Remed. New York 1880 und Bot. Jahresber. 1880, 2, 749). -- ~de Grafigny~, Le liège et ses applications. Paris 1888. -- ~A. Lamey~, Le chêne-liège, sa culture et son exploitation. Paris 1893. -- ~J. Rein~, Geograph. u. naturwissensch. Abhandl. Leipzig 1892. -- ~Semler~, Tropische Agrikultur (dort Details). -- ~E. A. Müller~, a. a. O. (s. oben). =Handel.= Die Korkproduktion +Portugals+ übertrifft die aller anderen Länder. ~Müller~ schätzte sie 1900 auf 50 Mill. und die Korkausfuhr erreichte schon 1897 fast 47 Mill. kg, während die Korkproduktion Spaniens von ~Artigas~ auf nur 30 Mill. kg geschätzt wird. Die +Ausfuhr Spaniens+ schwankt jetzt zwischen 8 und 9 Mill. kg pro Jahr (~Müller~). Der portugiesische Kork ist aber weniger geschätzt und daher ist der +Wert+ der spanischen Ausfuhr größer als der der portugiesischen. Die Hauptausfuhrhäfen sind auf der Karte unterstrichen. 1896 hatte die +algerische+ Ausfuhr die spanische erreicht. Sie ist im Steigen begriffen. Sie betrug 1897: 11,9, 1898: 8,3 Mill. kg. Der algerische Kork steht dem spanischen und portugiesischen an Wert nach. Die Staatsdomänen, die alljährlich den Ertrag versteigern, lieferten 1898 5¼ Mill. kg. Die Produktion an liège brut betrug in +Algier+ 1899: 45000 quint. aus Staatsdomänen, 6000 aus Gemeindewaldungen, 108000 aus Privatwaldungen (~Lefebvre~). Der Export von +Tunis+ betrug 1908: 800000 quint. +Frankreich+ produziert jährlich 120-130000 quint Rohkork (~Lefebvre~). Frankreich führte 1908 12428000 kg +Kork+ ein, besonders (⅔) aus Algier, dann aus Spanien, Portugal, Tunis und Italien. +Italien+ exportierte 1897 c. 1½ Mill. kg. Die Produktion wurde 1900 auf 8000 quint geschätzt. (Sardinien und Sizilien je 12000 quint.) 1911 wurde die jährliche +Korkproduktion+ wie folgt geschätzt in Tonnen (t): Portugal: 74500, Spanien: 23300, Algerien: 17100, Frankreich: 12000, Italien: 3800, Corsica: 1600 (~Alfred Weber~). Korkbörsen finden sich in Marseille und Bône (Algier). Man unterscheidet bei dem Rohkork nach der Plattendicke 4 Kategorien: I. 31 mm und darüber, II. 26-30 mm, III. 23-25 mm, IV. 22 mm. Die Menge der jährlich fabrizierten Stöpsel schätzt ~Lamey~ (1893) auf 6 Milliarden, davon entfallen auf Spanien 2 Milliarden. Der +tägliche+ Bedarf an Stöpseln auf der Erde wird neuerdings auf 20 Millionen geschätzt (~Hoehnel~). Deutschland verbraucht für über 12 Mill. M. Kork im Jahr. Die Gesamtproduktion dürfte einen Wert von 100 Mill. M. erreichen. =Lit.= ~Lefebvre~ a. a. O. -- ~Müller~ a. a. O. -- ~Semler~, Tropische Agrikultur. -- ~v. Hoehnel~ in ~Wiesner~, Rohstoffe -- Kork-Industrie-Zeitung (Red. ~Alfr. Weber~). [Illustration: Fig. 154. Korkzellen aus Flaschenkork im Querschnitt an einem Jahresring, in 2 Sclereïdenbildung. [+Tschirch+ gez.]] =Anatomie.= Die subepidermale Korkbildung beginnt bei _Quercus Suber_ schon im ersten Jahr, die Epidermis wird im dritten abgeworfen (~Kügler~). Das Phellogen bildet reichlich Korkzellen. Über den männlichen Kork s. oben S. 461. Der aus dem weiblichen Kork (s. oben S. 461) dargestellte +Flaschenkork+ wird seiner Hauptmasse nach aus dünnwandigen, im Querschnitt nahezu quadratischen oder radialgestreckten, in Radialreihen angeordneten, bis 100 mik breiten Korkzellen gebildet, deren Wand wohl infolge der Behandlung bei der Fabrikation bisweilen wellig verbogen erscheint. In den Zellen findet man bisweilen kleine Prismen von in Chloroform löslichem Cerin, seltener Plasmareste oder Oxalatdrusen (~Hoehnel~), immer Luft. Hier und da -- bei guten Sorten selten -- ist in dies gleichförmige Gewebe eine Brachysklereïde mit durchweg stark verholzter, nicht sehr dicker Wand und variablem Umriß eingebettet. Zahlreicher sind diese einen rotbraunen Inhalt führenden Sklereïden (Fig. 154, 2) in den jahrringartigen und in der Tat den Jahreszuwachsen entsprechenden Zonen die in unregelmäßigen Abständen und zarten, geschlängelten Bogenlinien den Kork durchziehen, die feine Musterung desselben hervorrufen und aus mehreren Reihen etwas dickwandigerer Zellen von Tafelform bestehen (Fig. 154, 1), deren Wand gebräunt ist und die bisweilen auch bräunlichen Inhalt führen. ~Flückiger~ erwähnt neben diesen noch «falsche Jahresringe» aus zusammengefallenen Zellen, die sich aber beim Erwärmen mit Wasser zu normalen Zellen strecken. Die besonders bei schlechten Korksorten häufigen braunen bröckligen Stellen, die beim Pressen des Korkes ein braunes Mehl entlassen, bestehen aus lockeren, aus dem Gewebeverbande gelösten Sklereïden und Sklereïdennestern, gemengt mit wenigen rundlichen obliterierten Korkzellen. ~Kügler~ hat (da bei der normalen Rinde Lentizellen auftreten und von diesen Risse ausgehen) diese Nester mit Lentizellen in Verbindung gebracht und in der Tat sieht man auf Querschnitten besonders schlechter Sorten Rohkork oft, daß die braunen mehligen Stellen des Innern nach außen hin in eine der zahlreichen von außen eindringenden Spalten münden, an deren Ausführungsöffnung vielleicht eine Lentizelle lag. Bisweilen durchsetzen diese braunen Streifen sogar die ganze Korkschicht. Die zahlreichen Löcher, die man auf der Innenseite der Rohkorkplatten sieht, gehören zu diesen Streifen, die vielleicht auch zu den Markstrahlen in Beziehung stehen. Wenn man berücksichtigt, wie außerordentlich die normale Transpiration des Stammes durch den riesigen Korkpanzer behindert ist, so kann man hier sehr wohl an eine besondere Form von Lentizellen denken, da diese ja bekanntlich der Durchlüftung dienen. Bei den nicht mehr bis zum Phellogen reichenden funktionslos gewordenen erschiene dann auch die Sklerose der Zellen verständlich. Aber es liegt jedenfalls im Interesse des Kultivateurs, die Bildung dieser braunen Stellen zu verhindern. Wie es scheint gelingt dies durch öftere Wiederholung der Démasclage bei alten Kulturen und dadurch, daß man nach Ablösung des Korkes einen Längseinschnitt in die Korkmutter macht (Taf. X). Sicher ist, daß dadurch die Bildung zahlreicher Risse vermieden wird. Die dünne Wand und das weite Lumen der Korkzellen (Fig. 154) geben dem Flaschenkork seine Geschmeidigkeit. Bemerkenswert erscheint es, daß als Folge der Prozedur, die behufs Erzeugung des weiblichen Korkes an den Stämmen der Korkeiche vorgenommen wird -- Entfernung des normalen Korkes bis zum Phellogen -- hier mutatis mutandis dieselbe Erscheinung zu beobachten ist wie bei den Schälwunden, die die Rinde bis zum Cambium entfernen. Bedeckt man nämlich eine solche Wunde, z. B. bei _Cinchona Succirubra_, so erzeugt das Cambium zunächst eine große Menge weiter dünnwandiger Parenchymzellen (renewed bark). Es scheint also eine allgemeine Erscheinung zu sein, daß die auf Schälwunden neu erzeugten Gewebe weiter und dünnwandiger sind als die normalen Gewebe. Die äußeren Jahreszuwachszonen sind erheblich breiter als die inneren, die infolge des Druckes der äußeren oft nur sehr schmal sind. Ich zähle an einer 30 mm dicken Korkplatte 11 Jahresringe. Der äußerste ist 4,5-5, der zweite 5-5,5 mm breit, der dritte 3,5-4, der vierte bis sechste 2-3 mm, die innersten 0,5-1 mm breit. Dieselbe Zone besitzt nicht überall die gleiche Breite. Der Kork ist um so besser je breiter die Jahreszonen, je dünner und weiter die Korkzellen und je weniger Sklereïdennester und -streifen vorhanden sind. Der männliche Kork enthält nur schmale, 0,5-1 mm breite Jahreszuwachszonen, eng beieinander liegende Jahresringe und daher mehr dickwandige Zellen. =Mikrohistochemie.= Die Membran der Korkzellen besteht aus zwei Schichten, der Mittellamelle, die zwei Zellen gemeinsam ist und der Suberinlamelle, zu denen bei dickeren Zellen noch eine verholzte Innenhaut tritt (~Höhnel~). Die Mittellamelle ist sehr schwer zu sehen, auch nach Zusatz von Chlorzinkjod, welches die ganze Wand gelb, oder Phloroglucin-Salzsäure, welches sie rot färbt, tritt sie kaum deutlicher hervor. Erst wenn man einige Zeit mit Soda kocht, auswäscht und mit Fuchsin färbt, hebt sich die Suberinlamelle von der Mittellamelle ab. Läßt man einige Stunden in konz. Kalilauge liegen, wäscht aus und setzt Chlorzinkjod hinzu, so färbt sich die Suberinlamelle rotviolett oder kupferrot (Phellonsäure- +nicht+ Zellulose-Reaktion, ~Gilson~, ~Wisselingh~). Die Färbung tritt nicht ein, wenn man nach der Kalibehandlung vor dem Zusatz von Chlorzinkjod mit Alkohol kocht, wobei das Kaliumphellonat gelöst wird. Kocht man mit 40% Kalilauge, so färbt sich nach dem Auswaschen die Suberinlamelle mit Chlorzinkjod rosa. Bei längerem Kochen wird sie zerstört, der Mittellamelle wird das Lignin entzogen und diese färbt sich nun nach dem Auswaschen mit Chlorzinkjod blau (Cellulosereaktion), ebenso wie die nun bisweilen (bei dickeren Zellen) sichtbar werdende Innenlamelle. Bei den dünnwandigen Zellen ist die Innenlamelle (Celluloseschlauch ~Höhnels~) nicht zu sehen. ~Schultze~sche Macerationsflüssigkeit löst die Mittellamelle. Bei kürzerer Einwirkung wird ihr nur das Lignin entzogen und sie reagiert dann nach dem Auswaschen blau (oder gelb) auf Chlorzinkjod. Legt man nach kurzer Einwirkung von ~Schultze~scher Macerationsflüssigkeit in Kali und wäscht aus, so färben sich Mittellamelle (und, wo vorhanden, auch Innenlamelle) mit Chlorzinkjod blau, die Suberinlamelle kupferrot. Nach Behandeln mit Kupferoxydammoniak färbt sich die Suberinlamelle mit Chlorzinkjod gelb, da Kupferphellonat gebildet wird. ~Gilson~ schließt aus obigen Reaktionen, daß die Suberinlamelle +keine+ Cellulose enthält, und nur in Mittellamelle (und Innenlamelle) Cellulose vorkommt in Form von sog. verholzter Membran (vgl. S. 263). Beim Behandeln mit ~Schultze~schem Gemisch treten aus der Korkmembran Tropfen aus (Ceresinsäurereaktion von ~Höhnel~). ~van Wisselingh~ schreibt mir (1911): «Daß die Suberinlamelle keine Cellulosegrundlage hat, geht aus folgendem hervor: Bei Erwärmung in Glycerin auf 300° (in zugeschmolzenen Röhrchen) wird die Korklamelle meistenteils ganz zersetzt und entfernt ohne Zurücklassung von Cellulose, während dünne cellulosehaltige Wände noch unvermindert oder deutlicher die Cellulosereaktionen zeigen. Durch Erwärmen mit einer Lösung von Kaliumhydroxyd in Glycerin (10proz. auf dem Objektträger), sowie bei Behandlung mit alkoholischer Kalilauge bei gewöhnlicher Temperatur wird die Suberinlamelle ganz entfernt ohne Zurücklassung von Cellulose. Bei Untersuchung echter Korkzellwände habe ich niemals Anzeichen für Anwesenheit von Cellulose oder anderen Kohlehydraten in der Suberinlamelle erhalten.» Erwärmt man Schnitte in Wasser, so sieht man, daß die Korkmembranen über dem Gipsblättchen sich neutral verhalten, daß aber mit dem allmählichen Erkalten die frühere optische Reaktion wiederkehrt (~Ambronn~) -- kann beliebig oft wiederholt werden --. Daraus schließt Ambronn, daß in diesen Membranen die Einlagerungssubstanz in kristallinischer Form mit gleichsinniger Orientierung der kleinsten Teilchen vorhanden ist. Verkorkte Membranen verlieren auch durch Behandlung mit Kalilauge ihre normale optische Reaktion, das Achsenverhältnis kann sich sogar umkehren (~Dippel~) oder sie werden wenigstens neutral (~Ambronn~). =Lit.= ~Mohl~, Entwickl. d. Korkes. Diss. 1836 u. Vermischte Schrift. Bot. Zeit. 1847, 497. -- ~Mitscherlich~, Monatsber. d. Berl. Akad. 1850. -- ~Schacht~, Anat. u. Phys. 1856 I, 287. -- ~Sanio~, Vgl. Unters. über d. Bau u. Entw. d. Korkes. Pringsh. Jahrb. 2 (1858). -- ~De Bary~, Anatomie. -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie. -- ~Hanausek~, Techn. Mikroskop. -- ~Von Höhnel~, Über den Kork u. verkorkte Gewebe überhaupt. Sitzungsb. d. Wien. Akad. 76 (1877), 527. -- ~Ross~, Contr. alla conosc. del periderma Malpighia 1890. -- ~Zimmermann~, Reakt. von Kork und Cuticula. Zeitschr. f. wiss. Mikrosk. 9 (1892) 59. -- ~Kügler~, Über d. Kork von Quercus Suber. Arch. Pharm. 22, 217. -- ~van Wisselingh~, Sur la paroi des cellules subéreuses. Arch. Néerland. 22, 1888 und 26, 1893. -- ~Gilson~, La subérine et les cellules du liège. La Cellule 6. -- ~Ambronn~, Über d. opt. Verhalt. d. Cuticula u. d. verkorkten Membranen. Ber. d. d. bot. Ges. 1888. -- ~Dippel~, Mikroskop II. -- Erste Abbild. der Korkzellen in ~Robert Hooke~, Micrographia or some physiological descriptions of minute bodies made by magnifying glasses. London 1667 fol. 112, observat. XVIII Taf. XI. =Chemie.= ~Brugnatelli~ erhielt 1787 bei Behandlung des Korkes mit HNO₃ +Korksäure+ oder Suberinsäure, (CH₂)₆(COOH)₂ (s. oben S. 457), die ~Bouillon la Grange~ als verschieden von der Oxalsäure erkannte. ~Chevreul~, der die acide subérique zur Sebacinsäure ~Thénards~ in Beziehung brachte, erhielt beim Behandeln des Korkes mit siedendem Wasser unter Druck 14% Extrakt, darin +Farbstoffe+, +Gallussäure+, +stickstoffhaltige Substanzen+, +Eisen+, +Kalk+ und +Magnesiaverbindungen+ und aus dem ungelösten Rückstand durch Extraktion mit Alkohol, neben Harz, krist. +Cerin+ oder Korkwachs (C₃₂H₂₀O ~Boussingault~, C₂₅H₂₀O₃ ~Döpping~, C₁₇H₂₈O ~Siewert~). Er ist der Ansicht, daß die Farbstoffe, Harze und Fette dem Zellinhalt angehören. Den mit Wasser und Alkohol erschöpften Rückstand nannte er +Suberin+ (~Doepping~ nannte den in Wasser, Alkohol, Salzsäure und Äther unlöslichen Teil so). ~Boussingault~ fand das Suberin größtenteils in Alkali löslich, aus der Lösung fällen Säuren die Substanz, welche mit HNO₃ +Korksäure+ bildet. Die zur Oxalsäurereihe gehörige Korksäure kann auch aus Ricinusöl, Leinöl u. and. Ölen, Cocos und Palmfett, Walrat, Stearin- und Ölsäure mittelst HNO₃ dargestellt werden (~Etaix~, ~Vanzetti~, ~Bromeis~, ~Arppe~, ~Dale~ u. and.), wo sie neben Azelainsäure entsteht (~Arppe~) und wird synthetisch aus Dibromhexan (wie Azelainsäure aus Dibrompentan) erhalten (~Braun~). Sie entsteht auch durch Reduktion der Octadiidisäure (~Lespiau~ und ~Vavon~). ~Döpping~ erhielt durch Behandeln des Cerins mit Salpetersäure Cerinsäure (C₄₂H₃₄O₃) und gab dem in HNO₃ unlöslichen Teil den Namen Korkzellulose (C₆H₁₀O₅). ~Siewert~ fand krist. Fettsäuren im Alkoholextrakt (2,5% +Decakrylsäure+: C₁₀H₁₈O₂, +Eulysin+: C₂₄H₃₆O₃). +Phellylalkohol+ (Cerin) war zu 1,75% vorhanden. Die Corticinsäure ist ein unreiner Körper. ~Payen~ fand, daß der mit Salzsäure, Essigsäure, Kalilauge und Wasser extrahierte, von den «Inkrusten» (bes. Fetten) befreite Kork (der Kartoffel) in Kupferoxydammon löslich ist. Er hält ihn für Zellulose, ebenso ~Wiesner~ und ~Haberlandt~ den nach Extraktion mit Chromsäure oder ~Schultze~scher Macerationsflüssigkeit erhaltenen Rückstand. Nach ~Frémy~ und ~Urbain~ enthält der Kork 43% +Cutose+ (= Suberin), 29% +Vaskulose+, 12% Zellulose und «Parazellulose» und 15% in Säuren und Alkalien lösliche Stoffe (Cutose + Vaskulose = Suberin, ~Chevreul~). ~v. Wisselingh~ fand das Suberin in auf 250-290° erhitztem Glycerin löslich. Die Fettsäuren untersuchte zuerst ~Kügler~. Er fand im Chloroformextrakt neben krist. +Cerin+, F. 250° (C₂₀H₃₂O), das ~Thoms~ als phytosterinartig erkannte und C₃₀H₅₀O₂ oder C₃₂H₅₄O₂ formulierte, +Glycerin+ und +Stearinsäure+ und eine neue krist. Säure: +Phellonsäure+ (C₂₂H₄₂O₃), welche Säuren ~Kügler~ reichlicher durch Kochen des mit Chloroform erschöpften Korkes mit alkoholischer Kalilauge erhielt. ~Gilson~ fand im Kork neben Cerin 44% Fettsäuren (acides subérogéniques) und in diesen 8% einbasische krist. +Phellonsäure+ (F. 95-96°, C₂₂H₄₃O₃ ~Gilson~, C₂₂H₄₂O₃ ~Kügler~, Konstitutionsformel nach ~v. Schmidt~ s. oben S. 457), +deren in Wasser unlösliche Alkalisalze mit Chlorzinkjod rotviolett werden+ (Kupferphellonat wird braun), 36% amorphe +Suberinsäure+ (halbflüssig, C₁₇H₃₀O₃) und sehr wenig krist. +Phloionsäure+ (Nadeln, F. 120-121, C₁₁H₂₁O₄ oder C₂₂H₄₀O₇ kann fehlen), deren Alkalisalze sich mit Chlorzinkjod nicht färben. ~v. Schmidt~, der in dem Chloroformextrakt des Korkes (neben +Cerin+) ebenfalls Glyceride der Fettsäuren fand, nimmt in der Korksubstanz die Fettsäuren in der Form verseifbarer Anhydride an (s. oben S. 457). Nach ~Istrati~ und ~Ostrogovich~ wird Cerin von Friedelin (C₄₃H₇₀O₂, F. = 263,5) begleitet. ~Kügler~ gibt im Korke von _Quercus Suber_ an: 2,9% Cerin, 30,10% Fettsäuren, 2,65% Glycerin, 12% «Lignin», 8% Huminsubstanzen, 22% «Zellulose» (?), 5% Wasser, 0,5% Asche. Woher die +Pentosane+ stammen, die ~Councler~ aus Rinden erhielt, ist zweifelhaft. Möglicherweise enthält die verholzte Mittellamelle ein Xylan (~Czapek~), vielleicht aber stammen sie auch von Nucleoproteïden (des Inhaltes?). Der Stickstoffgehalt des Korkes, der 1,5-3% beträgt und den schon ~Hofmeister~ (1867) der Membran zuweist, sollte mit Rücksicht auf die bei der Pilzzellulose gemachten Erfahrungen einem erneuten Studium unterworfen werden. Er wird jetzt meist auf die Proteïnkörper des Inhaltes bezogen. Ferner wurden im Kork gefunden: der aromatische Aldehyd des Holzes, das +Hadromal+ (vielleicht als Kohlehydratester, ~Czapek~), +Vanillin+ (~Kügler~, ~Bräutigam~, ~Büttner~, ~Thoms~) und vielleicht auch +Coniferin+ (? ~Kügler~) -- wenn man Kork erhitzt bemerkt man einen aromatischen Geruch -- sowie +Gallussäure+ (~Drabble~ und ~Nierenstein~). Die +gerbstoffartigen+ Substanzen (z. T. Phlobaphene, z. T. wohl auch Phoroglukotannide?) gehören wohl dem Inhalte an. Der größte Teil derselben wird übrigens durch das Brühen des Korkes (S. 463) entfernt. Doch zeigt eine Abkochung Gerbstoffreaktion. Der männliche Kork ist so stark gerbstoffhaltig, daß er als Gerbematerial vorgeschlagen wurde. Über die hier besonders wichtige Mikrohistochemie vgl. oben unter Anatomie. Bei Einwirkung von HCl, H₃PO₄, Essig- und Ameisensäure (und CO₂) auf ein Gemisch von Formaldehyd und einem Phenol, von Gerbsäure oder Oxybenzoësäure entstehen Kondensationsprodukte, die ähnliche Reaktionen zeigen, wie Kork z. B. unlöslich in Kupferoxydammon und Schwefelsäure und löslich in Kali sind (~Baeyer~, ~Kleeberg~, ~Caro~, ~Möhlau~ und ~Kahl~, ~Drabble~ und ~Nierenstein~). Eine diesen Kondensationsprodukten, die ~Drabble~ und ~Nierenstein~ +Phellemsäure+ nennen, ähnliche Substanz isolierten die Genannten auch aus Kork. ~v. Schmidt~ fand, daß, wenn man das Gemisch der aus Kork extrahierten rohen Fettsäuren erhitzt, Wasserabspaltung eintritt und ein Produkt erhalten wird, das ganz indifferent und impermeabel für Gase ist, wie Kork, und daß, wenn man Filtrierpapier mit den Fettsäuren tränkt und auf 140° erhitzt, man ein ganz dem natürlichen Korke gleichendes Produkt erhält. Die Zusammensetzung des gereinigten Korkes wurde zu C = 67,8, H = 8,7, N = 2,3, O = 21,1% (~Doepping~) oder C = 65,7, H = 8,5, N = 2,3, O = 29,5 (~Mitscherlich~) angegeben. ~v. Höhnel~ gibt die Zusammensetzung des Suberins zu 74% C, 10% H und 16% O an. Aus Korkabfällen wird +Leuchtgas+ dargestellt, der dabei entstehende +Teer+ enthält 27% leichte Öle, unter denen sich viel Naphthalin befindet, ferner Benzol und Toluol, 27% schwere Öle, die Phenole nur in geringer Menge enthalten, sowie 11% fluoreszierendes Öl, mit viel Anthracen. Das +Teerwasser+ enthält Essigsäure und Homologe derselben, Methylalkohol, Blausäure, Methylamin und Ammoniak (~Bordet~). Die Asche des Flaschenkorkes beträgt c. 0,5% (0,54-0,64% ~Kügler~) der Trockensubstanz. Sie enthält viel Mangan (27,7% Mn₃O₄ ~Kügler~) und Kalk (25% CaO), dann 11,3% SiO₂. 8,5% K₂O. Das bei der Herrichtung der Korkplatten durch Abkratzen erzielte «+Korkholzabschabsel+» enthält nach dem Sieben: 44,91% Sand und SiO₂, 20,87% CaO, 4,62% MgO, 3.79% Fe₂O₃, + Al₂O₃, 5,55% K₂O, 1,07% Na₂O, 1,88% P₂O₅, 12,06% CO₂, 5,25% Glühverlust. Es wird als Kalidünger empfohlen (~Mastbaum~). Das spez. Gewicht des Korkes gibt ~Rollmann~ zu 0,12-0,195, ~Muschenbrock~ zu 0,24 an. Doch ist bei diesen Versuchen wohl nicht die Luft entfernt worden, denn mit Wasser oder Alkohol gut ausgekochter Kork sinkt in kaltem Wasser unter (~Flückiger~), muß also schwerer als Wasser sein. Selbst außerordentlich dünne Korklamellen lassen sich nur sehr schwer (Kochen mit Alkohol) ganz von der Luft befreien (~Tschirch~). Das reine Korkgewebe ist wenig hygroskopisch, dagegen ziehen die braunen Lentizellen-Streifen begierig Wasser an (~Kügler~). =Lit.= ~Czapek~, Biochemie (dort und bei ~Kügler~ die Lit.). -- ~Brugnatelli~, Elementi di chim. II. Crells Ann. 1787. -- ~John~, Chem. Schrift. IV. -- ~Bouillon la Grange~, Ann. d. chim. 23 (1797), 42. -- ~Chevreul~, Ann. de chim. 62 (1807), 323, 96 (1815), 141, Schweigg. Journ. 16 (1816), 323. -- ~Boussingault~, Journ. pharm. chim. 1836. -- ~Mitscherlich~, Lieb. Ann. 75 (1850). -- ~Doepping~, Lieb. Ann. 45 (1843), 286. -- ~Siewert~, Chem. Centralbl. 1856, Journ. pr. Chem. 104 (1868) 118. Zeitschr. Ges. Naturw. 30 (1867). -- ~Payen~, Compt. rend. 1868. -- ~Koroll~, Quant. chem. Unters. d. Kork- usw. Gew. Diss. Dorpat 1880. -- ~Frémy~ und ~Urbain~, Journ. pharm. chim. 1882. -- ~Kügler~, Der Kork von Querc. Suber. Arch. d. Pharm. 1884, 217. Dissertat. Straßburg 1884 (und ~A. Meyer~, Ber. d. d. bot. Ges. 1883). -- ~De Graffigny~, Le liège. Paris 1888. -- ~Gilson~, Le Subérine et les cellules de liège. Diss. Straßb., La Cellule VI (1890), 63 (und in ~Flückiger~, Arch. Pharm. 1890, 690). -- ~van Wisselingh~, Sur le paroi des cellules subéreuses. Arch. Néerland. 12 (1888) und 26 (1893). Chem. Centrbl. 1892 II, 516. -- ~Bräutigam~, Pharm. Centralb. 1898, 685. -- ~Büttner~, Ebenda. -- ~Thoms~, Pharm. Centrh. 1898, 699. Chem. Centrbl. 1898 II, 1102. -- ~Istrati~ u. ~Ostrogovich~, Compt. rend. 128 (1899), 1581. -- ~von Schmidt~, Monatsh. f. Chem. 25 (1904), 277 u. Öster. Chem. Zeit 1911, 21. -- ~Drabble~ und ~Nierenstein~, Biochem. Journ. 1907 (Chem. Centralbl. 1907 II, I. 79). -- ~Mastbaum~, Chem. Zeit. 30 (1906), 39. -- ~Bordet~, Compt. rend. 92 (1881), 728. -- ~Rollmann~, Polyt. Centralbl. 27, 465 (1873). =Anwendung.= Die Verwendung des Korkes beruht auf seiner Eigenschaft, sich infolge der Dünnwandigkeit der Zellen leicht zusammendrücken zu lassen, gegen Lösungsmittel und Fäulnis relativ resistent zu sein, wegen seines hohen Luftgehaltes auf Wasser zu schwimmen und (z. T. auch wegen der eingeschlossenen Luft) Wärme sowie Schall schlecht zu leiten. Doch wird Kork von konz. Mineralsäuren, den Halogenen, Ammoniak und einigen ätherischen Ölen (bes. Terpentinöl) angegriffen. Die Verwendung des Korkes als Verschlußmittel beruht auf der Eigenschaft der Suberinlamelle für Wasser und Wasserdampf, sowie für die Dämpfe der meisten Flüssigkeiten impermeabel zu sein. Kork ist auch für Gase, z. B. Luft, undurchlässig (~Wiesner~, Wiener Anzeiger 1879). Zum Teil mag dies auch darauf zurückzuführen sein, daß die Zellen selbst Luft enthalten, die sich nicht verdrängen läßt (~Tschirch~). Die Undurchlässigkeit des Korkes hängt mit seiner Funktion bei der Pflanze zusammen. Denn die Korkschicht bildet ja den vornehmsten Schutz gegen Verdunstung. Sonst wird der Rohkork auch zu Einlegesohlen, zur Umhüllung von Dampfleitungen, zu Schalldämpfern, zu Belegen für Eisbehälter, zu Schwimmgürteln verwendet -- die Korkabfälle zu künstlichen Korkplatten, zu Linoleum und Kamptulikon (Kortizin). Bei der Linoleumbereitung wird Korkpulver mit Linoxin (in Oxydierhäusern oxydiertes Leinöl, s. S. 323) behandelt. Der männliche Kork ist nur zu Schwimmkörpern, Korksteinen u. dergl. verwendbar. =Lit.= ~Ed. Hanausek~, Technologie d. Drechslerkunst 1897 und ~Erdmann-König~, Allgem. Waarenkunde. -- ~T. F. Hanausek~ in Luegers Lexikon. =Geschichte.= ~Theophrast~ beschreibt (Hist. pl. III, 17, I u. IV, 15, 1) eine Korkeiche φελλός), die er nach Tyrrhenium (d. h. nach Westen) verlegt, und sagt, daß wenn die Rinde φλοιός) entfernt werde, sie in 3 Jahren wieder wachse. φελλός des ~Theophrast~ deutet ~Sprengel~ als _Quercus Pseudo-Suber_ ~Desf. Pausanias~ kennt eine Eiche in Arkadien, deren Rinde so leicht ist, daß sie als Ankerzeichen (Bojen) oder als Flossen an Fischnetzen befestigt, auf dem Wasser schwimmt (~Hehn~). Auch die Benutzung des Korkes zu Schwimmgürteln war den Römern bekannt (Sage von ~Camillus~). Es war ~Plinius~ bekannt, daß sich die «Rinde» erneuert und er erwähnt die Verwendung des Korkes zu Verschlüssen (obturamenta). ~Plinius~ sagt: «+Suberi+ minima arbor, glans pessima, rara: +Cortex+ tantum in fructu, +praecrassus ac renascens+, atque etiam in denos pedes undique explanatus. Usus ejus ancoralibus maxime navium, piscantiumque tragulis et +cadorum obturamentis+: praeterea in hiberno feminarum calceatu. Quamobrem non infacete Graeci +corticis arborem+ appellant. Sunt et qui +feminam ilicem+ vocant: atque ubi non nascitur ilex, pro ea subere utantur, in carpentariis praecipue fabricis, ut circa Elin et Lacedaemonem. Nec in Italia tota nascitur aut in Gallia omnino». Auf den Gebrauch des Korkes als «Schwimmer» spielen auch ~Aeschylos~, ~Plutarch~, ~Pindar~ und ~Archias~ an (daher Cortex natarius z. B. bei ~Festus~). ~Virgil~ erwähnt die Verwendung als Dachbedeckung, wozu die Korkplatten noch heute in Algier benutzt werden. ~Varro~ sagt: Die besten Bienenstöcke sind die aus Cortex gemachten. Auch ~Columella~ (I, S. 572) kannte das schlechte Wärmeleitungsvermögen der Korkplatten und empfiehlt sie als Umhüllung der Bienenstöcke, zur Herstellung einer gleichmäßigen Temperatur. «Siva illa (regio) ferax est +suberis+, haud dubitantur utilissimas alvos faciemus ex cortibus quia nec hieme rigent, nec candent aestate» (De re rustica IX, 6) -- wozu sie noch jetzt in Südspanien und Algier benutzt werden. ~Quintus Serenus Sammoniacus~ (Liber medicinalis) erwähnt einen Trank aus Korkrinde als Blutstillungsmittel. «Die Sitte, Gefäße mit +verharztem+ Kork zu verschließen, stammt, wie es scheint, von den Galliern» (~Schrader~). Sie wird bei ~Cato~, ~Columella~ und ~Horaz~ (cortex adstrictus pice) erwähnt. Doch war das Verkorken bei den Römern selten, die Gefäße mit Holz, Pech, Gips, Kreide oder Wachs verschlossen oder Öl auf die Flüssigkeiten gossen -- was bekanntlich in Italien noch heute beim Wein geschieht. «Die Kunst, die +enge+ Öffnung eines Gefäßes mit der elastischen Rinde der Korkeiche zu verschließen, geht in ein hohes Altertum hinauf, und allgemein geworden ist sie erst seit den letzten Jahrhunderten, und zwar sehr langsam. Erst das Aufkommen enghalsiger Glasflaschen, die zuerst im XV. Jahrh. auftreten und die Notwendigkeit, derartige Flaschen gefüllt versenden zu müssen, brachte den Kork in allgemeinen Gebrauch» (~Hehn-Schrader~). Im Mittelalter bediente man sich zum Verschließen von Fässern der Holzpflöcke, bei kleineren Gefäßen der Verschraubung oder des Wachsverschlusses. 1410 führte Danzig Kork aus Lissabon ein (I, S. 811). ~Clusius~ sagt 1601 (a. a. O.): «Verum in Hispaniis primum illum praecrassum corticem dum taxat detrahere solent: quo non modo +ad cadorum obturamenta, alvearia et nonnulla etiam vasa rustici utuntur+, sed etiam ad tuguriorum, parietum, et murorum praetexta, praesertim in ea Baeticae parte, quam Estramaduram vocant, ubi interdum totis pagis aedes magnis suberis fragmentis imbricum loco tectas conspicere licet.» ~Pomet~ erwähnt 1694, daß die abgelösten Korkplatten in mit Wasser gefüllten Gräben übereinander geschichtet und mit Steinen beschwert, dann nach dem Ablassen des Wassers getrocknet und zu Ballen vereinigt wurden. Er nennt als besten Kork den spanischen, daneben aber auch schon einen französischen aus der Gascogne und von Bayonne. Die +Korkkohle+ erwähnt ~Pomet~ unter dem Namen Noir d’Espagne als Malerfarbe. Er gedenkt der Verwendung des Korkpulvers als Blutstillungsmittel und äußerlich bei Hämorrhoiden. ~Valentini~ (I, S. 912) sagt: «+Die Apotheker stopfen und verwehren die Gläser damit.+» Im Catologus von Rostock 1659 steht Suber, Pantoffelholz oder Kork 1 Loht = 2 Kr. Die Idee, Wein-, speziell Champagnerflaschen mit Korkstopfen zu verschließen, wird dem Pater Kellermeister der Abtei Haut-Villiers ~Dom Pérignon~ (1636-1715) zugeschrieben. Um diese Zeit erlangte die Sitte jedenfalls Verbreitung. Nach ~Artigas~ soll die regelrechte Kultur des Baumes und Gewinnung des Korkes in Spanien erst in der zweiten Hälfte des XVIII. Jahrh., und zwar in Gerona begonnen haben. Catalonien liefert auch heute noch den besten Kork. Von dort breitete sie sich nach Andalusien und Estremadura und die südlichen Provinzen Frankreichs und Portugals aus. Von 1830 an wurden die Korkwälder Algeriens durch die französische Regierung erschlossen, 1847 erreichte die Ausfuhr des Korkes dort bereits 46683 kg. Um diese Zeit wurde auch die Privatindustrie für die Gewinnung interessiert, große Strecken verpachtet und gegen die sehr gefährlichen Waldbrände strenge Verfügungen erlassen, z. B. das Ziehen von Gräben und Beseitigung des Unterholzes angeordnet, schließlich auch die Gewinnung gesetzlich geregelt. Jetzt bildet der Kork einen der wichtigsten Ausfuhrartikel des Landes. Auch in Tunis begann die geregelte Gewinnung mit der französischen Okkupation (1881), die Démasclage 1884 (~Lamey~). ~Robert Hooke~ sah zuerst mit seinem sehr einfachen Mikroskope die Zellen des Korkes (Micrographia 1667) und erkannte, daß der Kork zur Rinde eines Baumes gehören müsse, was damals noch nicht bekannt war. ~Johnston~ bestätigte das letztere. ~Hooke~ benutzte bei der Beschreibung des anatomischen Baues des Korkes zuerst den Ausdruck «cell» (er verglich ihn mit Bienenwaben). Der Ausdruck wurde dann auf alle «Zellen» übertragen. ~Hooke~ schätzte die Anzahl der Zellen im Kubikzoll auf 1200 Millionen (~Flückiger~). Die ersten Korkstöpselschneidereien (taponerias) sollen c. 1760 in Llagostera bei Gerona entstanden sein. 1789 wurden Korkstöpsel in Stuhr (Oldenburg) geschnitten (~Flückiger~). Korkpantoffeln wurden aber schon im XV. Jahrh. in Danzig fabriziert (~Pabst~). Auf Flaschenkork läßt sich bekanntlich sehr gut schreiben. Die Benutzung des Korkes anderer Pflanzen zum Schreiben finden wir schon im Altertum (vgl. S. 256). Die altindischen Bhûrja- (= Birken) Manuskripte sind auf den Blätterkork der _Betula Bhojpattra_ ~Wall.~ geschrieben (~Dymock~). Auch heute wird noch Birkenkork zum Daraufschreiben benutzt, z. B. bei den Tanguten (~Prschewalski~ 1878). Ich erhielt 1909 aus Amerika einen auf Birkenkorkpapier geschriebenen Brief und sah 1908 in Frankreich Visiten- und Geschäftskarten auf dünne Flaschenkorkscheiben gedruckt. =Lit.= ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Beckmann~, Beitr. z. Gesch. d. Erfind. 1790. -- ~Hehn~, Culturpfl. 1877. -- ~Blümner~, Technol. u. Terminol. d. Gewebe. 1879. -- ~Dymock~, Mat. med. West. India 1885. =Ersatzmittel.= Keine andere Pflanze bildet eine Korkschicht, die technisch wirklich brauchbar und exportfähig ist, da keine den Kork der Korkeiche an Elastizität, Weichheit und Dicke erreicht. Immerhin dienen einige andere Korke an den Produktionsorten zu ähnlichen Zwecken, wie z. B. der Kork von _Ulmus campestris_ var. _suberosa_. Auch einige Rinden und Hölzer werden gelegentlich in den betreffenden Ländern wie Kork, z. B. zum Verschluß von Calebassen u. dgl. benutzt, so die Rinde von _Pinus Merkusii_ in Johore und die von _Melaleuca Leucadendron_ in Südasien, das schwammige Holz von _Anona palustris_ in Südamerika, das weiche Holz von _Ochroma Lagopus_ ~Sw.~ in Westindien, das einiger _Nyssa_arten in Nordamerika (_Nyssa aquatica_ liefert das +Tupeloholz+), das des _Baobab_ und der _Herminiera elaphroxylon_ in Afrika, sowie das Holz von _Bombax_, _Aeschynomene_ und _Alstonia_-Arten in Asien. Endlich wird auch das Holz von _Hibiscus tiliaceus_, von einigen _Erythrina_arten (_Erythrina acanthocarpa_ liefert den +Marble-Cork)+ und _Lianen_ und das Mark von _Agaven_ und _Fourcroyen_ als «+Korkholz+» benutzt (~Semler~). In Slavonien wird Süßholz für Stöpsel verwendet (~Hoehnel~). Neuerdings wird als Ersatz für Kork das Holz einer Mimose (Mareabaum) vom Tschadsee angegeben, dessen spez. Gew. noch geringer ist als das des Korkes. Aber weder dieses noch der sog. Kaffrarian Marble Cork, der ebenfalls ein Holz ist (~Jos. Moeller~), kann den Kork ersetzen, da auch +seine Zellen verholzt und nicht verkorkt sind+. Künstlicher Kork von ~Grünzweig & Hartmann~ besteht aus gepulvertem «Korkholz» und Stärkekleister, dem Leinöl oder Teer zugesetzt wird (vgl. auch oben S. 469). Über künstlichen Kork findet sich eine Zusammenstellung in ~M. Schall~, Verfahren z. Herstellung künstlicher Korkmassen. Kunststoffe 1 (1911), 141. =Lit.= ~Semler~, Trop. Agrikult. -- Dingl. polyt. Journ. 250 (1883). -- ~T. F. Hanausek~ in Luegers Lexikon. -- ~Hoehnel~ in ~Wiesner~, Rohstoffe. -- ~Jos. Moeller~, Bot. Zeit. 1879, 719 und Pharm. Centralh. 1886, 240. -- Tropenpflanzer 1904 u. 1907. 2. Pollenino-Membranindrogen. Als Anhang an die Suberino-Membranindrogen mag der Pollenino-Membranindrogen gedacht werden, denn die Polleninmembran der Pollenkörner und Sporen ist jedenfalls verwandt mit der Cuticula und diese mit dem Kork. ~Fourcroy~ erkannte bereits 1801 die Ähnlichkeit des Korkes und der Cuticula. ~Mitscherlich~ erhielt aus beiden die gleichen Produkte, aber in verschiedenen Mengen. (Er verglich Kartoffelkork mit _Aloë_-Cuticula.) Nach ~van Wisselingh~ und ~Frémy~ sind die Cuticula und die verkorkte Membran +nicht+ identisch. ~Wisselingh~ erhielt z. B. keine Phellonsäure aus der Cuticula und die Fettsäuren scheinen andere zu sein. ~Frémy~ und ~Urbain~ nannten die «inkrustierende» Substanz der Cuticula +Cutose+. Es ist nicht nachgewiesen, daß die Cuticula Polysaccharide enthält. Denn die Tatsache, daß die mit Kali anhaltend behandelte Cuticula die Jodreaktion gibt (~Hofmeister~), kann auch anders gedeutet werden (s. oben). Jedenfalls zeigt aber die Cuticula +viel Ähnlichkeit mit der Korkmembran+ (~von Höhnel~, ~Zimmermann~); sie ist resistent gegen konzentrierte Schwefelsäure (~Mohl~, ~Mulder~) und auch gegen Fäulnis (~Brogniart~), gibt nach Behandeln mit kochendem Kali die Reaktionen mit Jod («ähnlich» wie Cellulose, ~Mohl~), liefert mit Salpetersäure Korksäure und Bernsteinsäure (~Mitscherlich~) und wird von kochender Kalilauge angegriffen (~Schacht~), ist aber dagegen widerstandsfähiger wie Kork (~von Höhnel~). Sie zeigt gewisse Aldehydreaktionen (~Geneau de Lamarlière~). Auch lassen sich aus ihr durch Einwirkung heißen Wassers wachsartige Substanzen ausschmelzen (~de Bary~). Bei Behandlung mit kochender Lauge soll die krist. Stearocutinsäure (C₅₆H₄₈O₈) und die flüssige Oleocutinsäure (C₂₈H₂₀O₈) entstehen (~Frémy~ u. ~Urbain~). Die Wand der Sporen und Pollenkörner, die mit dem Namen +Pollenin+ (~Braconnot~, ~John~) bezeichnet wurde, einem Namen, den ich hier wieder aufnehme, zeigt vielfach die Eigenschaften einer cuticularisierten Membran (~Biourge~), sie ist z. B. unlöslich in konz. Schwefelsäure, Alkohol und Äther. Sie ist jedenfalls eine komplizierte Substanz. Ältere Angaben von einem Stickstoffgehalt des Pollenins bedürfen der Nachprüfung. Bei einigen Pollenkörnern beträgt der Prozentsatz an Pollenin ziemlich viel (beim Pinuspollen z. B. c. 22%, ~Planta~). =Lit.= ~Brogniart~, Ann. sc. nat. 1830 u. 1835. -- ~Mitscherlich~, Lieb. Ann. 75 (1850). -- ~Schacht~, Lehrbuch. -- ~Mohl~, Bot. Zeit. 1847. -- ~Mulder~, Phys. Chem. 1844. -- ~Hofmeister~, Pflanzenzelle. -- ~Cohn~, De Cuticula. Linnaea 1850. -- ~Frémy~, Rech. chim. sur la Cuticule. Compt. rend. 1859. -- ~A. Wigand~, Intercellularsubstanz und Cuticula. Braunschweig 1850. -- ~Kabsch~, Unters. über d. chem. Beschaff. d. Pflanzengewebe. Pringsh. Jahrb. 1863. -- ~v. Höhnel~, Öster. Bot. Zeitschr. 1878. -- ~de Bary~, Bot. Zeit. 29. -- ~Frémy~ und ~Urbain~, Ber. d. d. chem. Ges. 1877, 90, Compt. rend. 93 (1882), 926 u. 100 (1885) 19. Ann. sc. nat. (6) 13 (1882), 360. -- ~Ambronn~, Opt. Verh. d. Cuticula. Ber. d. d. Bot. Ges. 1888. -- ~van Wisselingh~, Sur la cuticularisation et la cutine Arch. Néerland. 28 (1894), 373, Over Cuticularisatie en Cutine Ned. Kruidk. Arch. VI. und Verh. d. Akad. Amsterdam 1894. -- ~Géneau de Lamarlière~, Bull. Soc. Bot. 1903, 268. -- ~Czapek~, Biochemie (dort die Lit.). +Pollenin+: ~Braconnot~, Ann. chim. phys. (2) 42 (1829). -- ~John~, Schweigg. Journ. 12 (1814). -- ~Fritzsche~, Pogg. Ann. 32 (1834), 481. -- ~Berzelius~, Lehrbuch, 3. Aufl. 1837, VI, 474. -- ~Planta~, Landw. Versuchsstat. 1884 und 1885. -- ~Kresling~, Arch. Ph. 1891, 389. -- ~Th. Biourge~, Le Cellule 8 (1892) 45. Lycopodium. =Syn.= Sem. lycopodii, Sporae lycopodii, Hexenmehl, Bärlappsamen, Bärlappsporen, Streupulver, Blitzpulver, Erdschwefel, Alpenmehl, Blumenstaub, gelber Puder, Pillenmehl, Schlangenmehl, Wurmmehl, Pöschpulver, Puderbleiweiß, Steinpulver, -- in der Schweiz: Zäpflimehl, Tröcknipulver, -- lycopode, souffre végétal (franz.) -- earth-moss seeds, vegetable sulphur, clubmoss (engl.) -- nikt, heksemel (schwed.) -- ulvefoed (dän.) -- wolfsklaauw (holl.) -- licopodio (ital.) -- spori plauna (russ.) -- plavuň (böhm.) -- widlak (poln.). Bärlapp, Wolfsklaue, Wolfsranke, Teufelsklaue, Krähenfuß, Druden-Fuß oder Kraut, Johannisgürtel, Schlangenmoos, Zigeunerkraut, Blitzkraut, Hexenkraut, Briszweig, Gäbali, Gertel, Gertlein, Kohlerkraut, Kosen, Rimpe, Saukraut, Sausanne, Zigeunerkraut (~Pritzel-Jessen~); -- in der Schweiz: Freselmehlkraut, Kolbenmoos, Lienle, Wolle, Schäbel -- mousse terrestre, griffe, patte ou pied de loupe, plicaire -- im Tessin: erba scaretta, musco terrestre. -- In England: common club moss, stagshorn. -- Im Mittelalter: bryon (?), soldana (?) -- bei ~Bock~: Muscus terrestris, Beerlap, Bärlappen, Teuffesklawen, Seil- oder Gürtelkraut, Neunheyl, Neungleych, Weingrein, Harschar -- bei ~Cordus~: Katzenleiterlein, Minzengrün, chamaepence -- bei ~Gesner~: Tüfelsschlüssel, muscus ursinus, pes ursinus -- bei ~Camerarius~: Dehnkraut -- bei ~Tabernaemontanus~: Löwenfuß, pes leoninus, pes lupinus. Weitere Namen in ~Nemnich~, Polyglotten-Lexikon. =Stammpflanze.= =Lycopodium clavatum= L. Spec. pl. ed. I, 1101 (Lyc. officinale ~E. Neck.~, Meth. musc. 150, L. inflexum ~Sw.~). In zahlreichen Varietäten (z. B. tristachyum mit weit abstehenden Blättern, curtum u. and.), von denen einige (L. trichiatum, L. venustulum, L. inflexum) auch als Arten betrachtet werden. =Etym.= Der Name Lycopodium findet sich zuerst bei ~Dodonaeus~ (Pemptad. 1583, 469), der hinzufügt i. e. pes lupi. Es ist also eine griechische Übersetzung von Wolfsfuß, Wolfsklaue, gebildet aus λύκος (= Wolf) und πόδιον (= Füßchen). Auch ~Tabernaemontanus~ hat Lycopodium. -- Clavatum (= keulenförmig, clava = Keule) nach der Form des Sporangienstandes. Bereits bei ~Caspar Bauhin~ steht muscus terrestris +clavatus+, bei ~Lobelius~ muscus +clavatus+ = pes leoninus. -- Die Bildungen Wolfsfuß, Wolfsklaue, pied de loupe, pes lupinus, Löwenfuß, pes leonis, pes ursinus, Bärlappen, Drudenfuß, Teufelsklauen sind abgeleitet von den einen zottigen Eindruck machenden beblätterten Laubsprossen, -- muscus terrestris, Schlangenkraut, von der Eigenschaft am Boden zu kriechen. ~Tabernaemontanus~ sagt «Mooss oder Beerlap», benutzt also beides als gleichbedeutend. (Über mos vgl. S. 264.) -- Bärlapp = Bärenpfote (lappo = Hand, Pfote). -- Hexenmehl wohl wegen des plötzlich an der Ähre auftretenden und verstäubenden Sporenmehls, auch andere Namen (Drudenfuß, Teufelsklauen) verraten in die Pflanze hineingelegte mystische Beziehungen. =Systemat. Stellung.= Pteridophyta -- Lycopodiales -- Lycopodiaceae -- (Lycopodium Sectio Clavata). Die Gattung Lycopodium umfaßt etwa 100 Arten, die über die ganze Erde verteilt sind. =Beschreibung der Stammpflanze.= Auf einem kleinen, sehr vielgestaltigen, mit Wurzelhaaren besetzten thalloidischen Vorkeim (Prothallium), der die Antheridien und Archegonien trägt, also die geschlechtliche Generation darstellt, und der sich sehr langsam, erst in 7-12 Jahren, und ziemlich tief im Boden heranbildet, entsteht nach Befruchtung der Eizelle des Archegoniums aus dieser die junge Pflanze, die ungeschlechtliche Generation. Der auf der Erde oft zwischen Moos kriechende, mit dichotom verzweigten fädigen Wurzeln im Boden befestigte Stengel kann 1 m lang werden. Er verzweigt sich ziemlich reich. Ein Teil der aufstrebenden oder aufrechten, 5-15 cm langen Äste ist bis zur Spitze dicht mit spiralig gestellten, 3-4 mm langen, lanzettlichen, in eine hyaline Spitze auslaufenden Blättern besetzt. Ein anderer Teil läuft in die meist lang (8-18 cm) gestielten, ährenartigen, gelblichen, walzenrunden, 3-6 cm langen, 3-4 mm breiten Sporangienstände («Blüten») aus, die zu 1-4 (meist 1-2, in warmen Ländern auch mehr wie 4) an der Spitze des mit wenigen Blättchen besetzten Stieles angeordnet sind. Die +Sporophylle+ (Fruchtblätter, Deckblätter, Tragblätter, Bracteen) sind 3 mm lang, ebenso breit, eiförmig, am Grunde fast herzförmig, am Rande durch Vortreten einiger Randzellen fein gezähnt und laufen oben in eine lange farblose Borste aus, so daß der Sporangienstand behaart erscheint. Die +Sporangien+ sind ¼ schmäler als die Sporophylle und sitzen auf der Blattoberseite. Die Anlage der +Sporangien+ erfolgt bereits, wenn das Sporophyll sich noch in meristematischem Zustande befindet. Eine an der inneren Seite der Blattbasis gelegene Zellgruppe streckt sich senkrecht zur Blattfläche. In dieser Protuberanz wird nach Innen zu durch perikline Teilung der Oberflächenzellen das +Archesporium+ abgeschieden. Es sind meist drei nebeneinanderliegende Reihen (c. 20 Zellen), welche das Archespor bilden (~Bower~). Während aus diesen, und zwar besonders aus den mittleren und inneren, durch lebhafte Zellteilungen das Gewebe der Sporenmutterzellen hervorgeht, dehnt sich die äußere Hüllzelllage durch antikline Zellteilungen aus, das Sporangium wölbt sich vor und wird durch Wachstum des Basalgewebes emporgehoben. Das letztere treibt Vorsprünge in die sporogenen Massen, die die Ernährung erleichtern. Die äußere Hüllzelllage wird dann durch perikline Zellteilung mehrschichtig. Die innerste Schicht teilt sich dann nochmals und scheidet nach innen die plasmatischen Tapetenzellen ab. Schließlich ist das ganze sporogene Gewebe mit Ausnahme des Scheitels des Sporangiums von der Tapetenschicht umgeben. (~Sadebeck~ in ~Pritzel~, Lycopodiaceae, Fig. 370, ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam.) Die Entwicklung der Sporen aus den Sporenmutterzellen stimmt hier, wie bei allen Pteridophyten, mit der der Mikrosporen (Pollen) der höheren Pflanzen überein: Es entstehen aus dem Kern der Sporenmutterzellen zwei Tochterkerne und durch Teilung dieser vier Enkelkerne, die sich mit einer Membran umgeben und zu Sporenzellen werden. Nach der hierauf erfolgenden Lostrennung von den Schwesterzellen findet die Ausbildung der Sporenhülle und damit zugleich auch diejenige der Sporen statt (~Sadebeck~). [Illustration: Fig. 155. _Lycopodium clavatum._ _A_ Ast in natürl. Größe, _a_ Blatt vergrößert, _b_ Sporophyll mit geöffneten Sporangien, _c_-_e_ Sporen in 900fach. Vergr. [nach +Luerssen+]. _B_ Prothallium mit jungem Pflänzchen von _Lyc. annotinum_ [nach +Fankhauser+].] Das +Sporangium+ ist ein tangential gestreckter, nierenförmiger, einfächeriger Sack, der mit einem dicken, bündelfreien Stielchen der Basis des Sporophylls ansitzt. Die Wand des Sporangiums ist oben zweischichtig, unten bis fünfschichtig. Die Zellen der äußeren Schicht sind mit Verdickungen an den inneren und seitlichen Wänden versehen. Das Sporangium ist ganz mit gleichartigen gelblichen Sporen erfüllt und springt im Juli oder August durch einen tangential über den Scheitel laufenden Spalt in zwei muschelförmige Klappen auf. Die Verstreuung der Sporen erfolgt durch den Wind. Die Sporen sind mit einem Netzwerk kleiner Leisten bedeckt, über welches ein Häutchen ausgespannt ist, das nicht benetzbar ist. «Durch diese Vorrichtung wird die Spore befähigt, durch die Hohlräume des Bodens tief in die Erde zu gleiten; bei dieser Wanderung wird aber die Membran allmählich abgerieben und die unter ihr befindlichen Kammern, welche benetzbar sind, werden frei gelegt. Ist dieses Ziel erreicht, so haftet die Spore an den Bodenteilchen und findet so eine bleibende Stätte, an welcher die Keimung erfolgt» (~Schumann~). Aus der Spore geht das Prothallium (s. oben) hervor. =Vorkommen.= Die Pflanze findet sich in Mittel- und Nordeuropa, Sibirien, Japan, Nord- und Südamerika, Südafrika, auf den Marianen und Sandwichinseln und in Australien, ist also über die ganze Erde verbreitet. Sie findet sich in Europa mit Ausnahme der Steppengebiete auf Haiden, in lichten Wäldern, an trockenen Stellen der Moore, auf Bergabhängen, buschigen Wiesen und besonders in Nadelwäldern an etwas frischeren Stellen (in der Schweiz in moorigen Wäldern besonders auf kieshaltigem Boden), in den wärmeren Gegenden besonders im Gebirge, in den Tropen nur dort, in Europa bis 2000 m. Übersicht über die deutschen _Lycopodium_-Arten in ~Luerssen~, Med. pharm. Botanik. =Lit.= ~Pritzel~, Lycopodiaceae in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. (dort weitere Lit.). -- ~Sadebeck~, Gefäßkryptogam. in Schenks Handb. d. Botan. 1879. -- ~Luerssen~, Mediz. pharm. Bot. I. -- ~David et Weber~, Et s. l. Lycopod. en gen. et en part. sur le Lycop. clav. Soc. synd. d. pharm. d. l. côte d’Or Bull. 15 (1896). Jahresb. d. Pharm. 1897, 140. -- Der Vorkeim der Lycopodien wurde von ~Fankhauser~ in Bern entdeckt (Bot. Zeit. 1873). Vgl. darüber ferner ~Bruchmann~, Über d. Prothallien u. d. Keimpflanz. mehrerer europäisch. Lycopodien u. zwar über die von Lycopodium clavatum, L. annotinum, L. complanatum und L. Selago. Mit 7 Taf. Gotha 1898. -- +Abbild.+ in ~Berg-Schmidt~, Atlas II. Aufl. t. 157. -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 49. -- ~Nees von Esenbeck~, t. 13. -- ~Bentley-Trimen~, Med. pl. t. 299 und vielfach anderwärts. =Pathologie.= An den Sporangienähren von _Lycopodium clavatum_ kommen mehrere Ascomyceten vor: _Helotium Sommierianum_ ~P. Magn.~, _Mollisia Lycopodii_ ~Le Bret.~ et ~Malbr.~, _Sphaerella Lycopodii_ ~Peck~. -- In den Sporophyllen von _Lycopodium annotinum_ treten die Perithecien von _Leptosphaeria Crepini_ (~Westd.~) ~de Not.~ auf; die befallene Ähre wird durch den Pilz sehr auffällig geschwärzt; in den Sporangien sind die Sporen zwar noch zu finden, aber sie erscheinen abgestorben und zwischen ihnen ziehen sich die Mycelhyphen des Pilzes hin. (~Ed. Fischer~.) =Einsammlung und Handel.= Lycopodium wird besonders in vielen Teilen +Rußlands+ (besonders im Gouvern. Wladimir) gesammelt (I, S. 101), dann in beschränktem Maße in der +Schweiz+ [Kanton Bern, Emmenthal, Entlebuch, I, S. 98, Zug, Schwyz (~Schürmann~)], in +Deutschland+ (besonders in den Gebirgen), in +Österreich+ und +Schweden+. Rußland exportierte 1910: 8000 Pud. (~Ferrein~). 1910 sank ein russischer Dampfer, der einen großen Teil der Lycopodiumernte an Bord hatte und die Preise stiegen daher. Frankreich bezog 1897 c. 8000 kg Lycopodium via Deutschland. Bisweilen (z. B. 1910) litten die Pflanzen unter Frühjahrsfrösten oder zu starker Sommerhitze, dann war die Ernte gering, die Preise stiegen auf das Doppelte und die Fälschungen (s. unten) wurden wieder häufiger (1909). Auch die russische Revolution brachte Preisschwankungen. Die Sporangienstände werden im August und September gesammelt, auf Tellern oder Schüsseln an der Sonne getrocknet, ausgeklopft und dann durch ein Haarsieb von den Beimengungen (Sporophylle, Stengel usw.) befreit. In Rußland wird das Lycopodium zunächst in Säcke aus fester, ziemlich feiner Leinwand getan, diese werden umgeben von groben Hanfsäcken, und diese stecken in Bastmatten aus Schilf geflochten mit Tauen umschnürt. So ist ein Verstäuben ausgeschlossen. Diese «Bauernware» enthält c. 10% Verunreinigungen, Bruchstücke von Stengeln und Blättern (~Weigel~ 1905). Sie wird von den Drogenhäusern durch mehrmaliges Sieben gereinigt. Für pharmazeutische Zwecke ist nur prima doppelt oder dreifach gesiebtes sog. «leichtflüssiges» Lycopodium zu benutzen. Dies Lycopodium ist in Säcken à 50 kg und Kisten à 10 Pack. à 10 kg im Handel (~Grossmann~). =Lit.= ~Gehe~, Handelsberichte. -- ~Caesar~ und ~Loretz~, Handelsb. -- ~Weigel~, Pharm. Centralh. 1905. -- ~Schürmann~, Schweiz. Wochenschr. 1908. =Beschreibung der Droge.= Lycopodium bildet ein feines, blaßgelbes, sehr bewegliches, geruch- und geschmackloses, nicht hygroskopisches Pulver, das in die Flamme geblasen verpufft (auch Farnsporen und _Kamala_ verpuffen ähnlich), langsam erhitzt aber ruhig abbrennt. Es muß beim Ausgießen leicht «strömen» und darf nicht feucht sein. Da die Sporen ein mit Wasser nicht benetzbares Häutchen besitzen, (s. oben), so schwimmen sie auf dem Wasser, trotzdem ihr spez. Gewicht höher ist. Sie sinken aber darin unter, sobald man sie mit Wasser kocht oder mit Alkohol benetzbar macht. =Anatomie.= Die Lycopodiumsporen sind tetraëdrisch mit gewölbter Basis und drei flachen oder -- seltener -- etwas eingesunkenen Pyramidenflächen (Fig. 155 u. 156). Das Exosporium zeigt ein Leistenwerk von fünf- bis sechsseitigen Maschen, das besonders schön hervortritt, wenn man Schwefelsäure zum Präparat hinzufließen läßt. An den Ecken der Leistenmaschen finden sich kleine Knötchen. Am Rande der Spore erscheinen die Leisten als kleine Stacheln, deren Spitzen durch ein sehr zartes, in der Mitte eingesunkenes Häutchen (s. oben) verbunden sind. In der Nähe der Kanten der Pyramidenflächen verschwinden die Leisten meist ganz oder werden unregelmäßig. Die Größe der Sporen beträgt 25-40, meist 30-35 mik. Durch Kali werden die Sporen gelb, wäscht man dann aus und läßt Jodschwefelsäure zufließen, so färbt sich das Exosporium braun, das diesem innen als zartes Häutchen anliegende Endosporium blau. Zerdrückt man das in Schwefelsäure liegende Präparat, so tritt aus jeder Spore ein Öltropfen hervor. =Lit.= +Abbild.+ in fast allen Lehrbüchern der Pharmakogn., z. B. in ~Koch~, Atlas IV, ~Vogl~, Atlas t. 58, ~Moeller~, Lehrbuch und Atlas, ~Karsten-Oltmans~, Lehrbuch, ~Berg~ Atlas, ~Luerssen~, Med. pharm. bot. etc. etc. =Chemie.= Die Sporen enthalten c. 45% +Pollenin+ und 47,4 (~Flückiger~), 48,5 (~Bukowsky~) bis 49,34% (~Langer~) +fettes Öl+. Dieser Prozentsatz ist nur bei Chloroformextraktion der unter Alkoholzusatz mit Sand zerriebenen Sporen zu erhalten, Äther liefert auch nach 10 Tagen nur 40,9%. Unzerkleinerte Sporen geben an Chloroform nur 2-4% ab (daraus erklärt sich die frühere Angabe von ~Bucholz~: Öl 6%). Das sauer reagierende Öl von der Konsistenz des Olivenöls setzt sich (nach ~Langer~) aus 80-86,67% einer flüssigen Ölsäure, wechselnden Mengen Glycerin und eines Gemisches fester Fettsäuren zusammen. Die flüssige +Lycopodiumölsäure+ (C₁₆H₃₀O₂) betrachtet ~Langer~ als α-+Dekyl+-β-+Isopropylakrylsäure+. Zu etwas abweichenden Resultaten kam ~Bukowsky~. Er fand im Öl frischer Sporen neben 0,3% +Phytosterin+ (C₂₅H₄₂O. F. = 132-133°, ~Cadets~ Wachs?), 80% +Ölsäure+ (C₁₈H₃₄O₂), 3% +Arachin-+, +Stearin-+ und +Palmitinsäure+ und 2% +Lycopodiumsäure+ (C₁₈H₃₆O₄, isomer mit der Dioxystearinsäure), sowie 8,2% +Glycerin+. Das von ihm untersuchte Öl war neutral, erstarrte noch bei -22° nicht und ähnelte dem Mandelöl. Die Lycopodiumölsäure ~Langers~ und Myristicinsäure konnte er nicht finden. Er vermutet, daß sie Umsetzungsprodukte sind und ~Langer~, dessen Öl sauer reagierte, alte Sporen untersuchte. Es bleibt zu untersuchen, ob ~Langers~ mit Ölsäure homologe +Lycopodiumölsäure+: C₁₆H₃₀O₂, die er CH₃\ CH.CH=C(CH₃(CH₂)₉)COOH CH₃/ schreibt, aus +Ölsäure+, C₁₈H₃₄O₂, die bald CH₃.(CH₂)₁₃C = CH.CH₂COOH (~Saytzeff~), bald CH₃(CH₂)₇.CH = CH.(CH₂)₇COOH (~Baruch~) geschrieben wird, hervorgehen kann, was mir bei obiger Formel sehr unwahrscheinlich erscheint. Identisch ist sie damit nicht, denn ~Langer~ erhielt aus seiner Ölsäure bei der Oxydation Dioxypalmitinsäure, ~Bukowsky~ aus der seinigen Dioxystearinsäure. Eine neue Untersuchung des Öls von ~Rathje~ ergab (wesentlich in Bestätigung von ~Langer~): 81% +Lycopodiumölsäure+, 3,2% +Lycopodiumsäure+ (Dioxystearinsäure), 1,13% +Stearinsäure+, 0,85% +Palmitinsäure+, 2% +Myristicinsäure+, im Mittel 7,8% +Glycerin+, 0,43% Unverseifbares, 0,03% anorganische Substanz. Das Fett ist bei den Sporen +Reservestoff+. Die Sporen enthalten auch c. 3% +Zucker+ (~Bucholz~, ~Rebling~), darin 2,1% Saccharose (~Langer~). +Stärke+ fehlt (entgegen der Angabe von ~Riegel~, ~Fritsche~ und ~Winkler~). Kocht man Lycopodium mit Wasser und dampft die Flüssigkeit ein, so erhält man einen gallertigen Rückstand, der sich mit Jod grünlich färbt (~Winkler~). Der +Stickstoff+gehalt beträgt 1,48% (~Alcock~, 1,021-1,075% ~Butler~, 0,857% ~Langer~). Die trockene Destillation liefert eine «ammoniakalische» Flüssigkeit. Beim Kochen mit Kali entsteht Methylamin (~Langer~). Dies dürfte das +flüchtige Alkaloid+ gewesen sein, das ~Flückiger~ bei Destillation eines Auszuges von 8 kg Lycopodium mit Ätznatron in sehr geringer Menge erhielt. [In _Lyc. complanatum_ fand ~Bödeker~ das alkaloidische Lycopodin (C₃₂H₅₂N₂O₃), in _Lyc. Saururus_ ~Adrian~ und ~Bardet~ +Piliganin+ (C₁₅H₂₄N₂O), ein amorphes Alkaloid.] Lycopodium oxydiert, da es Sauerstoff zu aktivieren vermag, mit Alkohol maceriert, diesen zu Acetaldehyd (~Langer~). Schmelzendes Kali bildet einen Körper mit fäkalem Geruch und eine mit Protokatechusäure verwandte Substanz. ~Riegel~ gibt auch Zitronensäure, Apfelsäure, Leim, Harz und Gummi an (?). Lufttrockenes Lycopodium verliert bei 100° nur 4% +Feuchtigkeit+ (~Flückiger~). Sein +spez. Gewicht+ beträgt 1,062 (~Flückiger~). Schon ~Neumann~ gibt in seiner Chymia medica (1752) an, daß Lycopodium verbrannt «nur ein leichtes Gewebe, so überaus wenig wäget» zurückläßt. Der +Aschengehalt+ ganz reiner Sporen beträgt denn auch nur 1,15-1,16% (~Langer~) oder höchstens 1,5% (~Evell~), die Handelsware enthält aber meist mehr. D. A. V und Pharm. helv. IV limitieren die obere Grenze zu 3%, ebenso ~Hauke~, der 1,11-4,8% (meist 1-3% wie ~Caesar~ und ~Loretz~) in der Handelsware fand. ~Caesar~ und ~Loretz~ empfehlen (1910) zur Aschenbestimmung das Lycopodium mit Sand gemischt zu glühen und vor Schluß 5-10 Tropfen rauchende HNO₃ und dann Oxalsäure zuzufügen. Die rein weiße +Asche+ der Sporen enthält Tonerde (~Cadet~) und zwar 15,30% Al₂O₃ (~Langer~; ~Bucholz~ gibt 8,5% an, nach ~Flückiger~ soll sie tonerdefrei sein). Die Lycopodien gehören zu den «Aluminiumpflanzen» (~Cadet~, ~John~, ~Ritthausen~). Das Kraut von _Lycopodium clavatum_ enthält in der Asche nach ~Solms~ (1856) 27%, nach ~Alderholdt~ (1852) 26,65%, nach ~Church~ (1888) aber nur 15,24%, _L. complanatum_ nach ~Alderholdt~ 51,85 bez. 57,36%, _L. complanatum_ var. _Chamaecyparissus_ nach ~Solms~ 54%, _L. alpinum_ nach ~Church~ 33,5, _L. Selago_ 7,29%, _L. cernuum_ 16,09%, Al₂O₃. Aluminium ist sonst bei Pflanzen nicht gerade häufig, doch findet es sich in der Asche vieler Flechten (_Variolaria_, _Cetraria islandica_, S. 270) und Moose und in Spuren in vielen anderen Gewächsen (vgl. ~Wolff~, Aschenanalys. Besonders aluminiumreich sind die Blätter von _Symplocos lanceolata_ (c. 50%) und das Holz von _Orites excelsa_ (36-45%), vgl. ~Radlkofer~). +Aluminium+ fehlt in anderen Gefäßkryptogamen, z. B. den Farnen (außer einigen Baumfarn), in _Equisetum_, _Salvinia_, _Marsilia_ und _Selaginella_ (~Church~), aber auch einige Lycopodien enthalten es nur in Spuren. Es findet sich bei den Lycopodien in löslicher Form, wohl an organische Säuren gebunden, als Malat (~Ritthausen~) oder als Tartrat (~Arosenius~). Ferner wurde in der Asche der Sporen gefunden: 45,7% P₂O₅, 18,41% Fe₂O₃, 9,3% K₂O, 5,1% Na₂O, ferner SO₃, CaO, MgO (je c. 1%) und 0,22% Cl nebst Spuren Mn (~Langer~). =Lit.= ~Neumann~, Chymia medica 1704. -- ~Bergius~, Mat. med. 1782 (beschreibt die trockene Destillat.). -- ~Buchholz~, Taschenb. f. Scheidekünstler 1807, ~Gehlens~ Journ. VI, 573. -- ~Wichmann~, Arch. Pharm. 35, 38. -- ~Fritsche~, Poggend. Ann. 32, 481. -- ~John~, Handwörterb. d. Chem. 3, 231. -- ~Schwartze~, Tabellen I (1819). -- ~Winckler~, Buchn. Rep. 34, 58. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. I. bis III. Aufl. -- ~Rebling~, Arch. d. Pharm. 84 (1855), 11. -- ~Kamp~ (Lyc. chamaecyp.) Lieb. Ann. 100, 300. -- ~Langer~, Bestandth. d. Lycopodiumsporen. Arch. Ph. 1889, 241 u. über die Lycopodiumölsäure ebenda S. 625 (Diss. Erlangen 1889). -- ~Bukowsky~, Bestandt. d. Lycopodiumöls. Dissertation Dorpat 1889 u. Pharm. Zeit. f. Rußl. 1889, 359. -- ~A. Rathje~, Neuere Unters. d. Fette von Lycopod. etc. Arch. Ph. 1908, 692. -- ~Alcock~, Pharm. Journ. 1906, 23, 100. -- ~Butler~, in ~Flückiger~ Pharmakogn. -- ~Bödeker~, Arch. d. Pharm. 1881, 304. -- ~Adrian~, Jahresber. d. Ph. 1886, 60. -- ~Arata~ u. ~Canzoneri~, Pharm. Zeit. 1892, 409. -- +Asche+: ~Caesar-Loretz~, Handelsber. 1897 u. and. -- ~H. Evell~, Jahresber. d. Pharm. 1892, 10. -- ~Hauke~ a. a. O. -- +Aluminium+: ~Ritthausen~, Journ. prakt. Chem. 53 (1851), 413. -- ~Alderholdt~, Lieb. Ann. 82 (1852), 111. -- ~Solms-Laubach~, Lieb. Ann. 100 (1856), 297. -- ~Church~, On the occurence of Aluminium in certain Vascular Cryptogams. Proc. Royal Soc. 44 (1888), 121 (Pharm. Journ. 1889, 846). -- ~Fluri~, Einfluß v. Aluminiumsalzen auf das Protoplasma. Diss. Basel 1908. -- ~Radlkofer~, Über Tonerdekörper im Pflanzenreich. Ber. d. bot. Ges. 1904. =Verfälschungen.= Fast regelmäßig findet man im Lycopodium sehr kleine Mengen von Fragmenten der Sporangienwand, die durch ihre knotig verdickten Zellen sofort auffallen. Sofern diese nur in +sehr+ geringer Menge vorhanden sind, ist das Lycopodium nicht zu beanstanden. Bruchstücke von Stengeln und Blättern, besonders faserige, dürfen nicht anwesend sein, auch nicht in Spuren. Von +organischen Verfälschungen+ sind neuerdings beobachtet: +Stärke+ verschiedener Herkunft (seit 1896 in jedem Jahr, ~Döll~), +Mehl+ (1909), +Weizenstärke+ (~Döll~, ~Koch~ 1908), +Reisstärke+, +Kartoffelstärke+ (~Döll~, auch in Amerika 1899, in Deutschland 1908, bis 30%), +Dextrin+ (1904), +Buchsbaumpulver+ (~Perrot~ 1907), +Harzpulver+ (1904) und besonders +Pinuspollen+ (~Weigel~ 1904, 1899 bis 20% beobachtet). Neuerdings (1908) haben die Fälschungen mit Stärke und Pinuspollen wieder auffällig zugenommen (~Caesar~ und ~Loretz~), da Locopodium teuer ist. Ferner werden angegeben verschiedene +Mehle+, z. B. Erbsenmehl (~Pereira~), und nicht näher bezeichnete +Stärkesorten+ [bis 20% (1909), bis 50% (1891) ~Brown~], mit Methylorange gefärbte +Maisstärke+, +Curcumapulver+, +Holzmehl+ (~Pereira~), +Wurmmehl+, +Kolophonium+ und andere Harze und andere +Pollenkörner+, besonders von _Corylus_, _Larix_, _Cichorium_, _Cannabis_ (von mir nie beobachtet). Von den +anorganischen Verfälschungen+ steht +Talcum+ obenan, das auch neuerdings (1904) oft beobachtet wurde (Stärke und Talcum werden schon 1826 erwähnt!). Dann werden genannt: +Kreide+ (~Scriba~), +Gips+ (~Hanbury~), +Magnesia+, +Schwefel+ (~Walpley~), Baryumsulfat (?), +Sand+. Als +Substitution+ wurde besonders Pinuspollen beobachtet. Das «ungarische» (oder «österreichische») Lycopodium, das sich 1904 im Handel fand, bestand ganz aus Pinuspollen (~Mitlacher~). Pinuspollen wird in den Karpathen in ziemlichen Mengen gesammelt (~Vogl~). Ferner: gepulvertes österreichisches +Fichtenharz+ (~Gallois~ 1906), gepulverter Bernstein (~van Itallie~), ein Sklereïden, Bastfasern und Kork enthaltendes Rindenpulver (~van Itallie~). 1904 tauchte in Amerika unter dem Namen +Lykopodine+ ein dem echten Lycopodium äußerlich ähnlicher «Lycopodiumersatz» auf, der aus Talcum, Dextrin und Harzpulver bestand. Die meisten Verfälschungen und Substitutionen sind leicht mit dem +Mikroskop+ zu erkennen (Fig. 156), die Stärkesorten und Mehle durch ihre Formen (vgl. S. 153 bis S. 198) und auch durch die Jodreaktion, das Dextrin (nicht im Wasserpräparat! vgl. S. 200) mittelst Jodglycerin, das Curcumapulver an den gelben Kleisterballen, die Holz- und Rindenpulver an den geformten Elementen. Das +Talcum+ bildet farblose eckige Kristallsplitter, der sublimierte +Schwefel+ rundliche, zu Ketten oder Massen vereinigte dunkle, strukturlose oder kristallinische Körper. Der +Pollen der Abietineen+ (speziell der von _Pinus silvestris_ wird gesammelt) ist oval und besitzt nicht genau an den beiden Seiten angefügte Luftsäcke (Fig. 156), die von der an diesen Stellen blasig aufgetriebenen Exine gebildet werden und die von halbkugeliger Gestalt und mit netziger Oberflächenzeichnung versehen sind. Das Pollenkorn selbst enthält Öltropfen. Die Größe beträgt je nach der _Pinus_- oder _Abies_-Species 54 bis 126 mik. Alkoholische Fuchsinlösung färbt sofort violett, Lycopodium erst beim Erwärmen (~Vogl~). [Illustration: Fig. 156. Mit Pinuspollen (pp), Coryluspollen (p) und Roggenstärke (a) vermischtes _Lycopodium_ (s). [Nach ~Vogl~.]] Der +Pollen von Corylus Avellana+ (Fig. 156) ist kugelig, glatt und an der äquatorialen Zone an drei etwa gleichweit von einander entfernten Stellen mit breiten stumpfen, am Scheitel mit einem Loche in der Exine versehenen Papillen versehen. Die drei Poren (Austrittsstellen des Pollenschlauches) treten besonders bei Behandeln mit Essigsäure und beim Eintrocknen gut hervor. Der körnige Inhalt erscheint dreistrahlig. Unterhalb der Poren ist die Intine kreisförmig von der Exine abgehoben. Rings um den Porus ist die Exine schwach wulstig verdickt. Durchmesser 26-30 mik. Der +Pollen von Typha+ besteht aus Gruppen von zu vieren miteinander verbundenen Pollenkörnern (Tetraden). Die Pollenkörner von _Cichorium_ zeigen eine stachlige Exine. Die Pollenkörner von _Cannabis sativa_ sind rundlich und besitzen drei deutliche Austrittsstellen für den Pollenschlauch. Die Pollenkörner von _Larix decidua_ sind eiförmig (~Moeller~). +Die Pollenkörner sind sämtlich tiefer gelb gefärbt als Lycopodium.+ Eine kleine Menge von Stärkekörnern kann in das Lycopodium zufällig dadurch hineingelangen, daß es in Rußland bisweilen in Mehlsäcken versandt wird, oder daß in den Drogenhäusern Stärkestaub hineingelangte. 1% kann man tolerieren. Nach dem Kochen mit Wasser darf letzteres durch Jodwasser nicht blau werden (~Caesar~ und ~Loretz~). Auch einige Pinuspollenkörner können zufällig hineingelangen, da ja die Pflanze in Nadelholzwäldern wächst (doch stäubt die Kiefer viel früher als die Lycopodiumarten). Die +anorganischen Beimengungen+ erhöhen den Aschengehalt, verraten sich aber auch schon teils im Mikroskop, teils beim Vermischen des Lycopodium mit Wasser oder Chloroform. Reines Lycopodium schwimmt auf Wasser, mineralische, in Wasser unlösliche Beimengungen sinken zu Boden. Auch auf Chloroform und Schwefelkohlenstoff schwimmt reines Lycopodium. Der +Schwefel+ verrät sich durch die beim Verbrennen entstehende schweflige Säure. Die +Harze+ lösen sich in Alkohol oder Alkoholäther. =Lit.= ~Caesar-Loretz~, Handelsb. -- Journ. of pharmac. 1898. -- ~Gallois~, Journ. pharm. chim. 1906, 242. -- ~Perrot~, Bull. sc. pharm. 1907, 350. -- ~Mitlacher~ (1904). -- ~Weigel~, Pharm. Centralh. 1904. -- ~Brown~, Bull. of ph. 1891, 10. -- ~Pereira~, Heilmittellehre. -- Abgebildet sind Pinuspollen in ~Moeller~, Lehrbuch, ~Vogl~, Atlas, ~Berg~, Atlas, ~Planchon-Collin~ u. and., Larixpollen bei ~Moeller~, Cannabispollen ebenda, Cichoriumpollen ebenda, Coryluspollen bei ~Vogl~. =Anwendung.= Als +Streupulver+ (allein und mit Salicylsäure oder Zinkoxyd) bei Intertrigo, zum Aufstreuen auf wunde Stellen, besonders bei Kindern, usw. eignet sich Lycopodium gut, da es leicht haftet, mit Wasser nicht benetzbar ist und nicht zusammenballt. Die gleichen Eigenschaften und seine Indifferenz empfehlen es auch als +Konspergierungsmittel der Pillen+. Zum Bestreuen der Pillen wird es in den Apotheken so viel benutzt, daß der Staub der Apotheke und alle Geräte und Utensilien derselben immer Lycopodiumsporen enthalten. Dies muß beachtet werden, wenn man aus der Apotheke bezogene Objekte mikroskopisch untersucht. (Ein Botaniker beschrieb einmal die Lycopodiumsporen als den Dauerzustand eines Schleimpilzes [!], den er in aus einer Apotheke stammendem Fleisch gefunden hatte und den er wegen der Netzleisten der Sporen: _Haplococcus reticulatus_ nannte [!]). Mit Salpeter gemischt dient es zur chinesischen Moxa. Die innerliche Anwendung, z. B. bei Dysurie, Blasenkatarrh, besonders als Emulsion (Linctus diureticus ~Hufeland~), in Pastillenform usw. kommt kaum noch in Betracht. Etwas verbraucht die Gießerei zum Ausstreichen der Formen. Eine große Menge L. (zuweilen Hunderte von Kisten) verbraucht die Feuerwerkerei besonders an den Nationalfesten, z. B. in Nordamerika. Die Sitte stammt aus Persien (~Olearius~, Persian. Reiß-Beschreib.). _Herba Lycopodii_ wird kaum noch (als Diuretikum) benutzt. Das Kraut von _L. Selago_ ist ein russisches Volksheilmittel. Es wirkt drastisch und abortiv. Auch das Kraut von _L. Saururus_ wirkt drastisch. (Vgl. ~Husemann~, Arzneimittellehre). =Geschichte.= Das etwas bitter schmeckende Kraut (_Herba Lycopod. s. Musci clavati_) war früher als das Sporenpulver besonders beim Volke in Gebrauch und ist noch da und dort (Polen) Volksheilmittel, ebenso wie _Herba Selaginis s. musci erecti s. cathartici_ (von _L. Selago_), das auch gegen Ungeziefer benutzt wird. (Weitere Angaben über arzneilich verwendete Lycopodien in ~Dragendorff~, Heilpflanzen.) Vielleicht ist die _Herba terrestris, pes pulli_ der +Alphita+ ein Lycopodium. Die patres botanices sowie ~Dodonaeus~, ~Tabernaemontanus~, ~Bauhin~, ~Parkinson~, ~Ray~ benutzten die ganze Pflanze und ein daraus destilliertes Wasser. ~Joh. Ray~ (I, S. 911) bespricht sie und ~Rolfink~ († 1677) rühmt sie als Antiepilepticum. Die erste Abbildung der Pflanze findet sich in ~Bock~, Hist. stirp. 1552 p. 555 (vgl. I, S. 327, Fig. 316), weitere bei ~Tabernaemontanus~ (I, S. 847), bei ~Cordus~ u. and. ~Lonicerus~ sagt (Nat. histor. op. nov. 1551) von den Sporangienständen, «asparagos», sie seien «leves et molles, ceu farina aut pulvere conspersos, mox decidentes, quos pro flore licebit sumere», erkannte sie also bereits als «Blüten». Der von ~Clusius~ (Rarior. pl.) abgebildete _Muscus terrestris lusitanus_ ist vielleicht auch ein Lycopodium (oder eine _Selaginella_?). ~Dodonaeus~ tadelt den groben Mißbrauch _Lycopodium clavatum_ in den Apotheken für _Spica celtica_ (_Saliunca_ = _Valeriana celtica_ L.) zu geben. Schon ~Anguillara~ (Semplici 1561) erwähnt eine «_Spica celtica commune_» mit Früchten «simili al Pepe lungo», welche statt der echten _Spica celtica_ gebraucht werde. Darin ist wohl (mit ~Berg~) Lycopodium zu erblicken. Die erste Angabe über medizinische Anwendung der Sporen zum Bestreuen von Wunden findet sich bei ~Schröder~ in dessen Pharmacop. medico-chymica 1649 (~Flückiger~), doch findet sich L. weder in ~Dale~, Pharmacologia London 1693 (~Hanbury~), noch in der ~Berlu~-Liste (I, S. 950), noch in der Londoner Pharmacopoee, noch bei ~Pomet~. Wohl aber steht _Sem. Lycopodii_ in der Taxe von Ulm 1664, Franckfurt 1669 und 1718, Basel 1701, im Gießener Catalogus 1688 als Synonym auch _Muscus terrestris_, in der Taxe von Schwäbisch-Hall 1700: Beerlapp- oder Gürtelkrautsamen (vgl. die Taxen im I. B.), muß also schon damals viel benutzt gewesen sein. Der Preis des _Sem. Lycopodii_ betrug (Reform. d. Stadt Frankfurt 1718) 1 Lot = 4 Kr. Der Züricher Stadtarzt ~Joh. Muralt~ († 1733) rühmte L. gegen Intertrigo (~Dierbach~). ~Bergius~ erwähnt 1782 das Farina Lycopodii s. Pollen gegen Excoriatio und ~Valentini~ sagt (im Museum 1704), ~G. W. Wedel~ ausschreibend, dem wir eine Monographie: +De musco terrestri clavato+ Jenae 1702 verdanken: «Es heilet auch allerley Räudigkeit, Verwundungen, Rothlauff, Jucken an heimlichen Örtern, absonderlich wenn die kleine Kinder allda wund werden». Besonders durch ~Wedels~ Dissertation scheint man auf die Lycopodiumsporen, die auch innerlich bei zahlreichen Krankheiten angewendet wurden (vgl. in ~Neumann~ Chymia medica) aufmerksam geworden zu sein. Die merkwürdigen Eigenschaften des L. -- ein staubfeines trockenes Pulver, das fast keine Asche gibt, das zur Hälfte aus Öl, das man doch nicht extrahieren konnte, besteht und im Lichte rückstandslos verpufft! -- haben den Chemikern viel zu schaffen gemacht. ~Bergius~ z. B. nennt es eine «vera cera cruda»; ~Lémery~ sagt, es habe viel sal essentiale, ~Neumann~, daß die partes resinosae mit den partibus oleosis «surschagiret» sind. Doch erkannten schon ~Lémery~, ~König~ und ~Neumann~, daß wirklich Öl darin enthalten ist. =Paralleldrogen.= Ähnlich wie die Sporen von _Lyc. clavatum_, die die meisten Pharmacopoeen ausdrücklich verlangen, können auch die Sporen anderer Lycopodien, die alle tetraëdrisch sind, aber zum Teil eine andere Skulptur des Exosporiums zeigen, gebraucht werden und werden dort, wo die Arten häufiger vorkommen, auch ebenso benutzt. -- Pharmacop. american. läßt sie auch zu --. So z. B. die beiden in Norwegen ebenso benutzten _Lycopodium complanatum_ ~L~. (_L. Chamaecyparissias_ ~A. Br.~). Sporen fast gleich wie bei _L. clavat._ Breite 28-30 mik. und _Lyc. annotinum_ L., Netzleisten sehr weitmaschig (Fig. 157, 2), Breite etwa wie bei _L. clav._ Kleine Sporangienähren haben: _L. Selago_ L. mit getüpfeltem Exosporium (Fig. 157, 3), Breite 24-33, meist 27-30 mik. _L. inundatum_ L.: Exosporium mit welligen Leisten. _L. alpinum_ L. und _L. dendroideum_ ~Mich.~ (Nordamerika, ~Maisch~). Die Sporen von _L. phyllanthum_ haben Tüpfel, die von _L. densum_ Stacheln. In Deutschland ist nur _L. clavatum_ häufig, in der Schweiz auch _L. Selago_, in Skandinavien auch _L. complanatum_ und _annotinum_ (~Schübeler~), seltener sind in Deutschland _L. annotinum_, _alpinum_, _inundatum_ und _complanatum_. =Lit.= ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Maisch~, Jahresb. d. Ph. 1870, 34. -- ~Schübeler~, Pflanzenwelt Norwegens. -- Abgebildet sind bei ~Pritzel~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. I, 4, 587 die Sporen von Lycopod. phyllanthum, densum und inundatum. [Illustration: Fig. 157. 1. _Lycopodium clavatum._ 2. _L. annotinum._ 3. _L. Selago._ [Aus Kommetar Svenska Farmak.]] 3. Mycino-Membranindrogen. Früher nahm man gestützt auf die Tatsache, daß sich die in Kupferoxydammon unlöslichen (~Frémy~) +Pilzzellmembranen+ (Fungin ~Braconnot~, Metazellulose ~Frémy~) nach Behandeln mit Kali durch Jodschwefelsäure violett färben, an, daß ihre Substanz aus einer «inkrustierten» Zellulose bestehe, die ~de Bary~ «Pilzzellulose» zu nennen vorschlug. Ich habe den Komplex der Inkrusten 1888 als +Mycin+ bezeichnet (entsprechend dem Lignin und Suberin). Diese Auffassung ist jetzt verlassen. Nach ~Staedeler~, ~Winterstein~, ~Gilson~, ~Wisselingh~ und ~Wester~ enthalten die Zellmembranen der verschiedensten Pilze +Chitin+, eine Substanz (von ~Odier~ 1823 so benannt), die bei den niederen Tieren weit verbreitet ist und z. B. in den Panzern und Flügeldecken der Insekten und Crustaceen, in der Haut der Seidenraupe und den Knorpeln der Sepien einen Hauptbestandteil bildet. Die quantitativen Bestimmungen ~Westers~ zeigen jedoch, daß das Chitin in den Pilzzellmembranen noch von anderen Substanzen begleitet sein muß, denn er fand den Chitingehalt z. B. bei _Secale cornutum_ zu 5% und bei Hymenomycetenfruchtträgern zu 5-7%. Zellulose scheint der Begleiter aber nicht zu sein (~Wester~). ~Tanret~ nennt ihn Fungose (C₆H₁₀O₅)₆ (?). Die Chitinmengen scheinen übrigens zu schwanken, denn während ~Gilson~ und ~Escombe~ nur 0-10% Glukosaminchlorhydrat aus _Secale cornutum_ erhielten, erhielt ~Iwanoff~ 20-40% davon. Keinesfalls ist die jetzt viel verbreitete Ansicht, daß Pilzzellmembranen +nur+ aus Chitin bestehen, richtig. Gefunden wurde Chitin von ~Winterstein~ und ~Gilson~ in _Agaricus campestris_, _Boletus edulis_, _Polyporus officinalis_ u. and. von ~Gilson~ und ~Tanret~ in _Aspergillus_, _Bovista_, _Cantharellus_ und _Claviceps purpurea_, von ~Wisselingh~ und ~Wester~ in zahlreichen anderen Pilzen (und auch einigen Flechten) mit Ausnahme der Myxomyceten und Bakterien. Neuerdings wurde es aber auch in Bakterien aufgefunden. Wir dürfen jetzt annehmen, daß das Chitin und auch noch das bei der Behandlung mit Kali aus ihm neben Essigsäure hervorgehende +Chitosan+ (Mycosine ~Gilson~) hochmolekulare, der Stärke und dem Glykogen, deren Jodreaktion das Chitosan teilt [es wird durch Jod und verd. (1%) H₂SO₄ tief violett], analoge +Polysaccharide+ sind, die aber stickstoffhaltig und am Stickstoffe acetyliert sind (~Ledderhose~, ~Fränkel~ und ~Kelly~, ~Gilson~, ~Sundwick~, ~Schmiedeberg~). Es kommt also dem Chitin kaum die einfache Formel C₁₈H₃₀N₂O₁₂, vielleicht eher die höhere Formel C₆₀H₁₀₀N₈O₃₈ (~Sundwick~) zu, und auch das Chitosan muß komplizierter als C₁₄H₂₈N₂O₁₀ zusammengesetzt sein. Jedenfalls entstehen beim Behandeln der Pilzzellmembranen mit Salzsäure zunächst mehr oder weniger große Mengen des von d-Glukose: OH H OH OH COH--C--C--C--C--CH₂OH H OH H H abzuleitenden d-Glukosamins: (NH₂) H OH OH COH--C--C--C--C--CH₂OH H OH H H und schließlich ein +Chitose+ genannter Zucker, den ~E. Fischer~ als hydriertes Furanderivat auffaßt, und: O ----/ \---- / \ COH--CH--CHOH--CHOH--CH--CH₂OH schreibt. Das synthetisch aus d-Arabinose dargestellte d-Glukosamin ist, wie neuere Untersuchungen zeigten, identisch mit dem aus Chitin erhaltenen (~E. Fischer~ und ~Leuchs~). ~Offer~ betrachtet das Chitin als ein polymeres +Monoacetyldiglukosamin+. ~van Wisselingh~ schreibt mir (1911): «Im Widerstreit mit früheren Ansichten kommt bei den Pilzmembranen im allgemeinen keine Cellulose vor. Nur in einigen Fällen findet sich diese Wandsubstanz bei den Pilzen, nämlich bei den Myxomyceten, Peronosporeen und Saprolegnieen. Das Vorkommen von +Chitin+ bei den Pilzmembranen ist dagegen eine sehr allgemeine Erscheinung. Wenn man die Bakterien, die Saccharomyceten und die drei obengenannten Familien nicht berücksichtigt, so findet man bei den Pilzen fast ohne Ausnahme Chitin in den Zellwänden. Auch bei _Plasmodiophora Brassicae_ (Myxomyceten) kommt diese Wandsubstanz vor. In keinem einzigen Falle sind Chitin und Cellulose nebeneinander in den Pilzmembranen nachgewiesen. Dagegen fehlen in einigen Fällen beide Stoffe in der Zellwand, nämlich bei Bakterien, _Saccharomyces Cerevisiae_, _Fuligo septica_ und _Cetraria islandica_. Neben Chitin und Cellulose kommen noch mehrere Stoffe in den Pilzmembranen vor. Wahrscheinlich gehören dieselben zu den Kohlehydraten; im allgemeinen sind sie aber noch wenig bekannt, auch fehlen noch charakteristische Reaktionen für ihre Nachweisung.» Fettsäuren sind bis jetzt aus den Pilzzellmembranen, die übrigens (s. Mikrochemie) eine sehr verschiedene Zusammensetzung zeigen, nicht isoliert worden, so daß sie also von den Korkmembranen stark abweichen. Nach ~Winterstein~ enthalten die Membranen einiger Pilze auch +Eiweiß+; nach ihm sind vielleicht in ihnen +mucinähnliche Stoffe in Verbindung mit Kohlehydraten+ enthalten. ~Winterstein~ isolierte aus _Boletus edulis_ und _Polyporus betulinus_ +Paradextran+ (liefert bei der Hydrolyse Traubenzucker). Auch ~Iwanoff~ nimmt bei Hutpilzen neben Chitin stickstofffreie Zellmembranstoffe in der Membran an. Alles in allem betrachtet scheint in der sog. Pilzzellulose ein +Mittelglied zwischen den Kohlehydraten und Eiweißstoffen+ vorzuliegen, in dem besonders polymere Amidoglukosen eine Rolle spielen. Über den +mikrohistochemischen Nachweis+ des Chitins teilt mir ~van Wisselingh~ (1911) Folgendes mit. «Chitin kann mit großer Schärfe mikrochemisch nachgewiesen werden. Die zu prüfenden Objekte werden im Ölbade in zugeschmolzenen Röhrchen auf 160 oder 180° mit konzentrierter Kalilauge erhitzt. Hierdurch wird das Chitin in Chitosan umgesetzt. Nach Abkühlung werden die Objekte mit absolutem oder mit 95proz. Alkohol sorgfältig ausgewaschen und in destilliertes Wasser gebracht, worauf hintereinander Jodjodkalilösung und sehr verdünnte Schwefelsäure (0,5% J und 1% H₂SO₄) hinzugefügt werden. Chitinhaltige Zellmembranen und chitinhaltige Teile von Zellmembranen sind dann schön rotviolett gefärbt. Nach der Erhitzung mit Kalilauge färben chitinhaltige Membranen sich mit Chlorzinkjod blau. Diese Reaktion ist jedoch weniger scharf als die mit Jod und Schwefelsäure. Das Auswaschen mit Alkohol dient dazu, um einem Zerfließen der Präparate vorzubeugen, welches stattfindet, wenn man sie von der Kalilauge unmittelbar ins Wasser überträgt. Chitosan ist löslich in verdünnter Salzsäure (2½proz.) und in sehr verdünnter Essigsäure. Mit konzentrierter Kalilauge erhitzte Membranen lösen sich unmittelbar in diesen verdünnten Säuren, falls sie ausschließlich aus Chitosan bestehen. Chitin leistet einer Erhitzung in Glycerin auf 300° Widerstand, während viele andere Wandsubstanzen und Bestandteile des Zellinhalts zersetzt und entfernt werden. Diesem Prozeß kann man die Umsetzung des Chitins in Chitosan vorhergehen lassen, falls es nötig ist zur Verschärfung der Reaktion andere Substanzen zu entfernen.» =Lit.= ~Ledderhose~, Ber. chem. Ges. 9 (1876), 1200, Zeitschr. phys. Chem. 2 u. 4. -- ~Städeler~, Lieb. Ann. 111, 21. -- ~Winterstein~, Zur Kenntn. d. in d. Membr. d. Pilze enth. Bestandt., Zeitschr. f. phys. Chem. 19, 521 u. 21, 134. Ber. d. chem. Ges. 26, 3098, 27, 3113; 28, 167 u. 1374. Ber. d. Bot. Ges. 11, 441 und 13, 65. -- ~Gilson~, Ber. d. chem. Ges. 28, 821. Rech. chim. sur la membr. cellul. d. champignons, La Cellule 1894 und Bull. soc. chim. 1894. Compt. rend. 1895. -- ~Sundwick~, Zeitschr. f. phys. Chem. (1881), 5, 385. -- ~Schmiedeberg~, Arch. exper. Path. 28, 355. -- ~Fränkel~ und ~Kelly~, Sitzungsb. d. Wien. Akad. 1901. -- ~Offer~, Bioch. Zeitschr. 1907. -- ~Tanret~, Bull. soc. chim. III, 17, 921. -- ~von Wisselingh~, Mikrochem. Unters. über d. Zellwände d. Fungi. Zeitschr. f. wiss. Botan. 31, 619. (Dort auch die mikrochem. Reaktion auf Chitin.) -- ~Wester~, Studien über d. Chitin. Dissert. Bern 1909 (dort weitere Literatur) und Verbreit. u. Lokalisat. d. Chitins im Tierreiche. Zoolog. Jahrb. 1910. -- ~E. Fischer~ u. ~Tiemann~, Ber. d. chem. Ges. 27 (1894), 138. -- ~E. Fischer~, Ebenda 35 (1902), 3789, 36 (1903), 24 und 2587. -- Weitere Lit. in ~Czapek~, Biochemie, ~Röhmann~, Biochemie und in ~Zellner~, Chemie d. höh. Pilze. Fungus igniarius. Agaricus quercinus praep., Fungus quercus, Fungus s. boletus chirurgorum, Feuerschwamm (daher igniarius von ignis = Feuer), Wundschwamm, Blutschwamm, Zunder (daher fomentarius von fomentum = Zunder) -- agaric de chêne, amadou (franz.) -- surgeons agaric, touchwood, german tinder (engl.) -- vuurzwam (holl.) -- esca (ital.) -- tapló (ung.). Die Stammpflanze muß zu Fomes ~Fries~ und nicht zu Polyporus gezogen werden, da der Fruchtkörper von Anfang an holzig, derb und dauerhaft und konzentrisch gefurcht ist. [Illustration: Fig. 158. _Fomes fomentarius._ A Hut von oben gesehen. B Hut median-längsdurchschnitten. C Röhrenhymenium von unten gesehen. [Nach +Luerssen+.]] =Fomes fomentarius= (L.) ~Fries~, Syst. mycol. I, 374 (Polyporus fomentarius ~Fries~, Boletus fomentarius L., Agaricus fomentarius ~Lam.~) ist ein zu den Hymenomycetinae, Polyporaceae -- Polyporeae, Sectio Fomentarii, gehöriger, in Europa, Sibirien (bis über den Polarkreis), Nordamerika und auf Malakka vorkommender Pilz, der, ein echter Parasit, auf Laubbäumen, vorwiegend auf Buchen (und Birken) vorkommt. Die Infektion des Baumes erfolgt stets durch Wunden. Das Mycelium verbreitet sich vorwiegend zwischen Rinde und Holz und erzeugt schließlich, von der Mitte des Stammes nach oben fortschreitend, den mehrere Jahre andauernden +Hymenialkörper+ (den +Hut+). Dieser ist hufförmig-polsterartig, an der Peripherie halbkreisförmig oder halbelliptisch, sitzt mit sehr breiter Fläche ungestielt dem Stamme an und wird an der Anheftungsstelle bis 50 cm hoch, 30 cm breit und 25 cm tief. Auf der Rückenfläche (Oberseite) ist er entfernt konzentrisch gefurcht, kahl, nackt, anfangs rußfarbig oder bräunlich-grau, dann perl-grau mit welligen, ungleich dicken, parallelen Zonen; auf der Bauchseite ist er flach oder schwach vertieft; bräunlichgrau, später rostbraun. Innen weich, flockig, rostfarbig-gelbbraun mit c. 3 mm dicker, sehr harter, zäher, dauerhafter, aus Paraplectenchym (Pseudoparenchym) bestehender Rinde. Die Hymenialschicht liegt auf der Unterseite. Sie läßt sich leicht abtrennen. «Unter der Rinde liegt eine etwas umfangreichere, weichere rostbraune Schicht, auf welche eine dicke atlasglänzende, zartflockige und sammetweiche, hellzimtfarbene Schicht, welche parallel zur Hymenialschicht gezont ist» (~Berg-Schmidt~) folgt. Diese geht allmählich in die unterste, dunklere, dichtere, grobflockige Basalschicht des Hutes über. Diese drei Schichten bilden das Plectenchym. +Nur die mittlere liefert den Feuerschwamm.+ Die Hymenialschicht (Schlauchschicht), die nun nach unten hin folgt und meist umfangreicher ist als der obere Hutkörper, besteht aus dichtem Plectenchym und ist von zahlreichen, vertikal verlaufenden, 0,5 mm weiten Röhren (Röhrenhymenium) durchzogen (daher _Polyporus_ von πολύς und πῶρος), in welche die Basidien hineinragen, von denen je vier ellipsoidische Basidiosporen abgeschnürt werden. Die Hymenialschicht zeigt den Jahreszuwachsen entsprechende Zonen. In den Fruchtkörpern dieses und anderer Baumpilze leben die Larven vieler Käferarten, z. B. [Cistelae, Melandryidae, Mordellidae] _Mycetochares bipustulata_ ~Ill.~, _Eustrophus_ (Mycetophagus) _dermestoides_ ~Fabr.~, _Orchesia micans._ ~Payk.~, _Hallomenus binotatus_ ~Quens.~ u. a. (~Israël~). Der auf verschiedenen Laubhölzern, besonders Weiden, wachsende, in Europa, Sibirien, Nord- und Südamerika, Afrika und Australien vorkommende Weidenschwamm, _Fomes igniarius_ (L.) ~Fries~ (_Polyporus igniarius_ ~Fr.~, _Boletus igniarius_ L.) besitzt einen meist kleineren, flacheren, reichlicher gezonten, am Rande gewulsteten Hut (Abbild. bei ~Hennings~), der im Alter rissig wird und dessen rostbraune holzige Schwammschicht viel härter ist als die des _F. fomentarius_, daher einen schlechteren Feuerschwamm liefert, übrigens meines Wissens jetzt nirgends mehr darauf verarbeitet wird. Das gleiche gilt von den Fruchtträgern von _Fomes marginatus_ (_Polyporus marginatus_ ~Fr.~). Dagegen soll _F. applanatus_ verwendbar sein (~Flückiger~). Der Fruchtkörper von _Fomes igniarius_ ist anfangs kugelig-knollig, später huf- oder polsterförmig, 6-20 cm lang, bis 10 cm dick, erst mit flockigem, gelbbraunem Filze, später kahl mit harter, grauer oder schwärzlicher Rinde, mit konzentrischen Furchen und stumpfem Rande (~Hennings~). Weitere Polyporeen bei ~Sydow~ in Realenzyklopäd. d. Pharm., bei ~Luerssen~ und ~Hennings~. Feuerschwamm wird besonders in den Karpathen in +Siebenbürgen+ (im Szekler Lande und im Comitat Haromszék im Südosten), dann im Gouvernement Archangelsk, aber auch in +Böhmen+, +Ungarn+ (Temesvar), Galizien, Kroatien, Thüringen (früher c. 1000 cwts jährlich, ~Flückiger~), im Harz und +Schwarzwald+ (Todtnau im Wiesenthal), bei +Ulm+ und +Fredeburg+ (Westfalen), sowie in Schweden gesammelt und verarbeitet. Die mittlere lockere Schicht «Zunderschicht» des im August und September gesammelten Fruchtkörpers (s. oben) wird mit einem Messer herausgeschnitten, in Wasser oder schwache Aschenlauge oder verd. Natron- oder Kalilauge eingeweicht, durch Waschen gereinigt, getrocknet und durch Klopfen der auf Steine aufgelegten Stücke mit hölzernen Hämmern in eine weiche Platte verwandelt, die dann meist noch gewalzt wird. Diese «Felle» erreichen (aber jedenfalls nur in seltenen Fällen) eine Länge von 110 cm, eine Breite von 50 cm und eine Dicke von 1,5 cm (~Flückiger~). Man fertigt aus Feuerschwamm auch Kleidungsstücke, Mützen, Westen. Der Wundschwamm des Handels besteht aus sehr langen, 2,5-5,5 mik dicken, geraden oder wellig gebogenen, locker durcheinander geschlungenen Hyphen mit sehr dünner, bräunlicher Membran, zwischen denen keinerlei Substanzen sich abgelagert finden und die auch nahezu inhaltsleer sind. ~Schlossberger~ und ~Döpping~ geben dem Zellstoff des Feuerschwamms die Zusammensetzung 45,37% C, 6,82% H. Der Fruchtträger enthält +Methylpentosane+ (~Wichers~ und ~Tollens~), ein +Fett+, das eine hohe Säurezahl besitzt (~Zellner~). Ferner wurde gefunden: eisenbläuender +Gerbstoff+ 0,6% und in einem jungen Fruchtträger ein glykosid-(salicin-)spaltendes +Ferment+ (~Bourquelot~). Die Asche beträgt 1,09% (~Flückiger~). _Polyporus igniarius_ enthält Oxalsäure (~Bouillon Lagrange~), +Apfelsäure+ (derselbe, ~Braconnots~ acide fongique, Schwammsäure), eisenbläuenden Gerbstoff. Die Polyporsäure scheint ein pathologisches Produkt zu sein, sie findet sich jedenfalls nicht regelmäßig (~Stahlschmidt~). ~Zellner~ fand in _Polyporus igniarius_ Ergosterin, Harz, Fettsäuren, Fumarsäure (?), Mannit, Glukose, Phlobaphene, gummiartige Kohlehydrate und sehr wenig Eiweißkörper, von Fermenten ein fettspaltendes, ein diastatisches, ein glykosidspaltendes und ein Cellulose lösendes. Die Membranen geben, mit HCl destilliert, Furol, enthalten also wohl Pentosane. Bei Destillation mit Alkalien liefert der Pilz Amanitol und Aminbasen (sehr wenig). Asche 7,85-8,67. (Darin 23,82% K₂O, 23,93% CaO, 19,91% SO₃ 6,67% MgO, 2,29% SiO₂, 2,85% Fe₂O₃ + Al₂O₃, 1,78% P₂O₅, 0,87% Na₂O, 0,42% S als Sulfid.) CaSO₄ war reichlich vorhanden, die Tonerde in wasserlöslicher Form. Als +Blutstillungsmittel+ wird Feuerschwamm jetzt vielfach durch Eisenchloridwatte ersetzt. Die Wirkung beruht wohl auf einer kapillaren Aufsaugung des Blutserums und dadurch bedingter rascher Gerinnung des Blutes infolge Verklebung der Blutkörperchen. Die Hyphen bilden sehr feine Röhren. Als Blutstillungsmittel wurde früher auch der ebenfalls _Fungus chirurgorum_ genannte saprophyte Bovist (_Lycoperdon caelatum_ ~Bull.~) benutzt. Zur Darstellung des Zunder, der seit Einführung der Zündhölzer nur noch in Gebirgsdörfern da und dort benutzt wird, wird der Schwamm mit Salpeter getränkt. Ein solcher Schwamm ist als Blutstillungsmittel unverwendbar. Daher muß der Schwamm stets auf Salpeter geprüft werden. Guter Wundschwamm muß weich und dehnbar sein, angezündet ohne Knistern und ohne Funkensprühen verglimmen und leicht und reichlich Wasser aufnehmen. Das ausgedrückte Wasser muß rückstandslos verdunsten und darf keine Salpeterreaktion (mit Diphenylamin) geben. Feuerschwamm hält auch nach dem Ausdrücken leicht das doppelte Gewicht Wasser zurück. Die Verwendung eines «Schwammes» beim Feuermachen erwähnt ~Plinius~ (16, 77) mit den Worten: «teritur ergo lignum ligno, ignemque concipit attritu, excipiente +materia aridi fomitis, fungi+ vel foliorum facillimo conceptu.» -- «Fungus» findet sich auch bei ~Serapion~ (I, S. 605). =Lit.= Abbild. in ~Berg-Schmidt~, Atlas II. Aufl., t. 160 (dort die Liter.), ~Pabst-Köhler~, Arzneipflanzen, t. 139, ~Luerssen~, Med. pharm. Botan., ~Hennings~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenf., ~Hartwich~ in ~Hagers~ Pharm. Praxis, ~Berg~, Anatom. Atlas, ~Vogl~, Atlas. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Bouillon-Lagrange~, Ann. d. chim. 51, 75. -- ~Braconnot~, Ebenda 79 und 87. -- ~Schlossberger~ u. ~Döpping~, Lieb. Ann. 52 (1844), 106. -- ~Bourquelot~, Bull. soc. myc. 1894. -- ~Zellner~, Monatsh. f. Chem. 29, 1171 und Chemie d. höh. Pilze 1907. 4. Silico-Membranindrogen. Die Abteilung der Bacillariaceen (Diatomeen) ist unter anderem dadurch ausgezeichnet, daß die bekanntlich eine ganz außerordentlich mannigfaltige Zeichnung zeigenden (Fig. 159, vgl. auch Fig. 107 u. Fig. 108) Membranen der Zellen der sehr kleinen Pflanzen sehr reich an Silicium sind. Daneben findet sich aber ein Membranin, das nicht Zellulose zu sein scheint. Wenn man nämlich das Silicium mit Flußsäure entfernt, so färbt sich der Rückstand mit Jodschwefelsäure auch dann gelb, wenn man zuvor mit Kalilauge oder ~Schultze~scher Flüssigkeit behandelt (~Pfitzer~). Wie das Silicium gebunden, ob eine «Silicozellulose» oder, was wohl das wahrscheinlichere ist, ein Kieselsäureester vorliegt, wissen wir nicht. Jedenfalls kommen auch Alkalien in der Schale vor, denn wenn man ohne zuvor mit Säuren zu kochen direkt verascht, bekommt man oft ein Glas. Kocht man aber mit Salpetersäure oder ~Schultze~schem Gemisch aus und glüht dann, so bleibt die Schale mit allen ihren, auch den feinsten Skulpturierungen erhalten. Das gleiche finden wir bei den Kieselguren, deren organische Substanz durch Fäulnis zerstört wurde. Wir können also die Kieselgurdiatomeen, die längst ihre Chromatophoren, ihr Plasma und die organische Grundsubstanz ihrer Membranen nicht mehr besitzen, auch heute noch nach der Struktur ihrer nunmehr vorwiegend aus Kieselsäure bestehenden Schalen diagnostizieren. [Illustration: Fig. 159. Häufiger vorkommende Diatomeen. _a_ _Surirella splendida_, _b_ _Meridion circulare_, _c_ _Nitzschia linearis_, _d Nitzschia acicularis_, _e_ _Epithemia Zebra_, _f_ _Tabellaria fenestrata_, _g_ _Synedra Ulna_, _h_ _Gomphonema acuminatum_, _i Rhoicosphenia curvata_, _k_ _Cocconema cistula_, _l_ _Navicula stauroptera_, _m_ _Stauroneis phoenicenteron_. [Aus +Hager-Mez+, Das Mikroskop.]] =Lit.= Siehe unter Kieselgur. Über die Verkieselung der Membran höherer Pflanzen vgl. ~Mohl~, Bot. Zeit. 1861 und ~Sachs~, Flora 1862, sowie ~Miliarakis~, Die Verkieselung lebender Elementarorgane bei den Pflanzen. Diss. Würzburg 1884. Kieselgur. Der Kieselgur (Infusorienerde, Bergmehl, Infusorienmehl, Kieselmehl, Diatomeenpelit) des Handels bildet ein leichtes, sehr feines, weißes oder grauweißes Pulver, das, wie die mikroskopische Untersuchung lehrt, so gut wie ausschließlich aus den zum Teil ganzen, zum Teil zertrümmerten Kieselschalen von Diatomeen (Bacillariaceen) besteht, die keine organische Substanz mehr enthalten. Nur selten finden sich die Nadeln des Süßwasserschwammes darunter. Er findet sich in bisweilen ziemlich mächtigen Lagern in +Böhmen+ (Biliner Polierschiefer, Franzensbader K.), in +Ungarn+ (Zabresta), in +Toskana+ (Castel del Piane bei Santa Fiora) und in +Deutschland+ (Lüneburger Heide, im Habichtswald, bei Kassel, am Hochsimmer in der Nähe des Laacher Sees, bei Altenschlürf und Steinfurth im Vogelsgebirge), in Finland (Lillhagshyön, Degernfors), Schweden (Drepenäre), Norwegen, Rußland, in Amerika (New York, Oregon, Nevada, Virginien und bes. Kalifornien). Richmond, Berlin und Königsberg stehen zum großen Teil auf stellenweise 23 m mächtigen Kieselgurlagern. Das Lager bei Ebstorf in der Lüneburger Heide ist 13 m, das in Zabresta 5 m mächtig. Die mächtigsten sind die von Fremont in Oregon (U. S. A.). Dort, wo wir +nur+ aus Diatomeenschalen bestehende Kieselgurlager finden, können wir sie kaum für Sedimente von Süß- oder Salzwasserseen halten -- die meisten Diatomeen sind Süß- oder Salzwasserbewohner --, da ihnen sonst wohl die Kieselreste anderer Organismen und anorganische Schlammbestandteile beigemengt wären, sondern diese sind wohl Produkte großer Quellen, die nur eben die Oberfläche naß erhielten. Die Kieselgurlager enthalten, da die Diatomeen sehr klein sind, ganz ungeheuere Mengen dieser Organismen. Nach ~Brun~ sind in einem Kubikmillimeter 8000, nach ~Schumann~ in einem Kubikfuß 3 Billionen Diatomeen enthalten. Schon ein Kubikmeter enthält also schwindelerregende Mengen. Die ältesten Diatomeenformen reichen bis zur Kreide und ins Tertiär, die meisten sind viel jünger (Alluvium, Diluvium). Der meiste Kieselgur, der in Deutschland technisch und in der Medizin verwendet wird, stammt aus den Lagern der Lüneburger Heide, wo sich verschiedene Fundstellen finden (Oberohe, Ebstorf, Hützel im Luhetal), deren Zusammensetzung nicht stark voneinander abweicht. Von dort werden jährlich 300-400 Doppelladungen exportiert. Ein aus der +Lüneburger Heide+ (von Oberohe oder Ebstorf) stammendes Muster, das Dr. ~Keller-Escher~ in Zürich vor einiger Zeit bezog, bestand aus folgenden Arten: _Synedra_ (_S. Ulna_ dominiert, sie findet sich massenhaft), _Fragilaria_, _Gomphonema_, _Melosira_, _Navicula_, _Epithemia_, _Cymbella_, _Amphora_, _Stephanodiscus_ und _Cocconeïs_. Nach einer mir 1911 von ~O. Müller~-Berlin gesandten Bestimmung besteht der +Kieselgur von Lüneburg+ aus: _Melosira granulata_ (~Ehr.~) Ralfs, _Melosira crenulata._ ~Kg.~ (_italica_), _Melosira arenaria_ ~Moore~, _Melosira_ (_crenulata_ var.) _tenuis_ ~Kg.~, _Synedra_ (_Ulna_ var.) _splendens_ ~Kg.~, _Cymbella Ehrenbergii_ ~Kg.~, _Cymbella_ (_Cocconema_) _lanceolata_ ~Ehr.~, _Cymbella cistula._ ~Hempr.~ u. var. _maculata_, _Cymbella cuspidata_ ~Kg.~, _Epithemia sorax_ ~Kg.~, _Epithemia Hyndmanni_ ~W. Sm.~, _Epithemia turgida_ (~Ehr.~) ~Kg.~ und var. _granulata_ ~Grun.~, _Cymatopleura_ (_elliptica_ var.) _hibernica_ ~W. Sm.~, _Campylodiscus hibernicus_ ~Ehr.~, _Surirella Campronii_ ~Bréb.~, _Surirella biseriata_ (~Ehr.~) ~Bréb.~, _Surirella elegans_ ~Ehr.~, _Cyclotella operculata_ var. _major_ ~Kg.~, _Pinnularia viridis_ u. var. ~Kg.~, _Pinnularia major_ ~Kg.~, _Navicula sculpta_ ~Ehr.~, _Eucyonema ventricosum_ ~Kg.~, _Gomphonema constrictum_ var. _capitata_ ~Ehr.~, _Amphora ovalis_ ~Kg.~, _Stephanodiscus astrasa_ (~Ehr.~) ~Grun.~, _Navicula gastrum_ (~Ehr.~) ~Donk.~, _Navicula elliptica_ ~Kg.~, _Cocconeïs pediculus_ ~Ehr.~, _Epithemia zebra_ (~Ehr.~) ~Kg.~ u. var. _proboscoidea_ ~Grun.~, _Cymatopleura elliptica_ (~Bréb.~) ~W. Sm.~ Ganz ähnlich ist nach ~Keller~ ein Lager bei Celle zusammengesetzt: _Synedra_ (bes. _Ulna_), _Amphora_, _Cocconeïs_, _Cymbella_, _Epithemia_, _Eucyonema_, _Fragilaria_, _Gomphonema_, _Melosira_, _Navicula_ und _Stephanodiscus_. [Illustration: Fig. 160. Kieselgur von Eger nach +Ehrenberg+. Die runden Scheiben sind _Campylodiscus Clypeus_ Ehrbg., die schiffchenähnlichen Schalen _Anomoeonis_ (_Navicula_) _sculpta_ Pf. (in der Mitte) und _bohemica_ Pf. (oben und unten). [Aus +Pfitzer+, Bacillariaceen in Schenks Handb. d. Botanik.]] Beide Lager, das in der Lüneburger Heide und das von Celle, sind Süßwasserablagerungen. Eine +Infusorienerde von Eger+ (Franzensbad) enthält hauptsächlich _Campylodiscus Clypeus_ ~Ehrb.~ und _Navicula_ (_Anomoeoneis sculpta_ und _bohemica_ (Fig. 160), daneben (nach ~Keller~) _Cymbella_ und _Nitzschia_. Von italienischen Erden sind im Handel: +Monte Amiato+ (Süßwasserdiatomeen), bestehend aus (etwa 12 Spezies) _Navicula_, _Epithemia_, _Cymbella_, _Synedra_, _Cymatopleura_, _Amphora_, _Stauroneis_, _Cyclotella_, _Fragilaria_ und _Melosira_ (~Keller~). +Santa Fiora+ (Süßwasserdiatomeen), bestehend aus _Amphora_, _Cocconeïs_, _Cymatopleura_, _Cymbella_, _Epithemia_, _Fragilaria_, _Gomphonema_, _Melosira_, _Navicula_, _Pleurosigma_, _Stauroneis_, _Synedra_, _Tabellaria_ (~Keller~). Als Beispiel einer Meereswasserdiatomeenablagerung sei das +Tripelgestein von Richmond+ in Virginien erwähnt (Fig. 161), das _Coscinodiscus Gigas_, _Actinoptychus biternarius_, ferner _Aulacodiscus_, _Paralia marina_, _Actinocyclus_, _Grammatophora_, _Navicula_, _Pleurosigma_ und _Hemiaulus_ enthält (~Pfitzer~). Bei der Untersuchung eines Kieselgur ist zu beachten, daß die Diatomeen eine «Schalenseite» und eine «Gürtelseite» besitzen, also je nach seiner Lage dasselbe Objekt ein verschiedenes Aussehn zeigt. Im Handel findet man jetzt folgende Sorten: Extra weiße calcinierte, Rosa calcinierte, Weiße geschlämmte und geschlämmte und calcinierte Infusorienerde (~Prollius~). [Illustration: Fig. 161. Tripelgestein von Richmond in Virginien. 1 _Coscinodiscus Gigas_ Ehrbg., 2 _Actinoptychus biternarius_ Ehrbg., 3 _Aulacodiscus_ sp., 4, 5 _Paralia marina_ Heib., 6 _Actinocyclus_ sp., 7, 8 _Grammatophora_ sp., 9 _Navicula gemina_ A. S., 10 _Pleurosigma_ sp., 11 _Hemiaulus_ sp. [Aus +Pfitzer+, Diatomeen in Schenks Handb. d. Botanik.]] Für medizinische Zwecke wird besonders die Terra silicea calcinata praecipitata (d. h. geschlämmte und calcinierte) benutzt. Die im Handel befindliche weiße (nicht die grüne!) Infusorienerde besteht fast nur aus Kieselsäure. Der weiße (und grüne) Kieselgur der Lüneburger Haide z. B. enthält 97,3 (79,8)% Kieselsäure, 1 (1,9)% Tonerde, 1 (2,6)% Eisenoxydul, 0,3 (0,4)% Magnesia, 0,2 (0,3)% Kalk, 0,2 (15!)% Wasser und organische Substanz. Im grünen Kieselgur, der ungeglüht für unsere Zwecke unverwendbar ist, findet sich auch eine Spur Phosphorsäure. Die +Verwendung+ des Kieselgur beruht darauf, daß die hohlen Schalen oder Schalenfragmente so +rasch jede Feuchtigkeit kapillar aufsaugen+, daß z. B. ein auf ein Kieselgurstäbchen fallender Tropfen Wasser sofort aufgesaugt wird. Von Wasser nimmt Kieselgur ⅕ des Gewichtes auf. Auch Gase und Dämpfe werden von Kieselgur rasch absorbiert (z. B. Closetgase, ~Frank~). Kieselgur wird deshalb in der Medizin als aufsaugendes und daher austrocknendes Mittel in der Dermatologie benutzt, ferner zur Bereitung von Streupulver, Desinfektionspulver, Zahnpulver, als Verbandmittel. Brom darf über See nur in Form von Bromkieselgurstäbchen versandt werden, d. h. das Brom muß von solchen Stäbchen, die meist 8-10 mm dick sind, aufgesaugt werden. Denn das Platzen einer Flasche mit 1 kg Brom könnte zum Erstickungstode der Besatzung führen. Diese Bromkieselgurstäbchen haben sich auch zur Desinfektion von Aborten bewährt. Der Dynamit ist von Kieselgur aufgesogenes Nitroglycerin und die Kieselgurplatten dienen ähnlich wie die unglasierten Tonteller zum Trocknen von Niederschlägen. Kieselgur ist auch vorzüglich geeignet zum Klären trüber Flüssigkeiten (Soxhlet; ~Schweissinger~). Man streut es auf das Filter oder verrührt die Flüssigkeit damit. Auch die Eigenschaft des Kieselgur Wärme schlecht zu leiten wird benutzt (Isoliermassen für Dampfleitungen, Eisschränke und Trockenkästen -- Beschläge von Retorten), sowie die Eigenschaft sehr fein und dabei doch sehr hart zu sein, die ihn als Poliermittel von Goldwaren empfiehlt. Und endlich dient er auch als Ersatz des Quarzes in der Glasfabrikation. (Weitere Anwendungen bei ~Andés~.) Im dreißigjährigen Kriege sowie noch 1719 und 1733 in Wittenberg diente das «Bergmehl» als Zusatz zum Mehl und auch in Schweden und Finland wird es (nach ~Berzelius~) ebenso benutzt. Es besitzt natürlich keinen Nährwert und wirkt nur ähnlich wie die Kleie, darmreizend, also die Ausnutzung der eigentlichen Nährstoffe fördernd. Die Bacillariaceen, von ~Leeuwenhoek~ (1702) entdeckt (er sah _Synedra Ulna_), von ~Ehrenberg~ zu den Tieren, von ~Kützing~ zu den Pflanzen gestellt, sind wegen der zierlichen Zeichnung ihrer Schalen jetzt auch beliebte Testobjekte zur Prüfung der mikroskopischen Objektive (bes. _Pleurosigma_). =Lit.= ~Schütt~, Bacillariales in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. (mit vielen Abbild.). -- ~Pfitzer~, Die Bacillariaceen in ~Schenks~ Handb. d. Botan. -- ~Brun~, Les diatomées des Alpes et du Jura 1879. -- ~Andés~ in ~Luegers~ Lexikon der Technik. -- ~Prollius~ in Realenzyklopaed. d. Pharm. -- Chem. Analysen auch im Artikel Kieselgur in ~Fehlings~ Handwörterbuch (1878). -- +Abbildungswerke+: ~A. Schmidt~, Atlas der Diatomeenkunde. Leipzig 1874-1877. -- ~van Heurck~, Synopsis des Diatom. de Belgique 1880/81 und Treatise on the Diatomaceae 1896. 5. Carbono-Membranindrogen. Wenn pflanzliche Membranen unter Luftabschluß der Zersetzung anheimfallen, so vollzieht sich an ihnen ein langsamer Carbonisierungsprozeß. Der Wasserstoff und der Sauerstoff und ein Teil des Kohlenstoffes gehen als Wasser und Kohlensäure fort und die Membran reichert sich immer mehr an Kohlenstoff an: sie beginnt sich zu bräunen und wird schließlich schwarz. Dieser Carbonisierungsprozeß, der also ein langsamer innerer Verbrennungsprozeß vom Charakter der trockenen Destillation ist, läßt sich in seinen einzelnen Phasen an der Kohlenbildung verfolgen. Während die Zellulose 44,4% Kohlenstoff enthält, finden wir im Torf 56-60%, in der Braunkohle 60-70%, in der Steinkohle 75-90% und im Anthracit c. 94%. Auch die Zellinhaltsbestandteile werden zum Teil verbrannt, aber ebenfalls nicht vollständig. Denn wie wir aus der Leuchtgasfabrikation ersehen, treten unter den Produkten der trockenen Destillation der Kohle auch Ammoniak und Schwefelverbindungen auf, die als aus den Plasmaresten der schon vor Jahrhunderttausenden von Jahren abgestorbenen pflanzlichen Zellen entstanden zu denken sind. [Illustration: Tafel XI. Schwitzender Kohlenmeiler in Thüringen. (Aus Regel, Thüringen.) ] [Illustration: Fig. 162. Slavischer Kohlenmeiler. [Aus +Heusler+, Technologie.]] Der sich im Laufe sehr langer Zeiträume unter dem Drucke der darüber liegenden Erdschichten nur sehr langsam vollziehende Carbonierungsprozeß wird außerordentlich beschleunigt, wenn man die pflanzlichen Organe der trockenen Destillation unterwirft. Dies geschieht bei der Darstellung der =Holzkohle= in den +Holzmeilern+ -- man unterscheidet stehende (Fig. 162) und liegende und gemauerte (Fig. 163) Meiler -- oder in Retorten. Die Meiler werden mit einer Lehmdecke versehen und dann bei b (Fig. 162) angezündet. Zunächst verdampft das Wasser («Schwitzperiode», Taf. XI), dann treten unten helle Dämpfe aus (Periode des «Treibens»). Das «Zubrennen» ist beendigt, wenn der austretende Rauch blau ist. Bei der Darstellung der Meilerkohle gehen die nebenher auftretenden Teerprodukte und der Holzessig verloren -- nur beim gemauerten Meiler werden sie unten bei K (Fig. 163) abgelassen --, bei der Retortenholzkohle werden =Holzteer=, =Holzessig= und roher Holzgeist (Methylalkohol und Aceton) gewonnen. Das Produkt ist, abgesehen von den Aschebestandteilen, fast reiner Kohlenstoff. Das was wir hier in einer Phase sich vollziehen sehen -- die Überführung der Zellulosine in Kohlenstoff --, vollzieht sich bei den Steinkohlenpflanzen in zwei Phasen. In der ersten werden die Pflanzenteile im Laufe der Jahrhunderttausende in Steinkohle, in der zweiten bei der trockenen Destillation diese in Coaks übergeführt, der, abgesehen von den Aschebestandteilen, auch fast reiner Kohlenstoff ist. [Illustration: Fig. 163. Gemauerte Meilerstätte. [Aus +Heusler+, Technologie.]] Immerhin enthält die käufliche Holzkohle, =Carbo ligni= (Charbon végétal, Carbone vegetale), nicht selten außer Kohlenstoff noch Kohlenstoff-Wasserstoff-Sauerstoffverbindungen, so daß D. A. V und Pharm. helv. IV vorschreiben, daß sie in bedecktem Tiegel so lange geglüht werden solle als noch Dämpfe entweichen. Erst eine so behandelte Holzkohle erfüllt dann die Forderung, daß sie an Weingeist nichts abgeben, sowie siedendes Wasser nicht färben darf (Teerprodukte) und ohne Flamme vollständig bis auf 2% (Pharm. helv.) bzw. 5% (D. A.) Asche verbrennen soll. Stellt man durch die Holzkohle nach geeigneter Präparation Dünnschliffe her, so findet man die Membranen geschwärzt und es zeigt sich, daß die guten Holzkohlesorten aus Laubhölzern dargestellt werden. Pharm. helv. verlangt ausdrücklich Laubholzkohle, besonders _Carbo Tiliae_. Die Carbo Belloci ist _Carbo Populi_. Auch Brotkohle (_C. panis_) wird benutzt. Die Meilerkohle ist meist Fichtenholzkohle. (Vgl. auch ~Netolitzky~, Mikrosk. Unters. d. Kohlepulv. Pharm. Post 1903.) Die Benutzung der Holzkohle beruht auf ihrer Eigenschaft übelriechende Gase (wie überhaupt Gase) und viele andere Stoffe zu absorbieren. Sie dient daher als Desinfektionsmittel zum Aufstreuen auf putride Wunden, zu Zahnpulvern und innerlich bei Gasbildung im Magen, und muß in gut verschlossenen Gefäßen aufbewahrt werden. Sie dient auch zur Räucherkerzenfabrikation. Die _Carbo animalis_, Tierkohle, Fleischkohle (meist aus 3 Teilen Kalbfleisch mit 1 Teil Kalbsknochen dargestellt) und die _Carbo ossium_, Knochenkohle, Spodium (aus Knochen bereitet) besitzt diese Eigenschaften in noch ausgeprägterem Maße, besonders die, von den, im Gegensatz zur Holzkohle, hier sehr erheblichen Mengen anorganischer Bestandteile (die ⅗ resp. ⁸⁄₁₀ ausmachen können) befreite Tierkohle dient als Entfärbungsmittel, nimmt aber auch Alkaloide und Bitterstoffe aus den Lösungen auf und absorbiert reichlich Gase. (~Rosenthaler~ und ~Türk~, Über die absorbierenden Eigenschaften verschiedener Kohlensorten. Arch. Pharm. 1906, 517.) _Carbo animalis_ wird neuerdings (1909) gegen Vergiftungen durch Pilze, sowie andere pflanzliche Gifte (~Muck~), sowie auch bei Eiterungen und granulierenden Knochenwucherungen bei Knochentuberkulose empfohlen (~Mercks~ Jahresbericht 1911). Die alte Medizin unterschied viele Kohlen: _Hirundines ustae_ (Schwalbenkohle), _Talpae ustae_ (Maulwurfsk.), _Cuculi usti_ (Kuckucksk.), _Carbo picae_ (Elsterkohle), _Cinis bufonum_, _Soleae ustae_ u. v. a. An dieser Stelle mag auch die =Torfwatte= (vgl. auch S. 276) und der =Torfmull= eingereiht werden, deren Rohmaterial besonders an der Nordseeküste, in Friesland und Holland gewonnen wird. Man unterscheidet nach der Provenienz und den darin vorkommenden Pflanzenteilen: Moortorf (bes. _Sphagnum_arten), Heidetorf (bes. _Erica tetralix_), Wiesentorf (Gräser, z. B. _Eriophorum_, dann _Carex_, _Scirpus_), Holztorf (bes. Erlen, Weiden). In den Mooren wird +Torfstreu+ (grob -- der von dem Brenntorf abfallende Grus) und +Torfmull+ (feines Torfpulver) dargestellt. Die +Torfwatte+ wird durch Verarbeitung von besonders lockerem, langfaserigen Obertorf gewonnen. Sie dient als Packmaterial, als Wärmeisolierungs-, Konservierungs- und Desinfektionsmittel und besonders in der Verbandstofffabrikation. Torfstreu saugt das achtfache ihres Gewichtes Wasser auf, die Torfwatte das zwanzigfache. Über die Anatomie vgl. ~Royer~, L’ouate de tourbe et ses applications, Trav. lab. mat. méd. Paris 1910. Das zu Moosbinden benutzte +Torfmoos+ ist dagegen +nicht+ in diese Gruppe zu ziehen. Es ist das +unveränderte+, noch nicht carbonisierte, meist aus _Sphagnum_arten (_Sph. cymbifolium_, _acutifolium_ u. and.) bestehende gewaschene und getrocknete Moos der Torfoberflächen, das aber auch das dreizehnfache seines Gewichtes Wasser aufzusaugen vermag. II. Albuminoiddrogen. An die Membranindrogen, die nicht mit Sicherheit zu den Polysacchariden gezählt werden können, mag eine Gruppe von Drogen angeschlossen werden, von denen einige eine äußerliche Ähnlichkeit mit den Faserstoffdrogen besitzen (wie die Seide und Wolle), die aber alle +kolloidale Albuminoide+ enthalten oder aus diesen bestehen. Die Spaltungsprodukte der Albuminoide, die einerseits Säuren, andererseits Basen sind, +gehören vorwiegend zur aliphatischen Reihe+, z. B. Glycocoll, Leucin, Serin, die Asparaginsäure, die Glutaminsäure, Lysin (α-ε-Diaminocapronsäure) und Arginin, oder enthalten doch einen aliphatischen Kern wie die Phenylaminopropionsäure und das Tyrosin. Daneben finden sich allerdings auch zyklische Verbindungen wie das Prolin. Ferner sind darin über das Glukosamin zu den Kohlehydraten hinüberleitende Hexonbasen gefunden worden. Glycocoll = CH₂(NH₂).COOH. Alanin = CH₃.CH(NH₂).COOH. Serin = CH₂OH.CH(NH₂).COOH. Phenyl-α-aminopropionsäure (Phenylalanin) = C₆H₅.CH₂.CH(NH₂).COOH. Tyrosin = C₆H₄OH.CH₂.CH(NH₂).COOH (β-Oxyphenyl-α-Aminopropionsäure). CH₃ \ δ-Leucin = CH.CH₂.CH(NH₂).COOH. / CH₃ Asparaginsäure = COOH.CH₂.CH(NH₂).COOH. Glutaminsäure = COOH.CH₂.CH₂.CH(NH₂).COOH. H₂C----CH₂ OH.HC----CH₂ | | | | H₂C CH.COOH H₂C CH.COOH \ / \ / NH NH Prolin Oxyprolin (α-Pyrrolidincarbonsäure) (Oxypyrrolidincarbonsäure) C.NH₂ CH / \\ / \\ NH NH N NH | | | CH₂.CH₂.CH₂.CH(NH₂).COOH CH--CH.CH₂.CH(NH₂).COOH Arginin Histidin Zu den Albuminoiden gehören die Keratine, Elastin (im elastischen Gewebe), Kollagen (leimgebende Substanz) und Glutin, die wichtigsten Albuminoide des Körpers der Wirbeltiere; ihnen reihen sich an das Spongin (in den Schwämmen), Kornein (im Achsenskelett der Korallen) und die Bestandteile der Seide (Seidenleim und Fibroin) und der Wolle. 1. Gelatine. Die farblose, durchsichtige, geschmack- und geruchlose Blätter bildende Gelatine (Gelatina in foliis, in tabulis) wird aus Knochen dargestellt, kann aber auch aus Sehnen oder Knorpel dargestellt werden [die Technik unterscheidet vom Leim: Lederleim (aus Haut) und Knochenleim]. Die medizinale Gelatine, die als _Gelatina animalis_ und _G. soluta sterilisata_ in den Pharmakopoeen sich befindet, ist ein meist aus Kalbsfüßen dargestellter, mit besonderer Sorgfalt gereinigter =Knochenleim=. Der Leim geht durch Kochen mit Wasser aus albuminoïden Kollagenen (leimgebenden Substanzen) hervor, die sich bei den Vertebraten als Grundsubstanz in den Fibrillen des gewöhnlichen Bindegewebes (Bänder, Sehnenfascien) und als organische Grundsubstanz der Knochen und Knorpel, meist mit Mukoiden und Albumoiden vereinigt, finden. Das Kollagen verschiedener Gewebe scheint eine verschiedene Zusammensetzung zu haben. Die käufliche Gelatine enthält 51,45% C, 7,08% H, 17,47-18,18% N und 0,41-0,46% S (~Sadikoff~). In chemisch-technischem Sinne unterscheidet man zwei Leimformen, den Knochenleim (Glutin) und den Knorpelleim (Chondrin). Chondrin ist aber ein Gemisch (~Mörner~). Die Darstellung des Knochenleims erfolgt in der Weise, daß man die gewaschenen Knochen entfettet und ihnen den Leim dann durch Kochen mit Wasser oder Behandeln mit überhitzten Dampf entzieht. +Leim+ oder +Glutin+ (Glutein, Colla) ist ein kompliziert zusammengesetzter Eiweißkörper (C₁₃H₂₀N₄O₅?), der bei der Spaltung 16,5% Glycocol), 14% Glutaminsäure, 9,3% Arginin, 5% α-Prolin, 5-6% Lysin, 3% Oxy-α-Prolin, 2,1% Leucin und weniger wie 1% NH₃, Alanin, Asparaginsäure, Serin, Phenylalanin und Histidin liefert und auch einen Kohlehydratkomplex enthält. Auffallend ist der hohe Gehalt an Glycocoll, die Armut an NH₃ und Histidin und das Fehlen von Tyrosin und Tryptophan. Von basischem Stickstoff enthält der Leim 35,38% des Gesamtstickstoffs. Das Glutin verschiedener Provenienz zeigt eine etwas verschiedene Zusammensetzung. Glutin aus Sehnen enthält 50,9-50,11% C, 6,56-6,80% H, 17,81-18,59% N, 0,26-0,53% S, Glutin aus Knorpel enthält 50,22-50,46% C, 6,8-7,12% H, 17,72-17,80% N, 0,52-0,63% S (~Sadikoff~). Über andere Glutine vgl. die Tabelle bei ~Oppenheimer~, Handb. d. Biochemie I, 337. Auch reinste käufliche Gelatine enthält immer Spuren Eiweiß. Es ist sehr schwer, aus ihr wirklich reines Glutin darzustellen (~Sadikoff~). Leim quillt in Wasser, ist aber darin unlöslich, mit heißem Wasser gibt er eine kolloidale Lösung, die stark klebt. Über die Bedingungen der Gelatinierung, Erstarrung, Quellung und den Schmelzpunkt sind die Arbeiten von ~Pauly~ und ~Rona~, ~Ostwald~ und die Zeitschrift für Kolloidchemie zu vergleichen. Durch längeres Kochen seiner wässrigen Lösung oder zweitägiges Verweilen bei 37° verliert der Leim seine Fähigkeit zur Gelatinierung. Es entsteht β-Gelatine (~Nasse~), die eine niedrigere spez. Drehung als die linksdrehende Gelatine besitzt (~Nasse~, ~Framm~, ~Krüger~). Die Reaktionen des Leims siehe bei ~Oppenheimer~. Durch Essigsäure, Ferrocyankalium und Schwefelsäure wird Glutin nicht gefällt (Unterschied von den echten Eiweißkörpern). Gerbsäurelösung erzeugt noch in sehr verdünnten Lösungen einen weißen, flockigen Niederschlag. Auf der Bindung der Gerbsäuren durch Leim beruht die Verwendung von Hautpulver zur Bestimmung der Gerbstoffe. ~Dieterich~ fand in _Gelatina alba_ D. A. IV 1,83-2,14% Asche und 17,28 bis 17,46% Wasser, in Gelatineleim 1,14-3,07% Asche und 11,72-20,59% Wasser, im Knochenleim 1,57% Asche und 17,66% Wasser. Die Asche darf nicht über 2% betragen (D. A. V) und soll kein Kupfer enthalten. Medizinal-Gelatine darf nicht gebleicht sein. Das D. A. V läßt auf schweflige Säure prüfen: die mit Wasser angequollene Gelatine wird mit Phosphorsäure erhitzt und ein angefeuchteter Kaliumjodidpapierstreifen in die Mündung des Kolbens gehängt. Die +sterilisierte Gelatine+ wird subkutan, intravenös und in Form von Klysma als +Hämostatikum+ benutzt, zu welchem Zwecke Gelatine schon im III. Jahrh. n. Chr. in China und Japan in Gebrauch war, in Europa seit 1896. Reines Glutin bewirkt durch Agglutination der Blutkörperchen eine Gerinnung des Blutes (~Kaposi~), während seine Derivate, ebenso wie das Hirudin, gerinnungshemmend wirken. Bei der Darstellung der _Gelatina sterilisata_ muß also Peptonisierung vermieden werden. Die Sterilisierung erfolgt im Autoklaven bei 100° an drei aufeinanderfolgenden Tagen je 15 Minuten lang. Zwischen den Sterilisationen werden die Röhrchen im Brutschrank bei 35° gehalten (Pharm. helvet. IV. Ebenda eine Prüfung der _Gelal. sterilisat._). Die gewöhnliche reine Gelatine dient zu Gelatine-Bougies, zu medizinischen Gallerten (nach ~Almên~) und zu Fruchtgelees. Rote (meist mit Fuchsin oder Bordeauxrot extra gefärbte) sowie braune Gelatine (Weinschöne) sind vom medizinischen Gebrauch auszuschließen, die eine dient zur Herstellung von Gelees (wie die weiße G.), die andere zur Klärung trüber Weine. An Klebefähigkeit steht die Gelatine der Hausenblase nach. Die photographischen Trockenplatten werden jetzt meist mit einer Jod-, Brom- oder Chlorsilber-Gelatine hergestellt, da Silber-Gelatinen sehr lichtempfindlich sind. Ebenso spielt die Chromgelatine in den photographischen Reproduktionsverfahren eine große Rolle, da der «Chromleim» durch das Licht auch in heißem Wasser unlöslich wird (~Eder~). ~Dioskurides~ erwähnt κόλλα (ξυλοκόλλα, ταυροκόλλα) und seine medizinische Benutzung zu äußerlichen Zwecken. Als bester Leim galt der weiße Leim von Rhodus, «wo er aus Ochsenhäuten gemacht wird». =Lit.= Über Leimbereitung vgl. ~Dawidowsky~, Die Leim- und Gelatinefabrikation. Wien 1893, ~Valenta~, Klebe- und Verdickungsmittel und ~T. F. Hanausek~, Artikel Leim in ~Luegers~ Lexikon (dort auch die Handelssorten). -- ~Hell~, Artikel Gelatine in Real-Enzyklop. d. ges. Pharm. -- ~Oppenheimer~, Handb. d. Biochem. -- ~Röhmann~, Biochemie. -- ~Levene~, Über d. Spaltung d. Gelatine. Zeitschr. phys. Chem. 37 (1902), 81. -- ~Sadikoff~, Sehnenglutin, Knorpelglutin, Zeitschr. f. phys. Chem. 39 (1903). -- ~Ostwald~, Pflüg. Arch. 108 (1906). -- ~Nasse~ bei Oppenheimer I, 338. -- ~Dieterich~, Helfenberger Ann. 1900-1904. -- ~Kissling~, Fortschr. auf d. Gebiete d. Chem. usw. des Leims. Chem. Zeit. 35, 423. -- Über Gelatinepräparate vgl. den Gehe Codex. 2. Os Sepiae. Die im Rücken des in allen europäischen Meeren vorkommenden, zu den Kephalopoden gehörenden Tintenfisches, _Sepia officinalis_ L. sitzende Schulpe wird nach Verwesung des Tieres vom Meer ausgeworfen. Sie ist das weiße Fischbein, _Os Sepiae_. Sie bildet eine flache, beiderseits gewölbte, in der Mitte bis 2 cm dicke, bis 2,5 cm lange und 7 cm breite, an den Enden zugeschärfte Schuppe, die neben 80-85% Calciumcarbonat vornehmlich aus Leim- und Knorpelsubstanz besteht. (Beschreibung des Tieres und der Schulpe bei ~Vogl~ und ~Berg~.) 3. Cornu cervi raspatum. Das geraspelte Geweih des Hirsches, _Cervus Elaphus_, enthält neben 57,5% Calciumphosphat und 1% Calciumcarbonat 27% Knorpelsubstanz. 4. Ichthyocolla. Fischleim, Colla piscium, Ichthyocolla, Hausenblase, Colle de poisson, Ichthyocolle, Isinglass, Fishglue, ist die getrocknete, präparierte, innere, pulpöse und vaskuläre Haut der Schwimmblase verschiedener in europäisch-asiatischen Gewässern vorkommenden, zu den Knorpel-Ganoiden gehörenden _Acipenser_-(Stör-)Arten, zu denen der +Hausen+ _A. Huso_ L. (Bjeluga) gehört, der im Schwarzen Meere und den in dieses mündenden Strömen vorkommt, ferner der Scherg oder Sewerjuga (_A. stellatus_ ~Pall.~) im Kaspischen und Schwarzen Meer, der Sterlet (_A. Ruthenus_ L.) im Schwarzen und Asowschen Meer, im Baikalsee und Nördlichen Eismeer und der Ossetr (_A. Güldenstädtii_ ~Br.~) im Schwarzen und Kaspischen Meer und dem Baikalsee. Die Fische sammeln sich zur Laichzeit an den Flußmündungen und gehen auch in großen Scharen in die Flüsse (Wolga, Ural, Emba, Dnjestr, Dnjepr) hinauf und werden dort in großen Mengen gefangen. Der Eierstock bildet den Caviar, die Schwimmblase die rohe Ichthyocolla. Ein Fisch liefert 100-150 g Hausenblase. Die Blasen werden aufgeschnitten, abgewaschen (bisweilen in Kalkwasser eingeweicht) und auf Bretter gespannt getrocknet. Die halbgetrockneten Scheiben werden durch Reiben von der äußeren, nicht leimgebenden Silberhaut befreit und dann, das Innere nach außen gekehrt, aufgespannt, fertig getrocknet (Blätterhausenblase, I. in foliis), oder in eine der anderen Handelsformen gebracht («gebrackt»). Mehrere, gefaltet übereinander gelegte Blätter bilden die Bücherhausenblase, zusammengerollte die Rollenhausenblase, ausgewalzt und in Fäden geschnitten ist die Fadenhausenblase (I. in filis), zwischen zwei Nägeln hufeisenförmig, herzförmig oder lyraförmig gebogen die Leier-, Klammern-, Kranz- oder Riegelhausenblase. Schlechte Sorten sind die Klumpen-, Zungen-, Band- oder Krümelhausenblasen. Die tongs und Beutel sind unpräparierte Schwimmblasen. Rußland exportiert im Jahr c. 100000 kg. Handelszentren für Hausenblase sind besonders Nischni Nowgorod und Petersburg (bisweilen wird die Hausenblase erst hier gebrackt). In den Dogghallen Londons sah ich große Mengen. Die beste Sorte ist die Astrachaner, besonders die sog. Patriarchenhausenblase (Blätter und Klammern), die meist von _A. Güldenstädtii_ stammt und deren Oberfläche ein sehr charakteristisches blaues Irisieren zeigt, dann die kleinen Blätter von _A. stellatus_ (Blätter und Bücher) und die dicken und reinen Blätter von _A. Huso_. Hamburg importierte 1908 +Hausenblase+ (echte und unechte) 220810 kg, davon aus Japan: 182580 (Agar?), russischen Ostseehäfen: 7670, Brasilien: 6810, China: 5410. Deutschland führte 1909: 148 dz Hausenblase aus Rußland ein. Der deutsche Großhandel unterscheidet (1910): +Beluga+, Blätter extraf. +Salianski+, nat. Blätter und Schnitzel und gebleichte Blätter und Schnitzel in vielen Sorten, dann (weniger wichtig): +Premislowoy+, +Assetrowa+, +Astrachan+, +uralische+ Hausenblase usw. [sowie (als Sekundaware): +Samovy+ (s. hinten unter Paralleldrogen) und +sibirische+ Hausenblase]. In +London+ werden besonders gehandelt (1907): Brasilianische Zungen (tongues), Maracaibo (Herzform), Venezuela (Zungen und Taschen). Die Hausenblase bildet weiße oder gelbliche, durchscheinend-hornartige, in der Richtung der Fasern zerreißbare, bisweilen geschmacklose, aber stets etwas, manchmal sogar ziemlich stark riechende Stücke, die bisweilen mit schwefliger Säure oder durch Schnee und Salz gebleicht sind (die Formen abgebildet bei ~Dieterich~). Sie quillt in kaltem Wasser und löst sich in kochendem Wasser zu einer kolloidalen, stark klebenden, neutralen oder schwach alkalischen Flüssigkeit, die, wenn konzentriert, gelatiniert. Die wenig haltbare Lösung wird durch Zusatz von ¹⁄₁₅ Glycerin haltbar (~Meyer~). Das Bindegewebe der Hausenblase besteht aus sehr charakteristischen, büschelig-pinselig angeordneten Fibrillen (Abbild. bei ~Prollius~). ~Scherer~ gibt die Zusammensetzung zu 49,5% C, 6,9% H, 18,8% N, 24,8% O an, also annähernd wie bei dem Glutin (s. d.). ~John~ gibt 70,5% Tierleim, 16% +Osmazom+, 4% Milchsäure, K-, Na- und Ca-Salze, 2,5% unlösliche Haut und 7% Wasser an. Die Asche wird meist zu 0,5 (~Henkel~, ~Redwood~) bis 1,5 (ja sogar bis 5%), der unlösliche Rückstand zu 2-28% (2-15 ~Dieterich~), selten nur zu 1,5% (~Cop~), das Lösliche zu 70-98% angegeben. Russische, speziell Astrachaner Hausenblase ergab ~Prollius~: 0,2-1,2% Asche (höchstens 0,9% ~Letheby~), 16-19% Wasser, 0,7-3% in Wasser unlöslichen Rückstand. ~Meyer~ fand in russischer Hausenblase 12% Unlösliches. ~K. Dieterich~ fand (1909) bei russischer Hausenblase (Saliansky, Beluga, Samovy) folgende Grenzwerte: +Wasser+ 13-20%, +Asche+ 0,5-1,7% (darin 8-33% K₂CO₃), +lösliche Anteile+ 65-81%, unlösliche 1-19%, +Fett+ 0,1-1,2%, +Collagen+ 79-85% (+Rohglutin+ 66-82%). Die Jodzahl betrug 19-45, die Säurezahl 0-6. Die optische Drehung des Glutins war stets links, Schwefel war stets vorhanden. ~Windisch~ fand 15% N, ~Schlieper~ bis 0,54% S (der hohe Gehalt wohl von der Bleichung mit S). +Der Hauptbestandteil der Hausenblase ist also Collagen+ bzw. +Glutin+. Hausenblase wird in der Pharmazie besonders zur Bereitung des Englisch-Pflaster und zum Klären trüber Flüssigkeiten (hierfür unentbehrlich!) benutzt, weniger zur Herstellung von Gelatinen (nur die ungebleichten Sorten!), viel in der Technik, z. B. zu Kitten. Als +Paralleldrogen+ können gelten: +Hamburger+ Hausenblase von _Acipenser Sturio_ L. gilt als eine gute Ersatzsorte. +Hudsonsbay+ H. von _A. brevirostris_ und _rubicundus_, meist in tongs. Die in immer größeren Mengen im Handel erscheinenden +Neufundland+- und +Kanada+-H. stammen jetzt meist von _Gadus_-, _Merluccius_- und _Phycis_-Arten. +Samowij+-H. von _Silurus glanis_ (im Russischen Som), dem Wels, liefert in Rußland schöne dünne weiße Blätter. +Indische+ H. von _S. raita_ und _Polynemus_-Arten in Beuteln und Pfeifen, oft kalkhaltig. +Chinesische+ H. von _Sciaena lucida_ und _Anguilla pekinensis_, in langen Streifen. +Brasilianische+ (Para) H. von _Silurus_- und _Pimolarus_-Arten in Röhren, Klumpen und Scheiben. +Bandhausenblase+ von New York von _Merluccius vulgar._ (36% in Wasser unlöslich) und _Gadus Morrhua_. +Westindische+ H. von _Silurus Parkeri_ und +Maracaibo+ H. (Herzform), beide 1910 im Handel. +Isländische+ H. von _Gadus Morrhua_ (vgl. hierzu auch ~Pereira~, Heilmittellehre). Alle diese geben Lösungen von geringerer Viskosität und geringerer Klebkraft als die echte Hausenblase (~Prollius~). Viele besitzen einen starken Fischgeruch und unangenehmen Geschmack. Im deutschen Handel waren 1910 die südamerikanischen Sorten: Brasilianische H. (Zungen), Maracaibo und Venezuela (Taschen). In Hamburger H. fand ~Prollius~ (1883) 1,3% Asche, 19% Wasser und 2,3% Unlösliches; Indische H. enthielt 8,6%, Nordische 10,8%, Isländische 21,6% Unlösliches. In amerikan. Hausenblase strip (Streifen) fand ~Meyer~ (1873) 30%, in sheet (Blätter) 18% Unlösliches. +Falsche Hausenblasen+, die nichts mit Fischblasen zu tun haben, sind die falsche Parahausenblase (Eierstöcke des _Silurus Parkerii_), der Mainzer Fischleim, Leim aus Därmen von Lämmern und Ziegen, der in den Donaufürstentümern aus Haut, Därmen und Magen von Knorpelfischen dargestellte Leim, die Ichthyocolle francaise aus Blutfibrin und Tannin, die japanische H. (Agar) u. and. Nicht selten findet sich eine verfälschte H. im Handel, die durch Eintauchen der Blätter in Leimlösung oder Einlegen von Leimblättern zwischen die Buchhausenblase dargestellt wurde (~Redwood~ und ~Letheby~). ~K. Dieterich~ fand (1904) bei falschen Hausenblasen folgende Grenzzahlen in %: -----------------+------+--------+-----------+-------+---------+ | H₂O | Asche | K₂CO₃ |Löslich|Unlöslich| | | | in der | in | in H₂O | | | | Asche | H₂O | | =================+======+========+===========+=======+=========+ Chinesische H. | 11-17| 0,9-2,3| 32-53 | 68-86 | 2-15 | Amerikanische H. | | | | | | (Brasilien, | | | | | | Venezuela, | | | | | | Maracaibo | | | | | | Abfälle) | 13-18| 1-3,7| 6-37 | 59-75 | 9-2 | Verfälschte | | | | | | Saliansky (mit | | | | | | Leimgetränkt) | 16 | 0,6 | 72 | 82 | 1,5 | -----------------+--------+--------+---------+---------+------- | Fett |Collagen|Rohglutin|Säurezahl|Jodzahl | | | | | | | | | | =================+========+========+=========+=========+======= Chinesische H. | 0,1-1,2| 81-88 | 69-7 | 0 | 39-46 Amerikanische H. | | | | | (Brasilien, | | | | | Venezuela, | | | | | Maracaibo | | | | | Abfälle) | 0,1-0,8| 80-87 | 66-75 | 0-2,76 | 30-47 Verfälschte | | | | | Saliansky (mit | | | | | Leimgetränkt) | 0,3 | 83 | 82 | 3,8 | 37 Alle drehen links, alle enthalten Schwefel. ~Plinius~ kennt _Ichthyocolla_, die man im Altertum, wie es scheint, besonders von _A. Huso_ gewann. Er hat auch gehört, daß sie «aus dem Bauche» stammt und daß die pontische H., da am schnellsten löslich, am meisten geschätzt werde. Bei ~Dioskurides~ finden sich Angaben über die medizinische Benutzung der ἰχθυοκόλλα (ἰχθύς = Fisch, κόλλα = Leim). =Lit.= ~Brandt-Ratzeburg~, Med. Zoologie. -- ~Pereira~, Heilmittellehre. -- ~Jackson~, Essay on british Isinglass. -- ~Valenta~, Klebe- und Verdickungsmittel. -- ~Royle~, On the prod. of isinglass along the coasts of India 1842. (Dort Abbildungen der Zubereitung von ~Jackson~.) -- ~Wagner~, Chem. Technol. -- ~Fischer-Hartwich~, Pharm. Praxis. -- ~Moeller-Husemann~ in Realenzyklop. -- ~Vogl~, Arzneikörper. -- ~Berg~, Pharmakognosie (dort eine Beschreibung der Fischarten). -- ~C. Meyer~, Sol. of isinglass in water Am. journ. pharm. 1873, 258. -- ~Prollius~, Über Collapiscium. Pharm. Centralh. 1883, 335. -- ~K. Dieterich~, Zur Pharmakodiakosmie u. chem. Analyse d. Hausen- u. Fischblas. Dresden 1909. -- ~Weigel~, Pharm. Centralh. 1904. -- ~Helfenberger~ Annalen 1897, 1900-1904. -- Ältere Analysen von ~John~ (in ~Gmelins~ Handb. d. Chem. II, 1468) und ~Sally~ (bei ~Royle~). -- Vgl. auch die I, S. 390 erwähnten Werke. 5. Catgut. Das Rohmaterial für das Catgut liefern die Därme des Schafes, die von gesunden Tieren entnommen, frisch verarbeitet und von allen Fett- und Fleisch-, Schleim- und Zottenteilen befreit werden müssen. Der Darm wird in zwei schmale Bänder aufgespalten und jedes dieser Bänder nach dem Aufspannen durch ein Drillierrad gedreht, wodurch sie sich von c. 3,1 m auf 3 m verkürzen und die Bänder zu Fäden werden. Stärkere Fäden erhält man durch Zusammendrillieren mehrerer Darmbänder. Die fertig drillierten Catgutfäden werden, in Rahmen gespannt, an einem mäßig warmen Orte getrocknet und dann mit Schmirgel und Öl abgeschliffen und (mit Carbolsäure, Jod, Sublimat, Glycerin oder Wacholderöl) +sterilisiert+. Neuerdings wird Catgutsterilisation (statt mit Alkoholdämpfen) mit Chloroform empfohlen. Starker Alkohol macht Catgut brüchig, in 90% hält es sich lange, ebenso in 3% Phenolwasser. Die Verwendung des Catgut, das aus einem Collagen besteht und dessen Fäden eine hohe Zugfestigkeit besitzen, beruht darauf, daß seine Substanz in der Wunde innerhalb 8-20 Tagen vollständig resorbiert wird. Neuerdings (1904) sind von ~Kieffer~ die Beinsehnen der Kraniche und Reiher als Catgutersatz empfohlen worden. Über +steriles Catgut+ vgl. ~Lentz~ und ~Lockemann~, Klin. Jahrb. 1909, 566, ~Lèrat~, Journ. pharm. Liège 1909 (vgl. auch Jahresber. Pharm. 1909, 361). 6. Spongia. Der Bade- oder Meerschwamm besteht aus verschiedenen zur Gattung _Euspongia_ gehörenden Spongien (Hornfaserschwämmen) besonders des Mittelmeeres (Coelenteraten), die etwas unterhalb des Meeresspiegels bis zu ziemlichen Tiefen (200-300 m) an Felsen oder anderen Gegenständen festgewachsen sind und durch die «Schwammfischer» herausgeholt werden. Die wertvollsten Schwämme werden an den Küsten Syriens (von Kap Carmel bis Iskenderum) und Kleinasiens (Südwestspitze) und der Inseln Rhodos, Symi und Kalymnos durch Taucher und Taucherglocken gefischt. Diese +syrischen+ (Soria) +Schwämme+, die meist in Smyrna gehandelt werden, stammen von _Euspongia officinalis_ var. _mollissima_ ~Schulze~, _Eusp. officinalis_ var. _adriatica_ ~Schulze~ und _Euspongia officin._ var. _lamella_ ~Schulze~ und _Eusp. zimocca_. Die gröberen (Pferdeschwämme) von _Hippospongia equina elastica_ ~Lendenfeld~ kommen von der Nordküste Afrikas, die Marseiller Schwämme (Eponges brunes de Barbarie) von _Euspongia communis_ von der tunesischen Küste (Sfax, Golf von Gabès). Die an der Küste Istriens und Dalmatiens mit vierzinkigen Gabeln gefischten, weniger geschätzten, leicht zerreißbaren Schwämme sind meist _Euspongia adriatica_, dann auch _Eusp. nitens_ und _quarnerensis_ (~Vogl~). Die großporigen +Bahamaschwämme+ sollen von Varietäten der Mittelmeerarten stammen (~Hyatt~). +Hauptproduktionsgebiete+ sind: der griechische Archipel, das Küstenland von Syrien, Ägypten, Tripolis und Tunis, die Küsten von Istrien und Dalmazien, das Rote Meer und der persische Golf; dann das Caraibische Meer (Antillen und Bahamainseln). +Hauptausfuhrhäfen+: Smyrna, Aden, Tripoli (in Syrien), Rhodus, Sira, Aegina (im griech. Archipel), Bengasi, Tripolis (Afrika), Sfax, Avana, Nassau (Bahamainseln), Keywest (Florida). Wie zur Zeit des ~Aristoteles~ so sind auch heute noch besonders Griechen Schwammfischer -- selbst drüben in Amerika. Ein sehr geübter kann 100-150 Pf. Rohschwamm am Tage fischen. Im Mittelländischen Meer werden nicht weniger als vier verschiedene Methoden bei der Schwammfischerei angewendet. Die reicheren Händler rüsten ein 5-6 Tonnen schweres Boot mit einer mehr als 12 Mann starken Besatzung aus. Jedes Boot ist mit moderner Taucherausrüstung (Skaphanderapparat) versehen und hat wenigstens 10 Professionstaucher an Bord. Die Taucher gehen hinunter auf den Grund bis 15-30 Faden tief, sammeln so viele Schwämme wie möglich und tun sie in ein an ihrem Körper befestigtes Netz. Diese Methode gestattet ein sehr gründliches Sammeln der erreichbaren Schwämme, so daß gelegentlich die Schwamm-Ansiedlungen überfischt wurden, auch zerstören die schweren Stiefeln der Taucher viele Schwämme. Um den Gebrauch des Tauchapparates etwas einzuschränken, ohne jedoch eine vernünftige Ausnutzung zu schädigen, erhebt die türkische Regierung einen schweren Zoll auf den Gebrauch desselben. Andere Staaten am Mittelländischen Meer tun das Gleiche. Die zweite Methode ist in Kleinasien, Tunis, Tripolis usw. sehr in Gebrauch. Der gebrauchte Apparat ist eine Art Baggermaschine mit Schleppnetz, in Tripolis «gangara», in Tunis «arth» genannt, die im wesentlichen die Struktur der gewöhnlichen Auster-Baggermaschine hat. Vier bis sieben Mann, in einem Boot zu drei Tonnen halten die Maschine in Gang. Da das Baggern Tag und Nacht geschehen kann, so ist diese Methode sehr produktiv; doch kann natürlich der fortgesetzte Gebrauch des Apparats die Schwamm-Kolonien ernstlich gefährden, auch werden viele Schwämme durch das Fahren der Maschine auf dem Seeboden zerdrückt oder zerrissen. Die dritte und vierte Methode, die früher allein in Gebrauch waren, werden jetzt noch in einigen Teilen des Mittelländischen Meeres, ferner ausschließlich bei der Fischerei in Florida, Bahama und Cuba angewendet. Es ist dies das Harpunieren oder mit Haken herausholen und ferner das Tauchen ohne besonderen Apparat. Das erstere geschieht bei niedrigem Wasser und ruhigem Wetter und ist eine sehr einfache Prozedur. Aus den Booten bestimmt man die Lage der Schwämme. Da die Wellen die Beobachtung hindern, benutzt man ein sogenanntes «water glass, Wasserteleskop, Schwammglas» (ein kräftiges Eisenrohr, ungefähr 20 Zoll lang und vierzehn Zoll im Durchmesser, an dessen einem Ende eine Glasscheibe befestigt ist). Das Ende dieses Rohres wird ins Wasser gesetzt und nun ist ein klares Beobachten der Schwammbeete möglich. Die Schwämme werden dann mit Harpunen, die mit Zacken und einem hölzernen Schaft versehen sind, aufgespießt und in das Boot gebracht. -- Früher kam es in den Tunesischen Gewässern vor, daß man Schwämme aus relativ tiefem Wasser vermittelst Harpunen heraufholte. Die Griechen waren so geschickt in der Handhabung der Harpunen, daß sie einen Speer hinten an den Schaft des andern werfen konnten. Die vereinigte Länge ermöglichte es, den Schwamm auch aus tieferem Wasser heraufzuholen. Die letzte und am meisten verbreitete Methode ist das Aussenden eines unbekleideten Tauchers ohne besonderen Apparat. Dazu werden kleine Boote mit 3-4 Mann gebraucht; diese senken einen flachen Stein, an dem ein starkes Tau befestigt ist, ins Wasser. Der Taucher steht aufrecht auf dem Stein, indem er sich an dem Seil hält, so läßt man ihn auf den Seeboden bisweilen 50 oder gar 80 m herab und er sammelt während 1-2 Minuten rasch so viele Schwämme wie möglich und tut sie in ein auf dem Rücken angebrachtes Netz. Möglichst junge Männer werden als Taucher gebraucht; der Druck des Wassers wirkt aber oft ungünstig auf das Rückenmark und Paralyse kann die Folge sein. Diese Methode wird in gewissen Teilen des Mittelländischen Meeres, an der Ostküste Afrikas und auch im Caraibischen Meer angewendet. [Illustration: Fig. 164. Kultur von Meerschwämmen auf dem Dreieck. [Aus dem +Prometheus+.]] In den Fischereigründen von Florida, Bahama und Cuba werden die Schwämme durch Speerwerfen gewonnen. Die Speere sind dreizinkige Gabeln, die sich in ein schweres eisernes Rohr fortsetzen. An diesem ist oben ein Stab befestigt, den man je nach der Tiefe des Wassers verschieben kann. Wie im Mittelländischen Meer wird auch hier ein «water glass» angewendet, doch ist es nur ein Eimer, in den man an Stelle des Bodens ein Stück festes Glas eingesetzt hat. (Nach The sponge industry in Bull. Imperial Institut London 5 [1907], 393.) Die Züchtung der Schwämme lehrte ~Oscar Schmidt~ (1862) und ~Buccich~. In Tunis ist dann 1897 bei der Insel Kerkennah der, wie es scheint, erfolgreiche Versuch gemacht worden, Spongien zu kultivieren (~Hérail~). Auch die 1901 einsetzenden Versuche der United States Commission of fish and fisheries waren erfolgreich. Nachdem schon 1897 ~Harris~ in Amerika Versuche mit auf galvanisierten Draht gereihten Schwammstücken gemacht, benutzt ~Moore~ jetzt (1910) Cementunterlagen (Dreiecke und Scheiben), die mit Stiften versehen sind (Fig. 164). Die Kultur gründet sich auf die Tatsache, die ~Cavolini~ (1785) und ~Lieberkühn~ (1855) fanden, daß sich der Schwamm aus kleinen, zerschnittenen Stücken wieder regeneriert. Für den Handel werden die Schwämme durch Auspressen von ihrer gallertigen Körpersubstanz und dann von den eingeschlossenen oder aufsitzenden Steinchen, Muscheln, Korallen usw. befreit, gewaschen und getrocknet und auch wohl (mit SO₂, Brom oder Kaliumpermanganat) gebleicht. Von den zahlreichen Handelssorten dürfen für den pharmazeutischen Gebrauch, z. B. zur Herstellung der schon ~Plinius~ bekannten Spongia pressa, bei denen es auf eine möglichst große Aufsaugefähigkeit ankommt, nur die besten, feinporigen, hellgelbbräunlichen Champignon-, Damen- oder Badeschwämme benutzt werden, deren Asche nur etwa 3-4% beträgt. Badeschwamm läßt sich schwer +sterilisieren+. Man behandelt nacheinander mit Lösungen von Permanganat, Natriumbisulfit, dem etwas HCl zugefügt wurde, Phenol und Sublimat (1 : 2000) (~Terrier~ et ~Vercamer~). Die Schwämme werden aber jetzt meist durch Gazetampons ersetzt. _Spongiopiline_ (Schwammfilz) ist mit hygrophiler Baumwolle oder Schafwolle zu einem Filz verarbeiteter Pferdeschwamm. Hauptmarkt für die Mittelmeerschwämme ist Triest, das jährlich für über £ 100000 exportiert, dann Paris, London, Hâvre, weniger Livorno und Venedig. Die Bahamaschwammfischerei macht große Fortschritte. 1907 standen dort schon 500 Schoner und 2500 Boote in ihrem Dienst und der Export betrug 1906 bereits über 1½ Mill. lbs. (bei den Bahamaschwämmen unterscheidet man velvet, sheepwoot, hardearth). Auch Florida exportiert schon viel (1906: 50953 lbs) und sehr beträchtlich ist die Schwammfischerei auch bei Cuba (Bull. Imp. Inst. 1907). Neuerdings tauchen auch Schwämme von Australien im Handel auf. Deutschland führte 1909 3576 dz rohe +Meerschwämme+ ein, besonders von den Bahamainseln, den Ver. Staaten, Griechenland, Österreich, Cuba, Großbritannien; bearbeitete vorwiegend aus Österreich und Griechenland. Die besten (soprafine) Schwämme sind die syrischen und vom Archipel, die mittelmäßigen (zimocche) die von Salonici und die barberischen, die schlechten (communi oder di Gerba) die Marseiller und die venetischen. Die beste Sorte ist der +feine Levantiner+ Schwamm (Becherschwamm, turkey cup, coupe turque, fine douce de Syrie), von Syrien, Mandruka (an der ägyptischen Küste), Kreta und Cypern -- von der Varietät _mollissima_ (werden mit M. 125 bis 800 das Kilogramm bezahlt!), der zweitbeste der +Levantiner+ (turkey toilet sponge) von der var. _adriatica_, die dritte der +Ohren-+ oder +Mundschwamm+ (Levantinerlappen, Elephantenohr) von der var. _lamella_ -- eignet sich besonders für chirurgische Zwecke -- und die vierte der +Zimokkaschwamm+. Der groblöcherige +Pferdeschwamm+ (Honigwabenschwamm, Honeycomb) kommt von Marseille bis zu den Dardanellen und dem Roten Meer vor: Adria, Küsten Kleinasiens, Ägypten, Algier, Tunis, Tripolis, Archipel, Kreta, Corsica. Die besten +amerikanischen Wollschwämme+ stammen von Rock Island (Florida) besonders von _Hippospongia canaliculata_ var. _gossypina_. Ferner liefern die Bahamas, Cuba, Mexiko, Honduras Schwämme, besonders die zweite Sorte, die +Yellow sponges+ und die +Velvet sponges+, die wohl von _Hippospongia equina_ var. _maeandriformis_ ~Lendf.~ stammen. Die Gras- und Drahtschwämme sind minderwertig. Kein amerikanischer Schwamm erreicht an Güte die Levantiner. ~Croockewit~ nannte die Substanz des Schwamms +Fibroin+ und fand in ihr (1845) Jod, Schwefel und Phosphor und 3,7% Asche (~Posselt~ 3,59%). ~Städeler~ zeigte, daß sie sich nicht durch Kochen mit Wasser in Leim verwandelt. Er nannte sie zum Unterschiede vom Fibroin der Seide +Spongin+ und erkannte, daß sie bei der Hydrolyse Leucin und Glycocoll (von ~Krukenberg~ bestätigt), aber kein Tyrosin liefert. ~Nadler~ fand im Spongin J und Br. ~Stanford~ schätzt den Jodgehalt des Sch., der aber sehr schwankt, auf c. 0,5%. Nach ~Krukenberg~ ist das Spongin keine einheitliche Substanz. Es gibt weder die Xanthoproteïnreaktion, noch die mit ~Millons~ Reagens. ~Zalakostas~ fand bei der Behandlung mit Barythydrat: Leucin, Leuceïnhydrat, Butalanin, Glykalanin und Spuren von Tyrosin. Auch durch Behandeln mit Wasser bei 160° geht der Schwamm nicht in Lösung (~Flückiger~). Die auch in heißem Wasser unlösliche Gerüstsubstanz der Spongien, die nach Extraktion der Badeschwämme mit Wasser, Alkohol, Äther und verd. Säure zurückbleibt, das +Spongin+, ist ein jodhaltiges Albuminoid (48,51% C, 6,30% H, 14,79% N, 0,73% S, 1,5% J, c. 28% ~O. Harnack~). Einige Spongien enthalten auch Brom. Bei der hydrolytischen Spaltung liefert Spongin 13,9% Glycocoll, 7,5% Leucin, 6,3% Prolin, 18,1% Glutaminsäure, 4,7% Asparaginsäure, 5-6% Arginin, 3-4% Lysin (~Abderhalden~ und ~Strauss~). Durch den hohen Gehalt an Glycocoll und das Fehlen von Tyrosin erinnert das Spongin an Elastin und Glutin, unterscheidet sich aber von beiden durch den hohen Gehalt an Glutaminsäure. Durch Behandlung mit kalter 38% Schwefelsäure zerfällt das Spongin in lösliche Körper und das unlösliche, aber in Natronlauge lösliche +Jodospongin+, einen 8,2% Jod enthaltenden Körper (C₅₆H₈₇JN₁₀S₂O₂₀ ~Harnack~), durch Kochen mit Salzsäure wird aus Spongin das 4,86% Jod enthaltende +Spongomelanoidin+ (~Rosenfeld~) abgespalten. Daß die aus unverkäuflichen Badeschwämmen oder Abfällen der Mundierung dargestellte, bei Kropfkuren seit Langem vom Volke benutzte +Schwammkohle+, =Carbo Spongiae= (_Spongia usta_ oder _tosta_, Kropfschwamm) Jod enthält, ist längst bekannt. ~J. C. Straub~ in Hofwil (Bern) vermutete bereits 1819, daß die _Carb. Spong._ Jod enthalte und ~Dumas~ wies es 1820 einwandfrei nach (~Flückiger~). Sie enthält neben Fe, SiO₂ und Ca auch Brom (0,76 MgBr₂). Der Schwamm liefert etwa 33% Kohle. Die Schwammkohle muß bei mäßiger Temperatur, womöglich in geschlossenen Trommeln, aus gut gewaschenem, von Sand befreitem Schwamm hergestellt werden. Sie enthält nach älteren Analysen 0,99-1,09 (~Herberger~) bzw. 2,14% (~Preuss~ und ~Raggazini~) NaJ, nach ~E. Richter~ im Durchschnitt 0,67 (0,31-0,81) % Jod. Sie darf nicht mehr wie 6% in Salzsäure Unlösliches enthalten (~Richter~). Die Schwämme werden oft mit Sand beschwert. Auch das Achsenskelett der _Gorgonia_ enthält einen 7% Jod enthaltenden Körper, das Gorgonin (~Drechsel~). Die aus den Schwämmen ausgelesenen Korallen usw. wurden früher als =Lapis Spongiarum= (Kropfstein) benutzt. ~Plinius~ (9, 69 und 31, 47) kennt schon drei _Spongia_-Arten (_tragos_, _manos_ und _achilleum_) und die Handelssorten: afrikanische und rhodische und wußte, daß es Tiere sind. Er kennt (wie auch ~Galen~) die blutstillende Wirkung, besonders des in Essig getränkten Schwammes, mit dem ja auch die Blutung von Christi Wunden gestillt wurde, und nennt eine Menge Krankheiten, gegen die sie und die Schwammasche angewendet werden. Die weichsten kamen schon damals von der Küste von Lycien. Aus ähnlichen Quellen schöpft ~Dioskurides~ (V, 137), der außer dem σπόγγος auch die σπόγγων λίθοι kennt. Er erwähnt ihre Benutzung ähnlich wie Charpie. Auch ~Aristoteles~ kennt die σπόγγοι. Bei ~Ibn Baithar~, der die tierische Natur der Schwämme leugnet, finden sich die Bezeichnungen: ilfondsch elbahr, gaim, gamâm und gamlaw. =Lit=. ~Hyatt~, A revision of the North American Poriferae (wichtig für die Systematik und Classification). -- ~H. F. Moore~, The commercial sponges and the sponge fisheries. Washington 1910 und A practical method of sponge culture. Washington 1910. -- Deutsch Amer. Apoth.-Zeit. 1905 Nr. 12 -- Pharm. Centralh. 1898, 803 und 1905, 802. -- ~Mérat-Lens~, Dict. mat. méd. 6 (1834), 511. -- ~Flückiger~, Grundriß und Artikel Schwamm in ~Fehlings~ Handwörterbuch (1898). -- ~Husemann~ in Realenzyklop. d. Ph. -- Pharm. Journ. 1877, 107 und 1883, 108. -- Am. journ. ph. 1881, 182 mit Abbild. (aus Manufact. a. Builder 1881). -- ~Ledenfeld~, Pharm. Journ. 17 (1887), 937. -- ~Eckhel~, Le spugne da bagno in riguardo al modo di raccoglierhe. Triest 1873, mit Karte u. Taf. -- The sponge industry, Bull. Imper. Instit. London 5 (1907) 382 (Gesamtüberblick). -- ~Vogl~, Arzneikörper (dort und in Arch. Pharm. 53 (1874), 56 ist die Schwammfischerei beschrieben). -- ~K. Sajó~, Die Badeschwämme. Prometheus 1911, 290 (m. vielen Abbild.). -- ~Hérail~, Trait. d. pharmac. 1901. -- ~Zwiedinek v. Südenhorst~, Syrien 1873 u. Arch. d. Pharm. 1876. -- ~Hyatt~ bei ~Holmes~, Pharm. Journ. 17 (1887), 761. -- ~Herberger~ in ~Döbereiner~ Apotherb. III, 1842. -- ~Croockewit~, Jahresb. d. Chem. 1843, 24. -- ~Posselt~, Ebenda. -- ~Städeler~, Lieb. Ann. III (1859), 12., Journ. pr. Chem. 78, 169. -- ~Nadler~, Jahresb. d. Ph. 1862. -- ~Stanford~, Pharm. Journ. 15, 1884. -- ~Krukenberg~, Ber. d. chem. Ges. 1856, Ref. -- ~Zalokostas~, Compt. rend. 1888, 252. Journ, ph. 19 (1889) 104. -- ~Dumas~, Bibl. univ. d. Genève 14 (1820), 301. -- ~Hundeshagen~, Zeitschr. ang. Chem. 1895, 473. -- ~Harnack~, Zeitschr. phys. Chem. 24 (1898), 421. -- ~Rosenfeld~, Arch. f. exp. Pathol. 45 (1900). -- ~Abderhalden~ u. ~Strauss~, Zeitschr. phys. Chem. 48 (1906). -- ~Kossel~ und ~Kutscher~, Ebenda 31 (1900). -- ~Drechsel~, Zeitschr. f. Biol. 33 (1896). -- ~E. Richter~, Über Schwammkohle Apoth. Zeit. 1911, 317 (dort zahlreiche Analysen). 7. Seide. Der von zwei Drüsen der Raupe des Seidenspinners, _Bombyx Mori_ L. zur Herstellung der Cocons sezernierte und durch einen Ausführungsgang herausgequetschte +Seidenfaden+ besteht aus zwei, durch eine klebrige, von zwei andern Drüsen beim Austritt des Fadens in den Ausführungsgang abgeschiedene, +Sericin+hülle miteinander verbundenen, +Fibroin+fäden (Fig. 165). Die Hülle wird im Degummierungsprozeß gelöst und dadurch die Fäden getrennt. Das Degummieren (Entbasten, Entschälen) der Rohseide erfolgt durch neutrale Seifenlösungen, Borax, Carbonate usw. Bei «halbgekochter» Seide ist die Sericinhülle nicht ganz entfernt. Der Querschnitt des soliden Fadens ist rund oder rundlich-dreieckig oder etwas abgeplattet (Fig. 165), die Oberfläche glatt oder feingestreift; Luftkanälchen fehlen, die fibrilläre Struktur kann durch Jod-Schwefelsäure sichtbar gemacht werden. Die Dicke beträgt 8-25, meist c. 15 mik. (~Höhnel~). Die Seidenraupen sondern etwa 8-10% ihres Gewichtes an Seide ab (~Schlossberger~). Die Menge der produzierten Seide ist der Menge der verfütterten Maulbeerblätter proportional. Das Tier wird in den Cocons entweder durch Hitze oder durch Kälte (drei Wochen unter 0° bis -8° ~Loveredo~) getötet. Die Rohseide ist oft durch ein Lipochrom (~Dubois~) gelblich gefärbt, das bei der gelben Seide in der Sericinhülle sich befindet; der Fettgehalt der Rohseide beträgt 0,036-0,06%. Jodlösung färbt hellbraun bis rotbraun, ~Millons~ Reagens rot, Zucker und Schwefelsäure rosa. Kalilauge löst, ebenso alkoholische Glycerin-Kupferlösung (~Löwe~), schwer Kupferoxydammon, das Wolle ungelöst läßt. Konz. Schwefelsäure löst alle Seidenarten, nachdem sie sich zunächst unter Aufquellen verkürzt haben. Beim Kochen mit Salzsäure tritt kaum Violettfärbung ein, wohl aber rasch Lösung (die Sericinhülle löst sich nicht, ebensowenig Wolle und andere Haare). Konz. Chromsäure löst S. ebenso wie Wolle (nicht Baumwolle und Lein), Salpetersäure färbt gelb, Pikrinsäure wird gespeichert (nicht von Pflanzenfasern). Taucht man S. in eine Mischung von Bleizuckerlösung und überschüssiger Kalilauge, so färbt sie sich nicht (Wolle wird braun). S. löst sich in Chlorzinklösung bei 30-40° (Wolle nicht, ~Persoz~). Farbstoffe werden stark gespeichert. Die Fäden der sog. wilden Seiden (Yamamayseide, Tussahseide) sind dicker und deutlich gestreift. Bei allen exotischen Seiden sind Fibrillen sichtbar, die bei der echten Seide meist ganz zu einer homogenen Masse zusammengeflossen sind (~Höhnel~). Die Seidenfäden sind doppelbrechend, die Farben zwischen gekreuzten Nicols sind sehr lebhaft. Die Fibroinfäden sind zweiachsig, Sericin ist doppelbrechend (~Panebianco~). [Illustration: Fig. 165. _Seide._ a Roher Seidenfaden von _Bombyx Mori_, in der Mitte die beiden Fibroinfäden, b die Sericinhülle, c ein Doppelfaden querdurchschnitten, d einfacher Seidenfaden, e Querschnitt desselben, f Faden von Tussahseide, g Querschnitt desselben. [Aus +Hager-Fischer-Hartwich+, Pharm. Praxis.]] Seide enthält keinen Schwefel. Das Fibroin zeigt die Zusammensetzung 48,63% C, 6,08% H, 18,97% N, 26,32% O. Sericin liefert nur 0,1-0,2% Glycocoll und 5% Alanin, Fibroin 36% Glycocoll und 21% Alanin. Der Arginingehalt ist bei beiden gleich (4%), der Tyrosingehalt beim Sericin nur halb so hoch (5%). Sowohl das kollagenartige Sericin wie das Fibroin sind Eiweißkörper. Das Sericin, das dem Glutin nahe steht, geht durch Behandeln mit 1% HCl und Kochen mit Wasser als «Seidenleim» in Lösung. Das Fibroin ist ein relativ einfacher +Eiweißkörper+, der sich durch einen sehr hohen Tyrosingehalt von allen bisher bekannten Albuminoiden scharf unterscheidet (~Fischer~ und ~Skita~). Es reagiert auf ~Millons~ Reagens und zeigt auch die Biuret-Reaktion (wie das Sericin). Fibroin ist in konz. Säuren und Alkalien löslich und aus den Lösungen durch Neutralisation wieder fällbar. Der hohe Gehalt an Monoaminosäuren im Vergleich zu dem Gehalt an Basen stellt es dem Elastin zur Seite, den hohen Gehalt an Glycocoll teilt es mit dem Leim, von dem es sich aber durch seinen hohen Tyrosingehalt (10%) unterscheidet. Monoaminodikarbonsäuren fehlen ganz. Bei der Hydrolyse des Seidenleims entsteht das Serin. ~E. Abderhalden~ und ~Jul. Schmidt~ erhielten bei der Hydrolyse von Leim befreiter Cocons der Tai-Tsao-Seide 25,2% der trockenen aschefreien Substanz Glycocoll, 18,2% Alanin, 0,9% Leucin, 1,2% Serin, 2,1% Asparaginsäure, 2,0% Glutaminsäure, 1,0% Phenylalanin, 7,8% Tyrosin und 1% Prolin. Die gleichen Substanzen wurden von ~Abderhalden~ und ~Welde~ bei der Hydrolyse der Cheefoo-Seide erhalten (auch ungefähr in den gleichen Mengenverhältnissen, doch Glycocoll nur halb so viel). In der Chirurgie wird von der +Nähseide+ (Ligaturseide) sowohl die mit schwacher Seifenlösung in der Wärme ausgelaugte, dann mit 2%iger Sodalösung und endlich mit Wasser gewaschene +drellierte Seide+, sowie auch die +geflochtene Seide+ (Turners Patentseide) benutzt. Ferner: Seidewatte, Seidenabfallgewebe (Bourettestoff), Seidenraupendarm (fil de florence, Silkwormgut, Wormsilk) und Schutztaffet (silk protectiv). Zur +Sterilisierung chirurgischer Seide+ empfiehlt ~Ausin~ (1904) die Diffusionsströme, die beim Mischen von Wasser und Alkohol entstehen: Auskochen mit Wasser während 20 Minuten, dann Auskochen mit 95% Alkohol während 30 Minuten. Aus dem Alkohol wird die Seide noch warm herausgenommen und sofort zur Naht benutzt. Die Seide kann ohne Schaden sechsmal dieser Operation unterworfen werden. Über die Seiden anderer _Bombyx_arten vgl. bei ~von Höhnel~. Er gibt bereits eine Menge, aber ausnahmslos in der Chirurgie nicht verwendbare, =Seidensurrogate= (Chardonnetseide [Soie francaise], Viscoseseide, Kunstseide (~Lehner~), Vivier (soie de France) Cadoret, Siriusseide), die meist aus Cellulose, besonders dem Tetraacetat oder -nitrat dargestellt werden oder von nicht nitrierter Cellulose ausgehen (~Paulys~ Celluloseseide) oder das Viskoid (Cellulosexanthogenat) benutzen (~Stearn~). Lösungen von Cellulosenitraten in Äther-Alkohol geben, wenn sie in dünnem Strahl in Wasser einfließen einen Faden von Seidenglanz, ebenso Lösungen der Zellulose in Kupferoxydammon, wenn sie in verdünnte Säuren einfließen. Die Entzündlichkeit der nitrierten Fasern kann durch «Denitrieren» mit Schwefelammon vermindert werden. +Viskose+ ist eine Lösung von Zellulose in einem Gemisch von Alkali und Schwefelkohlenstoff. Die Viscoseseide hat einen eckigen Querschnitt (~Süvern~ und ~Mach~). Künstliche Seide wird bisweilen «animalisiert», d. h. mit einem aus den Abfällen natürlicher Seide bzw. Wolle (aus Fibroin oder Lanigeninsäure) bereiteten Firnis glänzend gemacht. Auch Gelatine ist zur Herstellung künstlicher S. benutzt worden (Vanduaraseide, nicht mehr im Handel). ~Duyk~ gibt folgende Unterschiede zwischen natürlicher, gelatinierter und Celluloseseide sowie Wolle an. Natürliche Seide, gelatinierte S. und Wolle brennen schwer und entwickeln dabei den Geruch nach verbranntem Horn. Celluloseseide brennt leicht und mit dem Geruch brennender Baumwolle, 2% Natronlauge löst Seide, Wolle und Haare beim Kochen, Celluloseseide nicht. Konzentrierte Natronlauge greift Celluloseseide stark an, beim Verdünnen mit Wasser entsteht eine Gelatine. Salpetersäure färbt alle tierischen Fasern gelb (Xanthoproteinreaktion), Celluloseseide und pflanzliche Fasern nicht. ~Millons~ Reagens färbt Seide dunkelrot, Wolle gelblich-schwarzrot, Celluloseseide nicht. Ammoniakalische Nickeloxydullösung (1 Nickelcarbonat, 6 Ammoniak, 6 Wasser) löst +nur+ Seide, weder künstliche Seide noch Wolle oder Pflanzenfasern, konzentrierte Schwefelsäure löst künstliche Seide. Jodwasser und verdünnte Schwefelsäure färbt Celluloseseide blau, Seide gelb, Kupferoxydammon löst Celluloseseide, Seide nicht. ~Herzog~ empfiehlt (Chem. Zeit. 1904) zur Unterscheidung natürlicher und künstlicher Seide Congorot, Benzoazurin und Methylenblau. (Vgl. auch bei ~Höhnel~.) Die Festigkeit beträgt nach ~Hassak~ und ~Herzog~ in Kilogramm für 1 mm Querschnitt: trocken feucht bei echter Seide 37 37 „ Chardonnetseide 12 2,2 trocken feucht bei Lehnerseide 16,9 1,5 „ Celluloseseide 19,1 3,2 trocken feucht bei Gelatineseide 6,6 0,0 „ Acetatseide 10,22 5,88 =Lit.= ~H. Silbermann~, Die Seide, ihre Gewinnung und Bearbeitung. Dresden 1897 (m. Abbild.). -- ~von Höhnel~, Mikroskopie d. techn. verwend. Faserst. 1905. -- ~Vogel~ u. ~Reischauer~, N. Rep. d. Pharm. 8 (1860): 529. -- ~E. Fischer~ und ~Skita~, Zeitschr. phys. Chem. 33 (1901) 171 und 35 (1902), 224. -- ~Oppenheimer~, Handb. d. Biochemie. -- ~Weyl~, Ber. d. d. chem. Ges. 1888. -- Die Chemie der Seide auch in ~Fehlings~ Handwörterbuch (1898). -- ~Witt~, Kunstseide, Färberzeit. 1904. -- ~Duyk~, Monogr. d. Ersatzmittel d. Seide, die künstliche S. u. ihr Nachw. in Geweben. Bull. ass. belg. Chim. 1901, 166. Schweiz. Wochenschr. 1903, 488. -- ~Berl~, Glanzstoff-Kunstseide. Kunststoffe 1 (1911) 151. -- ~Herzog~, Z. Kenntn. d. neueren Acetatseide. Chem. Zeit. 1910, 347 und Die Unterscheid. d. natürl. u. künstl. Seiden. Dresden 1910. 8. Schafwolle. Wenn vollständig, besteht das Wollhaar aus der schuppigen Epidermis, aus der faserigen Rindenschicht und der aus übereinander stehenden Zellen bestehenden Markschicht. Von diesen Schichten kann die Markschicht fehlen (feine Merinowolle), die Rindenschicht kann reduziert, die Epidermis abgerieben sein (Shoddy). Die Länge kann 20 cm erreichen, die Breite wechselt (Merino 12-37 mik, Leicester 30-90 mik). Jodjodkali färbt braun, ~Millons~ Reagens beim Erwärmen ziegelrot. Kalilauge löst, beim Verbrennen tritt Geruch nach verbranntem Horn auf. Durch Kochen mit verdünnter Schwefelsäure (oder Behandeln mit Wasser bei 150°) geht Wolle fast vollständig in Lösung. Die Lösung bildet mit sauren Teerfarbstoffen Niederschläge (Farblack), auch Gerbsäure und Kaliumbichromat fällen (~Knecht~, ~Breindl~). Der Wollfaser wird meist folgende Zusammensetzung zugeschrieben: 50,2% C, 22,84% O, 6,72% H, 16,54% N, 3,7% S. Der Wärmewert beträgt pro g 5510,2 cal. (~Stohmann~ u. ~Langbein~). ~Wanklyn~ und ~Cooper~ erhielten (1879) bei der alkalischen Oxydation der Wolle Cyanpropionsäure. ~Schützenberger~ (1878) stellt die Schafwolle zu den Albuminoiden. Er erhielt aus ihr Leucin, Tyrosin, Glycoprotein, «Leucine der Buttersäure, Valeriansäure und Propionsäure und Leuceïne der Butter- und Valeriansäure». Die Wolle enthält jedenfalls Keratine, d. h. schwefelhaltige Albuminoide. Die chemische Zusammensetzung der Wollfaser scheint ähnlich wie die des Horns und der menschlichen Haare zu sein. Sie liefert bei der Hydrolyse Aminosäuren, Leucin, Tyrosin usw. und enthält im Keratinanteile an Sauerstoff gebundenen Schwefel (~Raikow~). Natronlauge entzieht der Wolle den Schwefel. ~Prudhomme~ nimmt in der Wolle (wie im Albumin) die Gruppe --N--CₙH₂ₙ--O, | | ---------- aber keine NH₂-Gruppen an. Die Wolle fixiert sowohl saure wie basische Farbstoffe; sie zeigt gleichzeitig saure und basische Eigenschaften. Zahlreiche Theorien des Färbeprozesses von Wollgeweben sind aufgestellt worden. ~Knecht~ glaubt, daß die Aminosäuren der Wolle mit den Farbbasen Lacke bilden, der Tyrosinkomplex scheint bei dem Färben nicht beteiligt zu sein u. and. mehr. Da Schafe bisweilen in arsenhaltigen Bädern gewaschen werden, ist auch die unbearbeitete Wolle oft arsenhaltig (~Abenius~ 1900). Beim «Waschen» der Rohwolle wird das an Cholesterinestern reiche Wollfett (Analysen bei ~Kleinschmidt~, Jahresb. d. Chem. 1887, 2335 u. and.) und ein Waschwasser enthalten, das Caprinsäure, Ammoniak, Methylamin und Dimethylamin liefert (Buisine). Wolle findet namentlich in der Form von +Flanellbinden+ medizinische Anwendung, seltener als Filz und Crepon. =Lit.= Das Mikroskopische in ~Höhnel~, Mikroskop. d. techn. verwend. Faserstoffe 1905. III. Säuredrogen. Unter diesem Namen mögen alle die Drogen zusammengefaßt werden, die niedere aliphatische Säuren, besonders die sog. Pflanzensäuren, oder saure Salze derselben als charakteristische Bestandteile enthalten. Die niederen Fettsäuren der Ameisensäurereihe sind in kleinen Mengen in den verschiedensten Pflanzen als häufige und regelmäßige Stoffwechselprodukte nachgewiesen. Bakterien vermögen sie ebensowohl aus Zucker und anderen Kohlehydraten wie aus Eiweißstoffen zu bilden (das Detail in ~Czapeks~ Biochemie). Daß die aliphatischen Säuren, besonders die sog. +Pflanzensäuren+ zu den Kohlehydraten Beziehungen besitzen, kann jetzt keinem Zweifel mehr unterliegen. Wir können uns plausible Vorstellungen davon bilden, wie Zucker im Abbauprozeß in die Säuren übergehen und aus den Säuren umgekehrt Zucker synthetisch entstehen kann. Als Beispiel für den Abbau mag folgendes, von E. ~Fischer~ aufgestelltes Schema dienen: CHO COOH | | HCOH HCOH | | OHCH OHCH COOH | | | HCOH --> HCOH --> HCOH COOH | ---|--- | + | HCOH HCOH OHCH COOH | | | CH₂OH COOH COOH d-Glukose d-Zuckersäure d-Weinsäure Oxalsäure Ferner sei erwähnt, daß es gelungen ist, aus Maltose, Saccharose, Dextrose und Lävulose im Prozesse der sog. Zitronensäuregärung Zitronensäure aufzubauen (~Wehmer~, ~Buchner~, ~Wüstenfeld~, ~Herzog~ und ~Polotzky~). ~Buchner~ und ~Wüstenfeld~ denken sich den Prozeß in der Weise verlaufend, daß der Zucker zunächst in Kohlensäure und Alkohol gespalten, der Alkohol assimiliert und aus dem Plasma der gealterten Zelle unter dem Einfluß eines proteolytischen Enzyms neben Stickstoffverbindungen Zitronensäure abgespalten wird. Weniger sicher ist der Übergang von den Pflanzensäuren zu dem Zucker zu verfolgen. Wir sehen zwar, daß die unreifen Früchte reich an Pflanzensäuren sind und daß diese ganz oder fast ganz beim Reifen und Nachreifen verschwinden und an ihrer Stelle Zucker auftritt, ob aber hier (nach ~Liebig~) ein +direkter+ Übergang stattfindet wissen wir nicht. Allerdings haben Versuche von ~C. Gerber~ an reifenden Früchten zu Vorstellungen geführt, warum Apfelsäure führende Früchte in kalten Klimaten reifen können, aber nicht weinsäurereiche (wie z. B. Trauben): Nur in diesen Früchten ist ein Übergang der Säure in Zucker bei relativ niedriger Temperatur möglich. Noch schwerer wie Apfelsäure und Weinsäure wird Zitronensäure angegriffen. Erst bei c. 30° kommt sie bei Gegenwart von Zucker für die Atmung in Betracht. Zitronen werden durch Lagern (Nachreifen) nicht süß. Doch liegen die Verhältnisse hier wohl weniger einfach als sich dies ~Gerber~ denkt. Bemerkenswert ist z. B. auch, daß alle jungen Feigenfruchtstände, bevor sie süß werden, Auszüge geben, die stark nach Caprylsäure riechen, ganz ähnlich wie Cocosfett (~Tschirch~). Die niederen Fettsäuren können wir uns ebenso als direkte Assimilationsprodukte der Kohlensäure wie aus Spaltungsprodukten von Kohlehydratresten hervorgegangen denken. Oft entstammen sie dort, wo wir sie in Drogen oder Drogendestillaten antreffen, auch der Zersetzung von Estern ätherischer Öle, denn die Primäröle die wir in der Pflanze antreffen, sind oft Ameisensäure-, Essigsäure-, Buttersäure und Baldriansäure-Ester. Die aliphatischen Säuren treten also auch in die Sekrete ein und den Charakter eines Schutzsekretes besitzt z. B. die Ameisensäure auch bei den _Formicae_ (s. d.). Die höheren Fettsäuren bilden bekanntlich mit dem Glycerin Ester, die wir Fette nennen und die im Anschluß an das vorstehende Kapitel in einem besonderen Abschnitte behandelt werden sollen. Eine scharfe Methode zur quantitativen Trennung der verschiedenen, oft gleichzeitig auftretenden Pflanzensäuren existiert nicht, oft macht bereits der qualitative Nachweis der einzelnen Säuren in einem Gemisch Schwierigkeiten. Als Beispiel für eine der brauchbareren Methoden kann die folgende angeführt werden (~Berg~ und ~Gerber~). Die Säuren werden mit Bleizucker gefällt, das Blei wird mit Schwefelwasserstoff entfernt und das Filtrat mit Kalk gesättigt. Die hierbei entstehenden unlöslichen Calciumsalze (_A_) werden mit Essigsäure behandelt, welche das Calciumoxalat ungelöst läßt, während die essigsaure Lösung Weinsäure und Phosphorsäure aufgenommen haben kann. Auf erstere wird mit ~Mohlers~ Reagens geprüft, auf letztere mit Molybdänlösung. Die löslichen Calciumsalze (_B_) werden mittelst Ammoniumoxalat vom Kalk befreit, worauf das saure Filtrat auf Citronensäure und Äpfelsäure untersucht wird. Die Citronensäure wird mittels 66proz. Schwefelsäure bei 50-60° in Acetondicarbonsäure übergeführt, letztere wird ausgeäthert. Äpfelsäure kann isoliert werden durch Auskochen der getrockneten Ammoniumsalze mit 95proz. Alkohol, wobei nur Malate in Lösung gehen, während Tartrate und Citrate im Rückstande bleiben. Durch diese Methode hat man z. B. in _Mesembryanthemum_-Arten, in welchen man früher nur Oxalsäure annahm, Citronensäure, Oxalsäure, Äpfelsäure und Phosphorsäure nachweisen können (~Euler~, Pflanzenchemie). =Lit.= ~Buchner~ und ~Wüstenfeld~, Biochem. Zeitschr. 1909, 395. -- ~Herzog~ und ~Polotzky~, Zeitschr. phys. Chem. 49 (1909), 125. -- ~C. Gerber~, Ann. sc. nat. 1897. -- ~Tschirch~, Chem. u. Biolog. d. pflanzl. Sekrete. -- ~Czapek~, Biochemie. -- ~Euler~, Pflanzenchemie. I. Ameisensäuredrogen. Die Ameisensäure oder Methansäure, H.COOH, findet sich frei und gebunden in den Nadeln der Tanne (~Aschoff~), den Brennhaaren der Nessel, in den Früchten von _Tamarindus indica_ (s. d.), _Sapindus Saponaria_ (~Gorup-Besanez~), _Arctostaphyllos_, _Gingko_, _Ceratonia_ (S. 144), im Honig (S. 12), in unreifen Wacholderbeeren, Weintrauben, im Safte von _Sempervivum_ (~Döbereiner~), im Milchsafte von _Bassia latifolia_ (~Heckel~ und ~Schlagdenhauffen~), in der Prozessionsraupe, in Muskeln, Milz und Thymus des Menschen und anderwärts, aber meist nur in sehr geringen Mengen; in größerer nur in den Ameisen (Zusammenstellung bei ~Bergmann~, Bot. Zeit. 1882, 731). Formica. Die geschlechtslosen Arbeiter der gemeinen Waldameise, _Formica rufa_ L., einer durch Europa verbreiteten, in Kolonien lebenden, Nadelholzwälder bevorzugenden Hymenoptere sind ungeflügelt, 4-7 mm lang, mit braunroter Brust und daranansitzenden sechs rotbraunen Beinen versehen, und tragen in dem breit-eiförmigen, fünfgliederigen, bräunlich-schwarzen, durch einen zweigliederigen Stiel mit der Brust verbundenen Hinterleibe eine mit einer scharfen ätzenden, vorwiegend aus einer ziemlich konzentrierten Lösung von Ameisensäure bestehenden Flüssigkeit gefüllte +Giftdrüse+, deren Inhalt sie bei Angriffen weit fortzuspritzen vermögen. Die Giftdrüse findet sich bei den Weibchen und Arbeitern stets in der hinteren Region des Hinterleibes (Abdomens) ventral von der Rectalampulle, zwischen Anus und den Geschlechtsorganen. Sie ist ein ziemlich komplizierter Apparat (~Meinert~, Forel), an dem man unterscheidet: die eigentliche, das ameisensäurehaltige Gift sezernierende Drüse, das Sammelreservoir (die Giftblase), den ausführenden Abschnitt (mit oder -- bei _Formica_ -- ohne Stachel) und die accessorische oder Nebendrüse, welche ein anderes öliges Sekret bildet. Die «Giftblasen mit Polster» (Fig. 166 A) finden sich bei den Formiciden, die «Giftblasen mit Knopf» (Fig. 166 B) bei den Myrmiciden (~Forel~). Bei beiden Typen zeigt die Giftdrüse einen tubulösen Bau und besteht aus Röhren, deren Wände aus Drüsenzellen gebildet werden. Der das Polster bildende Teil, der die dorsale Decke der Giftblase darstellt, besteht aus einem (z. B. bei _Camponotus_, dessen Polster nur 2 mm lang ist) bis 20 cm langen, in unzähligen Windungen zusammengelegten Schlauche. Bei den Formiciden, denen der Stachel fehlt, ist der Ausführungskanal breit (Fig. 166 A) und mündet, frei, ohne Stachel, in die Kloake, bei den Myrmiciden ist er schmal und steht mit dem Stachel in Verbindung. Der Giftapparat ist die Hauptverteidigungswaffe der Ameisen. Die stachelfreien Formiciden beißen mit ihren Mandibeln eine Wunde und spritzen in diese das Gift oder senden, wenn sie den Feind nicht erreichen können, das Gift, durch die Bauchpresse ejakuliert (~Forel~), ihm entgegen. Stört man einen Haufen von _Formica rufa_ und _pratensis_, so ergießt sich ein meterweit reichender Sprühregen, der auf der Haut eine leichtere Entzündung hervorruft, wie die Bißwunden. Das Gift ist für die Ameise selbst schädlich und ein von anderen Drüsen sezerniertes alkalisches Sekret dient zu seiner Neutralisation (~Janet~) -- die Ameisenhaufen reagieren alkalisch. Die Analdrüsen sezernieren stark riechende Substanzen (~Forel~). [Illustration: Fig. 166. Giftapparat A von _Formica rufibarbis_ ☿; B von _Myrmica laevinodis_ ̆☿; Ausf. Ausführgang des Giftapparates, Bl. Sammelblase, Fr. freies Ende der Drüse, J. in die Blasenintima eingeschlossener Teil des Drüsenschlauches, Kn. «Knopf», M. Mündung der Drüse in das Blasenlumen, Neb. Nebendrüse, Pols. «Polster», St. Stachel, St. R. Stachelrudiment. [Aus +Escherich+, Die Ameise.]] Die Natur des Ameisengiftes ist unbekannt. Es enthält bei den Camponotinen (_Formica rufa_ und _pratensis_) jedenfalls Ameisensäure. Aber ich bin der Ansicht, daß auch hier, wie bei der Nessel, ein Enzym und nicht nur die Ameisensäure das die Entzündung erzeugende Agens ist. Auch ~Fürth~ macht nicht die Ameisensäure für die eigentliche Wirkung verantwortlich. Die Giftblasen mit Knopf enthalten ein anderes Sekret (~Forel~), das sich z. B. bei _Myrmica rubida_ mit Alkohol trübt. Die Ameisen enthalten außer der +Ameisensäure+ noch einen +Riechstoff+ (1% «+ätherisches Öl+», ~Neumann~, ~Marggraf~, ~John~), +Fett+ (~Marggraf~) und +Eiweiß+, angeblich auch Weinsäure (? ~Hermbstädt~) und Apfelsäure (? ~Pfaff~), sowie «Gallerte», so daß eine (1,25% H.COOH (D. A. V.) enthaltende) Auflösung von Ameisensäure in Spiritus, die meist jetzt als +Spir. formicae+ (Ameisengeist, Esprit de fourmis, Spirito di formica) bezeichnet wird, +nicht als gleichwertig mit einem weingeistigen Auszug oder Destillat frisch gesammelter Ameisen betrachtet werden kann+. Die Ameisen werden in der Weise gesammelt, daß man an einem heißen sonnigen Tage im Juni oder Juli eine oben mit Honig bestrichene Medizinflasche bis zur Mündung in einen Ameisenhaufen eingräbt. Die Ameisen kriechen, angelockt vom Honig, in die Flasche, aus der sie nicht wieder herauszukommen vermögen. Auch die in hohlen Bäumen vorkommende schlankere, bräunlich-schwarze _Formica nigra_ L. kann eventuell zur Ameisenspiritusbereitung herangezogen werden. Sowohl das durch Destillation der Ameisen mit Spiritus dargestellte Eau de magnanimité, sowie das Ameisenöl (huile de Fourmis) sind jetzt nur noch Volksmittel. Die Säure der Ameisen war schon Ende des XV. Jahrh. durch Röten der in den Ameisenhaufen gefallenen Cichorienblätter erkannt worden (~Pfaff~), wurde 1670 von ~Sam. Fischer~ durch Destillation der Ameisen mit Wasser dargestellt und von ~Wray~ schon in ziemlich starker Konzentration erhalten, und darauf zuerst von ~P. G. Sperling~, dann von ~Neumann~ studiert, der auch das ätherische Öl (Ol. essentiale aethereum) in den Ameisen auffand. ~Marggraf~ erkannte 1749 die Eigenart der Ameisensäure und auch ~Suersen~ stellte die besondere Natur der Ameisensäure des «eintzigen demonstrativen Acidum animale», wie ~Neumann~ sagt, fest, die ~Fourcroy~ und ~Vauquelin~ für eine Verbindung der Apfelsäure mit Essigsäure erklärt hatten. ~Pfaff~ glaubte, daß sie bei der Oxydation mit HNO₃ Essigsäure liefert (es entsteht aber hierbei Oxalsäure) und ~Dumas~, ~Peligot~ und ~Stas~ zeigten, daß sie bei Oxydation von Holzgeist entsteht. Schon ~Brunschwyg~ stellte (1500) ein Destillat aus Ameisen her, doch findet sich _Spir. Formicarum_ erst in Arzneitaxen aus der Mitte des XVII. Jahrh. (~Flückiger~). =Lit.= ~Escherich~, Die Ameise. Braunschweig 1906 (mit vielen morphol. und anat. Abbild. u. Literaturnachweisen). -- ~Fürth~, Vergl. chem. Physiol. d. nied. Tiere. Jena 1903. -- +Über die Giftdrüse+ vgl. ~Meinert~, Bidrag til de danske Myrers Naturhistor. Kjobenhavn. Kogl. Videnk. Selsk. Skrift 1860 und ~Forel~, Les fourmis de la Suisse, Denkschr. d. Schw. Naturf. Ges. 1874 und d. Giftapparat u. d. Analdrüs. d. Ameisen. Zeitschr. f. wissensch. Zoolog. 30 (Suppl.) 1878, 28 (mit vorzügl. Abbild.). -- Über den Verschluß der Giftdrüse und die Ausspritzung des Giftes vgl. ~Janet~, Etudes sur les fourmis No. 18. Paris 1898. -- ~Ch. Janet~, Les fourmis Soc. zoolog. de France 1896. -- ~Janet~, Essai sur la constitut. morph. d. l. tête de l’insecte. Paris 1899, hier und bei ~Escherich~ ein guter Längsdurchschnitt durch eine Ameise. -- ~Sperling~, Dissert. de chymica formicarum analysi. Viteb. 1689. -- ~Neumann~, Chymia medica 1753 III, 38 (dort die älteste Lit.). -- ~Geoffroy~, Mat. méd. -- ~Marggraf~, Schriften I, 340. -- ~Hermbstädt~, Chem. Vers. mit Ameisen. Phys. chem. Vers. II, 1. -- ~Fourcroy-Vauquelin~, Gehl. Allg. Journ. Chem. II, 42. -- ~Suersen~, Ebenda IV, 3. -- ~Pfaff~, System d. Mat. med. 1815, 5, 252 (dort weitere Lit.). -- ~Dumas-Peligot~, Lieb. Ann. 15, 7. -- ~Dumas-Stas~, Ebenda 35, 137. -- ~Berg-Garcke~, Pharmakogn. 1879, 613. -- ~Vogl~, Kommentar. -- ~Flückiger~ a. a. O. II. Von den weiteren Säuren ist die =Essigsäure= ebenso weit verbreitet wie Ameisensäure (Vgl. ~Bergmann~ a. a. O.) und begleitet diese oft. Als Ester findet sie sich auch in Sekreten. =Propionsäure= ist selten. Sie findet sich z. B. in den Blüten von _Achillea Millefolium_ (~Kraemer~), in den Früchten von _Gingko_ (~Béchamp~) und in _Amanita Muscarius_ (~Bornträger~). Sie tritt oft bei der Oxydation und der trockenen Destillation organischer Substanzen, als Spaltungsprodukt längerer Kohlenstoffketten auf, und findet sich daher z. B. im =Holzessig=. =n-Buttersäure= ist in den Früchten von _Sapindus_ und _Tamarindus_ (~Gorup~) und in _Tanacetum_, verestert in Sekreten, z. B. in _Pastinaca_ und _Heracleum_ gefunden worden. (Zusammenstellung in ~Husemann-Hilger~, Pflanzenstoffe.) Die Butter enthält 2% n-buttersaures Glycerin. =Isobuttersäure= findet sich in den Früchten von _Ceratonia_ (S. 144), der _Rhiz. Arnicae_ (~Siegel~) und verestert im Römisch Kamillenöl (~Köbig~). III. Baldriansäuredrogen. Die Normal-Valeriansäure ist selten, die Isovaleriansäure (Isopropylessigsäure, 3-Methylbutansäure): CH₃ \ CH.CH₂.COOH, / CH₃ dagegen sowohl in _Rhiz. valerianae_, wie in _Angelica Archangelica_ (~Meyer~, ~Zenner~), der Rinde von _Viburnum Opulus_ und im Delphintran (~Chevreul~) gefunden worden. Rhizoma Valerianae. =Syn.= Rad. valerianae minoris, montanae s. silvestris, Phu minus, Baldrianwurzel, Marien-, Magdalenen-, Mond-, Augen-, Wend-, Speik- oder Katzenwurzel, Speer-, Brach-, Hexen- oder Katzenkraut, Ballerjan, Balderbracken, Polter Johann, Tollerjahn, Dreefoot, Benediktiner-, St. Georgen- oder Gürgen-Kraut, -- in der Schweiz: dammarge, tannmark, menten, katzenbuckel, risch tamara (in Graubündten) -- valériane sauvage, souche de valériane officinale, herbe aux chats, guérit tous (franz.) -- common valerian, vandal root, all-heal (engl.) -- valeriana silvestre s. minore (ital.) -- valeriaan, faldriaan, koortswortel (= Fieberwurzel) (holl.) -- vandelrot, velamsrot, velandrot (schwed.) -- vendelród, venderód, vendingsrod (norw.) -- velandsurt, danmarks graes (dän.) -- semlänoi ladan (russ.) -- virma juuri (fin.) -- macska gy̋kőnke (ung.) -- νάρδος (griech.). -- In Indien: kálávála, jalalakan. Bei ~Plinius~ und ~Dioskurides~ und auch bei ~Ibn Baithar~ und ~Alhervi~: Fû oder Phu -- althd.: baldrian, denmarka -- mhd.: valdran, waldrian, tenemarg, abpiss, waldrion -- nd.: bolderian, bullerjahn, balderjan, ballerjaon, balderjân, valeraen. In +der Alphita+, +Circa instans+, bei ~Serapion~, in den +Tabulae+ und den +Synonomae Bartholomei+ (I, S. 640) finden sich die Bezeichnungen: Valeriana, Ualariane, Fu, Amantilla (so noch jetzt in Italien), Fistra, Vau, maturella, matrella, matura, matha. Im Mittelalter wurden die Namen Nard, Spiek, Seliank, Saliunk (bes. für Val. celtica benutzt), Theriakskraut, Katzentheriak auch auf _Val. off._ übertragen und auch die Bezeichnungen marinella, marcinella, marconella, valentina herba benedicta, s. genicularis antilla, agriomela, serpyllum majus, herba gate, dania major, ballariana, maturesia, nancilla benutzt (~Brunschwyg~). Bei der ~Hildegard~: denemarcha -- im Ortus sanitatis: boldrian, -- bei ~Brunschwyg~: denemarcha, danmarks graes. -- bei ~Bock~, ~Fuchs~: balderian, baldrian, baldrion, denmarck, Augenwurzel, Katzenkraut, Wendwurzel, bei ~Tabernaemontanus~: dania major, großes Dönnmarck. =Etym.= ~Grassmann~ deutet +Baldrian+ etwas abenteuerlich als Balder Johann(es), bringt (wie ~Perger~ und ~Günther~) die ersten Silben mit dem Gotte Balder, dem Sohn Odins und der Frigga, in Verbindung (baldrs-brâ ist aber _Anthemis Cotula_) und betrachtet die zweite als «christliches» Anhängsel (?). (Die Balders Feuertod zu Ehren brennenden Sonnwendfeuer wurden später Johannisfeuer). Ob der Ausdruck Wend- oder Wendelwurz auf die Sonnwende deutet (~Pruckmayr~), bleibe dahingestellt. Balder war der «wohlwollende» Gott. Auch die nordische Bezeichnung für Baldrian: velands urt (= Wielandswurz) deutet vielleicht auf die Heilkraft, da Wieland nicht nur der Götterschmied, sondern auch der Götterarzt war. ~Jac. Grimm~ verwirft die Ableitung des Wortes Baldrian von Balder. ~Schrader~ denkt an Verstümmelung und Umdeutung aus velandsurt. Ich habe (I, S. 1058) der mir jetzt unwahrscheinlich erscheinenden Ansicht von ~Söhns~ und ~Martin~ beigepflichtet, daß Valeriana zu Ehren des ~Plinius Valerianus~ (nicht des Kaisers ~Valerian~) benannt worden sei, eines römischen Arztes, dessen apokryphe Pflanzenbeschreibung aber wohl ein Werk der Mönche des Mittelalters ist und die sicher richtige Ansicht vertreten, +daß umgekehrt Baldrian aus Valeriana umgebildet worden sei+ (b und v wechseln häufig, das d könnte aus Gründen des Wohllautes eingeschoben sein, ~Kanngiesser~). Immerhin könnte man auch an Beziehungen von Valeriana zu valere (= gesunden, sich wohl befinden) denken (~Weigand~, ~Wittstein~). So sagt bereits ~Caspar Bauhin~: «Officinis et herbariis Valeriana dicitur a multis quibus +valet+ virtutibus». Auf die starke Heilwirkung bezieht sich ja auch die serbische Bezeichnung Odaljan (von odoljeti = überwältigen) -- böhmisch: Odolen -- und das polnische dolega (doleka = Gewalt) sowie einige französische und englische Namen (s. oben). Da der Name Valeriana, den ~Schrader~ kaum als echte romanische Bildung anerkennen will, zum ersten Male in einer lateinischen Übersetzung einer arabischen Schrift (der des ~Isaac Judaeus~) vorkommt, halte ich eine Ableitung aus dem Arabischen für möglich. ~Seybold~ pflichtet dem bei und schreibt mir (1911), daß er Valeriana als umgebildet aus (Sun)bal berr(ān)ī (sunbal berrī oder berrānī = wilde Narde) glaube ansehen zu sollen. Das erscheint auch mir plausibel. -- Daß die alte, schon bei der ~Hildegard~ auftretende Bezeichnung +denemarcha+ auf Dänemark zu beziehen ist (danmarks graes), wie ~Schrader~ meint, ist unwahrscheinlich. ~Hartwich~ denkt an tamm-mark, d. h. zahme, kultivierte Mark. Mark ist der Name für das ähnliche _Sium latifolium_ (s. Verwechslungen) und Tamme findet sich oft (Tamme morren = _Daucus Carota_, Tammschlee = _Prunus insititia_, weitere bei ~Pritzel-Jessen~) bei kultivierten Pflanzen. (In einer Frankfurter Handschrift aus dem XII. Jahrh. steht neben tenemarg: samsucus.) ~Pruckmayr~ deutet (recht abenteuerlich) -- Dennmark als Tinn-mark (= Becher-Mahr, Napf-Mahr oder Saufteufel), da Mittel gegen das Delirium (?). Der Name, in vielen Formen vorhanden (s. oben) und bis auf unsere Tage, z. B. im Berner Oberland, erhalten, gehört zweifellos zu Valeriana, obwohl in der Synonoma (I, S. 639) an einer Stelle ein Petroselinum macedonicum auch «stanmarche» genannt wird. -- Die Namen +Katzenkraut+, +Katzenwurz+ usw. deuten auf die Idiosynkrasie der Katzen für den Baldrian, die durch das Kraut und die Wurzel geradezu in Verzückung geraten, der Ausdruck +Ratzenwurzel+, daß B. auch ein Mittel gegen Ratten und Mäuse ist (+Ortus sanitatis+). =Lit.= ~Pruckmayr~, Deutsch. Pflanzennam. Valeriana. Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1880, 469. -- ~Grassmann~, Deutsche Pflanzennamen 1870. -- Söhns, Unsere Pflanzen 1897. -- ~Hartwich~, Schweiz. Wochenschr. 1896, 494. -- ~Pritzel-Jessen~, Volksnamen d. Pflanz. -- ~Perger~, Deutsche Pflanzensagen 1864. -- ~Kanngiesser~, Etymol. d. Phanerog. Pflanzennomenklatur. -- ~Jac. Grimm~, Deutsche Mythologie. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Schrader~, Reallexikon. =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Valeriana officinalis= L. Flor. suec. 34. Spec. plant. ed. I, 31. -- Valerianaceae (Sect. Euvaleriana). Die Gattung Valeriana hat etwa 100 Arten. Ändert nach der Länge der Ausläufer und den Blättern ab: _V. angustifol._ ~Tausch~ (= var. β _minor_ ~Koch~) in Japan: kesso oder kanokosô, in trockenen Wäldern und auf Hügeln, schmälere, oft ganzrandige Fiedern, stärker behaart, kleinere, gedrängte Blütenstände; Var. α _major_ mit starkem Stengel und tief gezähnten Fiedern; _V. exaltata_ ~Mikan~, keine Ausläufer; Blättchen breit, ei-lanzettlich, wird bis 2 m hoch; _V. excelsa_ (_V. sambucifolia_ ~Mik.~) in Frankreich, lange Ausläufer, wenig (4-5)jochige Blätter, die unteren Blätter grob gesägt. _V. Mykani_ ~Syme~ mit breiten grobgezähnten Fiedern (in England) (Taf. XII); _V. latifolia_ (in Japan), _V. Dioskuridis_ (im Orient), _V. capensis_, _V. dubia_, _V. javanica_ usw., die bald als Varietäten, bald als Arten betrachtet und dann als Ser. 3 _V. offic._ mit 12-14 Arten zusammengefaßt werden (~Höck~). Es sind mindestens 10, zum Teil auch habituell recht gut charakterisierte und daher als Arten beschriebene Varietäten unterschieden worden. Die Variabilität ist sehr groß (~Irmisch~). ~Dufresne~ unterscheidet vier deutsche Varietäten: _V. excelsa_, _V. latifolia_ (s. _media_), _V. tenuifolia_ (von der er die Formen _V. officinalis_ und _pratensis_ unterscheidet) und _V. lucida_. Früher wurde nach den Standorten der Bergbaldrian (_silvestris_) vom Sumpfbaldrian (_palustris_) unterschieden. Bei der Ser. _V. officinalis_ zeigen fast alle Arten eine so nahe Beziehung zu der Spezies, nach welcher diese Gruppe benannt ist, daß Höck eine direkte Abstammung von dieser Art annehmen möchte. ~Höck~ stellt zur Ser. (3) _V. officinalis_: _V. petrophila_ (Südwestkleinasien und Armenien), _V. ficariaefolia_ (Persien), _V. heterophylla_ (Sibirien), _V. Stracheyi_ (Himalaya), _V. sambucifolia_ (Skandinavien, England, Pyrenäen, Schlesien, Karpathen, Rußland, Serbien), _V. officinalis_, _V. capensis_ (Kapland), _V. sisymbrifolia_ (Persien, Kleinasien), _V. Dioscoridis_ (Kleinasien, Griechenland), _V. Arnottiana_ (Khasiaberge), _V. Hardwickii_ (Himalaya), _V. javanica_ (Java), _V. Hookeriana_ (Himalaya), _V. Moonii_ (Ceylon), _V. Jaeschkei_ (Himalaya). [Illustration: Tafel XII. Kultur von Englischem Baldrian in Long Melford Medicinal Herb Farms. (Stafford Allen and Sons Ltd., Manufacturers of Pharmaceutical products Long Melford, Suffolk phot.)] =Beschreibung der Stammpflanze.= _V. offic._ ist ein ausdauerndes Kraut, das sich durch Ausläufer erneuert. Aus dem 2-3 cm dicken basalen Teile des Stengels, der den Charakter eines rhizomartigen Speichersprosses besitzt (Zentralwurzelstock) entspringen 5-15 cm lange und 2-3 mm dicke, mit 2-3 schuppenförmigen Niederblättern besetzte Wandersprosse (Nebenwurzelstöcke), die an der Spitze speichersproßartig anschwellen und aus deren Knospe ein neuer Stengel sich entwickelt, der aber erst im folgenden Jahre zur Blüte kommt. Der angeschwollene Teil des Nebenwurzelstockes wird später zum Zentralwurzelstock und entsendet dann wieder Wandersprosse. Zuweilen unterbleibt die Bildung von Wandersprossen und die neuen Achsen «entstehen unmittelbar in der Achse der Grundblätter des Mutterstockes». Die Bewurzelung erfolgt an den Speichersprossen. Der bis 1,2 m und darüber hohe Stengel ist aufrecht, stielrund, gefurcht, hohl, kahl, an den Blattansätzen zottig. Die Blätter bilden dekussierte, mit der stengelumfassenden Scheide paarweis miteinander verschmolzene Blattpaare, sie sind unpaarig gefiedert, 5-16jochig, die grundständigen langgestielt, die oberen sitzend, kahl, an den Scheidenrändern zottig, Fiederblättchen gegenständig oder abwechselnd, lanzettlich spitz, mehr oder weniger an der Spindel herablaufend, gesägt oder fast ganzrandig, das oberste Paar mit dem Endblättchen verschmolzen. Es gibt breit- und schmalblätterige Formen (s. oben S. 512). Die endständigen oder in den Achseln der Blätter entspringenden trugdoldigen, meist vielblütigen +Infloreszenzen+ bilden eine dekussierte Rispe, deren oberste Äste zu Dichasien werden, die in Wickel auslaufen. Die hermaphroditen, c. 4-5 mm langen, weißen oder fleischroten, von zwei Vorblättern behüllten +Blüten+ besitzen einen unterständigen, glatten, bis 2 mm langen, oblongen, einfächerigen +Fruchtknoten+ mit einem hängenden anatropen Ovulum, einen aus zehn pappusartigen, linealen, zur Blütezeit eingerollten Blättchen bestehenden +Kelch+, eine 3-4 mm lange, zygomorphe, ungleich-fünflappige, trichterförmige +Corolle+, die am Grunde mit einem kurz-spornartigen Nectarium versehen ist, drei der Corolle inserierte +Stamina+ (das obere und linke untere sind abortiert) und einen Griffel mit drei spreizenden Narben. Bei dem sog. männlichen Zustande der Blüte ragen die Stamina weit aus der Blüte hervor, beim sog. weiblichen sind sie zurückgekrümmt und der Griffel überragt die Blumenkrone. Die Gattung _Valeriana_ zeigt deutlichen Übergang von Proterandrie zur Diclinie. Die c. 5 mm lange, einsamige Frucht ist eine Achaene, sie ist von dem großen fiederhaarigen, als Flugapparat dienenden Pappus gekrönt und besitzt einen Rücken-, zwei Seiten- und drei Bauchnerven. Der Same ist endospermfrei. Der Baldrian ist vom arktischen Rußland an durch fast ganz Europa verbreitet, nur im Süden ist er spärlicher und fehlt in Portugal, Süd-Spanien, Südost-Frankreich. Er findet sich ferner in der Krim, Kleinasien (die Form _V. Dioskoridis_ ~Sibth.~ von Vorderasien bis zur Balkanhalbinsel), in Kaukasien und Türkisch-Armenien, Nord-Kaschmir, Süd-Sibirien, Mandschurei, Japan (hier besonders die var. _angustifol._) In Indien findet sich die Form _V. dubia_ ~Bunge~, in Java die Form _V. javanica_ ~Bl.~ (in den Gebirgen des Monsungebietes etwa sechs Formen oder Arten). Eingeführt ist er in Südafrika (_V. Capensis_ ~Thbg.~ ist = _V. offic._ var.) und Nordamerika, z. B. in New-York, New-Jersey (var. _silvatica_?). Die Pflanze findet sich auf feuchten Wiesen, an Gräben, Bächen, Flußufern, Waldrändern, sowohl in den Niederungen wie den Bergregionen. Die Bergformen pflegen aromatischer zu sein als die Sumpfformen. Blüht in Deutschland im Juni und Juli (bis August). =Lit.= ~Fernando Höck~, Beitr. z. Morphol., Gruppier. u. geograph. Verbreit. d. Valerianaceen. Englers Bot. Jahrb. 3 (1882) 1 (hier die Lit.). -- ~Eichler~, Blütendiagramme. -- Entwicklungsgesch. d. Blüte in ~Winnicki~, Diss. Bern 1908. -- ~Luerssen~, Med. pharm. Bot. (dort die system. Lit. der Familie). -- ~Henkel~, U. S. Dep. Agric. 1906. -- ~Timbal-Lagrave~, Jahresb. Pharm. 1867, 50. -- ~Irmisch~, Beitr. z. Naturgesch. d. einheim. Valeriana-Arten, insbes. V. offic. u. dioica. Abh. Naturf. Ges. Halle 1853 mit 4 Taf. (Morphol. auch d. Rhizome). -- ~Chatin~ (s. unter Anat.). -- ~Tchihatcheff~, Asie mineure 1856. -- ~Regel~, Tent. flor. ussuriens. Mem. Ac. St. Petersb. 1862. -- ~Herder~, Bull. Soc. imp. Nat. Moscou 1864, I, 229. -- ~Beeby~, Journ. Bot. 1888. -- +Abbild.+: ~Hayne~, Arzneigew. III, 32. -- ~Nees von Esenbeck~, t. 254. -- ~Berg-Schmidt~, Atlas, II. Aufl. t. 10. -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. I, t. 47. -- ~Bentley-Trimen~, Medic. pl. t. 146. -- ~Syme~, Bot. t. 666 und in zahlreichen Floren usw. Schon in ~Dodonaeus~, Purgant., eine gute Abbild. d. Ausläufer. Die Abbild. bei ~Guibourt~ ist V. sambucifolia (~Timbal-Lagrave~). =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge teilt Prof. ~E. Fischer~ folgendes mit: Auf den oberirdischen Teilen von _Valeriana officinalis_ sind verschiedene parasitische Pilze beobachtet, unter denen wir besonders _Erysiphe Cichoracearum_ (~Dc.~) und _Uromyces Valerianae_ (~Schum.~) ~Wint.~ erwähnen; doch dürften dieselben, wenn sie sich nicht sehr intensiv entwickeln, die Entwicklung der Rhizome kaum beeinträchtigen. ~Israël~ berichtet über die tierischen Schädlinge: +Falter+: _Melitaea dictynna_ ~Esp.~ Raupe an _Plantago_arten, _Melampyrum pratense_, _Valeriana officinalis_, _Valerianella olitoria_ usw. _Gortyna flavago_ ~Hb.~ Raupe in den Stengeln vieler markhaltiger Pflanzen, z. B. _Senecio_, _Valeriana_, _Petasites_, _Lappa_, _Verbascum_, _Sambucus_. _Caradrina quadrimaculata_ F. Raupe an _Stellaria_, _Alsine_, _Valeriana_, _Fumaria_ usw. _Eupithecia valerianata_ ~Hb.~ Räupchen an Blüten und Früchten von Baldriangewächsen. Sonst leben die meist sehr kleinen Raupen der Eupithecien meist in den Dolden der Umbelliferen, Blüten und Früchte verzehrend. _Schistodepressaria pulcherimella_ ~Stt.~ Das Räupchen dieser Gelechidee rollt die Blätter von Umbelliferen und Baldrian zusammen. +Gradflügler+: _Thrips_ (spec?). Auf Baldrianblüten und anderen Gewächsen (_Helleborus_, _Eupatorium_) trifft man oft ein und dieselbe kleine Physapode. =Kultur und Erntebereitung.= Baldrian wird in +Deutschland+ in Sachsen (Bockau, Lauter, Zschorlau), Franken (Schweinfurt), Harz (+Pansfelde+, Aschersleben, +Ermsleben+, Ballenstedt), Thüringen (+Cölleda+, +Heldrungen+, +Ringleben+, Neuhausen, Gebesee) [-- weitere Orte I, S. 64 --], in +Holland+, +Frankreich+ (Houdan), +Belgien+ (Hennegau, I, S. 69), Ungarn (I, S. 68), +Schweden+ (seit 1761) und in +England+ (z. B. bei Chesterfield in Derbyshire) gebaut. ~Hanbury~ nennt 1872 die Orte: Ashover, Wolley Moor, Morton, Stretton, Higham, Shirland, Pilsley, North und South Wingfield, Brackenfield, gegenwärtig sind die Kulturen beschränkter und finden sich namentlich bei letzterem Orte am River Amber (~N. Smith~) und in den Long Melfort Medicinal Herb Farms in Suffolk (Taf. XII). Baldrian wird auch in den Vereinigten Staaten (New York, New Hampshire, Vermont) und in Japan kultiviert. Versuchskulturen befanden sich 1904 in Washington. Die Fortpflanzung wird durch die Schößlinge (nicht durch Samen) besorgt. Von der +wildwachsenden Pflanze+ wird die Baldrianwurzel besonders in +Gebirgsgegenden+ [+Thüringen+, +Harz+, +Ardennen+, +Vogesen+ (Dep. Vosges und Ardennes), Schweiz, Österreich] gesammelt, da die Pflanze auf trockenem, steinigem Boden ölreicher ist. Doch ist im deutschen Großdrogenhandel zurzeit vorwiegend kultivierter Baldrian. 1910 unterschied der deutsche Handel: +Harzer+, +Thüringische+, +Belgische+ und +Holländische+ _Rhiz. valerian._ Die mit vielen Nebenwurzeln besetzte, mehr gelbliche _Rad. Valerianae montanae Hercynica_, besonders die kleinzöpfige, echte Gebirgsware von der wilden Pflanze, wird meist der _Rad. valer. min. Thuringica cultivata_, und selbst der nachgekämmten und der großzöpfigen kultivierten Harzer V. vorgezogen (~Caesar-Loretz~ 1910). Am geringsten bewertet wird die _R. val. minor. citrina_ aus Belgien und Frankreich. Der eigenartige Geruch tritt erst beim Trocknen stärker hervor, frische Wurzel riecht wenig und anders als die Droge (s. unten S. 520). Es unterliegt keinem Zweifel, daß gerade beim Baldrian während des Trocknens auch bei gewöhnlicher Temperatur, besonders aber bei etwas höherer, in den absterbenden Zellen, solange noch Wasser vorhanden ist, tiefgreifende Veränderungen durch die Enzyme hervorgerufen werden. ~Choay~ hat daher vorgeschlagen, bei 0° im Vakuum zu trocknen. Das ist nicht nötig, wenn das Enzym (wie ~Bourquelot~ vorschlägt) durch Erhitzen der frischen Pflanze abgetötet wird (s. hinten). Die +getrocknete+ Droge verändert sich weiter nicht, wenn sie trocken aufbewahrt wird. Die Kultur erfolgt in England in der Weise, daß man die Tochterknollen wilder _Valeriana_ -- man benutzt besonders _Valer. Mikani_ ~Syme~ (s. oben S. 512) -- als Stecklinge benutzt. Die Blütenanlagen der sich entwickelnden Pflanzen werden abgeschnitten. Man läßt nur die tieferliegenden Blätter stehen. Im September bis Oktober wird die ganze Pflanze ausgegraben, Stengel und Blätter beseitigt, die dickeren Rhizome längs durchschnitten, und alle in mit Löchern versehenen Kästen in fließendem Wasser gewaschen. Das Trocknen erfolgt auf Brettern in der Wärme im November und Dezember. Trockenheit schädigt die Kulturen. Es entwickeln sich dann nur wenige Blätter. In Cölleda werden die vom Zentralknollen losgetrennten Ausläufer gepflanzt (bisweilen in Mischkultur mit Rüben). Nach einem Jahr wird das Rhizom samt den Wurzeln gegraben, gewaschen und meist mit eisernen Kämmen von den feinen Nebenwurzeln befreit («gekämmte» Wurzel) und entweder auf kurzgeschnittenen Wiesen oder, auf Fäden aufgereiht, an der Hauswand getrocknet (~A. Meyer~ 1891). Die Drogenhäuser kämmen dann noch nach (~Caesar-Loretz~). Die Wurzeln werden bisweilen zu Zöpfen geflochten (wie bei _Angelica_). In +Pansfelde+ a. Harz werden die Ausläufer der wilden Pflanze zum Anbau benutzt. In Deutschland wird im Herbst (September, Oktober) nach der Blütezeit gegraben, da die Droge dann ölreicher ist als im Frühjahr (~Zeller~). ~Saladin von Ascoli~ bezeichnet (im Compendium aromatariorum 1488) den August als den günstigsten Monat und auch die alten Kräuterbücher nennen als Sammelzeit «zwischen zwei Unser Lieben Frauen Tagen», d. h. 15. August bis 15. September. Die wendische Volkssitte schreibt den Tag vor Johannis vor (~Beckenstedt~). -- Im Frühjahr zu sammeln (wie ~Pfaff~ und noch Ph. austr. VIII vorschlägt) empfiehlt sich +nicht+, da dann Verwechslungen mit am gleichen Standort vorkommenden Pflanzen leicht möglich sind. Es darf die Droge sowohl von der kultivierten wie der wildwachsenden Pflanze gesammelt werden (D. A. V und Ph. helv. IV treffen keine besonderen Bestimmungen). 9-10 Teile frische geben 2-3 Teile trockene Droge. Die Wurzel wird durch das Trocknen dunkler. Das Nachtrocknen erfolgt am besten in der Kalk-Kiste. Die Jahresproduktion von Harzer Baldrian beträgt 200-400 cwts. (In erster Linie kommt +Pansfelde+ hier in Betracht, ~Caesar-Loretz~). Eine gute Thüringer Mittelernte beträgt 800 bis 900 cwts (~Gehe~). Die Vollernte 1000-2000 cwts (~Caesar-Loretz~). Nach Hamburg kamen belgischer Baldrian 1905: 24500, 1908: 35500 kg, und holländischer B. 1908: 6100 kg (~Tunmann~). Frankreich verwendet besonders deutschen B. (~L. Planchon~). In Japan wird _Valeriana_ var. _angustifol_. ~Miq.~ (nach ~Holmes~ dagegen: _V. latifolia_) kultiviert. Hamburg empfing 1908: 3700 kg japan. B. (~Tunmann~). Baldrian ist in Blechbüchsen aufzubewahren und schon beim Trocknen auf dem Trockenboden gegen Katzen zu schützen (s. oben S. 512). Der Ortus Sanitatis (I, S. 688) sagt bereits: «Die katzen ryben sich an diß krut und werffen darvider ihren samen, und darumb sol diß krut vervaret werden vor den katzen, da es zu artzney gebrucht sal werden.» Baldrian hat auch für Ratten und -- Forellen Anziehungskraft. =Lit.= ~Upsher Smith~, Cultivat. of valerian rhizome in Derbyshire. Year book ph. 1904, 557. -- ~Schwabe~, Medizinkräuterbau in Thüringen. Pharm. Zeit. 1876 (Handelsbl.) -- ~Gehe~, Handelsber. 1885 u. flgd. -- ~Tunmann~, Drogenhandel Hamburgs. Apoth. Zeit. 1910. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Hovorka-Kronfeld~, Volksmedizin. -- ~Bourquelot~ und ~Hérissey~ haben (Journ. pharm. 1911) einen Apparat konstruiert, frische Pflanzen mit siedendem Alkohol zu sterilisieren. [Illustration: Fig. 167. _Valeriana officinalis_ L. 1. Centralknollen (I) mit den Nebenknollen (II) durch Ausläufer (ws) verbunden. 2. Querschnitt durch den Centralknollen. 3. Querschnitt durch einen Nebenknollen. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] [Illustration: Fig. 168. _Valeriana officinalis._ Längsschnitt durch einen Nebenknollen, unten der Rest des Ausläufers (Wandersprosses). [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Morphologie der Droge.= Die unterirdischen Organe des Baldrian werden bald als Rhizoma (Ph. helv. IV), bald als Radix (D. A. B. V) bezeichnet. Die richtigste Bezeichnung wäre «Rhizoma cum radicibus», denn die Droge besteht aus dem mit Wurzeln (und Ausläufern) besetzten Rhizome oder «Knollstock» (~Berg~), der oben noch meist durch Stengel- und Blattreste beschopft ist. «Das Rhizom zerfällt in eine dünne ausläuferartige +Wandersproßregion+ und in eine diese oben abschließende knollige +Speichersproßregion+. Die erstere vermittelt die Verbreitung des Rhizoms im Boden. Im typischen Falle figuriert ein Speichersproß, dessen zugehörige basale Wandersproßregion abgestorben ist als +Zentralknollen+ oder Zentralwurzelstock (Fig. 167). Wie die Keimungsgeschichte lehrt, geht der Zentralknollen aus dem Hypocotyl hervor (~Tschirch~ und ~Dye~). Derselbe entsendet nach verschiedenen Seiten Ausläufer und diese Wandersprosse verdicken sich alsdann an ihrer Spitze knollenartig, auf diese Weise +Nebenknollen+ oder Nebenwurzelstöcke bildend, die alsdann ihrerseits wieder Ausläufer entsenden» (~Tschirch~). Die Speichersprosse sind reich bewurzelt. Die Wandersprosse tragen bisweilen an den Knoten einige Wurzeln. Die Droge enthält also sowohl dicke Zentral- wie dünnere Nebenwurzelstöcke. Beide stehen vertikal im Boden und sind im Innern gekammert (Fig. 168). Die Kammern entsprechen den Internodien. Die Zentralknollen sind oft mehrere Zentimeter dick, außen durch die Blattreste geringelt, oben mit dem Knospenrest, unten mit der Wandersproßnarbe versehen, die Nebenknollen sind dünner und tragen an der Spitze mehr oder weniger lange Blatt- und Stengelreste, unten gehen sie in die Wandersproßregion über, die wie ein echter Ausläufer, überall gleich dick und an den Knoten mit Niederblättern und Wurzeln besetzt ist. Die mit zahlreichen feinen Nebenwurzeln besetzten Wurzeln werden bis 30 cm lang und sind meist etwa 2-3 mm dick, frisch -- wie die Wurzelstöcke -- hell, nach dem Trocknen +graubraun+, außen etwas geschrumpft und sehr brüchig, die einen (Ernährungswurzeln, ~Tschirch~) nach dem Aufweichen weich und biegsam, die anderen (Befestigungswurzeln, ~Tschirch~) starr und fest. Der Baldrian zeigt also +Heterorhizie+ (hier 1905 von mir zuerst nachgewiesen). Die kräftiger riechenden kleineren Wurzelstöcke der Gebirgsdroge wurden früher als _Rad. valerian. montana s. anglica_ unterschieden. Die kultivierte Droge pflegt reicher bewurzelt zu sein als die wilde. Baldrian schmeckt eigenartig süßlich-gewürzhaft und bitterlich. =Anatomie.= Das +Lupenbild+ des Rhizomquerschnittes ist unregelmäßig im Umriß (Fig. 167, 2 u. 3), das Cambium erscheint als dunkle, unregelmäßige Linie, vom unregelmäßigen Gefäßbündelring treten Bündel in die Wurzeln. Die meisten Wurzeln (s. unten) besitzen einen sehr schmalen runden Zentralzylinder, der im Querschnitt kleiner ist als die oft 3-4mal dickere Rinde (Fig. 169, 1). [Illustration: Fig. 169. _Valeriana officinalis._ 1. Querschnitt durch eine Ernährungswurzel. 2. Querschnitt durch eine Befestigungswurzel von etwa gleichem Durchmesser, c. 2,5 mm. [+Neuber+ phot.]] Die +Speichersproßregion+ (Zentral- und Nebenknollen) trägt außen Kork, dann folgt eine Stärke (Körner bis 8 mik., ~Hartwich~) führende dünnwandige Rinde, deren Zellen bisweilen Tüpfelung zeigen, und endlich die verkorkte Endodermis, die von unverkorkten Zellen unterbrochen und bei älteren Knollen bisweilen durch +Sklereïden+ verstärkt ist. Innerhalb derselben liegt der Gefäßbündelzylinder, der bei den Nebenknollen aus einem, bei den Hauptknollen oft aus zwei Kreisen von kollateralen Bündeln besteht, die bei letzteren im Gefäßteil oft Libriform, sonst nur unregelmäßig radial angeordnete Spiral- und Tüpfelgefäße und Holzparenchym führen. Zwischen dem Siebteil und der Endodermis liegt oft ein breiter Collenchymbeleg. Von dem Gefäßbündelzylinder treten viele Bündel in die Ausläufer und Wurzeln. Seine Elemente werden dadurch und durch eine Stauchung des ganzen Organs verbogen, im Längsverlauf unregelmäßig. Das ebenfalls Stärke führende parenchymatische Mark ist in ziemlich regelmäßigen Abständen geschwunden, so daß Kammern entstehen (Fig. 168). In den stehenbleibenden Diaphragmen (Marklamellen) finden sich reichlich sehr stark verdickte Sklereïden. Die Diaphragmen entsprechen den Knoten, die Kammern den Internodien. Die ausläuferartige, im Querschnitt kreisrunde, nur wenige Millimeter dicke +Wandersproßregion+ zeigt einen ähnlichen Bau, nur ist das Mark viel schmäler und nicht geschwunden, die Internodien sind länger, aber an den Knoten liegen auch hier Sklereïden führende Querbrücken. Der Gefäßbündelkreis ist durch interfaszikulares Libriform geschlossen. Der Gefäßteil führt Spiral- und Tüpfelgefäße. Die Hypodermis führt das Öl. [Illustration: Fig. 170. _Valeriana officinalis._ Querschnitt durch eine pentarche Ernährungswurzel, bei der eben der primäre Bau in den sekundären übergeht. [Nach +Bonnet+.]] Die +Wurzeln+ zeigen stets noch die primäre Rinde, die hier nicht (wie sonst gewöhnlich) abgeworfen wird, lassen also da und dort noch auf der Epidermis Wurzelhaare erkennen. Der Zentralzylinder ist von der stärkefreien Endodermis umgeben. Aus der primären Bündelanlage, die meist triarch ist, aber di- bis octarch sein kann, entwickeln sich zwei ganz verschiedene Wurzeltypen: +Ernährungswurzeln+ (Fig. 169, 1) mit großem, Stärke führendem Mark, kleinen wenig gliederigen, in einen Kreis gestellten, keine mechanischen Elemente führenden Gefäßteilen und +Befestigungswurzeln+ (Fig. 169, 2) mit großem, strahlig gebautem, reichlich Libriform führendem Holzzylinder und kleinem Mark (~Tschirch~ und ~Neuber~). Bei den +Ernährungswurzeln+ unterbleibt die Bildung sekundären Gefäßteiles entweder ganz oder es entstehen nur wenige Elemente zwischen den primären Anlagen. Alsdann ist der Übergang des primären Baues des Bündels in den sekundären meist noch schön zu sehen (Fig. 170). Die primäre Rinde folgt dem Dickenwachstum des Zentralzylinders. Ihre Zellen sind relativ dickwandig und erfüllt mit einfachen, rundlichen oder zu 2-6 zusammengesetzten bis 30 mik. großen Stärkekörnern. Bei Alkoholmaterial sieht man da und dort Sphaerokristalle. Das unter der verkorkenden Epidermis liegende, ebenfalls verkorkte, einreihige Hypoderm, das die Wurzel also mantelartig umgibt, enthält [neben bisweilen beobachteten prismatischen Kristallen von Kampher (?), ~Vogl~] das +ätherische Öl+, das durch Schwefelsäure zuerst kirschrot, dann violett und blau wird (~Zacharias~). Löst man Epidermis und Hypoderm von der Wurzel ab, so ist der Rest geschmacklos (~A. Meyer~). Das Öl kommt also nur im Hypoderm vor, nicht in Interzellularlücken der Rinde (~Schleiden~). ~Zacharias~ sah bei den Ölzellen außer der Suberinlamelle eine verholzte und eine Zellulosehaut. Bisweilen ist eine resinogene Schicht, die aus einer Schleimmembran hervorgeht, zu sehen (~Tschirch~). Bei längere Zeit in Glycerin liegenden Schnitten beobachtet man überall in Rinde und Mark kleine spießige Kristalle. Erwärmt man den in Wasser liegenden Schnitt und läßt erkalten, so entstehen größere büschelförmige Kristalle. [Illustration: Fig. 171. _Valeriana officinalis._ Randpartie einer Wurzel, stärker vergrößert. oez die Öl führende Hypodermis. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Das =Pulver= enthält sowohl die Elemente der Wurzeln wie die der Rhizome, führt daher sowohl Sclereïden wie dünn- und dickwandiges, stärkeführendes Parenchym und dessen Fragmente, Stärkekörner von 3-15 (8-12 ~Koch~), selten 18 oder 20-30 mik Durchmesser, schmale Ring-, Spiral- und weitere Tüpfelgefäßfragmente (Breite der Gefäße 8-60, die Tüpfelgefäße meist 30-40 mik ~Koch~) und Libriform mit linksschiefen Spaltentüpfeln. Die Fetzen der Wurzelhaar tragenden Epidermis und der gestreckten Hypodermzellen treten besonders bei Behandlung mit konz. Schwefelsäure hervor. (Verkorkt sind: Endodermis, Hypodermis, Epidermis, Kork). Die mit Stärke gefüllten Parenchymzellen lassen nach Behandlung mit Chloral ein zartes Plasmanetz erkennen. Oxalatkristalle fehlen, dagegen findet man oft Sandkörner und bisweilen Elemente der Stengel und Blattstiele. =Lit.= ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas (dort das Detail). -- ~Tschirch~, Heterorhizie bei d. Dikotylen. Flora 1905. Die Einwände von ~Flaskämper~ (Flora 1910) gegen die Heterorhizie sind unberechtigt. Die Befestigungswurzeln sind +nicht+ Alterszustände der Ernährungswurzeln. -- ~A. Meyer~, Wissensch. Drogenkunde I, 215 (m. Abbild.) u. ~Dammers~ Lexik. d. Verfälsch. 1887. -- ~Vogl~, Kommentar 1908. -- ~Berg~, Anatom. Atlas t. 16. -- ~Hérail-Bonnet~, Manupilat. pl. II. -- ~Godfrin-Noël~, Atlas man. de l’hist. d. drog. 1887, t. 19 u. 26. -- Mikrophotographien in ~Braemer-Suis~, Atlas de photomicrographie 17 u. 18. -- ~Karsten-Oltmanns~, Pharmak. Fig. 84-87. -- ~Hartwich~ in Hagers Pharm. Praxis. -- ~Irmisch~ a. a. O. -- ~Hoeck~, Beitr. z. Morph. d. Valerianac. Englers Bot. Jahrb. 1882 und a. a. O. -- ~Chatin~, Etudes bot. chim. et méd. sur les Valérianées. Paris 1872 (m. 14 Taf.) (hier auch die Rhizome der übrigen _Valeriana_arten). -- ~Holfert~ (prim. Bau) Arch. Ph. 1889. -- ~Neuber~, Vgl. Anat. d. Wurz. usw. Dissert. Bern 1904. -- ~Zacharias~, Sekretbeh. m. verkorkt. Membr. Bot. Zeit. 1879, 617. -- ~Maisch~ (Mexic. Val.) Am. journ. ph. 1886, 168. -- Die Keimung und Entwicklungsgeschichte der unterirdischen Organe ist beschrieben in ~C. A. Dye~, Entwicklungsgesch. Unters. d. unterird. Org. von _Valeriana_ usw. Dissert. Bern 1901 (mit zahlr. Abbild.). -- Das Pulver: ~Koch~, Atlas II, t. 24. -- ~Moeller~, Atlas t. 107. -- ~Greenish-Collin~, Veget. Powders pl. 119. =Chemie.= Baldrianwurzel enthält (nach ~Lindenberg~ 1886) in Prozenten: 11,57 +Wasser+, 0,36 +Fett+, 0,9 +äther. Öl+, 0,31 +flüchtige Säure+ löslich in Äther, 0,85 +Harz+ und +Wachs+, 0,975 +Harz+ löslich in Alkohol, 1,64 +Gerbstoff+, 0,565 +Citronen-+ und +Weinsäure+, 5,32 +Zucker+, 14,39 andere Substanzen löslich in Wasser, 7,83 +Eiweißsubstanzen+, 16,7 Metarabin, Phlobaphene usw., 12,87 +Stärke+, 11,65 +Zellulose+, 16,8 Lignin u. and., 4,31 +Asche+. Die von ~Pentz~ (1829) und ~Grote~ (1831) im Baldrian aufgefundene, von ~Trommsdorff~ als besondere Säure erkannte, studierte und benannte +Baldriansäure+ (Valeriansäure, s. oben S. 510), die ~Pentz~ fälschlich für Essigsäure hielt, findet sich in der Droge zu 0,25-1,4% (in frischer Wurzel 0,6%, ~Schoonbrodt~), teils frei, teils als Kaliumsalz und Borneolester (im Öl, s. unten), begleitet von +Apfelsäure+ (~Trommsdorff~, ~Schoonbrodt~) und Magnesium, Calcium- und Kaliummalat, sowie von +Buttersäure+, +Ameisensäure+ (als Calciumformiat), +Essigsäure+ (~Aschoff~) und Methyläthylessigsäure (~Shimoyama~ und ~Hyrano~). Vollständig kann man die Baldriansäure aus der Wurzel, besonders solcher, die ziemlich frisch ist, nur dann erhalten, wenn man zunächst die Ester (s. unten) mit einer Säure oder Alkali verseift und dann erst mit einer Säure (am besten Phosphorsäure) destilliert. ~Katz~ gründet die Wertbestimmung der Tinctur. valer. auf die Titration der durch Destillation mit Phosphorsäure (nach vorherigem Eindampfen mit Soda) übergetriebenen Baldriansäure. Die aus der Wurzel gewonnene Säure ist das Hydrat C₅H₁₀O₂.H₂O. Sie besteht fast ganz aus optisch inaktiver Isovaleriansäure: (CH₃)₂CH.CH₂.COOH, der kleine Mengen rechtsdrehender Methyl-Äthyl-Essigsäure: CH₃CH₂ \ CH.COOH, / CH₃ Ameisensäure, Essigsäure und Capronsäure beigemengt sind. Auch in der synthetisch aus Amylalkohol (~Dumas~, ~Stas~, ~Cahours~) mittelst Chromsäuregemisch (~Balard~ 1845) dargestellten Säure ist neben Isovaleriansäure etwas Methyl-Äthyl-Essigsäure vorhanden. Die Identität des _Ac. valerianic. e radice_ mit der synthetischen Baldriansäure und der 1817 im Fette der Delphine (besonders _Delphinus globiceps_) von ~Chevreul~ entdeckten Acide delphinique ou phocénique stellte ~Dumas~ fest, die Identität der bei der Spaltung des Athamantins entstehenden Säure mit Baldriansäure ~Winckler~ (1842). Daß es mehrere Baldriansäuren gibt, fand ~Dessaignes~ (1851). ~Schoonbrodt~ fand gelegentlich seiner umfangreichen vergleichenden Untersuchung frischer und trockener Arzneipflanzen, daß frische, stets viel Zucker enthaltende, Baldrianwurzel nur wenig riecht, obwohl sie mehr +ätherisches Öl+ enthält als getrocknete, dieses Öl aber keinen starken Geruch besitzt, getrocknete dagegen, die weniger süß schmeckende Extrakte liefert, weniger Öl gibt, dieses aber stark nach freier Baldriansäure riecht, von welcher sich in ganz frischer Wurzel nichts findet. ~Carles~ zeigte, daß es ein Enzym ist, welche beim Absterben gelegentlich des Trocknens die Zersetzung der Ester der Baldriansäure bewirkt (Baldrian enthält auch Mangan in der Asche). Schon beim Absterben des Rhizoms, mehr noch beim Trocknen, werden also die Säuren in Freiheit gesetzt. ~Bührer~ (Clarens) erhielt bei, auf meine Veranlassung (1909) angestellten, Titrationen von Auszügen mit verd. Alkohol mit n/10 NaOH einen Verbrauch an ccm (auf 1 g frische Wurzel berechnet): Wurzel aus Chaux de fonds, frisch 1,4. Bei 70° getrocknet 1,9. Wurzel vom Rhonetal bei Aigle, frisch 1,6. An der Luft getrocknet 2,4. Bei 70° getrocknet 2,8. Dialysat 3,0. Wurzel aus dem Elsaß (Mühlhausen), frisch 3,7. An der Luft getrocknet 4,7. Pflanzen verschiedener Standorte zeigen also ziemliche Verschiedenheiten. Neben +Gummi+, +Schleim+ und +Stärke+ findet sich auch +Zucker+ und zwar sowohl +Dextrose+ als +Saccharose+ (~Harley~, ~Kromer~, in Thüringer Baldrian 0,73 bis 1,42 ‰, in russischem 0,3 ‰) -- bisweilen setzt sich Saccharose aus äther. Baldriantinktur ab --, sowie eine +Oxydase+ (~Carles~) und ein +hydrolytisches Enzym+ (~Tschirch~). Ferner (in frischer Wurzel) zwei, wie es scheint, mit Kaffeegerbsäure verwandte, durch Blei fällbare +Baldriangerbsäuren+ (C₁₄H₉O₈ und C₁₂H₈O₉, ~Czyrniansky~). Schon ~Runge~ fand eine «grünige Säure», deren Salze an der Luft grün werden. Das bekannte Nachdunkeln der Baldriantinkturen kann nicht auf das Enzym zurückzuführen sein, da es besonders bei der ätherischen Tinktur hervortritt. Es ist wohl auf diese Gerbsäuren oder das Öl zurückzuführen. Die +Alkaloide+ Chatinin und Valerin (~Waliczewsky~) bedürfen näherer Untersuchung. Chatinin wird von den gewöhnlichen Alkaloidreagentien gefällt. Es soll zu 0,015% in der frischen Wurzel enthalten sein. Neuerdings beobachtete auch ~Chevalier~ in +frischem+ Baldrian ein sehr zersetzliches Alkaloid. Auch ein +Glykosid+ (~Harley~) und ein +Harz+ werden angegeben. Alkaloid, Glykosid und Harz (?) werden beim Trocknen zerstört (~Chevalier~). ~Trommsdorff~ erwähnt einen eigentümlichen Extraktivstoff «+Baldrianstoff+» (Valerianin) und einen +gelben Farbstoff+. Die europäische _Rhiz. valerian._ enthält 0,1-1% der Trockensubstanz (am meisten in holländ. Wurzel, ~Schimmel~) +ätherisches Öl+. Der Gehalt ist abhängig vom Boden (~Kionka~). Schon ~Fr. Hoffmann~, ~Boerhaave~, ~Geoffroy~ wußten, daß frische Wurzel weniger Öl gibt als getrocknete. Das gelbgrüne bis bräunlichgelbe, ziemlich dünnflüssige, schwach saure Öl wird mit der Zeit dunkelbraun und dickflüssig und scheidet Borneol ab. Es besitzt ein spez. Gewicht von 0,93-0,96 (Ardennen- und Vogesenöl 0,875-0,900) und dreht links (-8 bis -13°). Säurezahl: 20-50, Esterzahl: 80-100, Verseifungszahl: 100-150. Es enthält (besonders nach ~Bruylants~ und ~Oliviero~) mehr oder weniger freie Baldriansäure und auch ziemlich viel (9,5% ~Gerock~) +Baldriansäure-l-Bornylester+, dann die +l-Bornylester+ der +Ameisen-+, +Essig-+ und +Buttersäure+ (je 1%), ferner +l-Camphen+, +l-Pinen+, Citren (?), Terpineol, ein Sesquiterpen (Siedep. 160-165°) einen Alkohol C₁₅H₂₆O (Sp. 190°) und einen stark links drehenden Alkohol C₁₀H₂₀O₂ (F. 132°). Borneen, Valeren, Valerol (~Gerhardt~, ~Pierlot~) sind zu streichen. Auch ein +Blauöl+ (+Azulen+), das bei c. 300° übergeht, ist nachgewiesen (~Flückiger~). (~Kopp~ gibt diesem Blauöl ~Flückigers~ die Formel C₂₃H₃₄O₂?). Bei spektralanalytischer Untersuchung eines +Blauöls+, das bei 210-265° überging, fand ich vier Bänder: I. λ = 0,720 bis 0,750 μ, II. λ = 0,650-0,670 μ, III. λ = 0,590-0,610 μ, IV. λ = 0,555 bis 0,575 μ, matt. Ein Tropfen Baldrianöl färbt sich mit 20 Tropfen Schwefelkohlenstoff und 1 Tropfen Salpetersäure tief violett (~Flückiger~). Das aus frischen wildwachsenden Pflanzen dargestellte Öl hat ein geringeres spez. Gewicht (0,875-0,900, ~Oliviero~) als aus der Droge bereitetes. Das zu 8% (nach ~Shimoyama~ 2,7%) erhältliche, also viel reichlicher gebildete, schwerere (spez. Gew. 0,990-0,996) Öl der japanischen Var. _angustifolia_ (+Kessoöl+) ist ähnlich zusammengesetzt, es enthält ferner ein Sesquiterpen (Sp. 260-280°) und das linksdrehende (αD = -70°6′) Kessylacetat (Sp. 178-179°). Das Blauöl (C₁₄H₂₃O₂COCH₃) siedet auch bei c. 300° (~Bertram~, ~Gildemeister~, ~Walbaum~). Die spektralanalytische Untersuchung des Öls ergab für die vier Azulenbänder (s. oben) eine ähnliche Lage wie beim deutschen Baldrianöl (~Tschirch~). Die _V. mexicana_ lieferte bei der Destillation fast gar kein äther. Öl, sondern fast nur Baldriansäure (89% des Hydrates, ~Schimmel & Co.~). ~Kemp~ erhielt aus _Indischer Narde_ (s. unten S. 525) 0,9% eines linksdrehenden Öles vom spez. Gew. 0,974, beim Erhitzen nimmt das Öl eine grünliche Fluoreszenz an (~Prebble~, vgl. auch ~Lafite~, Pharm. Zeit. 1887, 465 und ~Asahina~, Journ. pharm. soc. Japan 1907 und ~Schimmels~ Ber. 1907). In der _Valeriana celtica_ findet sich 1,5 bis 1,75% (bzw. 0,1% ~Haensel~) Öl, in dem ein Sesquiterpen und Palmitinsäure (?) nachgewiesen wurde (~Schimmel~ 1887, ~Haensel~ 1909). Der Extraktgehalt schwankt von 17,64-24,03% (~Röder~), 17,35-31,95% (~Dieterich~), 26% (~Carles~). Zweijährige Rhizome geben die höchste Extraktausbeute, Pharm. austr. verlangt wenigstens 15%. Da die Wurzeln noch die Wurzelhaare besitzen (s. oben S. 518), die bekanntlich mit den Bodenteilchen verwachsen (richtiger: verkleben), so ist Baldrianwurzel durch Waschen niemals ganz von Erde zu befreien -- auch die «staubfreie» des Handels enthält Erde --. Der Aschengehalt schwankt daher sehr. Besonders schlecht gewaschener Baldrian enthält oft viel Asche (bis 30,8% ~Peters~, bis 41% ~Hauke~, bis 43,98% ~Röder~ 1906). 4,7-8,4% sind bei gutem Baldrian beobachte Zahlen (~Hauke~). ~Gadd~ und ~Sydney~ wollen nicht über 9% hinausgehen. ~Hauke~ gibt als obere Grenzzahl für ganze Wurzel 10%, für Pulver 12% an. Pharm. helv. 12%. Die Asche ist grau. Phosphate, Sulfate und Silikate fand darin schon ~Trommsdorff~. =Lit.= ~Trommsdorff~, N. Journ. Pharm. 18 (1809), 3, 24 (1832), 134, 26 (1834), 1., Über die Valeriansäure u. ihre Verbind. Ann. d. Pharm. (6) 1833, 176, 10 (1834), 213. -- ~Pentz~, Arch. Ph. 28, 337. -- ~Grote~, Arch. Pharm. 32, 160, 33 (1830), 160, 38 (1831), 4. -- ~Riegel~, Journ. pr. Chem. 11 (1845), 316. -- (Darstellung der Säure: ~Winkler~, Buchn. Rep. 1833, ~Bonaparte~, J. chim. méd. 1842 u. 1843, ~Rabourdin~, Journ. pharm. 1844, 310, ~Wittstein~, Buchn. Rep. 87 [1845]). -- ~Aschoff~, Arch. Pharm. 48 (1846), 275]. -- ~Czyrniánsky~, Über d. nicht flücht. Säur. d. W. v. V. offic. Lieb. Ann. 71 (1849), 21. -- ~Schoonbrodt~, Journ. d. méd. Bruxelles 45 und 46, Deutsch in ~Wittstein~, Vierteljahrsschr. 18, 73 (Jahrb. Ph. 1869, 17). -- ~Carles~, Valeriane et Oxydase. Journ. pharm. 12 (1900), 148. Rep. pharm. 1903, 289. -- ~Lindenberg~, Unters. d. Rhiz. von V. offic. u. V. Hardwickii. Pharm. Zeitschr. f. Rußl. 1886. -- ~Katz~, Wertbest. homöop. Urtinkt. Pharm. Centralh. 1901, 291. -- ~Hauke~ (Asche), Wien 1902. -- ~Peters~, Apoth. Zeit. 1909, 538. -- ~Waliszewski~, Un. pharm. 1891, 109 (Apoth. Zeit. 1891, 186). -- ~Shimoyama~ und ~Hyrano~ (Mitt. Med. Fak. Tokio 1890. Apoth. 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Ac. r. méd. Brux. II, 1209. Journ. pharm. 1878, 349. Ber. d. chem. Ges. 11 (1878), 452. -- ~Oliviero~, Compt. rend. 117 (1893), 1096. Bull. soc. chim. 11 (1894), 150 u. 13 (1895), 917. Et. chim. sur l’huile essent. de Valer. Thèse Paris 1895. -- ~Gerock~ u. ~Bronnert~, Journ. pharm. Els. Lothr. 19 (1892), 82. -- ~Flückiger~, Arch. d. Pharm. 209 (1876), 204. -- ~Schimmel~, Ber. 1887, 1891, 1894 und 1897 und ~Gildemeister-Hoffmann~, D. äther. Öle. -- ~Tschirch~, Harze u. Harzbehälter. +Kesso+: ~Bertram~ u. ~Gildemeister~, Arch. Ph. 228 (1890), 483. -- ~Bertram~ u. ~Walbaum~, Journ. pr. Ch. 49 (1894), 18. =Verfälschungen und Verwechslungen.= In erster Linie werden genannt: _Valeriana sambucifol._ (~Timbal-Lagrave~), besonders in Böhmen, _Veratrum album_ (~Bentley~ 1877, ~Kaspar~ 1886) -- die Unterschiede beschreibt ~Bentley~ (übersetzt bei ~Wittstein~) --, _Sium latifolium_ L. var. _longifolium_ L. (~Bernbeck~ 1880), _Cypripedium macranthum_ und _Cynanchum Vincetoxicum_ (~Charbonnier~ bis 36%) mit gelblich-weißem Rhizom. Dann finde ich (z. B. bei ~Wittstein~) angegeben: (von mir nicht beobachtet) _Valeriana dioica_ L. (_Rad. valerian. palustr._, _Rad. Phu minor._) mit dünnem Rhizom, _Valeriana Phu_ L. (_Rad. valerian. major._, _hortens._, _pontici_ oder _Phu_) mit großem Rhizom und dicken hellen Wurzeln (vgl. Paralleldrogen), _Ranunculus acris_, _polyanthemos_ und _repens_ L. (~Hoppe~ 1807), _Sium angustifol._, _Serpentaria virgin._, _Geum urbanum_ L. (_Rad. caryophyllat._), _Scabiosa arvensis_ L. (~Reveil~ bis 22%), _Succisa pratensis_ ~Mönch.~, _Betonica officinalis_ L., _Eupatorium cannabinum_ L., _Arnica montana_ L., _Spigelia_ und _Helleborus_-Arten. Alle nehmen, wenn dem Baldrian beigemengt, den Geruch an. Man muß zur Unterscheidung das Mikroskop zuhilfe nehmen. Besonders gefährlich, aber leicht kenntlich, sind die Beimengungen der giftigen Rhizome von _Veratrum_ und _Sium_, von denen aber nur das Letztere an gleichem Standorte vorkommt. Ein gekammertes Rhizom besitzt _Cicuta virosa_, scheint aber nie im Baldrian beobachtet zu sein. Der rote Baldrian der Gärten ist _Centranthus ruber_, der griechische Baldrian _Polemonium coeruleum_. =Lit.= ~Timbal-Lagrave~, Journ. chim. méd. (5), 3, 589 (Jahresber. Pharm. 1867, 50). -- ~Bentley~, Pharm. Journ. 7 (1877), 649. -- ~Bernbeck~, Arch. Ph. 1880, 431. -- ~L. Planchon~, Precis 1906. -- ~Wittstein~, Handwörterb. d. Pharm. 1882. =Anwendung.= _Rhiz. valerian._ wird als Tonico-Excitans (bei Ermüdung, ~Féré~ 1904), Antispasmodicum, Nervinum, Antihystericum und Antiepilepticum benutzt [die Anwendung als Antiepilepticum wird auf ~Fabius Columna~ († 1460) zurückgeführt]. +Es ist ein wichtiges krampfstillendes Mittel+ (z. B. bei Krampfkolik) und spielt unter den +Volksheilmitteln+ (hier auch als Diureticum, Fieber- und Wurmmittel), sowie unter den Mitteln des Pfarrer ~Kneipp~ eine große Rolle. (Über die Verwendung in Rußland vgl. ~Demitsch~, Russische Volksheilmittel in ~Kobert~, Studien I.) «Plus la préparation contient d’acide valérianique, moins elle est active» (~Pouchet~ 1904). Da der Isovaleriansäure-Borneolester, C₁₀H₁₇O.OC₅H₉ (s. oben S. 521), als der wirksame Bestandteil des Baldrian betrachtet wird, bringt man ihn -- synthetisch dargestellt -- seit 1904 unter dem Namen +Bornyval+ als Mittel gegen Neurasthenie, Hysterie und Herzleiden, meist in Gelatineperlen à 0,25 g, in den Handel. An der Wirkung des Baldrian sind aber jedenfalls auch andere Körper noch beteiligt. ~Carles~ schlug daher (1903) vor, ein von ihm «+Pan-Valériane+» genanntes Fluidextrakt durch Extraktion der Droge mit 18% Weingeist, dem 5% Ammoniak zugesetzt worden war, zu bereiten. ~Kalle~ schlug Zusatz von Ammonsalzen bei Bereitung der Baldriandestillation vor (Pharmac. Un. Stat. hat die alte Tinct. valer. ammon.). Ich sehe keinen Vorteil im Ammoniakzusatz. Das Dialysatum Valerianae ~Golaz~ (Saxon) wird aus der +frischen+ Pflanze bereitet. In Frankreich wird der frische Saft empfohlen oder Darstellung der Präparate aus der frischen Pflanze unter +Erhaltung+ der Oxydase. Die Bereitung der als sehr wirksam erkannten Präparate aus der frischen Pflanze sollte aber besser in der Weise erfolgen, daß man die frisch gegrabenen und gewaschenen Wurzeln zehn Minuten in Wasser von 80° bringt, um das Enzym zu töten und dann erst extrahiert (~Tschirch~). Dabei bliebe denn auch wohl das Alkaloid, dem eine Wirkung auf den Augapfel und die Medulla oblongata zugeschrieben wird, sowie das Glykosid erhalten. ~Bourquelot~ schlägt Sterilisation durch Eintragen in siedenden 90% Alkohol vor. Jedenfalls ist aus der «sterilisierten» Wurzel oder mittelst siedenden Alkohols bereitete Baldriantinktur haltbarer, da das Enzym seine Wirkung nicht mehr ausüben kann (~Lesueur~). =Lit.= ~Louis Planchon~, Prec. d. mat. med. 1906, II, 187 (dort weitere Angaben). -- ~Lesueur~, Infl. d. mod. de prép. etc. Thèse Paris 1910. -- ~Bourquelot~, Journ. pharm. 1911. =Geschichte.= Im Altertum hieß eine der medizinisch verwendeten Narden Phu (wohl ein poetischer Name). ~Plinius~ sagt (XII, 26) bei Narden: «In nostro orbe proxime laudatur Syriacum, mox Gallicum, tertio loco +Creticum+, quod +aliqui agrium vocant, alii phu+, folio olusatri etc.» Die Beschreibung, die ~Dioskurides~ (I, 11) vom φοῖ gibt, den er auch νάρδος αγρία nennt, und den er als im Pontus vorkommend angibt, stimmt auf _Valeriana officinalis_ (~Sprengel~, _V. o._ kommt im Orient vor), resp. auf die wohl nur als eine der kleinasiatischen Formen der _Officinalis_ oder jedenfalls als eine naheverwandte Art zu betrachtende, von ~Hawkins~ aufgestellte, _V. Dioscoridis_, Sibth. fl. Graec. (~Sibthorp~, ~Fraas~). Er erwähnt, daß sie mit der geruchlosen Wurzel der Oxymyrsine (_Ruscus aculeatus_) verfälscht werde und beschreibt die Unterschiede. Bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 578) findet sich _Phu_ und _Phu pontici semen_, das auch als _Valeriana Dioskuridis_ zu betrachten ist. Bei den Hippokratikern spielte der B. (wie noch heute) eine große Rolle in der Frauenpraxis und er war auch ein Bestandteil des berühmten Antidots von ~Sotira~ (I, S. 593) und der Pastillen des ~Andromachus~ (ebenda). Der Name +Valeriana+ tritt zum ersten Male in der lateinischen Übersetzung des aus dem X. Jahrh. stammenden arabischen Werkes über die Nahrungsmittel des ~Isaac Judaeus~ (I, S. 598 op. omn. 1515, cap. 45) auf: «Fu id est +valeriana+, melior rubea et tenuis et quae venit de armenia et est diversa in sua complexione». Er findet sich dann auch im XI. Jahrh. bei ~Constantinus Africanus~ (De omnibus medico cognitu necessariis Bas. 1539, 348): Fu id est +valeriana+. Naturam habet sicut Spica Nardi» und im gleichen Jahrhundert auch (nach ~Hanbury~) in den angelsächsischen tierärztlichen Büchern (I, S. 684). Ob das Fu des ~Isaac Judaeus~ (s. oben S. 511) _Val. offic._ war, ist zweifelhaft, aber wahrscheinlich, wohl aber dürfen wir in dem _Fu i. e. valeriana_ des ~Constantinus Africanus~ unsere Pflanze erblicken, da er sie ausdrücklich der _Spica Nardi_ und der _Celtica_ gegenüberstellt und auch das Fu des ~Simon Januensis~ (I, S. 664) ist Baldrian. Die mittelalterlichen Namen und die der Patres s. oben S. 511. Ricettario Fiorentino (I, S. 793) unterscheidet _valeriana domestica_ (maggiore) und _v. silvatica_ (minore). Nur die erstere soll benutzt werden. ~Cordus~ bezeichnet Phu auch als Gartenseliunk und Spikwurzel. _Valeriana_ findet sich im Gothaer Arzneibuch aus dem XIV. Jahrh. (I, S. 679) und in der Frankfurter Liste (1450), im Nördlinger Register (1480) steht _Fu_ neben _spica nardi_ und _spica celtica_, in ~Saladins~ Compendium (I, S. 665) _Phu_. Das Braunschweiger Register (1521) hat nur noch _valeriane_ (auch ein Baldrianwasser -- wie ~Brunschwyg~ (1500) ein Denmarckwasser), aber _Rad. Phu majoris_ (= _V. Phu_) steht noch 1724 bei ~Berlu~ (I, S. 951). Bei ~Brunfels~ steht: «Fu id est Valeriana vel Potentilla vel Amantilla. Sec. Diosc. multi appellant Narduun agrestem. Circa instans dicit Fu intelligitur radix et sic est. Et multi vulgares vocant eam herbam Benedictam.» ~Fuchs~ (I, S. 843) gibt eine vorzügliche Abbildung unseres Baldrian, den er _Phu germanicum_ nennt. ~Bock~ (I, S. 841) bildet ab: _Valeriana vera_ (_Nardus agrestis_), _V. vulgaris_ und _V. exigua_. Bei ~Jean Bauhin~ steht: _Valeriana major odorata radice_; bei ~Pomet~, der eine Abbildung gibt: _La grande valeriane_. ~Pomet~ setzt sie im Gegensatz zur _Petite Valeriane_, deren Wurzeln einige Phu pontique nennen. ~Geoffroys~ Traité 1757 (I, S. 947) kennt drei Arten Valériane: La valériane des jardins ou la grande Val. (V. hortensis, Phu folio Olusatri Dioscoridis ~Bauhin~ Pinax), La valériane sauvage ou des bois ou petite Val. (V. sylvestris major ~Bauhin~ Pinax) und La Val. des marais ou petite V. aquatique (V. palustris minor ~Bauhin~ Pinax). -- Die wilde Valeriana ist unsere _V. officin._, die Garten-V. wohl _V. Phu_, der kleine Wasserbaldrian _V. dioica_. ~Linné~ übernahm _Valeriana_ als Gattungsname und unterschied: _V. officinalis_, _V. Phu_ und _V. celtica_ (= Nardus celtica Dioscoridis ~Bauhin~ Pinax). Die Kultur des B. ist erst spät versucht worden. Er fehlt noch bei ~Karl~, im St. Galler Klosterplan, bei ~Macer~ und ~Strabo~, sowie im Kalender des ~Harib~ (I, S. 612). In den Destillierbüchern des XVI. Jahrh. sind Vorschriften für Baldrianwurzeldestillate mit Wasser und Wein enthalten. Das Öl erhielten ~Fr. Hoffmann~, ~Boerhave~, ~Cl. J. Geoffroy~ sowohl aus trockener wie aus frischer Wurzel (~Pfaff~). Dann beschrieb es ~Graberg~ und ~Trommsdorff~, der die Wurzel untersuchte, nannte (1830) die Säure Valeriansäure. Alte Dissertationen über _Valeriana_ sind: ~J. C. Spies~, De Valeriana, Helmst. 1724 und ~M. Alberti~, De Valerianis officinalibus, Hal. 1732 (I, S. 928 u. flgd.). In der germanischen Götterlehre wird die Pflanze erwähnt. Die Göttin ~Hertha~ trug einen Baldrianstengel als Reitgerte (~Perger~). Im nordischen Altertum hieß sie Wielandswurz (s. oben S. 511). Im Volksglauben ist Baldrian ein kräftiges Schatzkraut gegen Hexen und Teufelszauber und gegen Elfenneid (~Schiller~, Tier- und Kräuterb. d. Mecklenb. Volk.). («Hättst du nicht Dosten und Baldrian, wöllt ich den Kragen dir umdrehet han», ruft der Hexenmeister). Der Bräutigam muß am Hochzeitstage einige Blätter der Pflanze bei sich tragen. Das Rhizom gilt aber als Antaphrodisiacum, mit Bibernell zusammen dann auch als Pestmittel «Baldrian und Bibernell, hält die Pestilenz zur Stell». (Das finnische rutto juuri bedeutet Pestwurz.) Nach ~Schambach~ wird beim Graben der Wurzel in Mecklenburg gesungen: «Balderjan! Most upestan, Most hengan, Most helpen allen Minschenkindern. Un allen Naversrindern!» (~Reling~ und ~Bohnhorst~). In Sachsen ist der Vers bekannt: «Trinkt Baldrian, sonst müßt ihr alle dran» (weiteres bei ~Söhns~). In Serbien lautet ein Spruch: «Dies kostbare Kraut zu vernachlässigen warnt die vila» (~Grimm~). Baldrian ist auch Bestandteil einiger Pestlatwergen. Im Mittelalter und dem Beginn der Neuzeit scheint der Baldriangeruch beliebt gewesen zu sein, da der Baldrian zum Parfümieren von Zimmern, Kleidern und Wäsche benutzt wurde (~Turner~, New Herball 1568, ~Langhans~, Garden of Health 1633), ähnlich wie im Altertum _V. celtica_ L. und _Nardostachys Jatamansi_ ~Dc.~ (s. unten). In England wurde B. in früheren Zeiten setwall (sonst auch für _Zedoaria_ benutzt) genannt und viel gebraucht. ~Gerarde~ bemerkt in seinem Herball (1567), daß die ärmeren Klassen in Nord-England keine Speise ohne B. bereiteten (~Hanbury~). Also auch der Geschmack muß beliebt gewesen sein. =Paralleldrogen.= Von dem +Indian and Colon. addend. to Brit. Pharm.+ (I, S. 22) wird als Ersatz der _V. officin._ auch das Rhizom von _Valeriana Wallichii_ ~Dc.~ (_V. villosa_ ~Wall.~, _V. Jatamansi_ ~Jones~, _V. Spica_ ~Vahl~), in Indien: dálá, wálá, bálá, tagar (weitere Namen in Pharmac. indic.) -- zugelassen, die von Kashmir bis Bhután bis zu Höhen von 10000 Fuß und in den Khásiabergen vorkommt (Dict. econ. prod. India). Die stark nach Baldriansäure riechende Wurzel liefert c. 1% äther. Öl und enthält 3,13% Gerbstoff, 6% Zucker, 14% Stärke und 1% Harz (~Lindenberg~, Pharm. Zeitschr. f. Rußl. 1886). Ähnlich wie diese wird das Rhizom von _Valeriana Hardwickii_ ~Wall.~ (_V. tenera_ ~Wall.~, _V. javanica_ ~Bl.~, _V. acuminata_ ~Royle~) in Indien: tágger, die Wurzel: ásárun, die an den gleichen Standorten wie _V. Wallichii_ vorkommt und auch sehr hoch (bis 12000 Fuß) steigt, aber wohl nur eine Form der _V. offic._ ist, benutzt. Es soll dies die +syrische Narde+ der Alten (s. unten) gewesen sein (~Adams~). ~Bidie~ (Pharm. ind.) empfiehlt als Baldrianersatz ferner die in den Nilagiris wachsende, bei der Destillation viel Baldriansäure gebende _Valeriana Brunoniana_, (Pharm. indic.). ~O’Shaughnessy~ bezeichnet (Bengal Disp.) als einen brauchbaren indischen Ersatz des Baldrian auch _Nardostachys Jatamansi_ ~Dc.~ (_Patrinia Jatam._ ~Don.~, kaum von _N. grandiflora_ ~Dc.~ zu trennen) -- in Indien: Jatamánsi (sansc.) báluchar, bhutakesi (= Teufelshaar), arab.: sumbulul-aa sáffir (bei ~Ibn Baithar~: sambal). Es ist dies die =echte indische Narde= (_Nardus indica_, _Spica Nardi_, sunbul hindi, sennbol (arab.), nerd (hebr.), die in den nordindischen Gebirgen (Himalaya), besonders in Nepal, Kumaon und Bhutan bis 17000 Fuß hoch steigt. Aber deren von faserigen Niederblattresten umhülltes Rhizom riecht nicht nur nach Baldriansäure, sondern auch nach _Moschus_ und _Patchouli_. Wegen dieses eigenartigen Geruches wurde diese Narde im Altertum viel zur Bereitung wohlriechender Salben (νάρδος πιστική = echte +oder+ flüssige Narde ~Tristram~) zur Salbung des Körpers (vgl. I, S. 1014) benutzt, wie wir aus der Bibel und ~Horaz~ erfahren. Sie dient noch heute (mit _Galgant_, _Prunus Mahaleb_, _Andropogon muricatus_, _Pogostemon Patchouli_ u. and.) zur Bereitung des von den indischen Frauen benutzten Haarwaschwassers Angalepan (Pharmac. indica) -- war aber auch bereits bei den Hippokratikern Heilmittel. Sie wurde schon von ~Plinius~ von der +unechten Narde+ (Ozaenites vom Ganges) und dem +Pseudonardus+ (_Nardus italica_ = Lavendel) unterschieden. Später diente zu gleichem Zwecke die in den südlichen und östlichen Alpen wachsende, bei den Alpenbewohnern als Speik bekannte +römische oder keltische Narde+ oder Saliunca, Nardus ex Apulia (_Valeriana celtica._ L.), die auch ein Bestandteil des Mithridats (bei ~Avicenna~) war, der die keltische gut von der indischen unterschied. Zum gleichen Zweck diente auch die +Moschuswurzel+ von _Ferula Sumbul._ Aber auch _Andropogon_arten (Schoenos, indisches Gras) wurden bisweilen als indische Narde bezeichnet, galten aber schon im Altertum nicht als echte Narden. Die indische Narde wird schon in Susrutas erwähnt. Der Autor von ~Makhzan el-Adwiya~ vergleicht sie mit dem Schwanze des Zobels. Es ist zweifelhaft, ob νάρδος aus dem iranischen (npers.: nârd) oder dem semitischen (hebr.: nêrd) Kulturkreise stammt. Alle Ausdrücke gehen auf das indische nálada (schon in Atharvaveda als Aromapflanze genannt). ~Periplus~ nennt νάρδος als Exportartikel indischer Häfen. ~Alexander~ traf die Pflanze in Gedrosien (~Arrian~, Anabasis VI, 22). Durch die Bibel verbreiteten sich got. nardus, ahd. narda (~Schrader~). ~Dioskurides~ kennt außer νάρδος (νάρδου στάχυς ~Galen~, _Spica nardi_ ~Plinius~, _Nardos_ ~Arrian~, _Nardifolium_ ~Columella~), von der er eine aus Gebirgen stammende «syrische» (aber nicht in Syrien gesammelte), eine von dem Tale des Ganges exportierte (Gangitis) und eine sampharitische (wohl +über+ Arabien kommende) unterscheidet (er weiß, daß die Gebirgsnarde die beste ist) noch: νάρδος κελτική (von Ligurien und Istrien) und ν. ὀρεινή (aus Cilicien und Syrien). Die syrische (d. h. hier indische) Narde ist jedenfalls _Nardostachys Jatamansi_, die vom Ganges vielleicht ein _Andropogon_ (nach anderen _Nardostachys grandifol._), die keltische: _Valeriana celtica_, die Bergnarde wohl _V. tuberosa_. Was die sampharitische ist, ist unklar. Des ~Plinius~ Gallische Narde (s. oben S. 525) ist vielleicht _Valeriana saxatilis_ (~Sprengel~). ~Scribonius Largus~ nennt die keltische Narde _Saliunca_, ~Columella~ _Nardum celticum_. Im Liber de simpl. ad Paterniam stehen die Namen: _Salvicula_, _Saliunca_ und _Saloincha_. ~Scribonius Largus~ bemerkt, daß _Nardus indica_, _celtica_ und _italica_, _Spica nardi_ (_Lavendula_?) und indisches Gras ähnlich riechen, was ich aber nicht finden kann. Auch ~Celsus~ (I, S. 587) kennt indische, syrische und gallische Narde. Narde steht sowohl im Periplus (I, S. 535) wie in der Alexandrinischen Zolltafel. In der mittelalterlichen Literatur wird die echte Narde nur noch einmal unter den Räuchermitteln beim Einzug ~Heinrich~ VI. in Rom erwähnt (~Flückiger-Hanbury~). In den Destillierbüchern (z. B. ~Brunschwyg~) ist sie nicht mehr genannt, wohl aber _Spikenard_ und _Spica_ (~Hoffmann~). Die echte Narde kommt hier und da noch nach London und die keltische Narde wird noch jetzt in den schweizerischen und italienischen Alpen gesammelt und von Triest nach dem Orient exportiert (~Flückiger~). Als Paralleldroge kann kaum gelten das wenig aromatische _Rhiz. valerianae majoris_ von _Valeriana Phu_ L., einem als Gartenpflanze da und dort (Schlesien, Livland) kultivierten, in Armenien, Kaukasien, dem Ural und Südsibirien einheimischen Gewächs, wohl aber alle oben (S. 512) angeführten, zur Sectio Officinalis gehörenden Arten (bez. Varietäten), besonders die _V. angustifolia_ (_V. offic._ var. _angustifolia_ ~Miq.~) Japans (kesso, kisso, kanoko-so), mit kurzem, reich bewurzeltem Rhizom -- seit 1879 im Handel. In Frankreich wird durch die Herboristen oft _Val. excelsa_ ~Poir.~ gesammelt (~Camus~ 1901). Ferner sei erwähnt die _Valeriana mexicana_ ~Dc.~ (s. oben), neben welcher in Mexico auch _V. ceratophila_ HBK. und _V. toluccana_ ~Dc.~ medizinisch benutzt und bisweilen nach Europa gebracht werden (~Holmes~). Weitere, ähnlich wirkende _Valeriana_arten in ~Dragendorff~, Heilpflanzen und in ~Planchon-Collin~, Drogues simples 1896. =Lit.= ~Gildemeister-Hoffmann~, Äther. Öle, II. Aufl., S. 208. -- Abbild. der indischen Narde: ~Royle~, Illustrations of the Himalayan Bot. t. 54 (kopiert bei ~Nees~). -- ~Jones~, On the spikenard of the ancients Transact. Asiat. Soc. Bengal. Calcutta 1889. -- ~Roxburgh~, ebenda. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacogr. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Dymock~, Mat. med. West. Ind. -- ~Tristram~, Nat. history of the bible. -- Pharmacogr. indica. -- Dict. econom. prod. of India. -- ~Guibourt~, Hist. nat. d. drog. (dort Näheres über die Narden, auch Abbild.). -- ~Schrader~, Reallex. d. indogerm. Altert. IV. Die Produkte der Oxydation der Hexosen sind Glukonsäuren (Hexonsäuren), z. B. Glukuronsäure (S. 77), Glukonsäure, Zuckersäure (S. 77), Schleimsäure (S. 282), bei stärkerer Oxydation tritt aber Zerfall ein und es entsteht Glykolsäure, Oxalsäure, Traubensäure, Weinsäure. Schon ~Scheele~ beobachtete (1776), daß bei der Oxydation von Zucker Oxalsäure auftritt. Bei der Aufspaltung des Zuckers bei der alkoholischen Gärung (?) und der intramolekularen Atmung entsteht aber auch +dl-Milchsäure+ (α-Oxypropionsäure), CH₃.CH(OH).COOH, die sich zuweilen im Wein findet und bei der intramolekularen Atmung der Zuckerrübe sich bildet und die in größerer Menge bei der Milchsäuregärung des Trauben-, Milch- und Rohrzuckers auftritt. Die +Glykolsäure+ (Oxyessigsäure), CH₂OH--COOH, findet sich im Zuckerrohr und kommt auch im Rübensaft und unreifen Trauben vor. Sie liefert oxydiert zunächst die in unreifen Früchten (Wein, Stachelbeeren und Äpfeln) vorkommende +Glyoxylsäure+: COH--COOH, dann +Oxalsäure+: COOH--COOH. Die =Oxalsäure= ist bei den Pflanzen und auch den Drogen weit verbreitet (~C. Schmidt~, ~Bayley~, ~Payen~, vgl. die Zusammenstellung in ~Czapek~, Biochemie), besonders als Calciumoxalat, das zuerst ~Scheele~ (1785) im Rhabarber auffand, das die Mikroskopiker aber schon früher gesehen hatten (I, S. 341), und von dem besonders die Flechten reichliche Mengen, bis zu 66% des Trockengewichtes (_Lecanora esculenta_), enthalten. Oxalsäure tritt auch als saures Kaliumsalz auf (in _Oxalis_-, _Rheum_- und _Rumex_arten). An die Oxalsäure schließen sich dann an: COOH | COOH CH₂ COOH COOH | | | | COOH CH₂ CH₂ (CH₂)₆ (CH₂)₇ | | | | | COOH COOH COOH COOH COOH Oxalsäure Malonsäure Bernsteinsäure Korksäure Azelainsäure von denen besonders die =Bernsteinsäure= in unreifen Früchten (Wein, Stachelbeeren, Johannisbeeren, Äpfeln, Bananen), aber auch in _Atropa_blättern, Rhabarberstielen und in der Zuckerrübe, sowie als Harzester (~Tschirch~ und ~Aweng~) im Bernstein vorkommt und endlich die sich an die Bernsteinsäure anschließende Gruppe der Oxysäuren: COOH COOH COOH | | | HCH HCOH OHCH | | | HCH HCH HCH | | | COOH COOH COOH Bernsteinsäure d-Apfelsäure l-Apfelsäure | | +-----------+------------+ | Racemische Apfelsäure COOH COOH COOH | | | HCOH OHCH HCOH | | | OHCH HCOH HCOH | | | COOH COOH COOH d-Weinsäure l-Weinsäure Mesoweinsäure | | +----------+-----------+ | Racemische Weinsäure Die von ~Scheele~ (I, S. 968) entdeckte =Apfelsäure= (~Donovans~ Acide Sorbique) ist als l-Apfelsäure weit verbreitet (~Braconnot~, Übersicht bei ~Czapek~). Sie findet sich meist gebunden, aber auch frei, besonders reichlich in den Vogelbeeren (~Vogel~, ~Houton Labillardière~, ~Liebig~), den =sauren Äpfeln=, -- und dem daraus dargestellten =Extractum ferri pomati= --, dann auch in Kirschen, Pflaumen, Weintrauben, Heidelbeeren, Ananas, den Beeren von _Hippophaë_, und _Berberis_, den Blättern des _Tabak_ (~Vauquelin~), des _Chelidonium majus_ und _Rheum_ (3,5% saures Malat), dem _Euphorbium_ (25% Calciummalat, ~Tschirch~ und ~Paul~) und in vielen Pilzen (z. B. _Polyporus officinalis_). Besonders reichlich ist Apfelsäure aber in den Blättern der Crassulaceen (25-30% des Trockengewichtes) enthalten; die hier vorkommende Säure soll aber eine vierte stereoisomere, rechtsdrehende Form sein, die mit keiner der übrigen übereinstimmt (~Aderson~). Von den ungesättigten niederen Fettsäuren interessieren uns nur: HC--COOH COOH COOH || | | COOH--CH und CH CH₂ \\ / +Fumarsäure+ C | COOH +Aconitsäure+ von denen die erstere in Pilzen häufig ist, und auch z. B. in _Cetraria islandica_ (S. 268), aber auch in Phanerogamen (Fumariaceen, Papaveraceen) vorkommt, die andere in Rüben und Ranunculaceen (_Aconitum_, _Adonis_, _Delphinium_) vorkommt. «Vielleicht begleitet sie ständig die verwandte Citronensäure» (~Euler~). V. Weinsäuredrogen. Ganz außerordentlich verbreitet ist die +Weinsäure+, zwar nicht die l-Weinsäure, auch nicht die Mesoweinsäure und die Traubensäure (racemische oder d + l Weinsäure), wohl aber die +d-Weinsäure+ (α²⁰_{D} = +15,06°, F. 170°), die zuerst ~Scheele~ (1769) aus Weinstein isolierte. Sie findet sich -- vornehmlich gebunden -- in den Weinbeeren (S. 40), den Maulbeeren, Tamarinden, Ananas, Gurken und vielen anderen Früchten, Wurzeln, Blättern und Zwiebeln (revisionsbedürftige Übersicht bei ~Husemann-Hilger~), aber wohl kaum, wie ~Hilger~ (a. a. O.) meint, «im Zellsafte aller entwicklungsfähigen Pflanzenteile». Das beste Material zur Darstellung der d-Weinsäure ist noch heute der =rohe Weinstein=, der als Droge in den Handel kommt. Er bildet gelbliche und rötliche Krusten, die zur Reinigung zunächst in siedendem Wasser gelöst werden. Die geklärte Lösung wird mit Tierkohle und Ton entfärbt und zur Kristallisation gebracht. Aus dem so entfärbten Weinstein wird die Säure mit Schwefelsäure abgeschieden. Pulpa Tamarindi. =Syn.= Fruct. tamarindi, Siliquae indicae -- Rohes Tamarindenmus -- pulpe brute de tamarins (der Baum: tamarinier de l’Inde) (franz.) -- tamarind (der Baum: tamarind tree) (engl.) -- tamarinde (holl.) -- tamarindo (ital.) -- tamarinda (ung.) -- tamarindi (fin.) -- ὀξυφοῖνιξ (griech.). =Arab.=: tamr hindī, andeb (in +Cordofan+: ardeb), humar, sabárá. -- +pers.+: anbalah -- in +Indien+: amli, imli (hind.), chintz (bomb.) puliyam-pazham (tam.) tentul (beng.) -- im Sanscrit: tintidi, amlikā (weitere in ~Watt~, Dict. ec. pr.) -- +mal.+: asam manies oder a. djawa, asem (asem kerandji ist _Dialium indum_), kamal. -- bei den späteren Griechen: βελφηνικήα τεμαρέντι. -- Bei ~Alhervi~ (I, S. 601) tamr ulhindî (pers.) -- In dem Lehrgedichte des ~Otho Cremonensis~ (XIII. Jahrh., vgl. I, S. 627) und bei ~Serapion~ (I, S. 607): thamarindus. -- Bei ~Ibn Baithar~ (I, S. 608) stehen außer Tamr hindi auch die Namen: subâr (für den Baum: subâri), humar, hamar (auch für Asphalt benutzt!), hamar heißt im Arab. rot (~Marti~). Deutet wohl auf die Farbe der Früchte. -- Bei ~Abu Hanifa~: elhumar -- bei ~Constantinus Afrikanus~: Oxyfoenicia sunt dactyli Indiae. -- Auch in der Alphita und bei ~Bartholomaeus~ (I, S. 655) findet sich Oxi fenica (fincon, inde dactilus indicus vel tamarindus) = dactalus acetosus und auch in Circa instans (I, S. 637), bei ~Joh. Actuarius~ und in den mittelenglischen Medizinbüchern aus dem XIV. Jahrh. (I, S. 683) steht Oxyfenica. Der Ausdruck (= palmae acidae) blieb bis ins XVII. Jahrh. erhalten (~Flückiger~). Im Mittelalter und noch bei ~C. Bauhin~ auch: Siliqua arabica (Siliqua syriaca ist _Ceratonia_) -- bei ~Rumpf~: Tamarindus C. Bauhini, Tamar sive dactylus Indorum, Palmula indica et deresilde Arabum -- in Brasilien: Jutay (~Piso~). -- Tamarindus auch bei ~Ray~, ~Alpini~ und ~Tournefort~ -- bei ~Rheede~: balam pulli. =Etym.= Tamarindus von arab.-pers. tamr (tamar chald. u. hebr.) = Palma (Dattel) und hindi = indisch, also indische Palme (Dattel) (so schon von ~Garcia da Orta~ erklärt). Vielleicht auch tamr = Frucht überhaupt (~Pereira~) -- οξυφοίνικα, Oxifenica = Sauerdattel (φοῖνιξ = Dattel, hier nicht = rot, wie ~Lémery~ will). -- Der Malaie drückt im Namen: Asam (= sauer), manies (= süß) sehr charakteristisch den Geschmack des Fruchtmuses aus. =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Tamarindus indica= L., Gen. pl. I, 581 (Rumph. herb. amb. 2, 90 t. 23), nebst der in Westindien kultivierten kleinfrüchtigen, wenigsamigen, herben Var. occidentalis (T. occidentalis ~Gärtner~) -- auch die javanische T. ist kleinfrüchtig (~Tschirch~). Der Autor des Makhzan el Adwija beschreibt zwei indische Arten: die rote süßere, kleinsamige Guzerat-Varietät (die bessere) und die gewöhnliche rötlichbraune. Diese werden in Indien noch jetzt unterschieden. ~Roxburgh~ und ~De Candolle~ unterscheiden T. occidentalis ~Dc.~ und T. indica ~Dc.~ als Arten. +Leguminosae+, Caesalpinioideae -- Amherstieae (die Gattung Tamarindus hat nur eine Art). [Illustration: Tafel XIII. Tamarindus indica L. in Java. (Tschirch phot.)] =Beschreibung der Stammpflanze.= Die Tamarinde ist ein immergrüner Baum, der eine Höhe von 25 m erreicht (Taf. XIII) aber langsam wächst. Er braucht viel Licht und ein dauernd warmes, tropisches Klima, nimmt aber, da tiefwurzelig, mit relativ trockenem Boden fürlieb. «Sein schöner, ebenmäßiger Wuchs, die dichtbelaubte und infolge der feingefiederten Blätter doch lichte und reichgegliederte Krone, die den Boden in weitem Umkreis beschattet, die weitausladenden Äste und der elastische, aber feste Stamm geben dem schönen Baum ein prächtiges Aussehn (Taf. XIII). Kraftvoll und doch zierlich, ist er eine herrliche Zierde der Landschaft vollends dann, wenn er im Schmucke seiner zahlreichen wohlriechenden, feingeaderten Blüten prangt oder mit tausenden rehbrauner, an langem Stiele herabhängender Fruchthülsen beladen ist» (~Tschirch~, Indische Heil- und Nutzpflanzen). Ich traf in Java aber oft Tamarinden ohne Blüten und dann wieder solche mit nur spärlichen. Auch ~Rumphius~ sagt: «Flores sunt rari et vagi». Auf den Blattreichtum geht die griechische Bezeichnung δένδρον πολύφυλλον (bei ~Theophrast~) und in Java sagt man: «Er hat Schulden wie der Tamarindenbaum Blätter.» Der bis 8 m im Umfang messende Stamm hat ein sehr geschätztes Holz, das von Insekten nicht angegangen wird. [Illustration: Fig. 172. Blüte von _Tamarindus indica_ L. im Längsschnitt. [Nach +Luerssen+.]] Die alternierenden +Blätter+ sind paarig gefiedert, 10-20 jochig, die fast sitzenden, ganzrandigen Fiederblättchen 12-20 mm lang, lineal-länglich, abgerundet gestutzt oder ausgerandet, ungleichhälftig, unterseits blaugrün, die häutigen Nebenblättchen hinfällig. Die Blätter zeigen Schlafbewegung (s. unter Geschichte). Die zygomorphen, hermaphroditen +Blüten+ stehen in endständigen Trauben. Das enge, röhrige, kreiselförmige Receptaculum ist mit dem drüsigen Discus ausgekleidet, der vierzählige +Kelch+ in der Knospe dachig. Von den vier, dem Rande des Receptaculums inserierten, weißlichen, dann blaßgelblichen und abfallenden, häutigen Kelchblättern sind die beiden oberen (hinteren) zu einem breiten, fast ovalen Blatte verwachsen, die beiden unteren (vorderen) sind länglich. Von der ursprünglich fünfzähligen +Corolle+ sind die zwei vorderen Blätter zu pfriemenförmigen Spitzchen abortiert, von den drei hinteren (oberen) ist das mittlere schmäler, fast sitzend und etwas kahnartig zusammengelegt, die beiden seitlichen breit genagelt, alle drei weiß und rot geadert, etwa gleich groß, wellig gekerbt. Von den neun zu einer, oberseits offenen, Scheide verwachsenen +Staubfäden+ sind nur die drei vorderen Kelchstamina fertil, die anderen sechs als spitzchenförmige, an der Spitze der Scheide sitzende Staminodien entwickelt. Der gestielte einfächerige Fruchtknoten trägt einen, wie die Stamina, bogenförmig gekrümmten Griffel mit kleiner gestutzter Narbe und enthält eine ganze Anzahl Ovula (Fig. 172). Die +Frucht+ hängt an einem mehrere Zentimeter langen Stiel. Sie wird sehr verschieden lang (selten über 15 und bis 20 cm, meist viel kürzer, besonders bei den kleinfrüchtigen Sorten). Sie ist länglich, kurz und scharf zugespitzt, meist etwas gekrümmt und mäßig zusammengedrückt, an den Stellen, wo die Samen liegen, meist etwas aufgetrieben, oder gar infolge von Einschnürungen knotig gegliedert. Sie ist ein nicht aufspringendes Legumen, dessen Bauchnaht kaum deutlich hervortritt, mit gelbbraunem oder hellbraunem, fast warzig-rauhem, sehr zerbrechlichem, etwa 0,5 mm dickem Exocarp, das außen bisweilen auf hellem Grunde ein feines dunkles Netzwerk erkennen läßt. Das Mesocarp ist ein weiches Fruchtmus, an dessen äußerem Rande auf der konkaven Rückenseite der Frucht ein derbes Bündel bis zur Spitze verläuft, während auf der konvexen Bauchseite zwei starke und 2-4 zwischen diesen liegende schwächere Bündel verlaufen (Fig. 174), von denen aber nur die stärkeren die Spitze der Frucht erreichen, die 2-4 schwächeren aber meist schon vorher blind endigen. Von allen gehen fast in rechtem Winkel Sekundärnerven ab, die zu Anastomosen führen. Dieses Bündelsystem läßt sich bei der trockenen Frucht oft als grobfaseriges Netzwerk in toto vom Mesocarp außen ablösen. Das Endocarp ist als papierdünne zähe Pergamenthaut entwickelt und zwischen den Samen gefächert. Es kleidet die 1-12 ovalen Fächer der Hülse aus, die innen bisweilen spiegelglänzend erscheinen und je einen glänzend rotbraunen, der Bauchnaht angehefteten, endospermfreien Samen einschließen (Fig. 173). Früchte bildet die Tamarinde vom zehnten Jahre an. In Java blüht der Baum im November und Dezember zu Beginn der Regenzeit. Die Früchte sind dort im Februar vollreif, was man an der Brüchigkeit des Epicarps erkennt. Sie werden mit Bambusstangen abgeschlagen, was ohne Schwierigkeit möglich ist, da der Fruchtstiel sehr spröde ist (~Tschirch~). In Vorderindien blüht T. im April und Mai. Ein Baum liefert dort 5-6 maunds (c. 412-494 lbs.) Früchte. In Westindien sind die Früchte im Juni bis August reif (~Hooper~). Die Eingeborenen Vorderindiens betrachten die Ausdünstungen des Baumes als schädlich. ~Semler~ empfiehlt, die Früchte mit der Hand oder die nicht erreichbaren mit einer sog. Pfropfreiserschere zu pflücken. [Illustration: Fig. 173. _Tamarindus indica._ Radialer Längsschnitt durch die Frucht -- schematisch. [+Tschirch.+]] [Illustration: Fig. 174. _Tamarindus indica._ Frucht geöffnet, das Epikarp (p) abgetragen, so daß das Fruchtfleisch (Mesokarp, m), die Gefäßbündel (f) und ein Same (s) sichtbar werden. [Aus +Vogl+, Kommentar.]] Die Tamarinde ist ursprünglich im tropischen Afrika bis südlich zum Sambesi einheimisch. Der Baum durchzieht das Gebiet des Senegal, des Niger, Angola und des Tsad-Sees, geht in die Nilländer, durch den äußersten Nordosten Afrikas nach Mosambik bis ungefähr 24° s. B., während er seine Nordgrenze bei ungefähr 14½° n. B. am weißen Nil (nach ~Schweinfurth~ schon bei 12° n. B.) erreicht (~Flückiger~). Er wurde aber sehr frühzeitig nach Arabien, Indien, Cochinchina, den Philippinen, Java, wie überhaupt nach Südasien gebracht und ist vielleicht sogar dort wie in Nordwest-Australien (~F. von Müller~) schon ursprünglich heimisch. Nach Tahiti kam T. schon durch ~Cook~. Nach dem tropischen Amerika, besonders nach den Westindischen Inseln, Mexiko, Ecuador, Guayaquil, Brasilien, Argentinien ist die T. durch die Europäer im XVI. Jahrh. gebracht worden, hier hat sich eine Varietät (s. oben) entwickelt. ~Dymock~ glaubt, daß die T. in Süd-Indien einheimisch ist. ~Brandis~ bezweifelt es. Die Pflanze hat jedenfalls viele einheimische indische Namen. ~Crawfurd~ hält sie auch für in Java einheimisch. Sie hat eigene malaiische Namen und spielt im Volksleben eine Rolle. Ich habe sie wild in Java nicht angetroffen. Eigentliche Anpflanzungen, Tamarindenwälder, traf ich nirgends in Süd-Asien, dagegen sehr oft den Baum in Alleekultur (I, Fig. 34) und auch wohl in den Kampongs (Taf. XIII). Dies gilt auch für Vorder-Indien (frequently planted in avenues and topes, ~Hooper~ 1907). Einer der größten Plätze der Erde, der Koningsplein in Batavia, ist von einer Tamarindenallee umgeben. T. ist ein vorzüglicher Schattenbaum. Jetzt ist T. durch Kultur über alle tropischen Länder der Erde verbreitet, aber Versuche, bessere Spielarten in der Kultur zu erzielen, sind nirgends gemacht worden (~Semler~). =Lit.= ~Taubert~ in Engler-Prantl. -- ~Luerssen~, Med. pharm. Bot. -- ~Roxburgh~, Flor. Ind. III, 215. -- ~Brandis~, Forest flor. northw. a. centr. India 1874, 163. -- ~Bentham~, Flor. austral. II, p. 294. -- ~Oliver~, Flor. trop. Africa II, 308. -- ~Ficalho~, Plantas uteis da Africa portugueza Lisboa 1884. -- ~Crawfurd~, Dict. of Ind. islands 1856, 425. -- ~Hooper~, Tamarindus Agric. Ledger 1907, Nr. 2. -- ~F. v. Müller~, Not. s. 1. végét. de l’Australie. Melb. 1866. -- ~Macfadyen~, Flora of Jamaica 1837, 335. -- ~M. Pérez Maciel~, Bot. Min. Agr. Buenos Aires 3 (1905), 110. -- ~de Clercq~, Nieuw plantkund. wordenboek. Nederl. Ind. 1909. -- Die Kultur ist beschrieben in ~Semler~, Tropische Agrikultur II, 209. -- +Abbild.+: ~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpfl. t. 49 u. 50, ~Berg-Schmidt~, Atlas I. Aufl. t. 9, ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl., t. 131, ~Nees~, plant. med. t. 343, ~Hayne~, Arzneigew. X, t. 41, ~Bentley-Trimen~, Med. plant. t. 92, ~Woodville~, t. 161, ~Bot. Mag.~, t. 4563, ~Taubert~ in Engler-Prantl, Pflanzenfam. III, 3, Fig. 79 und vielfach anderwärts. -- Die ersten Abbildungen der T. finden sich in ~Bontius~, Histor. nat. Indiae 1658 (I, S. 897) und bei ~Piso~ (I, S. 893). -- ~Rheede~ bringt (Hort. malabar. I, t. 23) unter Balam pulli s. Maderam pulli (braman.: sinza) eine gute zweifarbige Abbildung eines fruchttragenden Zweiges, daneben Blüte und Samen sowie eine ausführliche Beschreibung. -- ~Rumpf~ (Herb. Amb. 2, 90) gibt unter Tamarindus (= Assam djava) eine sehr ausführliche Beschreibung und auf Taf. XXIII eine gute Abbild. eines blühenden Zweiges mit Frucht u. Samen. -- Ältere Beschreibungen: ~Ray~, histor. plant. p. 1748. -- ~Sloane~, Cat. pl. Jam. p. 147 (Synonyme). -- ~Marcgraf~, Bras. hist. p. 107. =Pathologie.= Den größten Schaden richten an der Tamarindenernte die Affen an, die «reinen Tisch» zu machen pflegen; dann Papageien und andere Vögel, Eichhörnchen und fliegende Füchse, weniger Insekten (~Semler~). =Gewinnung und Handelssorten.= _Pulpa tamarind._ kommt besonders aus Ostindien und Westindien in den Handel. Die Levante scheint nichts von Bedeutung mehr in den Großhandel zu liefern, wenigstens fanden sich 1911 im deutschen Handel weder levantinische noch ägyptische Tamarinden, die zu ~Pomets~ Zeit im Handel vorherrschten. Die in Deutschland gebräuchlichen +ostindischen+, braunen «Calcutta» (black tamarinds) sind dunkelbraun oder fast schwarz und fest, nicht feucht, die in England vorgezogenen +westindischen+ (red tamarinds) heller, gelbbraun oder rotbraun, oft feucht und weniger sauer. Die Endocarphüllen sind bei der westindischen Tamarinde nicht so lederartig, wie bei der ostindischen, die Farbe des Muses und des wässrigen Auszuges heller, der Samengehalt höher, die Gefäßbündel länger und dicker, der Geschmack süßer, die Samen sitzen oft noch zu 2-4 in der Hülle (~Brunner~). Im deutschen Handel fanden sich 1911 +Calcutta+- und +Madras+-Tamarinden und in kleineren Mengen die +westindischen Barbados+. Die beiden ersteren Sorten, von denen Calcutta meistens die bessere Qualität ist [sie findet sich in Fässern (Oxh.) zu c. 250-350 kg], werden in der Hauptsache zum Ansetzen der +Kautabaksaucen+ gebraucht, gehen aber auch in sehr großen Posten nach +Süddeutschland+, der +Schweiz+ und +Italien+, um dort zur Herstellung von +Fruchtsäften+ verwendet zu werden. Für +medizinische+ Zwecke dürften +Madras+- (in Fässern zu c. 200 kg) und Calcutta-T. weniger verwendet werden, eine größere Verwendung für derartige Zwecke, in der Hauptsache als Abführmittel, finden die +westindischen Barbados-Tamarinden+, die aber von deutschen Firmen fast garnicht, sondern ausschließlich von englischen Firmen in den Handel gebracht werden (~Caesar~ und ~Loretz~). Der indische Markt unterscheidet mehrere Qualitäten, je nach dem Gehalt an Schalen, Samen und Fasern. Die guten Sorten werden einem Nachreifungsprozeß an der Sonne unterworfen. Die Tamarinden müssen, um ein +schönes Aroma+ aufweisen zu können, genügend lange in Indien liegen bleiben, damit der richtige +Gärungsprozeß+ im +Produktionsland+ stattfindet. Je früher die Verladung der Tamarinden von Calcutta erfolgt, desto weniger haltbar ist meistens die Ware, und auch das Aussehn der zu früh verschifften Ware ist +nicht dunkelbraun, sondern fuchsig+ (~Caesar~ und ~Loretz~). +Erst durch diesen Gärungsprozeß wird also das frisch hellrotbräunliche Fruchtmus schwarz.+ In Indien wird das von dem Epicarp und den Samen befreite Mus oft mit 10% Salz gemischt und mit den Füßen zu einer gleichmäßigen Masse geknetet. Diese _Pulpa_ gelangt nicht zur Ausfuhr nach Europa. In Guzerat, Dekkan, Kontan wird das Fruchtmus bisweilen mit Seewasser zu einem breiigen Teig geknetet und dieser in Säcke verpackt (~Flückiger~). Mit Zucker werden ostindische Tamarinden nur selten präpariert. In Indien wird T. produziert in Nasick, Poona, Juneer, Kaira, Tullgaum. Am meisten geschätzt ist die Guzeratsorte. +Calcutta+ ist wichtigster Tamarindenhafen für den Export nach Europa, weniger Madras und Bombay. Bombay exportiert viel nach Sind, Persien und dem Roten Meer. +Hamburg+ empfing 1909: 148600 kg (~Tunmann~); +Triest+ importierte 1903 noch 5039, 1904: 3217, 1908: 217, 1904 nur 4 quint Tamarinden. In Westindien werden die Früchte von der Schale sorgfältig befreit, in Fässern übereinander geschichtet und kochender Sirup darüber gegossen bis das Faß voll ist (oder vorher zwischen die Früchte Zucker geschichtet, ~Wright~). Es ist auch nicht mit Zucker behandeltes westindisches Mus im Handel. Das westindische Tamarindenmus, das, da es keinem Gärungsprozeß wie das ostindische unterworfen wird, rotbräunlich gefärbt ist, gelangt in Fässern aus St. Kitts, Nevis, Antigua, Montserrat, Dominica, Martinique, Barbados, Grenada und Guayaquil vorwiegend nach London. Die brasilianischen Tamarinden werden besonders nach Nordamerika verschifft. Amerika importierte 1897 für 2699 Dollars Tamarinden. Am oberen Nil (Cordofan, Sennaar, Darfur, Arabien) wird die _Pulpa_ in bis 1 kg schwere Kuchen gepreßt, die an der Sonne getrocknet werden. Diese sind schwarz und fest und außen oft sehr unrein. Sie wurden früher bisweilen als +ägyptische+ Tamarinden im Handel angetroffen und kamen über Alexandrien nach Marseille, spielen jetzt aber nur im afrikanischen Binnenhandel eine Rolle. Ähnliche Kuchen formt man in Senegambien und Arabien. Auf den Märkten in Java und Singapore traf ich sowohl die ganzen Früchte, wie das zu Kuchen vereinigte, in Pisangblätter eingeschlagene Fruchtmus. =Lit.= ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Dymock~, Veg. mat. med. West. Ind. -- Pharmac. indic. -- ~Wright~, Med. pl. of Jamaica. -- ~Lunan~, Hort. Jamaicens. II (1814), 224. [Illustration: Fig. 175. _Tamarindus indica_ L. Querschnitt durch die Fruchtschale. 3-4 Epikarp. 5 Mesokarp. 6-8 und H Endokarp. H Haarschicht, verfilzt. [Nach +Hallström+.]] =Beschreibung der Droge.= Die Droge bildet ein nicht sehr appetitlich aussehendes, entweder schwarzbraunes oder schwarzes (Calcutta-T.) oder rotbraunes (westindische T.) Mus, das hauptsächlich aus dem weichen, aber bald hart werdenden Mesocarp (Sarcocarp) der Frucht, das sich schon beim Trocknen der Frucht vom Epicarp ablöst, besteht und in das einmal die derben Mesocarpbündel, dann die papierdünnen, die Fruchtfächer auskleidenden Endocarptaschen und endlich die Samen eingebettet sind. Alle diese Teile treten besonders beim Aufweichen des Muses deutlich hervor. Die Samen sind wenig regelmäßig, verkehrt-eiförmig, rundlich, fast viereckig, etwas zusammengedrückt, braunrot oder rotbraun, glänzend, bis 17 mm breit, bis 8 mm dick, mit schmaler Randfurche, die dem Nabelstreifen entspricht. Die Samen sind auch nach Einweichen in Wasser steinhart und nicht zu schneiden («pisa ipsius saxea fere sunt duritate», ~J. Bontius~ 1642), sägt man sie aber durch und legt sie in Wasser, so werden sie schneidbar und die äußere Schicht der Samenschale rollt sich an den Samenrändern (nicht im Mittelfelde!) in einzelnen sich kräuselnden Schuppen ab -- +eine für die Tamarindensamen höchst charakteristische+, anatomisch zu begründende Erscheinung. Das Mittelfeld ist etwas eingesunken und zeigt Parallelstreifen. Der etwas dickere Rand ist grobwarzig. Der Samenkern besteht fast nur aus den großen, hornigen, plankonvexen Cotyledonen, zwischen denen ein kleines, etwas zurückgezogenes Würzelchen und eine noch kleinere Plumula sichtbar wird. Das Durchschnittsgewicht der Frucht beträgt 6-10 g. Von 100 Teilen Frucht kommen 41 Teile auf das Fruchtfleisch, 30 Teile auf die Schale und 29 Teile auf die Samen (pulp: 55, seeds: 33.9, shell and fibre: 11,1, ~Hooper~). 100 Samen wiegen 75,88 g. Der Gehalt der Pulpa an Samen darf 10% nicht übersteigen. ~K. Müller~ fand 2 bis 9,8% (in nicht revisionsfähiger Ware 20,6 und 38%), ~Brunner~ 3,45-37% (in 15 von 21 Mustern unter 10%), ~Adam~ 7-8%. Werden 20 g gut durchgemischtes Tamarindenmus mit 190 g Wasser übergossen und durch zweistündiges Schütteln ausgezogen, so müssen beim Abdampfen von 100 g des Filtrates mindestens 5 g trockenes Extrakt bleiben (Ph. helv. IV). Der Droge dürfen nur geringe Mengen des Epicarps (äußere Hüllschicht, D. A. V) und nur wenige Pilzsporen beigemengt sein. Die Droge schmeckt schwach süßlich und stark sauer und riecht eigenartig (nicht dumpfig!). Man bewahrt sie in Steintöpfen auf. Sie wird leicht hart. [Illustration: Fig. 176. _Tamarindus indica_ L. Querschnitt durch ein Hauptbündel der Fruchtschale aus dem Mesokarp. [Nach +Hallström+.]] =Anatomie.= Die Fruchtknotenwand läßt noch die Bauchnaht erkennen, d. h. die Stelle, wo die Ränder des Carpells verwuchsen. Auf der Rückenseite liegt ein großes Bündel, die Mittelrippe des Carpells, gegen die Bauchnaht hin beiderseits je ein etwas kleineres und rechts und links von der Bauchnaht je zwei ganz kleine Bündel -- also im ganzen sieben, drei große, bis zur Spitze gehende und vier kleine kurze. Von diesen gehen dann später zahlreiche Zweige ab, die das Fruchtfleisch durchziehen. Die Innenwand wird später von Haaren ausgekleidet. Zwischen den Samenfächern unterbleibt diese Haarbildung und die Endocarpstreifen legen sich mit schwach papillöser Epidermis fest aufeinander (~Hällström~). Das +Epicarp+ der reifen Frucht (Fig. 175) besteht zum überwiegenden Teile aus kurzen drei-, vier- oder vieleckigen Sklereïden mit dicker gestreifter und reich getüpfelter Membran und verschieden großem, mit einer braunen, durch Eisenchlorid sich schwärzenden, in Kali aber kaum löslichen Phlobaphenmasse erfülltem Lumen. Außen ist es von einer abschülfernden Korkschicht bedeckt, die aus einem subepidermalen Phellogen hervorgeht, das die außerhalb liegenden Partien abstößt, wodurch die Zeichnung der Oberfläche der Frucht (s. oben S. 530) bedingt wird. In den äußersten kleinen Sklereïden und in dem zwischen die Sklereïden eingestreuten Parenchym finden sich bisweilen wohl ausgebildete monosymmetrische Kalkoxalatkristalle. Die Sklereïden liegen entweder zu Gruppen vereinigt oder isoliert. Die Fruchtschale ist daher in hohem Grade zerbrechlich. Nach Innen zu geht die Sklereïdenschicht in das lockere Parenchym der Mittelschicht der Fruchtschale, das +Mesocarp+, über, von dem einige Schichten der Schale anzuhängen pflegen, der übrige Teil ist samt den Samen von der Schale abgelöst und liegt als eine kompakte Masse im Innern des Ganzen, einen ziemlichen Zwischenraum zwischen sich und der äußeren Fruchtschale lassend. Diese Mittelschicht der Fruchtschale, das Mesocarp, bildet das sog. «+Fruchtmus+». Sie besteht aus vielen Zellreihen sehr zartwandiger, parenchymatischer Zellen. Ihre Wand wird durch Jod schwach gebläut (~Flückiger~). Betrachtet man das Mus der Droge unter dem Mikroskop in Glycerin oder Öl, so sieht man zahlreiche, meist infolge Pektinbildung in der Zwischenzellsubstanz mehr oder weniger isolierte, 80-160 mik. große Zellen, die einen braunen zuckerreichen Inhalt und häufig auch zahlreiche kleine, 1,5-18 mik. große Stärkekörner enthalten. Daneben findet man +drei+ Kristallformen: derbe, unregelmäßig ausgebildete, gestreckt-prismatische, tafelförmige und um einen Punkt angeordnete nadelförmige Kristalle (~Tschirch~). Besonders die großen Tafeln des erst in heißem Wasser löslichen Weinsteins treten gut hervor, die anderen Kristalle sind Weinsäure und Zucker, die sich schon in kaltem Wasser lösen. Gefäßbündel durchziehen besonders reichlich die äußersten Partien der Mittelschicht der Fruchtschale, so daß bei dem Ablösen der Mittelschicht von der äußeren Fruchtschale auf ersterer ein reich verzweigtes Netz zarter und gröberer Gefäßbündel oberflächlich aufzuliegen pflegt. Für die Entwicklung von Schimmelpilzen ist dieser feuchte Raum und der gute Nährboden sehr geeignet. Man findet denn auch dort oft zahlreiche Kolonien. Auch in den tiefer liegenden Partien finden sich Bündel. Dieselben sind jedoch meist zarter -- auch weniger zahlreich. Die oftmals von Kristallkammerfasern begleiteten Bündel der Tamarindenfruchtschale zeichnen sich durch einen oft ziemlich breiten Bastzellpanzer und viel Libriform aus, demgegenüber die wenigen getüpfelten und Spiral-Gefäße und der Siebteil nur einen kleinen Raum einnehmen. Das große Rückenbündel wird von relativ wenigen Bastzellgruppen begleitet, führt aber in dem mächtigen Holzkörper reichlich Libriform. Auch sein Siebteil ist stark entwickelt (~Hällström~). Der innerste Teil der Fruchtschale, das +Endocarp+, das die Samenfächer als Pergamenthaut auskleidet, ist dreischichtig. Unmittelbar an das Mesocarp nach innen zu schließt sich ein drei- bis fünfreihiger Bastzellpanzer, dessen tangential gestreckte, bis 300 mik. lange, bis 18 mik. breite Zellen ziemlich stark, aber ringsum gleichmäßig verdickt, und mannigfach verbogen, also fest miteinander (gegen tangentialen Zug) verzahnt sind. Diese Bastzellen besitzen große, linksschiefe Spaltentüpfel. An diese Schicht schließt sich eine Zone dünnwandiger Zellen und an diese die silberglänzende, jedes einzelne Samenfach rings auskleidende Haut, die von außerordentlich langgestreckten dünnen, hin und her gebogenen und miteinander verfilzten Zellen (Fig. 175 u. 177) gebildet wird, die sich in der Nähe der Querwände der Samenfächer oft zu einzelnen Fäden isolieren, so daß sich dort ein zartes, durchbrochenes Netz langer Zellen von einer Seite zur anderen spannt. Diese Schicht geht aus den die Fruchtknotenhöhle auskleidenden Haaren hervor (~Trémeau~). Calciumoxalat (~Flückigers~ Quarzkörnchen?) findet man außer in den Kristallkammerfasern der Bündel (s. oben) auch in der an die Pergamenthaut angrenzenden Schicht des Mesocarps, weniger im übrigen Mesocarp (~Hällström~). [Illustration: Fig. 177. _Tamarindus indica._ Die Haarschicht des Endokarps. Beginnende Verfilzung. [Nach +Hällström+.]] Die Samen werden von einer Testa umhüllt, deren äußerste Schicht aus c. 190 mik. langen und 8-11 mik. breiten, radial gestellten, mit spaltenförmigen Lumen versehenen Palissadensklereïden gebildet wird. Diese Sklereïdenschicht ist an dem Rande des Samens einreihig. Die Zellen besitzen hier eine sehr gegen Wasser empfindliche Wand, so daß sich Teile der Schicht im Wasserpräparat abrollen. Dadurch wird die oben (S. 533) erwähnte Erscheinung bedingt. Ihre Wand ist außen braun, innen hell. An dem breiten eingesunkenen Mittelfelde der Breitseiten des Samens (s. oben S. 533) ist die Palissadenschicht zweireihig. Außen liegt eine gefärbte, innen eine farblose Palissadensklereïdenreihe, die genau aufeinander passen, so daß sich das Spaltenlumen durch beide fortzusetzen scheint. Man kann aber zwischen beiden eine zarte Trennungsmembran sehen. Das erweiterte Lumen der inneren Reihe enthält kleine Körnchen. Die Palissadenschicht des Mittelfeldes ist nicht empfindlich gegen Wasser (s. oben S. 533). Unter der Palissadensklereïdenschicht folgt eine Zone heller, bisweilen knochenförmiger oder doch radialgestreckter, oft chlorophyllführender Zellen mit stark quellbarer Wand. Die knochenförmigen Zellen sind am eingesunkenen Mittelfelde besonders hoch und gut ausgebildet. Dann folgt eine verschieden mächtige Schicht kleiner ausgebuchteter oder sogar sternförmiger derber Zellen, die einen rotbraunen, in Wasser unlöslichen Inhalt führen und viele Interzellularen zwischen sich lassen (~Vogl~ stellt ihren Inhalt den Inklusen der _Ceratonia_ an die Seite). Die innerste Schicht endlich, die sich in Wasser ebenfalls stark streckt, wird von großen, dünnwandigen, in den inneren Schichten oft radialgestreckten Zellen gebildet, die ebenfalls einen rotbraunen Inhalt führen. Zwischen den beiden Schichten liegt bisweilen eine Zone obliterierter Zellen. Die beiden den Samenkern bildenden plankonvexen Cotyledonen besitzen sehr stark verdickte, mit großen Tüpfeln versehene Zellen, deren sekundäre Wand sich mit reinem Jod nicht (~Nägeli~), wohl aber mit jodwasserstoffhaltiger Jodlösung bläut, die also aus Amyloid besteht (vgl. oben S. 263) und deren enges Lumen vollgepfropft ist mit in Ölplasma (~Tschirch~) eingebetteten kleinen, nur 4-7 mik. großen Aleuronkörnern. Procambiumstränge durchziehen das Interzellularen führende Gewebe. Erhitzt man den Schnitt mit Wasser zum Sieden, +so lösen sich die sekundären Amyloidmembranen+ und es bleibt nur das Netzwerk der primären Membranen und die Öltropfen übrig. Das Amyloid der Tamarinden verhält sich also ähnlich wie Lichenin (s. oben S. 263). Die c. 3 mm lange kegelige Radicula trägt oben die c. 1 mm lange Plumula, an der der kegelige Vegetationspunkt und eine Gruppe junger Blattanlagen sichtbar ist, die schon deutlich die Fiederung zeigen (Fig. 173). =Lit.= ~Nägeli~, Reakt. von Jod auf Stärkekörner und Zellmembranen. Sitzungsb. d. Münch. Akad. 1863 (Buchn. Rep. 13 [1864] 145). -- ~Trémeau~, Rech. s. l. devel. du fruit et de l’orig. d. la pulpe d. l. casse et du tamarin. Thèse Paris 1892. -- ~K. H. Hällström~, Z. Entwickg. d. Fruchtwand v. Cer. Sil. u. Tamar. ind. Ber. d. pharm. Ges. 1910, 446. -- ~Vogl~, Commentar 1908. -- ~Pammel~, Journ. appl. Micr. I, 37. =Chemie.= Der charakteristische Bestandteil der Tamarinden ist der +Weinstein+, das primäre Kaliumsalz der d-Weinsäure (S. 527). Der Weinstein war schon im Altertum bekannt und wurde auch zur Darstellung von Pottasche benutzt. Für Faex vini, τρύξ οἴνου, kam im XI. Jahrh. der Name Tartarum, dann Tartarus auf, welches Wort wohl aus dem arabischen durdijjᵘⁿ umgebildet und dann umgedeutet wurde (durdijj = Bodensalz, sowohl beim Öl wie beim Wein, in tartarus = Unterwelt). ~Marggraf~ fand in ihm 1764 das Alkali. ~Scheele~ zerlegte 1769 das Calciumtartrat und isolierte die Weinsäure (Sal essentiale Tartari), die er auch in den Tamarinden nachwies. Aber bereits ~Angelus Sala~, dem wir eine Tartaralogia verdanken (I, S. 868), hatte (1647) Weinstein im eingedampften Auszuge der Tamarinden beobachtet und ~Cornette~ sowie ~de Lassone~ hatten sein Vorkommen in den T. bestätigt. Weinsäure neben Weinstein fand schon ~de Lassone~ in den ~T. Scheele~ erkannte sie 1770 als eine besondere Pflanzensäure, die er in den T. +nicht+ von Citronensäure und Apfelsäure begleitet fand (~Retzius~ erhielt 1776 Weinsäure rein und kristallisiert, I, S. 967). ~Vauquelin~ zeigte 1790, daß der ausgepreßte Saft von Tamarinden (und anderen Früchten) in der Ruhe zu einer zitternden durchscheinenden Gallerte erstarrt. +Das Pektin, von+ ~Vauquelin~ +gélatine (gelée végétale) genannt+, von ~Braconnot~ 1834 in Pektin umgetauft, +wurde also in der Tamarinde entdeckt+. ~Vauquelin~ fand in Prozenten: 12,51 +Zucker+, 5,11 +Gummi+, 6,25 +Gélatine+, 9,4 +Citronensäure+, 1,56 +freie Weinsäure+, 3,25 +Weinstein+, 0,42 +Apfelsäure+, 37,5 +Matières féculentes+, 24 Wasser; ~Scheele~ fand keine +Citronensäure+ (s. oben). ~Flückiger-Hanbury~ geben kleine Mengen an (~Flückiger~ 1889: 7,17%); die Angabe ~Nesslers~, daß Tamarinden 13,5% davon enthalten, beruht wohl auf einem Beobachtungs- oder Rechenfehler. Die bei der Destillation mit verd. Schwefelsäure übergehende +Ameisensäure+, +Essigsäure+ (~Grünzweig~) und (in Spuren) +Buttersäure+ (~Gorup-Besanez~) betrachten die meisten Autoren als aus der Weinsäure (und Citronensäure) bei der Gärung hervorgegangen, also als sekundäres Produkt, da Weinsäure bei der Oxydation diese drei Säuren liefert. 1 g der im Handel befindlichen Pulpa vermag meist 14-17 ccm n/10 Natron zu neutralisieren (~Flückiger~). Bei der Dialyse des Muses dialysiert vornehmlich Weinstein und im Dialysator bleibt das Pektin (~Flückiger~, ~Tschirch~). ~K. Müller~ fand in der +von den Samen befreiten Pulpa+ von Calcutta T. 21,92 bis 32,58 (im Mittel 27)% Wasser, 12,2-20,2 (M. 16,2)% unlöslichen Rückstand, 4,66-6,01 (M. 5,27)% Weinstein, 5,29-8,80 (M. 6,63)% Weinsäure, 0,64-3,95 (M. 2,20)% Citronensäure (+ Apfelsäure, die in sehr geringer Menge vorhanden). 1 g brauchten im Mittel zur Neutralisation 17,6 n/10 Ammon. Die wasserfreie Pulpa enthielt im Mittel 7,2% Weinstein und 9,09 Weinsäure. ~Brunner~ fand (1891) in Calcutta T. (und einer Sorte westindischer T.) 20,4-29,27 (22,79)% Wasser, 29,05-56,13 (21,53)% Extrakt, 12,16-21,52 (15,42)% Cellulose, 0,66-4,68 (5,37)% Schleimstoffe, 14,93-22 (20,47)% Zucker, 3,6-5,87 (4,62)% Weinstein, 4,29-7,92 (6,84)% Weinsäure, 0,78-3,08 (3,72)% Citronensäure, Spuren Apfelsäure (nicht regelmäßig). Die +Asche+ des Löslichen betrug: 2,81-4,87%, die des Unlöslichen 0,721-2,27%. Schwermetalle waren nicht nachweisbar. ~Babo~ und ~Mach~ erhielten im Mus 34,33% Zucker als Invertzucker berechnet, 15,51 freie Säure auf Weinsäure berechnet, 6,61 Weinstein, 8,23 freie Weinsäure, 4,4 +Apfelsäure+, keine Citronensäure, 3,3 Asche. Auch ~Adam~ erhielt (1905) +keine+ Citronensäure, dagegen mehr +l-Apfelsäure+ als die früheren Autoren und etwas +Milchsäure+ und +Essigsäure+. ~Adam~ fand in kernfreiem Mus: Acidität (als Weinsäure ausgedrückt): 15,4%, Weinstein 7,74%, Weinsäure im Weinstein 6,17%, freie Weinsäure 10,18%, hieraus Gesamtweinsäure berechnet 16,35%, flüchtige Säure, als Essigsäure, 0,014%, Milchsäure 0,465%, Apfelsäure + Milchsäure, als Apfelsäure berechnet, 2,01% -- in Wasser unlöslich 12,36, Wasser 30,5, Asche 2,89, Rohprotein 3,22, Invertzucker 24,73. Die Lösung dreht links, nach Vergären bleibt eine schwache Rechtsdrehung bestehen. In 100 T. Fruchtfleisch javan. Tamarinde fand ~Prinsen Geerligs~ 5,81 +Dextrose+ und 2,51 +Lävulose+; Saccharose fehlte. Eine andere Analyse javan. T. von ~Bosz~ (1910) ergab dagegen 41,91% reduz. Zucker, keine Saccharose, 0,44% Fett, 8,16% Stärke, 26,9% Wasser, 3,03% Asche. Die Asche der _Pulpa tamarindi_ enthält bisweilen Kupfer (über die Verbreitung des Kupfers bei Drogen vgl. ~Tschirch~, Das Kupfer vom Standpunkt d. gerichtl. Chem. usw. Stuttgart, Enke 1893). ~Remeaud~ untersuchte aus Früchten von Indo-China selbst dargestelltes Tamarindenmus. Er fand in 100 g ganzer Frucht: Epicarp und Gefäßbündel 24,35, Endocarp: 7,76, Samen 37,07, Pulpa 29,31. Die Pulpa enthielt: -----------------------------+-------------+------------+------------ In 100 g | Präparierte | Gereinigte | Rohe Pulpa | Pulpa | Pulpa | ohne Samen =============================+=============+============+============ Trockenes Extrakt | 62,831 | 73,04 | 73,035 Wasser (und bei 100° | | | flüchtige Bestandt.) | 37,169 | 26,96 | 26,965 Asche | 2,816 | 3,259 | 3,198 Unlöslich in Wasser | 6,246 | 7,078 | 12,348 Gesamtsäure (auf Weinsäure | | | berechnet) | 11,729 | 15,340 | 15,888 Weinstein | 6,055 | 7,340 | 6,575 Phosphorsäure | 0,248 | 0,375 | 0,275 And. Säuren (nicht bestimmt, | | | auf Weinsäure berechnet) | 3,603 | 5,378 | 5,906 Invertzucker | 42,307 | 34,284 | 32,000 Saccharose | 0,669 | 0,460 | -- Pektin | 0,352 | -- | 1,379 +Es ist also auch heute noch nicht sicher festgestellt, ob Tamarinden Citronensäure enthalten oder nicht.+ Nach einem vorläufigen Versuche zu urteilen, halte ich ihr Vorkommen in den ostindischen T. des Handels für zweifelhaft. Vielleicht wird die ursprünglich vorhandene Citronensäure durch den Gärungs- bzw. Nachreifungsprozeß (oben S. 532) zerstört. ~Dieterich~ fand (1894) in kernfreiem Mus: 10,83-16,10% «Säure» (durch Titration ermittelt und auf Weinsäure berechnet), 19,5-34,26% Zucker und 41,7-57,37% Extrakt. 1904 in _Pulpa Tamar. cruda_: 3-12% Kerne, 88-97% kernfreie Pulpa, 35-49,51% bei 100° getrocknetes wässeriges Extrakt, 9,66-13,85% «Weinsäure», 20-37,4% Invertzucker. Gute Tamarinde sollte nicht mehr als 15% Zellulose und 22% Wasser enthalten und nicht weniger als 45% Extrakt geben. Die Substanz, welche die abführende Wirkung bedingt, ist unbekannt. ~Soubeiran~ und ~Regnaud~ führen sie auf den Weinstein, die Säuren und ein (unbekanntes) principe résinoide zurück. Doch dürfte auch der Zucker daran beteiligt sein. Die +Samen+ (die Samenkerne) enthalten in Prozenten: 10,5 (9,35) Wasser, 13,87 (18,06) Eiweiß, 4,5 (6,6) Fett, 63,22 (62,88) Kohlehydrate, 5,36 (0,66) Faser, 2,55 (2,45) Asche (~Hooper~). Ölgehalt nach (~Schädler~) 15-20%. Der Samenkern gibt, da er Amyloid enthält, mit Wasser gekocht eine dickliche, mit Jod sich bläuende Lösung (s. Anatomie), die bei der Hydrolyse Galaktose, beim Behandeln mit Salpetersäure Schleimsäure liefert. Das +Öl des Samen+ scheint in den (94,9%) Fettsäuren Arachinsäure zu enthalten. Säurezahl: 0,84, Verseifungszahl: 183, Jodzahl: 87,1 (~Hooper~). Ein Exsudat des Baumes von Calciumoxalat beobachtete ~Prebble~ (Pharm. ind.). =Lit.= ~Sala~, Opera medico-chym. Frankf. 1647, 137. -- ~de Lassone~, Hist. d. l. Soc. Méd. Paris II, 269. -- ~Scheele~, Phys. u. chem. Werke II, 379 (1770). -- ~Retzius~, Versuche mit Weinstein u. dessen Säure. Abh. d. Schwed. Akad. 1770. -- ~Vauquelin~, Analyse du Tamarin et reflexions s. quelqu. unes d. s. prép. medic. Ann. d. chim. 5 (1790), 92 (dort die ältere Lit.: ~Rouelle~, ~Cartheuser~, ~Bucquet~). -- ~Gorup-Besanez~, Buttersäure in den Früchten des Seifenbaumes (Sapind. Saponaria) nebst einigen Bemerk. über d. flücht. Säuren d. Tamarinden. Lieb. Ann. 69 (1849), 369. -- ~C. Grünzweig~, Über Buttersäuren verschied. Ursprungs. Lieb. Ann. 162 (1872), 227. -- ~Pfaff~, Syst. d. Mat. med. -- ~K. Müller~, Über Tamarinden, Pharm. Centralh. 1882, 581. (Arch. Pharm. 1883, 42). -- ~F. J. H. Brunner~, Bestandt. d. Fruct. Tamar. Apoth. Zeit. 1891, 53. -- ~Nessler~ u. ~Barth~, Zeitschr. anal. Chem. 1882, 63. -- ~Prinsen~ ~Geerligs~, Zuckergeh. Chem. Zeit. 1897, 719. -- ~Bosz~, Bull. Kolon. Mus. Haarlem Nr. 46, 1911. -- ~Dieterich~, Helfenb. Ann. 1888, 1893, 1894. -- ~Adam~, Beitr. z. Kenntn. d. Tamar. Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1905, 797. -- ~Babo~ u. ~Mach~, Handb. d. Weinb. u. d. Kellerwirtsch. II, 766. -- ~O. Remeaud~, Sur l. comp. d. l. pulpe de tamarin. Journ. pharm. 1906, 424. -- Die Methoden zum Nachweis und zur Bestimmung der Weinsäure und Citronensäure (sowie des Weinstein) bei ~K. Müller~ (a. a. O.), ~Brunner~ (a. a. O.), ~Adam~ (a. a. O.), ~Remeaud~ (a. a. O.). Vgl. ferner bei ~Barbet~ (Chem. Centralbl. 1859, 366), ~Schnitzler~ (Ebenda 1862, 317), ~Fleischer~ (Arch. Ph. 1874, 97), ~Aller~ (Arch. Pharm. 1876), ~Cailletet~ (Ebenda 1878), ~Salzer~ (Ebenda 1888) und in ~Schmidt~, Pharmazeut. Chemie. Vgl. auch oben S. 508. Eine ganz scharfe Methode, kleine Mengen von Citronensäure neben Weinsäure nachzuweisen, gibt es zurzeit noch nicht. +Pektin+: ~Soubeiran~, ~Vauquelin~, ~Payen~, ~Braconnot~ (vgl. unter Pektin S. 277); -- ~Frémy~, Chem. Unters. über d. Reifen der Früchte, Pektose, Pektase (deutsch v. ~Gräger~) 1851 (Ref. in Arch. Ph. 68 [1851], 72); -- Übersicht bei ~Reichardt~, Die Gruppe der Pektinkörper. Arch. Pharm. 56 (1877), 116 und in ~Gmelins~ Handb. 1862. +Samen+: ~Hooper~, Agric. Ledger 1907, Nr. 2. -- ~Sachsse~, Chemie d. etc. Kohlenhyd. 1877. -- ~Tollens~, Kohlenhydrate I, 227. -- ~Schädler~, Öle. -- Über Amyloid s. oben S. 263. =Verfälschung.= Als Verfälschungen sind beobachtet besonders beigemischte Samen und Fruchtwandstücke, dann Wurzelteile (1891), Melasse. Eine Verfälschung mit Zucker, anderen Musen usw. lohnt bei dem billigen Preise der Tamarinden nicht (Pflaumenmus erwähnt schon ~Mesuë~). In schlechtem Mus finden sich bisweilen Maden und Milben. Als zufällige Beimengungen können (von den beobachteten) Leinsamen und Kürbiskerne gelten. Kupfer (durch Einstellen eines blanken Messers nachzuweisen) ist neuerdings nicht mehr beobachtet (s. oben S. 537). =Anwendung.= Die Tamarinde ist noch heute ein sehr beliebtes gelindes Abführmittel, wie zur Zeit des ~Mesuë~, wo wir im Grabaddin (I, S. 599) das Tamar Indorum unter den medicinis solutivis als Bestandteil der Laxirlatwergen antreffen (s. Geschichte). Die allerdings stark vereinfachte Senna-Tamarindenlatwerge steht noch in unseren neuesten Arzneibüchern und die Tamarindenkonserven (Confectio s. conserva t., Tamarindenkonserven ~Kanoldt~, Tamar indien ~Grillon~) erfreuen sich großer Beliebtheit. (Der Tamarindenmolken, _Serum lactis tamarindinatum_, der Anfang des XIX. Jahrh. sehr beliebt war, ist jetzt aus der Mode gekommen.) T. wurde also schon während des Mittelalters in Europa als Purgativ benutzt. ~Linschoten~ empfiehlt sie besonders als +billiges+ Abführmittel an Stelle von _Rhabarber_, _Manna_ usw. ~Paludanus~ berichtet, daß die Türken und Ägypter sie viel bei +Fieber+ brauchen. Tamarindenlimonade wird von Fieberkranken auch heute noch gern als erfrischendes Getränk genommen. Die als unschätzbare, köstliche Gabe der Natur von den Reisenden bezeichnete Frucht des den größten Schmuck der Negerländer bildenden Baumes, die von höchster Bedeutung für die trockenen, vegetationsarmen Länder, namentlich die Binnenländer Afrikas, ist (~Rohlfs~, ~Barth~, ~Munzinger~), wird bei Reisen durch den dunklen Erdteil teils zur Herstellung erfrischenden Trankes, teils auch dazu benutzt, verdorbenes Wasser trinkbar zu machen. In Cordofan ist das Fruchtmus zu Ballen geformt, allein und mit _Senna_, auch Abführmittel, ebenso sind die Rinde und die Wurzel dort in Gebrauch. ~Bontius~ (I, S. 897) beschreibt ein in Java aus Tamarinden bereitetes Bier von delikatem Geschmack und großer Bekömmlichkeit für den Tropenbewohner. Das gleichzeitige Vorkommen von Zucker und Weinstein ladet geradezu dazu ein, die Tamarinden zur Kunstweinfabrikation heranzuziehen, was denn auch schon seit längerer Zeit auch bei uns (wie seit langem in Indien) geschieht. Tamarindenfruchtsirupe und Bonbons sind besonders in Italien beliebt. Mit Butter und Zwiebel bildet das Mus eine sehr erfrischende Nahrung, mit Zwiebeln, Honig und Pfeffer ein beliebtes Mittel gegen Klimakrankheiten in Afrika. In Indien werden daraus mit Zucker oder Gewürzen beliebte Leckereien bereitet und das Mus auch für Saucen, Currie etc., sowie zur Bereitung der sog. Tamarindenfische benutzt. Man findet T. auf jedem Markt in Südasien (~Tschirch~). Dann dienen T. auch zum Saucieren des Kau- und Schnupftabaks. Bei Hungersnot, wie sie ja in Vorderindien häufig ist, spielt der Same eine ziemlich große Rolle. Er wird als famine food besonders in der Präsidentschaft Madras und Central-India, dann auch in Bengalen und den Zentralprovinzen benutzt (~Hooper~) und eignet sich wegen seiner Zusammensetzung (oben S. 538) hierzu sehr gut, besonders wenn er von der gerbstoffhaltigen Schale befreit wird. Die +Samen+ werden daher zur Entfernung der Schale geröstet und eingeweicht und die Kerne dann gekocht oder gebacken oder vermahlen und dem Mehl zugesetzt. Roh werden sie wie Betel gekaut. Der aus den Samen bereitete Kleister (s. oben S. 536) dient zum Stärken. Sie finden auch medizinische Anwendung äußerlich und innerlich (~Dymock~). In Indien werden von der Tamarinde auch die angenehm sauer schmeckenden, ebenfalls abführenden Blätter, die Blüten, die Rinde und das Gummi benutzt, wie auch die Asche der Rinde und die Blätter (Pharmac. ind.). =Lit.= ~Hooper~, Agr. Ledg. 1907. -- ~Barth~, Reis. u. Entdeck. in Nord- u. Central-Afrika 1858 I, 614, III, 334, 400. -- ~Rohlfs~, Reisen durch Nordafrika 1872, 23. -- ~Munzinger~, Ostafrikan. Studien 1864. -- ~Dymock~, Veg. Mat. med. West. Ind. =Geschichte.= Unter den Heilpflanzennamen des alten Ägyptens ist keiner bis jetzt als auf T. sich beziehend sicher erkannt worden. Aber unter den Drogen, die z. B. der Papyrus ~Ebers~ als Bestandteile der Composita anführt, sind noch sehr viele nicht gedeutet. Vielleicht ist die Frucht vom Kesebtbaum, die dort unter den Abführmitteln steht, die der Tamarinde (~Ebers~ deutet sie, mir nicht einleuchtend, als Ricinus, der aber andere Namen hatte; in Cordofan heißt die T. heut: ardeb). Der Baum kam im Altertum nicht in Ägypten vor, ist aber wohl die κερατία des ~Strabo~ (I, S. 532), die dieser (Lib. XVII, c. 2, § 1) um 20 n. Chr. in Äthiopien (wo ja _Ceratonia_ nicht vorkommt) erwähnt (~Ernst Meyer~). -- In Abyssinien traf ~F. Alvarez~ (1520) den Baum. -- Doch haben sich die Ägypter des Tamarindenmuses, wie es scheint, beim Färben der Mumienbinden und beim Einbalsamieren bedient (~John~). Die von ~Gardner Wilkinson~ als Tamarindensamen gedeuteten, in einem Grabe von Theben gefundenen Gebilde erwiesen sich nicht als solche (~Birch~ u. ~Hanbury~). Der Tamarindenbaum war den Griechen bekannt. Er ist das δένδρον πολύφυλλον des ~Theophrast~, wie schon ~Sprengel~ ganz richtig vermutete. Sie trafen ihn auf dem Alexanderzuge am persischen Golf auf der Insel Bahrein (~Bretzl~). Doch bedienten sich die Alten nicht der Früchte. Die täglichen periodischen Bewegungen der Fiederblättchen der Tamarinde -- am Abend legen sich die Fiederblättchen zusammen und die Spindel senkt sich nach unten -- Bewegungen, die wir jetzt als nyctitropische bezeichnen, beobachtete zuerst ~Androsthenes~ auf dem Alexanderzuge auf der Insel Bahrein und ~Theophrast~ beschreibt (hist. pl. IV, 7, 8), offenbar nach dieser Quelle, die +Erscheinung des Pflanzenschlafes+ bei der Tamarinde (Abbild. bei ~Bretzl~) ganz korrekt und in meisterhafter Kürze. +Die Erscheinung ist also bei der Tamarinde entdeckt worden.+ Sie fiel auch den Europäern, als diese Indien im XVI. Jahrh. betraten, sofort auf, z. B. ~Garcia da Orta~, ~Acosta~ u. and. Die alte Sanskritliteratur hat mehrere Namen für T. In der indischen Medizin spielte das Mus keine sehr große Rolle, wird aber in Indien noch jetzt benutzt. Unter den Abführmitteln von ~Suśrutas~ (I, S. 504) findet sich wohl _Cassia fistula_, aber nicht die Tamarinde. Schon im alten Indien bedienten sich aber die Silberschmiede des Muses zum Weißsieden des Silbers (ähnlich wie später und noch heute des Weinsteins). Die medizinische Verwendung des Tamarindenmuses hat sich im Mittelalter von Indien über Arabien nach Europa verbreitet. Die Araber haben die T. jedenfalls von den Indern kennen gelernt, wie schon ihr Name tamr hindi = «Indische Datteln» zeigt. ~Alexander Trallianus~ (I, S. 591) kannte die T. noch nicht. ~Alhervi~ (X. Jahrh., vgl. I, S. 601) beschreibt das schwarze, wie Pflaumen schmeckende, Mus der Tamr ul hindî gut mit seinen Fasern und Samen, wie wir es noch heute im Handel finden. ~Abu Hasan~ (bei ~Ibn Baithar~) und ~Ibn Sînâ~ (I, S. 603) erwähnen die abführende und «herzstärkende» Wirkung der Früchte und ihren sauer-süßen Geschmack. Auch die Samen wurden von den Arabern arzneilich benutzt. Bei ~Mesuë~ (XII. Jahrh., I, S. 600) steht _Tamar indi_ unter den Abführmitteln neben _Pruna_ und _Cassia_. Als Vorkommen erwähnt ~Abu Hanifa~: Scharâh, Omân, ~Abu Hasân~: Yemen, Indien, Nigritien, Bassora. ~Mesuë~ nennt Cambaya und Guzarate, ~Serapion~: Indien, ~Bonifaa~ (fälschlich): Syrien. 1270 wurden sie in Aden verzollt (I, S. 699). ~Marco Polo~ erwähnt sie. Die Tamarinden stehen auch sowohl im ältesten wie im jüngsten persischen Werke über Pharmakologie: sowohl bei ~Alhervi~ (~Muwaffak~, X. Jahrh. I, S. 601) wie im ~Makhzan el Adwiya~ (XVIII. Jahrh. I, S. 614). Sie nehmen aber im mittelalterlichen Handelsverkehr keine hervorragende Rolle ein (~Flückiger~). Die Schule von Salerno übernahm die T. von den Arabern als _Oxifenica_ und _Dactyli acetosi_. So z. B. bei ~Platearius~ und ~Saladin~, der sie für eine Palmenfrucht hielt. Tamarinden sind (meist in Verbindung mit _Cassia fistula_, _Senna_, _Rosinen_, _Pflaumen_ und _Manna_) Bestandteil des _Electuarium lenitivum Nicolai Alexandrini_, des _El. de Sebesten Bartholomai Montagnanae_, des _Diaprunum compositum Nicolai_, des _Diacatholicum Nicolai_, der _Confectio Hamech Mesuë_ u. and. Die Bezeichnung Indische Dattel oder Sauerdattel hat viel Verwirrung angerichtet. Noch der Ricettario fiorentino (I, S. 794), ja selbst noch ~Pomet~ (I, S. 942), der eine schlechte Abbildung der Pflanze gibt, und ~Valentini~ (I, S. 912) geben (wie die Araber, z. B. ~Mesuë~) eine Palme als Stammpflanze an, obwohl doch bereits ~Garcia da Orta~ (I, S. 736), ~Acosta~ (I, S. 739), ~Linschoten~ (I, S. 743) und ~Bontius~ (I, S. 897) den Baum im allgemeinen richtig beschrieben und zum Teil ausdrücklich die Unterschiede von den Palmen hervorgehoben hatten, ~Rheede~ (I, S. 898) eine gute Abbildung und ~Rumphius~ (I, S. 900) eine Abbildung und eine ausführliche Beschreibung gegeben und auch ~Alpini~ (I, S. 910) z. B. die Schlafbewegungen der Blätter gut beschrieben hatte. Den Baum lernte man also erst kennen, als der Seeweg nach Ostindien gefunden war (I, S. 728). Er hieß damals in Guzarat ambili, in Malabar puli (~Garcia da Orta~). Auch in ~Barbosas~ berühmter Preisliste (I, S. 741) figurieren die T. und in des ~Pires~ Brief an ~Manuel~ (I, S. 742) wird aus Cochin über die großen Mengen der T. in Malabar, Coromandel und Java berichtet. T. war also schon im Anfang des XVI. Jahrh. in Java zu finden. Da ~Hernandez~ (I, S. 761) die Tamarinde (Mizquitl, Hoxinue, Quahunachaztli) 1570 beschrieb und abbildete, so muß sie schon bald nach der Eroberung Mexicos dorthin gebracht worden sein. ~Hernandez~ sagt von ihr: «nuper ad eas oras translata». Auch nach Westindien ist T. durch die Spanier sehr frühzeitig gebracht worden. Sie ist jetzt dort wie in Ecuador sehr häufig. In Brasilien trafen sie ~Piso~ und ~Marcgraf~ (I, S. 893) schon 1648. In älteren deutschen Glossarien und Arzneibüchern fehlen die Tamarinden (~Flückiger~). Bei ~Cordus~ (I, S. 803) steht _Tamarindus pulpa et semen_, Tamarin im Inventar ~Lefort~ (I, S. 805) und in zahlreichen Pharmakopoeen, Taxen und Listen, wie z. B. in der Frankfurter Liste, im Eßlinger Drogenverzeichnis (1550) und der Taxe (1571) findet sich die Tamarinde. =Lit.= ~Udoy Chând Dutt~, Mat. med. of the Hindus. -- ~Dymock~, Veget. mat. med. West. Ind. und Pharmac. ind. -- ~Kanny-Lall Dey~, The indigenous drugs of India. Calcutta 1896. -- ~Wönig~, Pfl. d. alt. Ägypt. -- ~Bretzl~, Bot. Forsch. d. Alexanderzuges. -- ~Ernst Meyer~, Bot. Erläut. z. Strabons Geograph. 1852. -- ~Joret~, Le Naturaliste (2) 10, Nr. 36. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. VI. Citronensäuredrogen. Von den dreibasischen Säuren kommen für uns: COOH COOH | | CH₂ CH₂ | | CH.COOH und OH C.COOH | | CH₂ CH₂ | | COOH COOH Tricarballylsäure Citronensäure (Oxytricarballylsäure) in Betracht, von denen die erstere in unreifen Rüben gefunden wurde (~Lippmann~), die von ~Scheele~ 1784 entdeckte, von ~Liebig~ 1838 als dreibasisch erkannte =Citronensäure= aber in zahlreichen Früchten vorkommt, wie den _Citrus_arten, den Preißelbeeren, Johannisbeeren, Heidelbeeren (S. 64), Stachelbeeren, Kirschen (S. 73) sich aber auch im Zuckerrohr, in der Zuckerrübe und in Tabaksblättern findet (revisionsbedürftige Zusammenstellung in ~Husemann-Hilger~, Pflanzenstoffe, dann bei ~Czapek~ und im ~Beilstein~) und bei der sog. Citronensäuregärung (s. oben S. 507) entsteht. Es sind besonders einige _Citromyces_arten (_C. Pfefferianus_, _citricus_, _lacticus_, _tartaricus_, _oxalicus_), die unterhalb 20°, bei mangelhafter Stickstoffnahrung bisweilen 50% und mehr des Zuckers (am besten eignet sich Maltose, weniger Saccharose, Dextrose und Lävulose) in Citronensäure überzuführen vermögen (~Buchner~ und ~Wüstenfeld~, ~Wehmer~, ~Herzog~ und ~Polotzky~). +Frei+ und neben wenig oder gar keiner Apfelsäure findet sich Citronensäure in den Früchten von _Citrus limonum_, _Vaccinium vitis idaea_, _V. oxycoccus_ und _V. macrocarpum_ (1,4% ~Ferdinand~), sowie _Oxycoccus palustris_ (2-2,8% ~Kossowicz~); +neben Apfelsäure+ (etwa zu gleichen Teilen) findet sich Citronensäure in der Johannisbeere (1%), ferner in der Stachelbeere, der Heidelbeere, Himbeere und in _Rubus chamaemorus_, sowie im Kraute von _Chelidonium majus_; +neben Apfelsäure und Weinsäure+ in den Vogelbeeren (und vielleicht auch in der Tamarinde, ~Vauquelin~). Von den Citronenpreßsäften des Handels enthält am meisten fremde Säuren der Saft der Bergamotte, dann der Limottensaft, am wenigsten der Saft der Citrone (~Warrington~). Mikrochemisch läßt sich Citronensäure als Silbersalz nachweisen. Synthetisch kann Citronensäure aus +Glycerin+ über Dichlorhydrin -- β-Dichloraceton -- Dichloracetoncyanhydrin -- Dichloracetonsäure und deren Dicyanid (~Grimaux~ u. ~Adam~) (bzw. aus Acetondicarbonsäure) erhalten werden, aber weder diese Synthese, noch die von ~Adreoni~ und ~Kékulé~, die von der Apfelsäure ausgehen, werden praktisch ausgeführt. Sie sind zu teuer. Noch immer liefert die Natur die billigste Citronensäure (in der Citrone und, nach ~Wehmer~, mittelst _Citromyces_ (S. 507), vgl. Chem. Zeit. 17, 1180 u. 21, 381 u. 1022). Die Citronensäure bemerkte schon vor 1732 zuerst ~Boerhaave~ (I, S. 957) in den Citronen und studierte die Wirkung des Saftes auf Metalle. Sie wurde dann von ~Retzius~ (1776) isoliert, aber erst von ~Scheele~ (1784) kristallinisch erhalten. Daß Citronensäure von Weinsäure verschieden ist, fand außer ~Scheele~ auch ~Retzius~ (I, S. 966). =Frische Citronen= kommen vom +Gardasee+, wo sich große, sehr eigenartige Kulturen befinden (vgl. I, Fig. 27 u. 28), die jährlich c. 15 Mill. Citronen liefern, dann aus Sizilien, das jährlich c. 50 Milliarden produziert. +Italien+ exportierte 1909: 2560628 Quint. +Limoni+ anche in acqua salata. Riesige _Citrus_-Kulturen finden sich in Kalifornien (I, Fig. 31). +Hamburg+ importierte 1908: 236943 dz Citronen, davon kamen 225609 aus Italien, 10273 aus Spanien, geringe Mengen aus Frankreich, Griechenland, das jährlich c. 60 Mill. κίτρον τὸ κοινὸν produziert, und Syrien. Man kann Citronen dadurch konservieren, daß man die Anheftungsstelle mit Paraffin überzieht und die Früchte in Salz einbettet. Das mittlere Gewicht einer Citrone beträgt 153,8 g (~Olivieri e Guerrieri~). Bei den Citronen kommt c. 35-38,50% auf die Schale, c. 59% auf das Fruchtfleisch und c. 2,5% auf die Kerne -- sie liefern bis 37-44,5% Saft. Eine gute Citrone gibt durchschnittlich 24,8 g Saft und liefert c. 2,41 g krist. Citronensäure. Ältere Citronen enthalten keine Citronensäure mehr (~Stoddart~). 1000 kg guter +Citronen+ sollen 55 kg und 1000 kg +Johannisbeeren+ 7,5-10 kg krist. Citronensäure geben. Außer diesen wird auch der +Preißelbeersaft+, der 1-1,2% enthält, zur Darstellung der Citronensäure im Großen empfohlen (~Gröger~). Im Liter des Saftes unreifer Maulbeeren finden sich 26,85 g Citronensäure (~Wright~ und ~Patterson~). Echter Citronenpreßsaft hat ein spez. Gewicht von c. 1,043-1,045 und einen Durchschnittsgehalt von 9,72% C. (~Stoddart~). Er enthält aber oft nur 186 bis 280 g Citronensäure in der Gallone, d. h. nur 4-6% (~Warrington~), doch steigt der Gehalt auch auf 11,3% (5,2-7,6% bildet die Regel bei gutem Saft, ~Hensel~ und ~Prinke~). Fremde Säuren enthält Citronensaft meist nur 2,5%, Limettensaft 7-8%, Bergamottensaft 12-13%. Im Citronensaft wurde neuerdings gefunden: 10,44% Extrakt, c. 1,42% Invertzucker, 0,52% Saccharose, 5,39-5,83% Citronensäure, 0,32% Stickstoffsubstanz und 0,2% Asche (Zusammensetzung der Asche bei ~König~). In 100 ccm Saft unreifer Citronen fanden sich 7,52 g, im Safte reifer 7,27 g Citronensäure, der Säuregehalt bleibt also etwa gleich (~Bornträger~), doch steigt der Gehalt bisweilen bis 8,30 g in 100 ccm, wovon 1,57 g als Ester gebunden (~Späth~ und ~Sendtner~). =Citronensaft= wird für den Großhandel in Italien aus den Früchten von _Citrus medica_ L. subsp. _Limonum_ (~Risso~) ~Hooker~ fil. (_Citrus Limonum_ ~Risso~, _C. medica_ var. β L.), der Citrone oder Limone -- +Sugo di Limone+ -- und _Citrus medica_ ~Risso~ (_C. medica cedro_ ~Gallesio~, _C. m._ var. α L.), der Cedrolimone -- +Sugo di Cedro+ --, viel seltener aus denen von _Citrus Aurantium_ L. subspec. _Bergamia_ (~Risso~ et ~Poiteau~) ~Wight~ et ~Arnott~, der Bergamotte, in Westindien (Montserrat) aus denen von _Citrus Limetta_ ~Risso~ dargestellt. Über die zur Citronensäuregewinnung nötigen Rohprodukte, die in Süditalien hergestellt werden, hat ~Ravasini~ (1911) an Ort und Stelle folgende Auskünfte, erhalten: [Illustration: Fig. 178. Die Orte der Citronensaftverarbeitung in Sizilien und Calabrien. Die Orte, wo Agro-cotto bereitet wird mit ---- unterstrichen, die, wo Cedrato di calce hergestellt wird, mit +×××××+ bezeichnet. [+Ravasini+ gez.]] Die Citronensäure wird technisch ausschließlich aus dem Safte der Citronen und Cedrolimonen, der in Süditalien, namentlich in Calabrien und Sizilien, bereitet wird, gewonnen. Die Citronenfrüchte werden, wenn sie ihre volle Reife erlangt haben, geschält (I, Fig. 165) -- die Schalen werden zur Bereitung der Limonen(Citronen-) Essenz verwendet (I, Fig. 166) --, und der Saft des Fruchtfleisches mittelst hölzerner zylindrischer Pressen (torchi) ausgepreßt (I, Fig. 176). -- Ein Liter des so erhaltenen Citronensaftes enthält 55-60, im günstigsten Falle 70 g Citronensäure. -- Da die Citronensäuredarstellung +nicht in Italien selbst+ ausgeführt wird, so muß dieser Saft, um exportiert werden zu können, vorerst eingedampft werden, was in großen Gefäßen aus glasiertem Ton ausgeführt wird. Der eingedampfte Saft wird noch warm filtriert und kommt dann unter dem Namen +Agro-Cotto+ in großen hölzernen Fässern von 100-250 kg Inhalt an die ausländischen Fabriken zur Versendung. Dieser konzentrierte Citronensaft, Agro-Cotto, stellt eine sirupähnliche bräunliche Flüssigkeit dar, welche am +Citrometer+ 60° zeigen muß, d. h. sie besitzt eine Dichte von 1,2394 und enthält c. 400 g kristall. Citronensäure im Liter. Die Darstellung von Agro-Cotto findet in folgenden Provinzen und folgenden Orten Süditaliens statt: +Reggio Calabria+ (bei Gallina, Motta S. Giovanni und Gallico), +Catania+ (bei Acireale, Giarre, Calatabiano, Fiumefreddo und Riposto), +Messina+ (bei Guidomandri, Nizza Sicilia, Milazzo, S. Teresa di Riva und Giardini), +Siracusa+ (bei Floridia), +Palermo+ und auf der Insel +Ischia+ nahe Neapel (hier wenig). Deutschland importierte 1909: 1705 dz Citronensaft, besonders aus Italien. Neuerdings wird Citronensaft aus den zerquetschten geschälten Früchten durch Centrifugieren dargestellt. Dieser ist leicht zu klären. Behufs der Reindarstellung der Citronensäure wird der rohe Citronensaft mit Kalk neutralisiert und der so erhaltene citronensaure Kalk dann durch Waschen mit Wasser von den löslichen, nicht mit Kalk unlösliche Verbindungen eingehenden fremden Saftbestandteilen befreit und dann mit Schwefelsäure zerlegt. Die zur Kristallisation gebrachte Lauge liefert zunächst gefärbte Kristalle (rohe Citronensäure, in der Kattundruckerei benutzt), die dann mit Kohle gereinigt werden. Die reine Citronensäure, das +Acidum citricum des Handels+, ist das Monohydrat. Die Ausbeute beträgt c. 5,5 % (bei Johannis- und Preißelbeeren nur 1-1,5%). Um den kostspieligen Transport des verhältnismäßig wenig verwertbares Material enthaltenden Citronensaftes zu umgehen, ist man auf den Gedanken gekommen, an Ort und Stelle die Citronensäure in unlösliches Tricalciumcitrat («+Citrato di calce+» [oder calcio] oder, wie in Sizilien meistens genannt, «+Cedrato di calce+») zu verwandeln und dieses letztere an Stelle des Saftes in den Handel zu bringen. Diese Operation wird folgendermaßen ausgeführt. Der durch Pressung erhaltene Citronensaft wird zuerst einige Zeit sich selbst überlassen bis Gärung eintritt, was die Absonderung von Eiweiß- und Schleimsubstanzen bewirkt (der Schleim entstammt besonders der Samenschale). Nun werden in einer großen gemauerten, gewöhnlich 10000 Liter Flüssigkeit fassenden Cisterne, die mit einem mechanisch beweglichen Aufrührer und einem Serpentinrohr versehen ist, 2000 Liter Citronensaft und 8000 Liter kaltes Wasser zusammengebracht. Man rührt alles gut um und läßt durch das Serpentinrohr so lange kaltes Wasser durchfließen, bis die ganze Flüssigkeitsmenge auf eine Temperatur von 5° erniedrigt worden ist. Nun wird das Umrühren durch weitere 10 Minuten fortgesetzt und schließlich 50 Liter eines Summachextraktes hinzugefügt, durch dessen Tanningehalt die Fällung aller Eiweiß- und Schleimsubstanzen vervollständigt wird. Die Flüssigkeit wird jetzt durch eine Filterpresse geführt, wobei der Niederschlag beseitigt wird, und kommt aus dieser entweder in 2000 Liter fassende hölzerne Wannen oder (was bei neueren Installationen zu finden ist) wieder in gemauerte Cisternen, welche aber mit einer durchlöcherten Serpentine versehen sind, durch welche soviel Dampf eingeführt wird bis die Flüssigkeit zum Sieden gelangt. Man ermittelt nun in einem kleinen Flüssigkeitsquantum die in diesem enthaltene Säuremenge und setzt auf jede 100 kg Säure 45 kg gebrannten Kalk oder 57 kg Kalkhydrat hinzu, wobei sich sogleich +citronensaurer Kalk+ absetzt, welcher in einer Filterpresse aufgefangen, durch 10 Minuten mit heißem, durch weitere 10 Minuten mit lauem und durch folgende 5 Minuten mit kaltem Wasser ausgewaschen wird. Getrocknet wird dieser Citronenkalk in hölzernen Fässern aus +Catania+ und +Palermo+ meistens nach Nordamerika, Frankreich, Deutschland und England exportiert, wo er zur Citronensäurefabrikation Verwendung findet. +Italien selbst fabriziert keine Citronensäure und wird sogar die hier zum Verbrauch kommende Quantität fast ausschließlich aus England und Deutschland bezogen+, aus letzterem Lande 1909: 359 dz. «+Citrato di Calce+» wird dagegen schon in folgenden Provinzen und an folgenden Orten dargestellt: +Reggio Calabria+ (bei Gallina und Palizzi), +Messina+ (bei Roccalumera und San Filippo del Mela), +Siracusa+ (bei Modica), +Palermo+ (bei Bagheria). Es ist vorauszusehen, daß mit der Zeit die Darstellung vom Citrato di Calce jene von Agro-Cotto ganz verdrängen wird. -- In der Provinz von Palermo, wo sechs Fabriken zu finden sind, die den konzentrierten Preßsaft und Cedrato di Calce darstellen, hat sich schon eine von diesen in eine größere Aktiengesellschaft verwandelt, die über 70000 kg im Jahre Citrato di Calce exportieren soll. -- Die Provinz Messina allein soll über 1 Million kg konzentrierten Citronensaft (Agro-Cotto) im Jahre darstellen, was sicher eine enorme Quantität darstellt, wenn man bedenkt, daß man, um 100 kg gewöhnlichen (nicht konzentrierten Saftes) zu erzielen, 2000-2800 Citronen benötigt. Die Exportziffern sind folgende: +Gewöhnlicher, nicht konzentrierter Zitronensaft+ (+Succo di cedro e di limone crudo+) 1908: 9250, 1909: 6172, 1910: 6014 quint. Konzentrierter Citronensaft (+Agro-Cotto+): 1908: 8366, 1909: 1178, 1910: 8352 quint. +Cedrato di calcio+: 1908: 77101, 1909: 23809, 1910: 64755 quint. (~Ravasini~). Citronensaft kann dadurch haltbar gemacht werden, daß man den mit Talcum geklärten Saft mit 10% Zucker aufkocht. Die Konservierung des Citronensaftes kann auch durch Alkohol oder Erhitzen auf 100° oder durch Filtration geschehen (~Judicis~). Citronensaft ist eines der besten durstlöschenden Mittel. Citronensaft und Citronensäure werden zur Limonadenbereitung in großen Massen verbraucht. Citronensaft (nicht Citronensäure) gilt auch als das beste Mittel gegen Scorbut -- Schiffe sind verpflichtet für lange Fahrt Citronensaft an Bord zu nehmen --, dann wird er auch jetzt vielfach zu den sog. Citronenkuren bei Gicht und als Entfettungsmittel benutzt. Die Citronensäure des Handels ist oft mit Weinsäure verfälscht oder sogar durch sie ersetzt. Das D. A. V läßt auf Weinsäure durch folgende Reaktion prüfen: Eine Mischung von 1 g Acid. citric. und 10 ccm H₂SO₄, die in einem mit H₂SO₄ gespültem Mörser bereitet wurde, darf sich höchstens gelb, nicht aber braun färben, wenn sie in einem mit H₂SO₄ gespülten Probierrohr eine Stunde lang im Wasserbade nicht über 90° erwärmt wird. =Lit.= ~Stoddart~, Pharm. Journ. (2) 10, 203. -- ~Warrington~, Ebenda 2, 384. -- ~Gröger~, N. Jahrb. d. Chem. 39, 194. -- ~Wehmer~, Citronensäuregärung 1893. -- ~Herzog~ und ~Polotzky~, Citronensäuregärung. Zeitschr. phys. Chem. 49 (1909), 125. -- ~Buchner~ und ~Wüstenfeld~, Citronensäuregärung. Biochem. Zeitschr. 1909, 395. -- ~Wüstenfeld~, Dissert. Berlin 1908. -- ~König~, Nahrungs- u. Genußm. 4. Aufl. (dort zahlreiche Limonen-Analysen von ~Olivieri e Guerrieri~, ~Danesi e Boschi~ u. and.). -- ~Judicis~, Zeitschr. d. Öster. Apoth. Ver. 1880, 467. -- ~Hallerbach~, Die Citronensäure u. ihre Derivate 1911 (dort die Lit.). IV. Fett- und Wachsdrogen. Die Beziehungen der Fette zu den Kohlehydraten sind oben (S. 5) erörtert. Es darf als erwiesen betrachtet werden (~Vallée~, ~André~, ~Gerber~), daß in der Pflanze Mono- und Polysaccharide in Fette übergehen. Ebenso findet der umgekehrte Vorgang statt. Physiologisch spielen die Fette bei den Pflanzen die Rolle von Reservestoffen wenigstens überall da, wo sie, wie in den Früchten und Samen, in größerer Menge auftreten (das Fruchtfleisch der Ölpalme enthält 65-72%, Leinsamen 35-42%, Ricinussamen 46-53%, Mandeln c. 53%, Wallnußsamen 64%, Copra 67% Fett -- auch die Knollen von _Cyperus esculentus_ enthalten 28% Fett, sonst sind Rhizome fettarm). Sie werden bei der Keimung verbraucht. Und diese Fälle sind es denn auch, bei denen allein ihre technische Gewinnung lohnt. Ebenso ist das Fett der Sporen Reservestoff (vgl. Lycopodium). Bei den Tieren finden sich die Fette im sog. Fettgewebe, das besonders im intermuskulären und subkutanen Bindegewebe, im Mesenterium und im Knochenmark auftritt. Aber auch außerhalb des Fettgewebes können die Fette in allen Zellen des Tierkörpers abgelagert werden und finden sich auch in tierischen Sekreten, wie z. B. der Milch. Im weiteren Sinne gehören auch die Wachsdrogen zu den Fettdrogen und sie sollen denn auch diesen hier angeschlossen werden. Bei beiden handelt es sich um aliphatische Ester, deren Bestandteile azyklisch sind, nur in der Cholesteringruppe begegnen wir zyklischen Verbindungen. Die Fette und Wachse setzen sich also aus Säuren und Alkoholen zusammen. Die +Säurehälfte+ gehört zu folgenden Fettsäurereihen (ich folge der Einteilung von ~Lewkowitsch~): I. Säuren der +Essigsäurereihe+: CₙH₂ₙ₊₂O₂. Die niederen Säuren dieser Reihe (Buttersäure, Baldriansäure, Capronsäure, Caprylsäure, Caprinsäure) sind flüchtig, auch noch die Laurinsäure ist mit Wasserdämpfen flüchtig, aber schon die Myristicinsäure erst bei Anwendung von gespanntem Dampf, -- das erklärt ihr Auftreten in vielen sog. ätherischen Ölen --, die höheren Fettsäuren der Reihe (Palmitinsäure, Stearinsäure, Arachinsäure, Behensäure, Carnaubasäure, Cerotinsäure, Melissinsäure) auch mit diesem nicht. Die homologe Reihe der gesättigten Fettsäuren enthält folgende Glieder: HCOOH Ameisensäure } CH₃COOH Essigsäure } C₂H₅COOH Propionsäure } C₃H₇COOH Buttersäure } C₄H₉COOH Baldriansäure } C₅H₁₁COOH Capronsäure } C₆H₁₃COOH Önanthsäure } flüchtige, riechende Fettsäuren C₇H₁₅COOH Caprylsäure } unter 31° +flüssig+ C₈H₁₇COOH Pelargonsäure } C₉H₁₉COOH Caprinsäure } C₁₀H₂₁COOH Undecylsäure } C₁₁H₂₃COOH Laurinsäure F = 43,6° C₁₂H₂₅COOH Ficocerylsäure F = 57° C₁₃H₂₇COOH Myristinsäure F = 53,8° C₁₄H₂₉COOH Isocetinsäure (?) F = 55° C₁₅H₃₁COOH Palmitinsäure F = 62° C₁₆H₃₃COOH Daturinsäure F = 54,5° (57°) C₁₇H₃₅COOH Stearinsäure F = 69,3° [C₁₈H₃₇COOH Nondecylsäure F = 66,5°] C₁₉H₃₉COOH Arachinsäure F = 77° [C₂₀H₄₁COOH] C₂₁H₄₃COOH Behensäure F = 83-84° [C₂₂H₄₅COOH] C₂₃H₄₇COOH Lignocerinsäure F = 80,5° Isomer damit: Carnaubasäure F = 72,5° und Pisangcerylsäure F = 71° C₂₄H₄₉COOH Hyänasäure F = 77-78° C₂₅H₅₁COOH Cerotinsäure F = 78,5° } [C₂₆H₅₃COOH] } C₂₇H₅₅COOH Geocerinsäure F = 82° } Wachssäuren [C₂₈H₅₇COOH] } C₂₉H₅₉COOH Melissinsäure F = 88,5° } C₃₂H₆₅COOH Psyllostearylsäure F = 94-95° } Margarinsäure ist ein Gemisch (von konstantem Schmelzpunkt) von Palmitin- u. Stearinsäure. II. Säuren der +Ölsäurereihe+: CₙH₂ₙ₋₂O₂; ungesättigte Säuren: C₄H₇COOH Tiglinsäure { C₁₅H₂₉COOH Hypogaeasäure { C₁₅H₂₉COOH Physetölsäure { C₁₅H₂₉COOH Lycopodiumölsäure { C₁₇H₃₃COOH Ölsäure { C₁₇H₃₃COOH Rapinsäure { C₁₇H₃₃COOH Elaïdinsäure { C₁₇H₃₃COOH Isoölsäure { C₁₈H₃₅COOH Döglingsäure { C₁₈H₃₅COOH Jecoleïnsäure { C₂₁H₄₁COOH Erucasäure { C₂₁H₄₁COOH Brassidinsäure { C₂₁H₄₁COOH Isoerucasäure Die höheren Säuren sind mit Wasserdampf nicht flüchtig; ihre Bleisalze sind in Äther löslich. III. Säuren der +Linolsäurereihe+: CₙH₂ₙ₋₄O₂, in trocknenden Ölen, absorbieren leicht Sauerstoff (vgl. S. 553): { C₁₇H₃₁COOH Linolsäure { C₁₇H₃₁COOH Taricinsäure { C₁₇H₃₁COOH Hirseölsäure { C₁₇H₃₁COOH Telfairasäure { C₁₇H₃₁COOH Elaeomargarinsäure IV. Säuren der +Linolensäurereihe+: CₙH₂ₙ₋₆O₂: C₁₇H₂₉COOH. Linolensäure, Isolinolensäure und Jecorinsäure. V. Säuren der +Isansäurereihe+: CₙH₂ₙ₋⁸O₂. Isansäure, Terapinsäure. VI. Säuren der +Lanopalminsäurereihe+. Hydroxylierte Säuren: CₙH₂ₙO₃: C₁₆H₃₂O₃ Lanopalminsäure, C₃₁H₆₂O₃ Coccerinsäure. VII. Säuren der +Ricinolsäurereihe+. Hydroxylierte Säuren: CₙH₂ₙ₋₂O₃: C₁₈H₃₄O₃ Ricinolsäure, Isoricinolsäure, Ricinelaïdinsäure, Ricinsäure und Quittenölsäure. VIII. Säuren der +Dioxystearinsäurereihe+: CₙH₂ₙO₄: C₁₈H₃₆O₄ Dioxystearinsäure, C₃₀H₆₀O₄ Lanocerinsäure. IX. Säuren der Reihe: CₙH₂ₙ₋₂O₄, zweibasisch, gesättigt: C₂₂H₄₂O₄ Japansäure. Medullinsäure, Moringasäure, Theobrominsäure, Crotonoleïnsäure, Umbellulsäure sind zu streichen (~Lewkowitsch~). Die einzelnen Fettsäuren und Alkohole sind beschrieben in ~Lewkowitsch~, Chem. Technol. u. Analys. d. Öle usw. Die +Alkoholhälfte+ der Ester gehört in folgende Reihen: I. Alkohole der Äthanreihe CₙH₂ₙ₊₂O: C₁₃H₂₈O Pisangcerylalkohol, C₁₆H₃₄O Cetylalkohol (Äthal), C₂₄H₅₀O Carnaubylalkohol, C₂₆H₅₄O Cerylalkohol, C₃₀H₆₂O Myricylalkohol (Melissylalkohol), C₃₃H₆₈O Psyllostearylalkohol. II. Alkohole der Allylreihe: CₙH₂ₙO: C₁₂H₂₄O Lanolinalkohol. III. Alkohole der Reihe:CₙH₂ₙ₋₆O: C₁₇H₂₈O Ficocerylalkohol. IV. Alkohole der Glycolreihe CₙH₂ₙ₊₂O₂: C₃₀H₆₂O₂ Coccerylalkohol. V. Alkohole der Reihe CₙH₂ₙ₊₂O₃: C₃H₈O₃ +Glycerin+. VI. Alkohole der hydroaromatischen Reihe: C₂₆H₄₄O Cholesterin, Phytosterin und Isocholesterin, C₂₇H₄₄O Sitosterin u. and. Phytesterine. +Die Fette im engeren Sinne sind alle Glycerinester+, wie -- nachdem ~Scheele~ das Glycerin entdeckt -- zuerst ~Chevreul~ feststellte und ~Berthelot~ (1854) durch die Synthese bestätigte. Die Bindung der Fettsäuren am Glycerin erfolgt entweder in der Weise, daß alle drei Hydroxyle des Glycerins mit der +gleichen+ Fettsäure abgesättigt sind nach dem Typus: O . R_{I} / C₃H₅--O . R_{I} , \ O . R_{I} also z. B. Tripalmitinsäure-, Tristearinsäure- und Trioleïnsäure-Glycerinester entstehen -- man bezeichnet diese als Tripalmitin, Tristearin und Trioleïn -- oder die drei Hydroxyle mit zwei oder drei verschiedenen Fettsäuren sich nach dem Typus: O . R_{I} O . R_{I} O . R_{II} / / / C₃H₅--O . R_{II} , C₃H₅--O . R_{II} , C₃H₅--O . R_{I} , \ \ \ O . R_{III} O . R_{II} O . R_{II} O . R_{II} O . R_{I} / / C₃H₅--O . R_{I} , C₃H₅ -- O . R_{III} \ \ O . R_{III} O . R_{II} paaren, also +gemischte+ Glyceride entstehen. Auch diese sind in den von der Natur gebildeten Fetten neuerdings häufig gefunden worden, seit ~Bell~ und ~Lewin~ ein Oleopalmitobutyrat: O . C₁₈H₃₃O / C₃H₅--O . C₁₆H₃₁O \ O . C₄H₇O in der Butter annahmen und ~Heise~ (1896) ein Oleodistearin: O . C₁₈H₃₃O / C₃H₅ -- O . C₁₈H₃₅O \ O . C₁₈H₃₅O im Mkányifett und der Kokumbutter auffand, das nach ~Sack~ auch im Fett der _Mangifera indica_ auftritt. Der Vergleich der Formeltypen zeigt, daß es auch zahlreiche Strukturisomere geben muß, deren Zahl bei den Säuren, die doppelte Bindungen besitzen, noch durch den Wechsel in der Lage dieser letzteren vermehrt wird. Die Stereoisomerie der Fettsäuren wurde durch das Studium der Spaltungsprodukte der Ozonide bestätigt (~Harries~ und ~Thieme~). Ob Fette, bei denen nicht alle Hydroxyle des Glycerins mit Fettsäuren verestert sind, z. B. vom Typus: OR OR OR OH / / / / C₃H₅--OH , C₃H₅--OR oder C₃H₅--OR , C₃H₅--OR \ \ \ \ OR OH OH OH in der Natur vorkommen, ist noch zweifelhaft. Bisher ist nur ein Diglycerid, das Dierucin, gefunden worden. Die eigentlichen Fette sind also nach der Formel: CₙH₍₂ₙ₊₁₎--μCOO.H₂C | CₚH₍₂ₚ₊₁₎--ηCOO.HC | CᵣH₍₂ᵣ₊₁₎--ξCOO.H₂C zusammengesetzt, wobei n = p = r oder n nicht = p bzw. r und μ = η = ξ oder μ nicht η bzw. ξ sein kann. μ, η, ξ sind kleine gerade Zahlen. Die Wachse besitzen zumeist die Formel: CₙH₂ₙ₊₁--µCOO.H₂C.CₖH₍₂ₖ₊₁₎₋ₓ. Der charakteristische Alkohol ist gesättigt oder ungesättigt, aliphatisch oder zyklisch, aber einwertig. x kann eine kleine gerade oder ungerade Zahl bedeuten (~Ulzer~ und ~Klimont~). Auch in gewissen Lecithinen sind Fettsäurereste enthalten, z. B. im Distearyllecithin: { CH₂.O.O.C₁₈H₃₅ } { | } (Fettsäurerest) (Glycerinrest) { CH.O.O.C₁₈H₃₅ } { | { CH₂.O \ HO--PO (Phosphorsäurerest) / { C₂H₄.O { | { |/CH₃ (Cholinrest) { N--CH₃ { |\CH₃ { | { OH Es darf als Regel gelten, daß die Fette nie nur aus +einem+ Glycerid bestehen, und daß ein oder mehrere Glyceride (besonders die der Palmitinsäure, Stearinsäure und Ölsäure, d. h. Palmitin, Stearin und Oleïn) vorzuherrschen pflegen. Das Vorkommen von Glyceriden niederer Fettsäuren gibt einem Fette einen besonderen Charakter (Cocosöl). Unter den natürlichen Bedingungen feste Fette gibt es in den Pflanzen nicht. Ich fand in den Tropen, d. h. in der Heimat der betreffenden Pflanzen, auch Palmfett, Cocos- und Cacaofett flüssig. Die elementare Zusammensetzung der Öle, d. h. ihr Bruttogehalt an C, H und O ist ziemlich übereinstimmend, nur Palmkern-, Cocos- und Ricinusöl zeigen abweichende Zahlen, besonders einen niedrigeren Kohlenstoffgehalt. In Wasser sind die Fette außerordentlich schwer löslich, in kaltem Alkohol etwas besser (leicht nur Ricinus-, Croton- und Olivenkernöl), leicht in Äther, Schwefelkohlenstoff, Chloroform, Benzol und Petroläther (Ricinusöl löst sich nicht in Petroläther). Beim Erhitzen der Fette über 260° (am besten unter Zusatz von saurem Kaliumsulfat) tritt Zersetzung ein und es entwickeln sich (aus dem Glycerin) Dämpfe von Acrolein: CH₂ = CH.COH. Bei der Destillation entstehen bisweilen (Ricinusöl) gallertige Massen. Beim Durchleiten von Luft durch erhitzte Öle werden diese viskoser. Schwefel wird von Ölen, die ungesättigte Fettsäuren enthalten, addiert. Die Produkte (Factis) sind Kautschuksurrogate. Salpetrige Säure verwandelt Öle mit ungesättigten Fettsäuren der Ölsäurereihe (z. B. Olivenöl, Mandelöl) in feste Massen (Elaidinsäureglyceride). Fette, die Ölsäure, CH₃.(CH₂)₇CH = CH(CH₂)₇COOH, enthalten, -- es sind dies fast alle -- liefern bei der Oxydation zuerst Dioxystearinsäure: CH₃(CH₂)₇CHOH--CH.OH(CH₂)₇COOH, dann Pelargonsäure CH₃(CH₂)₇COOH und Azelainsäure COOH(CH₂)₇COOH. Ölsäure liefert mit Ozon ein Ozonid (~Harries~): CH₃(CH₂)₇CH------CH(CH₂)₇COOH | O | | // \\ | |// \\| O-------O Dies Ozonid der Ölsäure zerfällt in Nonylaldehyd bzw. Pelargonsäure und Azelainsäure bzw. deren Halbaldehyd. Je größer das Jodabsorptionsvermögen eines Fettes ist, um so leichter absorbiert es auch Sauerstoff. Es hängt dies also mit den doppelten Bindungen zusammen (vgl. S. 553). Trockene Luft wirkt, wenn jede Feuchtigkeit und das Licht ausgeschlossen wird, auf Fette nicht ein. Trockene Fette bleiben daher in zugeschmolzenen Röhren unbeschränkte Zeit unverändert. Ist etwas Feuchtigkeit zugegen, so werden geringe Mengen Fettsäuren gebildet, aber das Fett wird noch nicht ranzig. Feuchte Fette werden dagegen an Luft und Licht bald ranzig. Es spalten sich unter dem Einflusse der fettspaltenden, in Wasser unlöslichen, nur in Gegenwart von Säuren wirksamen, also durch diese (Milchsäure? ~Hoyer~) aktivierten +Enzyme+ (Lipase, Steapsin -- zuerst von ~Green~ und ~Sigmund~ 1891 nachgewiesen), die z. B. in den Samen regelmäßig vorkommen, aber auch sonst häufig sind (die einzelnen Lipasen sind untereinander verschieden, ~Dunlap~ und ~Seymour~), die Ester auf, die Fettsäuren werden frei und die Säurezahl steigt. Diese Aufspaltung erfolgt sehr viel rascher durch Kochen mit Wasser, durch überhitzten Wasserdampf, durch Mineralsäuren, die als Katalysatoren wirken, Alkalien, Kalk oder Metalloxyde (PbO) (Seifen-, Pflaster-, Stearinkerzen- und Glycerinfabrikation). Bleiben die Fette mit der Substanz aus der sie bereitet wurden, z. B. mit dem stets enzymreichen Fruchtfleisch, in Berührung, so spalten sich die Glyceride schnell und es kann dann das Fett bis zu 70% (Bagasseolivenöl) oder fast ganz (Palmöl) in Fettsäuren zerfallen. Die primäre Ursache des Ranzigwerdens sind also Enzyme in Gegenwart von Feuchtigkeit, wodurch zunächst die Fette sauer werden, aber ranzig sind sie damit noch nicht. Sie werden es erst, wenn die sauren Fette der Luft und dem Lichte ausgesetzt und dadurch oxydiert werden (~Ritsert~, ~Duclaux~, ~Lewkowitsch~, ~Geitel~). Mikroorganismen können Ranzidität einleiten, sind aber nicht nötig dazu (~Duclaux~, ~Ritsert~, ~Mjoen~). Fette mit Glyceriden ungesättigter Fettsäuren neigen mehr dazu ranzig zu werden, als solche von höheren, gesättigten Fettsäuren. Ranzige Fette geben im allgemeinen eine höhere Acetylzahl (~Lewkowitsch~) und zeigen eine geringere Verbrennungswärme (~Stohmann~). Wird durch erwärmte Öle Luft oder Sauerstoff geblasen, so erfolgt eine energische Oxydation, das spezifische Gewicht steigt, die Öle werden viskos («geblasene Öle»). Die meisten Fette sind optisch-inaktiv, rechtsdrehend sind z. B. Ricinusöl, Crotonöl, Lorbeeröl und Sesamöl. Die Zahl für die mittlere Molekularrefraktion ist bei den meisten Ölen ziemlich dieselbe, z. B. Leinöl 447, Olivenöl 447, Sojabohnenöl 450, Sesamöl 451 (~Klimont~). Mikroskopisch betrachtet zeigen die festen oder halbfesten Fette regelmässig reichliche Kristallbildungen, vorwiegend Nadeln, eingebettet in tropfbar-flüssige Massen. Die +Wachse+ sind chemisch den Fetten sehr ähnlich, haben aber eine ganz andere physiologische Funktion; als Überzüge auf des Vegetations- und Reproduktionsorganen von Pflanzen warmer Klimate dienen viele als Schutz gegen Verdunstung, Benetzung, Licht. Bei anderen ist die Funktion unklar. Das Bienenwachs dient zum Bau der «Zellen». Die Wachsester sind schwerer verseifbar als die Fettester. Die Methoden der +Analyse der Fette+ sind physikalische und chemische. Von den +physikalischen+ kommen in Betracht: Die Bestimmung des spez. Gew., des Schmelz- und Erstarrungspunktes, des Brechungsexponenten (mit dem Refraktometer), der Viskosität (mit dem Viskosimeter, vgl. oben S. 450, am gebräuchlichsten sind ~Englers~ und ~Redwoods~ Viskosimeter), des Rotationsvermögens, des mikroskopischen und spektroskopischen Verhaltens, der Konsistenz, der Löslichkeit, des elektrischen Leitungsvermögens und des Verhaltens im Kolorimeter. Bei den +chemischen+ Methoden unterscheidet man: Die Bestimmung der Säurezahl, der +Verseifungszahl+ (+Köttstorferzahl+), der +Jod-+ (und Brom-)+zahl+ (~Hübl~, ~Wijs~), der +Reichert-Meissl-+ bzw. +Reichert-Wollnyzahl+ (flüchtige Fettsäuren), der +Hehnerzahl+ (Unverseifbares und unlösliche Fettsäuren) und der +Acetylzahl+. ~Fokin~ benutzte die «Wasserstoffzahl», d. h. die Zahl ccm H bei 0° und 760 mm D (1 l = 0,098 g), welche mit 1 g Substanz bei Behandlung mit molekularem Platin in Reaktion treten, um die Zahl der doppelten Bindungen in ungesättigten Fettsäuren zu bestimmen. Bisweilen werden auch die Glycerinmenge und die Diglyceride bestimmt. Qualitative Reaktionen sind die Elaidinprobe, die Sauerstoffabsorptionsprobe und die Hexabromidprobe (zum Nachweis der Linolensäure). Auch die Bestimmung der Temperaturerhöhung beim Vermischen mit konz. Schwefelsäure wird vielfach zur Identifizierung der Öle benutzt (~Maumenés~ Probe). Für genauere Untersuchungen ist auch die Prüfung der isolierten Fettsäuren (auf Menge, spez. Gew., Schmelz- und Erstarrungspunkt, Siedepunkt, Löslichkeit, Brechungsexponent usw.) nötig. Der Fettgehalt von Drogen wird durch Extrahieren mit niedrig siedendem Petroläther im Soxhlet, Verseifen des Extraktionsrückstandes und Abziehen des Unverseifbaren bestimmt. Die meisten Öle sind gelblich, einige fast farblos (manche Sorten von Olivenöl und Ricinusöl), andere tiefgelb (Leinöl, frisches Palmfett), die Fette meist rein weiß (Cocosfett, Schweinefett). Einige sind durch Farbstoffe gefärbt, die sich beim Auspressen im Fett lösten. So ist Lorbeeröl durch Chlorophyll, Muskatbutter durch einen gelbroten, Astrocaryafett durch einen zinnoberroten Farbstoff gefärbt. Ein Chlorophyllgehalt der fetten Öle, der besonders bei Olivenöl und Hanföl beobachtet wurde, läßt sich leicht mit dem Spektroskop nachweisen (~Tschirch~ 1884). +Die direkte Synthese der gewöhnlichen Glyceride+ gelingt mit fast theoretischer Ausbeute durch Erhitzen stöchiometrischer Mengen von Fettsäure und Glycerin auf 200-250° unter gewöhnlichem Druck, wenn man das bei der Reaktion entstehende Wasser fortwährend entfernt und den atmosphärischen Sauerstoff mittelst eines inerten Gasstromes (CO₂) fernhält (~Belucci~ 1911. Weitere Synthesen bei ~Schacht~.) Auch mit Hilfe von Enzymen ist sowohl im Organismus wie in vitro ein Aufbau von Fetten möglich, da, wie zuerst ~Hanriot~ gezeigt hat, z. B. die fettspaltende Serolipase auch reversibel synthetisierend wirkt (biochemische Fettsynthese). Solche Synthesen gelangen ~Bodenstein~ und ~Dietz~, ~Taylor~, ~Pottevin~ u. and. ~Lewkowitsch~ gibt folgende Einteilung der Fettkörper: I. Öle (flüssig), a) vegetabilische: 1. trocknende, 2. halb trocknende, 3. nicht trocknende. b) animalische: 1. von Seetieren: α) Fischöle, β) Leberöle, γ) Tran. 2. Von Landtieren. II. Fette (fest), a) vegetabilische, b) animalische. Alle vegetabilischen Öle und Fette enthalten als Begleiter Phytosterine, alle animalischen Cholesterine. Die chemischen Beziehungen derselben zu den Fetten sind noch nicht aufgeklärt. Eine ziemlich vollständige tabellarische Übersicht über die Zusammensetzung, sowie die physikalischen und chemischen Konstanten von 225 pflanzlichen und tierischen Fetten und 10 Wachsen findet sich in ~Ulzer-Klimont~, Allgem. physiol. Chemie d. Fette 1906. Genaueres bei ~Lewkowitsch~. Der +mikrohistochemische Nachweis der Fette+ gelingt in allen Fällen, wo das Öl ungesättigte Säuren (z. B. Ölsäure) enthält mittelst Osmiumsäure: die Tropfen färben sich im Wasserpräparat bei gelindem Erhitzen mit dem Reagens braun (die Reaktion tritt aber auch bei anderen Substanzen mit doppelten Bindungen ein). In den Samen, welche ich selbst angesehen habe (und das ist eine große Zahl) ist das fette Öl in den Zellen +niemals+ in Tropfen, sondern in innigster Mischung oder Verbindung mit dem Plasma vorhanden. Es färbt sich daher die ganze zwischen den Aleuronkörnern liegende Masse mit Osmiumsäure braun, wenn man den Schnitt direkt in diese einträgt. Dieses von mir +Ölplasma+ genannte Gebilde wird aber durch Wasser zersetzt und es treten daher Tropfen hervor, wenn man den Schnitt in Wasser legt. Auch in den Zellen der Vegetationsorgane entsteht das Öl immer im Plasma und dieses ist wohl regelmäßig ölhaltig. Bisweilen entsteht es in sog. +Oleoplasten+ (Elaeoplasten, Ölbildnern). Doch bestreitet ~Uhlmann~, daß es sich hier um fettes Öl handelt. Ein weiterer Nachweis der Fette beruht auf ihrer Verseifbarkeit mit Alkalien. Man legt den Schnitt in Kaliammoniak: es entsteht eine wasserlösliche Seife (~Molisch~ 1891). Die Verseifung tritt schon bei gewöhnlicher Temperatur bei längerem Liegen ein und es treten dabei charakteristische Kristalle auf (~Hartwich~ und ~Uhlmann~). Die Fetttropfen nehmen auch Farbstoffe begierig auf, wie z. B. Alkanna, Chinolinblau, Sudan, Chlorophyll und den roten Farbstoff, der bei der ~Raspail~schen Zuckereiweißreaktion entsteht. In der Therapie spielen die Fette besonders eine Rolle als Salben- und Linimentvehikel. Alle Öle wirken zudem, wenn eßlöffelweise genommen, abführend, auch per anum, Gummiölemulsionen dagegen stopfend. Die gepreßten Öle verhalten sich nicht ganz gleich wie die mit Lösungsmitteln extrahierten des gleichen Objektes. In der +Pharmazie+ benutzt man auch die mit Kohlensäure gesättigten Öle (Brauseöle), sowie die bromierten und jodierten Fette. Der Lösungsfähigkeit des Phosphors in Öl bedient man sich zur Herstellung des Ol. phosphoratum. Die +Verbrennungswärme+ der Fette ist sehr beträchtlich. Während die Kohlehydrate im Durchschnitt nur 3900 g-Kalorien geben, geben die Fette im Durchschnitt 9300 g-Kal. Sie spielen daher im Stoff- und Kraftwechsel der Organismen eine große Rolle und sind wertvolle Nahrungsmittel. Die Frucht- und Samenöle werden meist durch +Pressung+ (kalte oder warme) gewonnen (vgl. I, S. 134). Die hierbei erhaltenen =Preßkuchen=, die immer noch mehr oder weniger Fett zurückhalten, sind wertvolle Futter- oder Düngemittel, da in ihnen sich noch das ganze Eiweiß (besonders in Form von Aleuronkörnern) befindet. Neuerdings werden aber auch viele Fette durch Extraktion, besonders mit Schwefelkohlenstoff und Benzin resp. Petroläther (weniger mit Tetrachlorkohlenstoff, Chloroform, Aceton, Benzol, Chloräthylenen oder Chloräthanen) gewonnen. Bei beiden Methoden gehen auch in Fett lösliche Begleiter der Fette in Lösung (Farbstoffe, giftige Substanzen, ätherische Öle s. oben). Die Apparate zur Ölgewinnung sind abgebildet bei ~Stiepel~ a. a. O. Der Bedarf an Pflanzenfetten ist ein ungeheurer. Deutschland allein führte 1906 für 30 Mill. Mark Pflanzenöle und für 202,49 Mill. Mark Ölsamen ein (~Tunmann~). Von tropischen Ölen kommen jährlich über 2000 Mill. kg an den Weltmarkt. +Marseille+ ist ein wichtiger Ölhandelsplatz für _Oliven_, _Arachis_, _Sesam_, _Copra_ und ihre Öle. Die +Methoden zur Reinigung der Fette+ beziehen sich auf die Entfernung mechanischer Verunreinigungen, gelöster Eiweißstoffe, Harze, Pflanzenschleim, freier Fettsäuren, Riechstoffen (Desodorisation) oder sind Bleichmethoden oder Methoden, welche auf eine Geschmacksverbesserung oder größere Haltbarkeit abzielen oder eine Erhöhung des Schmelzpunktes oder Herabsetzung des Erstarrungspunktes bezwecken (Demargarinierung). =Geschichte.= Schon das Urvolk der Sumerer bediente sich des Oliven- und Ricinusöls, die Babylonier des Sesamöls. Öl (mrḥt) und Talg (ʿd) werden sehr oft in ägyptischen und auch in babylonischen Rezepten genannt (vgl. I, S. 467). ~Oefele~ nennt (I, S. 486) 16 tierische Fette, die in babylonischen Apotheken zu finden waren. Die Gewinnung von Öl (umgebildet aus lat. oleum) aus Pflanzen durch Auspressen ist also sehr alt. Das Olivenöl wurde besonders zu Beleuchtungszwecken schon im alten Ägypten benutzt, ebenso in Palästina schon zu ~Mosis~ Zeit. Als Salbmittel bedienten sich seiner auch die alten Griechen, die es von den Ägyptern kennen lernten (~Herodot~). Auch das Öl der Mandeln und Nüsse war bereits den Alten bekannt. Sie benutzten die Öle auch als Speiseöle und zur Enfleurage, d. h. zum Ausziehen von Wohlgerüchen aus Pflanzen (viele Vorschriften bei ~Dioskurides~). Als Salbengrundlage begegnen wir dem Wollfett (Oisippus) schon in sehr früher Zeit (~Plinius~). Die Bereitung der Butter aus Pferdemilch durch starkes Schütteln kannten bereits die Skythen (~Herodot~) und ~Hippokrates~ nennt das Produkt schon βούτυρον. ~Dioskurides~, der das Buttern beschreibt, erwähnt Butter aus Schaf- und Ziegenmilch. Seife, aus Buchenasche und Ziegenfett in Germanien und Gallien bereitet, erwähnt ~Plinius~ (Hist. nat. 28, 191) als gallische Erfindung. Sapo ist entweder keltischen Ursprungs oder stammt aus +ahd.+ seifa, seifar (= Schaum), +agls.+ sápe, +urgerm.+ saipa und hängt wohl mit +lat.+ sêbum (= Talg) zusammen. Die Gallier und Germanen benutzten die Seife zum Rotfärben der Haare (+agls.+ taelg = Talg +und+ Farbe -- bei ~Ovid~: femina canitiem germanis inficit herbis) und so wurde sie auch zunächst in Rom benutzt, bis man sapo spissus herstellen lernte und zum Waschen anwendete. Schon damals scheint der Unterschied von harter und weicher Seife bekannt gewesen zu sein. Die Gallier bereiteten harte mit der Asche von Seepflanzen (Soda), die Germanen weiche mit der Asche von Landpflanzen (Kali) und auch ~Galen~, der Seife, aus Rinder-, Ziegen- und Hammelfett mit Aschenlauge und Kalk bereitet, kennt, erwähnt deutsche Seife zum Waschen und als Heilmittel. Übrigens blühte auch im alten Rom die Seifensiederei um Christi Geburt, wie wir aus Pompeji wissen (in früherer Zeit dienten Aschenlauge, Nitrum (Soda), alkalisches Wasser und gefaulter Urin, auch wohl saponinhaltige Pflanzen zum Waschen). ~Aëtius~ (VI. Jahrh.) erwähnt die schwarze Seife, ebenso die Arzneibücher von Wales (I, S. 683). Später war Marseille und sodann Venedig Sitz großer Seifenfabriken (daher Sapo venetus). Die Bleipflasterdarstellung war den Alten ebenfalls bekannt (~Dioskurides~, ~Plinius~). Nach Germanien kam das +Öl+, die Sache und das Wort, wohl erst im III. Jahrh. n. Chr. (oleum über +kelt.+ und +got.+ alêw, +ahd.+ olei, +agls.+ ele in Öl). ~Tachenius~ wußte, daß Alkalien und Metalloxyde die Fette verändern und daß in ihnen eine Säure enthalten ist. ~Moray~ beschrieb (1665) das Walrat, ~Homberg~ (1687) die Gewinnung des Cacaofettes, ~Leméry~ (1708) das Bienenwachs; ~Geoffroy~, der (1741) die Löslichkeit der Öle studierte, wußte, daß die Seife eine andere Löslichkeit hat, wie das ihr zu Grunde liegende Öl, und ~Macquer~ fand (1745) Säuren in der Seife. ~Frémy~ erkannte die Analogie der Bleipflasterbildung mit der Seifenbildung. Die Entdeckung, daß rauchende Salpetersäure viele Öle verdickt, machte schon ~Boyle~ (1661) und der Marseiller Apotheker ~Poutet~ fand, daß die salpetrige Säure der Grund der Bildung des von ihm Elaïdin genannten Körpers ist. ~Macquer~ meinte (1745), daß ein Fett um so dicker sei, je mehr es «Säure» enthalte. Dann untersuchten noch im XVIII. Jahrh. ~Buchner~, ~de Roi~, ~Vallerius~, ~Saluces~, ~Watson~ u. and. viele Öle und ~Cartheuser~ (I, S. 962) das Wachs, den Talg, die Seife und die tierischen Fette. ~Crell~ unterwarf sie der trockenen Destillation (1778) und führte (für die flüchtigen Säuren) den Namen +Fettsäuren+ ein. Dem Prozesse des Ranzigwerdens wandte schon ~J. C. Gehlen~ in seiner Dissertatio de oleis pinguibus rancidis Lips. 1776 seine Aufmerksamkeit zu. ~Fourcroy~, der das Leichenwachs auffand, vereinigte dies mit dem von ~Gren~ (1788) entdeckten Gallensteinfett (Cholesterin) und dem Walrat zu der Klasse der Fettwachse (Adipocire). ~Scheele~ entdeckte zwar das Glycerin oder Ölsüß, principium dulce oleorum (De materia saccharina peculiari oleorum expressorum et pinguedinum 1783) und erkannte, daß es beim Erhitzen aller Öle und Fette mit Bleiglätte entsteht, vermochte aber nicht die Natur der Fette aufzuklären, so daß noch ~Lavoisier~ sie für Kohlenwasserstoffe hielt! Die Natur der Fette, wie der Prozeß der Seifenbildung, wurde in einer denkwürdigen umfassenden Untersuchung der tierischen Fette 1811-1823 von ~Chevreul~ aufgeklärt, der auch bereits feste (acide margarique, a. stéarique), flüssige (acide oléique) und flüchtige (acide delphique [= Baldriansäure] Buttersäure, Capron- und Caprinsäure) unterschied, und die Namen Stearin (von στέαρ = Talg), Elain (von ἔλαιον = Öl) und Cetin (Walrat) einführte. ~Heintz~ und ~Berthelot~ setzten die Untersuchungen von ~Chevreul~ fort. Sie zerlegten die Margarinsäure in Palmitin- und Stearinsäure. ~Berthelot~, ~Luca~ und ~Wurtz~ erkannten das Glycerin als dreiwertigen Alkohol. =Lit.= ~Beckmann~, Beitr. z. Gesch. d. Erfind. -- ~Chevreul~, Les corps gras d’origine animale. Paris 1815-1823 (Neudruck 1889). -- ~Berthelot~, Am. chim. (3) 41, 216 (1854). -- ~Hanriot~, Compt. rend. 1896, 1897 und 1901. -- ~P. Schacht~, Beitr. z. Synthese der Fette. Diss. Zürich 1908. (Dort eine Liste d. synthet. dargest. Glyceride und eine Literaturübersicht.) -- ~Grün~, Über d. Konstitut. d. Fette. Habilitationsschr. Zürich 1907. -- ~Corelli~, Unters. über d. Spalt. v. Fett. Diss. Zürich 1909. -- ~Skopnik~, Synth. dreifach gemischt. Glyceride. Diss. Zürich 1909. -- ~Dunlap~ und ~Seymour~, Journ. amer. chem. soc. 27 (1905), 935. -- Verbrennungswärme d. Fette: ~Stohmann~, Journ. prakt. Chem. 31, 32, 42, 44 und 45 und ~Sherman~ u. ~Snell~, Journ. am. chem. soc. 1901, 164. -- ~Klimont~, Zeitschr. angew. Chem. 24, 254 (1911). -- ~Heise~, Arbeit. aus d. kais. Gesundheitsamt (1896) 12, 540; 13, 302. -- ~Belucci~, Atti R. Accad. dei Lincei (5) 20, I 235 (1911). -- ~Fokin~, Zeitschr. anal. Chem. 1909. -- ~Molisch~, Histochemie 1891. -- ~Hartwich~ und ~Uhlmann~, Nachw. fett. Öle durch mikrochem. Verseif. Arch. Pharm. 1903, 111. -- ~Uhlmann~, Dissert. Zürich 1902. -- ~Bell~, Chemistry of foods II. -- ~Lewkowitsch~, Chem. Technologie u. Analyse d. Öle, Fette und Wachse. Braunschweig 1905. -- ~Ulzer~ und ~Klimont~, Allgemeine u. physiol. Chemie d. Fette. Berlin 1906. -- ~Euler~, Pflanzenchemie. -- ~Marcusson~, Laboratoriumsbuch für d. Industrie d. Öle und Fette 1911. -- ~Tschirch~, Einige prakt. Ergebn. meiner Unters. über d. Chlorophyll. Arch. Pharm. 1884. -- Verzeichnis der fettliefernden Pflanzen bei ~Mikosch~, in ~Wiesner~, Rohstoffe, II. Aufl. -- Untersuchungsmethoden: ~Lewkowitsch~ in ~Lunge~, Chem. Techn. Untersuchungsmeth. 5. Aufl. III (1905). -- ~Benedikt-Ulzer~, Analyse d. Fette u. Wachsarten. -- Für das Technische: ~Hefter~, Technologie d. Fette u. Öle 1906. -- ~Schädler~, Technol. d. Fette. 2. Aufl. 1892. -- ~Stiepel~, Fette, Öle, Wachse in ~Weyls~ Einzelschriften z. chem. Technolog. 1911 (reich illustriert). -- Über die Fortschritte berichtet der Jahresbericht auf dem Gebiete d. Fette, Öle u. Wachsarten in der Chem. Revue über die Fett- und Harzindustrie. -- Ein Spezialkomitee für die einheitliche Untersuchung von Fetten und pflanzlichen Ölen der Amer. chemical Society schlug 1910 einheitliche Methoden vor (Rev. über d. Fett- u. Harzindustr. 1911, 84). I. Vegetabilische Öle und pflanzliche Öldrogen. 1. Trocknende Öle. In den trocknenden Ölen sind Fettsäuren mit mehreren doppelten Bindungen enthalten, die also eine hohe Jodzahl zeigen und welche durch Sauerstoffaufnahme erhärtende Oxyde bilden. Ölsäure gehört nicht zu diesen, wohl aber Linolsäure und Linolensäure. Sie geben nicht die Elaidinreaktion, wohl aber, wenn Linolensäure vorhanden, Hexabromid. Die Sauerstoffaufnahme des Leinöls, die Linoxin(Linoxyn-)bildung erfolgt immer an den doppelten Bindungen. ~Roch~ denkt sich dieselbe folgendermaßen: 1. Phase >C=C< + O₂ → >C--C< (Peroxyd) | | O--O 2. Phase >C--C< >C---C< | | → \ / + O (Oxyd) O--O O Linoxin ist in allen Lösungsmitteln unlöslich. Die Sauerstoffaufnahme ist (z. B. beim Leinöl) lebhafter, wenn man erst mit Sikkativen (Manganborat, Bleioxyd) kocht. ~Genthe~ hielt den Vorgang beim Trocknen des Leinöls für eine molekulare Autoxykatalyse und die Sikkative nur für Pseudokatalysatoren, ~Fokin~ für eine hemimolekulare Autoxykatalyse, ~Fahrion~ meint, daß bei der Autoxydation zuerst Peroxyde entstehen, daß diese alsdann umgelagert werden und dadurch zu Wasserabspaltung und Komplexbildung führen. Die Sikkative ändern den Chemismus des Autoxydationsvorganges nicht, sondern wirken nur als Katalysatoren beschleunigend oder abkürzend. Bei Einlegen in die ~Molisch~’sche Kaliammoniakmischung liefern die trocknenden Öle kleine Sphärite (~Uhlmann~). =Lit.= ~Mulder~, Chemie d. austrocknenden Öle. Deutsch. von ~Müller~. 1867. -- ~Roch~, Trocknende Öle. Zeitschr. angew. Chem. 1911, 80. -- ~Hazura~, Monatsh. f. Chem. 9, 180. -- ~Hehner~ u. ~Mitchell~, Analyst. 1898, 313. -- ~Rollett~, Chem. Centralbl. 1909, II, 1984. -- ~Fahrion~, Zeitschr. f. angew. Chem. 23 (1910), 722 u. 1910, 1106. -- ~Genthe~, Ebenda 19, 2087. -- ~Fokin~, Ebenda 22, 1451. -- ~Orlow~, Journ. Russ. Phys. Chem. Ges. 42, 658 (Chem. Centralbl. 1910, II, 1529). -- ~H. Ingle~ (Bemerk. über Leinöl), Journ. Soc. chem. ind. 30, 344. Semen Lini und Oleum Lini. Sowohl über die Stammpflanze, _Linum usitatissimum_, wie über den Samen und sein Öl (Leinöl, Leinsamenöl, huile de lin, linseed oil, oil of flaxseed) ist bereits oben (S. 314) berichtet worden. Der Ölgehalt des Leinsamens schwankt von 24,66 bis 44,46% der Trockensubstanz (~König~); obere Grenze der Asche 5% (~Hauke~). ~Harry Ingle~, der mehrere tausend Leinöle untersuchte, fand Jodzahl und spez. Gew. bei: Baltischem Leinöl 195 0,9357 Calcutta Leinöl 185 0,9322 Deutschem Leinöl 181,5 0,9322 Englischem Leinöl 185 0,9332 Laplata Leinöl 179,5 0,9315 Menhaden Leinöl 182 0,9328 ~Fahrion~ gibt jetzt (vgl. oben S. 323) dem Leinöl folgende Zusammensetzung: Unverseifbares 0,6%, gesättigte Fettsäuren 9,3%, Ölsäure 17,5%, Linolsäure 30%, Linolensäure 38%. +Linolsäure+ (C₁₇H₃₁COOH) enthält zwei doppelte Bindungen, addiert also vier Atome Brom, gibt oxydiert zunächst Sativinsäure (Tetraoxystearinsäure), dann Azelainsäure: COOH(CH₂)₇COOH. +Linolensäure+ (C₁₇H₂₉COOH) ist auch eine ungesättigte Säure (s. oben S. 546). +Sie liefert ein Hexabromid+ und gibt oxydiert Linusinsäure (Hexaoxystearinsäure). Beide Säuren sind flüssig. Die Annahme einer Isolinolensäure (~Hazura~) oder β-Linolensäure (~Erdmann~, ~Bedford~ und ~Raspe~) erschien nach ~Rollett~ unbegründet, doch halten ~Erdmann~ und ~Bedford~ (1910) ihre Angaben aufrecht. Das Komitee der Amer. Soc. for testing materials schlägt (ungefähr übereinstimmend mit ~Benedikt-Ulzer~) folgende Konstanten für reines Leinöl vor: spez. Gewicht 0,935-0,932, Brechungsexponent bei 25°: 1,4805-1,4790, Säurezahl 6, Verseifungszahl 192-189, Jodzahl (~Hanus~) 190-178, Unverseifbares 0-1,5. Doch fand ~Meister~ bei absolut reinen Leinölen unter 170, der bisher angenommenen unteren Grenze, liegende Jodzahlen (160,2 bis 164,5). Die Verbrennungswärme des Leinöls beträgt bei konstantem Volumen 9364 bis 9379, bei konstantem Druck 9379 bis 9394 g-Kalorien (~Sherman~ und ~Snell~). Der Entflammungspunkt liegt bei 205-225° (~Rakusin~). +Hamburg+ importierte 1908 seewärts 33211 dz +Leinöl+, davon aus den Niederlanden 25975; 1907 geringe Mengen auch aus den russischen Ostseehäfen und Schweden. +Frankreich+ importierte 1908 18955 Quint. +Leinöl+, die Hälfte etwa aus Belgien, dann aus China, England und den Niederlanden. +Britisch Indien+ exportierte Linseed 1907/08: 2290185, 1908/09: 1405467 cwts nach England und engl. Besitzungen und 1907/08: 3907697, 1908/09: 1804080 cwts nach anderen Ländern. Die Gesamtausfuhr an Leinöl betrug 1908/09: über 36000 Gallons. Die +Vereinigten Staaten+ exportierten 1908: 4277313, 1909: 882899 bushels Flaxseed, 1908: 367883, 1909: 273029 Gallons Linseed oil und 1909: 682764545 pounds Linseedoilcake. In dem +Leinsamenpreßkuchen+ (Leinkuchen, Placenta sem. lini, Pain ou gâteau de lin, linseedcake) sind neben dem Schleim auch alle stickstoffhaltigen Substanzen des Samens enthalten, also das Protein Edestin, krist. Globulin, ein Albumin, wenig Proteosen und Peptone (~Osborne~ und ~Campbell~), ferner Lecithin (~Schulze~ und ~Steiger~), Lipase (~Sigmund~), Protease (~Will~), ein glykosidspaltendes Enzym (~Dunstan~, ~Henry~ und ~Auld~), Linamarin (Phaseolunatin, s. oben S. 322) und Reste des fetten Öls. Die Zusammensetzung des +Lein+preßkuchen in % ergibt sich aus folgender Tabelle: ------------------++--------------+-------++--------+--------+-------- || ~König~ ||~Garola~|~Wagner~|~Holde- || Min. | Max. |Mittel || | |fleiss~ ==================++==============+=======++========+========+======== Wasser || 9,54 | 20,50 | 12,19 || 12,86 | 10,40 | 13,43 Stickstoffhaltige || | | || | | Substanz ||19,00 | 36,18 | 29,48 || 30,87 | 25,94 | 25,27 Fett || 3,78 | 16,34 | 9,88 || 8,75 | 12,30 | 11,43 Stickstofffreie || | | || | | Substanz ||24,54 | 46,58 | 29,91 || 28,48 | 34,81 | 30,72 Cellulose || 5,42 | 16,50 | 9,69 || 11,88 | 10,75 | 11,72 Asche || 5,13 | 16,50 | 9,69 || 7,16 | 5,80 | 7,40 Da der Leinpreßkuchen als Futtermittel sehr geschätzt, aber relativ teuer ist, so wird er oft verfälscht angetroffen, besonders mit Mohnsamen- und Arachispreßkuchen. ~Collin~ fand darin auch die Samen von _Chenopodium polyspermum_, _Spergularia arvensis_, _Cerastium triviale_, _Spergula arvensis_, sowie Leguminosensamen. Das +Flachswachs+ besteht aus Phytosterin, Cerylalkohol, Palmitin-, Stearin-, Öl-, Linol- und Linolensäure. F. = 61,5, Jodzahl 10. =Lit.= Vgl. oben unter Trocknende Öle. -- Chem. Lit. zusammengestellt in ~Wehmer~, Pflanzenstoffe. -- Über die Bestandteile der Aleuronkörner vgl. ~Tschirch~ und ~Kritzler~, Ber. d. pharm. Ges. 1900, 264. -- Preßkuchen: ~Collin-Perrot~, Les résidus industriels. Fructus Cannabis und Oleum Cannabis. =Syn.= Hanfsamen: graine de chanvre, hemp seed, seme di canape. Die Pflanze: Hanf, Bästling, Hämp oder Hemp, in Österreich: Harf, Pastök und Hanef; in der Schweiz: Werch (die Frucht: Hausset), Tregel, Tschenevo, in Bünden: Chanf, im Tessin: Canape, Canapule. Die männliche Pflanze: Hanfhahn, fälschlich (weil kleiner) femmel oder fimmel (von femella = Weibchen -- deutet auf späte römische Einflüsse), die weibliche Pflanze: Hanfhenne, Hänfin, Samenhanf, fälschlich mastel, masch, mäschel (von mas) -- so schon im Corpusglossar. Bei ~Gerarde~ (Herbal 1633): der männliche wird Carl- oder Winter-H. genannt, der weibliche Barren- oder Sommer-H. -- hemp (engl.) -- chanvre, chènevis (franz.), cambre (norm.), chène (wallon.) -- canappa (ital.) -- câñamo (span.) -- cánhamo (port). -- hennep (holl.) -- hamp (norweg.) -- hampa (schwed.) -- konópel (russ.) -- καννάβι (griech.). Bei ~Dioskurides~: κάνναβις, -- bei ~Plinius~: cannabis, -- bei den späteren Griechen: σχινόστροφος, ἀστέριον. -- Bei ~Simon Seth~: κανναβουρόσπερμα; -- im Mittelalter: canabus, canapus, caniva, canopus, sechedenchi; bei der ~Hildegard~: hanff, cannabus; -- bei ~Alhervi~: schâh-dânadsch -- bei ~Ibn Baithar~: kunnab. -- In der Alphita, bei ~Serapion~ und ~Bartholomaeus~ steht: canaps, cannabis, canapis caulis et canabit, cotumb, scehedenegi canabis, canurus, hemp. -- +ahd.+ hanaf, +anord.+ hampr, +mhd.+ hanef, hanf, +nhd.+ hanf, +nnd.+ hemp, +angels.+ haenep, +ndl.+ kennep, +arab.+ kinnub, cannab, +sansc.+ goni, sana, indrasana (= ~Indras~ Hanf), shanapu, banga, ganjika, +beng.+ ganga. Die Früchte heißen +hind.+: ganjé-ke-bij, +tam.+: ganja-virai, +beng.+: ganja-bij -- im +pers.+ shahdánah = Königssamen (Pharm. ind.). In +China+ heißt der Hanf ho-ma, ta-ma oder ya-ma (auch für andere Gespinstpflanzen benutzt, ~Dragendorff~), die Frucht: ho-ma-jin. =Etym.= Die frühere Annahme, daß das Wort Hanf aus cannabis entstanden sei, ist jetzt aufgegeben (~Kluge~, ~Schrader~). Beide Worte werden jetzt von der gemeinsamen Wurzel canna, ken (çaṇa im Sanskrit = Rohr) abgeleitet, die sich im čeremissischen kehe, kiné (= Hanf) findet und die auch im turko-tartar. kin-dūr (= Hanf) bulgar. kenevir (= Leinwand) und magyar. kender (= Hanf) auftritt. Die Endsilbe bis bringt ~Schrader~ zu dem syrjänischen und wotjakischen piš, puš (= Nessel) in Beziehung. (Bei ~Wrigt-Wülcker~ Agls. a. O. E. Vocabularies I, 198: cannabum haenep vel pis.). Cannabis wäre also selbst Lehnwort und ein Doppelwort, das Hanf-Nessel(ein Pleonasmus!) bedeutete. +Alban.+ heißt der H. kanep, +lit.+ kanapis, +aslov.+ konoplja, +armen.+ kanap, +npers.+ kanab. (Die Ableitung von cannabis und Hanf aus der in Banga und Gangika enthaltenen Sanskritwurzel ang oder an [~de Candolle~] leuchtet mir nicht ein.) Der Name kann nicht bis in die indogermanische Urzeit, ja nicht einmal bis in die Epoche vor dem Abzug der Griechen nach Süden zurückreichen, da der H. den Griechen noch unbekannt war, während er damals im südlichen Rußland schon gebaut wurde. «Die Germanen erfuhren Einfluß südlicher Kultur etwa erst in den ersten Jahrhunderten unserer Zeitrechnung. Es gibt kein Lehnwort aus dem Griech. oder Latein., das die erste Lautverschiebung vollständig mitgemacht hätte. Wenn aber Verschiebung der Konsonanten in germ. hanapiz gegenüber κάνναβις vorliegt, so ist dies ein Beweis dafür, daß das Wort ein paar Jahrhunderte n. Chr. bei den Germanen bereits eingebürgert war» (~Kluge~). -- Der in alten Pflanzenglossaren auftretende Name für H. agrius (von ἄγριος = wild) deutet vielleicht darauf, daß H. an wüsten Plätzen ausgesät wurde und viel halbwild wuchs (~Fischer-Benzon~). Auf die Verwendung der Faser zu Stricken deutet die Bezeichnung σχοινόστρωφον (= Stricke drehend, bei ~Dioskurides~, von σχοινίον und στρέφειν), die Namen Bästling, Bast, Bösling, Werch. Die einfachere Form canna, κάννη, im altindischen çaṇa, deutet vielleicht (~Grassmann~) auf Rohr, das auch zu Flechtwerken diente (~Kanngiesser~), auf die sternförmige Fingerteilung der Blätter der Name ἀστήριον (bei ~Dioskurides~). =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Cannabis sativa= L. (Spec. pl. ed. I, 1027) mit einigen Varietäten und Formen (s. unten). In Amerika wird von der typica eine var. americana unterschieden, in Algier eine als Kif. +Urticales+ -- +Moraceae+ -- Cannaboideae (neben Humulus). Cannabis Tourn. hat nur eine Art. =Beschreibung der Stammpflanze.= Der Hanf ist eine einjährige, krautige, diklin-diöcische (bisweilen monöcische) Pflanze mit straffem, aufrechtem, bis 3 m hohem und 5 cm dickem, undeutlich kantigem, kurz rauhhaarigem Stengel, der aber in der Kultur (z. B. bei der var. _gigantea_ und der var. _chinensis_ ~Del.~ in China) doppelt so hoch, in der Poebene doppelt mannshoch werden kann, bei der var. _pedemontanus_ aber nur 1,5 m hoch ist. Die Stengel enthalten in der Rinde zahlreiche Bastfasergruppen (s. Hanffaser, S. 254). Die Verzweigung ist bei der weiblichen Pflanze dichter als bei der männlichen (bei der var. _pedemontana_ reich und abstehend). Die +Blätter+, unten dekussiert, oben spiralig angeordnet, sind gestielt, (3-) 5-, 7-9fach gefingert. Der Stiel besitzt oben eine seichte Regenrinne. Die sitzenden, rauhhaarigen Blättchen sind lanzettlich, beiderseits zugespitzt, scharf gesägt (~Dioskurides~ vergleicht sie mit denen der Esche), die pfriemlichen Nebenblätter fein behaart. Die lockeren männlichen Infloreszenzen sind nur unten laubig. [Illustration: Fig. 179. _Cannabis sativa L._ 1. Diagramm der weiblichen Infloreszenz. 2 Frucht von der Fläche, 3 Frucht von der Kante gesehn. 4 Keimling herauspräpariert. 5 Querschnitt durch die Frucht und den Samen. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Die achselständigen Partialinfloreszenzen der +männlichen+ Pflanze sind Doppelrispen: die Hauptachse verkümmert, unter ihrer Spitze entspringen zwei gleichwertige Rispen. An der Spindel der letzteren entspringen in der Achsel von Deckblättern unten kleine Dichasien, oben Wickel (reichblütige Dichasien mit Wickeltendenz und stark gestreckter Sympodialachse). Am Ende der Hauptachse der Pflanze steht eine echte Rispe. Die kurzgestielten aktinomorphen Blüten besitzen ein 5 mm langes, grünliches, aus fünf lineal-lanzettlichen Blättchen bestehendes Perigon, fünf epipetale Stamina mit linealer, mit Längsspalt aufspringender Anthere und kurzem Filament. Pollen rundlich (vgl. S. 480). Ein Stempelrest fehlt. Die dichte buschige weibliche Infloreszenz ist bis fast zum Gipfel laubig. Bei den achselständigen +weiblichen+ Partialinfloreszenzen ist die Hauptachse entwickelt. Sie wird zu einem Laubtrieb (Fig. 179, Mi). Die beiden Vorblätter (D α u. β) werden zu Deckblättern der zwei +weiblichen Blüten+. Sie umhüllen diese in Form einer innen offenen, außen behaarten Scheide, die länger ist wie der Fruchtknoten. In den Laubblattachseln der Zweige zweiten Grades wiederholt sich dasselbe und so entsteht der buschige Wuchs, der die meist kräftigeren weiblichen Pflanzen von den locker beblätterten männlichen unterscheidet. Das aus zwei Blattanlagen hervorgehende Perigon umgibt die Basis des einfächerigen, sitzenden Fruchtknotens becherförmig eng. Der eiförmige zusammengedrückte +Fruchtknoten+ enthält ein vom Scheitel der Blütenachse gebildetes (~Zinger~), hängendes, anatropes Ovulum und trägt zwei lange fadenförmige, in papillöse Narben auslaufende Griffel, die nach der Befruchtung abfallen. Die gelblich-graue, platte, kahle Frucht ist ein Nüßchen, das von dem sich vergrößernden Deckblatt umhüllt ist. Die Mikropyle der Samenanlagen ist zur Zeit der Reife nicht mehr vorhanden. Der Pollenschlauch wächst durch das Gewebe der Fruchtknotenwand zum Nucellus (~Zinger~). Die ganze Pflanze, besonders aber die weibliche Infloreszenz, besitzt einen starken narkotischen Geruch, der von Öldrüsen herrührt, die namentlich auf allen Blattorganen sitzen (s. Anatomie). Blüht in Deutschland im Juli bis August. Die ursprüngliche Heimat des Hanf ist wohl die Gegend am Caspisee. Er ist sicher wild noch jetzt südlich von diesem See, und bei Lenkoran, sowie bei Astarte (~Bunge~). Häufig angetroffen wird er auch in Sibirien, am Irtysch südlich vom Baikalsee, in Dahurien (Gouvern. Irkutzk), im Ural, an der Wolga, in Persien, Altai, West-China, Kaschgar, Kaschmir und im Himalaya. Im Himalaya steigt der Hanf bis 3000 m. Er ist jetzt durch Kultur über die Länder der gemäßigten Zone beider Hemisphären verbreitet. Daß er am Missouri wild wachse (~Wherrel~) ist aber nicht richtig. Nach Afrika ist er ebenfalls eingeführt worden, denn ~Livingstone~ fand ihn im Gebiete des Congo und Sambesi. Die +physiologische Varietät+ _indica_ (auch wohl als Art _Cannabis indica_ ~Lam.~ unterschieden) weicht nur im Wuchs ab (sie ist kleiner) und in der viel reicheren Ausbildung der Drüsenhaare und demgemäß stärkerem, fast betäubendem Geruch; die Art des Sekretes ist aber wohl dieselbe wie bei unserem Hanf (~Wood~). Sie liefert keine spinnbare Faser (s. _Herb. cannabis_). Die Ableitung der _Cannabis sativa_ des Nordens von dem indischen Hanf (~Wiesner~) leuchtet mir nicht ein. Eher dürfte das Umgekehrte der Fall sein. =Lit.= ~Engler~, Moraceae in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. -- ~Luerssen~, Mediz. pharm. Botan. II, 528. -- ~Eichler~, Blütendiagr. -- ~Bunge~, Bull. Soc. Bot. France 1860, 30. -- ~Ledebour~, Flora rossica. -- ~de Candolle~, L’origine d. pl. cult. -- ~Hügel~, Kaschmir. 1840. -- ~Royle~, Illustr. of the bot. of the Himalayan mont. 1839 und Fibrous plants of India. Cultivation of hemp in India. -- ~Garnier~, Exploration in Indo-Chine 1873. -- ~Zinger~, Beitr. z. Kenntn. d. weibl. Blüten u. d. Infloresz. d. Cannabineen. Flora 85, 189. +Abbild.+: ~Berg-Schmidt~, Atlas 2. Aufl., t. 129 (dort die systemat. Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 13. -- ~Nees von Esenbeck~, Plant. med. t. 102. -- ~Hayne~, Arzneigew. t. 35. -- ~Reichenbach~, Icon. fl. Germ. t. 655. -- ~Bentley~ and ~Trimen~, Medic. plant. t. 231. -- ~Rheede~, Hort. mal. t. 60 u. 61. -- ~Rumphius~, Herb. Amb. V, t. 77. =Pathologie.= Prof. ~Ed. Fischer~ teilt Folgendes über die pflanzlichen Schädlinge mit: Auf Stengeln und Blättern des Hanfes sind verschiedene Parasiten beobachtet, von denen die meisten nicht sehr erhebliche Schädigungen hervorrufen dürften. Wir erwähnen unter denselben _Peronospora Cannabina_ ~Otth.~, _Dendrophoma Marconii_ ~Cav.~, _Septoria Cannabis_ (~Lasch~) ~Sacc.~, _Phyllosticta Cannabis_ ~Speg.~ Wichtiger ist die als Hanfkrebs beschriebene Erkrankung, welche durch eine _Sclerotinia_ (_Scl. Kauffmanniana_ ~Tichomiroff~, nach ~de Bary~ mit _Scl. Sclerotiorum_ ~Libert~ übereinstimmend) hervorgerufen wird, deren Mycel den Stengel durchwuchert und an dessen Oberfläche sowie im Markraum Sklerotien bildet. Die sog. Brusonekrankheit des Hanfes, bei welcher am Stengel etwas vorspringende, weissgraue Flecken und ein Absterben des Gewebes bis zum Holzkörper beobachtet wird, ist nach ~V. Peglion~ eine Bakteriose. Endlich leben auf _Cannabis sativa_ die beiden phanerogamischen Parasiten _Orobanche ramosa_ L. (_Phelipaea ramosa_ ~C. A. Meyer~) und _Cuscuta europaea_ L. =Kultur und Handel.= Der Hanf wird besonders zur Gewinnung seiner Faser, weniger wegen der Früchte und des aus ihnen gepreßten Öls, in Indien als narkotisches Genußmittel (zur Bereitung des Haschisch I, S. 1042) gebaut; in größerem Maßstabe in Rußland in den Gouvernements Smolensk, Kaluga, Tela, Orel, Kursk, Tschernigoff. Ferner wird Hanf angebaut in China, Ostindien (hier die var. _indica_), Persien, Österreich, Ungarn, Deutschland (Baden, Elsaß, Rheinlande), Nordamerika (hier auch in Form der var. _americana_) und Neu-Seeland. Er gedeiht ebenso in der Nähe des Polarkreises (Archangel) wie in Indien. Hanf findet sich bisweilen in den Gärten der Bauern und Fischer in Kleinkultur (Kampongkultur I, S. 48), die daraus die Faser gewinnen (~Fischer-Benzon~). Der Hanf liebt im allgemeinen ein nicht zu nasses, warmes Klima und eine geschützte Lage. Er verlangt einen kräftigen, tiefgründigen Boden. Der Hanf reift in 13-14 Wochen und welkt nicht eher als bis die Früchte reif sind. Die Früchte fallen zur Reifezeit aus der Hülle. Man trocknet sie rasch an der Luft. Die Früchte werden in Mitteleuropa im August gesammelt. In Amerika kennt man folgende Sorten von _Cannabis sativa_-Früchten: barren hemp, black seeded hemp, chinese hemp, common h., East India h., German h., Indian h., Imperial Kentucky h., Russian h., New Zealand h. Der Hanfsamen von _C. s._ var. _americana_ heißt: American hemp, auch wohl (fälschlich) chinese h. (~Wherrell~). Im deutschen Handel ist Hanfsaat in Ballen von c. 100 kg. +Hamburg+ führte von _Fr. Cannabis_ 1908: 1082800 kg, 1909: 592100 kg ein und 1908: 780300 kg, 1909: 342500 kg seewärts aus (~Tunmann~). +Deutschland+ importierte 1909: 77526 dz «Hanfsaat» besonders aus dem europ. Rußland und Österreich und exportierte 59188 dz, besonders nach Frankreich. =Lit.= ~Oppenau~, Der Hanfbau im Elsaß, seine Geschichte u. Bedeutung. 1897. -- ~O’Shaughnessy~, Bengal dispens. and Pharmac. 1841. -- ~Watt~, Dict. econom. prod. India. -- +Wherrell+ s. unten. -- ~Tunmann~, Apoth. Zeit. 1911. =Beschreibung der Droge.= Die nußartigen, einfächerigen, einsamigen Schließfrüchte, die je nach der Sorte etwas verschieden in Form, Größe, Glanz, Marmorierung und Aderung sind, und denen bisweilen noch bräunliche Reste des Deckblattes anhaften, sind c. 3-5 mm lang und c. 2 mm breit (die Früchte der var. _gigantea_ sind größer, ~Harz~), oval, breit-eiförmig etwas zusammengedrückt, an den Kanten, besonders an der dem Würzelchen entsprechenden Seite, gekielt (Fig. 179) und hier bei der Keimung zweiklappig aufspringend. Das Gewicht einer Frucht beträgt c. 4 mg. Die dünne, harte, zerbrechliche, glatte und glänzende Schale ist grau, grünlichgrau, grünlichbraun oder graubraun, innen meist olivenbraun, durch ein zierliches, von der Basis aufsteigendes, besonders bei Betrachtung mit der Lupe deutliches Adernetz zarter Gefäßbündel gezeichnet (Fig. 179). Der an der Spitze der Frucht angewachsene, von einer zarten, grünlichen, neben der Spitze der Radicula eine braune Chalaza zeigenden Samenhaut bedeckte Same enthält reichlich Endosperm nur um die Radicula. Er ist aus einem camptotropen Ovulum hervorgegangen, daher ist der Embryo hakenförmig gekrümmt (Fig. 179, 4). Dieser besitzt breite, fleischige Cotyledonen und eine anliegende Radicula, deren Spitze gegen die Spitze der Frucht gerichtet ist. Zwischen den Cotyledonen liegt die kleine Plumula. Die Früchte schmecken ölig, süßlich, etwas schleimig, die Emulsion widerlich. Hohle oder zerbrochene (stets ranzige) Früchte sind zu beseitigen. Aufgesprungene keimen nur zu 54% (~Harz~). Man bewahrt Hanffrüchte am besten in hölzernen Gefässen auf. =Lit.= ~Muth~, Unters. über d. Früchte d. Hanf. Jahresb. d. Verein. d. Vertret. d. angew. Botanik 1906. -- ~Tschirch~ in Realenzyklop. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde. =Anatomie.= Die Fruchtknotenwand ist haar- und drüsenfrei. Das Perigon trägt einige Öldrüsen, ganz besonders ist aber das große, in einen langen, lanzettlichen Zipfel auslaufende +Deckblatt+ außer mit Cystolithenhaaren (wie die Laubblätter) über und über mit Öldrüsen besät (vgl. ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas), die beim indischen Hanf sehr dicht stehen, bisweilen mehr wie 16 Secernierungszellen enthalten und auf langen Stielen emporgehoben sind. Platzt die Cuticula der Drüsen, so verklebt das Sekret den ganzen weiblichen Blütenstand, was besonders beim indischen Hanf stattfindet. Die +Fruchtschale+ besteht aus zwei Schichten, einer weichen äußeren und einer harten inneren. Die äußere besteht aus vier Schichten: der Epidermis, einer Zone unregelmäßiger Zellen, eine Schicht brauner, quergestreckter und einer Reihe heller quadratischer Zellen. In der subepidermalen Zone verlaufen die zarten Bündel, die die Zeichnung der Frucht (s. oben u. Fig. 179) bedingen. Die Hartschicht der Fruchtschale besteht aus einer Reihe sehr eigenartiger Palissadensklereïden (Fig. 180, scl). Die grünliche Samenschale besteht aus zwei Schichten, einer äußeren einreihigen, die aus eigentümlichen langen, eine grünliche Substanz enthaltenden Schlauchzellen besteht und einer inneren breiten, stark obliterierten Nährschicht (Fig. 180 N). Das aleuronreiche, der Samenschale anhaftende Endosperm ist gegen die Cotyledonen hin durch eine Quellschicht (~Tschirch~) abgeschlossen (Fig. 180 Qu). Die subepidermale Schicht der Oberseite der Cotyledonen zeigt palissadenartige Streckung. Das Gewebe der Cotyledonen und der Radicula ist erfüllt mit in Ölplasma eingebetteten, Globoide und Kristalloide einschließenden, c. 4-8 mik. langen Aleuronkörnern. Die Angabe ~Wherrells~, daß auch Stärkekörner in großer Menge vorkommen, beruht auf einen Irrtum. Jede Zelle enthält einen lappigen Zellkern. [Illustration: Fig. 180. _Cannabis sativa_ L. Querschnitt durch die Fruchtschale (frs), Samenschale (ss), das Endosperm (End.) und die innere Schicht eines Cotyledon. [+Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Lit.= ~Tschirch~, Anatomie, Fig. 36, 148, 157, 533. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas (dort das anatom. Detail). -- ~Tschirch~, Cannabis in Realenzyklop. d. Pharm. -- ~Winton~, Anatom. d. Hanfsam., Zeitschr. d. Unters. d. Nahrungs- u. Genußm. 1904; auch Conn. Agric. Exp. Stat. Rep. 1903, 175. -- ~Collin-Perrot~, Les résidus industriels (p. 115 die Preßkuchen mit Abbild.). -- ~Moeller-Winton~, Mikroskop. d. Nahrungsm. und ~Winton-Moeller~, Microscopy of vegetable foods (mit Abbild.). -- ~Harz~, Landw. Samenkunde (mit ungenauen Abbild.). -- ~Macchiati~, Anat. del frutto e germinat. del seme della canapa Bull. Staz. agrar. di Modena 1889. -- ~Benecke~, Mikrosk. Unters. d. Kraftfutterm. 1886. -- ~Collin~, Guide pratique 1893. -- ~T. F. Hanausek~, Nahrungs- u. Genußm. 1884. -- ~Böhmer~ in ~Königs~ Unters. landwirtsch. u. gewerbl. wichtig. Stoffe 1898. =Chemie.= Eine ältere Analyse (~Buchholz~) gibt an, daß die Früchte enthalten in Prozenten: 19,1 Öl, 1,6 Harz, 1,6 Zucker und Extraktivstoff, 9 gummiges Extrakt, 24,7 lösliches Eiweiß, 5 Dextrin, 38,3 Faser. ~Anderson~ fand 22% Eiweiß, Phosphate 2,4%, übrige Asche 4%. Die lufttrockenen Früchte ergaben im Durchschnitt zahlreicher Analysen (~Boussingault~, ~Dietrich~ und ~König~, ~Anderson~, ~Schädler~) in Prozenten: 8,92 Wasser, 18,23 Stickstoffsubstanz, 32,58 (31,42-33,6) Fett, 21,06 stickstofffreie Extraktstoffe, 14,97 Rohfaser, 4,24 Asche -- in der Trockensubstanz: 20,01 Stickstoffsubstanz und 35,77 Fett. ~Frankfurt~ fand (1894) in der Trockensubstanz in Prozenten: 18,63 Eiweiß (Myosin, Vitellin), 3,36 Nucleïn usw., 0,88 Lecithin, 30,92 Glyceride, 0,07 Cholesterin, 2,59 Rohrzucker (~E. Schulze~) und sonstige lösliche Kohlehydrate, 11,02 Pentosane, 0,68 organische Säuren (Citronensäure), 26,33 Rohfaser, 5,51 Asche (~Leuchtweiss~: 5%). Der wässrige Auszug der unzerkleinerten Früchte schmeckt süßlich und reduziert ~Fehling~sche Lösung in der Kälte, durch Eisenchlorid wird er nicht gefärbt (~Flückiger~). In der von 3,5-6,5% (2,2-7,39 ~Wherrell~) schwankenden Asche findet sich in %: 20,28 Kali, 23,64 Kalk, 36,46 Phosphorsäure, 11,9 Kieselsäure, 5,7 Magnesia, 1 Eisenoxyd, 0,78 Natron, 0,19 Schwefelsäure, 0,08 Chlor. Ferner wurde in der Hanffrucht gefunden: +Edestin+ (~Osborne~ und ~Campbell~), krist. +Globulin+ (~Ritthausen~, ~Osborne~), +Anhydrooxymethylenphosphorsäure+ (?), als Ca-Mg-Salz = Phytin (?) (~Posternak~), +Trigonellin+ und +Cholin+ (~Schulze~ und ~Frankfurt~, ~Marino Zucco~, ~Jahns~), 3,36% +Nucleïn+, 0,88% +Lecithin+ und die Enzyme: +Emulsin+ (~Simon~), +Lipase+ (~Siegmund~), +Protease+ (~Will~). In den Aleuronkörnern finden sich hauptsächlich Globuline. Die Kristalloide enthalten wenigstens zwei Globuline von verschiedener Löslichkeit, die Globoide neben Globulinen in anscheinend fester Bindung Ca, Mg und H₃PO₄ mit einem organischen Rest, die Grundsubstanz neben Globulinen wenig Albumosen (~Tschirch~ und ~Kritzler~). Durch Pressung erhält man 15-30% Öl (und 70-85% «Hanfpreßkuchen»), durch Ätherextraktion bis 34,5% Öl (~Flückiger~); noch höhere Zahlen erhielten ~Munch~ (1866): 35,5% und ~Wherrell~ (1897) mit Petroläther und Äther: 35,65%. Als Durchschnittsgehalt kann man 32% annehmen. Das =Hanföl=, =Oleum cannabis= (huile de chanvre, de chènevis, hemp seed oil, olio di canape) zeigt die Elementarzusammensetzung C = 76,0, H = 11,3, O = 12,7, ist frisch gepreßt hellgrün bis grünlichgelb, wird aber bald braungelb und hat meist einen unangenehmen Geruch. Es enthält neben den +Glyceriden der Stearin-+ und +Palmitinsäure+ vorwiegend das +Glycerid der Linolsäure+ (c. 70%) neben 15% +Linolen-+ und +Isolinolensäureglyceriden+ (vgl. S. 546). ~Bauer~ und ~Hazura~ fanden darin eine eigentümliche Fettsäure: Hanfölsäure, C₁₈H₃₂O₂, die aber wohl mit Linolsäure identisch ist (?). Nach ~Lewkowitsch~ fehlt Stearinsäure. Der Gehalt an freier Säure beträgt c. 5% (~Bauer~, ~Hazura~, ~Grüssner~), der Gehalt an unverseifbaren Bestandteilen (Phytosterin + Lecithin) beträgt 1,08%. Das spez. Gewicht ist = 0,925-0,931. Das Öl verdickt sich bei -15 und erstarrt bei -27°. Die Verseifungszahl beträgt 190-194,9, die Jodzahl ist sehr hoch: 140-166 (meist 148 bis 157), die Acetylzahl der Fettsäuren 7,5, die Sauerstoffabsorption, direkt bestimmt: 13,4%, die Temperaturerhöhung bei der ~Maumené~schen Probe beträgt 95-99° (~Ulzer~ und ~Klimont~), Brechungsexponent in Oleorefraktometer +30 bis 37,5, der Entflammungspunkt liegt bei 250-265° (~Rakusin~) (weitere Konstanten bei ~Lewkowitsch~ a. a. O.). Das Öl wird rasch ranzig. Da die Fruchtschale stets +Chlorophyll+ enthält und dieses in Öl löslich ist, so findet man diesen Farbstoff auch, wie die spektralanalytische Untersuchung lehrt (~Tschirch~), im Öl. Das mit Äther ausgezogene Öl ist bräunlichgrün. Die in 12-15 kg schweren Broten in den Handel gebrachten +Hanfsamenpreßkuchen+ (pain de chènevis, tourteau de chanvre) enthalten c. 10% Wasser, 6-10,17% Öl, 21-31% Stickstoffsubstanz, 17,3-24,7% Faser und 7-8% Asche (~Cornevin~, ~Garola~, ~Dietrich~ und ~König~). +Narkotische Bestandteile, etwa der Art wie sie die Blätter zeigen, enthält die Frucht nicht.+ Sie kann also nicht zu Berauschungszwecken (I, S. 1042) benutzt worden sein. Wohl aber zeigten die Preßkuchen bei Tieren abführende Eigenschaften. =Lit.= ~Bucholz~, Arch. Pharm. (2) 78, 211. -- ~Anderson~, Journ. Agric. of the Highland Soc. 1855, 128 (Arch. Pharm. [2] 78, 211. Jahresber. d. Chem. 1855, 727). -- ~Leuchtweiss~, Lieb. Ann. 50 (1844), 417. -- ~Simon~, Pogg. Ann. 43, 404. -- ~König~, Nahrungs- u. Genußmittel (dort weitere Lit.). -- ~Samoggia~, Staz. sperim. agr. ital. 31 (1898), 417. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~J. B. Boussingault~, D. Landwirtsch. in ihren Bezieh. z. Chemie 3, 202. -- ~Will~, Ber. d. chem. Ges. 1875, 1570. -- ~Schädler~, Technol. d. Fette 1883. -- ~Frankfurt~, Landw. Versuchsstat. 43 (1894), 145 u. 307. -- ~Schulze~ und ~Frankfurt~, Zeitschr. phys. Chem. 20 (1895), 511. -- ~Lewkowitsch~, Chem. Technol. d. Öle usw. (dort die analyt. Liter.) -- ~Ulzer-Klimont~, Chem. d. Fette. -- ~Wherrell~, Bull. of pharmacy 1897, 340. -- ~Osborne~ u. ~Campbell~, Journ. amer. chem. soc. 18 (1896), 609. -- ~Posternak~, Compt. rend. 137 (1903), 202. -- ~Marino-Zucco~, Gaz. chim. ital. 1895, 262. -- ~Siegmund~, Monatsh. f. Chem. 1890, 272. -- ~Bauer~ u. ~Hazura~, Ebenda 1886, 216. -- ~Hazura~, Ebenda 7, 637 u. 8, 147. -- ~Tschirch~ u. ~Kritzler~, Aleuronkörner. Ber. d. pharm. Ges. 1890, 246. -- Lit. der Aschenanalysen des H. in ~Wehmer~, Pflanzenstoffe. Analysen der Hanfsamenpreßkuchen in ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde, ~Böhmer~, Die Kraftfuttermittel und in ~Dammers~ Illustriert. Lexik. =Verwechslungen und Substitutionen.= In Amerika fand ~Wherrell~ als «Hanf» (hemp) bezeichnet folgende Sorten: Agrimony hemp: _Eupatorium cannabinum_, Ambareehemp (oder Deckarreeh.): _Hibiscus cannabinus_, Africanh.: _Sanseveria guineensis_, Bastardh.: _Datisca cannabina_, Bengalh. (Bombayh. brownh., Madrash., Sunnh.): _Crotolaria juncea_, Bowstringh.: _Sanseveria zeylanica_, Black indianh. (Canadianh.): _Apocynum cannabinum_ und _A. androsaemifolium_, Jubbulporeh.: _Crotolaria tenuifolia_, Manilah.: _Musa textilis_, Nettleh.: _Galeopsis Tetrahit_, Rajinahalh.: _Marsdenia tenacissima_, Sisalh.: _Agave sisalana_, Waterh.: _Acnida cannabina_, White Indianh.: _Asclepias incarnata_, Wildh.: _Ambrosia trifida_. Die Herkunft von Chilianh. ist zweifelhaft. Diese Sorten sind vornehmlich Faserpflanzen. Das Hanföl dient seinerseits vielfach (z. B. in Amerika) als Verfälschungsmittel des Leinöls. Die Hanfpreßkuchen werden mit allem möglichen, z. B. Salz, in Frankreich mit Tourteau de Pulghère oder de Pignon d’Inde (_Jatropha Curcas_) verfälscht (~Collin~). Letztere Beimengung ist gefährlich. =Lit.= ~Orta Wherrell~, Hemp seed and hemp seed oil. Bull. of pharm. 11 (1897), 340 (mit Abbild.). =Anwendung.= Die Emulsion der Frucht (Emulsio seminis cannabis) dient als reizmilderndes Mittel besonders bei Blasenleiden, das Öl in der Tierheilkunde als Einreibung bei übermäßiger Milchsekretion, ferner zur Herstellung von Schmierseife, «grüner Seife», die hier, da das Öl grün ist, wirklich eine grüne Farbe hat. Aus dem Samenkern wird +Phytin+ dargestellt, das aber ein Gemenge ist [Inosit-Phosphorsäure (?) und Glukuron-Phosphorsäure?]. Hanföl ist während der griechisch-katholischen Fastenzeit Hauptnahrungsmittel des russischen Volkes (~Hehn~). Der Hanf ist auch Volksheilmittel in Rußland (~Kobert~, Studien I). Die Hanfsamenpreßkuchen werden, da sie schlecht schmecken und abführend wirken, nur wenig als Futtermittel, viel als Düngemittel und in sehr beträchtlichen Mengen (in Frankreich bis 150000 kg pro Jahr) zum Füttern der Fische benutzt (~Collin~). Die Hanffrüchte sind ein beliebtes Vogelfutter. In Nordwest-Europa werden sie geröstet und mit Salz zu Brot, Suppen usw. gegessen. In England dient Hanf als Liebesorakel, in Serbien die Blüte als Aphrodisiacum. =Lit.= ~Collin-Perrot~, Residus industr. -- Phytin: ~Levene~ und ~Neuberg~, Biochem. Zeitschr. 1909, 399 u. 406. =Geschichte.= Da die Heimat des H. in Asien sich befindet, ist es erklärlich, daß besonders die Skythen und die Chinesen sowie andere asiatische Völker von jeher die Hanfkultur betrieben, die Mittelmeerländer aber die Leinkultur (~Engler~). Die Heimat der Hanf+kultur+ ist also wahrscheinlich im nordwestlichen oder zentralen Asien (vielleicht auch in Südrußland) zu suchen. ~de Candolle~ nimmt an, daß skythische Stämme den Hanf (um 1500 n. Chr. etwas vor dem trojanischen Kriege) von Centralasien und Rußland nach dem Westen brachten. Den Hanf kannten die alten Ägypter nicht, ebensowenig die Phönikier. Er fehlt auch im alten Testament (~Hehn~). Weder Hanfsamen noch die Faser sind im alten Ägypten nachzuweisen (~Buschan~), auch nicht in den Schriften der Ägypter und Hebräer. Dagegen wird er schon in den ältesten Schriften Chinas (z. B. im Shuking 500 n. Chr.) erwähnt und das chinesische Wörterbuch Rha ya (I, S. 520) unterscheidet bereits den männlichen und weiblichen Hanf (~Bretschneider~). Auch Pen ts’ao kang mu (I, S. 518) führt Hanfsamen auf und der Hanfkultur gedenkt das landwirtschaftliche Werk Tsʿi min yao shu (I, S, 522). In Nordindien wurde H. schon 800 bis 900 n. Chr. gebaut. Das sanskritische çaṇa bezieht sich wohl auf Cannabis, obwohl es auch _Crotularia juncea_ bedeuten kann (L. von ~Schroeder~ bei ~Wiesner~). In Atharvaveda wird çaṇa als Heilmittel, in Sûtras (600 n. Chr.) werden Stricke aus çaṇa erwähnt. H. findet sich auch in Sušrutas und Charakas und anderen indischen Werken. Auf iranisch-skythischem Boden ging angeblich der Hanfrausch dem Weinrausch vorher. Jedenfalls ist die Bekanntschaft mit dem Hanf bei den arischen Indogermanen sehr alt (sansc. bhan̄gâ = Hanf). Über die Benutzung der Fasern und der Frucht bei den Skythen berichtet ~Herodot~ (vgl. I, S. 1042). Er erwähnt wilden und kultivierten H. in Syrien, ~Hesychius~ Kleider aus H. ~Moschion~ gedenkt der Faser. Die Griechen kannten ihn zur Zeit des ~Herodot~ nicht, auch ~Theophrast~ erwähnt den H. nicht. Bei den Römern wird Hanf zuerst bei ~Lucilius~ (100 n. Chr.) erwähnt. Nach ~Athenaeus~ scheinen sich zur Zeit ~Hiero~ II. von Syracus Kulturen in Gallien befunden zu haben (~Hehn~). Erst ~Dioskurides~ meint, daß die Frucht die Zeugung vernichte. Er erwähnt, daß die Faser die kräftigsten Stricke liefere. Das Kraut wurde im Altertum nicht benutzt (erst ~Berlu~ [I, S. 949] erwähnt es). Auch ~Plinius~ gedenkt des H. zur Verfertigung von Stricken. Er erwähnt, daß er im Frühling ziemlich dicht gesät und die Frucht zur Zeit des Herbstäquinoktiums geerntet und an der Sonne, dem Wind oder im Rauche getrocknet werde; der rosëische im Sabinergebiete erreiche die Höhe eines Baumes. Von einer medizinischen Anwendung der Früchte erfahren wir wenig. Bei ~Scribonius Largus~ fehlen sie; dagegen finden sie sich im Edikte des ~Diocletian~ (I, S. 569). Prähistorische Funde des Hanf fehlen in Mittel- und Westeuropa (~Heer~, ~Sordelli~). Das erste hanfene Gewebe stammt aus der Zeit der Völkerwanderung (~Buschan~). Wahrscheinlich haben die Germanen den H. und seinen Namen sowie die Kultur etwa im IV. oder V. Jahrh. n. Chr. von demselben südosteuropäischen Volke erhalten, von dem direkt oder indirekt auch den Griechen die Sache und der Name übermittelt wurde (~Kluge~). Die Germanen lernten also den Hanf erst zu ~Herodots~ Zeit kennen, die Skythen bauten ihn (~Herodot~ [IV, 74, 75]: «Der Hanf wächst wild und angebaut im Lande der Skythen») und er stammt wohl aus Bactrien und Sogdiana, den Caspischen und Aralgegenden, wo er noch jetzt in Üppigkeit wächst (~Kluge~). Dagegen meint ~Hoops~, daß sich zum Flachs schon in vorgermanischer Zeit der Hanf gesellt haben müsse, da sein germanischer Name die erste Lautverschiebung mitgemacht hat. Jedenfalls wurde Hanf schon in vorrömischer Zeit in ganz Deutschland und auch in den nordischen Ländern kultiviert (~Hoops~). Daß dies in altnordischer Zeit in Nordeuropa der Fall war, geht aus verschiedenen (bei ~Hoops~ mitgeteilten) Dokumenten aus dem XIII. und XIV. Jahrh. hervor. Bischof ~Otto~ von Bamberg fand H. bei den heidnischen Slaven in Pommern. Von den Angelsachsen wurde er auch in ihrer neuen Heimat angebaut. ~Karl der Grosse~ schrieb im Capitulare den Anbau von canava auf seinen Landgütern vor (~Schrader~, ich finde H. dort nicht). H. fehlt im St. Galler Klosterplan, im Hortulus und bei ~Macer Floridus~, was auf keine beträchtliche Kultur deutet. Daß Hanf im Mittelalter in Spanien gebaut wurde, geht aus ~Ibn Alawwâms~ landwirtschaftlichem Werke (I, S. 611) hervor. Als ein Bestandteil des berühmten Würzburger Rezeptes aus dem XIII. Jahrh. (I, S. 624) findet sich auch _Canape sem._ (hanofsamo). In den angelsächsischen Leechdoms (c. 1000) steht: «herba chamepitys baet is henep» und «deos wyrt be man cannane silfatica et obrum naman henep nemneb». Auch das Gothaer Arzneibuch (I, 680) gedenkt des hennep, das Züricher Arzneibuch aus dem XII. Jahrh. des hanifsâmin und die mittelenglischen Medizinbücher (I, S. 693) der hempe. Große medizinische Bedeutung scheinen die Hanffrüchte im Mittelalter und in der neueren Zeit aber nicht besessen zu haben, denn sie fehlen in vielen Taxen und Medikamentenlisten. Immerhin steht H. in der Alphita, bei ~Serapion~ und ~Bartholomaeus~ (I, S. 644) und die Araber bedienten sich seiner, auch der Früchte, die ~Ibn Baithar~ habb elsamanat nennt. Die erste Abbildung der Pflanze findet sich im Codex Constantinopol. des ~Dioskurides~ (I, S. 554), eine weitere im Ortus sanitatis (vgl. I, Fig. 382). Schon ~Rumphius~ gedenkt des Unterschieds zwischen indischem und europäischem H. Hanfsamen werden schon 1629 in der Plymouth Colony in Nordamerika erwähnt (Encycl. brit.). H. kam also frühzeitig nach Amerika. Im XVIII. Jahrh. wurde H. in Ägypten gebaut (~Forskal~). Hanffasern wurden in alten Papieren nachgewiesen (~Wiesner~), aber seltener als Leinfasern. =Lit.= ~Hehn~ (~Schrader~ und ~Engler~), Kulturpflanzen. -- ~Schrader~, Reallexikon. -- ~de Candolle~, L’origine des plantes cultivées (dort weitere Lit.); auch ~Prodromus~ XVI. -- ~Buschan~, Vorgeschichtl. Botan. -- ~Fischer-Benzon~, Altdeutsche Gartenflora. -- ~Hoops~, Waldbäume u. Kulturpflanzen. 1905. -- ~Wiesner~, Rohstoffe, II. Aufl. -- ~Blümner~, Technol. u. Terminol. d. Gewerbe. 1875. -- ~Bretschneider~, Chin. botanic. works 1870 u. Botanicon sinicon. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. Semen Papaveris und Oleum Papaveris. =Syn.= Mohnsamen, Magsamen, Man, Mannkoppensaad, Mahnblom, Maon, Ölmagen, Schlafmohn -- Pavot officinal, Ponceau (franz.) -- papavero (ital.) -- garden poppy, white p. (engl.) -- maan kop, klaproos, heul (holl.) -- valmun (fin.) -- valmuë (norw.) -- mak (ung.) -- μήκων (griech.) -- kashkásh, post (hind.) -- ahiphena (sanscr.) -- afiun, afiyun (arab., pers., ind.). In der Schweiz: Kolben, Lichtschnuppen, Mageel, Magsaamen, Pavo, Röttiliöl, in Bünden: Machoca oder Matschöa. In Tirol: Echter Magen, Ölmagen, Magenpflanze (die Mohnköpfe: mog’n gugg’l, die Samen: mag’n, ~Dalla Torre~). -- +slav.+ mak -- +litauisch+ aguná -- +esthn.+ maggona -- +lett.+ maggons. -- +athd.+ mago -- +mthd.+ elmagen, magesaeme, magöl, swatz und wis magsam, magsat, magsamlyn, mahen, masem, masame, mauden, magnesam, moinsayd, ölmag, olimage, omahenmilch -- +mnd.+ maen, mahnmilch, manecop, mangksaat, -- im Mittelalter: cadia, codion, opium -- bei ~Ibn Baithar~: ḫašhāš -- bei der ~Hildegard~: Papaver. -- Im +Ortus+: magsamen -- bei ~Megenberg~: magenkopf, magenkraut -- bei ~Cordus~: mahn -- bei ~Bock~: mägle, magle, mön, ölsamen. -- Bei ~Fuchs~: mon -- bei ~Lonicerus~: magen. =Etym.= μήκων (dorisch μάκων) kehrt in mehreren slavischen und südkaukasischen Sprachen als mak wieder (die Griechen erhielten die Sache und das Wort aus der Gegend des Kaukasus) und dies ist auch in der Tiroler Bezeichnung Magen (s. oben) erhalten geblieben -- mit einer angeblichen Verwendung als Magenmittel hat dies also nichts zu tun. Doch hieß μήκων auch die Blase des Tintenfisches, was auf die Form der Frucht deuten könnte. Einige denken auch an Beziehungen von μήκων zu sansc. mah (= groß), andere (~Pictet~) an Beziehungen zu +lit.+ mēgmi (= schlafen), was ~Grassmann~ einleuchtender findet. Der Name Mohn, wohl mit μήκων urstammverwandt, läßt sich weit in die Urgeschichte Europas zurückverfolgen: +altschwed.+ valmôghe neben +mhd.+ mâhen, +althd.+ mâgo -- daraus +lit.+ magone und +estn.+ magun, +altslav.+ makñ, +altpr.+ moke. An die Samen erinnert der (Rendsburger) Name Hirsebräu, Magsamen u. and. Papaver ist nicht sicher erklärt. Man hat dies Wort als altes Participium mit -- ver gebildet aufgefaßt: «Das Gedunsene» (lat. papula, pampinus) (~Schrader~). Andere meinen, es sei aus apio, capio, ἅπτω (= fassen) umgebildet (das p ist vorgesetzt), also soviel wie Faß, wegen der Tonnenform der Früchte (~Kanngiesser~). Es hängt wohl kaum mit +kelt.+ papa (= Brei) zusammen, obwohl Mohnbreie seit alter Zeit sehr beliebt waren (s. unten). Aus papaver entstand im +agls.+ popaeg, dann popig und +engl.+ poppy, sowie +franz.+ pavot und ponceau (dies aber auch von puniceus, φοινίκεος = scharlachrot abgeleitet). Das holländische heul ist mit huile und Öl verwandt, das bei Mohnsamen oft vorkommt (s. oben). =Stammpflanze.= =Papaver somniferum L.= Spec. pl. ed. I, 508 (_P. opiiferum_ ~Forsk.~, _P. officinale_ ~Gmel.~) mit den Varietäten bzw. Varietätengruppen: α +setigerum+ (~Dc.~) (auch als Art: _P. setigerum_ ~Dc.~), β +nigrum+ (~Dc.~) (ursprünglich α _nigrum_ ~Dc.~, _P. somniferum_ ~Gmel.~, _P. somnif._ var. _glabrum_ ~Boiss.~), γ +album+ (~Dc.~) (ursprünglich β _album_ ~Dc.~, _P. officinale_ ~Gmelin~) -- weitere im Text. In den Gärten werden auch Sorten mit anders gefärbten und gefüllten Blüten kultiviert. Wild ist der Gartenmohn bisher nirgends angetroffen worden. Als seine Urform gilt jetzt allgemein _Papaver setigerum_ ~Dc.~, welche Art sich noch jetzt im ganzen Mittelmeergebiet, besonders in Spanien, Algier, Corsica, Iles d’Hyères, Sizilien, Griechenland (Peloponnes) und Cypern findet (~De Candolle~, ~Boissier~, Flor. orient. I, 116). In Nordfrankreich wird auch heute noch _P. setigerum_ neben _P. somniferum_ gebaut. =Systemat. Stellung.= Papaveraceae -- Papaveroideae -- Papavereae. Sect. II. Mecones ~Bernh.~ =Beschreibung der Stammpflanze.= Die einjährige, in allen Teilen milchende Pflanze bildet einen stielrunden, bereiften, 0,5-1,5 m hohen kahlen Stengel. Die grundständigen +Blätter+ sind gestielt, oblong bis eioblong, ungleich-, eingeschnitten- oder buchtig-gezähnt, die oberen sitzend, mit tief-herzförmigem Grunde stengelumfassend, eiförmig, spitz, einfach oder doppelt gesägt, mit blaugrüner, bereifter Unterseite. Die Blätter (auch die Kelchblätter) sind bei var. _nigrum_ und _album_ kahl, bei var. _setigerum_ laufen die Zähne des Blattes in Borsten aus und vereinzelte Borsten finden sich auch auf Blättern, Blütenstielen und dem Kelch; var. _nigrum_ hat weniger tief gelappte Blätter. +Blütenstiel+ abstehend behaart. Die Blüten stehen am Ende der Hauptachse oder von Seitenachsen. Die Knospe ist nickend. Die zwei c. 2 cm langen, meist kahlen und bläulich bereiften, in der Knospenlage dachziegelig deckenden +Kelchblätter+ werden beim Aufblühen abgeworfen. Die in der Knospenlage geknitterte, nach dem Aufblühen leicht abfallende +Blumenkrone+ erreicht einen Durchmesser von 10 cm und mehr. Sie ist bei γ _album_ weiß mit violettem Grunde (bei einigen Spielarten auch rot oder lilafarben), bei β _nigrum_ mehr oder weniger dunkel purpurn mit schwarz violettem Grunde. Die vier c. 4 cm breiten +Kronenblätter+ sind fast kreisförmig, oben gestutzt oder ausgerandet mit äußerst kurzem Nagel. Die zahlreichen freien Staubfäden sind nach oben keulenförmig angeschwollen und besitzen dithekische Antheren mit ellipsoidischen Pollenkörnern. Der sehr kurz gestielte kugelige Fruchtknoten ist einfächerig und zeigt zahlreiche (7-20), in der Zahl mit den Narbenschenkeln übereinstimmende, 5-8 mm tief einspringende Samenleisten, an denen sehr zahlreiche anatrope Samenknospen sitzen. Die sitzende strahlenförmige Narbe zeigt zahlreiche (bei _setigerum_ 7-8, bei _nigrum_ 10-12) nach unten geschlagene Narbenlappen, in deren Längslinien die spaltenförmigen, den Samenleisten entsprechenden und über diesen liegenden Narbeneingänge sich finden. Die je nach der Varietät kugelige, eiförmige, eiförmig-längliche oder ellipsoidische kahle +Frucht+ ist je nach den Varietäten und Spielarten sehr verschieden groß (von Haselnußgröße bis 7,5 cm und mehr), kurz gestielt (bei der var. _apodocarpon_ ~Hussenot~ ungestielt), von der nun horizontal abstehenden viellappigen Narbe bekrönt, unter der sich die großen, mit Klappen sich öffnenden Poren finden, mit denen sie meist aufspringt (bisweilen bleibt sie aber auch geschlossen, z. B. bei var. _album_ und _apodocarpon_). Bei var. _album_, _stipitatum_ ~Huss.~ und _hortense_ ~Huss.~ ist die Narbenscheibe am Rande gekerbt, bei var. _apodocarpon_ ~Huss.~ gegen den Rand hin abwärts gebogen, bei var. _album_ mit freien, abstehenden, dicken, bei var. _hortense_ mit dünnen, papierartig-häutigen Lappen. Sie ist durch die großen, in die Höhlung einspringenden, pergamentartigen, an den Ansatzstellen der Samen gefleckten Samenleisten unvollständig gefächert und zeigt außen die Verwachsungsnähte der Carpelle als seichte Längsfurchen. Der auf dem Fruchtknoten sichtbare Reif verschwindet später und die Frucht erscheint dann glatt und glänzend. Die sehr zahlreichen (bis 2000 -- schon ~Homer~ spricht in der Ilias von der καρπῶ βριθομένη, der mit Samen +gefüllten+ Frucht --), kleinen nierenförmigen, grubig punktierten Samen, die bald weiß (var. _album_), bald bläulich-schwarz (var. _nigrum_) sind und einen gekrümmten, in Endosperm eingebetteten Keimling besitzen. Blütezeit: Juni bis August. =Lit.= ~Prantl-Kündig~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien. -- ~de Candolle~, Urspr. d. Kulturpfl. 1884. -- ~Ritter~, Erdkunde von Asien. -- ~Luerssen~, Mediz. pharm. Bot. -- ~Willkomm et Lange~, Prodr. flor. hisp. -- ~Boissier~, Flor. orient. I, 116. -- ~Ledebour~, Flor. rossica. -- +Abbild.+: ~Berg-Schmidt~, Atlas II. Aufl., t. 116, ~Pabst-Köhler~, Medizinalpflanz. t. 37, ~Nees v. Esenbeck~, Pl. med. t. 404 (album), ~Hayne~, Arzneigew. VI, t. 40, ~Bentley-Trimen~, Med. plants t. 18, ~Woodville~ t. 138. =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Einer der wichtigsten Parasiten der _Papaver_-Arten ist _Peronospora arborescens_ ~de By.~, ein «falscher Mehltau», welcher auf den Blättern Verfärbungen hervorruft und namentlich an Keimpflanzen Schaden stiften kann. -- Auf den Kapseln von _Papaver somniferum_ werden angegeben: _Alternaria Brassicae_ ~Berk.~ var. _somniferi_, _Phoma morphaea_ ~Sacc.~, _Sphaerella morphaea_ ~Sacc.~ Ein ausführliches Verzeichnis der Krankheiten der indischen Mohnpflanze in ~Watt~, Dict. econom. prod. =Kultur.= Der Mohn gedeiht überall, wo das Wintergetreide fortkommt. Er liebt aber warme und windstille Lage. Er wird ausschließlich als Sommerfrucht kultiviert und zeigt eine kurze Wachstumsdauer (120-140 Tage). Mohn wird jetzt auf der ganzen Erde -- Zentraleuropa, Indien, Persien, China, Kleinasien, Afrika, Nordamerika, Australien (Neusüdwales) -- gebaut (in Norwegen bis zum Polarkreise), besonders in Algier, Tunis und Ägypten wird viel Mohn kultiviert. Die Kultur erfolgt teils zur Samen- bzw. Ölgewinnung (in Europa, Afrika und Amerika) -- zur Ölgewinnung besonders die Varietäten mit schwarzen Samen --, teils zur Opiumbereitung (Asien) -- besonders die Varietäten mit weißen Samen. Die Praxis unterscheidet _P. s. officinale_, +Schließmohn+ oder +Dreschmohn+ (Pavot blanc et aveugle) mit geschlossen bleibenden und _P. s. vulgare_, +Schütt-+ oder +Schüttelmohn+ (Pavot oeillette, gris et noir) mit sich öffnenden Kapseln (s. oben), und die Samen nach der Farbe: weiße, rote, blaue, graue, braune, violette, schwarze (in Macedonien wurden 1883 nach der Farbe vier Sorten unterschieden). Offizinell sind nur die weißen Samen. Blauer Mohn soll ertragreicher sein, der weiße aber ein feineres Öl liefern (~Hart~). Im Handel ist deutsches, levantinisches und ostindisches Öl von Pendschab, Bengalen und den Nordwestprovinzen. In Indien gilt das Öl der Bengalpflanze für besser als das der Malvapflanze. +Hamburg+ importierte 1908 61239 dz +Mohnsamen+, davon kamen aus Brit. Ostindien: 54564, von den russischen Häfen am Schwarz. u. Asowschen Meere 2885, aus Kleinasien 1524, von altpreußischen Ostseehäfen 1136; weniger als 1000 dz aus russischen Ostseehäfen, den Niederlanden, Persien, Ostafrika. +British-Indien+ exportierte Poppy seeds nach England und engl. Besitzungen 1907/08: 965, 1908/09: 882 cwts, nach anderen Ländern 1907/08: 1256562, 1908/09: 790028 cwts. Die +Vereinigten Staaten+ importierten 1909: 52086 bushels poppy seed und 6598 gallons poppy seed oil. +Frankreich+ importierte 1908: 213349 Qint. Mohnsamen besonders aus Engl. Indien. Frankreich importiert jährlich für mehr als 6 Mill. Frs. Mohnsamen zur Ölgewinnung (~Collin~). Auch Mohnpreßkuchen bilden einen bedeutenden Handelsartikel. =Morphologie der Droge.= Die Samen von _P. s. β nigrum_ messen 0,88-1 mm, die von _P. s. γ album_ 1,17-1,29-1,41 mm, die von _P. s. α setigerum_ 0,66-0,97 mm (die des Pfahlbaumohn 0,75-1 mm, ~Hartwich~). Das Gewicht von 1000 Samen schwankt zwischen 0,239 g (indischer Mohn) und 0,531 g (österreichischer Mohn). Auf 1 kg kommen 1880000-4184100 Samen (~Harz~). Die allein offizinellen weißen Samen sind 1-1,5 mm lang und 0,3-0,5 mg schwer, nierenförmig -- das eine Ende etwas spitzer als das andere -- und außen mit, besonders bei Betrachtung mit der Lupe, hervortretenden großen, polygonalen (meist sechseckigen) Netzleisten versehen, die bei den dunklen Sorten besonders deutlich sind. Diese Maschen des Samens bildete schon ~Hooke~ (1667) ab. In der Einbuchtung des Samens sieht man als gelbliche Erhöhung den Rest des Funiculus und das Hilum, das mit der als gelber Fleck sichtbaren Chalaza durch eine kurze, das Bündel führende Raphe verbunden ist (~A. Meyer~). Durchschneidet man den Samen median-längs, so sieht man, eingebettet in Endosperm, den gekrümmten, im Querschnitt walzenrunden Keimling, zwischen dessen Cotyledonen eine kleine kegelige Plumula sichtbar ist. Die Radicula zeigt nach dem spitzen Ende des Samens. Sie ist etwa so dick als die beiden Cotyledonen. Mohnsamen ist geruchlos und schmeckt angenehm, milde-ölig. Man bewahrt ihn nicht über ein Jahr. [Illustration: Fig. 181. _Papaver somniferum_ L. 1 Same von außen. 2 Same längsdurchschnitten. 3 Same querdurchschnitten. 4 Querschnitt durch die Samenschale (1-6), das Endosperm (End) und den äußeren Teil des Cotyledons (Cot). 5 Succedane Flächenschnitte durch die Samenschale (die Zahlen 1-6 korrespondieren mit den gleichen Zahlen in Fig. 4). 6 Aleuronkörner. [+Tschirch-Oesterle+ Atlas.]] =Anatomie.= Die Samen gehen aus anatropen Ovulis hervor, die zwei +Integumente+ mit sechs Zellschichten erkennen lassen. Aus diesen wird die sehr schmale Samenschale, deren Struktur erst nach Behandeln mit Salzsäure und Kalilauge sichtbar wird (~Moeller~ empfiehlt auch Färben mit Chlorzinkjod oder Safranin). Die äußerste Schicht, die die meisten Autoren für eine sehr schmale zusammengefallene Zellreihe halten, was sie auch wohl ist (und nicht eine verdickte Wand), erscheint in regelmäßigen Abständen kielartig emporgezogen. Diese Verwölbungen, in welche sich auch die darunter liegenden Schichten etwas vorstülpen, bilden die Leisten, welche in ihrer Vereinigung zu polyedrischen Maschen das für den Mohnsamen so charakteristische Maschennetz der Oberfläche erzeugen. An den Leisten sind die Epidermiszellen schmal, zwischen den Leisten in den Tälern der Maschen so groß wie ein Maschental (Fig. 181). Die Cuticula dieser Zellen enthält Calciumcarbonat ein- und aufgelagert. Die zweite Zellreihe besteht aus dünnwandigem, tafelförmigem Parenchym, das dicht erfüllt ist mit feinkörnigem Calciumoxalat, dem auch größere Kristalle beigemengt sind (~Meyer~), dann folgt die Hartschicht, die der schalenförmigen Einwölbung der Epidermis folgt und die aus gestreckten, flachen, stark verdickten Zellen besteht, deren Wände mit Chlorzinkjod violett werden. Die darauf folgenden drei Schichten (Fig. 181, 4. 4-6), die aus dem inneren Integumente hervorgehen, sind meist stark obliteriert. Nach Behandlung mit Kali unterscheidet man eine äußere Parenchymzellreihe, dann eine Reihe getüpfelter, gekrümmter, nicht sehr langer Zellen und zu innerst liegt eine Reihe dünnwandiger Zellen. In der inneren Krümmung des Samens ist die Samenschale dort, wo die Raphe verläuft, durch Vermehrung des Parenchyms dicker. Die Mikropyle ist noch sichtbar. Bei den blauen Mohnvarietäten findet sich in den inneren Schichten der Samenschale (Fig. 181, 4. 4 u. 5) ein brauner gelbstofffreier Farbstoff und die Membranen der Schicht 3 sind gelbbraun gefärbt. Die bläuliche Farbe kommt dadurch zu stande, daß über diesen braunen Schichten die Oxalatschicht liegt, deren mit Luft durchmischte Körnchen den Samen zudem bereift erscheinen lassen. Legt man den Samen in Salzsäure, so wird er braun (~A. Meyer~). Das breite, parenchymatische Endosperm führt zahlreiche in maschiges, den Zellkern einschließendes Ölplasma eingebettete, 1-7 (meist 4-5,5) mik große, Globoide und Kristalloide führende Aleuronkörner (Fig. 181, 6). Zu innerst liegt typisches Quellgewebe (Fig. 181, 4 Qu). Das Gewebe des Keimlings zeigt noch kaum eine Differenzierung, die Procambiumstränge sind undeutlich; die Zellen enthalten die gleichen Inhaltsstoffe wie das Endosperm, doch sind die Aleuronkörner kleiner. Stärke fehlt dem Samen. Die +Preßkuchen+ (und das Pulver) sind leicht an den Elementen der Samenschale zu erkennen, besonders an den großen Netzleisten, an der Faser- und Tüpfelzellenschicht. =Lit.= (Fast jeder Autor beschreibt die Samenschale anders wie sein Vorgänger.) ~A. Meyer~, Wissensch. Drogenkunde (mit Abbild.). -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas (dort das anatom. Detail). -- ~Tschirch~, Kleine Beitr. z. Pharmakobot. usw. 1897, Nr. 17. -- ~Vogl~, Nahrungs- u. Genußm. -- ~Michalowski~, Beitr. z. Anat. u. Entwicklungsgesch. von Papav. somnif. Diss. Breslau 1881. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenk. -- ~T. F. Hanausek~ in ~Wiesner~ Rohstoffe. -- ~Moeller-Winton~, Nahrungs- u. Genußm. und ~Winton-Moeller~, Microscopy (mit Abbild.). -- ~Karsten-Oltmanns~, Lehrb. d. Pharm. -- ~Benecke~, Kraftfuttermittel. 1886. -- ~Berg~, Anatom. Atlas u. Pharmakogn. -- ~Böhmer~, Ölkuchen in Dammers Lexikon. -- ~Godfrin~, Etude histol. s. l. tégum. sémin. des Angiosp. Soc. d. sc. de Nancy 1880. -- ~Meunier~, Les tégum. sém. des Papaveracées in La Cellule 1891. -- Die Preßkuchen in ~Collin-Perrot~, Les résidus industr. (mit Abbild.). =Chemie.= Die Samen enthalten nach älteren Analysen (~Sacc~) 54,61% fettes Öl, 23,26% Schleim und pektinartige Substanz, 12,64% Eiweiß (Stickstoff 2-3%) und 5,93% Zellulose, 3-3,5% Wasser, 6-7,7% Asche. Im Durchschnitt enthält Mohnsamen in Prozenten: 8,15 Wasser, 19,53 Stickstoffsubstanz, 40,79 Fett, 18,72 stickstofffreie Extraktstoffe, 5,58 Rohfaser, 7,23 Asche (in der Trockensubstanz 21,26 Stickstoffsubstanz, 44,41 Fett) (~Boussingault~, ~Hoffmann~, ~Dietrich~ und ~König~, ~Schädler~, ~Hesse~, ~Greitherr~ -- bei ~König~). Nach neueren Angaben (~Mach~ 1902 u. and.) in Prozenten: 47,4-51,4 Rohfett, 20-22,68 Rohproteïn (18,4-21,6 Eiweiß), 5,1-5,6 Rohfaser, 3-3,9 Pentosane, 1-1,8 Amide u. a., 9,5-10,5 stickstofffreie Extraktstoffe, 3,87-4,5 Wasser, 5,6-6,36 Asche. Ferner enthält der Same 0,25-0,94% +Lecithin+ (~Schulze~ und ~Frankfurt~), +Diastase+ (in reifendem Samen, ~Brasse~), +Emulsin+ (~Simon~ 1838) und +Lipase+ (~Sigmund~). Die Asche (6,04%, ~Wolff~) enthält 31,36 P₂O₅, 35,36 CaO, 13,62 K₂O. In der Samenschale sind 8,7% Calciumoxalat enthalten (~Weiss~). Die Angaben, daß Mohnsamen Morphin enthalte (nach ~Meurin~ 0,003%, nach ~Accarie~ 0,06%), haben sich nicht bestätigt (~Sacc~, ~Mach~, ~Clautriau~). ~Hesse~ gab (1865) +Rhoeadin+ darin an. Die Samen liefern bei der Pressung 40-50% fast geruchloses, angenehm schmeckendes, +fettes Öl+, =Mohnöl=, =Oleum papaveris= (huile d’oeillette, h. de pavot, h. blanche, poppy seed oil, olio di papavero, papaverzaadolie μεκωνέλαιον). Das kaltgepreßte Öl ist farblos oder goldgelb (weißes Mohnöl), das warmgepreßte dunkler (rotes Mohnöl). Es trocknet so gut wie Leinöl, ist aber wohlschmeckend. Die Elementarzusammensetzung ist: 76,5 bis 76,63 C, 11,2-11,63 H, 11,74-12,3 O (~Sacc~). Nach 24stündigem Einlegen in halbkonzentriertes Kaliammoniak (~Hartwich-Uhlmann~sche Mischung) treten im Tropfen kurze und lange, lockig gebogene Nadeln und reichlich Sphärite auf. Es enthält von festen Fettsäuren 6,67% (~Tolman~ und ~Munson~), wahrscheinlich nur +Palmitinsäure+ (~Lewkowitsch~) -- nach älteren Angaben auch Stearinsäure. Die flüssigen Fettsäuren bestehen aus 5% +Linolensäure+, 65% +Linolsäure+ und 30% +Ölsäure+ (~Hazura~ und ~Grüssner~), Isolinolensäure ist fraglich; da die Fettsäuren aber nur sehr wenig oder kein Hexabromid geben, kann die Menge der Linolensäure nur sehr gering sein (~Lewkowitsch~). Das Unverseifbare (+Phytosterin+, F. 136-137°)beträgt c. 0,5%. Der +Lecithingehalt+ des Rohfettes wird zu 13,27% (?) angegeben (~Stellwaag~). Das spez. Gewicht liegt zwischen 0,924 und 0,927 (~Allen~), der Erstarrungspunkt bei -17 bis -19° (~Girard~), der Schmelzpunkt bei -22°, die Verseifungszahl ist (189) 190,1-197,7 (~Dieterich~, ~Valenta~, ~Lewkowitsch~), die Jodzahl 132-136 (~Lewkowitsch~), 137,6-143,3 (~Dieterich~), bei mit Petroläther aus dem Samen extrahierten Öl 153,48-157,52 (~Utz~), die ~Reichard-Meissl~-Zahl 0, die Hehnerzahl 95,38 (~Dietzell~), 94,97 (bei ostindischen Ölen, ~Crossley~ und ~Le Sueur~), die Maumenéprobe zeigt (74) 86-88,5°, der Brechungsexponent im Oleorefraktometer +23,5 bis +29° (~Jean~), im Butterrefraktometer bei 15°: 78,1-78,4° (~Utz~), bei 25°: 72-74,5. Die Verbrennungswärme des Mohnöls beträgt 9442 kal. (~Stohmann~), 9397 g-kal. (~Sherman~). Der Entflammungspunkt liegt bei 250° (~Rakusin~). Die freien Fettsäuren zeigen bei 100° ein spez. Gewicht = 0,888, ihr Erstarrungspunkt liegt bei 16,5°, ihr Schmelzpunkt bei 20-21° (~de Negri~ und ~Fabris~), die Neutralisationszahl ist 199, die Jodzahl 116,3-139 (die der festen Fettsäuren 149,6), die Acetylzahl 13,1, der Brechungsexponent 1,4506 (~Thörner~). Die technischen Mohnöle sind reich an freien Fettsäuren (bis 17,73%). Die Zusammensetzung der Preßkuchen ergibt sich aus folgender Tabelle: -----------------+------------------------+------------------------- | Weißer indischer Mohn | Schwarzer Mohn | | Artois Levant | ~Décugis~| ~Garola~ |~Boussingault~| ~Décugis~ =================+==========+=============+==============+========== Wasser | 11,15 | 10,90 | 11,70 | 9,70 Fette | 5,13 | 7,24 | 10,10 | 9,18 Stickstoffhalt. | | | | Substanz | 34,50 | 38,12 | 37,80 | 35,38 Stickstofffreie |} | | | Substanz |} 33,90 | 19,46 | 23,30 | 24,61 Cellulose |} | 11,08 | 11,10 | 8,20 Asche | 16,13 | 13,20 | 6,00 | 12,93 Die Preßkuchen des Mohn enthalten im Mittel 5,50-6% Stickstoff, 2,75-3,50% Phosphorsäure. =Lit.= ~Sacc~, Ann. chim. phys. (3) 27 (1849) 473 (Jahresber. d. Pharm. 1849, 64). Journ. pr. Chem. 1850, 307. -- ~Accarie~, Journ. chim. méd. 1833, 431 (Jahresb. d. Chem. 4 [1835] 250). -- ~Meurin~, Journ. d. pharm. 23 (1853), 339. -- ~Clautriau~, Ebenda 20 (1889), 161 und Bull. Soc. Belg. Mikr. 1894, 35. -- ~Wolff~, Aschenanalysen I, 105 (Asche auch: ~Wildenstein~, Journ. pr. Chem. 54 [1851], 100). -- ~Mach~ (Monograph.), Landw. Versuchsstat. 57 (1902), 419. -- ~Schulze~ u. ~Frankfurt~, Landw. Versuchsstat. 1894, 307. -- ~Brasse~, Compt. rend. 1884, 878. -- ~Simon~, Poggend. Ann. 43 (1838), 404. -- ~Sigmund~, Monatsh. f. Chem. 11 (1890), 272. -- ~Hansen~, Fermente, Arbeit. Bot. Inst. Würzburg III, 252. -- ~Weiss~ in ~Meyer~, Drogenkunde. -- Analysen bei ~König~, Nahrungs- u. Genußm., ~Harz~ a. a. O. u. ~Collin-Perrot~ a. a. O. +Öl+: ~Oudemans~, Scheik. Verhand. 1858, II 180 (Jahresb. d. Chem. 1858, 304); Journ. d. pharm. 44 (1863), 362 (Jahresb. d. Pharm. 1863, 159). -- ~Mulder~, Journ. pr. Chem. 1865, 323 u. Chem. d. austrocknend. Öle 1867. -- ~Hazura~ u. ~Friedrich~, Monatsh. f. Chem. 1887, 247 (Jahresb. d. Pharm. 1887, 296). -- ~Hazura~ u. ~Grüssner~, Monatsh. f. Chem. 1888, 198. -- ~Hefter~, Fette u. Öle II (1908) 100. -- ~Schaedler~, Technol. d. Fette. -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Tolman~ u. ~Munson~, Journ. amer. chem. soc. 1903, 690. -- ~Utz~, Chem. Zeit. 1903, 1177 u. 1904, 257. -- ~Stellwaag~, Landw. Versuchsstat. 37, 135. =Verfälschungen.= Speisemohnöl wird mit Sesamöl (~Baudouin~sche Reaktion!) und Haselnußöl verschnitten, Malermohnöl oft durch Wallnußöl ersetzt, das aber 1,4 bis 1,9% Hexabromid (Mohnöl nichts davon) liefert und dadurch erkannt werden kann. =Anwendung.= Mohnöl dient zu Speisezwecken, auch zur Verfälschung des Olivenöls und zur Herstellung weißer Malerfarben, mit Mastix und Japanwachs als «Wachsöl». Zur Schmierseifenfabrikation werden nur die schlechtesten Sorten verwendet. In der Pharmazie wird Mohnöl jetzt vielfach durch das bessere Sesamöl oder Erdnußöl ersetzt (D. A. V). In der Medizin dient Mohnsamen zu Emulsionen. Die wohlschmeckenden Preßkuchen sind -- schon allein wegen ihres Phosphorsäuregehaltes -- ein vorzügliches Futtermittel. +Sie zeigen keinerlei giftige Eigenschaften.+ In der Niederlausitz (z. B. in Guben) wird ein aus Milch, Semmel und Mohnsamen bereitetes Gericht unter dem Namen «Mopielen» am Weihnachtsabend gegessen (~Tschirch~). Die Sitte stammt wohl aus Schlesien, wo der Mohn mo genannt wird. Auch in Tirol findet sich als Festspeise ein Gericht aus Milch, Semmel, Honig und Mohnsamen (~Dalla Torre~). Die noch heute übliche Sitte, Backwerk mit Mohnsamen (oder Lein- bzw. Sesamsamen) zu bestreuen, ist uralt (~Hehn~). =Geschichte.= Die Heimat der Mohnkultur ist das nördliche Kleinasien. Die Griechen erhielten den Mohn von der Südküste des schwarzen Meeres. Dort lag die Stadt Sinope, die in der hesiodischen Theogonie noch ihren ursprünglichen Namen Mekone (= Mohnstadt) führte (~Hehn~), der auf reichliche Mohnkultur deutet. ~Homer~, ~Theophrast~, ~Dioskurides~ gedenken des Mohn. ~Dioskurides~ kennt auch schon die Varietät mit weißen Samen. Die Römer kannten, wie Funde in neolithischen Pfahlbauten zeigen, den wilden Mohn schon in vorgeschichtlicher Zeit, den Gartenmohn zur Zeit der Könige. Nach den Pfahlbaufunden bauten in der neolithischen Periode und der Bronzezeit die Bewohner Mitteleuropas eine zwischen _Papaver somniferum_ und _P. setigerum_ stehende Art (~Heer~), aus deren Samen sie Mohnkuchen buken und wohl auch bereits das Öl preßten und die man als Pfahlbaumohn bezeichnet hat. Sie steht _P. setigerum_ noch ziemlich nahe (~Hartwich~) und ist als eine Zwischenstufe zwischen beiden zu betrachten. «Der Mohn darf der ältest erreichbaren Schicht europäischer Kulturpflanzen zugeschrieben werden» (~Schrader~). Dem ägyptisch-semitischen Kulturkreise ist er ursprünglich fremd. Auf altägyptischen Monumenten fehlt der Mohn und Samen sind in Gräbern nicht gefunden worden. Erst ~Plinius~ (XX, 18) berichtet, daß sich die Ägypter des Mohnsaftes bedienten. Die Pflanze wird also wohl damals auch dort gebaut worden sein. Auch die Nachrichten aus Palästina über die Samen und ihr Öl (I, S. 489) stammen erst aus der römischen Zeit. ~Plinius~, ~Dioskurides~, ~Celsus~ (I, S. 587) und ~Galen~ erwähnen bereits verschieden gefärbte Samen. ~Galen~ hält sie für schwer verdaulich. Als Arzneimittel finden sie sich bereits bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 578, _Papaver silvat._ und _nigrum_) und ~Alexander Trallianus~ (I, S. 592), als Handelsartikel im Edikt des ~Diocletian~ (I, S. 569). Der Anbau des Mohn ist in Deutschland alt, denn die ahd. Bezeichnung mâhan ging ins Vulgärlatein über (so mahunns, mahonns, manns in zahlreichen Glossen). Mohnkultur in Italien wird aber erst bei ~Virgil~ erwähnt. Den Gartenmohn brachten die Benediktiner nach Deutschland. Er steht im Capitulare ~Karls~, im St. Galler Klosterplan und bei ~Macer~. Nach dem Kalender des ~Harib~ (I, S. 612) soll Mohnsamen im August gesammelt werden. In der +Alphita+ (I, S. 655) steht _Papauer album_ (whatpopy), _P. nigrum_ (blakpopy) und _P. rubeum_ (redpopy), bei ~Cordus~: _Papaver album_, _rubrum_ und _nigrum_, in der Frankfurter Liste (I, S. 812) _Papaueris albi et nigri_. Der Anbau des Mohn (zur Opiumgewinnung) reicht in Indien nicht weiter als bis ins XVI. Jahrh. zurück, doch finden sich Mohnsamen (khastila) schon im Glossar des ~Suvarnādivarga~ (I, S. 505). Die Mohnkapsel galt wegen der zahlreichen Samen schon den Hellenen als Symbol der Fruchtbarkeit. Man findet sie oft mit Ähren zusammen in der Hand der ~Demeter~, der Göttin des ehelichen Segens, aber auch sonst auf Münzen und anderen Bildwerken des Altertums (zahlreiche Abbildungen in ~Lochners~ Mekonopaignion, Nürnberg 1718). Die Pflanze war der ~Aphrodite~ geweiht. Der Same wurde gegen den weißen Fluß benutzt (~Aigremont~). Mohnköpfe gab man auch ~Hypnos~, ~Thanatos~ und ~Nyx~ in die Hand (~Gubernatis~). In Böhmen findet sich der Aberglaube, daß die Braut, der man Mohnkörner in den Schuh schüttet, unfruchtbar bleibt. =Lit.= ~Heer~, D. Pfl. d. Pfahlbauten. Neujahrsbl. d. Zürch. Naturf. Ges. 1866. -- ~Hartwich~, Pap. somnif. u. dess. in d. Pfahlbaut. vorkomm. Reste. Apoth. Zeit. 1899. -- ~Neuweiler~, D. prähist. Pflanzenreste Mitteleuropas. Zürich 1905. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~de Candolle~, L’origine d. pl. cultiv. -- ~Gubernatis~, Mythologie des plantes. Zu den trocknenden Ölen gehören ferner folgende Samenöle: =Perillaöl= von _Perilla ocymoides_. =Tungöl= (Holzöl), Ölfirnißbaumöl von _Aleurites cordata_. =Kekunaöl= von _Aleurites triloba_. =Stillingiaöl=, =Talgsamenöl= von _Stillingia sebifera_. =Weiß-Acacienöl= von _Robinia Pseudacacia_. =Cedernnußöl= von _Pinus Cembra_. =Walnußöl= von _Juglans regia_. =Safloröl= von _Carthamus tinctorius_. =Echinopsöl= von _Echinops Ritro_. =Amooraöl= von _Amoora Rohituka_. =Spargelsamenöl= von _Asparagus offic_. =Nigeröl= von _Guizotia oleifera_. =Sonnenblumenöl= von _Helianthus annuus_. =Gelbacacienöl= von _Caragana arborescens_. =Argemoneöl= von _Argemone mexicana_. =Kiefern-, Fichten-, und Tannensamenöl.= =Madiaöl= von _Madia sativa_. =Erdbeeröl= von _Fragaria vesca_. =Rotrepsöl=, =Nachtviolenöl= von _Hesperis matronalis_. =Bilsenkrautsamenöl= von _Hyoscyamus niger_. =Celosiaöl= von _Celosia cristata_. =Indisches Lorbeeröl= von _Laurus indica_. =Resedasamenöl= von _Reseda luteola_. 2. Halbtrocknende Öle. Die halbtrocknenden Öle bilden den Übergang von den trocknenden zu den nichttrocknenden Ölen. Ihre Jodzahlen liegen zwischen denen beider Gruppen. Linolensäure fehlt in ihnen, sie enthalten aber Linolsäure. Die Gruppe der Baumwollsamenöle zeigt trocknende Eigenschaften mehr als die Rübölgruppe. Semen Gossypii und Oleum Gossypii. Die Stammpflanze der Baumwollsamen ist oben S. 230, die Morphologie und Anatomie S. 238 beschrieben. Dort auch die Geschichte. Bis 1852 wurde der Baumwollsamen meist weggeworfen (vgl. S. 245). Seit dieser Zeit wird das Öl gepreßt und der Preßkuchen als Futter- und Düngungsmittel benutzt. Besonders ist amerikanische und ägyptische +Baumwollsaat+ im Handel, dann auch ostindische (Bombay), levantinische (Smyrna, Mersine, Alexandrette). +British Indien+ exportierte cotonseeds 1907/08: 3683634, 1908/09: 2777844 cwts nach England und engl. Besitzungen und 1907/08: 566238, 1908/09: 905528 cwts nach anderen Ländern. Die +Vereinigten Staaten+ exportierten 1909: 51626741 pounds cotton seed, 51087329 gallons Cotton oil und 1233750327 pounds cotton seed oil cake. In Nordamerika besteht eine Cotton-Oil-Compagny. 1894 gab es dort schon 252 Cotton-Oil-Fabriken. Ägypten exportierte schon 1897: 7½ Mill. hl Baumwollsamen. +Frankreich+ führte 1908 355633 Quint. +Baumwollsamen+ ein, vorwiegend aus Ägypten (298520 Qint), sehr viel weniger aus Engl. Indien, der Türkei, Haïti, den Ver. Staaten, Portorico, Columbien und Algier. Frankreich importierte 1908: 516580 Quintalm. +Baumwollsamenöl+, das meiste aus den Vereinigten Staaten. In großem Stil wird in Frankreich Olivenöl mit Cottonoil vermischt und als «Olivenöl» exportiert. Baumwollsamen enthalten 44,4-60% Kern und 40-54,8% (nach anderen 66-71%) Hülsen. In den Samen ist 18,67 (Levante, Mersine) bis 23,93% (ägyptische), im Durchschnitt c. 20% Öl enthalten, in den Kernen 37,41 (ägyptische) bis 39,28% (Bombay) Öl (~Lewkowitsch~); die beim Schälen abfallenden «Hülsen» enthalten davon kaum 1-3%. Das Öl wird sowohl aus geschälten wie ungeschälten Samen gepreßt. In Ergänzung der Angaben auf S. 245 sei über die Zusammensetzung der Samen noch folgendes angegeben. Sie enthalten ungeschält im Mittel in Prozenten: 11,1 Wasser, 19,69 +Stickstoffsubstanz+, 20,86 +Fett+, 23,43 +stickstofffreie Extraktstoffe+, 21,1 +Rohfaser+, 3,8 Asche (~Wagner-Clement~ 1908). Der geschälte Samen enthält im Mittel in Prozenten: 7,28 Wasser, 29,55 stickstoffhaltige Substanz, 27,23 Fett, 24,07 stickstofffreie Extraktivstoffe, 4,62 Rohfaser, 7,25 Asche, doch schwanken die Zahlen je nach Herkunft der Samen. Vom Fett sind z. B. auch nur 17% beobachtet, von stickstofffreien Extraktstoffen 24,5-32,5 (noch größere Schwankungen bei ~Bryde~). Die Samenkerne enthalten 5,49% +Pentosane+ (~Skinner~). Ferner sind nachgewiesen: 42,3% des Globulins +Edestin+ (~Osborne~ und ~Voorhees~) und 44,3 bzw. 11,4% zweier weiterer +Globuline+, +Proteose+ (~Osborne~), +Nucleïn+, +Betain+, +Cholin+, +Lecithin+, +Melitriose+ (Raffinose, Melitose, Gossypose), +Stärke+ (? ~Sacc~), +Zucker+, +Wachs+, +Dextrin+. In der 3-6% betragenden Asche ist viel MgO (16-20%), P₂O₅ (26-31%) und K₂O (27-37%), auch etwas Titan (0,02%, ~Wait~) gefunden worden. Die ägyptischen und Bombay-Samen gelten als die ölreichsten. Sie werden vorwiegend in Deutschland, England, Frankreich und Italien verarbeitet. Der Samen wird vor dem Pressen meist geschält. Das =Baumwollsaatöl=, =Oleum Gossypii= (huile de coton, cotton oil, olio di cotone, katoenolie, βαμβακέλαιον) enthält je nach dem bei der Fabrikation angewendeten Drucke mehr oder weniger flüssige Glyceride. Die Elementarzusammensetzung ist C=76,30 bis 76,50, H=11,33-11,73, O=12,17-12,39 (~König~). Von festen Fettsäuren, die 22,3-32,6% des Öls betragen (~Twitschell~, ~Farnsteiner~, ~Tolman~, ~Munson~), sind besonders +Palmitinsäure+, weniger (c. 3,3%) +Stearinsäure+ nachgewiesen, von flüssiger +Linolsäure+ (18,45-21% der Fettsäuren, ~Lewkowitsch~) und +Ölsäure+ (c. 76,55% der flüssigen Fettsäuren). Da kein Hexabromid entsteht, muß Linolensäure fehlen. Dagegen scheinen 3,6% +Oxyfettsäuren+ (~Fahrion~), aber keine Arachinsäure vorhanden zu sein. Die Cottonölsäure (~Papasogli~) ist zweifelhaft, ebenso der mit Wasserdampf flüchtige, schwefelhaltige Körper ~Duponts~. Das spez. Gewicht ist 0,922-0,928. Gehalt an freien Fettsäuren (auf Ölsäure berechnet) 0,15-0,5%, Unverseifbares (bes. Phytosterin, F. 136-137°) 0,73-1,64%, Erstarrungspunkt 0 bis -1°, Refraktometerzahl (im ~Zeiss~-Butterrefraktometer bei 25°): 67,6-69,4, Verseifungszahl 191-198, Jodzahl 102-111, Temperaturerhöhung bei der Maumenéprobe 67-84°. Die Fettsäuren zeigen einen Erstarrungspunkt von 34,9-35,1 und einen Schmelzpunkt von 27-30° (beides relativ hoch!) und eine Acetylzahl von 16,6. Bei der Elaidinprobe wird das Öl dickflüssig oder butterartig. Der leicht erstarrende Teil (das Öl soll 70% Palmitin enthalten) wird als +Baumwollstearin+ oder +Cottonmargarin+ bezeichnet, der flüssigbleibende wird in erster Linie als Speiseöl benutzt. Die Verbrennungswärme des Baumwollsamenöls beträgt bei konstantem Volumen 9390-9401, bei konstantem Druck 9405-9416 g-cal. (~Sherman~ und ~Snell~). Im Öl werden auch ein Aldehyd (?), eine schwefelhaltige Substanz (? s. oben) angegeben. Das Öl wird in ungeheueren Quantitäten als Speiseöl und in der Margarinefabrikation, die geringeren Sorten auch in der Seifenfabrikation, verbraucht und dient auch zur Verfälschung des Olivenöls, des Schweineschmalzes und anderer Speiseöle und Fette. Der +Nachweis von Baumwollsamenöl+ in diesen Fetten und Ölen ist daher «eine der wichtigsten Aufgaben der Fettanalyse» (~Lewkowitsch~). Die wichtigste Reaktion ist die ~Halphen~sche (Erhitzen des in Amylalkohol gelösten Öls mit Schwefel und Schwefelkohlenstoff im Wasserbad -- es tritt Rotfärbung ein). Die Reaktion bleibt aus, wenn das Öl zuvor auf 150-250° erhitzt wurde und tritt auch ein an Fett von Tieren, die mit Baumwollpreßkuchen gefüttert wurden. -- Dann die auch an erhitztem Öl eintretende Probe mit Salpetersäure (spez. Gewicht 1,375), wobei nach längerem Stehen Braunfärbung eintritt. Die ~Bechi~sche Silbernitratprobe ist unzuverlässig. Die Zusammensetzung des +Baumwollsamenpreßkuchen+ ergibt sich aus folgender Tabelle: ---------------------------+------------------+-------------------- | geschält | roh |~Garola~ ~Völcker~| ~Garola~| ~Décugis~ ===========================+========+=========+=========+========== Wasser | 7,78 | 9,28 | 12,44 | 9,30 Fette | 12,87 | 11,05 | 5,86 | 6,10 Stickstoffhalt. Substanzen | 47,81 | 41,12 | 28,00 | 24,10 Stickstofffreie Substanzen | 20,84 |} | 40,64 |} | |} 22,50 | |} 54,50 Cellulose | 3,80 |} | 8,14 |} Asche | 6,90 | 8,05 | 4,92 | 5,96 Vgl. auch S. 245. Da die Preßkuchen nicht ganz ungefährlich sind, dürfen sie nur bei ausgewachsenen Tieren mit Vorsicht in kleinen Partien verfüttert werden. In China werden seit Jahrhunderten aus Baumwollsamen Futterkuchen hergestellt. In Nordamerika wird der Samen noch jetzt vielfach nur als Düngemittel benutzt. =Lit.= ~Wagner~ u. ~Clement~, Zeitschr. Unters. Nahr.- u. Genußm. 16 u. 17. -- ~Hefter~, Fette u. Öle. 1908. -- ~Matthes~ und ~Heintz~, Arch. Pharm. 1909, 161. -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- Weitere Liter. in ~Wehmer~, Pflanzenstoffe. -- ~König~, Nahrungsm. (dort [B. I, S. 615] d. Liter.). -- ~Bömer~, Zeitschr. Nahr.- u. Genußm. 1901, 872. -- ~Völcker~, The analyst. 1903. ~Collin-Perrot~, Resid. industr. -- ~Skinner~, Exp. Stat. Rec. 1902. -- ~Bryde~ Ebenda. -- ~Wolff~, Aschenanalysen. -- ~Osborne~ und ~Voorhees~. Journ. am. chem. soc. 1894, 778. -- ~Fahrion~, Zeitschr. ang. Chem. 1892, 172. -- ~Papasogli~, Publ. del labor. chim. d. gabelle 1893, 90. -- ~Dupont~, Bull. soc. chim. 1895, 696. -- Über Cottonölmargarin vgl. ~de Negri~ u. ~Fabris~, Zeitschr. analyt. Chem. 1894, 563 u. ~Hart~, Chem. Zeit. 1893, 1520. -- Über die Substanz, die die Halphenreaktion bedingt, vgl. ~Soltsien~, Zeitschr. öffentl. Chem. 1899, 306, ~Charabot~ und ~Marsh~, Bull. Soc. chim. 1899, 552, ~Raikow~, Chem. Zeit. 1899, 760 u. 892; 1900, 562 u. 583; 1902, 10, ~Gill~ und ~Denison~, Journ. am. chem. soc. 1902, 397. -- ~Rosenthaler~ Zeitschr. Nahr. u. Genußm. 1910, 453. Semen Sesami und Oleum Sesami. =Syn.= Sesamsamen, Kuntschuksamen, -- sésame, jugoline, benné (franz.) -- sesame (engl.) -- sorgelin (span.) -- gergelim (port.) -- sesamo, giuggiolena (ital.) -- simsim (arab.) -- til, gingil, gingelin, gergelim (hindost.) -- salid (abyss.) -- moa, chima (chines.) -- koba (japan.) -- kundschut (buchar., pers., türk.) -- in Westafrika: bennyseed, in Ostafrika (kisuaheli): mfuta, im malaiischen Archipel: widjen bidjen (wohl aus bidji = Same) -- lenga (mak.), ringa (biman.), watu (sund.). =Etym.= Das Wort Sesam ist uralt. Es findet sich schon im Babylonischen. šam šamni (= Pflanze des Öls), ging als Lehnwort ins Ägyptische šmšmt über (vgl. I, S. 467), dann ins Koptische šemsêm, ins Griechische σήσαμον (bei den späteren Griechen: σησαμάτον, σησάμινον, σέμσεμ; bei den Neugriechen σησάμι oder σουσάμι) und das Lateinische sesamum. Es findet sich auch im Aramäischen und Syrischen (schuschᵉmā;, šûmšemâ) und Arabischen (sâsim, simsim). Das indische Gingeli ist aus dem arabischen chutchulân umgebildet. Davon abgeleitet: Bei ~Barthema~ (1510): zerzalino; bei ~Castanheda~ (1552) und ~Gouvea~ (1602): gergelim; bei ~Fredericke~ (1599): zezeline; bei ~Mocquet~ (1610): gerselin; bei ~Thevenot~ (1661): telselin. -- Til, tila ist das Sanskritwort für Sesam. Benné ist westafrikanischen Ursprungs und steht vielleicht zu ben (= Moringa) in Beziehung (?). =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Sesamum indicum= ~Dc.~, zusammengezogen aus +Sesamum indicum+ L., Spec. pl. ed. I, p. 634 und +S. orientale+ L., ebenda (S. luteum ~Ketz.~, S. oleiferum ~Moench~) mit vielen Kulturvarietäten bzw. Formen. ~De Candolle~ nimmt zwei Rassen, eine mit schwarzen, eine mit weißen Samen und mehrere nach der Form der Blätter unterschiedene Varietäten an. Er unterscheidet von seinem S. indicum die Varietäten: α grandidentatum (S. indicum L.), β subdentatum (S. indicum Sims.) und γ subindivisum (S. orientale L.). +Pedaliaceen+ -- Pedalieae (Sesamum) Sect. Sesamotypus ~Benth~ et ~Hook~. fil. =Beschreibung der Stammpflanze.= Die bis 1 m hohe einjährige, dem Fingerhut äußerlich ähnliche Pflanze hat einen vierkantigen, nur oben kurz-rauhhaarigen Stengel und unten gegenständige, gestielte, eiförmige, 3-5lappige, grob- und unregelmäßig gezähnte, oben alternierende, fast sitzende, lanzettliche, meist ganzrandige Blätter. Die großen Blüten entspringen einzeln (die beiden Seitenblüten der Cyma sind abortiert) in den Achseln der oberen Blätter. Der außen behaarte Kelch ist bis fast zum Grunde geteilt, mit vier schmal lanzettlichen, spitzen Blättern. Die weiße (oder rote) Blumenkrone zygomorph, trichterförmig erweitert, am Grunde rückwärts schwach höckerig, weit aus dem Kelche herausragend, bis 35 mm lang, mit fünf Lappen, von denen die drei vorderen, die die Unterlippe bilden, größer sind als die zwei hinteren. Von den vier Staubfäden sind zwei länger. Sie tragen eine längliche Anthere, die mit einer Längsspalte aufspringt und am Connectiv eine Drüse. Das fünfte, hintere Stamen ist als pfriemliches Staminodium entwickelt. Das Gynaeceum trägt einen Griffel mit zwei lanzettlichen Narbenlappen und ruht auf einem niedrigen drüsigen Diskus. Es besteht aus zwei Carpellen, die unten durch falsche Scheidewände in je zwei Kammern geteilt sind. Die Frucht ist daher unten vier-, oben einfächerig. Die zahlreichen Ovula sitzen an zentral-winkelständigen Placenten. Die Frucht ist eine hellbraune, bis 35 mm lange, bis 7 mm breite, in eine ziemlich lange Spitze auslaufende, mit vier Längsfurchen versehene Kapsel, die sich bei der Reife bis fast zum Grunde dadurch aufspaltet, daß sich die falschen Scheidewände in zwei Platten trennen. +Abbild.+: ~Stapf~ in Engler-Prantl, Pflanzenfamilien IV, 3b, 263. -- ~Vogtherr-Köhler~, Medizinalpfl. Ergänzungsb. t. 58 (dort die weitere botan. Literatur). -- ~Bentley-Trimen~, Med. plant. t. 198. -- ~Wight~, Illust. Ind. Bot. t. 163. -- Bot. Mag. t. 1688. -- Älteste Abbild. ~Camerarius~, Hortus medicus --, ~Rumphius~, Herb. amb. t. 76 und ~Rheede~, Hort. Mal. IX, 54, 55. =Pathologie=. Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: ~Malkoff~ hat in Bulgarien auf _Sesamum_ eine mit Auftreten von Bakterien (er nennt _Bacillus Sesami_ und _Pseudomonas Sesami_) verbundene Krankheit beobachtet, bei der auf den Blättern Flecken auftreten, die Stengel schwarz werden und schließlich vertrocknen. -- In anderen Fällen (so in Turkestan, in Indien) wurde ein Absterben von Sesampflanzen beobachtet, das sehr wahrscheinlich durch _Neocosmospora vasinfecta_ ~E. Smith~ hervorgerufen wird, einen Pilz, der auch eine Krankheit der Baumwollpflanzen (s. dort) verursacht. (~A. de Jaczewski~, Über das Vorkommen von _Neocosmospora vasinfecta_ ~E. Smith~ auf _Sesamum orientale_. Annales Mycologici I 1903, p. 31). Sesam hat von tierischen Feinden wenig zu leiden. =Kultur und Handel.= _Sesamum indicum_ wird in den Tropen und Subtropen beider Hemisphären gebaut, vornehmlich in +Vorder-+ und +Hinterindien+ (Siam), Himalaya, Afghanistan, Persien, Arabien, Rußland, +China+, Japan, Formosa, Java, Kleinasien (Hafen: Smyrna), Arabien, Palästina (Hafen: Jaffa), Ägypten, Griechenland, Sizilien (bei Syracus und im Süden), Malta, Gozo, Algier, West- und Ostafrika (Natal, Sansibar, Madagaskar, Mossambik, Senegal, Lagos) und den wärmeren Gebieten Nord- und Südamerikas (Brasilien, Westindien, Curaçao). Hauptproduktionsgebiet ist +Vorderindien+, das viel Sesam verbraucht und noch mehr exportiert. Dort sind ungeheuere Flächen mit Sesam bebaut. In der Präsidentschaft Madras allein 400000 ha. Die Pflanze verlangt eine möglichst gleichmäßige Temperatur und mindestens drei Monate gleichmäßige Wärme, sowie trockenen, kalkhaltigen, lehmigen, stickstoffreichen Sandboden. Man sät in Indien die schwarze Varietät im März, die weiße im Juni; die erste reift im Mai, die andere im August. Die Frucht wird ausgedroschen. Bisweilen werden, da die Vegetationszeit nur drei Monate beträgt, zwei Ernten im Jahr erzielt. Im Handel unterscheidet man besonders indische und Levantiner Samen (letztere von der Form _Orientale_), sowie weißen, gelben, braunen und schwarzen oder gemischtfarbigen Sesam. Selbst dieselbe Varietät produziert Samen verschiedener Farbe. Im allgemeinen zeigen die Samen von _S. indicum_ weiße, gelbliche oder bräunliche, die von _S. orientale_ schwarzbraune bis violettschwarze Farbe (~Harz~). In Indien heißt der hellgelbe safed til, der schwarze kala til. Der schwarze produziert mehr Samen, der weiße das feinste Öl. Gleichmäßig gelblich-weiß ist der Levantiner Kurrachée und Sansibar-Sesam, mit grauen Samen gemischt der Bombay-Sesam, braun der ägyptische und Smyrna-Sesam, schwarz der indische. +Deutschland+ importierte 1909: 779401 dz Sesamsamen besonders aus China und Brit. Indien (zusammen über 700000 dz), dann aus Portugies. Ostafrika, Nied. Indien, der asiat. Türkei, Japan und Brit. Westafrika. +Frankreich+ importierte 1908: 554036 Quint. +Sesamsamen+. Davon kam das meiste, etwa zu gleichen Teilen, aus China und Engl. Indien, kleinere Mengen aus der Türkei, noch weniger aus Niederl. Indien, Westafrika, Indochina. +Marseille+ ist ein wichtiger Sesamimporthafen. Dann auch Triest. +British Indien+ exportierte +Sesamsamen+ 1904/05: 65532, 1908/09: 17977 cwts nach England und engl. Besitzungen und 1904/05: 2451225, 1908/09: 1639315 cwts nach anderen Ländern. Von +Sesamöl+ 1908/09: 104306 cwts nach England usw. und 69904 cwts nach anderen Ländern. +Siam+ exportiert etwa 4 Mill. kg Samen. +China+ verschiffte aus den Vertragshäfen 1897: 44899 piculs, +Ostafrika+ für über 200000 M. Die +Vereinigten Staaten+ importierten 1909: 1274032 pounds Sesamöl. =Lit.= ~Semler~, Trop. Agrikult. -- ~Watt~, Dict. econom. prod. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacogr. -- ~Warburg~, Sesamkultur in unser. Kol. Zeitschr. trop. Landwirtsch. 1898. -- ~Thoms~, Sesamsaat aus Togo. Tropenpfl. 1898. =Morphologie der Droge.= Die Samen sind 1,5-4, meist c. 3 mm lang, c. 1 bis 2 mm breit und 1 mm dick, je nach der Sorte gelblich-weiß, rötlich oder braun bis schwarz, verkehrt eiförmig, etwas zugespitzt, +flachgedrückt+, +spatelförmig+. An den vier Kanten laufen vier mit der Lupe gut sichtbare, schmale Rippen. Dadurch erscheint der Same im Querschnitt undeutlich vierkantig. Die flachen Breitseiten sind infolge eines undeutlichen Netzwerkes feingrubig runzlig. In der Mitte der einen flachen Seite verläuft die Raphe. Das Endosperm ist etwa halb so dick wie ein Cotyledon. Die ölreichen Cotyledonen sind flach, zwischen ihnen liegt der Keimling. Der Geschmack ist angenehm milde-ölig. =Anatomie.= Die Samenschale zeigt zwei Schichten. Die äußere besteht aus beim trockenen Samen zusammengefallenen, nach dem Aufweichen palissadenartig gestreckten, dünnwandigen Zellen, die, ihrer Außenwand angeheftet, eine in einer Tasche sitzende große Calciumoxalatdruse führen (Fig. 182) und bei den dunklen Varietäten auch den in Alkali löslichen Farbstoff (in Form von Pigmentkörpern, ~Hartwich~) enthalten. Von der Fläche betrachtet sind sie isodiametrisch und bieten (auch im Preßkuchen) +ein für den Sesamsamen außerordentlich charakteristisches Bild+, denn es sind nur wenige Fälle (von ~Benecke~ und ~Collin~) beobachtet, wo diese Kristalle fehlten. An den vier Eckleisten (s. oben) des Samens sind die Epidermalpalissaden fächerartig angeordnet (Fig. 182 I). Hier fehlt ihnen auch meist die Kristalldruse. Die zweite Schicht ist die aus mehreren Reihen obliterierter dünnwandiger, kleine Prismen oder Zwillingskristalle (~Collin~, ~Hanausek~) enthaltender Zellen bestehende Nährschicht. Bei den dunklen Sorten führt auch sie Farbstoff. Das Endosperm ist mehrschichtig. Seine Zellen sind etwas dickwandiger als die Zellen der bifacial gebauten breiten Cotyledonen (Fig. 182), enthalten aber wie diese in Ölplasma eingebettete, Globoide und Kristalloide führende, Aleuronkörner. Diese sind im Endosperm 2-6, in den Cotyledonen bis 10 mik. groß. [Illustration: Fig. 182. _Sesamum indicum_ ~Dl.~ Querschnitt durch Samenschale (S), Endosperm (E) und einen Cotyledon (C). [Nach +Moeller-Winton+.]] =Lit.= ~Flückiger~, Z. Kenntn. d. Sesamsam. Schweiz. Wochenschr. 1865. -- ~Benecke~, Die verschied. Sesamarten u. Sesamkuchen d. Handels. Pharm. Centralh. 1887, 545 und Anleit. zur mikrosk. Unters. d. Kraftfutterm. 1886. -- ~Böhmer~, Die Kraftfuttermittel 1903. -- ~Moeller-Winton~, Mikroskop. d. Nahr.- u. Genußm. 2. Aufl. -- ~Collin-Perrot~, Les résid. industr. -- ~T. F. Hanausek~ in Wiesner Rohstoffe II. Aufl. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenk. -- ~Hebebrand~, Über d. Sesam. Landw. Vers. Stat. 1898, 45. -- ~Kobus~, Kraftfutter u. s. Verfälsch. Landw. Jahrb. 1884, 813. -- ~Hartwich~ in Realenzyklop. d. Pharm. =Chemie.= Die Samen enthalten im Mittel in Prozenten: 5,50 (5,25-6,5) Wasser, 20,30 (19,5-22,7) Rohproteïn, 14,98 stickstofffreie Extraktstoffe, 7,15 (6,4-8,4) Rohfaser, besonders Pentosane, 4,5-6,47 Asche. Ferner enthalten die Samen 47 bis 57% im Durchschnitt 50-53% (indische Saat) bzw. 56-57% (Levantiner) Öl (die indischen Pressen liefern nur 22-31% Öl), +Saccharose+ (~Vallée~, 0,64% ~Bourquelot~) und reduzierenden Zucker (0,14% ~Bourquelot~), ein +Pentosan+ (~E. Schulze~, ~Wittmann~), +Lecithin+ und +Cholin+ (im Preßkuchen, ~E. Schulze~), +Phytin+ (~Posternak~), +Conglutin+, +Globulin+, +Legumin+ (~Ritthausen~), +Amide+, einen 1,95% Schwefel enthaltenden Proteïnstoff. Über 96% des Stickstoffes sind als Eiweißstickstoff vorhanden. Der Gehalt an Calciumoxalat beträgt 0,2-1,8%. Das =Sesamöl=, =Oleum Sesami= (huile de sésame ou de benné, sesame oil, gingeli, gingili oder jinjili oil, til oder teel oil, benné oil, olio di sesamo), ist kalt gepreßt hellgelb, geruchlos und von angenehmem Geschmack. Die Elementarzusammensetzung des Öls der schwarzen (und weißen) Samen ist C = 76,17 (77,38), H = 11,44 (11,59), O = 12,39 (11,03) (~König~). Es enthält 12,1-14,1% feste Fettsäuren (~Farnsteiner~) und 78,1% flüssige (~Laue~). Letztere bestehen vorwiegend aus +Ölsäure+, weniger aus +Linolsäure+, die festen aus +Palmitin-+ und +Stearinsäure+, sowie etwas Myristicinsäure (~Kreis~). Die Menge des Unverseifbaren, das aus Phytosterin, Sesamin und Rotöl besteht, beträgt 0,95-1,32%, die freien Fettsäuren des kaltgepreßten Öls 0,47-5,75%. Das Öl dreht rechts (+0,8° bis +1,6°, ~Utz~) infolge seines Gehaltes an +Phytosterin+ (F. 137, ~Villavecchia~ und ~Fabris~) und an durch Eisessig aus dem Öl extrahierbaren, zu 0,2-0,5% vorhandenen +Sesamin+ [C₁₈H₁₈O₅, Nadeln, F. 118°, ~Tocher~; (C₁₁H₁₂O₃)₂, F. 123°, ~Villavecchia~ und ~Fabris~; C₃₃H₃₀O₁₀ (?), ~Bömer~ und ~Winter~]. Letzteres wird durch Nitroschwefelsäure erst grün, dann hellrot, welche Reaktion die U. St. Ph. zur Identifizierung des Öls benutzt. Ferner wurde daraus ein aus einem krist. Kohlenwasserstoff (F. 91-92°) entstehendes (~Canzoneri~ und ~Perciabosco~), dickes, stickstofffreies, rotbraunes Öl isoliert (~Tocher~, ~Villavecchia~), das die Rohrzucker-Salzsäurereaktion des Öls, die (von ~Camoin~ gefundene) sog. ~Baudouin~sche +Reaktion+, bedingt und das vollständig in die flüssigen Fettsäuren übergeht, wenn diese mit der Bleisalz-Äthermethode abgeschieden werden. Da die ~Baudouin~sche Reaktion auf der Bildung von Furfurol aus der vom Rohrzucker abgespaltenen Lävulose beruht, kann der Rohrzucker bei der +für Sesamöl höchst charakteristischen+ Probe, die noch kleinste Mengen Sesamöl nachzuweisen erlaubt, durch Furfurol ersetzt werden (~Villavecchia~ und ~Fabris~). Alle aromatischen Aldehyde mit zyklischem Kern geben mit Sesamöl Farbenreaktionen (~Breindl~). Ferner findet sich im Sesamöl das phenolartige +Sesamol+ (~Kreis~). Das spez. Gewicht des Öls beträgt bei 15°: 0,921-0,926 (am höchsten bei russischen Ölen), bei 98°: 0,867-0,870 (Ph. helv. IV), der Erstarrungspunkt liegt bei gepreßtem Öl bei -4 bis -6° (bei extrahiertem Öl bei +5°), der Brechungsexponent (im Butterrefraktometer bei 25°) 66,2-69, die Verseifungszahl 187,6 bis 194,6, die Jodzahl 103-114,5 (bei Curaçaoöl 116,8), die Reichertzahl 0,35, die Reichert-Meißlzahl 1,2, die Hehnerzahl 95,6-95,86, die Temperaturerhöhung bei der Maumenéprobe 63-68°. Die Fettsäuren zeigen die Jodzahl 108,9-112, eine Acetylzahl 11,5, der Erstarrungspunkt liegt bei 18,5-28,5°, der Schmelzpunkt bei 21-31,5. Bei der Elaidinprobe wird das Öl nicht fest. Die Verbrennungswärme des Sesamöls beträgt 9395 g-cal. bei konstantem Volumen (~Sherman~ und ~Snell~). Der Entflammungspunkt liegt bei 240° (~Rakusin~). Die Pharm. helv. IV gibt als Identitätsreaktion neben der ~Baudouin~schen noch an, daß bei Überschichten von Salpetersäure (1,4) zunächst mit Sesamöl und dann mit Resorcin-Benzol, nach dem Umschütteln eine vorübergehende rot- bis blauviolette Färbung auftreten soll. Die Zusammensetzung der Sesamkuchen (Preßkuchen) ergibt sich aus folgender Tabelle: ------------------+--------+--------+--------+------------------------ |~Garola~|~Wolker Grandeau~| ~Dietrich~ u. ~König~ | | | | Sesam | Indischer Sesam | | schwarz| weiß | Max. | Min. | Mittel ==================+========+========+========+=======+=======+======== Wasser | 9,58 | 8,06 | 10,20 | 16,40 | 8,10 | 12,45 Stickstoffhaltige | | | | | | Substanz | 41,50 | 36,87 | 33,75 | 42,31 | 32,20 | 36,57 Fett | 10,76 | 11,34 | 15,38 | 15,84 | 5,70 | 11,86 Stickstofffreie | | | | | | Substanz | 20,10 | 25,05 | 24,13 | 30,81 | 14,10 | 21,12 Cellulose | 7,06 | 8,14 | 5,00 | 13,28 | 6,10 | 8,12 Asche | 11,00 | 10,54 | 11,54 | 11,40 | 7,45 | 9,88 Die Levantiner Sesamkuchen gelten als eiweißreicher. Sesamkuchen können unbedenklich verfüttert werden. =Lit.= ~de la Souchère~ (Baudouinreaktion), Zeitschr. anal. Chem. 1882, 445. -- ~Laue~, Journ. Soc. chem. ind. 1901, 1083. -- ~Utz~ (vgl. Unters. von afrik., ind. u. levantin. Öl), Pharm. Zeit. 1900, 522. -- ~Tocher~, Pharm. Journ. 1891, 639; 1893, 700. -- ~Villavecchia~ und ~Fabris~, Zeitschr. angew. Chem. 1893, 505. -- ~Hazura~ und ~Grüssner~, Monatsh. f. Chem. 1889, 242. -- ~Breindl~, Chem. Zeit. 1899. -- ~Farnsteiner~, Chem. Zeit. 1896, 213. -- ~Benedict-Ulzer~, Analyse d. Fette. -- ~Kreis~, Chem. Zeit. 1902, 1014; 1903, 116 u. 1030 u. Über Farbenreaktionen fetter Öle. Verhandl. der Basler Naturf. Ges. 1903. -- ~Soltsien~, Vierteljahrschr. Nahr. u. Gen. 1893, 372. -- ~Bellier~ (Farbenreaktionen des Öls), Ann. chim. anal. appl. 1899, 217. -- ~Ciupercesco~ (Reaktion auf Sesamöl), Bulet. asociat. farmac. Romania 1903. -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~König~ a. a. O. Weitere Lit. in ~Wehmer~, Pflanzenstoffe und bei ~König~. =Verfälschung.= Gebleichtes und verdorbenes Öl wird durch Phloroglucin-Salzsäure stark rot. Baumwollsamenöl kann durch die Halphensche Reaktion erkannt werden. Eine Lösung von 2 g Sesamöl in 10 ccm Chloroform und 20 ccm absolutem Alkohol soll nach Zusatz von drei Tropfen Phenolphthaleïn und 2 ccm n/10 Kali eine bleibende Rotfärbung zeigen (Prüfung auf altes saures Öl, Ph. helv. IV). Als Verfälschung sind beobachtet: Arachisöl, Baumwollsamenöl, Rüböl. =Anwendung.= Die besten Sorten sind, da sie nicht leicht ranzig werden und sich jahrelang unzersetzt halten, dem Olivenöl gleichwertig. Sie werden daher auch in der Enfleurage benutzt. Die Öle zweiter und dritter Pressung dienen besonders zur Seifenfabrikaton. Es ist in Deutschland gesetzlich vorgeschrieben, daß der Kunstbutter (Margarine) und dem Kunstkäse 5 resp. 10% Sesamöl zugesetzt werden muß, damit die Identifikation mit der ~Baudouin~schen Reaktion möglich ist. Die besten Sorten werden mit Mohnöl, Baumwollöl und Arachisöl verfälscht, die geringeren mit Rüböl. Aus dem mit Honig versetzten Mehl wird der χαλβᾶς bereitet, eine im Orient sehr beliebte Fastenspeise (~Heldreich~). Auch in Indien sind viele Tila-Zubereitungen bis heute in Gebrauch. In Vorderasien und Ägypten wird das Brot mit Sesam bestreut, in Sizilien mit den zuvor gerösteten Samen (~Ginggiolina~). _Herba Sesami_ wird in den Vereinigten Staaten medizinisch benutzt. =Paralleldrogen.= _Sesamum radiatum_ ~Schum.~ et ~Thonn~ (_S. foetidum_ ~Atzel~, _S. occidentale_ ~Heer~ et ~Rgl.~, bei den Suaheli ufuta muita = wilder Sesam), in West- und Ostafrika heimisch, wird als Ölpflanze und zur Gewinnung der Samen besonders in Afrika, dann auch auf Ceylon, in Hinterindien, auf den Philippinen und in Amerika (Guyana) kultiviert und liefert auch Sesamöl, sowie den sog. «dickschaligen» Sesamkuchen (~Benecke~). Ihre Samen sind schmal berandet und auf den flachen Seiten radial gestreift. Die Epidermiszellen der Samenschale sind innen und an einem Teile der Seiten verdickt und tragen hier die Calciumoxalatkristalle (~Benecke~). _Sesamum angustifolium_ (~Oliv.~) ~Engl.~, in Deutsch-Ostafrika und Sansibar heimisch, liefert ebenfalls brauchbare Ölsaat, doch sind die Samen kleiner. Das sog. «deutsche» Sesamöl ist Leindotteröl, von _Camelina sativa_. =Geschichte.= Sesamsamen und das Öl wurden seit den ältesten Zeiten, z. B. schon bei den Sumerern (I, S. 475) benutzt, doch fehlen prähistorische Funde. Die ursprüngliche Heimat der Pflanze ist nicht mit Sicherheit bekannt. ~de Candolle~ hält, da ~Blume~ (Bijdragen p. 778) angeblich wilden S. in Java fand, diese Insel (resp. die Sundainseln überhaupt) für die Heimat des S. und meint, daß er vor 2-3000 Jahren nach Indien und ins Euphrattal und etwa 1000 n. Chr. nach Ägypten gekommen sei. ~Watt~ bestreitet dies. Er hält, allerdings mit einem Fragezeichen, die Pflanze für in Indien heimisch, da er in Behar und im Himalaya angeblich wilde Formen sammelte. Die Kultur des Sesam tritt in Indien jedenfalls schon zur Zeit des ~Atharvaveda~ auf, wo sie neben der von Reis, Gerste und Bohnen genannt wird. Ebendaselbst wird das Sesamöl (taila, tila) schon zu Opferzwecken verwendet. ~Schrader~ meint, daß die Pflanze von Indien sehr frühzeitig in die Euphratländer vorgedrungen sein muß, wo sie die Stelle des Ölbaumes vertrat. Auf einem ägyptischen Denkmale aus der XX. Dynastie ist das Bestreuen der Brote mit einem Samen (Sesam?) dargestellt (~Unger~). Doch kann dies auch ein anderer Same sein. Sesam findet sich auch in einigen Rezepten des Papyrus ~Ebers~ (1500 n. Chr.). Trotzdem ~Brugsch~ in einem ägyptischen Texte des V. Jahrh. n. Chr. Sesam fand und in Afrika 9 andere Arten vorkommen, dürfte die von ~de Pruyssenaere~ geäußerte Ansicht, Sesam sei ursprünglich in Afrika heimisch, nicht zutreffend sein. Nach Ägypten, wo er jetzt eine große Rolle spielt, scheint S. aber schon in vorgeschichtlicher Zeit gekommen zu sein (~Schweinfurth~). Da die Ägypter aber den Namen von den Babyloniern erhielten (s. oben S. 573), erhielten sie wohl auch die Pflanze von daher. ~Herodot~ (L. I, 193) berichtet, daß die Babylonier +nur+ aus Sesam Öl bereiteten. Der Anbau muß also dort schon in früher Zeit sehr ausgedehnt gewesen sein. Auch aus anderen Quellen wissen wir, daß die Babylonier sich des Sesamöls bedienten (I, S. 467). Auch einige indische Namen des S. -- gingeli, gergelium aus arab. schulchulan -- deuten von Indien nach Westen und so meint denn ~Watt~, daß S. zuerst vielleicht irgendwo zwischen dem Euphrattale und Bochara südlich von Afghanistan und Nordindien kultiviert wurde, und von dort nach Indien und den Archipel kam, ehe er nach dem Westen gelangte. Alles deutet auf ein semitisches Volk, das die Sesamkultur einführte. Ich bin daher geneigt, die Urheimat des S. nach Mesopotamien und die östlich daran anstoßenden Länder zu verlegen. Von dort gelangte der S. wohl schon mit den Ariern im II. Jahrtausend n. Chr. einerseits nach Indien und dann auch nach Ägypten. Doch erscheint es auch möglich, daß die Kultur des S. an mehreren Zentren unabhängig von einander begann. Nach Ostasien gelangte S. wahrscheinlich nicht vor Beginn unserer Zeitrechnung. Die ersten Angaben datieren aus dem V. bzw VI. Jahrh. Erst im Tsi min yao chou wird S. in China erwähnt (~Bretschneider~). Die Portugiesen brachten S. von der Küste von Guinea nach Brasilien. Nach der Brahmapurâna wurde S. durch ~Yama~, den Gott des Todes, geschaffen und er wird daher in Indien besonders bei den Totenfeiern viel benutzt. Sesam repräsentiert das Lebensprinzip, das Symbol der Unsterblichkeit, er ist dem Soma heilig und neben Reis und Honig Bestandteil einiger Totenspeisen. Die alten Sanskritschriftsteller berichten über die verschiedenen Sorten der Sesamsamen, über das Öl und seine medizinische Anwendung. Sesamöl war das erste in Indien gepreßte Öl (~Dutt~), tila (sansk.) findet sich bereits in den Veden. S. kehrt auch oft in indischen Sprüchwörtern (~Gubernatis~) und in Volkserzählungen wieder. Das «Sesam öffne dich» des ~Ali-Baba~ in Tausend und einer Nacht zeigt, daß man in dem kleinen Samen alle Geheimnisse der Zauberei beschlossen glaubte. In der Bibel scheint Sesam zu fehlen. Allerdings zitiert Pharmakographia Jesaia 28, 27, aber das dort (neben Kammon, d. h. Cuminum) stehende ḳeṣach ist nicht klar zu deuten, die griechische Bibelübersetzung hat μελάνθιον, die Vulgata gith (beide = _Nigella sativa_), die englische Übersetzung fitches, in der deutschen (von ~Kautzsch~) steht Dill (vielleicht ein mißverstandenes til; dann würde der Übersetzer an Sesam gedacht haben), in anderen steht Wicke. ~Herodot~ erwähnt σήσαμον, ebenso ~Alkman~ (VII. Jahrh. n. Chr.). ~Hippocrates~ bediente sich des Samen als Expectorans (I, S. 540). ~Theophrast~ erwähnt an vielen Stellen das σήσαμον. ~Dioskurides~ und ~Plinius~ berichten, daß Sesam z. B. in Ägypten gebaut wurde. ~Plinius~ sagt, daß er von Indien komme (der ägyptische ist wohl Ricinus). Auch im Edikte des Diocletian (I, S. 569) finden sich Sesamsamen. Der Periplus (I, S. 535) erwähnt Sesamöl als Ausfuhrartikel von Moscho, Barygaza und Ariakes. ~Varro~ erwähnt S. ~Columella~ kannte den Sesambau aus eigener Anschauung (I, S. 573). Nach dem Norden ist S. nicht gekommen. Im Mittelalter wurde suseman (oder sempsen) in Cypern, Ägypten und Sizilien kultiviert. Das Öl war ein Exportartikel von Alexandrien nach Venedig. Sesampreßkuchen wurden, wie Aruch, ein talmudisches Wörterbuch des Mittelalters, berichtet, mit Jasminblüten parfümiert als Seife benutzt (~Löw~). Sesamum steht bei ~Cordus~, aber noch nicht in der Alphita, Sesamöl im Luminare majus und Lumen Apothekariorum (I, S. 793). Trotz des hohen Alters der Sesamölgewinnung ist das Öl für Europa doch erst seit der zweiten Hälfte bzw. dem Ende des XIX. Jahrh. von größerer Bedeutung geworden. =Lit.= ~de Candolle~, L’origine des plantes cultivées. -- ~Gubernatis~, Mythologie des plantes II, 345. -- ~Dutt~, Hind. mat. med. -- ~Watt~, Dict. econom. prod. -- ~Hehn~, Kulturpflanzen. -- ~Schrader~, Reallexikon. -- ~Löw~, Aramäische Pflanzennamen. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. Semen Tiglii und Oleum Crotonis. =Syn.= Grana tiglii, tiglia, s. tilli, S. moluccana, Sem. Crotonis, Sem. Cataputiae minoris, Croton- oder Purgierkörner, Granatillsamen, Graines ou semences de Tilly ou de Moluques, Petits pignons d’Inde -- croton seeds -- tilho (port.). Die Pflanze: Purgierbaum, Purging Croton, Croton cathartique. Im Hort. Malabar.: Gajapala, Cadel auanucu. Im Herb. Amboinens.: Granum moluccum. In ~Bauhins~ Pinax: Pinus indica nucleo purgante. Die Samen in Indien: Jamalgata pills -- +sansc.+: jajapála, kanakaphála -- +hind.+: jamál-gota -- +tam.+: nervalan -- +mar.+: jepal -- auf Java: tjeraken, mal.: tjemekijan -- in China: pa-tow, pa-teú, chʿuan-pei, chiang-tsu, tou-jin. =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Croton Tiglium= L., Spec. pl. ed. I, 1004 (1753) (Croton acutus ~Thnbg.~, C. Jamalgota ~F. Hamilton~, Kurkas tiglium ~Rafinsqu.~, Tiglium officinale ~Klotsch~, Anisophyllum acutifolium ~Bouv.~). Euphorbiaceae, Platylobeae -- Crotonoideae -- Crotoneae (Croton). Untergattung Eucroton Subsectio Medea ~Müll. Arg.~ =Etym.= Croton von κρότων = Zecke nach der Form des Samens (vgl. bei Ricinus). Tiglium von τίλος = Durchfall (nicht von der Moluccen-Insel Tilho). Granatill aus Grana tilli oder dilla, dem alten Handelsnamen der Droge. =Beschreibung der Stammpflanze.= _Croton Tiglium_ ist ein kleiner, höchstens 4-6 m hoher immergrüner, diclin-monöcischer Baum oder Strauch mit oblongen oder eioblongen, zugespitzten, entfernt sägezähnigen, im Alter kahlen Blättern, die am Grunde, dort wo der Blattstiel ansitzt, zwei Nektarien tragen. Der Blütenstand ist eine androgyne Traube. Die Einzelblüten stehen einzeln oder zu zwei bis dreiblütigen Büscheln. Die männlichen Blüten stehen am oberen Teile des Blütenstandes (oder der letztere trägt nur solche). Ihr tief fünfteiliger grüner Kelch zeigt oblong-lanzettliche, am Rande und an der Spitze dünnsternhaarige Blätter. Die fünf weißen, lanzettlichen, mit den Kelchblättern alternierenden, anfangs ausgebreiteten, dann zurückgerollten, besonders am Grunde dicht zottigen Blumenblätter überragen den Kelch nicht. Die 15-20 freien Staubgefäße überragen den Kelch. Die weiblichen, am Grunde des Blütenstandes stehenden Blüten haben einen bis zur Mitte fünfteiligen Kelch mit oblongen, sternfilzigen Zipfeln, sehr kleine kurzgestielte Blumenblättchen und einen großen, goldgelben, dicht mit Sternhaaren bedeckten, kugeligen, dreiteiligen Fruchtknoten, der drei Griffel mit je zwei langen fädigen Narben trägt und in jedem Fache ein Ovulum enthält. Die kugelig ellipsoidische Kapselfrucht, die den Haarbelag abwirft und daher (durch die Haarbasen) außen nur rauh, sonst aber kahl erscheint, ist 2-2,2 cm lang und 1,6-2 cm breit, gelb bis hellbräunlichgelb. Sie zerfällt in drei Kokken (daher: Tricoccae), die sich von der Mittelsäule lösen und bis zur Mitte zweiklappig aufspringen. Jede der Kokken enthält einen Samen mit reichlichem Endosperm. _Croton Tiglium_ ist in Ostindien (Malabar, Bengalen, Ceylon) heimisch und findet sich auch in Assam, Birma und Malakka und wohl auch auf Java, Borneo, Amboina und den Philippinen wild. Nach China und Japan ist C. seit langem eingeführt; neuerdings (1898) auch nach Kamerun. Ich traf C. in Java und Ceylon da und dort als Heckenpflanze kultiviert. Er ist sturmfest und wächst rasch. Besonders wird er in Vorderindien, China, Java, Mauritius und den Philippinen -- in beschränktem Maße -- angebaut. Jetzt kommen viel Samen aus China. Der Crotonbaum ist leicht durch Samen fortzupflanzen, bedarf gar keiner Pflege und nimmt mit dem schlechtesten Boden vorlieb. Er kann, wenn der Boden nicht sumpfig ist, bis zu Höhen von 1000 m und mehr kultiviert werden. Er dient auch als Schattenbaum (vgl. I, S. 52) in Kaffee-, Cacao-, Vanille- und Cardamomenpflanzungen (~Semler~). =Lit.= ~J. Scott~, Med. plant. Ceylon Edinb. 1819. -- ~Marchand~, Adansonia I, 232. -- ~Hamilton~, Transact. Linn. Soc. 14, 258. -- ~Roxbourgh~, Flor. Ind. III, 682. -- ~Hooker~, Flor. Brit. Ind. -- ~Pax~, Euphorb. in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. III, 5, Fig. 25. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- ~Pereira~, Heilmittellehre II, 210. -- ~Weynton~, Commerc. prod. Assam Ph. journ. 18 (1887), 162. -- ~J. U. Lloyd~, Western Drug. 1898. -- +Abbild.+: ~Berg-Schmidt~, Atlas 2. Aufl. t. 87 (dort die weitere botan. Lit.), ~Nees von Esenbeck~, Düsseld. Abb. t. 138, ~Bentley-Trimen~, Med. plant. t. 239, ~Baillon~, Bot. méd. Fig. 2676-2682 und ~Burmann~, Thes. zeylan. t. 90. =Morphologie der Droge.= Die Samen besitzen die Größe kleiner Ricinussamen, meist sind sie etwa 10-12 mm lang, c. 8 mm breit und c. 6 mm dick, ovallänglich, an beiden Enden stumpf, aber beiderseits, namentlich auf dem Rücken, infolge eines freilich wenig vorspringenden, stumpfen, namentlich an der oberen Hälfte sichtbaren Längskiels kantig-konvex, daher im Querschnitt undeutlich vierkantig-rautenförmig, nicht rein oval, die eine Seite ist etwas flacher als die andere. Die etwas abgeflachte Bauchseite zeigt eine deutliche Raphe. Außen sind sie schwach glänzend, rötlichbraun oder matt schmutzig-grau, an den Stellen wo die äußere Schicht abgerieben ist mit dunkleren Flecken, wo diese ganz fehlt stumpf-schwarz, auf der Rückenseite gegen das Hilum und die Chalaza etwas längsstreifig und furchig, auf der Bauchseite mehr glatt. Die Samenschale ist dünn (c. 0,3 mm), spröde und zerbrechlich, innen grausilberglänzend, die dünnhäutige innere Samenhaut läßt sich leicht ablösen; bricht man den Samen auf, so bleibt sie oft am Samenkern haften und bedeckt diesen als eine zarte Hülle, die ein reich verzweigtes, von der Chalaza ausgehendes Adernetz, besonders nach Behandeln mit Phloroglucinsalzsäure, deutlich hervortreten läßt. Der leicht in zwei plankonvexe Hälften zerfallende Samenkern -- bei der Droge oft geschwunden -- ist im Querschnitt ölig-fettglänzend, besitzt ein dickfleischiges Endosperm und dünne, breit-blattartige, an der Basis herzförmige, nicht aneinander, aber am Endosperm festhaftende Cotyledonen mit deutlicher Nervatur, eine kleine Plumula und eine c. 3 mm lange, gegen das Hilum gerichtete Radicula. Die Caruncula ist nur klein und am trockenen Samen kaum noch zu erkennen. Unterhalb derselben tritt das Hilum deutlich hervor, von ihm läuft die Raphe zur am anderen Ende des Samens liegenden, undeutlich hervortretenden Chalaza. Die Schalen betragen 31,6%, der Kern 68,4% des Samens (~Flückiger~). Der Samenkern, der in zwei plankonvexe Hälften aufspaltet (~Isa Ben Ali~ vergleicht diese mit Sperlingszungen), schmeckt anfangs milde ölig, bald wird der Geschmack aber scharf kratzend, lange anhaltend brennend. Die Schale ist geruchlos und fast ohne Geschmack. Der geruchlose Kern entwickelt beim Erwärmen einen scharfen, die Augen angreifenden und die Haut reizenden Geruch. +Crotonsamen+ findet sich im Handel in Säcken von 50-60 kg oder in Fässern (~Gehe~) (nach ~Hanbury~ in cases, bales or robbins). =Anatomie.= Aus dem äußeren Integument des Ovulums, in dem das Raphebündel verläuft und das neben der Mikropyle einen kleinen Obdurator und, aus der Mikropyle bruchsackartig herausragend, das Ende des Nucellus zeigt (ein Pseudonucellus ist hier nicht wie bei _Ricinus_ zu finden), entstehen drei Schichten: eine auch in der Droge noch meist Stärke und einen braunen Farbstoff führende, aus polygonalen Zellen bestehende Epidermis, eine mehrreihige, mehr oder weniger zusammengefallene parenchymatische Nährschicht und eine Schicht dünnwandiger Palissaden, die kleine Interzellularen zwischen sich lassen. +Diese äußere Schicht läßt sich leicht abreiben.+ Alsdann tritt die aus der Epidermis des inneren Integumentes hervorgehende, aus stark radial gestreckten, schief gestellten, dickwandigen, dunkel gefärbten, etwa 250 mik. hohen Palissadensklereïden bestehende Hartschicht hervor, innerhalb welcher die oben erwähnte nährschichtartig zusammengefallene Silberhaut liegt, in der die reich verzweigten Ausläufer des Raphenbündels rückläufig vom Chalazaende zum Hilumende verlaufen. In den Zellen des Endosperms und der Cotyledonen finden sich reichlich Aleuronkörner von der gleichen Gestalt wie bei _Ricinus_ mit deutlichen Globoiden und Kristalloiden, eingebettet in Ölplasma. Sie messen im Endosperm 8-13 mik. In den blattartigen Cotyledonen, die sich vom Endosperm ablösen lassen, sind sie kleiner. =Lit.= ~Tschirch~, Croton in Realenzyklop. d. Pharm. -- ~Schlotterbeck~, Beitr. z. Entwicklungsgesch. pharmakognost. wichtig. Samen. Diss. Bern 1896 (mit Abbild.). -- ~Vogl~, Commentar. -- ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. =Handel.= Das Öl wird in Indien aus den reifen, schwach gerösteten und geschälten Samen bei gelinder Wärme ausgepreßt. Auch ein mit Lösungsmitteln extrahiertes tritt bisweilen im Handel auf. Seine Zusammensetzung ist eine andere. Pharm. helv. IV verwirft es ausdrücklich. Keinesfalls darf ein mit Alkohol extrahiertes Öl benutzt werden. Der Handel kennt außer dem hell- bis bräunlichgelblichen ostindischen, über Bombay, Cochin und Madras exportierten Öle, das als sehr wirksam gilt, auch ein braungelbes englisches. Eine gute Sorte ist das in kleinen Fläschchen mit der Signatur: «Croton oil sold by A. Short, Ratcliff, Highway London» in den Handel gebrachte (~Hager-Fischer-Hartwich~, Pharm. Praxis). Es ist Selbstdarstellung des Öls durch Pressen oder Extrahieren mit Äther vorgeschlagen worden. Geschieht dies, so müssen die Preßkuchen, Filter usw. verbrannt werden, da sie giftig sind. =Chemie.= Die Purgierkörner enthalten (nach ~König~) im Durchschnitt in Prozenten: Wasser 5,71, Stickstoffsubstanz 18,77, Fett 36,81, stickstofffreie Extraktstoffe 9,95, Rohfaser 25,23, Asche 3,53. (Fett in der Trockensubstanz 39,04%.) Die Samen enthalten 30-45% Öl -- liefern aber bei der Pressung sehr viel weniger (s. unten) --, c. 18% +Eiweiß+, c. 4% +Asche+ und c. 6% +Wasser+, ferner +Lipase+ (~Dunlap~ und ~Seymour~, ~Braun~ fand kein fettspaltendes Enzym), +Invertin+, +Amylase+, +Raffinase+, ein proteolytisches +Enzym+ tryptischer Natur (~Scurti~ und ~Parozzani~). Das lipolytische Vermögen des Crotonsamen äußert sich merkwürdigerweise nicht am Crotonöl, wohl aber an Sesam-, Oliven-, Ricinus- und Mandelöl, die zum Teil nahezu vollständig durch die Lipase verseift werden. Das hydrolytische, Ester aufspaltende Enzym der Samen vermag auch Saccharose zu invertieren und Stärke zu verzuckern (~Skurti~ und ~Parozzani~). ~Elfstrand~ fand in den Samen zwei giftige Eiweißkörper (Toxalbumine, Agglutinine), +Crotonglobulin+ und +Crotonalbumin+, die er aus ihrem Gemisch [+Crotin+ (~Braun~)] isolierte. Sie verlieren durch Erhitzen ihre Giftigkeit. Crotin ist ein Plasmagift. Es greift die Stromata der Blutkörperchen gewisser Tiere an, bringt Milch zum Gerinnen, ist aber nicht fettspaltend. Verdauung im Brutschrank schwächt es nicht ab (~Kobert~). Schon ~Stillmark~ gab einen dem +Ricin+ ähnlichen Körper an. Die Eiweißkörper des Samens liefern bei der Hydrolyse: Arginin, Histidin, Lysin, Glutamin, Leucin, Phenylalanin usw. (S. 495). Zweifelhaft sind das giftige (dem Cascarillin ähnliche) Alkaloid Ricinin (~Tuson~ 1864) und Gummi. Das Alkaloid Crotonin (~Brandes~ = Tiglin ~Adr. de Jussieu~) ist zu streichen (~Weppen~). Es ist fettsaure Magnesia (~Soubeiran~). ~Elfstrand~ fand +kein+ Alkaloid. Die von ~Schlippe~ angegebene Angelicasäure ist Tiglinsäure, die flüchtige Jatrophasäure (~Pelletier~ und ~Caventou~, ~Buchner~) ist wohl kein Individuum. Sie soll mit der Crotonsäure (~Brandes~) identisch sein (s. unten). Die Asche der Schalen beträgt 2,6%, die der bei 100° getrockneten Kerne 3% (~Flückiger-Hanbury~). Das aus den Samen durch kalte Pressung der von der Schale befreiten Samen in Vorderindien gewonnene =Crotonöl=, =Oleum crotonis=, (Granatillöl, huile de croton, Croton oil, olio di crotontiglio, crotonolie, κροτωνέλαιον) ist gelb bis gelbbraun und enthält folgende Säuren teils frei, teils in Form von Glyceriden: +Stearinsäure+, +Palmitinsäure+, +Myristicinsäure+, +Laurinsäure+ (~Schlippe~), +Valeriansäure+, +Buttersäure+, +Essigsäure+ (~Geuther~ und ~Frölich~), +Ameisensäure+ (~Schmidt~ und ~Berendes~), +Ölsäure+ (? ~Schlippe~, ~Benedict-Ulzer~) und +Tiglinsäure+ (nach ~Schmidt~ und ~Berendes~ = +Methylcrotonsäure+ von ~Frankland~ und ~Duppa~), andere (~Geuther~, ~Buchheim~) geben auch +Oenanthylsäure+, +Capronsäure+, +Crotonoleïnsäure+ (? ~Robert~ und ~Siegel~) und höhere Glieder der Ölsäurereihe (~Schmidt~ und ~Berendes~) an. Beim Destillieren mit Soda entsteht Oenanthol (~Stillé~ und ~Maisch~). Beim Stehen scheidet sich ein Stearin ab, an der Luft verdickt sich das Öl, bei der Elaidinprobe bleibt es flüssig (die Anwesenheit von Ölsäure ist also wenig wahrscheinlich, ~Lewkowitsch~). Das Öl zeigt folgende Konstanten (~Dulière~, ~Lewkowitsch~, ~Javillier~, ~Wijs~): spez. Gewicht bei 15° = 0,9437 (bei 100°: 0,8874), bei einem Öl das zu 53,4% in Alkohol löslich war: 0,9375, bei einem zu 24,4% löslichen: 0,9428. Pharm. helv. IV: 0,940-0,950, D. A. V: 0,940-0,960. Oleum Crotonis, welches auf den Philippinen gepreßt worden war, zeigte ein geringeres spez. Gewicht und war von geringerer Reizwirkung als hier gepreßtes (~Gehe~ 1898). Löslichkeit in Alkohol (92%): 1 : 63, Erstarrungspunkt -16° (~Schädler~), Brechungsexponent (bei 40°): 1,4710-1,4724 (Ph. helv. IV), Oleorefraktometerzahl bei 22°: +35, Säurezahl (nach ~Bürstyn~): 21,8, bei gepreßtem Öl: 27,3, Verseifungszahl meist: 210,3 bis 215,6 (nach Ph. U. S. bis 218), Verflüssigung der Fettsäuren bei 16,4-16,7°, Hehnerzahl: 88,9-89,1, Reichert-Meißlzahl: 12,1-13,56, Jodzahl (nach 2 Stunden): 100,37-101,91 (nach 24 Stunden): 103,63-104,39 (~Dulière~), 106,6-109,1 (~Wijs~), 101,7-104,7, selten 122,3 (~Lewkowitsch~), Acetylzahl des Öls: 38,64, Jodzahl der Fettsäuren: 111,23-111,76, Erstarrungspunkt der Fettsäuren: 18,6-19, Säurezahl derselben: 201 (~Benedikt~). Das durch kalte Pressung erhaltene Öl stimmt ziemlich mit dem durch Petroläther extrahierten überein, dagegen unterscheiden sich die Öle, die durch heiße Pressung oder Ätherextraktion gewonnen wurden, ziemlich von jenen -- schon in der Farbe. Folgende Tabelle läßt dies erkennen: +-------------------+----------+------------+------------+----------- | | Durch | Durch | Durch | | | Pressen | Äther | Alkohol |Handelsware | | gewonnen | ausgezogen | (95%) | | | | | ausgezogen | +===================+==========+============+============+=========== |Jodzahl (~Hübl~) | 109 | 108 | 92,2 | -- |Verseifungszahl | 192,9 | 194,5 | 260,6 | 205,6 |Säurezahl | 27,3 | 30,9 | 60,1 | -- |Gefrierpunkt | -7° | -7° | -8° | -- |Ausbeute an Öl in %| 12,5 | 38 | 12 | -- Durch Schütteln mit Weingeist wird das Öl in einen scharfschmeckenden, in Alkohol gehenden und einen fast geschmacklosen Anteil zerlegt (~Nimmo~ 1823). In weniger als einem Teile absoluten Alkohol ist das gepreßte Öl löslich. Bei Zusatz größerer Mengen Alkohol tritt Scheidung ein. Beim Erhitzen auf 75° löst sich 1 Vol. Öl in 2 Vol. Abs. Alkohol (~Javillier~). In 55-60 T. (36 ~Schädler~) Alkohol löst es sich, wenn frisch, klar, ebenso in Äther, Chloroform, Schwefelkohlenstoff und flüchtigen Ölen. Es löst sich auch in Petroläther (Unterschied von Ricinusöl). Crotonöl wird durch Schwefelsäure braun. Beim Behandeln mit kolloiden Metallen der Platingruppe geht Crotonöl in einen rötlichen, nicht mehr wirksamen Talg über, der bei 49-51° schmilzt (~Paal~ und ~Roth~). Crotonöl zeigt sowohl hautreizende, wie abführende Eigenschaften. ~Buchner~ und ~Brandes~ schreiben die Wirkung der flüchtigen +Crotonsäure+ (= Jatrophasäure ~Pelletier~, nicht = Crotonsäure ~Schlippe~) zu, deren Dämpfe heftig die Haut und die Schleimhäute reizen. ~Senier~ glaubte (1883) den purgierenden Körper von dem hautreizenden, pustelerzeugenden trennen zu können, diesen in dem alkohollöslichen, jenen in dem alkoholunlöslichen Anteile des Öls suchen zu müssen (6 Öl + 7 Alkohol), aber es ist noch heute fraglich, ob nicht beide Wirkungen auf die gleiche Substanz zurückzuführen sind. ~Buchheim~ (1873), sowie ~Kobert~ und ~Hirschheidt~ (1888) hielten die ölige +Crotonölsäure+ für die wirksame Substanz des Crotonöls, die nicht als Glycerid, wohl aber als freie Säure sowohl haut- wie darmreizende Wirkung besitzen sollte. Diese Säure ist aber sicher ein Gemisch, wohl einer harmlosen Fettsäure mit einer sehr giftigen harzartigen Substanz. Also nicht die +Crotonölsäure+ (C₁₀H₁₈O₃, ~Siegel~) bzw. das zu 4% angegebene +Crotonol+ [C₉H₁₄O₂ (?), ~Schlippe~] ist der wirksame Bestandteil, sondern vielleicht ein in ihr enthaltener harzartiger Körper, der durch Soda verändert wird. Diese blasenziehende Substanz nennen ~Dunstan~ und ~Boole~, die die Crotonölsäure als ein Gemisch betrachten, +Croton resin+. Sie geben ihr die Formel (C₁₃H₁₈O₄)₂ bzw. C₂₆H₃₆O₈ und halten sie für ein Lakton komplizierter Struktur. Sie bildet ein gelbliches, amorphes, in Wasser unlösliches Harz, ist also auch wohl noch kein reiner Körper. Bemerkenswert ist, daß die oben genannten Toxalbumine in das Öl übertreten, so daß auch sie an der giftigen Wirkung des Öls beteiligt sein können. Der giftige Bestandteil ist also noch nicht mit Sicherheit ermittelt. Die älteren Forscher sahen ihn in einer +flüchtigen+ Substanz und in der Tat reizen die Dämpfe erhitzten Crotonöls die Haut und die Schleimhäute heftig. =Lit.= ~Brandes~, Chem. Unters. d. Samen v. Croton Tigl. Arch. Pharm. 1823, 173 (dort die ältere Lit.). -- ~Weppen~, Lieb. Ann. 76 (1849), 254. -- ~Buchner~, Leichte Darstell. d. Jatrophasäure. Rep. d. Pharm. 19, 185. -- ~Tuson~, Journ. chem. soc. 1864, 195. -- ~Dunlap~ u. ~Seymour~, Journ. am. chem. soc. 1905, 935. -- ~Scurti~ u. ~Parozzani~, Gazz. chim. ital. 1907, I, 476 u. 486. -- ~Stillmark~, Arbeit. d. pharmak. Inst. Dorpat III, 1889. -- ~Hirschheidt~, Ebenda IV, 1890. -- ~Siegel~, Ebenda. -- ~Elfstrand~, Über giftige Eiweiße, Upsala 1897 (Jahresb. d. Pharm. 1897, 105). -- ~Braun~, Crolin. Ber. d. chem. Ges. 1903, 3004. +Öl+: ~Pelletier~ u. ~Caventou~, Nouv. journ. de méd. 2 (1818), 172 (Journ. pharm. 4). -- ~Schlippe~, Lieb. Ann. 35 (1840), 307 u. 105 (1858) 1 (Wittsteins Vierteljahrsschr. 1858). -- ~Buchheim~, Über die scharfen Stoffe. Vierteljahrsschr. 22 (1873), 485. -- ~E. Schmidt~ u. ~Berendes~, Z. Kenntn. d. flücht. Säuren d. Crotonöls. Lieb Ann. 191 (1878) 94. -- ~E. Schmidt~, Ber. d. chem. Ges. 1877, 835. -- ~Frankland~ u. ~Duppa~, Lieb. Ann. 136, 9. -- ~Geuther~ u. ~Frölich~, Über d. flücht. Säur. d. Crotonöls. Zeitschr. f. Chem. N. F. 6 (1870), 26 u. 549. -- ~Senier~, The purgative princ. of croton oil und the vesicating principle of croton oil. Pharm. Journ. 1878, 8, 705 und 1883, 14, 446. -- ~Zinnel~, Am. journ. pharm. 1890, 122. -- ~Robert~ und ~Siegel~, Bull. of pharm. 1893. -- ~Warrington~, Pharm. Journ. 6 (1865), 382. -- ~Soubeiran~, Nouv. trait. de pharm. II, 54. -- ~Kobert~, Chem. Zeit. 1887, 416. -- ~Dunstan~ and ~Boole~, Croton oil an enquiry into the nature of its vesicating constituent. Pharm. Journ. 1895, 45, 5 (Proc. Roy. Soc. 1895, 238). -- ~Javillier~, Note sur l’huile de croton. Journ. pharm. 1898, 7, 524. -- ~Paul~ und ~Roth~, Ber. d. chem. Ges. 1909, 1541. -- ~Dulière~, Ann. pharm. Louvain 1899, 229. -- ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Schädler~ a. a. O. =Anwendung.= Das Crotonöl wird gewöhnlich zu den drastischen Abführmitteln gerechnet, da schon ein Tropfen (= 0,022 g. 45 gtt. = 1 g) starke Abführwirkung hervorruft (dos. max. 0,05!). Es gehört aber nicht eigentlich zu diesen. Denn die Wirkung ist die +Folge einer Vergiftung+ durch einen außerordentlich heftig wirkenden, auf der Haut Blasen ziehenden Stoff, der selbst die Verwendung des Öls als Pruriginans (Vesicans, Rubefaciens), wozu es bei der berüchtigten ~Baunscheidt~schen Behandlungsmethode (neben _Euphorbium_ und _Daphne Mezereum_) benutzt wird, nicht empfehlenswert erscheinen läßt. Das Malefizöl des Pfarrers ~Kneipp~ ist ein Gemenge von 1 T. Crotonöl und 6 T. Mandelöl. Fast alle Jahr hört man von bedenklichen Vergiftungen durch Crotonöl. Die Substanz sollte aus den Pharmakopoeen gestrichen werden. Ärzte bedienen sich ohnehin seiner kaum noch, nur in der Tierheilkunde wird es bei uns noch benutzt. Doch wird es von den Ärzten und dem Volke in Indien in mannichfacher Weise innerlich und äußerlich auch heute noch angewendet (Dict. econ. prod. of India), z. B. zur Herstellung des «poma cathartica» (aus Orangen). Auch die Anwendung des Crotonöls als Diureticum und Bandwurmmittel ist zu widerraten, da wir für beides bessere Mittel genug besitzen. Die Angabe von ~Radziejewski~ (Arch. f. Anat. Phys. u. wissensch. Med. 1870, 37), daß Crotonöl auch in die Haut eingerieben und in die Venen eingespritzt, drastisch wirke, hat keine Bestätigung erfahren (~Buchheim~). Beim Menschen können schon vier Samen tödlich wirken. In Frankreich ist 1901 eine Verfälschung der Jodtinktur mit Crotonöl beobachtet worden (~Durien~). Der von Fett und dem giftigen Prinzip befreite, sehr eiweißreiche Preßkuchen wird von ~Burkill~ (Ann. Rep. Indian Museum Calcutta 1908) als Diabetikernahrung empfohlen. =Lit.= ~Kobert~, Pharmakotherapie. -- ~Pereira~, Heilmittellehre. -- ~Durien~, Bull. sc. pharm. 1901. -- ~Ainslie~, Mat. med. -- Pharmacogr. indica. Das weiße Holz des Stammes -- _Lignum Pavanae_, _Panavae seu moluccanum_ -- schmeckt ebenfalls scharf und brennend und wirkt wie der Same, doch milder. Die Wurzel wird in der Heimat der Pflanze gegen Wassersucht angewendet. Sie purgiert wie auch die Blätter. =Prüfung.= Pharm. helvet. IV verlangt ein spez. Gewicht von 0,940-0,950. Ein Tropfen Crotonöl sinke in einer Mischung von 5,2 ccm Weingeist (90 vol. %) und 4,8 ccm Wasser unter und steige nach Beimischen von 1,4 ccm Wasser an die Oberfläche. 2 ccm Öl mit 1 ccm rauchender Salpetersäure und 1 ccm Wasser kräftig geschüttelt, dürfen nach einem Tage keine festen Ausscheidungen zeigen oder ganz erstarren. Das Verlangen (z. B. der Pharm. brit), das Öl solle neutral sein, ist schwer zu erfüllen. Die Handelsöle geben stets eine Säurezahl. Die Anwesenheit von Ricinusöl im Crotonöl verrät sich durch höheres spez. Gewicht, niedrigere Jodzahl und beträchtlich höhere Acetylzahl. ~Peckolt~ beobachtete das Curcasöl (s. unten) als Verfälschungsmittel. Crotonöl soll sich in 5 T. (Ph. helv. IV) bzw. 2 T. (D. A. V) abs. Alkohol bei Erwärmen lösen. Wird das Öl nicht in möglichst gefüllten Flaschen vor Licht geschützt, aufbewahrt, so wird es rasch braun. =Paralleldrogen.= Ähnlich werden in Indien die Samen von _Croton polyandrus_ ~Roxb.~ (_Baliospermum montanum_ ~Müll.-Arg.~) und von _Croton oblongifolius_ ~Roxb.~, die Kowli seeds, benutzt (~Flückiger-Hanbury~) und, wie es scheint, auch die Samen von _Croton oblongifolius_ ~Thwaites~ (_C. persimilis_ ~Müll.-Arg.~), wenigstens fanden sich solche 1896 im Handel (~Gehes~ Handelsbericht, ~Hartwich~). Die Samen von _Croton Pavana_ (oder _Parana_) ~Hamilton~ sollen fast noch heftiger als Crotonsamen wirken. (Einige betrachten _C. Pavana_ aber als Synonym mit _C. Tiglium_.) Über weitere Crotonarten vgl. ~Tschirch~ in Realenzyklop. d. Pharmac. IV, 178. ~Semler~ a. a. O., Dict. ec. prod. India und ~Dragendorff~, Heilpflanzen. Über die brasilianischen Crotonarten und ihre Verwendung ~Peckolt~, Ber. d. pharm. Ges. 1905. Die Samen von _Croton purgans_ ~Med.~ (_Jatropha Curcas_ L.), die besonders von den portugiesischen Kolonien und den Capverden kommen, wo die Pflanze Heckenpflanze ist (sie stammt aus Westindien und Neugranada), enthalten ein +Öl+ (Curcasöl, Purgiernußöl, huile de Pignon d’Inde, Curcas Oil, Purgingnut Oil, Physicnut Oil, olio di Curcas), das 10% feste Fettsäuren enthält und dessen flüssige Fettsäuren etwa zu gleichen Teilen aus Ölsäure und Linolsäure bestehen. Auch die Öle der Samen von anderen Euphorbiaceen, wie _Anda Gomesii_ ~Juss.~, _Hura crepitans_ L., _Aleurites triloba_ ~Forst.~ wirken abführend (~Buchheim~). =Lit.= ~Gehe~, Handelsbericht 1896. -- ~Hooper~, Crot. oblongifol. in Burma. Pharm. journ. 1904, 956. -- ~Klein~, Zeitschr. angew. Chem. 1898, 548. =Geschichte.= Die Crotonsamen waren den alten indischen Ärzten wohl bekannt und werden in den Sanskritwerken unter den Namen Jayapala, Tittiriphala und Kanakaphala erwähnt. In Bhavaprakasa wird eine Arzneimischung Mahanaracha rasa beschrieben, die besonders aus _Myrobalanen_, _Pulpa cassiae_, der Rinde von _Baliospermum axillare_ und _Picrorhiza Kurrova_, dem Milchsaft von _Euphorbia neriifolia_, der Wurzel von _Ipomoea Turpethum_, den Knollen von _Cyperus rotundus_ und _Crotonsamen_ bereitet wird (Pharmacogr. indica). Nach Persien gelangten die Samen von China, hießen daher Hab-el-khatai (Samen aus Kathay). Crotonsamen waren den alten Arabern bekannt und gelangten durch sie in die europäische Medizin. ~Serapion~ (I, S. 644), ~Avicenna~ und ~Ibn Baithar~ (I, S. 610) gedenken ihrer und der Benutzung als Purgans. Bei ~Serapion~ heißen sie Cataputhia minor = mendana, bei ~Ibn Sina~ dand el sini, auch dend oder dende, dend auch bei ~Ibn Baithar~, der ~Abu Choraidsch~, ~Honain~, ~Rhazes~ u. and. zitiert. ~Rhazes~, der indischen und chinesischen dend unterscheidet, sagt bereits: «Wenn dieses Arzneimittel nicht mit großer Umsicht genommen wird, so hat es tödliche Wirkung.» Crotonsamen sind seit 1578 in Europa bekannt, in welchem Jahre sie ~Christoval Acosta~ im Tractado (I, S. 738) als Piñones de Maluco (pini nuclei malucani) beschrieb und die Pflanze abbildete. Er sagt von den Samen «tambien las buenas mugeres de aquellas partes, amigas de sus maridos, les dā hasta quatro destos por la boca, para embiar a los pobretos al otro mundo» (~Hanbury~). Croton findet sich auch bei ~Cordus~ (I, S. 798). Die Pflanze wurde dann auch im Hortus Malabar. (I, S. 898) und in ~Rumpfs~ Herbar. amboinense t. IV p. 48-42 beschrieben und abgebildet. In ~Burmanns~ Thes. zeylanic. heißt sie _Ricinoides indica folio lucido, fructu glabro grana Tiglia officinis dicto_. Weitere Beschreibungen finden sich bei ~Dale~, (I, S. 938), in ~Triller~, Dispens. pharmac. univers. 1764, bei ~Geoffroy~ (~Garsault~ bildet sie ab), ~Pomet~ u. and. Die Samen, im XVII. Jahrh. offizinell und viel benutzt, wurden dann obsolet und erst wieder beachtet, als 1812 ~White~ und ~Marshall~, die ihre Anwendung von einem Parsen gelernt, in ~Ainslies~ Mat. med. of Hindoostan auf sie hinwiesen und das Öl, das schon ~Borellus~ 1657 beschrieb, durch die englisch-indischen Ärzte (~Conwell~, ~Perry~, ~Frost~ u. and.) empfohlen wurde (~Hanbury~). Namentlich ~Conwells~ Schrift Recherches sur les propr. méd. et l’emploi en méd. de l’huile de Croton Tiglium 1824 und ~Wilsons~ Empfehlung in den Transact. of the med. and phys. soc. of Calcutta I, 249 trugen viel zur Einführung des Öls bei, so daß Oleum Tiglii in die Londoner Pharmakopoëe 1824 und die U. S. Pharm. 1830 aufgenommen wurde. Die äußerliche Anwendung datiert besonders von ~Bambergers~ Schrift De olei crotonis externe adhibiti efficacia Berolin. 1833. Eine Zusammenstellung dir älteren medizin. Literatur bei ~Brandes~ im Arch. d. Pharm. 1823. Zu den +halbtrocknenden Ölen der Baumwollsamenölgruppe+ gehören ferner folgende Samenöle: Leindotteröl, deutsches Sesamöl von _Camelina sativa_. Kleesamenöl von _Trifolium pratense_ und _repens_. Sojabohnenöl von _Soja hispida_. Kürbissamenöl von _Cucurbita Pepo_. Wassermelonenöl von _Cucumis Citrullus_. Melonenöl von _Cucumis Melo_. Maisöl von _Zea Mais_. Daphneöl von _Daphne Gnidium_ u. and. Daphnearten. Weizenkernöl von _Triticum vulgare_ u. and. Daturaöl von _Datura Stramonium_. Bucheckernöl von _Fagus silvatica_. Kapoköl von _Eriodendron anfractuosum_. Citronenkernöl von _Citrus Limonum_ ~Risso~. Schwammkürbisöl von _Luffa aegyptiaca_. Paranußöl von _Bertholletia excelsa_. Sorghumöl von _Sorghum cernuum_. Coumonöl, Patavaöl von _Oenocarpus batana_ und _bacaba_. Pinotöl, Parapalmöl, Parabutter von _Euterpe oleracea_. Semen Rapae und Oleum Rapae. Rübsen und Rapssamen -- Rüböl. =Stammpflanzen und Systemat. Stellung.= =Brassica campestris= L. (B. Rapa L., B. asperifolia ~Lam.~). Der Rübsen, Rübenkohl mit der var. annua ~Koch~. (B. R. oleifera annua ~Metzg.~, B. R. ol. praecox ~Dc.~, B. campestr. ~Koch~, B. praecox ~Kitaibel~). Sommerrübsen, Sommerlevat und der var. β oleifera Dc. (B. Rapa oleifera Dc., B. R. ol. biennis ~Metzg.~, B. R. ol. hiemalis ~Martens~), Winterrübsen, Wintersaat, Rübsaat, Bivitz, Awehl, Navette. =Brassica Napus= L.> Der Raps, Reps, Rapskohl mit der var. annua ~Koch~ (B. N. oleifera annua ~Metzg.~, B. N. oleifera praecox ~Rchb.~), Sommerraps, Sommerkohlsaat und der var. β oleifera ~Dc.~ (B. N. oleifera biennis ~Rchb.~, B. N. ol. hiemalis ~Döll~), Winterraps, Winterkohlraps, Setzölsamen, Ölraps. -- Napus, νᾶπυ, ist wahrscheinlich ein ägyptisches Wort. +Cruciferae+ Sinapeae Brassicinae (Brassica), Sectio Eubrassica ~Prantl~. Der Großhandel unterscheidet +europäische Colza+ (von in Europa kultiviertem Raps und Rübsen) und +indische Colza+. Diese letztere stammt von verschiedenen Cruciferensamen und ist oft ein Gemenge, in dem _Sinapis glauca_, _Brassica juncea_, _S. dichotoma_ und _Eruca sativa_ dominieren (~Burchard~ und ~Kjaerskou~). Die Colza de Guzerat, Cawnpore gelb und Calcutta weiß besteht aus einer gelben und einer braunen Varietät von _Sinapis glauca_, Colza Cawnpore braun, Calcutta braun, Ferozépore und Pondichéry aus _Brassica juncea_ und _dichotoma_ mit etwas _Eruca sativa_. In der Colza bigarré von Bombay finden sich alle vorgenannten Samen. Andere Sorten, die als ostindischer Raps gehen, sind: Lalka-Tora, Piarka-Tora, Natua-Sarson, Ulti-Sarson, Jauda-Sarson, Seti-Sarishá, Makhan-Dhana-Sarisha und Rai. +Rai+ wird von _Brassica juncea_ ~Hook.~ f. et ~Thoms~, +Sarson+ von _B. glauca_ ~Roxb.~, +Tori+ von _B. Napus_ L. var. _dichotoma_ ~Prain~ abgeleitet (~Prain~, ~Wittmack~). =Beschreibung der Pflanzen und der Samen.= Der +Rübsen+ ist eine ein- (annua) oder zweijährige (hiemalis) Pflanze mit aufrechten, bis 1,25 m hohem, meist ästigem Stengel, grasgrünen, gestielten, leierförmig-fiederspaltigen, beiderseits steifhaarigen Grundblättern und blaugrün bereiften, unten leierförmig-gezähnten, oben mit tief-herzförmigem Grunde stengelumfassenden, ganzrandigen Stengelblättern. Blütentraube während des Aufblühens flach, die Knospen von den obersten, geöffneten, mittelgroßen, goldgelben Blüten überragt. Kelchblätter zuletzt wagerecht-abstehend, die kürzeren Staubfäden abstehend. Schoten auf abstehenden Fruchtstielen linealisch, allmählich in einen konischen Schnabel verlängert, fast aufrecht, holperig. Samen einreihig, kugelig, grubig punktiert. Der +Raps+ hat lauter blaugrüne Blätter, die Grundblätter leierförmig-fiederspaltig, die unteren stengelständigen leierförmig, die oberen länglich. Blütentraube schon während des Aufblühens verlängert, Knospen die obersten geöffneten, mittelgroßen, goldgelben Blüten überragend. Kelchblätter zuletzt aufrecht-abstehend. Schoten samt Fruchtstielen abstehend. Die Samen des +Rübsen+ messen 1-1,5 mm im Durchmesser. Ihre vorwaltend dunkelrot- bis schwärzlich-braune Oberfläche ist, mit der Lupe betrachtet, fein- oder flach-netzrunzelig (feiner als beim schwarzen Senf) und feinkörnig. Die Samen des +Raps+ sind größer, c. 2 mm, bläulich-schwarz, wie bereift. Es gibt außer den braunen auch helle Spielarten. 1886 kam unter dem Namen «Gelbsaat» ein weißer Rapssamen in den Handel, der als weißer Senf ausgegeben wurde (~Steffeck~). Die Sommervarietäten blühen im Juli-August, die Wintervarietäten im April-Mai des zweiten Jahres. ~Pathologie.~ Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Die wichtigsten Erkrankungen der Raps- und Rübsenpflanzen sind folgende: In den Wurzeln, besonders der rübenbildenden Varietäten, siedelt sich der Myxomycet _Plasmodiophora Brassicae_ an, der die als «Kropf» oder «Hernie» bekannten Geschwülste bedingt. Der sog. «Rapskrebs» wird von einer _Sclerotinia_ hervorgerufen, welche im Mark und Rindengewebe des Stengels ihre kleinen, schwarz berindeten, knöllchenförmigen Sclerotien bildet. -- Verschiedene Pilze siedeln sich auf den Blättern an: die beiden auf Cruciferen verbreiteten Peronosporeen _Albugo candida_ und _Peronospora parasitica_, erstere kleine milchweise Epidermisauftreibungen, letztere einen weißlichen Schimmelanflug bildend; beide können auch auf die jungen Schoten übergehen. Blattflecken werden hervorgerufen von _Sphaerella brassicicola_, _Phyllosticta Brassicae_ und _Napi_, _Cercospora Bloxami_. Einer der schädlichsten Parasiten ist der «Rapsverderber» _Alternaria Brassicae_ (~Berk~) ~Sacc.~ (_Polydesmus exitiosus_ ~Kühn~). Er ruft die sog. Schwärze hervor, welche darin besteht, daß auf den Blättern und besonders auch auf den Schoten kleine schwarzbraune Flecken auftreten, dann aber auch das umgebende Gewebe vertrocknet. Auf _Brassica Napus_ sind endlich auch Bakterienkrankheiten beschrieben worden: die eine derselben wird als Weißfäule bezeichnet, die andere ist die sog. Braunfäule, welche sonst hauptsächlich auf _Brassica campestris_ vorkommt. (Näheres vgl. in ~Sorauers~ Handbuch der Pflanzenkrankheiten 3. Aufl., Bd. 2, p. 47 ff.) Über die +tierischen Schädlinge+ berichtet Herr ~Israël~: An _Brassica oleracea_ L., _Napus_ L., _nigra_ ~Koch~, _Sinapis_, _Raphanus_arten und verwandten Pflanzen leben sehr viele Insektenarten. Es seien erwähnt: +Käfer+: _Haltica oleracea_ L., _flexuosa_ ~Ill.~, _nemorum_ L., _Psylliodes chrysocephala_ L. schädlich an _Brassica_- und _Sinapis_arten. _Meligethes aeneus_ ~Fabr.~ Die Larven dieses Käfers, die in den Schoten leben, verwüsten oft ganze Rapssaaten. Der Käfer frißt Blätter und Blüten. _Balaminus brassicae_ ~Fabr.~ und andere schwer bestimmbare _Balaminus_arten leben als Larven in den Schoten von vielen Cruciferen und anderen Pflanzen. _Baridius chloris._ ~Fabr.~ und andere _Baridius_arten leben in den unteren Stengelteilen von _Brassica Napus_ usw. _Ceutorhynchus erysimi_ ~Fabr.~ _floralis_ ~Payk.~, _sulcicollis_ ~Gyll.~ und viele andere Glieder der sehr artenreichen _Centorhynchus_gattung leben auf Raps und anderen Cruciferen, die Larven in den Stengeln oder Früchten. _Sulcicollis_ erzeugt an den Wurzeln Coleopterocecidien (Wurzelgallen). +Falter+: _Pieris brassicae_ L., _Rapae_ L., _Napi_ L. Raupen an _Brassica_arten usw. _Agrotis segetum_ W. V. Raupen nicht nur an Getreidewurzeln, sondern auch an denen des Rapses und anderer Pflanzen. _Mamestra brassicae_ L., _oleracea_ L. und sehr viele andere Eulenraupen leben an allen möglichen Kohlarten. _Botys extimalis_ ~Sc.~ Die Raupe dieser Pyralide lebt in den Schoten des Rapses und Rettigs usw. +Fliegen+: _Sargus formosus_ ~Scop.~, _Tipula oleracea_ L., _Ocyptera brassicaria_ ~Fabr.~ Die Larven dieser Fliegen leben in den Knollen von _Brassica_ usw. _Anthomyia brassicae_ ~Bouché~, Larve in den Stengeln von Kohlarten. _Cecidomyia brassicae_ ~Winn.~, Larve in den Schoten von _Brassica_- und _Sinapis_arten. =Kultur und Handel.= In Europa werden Raps und Rübsen, die wohl aus Südeuropa stammen, besonders in Deutschland, Rußland, Ungarn, England und Italien, in Frankreich und Belgien besonders Winterraps gebaut. +Es sind die bei uns am meisten kultivierten Ölpflanzen.+ Raps liebt ein gemäßigtes, mehr warmes und feuchtes Klima, Rübsen gedeiht auch in trockenem, rauhem Klima auf leichterem Boden, liefert aber 10% weniger Ertrag. Die indische _Colza_ wird in den Nordwestprovinzen, Pendschab, Cawnpore, Guzerat, Calcutta und Bombay, gebaut. Die Ausfuhr von Rapssamen (rape) aus +Ostindien+ betrug 1908/9: 40064 cwts. Die Ausfuhr von Mustard- oder Rape oil betrug 1906/7: 273684 Gals, 1907/8: 273465 Gals, 1908/9: 170675 Gals. =Anatomie.= Die Samenschale des Rübsen und Raps, die ähnlich der des schwarzen Senf (s. d.) gebaut ist, zeigt, von der Fläche betrachtet, bei schwacher Vergrößerung ein Maschennetz. Die verdickten Teile der radialen Sklereïdenwände erscheinen im Querschnitt ungleich hoch oder fast gleich hoch (ostind., die indischen Samen zeigen denn auch ein deutlicheres Maschennetz, ~Kinzel~). Die schmale Schleimepidermis quillt nicht oder wenig. Die Samen umgeben sich daher, in Wasser geworfen, nur mit einer sehr schmalen Schleimhülle. Nur in der Höhe des verdickten Teiles der Sklereïden, dem Durchmesser und dem Rande derselben -- ob gerade oder krumm -- machen sich Unterschiede bemerklich (Details bei ~Oliva~). Das Lumen der Sklereïden erscheint, von der Fläche betrachtet, beim Rübsen enger wie beim Raps (~Harz~). Eine Pigmentschicht ist deutlich. Die lappigen, Globoide führenden Aleuronkörner sind am größten bei den Solitären des Winterraps. =Chemie.= Die Zusammensetzung der Samen ist im Durchschnitt: -----------+------+-----------+-------+---------------+--------+------ |Wasser|Stickstoff-| Fett |Stickstofffreie|Rohfaser|Asche | | subst. | |Extraktstoffe | | ===========+======+===========+=======+===============+========+====== Raps | 7,28 | 19,55 | 42,23 | 20,78 | 5,95 | 4,21 Rübsen | 7,86 | 20,48 | 33,53 | 24,41 | 9,91 | 3,81 Indian Rape| 5,90 | 22,67 | 41,20 | 15,66 | 10,08 | 4,49 Bei der Spaltung des Glykosids entsteht hier Crotonylsenföl C₄H₇NCS (~Stein~). Das =Rüböl= (Kohlsaatöl, Colzaöl, huile de colza, Rape oil, Colza oil, Olio di colza, Raapolie, κραμβέλαιον) wird meist nicht nach den Stammpflanzen als +Rapsöl+ (huile de navette, Rape oil) und +Rübsenöl+ (huile de rabette, Rubsen oil) unterschieden. Es wird in der Weise gewonnen, daß die Samen zwischen Walzen gemahlen werden und das Mehl gepreßt oder mit Schwefelkohlenstoff oder Petroläther extrahiert wird. Das extrahierte ist reiner, aber der Extraktionsrückstand ist nicht als Viehfutter oder doch nur in Mischkuchen zu verwenden. Die Samen enthalten 33-43 (resp. 50)% Öl. Beim Pressen erhält man 30-33% beim Winterraps, beim Rübsen 16-18%. Das rohe Öl ist dunkel. Es wird meist mit 1% Schwefelsäure raffiniert. Dies Öl ist hellgelb, riecht charakteristisch und schmeckt unangenehm herbe. In 100 T. Alkohol lösen sich 0,534 T. ~König~ gibt die elementare Zusammensetzung des Rapsöls zu C = 77,91-78,20, H = 12,02-12,08, O = 9,72-10,07%, die des Rübsenöls zu C = 77,21, H = 13,36, O = 9,43% an. Rüböl enthält 1,02 (oder weniger) feste Fettsäuren (~Tolman~ u. ~Munson~), +Arachinsäure+ und +Lignocerinsäure+ (das Gemisch beider = rohe Arachinsäure [~Ponzio~, ~Archbutt~] oder Behensäure [~Reimer~ und ~Will~]), von ungesättigten Fettsäuren: +Erucasäure+ und +Rapinsäure+ und wohl auch Säuren der +Linol-+ und +Linolensäurereihe+. Das «Stearin» ist fast reines Trierucin (~Lewkowitsch~) bzw. Dierucin (~Reimer~ und ~Will~). Das Unverseifbare bilden die +Phytosterine+: +Brassicasterin+ (C₂₈H₄₆O) und +Sitosterin+ (? ~Welsch~). Es beträgt 0,5-1%, selten mehr, nie über 2% (~Lewkowitsch~). Technisches Rüböl enthält freie Fettsäuren (0,7-6,64% auf Ölsäure berechnet). Europäische Rüböle zeigen, gleichviel welcher Provenienz, große Übereinstimmung. Die Unterschiede, die ~Schädler~ von den Ölen der vier Varietäten angibt, sind nicht durchgreifend, übrigens auch sehr gering. Das spez. Gew. ist = (0,9112) 0,9132-0,9175 (meist nicht über 0,916, ~Lewkowitsch~), der Erstarrungspunkt liegt bei -4 bis -6°, die Verseifungszahl ist 167,7 (~Crossley~ und ~Le Sueur~) bis 179 (~Allen~), meist 171-176 (~Lewkowitsch~), die Jodzahl 98,1-103,6 (~Lewkowitsch~), selten bis 105, die Reichertzahl 0-0,79 (~Crossley~), die Hehnerzahl 94,56-96,3, Maumenéprobe 49-64° C. Das ostindische Rüböl (Colzaöl) zeigt ein spez. Gew. 0,9141-0,9171, Verseifungszahl 169,4-173,4, Jodzahl 94,1-104,8, Reichert-Meißlzahl 0-0,79, Hehnerzahl 94,56-96,3, Säurezahl 1,42 bis 2,57 (~Crossley~ und ~Le Sueur~). Altes Rüböl zeigt hohe Acetylzahlen (14,7-41,7, ~Gripper~). Die Fettsäuren zeigen den Erstarrungspunkt 17-18,5°, Schmelzpunkt 16-22°, Jodzahl 96,3 bis 105,6, Acetylzahl 6,3, die flüssigen Fettsäuren eine Jodzahl von 114,3-125,5. Rüböl verdickt sich beim Stehen und wird ranzig, jedoch ohne zu trocknen. Es steht also zwischen den halbtrocknenden und den nicht trocknenden. Die rohen Cruciferenöle sind alle schwefelhaltig (143-240 mgr S. im Liter Öl), jedoch sollen kaltgepreßte und gut raffinierte Rüböle keinen Schwefel enthalten, wohl aber bisweilen die mit CS₂ extrahierten. =Verfälschungen.= Rüböl wird mit Leinöl, Hanföl, Mohnöl, Leindotteröl, Baumwollsamenöl, Ravisonöl, Hederichöl, mit Fischölen und Tranen, Mineralöl, Harzöl und Walratöl verfälscht. Über deren Nachweis vgl. bei ~Lewkowitsch~. =Anwendung.= Rüböl wird besonders als Brennöl und Schmieröl, seltener als Speiseöl und zur Margarinebereitung und in der Pharmacie (als Olivenölersatz, wozu es nicht immer brauchbar ist) und zur Seifenfabrikation benutzt. Es ist schwer verseifbar und wird leicht ranzig. Rüböl wird viel als Wanzenvertilgungsmittel benutzt. (Wanzen werden durch jedes Öl fast sofort getötet: sie ersticken darin.) =Lit.= ~Prantl~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien. -- ~Luerssen~, Mediz. pharm. Bot. -- ~Harz~, Landw. Samenk. -- ~T. F. Hanausek~ in ~Wiesner~ Rohstoffe, II. Aufl. -- ~Oliva~, Vgl. Anat. u. entwicklungsgesch. Unters. über d. Cruciferensamen (Bern 1905). Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1905 (dort d. anatom. Detail m. Abbild.). -- ~Hartwich-Vuillemin~, Beitr. z. Kenntn. d. Senfsam. Apoth. Zeit. 1905. -- ~König~, Nahrungs- u. Genußm. -- ~Gross~, Stud. über d. Rapspfl. Öster.-ung. Zeitschr. f. Zuckerind. 1900. -- ~Schröder~, Unters. d. Sam. d. Brassicaart. Landwirtsch. Versuchsstat. 14, 1871. -- ~Sempolowski~, Diss. Leipzig 1874. -- ~Collin-Perrot~, Residus industriels (Anatomie und Zusammensetzung des Preßkuchen). -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. (dort d. chem. Liter.). -- ~Schädler~ a. a. O. -- ~Mikosch~, Pflanzenfette in ~Wiesner~ Rohstoffe, II. Aufl. -- ~Steffeck~, Landw. Versuchsstat. 33 (1886), 411. -- ~Welsch~, Sterine. Diss. Freiburg i. B. 1909. -- ~M. Schmitt~, Sind Rapskuch. infolge zu hohen Senfölgehalt. schädlich? Diss. Bern 1909 (dort d. Lit.). Die indischen Colzasorten bei ~Burchard~, ~Prain~ und ~Kinzel~, Journ. f. Landw. 1894 u. 1896. Zu den +halbtrocknenden Ölen der Rübölgruppe+ gehören ferner folgende Samenöle: Ravisonöl, Black sea rape oil von einer südrussischen wilden Varietät von _Brassica campestris_. Hederichöl von _Rhaphanus Rhaphanistrum_. Schwarzsenföl von _Brassica nigra_. Indian mustard oil von _Brassica juncea_. Weißsenföl von _Sinapis alba_. Jambaöl von einer _Brassica-Varietät_. Ackerrettichöl von _Sinapis arvensis_. Rettichöl von _Raphanus sativus_. Gartenkressensamenöl von _Lepidium sativum_. Leindotteröl von _Camelina sativa_. Rotrapsöl, huile de julienne von _Hesperis matronalis_. Das _Ol. sinapis pingue_ aus holländ. schwarz. Senf ist ein gutes Öl für pharmazeutische Zwecke (~Schaumann~, Ph. Zeit. 1910, 160). Die Cruciferenöle enthalten alle Erucasäure. Die Gruppe des Arachisöls bildet den Übergang zu den nichttrocknenden Ölen. Fructus Arachidis und Oleum Arachidis. =Syn.= Erdnuß, Erdeichel, Erdmandel, Erdpistazie, Erdbohne, Schokoladenwurzel, Mandubibohne. Aschantinuß -- pistache de terre, noix de terre, arachide -- ground nut, pea nut, monkey nut, manila nut, earth nut, -- grondnooten. In Brasilien: mundubi. Auf den Capverden: mancarra. In Spanien und Südfrankreich: cacahuete. In Indien: buchanaka (Sansk.), múng phali, viláyetí-múng (hind.). In China: loh-hwa-sang. =Beschreibung der Stammpflanze und der Droge.= Die zu den Luguminosae -- Papilionatae -- Hedysareae -- Stylosanthinae gehörige, nicht in Afrika (~Flückiger~, ~Schweinfurth~, ~Willkomm~, ~Peters~), sondern in Süd-Amerika (Brasilien) einheimische, jetzt in vielen tropischen und einigen subtropischen Gegenden kultivierte, wild nicht bekannte, vielleicht eine Kulturform von _Arachis prostrata_ darstellende Stammpflanze der Erdnuß, =Arachis hypogaea= L. Spec. plant. ed. I, 741 (_A. asiatica_ ~Lour.~), ist ein einjähriges Gewächs, dessen Wurzeln zahlreiche stickstoffbindende Wurzelknöllchen bildet und bis 1 m lange, auf dem Boden ausgebreitete Stengel besitzt. Die verkehrt eiförmigen, stumpfen Fiedern der Blätter sind gewimpert. Die langgestielten, einzeln oder zu zweien in den Blattachseln stehenden gelben Blüten sind zweierlei Art. Die oberen sind unfruchtbar und fallen später ab, die in der Nähe des Bodens befindlichen dagegen fruchtbar. Nach der Befruchtung verlängert sich der Fruchtstiel, bisweilen bis auf 20 cm, und bohrt die junge Frucht in den Boden (Fig. 183). Hier, also unterirdisch, entwickelt sich die Frucht zur Reife (daher _hypogaea_ und +Erd+nuß). Die Pflanze lockt in Indien zur Blütezeit große Mengen roter Ameisen an, die den Boden rings um die Pflanze auflockern und so das Eindringen der Fruchtknoten erleichtern (~Watt~, Dict. econ. prod.). In Spanien liefert eine Pflanze bisweilen 80-100 Früchte. Die +Hülsen+ liegen zur Reifezeit bis 10 cm unter dem Boden und müssen daher ausgepflügt oder ausgehackt werden. Sie sind einfächerig, enthalten aber bisweilen mehr wie einen (2-3, selten bis 5) Samen (Fig. 183, rechts) und sind alsdann zwischen diesen eingeschnürt. Auf der graugelblichen bis strohgelblichen Oberfläche sind die nicht aufspringenden, 2-4 cm langen, walzlichen Früchte mit Netzleisten versehen, die bei den Varietäten verschieden stark hervortreten, bei var. _vulgaris_ z. B. oft verwischt, bei var. _reticulata_ (Fig. 183) stark entwickelt sind, und in denen die von viel sklerotischen Fasern begleiteten Bündel liegen (~Moeller-Winton~). An der Spitze tragen sie eine Griffelnarbe (callus stigmatiformis). Die +Samen+ sind länglich-zylindrisch oder länglich-eiförmig, 6-18 mm lang, 3-6 mm breit, am einen Ende, dort wo Hilum und Radicula liegt, schief und kurz gescheitelt, am anderen (an der Chalaza) gewölbt oder schief abgeflacht (~Hanausek~). Unter der Spitze liegt der Nabel, von dem die Raphe zur Chalaza läuft. Hier gabelt sich das Bündel und seine sechs Äste kehren in der Samenschale in regelmäßigen Abständen zur Spitze zurück. Die nicht ablösbare braune Samenschale besitzt eine Epidermis, deren braune Zellen zahlreiche, von der Außenwand in das Lumen weit vorspringende gerade oder gekrümmte, schmale oder breite Zapfen zeigen, so daß sie, besonders von der Fläche betrachtet, ein +sehr eigenartiges, für die Erdnuß charakteristisches, kammartig gezähntes Bild darbieten+ (Abbild. bei ~Vogl~ und ~Hanausek~). Die breite Nährschicht besteht in ihren inneren Schichten aus einem obliterierten Sternparenchym, in dem die zahlreiche Spiralgefäße führenden Gefäßbündel verlaufen. Die innere Epidermis ist erhalten. An sie schließt sich eine schmale Schicht an, die als ein Nucellarrest betrachtet wird. Das Gewebe der dickfleischigen, leicht auseinander fallenden Cotyledonen ist von einer Spaltöffnungen führenden Epidermis bedeckt und besteht aus großen, relativ dünnwandigen, getüpfelten Zellen, die Interzellularen zwischen sich lassen und neben Ölplasma, 3-15 mik. große +Stärkekörner+ und 4-13 mik. große, oft ziemlich unregelmäßige, globoidführende +Aleuronkörner+ enthalten. Das Vorkommen von Stärke +und+ Aleuron in derselben Zelle ist sehr charakteristisch für die Erdnuß. [Illustration: Fig. 183. _Arachis hypogaea._ [Aus +Sadebeck+, Kulturgewächse der deutschen Kolonien.]] =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: In Java, in Indien, in Deutsch-Ostafrika tritt eine Krankheit der Erdnuß auf, welche von _Septogloeum Arachidis_ ~Raciborski~ hervorgerufen wird. Die Blätter bekommen dunkle, gelbumsäumte Flecken und fallen dann ab, die Früchte schrumpfen zusammen und werden wertlos. Weniger wichtig sind andere auf den Blättern auftretende Parasiten: _Cercospora personata_ (~Berk.~ et ~Curt.~) ~Ell.~, _Puccinia Arachidis_ ~Speg.~ und _Uredo Arachidis_ ~Lagh.~ -- Sehr verderblich ist nach ~Karosek~ (Gartenflora 1904) in Deutsch-Ostafrika eine der Mosaikkrankheit des Tabaks ähnliche Erkrankung (~Zimmermann~, Pflanzer 1907). Einer anderen gedenkt +Braun+ (a. a. O.). =Kultur und Handel.= _Arachis hypogaea_ gehört zu den wichtigeren Kulturpflanzen der Tropen, die nicht allzu große Ansprüche stellt und einen leichten aber kalkhaltigen (~Sadebeck~ 1877) Boden, sowie viel Wärme verlangt. Trockner Sand gibt die hellsten, humusreicher, feuchter Boden dunkle Samen. Die Samen keimen nach 8-14 Tagen, die Früchte sind nach 4-5 Monaten reif. Das Enthülsen der Samen geschieht bei großen Betrieben (z. B. in Amerika) mit Maschinen. Die Fruchtschalen dienen als Brennmaterial. Der Versand geschieht in Säcken. Im Kleinbetrieb liefert der Hektar 1500-1800 kg, im Großbetrieb viel mehr. Das wichtigste Exportland ist +Westafrika+, besonders die französischen Kolonien. Senegambien liefert aus dem Norddistrikt (Rufisque, Cayor, Galam) die besten, weniger gute aus dem Süden (Kapamanze), die schlechtesten kommen aus Sierra Leone und Lagos. Man unterscheidet die guten Cayor- von den weniger gutes Öl gebenden Galam-Nüssen. Ausfuhrplätze sind: Galam, Cayor, Rufisque, Gorea, Albreda, Gambia, Sedhiou, Carabana, Casamance und Rio Nunez. Ferner liefert der Sudan, die Gegend des Tsadsees, Darfur, die Mombattuländer, Ostafrika, Sansibar, Mosambique viel Erdnüsse. Sehr bedeutend sind die Kulturen in Ostindien (Coromandel, Madras, Südindien, Bengalen, Bombay), Franz.-Indien und in Nordamerika (Virginien, Georgia, Tennessee, Nord-Carolina), wo die Kulturen bis 40° n. B. reichen, geringeren Umfang haben sie in Cochinchina, Burma, China, Japan und den Sundainseln, sowie den Antillen, Mexiko, Brasilien, Argentinien, Portugies. Ost- und Westafrika und den deutsch-afrikanischen Besitzungen (Togo, Kamerun, Deutsch-Ostafrika). Relativ unbedeutend sind sie in Ägypten, Tunis, Algier, Spanien, Portugal, Südwestfrankreich und Unteritalien. Aus den Tropen gelangen nach Europa meist die ungeschälten Erdnüsse, da die geschälten leicht verderben, schimmeln und ranzig werden. Haupteinfuhrhäfen sind Marseille, Hamburg, London, Liverpool, Rotterdam und Triest. Die Produktion an Erdnuß ist enorm. +Indien+ allein exportierte 1907/08: 1524055, 1908/09: 1513364 cwts groundnuts und 1908/09: 93034 gals groundnut oil. +Nordamerika+ 1907: 6386012, 1909: 5501107 lbs peanuts. +Frankreich+ importierte 1901: 120400208 kg graines d’arachides entières und 58132221 kg Arach. décortiquées, +Marseille+ 1908: 85,6 Mill. kg A. décort. und 102 Mill. kg A. ent. Die Ölmühlen Frankreichs verarbeiten jährlich mehr wie 100000 t Erdnüsse (~Collin~). +Deutschland+ importierte 1910: 69,13 Mill. kg, +Hamburg+ 1909: 19,54 Mill. kg Erdnüsse. =Chemie.= Geschälte Erdnüsse (d. h. die Samen) enthalten im Mittel in Prozenten: Wasser 7,48, Stickstoffsubstanz 27,52, Fett 44,49, stickstofffreie Extraktstoffe 15,65, Rohfaser 2,37, Asche 2,49 (in der Trockensubstanz 48,09% Fett). +Der Eiweißgehalt übertrifft den der Erbse und Bohne.+ Erdnüsse enthalten viel +Stärke+ (s. oben), 4-5% der Stickstoffsubstanz sind in Form von Amiden vorhanden. Nachgewiesen ist darin +Vernin+ (im Embryo) und +Arginin+ (~Schulze~ und ~Castoro~), +Cholin+, +Lecithin+, +Conglutin+ (~Ritthausen~), von Enzymen besonders eine sehr aktive +Lipase+ (~Dunlap~ und ~Seymour~), +Saccharose+ (~Burckhard~), angeblich auch ein nicht giftiges Alkaloid (Arachin -- vielleicht Cholin?). Der +Pentosangehalt+ beträgt 4,12% (~Wittmann~). Apfelsäure (~Payen~ und ~Henry~) ist zweifelhaft. Der Ölgehalt des Samens schwankt außerordentlich. Tropische Erdnüsse enthalten bis 55, subtropische oft nur 20%. ~Sadtler~ fand in Erdnüssen vom Senegal 51, vom Kongo 49, von Ostafrika 49, von Bombay 44, von Madras 43, von Amerika 42% Öl. 43 bis 45% sind Durchschnittszahlen. Das Öl wird in hydraulischen Pressen zunächst zweimal kalt, dann warm abgepreßt -- oft in den gleichen Pressen wie Sesamöl. (Es gibt daher bisweilen schwache ~Baudouin~sche Reaktion!) Nur das erste, helle, kalt geschlagene Öl ist zu pharmazeutischen Zwecken und als Speiseöl brauchbar. Das Öl wird in den Produktionsländern (Indien, Westafrika), aber auch in Südfrankreich (z. B. Marseille) und Deutschland (Harburg) gepreßt. Das Öl von Rufisque und Gambia gilt als besser als das von Bombay und Coromandel. Das =Erdnußöl=, =Oleum arachis= (huile d’arachide, arachis oil, peanut oil, earthnut oil, olio di arachide, aardnoten olie, ἀραχέλαιον, in Indien: katchung oil), setzt beim Erkalten eine kristallinische Masse ab (margarine d’arachide). Die festen Fettsäuren bestehen aus +Arachinsäure+ (~Allen~, ~Gössmann~), +Lignocerinsäure+ (~Kreiling~), +Stearinsäure+ (~Hehner~ und ~Mitchell~) und vielleicht auch +Palmitinsäure+ (~Caldwell~) -- der Gehalt an Arachinsäure beträgt c. 5% (4,5-5,5) --, die flüssigen aus +Ölsäure+, +Hypogaeasäure+ (~Gössmann~ und ~Scheven~, ~Schröder~, ~Hazura~), +Linolsäure+ (~Hazura~ und ~Grüssner~). Die kalt geschlagenen Öle enthalten nur geringe Mengen freier Fettsäuren, die technischen Öle mehr (indische bis 16,5%, ~Crossley~ und ~Le Sueur~). Arachisöl kann durch Abscheidung der krist. Arachinsäure (d. h. roher, mit Lignocerinsäure vermischter) identifiziert und quantitativ in Ölgemischen bestimmt werden (~Renard~, ~Lewkowitsch~, ~Tortelli-Ruggeri~, ~Kreis~ -- Vorschrift in Pharm. helv. IV). Verseift man das Öl mit alkoholischer Natronlauge, verjagt den Alkohol, scheidet die Fettsäuren mit Salzsäure ab und löst diese in siedendem Alkohol, so scheidet sich die Roharachinsäure in perlmutterglänzenden Kristallen (F. = 70-71°) ab. Erdnußöl gibt die ~Bellier~-Reaktion (Resorcin-Benzol + HNO₃, spez. Gew. 1,4). Das spez. Gewicht des Öls beträgt: 0,911 (afrikan. Öl) bis 0,9256 (ostind.) -- Pharm. helv. IV verlangt 0,917-0,921 bei 15° und 0,864-0,865 bei 98° --, der Erstarrungspunkt -2,6 bis +3°, die Verseifungszahl 185,6-194,8 (~Crossley~ und ~Le Sueur~), die Jodzahl 83,3-105 -- Pharm. helv. IV verlangt 85-100 -- (meist 90-96), die Reichert-Meißlzahl 0-1,60, die Hehnerzahl 94,87-96,31, die Maumenéprobe ergab 45,5-75°, der Brechungsexponent ist bei 40° 1,4626-1,4642 (Ph. helv. IV). Der Erstarrungspunkt der Fettsäuren liegt bei 22-32,5°, ihr Schmelzpunkt bei 27-35°, die Jodzahl ist 95,5-103,42, die Jodzahl der flüssigen Fettsäuren 104,7-128,5 (vgl. bei ~Lewkowitsch~). Nach vierstündigem Einlegen in konzentriertes Kali, dem konz. Ammoniak zugesetzt wurde, entstehen im Öltropfen kurze, in halbkonzentriertem lange, gebogene, oft lockenförmig gekrümmte Nadeln -- für dies Öl sehr charakteristisch --, nach 24 Stunden auch Sphaerite (~Hartwich-Uhlmann~). +Erdnußmehl+ (Erdnußgrütze) enthält im Mittel in Prozenten: Wasser 6,67 (6,26), Stickstoffsubstanz 48,92 (47,46), Fett 14,61 (17,50), stickstofffreie Substanz 22,99 (21,01), Rohfaser 3,91 (3,90), Asche 4,90 (3,87) (~König~). +Erdnußschalen+ enthalten nur 5,68% Stickstoffsubstanz und 2,5% Fett, aber 53,2% Rohfaser. =Anwendung.= Die schwach gerösteten Erdnußsamen schmecken ähnlich wie Mandeln und werden, ebenso wie die rohen, in den Tropen (Brasilien, Indien, Afrika), aber auch neuerdings in Europa viel gegessen. Sie sind jetzt regelmäßig in «Südfruchthandlungen» neben Feigen und Datteln zu finden. Frisch haben sie einen nußartigen Geschmack. Reichlicher Genuß von Erdnüssen soll Kopfweh verursachen (?). Unter dem Namen Austria-Bohnenkaffee, wie afrikanischer Nußbohnenkaffee, kommen die durch Pressen von einem Teile des Öls befreiten, aber immer noch c. 17 (~Willert~), 19 (~Röhrig~, ~Vogl~) oder gar fast 28% Fett zurückhaltenden gerösteten Samen in den Handel (Beschreibung bei ~Vogl~). Sie sehen den Kaffeebohnen ähnlich. Arachisöl ist ein brauchbarer Ersatz des Olivenöls. Nach Indian and Colonial Addendum Brit. Pharmacop. ist Olivenöl durch Arachisöl zu ersetzen in Indien, den afrikanischen, australischen und östlichen Kolonien (vgl. I, S. 22). Es liefert ein vorzügliches Bleipflaster (~Dymock~). In Spanien dienen die Preßrückstände mit Cacao, Zucker und Gewürz gemischt der ärmeren Bevölkerung als Nahrungsmittel. Man kann in Zeiten der Not aus Erdnußpreßkuchen ein billiges Brot backen. -- Die Erdnußpreßkuchen, aus denen eine Grütze hergestellt wird, bilden ein oft verfälschtes wertvolles Nahrungsmittel (vegetabilisches Fleisch, ~Nördlinger~), ein sehr geschätztes Mastfutter (~Uhlitzsch~, ~Collin-Perrot~) und ein gutes Düngemittel. Erdnußmehl wird giftig durch beigemengte Ricinuskuchen (~Schmidt~) oder durch Wechselwirkung mit beigefutterten anderen Nahrungsstoffen (? ~Krüger~). Erdnußöl wird mit Mohnöl, Sesamöl (Furfurolprobe!), Baumwollsamenöl (~Halphens~ Reaktion!) und Rüböl verfälscht (Nachweis bei ~Lewkowitsch~). =Geschichte.= Die Erdnuß war, was ebenfalls für ihren amerikanischen Ursprung spricht, im Altertum und Mittelalter unbekannt. Zuerst wird die Manifrucht 1547 bei ~Fernandez de Oviedo~ (I, S. 755) in dessen Cronica de las Indias Lib. VII, cap. 5 fol. 1074 von Hayti erwähnt, wo sie von den Eingeborenen kultiviert wurde. ~Monardes~ (I, S. 780) berichtete 1569, daß sie bei den Indianern am Maranon in großem Ansehn stehe. Die französischen Kolonisten unter ~Coligny~ trafen mandobi 1555 in Brasilien, ~Sloane~ Arachidna Indiae utriusque in Westindien und ~Jean de Léry~ (I, S. 764) beschrieb die Pflanze. Abbildungen finden sich dann bei ~Johannes de Laet~ in dessen Histoire du nouveau monde 1640 und bei ~Marcgraf~ (I, S. 893) unter dem Namen mundubi (~Hanbury~). Erdnüsse finden sich auch unter den altperuanischen Grabbeigaben (~De Candolle~). 1697 wurde die Pflanze in +Helmstedt+ kultiviert (~Stisser~, Botanica curiosa). Der Name Arachis wird zuerst von ~Ray~, dann von ~Plumier~ und ~Sloane~ benutzt (~Bentley-Trimen~). Er ist abgeleitet von ἀράχιδνα, womit von ~Theophrast~ eine andere Leguminose (nach ~Sprengel~: _Lathyrus amphicarpus_ ~Dorth~) bezeichnet wurde. Die Arbeiten von ~Sonnini~, Traité de l’arachide ou pistache de terre Paris 1808 und ~Cadet~, Sur la cacahuaté ou mani d’Amérique in Journ. pharm. I (1815), 37, sowie die chemische Untersuchung von ~Payen~ und ~Henry~ (Journ. chim. Amérique. 1825, 431) lenkten in Europa die Aufmerksamkeit auf die Erdnuß. Aber erst der französische Colonist ~Jaubert~ in Gorée, nahe den Capverden, führte sie 1840 als Ölsaat nach Marseille ein, wohin von dann an steigende Mengen von der Westküste von Afrika gelangten (1867 schon 66 Mill. kg). In der zweiten Hälfte des XIX. Jahrh. breitete sich die Kultur der Erdnuß über die Erde aus. Um 1860 kam sie über China nach Indien (~Dymock~) -- sie heißt in Indien noch heute chini-badam (= chinesische Mandel). Die Kultur nahm dort einen so raschen Fortgang, daß schon 1877: 7130 cwts nuts und 20387 cwts oil von Madras exportiert werden konnten und 1897 schon 112000 acres unter Erdnuß standen. Nach Westindien kam sie zuerst von Brasilien, dann -- in neuerer Zeit -- von Afrika aus. Zuerst kam das Öl in die Pharmacopeia of India, erst neuerdings auch in europäische Pharmacopoeen, z. B. die Pharm. helvet. IV. =Lit.= ~Carrère et Holle~, Le Sénégambie française 1855. -- ~Duval~, Colonies et politique coloniale de France 1864. -- ~Mavidal~, Le Senegal. Paris 1863. -- ~Faidherbe~, Le Senegal 1889. -- ~Poiteau~, Ann. sc. nat. bot. 19 (1853), 268. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Beyerinck~ und ~Wijs~, Aardnoot en de aardnooten-olie. Bull. Kolon. Mus. Haarlem 1896 (Monographie). -- ~Taubert~ in Engler-Prantl, Pflanzenfam. -- ~Schweinfurth~, Im Herzen Afrikas I 273. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- ~Block~, Geogr. Verbr. d. Erdn. u. Bedeut. als Nahrungsm. Zeitschr. f. Kolonialpolit. VI. -- ~Watt~, Dict. econ. prod. -- ~F. Kurtz~, Sitzungsber. d. Bot. Ver. d. Prov. Brandenb. 1875. -- ~Sadebeck~, D. Kulturgew. d. deutsch. Kolonien 1899. -- ~Warburg~, Fette u. Öle aus deutschen Kolonien. Chem. Centralbl. 1897. -- ~Woldt~, Deutschl. Interess. im Niger- u. Kongogebiet. -- ~Vogl~, Nahrungs- u. Genußm., Fig. 159 u. 160. -- ~Bentley-Trimen~, Med. pl. t. 75 (dort d. ältere Lit.). -- ~Benecke~, Mikr. Unters. d. Kraftfutterm. 1886. -- ~Böhmer~, Ölkuchen in ~Dammers~ Lexikon d. Verfälsch. -- ~Bilteryst~, Rech. de l’arach. etc. Journ. pharm. 1897, 29. -- ~Winton~, Anatomy of the peanut etc. Conn. Agr. Exp. Stat. Rep. 1904, 191. -- ~Möller-Winton~, Mikroskopie, Fig. 317-322. -- ~T. F. Hanausek~ in Wiesner, Rohstoffe II. Aufl. (mit Abbild.). -- ~Flückiger~, Arch. Pharm. 1869. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia -- Pharmacogr. indica. -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde. -- ~Benson~, The ground nut. Dep. Land. Rec. agric. Madras 1899. -- ~K. Braun~, Die Erdnuß (Kultur). Pflanzer, Amani, 1910 (Flugblatt). -- Erdnußindustr. in d. Ver. Staaten. Chem. Zeit. 1900, Nr. 38. -- ~Sadtler~, Peanutoil and its uses in pharm. Am. Drugg. 31 (1897). Lipase: ~Dunlap~ und ~Seymour~, Journ. am. soc. 27, 935. -- ~König~, Nahrungs. u. Genußm. (dort die chem. Literatur). Weitere chem. Lit. in ~Wehmer~, Pflanzenstoffe. +Öl+: ~Hazura~ und ~Grüssner~, Monatsh. f. Chem. 1889, 242. -- ~Hartwich~ und ~Uhlmann~, Arch. Pharm. 1903, 111. -- ~Kreis~, Chem. Zeit. 1895, 451. -- ~Baczewski~, Arachis. Ber. chem. Ges. 1896. -- ~Lewkowitsch~, Chem. Techn. d. Öle 1905 (dort d. Lit.). -- Erkennung von Erdnußöl in anderen Fetten: ~Guarnieri~, Staz. sper. agr. ital. 1909, 408. -- ~Muntz~, ~Paulmyer~ u. ~Rivals~, Monit. scient. 1909. 785. -- +Preßkuchen+: ~Nördlinger~, Erdnußgrütze. Zeitschr. Angew. Chem. 1892, 689. -- ~Tuson~, Pharm. Journ. 7 (1876) 332. -- ~Uhlitzsch~, Landw. Versuchsstat. 1892, 385. -- ~Klingenberg~, Zeitschr. f. phys. Chem. 1882, 155. -- ~Collin-Perrot~, Residus industr. (Fig. 65. Querschn. durch die Fruchtschale). 3. Nichttrocknende Öle. Die nichttrocknenden Öle zeigen eine niedrigere Jodzahl als die trocknenden und die halbtrocknenden. Linolensäure scheint ganz zu fehlen, Linolsäure nur in geringer Menge vorhanden zu sein. Sie erhärten wegen ihres Gehaltes an Ölsäure bei der Elaidinprobe. Semen Amygdalae dulcis und Oleum Amygdalae. =Syn.= Amygdala dulcis, süße Mandel -- amande douce (franz.) -- sweet almond (engl.) -- mandorla dolce (ital.). Der Baum: Mandelbaum -- amandier (franz.) -- almond tree. (engl.) -- amandelboom (hol.) -- mandola, mandorlo (ital.) -- almendro (span.) -- amendoeira (port.) -- mandelträd (schwed.) -- mindaluve derevo (russ.) -- him-ho-gin (chin.). Bei ~Theophrast~: ἀμυγδαλῆ (die Frucht ἀμυγδάλη) -- bei ~Dioskurides~: ἀμυγδαλέα und ἀμύγδαλον -- bei ~Columella~ und ~Plinius~ der Baum: amygdala (die Frucht nux graeca, so schon bei ~Cato~). Später dann (z. B. in Medicina Plinii IV. Jahrh.): amandola, bei ~Carl~: amandalarios, bei ~Albertus Magnus~: amigdalus, bei der ~Hildegard~: amygdalus, -- in der Alphita (I, S. 654) oleum amigdalinum (metopium ex amigdalis amaris) -- bei ~Ibn Baithar~: lauz, lawz (Ol. amygdalar. = duhn al-lauz al murr) -- bei ~Najm Ad-Dyn Mahmud~ (I, S. 611) laouz ḥoulou -- +aramäisch+ und +syr.+ schegʿdā, -- +hebr.+ schaked, luz oder lus -- +arab.+ louz davon berberisch: talouzet (die Mandel: schekedim) -- +pers.+ badam. -- Der Mandelbaum hat keinen Sanskritnamen. Bei Sanskritschriftstellern findet sich der (persische) Name bádám. (hind.) oder vádam (tam.). -- In +China+: hang, die süßen Mandeln: hangjin und tʿien-mei. =Etym.= ἀμυγδάλη ist wohl sicher ein Lehnwort, doch ist, bemerkt ~Schrader~, seine Quelle noch nicht nachgewiesen (~Grassmann~: der Name stammt wahrscheinlich aus Asien). Im persischen +Makhzan+ heißt ein Gummi liefernder Baum ammughilán oder mughilán (oben S. 453). Dies dürfte auf eine Amygdalacee gehen und aus dem dem Worte zugrunde liegenden persischen Stamme ist vielleicht das griechische ἀμυγδάλη hervorgegangen. Die bittere Mandel heißt im Persischen munga, die Bohne im Indischen mudga. _Amygdalus_ stammt also möglicherweise aus dem Persischen oder Indischen -- vielleicht liegt auch die Urheimat der Pflanze in Persien, das heute noch viel Mandeln produziert. ἀμυγδάλη ist freilich auch der Name der phrygischen Cybele (und bedeutet große Mutter), und da der früh aus dem Winterschlaf erwachende Mandelbaum aus dem Blute der Göttermutter entstanden sein sollte, so zog ~Mowers~ den Namen amygdalê hierher, was aber ~Schrader~ ablehnt. Die Ableitung von ἀμυχή (wegen der vielen Ritzen der Steinschale, ~Herodianus~) wird abgelehnt, ebenso die von syr. ah-mügdala (= schöner Baum). Aus ἀμυγδάλη ging dann unter volksetymologischer Anlehnung an mandere und amarus das lat. amandula, amandola und dann das ital. mandorla hervor (~Schrader~), angls. magdalatreow, mhd. mandel, ahd. mandala, nach ~Baist~ aus lat. amandula bzw. amundala. Bei Prunus sagt Isidorus (in seiner bekannten Weise!) «+Pruna+ est, quam diu ardet; pruna autem perurendo dicta». Andere leiten Prunus (s. auch oben S. 57) von πύρινος = feurig oder προῦνος = wilder Ölbaum oder πρῶμος = frühzeitig ab (~Kanngiesser~). =Stammpflanze und systemat. Stellung.= =Prunus Amygdalus= ~Stokes~ (Amygdalus communis L.) var. =physiologica dulcis= ~Tschirch~ (Prun. Amygd. ~Stok.~ var. β dulcis P. ~Dc.~, Amygdalus dulcis ~J. Bauh.~) mit zahlreichen Spielarten. Die Botaniker unterscheiden von _Prunus Amygdalus_ ~Stokes~ Bot. mat. med. III, 101, non ~Baillon~ (_Amygdalus communis_ L. Spec. pl. ed. I 473) die «Varietäten» var. β _dulcis_ ~P. Dc.~ mit harter Steinschale und süßlich schmeckenden Samen, Blumen vor den Blättern, var. α _amara_ ~Hayne~ mit harter Steinschale und bitteren Samen, Staubgefäße bisweilen unterwärts behaart, var. γ _fragilis_ ~Borkhausen~ mit zerbrechlicher Steinschale und süßlichen Samen (Knack- oder Krachmandeln), Blumen gleichzeitig mit den Blättern, var. δ _macrocarpa_ mit großer Frucht und harter Steinschale. Blumen heller rot, vor den Blättern und var. ε _persicoides_ ~Sér.~ (Pfirsichmandel mit mehr fleischiger Frucht, wohl ein Bastard mit dem Pfirsich). In Turkestan gibt es wilde Mandeln mit glattem Stein. Da es kein einziges durchgreifendes +systematisch-botanisches+ Merkmal gibt, welches den die süße Mandel liefernden Baum von dem die bitteren liefernden unterscheidet (die als Unterschied angeführten Drüsen am Grunde der Blätter von _dulcis_ fehlen auch hier bisweilen), der einzig durchgreifende Unterschied vielmehr ein +chemischer+ ist, der auf der Bildung von Amygdalin in den Samen der bitteren Mandel beruht, so kann man auch nicht von einer Varietät im botanischen Sinne sprechen, sondern muß den von mir eingeführten Begriff der physiologischen Varietät hier benutzen. Oft genügt schon Umpflanzen in besonders guten Boden, um einen «bitteren» Mandelbaum zum «süße» Früchte Tragen zu veranlassen (~Lippmann~). Die meisten Forscher betrachten die süße Mandel als durch Veredelung aus der bitteren hartschaligen hervorgegangen. Doch kommen in Kerman in Südwestpersien wilde (oder verwilderte?) süße +und+ bittere Mandeln nebeneinander vor. +Rosaceae+ -- +Prunoideae+, Untergattung II Amygdalus ~Tourn.~ [Illustration: Fig. 184. _Prunus Amygdalus._ A Frucht von außen. B Frucht aufgeschnitten, um den Steinkern zu zeigen. C und D Same längs durchschnitten. E Same quer durchschnitten. [Nach +Focke+ in +Engler-Prantl+, Pflanzenfamilien.]] =Beschreibung der Stammpflanze.= Der Mandelbaum ist von mäßiger Höhe (selten bis 10 m) und besitzt eine breitästige Krone oder ist nur strauchig, nur an den Kurztrieben blühbar. Die spiralig gestellten, 4-10 cm langen Blätter besitzen 1,2-2,5 cm lange Stiele. Die kahle Spreite wechselt bei _Prunus Amygdalus_ nach der Form (lanzettlich bis eilanzettlich) und der Ausbildung des Randes (sehr schwach gekerbt oder gesägt). Bisweilen finden sich am Grunde der Lamina ein oder zwei Drüsen. Die kurzgestielten, perigynen Blüten sitzen zu 1-3 an der Spitze der Kurztriebe. Die Kelchröhre, der Axenbrecher, ist 4-5 mm lang, glockenförmig, kahl, wenig deutlich zehnnervig, innen mit einem Nektar absondernden Gewebe ausgekleidet, etwa bis zur Hälfte behaart. Sie löst sich von der heranreifenden Frucht durch einen ringförmigen Spalt ab. Die fünf, unten braunroten, oben grünen Kelchblätter sind abstehend, oblong bis oblong-lanzettlich, am Rande gewimpert, die fünf bis 2 cm langen, zart rosenroten, mit dunkleren Adern durchzogenen Blumenblätter sind oblong bis breit-umgekehrt-eiförmig, an der Basis kurz keilförmig-genagelt, an der Spitze etwas ausgerandet (der Pfirsich hat dunklere Blüten), die etwa 30 ungleich langen, in fünf episepalen, dem Rande des Achsenbechers inserierten, Phalangen angeordneten Stamina besitzen rosenrote Filamente. Das der Basis des Achsenbechers stiellos inserierte Gynaeceum besteht aus einem am Grunde dicht behaarten Carpell und läuft in einen langen Griffel mit kopfiger Narbe aus. Die einfächerige Frucht ist eine etwa 3,5-4 (selten bis 6) cm lange und 2,5-3 cm breite, seitlich zusammengedrückte Steinfrucht (drupa), die an der Rückenseite eine Furche besitzt, an der die Frucht aufspringt. Das graugrünliche Epicarp ist sammetartig behaart, das Mesocarp lederig zäh, das Endocarp als gelbe, derbe Steinschale (coque) entwickelt, die an der Vorder- und Rückenseite breit und scharf gerandet, innen glatt und glänzend, aber außen mit unregelmäßigen Vertiefungen versehen ist (Fig. 184 B) (bei den dünnschaligen Krachmandeln ist die Steinschale dünn und zerbrechlich). Von den zwei anatropen, an der Bauchnaht hängenden Ovulis, die in dem Fruchtknoten liegen, schlägt meist das eine fehl (wo es sich ebenfalls entwickelt, entstehen die sog. «Vielliebchen»), so daß in der Fruchthöhle nur ein Same liegt, der vorwiegend aus den beiden plankonvexen Cotyledonen besteht. _Prunus Amygdalus_ blüht vor Austreiben des Laubes oder gleichzeitig mit dem Erscheinen der ersten Blättchen im März bis April, im Süden schon im Februar. Der Fruchtansatz erfolgt in Italien im März. Er leidet daher von Frühjahrsfrösten. Die Urheimat des Mandelbaums ist wahrscheinlich im westlichen Asien, vielleicht besonders in Persien, zu suchen (s. oben). In Mesopotamien, Kurdistan, Turkestan (~Boissier~) und dem Antilibanon (bis 3200 m), sowie Karmel (~Tristram~), am Hermon, wo er zwischen 1000 und 1600 m gebüschbildend auftritt, ferner in Persien (am Berge Avroman in Kurdistan zwischen 2200 und 2900 m), in Afghanistan (~Atchison~), im oberen Zarafshanthal, in Turkestan, im Tschotkalgebirge (~Capus~) und Transkaukasien (~Medwedew~) findet sich der Mandelbaum, der süße und der bittere, wild, ob auch in Sizilien, Griechenland (~Heldreich~) und Algerien (~Cosson~) ist zweifelhaft. Im Mittelmeergebiet ist er wohl nur verwildert. Die Mandel reift ihre Früchte nördlich der Alpen nur in der Rheinebene, am Oberrhein, an der Bergstraße, in der Rheinpfalz und im Wiener Becken. An der südöstlichen Küste Norwegens, c. 59° n. B., reift sie noch bisweilen in warmen Sommern (~Schübeler~). [Illustration: Fig. 185. _Prunus Amygdalus._ Längsschnitt durch die Drupa. m Mesokarp. st Endokarp (Steinschale). f Funiculus. [Nach ~Moeller~, Lehrbuch.]] =Lit.= ~Focke~, Rosaceen in Engler-Prantl. -- ~Baillon~, Hist. d. pl. (Monogr. Rosac. 1869). -- ~De Candolle~, L’orig. d. pl. cult. u. Géogr. botan. -- ~Boissier~, Flor. orient. -- ~Christ~, Pflanzenleb. d. Schweiz. -- ~Capus~, Sur l. plant. cultiv. qu’on trouve à l’état sauvage etc. dans le Thian Schan. Ann. sc. nat. (7) 18 (1884) 278. (~Flückiger~, Pharm. Zeit. 1884, 878.) -- ~Schübeler~, Kulturpfl. Norwegens 1862. -- ~Heldreich~, Nutzpfl. Griechenlands 1862. -- +Abbild.+: ~Berg-Schmidt~, Atlas 2. Aufl., t. 62 (dort die botan. Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 94. -- ~Bentley-Trimen~, Medic. plants t. 99. -- ~Nees von Esenbeck~, Plant. med. t. 312 u. 313. =Pathologie.= Über die pflanzlichen Schädlinge berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: _Amygdalus communis_ wird ebenso wie alle unsere Steinfruchtarten von _Clasterosporium carpophilum_ (~Lèv.~) ~Aderh.~ befallen. Dieser Pilz greift Blätter, Blattstiele, Triebe und Früchte an; verursacht auf den Blättern runde abdorrende Flecken und auf den Früchten schorfartige Bildungen. (Lit. ~Aderhold~, Über die Sprüh- und Dürrfleckenkrankheit des Steinobstes. Landwirtschaftl. Jahrbuch 1901, derselbe: Über Clasterosporium carpophilum und die Beziehungen desselben zum Gummiflusse des Steinobstes. Arbeiten der Biol. Abt. des Reichsgesundheitsamtes für Land- und Forstwirtschaft II 1902.) Wichtig ist ferner _Gloeosporium amygdalinum_ ~Brizi~, welches die Anthracnose des Mandelbaumes hervorruft und namentlich dann schädlich ist, wenn es die +jungen+ Früchte befällt, da diese zum Absterben oder Abfallen gebracht werden (s. ~Brizi~, Eine neue Krankheit des Mandelbaumes. Zeitschr. f. Pflanzenkrankheiten, Vol. VI 1896, p. 65). Über die tierischen Schädlinge von _Prunus Amygdalus_ vgl. _Cerasus_ (S. 72) und _Cydonia_ (S. 330). Die trockenen Mandeln werden oft von _Sitodrepa panicea_ und _Coccotrypes_ zerstört (I, S. 379). =Kultur.= Der Mandelbaum wird in Südeuropa, im Orient, Nordafrika und England kultiviert. Er verlangt ein warmes, lufttrockenes, subtropisches Klima, jedenfalls keine Fröste zur Blütezeit und trockenen, lockeren, tiefgründigen, kalkhaltigen Boden. Die bittere Mandel ist klimahärter (~Semler~). Die Kultur der süßen Mandel ist im südlichen und südwestlichen Frankreich beträchtlich, wird aber dort nur als Nebengewerbe betrieben. Mandelpflanzungen legt man in Italien gern dort an, wo vorher Oliven standen (~Valiante~). In Italien werden die Wildlinge, welche man als Unterlage für die Pfropfreiser guter Varietäten der Mandel braucht, aus hartschaligen einsamigen Mandeln gezogen. Die Mandel wird aber auch oft auf den Pflaumenbaum und den Pfirsich gepfropft. Der gepfropfte Baum gibt vom 15. Jahre an Früchte, vom 30-40. Jahre den Maximalertrag. Dieser beträgt 50 l Früchte = 8-9 l Samen (~A. Meyer~). 1 Hektar liefert c. 500 kg. geschälte M. In Persien, wo der Baum sehr häufig ist und die Mandeln viel benutzt werden, wird er besonders in Yedz und Kirman, dann auch in Afghanistan kultiviert. Die Steinschale wird mit einem hölzernen Hammer aufgeklopft oder (in Amerika) mit einer Maschine aufgebrochen. In Südfrankreich werden die Mandeln geschwefelt (Schwefelbleiche). Die besten Spielarten hat Frankreich und Californien. ~Semler~ nennt folgende: Amande des dames (A. dela princesse), Languedoc, Sultana, Pistache, Douce à coque duce, Jordanmandel, breite Valencia und die kalifornischen: Excelsior, Non plus ultra, Nonpareil, Suprema u. and. Der Ertrag einer Mittelwelternte wird auf 35-50 Mill. kg geschätzt (~Tunmann~). Die Hälfte davon liefert Italien, speziell Sizilien. =Lit.= ~Bianca~, Manuale della coltivazione del Mandorlo in Sizilia. Palermo 1874. =Handelssorten.= Süße Mandeln kommen aus +Südfrankreich+ (Provence, bes. Aix), +Italien+ (Puglia, Apulien, Florenz, Bari, Neapel, Sizilien, bes. Avola bei Syracus), +Spanien+ (Malaga, Valencia, Alicante, Mallorca), +Portugal+ (Lissabon, Oporto), Dalmatien, Griechenland (Aegina, Chios), der Levante, Syrien, Persien, Süd-Rußland, Nordafrika, +Marokko+ (Rebat, Mogador), Tripolis, Algier und den Canarischen Inseln, sowie Kalifornien. Die spanischen, besonders die Valencia- und Alicantesorten sind die größten und besten, auch die Malaga-Mandeln (sog. Jordan-M.) sind groß und gut, ebenso die Florentiner (Ambrosia) Mandeln, die südfranzösischen und italienischen (z. B. die Puglieser, Communmandeln) sind kleiner und dicker und weniger gut. Am wenigsten geschätzt sind die berberischen aus Afrika, die persischen, syrischen und griechischen. Die Oporto-, Malaga- und Valencia-Mandeln kommen gewöhnlich in Körben und Fässern, die anderen in Ballen, Säcken und Matten von 100 kg, die Barbarice- (Marokko) Mandeln in Seronen à 100 kg in den Handel. Die bitteren Mogadormandeln sind meist mit süßen Mandeln vermischt. Die Krachmandeln (amandes à la princesse) kommen besonders aus Südfrankreich und Sizilien. Nach Indien gelangen viel Mandeln vom persischen Golf. Mandelöl ist in Indien kein Handelsartikel. Auch Amerika liefert jetzt viel Mandeln. Die chinesischen Mandeln sind die genießbaren Kerne einer Aprikosenart (~Hance~, ~Bretschneider~). =Handel.= +Italien+ produziert jährlich c. 20 Mill. kg Mandeln. Es exportierte mandorle sonza guscio 1908: 177683, 1909: 105913 quint.; mandorle col guscio, 1908: 22872, 1909: 10762 quint. +Frankreich+ führte 1908: 45410 Quint. +Amandes+ en coques und 58185 Qint. A. sans coques ein, besonders aus Spanien, der Türkei und Italien, weniger aus Griechenland und Marokko, unbedeutende Mengen aus Algier und Tunis. Frankreich exportiert für 16 Mill. M. jährlich (~Semler~). +Hamburg+ importierte 1908 seewärts 75391 dz +Mandeln+, davon aus Italien: 40884, Spanien: 15407, Marokko: 13210, Frankreich: 4816. Weniger wie 1000 dz kamen aus Kleinasien, Persien, den kanarischen Inseln, Syrien, der europäischen Türkei, Griechenland, Portugal usw. +Deutschland+ importierte 1909: 6921000 kg +Mandeln+ (2600000 aus Italien, 1300000 aus Marokko, 625000 aus Frankreich, 1700000 aus Spanien, 640000 aus der Levante, 56000 aus Portugal). Nach ~Tunmann~ (Drogenhandel Hamburgs Apoth. Zeit. 1911) 1909: 9,66, 1910: 11,12 Mill. kg. =Morphologie der Droge.= Die Droge besteht aus den aus der Steinschale (s. oben) herausgelösten, in der Form wechselnden, bald mehr länglichen (Provencer), bald mehr rundlichen (Puglieser), im allgemeinen spitz eiförmigen, etwas flach gedrückten, bikonvexen (wo zwei Samen ausgebildet wurden plankonvexen oder konkavkonvexen) Samen. (Nur die Krachmandeln sind noch mit dem hier dünnen und zerbrechlichen Endocarp und dem diesem aufsitzenden, zum Mesocarp gehörenden anastomosierenden, weitmaschigen Gefäßbündelsystem bedeckt.) Sie besitzen eine wechselnde Größe je nach den Spielarten, pflegen aber meist größer zu sein als die bitteren -- es gibt aber auch kleinsamige Sorten (s. oben). (Früher wurden als Varietäten _A. fructu majori_ und _A. fructu minori_ unterschieden.) Die größten Sorten (Malaga-, Jordan-M.) sind bis 4, die meisten 1,5-2,5 cm lang. Provencer Mandeln messen c. 2,8 : 0,9 cm, Puglieser Mandeln c. 2,0 : 1,4 cm (~Hartwich~). Sie zeigen eine hellbraune, mit derbem, zimtbraunem, leicht abreibbarem Reif bedeckte («bestäubte»), groblängsrunzelige Samenschale, die von dunkleren, vertieften Adern durchzogen ist. Etwas unterhalb der meist ziemlich scharfen Spitze liegt das Hilum. Von ihm läuft die selten kielartig hervortretende Raphe zu der am abgerundeten breiten Ende des Samens etwas seitlich verschoben liegenden, als große runde Erhebung sichtbaren Chalaza. Hier tritt das Raphebündel ins Innere und sendet von hier zahlreiche (16-18), rückläufig nach der Spitze des Samens hin streichende verzweigte Bündelchen, die die Samenschale von Unten nach Oben durchziehen. Legt man den Samen in warmes Wasser, so löst sich die Samenschale samt dem Nucellus- und Endospermreste (s. unten) leicht vom Samenkern ab. Der letztere besteht aus zwei plankonvexen, weißen, öligfleischigen Cotyledonen (Fig. 184), die außen die Abdrücke der Samenschalbündel zeigen und die mit ihrem etwas verschmälerten Grunde der kurzen, gegen das spitze Ende des Samens gerichteten Radicula derart angewachsen sind, daß letztere zur Hälfte frei hervorragt, während ihre andere Hälfte nebst der relativ großen länglich-eiförmigen Plumula von den Cotyledonen eingeschlossen ist. Süße Mandeln schmecken ölig-süß. Sie geben mit Wasser zerstoßen eine weiße Emulsion, die weder Bittermandelgeruch noch Blausäurereaktion zeigt. =Anatomie.= Die Fruchtschale spaltet sich leicht in eine äußere weiche und eine harte innere Schicht. Die letztere, die Steinschale, zeigt zu äußerst ein von Sklereïden durchsetztes Parenchym. Die harte Schicht ist fast ganz aus Sklereïden verschiedener Größe aufgebaut. In der Mitte sind dieselben quergelagert, schmal und stark verdickt, innen längsgelagert, alle farblos oder gelblich. Zwischen den Sklereïden finden sich bisweilen Kristallzellen mit Drusen und Einzelkristallen (~Moeller~). [Illustration: Fig. 186. _Prunus Amygdalus._ 97 Same von außen, Ch Chalaza, R Raphe, n Hilum, g Gefaßbündel der Samenschale. 98 Same längs durchschnitten, s Samenschale, nc Nucellus, e Endosperm, oa Plumula. 99 Ovulum natürl. Größe. 100 Ovulum längs durchschnitten, ii inneres, i äußeres Integument, g Funikularbündel. 101 junger Same. 102 derselbe längs durchschnitten (Bezeichnungen wie in 100). 103 fast ausgebildeter Same längs durchschnitten. 104 Querschnitt durch die Randschicht des Samens, E äußere Epidermis, p Nährschicht, Ei innere Epidermis der Samenschale, N Nucellusrest, En Endosperm. 105 innere Epidermis und äußere Nucellusschicht aus dem Stadium 103. 106 innere Nucellus- und äußere Endospermschicht des nahezu reifen Samens. 107 Nährschicht (p) aus einem unreifen Samen. [Aus +Arthur Meyer+, Wissenschaftl. Drogenkunde.]] Die bitteren und süßen Mandeln stimmen anatomisch überein. Der Same geht aus einem anatropen Ovulum hervor, welches zwei Integumente besitzt. Das äußere, sehr kurze Integument ist der Spitze des inneren inseriert (Fig. 186, 100). Es nimmt an der Bildung der Samenschale nur an der Spitze des Samens geringen Anteil (~A. Meyer~). Bedeckt ist der Same mit einem braunen grobschülferigen bzw. körnigen Überzuge. Dieser besteht aus sehr großen, oft 120-335 mik. hohen und 70-135 mik. weiten, kegel-, pauken- oder tonnenförmigen, geraden oder mannigfach verbogenen und ausgestülpten, von oben gesehen rundlichen, rundlich-eckigen oder mannigfach verzogenen Zellen mit dicker Wand (Fig. 186, 104 u. 188) und dort, wo die Zellen an andere angrenzen, deutlichen runden oder spaltenförmigen Tüpfeln, zwischen welche Zellen nicht minder zahlreich sehr dünnwandige, daher zusammengefallene Zellen eingestreut sind, die sogar oft die Mehrzahl bilden, so daß die Gruppen der dickwandigen Zellen inselartig auftreten. Sämtliche Zellen dieses Überzuges sind als sklereïdenartige Korkzellen zu betrachten. Die dünnwandigen sind vollständig oder nahezu vollständig verkorkt, die dickwandigen zeigen eine breite verholzte Mittelpartie und zwar ist die ganze, oft 5,5 mik. breite Mitte der Membran, die eine deutliche zarte Streifung zeigt, verholzt, färbt sich also mit Phloroglucinsalzsäure rot, mit Chlorzinkjod gelb. Beiderseits von dieser Mittelschicht, sowohl an der inneren als an der äußeren Seite, liegt eine zarte, gegen Schwefelsäure resistente Lamelle, die innen so zart zu sein pflegt, daß sie sich oft als feines Häutchen ablöst. Die für die typische Korkzelle charakteristische Zelluloselamelle ist hier bald vorhanden, bald fehlt sie, wenigstens konnte ich sie an der Handelsware nicht überall mit Jodschwefelsäure nachweisen. Die Zellen enthalten einen körnigen, auf Gerbstoff reagierenden Inhalt und im unreifen Samen Stärke. Diese sehr eigentümlichen, meist in einfacher Schicht -- sehr selten sah ich zwei übereinander -- den Samen bedeckenden Gebilde (Tonnenzellen ~Moeller~, Riesenzellen ~Vogl~), zeigen den Charakter trichomartiger Sklereïden. Ihre Verwachsung mit der darunter liegenden Schicht der Samenschale ist oft eine so lockere, daß die dickwandigen sich aufs leichteste von ihr ablösen lassen, gewissermaßen herausfallen und daher an den Runzeln des Samens ganz oder fast ganz abgescheuert sind. Um ihre Form studieren zu können muß man daher die Schnitte durch die Falten legen. Bei besonders günstigen Präparaten sieht man, daß sie in der Tat der darunter liegenden, meist zweizelligen leeren Schicht eingefügt sind; über 3-6 Zellen dieser subepidermalen Zone liegt für gewöhnlich eine dieser Tonnenzellen. Die subepidermale Zone ist selten deutlich, am besten ist sie noch nach Zusatz von Kali sichtbar zu machen. Ihre Zellen sind sehr zartwandig und enthalten bisweilen eine Oxalatdruse. Wand und Inhalt färben sich mit Eisenchlorid schmutziggrün (~Vogl~). Die nächstfolgende, relativ mächtige, durch Chlorzinkjod sich schmutzig violett färbende Schicht der Samenschale ist die Nährschicht (~Tschirch~), sie besteht aus dünnwandigem, reichdurchlüftetem, stark obliteriertem Sternparenchym, welches besonders in den äußeren Schichten bisweilen einen braunen Farbstoff führt und nach Innen zu durch eine einreihige Epidermis abgeschlossen ist. Bis hierher reicht die Samenschale. In der Nährschicht verlaufen die Gefäßbündel (s. oben), die Spiralgefäße führen und von Kristallkammerfasern mit rhomboëdrischen Kristallen oder Drusen begleitet werden. ~Hartwich~ gibt in der Nähe der Bündel auch Sklereïden an. An die Nährschicht schließt sich nach Innen zu eine einreihige, inhaltslose, stark zusammengefallene Schicht, die als Nucellusrest angesprochen wird (~A. Meyer~) und dann folgt eine Zone, die man als das sehr zarte Endosperm aufzufassen hat, dessen allein deutlich erhaltene äußerste Schicht aus sehr verschieden großen, im Flächenschnitt meist 21-27 mik. langen, 16-22 mik. breiten, in einfacher, doppelter oder (am Würzelchen) mehrfacher Schicht angeordneten, relativ dickwandigen, farblosen Zellen besteht, die neben einem stets sehr deutlichen Zellkern viele sehr kleine lappige Aleuronkörner enthalten, welche durch Wasser rundlich aufgebläht, durch verdünntes Kali bis auf sehr kleine, Molekularbewegung zeigende Körnchen (Globoide) gelöst werden. Die Wände dieser Schicht färben sich mit Chlorzinkjod blau, die innersten Schichten des Endosperms sind zu einer «Quellschicht» (~Tschirch~) obliteriert und machen die Samenhaut beim Einlegen in Wasser so schlüpfrig, daß der Samenkern leicht herausgleitet. Die plankonvexen Cotyledonen besitzen auf der Außen- (der morphologischen Unter-)seite eine sehr kleinzellige Epidermis, deren Zellen in der Richtung der Organsachse gestreckt, etwa 40-62 mik. lang und 11 mik. breit sind. Das Gewebe der Cotyledonen besteht aus dünnwandigen, mit sehr zarten Verdickungsleisten versehenen Zellen, die Interzellularkanäle reichlich zwischen sich lassen. Ein Palissadengewebe ist auf keiner Seite ausgebildet. Die Epidermis der Innen(Ober-)seite der Cotyledonen ist großzelliger als die der Außenseite, die Zellen sind in der Längsachse des Organs nicht gestreckt, sondern nahezu isodiametrisch. Sie enthalten beide ein feinkörniges Aleuron. Die Cotyledonen werden von in ein oder zwei, der ebenen Innenseite genäherten, Reihen angeordneten (bisweilen schon Spiralgefäße führenden) Procambiumsträngen durchzogen, welche sowohl bei den bitteren, wie den süßen Mandeln das Emulsin führen (~Johannsen~ 1887) und zwar in dem Pericycel (zone péricyclique, per in Fig. 187) und der Endodermis (End in Fig. 187, ~Guignard~ 1890). Das Grundgewebe der Cotyledonen ist bei beiden Mandeln frei von Emulsin. Es enthält bei beiden gleichgestaltete Aleuronkörner (5-10 in jeder Zelle, ~Lüdtke~) von sehr unregelmäßigem Umriß und sehr verschiedener Größe. Meist sind sie rundlich oder gestreckt mit welliger Kontur und oft reichlicher Lappung des Randes. Besonders die größeren, solitärartig ausgebildeten führen oftmals eine kleine Druse von Kalkoxalat, alle 1-3 kleine, rundliche oder wulstig verbogene Globoide, die übrig bleiben, wenn man den Schnitt sukzessive mit Äther, Wasser und verd. Kali behandelt. Kristalloide fehlen. Selten sind Prismen von Oxalat. Die Aleuronkörner haben eine Größe von 2,5-13 mik., die Solitäre messen 16-17 mik. Außer diesen Aleuronkörnern ist bei süßen und bitteren Mandeln in den Zellen noch Ölplasma (~Tschirch~) vorhanden, das bei den bitteren Mandeln das Amygdalin einschließt. Konzentrierte Schwefelsäure färbt das Gewebe der Cotyledonen rot (~Raspail~sche Reaktion auf Zucker-Eiweiß). Der Farbstoff wird von den Öltropfen aufgenommen. Die kurze kegelförmige Radicula sowohl wie die zu einem spitzen Kegel ineinander gefalteten Primordialblätter, die den Vegetationspunkt zwischen sich haben und die beide amygdalinfrei und sehr emulsinreich sind (~Johannsen~) -- hier findet sich das Emulsin im Pericycel (~Guignard~) --, sind in allen Zellen dicht mit kleinen rundlichen Aleuronkörnern vollgepfropft. Stärke fehlt dem Samenkern. [Illustration: Fig. 187. Gefäßbündel eines Cotyledon des Mandelsamens. [Nach +Guignard+.]] Die Aleuronkörner der Mandel verhalten sich, wie Untersuchungen, die ich mit ~Kritzler~ ausgeführt habe, zeigen, anders wie die von _Linum_, _Ricinus_, _Cannabis_ usw. Die in Wasser sehr leicht lösliche +Grundsubstanz+ besteht aus dem +Globulin+ Amandin. Sie ist löslich in 1,5 und 10% Ammoniumsulfatlösung, unlöslich in der konz. Lösung des Salzes, löslich in 1,5 und 20% Magnesiumsulfat, schwer oder teilweise löslich in der konz. Lösung, löslich in Chlorammonium, Kaliummonophosphat und Kochsalzlösung jeder Konzentration, sowie in Kalkwasser, unlöslich in konz. Kochsalzlösung, der eine Spur Essigsäure zugesetzt wurde. Salzsäure von 0,1-0,2% fällt körnig, 3% und stärkere löst. Die in Wasser unlöslichen +Globoide+ enthalten ein mit Ca, Mg und Phosphorsäure gepaartes Globulin, das nicht in 1%, wohl aber in 5 und 10% Kochsalzlösung, nicht in 1%, wohl aber in 20% Magnesiumsulfatlösung löslich ist, in 1 und 5% Ammonsulfat ist es unlöslich, löslich in 10 und 20%, Chlorammon löst schwer, Kaliummonophosphat in allen Konzentrationen leicht, ebenso Salzsäure. Die =Mandelkleie= (tourteau d’amandes, pâte d’amandes, furfur s. farina amygdalarum) ist der gepulverte Preßrückstand, den man bei der Darstellung des Mandelöls erhält, besteht also jetzt meist aus bitteren Mandeln. Man findet in ihm in erster Linie die Fragmente der Cotyledonen, aber auch meist auf den ersten Blick die Tonnenzellen der Samenschale, Oxalatdrusenzellen und Spiralgefäße (Abbild. bei ~Vogl~ und ~Collin-Perrot~), im Ölpräparate zahlreiche Aleuronkörner mit Globoiden und Oxalatdrusen. ~Vogl~ empfiehlt Färben des Präparates mit Cochenille. In der Mandelkleie finden sich oft Preßkuchen anderer Amygdalaceensamen, bisweilen besteht sie ganz aus Aprikosensamenpreßkuchen (~Collin~). Das unter dem Namen «Mandelkleie» (son d’amandes, bran of almonds) im Handel befindliche, zu kosmetischen Zwecken benutzte Präparat ist ein Kunstprodukt (vgl. ~Hager-Fischer-Hartwich~, Pharm. Praxis), das nicht einmal immer Mandeln enthält. Das Pulver der =Mandelschalen= (d. h. des Endocarps, s. oben), das als Verfälschungsmittel von Gewürzpulvern (Pfeffer), in der Schokolade- und Biskuitfabrikation beobachtet worden ist und auch zum künstlichen Altern von Weinen und Spirituosen benutzt wird (1905), besteht fast ganz aus Sklereïden, entweder gestreckten, spindel-, spatelkeulenförmigen, geraden oder knieförmig gebogenen, bis 150 je 300 mik langen, mit linienförmigem Lumen oder kürzeren, bis 120 mik langen, breiteren, gerundet-eckigen oder ausgeschweiften, dicht getüpfelten, relativ weitlumigen, sowie Übergangsformen zwischen diesen. Daneben findet sich bisweilen dünnwandiges Parenchym, Kristallzellen und Bruchstücke von Gefäßen. =Lit.= ~A. Meyer~, Wissensch. Drogenkunde (dort die Entwicklungsgeschichte). -- ~Berg~, Anatom. Atlas. -- ~Tschirch~, Angew. Pflanzenanatomie 1888, Fig. 36. -- ~Wigand~, Lehrbuch 1887. -- ~Vogl~, Kommentar 1908 und Nahrungs- u. Genußm., Fig. 261 u. 262. -- ~Schimper~, Anleitung 1900. -- ~Möller-Winton~, Mikrosk. d. Nahrungs- u. Genußm. 1905. -- ~Hartwich~, in Realenzyklop. d. Pharm. -- ~Karsten-Oltmanns~, Lehrb. d. Pharmak., Fig. 400-403. -- ~Louis Planchon~, Prec. de mat. méd. I, Fig. 148 u. 149. -- ~Garcin~, Du noyau des drupes Ann. Soc. bot. Lyon 1890, 27, Contrib. à l’étude d. péric. charnus Lyon 1890, Rech. s. l’histogen. d. péric. charn. Ann. soc. nat. (7) 1890, 175. -- ~Godfrin~, Etud. histolog. s. l. tégum. sémin. d. Angiosp. Soc. d. sc. nat. Nancy 1880, 109. -- ~Collin-Perrot~, Resid. industr., Fig. 69 u. 70. -- ~T. F. Hanausek~ in Wiesner Rohstoffe, II. Aufl. -- ~Johannsen~, Sur la localisation de l’émulsine dans les amandes Ann. sc. nat. (7) 6 (1887). 118. -- ~Thomé~, Bot. Zeit. 1865, 240. -- ~Guignard~, Sur la localisat. dans les amandes etc. Journ. pharm. chim. 21 (1890), 233. -- ~Tschirch~ u. ~Kritzler~, Mikrochem. Unters. über d. Aleuronkörner. Ber. d. pharm. Ges. 1900, 214 und ~Kritzler~, Dissert. Bern 1900. -- ~Lüdtke~, Beschaffenh. d. Aleuronk. Ber. d. pharm. Ges. 1891, 58. Mandelschalen: Pharm. Centralh. 1905. =Chemie.= Die Zusammensetzung der (trockenen) süßen Mandeln ist im Mittel (nach ~König~) in Prozenten: Wasser 6,27, Stickstoffsubstanz 21,4, Fett 53,16, stickstofffreie Extraktstoffe 13,22, Rohfaser 3,65, Asche 2,3. In der Trockensubstanz: Stickstoffsubstanz 22,83, Fett 56,71% (~Fleury~, ~Colby~, ~Schädler~, ~König~ und ~Crauch~). Die Krachmandeln werden regelmäßig geschwefelt, um ihnen eine hellere Farbe zu geben. In 100 g Kernen fand ~Kratschmer~ 13 mg, in 100 g Schalen 117 mg schweflige Säure. Im Pericarp finden sich 0,84% Saccharose und 5,67% reduzierender Zucker (~Bourquelot~), sowie eine Spur fettes Öl (~Vallée~), Gerbstoff, Weinsäure mit Spuren Citronensäure und Apfelsäure (~Flückiger~). Die Samen enthalten neben +Dextrose+ (0,09% ~Bourquelot~, auch ~Flückiger~ erhielt im Auszuge mit kaltem Wasser einen in der Kälte reduzierenden Zucker) c. 2 bis 3% +Saccharose+ [2,97% ~Bourquelot~, 2,1% ~Langley~, nach ~Pelouze~ bis 10% (?) Saccharose, aber keinen reduzierenden Zucker?], gummiartige Stoffe, 2,38 (~Godet~) bis 3,8% (~Wittmann~, ~Langley~) +Pentosane+ (unlösliche Pentosane des Hemizelluloserückstandes der entfetteten Kerne: 15,5% ~Godet~) und angeblich Gentiobiose, Stärke findet sich nur im unreifen Samen (~Leclerc~). Ferner enthält der Same ein +chromogenes+ gelbes, mit Alkalien kirschrot werdendes +Glykosid+ (~Scheitz~ und ~Ludwig~) und +Emulsin+ (= Synaptase, ~Robiquet~). Das Emulsin ist ein Gemisch. Es enthält ein hydrolysierendes (δ-Emulsin) und ein synthetisierendes (σ-Emulsin) Enzym (~Rosenthaler~), nach ~Armstrong~ und ~Horton~, ~Caldwell~ und ~Courtauld~ sogar drei: ein Enzym, welches β-Glukoside spaltet (β-Glukosidase), ein Enzym, welches Milchzucker spaltet, (eine Laktase, Glukolaktase) und Amygdalase. Sodann ist vorhanden: ein +fettspaltendes Enzym+ (Lipase, ~Dunlap~ und ~Seymour~, ~Mario Tonegutti~), oft +Invertin+ (Invertase, ~Bourquelot~ und ~Hérissey~, 1903), ein +Phytosterin+ (~Benecke~), +Asparagin+ (0,3% ~Henschen~ 1872, ~Portes~ 1876), +Cholin+ (~Guareschi~), sowie neben +Pepton+ und +Albumosen+ (zusammen 0,25%, ~Lemport~) und einer sehr geringen Menge eines in der Wärme gerinnenden Eiweißkörpers (~Commaille~) das globulinartige Proteid +Amandin+ (~Proust~, ~Commaille~, den Namen behalten ~Osborne~ und ~Campbell~ bei, = Glutine ~Denis~ (?), nicht = Conglutin, ~Ritthausen~), das bei der Hydrolyse Glycocoll, Alanin, Valin, Leucin, Prolin, Phenylalanin, Asparaginsäure, Glutaminsäure, Tyrosin, Arginin, Histidin, Lysin, Tryptophan und Ammoniak liefert (~Osborne~ und ~Clapp~). Mandelkerne entwickeln schon mit Kalkwasser erwärmt Ammoniak (~Flückiger~). Das Globulin +Amandin+ ist ein Phytovitellin. Es zeigt die Zusammensetzung: C = 51,30, H = 6,90, N = 19,32, O = 22,04, S = 0,44 (~Osborne~ und ~Campbell~). Es gibt mit Chlornatrium und Quecksilberchlorid keine Fällung und wird durch Magnesiumsulfat teilweise gefällt; bei 80° scheiden sich aus der Lösung Flocken aus. Es ist bisher nur in Amygdalaceen gefunden worden. Es kommt wohl vorwiegend in der Grundsubstanz der Aleuronkörner vor (s. Anatomie). Laktase +und+ Emulsin finden sich außer in den Mandeln auch in Pfirsich-, Aprikosen- und Apfelkernen (~Bourquelot~ und ~Hérissey~), Emulsin, das im Pflanzenreich weit verbreitet ist, auch in Lichenen, sowie Pilzen, vielen Gymnospermen und Monocotylen (~Hérissey~, ~Heut~). Amygdalin scheint in der süßen Mandel ganz zu fehlen oder nur in Spuren vorhanden zu sein [~Almén~, ~Scheitz~ und ~Ludwig~ (1872)]. In den Samenschalen findet sich ein eisengrünender +Gerbstoff+ (~Ludwig~). Die Asche der Samen beträgt 3,05% (~Fleury~), 4,9% (~König~), 5% (~Zedler~). Sie enthält in Prozenten: Kali 27,95, Natron 0,23, Kalk 8,81, Magnesia 17,66, Eisenoxyd 0,55, Phosphorsäure 43,63, Schwefelsäure 0,37. Der Gehalt der Samen an Öl beträgt etwa 50%, steigt aber auf 54,9 (~Fleury~), 55,3 (~Vohl~), 55,42 (~Flückiger~), ja 57,3% (~Langley~, in «chines. süßen Mandeln», s. oben S. 597). Beim Pressen erhält man 38-45%. Das =Mandelöl=, =Ol. Amygdalae s. Amygdalarum expressum= (huile d’amande, almond oil, olio di mandorle, amandelolie, ἀμυγδαλέλαιον), das ebenfalls und oft in größerem Umfange aus den bitteren Mandeln oder aus einem Gemische beider dargestellt wird -- beide Öle stimmen im wesentlichen miteinander überein --, wird meist durch kalte Pressung der zerkleinerten ungeschälten Samen in Zwillichsäcken gewonnen. Es besteht fast ausschließlich aus +Olein+, enthält kein Stearin (~Gusserow~, ~Hehner~ und ~Mitchell~), dagegen 5,71% +Linolsäure+ (~Farnsteiner~) -- reine Ölsäure kann daher nicht aus Mandelöl dargestellt werden --, freie Fettsäuren fehlen ganz (~Salkowski~ erhielt einmal 0,75%). Mandelöl wird nur langsam ranzig. Noch nach einem Jahre erhielt ~Lewkowitsch~ nur geringe Säurezahlen (0,79, 3,1). Das spez. Gewicht beträgt 0,914-0,920, meist 0,9178-0,9183 (~Lewkowitsch~), der Erstarrungspunkt liegt bei -10 (~Girard~) bzw. -21 (~Maben~), die Verseifungszahl beträgt 189,5-195,4, die Jodzahl 93-101,26 (meist 96-98), die Bromzahl 69,87-74,37 (~Telle~), die Hehnerzahl 96,2, die Maumenézahl 51-54°, die Bromthermalprobe 17,6-21°, der Brechungsexponent (bei 40°) 1,4632-1,4642 (Pharm. helv. IV) im Butterrefraktometer (bei 15,5°) 70,9 Skalenteile, die Thermozahl, im Thermoleometer von ~Tortelli~ bestimmt, ist 50,7. Der Erstarrungspunkt der +Fettsäuren+ liegt beim Öle aus süßen Mandeln bei 9,5-10,1, bei dem der bitteren Mandeln bei 11,3-11,8° (~Lewkowitsch~), der Schmelzpunkt der Fettsäuren liegt bei 13-14°, ihre Neutralisationszahl beträgt 204 mg KOH, ihre Jodzahl ist 93,5-95,5 bei süßen, 94,1-96,5 bei bitteren Mandeln (~De Negri~ und ~Fabris~) (die Jodzahl der flüssigen Fettsäuren 101,7). Das Mandelöl ist also durch eine +niedrige Jodzahl+ und +niedrigen Schmelzpunkt der Fettsäuren+ ausgezeichnet. Die Charakteristika einiger Mandelöle und verwandter Öle ergaben sich aus folgender Tabelle (~Lewkowitsch~). ----------------------+------------+------------+-------+-----------+ Art des Öles |Spezifisches|Verseifungs-|Jodzahl|Butter- | |Gewicht | zahl | |refrakto- | | | | |meter | | | | |b. 40° C | ======================+============+============+=======+===========+ Mandelöl ausgepreßt | | | | | aus: | | | | | 1. Süßen | | | | | Valenciamandeln | 0,91995 | 207,6 | 99,4 | 57,5° | 2. Geschälten süßen | | | | | Valenciamandeln | 0,9182 | 191,7 | 103,6 | 57,5° | 3. Süßen sicilianisch.| | | | | Mandeln | 0,9178 | 183,3 | 100,3 | 57,0° | 4. Bitteren | | | | | Magazanmandeln | 0,9180 | 188,6 | 102,5 | 56,5° | 5. Kleinen indischen | | | | | Mandeln | 0,91907 | 189,2 | 96,65| 57,0° | 6. Bitteren | | | | | Mogadormandeln | 0,9183 | 194,98 | 104,2 | 57,0° | | | | | | 7. Pfirsichkernöl | 0,9198 | 191,4 | 95,24| 57,5° | | | | | | 8. Aprikosenkernöl | 0,9200 | 192,4 | 107,4 | 58,0° | 9. Aprikosenkernöl | | | | | Mogador | 0,9172 | 198,2 | 107,9 | 57,0° | 10. Kalifornisches | | | | | Aprikosenkernöl. | 0,92026 | 190,3 | 108,7 | 58,0° | ----------------------+------+----------------+----------------------- Art des Öles | | Fettsäuren | Farbenreaktionen | +---------+------+-----------+----------- |Säure-| | Ver- | Biebers | Phloro- | zahl |Neutrali-| sei- | Probe | glucin- | |sations- |fungs-| (H₂SO₄ + | Salpeter- | | zahl | zahl |rauch.HNO₃)| säure- | | | | | probe ======================+======+=========+======+===========+=========== Mandelöl ausgepreßt | | | | | aus: | | | | | 1. Süßen | | | | | Keine Valenciamandeln | 5,16 | 207,8 | 207,6| Farblos | Färbung 2. Geschälten süßen | | | | | Keine Valenciamandeln | 2,9 | 196,4 | 201,7| Farblos | rote | | | | | Färbung 3. Süßen sicilianisch.| | | | | Keine Mandeln | 0,79 | 198,8 | 202,2| Farblos | rote | | | | | Färbung 4. Bitteren | | | | | Schwach Magazanmandeln | 3,1 | 196,8 | 203,1| Farblos | rot 5. Kleinen indischen | | | | | Schwach Mandeln | 2,9 | 195,8 | 200,7| Farblos | rot 6. Bitteren | | | | | Keine Mogadormandeln | 1,3 | 197,1 | 203,2| Farblos | rote | | | | | Färbung 7. Pfirsichkernöl | 3,0 | 196,8 | 205,0| Zuerst | Tiefrote | | | | farblos, | Färb. | | | | dann rot | 8. Aprikosenkernöl | 2,3 | 198,0 | 202,0|Rotfärbung | Tiefrote | | | | | Färb. 9. Aprikosenkernöl | | | | | Weniger Mogador | 2,8 | 194,0 | 200,7|Schwach rot| tiefrot Mogador | 2,8 | 194,0 | 200,7|Schwach rot| als 8 10. Kalifornisches | | | | Sehr | Aprikosenkernöl. | 1,2 | 197,8 | 202,8|schwach rot| „ „ „ Nach dem Eintragen in konz. Kali-Ammoniak (~Hartwich-Uhlmann~sche Mischung), verhält sich Mandelöl ähnlich wie Olivenöl (s. d.). Die Verbrennungswärme des Mandelöls beträgt bei konstantem Volumen 9454, bei konstantem Druck 9469 g-cal. (~Sherman~ und ~Snell~). Bei der Keimung wird das Fett aufgebraucht (~Fleury~ 1865). Die +Mandelpreßkuchen+, die, wenn sie ausschließlich von süßen Mandeln stammen, was aber zurzeit jedenfalls selten ist (s. oben), als Futtermittel benutzt werden können (Prüfung auf Blausäure im Destillat!), enthalten im Durchschnitt in %: Wasser 6,69, Fett 15,15, stickstoffhaltige Substanzen 41,28, stickstofffreie Substanzen 20,63, Cellulose 8,94, Asche 4,31 (~Collin-Perrot~). +Mandelschalen+ enthalten in %: Wasser 9,65, Stickstoffsubstanz 2,08, Fett 1,15, in Zucker überführbare Stoffe 16,74, sonstige stickstofffreie Substanzen 18,5, Rohfaser 48,76, Asche 3,17 (in der Asche im Mittel 11,17% K₂O). =Lit.= ~Boullay~, Anal. d. amand. douc. Journ. pharm. 1817, 337 und Buchn. Rep. 6, 395. -- ~Sachs~ (Vgl. Unters. d. süß. u. bitt. Mand.), Berl. Jahrb. f. Pharm. 1816. -- ~Proust~, Journ. chim. phys. 54, 199. -- ~Vallée~, Compt. rend. 136 (1903) 114. -- ~Pelouze~, Ann. Chim. phys. 45 (1855), 324 (Journ. pharm. (3) 27, 321). -- ~Scheitz~ und ~Ludwig~, Die Bestandt. d. süßen Mandeln. Arch. Pharm. 1872, 420. -- ~Bourquelot~, Journ. pharm. chim. 18 (1903), 241 u. Arch. Pharm. 1907, 173. -- ~Leclerc du Sablon~, Compt. rend. 123, 1084. -- ~Wittmann~, Zentrbl. d. Landw. Versuchswes. v. Österr. 1901, 131. -- ~Lemport~, Über d. Pepton d. süß. Mand. Pharm. Zeitschr. f. Rußland 1897, 528. -- ~Ortloff~ (Analyse d. Emulsins). Arch. Pharm. 98 (1846). 12. -- ~Hérissey~ (Emulsin in Lichenen). Journ. pharm. chim. 1898, 578 u. Rech. sur l’émulsine. Thèse Paris 1899. -- ~Brachin~, Lactase Thèse Paris 1904. -- ~Heut~, Emulsin. Arch. Pharm. 1901, 581 (dort d. Lit.). -- ~Rosenthaler~, Biochem. Zeitschr. 1908-1910. -- ~Caldwell~ und ~Courtauld~, Proc. Royal Soc. 79, 350. -- ~Armstrong~ und ~Horton~, Ebenda 80, 321. -- ~Euler~, Allg. Chem. d. Enzyme. 1910. -- ~E. Fischer~, Vers. m. Emulsin. Ber. d. chem. Ges. 1894, 2990. -- ~Benecke~, Lieb. Ann. 122, 249 u. 127, 105. -- ~Portes~, Journ. pharm. chim. 1877, 30. -- ~Langley~, Journ. am. chem. soc. 1907. -- ~Osborne~ u. ~Campbell~, Journ. am. chem. soc. 1896. 609. -- ~Osborne~ u. ~Clapp~, Am. journ. phys. 1908, 470. -- ~Muss-Arnolt~, Transact. am. ph. assoc. 23, 106. -- ~Commaille~, Thèse Marseille, Jahresb. d. Chem. 1866, 712. -- ~Ritthausen~, Eiweißkörper 1872 u. Journ. pr. Chem. (2) 23, 24 und 26. -- ~Bourquelot~ u. ~Hérissey~, Compt. rend. 137 (1903), 56 u. Journ. pharm. 1903. -- ~Barbieri~, Journ. pr. Chem. (2) 18, 102. -- ~Mario Tonegutti~, Pharm. Centralbl. 1911, 332 u. 744. -- ~Dunlap~ und ~Seymour~, Journ. am. soc. 27, 935. -- ~Godet~ (Stickstofffreie Bestandt.), Diss. Zürich 1909. -- ~König~, Nahrungs- und Genußm. (dort d. chem. Lit.). -- Älteste Analyse: ~Zwinger~ (~Hegner~), Analysis fruct. amygd. Basil 1703. +Öl+: ~Fleury~, Ann. chim. phys. 4 (1865) 38. -- ~Vohl~, Dingl. Polyt. Journ. 200 (1871) 410. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Hazura~ und ~Grüssner~, Monatsh. f. Chem. 10, 242 (Ber. d. chem. Ges. 1889 Ref. 578). -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Hehner~ und ~Mitchell~, Analyst 1896, 328. -- ~Allen~ und ~Brewis~, Pharm. Journ. 1900, 87. -- Über das Mandelgummi vgl. oben S. 455 u. ~Hoffmeister~, Ber. d. d. Bot. Ges. 1898, 289. =Anwendung.= Die süßen Mandeln dienen außer zur Ölpressung zur Bereitung der Emulsio amygdalarum, Syr. amygd. usw., sowie in der Küche und der Patisserie. [Illustration: Fig. 188. Epidermiszellen der Samenschale. 1 der Mandel, 2 des Pfirsich, 3 der Aprikose, 4 der Reineclaude, 5 der Zwetsche. [Nach +Hannig+.]] =Verfälschungen und Substitutionen.= Ganze Mandeln werden oft mit Aprikosen-, Pfirsich- und Pflaumen-«Kernen» verfälscht. +Pfirsichkerne+ sind flacher, breit eiförmig, scharfrandig, kleiner, ihre Schale ist sehr dünn, braun. Die Tonnenzellen verjüngen sich nach außen, so daß sie sich nur an der Basis berühren. +Pflaumenkerne+ sind mehr lang als breit-eiförmig, dick, abgerundet mit dünner brauner Schale, mit unangenehmem Nachgeschmack. Die Tonnenzellen ähneln denen der Aprikose. +Aprikosenkerne+ sind breit-herzförmig, flach, ihre Schale ist lederig, die Tonnenzellen sind meist kleiner als beim Pfirsich und der Mandel, in Flächenschnitten nicht wahrnehmbar. Geschmack ähnlich den Pflaumenkernen, Geruch nach dem Brühen unangenehm süßlich (~Wittmack~ und ~Buchwald~, ~Moeller~). ~Hannig~ gibt folgende auf die Epidermiszellen (und die Nerven) gegründete Bestimmungstabelle: 1. Epidermiszellen am +Nabelfleck+ (Chalaza) zusammenhängend (selten mit zerstreuten kleinen Lücken. Außenplatte verdickt (2). Epidermiszellen am Nabelfleck in kleinere oder größere Gruppen aufgelöst oder ganz isoliert (3). 2. Epidermiszellen in der +Flächenansicht+ groß, bis 100 µ Durchmesser, dünnwandig. Außenplatte nicht getüpfelt (bei tieferer Einstellung der Außenplatte zuweilen kaum erkennbare Punktierung), Außenplatte nicht (oder nur ganz ausnahmsweise) rissig aufgesprungen, in der +Seitenansicht+: Außenplatte kappenförmig verdickt (_Pfirsich_). Epidermiszellen in der +Flächenansicht+ beträchtlich kleiner, stark und unregelmäßig verdickt, sehr stark getüpfelt (_vereinzelte Zwetschen_). 3. Epidermiszellen in der +Flächenansicht+ groß, bis 120 _µ_ Durchmesser, dünnwandig. Außenplatte auffallend rissig gesprungen, sehr oft ganz abgebrochen, nicht getüpfelt (selten kaum erkennbare Punktierung bei tieferer Einstellung der Außenplatte). Die Seitenwände erscheinen gar nicht, oder erst bei tieferer Einstellung getüpfelt. Tüpfel zerstreut. In der +Seitenansicht+: Außenplatte nicht kappenförmig verdickt. -- +Nervenendigungen+ glatt zugespitzt, nicht baumartig verästelt, +Nervenstämme+ ohne baumartig verästelte Abzweigungen (_Mandel_). Epidermiszellen meist +kleiner+ (etwa 60 µ), dickwandig, stark getüpfelt. 4. Nervenendigungen baumartig verzweigt, Nervenstämme mit kurzen, baumartig verästelten Abzweigungen. Epidermiszellen ziemlich klein, Außenplatte stets getüpfelt. In der +Flächenansicht+: Epidermiszellwände +gleichmäßig+ dickwandig (_Aprikose_). Nervenendigungen ohne baumartig verzweigte Enden oder Abzweigungen. Seitenwände sehr stark getüpfelt, +unregelmäßig+ verdickt (5). 5. Samenschale braun, Tüpfel oft verzweigt, Tüpfelkanäle nach der Außenseite der Membran zu verdickt (_Zwetsche_). Samenschale hellgelb, Tüpfel selten verzweigt, Tüpfelkanäle nicht nach außen verdickt (_Reineclaude_). --------------------------------------------------------------------- | Epidermiszellen der Samenschale | Durchmesser | Höhe ===================================================================== Mandeln (Bari, | | Marokko, Provencer) | 23-124 µ (69-84 µ) | 64-144 µ (136-159 µ) | | (ausnahmsweise | | 200 µ) Pfirsiche | 48-106 µ (38-59 µ) | 52-104 µ (66-87 µ) (einheimische) | | (ausnahmsweise | | 165 µ) Aprikosen (Lyon, | | Vaucluse, | 34-66 µ (60-102 µ | 36-62 µ (42-54 µ) einheimische) | franz. bis 111)| Reineclauden | 32-64 µ («Pflaumen» | 34-48 µ (48-60 µ) (einheimische) | 66-102 µ) | Zwetschen | 36-64 µ (etwas kleiner| 36-56 µ (ungefähr wie (einheimische, | wie die «Pflaumen»)| die Pflaumen) kalifornische) | | [Nach ~Hannig~, die Zahlen von ~Wittmack~ und ~Buchwald~ in Klammern.] Alle diese anderen Kerne sind bitter. Neuerdings kommen aber auch süße Aprikosenkerne aus Japan (und China) in den Handel (Analyse derselben bei ~Rosenthaler~ und ~Schaeffer~, Pharm. Centralh. 1911, 507). Zerbrochene und von Insekten beschädigte Mandeln sind zu verwerfen. Sie werden leichter ranzig als ganze. Zur Verfälschung benutzte «Mandeln in Flocken», die 1909 im Handel waren, erwiesen sich als zerschnittene _Arachis_samen (~Collin~), andere als geraspelte _Copra_. Mit Eau de Javelle gebleichte Mandeln waren 1909 im Handel (~Debrun~). Die sog. _Amygdalae virides_ sind die Samen von _Pistacia vera_ L. Der sog. «+Mandelkaffee+» hat mit der Mandel nichts zu tun. Er besteht aus den gerösteten und gemahlenen Knollen von _Cyperus esculentus_ bzw. Rüben- oder Cichorienkaffee. =Lit.= +Wittmack+ und +Buchwald+, Untersch. d. Mand. von ähnl. Samen. Ber. d. Bot. Ges. 1901, 584 (mit Taf.). -- ~Hannig~, Untersch. d. Mand. v. ähnl. Samen. Zeitschr. f. Unters. d. Nahrungsm. 1911, 577 (mit Abbild.). Als +Verfälschungsmittel des Mandelöls+ werden genannt: Mohnöl, Sesamöl, Nußöl, Baumwollsamenöl, Olivenöl, Arachisöl und besonders Pfirsich- und Aprikosenkernöl. Die beiden letzteren ersetzen oft (z. B. in Amerika 1903) das reine Mandelöl. Das sog. _Ol. am. gallicum_ ist Aprikosenkernöl, rein oder mit Pfirsichkernöl gemischt. Sie sind z. Z. noch nicht mit Sicherheit im Mandelöl nachzuweisen. Reines Mandelöl bleibt mit Salpetersäure von 1,4 spez. Gew. farblos oder wird leicht gelb, reines Aprikosenkernöl wird orangegelb, reines Pfirsichkernöl gelblichbraun. Bei der Elaidinprobe ist die Ölschicht farblos beim Mandelöl, rötlich beim Aprikosen- und Pfirsichkernöl (~Schimmel~). Vgl. auch die Tabelle auf S. 604. Mandelöle, die eine Jodzahl von über 105 geben, sind verdächtig. =Lit.= ~Nélis~ (Nachweis fremder Öle), Ann. de Pharm. 1896. -- ~Lewkowitsch~, Soc. publ. Analysis. London 1904. -- ~Dieterich~, Pfirsichkernöl. Pharm. Centralh. 1896. -- ~Schimmel~, Ber. 1897 u. 1907 (chines. u. japan. Pfirsichkerne). -- ~Chwolles~ (Prüf. auf Pfirsichkernöl). Chem. Zeit. 1903. -- ~Allen~ und ~Brewis~, Almond oil and its substitut. Pharm. Journ. 1900, 87. =Geschichte.= Die Mandel wird in der Bibel oft erwähnt (z. B. in der Genesis). Der Baum blüht in Palästina zuerst von allen Bäumen, daher hebr. schaked, d. h. sich beeilen. ~Arons~ Reis war ein Mandelreis. Bei großen Festen tragen die Juden noch heute Mandelzweige in die Synagoge. Die Frucht der Mandel war das Modell für die Leuchter des Tabernakels (~Tristram~). Sie scheint in Ägypten nicht kultiviert worden zu sein, denn die Juden brachten Mandeln dorthin als Geschenk. Schon die alten Hebräer und die Griechen kannten bittere und süße Mandeln. Deutlich werden sie als _Amygdala amara_ und _dulcia_ bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 576) auseinander gehalten. Nach Griechenland kam die Mandel aus den Pontusgegenden. Der Name der Frucht wird zuerst bei ~Phrynichus~, einem Dichter der älteren attischen Komödie im V. Jahrh. n. Chr. erwähnt, als ναξία αμυγδάλη (~Athenaeus~ II, 52), dann bei ~Xenophon~ (~Anabasis~ IV, 4): ἀμυγδάλιον χρῖσμα. ~Dioskurides~ erwähnt das ἀμυγδάλινον ἔλαιον. Daß die Römer die Mandel von den Griechen erhielten, zeigt der Name _nux graeca_. Nach ~Plinius~ wird Mandelöl aus zuvor gedörrten und gestoßenen bitteren Mandeln gepreßt. Die Scriptores rei rusticae erwähnen ihren Anbau, ~Scribonius Largus~ und ~Alexander Trallianus~ ihre medizinische Anwendung. Sie finden sich abgebildet in Pompeji (I, S. 575, ~Schouw~, ~Comes~). ~Cato~ erwähnt die _Avellanae graecae_, ~Columella~ nennt sie _nuces graecae_, ~Scribonius Largus~ _amygdalae_, ~Celsus~ _nux amara_. Prähistorische Reste fehlen. In der Terramare wurden keine Mandeln gefunden, ebensowenig in der Saalburg. Der «Mandelkern» aus dem spätrömischen Pfahlbau von Fulda ist fraglich (~Wittmack~). 760 n. Chr. werden Mandeln in der Charter des Klosters von Corbie (I, S. 714) erwähnt. Die mittelalterliche Kochkunst verbrauchte enorm viel Mandeln, wie z. B. das Inventar des ~Jeanne d’Evreux~ 1372 (I, S. 716) und die Rezepte des Kochs ~Richard~ II. (1390) zeigen. In ~Karls~ Capitulare (LXX, 83) wird die Kultur der _Amandalarii_ empfohlen. Die Mandel wurde zur Karolingerzeit in Süddeutschland und Nordfrankreich naturalisiert und gelangte erst nach der normannischen Eroberung nach England. Noch zu ~Turners~ Zeit (1548) gedieh sie dort nur in Gärten. Im späten Mittelalter fanden sich Kulturen bei Speyer. ~Bock~ erwähnt solche in der Pfalz, ~Gesner~ bei Straßburg, Lindau, Torgau, Breslau. Der chinesische Pentsao aus dem X. oder XI. Jahrh. erwähnt den Mandelbaum aus Indien und Persien. Im Mittelalter bezog Deutschland die Mandeln -- wie noch heute -- aus Italien. ~Marino Sanuto~ (I, S. 722) erwähnt sie als Gegenstand des venetianischen Handels. Sie wurden damals auf den griechischen Inseln, z. B. auf Cypern, kultiviert. In Norwegen waren Mandeln im XIV. Jahrh. bekannt. In The spices, groceries etc. (1303, I, S. 84) stehen Ammigdalae, ebenso in der Danziger Preisliste 1410, ambrosianische Mandeln in den Braunschweiger Inventaren (1598 u. 1658) und der Frankfurter Taxe (1689). Der Autor des Makhzan erwähnt zwei Arten, die dickschalige und die dünnschalige (kaghazi), und kennt eine Art Enfleurage, bei der Mandeln benutzt werden, und die Benutzung der Schalenasche zu Zahnpulvern. ~Pomet~ erwähnt verschiedene Methoden der Mandelölgewinnung. Er empfiehlt die noch heute übliche. ~Malpighi~ bildet (in Opera tab. XLIII N.) einen guten Längsdurchschnitt durch die Frucht und den Samen der Mandel ab. «Die Mandel mußte frühzeitig, wie die Nuß, mit der sie Ähnlichkeiten zeigt, als Sinnbild der sich verjüngenden Natur, des sorgsam eingeschlossenen Lebenskeimes, der männlichen Zeugungskraft oder der weiblichen Gebärmacht gelten» (~Aigremont~). Es knüpfen sich an sie viele stark erotische Sagen. (Einige teilt ~Gubernatis~ mit). Sie galt auch als die von der Natur dargebotene Bestätigung der unbefleckten Empfängnis Mariae: «Christus wurde gezeuget in Marien, wie der Mandelkern sich in der unverletzt bleibenden Mandel bildet» (~Conrad~ von Würzburg, Goldene Schmiede). Die Sitte, sich Weihnachten mit Mandeln zu beschenken, rührt daher. Auch in der Volkserotik und bei den Hochzeitsbräuchen spielt die Mandel, deren Form an den Hoden erinnert, eine Rolle. =Lit.= ~De Candolle~, L’origine d. pl. cult. -- ~Hehn~, Kulturpflanz. -- ~Tristram~, Nat. history of the bible. 1898. -- ~Flückiger~ und ~Hanbury~, Pharmacogr. -- Pharmacogr. indica. -- ~Hoops~, Waldbäume und Kulturpflanzen 1905. -- ~Aigremont~, Volkserotik und Pflanzenwelt. -- ~Gubernatis~, La mythologie des plantes. Fructus Olivae und Oleum Olivae. =Syn.= Ölbaum, Olive, -- Olivier (franz.) -- Olive tree (engl.) -- Olijfboom (holl.) -- Oljetraed (schwed.) -- öljypuu (finn.) -- olivo (span.) -- oliveira (port.) -- +arab.+ aceytuno, der wilde acebuche, das Öl: aceite -- +russ.+, +bulg.+, +serb.+ mālina, maslicna, maslina (maslo slav. = Öl). Bei den Berbern der Ölbaum zitun (arab.), der Oleaster sebbūdj. Bei ~Ibn Baithar~ Olea europaea = zajtūn, Oleum olivarum = zajt. Zeitu findet sich im hebräischen, phönikischen, arabischen und aramäischen. Der Ausdruck ging dann in das persische, kurdische, kaukasische und tartarische über (s. unten); +goth.+ alev, alevabagms; +althd.+ olbir, olei, oliboum; +mhd.+ oele, ol, olbaum, olvyn sussolpawm; +mnd.+ oly, ulber, ullebom. Bei ~Luther~: ole, bei ~Albertus Magnus~: oliva, bei der ~Hildegard~ (I, S. 667) Oleybaum und Baumoleum. =Etym.= Das Babylonisch-Semitische kennt keinen Namen für Olive. Der älteste Name der Olive ist das hebräische sait, der sich auch im phönik., aramäisch. und arab. findet, als seitun ins pers. türk., georg., malaii. und javan. überging, -- +syr.+ zayto, +chald.+ zêtâ, +äthiop.+ zayt -- und von den Arabern (mit der Sache) auch nach Algerien (zitun, das Öl zit) und Andalusien (aceytuno, das Öl aceite) gebracht wurde. Der Stamm scheint auch im armenischen (dzêtʿ) und ägyptischen (tʿet-t, tat) wiederzukehren und auch im berberischen tazemmourt enthalten zu sein. Das griech. ἐλαία (= Ölbaum) und ἔλαιον (= Öl) leitet ~Lagarde~ vom armenischen iul (= Öl) ab, was ~Hübschmann~ und ~Schrader~ aber nicht gelten lassen. Das römische oleum, oliva ging dann ins italienische (ulivo), französische (olivier) und spanische (olivo, oliveiro) über. ~Lagarde~ leitet auch sowohl das semitische wie das ägyptische Wort aus dem armenischen oder einer nahestehenden Sprache ab. Das got. alév (= Öl) alêvabagms (= Ölbaum) ist vielleicht durch keltische Vermittelung aus olîva entstanden. =Stammpflanze u. systemat. Stellung.= =Olea europaea β sativa= ~Dc.~ (_Olea sativa_ ~Lk.~ u. ~Hffmnsg.~) mit einer großen Anzahl (c. 300) Sorten, von denen einige zu Tafeloliven eingesalzen, andere zur Ölpressung benutzt werden. ~Antoine Gouan~ beschreibt schon 12 Sorten. Die Enzyklopädie (1765) 19, ~Semler~ 25, ~Duchesne~ 43. ~Degrully~ bildet (1907) 23 französische, 12 algerische, 17 tunesische ab und erwähnt 43 italienische und 21 spanische Sorten. Die californischen Sorten sind abgebildet in Yearbook U. St. Dep. of agricult. 1897. +Oleaceae+ -- Oleoideae -- Oleineae (Olea) Sectio Euelaea ~Dc.~ =Beschreibung der Stammpflanze.= Der Ölbaum hat eine graugrüne, im Alter rissige Rinde, unbewehrte Zweige mit rundlichem Querschnitt, gegenständige, sehr kurzgestielte, lederige, immergrüne, lanzettliche, ganzrandige, am Rande etwas umgeschlagene Blätter, die oberseits grün, unterseits durch zahlreiche, schildförmige Haare silbergrau sind. Die zu kleinen achselständigen, rispigen Trauben vereinigten Blüten sind hermaphrodit und besitzen einen spitz-vierzähnigen bleibenden Kelch, eine kurzröhrige, tief-vierlappige weiße Krone, zwei am Grunde der Krone inserierte Staubgefäße mit kurzem Filament und großer Anthere und einen oberständigen, zweifächerigen Fruchtknoten mit kurzem Griffel und zwei Ovulis (Fig. 189). Die Frucht ist eine Drupa (das Wort drupa schon bei ~Plinius~) mit einfächeriger, einsamiger (seltener zweifächeriger, zweisamiger), brauner, heller geaderter, etwas zusammengedrückter, harter, in der Form der Fruchtform folgender Steinschale. Der Same ist mit einer netzaderigen Schale umgeben, enthält reichlich Endosperm und einen geraden Keimling mit kurzem, nach oben gerichtetem Würzelchen und blattartigen Cotyledonen. «Schön im Sinne der Romantik ist der Baum der Minerva nicht (vgl. Taf. XIV), aber nichts erweckt mehr das Gefühl der Kultur und friedlichen Ordnung und zugleich der Dauer derselben, als wenn er in offenen gereinigten Hallen mit dem kaum merklich flüsternden Laube an gewundenen Stämmen die Hügel ersteigt oder die geneigten Ebenen leicht beschattet und gern gesteht man ihm dann mit ~Columella~ das Prädikat prima omnium arborum zu» (~Hehn~). Die Olive ist der Fruchtbaum der Mittelmeerländer par excellence. Das Mittelmeergebiet ist pflanzengeographisch das Reich des Ölbaums (~de Candolle~, ~Grisebach~, ~Flahault~, ~Th. Fischer~), seine Polar- und Höhengrenze fällt mit der des Ölbaumes zusammen. Die Mittelmeerflora ist im wesentlichen eine Küstenflora und demnach liebt auch der Ölbaum das Küstenklima. «Der Ölbaum ist also in jeder Hinsicht ein echt mediterranes Gewächs, ja geradezu das charakteristischste unter den immergrünen laubtragenden Holzgewächsen der Mittelmeerländer». «In lichten Hainen, die sanften oder terassierten Hänge der reichgegliederten Mittelmeerländer, selten die Ebene bedeckend, verleiht er mit seinen graugrünen, kleinen, steifen Blättern, die sich alle 2-3 Jahre erneuern, seinen, wenn er alt wird, knorrigen Stämmen, der Mittelmeerlandschaft ein ganz eigenartiges Gepräge» (~Th. Fischer~). [Illustration: Fig. 189. _Olea europaea._ A blühender Zweig. B Blüte. C Krone ausgebreitet. D Kelch und Fruchtknoten. E Frucht. F Frucht durchschnitten, um den Steinkern zu zeigen. G und H Same im Längsschnitt. [Nach +Knoblauch+ in +Engler-Prantl+, Pflanzenfam.]] Er erreicht selten mehr als 10 m Höhe. Meist wird er im Alter hohl, «der Stamm zerspringt und löst sich in eine Gruppe knorriger, gespensterhaft verzerrter Stämme mit wunderlich verstrickten Gliedern auf» (Fig. 190). Er erscheint dann auseinandergeborsten, wie mit Toren versehen, schraubenförmig gedreht, im unteren Teile fast wie ein Felsblock (~Jul. Schmidt~). Die silbergraue Belaubung ist dünn, die Olivenhaine daher licht. Die Olive ist unverwüstlich. Im Garten Gethsemane bei Jerusalem werden 8 uralte Ölbäume gezeigt, die angeblich schon zu Christi Zeit erwachsen waren (~Ritter~). Auch anderwärts, besonders in Algier, finden sich solche alte Oliven. Der Ölbaum bedeckt z. B. in Ligurien, Apulien, Niederandalusien, dem tunesischen Sahel in lichten Hainen ganze Landschaften in einem polwärts sich unmittelbar an die Dattelpalmenzone anschließenden Gürtel. In Italien kann man die Zahl der Ölbäume auf 100, in Spanien auf 300 Millionen schätzen, in Tunis auf 20, in Corsika auf 36 Millionen. Die Olivenkultur reicht in Algarvien bis 1400′, in der Sierra Nevada bis 3000′ bzw. 4200′, bei Nizza bis 2400′, am Ätna bis 2200′, in Macedonien bis 1200′, in Cilicien bis 2000′ (~Grisebach~). Der dornige, mehr buschige, selten stattliche, +wilde Ölbaum+, ἐλεῖα ἀγρία (~Dioskurides~), κοτίνος (~Theophrast~), Oleaster (~Plinius~), _Olea europaea_ α _Oleaster_ ~Dc.~, der kleine, wenig fleischige, längliche, schwarze Früchte hervorbringt, mehr oder weniger vierkantige Zweige und längliche oder eiförmige Blätter besitzt, ist vom Ostrande des Hochlandes von Iran (~Bellew~) über Syrien, Griechenland (~Heldreich~), Italien (~Caruel~) bis Spanien, Algerien und zu den westlichsten Tälern des Atlas verbreitet und wohl in allen diesen Ländern ursprünglich heimisch. Blätter des Ölbaums wurden im Pliocen bei Mongardino gefunden (~Cavara~). Er wird nie zu einem Ölbaum, wie schon ~Theophrast~ wußte -- wie der Ölbaum durch Verwilderung nie zu einem Oleaster -- und ist bestimmt verschieden von diesem. Der Oleaster bleibt hinter der Polargrenze des Ölbaums zurück. Er erreicht sie nicht. In Südchile und Mexiko, wo der Ölbaum kultiviert wird, ist Oleaster ganz unbekannt. Ob er die Urform, die Urolive, ist, aus der sich die Kulturolive entwickelt hat, wissen wir nicht, aber es darf wohl angenommen werden, daß entweder er oder ein naher orientalischer Verwandter die Urform ist. Von beiden verschieden ist der schon von ~Theophrast~ unterschiedene indische Ölbaum (_Olea cuspidata_ ~Wall.~). [Illustration: Fig. 190. Alte _Olivenbäume_ bei Rom.] [Illustration: Tafel XIV. Terrassierte Olivenpflanzung bei Albergo in Ligurien. (Ravasini phot.)] =Lit.= ~Degrully et Viala~, L’Olivier Montpellier 1886-1890. -- ~Degrully~, L’olivier 1907 (m. zahlr. Abbild.) und Ann. Ec. nat. agric. Montpellier 1906. -- ~A. Coutance~, L’Olivier. Paris 1877. -- ~G. Cappi~, La coltivazione dell’ Olivo. San Remo 1875. -- ~Theob. Fischer~, Der Ölbaum, seine geogr. Verbreit., seine wirtschaftl. u. kulturhist. Bedeut. Peterm. Geogr. Mitt., Ergänzungsheft Nr. 147, 1904 (mit einer Karte). -- ~Pasquale~, Stud. bot. ed agronomici sull’ ulivo e sua varieta. Rend. R. Acad. scienz. etc. Napoli 1873. -- ~Piccone~, Prim. stud. p. una monogr. d. princ. var. d’ulivo etc. Genova 1879. -- ~Trabut~, L’Olivier en Algérie 1900. -- ~G. Caruso~, Monografia dell’ ulivo in Enciclopedia agraria III, 1882 und Coltivazione degli ulivi e la manifattura dell’ olio 1870. -- ~Cabrie~, Der Olivenbaum, seine Cultur usw. 1901. -- ~Aloi~, L’olivo e l’olio 1903. -- ~Brizzi~, Olivicultura 1903. -- ~Flaminio Bracci~, Olivicultura ed oleificio 1907. -- Kurze Übersicht: ~P. D’Aygalliers~, L’olivier et l’huile d’olive. Paris 1900 (mit Abbild.). -- ~Eastmann~, Olivenkultur in Californien. Pharm. Era 1896. -- Über die Kulturen in Indien, Cuba usw. Brit. and Colon. Drugg. 1897. -- ~Willkomm~, Grundzüge der Pflanzenverbreitung auf d. Iber. Halbinsel 1896. -- ~Grisebach~, Vegetat. d. Erde. -- ~Semler~, Trop. Agrikult. -- +Abbild.+: ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 109. -- ~Berg-Schmidt~, Atlas I. Aufl. t. 33. -- ~Nees von Esenbeck~, Pl. med. t. 212. -- ~Bentley-Trimen~, Med. pl. t. 172 und in den oben genannten Werken. =Pathologie.= Über die +pflanzlichen Schädlinge+ berichtet Prof. ~Ed. Fischer~: Auf dem Ölbaum sind sehr zahlreiche parasitische Pilze beobachtet worden, die mehr oder weniger erhebliche Schädigungen hervorrufen. Unter denselben interessieren uns zunächst vor allem die auf den Früchten auftretenden. Es sind das hauptsächlich sogenannte Imperfekte, die mehr oder weniger große, vertiefte und verfärbte Flecken hervorrufen und eventuell schließlich auch ein teilweises oder vollständiges Verschrumpfen oder Lederigwerden des Fruchtfleisches herbeiführen können: _Gloeosporium olivarum_ ~d’Almeida~ (La gaffa des olives en Portugal. Bulletin de la société mycologique de France XV 1890, p. 90), _Macrophoma dalmatica_ (~v. Thüm.~) ~Berl. et Vogl.~ (s. ~A. Maublanc~, Sur une Maladie des Olives due au Macrophoma dalmatica. ibid. XX 1904, p. 229), _Cylindrosporium Olivae_ ~L. Petri~ (s. Annales mycologici V 1907, p. 320). -- Ein eigentümlicher Hyphomycet ist _Cyclogonium oleagineum_ ~Cast.~, welcher in der Epidermisaußenwand der Blätter sein Mycel entwickelt und dunkle rundliche Flecke hervorruft, aber auch auf Fruchtstiele und Früchte übergeht. Er ist in neuerer Zeit in Frankreich, Italien, Algier und im Kaukasus beobachtet worden. (Über denselben s. ~Boyer~ in Journal de Botanique V 1891, p. 434.) -- Andere Erkrankungen wirken mehr indirekt auf den Fruchtertrag nachteilig ein; so die sogenannte Bruscakrankheit, die in neuerer Zeit auf den Discomyceten _Stictis Panizzei_ ~de Not.~ zurückgeführt wird und der Rußtau (_Capnodium salicinum_). -- Die wichtigsten Krankheiten des Ölbaumes behandelt ~L. Degrully~, L’Olivier, Montpellier 1907. -- Ein Verzeichnis der damals auf _Olea europaea_ bekannten Pilze gibt ~von Thümen~ in Bollettino della società Adriatica di Scienze naturali in Triest. Vol. VIII 1883, p. 215 ff. Die +tierischen Schädlinge+ sind beschrieben und abgebildet bei ~Degrully~ a. a. O. Dort auch die Beschreibung ihrer Bekämpfung (Fumigation etc.). Von tierischen Feinden werden genannt: die Olivenfliege (Mucha dell’ ulivo), _Dacus oleae_, deren Larve sich vom Fruchtfleische nährt und auch neuerdings wieder in Südfrankreich und Ligurien riesigen Schaden anrichtete und gegen die es noch kein Mittel gibt. Dann _Tinea oleella_ ~Fabr.~, die den Kern angreift, _Psylla oleae_ ~Fork.~, die die Blüten schädigt. Über den nach ~Trabut~ durch Bakterienimpfung durch Insekten zustande kommenden Olivenhonig vgl. oben S. 113. =Lit.= ~Cappi~, La coltivazione dell’ Olivo 1875. -- ~Trabut~, L’olivier en Algérie 1900 (mit Abbild.). -- ~Paoli a Tagliaferri~, La Mosca delle olive ed il modo di combatterla, Firenze 1909. -- ~D’Aygalliers~ a. a. O. =Kultur.= In Attika, dem klassischen Lande des Ölbaumes (~Herodot~ behauptet, daß es eine Zeit gegeben habe, wo +nur+ in Athen Ölbäume zu finden waren?), wurde die Olivenzucht und die Ölausfuhr staatlich überwacht. Im ganzen Altertum galt das Fällen von Ölbäumen als Verbrechen und die äußerste Grausamkeit des Feindes äußerte sich im Altertum und äußert sich noch heute im Niederhauen der Oliven, d. h. in der Vernichtung der Existenzbedingungen. Noch heute werden (z. B. in Sizilien und Sardinien) hohe Prämien auf die Anpflanzung der Olive gesetzt. An den Boden stellt der Ölbaum keine hohen Ansprüche. «Olea maxime collibus, siccis et argillosis gaudet» (~Columella~). Er liebt warme, trockene, durchlässige, poröse, kalihaltige Kalkböden. Die besten Oliven, das feinste Öl kommen von diesen. Überschwemmungen darf der Boden nicht ausgesetzt sein. Man legt die Olivenhaine gern auf terassierten sonnigen Hängen (Taf. XIV), nicht in der Ebene an. Auf feuchtem fettem Boden wird die Frucht größer, liefert aber weniger und schlechteres Öl. Der Ölbaum meidet Gegenden mit reichlichen, besonders zur Zeit seiner Fruchtreife niedergehenden Niederschlägen. Die Fruchtreife verlangt hohe, trockene Wärme -- je höher die Wärme, um so größer der Ölgehalt. Während z. B. 1909 1 dz Früchte 15,7 Liter Öl gaben, wurden in dem ungünstigen Jahre 1910 aus der gleichen Menge nur 14,8 Liter erzielt. Aber auch im Winter darf die Temperatur nicht stark sinken und Frühjahrsfröste sind besonders gefährlich. Doch kann der Ölbaum Temperaturen bis -8° aushalten, aber nicht lange. Die südliche und Polargrenze der Olive ergibt sich aus der Karte, ebenso die Verbreitung des Ölbaumes im Mittelmeerdrogenreich. Die Olive blüht im März (Südspanien, Nordafrika), April (Süditalien, Mittelspanien) oder Mai (Südfrankreich). Die Früchte werden im Laufe des Oktober reif. Doch dehnt sich die Ernte oft 3-4 Monate, ja über den ganzen Winter aus. Meist beginnt die Ernte im Oktober und endigt im März-April, nur ganz im Süden wird sie manchmal bis Juni hingezogen. Der Baum trägt nur an vorjährigem Holz Früchte. Die aus Samen erzogenen Oliven müssen gepfropft werden (die Samen keimen langsam, besser wenn sie zuvor in Aschenlauge gelegt werden). Zur Vermehrung werden außer Ablegern und Wurzelschößlingen auch die an den Wurzeln sitzenden Knoten (ovoli) benutzt, auch diese werden meist gepfropft. Die Kulturolive wird oft auf den Oleaster gepfropft. Die veredelten Ölbäume beginnen nach 3 Jahren Früchte zu tragen und kommen nach 8-10 Jahren zu vollem Ertrage, den sie dann bei guter Pflege (Düngung, Zurückschneiden) jahrhundertelang beibehalten können. Vom zehnten Jahre an ist der Baum rentabel. Man erntet die Olive, wenn sie ⅚ reif ist. Der Ertrag wechselt natürlich sehr. Ein großer Baum liefert in Italien bis 110 l Oliven, die etwa 13 kg Öl geben, in Sfax (Algier) ein volltragender Baum 320 l. Meist liefert ein ausgewachsener +Ölbaum+ aber nur durchschnittlich 63 kg Früchte. Vollernten erfolgen durchschnittlich nur alle 7 Jahre, in der Zwischenzeit ist der Ertrag unbedeutend (~Rickli~, Corsica). Meist folgt auf eine gute Ernte eine schlechte. In Italien rechnet man auf 3 Jahre 1½ volle Ernten. Doch erzielt man in Californien durch sorgfältige Pflege alle Jahre Vollernten. Man pflanzt die Bäume etwa in Entfernungen von 5 m oder weiter, damit das Licht leicht Zutritt findet. In Südfrankreich kommen 125-200 Bäume auf den Hektar, in Sizilien und Smyrna 100, in Tunis oft nur 17. In Mischkultur mit Olive ist (in Sizilien) Sumach, bisweilen auch die Rebe, in Corsika auch Weizen, Artischocken, Gerste oder Bohnen. Die Kultur der Olive ist bei ~Semler~ a. a. O. ausführlich beschrieben. =Verbreitung der Olivenkultur.= =Portugal= hat fast in seiner ganzen Ausdehnung, mit Ausnahme allein des Nordens (die Polargrenze fällt fast mit der politischen Grenze zusammen), Olivenhaine (oliveiras), 200000 ha sollen in diesem Lande unter Oliven stehen, doch ging die Olivenkultur lange Zeit zurück. Die Ausfuhr von Olivenöl betrug 1900: 379509 hl. Neuerdings hebt sie sich wieder. Viele Ortsnamen erinnern an die Olive (Oliveira, Olivaes, Azeitas). =Spanien= hat von allen Ländern die meisten Olivenhaine (1154000 ha sollen (1899) unter Oliven stehen) und liefert das schlechteste Olivenöl. Die nördlichen Gegenden haben, mit Ausnahme des Ebrotales, keine Olivenkultur, wohl aber die ganze Mittelmeerküste (Katalonien, Valencia, Murcia) die Balearen und große Bezirke des Innern um Madrid und südlich davon. Die für die Olivenkultur wichtigste Landschaft ist Andalusien, dann Katalonien und Aragonien. ~Willkomm~ schildert einen 90 km langen Olivenhain in Niederandalusien. Obenan stehen die Provinzen Cordoba und Sevilla. Dann folgen Lerida und Tarragona und in weitem Abstand Badajoz, Murcia, Ciudad Real, Toledo, Valencia, Malaga und Zaragoza. Spanien verbraucht selbst viel Oliven und Öl, exportiert aber doch noch jährlich für 18-57 Mill. Pes. Öl über Malaga, Sevilla, Cadiz, Barcelona. [Illustration: Tafel XV. Olivenernte, Racolta a mano, in Italien an einem ungewöhnlich großen und reichtragenden Baume.] [Illustration: Verbreitung der Olive im Mittelmeerdrogenreich. Mit Benutzung der Karte von Theobald Fischer gez. von A. Tschirch.] In =Frankreich= finden sich Olivenhaine nur im Süden an der Mittelmeerküste, vorwiegend in der Provence, Roussillon, Languedoc, Alpes maritimes, Var, Bouches du Rhône, sowie auf Corsika. Ein Teil des südfranzösischen Arrondissement Grasse ist ganz mit Oliven bestanden. Grasse liefert das feinste Öl der Provence, dann Aix und Nizza. 130-150000 ha sind mit Oliven bestanden, die etwa 2 Mill. dz Oliven liefern. Marseille ist ein wichtiger Handelsplatz für Olivenöl. Es führt viel aus Spanien und Tunis ein und viel auch aus. Nächst Spanien ist =Italien= das olivenreichste Land (900000 ha). Sein Landschaftsbild wird durch die Olive geradezu beherrscht. Nur Piemont hat keine Olivenzucht, sonst alle Landschaften, besonders die Küsten, fast ganz Sizilien und ein großer Teil Sardiniens. Obenan steht Apulien, dann folgt Sizilien und die Tyrrhenische Südregion, endlich Toskana, Marken und Umbrien, Ligurien, Latium, Sardinien. Eine italienische Mittelernte liefert 2-3 Mill. hl. Olivenöl, fast ebensoviel wie das viel mehr Oliven beherbergende Spanien. Italien führt Ol. oliv. besonders aus Bari, Palermo, Messina, Livorno, Genua, Gallipoli, Porto Maurizio, Neapel, Tarent aus. 1890 betrug die spanische Ernte 3, die italienische 1,3 Mill., die französische 300000 hl Oliven. Olivenkultur findet sich auch in Albanien, Epirus, Thessalien, Mittel-Griechenland (Olivenhain am Kephissos bei Athen), Peloponnes (Argolis, Messenien), Korfu, Leukas, Lesbos und anderen Inseln, besonders Kreta, das eine wahre Oliveninsel ist. Die jährliche Olivenproduktion =Griechenlands= beträgt c. 141 Mill. kg, wovon c. 6,5 Mill. kg exportiert werden, die jährliche Ölproduktion 25 Mill. kg, wovon die Hälfte exportiert wird (~Emmanuel~). In der =Türkei= sind namentlich am Marmarameere, auf den Inseln des ägäischen Meeres und in Kleinasien Olivenkulturen. Kleinasien hat aber für die Olivenzucht nur geringe Bedeutung, in Betracht kommt fast nur die Westküste und die ihr vorgelagerten Inseln (Chios, Samos). Cypern ist reich an Ölbäumen. Die Levante produziert jährlich c. 100000 t (Smyrna z. B. 1906: 15000 t). =Syrien= das Urland der Olivenzucht, hat auch heute noch viel Olivenhaine -- Alexandrette exportiert Öl -- und auch in +Palästina+ ist der Ölbaum häufig. Der Ölberg bei Jerusalem trägt noch heute Ölbäume. +Tripolis+, das im Altertum und Mittelalter zu den wichtigsten Bezugsländern für Olivenöl gehörte, deckt heute nicht einmal den eigenen Bedarf. Großen Aufschwung hat in letzter Zeit die Olivenzucht in =Tunis= und =Algerien= (Djurdjura) genommen, so z. B. um Sfax, im Sahel (Sahel bringt jetzt die besten Oliven hervor). Freilich zu der Bedeutung, die sie in diesen Ländern im Altertum besaß, ist sie noch lange nicht wieder gekommen. Immerhin erzeugt doch Tunis schon jährlich 30 Mill. Liter Öl. Im Sahel (Susa, Monastir) stehen c. 600 Quadratkm. unter Oliven. Auch =Marocco= besitzt (z. B. in Sus, Haha) viele Olivenhaine, die aber zum Teil bewässert werden müssen. Bedeutend ist die Olivenzucht in den Tälern des Atlas. Endlich findet sich die Olive auch noch auf den Canaren. Nach =Amerika= brachten den Ölbaum die Spanier, nach Mexiko 1519 ~Cortez~, nach Peru c. 1560 ~Ambrosio de Rivera~, nach Californien im XVIII. Jahrh. die Franziskaner. Jetzt finden sich Olivenpflanzungen auch in einigen südamerikanischen Staaten (Chile, Peru). Besonders nimmt aber die Kultur der Olive in Nordamerika einen großen Aufschwung, seit das Agricultur Department sich seiner angenommen hat. Schon 1907 deckte Kalifornien einen Teil des Bedarfes von U. S. A. Und auch in Südafrika und Südaustralien wird jetzt die Olive angepflanzt und Öl exportiert. 1902 zählte man in =Australien= schon c. 67000 Olivenbäume, die 11327 galls. Öl lieferten. (Nähere Angaben über die Verbreitung der Olive in ~Th. Fischer~, Der Ölbaum 1904.) Die californische Olivenzucht liefert vorwiegend Salzoliven. Die besten Salzoliven kommen aber von Andalusien. Die Olive gedeiht in Peru, Chile, Südcarolina, Florida, den Bermuden, auf Jamaica, im Südwesten der Kapkolonie, auf Kawau-Island (bei Auckland) bei Sydney, in Vorderindien und Japan -- in allen diesen Ländern sind Kulturversuche gemacht worden. Eine Karte der Verbreitung der Olivenkultur in Frankreich bei ~Degrully~ (a. a. O.). Die Kultur der Olive, die Pfropfung, Beschneidung, Düngung usw. ist beschrieben bei ~Degrully Trabut~, ~Cappi~ u. and. Lit. s. oben S. 610. Im übrigen vgl. die hier beigegebene Karte. [Illustration: Fig. 191. Sciarbottatojo. Apparat, welcher in Italien zum Waschen der Oliven gebraucht wird, links von außen, rechts innere Einrichtung. [+Ravasini.+]] [Illustration: Fig. 192. Einfache Ölmühle der Araber in Algier.] [Illustration: Fig. 193. Frantojo. Moderne Mühle, in der die Früchte zu einem Brei gemahlen werden.] [Illustration: Fig. 194. Strettoi, welche zum Pressen der mit dem Fruchtbrei gefüllten Fiscoli dienen.] =Erntebereitung.= Die Ernte ist in Italien verschieden. ~Ravasini~ berichtet mir darüber das Folgende. Entweder werden sie mit der Hand gepflückt (brucatura, raccolta a mano Taf. XV) -- dies ist unbedingt nötig, wenn man feine Tafeloliven oder feinstes Öl erhalten will -- oder vom Baume auf darunter gebreitete Tücher (I, S. 94) geschüttelt (scotitura) bzw. abgeklopft (bacchiatura, abbacchiatura) -- in Calabrien und Sizilien üblich -- oder die abgefallenen aufgelesen (raccattatura, raccolta a terra). Auch in Portugal werden noch jetzt die Früchte vielfach von den Bäumen abgeschlagen. Infolgedessen folgt auf ein gutes Jahr meist ein schlechtes (~Mastbaum~ 1904). Das Pflücken wird in Italien besonders von Frauen und Kindern besorgt, die die Früchte dabei in Tuchtaschen oder geflochtene Strohkörbe oder auf ein unter den Baum gebreitetes Tuch (recane) werfen. Die abgeklopften oder abgeschüttelten werden mit hölzernen rechenartigen Werkzeugen (in Calabrien cernigghi genannt) zusammengeharkt und dann in Strohkörben vereinigt. Diese werden auf dem Kopf oder den Schultern in die Ölmühle getragen. Hier werden sie von Erde, Blättern, Staub usw. befreit, die unreifen oder überreifen Früchte ausgelesen (cernita) und dann gewaschen. Das Waschen geschieht jetzt vielfach, besonders bei größeren Quantitäten, in besonderen Apparaten (sciarbottatojo), die diese Arbeit sehr vereinfachen (Fig. 191). Die gewaschenen Oliven kommen dann in die Ölmühlen (oleifici), die oft noch sehr primitiv sind (I, Fig. 174 und Fig. 192) und an denen die Bauern, von denen fast jeder Wohlhabendere eine Ölpresse besitzt, im Laufe der Jahrhunderte wenig geändert haben (vgl. I, Fig. 175). Erst in neuerer Zeit, wo sich die Ölpresserei allmählich zu zentralisieren beginnt, ist der Betrieb modernisiert worden. Die Oliven werden zunächst mit Mühlsteinen (frantoj), die, nicht bis zum Boden reichen also die Steinkerne nicht mit zertrümmern, zermahlen (frangitura) (Fig. 193). Der Brei des Fruchtfleisches wird nun in die oben und unten offenen, schon von ~Plinius~ erwähnten geflochtenen Körbe, +Fiscoli+ (Abbild. in I, Fig. 173) gebracht, von denen 20 bis 25 in den hölzernen oder eisernen Pressen (torchi, strettoi, Fig. 194) übereinandergepackt werden und nun mit der Hand gepreßt. Neuerdings werden in den größeren Etablissements auch hydraulische Pressen benutzt, aber am fiscolo hält man auch bei diesen fest. Das beste Olivenöl, wie solches in der Pharmazie ad usum internum benutzt wird, wird in Fabriken mit Dampfbetrieb aus bei beginnender Reife gesammelten, zuvor auf Horden oder in besonderen Trockenapparaten zum Trocknen ausgebreiteten Früchten durch mäßiges Pressen hergestellt. Eine zweite stärkere Pressung, die aber auch noch nicht die Kerne zertrümmern darf, liefert Secunda-Speiseöl und für medizinische Pflaster und Seifen benutzbares Öl, eine dritte Brenn- und Maschinenöl. Die erste Pressung, die in Frankreich nur 12% Öl gibt, liefert das beste Öl, das durch Baumwolle filtriert, als _Olio vergine_ (huile vierge, Jungfernöl) in den Handel kommt. Der Preßrückstand wird mit kaltem oder warmem Wasser nochmals zermahlen und dann wieder in die Presse gegeben. Dies zweite Öl (_Olio mangiabile_, _O. di seconda pressione_, _O. di pasta franta_, _O. di macina_, _O. di rinozzolo_) hat nicht mehr das charakteristische Olivenaroma wie das erste. Aus den Preßrückständen (sansa) erhält man mittels Schwefelkohlenstoff, Benzin, Petroläther oder Wasserdampf das gewöhnliche, nur technisch benutzbare +Baumöl+ (_Olio di sansa_, _O. di ciancia_, _O. al solfuro_, Sulfuröl, in Frankreich _huile de ressence_, _h. d’enfer_). Als Extraktionsmittel wird in Marseille außer Schwefelkohlenstoff auch Tetrachlorkohlenstoff verwendet. Das mit Schwefelkohlenstoff extrahierte Öl, das einen schlechten Geruch und Geschmack besitzt, kann durch Behandeln mit Alkohol verbessert werden. Die z. B. in Sizilien übliche Methode, die zerquetschten Oliven zunächst in einer Zisterne (enfer) gären zu lassen, führt zwar zu hohen Ölausbeuten, aber zu einem fettsäurereichen Öl (+Tournantöl+). Zur Herstellung ganz feiner Ölsorten werden die Früchte bisweilen geschält, d. h. von der äußersten Fruchthaut befreit, entkernt, das Fleisch in Mörsern zerrieben und zwischen Tüchern gepreßt. Eine Wertverminderung des Öls wird durch das Mitzerquetschen der Kerne nicht bewirkt, da bei dem gewöhnlichen Herstellungsverfahren nur geringe Mengen davon hineingelangen (~Passerini~) und die Samen nur Spuren einer Lipase enthalten (~Marcille~). Manchmal wird in Frankreich mit dem Pressen eine Art Schlemmprozeß in sog. Pastenmühlen (auf eine Pastenmühle kommen 6-10 Pressen) kombiniert. Die Preßrückstände werden mit Wasser zu einer Paste angerieben und diese durch Schlämmen mit Wasser in mit Rührwerken versehenen Bassins in die schwereren und die ölreicheren, leichteren Bestandteile getrennt, die dann gesammelt und in Tüchern gepreßt werden (Chem. Rev. 1903). Dies Öl ist minderwertig. Die Trester dienen als Dünger, die abgeschlemmten Steinkerne auch als Brennmaterial. Doch werden die Steinkerne (Olivenkerne) neuerdings auch auf Öl verarbeitet und gemahlen zur Verfälschung von Gewürzen benutzt. Über das Filtrieren und Zentrifugieren vgl. I, S. 134. Das in den ersten Monaten der Ernte gepreßte Öl ist dunkler und hat obstähnliches Aroma und einen etwas scharfen Geschmack, das Öl wird um so heller, dünnflüssiger und milder, je mehr sich die Olive ihrer Reife nähert. Der Versand erfolgt in Italien nicht vor dem Januar. Die anfangs trüben Öle klären sich beim Lagern während 90 Tagen in großen (meist mit Porzellan- oder Marmor- oder Tonplatten ausgekleideten) Zisternen, indem sich die Schleimteilchen usw. zu Boden setzen. Diese werden durch Watte abfiltriert. Die weniger guten Ölsorten werden oft in Raffinerien gereinigt. Dort werden die besseren Sorten nach Dekantation filtriert oder mit Citronensaft oder Eichenrindeauszug, bzw. einer Tanninlösung, die mit einem Weidenbesen eingerührt werden, geklärt, die schlechteren mit 0,5-2% Schwefelsäure behandelt. Ein Bleichen des Öls wird (außer durch Tannin) auch dadurch bewirkt, daß man das fein verstäubte Öl womöglich bei Sonnenlicht in ein mehrere Meter tiefer liegendes Wasserbassin fallen läßt. Die größte Ölmenge soll die in Spanien kultivierte var. _hispanica_, das feinste Öl die in der Provence und bei Genua und Lucca kultivierte var. _pignola_ liefern. Oliven, deren Fleisch nicht das dreifache Gewicht des Kernes hat, geben zu wenig Öl aus (~Coutance~). Die Qualität des Öles ist abhängig von der Olivensorte, dem Reifegrade der gepreßten Frucht, der Art des Erntens und dem Verfahren beim Pressen. Die feinsten Öle werden auf Flaschen abgezogen, die anderen auf Fässer bzw. Barells. Die +Oliven in Salzwasser+ (Colymbades) finden sich während mehrerer Monate als Nachtisch jeder italienischen Mahlzeit, werden aber auch viel exportiert. Die Olive muß, um hierzu tauglich zu werden, nur ¾ reif sein und zuvor 6-12 Stunden in eine Kalk-Pottaschelauge eingelegt und dann sorgfältig während mehrerer Tage gewaschen, d. h. vollständig entbittert werden. Dann legt man sie in Salzwasser, wechselt dies alle Monate einmal und fügt schließlich etwas wilden Fenchel hinzu (~Ravasini~). Beschreibung anderer Methoden der Olivenpickelsbereitung bei ~Semler~. =Lit.= ~Mingioli~, Manuale pratico di oleificio 1871 und Oleificio moderno in Nuova Enciclopedia agraria italiana. Torino 1901 (m. zahlr. Abbild.). -- ~Semler~, Trop. Agrikult. -- ~Skinner~, Ölindustrie in Frankreich. Consularbericht in Oil, Paint and Drug. Rep. 1903 (Chem. Rev. d. Öl- u. Harzind. 1903, 188). -- Über die Veränder. d. Oliven von der Ernte bis zur Verarbeitung vgl. die Unters. d. Versuchsstat. in Lissabon (Ref. in Chem. Rev. 1904, 39). -- Die Mühlen, Pressen, Wasch- und Raffinierapparate sind abgebildet bei ~Mingioli~ a. a. O. -- Die primitive Gewinnung des Olivenöls auf Mallorca beschreibt ~Pollatschek~ (Chem. Rev. 1907, 4). =Handelssorten.= Von den italienischen Ölen sind die aus der Riviera, aus Toskana (Lucca, Pisa), Apulien (Bari, Bitonto, Gallipoli) die geschätztesten, die Provinzen Marken, Umbrien, Latium liefern gute Speiseöle, Sizilien dagegen minderwertige Sorten. Die besten Sorten (Jungfernöl) werden als +Provencer+, +Aixer+, +Genueser+ oder +Lucca+ Öl bezeichnet -- Provenceröl ist eine Qualitätsbezeichnung und keineswegs nur für Öl aus der Provence in Gebrauch --, die Sekundasorten (Baumöl, grünes Olivenöl, huile lampante, h. marchande) als Gallipoli-, Puglieser-, Bari-, Lecce-, Monte San Angelo-Öl, Tertiasorten kommen von Messina, Malaga, Korfu und Tunis. Die schlechtesten, zur Seifenfabrikation benutzten Öle heißen Lavati (gewaschene), auch Nachmühlenöl, Höllenöl, Sottochiari. Dann ist auch gebleichtes sog. weißes Baumöl (als Maschinenöl, Lilienöl) und Ol. oliv. denaturatum (zur Seifenfabrikation, mit Nelken- oder Rosmarinöl denaturiert) im Handel (~Weigel~ 1904). In Italien werden die Öle eingeteilt in: I. Oli commestibili: 1. sezione oleinati; a) oli vergini, b) oli mangiabili; 2. sezione stearinizzati: oli grassi. II. Oli non commestibili: 1. materia prima avariata, o fondacci di oli di semi di olive: oli avariati, 2. oli estratti dai residui: a) oli di sansa o di panelli, b) oli di morchia o di semi, c) oli d’inferno, d) oli al solfuro; 3. oli alterati, a) oli rancidi, b) Oli inaciditi. Tunesisches Öl kommt aus dem Norden (Tunis, Bizerte, Cap Bon, Medjerdah), dem Zentrum (Sousse, Mahdia, Monastir), dem Süden (Gabès, Safsa, Djerba) und von Sfax. Außer den französischen und italienischen Ölen sind auch spanische, portugiesische, griechische, dalmatinische, syrische, marokkanische, türkische, Krim, persische, indische (Pendschab), australische und kalifornische Olivenöle im Handel. Bedeutenden Aufschwung nimmt die Ölproduktion in Californien und Südaustralien. Californien z. B. ist schon jetzt ein wichtiges Produktionsland für Oliven geworden. Im Geschmack stehen die toskanischen Öle obenan, dann folgen die ligurischen. Die californischen stehen diesen weit nach. Im deutschen Handel war 1911 neben italienischem Öl -- Baumöl und Speiseöl -- (in Brls. und Fässern von 50, 180, 200 kg) auch Malaga-, Marokko- und Candiaöl zu finden. =Handel.= Der Ertrag an Olivenöl betrug in +Italien+ 1909/10: 2127097 hl. Das meiste lieferte die adriatische Seite (838050), dann die Mittelmeerseite (521010) und Sizilien (435176); weniger Toskana, Latium, Sardinien und die Marken. Unbeträchtliche Mengen: Lombardei, Ligurien, Venetien, Emilia. (Nach ~Ravasini~ betrug die Olivenölproduktion Italiens 1909: 2559200 hl, 1910: 1384580 hl.) Die Olivenernte betrug 1909: 15292000, 1910: 9366200 dz (Normalernte 20,3 Mill. dz). +Italien+ exportierte olio d’oliva lavato al solfuro 1907: 124881, 1908: 78242, 1909: 55668 und olio d’oliva d’altra specie 1907: 388427, 1908: 368788, 1909: 184481 (1910 im Ganzen 205054) dz. Die +Vereinigten Staaten von Nordamerika+ importierten olive oil (for Mfg. purposes) 1908: 1789001, 1909: 695223 gallons und olive oil (Salad) 1908: 3548649, 1909: 3728386 gallons. +Hamburg+ importierte 1908 34275 dz. +Olivenöl+; davon kamen aus Marokko: 9918, Frankreich: 7314, Italien: 6201, Spanien: 5343, Griechenland: 2477, weniger als 1000 dz aus Kleinasien, der europäischen Türkei, Tunis, Algier, Portugal usw. Die Einfuhr von Olivenöl nach +London+ betrug 1906: 2658, 1907: 7512, 1908: 8953, 1909: 5072 casks. +Frankreich+ importierte 1908 492149 Quint. +Olivenöl+, besonders aus Spanien und Tunis, dann aus Algier, Italien und Griechenland, wenig aus der Türkei und Marocco. [Illustration: Fig. 195. Zweig eines Olivenbaumes (Sorte Rouget). [Nach +Degrully+, L’olivier.]] =Morphologie und Anatomie der Frucht.= Die Form der Frucht wechselt nach der Sorte und ebenso die Größe. Einige Sorten sind groß wie eine Aprikose, andere erreichen nur die Größe einer kleinen Kirsche -- alle sind mehr oder weniger oval (Fig. 195) oder kugelig-eirund, am Scheitel stumpf oder etwas zugespitzt, meist c. 2 bis 3,5 cm lang, an der Oberfläche glatt, kahl. Der sehr harte Steinkern ist schief-länglich oder keulenförmig, etwas zusammengedrückt (Fig. 195), spitz, gefurcht oder grobrunzelig, gelblich oder bräunlich, durch Fehlschlagen meist einfächerig und einsamig. Der Same ist 9-11 mm lang, länglich zusammengedrückt, mit reichlichem Endosperm versehen. Die anfangs grüne Frucht wird beim Reifen erst rot, dann schwarz. Das Verhältnis der drei Bestandteile ist bei frischen Oliven: Fleisch mit Schale 71,5-80,5%, Stein 17,3-23%, Samen 2-5,5% (~Schädler~, ~König~). Die Epidermis der Fruchtschale besteht aus dickwandigen polygonalen Zellen, die ebenso wie die folgenden Parenchymreihen bei der reifen Frucht einen purpurnen Farbstoff enthält, der durch konzentrierte Schwefelsäure sich rot färbt (~Hanausek~). Das Mesocarp besteht vorwiegend aus ölführendem Parenchym, in das große +Astrosklereïden+ eingestreut sind, deren Wand durch Alkali gelb wird. Das als 1-3 mm dicke Steinschale entwickelte Endocarp besteht aus fest miteinander verzahnten Sklereïden, die oft bis fast zum Verschwinden des Lumens verdickt sind und ziemlich mannigfache Formen zeigen (die «Matta Livorno», die zur Gewürzfälschung benutzten gemahlenen Olivenkerne, besteht fast ganz aus ihnen). Zu innerst liegt eine Schicht obliterierten Parenchyms (~Moeller~). Die Samenschale besteht, abgesehen von der relativ großzelligen Epidermis mit dickwandigen, von der Fläche betrachtet knotig gegliederten Zellen, aus der zum Teil obliterierten Nährschicht, in der die Bündel verlaufen, der Same besonders aus dem großen Endosperm, in dem sich zahlreiche in Ölplasma eingebettete Aleuronkörner finden. Auch das zartzellige Gewebe des Keimlings enthält dergleichen. Die Entwicklungsgeschichte von Frucht und Same bei ~Alquati~ (s. Lit.). Während früher (~de Luca~, ~Gerber~) das Mannit als das Material bezeichnet wurde, aus dem das Öl in der Olive entsteht -- Mannit kommt aber in den Früchten der Olive nicht oder nur in geringer Menge vor, nur in den Blättern ist er reichlich zu finden; lufttrockene Blätter enthalten c. 3,4%, die Rinde 1,9% d-Mannit (~Power~ und ~Tutin~) -- hat ~Hartwich~ d-Glukose, die sich in den Früchten nachweisen läßt, als Muttersubstanz angenommen, conform den Vorstellungen ~Emil Fischers~ (S. 4). Stärke kommt auch in der jungen Frucht nur in den Schließzellen der Spaltöffnungen vor. Das Öl entsteht im Plasma der Zelle. Über die besonders durch die Sklereïden und die Samenschalepidermis charakterisierten +Oliventrestern+ (tourteau de ressence) vgl. bei ~Vogl~ (a. a. O., Fig. 264) und ~Collin-Perrot~ (a. a. O., Fig. 81). =Lit.= ~Bottini~, Sulla struttura dell’ oliva. Nuov. giorn. bot. it. 21 (1889), 369. -- ~Papasogli~, Stud. genet. e morfolog. sull’ ulivo. Nuov. giorn. bot. ital. X. -- ~Piera Alquati~, Stud. anatomici e morfologici sull’ ulivo. Att. Soc. Ligust. scienze naturali XVII, 1906. -- ~Pirotta~, Contrib. all’ anat. comp. della foglia, I. Oleaceae 1885. -- ~Böhmer~, Ölkuchen in ~Dammers~ Lexikon. -- ~T. F. Hanausek~, Nahrungs- u. Genußm. u. Zeitschr. Nahr. Unters. 1894, 95. -- ~Landrin~, Falsific. d. poivre à l’aide des grignons d’olive. Journ. pharm. 10, 194. -- ~Macé~, Subst. aliment. 1891. -- ~Moeller-Winton~, Mikroskopie, Fig. 364 u. 365. -- ~Schimper~, Anleit. z. Unters. Nahr.- u. Genußm. 1900. -- ~Vogl~, Nahrungs- u. Genußm. -- ~Villiers-Collin~, Substanc. aliment. -- ~Collin-Perrot~, Residus industr. -- ~Harz~, Über d. Entsteh. d. fett. Öls in d. Oliven. Sitzungsber. d. Wien. Akad. 1870. -- ~Spampani~ (Bild. d. Öls in d. Olive). Bull. soc. bot. ital. 1899, 139. -- ~de Luca~, Rech. sur l. form. d. l. mat. grasse dans l. olives. Ann. sc. nat. bot. (4) 15, 92 und 18, 125. -- ~Gerber~, Rech. sur l. respir. d. olives et sur l. relat. exist. entre les valeurs du quotient respirat. et la format. de l’huile. Journ. bot. 1901. -- ~Hartwich~ u. ~Uhlmann~, Nachw. d. fett. Öles u. s. Bild. bes. in d. Olive. Arch. Pharm. 1902, 471. -- ~Uhlmann~, Entsteh., Vorkommen u. Nachw. d. fett. Öls m. bes. Berücks. d. Olivenöls. Dissert. Zürich 1902. =Chemie.= Die Olive zeigt folgende Zusammensetzung: ---------------------------+--------+--------------------------+ | | In der | | | natürlichen Substanz | Nach König |--------+------+------------+------+ a. a. O. | Anzahl | % | % |% Fett| | der |Wasser|Stickstoff- | | |Analysen| |substanz | | ===========================+========+======+============+======+ | | | | | | | | | | | | | | | Oliven- { a) Fruchtfleisch | 2 | 30,07| 5,24 | 51,90| frucht { b) Steinschale | 2 | 9,22| 3,50 | 2,84| { c) Samen | 2 | 10,5 | 18,63 | 31,88| ---------------------+-----------------------+----------------------- | In der | In der | natürlichen Substanz | Trockensubstanz Nach König |-----------+-----+-----+--------+------+------- a. a. O. | % | % | | % |% Fett| % |Stickstoff-| Roh-| % | Stick- | |Stick- | freie |faser|Asche| stoff | |stoff | Extrakt- | | |substanz| | | stoffe | | | | | =====================+===========+=====+=====+========+======+======= | | | | | | | | +-----+----+ | | | | | | | | | | { a) Frucht- | | | | | Oliven- { fleisch | 10,49 | 2,34| 7,49 | 74,22| 1,19 frucht { b) Stein- | | | | | { schale | 83,32 | 1,12| 3,85 | 3,68| 0,61 { c) Samen | 36,75 | 2,16| 20,83 | 35,65| 3,33 Die Früchte enthalten die Enzyme +Olease+ (~Tolomei~) und +Emulsin+ (~Bourquelot~), ein rotes +Pigment+ (~Landerer~) und Wachs. Das in allen Teilen des Ölbaumes enthaltene Glykosid +Oleuropein+, dessen Einheitlichkeit von ~Power~ und ~Tutin~ bezweifelt wird, ist am reichlichsten in den Früchten am Ende Juli zu finden (~Bourquelot~ und ~Vintilesco~). Die Asche beträgt bei dem Fleisch 2,68, bei dem Stein 4,16, bei dem Samen 2,16%; bei Kaligehalt der drei 80,9 bzw. 58,8 bzw. 30,25%; der Phosphorsäuregehalt 1,33 bzw. 16,74 bzw. 28,24%; der Kalkgehalt 7,46 bzw. 7,45 bzw. 30,39% (~König~). Der Ölgehalt der Früchte steigt vom August (5,02%), September (16,3%), Oktober (21,33%), Dezember (22,73%) bis Januar (22,85%) und sinkt dann im Februar etwas (20,84%, ~Hartwich~ u. ~Uhlmann~). Der Gehalt der Früchte an Öl variiert zwischen 20 und 70 (~Benedikt-Ulzer~), 40 und 60% (~Lewkowitsch~, im Fruchtfleisch: 50-70%). -- Zur Bestimmung ist Schwefelkohlenstoff zu benutzen, nicht Äther (~Peano~). =Olivenöl=, =Oleum olivae s. olivarum= [Provenceröl, huile d’olive (franz.), olive oil (engl.), olijfolie (holl.), olio d’oliva (ital.), puuöljy (fin.), olivaolaj (ung.), ἔλαιον ἐλαιῶν (griech.)]. Die Farbe des Olivenöls schwankt von farblos bis goldgelb. Geringe Sorten sind oft durch Chlorophyll grün gefärbt. Die Zusammensetzung des Öls variiert nach der Kulturvarietät, dem Reifegrad, der Erntemethode und dem Verfahren der Pressung. Die Elementarzusammensetzung des Olivenöls ist C = 76,67 (77,2), H = 11,95 (11,3), O = 11,38 (11,5)% (~König~). Olivenöl löst sich nur sehr wenig in Alkohol, etwas mehr in Eisessig, besser in Äther, leicht in Chloroform, Benzol und Schwefelkohlenstoff. Beim Durchschütteln von 2 ccm Olivenöl mit 1 ccm rauchender Salpetersäure und 1 ccm Wasser entsteht (bei 10°) ein grünlich-weißes Gemenge, das nach 2-3 Stunden in eine feste weiße Masse und eine kaum gefärbte Flüssigkeit sich scheidet. Bei dieser sog. +Elaidinprobe+ liefert Olivenöl von allen Ölen das härteste Elaidin und wird am schnellsten (höchstens in 3 Stunden) fest. Nach dem Eintragen in konz. Kali, dem konz. Ammoniak zugesetzt wurde (Vorschrift bei ~Hartwich-Uhlmann~), ist infolge kalter Verseifung und Ausscheidung von fettsauren Salzen nach 22 Stunden der ganze Tropfen in ein Haufwerk von Nadeln umgewandelt, zwischen denen Sphärite sichtbar sind. Die +festen+ Fettsäuren bestehen aus +Palmitinsäure+ und +Arachinsäure+. Stearinsäure fehlt (~Hehner~ und ~Mitchell~). Bei italienischen Ölen beträgt der Gehalt an festen Fettsäuren 5-17,72, bei californischen 2-12,96% (~Tolman~ und ~Munson~), bei tunesischen 15-25% (~Bertainchaud~). Letztere Öle erstarren schon bei +10° und werden daher oft «demargariniert». In algerischen und tunesischen Olivenölen finden sich höchstens ganz geringe Mengen Arachin- und Lignocerinsäure. Die +flüssigen+ Glyceride enthalten auf 93% +Ölsäure+ c. 7% +Linolsäure+ (~Hazura~ und ~Grüssner~). ~Holde~ und ~Stange~ erhielten 1-2% eines gemischten Glycerids (+Oleodimargarin+ oder Oleodidaturin oder Oleodipalmitin?) und auch im festen Anteil sind gemischte Glyceride vorhanden (Margaro- oder Palmitoolein?). +Freie+ Fettsäuren enthält gutes Olivenöl wenig, die technischen Öle dagegen oft 5-25% (~Archbutt~, weitere Lit. darüber bei ~Benedict-Ulzer~). Das Tournantöl (s. oben S. 616) enthält eine große Menge (26%) freier Fettsäuren. Auch im «Olivenölfett», in ligurischen und sardinischen Sulfurölen sind viel freie Fettsäuren (46-57%) enthalten, in portugiesischen Bagasseölen sogar 60-70%. Alle diese Öle sind aus gegorenen Trestern bereitet, die eine fettspaltende Lipase (Olease, ~Tolomei~) enthalten. Die flüchtigen Fettsäuren (auf Ölsäure berechnet) betragen 0,18-1,69% (~Dugast~). In ranzigem Olivenöl wurden gefunden: Ameisen-, Essig-, Önanthyl-, Azelaïn- und Korksäure, sowie Önanthaldehyd (~Skala~). Das spez. Gewicht beträgt 0,9141-0,9203, meist unter 0,917 (Schweiz. Lebensmittelbuch: 0,916-0,918 bei 15°, 0,862-0,863 bei 100°). Der Erstarrungspunkt liegt zwischen -6 und +10°, die Verseifungszahl beträgt 185-203, die Jodzahl 78,28-93,67 (bei guten europäischen Ölen meist zwischen 81,6 und 84,5, Schweiz. Lebensmittelb.: 79-88) -- je reifer die Olive, desto höher die Jodzahl des Öls (~Paparelli~) -- die Bromzahl 51,2-54 (~Telle~), die Reichert-Meißlzahl 0,6, die Hehnerzahl 94,96-95,14%, die Maumenéprobe 41,5-47°, die Bromthermalprobe 13,5-15°, der Brechungsexponent ist (bei 40°) 1,4612-1,4626 (Pharm. helv. IV), die Butterrefraktometerzahl (bei 15,5) 66,9-69,2 Skalenteile (Schweiz. Lebensmittelbuch: Refraktionszahl [bei 40°] 53-55). Die Fettsäuren zeigen den Erstarrungspunkt bei 17-24,6°, Schmelzpunkt bei 19 bis 31°, die Jodzahl 86,1 bis 90,2 (die flüssigen Fettsäuren haben die Jodzahl 92,8 bis 104,2). Das elektrische Leitvermögen ist weit geringer als das aller anderen Öle (675mal kleiner als das des sonst schlechtest leitenden Öles, ~Rousseau~). Man bestimmt es mit dem ~Palmieri~schen Diagometer. Der Entflammungspunkt liegt bei 240° (~Rakusin~). Es dreht rechts (~Thurston~). Olivenöl neigt wenig zum Ranzigwerden. Beim Ranzigwerden nimmt die Verseifungszahl zu, die Jodzahl ab (~Ryan~ und ~Marschall~). Das Unverseifbare beträgt 0,46-1,62%, meist weniger als 1%. Es ist vornehmlich +Phytosterin+ (~Bömer~, ~Soltsien~, ~Gill~ und ~Tufts~), von ~Beneke~ 1862 hier gefunden, daneben findet sich ein unverseifbares Öl, +Ampelosterin+ (~Sani~). Olivenöl ist der Typus der nichttrocknenden Öle. Es gibt daher bei der Maumenéprobe und der Bromthermalreaktion die geringste Temperaturerhöhung (~Lewkowitsch~). Der bittere und herbe Geschmack einiger Öle rührt von Eugenol, Catechin, Gallussäure, Tannin und einem unbekannten Bitterstoffe her (~Canzoneri~). Kupfer scheint ein normaler Bestandteil des Olivenöls zu sein. Kupfern der Bäume erhöht den Gehalt (0,5 mg pro kg Öl) an Cu nicht (~Passerini~). Neuerdings wird auch aus +Olivenkernen+, d. h. den noch in der Steinschale eingeschlossenen Samen Öl (+Olivenkernöl+, huile de noyaux d’olive, olive kernel oil, olio di noccioli d’oliva) gepreßt bzw. extrahiert. Das Öl enthält 10% feste Fettsäuren, unter denen Palmitinsäure und Stearinsäure, aber keine Arachinsäure sich findet. +Oliventrester+ enthalten in % im Durchschnitt: Wasser 8,38, Stickstoffsubstanz 8,25, Fett 15,25 (nach ~Décugis~ bis 29,15), in Zucker überführbare Substanz 13,59, sonstige stickstofffreie Stoffe 14,92, Rohfaser 37,05, Asche 2,56, Alkoholextrakt 2,46. =Lit.= ~Beneke~ (Phytosterin), Studien, Gießen 1862. -- ~Klein~, Zeitschr. angew. Chem. 1898, 848 u. 1900, 635 u. 904. -- ~Tolomei~, Atti Real. Accad. d. Lincei 1896. -- ~Bourquelot et Vintilesco~, Journ. pharm. chim. 1908, 303 u. 1910, 292. -- ~Power~ und ~Tutin~, Oleuropein. Pharm. Journ. 1908. -- ~König~, Nahrungs- u. Genußm. (dort weit. Lit.). -- +Öl+: ~Hehner~ und ~Mitchell~, Analyst 1896, 328. -- ~Archbutt~, Journ. Soc. Chem. Ind. 1897, 311. -- ~Hazura~ und ~Grüssner~, Monatsh. f. Chem. 1888. -- ~Holde~ und ~Stange~, Mitt. d. Techn. Vers. Anst. Berlin 1901 und 1902. -- ~Dugast~, L’industrie oléicole 1904. -- ~Sani~, Att. Acc. Linc. 1900 und Staz. sperim. agrar. ital. 1902, 701. -- ~Beneke~, Studien, Gießen 1862. -- ~Gill~ und ~Tufts~, Journ. amer. chem. soc. 1903, 498. -- ~Soltsien~, Zeitschr. öffentl. Chem. 1901, 184. -- ~Bömer~, Zeitschr. Unters. Nahrm. 1898. -- ~Skala~, Staz. sperim. agrar. ital. 30 (1897), 613. -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. (dort die Lit.). ~Benedict-Ulzer~, Analyse d. Fette. 5. Aufl. 1908 (dort weitere Lit.). -- Zahlreiche Aufsätze in der Chem. Rev. der Fett- und Harzindustrie der letzten Jahre. -- ~Hartwich~ und ~Uhlmann~, Nachweis fett. Öle durch mikrochem. Verseif. Arch. Ph. 1903, 11. -- ~Russell W. Moore~ (Best. d. freien Fetts. im Olivenöl). Chem. Zeit. 1900, Rep. 122. -- ~Bach~ (Einfl. von Denaturierungsmitteln), Zeitschr. f. öffentl. Chem. 1897, 169. -- ~Rakusin~, Entflammungspunkt. Chem. Zeit. 1905, 690. -- ~Thurston~, Mercks Rep. 1907. -- ~Lefeldt~, Ber. pharm. Ges. 1906. -- Jodzahl: ~Thomson~ und ~Dunlop~, Analyst. 1906. -- ~Helfenberger~ Ann. 1905. -- ~Bachmann~, Proc. Minnes. Ass. 1907. -- Baudouins Reaktion: ~Evans Sons Lescher~ und ~Webb~, Analytical Notes 1906/07. -- Licht: ~Droste~, Apoth. Zeit. 1907. -- Cu in Olivenöl: ~Braithwait~, Pharm. Journ. (3) 18, 12 und ~Passerini~, Chem. Centralbl. 1906, II, 541. Year book 1907, 116. -- ~Canzoneri~, Gazz. chim. it. 27, II, 1. Über algerische Olivenöle vgl. ~Archbutt~, Journ. soc. chem. ind. 26 (Chem. Rev. 1907, 200, 1908, 19) und ~Dugast~, Zeitschr. angew. Chem. 1904, 821. -- ~Millian~ (tunesische Öle). Zeitschr. Nahrungsm. 1904, 586. -- ~Guozdenovič~ (dalmatin. Öl). Zeitschr. Nahrm. Hyg. 1897, 181. ~Ahrens~ und ~Hett~, Über marokkanisches Öl. Zeitschr. öffentl. Chem. 1903, 284. -- ~Tolman~ u. ~Munson~ (Californ. Olivenöl). Journ. am. chem. soc. 1893 und 1903, 956. -- ~Moerk~ (Verschied. Öle), Am. journ. pharm. 1889. Über die Bestandteile der Blätter und der Rinde vgl. ~Power~ und ~Tutin~, Constit. of olive bark und C. of olive leaves. Transact. Chem. Soc. 1908. =Verwendung.= «Zwei Flüssigkeiten gibt es», sagt ~Plinius~ (XIV, 150), «die dem menschlichen Körper angenehm sind, innerlich Wein, äußerlich Öl» und auch der hundertjährige ~Pollio Romilius~ und der die 100 Jahre überschreitende Philosoph ~Demokrit~ erhielten sich durch Wein, Honig und Öl so lange gesund. Die Lampe der Stiftshütte, wie die vor dem Bilde der ~Athene~ wurde ebenso mit Olivenöl gespeist wie heute die ewige Lampe in St. Peter in Rom. Mit Olivenöl wurden alle Könige gesalbt von ~Saul~ und ~Chlodwig~ bis auf unsere Tage, und die letzte Ölung haben mit ihm unzählige Menschen erhalten. Für viele Millionen ist im Mittelmeergebiet seit dem Altertum bis heute die Olive und ihr Öl unentbehrliches Nahrungs- und Genußmittel, für viele Gegenden wichtigster oder gar einziger Exportartikel. Überall wo die Olive vorkommt, wird das meiste Öl im Lande selbst verbraucht. Olivenöl wird in der Medizin als einhüllendes Mittel bei Magen- und Darmentzündungen, Vergiftungen usw., zu medizinischen Ölen, Salben, Linimenten, Seifen und Pflastern verwendet. Im Var dienen die Oliventrester als Schweinefutter. Außer zur Ölbereitung, zu der allgemein kleinfrüchtige Sorten herangezogen werden, werden die Oliven, besonders die großfrüchtigen, auch zur Herstellung der sog. Salzoliven benutzt, die eine beliebte Zuspeise sind (s. oben). Auch das Olivenholz ist wegen seiner schönen Zeichnung sehr geschätzt. Olivenhonig erwähnt schon ~Dioskurides~ (I, Cap. 37, περὶ ἐλαιομέλιτος). =Verfälschungen.= Olivenöl wird mit Sesamöl, Rüböl, Nußöl, Baumwollsamenöl, Mohnöl, Arachisöl (mit Arachisöl verfälschtes Olivenöl ist als Nut sweet oil im Handel) und Schmalzöl (dem flüssigen Teile des Schweinefettes) verfälscht, neuerdings auch mit +Mineralöl+, das mit Methylazodimethylanilin gefärbt war (~Cutolo~ 1910). Man achte auf die oben (S. 619) angegebenen Konstanten! Alle zur Verfälschung des Olivenöls benutzten Öle haben höhere Jodzahlen. Olivenöl färbt sich nicht mit HNO₃ spez. Gewicht 1,4, gibt zumeist weder die ~Bellier~-, noch die ~Baudouin~-, noch die ~Allen~-, noch die ~Soltsien~-, noch die ~Halphen~-Reaktion. (Weiteres bei ~Lewkowitsch~ a. a. O.) Bei tunesischem Olivenöl tritt aber bisweilen die ~Baudouin~sche Reaktion ein (~Marcille~ 1909), -- auch bei italienischen Ölen beobachtet (~Behre~) -- die Färbung verschwindet aber meist rasch (~Zega~ und ~Todorovic~). Auch die ~Kreis~sche Phloroglucin-Salpetersäure-Reaktion tritt bei Olivenöl bisweilen schwach ein (~Dietze~). Dagegen ist bisher kein Olivenöl beobachtet, das die ~Soltsien~sche Zinnchlorür-Reaktion (Zeitschr. f. öffentl. Chem. 1897, 63) gab (~Behre~). Zu beachten ist auch, daß ~Belliers~ Reaktion nur bei +frischen Samen+ölen eintritt (~Soltsien~ erhielt sie auch einmal bei Palm-[Fruchtfleisch-]öl). Die tropischen Öle der _Cocos-_ und _Ölpalme_, von _Sesam_ und _Arachis_ beginnen das Olivenöl zu verdrängen, namentlich seit 1908/09 eine Olivenmißernte in Italien eintrat. Selbst der D. A. V ersetzt das _Ol. olivarum commune_ durch _Ol. arachidis_ und _Sesami_. Doch ist der Name «+Olivenöl+» auch nach den Beschlüssen des internationalen Kongresses zur Unterdrückung von Nahrungsmittelfälschungen 1909, der die Namen «bestes Speiseöl» und «feinstes weißes Tafelöl» auch für mit Baumwoll-, Erdnuß- oder Sesamöl versetzte Olivenöle freigab, nur für das Öl der Olive reserviert worden. Neuerdings (1909) wurde reines Baumwollöl (~Barnard~) und reines Sesamöl (~Rickle~ und ~Kurtz~) als «Olivenöl» im Handel angetroffen. Das sog. «Javaolivenöl» stammt von einer _Sterculia_ (~Kreis~). =Lit.= Prüfung des Olivenöls bei ~Benedict-Ulzer~ und ~Lewkowitsch~. -- ~Tolman~ and ~Munson~, Olive oil and its substitutes. U. S. Dep. Agric. Bur. chem. Bull. 77, 1903. -- ~Tortelli~ und ~Ruggeri~, Meth. z. Nachw. von Baumwollsamen-, Sesam- und Erdnußöl im Olivenöl. Chem. Zeit. 1898, 600. -- ~Blarez~ (Nachweis von Arachisöl im Olivenöl). Chem. Centralbl. 1907, I, 767. -- ~Marcille~, Ann. d. falsific. 1909, 224. -- ~Dietze~, Pharm. Zeit. 1909, 260. -- ~Behre~, Pharm. Centralh. 1907, 489. -- Sesam und Leinöl: ~Ridgely~, Oil, Paint and Drug Rep. New York 1907. -- Arachisöl: ~Blarez~, Bull. soc. pharm. Bord. 1906, 295. -- Cottonöl: ~Barnard~, Rep. Indiana Bd. Health 1906, 294. -- ~Späth~, Süddeutsch. Apoth. Zeit. 1906, 136. =Geschichte.= «Der Ölbaum gehört zu den Erziehern der Menschheit zu höherer Ordnung» (~Th. Fischer~). «An ihm haftet die Poesie der menschlichen Kultur. Wenn man unter einem grauen Ölbaume am Meeresstrande sitzt, wird man in das fromme sonnige Morgenland entrückt, wo unsere Phantasie zu Hause ist, seitdem uns die Mutter die Bilderbibel aufschlug und vom Ölberge in Jerusalem erzählte. Und wieder rauscht aus diesem Baume die Poesie der Hellenen und die Weisheit der Minerva und sie versetzt uns in das Land des ~Homer~, des ~Pindar~ und ~Äschylus~ und unter die Musen und Götter des Olymp. Ein christlich-hellenischer Baum ist der Ölbaum, ein doppelt heimischer» (~F. Gregorovius~). Der Ausgangspunkt der Olivenkultur ist unbekannt (Kilikien?, Syrien?). Die orientalischen Völker haben aus ihm eine Kulturpflanze gemacht. In das Mittelmeergebiet wurde die domestizierte Olive vom Osten her eingeführt. Die Kultur der Olive hat sich auf der Linie Ägypten-Syrien-Kleinasien-Griechenland verbreitet (~Schrader~). ~Engler~ und ~Schrader~ nehmen an, daß sich der wilde Ölbaum über das Mittelmeer verbreitete, bevor er domestiziert wurde. Ölbaum, Feige und Weinstock waren im Altertum die Sinnbilder des Wohlstandes und Glückes. Nach ~Maspero~ soll der Ölbaum in Ägypten seit den ältesten Zeiten sich finden, da sein Name schon in Texten der VIII. Dynastie erwähnt wird (?). Er scheint dorthin frühzeitig gekommen zu sein. Auf Inschriften wird er (I, S. 468) als bek, bek-t, beka, baka erwähnt und ist auf Denkmälern dargestellt, z. B. auf dem Gartenplane zu Tell-el-Amarna aus der XVIII. Dynastie (~Wönig~, Fig. 154). Ölblätter sind in Stirnkränzen (um 1000 n. Chr., ~Wönig~, Fig. 117 a) und auch sonst in ägyptischen Gräbern oft gefunden worden, Öl (mrḥt) wird sehr häufig in Rezepten, z. B. des Papyrus ~Ebers~, erwähnt. Ölamphoren fanden sich in den Vorratskammern der Villen und ihr Bild als Hieroglyphe bedeutet sowohl Flüssigkeit wie Wohlgeruch. Das Öl wurde zu Speisen, zum Salben und als Opfergabe benutzt, zu den gleichen Zwecken diente es den Juden des alten Testamentes. (Über Salböl vgl. I, S. 1014.) Sehr lange bekannt ist der Ölbaum in +Syrien+, auch in +Palästina+ ist er uralter Besitz. Die Juden fanden ihn vor, als sie nach dem gelobten Lande zurückkehrten, und auch die Ölgewinnung ist dort uralt und war so umfangreich, daß die Phönikier zur Zeit ~Salomos~ einen Teil des als Nahrung, als Brennstoff, zum Opfern und Salben benutzten Öls exportierten. Auch das Pfropfen der Olive auf den Oleaster war schon damals bekannt, der Ölzweig ~Noahs~ das Symbol des Friedens. Palästina besaß umfangreiche Olivenhaine und das gewonnene Öl war vorzüglich. Auch die Sumerer bedienten sich seiner vielleicht schon (I, S. 467). Dagegen scheint in Babylonien ganz allgemein das Sesamöl das Olivenöl ersetzt zu haben (vgl. oben S. 551 u. 577). Bei den +Griechen+ war die Olive der heilige Baum der ~Athene~, der Baum, den sie aus einer eingestoßenen Lanze auf der Akropolis hatte hervorsprießen lassen. Sie erscheint denn auch auf zahlreichen Münzen mit einem Olivenkranz oder einem Ölbaum. Wer eine dem Staate gehörige Olive ausgrub oder beschädigte, konnte wegen Gottlosigkeit belangt werden. Der Ausgangspunkt der Olivenkultur in Griechenland scheint also Athen gewesen zu sein. Dort fanden sich die der ~Athene~ heiligen μορίαι. Nächst Attika war Sikyon die olivenreichste Landschaft Griechenlands (die Olive hieß denn auch _sicyonia bacca_). ~Äschylus~ nennt die Insel Samos ἐλαιοφύτος, ~Thales~ erwähnt auf Milet, Chios und Delos Olivenhaine. Auf Santorin wurden im Tuff Bauholz aus Oleaster und Ölpressen aus der Zeit vor 2000 n. Chr. gefunden (~Fouqué~) und in Mykenä Olivenkerne aus der gleichen Zeit (~Tsuntas~, ~Schliemann~ bei ~Hehn~, ~Schrader~). In den homerischen Gesängen wird Oleaster (κότινος) und Olivenöl oft erwähnt, sowie der Ölbaum, der schon damals in Griechenland viel kultiviert wurde (~Ilias~ XVII, 53-55). Das Öl spielte in der Technik der homerischen Linnenindustrie bereits eine Rolle. Die Kultur der Olive kam also in vorhomerischer Zeit nach Griechenland (~Schrader~). Schon auf den Vasen ältesten Stils finden wir die Olivenernte dargestellt. Zu ~Strabos~ Zeit gab es an Kleinasiens Nordküste große Olivenpflanzungen. Die +Phönikier+, welche das Olivenöl zu einem Gegenstande des Welthandels machten, brachten den Ölbaum nach Tunis und Tripolis und vielleicht auch schon nach Sizilien (~Hehn~), die Griechen nach Barka, Sizilien, Unteritalien, in die Provence und die Kyrenaika. Nach +Italien+ kam der Ölbaum zur Zeit des ~Tarquinius Priscus~ von Griechenland -- aus griech. ἐλαίϝα wurde olîva, aus ἐλαίϝον oleum, aus ἀμόργη («Hefe» des Olivenöls) amurca, aus δρύππα (überreife Olive) druppa. Auch die Worte orchis, cercitis, trapetum stammen aus dem Griechischen (~Hehn~). Italiens Hügel bedeckten sich vom VII. Jahrh. n. Chr. an mit Olivenhainen, die vom Süden allmählich auch nach Mittelitalien vordrangen (V. Jahrh.). Die älteste Olivenlandschaft Italiens war Apulien, das noch heute das beste Öl hervorbringt. Name (oliva, oleum) und Sache und die Methoden der Ölbereitung erhielten die Römer also von den Griechen. Die Olivenölausfuhr beginnt zur Zeit des ~Pompejus~. Bereits im I. Jahrh. n. Chr. war das italienische Öl das den Handel beherrschende (~Hehn~). Zuletzt kam der Baum nach Ligurien. ~Virgil~, ~Columella~, ~Varro~ und ~Palladius~ beschreiben die Kultur und Pflege der zahlreichen Sorten und die Bereitung der Salzoliven. Auf den Wandgemälden Pompejis ist die Olive dargestellt (I, S. 575). Bei ~Dioskurides~ findet sich ἀγριελαία (κότινος = wilder Ölbaum), ἤμερον ελαία (Kulturolive), κολυμβάδες ἐλαῖαι (Salzoliven) und das Öl (ἔλαιον) der wilden wie der kultivierten Olive und mancherlei Präparate daraus, sowie das Öl der unreifen Olive (_Omphakion_). Bereits ~Dioskurides~ wußte, daß nicht völlig reife Oliven das beste Öl geben und ~Plinius~ beschreibt die Ölgewinnung etwa so wie sie noch jetzt in Italien auf dem Lande da und dort geübt wird. ~Galen~, ~Oribasius~, ~Celsus~ besprechen die medizinische Anwendung des Öls, ~Athenaeus Naucritites~ (I, S. 574) gibt einige interessante Details und ~Gargilius Martialis~ schildert den Olivenmarkt in Rom. Nach +Spanien+, das zu ~Strabos~ Zeit schon viel Öl exportierte und das große Pflanzungen besaß, die durch die Araber noch wesentlich vermehrt wurden, kam die Olive schon durch die Phönikier. Von der Olivenzucht in Carthago spricht schon ~Mago~ (I, S. 571). Die Nordküste von Afrika lieferte im III. und IV. Jahrh. n. Chr. große Mengen Öl nach Rom. Leptis minor mußte schon zu ~Cäsars~ Zeit jährlich c. 1 Mill. kg Olivenöl nach Rom senden. Mitteltunesien war zur Kaiserzeit ein einziger großer Olivenhain. In den Trümmern der Städte dieses Landstriches, dem heutigen Algier, sind zahlreiche Ölmühlen, Pressen, ja ganze Ölfabriken gefunden worden. Die einwandernden arabischen Nomaden zerstörten dann die Kulturen und nur die um Sahel entgingen ihnen. Das Öl par excellence war schon im Altertum Olivenöl. Nach Marocco kam die Olivenkultur erst relativ spät von Andalusien aus. Erwähnt wird die Olive bei ~Isidorus Hispalensis~, ~Paulus Aeginetes~, ~Simon Seth~. Bei ~Serapion~ (I, S. 604) steht _oliva et oleum quae sunt ex eis_, bei ~Ibn Baithar~ (I, S. 608) zajtūn (zajt = Olivenöl). ~Ibn Batuta~ (I, S. 618) sah Ölbäume in Syrien. Bei ~Gariopontus~ (I, S. 623) findet sich _olivae olea_ (_lacrima oleae_). In der Alphita, bei ~Serapion~ und in den Synonyma desselben steht _olea_, _oliva arbor et fructus oleum_ = _oleum olivae_, _zaiton_, _cait_ = _oleum_. Bei ~Cordus~ steht sowohl _Ol. olivarum_ wie _Ol. omphacinum_ (_ex immaturis olivis expressum_), im Braunschweiger Register (I, S. 815): _olive_ und _oliveti_, im Inventar ~Lefort~ (I, S. 805): _uille d’olive_. Bemerkenswert ist des ~Pier Vettori~ (1499-1585) Trattato delle lodi e della coltivazione degli ulivi (mehrmals gedruckt, 1569, 1574, 1621) und des ~G. Porta~, L’olivetum 1588. Die ersten Versuche einer Klassifikation der Kulturvarietäten finden sich bei ~Caesalpini~, ~Clusius~, ~C. Bauhin~. Noch im XVIII. Jahrh. erschienen mehrere Monographien über die Olive (~Presta~, ~Sieure~, ~Gandolfi~, ~Moschettini~). Die Pariser Académie erteilte ~de la Brousse~ einen Preis für eine Arbeit über die Schädlinge der Olive. 1782 schrieb die Académie in Marseille einen Preis aus für die beste Monographie der Olive. Den ersten Preis erhielt ~Bernard~, den zweiten ~P. J. Amoureux~, den dritten ~Couture~. Olivenkernöl wurde schon im XVIII. Jahrh. in Spanien gepreßt. Die Elaidinprobe entdeckte der Marseiller Apotheker ~Poutet~ (Instr. pour reconn. la falsificat. de l’huile d’olive) und ~Boudet~ studierte sie 1832 näher (Ann. chim. phys. [2] 50, 391. Lieb. Ann. 4, 1). =Lit.= ~Hehn-Engler-Schrader~, Kulturpflanz. -- ~Tristram~, Nat. hist. of the bible. 1898. -- ~Wönig~, D. Pfl. d. alt. Ägypt. -- ~Cavara~, Bull. Soc. geol. ital. 1886. -- ~de Candolle~, L’orig. d. pl. cult. Zur Olivenölgruppe gehört außer dem Olivenkernöl noch das Haselöl und das Benöl. Semen Ricini und Oleum Ricini. =Syn.= Ricinus, Wunderbaum, Läusebaum, Christpalme, Hundsbaum, Kreuzbaum. Die Samen: Brech-, Purgier-, Treib-, Zecken-Körner. In der Schweiz: Springkernen, mirasole; in Italien auch: girasole. -- common oil nut tree, common palma-Christ, castorplant (engl.); ricin (franz.); ricino, fico d’inferno, fagiolo romano, turchesco oder d’India (ital.); wonderboom (holl.); κίκι (n.-griech.); pei-ma-tsu oder pi-ma-tsze (chin.); fima, kara-gasira, himashi, togoma (jap.). In Indien: arandi, erandi, rand (hind.); bherendá (beng.); eri (assam.); eranda, ruvuka, vatári (= antirheumatisch), rakla eranda (sansc.); kinnatu, bedánjir (pers.). In Turkestan: kanap, kundschut. In Chorassan: Ziegenfeige -- mal. sund. jav. (z. B. auf Java): djarak, auch kaliki (mal.); djarak djawa (in Palembang); auf Sumatra auch dulang (bat.); auf den Philippinen: tangan, tavang oder lingan sina. In Niederl.-Westindien: krapatta (nach portug. carapatto). +Ägypt.+ dqm, die Früchte qꜣqꜣ (kiki, auch im Koptischen kyki) -- die hieroglyphischen Zeichen I, S. 470. -- Bei ~Herodot~: σιλλικύπριον. -- Bei ~Theophrast~ und ~Nicander~: κρότων. -- Bei ~Dioskurides~: κίκι, σήσαμον ἄγριον, σέσελι κύπριον (in [] stehen, d. h. später eingeschoben sind die ägyptischen Namen Systhamna und Trixis, der Prophetenname αἷμα πυρετοῦ (= Fieberblut, vgl. I, S. 472), die römischen Namen ricinus und lupa). -- Bei den späteren Griechen auch: μπανδάτζη, μπαρδάνη, σίκις, σύσταμνα, χίφονα. -- Bei ~Plinius~: ciki, croton, trixis, sesamum silvestre. -- Im Mittelalter: Agnus Christus, Palma Christi, rauscher oder türkischer Hanf, Cataputia major. -- In der Alphita und bei ~Bartholomaeus~: cataputhia, cathapucia = semen spurgie, kerva, pentadactylus. -- Bei ~Ibn Baithar~ (I, S. 610) Ricinus commun. = ḫirwaʿ, Ol. Ricini = duhn al-ḫirwaʿ. -- Bei ~Najm Ad-Dyn Mahmud~ (I, S. 611) Ricinus = kharouaʿ, arab. auch kerua, kherûa, kerroa, charua. -- Im Corpus glossar: ricinus, crotonia. -- Bei ~Albertus Magnus~: arbor mirabilis. -- Bei ~Megenberg~: wunderleich paum. -- Im Niederländ. Herbar (1483): kruzebom. -- Bei ~Gesner~: wundelbaum. -- Bei ~Tabernaemontanus~: Mollenkraut, Zeckenbaum. =Etym.= «κροτων heißt er wegen der Ähnlichkeit mit dem Tier», sagt ~Dioskurides~, und ~Plinius~ bemerkt «ricinum vocant a similitudine seminis», das Tier, das die Griechen Croton, die Römer Ricinus nannten, ist der Holzbock, die Holzteke, Zecke, Hundelaus (Ixodes Ricinus L.), daher der Baum Läusebaum oder Zeckenbaum genannt wurde. Die Samen sehen dem mit Blut vollgesogenen Tiere nicht unähnlich. Aber wahrscheinlich verhält sich die Sache, wenigstens für Ricinus, umgekehrt, das Tier ist nach der Pflanze benannt und Ricinus aus κίκι, κίκινος (hebr. kikar, s. oben) umgebildet. -- Wunderbaum wegen des raschen Wachstums nach der mißverstandenen biblischen Erzählung (vgl. Geschichte). -- Im XVIII. Jahrhundert wurde R. auf Jamaika kultiviert. Man verwechselte ihn dort mit Vitex Agnus castus, dem Agno casto der Portugiesen. Von diesem Casto stammt der in England übliche Name Castoroil für Ricinusöl (~Flückiger-Hanbury~). -- Palma Christi, Pentadactylus und Teufelsblatt (folha do inferno) bezieht sich auf die Form des Blattes. =Stammpflanze.= =Ricinus communis L.=, Spec. pl. ed. I 1007 (Ricinus inermis ~Jacq.~, R. lividus ~Jacq.~, R. speciosus ~Burm.~, R. spectabilis ~Blume~, R. viridis ~Willd.~, Croton spinosus L.). Variiert außerordentlich in Form, Größe und Bestachelung der Früchte, Form, Größe und Farbe der Samen, Stärke der Bereifung der Blätter und Stengel. ~Müller-Argov.~ unterscheidet folgende 16 Varietäten: α _megalospermus_, β _rugosus_, γ _purpurascens_, δ _lividus_ (Südafrika), ε _armatus_ (Malta), ζ _leucocarpus_, η _Benguelensis_, η _Reichenbachianus_, ι _badius_, κ _amblyocalyx_, λ _africanus_, μ _genuinus_, ν _Rheedianus_, ξ _microcarpus_, ο _undulatus_, ρ _speciosus_ (Java). Dazu kommen dann noch die var. _brasiliensis_, die ~Peckolt~ erwähnt, var. _viridis_ ~Willd.~ (Indien), var. _americanus_ ~Ald.~, var. _tunisensis_ (Nordafrika), var. _ruber_ ~Rpf.~, var. _inermis_ ~Jacq.~ (Indien), var. _sanguineus_ (großsamig), var. _giganteus_, var. _metallic._, var. _macrophyllus_, die wahrscheinlich den R. von St. Eustatius liefernde var. _Zanzibariensis_ (oder _zanzibarinus_), die ich aus Amani in zahlreichen Spielarten mit verschieden gefärbten Samen 1909 erhielt und die auch als Art betrachtet wird, u. and. mehr. Viele Varietäten und Spielarten besonders in Indien. Meist unterscheidet man in Indien zwei Hauptformen: 1. Die Large seeded Form, groß, perennierend, Windschutz-Heckenpflanze mit vielen großen Samen, gibt aber weniger gutes Öl (technisches und Lampenöl). 2. Die Small seeded Form, kleiner, meist einjährig, mit kleineren Samen, gibt mehr und besseres Öl (Medizinalöl). Ferner die Varietäten _pyra_: keine Seitenzweige und _mulli kottai_: glatte, nicht stachelige Früchte. Die mohammedanischen Schriftsteller erwähnen zwei Arten Samen, rote und weiße, die ersten als wirksamer. Auch ~Rumphius~ unterscheidet weißen und roten Ricinus, ~Dymock~ große rotsamige und graue, braunfleckige Varietäten. (Letztere werden medizinisch bevorzugt.) Die Varietäten bleiben in der Kultur ziemlich konstant. =Systemat. Stellung.= +Euphorbiaceae+ -- Platylobeae-Crotonoideae-Acalypheae-Ricininae. _Ricinus_ hat nur diese eine Art. =Beschreibung der Stammpflanze.= Die diclin-monöcische Pflanze wird 2-4 m hoch, nimmt aber in den Tropen und Subtropen Baumform an (bis 13 m). Auf den Azoren und im wärmeren Mittelmeergebiet wird _Ricinus_ ausdauernd und strauchartig bzw. ein kleiner Baum (Taf. XVI). Die Pflanze hat die Größe eines kleinen Feigenbaumes, sagt ~Dioskurides~. ~Clusius~, ~Belon~, ~Ray~ berichten über große baumartige _Ricinus_ in Spanien, Creta und Sicilien. Diesseits der Alpen und in Norditalien ist _Ricinus_ einjährig und wird kaum höher als 5 engl. Fuß. Der Stengel ist grün oder bräunlich-rot, häufig bläulich bereift. Die spiralig gestellten, langgestielten, +exzentrisch-schildförmig angehefteten+ Blätter besitzen einen am Grunde und an der Spitze mit Drüsen (gegen unberufene Gäste?) versehenen Blattstiel und eine bis 1 m breite Spreite, die in 7-11 eioblonge oder lanzettliche, zugespitzte, kahle, bisweilen bereifte, einfach oder doppelt gezähnte Lappen handförmig geteilt ist. (Zarte Mädchen und schwellende Brüste vergleicht der Inder mit den zarten weichen Blättern der Aranda.) Der rispige, ursprünglich terminale, aber beiseite gedrängte Blütenstand trägt unten die männlichen, oben die weiblichen Blüten; die männlichen besitzen eine fünflappige Blütenhülle, zahlreiche Stamina mit baumartig verzweigten Filamenten, an deren letzten Enden die dithezischen gesonderten Antheren (bisweilen mehr als 1000) sitzen; die weiblichen besitzen eine fünfzählige, frühzeitig abfallende Hülle und einen blaugrauen, eiförmigen, mit zahlreichen Weichstacheln besetzten, dreifächerigen, oberständigen Fruchtknoten, der an der Spitze einen kurzen Griffel trägt, welcher in drei rote zweispaltige Narben ausläuft. Jedes Fach enthält ein anatropes hängendes Ovulum mit einer die Micropyle überdeckenden Funicularwucherung. Die Frucht ist eine dreifächerige, kugelige, je nach der Varietät glatte oder mehrweniger bestachelte Kapsel, die in 3 Kokken zerfällt, welche elastisch aufspringen und die Samen fortschleudern. Alle Teile der Pflanze sind sehr spröde. Sie ist in Indien das Symbol der Zerbrechlichkeit. «Zerbrechlich wie Aranda» ist eine gewöhnliche Redensart in Indien. Ricinus reift seine Samen noch in England und bei Christiania (~Schübeler~). Über die Krankheiten der indischen Ricinuspflanze vgl. bei ~Watt~. Die Heimat der Pflanze ist das tropische Afrika (~Ball~, ~De Candolle~). Sie findet sich wild in Abyssinien, Sennaar, Cordofan; verwildert in Ägypten, Algier, Marocco und den Canaren, Arabien, Persien, Indien, Syrien, Anatolien, Griechenland. [Illustration: Tafel XVI. Ricinus communis L. in Italien mit reifen Früchten. (Nach Hamilton.)] _Ricinus_ trägt aber alte Sanscritnamen. Der älteste ist eranda, dann ruwu ruwuka, uruwuka, die rote raktairanda, so daß einige _Ricinus_ auch für in Indien einheimisch halten (~Flückiger-Hanbury~, ~Bentley-Trimen~). ~Watt~ fand ihn neben anderen sicher in Indien einheimischen Pflanzen angeblich wild im Himalaya (Dict. econ. prod.). Doch betrachtet auch er das Indigenat für zweifelhaft. Immerhin ist es möglich, daß _Ricinus_ auch in Indien einheimisch ist. Die Arier können die Pflanze jedenfalls nicht nach Indien gebracht haben. Sicher ist, daß _Ricinus_ schon im hohen Altertum in Indien in Kultur stand. ~Aitchinson~ fand aber weder das einheimische Öl noch die einheimischen Ricinussamen in Afghanistan in Anwendung. =Lit.= ~Müller-Arg.~, Linnaea 34, 143 und ~De Candolle~, Prodromus XV, 1016 (dort die Lit.). -- ~Pax~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. -- ~Ledebour~, Flor. ross. I, 501. -- ~Miquel~, Flor. Ned. Ind. I, II, 391. -- ~Hooker~, Flor. Brit. Ind. V, 457. -- Pharmacogr. indica. -- ~Watt~, Dict. econom. prod. India. -- ~F. F. Bruyning~, De Wonderboom of Christus palm, Tijdschr. voor tuinbouw 1896, 53 (mit 4 Taf.). -- ~Roxburgh~, Flora indica. -- Tropenpflanzer 1900, Nov. -- Über Ricinushybriden vgl. ~van der Stok~, Teysmannia 1909 u. 1910. +Abbild.+: ~Berg-Schmidt~, 2. Aufl. t. 89 (dort weitere Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 160. -- ~Nees von Esenbeck~, Plant. med. t. 140. -- ~Hayne~, Arzneigew. X, t. 48. -- ~Bentley-Trimen~, Med. pl. t. 237. -- ~Greshoff~, Schetsen van Ind. Nuttige planten t. 31. -- Bot. Mag. t. 2209. -- Ältere: ~Rheede~, Hort. Mal. II, t. 32. -- ~Rumphius~, Herb. Amb. IV, t. 41 (hier eine ausführliche Beschreibung). -- ~Garsault~, Fig. d. plant. décr. dans Mat. méd. de Geoffroy. Älteste Abbildung im Codex constantinopol. des ~Dioskurides~ (vgl. I, S. 554) unter κρότων ἡ κήκι No. 170. =Kultur.= Im großen und ganzen kann _Ricinus_ fast überall da kultiviert werden, wo Mais zur Reife kommt, doch endet seine Ertragsfähigkeit vor der Maisgrenze. Er braucht Wärme, Feuchtigkeit und fruchtbaren, phosphorsäure-, kali- und kalkreichen Boden und wächst sehr rasch. In Indien ist er oft in Mischkultur. Kappen des Gipfeltriebs vermehrt die Zahl der Fruchtstände. Die Früchte werden 5-7 Monate nach der Aussaat reif (nicht alle einer Staude zu gleicher Zeit), werden aber vor dem Aufspringen geerntet. 5 dz Samen sind ein guter Ertrag pro Hektar (~Semler~). Trockenheit beeinträchtigt in Indien die Ölausbeute. _Ricinus_ wird besonders in +British-Indien+, dann in Niederländ.-Indien (Java), China, am Kongo, in Senegambien, Sierra Leone, Sansibar, in den deutsch-afrikanischen Kolonien, Ägypten, Kleinasien, Syrien, in den +südlichen Vereinigten Staaten+, Kansas, Californien, Mexico, +Brasilien+, Surinam, Westindien (San Salvador, Curaçao), Spanien, Algier, +Süd- und Nordfrankreich+, +England+ und +Nord-Italien+ kultiviert. Die italienischen Kulturen finden sich besonders in der Nähe von Legnago (Venetien), so z. B. bei Roverchiara und San Pietro di Marobio, dann in der Nähe von Verona bei Montorio Veronese, Zevio und Tregnago in größerem Maßstabe, weniger in der Lombardei (~Ravasini~). Neuerdings (1896) sind auch in Südrußland Anbauversuche gemacht worden. In Sicilien, Sardinien, Calabrien und der Riviera trifft man ihn vielfach verwildert. Die italienischen Kulturen können den Bedarf nicht mehr decken. Die größten Kulturen befinden sich in Indien. Dort wird _Ricinus_ kultiviert in Madras, Mysore, Coong, Bengalen (Rajshahye, Cooch Behar, Chota Nagpore, Chittagong, Patna, Dacca, Presidency Burdwan, Orissa, Northwestprovinces und Oudh), Bombay, Panjab (das Detail in ~Watt~, Dict. econom. prod. India). 1909 war die bebaute Fläche um 11% gegen 1908 zurückgegangen. ~Aitchison~ sah in Chorassan und im Harirutdistrikt _Ricinus_ am Rande der Felder kultiviert. In Niederländisch-Indien steht sowohl der rote wie der weiße _Ricinus_ (djarak meirah und d. malaka) in Kampongkultur in Java, in Tegal, Madiun, Kediri, Surabaja und Probolinggo. ~Stanley~ fand Kulturen des _Ricinus_ in Afrika am oberen Ituri (Aruwimi), in der Nähe des Albert Njansa. In Nordamerika wird besonders die Stammform und die var. _sanguineus_ kultiviert. Ricinusvarietäten werden bei uns jetzt in Gärten viel als ornamentale Zierpflanzen (Mittelstück von Rabatten) gepflanzt. Von tierischen Schädlingen werden die Kulturen meist gemieden (~Semler~). =Lit.= ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- ~Greshoff~, Ind. Mercuur 1896. -- Die Kultur in Indien ausführlich in ~Watt~, Dict. -- ~Schulte im Hofe~, Tropenpfl. 1902. -- Pharm. Zeit. 1904, 99. -- ~Dynnikow~ (Kult. in Südrußland), Farmaceft 1896. -- ~Wright~, Castor oil plant in Ceylon Agr. Journ. Roy. Bot. Gard. Ceylon 1904. =Gewinnung des Öls.= Die Darstellung des Öls erfolgt entweder durch +Pressen+, +Auskochen+ oder +Extrahieren+. Das +Auskochen+ der zerdrückten Samen und Abschöpfen des Öls wurde sowohl in Ost- wie in Westindien geübt. Das Öl gerösteter Samen ist braun und sauer (westindische Öle). In Jamaika z. B. wurden wenigstens früher die Samen mit Wasser ausgekocht, das oben schwimmende Öl abgehoben, nochmals erwärmt und dann durchgeseiht (~Wright~). Ricinusöl wird jetzt besonders in +Californien+, +Mexico+, +Italien+ und +Indien+ gewonnen, durch +Pressung+ der im Herbst gesammelten, in Trockenöfen bis zum Erweichen erhitzten Samen besonders in den beiden zuerst genannten Staaten. Das gepreßte Öl wird mit der gleichen Menge Wasser vermengt und 1-2 Stunden gekocht. Dann wird das Öl vom Wasser getrennt und der Sonnenbleiche ausgesetzt. +Das deutsche und schweizerische Arzneibuch verlangen ausdrücklich mit Wasser ausgekochtes Öl.+ In +Frankreich+ werden die Samen zweimal kalt gepreßt, wobei 40-45% Medizinalöl erhalten werden. Die dritte heiße Pressung und das durch Wasserdampfeinwirkung erhaltene Öl dient nur technischen Zwecken. Die Reinigung des Öls kann auch durch Erhitzen seiner Lösung in absolutem Alkohol im Autoklaven und darauffolgendes Auswaschen mit Wasser geschehen (D. R. P. 93596). Über die Gewinnung des Öls in Italien berichtet mir ~Ravasini~ (1911) folgendes. «Sie wird namentlich bei +Montorio Veronese+ (nahe Verona), wo sich eine große modern eingerichtete Fabrik befindet, und nahe Legnago in den oben (S. 627) genannten kleinen Orten, hier mehrfach im Kleinen, betrieben. So vereinzelt fand ich sie auch bei +Forli+ und in der römischen Provinz nahe +Frosinone+ bei +Alatri+. Einrichtungen zur _Ricinus_-Ölgewinnung sind aber auch bei größeren pharmazeutischen Unternehmungen in Betrieb zu finden, so z. B. in +Mailand+, +Padua+, +Verona+ und in +Neapel+, dienen aber wohl nur für den Lokalgebrauch. Zur Ölgewinnung bedient man sich in Italien hauptsächlich der italienischen Samen und nur wenn diese nicht genügen importiert man solche aus dem Auslande, meistens aus British-Indien und Ceylon; das beste Ricinusöl stammt aber aus den italienischen Samen. Die frischen Samen werden in Walzwerken enthülst, die Kerne sorgfältig gereinigt und ausgelesen, zerstampft und in hydraulischen Pressen zwei bis dreimal nacheinander +in der Kälte+ gepreßt. +Nur das Öl erster Pressung wird zu medizinischen Zwecken verwendet.+ Alles andere, sowie das aus den entweder in der Wärme noch weiter ausgepreßten oder mit Schwefelkohlenstoff extrahierten Rückständen gewonnene Öl dient zu technischen Zwecken als Brenn- oder Schmieröl. Das zu pharmazeutisch-medizinischen Zwecken bestimmte Öl wird mehrmals mit Wasser ausgekocht, bis alles Eiweiß abgeschieden ist. Alsdann wird alles Unreine abgeschöpft und behufs Entfernung des Wassers das Öl entweder in flachen Gefäßen einige Tage stehen gelassen oder man begünstigt durch Erwärmen die Verdunstung des Wassers, filtriert mehrmals und füllt dann das Öl sofort in viereckige Blechkanister, die verlötet werden, ab. Aus 100 kg Ricinussamen erhält man c. 26-29 kg Öl erster Pressung, 10 kg Öl zweiter Pressung, 8 kg Öl dritter Pressung. -- Durch weiteres Pressen in der Wärme oder durch Extrahieren mit Schwefelkohlenstoff kann man noch weitere 5 bis 10 kg Öl gewinnen. Die übrigbleibenden Rückstände werden als ausgezeichnetes Düngemittel in Mais-, Hanf- oder Olivenpflanzungen verwertet.» Die Gewinnung des Öls geschieht bei den Eingeborenen Vorderindiens (nach ~Schulte am Hofe~) folgendermaßen. Die Samen werden in einem eisernen Topfe oder über offenem Holzkohlenfeuer soweit erhitzt (geröstet), daß man sie eben noch mit der Hand anfassen kann, dann sofort durch vorsichtiges Stampfen von den Schalen befreit und die Kerne in Jutebeuteln in eisernen Plattenpressen kalt, d. h. bei 20-30°, gepreßt (erste, kalte Pressung, das Öl ist hell). Dann wird durch ein Holzkohlenfeuer die Presse und ihre Platten erwärmt und weiter gepreßt (warme Pressung, das Öl ist dunkler). Das Öl wird +dann mit Wasser solange gekocht+ und die sich abscheidenden Eiweißsubstanzen und Unreinlichkeiten abgeschöpft, +bis sich das Öl geklärt hat+. Dann läßt man es zur Verdunstung der letzten Reste des Wassers in flachen Gefäßen stehen und bringt es in große, 70 l fassende, bis zum Hals in die Erde eingegrabene, als Vorratsgefäße dienende Tonkrüge, in denen es die letzten Unreinheiten absetzt. In den englischen Ölpressereien wird im allgemeinen ebenso verfahren. Die verschiedenen Pressungen werden gesondert aufgefangen. Die Bereitung des Öls in +Madras+ erfolgte nach einer älteren Angabe von ~Price~ entweder in der Weise, daß die Samen geröstet, im Mörser zerkleinert, in das vierfache kochenden Wassers gebracht und das Öl abgeschöpft wurde (die Prozedur wurde wiederholt), oder indem der Same gekocht, dann an der Sonne getrocknet, zerstoßen und ausgekocht wurde (liefert ein besseres Öl), oder indem der Same über Nacht in Wasser eingeweicht, dann auf der Ölmühle gemahlen und das Öl dadurch entfernt wurde, daß man ein Stück Tuch in den Brei tat und dies dann in einen Topf ausdrückte. Die geringeren Sorten heißen in Indien Lampenöl. Die großsamigen Sorten liefern nur dieses. Auch in +Westindien+ wird jetzt das Öl durch Auspressen gewonnen. Die nicht entschälten, aber gereinigten Samen werden schwach erwärmt (nicht geröstet!), dann in großen hydraulischen Pressen gepreßt. Die abfließende Mischung wird dann mit Wasser gekocht, der Schaum abgeschöpft und das Öl abgezogen. Das Öl wird dann nochmals vorsichtig mit Wasser gekocht und dadurch geklärt. (Darstellung des Öls in Indien ausführlich in ~Watt~, Dict. econom. prod. India.) Versuche in der indischen Regierungsfarm Saidapet haben ergeben, daß die kalte Pressung 36,5% eines sehr reinen Öls ergibt, daß schwach geröstete Samen 32%, stark geröstete 27% schmutziges Öl liefern, wenn sie gekocht und das Öl abgeschöpft wurde und daß, wenn die Samen gemahlen und das Öl ausgekocht wird, 30,43% Öl erhalten werden. Die gewöhnliche durchschnittliche Ausbeute beträgt bei den Eingeborenen in Indien c. 25%. Man rechnet, daß bei ihnen ein acre 5 cwts Samen und 27 lbs Samen 7 lbs Öl liefern (~Watt~). Bei rationeller Bearbeitung erhält man aber beträchtlich mehr. Die erste kalte Pressung liefert alsdann 26-29 %, die zweite kalte Pressung 13-14 %, die dritte warme noch 7% (~Schädler~). Die Öle zweiter und dritter Pressung werden nur für technische Zwecke benutzt. In +Nordamerika+ werden die Samen im Ofen eine Stunde trocken erwärmt, dann gepreßt, das Öl mit Wasser eine Stunde gekocht, vom Wasser getrennt und in große Zinkbütten geleitet, wo es 8 Stunden bleibt, schließlich an der Sonne gebleicht (100 kg liefern 36 l Öl). Das feinste Öl wird auch hier aus geschälten Samen bereitet (~Semler~). Das Öl wird im Großen auch durch +Extraktion+ dargestellt. In Frankreich und Italien hat man es z. B. mit Alkohol extrahiert. Dies Öl soll sogar medizinisch wirksamer sein. Auch das mit CS₂ extrahierte Öl wirkt stärker als gepreßtes. +Aber nur das kaltgepreßte Öl erster Pressung darf als Arzneimittel benutzt werden.+ Dies «medizinische Ricinusöl» wird stets aus geschälten Samen dargestellt. Die Samen werden durch Walzen, welche so eingestellt sind, daß nur die Schalen, nicht aber der Kern zertrümmert wird, von den Schalen befreit und die Schalentrümmer durch einen Luftstrom entfernt. Das Öl wird durch Aufkochen mit Wasser raffiniert. Hierbei wird das etwa in das Öl übergetretene Enzym zerstört. Ein so raffiniertes Öl hält sich jahrelang, ohne sauer und ranzig zu werden (~Lewkowitsch~). =Handel.= Der Großhandel unterscheidet erste und zweite Pressung. In Indien wurden schon 1889 36 Mill. Liter Öl gewonnen, davon wurden aber c. 9 Mill. im Lande verbraucht. Viel Öl wird in Amerika dargestellt und auch Rußland bringt jetzt große Mengen Ricinussamen hervor und preßt auch viel Öl (1906 war kaukasisches Öl im Handel). Im deutschen pharmazeutischen Großhandel sind jetzt besonders +italienisches+, dann französisches und amerikanisches Ricinusöl. Die letzteren haben einen unangenehmen Geschmack. Das italienische wird bevorzugt. Daneben findet sich aber indisches, brasilianisches, javanisches Öl. Im Handel unterscheidet man in Italien (nach ~Ravasini~) folgende Sorten: Zu pharmazeutischen Zwecken: a) das aus italienischen Samen gewonnene Öl erster Pressung, welches die beste Qualität darstellt, wird als: «+Olio di ricino fiore d’Italie+» bezeichnet; davon sind zwei Sorten «Speciale» und «Extra» im Handel; b) das aus ausländischen Samen erhaltene Öl erster Pressung heißt: «+Olio di ricino prima pressione+»; gute Sorte. Findet sich auch unter dem Namen «+Olio de ricino fiore indiano+» im Handel. Zu technischen Zwecken: a) eine bessere Sorte: «+Olio ricino commune+» und b) eine schlechtere Sorte: «+Olio ricino per uso industriale+» oder «+Olio ricino per le arti+». Dies italienische Ricinusöl zu pharmazeutischen Zwecken kommt in viereckigen Blechkanistern à 5, 10 und 20 kg Inhalt in Handel. Das zu technischen Zwecken gebrauchte entweder in Kisten mit je zwei Blechkanistern à 18 kg Inhalt oder in Fässern (Barrels) à c. 180 kg. ~Grossmann~ unterscheidet: Ol. ric. med. extra prima weiß «Crème» (das teuerste), in Kisten à 4 Kan. à 20 kg, dann prima weiß, dies auch in Barrels von c. 180 kg. Dann: erste Pressung und zweite Pressung. Ricinussamen kommen besonders aus Calcutta, Bombay, dem Senegal, Italien, der Levante und Amerika in den Handel. Von den indischen geht viel nach Italien (~Dymock~). Sie sind zurzeit ein großes Spekulationsobjekt, so daß die Preise stark schwanken. Marseille ist Hauptmarkt für Ricinussamen (1895 gelangten dorthin 22672 t). +British Indien+ exportierte Castor oil nach England und Kolonien 1907/08: 1485431, 1908/09: 1076692 gall., nach anderen Ländern 1907/08: 23114, 1908/09: 23275 gall. +Italien+ exportierte 1909: 56 und importierte 1909: 126684 quint. semi di ricino und exportierte 1907: 5391, 1908: 3454, 1909: 2292, 1910: 4766 quint. olio di ricino. +Deutschland+ importierte 1909: 80990 dz +Ricinussamen+ aus Brit. und Nied. Indien und 84934 dz +Ricinusöl+ besonders über Belgien und Großbritannien, etwas auch aus Italien. +Hamburg+ importierte 1908: 63482 dz +Ricinussamen+, davon stammten 56233 aus Brit. Ostindien, 6446 aus Nied. Ostindien, nur wenig aus Ostafrika. +Hamburg+ importierte 1908 seewärts: 34660 dz +Ricinusöl+. Davon kamen aus Großbritannien: 25664, Belgien: 6076, Frankreich: 2451, Italien: 234, den Niederlanden: 229. Die Einfuhr von Castor oil nach +London+ betrug 1906: 767, 1907: 827, 1908: 317, 1909: 178 casks und 1906: 1040, 1907: 949, 1908: 828, 1909: 599 cases. (1897 importierte England 155850 cwts Castor seeds aus Frankreich, Indien, Belgien und Italien.) +Frankreich+ importierte 1908 +huile de ricin+ et de pulghère 10032 Quint. +Nordamerika+ importierte 1896: 22890, 1909 aber nur 6847 gall. Castor oil. =Lit.= ~Schulte im Hofe~, Fabrik. u. Verwend. v. Ricinusöl in Indien. Apoth. Zeit. 1900, 824. -- ~Ainslie~, Mat. med. I, 256. -- ~Watt~, Dict. econ. prod. Ind. -- Pharm. Zeit. 1904, 1052. -- ~Wright~, Med. pl. of Jamaica, London med. journ. 8. -- ~Vorderman~, Castorolie-Fabricage op Java. Teysmannia 1894, 713. =Morphologie des Samens.= Die Samen sind von sehr verschiedener Größe und sehr verschiedener Farbe. Selbst bei derselben Varietät finden sich Spielarten mit großen und kleinen Samen. Die Länge der Samen schwankt von 9-22, die Breite von 6-15, die Dicke von 4,5-9 mm. Die größten sind die vom Kongo und die Sansibar. Die medizinalen Samen messen meist 4,5 : 6 : 9 mm, gehören also zu den kleinsten. Das Gewicht von 100 Samen beträgt 11,8-107 gr, das Gewicht des Kerns beträgt 60,8-80,6% (~Bruyning~). Am häufigsten ist bei den medizinalen Samen die Grundfarbe ein gesprenkeltes Silbergrau, in welches unregelmäßige, nicht sehr breite, längsgestreckte, rotbraune Flecke eingestreut sind. Die Variationen kommen besonders dadurch zu stande, daß entweder die grauweiße Grundfarbe prävaliert und die Flecke zurücktreten oder umgekehrt die braunen Flecken, die in allen Nuancen des Braun bis zu Schwarz vorkommen, die Oberhand gewinnen, in wenigen großen oder zahlreichen kleinen Flecken auftreten, ja ganz die Grundfarbe verdrängen. Der Same ist ellipsoidisch, etwas plattgedrückt, an der Bauchseite bisweilen zugeschärft. Er trägt an der Spitze eine helle, mützchenartige Caruncula. Die Samenschale ist spröde und brüchig, glänzend und glatt. Das reichlich entwickelte, weiße, ölig-fleischige Endosperm zerfällt leicht in zwei Hälften. Innen liegen ihm die beiden dünnen, geaderten, blattartigen Cotyledonen auf. =Anatomie.= Das hemianotrope Ovulum hat zwei Integumente. Eine große Funicularwucherung (Obdurator) legt sich über die Mikropyle. Durch reichliche Vermehrung des Gewebes an der Chalaza entsteht eine becherartig den Embryosack umfassende, von Gefäßbündeln durchzogene Wucherung, die den Nucellus nach oben schiebt, ein Pseudonucellus (~Schlotterbeck~). Aus dem äußeren Integumente gehen drei Schichten hervor: die aus polygonalen Zellen bestehende Samenschalepidermis, deren Außenwand mit unregelmäßigen zentripetalen, «gekröseartigen» (~Moeller~) Verdickungen versehen ist und die bei den gefärbten Stellen der Samenschale den Farbstoff führt, ein 4-6reihiges, reichdurchlüftetes, aus sternförmigen Zellen bestehendes Schwammparenchym, in dem das Raphebündel zur Chalaza läuft und eine Reihe etwas palissadenartig gestreckter, dünnwandiger, c. 20 mik hoher Zellen, deren Seitenwände bisweilen wellige Verbiegungen zeigen. Aus dem inneren Integument geht zunächst die nun folgende breite, außerordentlich harte Makrosklereïdenschicht hervor, die aus stark radial gestreckten, radial oder schief radial gestellten, miteinander verzahnten, bis 200 mik hohen, 8-15 mik breiten (~Moeller~) Palissadensklereïden mit dicker, brauner, verholzter Wand besteht, sodann die Nährschicht. Diese besteht beim unreifen Samen aus einem aus sehr zahlreichen Zellreihen aufgebauten, reich durchlüfteten Gewebe, das aber beim reifen Samen ganz zusammengefallen ist, aber Oxalatkristalldrusen und nadelförmige, oft sternförmig vereinigte Fettkristalle enthält (~Collin-Perrot~) und das die zahlreichen Bündelchen führt. Es ist dies die sich als weißes Häutchen leicht vom Samenkern ablösende innere Samenhaut der Autoren. Ihre Zellen enthalten oft Calciumoxalat und auch wohl Fett. Löst man die harte Schale von einem reifen Samen vorsichtig ab und legt den Kern in Phloroglucinsalzsäure, so sieht man, daß das von der Chalaza ausgehende reichverzweigte Bündelnetz nicht bis ganz zur Spitze reicht, der oberste Teil also nicht von der Chalazawucherung umschlossen ist. Da der echte Nucellus ganz resorbiert wird, so liegt hier nur Endosperm (~Schlotterbeck~). Der Obdurator ist beim reifen Samen durch die Caruncula ganz verdrängt. Sein Gewebe besteht aus reichgetüpfelten, bisweilen Stärke führenden Zellen. Die Zellen des reichlich ausgebildeten, die Hauptmasse des Samens ausmachenden Endosperms sind dünnwandig und enthalten, in Ölplasma eingebettet, zahlreiche längliche oder kugelige, meist 7,5-15, selten bis 20 mik große Aleuronkörner (Fig. 196), die außer Grundsubstanz meist 1-2 wohlausgebildete Kristalloide und ein großes oder mehrere kleinere Globoide enthalten (~Lüdtke~). Die +Kristalloide+ der Aleuronkörner von Ricinus sind unlöslich in Wasser, 1% Kochsalzlösung, 1 und 5% und konz. Magnesiumsulfat, 1% und konz. Ammonsulfat, 1% Chlorammon, 20% Kaliummonophosphat, konz. Dinatriumphosphat, löslich in 10% Kochsalz, 20% Magnesiumsulfat, 10% Ammonsulfat, 10 und 20% Chlorammon, Kalkwasser und Salzsäure. Die +Grundsubstanz+ löst sich in Wasser und allen übrigen verdünnten Salzlösungen. Die +Globoide+ sind unlöslich in Wasser, 1% Kochsalz, 1% Magnesiumsulfat und Kalkwasser, sonst in Salzlösungen im allgemeinen leicht löslich, sehr schwer in konz. Magnesiumsulfat (~Tschirch~ und ~Kritzler~). [Illustration: Fig. 196. +Aleuronkörner des Ricinussamens.+ A in starkem Glycerin, B in verdünntem Glycerin, C in Glycerin erwärmt, D nach Behandeln mit Jodtinktur und Schwefelsäure, das Ölplasma ist zurückgeblieben. [Nach +Sachs+.]] Die innerste Schicht des Endosperms besteht aus der Quellschicht (~Tschirch~). Die nur 130 mik dicken Cotyledonen sind breit blattartig und den Innenseiten des in der Mitte gespaltenen Endosperms mit breiter Fläche fest angefügt. Sie enthalten in dünnwandigen Zellen Aleuronkörner, die sehr viel kleiner als die des Endosperms, oft nur 1 mik, meist jedoch 2-4 mik lang sind. In den Procambiumsträngen, die als zartes Adernetz die Cotyledonen durchziehen, sind die Aleuronkörner noch kleiner. Ober- und Unterseite ist bei den Cotyledonen nicht different ausgebildet. Da beim Verfüttern der Preßkuchen wiederholt Vergiftung beobachtet wurde, ist der mikroskopische Nachweis von Ricinuskuchen oft erwünscht. =Lit.= ~Gris~, Note sur le dével. d. l. graine du Ricin. Ann. sc. nat. (4) 15 (1861) 17 (1862) und (5) 2 (1864). -- ~Harz~, Landwirtsch. Samenkunde. -- ~Pammel~, Seed coats of the Gen. Euphorbia. Shaw School of bot. 1891, 543. -- ~G. Keyser~, Beitr. z. Entwicklungsgesch. d. Samendecken bei d. Euphorb. m. bes. Berücks. v. Ricin. commun. Ber. d. pharm. Ges. 1892 (dort die Lit.). -- ~Schlotterbeck~, Beitr. z. Entwicklungsgesch. pharmakogn. wicht. Samen. Dissert. Bern 1896 (mit vielen Abbild.). -- ~Lüdtke~, Aleuronkörner. Ber. d. pharm. Ges. 1891, 58. -- ~Gram~ (Samensch. d. Euphorb.), Bot. Tidskrift 1896, 358. -- ~Collin~, Tourteau de Ricin. Journ. pharm. chim. 1903, 361 u. Guide prat. 1893. -- ~Böhmer~, Kraftfuttermittel 1903, Ölkuchen in ~Dammers~ Lexikon 1887 und in ~König~, Landwirtsch. wicht. Stoffe 1891. -- ~T. F. Hanausek~ in ~Wiesner~ Rohstoffe. -- ~Sachs~, Lehrbuch (Aleuron). -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie, Fig. 36. -- ~Tichomirow~, Lehrbuch 1900. -- ~Vogl~, Kommentar 1892. -- ~Moeller~, Mikroskopie II. Aufl., Fig. 348-350. -- Preßkuchen: ~Collin-Perrot~, Resid. industr., Fig. 14 u. 15. =Chemie.= Die Zusammensetzung der ungeschälten Samen ist im Durchschnitt in %: Wasser 6,46, Stickstoffsubstanz 18,75, Fett 51,37, stickstofffreie Extraktsubstanz 1,5, Rohfaser 18,1, Asche 3,1 (~König~). ~Schädler~ fand in geschältem italienischem (und indischem) Samen in %: +Öl+ 52,6 (55,2), +Eiweiß+ 20,5 (19,3), +Zucker+ 2,1 (2,2), +Asche+ 2,9 (3,4), +Wasser+ 8 (7,3). Die Samenkerne (und Schalen) enthalten in % (nach ~Maillot~): Öl 52,2 (0), sonst in Alkohol und Äther löslich 4,2 (10,4), Eiweiß 26,6 (15,3), Zucker 2,2 (0), Rohfaser 5,7 (59,6), Asche 2,4 (3,1), Wasser 4,4 (10,5). ~Fleury~ fand (1865) im Samen 3,23% N. (= 20% Eiweiß), 46,6% Öl, 2,2% Zucker und Schleim, 18% Cellulose. -------------------------+------------+------------------------------ Die Preßkuchen | ~Johnston~ | ~Décugis~ zeigen folgende | Amerikan. | aus ganzen | aus geschälten Zusammensetzung: | Ricinus | Samen | Samen =========================+============+============+================= Wasser | 2,54 | 9,85 | 10,38 Fett | 18,20 | 5,25 | 8,75 Stickstoffsubstanz | 27,00 | 20,44 | 46,37 Nicht stickstoffhaltige | } | | Substanz | } 43,42 | 49,44 | 24,00 Rohfaser | } | | Asche | 6,14 | 15,02 | 10,50 Stickstoff | 4,32 | 3,67 | 7,42 Phosphorsäure | 2,04 | 1,62 | 2,26 Die Eiweißkörper bestehen aus viel +Globulinen+, wenig +Albumin+, +Nucleoalbumin+ und +Glykoproteïn+ (~Taylor~, ~Osborne~, ~Mendell~ und ~Harris~). Nachgewiesen ist z. B. das Globulin, +Edestin+ (+Osborne+ und +Campbell+) (= Conglutin C = 51,65, H = 6,89, N = 18,75, O = 21,86, S = 0,85%), das durch Chlornatrium nicht, wohl aber durch Magnesiumsulfat vollständig gefällt wird und bei der Dialyse oktaëdrische Kristalle oder Sphäroide gibt. Es ist auch in vielen anderen Samen (Hanf, Lein, Kürbis, Baumwolle, Cocos, Weizen, Roggen, Mais) gefunden worden. Die Kristalloide der +Aleuronkörner+ bestehen aus einem Globulin, die Globoide enthalten ebenfalls ein Globulin, daneben aber, oder damit verbunden, das Ca-Mg-Salz einer gepaarten Phosphorsäure, die Grundsubstanz neben einem Globulin wohl auch Albumosen (~Tschirch~ und ~Kritzler~). In den Keimpflanzen: +Asparagin+, +freie Fettsäuren+, aber kein Glycerin, viel +Zucker+, +Pepton+ (~Green~), in den etiolierten Keimpflanzen Glutamin (~Schulze~). ~Tusson~ isolierte 1864 aus den Samen das krist. +Ricinin+. Es enthält Stickstoff, ist aber kein Alkaloid. ~Wayne~ fand es auch in den Blättern; ~Schulze~ in den Keimpflanzen (~Schulze~ nennt es +Ricidin+). (~Werners~ +Ricinin+ war etwas anderes, nämlich das Magnesiumsalz einer organischen Säure.) Das Ricinin (nach ~Soave~: C₁₇H₁₈N₄O₄ F. = 194°, nach ~Evans~ = C₁₂H₁₃N₃O₃₁) bildet bitterschmeckende, sublimierbare, optisch aktive, neutrale, wasserlösliche Kristalle, +die keine Alkaloidreaktionen geben+, wohl aber die ~Weidel~sche und die Murexidreaktion. ~Maquenne~ und ~Philippe~ fanden es zu 0,2% in den Preßkuchen (F = 201,5°). Es erwies sich als ein Pyridinderivat von der Formel C₈H₈N₂O₂. Es zerfällt folgendermaßen: C---NH C---NH / \\ / / \\ / HC C HC C || | + alkohol. -> || | CH₃.C C.COOCH₃ KOH CH₃.C C.COOH \ // \ // N N Ricinin Ricininsäure O C---NH C / \\ / / \ HC C HC C(OH) || | + rauch. HCl -> | | CH₃.C C.COOH bei 150° CH₃.C CH \ // \ / N N Ricininsäure H Methyloxypyridon Es ist giftig (~Soave~; ~Cornevin~ bestreitet 1897 die Giftigkeit), besitzt aber keine abführenden Eigenschaften (~Dey~). Vom Ricinin ist im Samenkern 0,03%, in der Samenhaut das fünffache enthalten. In grünen Ricinuskeimpflanzen war die Menge desRicinins auf das zwölffache, in etiolierten auf das fünfzehnfache gestiegen. Etiolierte Keimpflanzen enthalten 2,43%, grüne 1,33% Ricinin (~Schulze~ und ~Winterstein~). Ricinin wird auch in den Schalen (zu 1,5 ‰) angegeben (~Soave~). Das Vorkommen von Amygdalin bedarf der Bestätigung. In den reifenden Samen sind +proteolytische+ und +lipolytische Enzyme+ gefunden worden (~Green~, ~Nicloux~). +Reifer Ricinussamen enthält eine sehr kräftige, zur Fettspaltung technische Verwendung findende (D. R. P.+ 145413) +Lipase+ (~Connstein~, ~Hoyer~ und ~Wartenberg~; noch wirksamer ist übrigens Chelidoniumlipase, ~Fokin~), die in 24 Stunden 90% der Fette aufspaltet. Daneben werden angegeben: +Invertase+ und +Maltase+ (~Taylor~), ein +Labenzym+ (~Bruschi~), ein +diastatisches+ (~Brasse~) und +tryptisches+ Ferment, sowie ein die Fettspaltung beschleunigendes säurebildendes Enzym (~Hoyer~). Die keimenden Samen enthalten ein +proteolytisches+, dem +Trypsin+ ähnliches, ein fettspaltendes und ein +Labferment+. Diese sollen im ruhenden Samen als Zymogene enthalten sein (~Green~, ~Nicloux~). Bei der Keimung werden die Globuline und Albumosen des Samens in Peptone und Asparagin umgewandelt. Im keimenden Samen sind neuerdings neben Milchsäure und Essigsäure +Katalase+, +Peroxydase+ und eine +Reductase+ (Hydrogenase) gefunden worden (~Deleano~). ~M. Nicloux~ schreibt die lipolytische Eigenschaft des Ricinussamens übrigens dem Cytoplasma («Lipasoidin») zu, nicht einem löslichen Enzym. ~Lamy~ erhielt aber das Enzym in Lösung. Die giftige Wirkung der Samen beruht auf einem Gehalte von etwa 3% an dem Toxalbumin +Ricin+. 1889 fand ~Stillmark~ dies +Ricin+ auf, das bereits ~Bübnow~ und ~Dixson~ 1887 in Händen gehabt und +Ricinon+ genannt hatten. ~Stillmark~ extrahierte mit NaCl, fällte mit Magnesiumsulfat und dialysierte den Niederschlag. Ricin ist enorm giftig, mit 1 g kann man 1½ Mill. Meerschweinchen töten (~Ehrlich~), 0,006 (= 10 Samen) töten einen Menschen (doch wirken schon unter Umständen drei Samen giftig). Schon 0,002 mg der Substanz pro 1 kg Körpergewicht wirken bei Kaninchen, 0,04 mg bei Hunden tötlich (~Osborne~ und ~Mendel~). Ricin ist ein agglutinierendes Toxin (~Stillmark~). Es bildet mit Abrin (in _Abrus precatorius_) Crotin (vgl. S. 581), Curcin (~Siegel~, in _Jatropha Curcas_), Robin (~Power~), und Phallin (in _Amanita phalloides_), sowie den ~Greshoff~schen Urticaceentoxinen die Gruppe der pflanzlichen Blutagglutinine, d. h. der die Blutkörperchen zur Verklebung und Ausfällung bringenden Toxalbumine, die ~Kobert~ als Gemische eines Albumins mit einem Globulin betrachtet. Es wirkt agglutinierend auf Frosch-, Säugetier-, Menschen- und Vogelblut, nicht auf Fischblut. Es bringt Milch zum Gerinnen. Verdauung im Brutschrank schwächt es nicht ab (~Kobert~). Die Angabe, daß Ricin durch feuchte Hitze von 90° und trockene von 130° seine Giftigkeit verliert (~Miessner~), ist nicht richtig (~Mooser~). Ricin nach der Phasindarstellungsmethode (Biochem. Ztschr. 18 [1909] II, 549) bereitet, agglutiniert und enthält eine toxische Komponente, ist also ein Phasin. Aber das Phytotoxin (α Phytalbumose) +Ricin+, das erste aus einer höheren Pflanze isolierte Proteid von toxalbuminartigem Charakter ist möglicherweise gar kein Eiweißkörper. Denn ~Jacobys~ durch tryptische Verdauung von allen Eiweißkörpern befreites, keine Eiweißreaktionen mehr gebendes Ricin besaß noch vollkommen seine Giftigkeit und die agglutinierenden Eigenschaften. Auch das reinste Ricin ist noch ein Gemisch. ~Jacoby~ betrachtet es als aus Vollgift, Toxintoxoid und Agglutinintoxoid bestehend. ~Ehrlich~ zeigte, daß sich das Ricin wie ein Bakterientoxin verhält, also im Körper die Bildung eines +Antitoxins+ des Antiricins hervorruft und daß man also durch Einverleibung von Ricin Immunität gegen Ricin erzielen kann. Das Ricin spielt daher im Ausbau von ~Ehrlichs~ Seitenkettentheorie eine Rolle. Das Antiricin des Immunserums ist ziemlich resistent gegen Wärme und Säuren. Das Ricin war das erste Gift, welches man (durch ~Ehrlich~) kennen lernte, das ein Antitoxin im Blutserum erzeugt. Dann erst folgten Abrin, Crotin, Schlangengifte und die Bakterientoxine. Daß Ricinussamen giftig sind und schwere Magendarmentzündungen hervorrufen können, ist seit langem bekannt. ~Beauvisage~ stellte 1894 die bekannten 155 Vergiftungsfälle zusammen. Aber auch die Preßkuchen sind unter Umständen giftig, da außer der Hauptmenge der Lipasen auch das Ricin in ihnen zurückbleibt. (Ricin ist in Öl unlöslich.) Aber Tiere sind sehr verschieden empfindlich gegen das Gift (vgl. oben). Pferde z. B. vertragen bis 100 g der Samen (~Bierbaum~), ebenso sind Hühner ziemlich ricinimmun. Auch kann man durch langsame Gewöhnung oder durch Ricininjektionen (~Cornevin~) die Tiere gegen Ricin immunisieren, da ja im Blute Antiricin entsteht (Schafblutserum enthält sogar normal ein Antiricin) und so ist selbst die vorsichtige Verfütterung der an sich giftigen Preßkuchen, wenn man langsam steigende Mengen gibt, ohne Schädigung möglich (~Kobert~), freilich immerhin nicht ganz unbedenklich, so daß ~Nagel~ vorschlug, die Ricinuskuchen durch Ausziehen derselben mit 10% Kochsalzlösung zu entgiften (Ricin geht in Lösung). Neuerdings wird übrigens behauptet, daß bisweilen Vergiftungen mit Ricinuspreßkuchen durch Beimischung der Preßrückstände anderer giftiger Samen zu stande kämen (? ~Bierbaum~). Der Nachweis, ob ein Preßkuchen Ricin enthält, kann +auf biologischem Wege+ erbracht werden. 10 g des Preßkuchen werden 24 Stunden mit 100 g Glycerin bei 37° digeriert, filtriert und mit Alkoholäther gefällt. Der Niederschlag wird gewaschen, getrocknet und mit 10% Kochsalzlösung eine Stunde digeriert, dann filtriert und auf 200 ccm verdünnt. 1 ccm der Lösung wird mit 0,1 ccm Antiricinserum überschichtet und im Thermostaten gehalten. Bei Anwesenheit irgendwie wesentlicher Mengen Ricin tritt sofortige Fällung ein, bei geringen Mengen nach einiger Zeit, bei Abwesenheit von Ricin bleibt die Lösung klar (~Mooser~). ~Maillot~ fand in den Schalen 0,5% +Gallussäure+ und in den Kernen 1% +Äpfelsäure+. Lösliche +Pentosane+ enthalten die Samenkerne nicht, unlösliche sind in den entfetteten 2,12% enthalten. Die unlöslichen Pentosane des Hemicellulosenrückstandes betragen 18,27% der entfetteten Kerne. Die Samenschalen enthalten 18,77% Pentosane (~Godet~). Ferner enthalten die Samen c. 2% +Saccharose+ (~E. Schulze~, ~Vallée~, ~Gram~) und +Invertzucker+ (~Green~ u. ~Jackson~), +Lecithin+, +Bernsteinsäure+ (~Gram~), +Gummi+, einen +Bitterstoff+ und nach ~Green~ und ~Jackson~, die die saure Reaktion des Saftes darauf zurückführen, neben organischen Säuren eine Spur freie Phosphorsäure. Die +Asche+ der Kerne beträgt 2,1-3,6%, die der Schalen 3,1-5% (~Bruyning~). Die Asche der ganzen Samen beträgt 3-4%. Sie enthält 31,9% Phosphorsäure und 19,8% Magnesia (~Schulze~ u. ~Godet~). Über die Lokalisation der einzelnen Stoffe sind neue Untersuchungen nötig. Bemerkenswert ist, daß ~Dierbach~ den «scharfen Stoff» als ausschließlich in der zarten weißen Samenhaut lokalisiert angibt, ~Boutron~ und ~Henry~ ihn im Eiweißkörper, ~Jussieu~ im Embryo suchen. Ricinussamen enthalten im Kern bis 64,5% Öl (~Bruyning~ 1896). Der Ölgehalt der Kerne (und das spez. Gew. des Öls) differierten bei den einzelnen Varietäten. Sie betragen z. B. nach ~Peckolt~ bei var. _microcarpus_ 56,17 (spez. Gew. 0,971), var. _genuinus_ 45,4 (0,970), var. _badius_ 43,29 (0,962), var. _brasiliensis_ 43,29 (0,963). ~Greshoff~ fand bei Javasamen das Gewicht von 100 Samen 19,2-21,8-31 g und den Ölgehalt des Kerns 50-58%, bei Senegalsamen 100 Samen 45,4 und 9,8 g und den Ölgehalt 61-64%, bei Curaçaosamen 100 Samen 9,5, Ölgehalt 62% (der Kern betrug 70-78,2% der Samen). In den ganzen Samen sind meist 45-53% Öl enthalten (~Lewkowitsch~). Je wärmer das Klima, um so größer der Ölgehalt (~Semler~). =Ricinusöl=, =Oleum Ricini= (Ol. palmae christi, Ol. granae regiae, huile de ricin, castor oil, lamp oil, olio di ricino, wonderolie, κικινέλαιον) ist sehr dickflüssig, fast farblos und schwach gelblich mit einem Stich ins Grünliche; fast ohne Geruch, von sehr eigenartigem, hinterher kratzendem Geschmack, der bei amerikanischen Ölen stärker hervortritt als bei italienischen und französischen. Es trocknet nicht ein, selbst wenn es in sehr dünnen Schichten der Luft ausgesetzt wird, sondern wird ausschließlich eine zähe Masse. Nach dem Einlegen in konz. Kali, dem konz. Ammoniak zugesetzt wurde, treten im Öltropfen sehr kleine Nadeln auf, ganz vereinzelt kleine Sphärite (~Hartwich~ und ~Uhlmann~). Das Öl besteht aus einer geringen Menge +Tristearin+ (~Mangold~, ~Krafft~), etwas, c. 1%, +Di(hydr)oxystearin+ (~Juillard~, ~Haller~, Dioxystearinsäure = Margaritinsäure, ~Bussy~ und ~Lecanu~) und +Hydroxystearin+ (~Juillard~) und vorwiegend (über 80%) dem Glycerinester der +Ricinolsäure+. +Palmitin+, +Olein+, Caprylalkohol (~Bouis~), Önanthylalkohol (~Kolbe~) fehlen, +Isoricinolsäure+ (~Hazura~ und ~Grüssner~) ist fraglich. Durch Alkoholyse mit Methyl-, Äthyl-, Propyl- und Isobutylalkohol unter Zusatz von 1-2% HCl konnte ~Haller~ die Glyceride der Stearin-, Ricinol- und Dioxystearinsäure, nicht aber die beiden isomeren Ricinoleïne von ~Hazura~ und ~Grüssner~ erhalten. Es muß aber, wie die Jodzahl zeigt, eine geringe Menge einer anderen ungesättigten Säure außerdem vorhanden sein. Die sich beim Erkalten zu 3-4% ausscheidende feste Masse besteht aus Tristearin und Triricinoleïn. Die hydroxylierte Fettsäure (Dihydroxystearinsäure) macht nur 1% der Fettsäuren aus. Vielleicht ist auch etwas Sebacinsäure darin. Amerikanisches Öl ist reicher an festen Glyceriden als indisches und italienisches Öl. Die Elementarzusammensetzung des Öls ist: C = 74, H = 10,26, O = 15,71 (~König~). Bei der Elaïdinprobe liefert Ricinusöl eine weiße, feste Masse (Ricinelaïdin kristallisiert leicht). +Das Ricinusöl ist besonders durch sein hohes spez. Gew., sein Verhalten zu Lösungsmitteln, seine hohe Acetylzahl, niedrige Verseifungszahl, konstante Jodzahl und seine große Viskosität charakterisiert.+ Von allen Pflanzenölen besitzt es das höchste spez. Gew. und die größte Viskosität. Während z. B. die spez. Viskosität (~Schübler~) beim Olivenöl bei 15° nur 21,6 beträgt, ist sie beim Ricinusöl 203,3! Es gibt die ~Halphen~sche Reaktion nicht und läßt sich mit Traganth, Kalkwasser, Casein und Seife emulgieren (~Bourdier~). Das spez. Gew. beträgt (bei 15,5°) bei Medizinalöl 0,9591-0,9622, bei indischen Ölen bis 0,9679 (D. A. V: 0,950 bis 0,970, Pharm. helv. IV: bei 15° 0,960-0,970, bei 98° 0,909-0,910), 44 Tropfen = 1 g. Bei 0° wird es durch Abscheidung kristallinischer Flocken trübe, bei weiterer Abkühlung butterartig. Der Erstarrungspunkt liegt bei -10 bis -12° (~Schädler~); bei europäischem oft erst bei -18° (~Schädler~). Verseifungszahl: 176,7-186,6 (180,6-191,2 ~Dieterich~); Jodzahl: 81,4-96,6 (80,2-87,8 ~Bachmann~; 81,17 bis 86,28 ~Dieterich~); Bromzahl (bei kalt extrah.): 52,25 (~Telle~); Reichert-Meißlzahl: 1,1-1,4; Gehalt an Unverseifbarem 0,3-0,37 (~Thomson~ und ~Ballantyne~); Acetylzahl (146,7) 149,9-150,5 (~Lewkowitsch~); Maumenéprobe: 46-47°; Bromthermalprobe: 14,7-15°; Brechungsexponent bei 15°: 1,4795-1,4803 (~Strohmer~), bei 40°: 1,4694-1,4721 (Pharm. helv. IV); Oleorefraktometerzahl +43-46 (~Jean~). Refraktometerzahl (im Zeiss-Butyrorefraktometer) bei 35°: 72, bei 20°: 81,2, bei 15°: 84,5. Ricinusöl dreht rechts, im 200 mm-Rohr bei 20° C. +23,4 bis +26,1° (nach ~Deering~ und ~Redwood~ im ~Hoffmann-Laurent~-Polarimeter +7,6° bis 9,7°, nach ~Peter~ +40,7°, nach ~Dowzard~: +8,3 bis +9°, nach ~Rakusin~ +8 bis +8,5 Saccharimetergrade). Einige Proben drehten aber links (~Flückiger~). Viskosität (in ~Redwoods~ Viskosimeter) 1160-1190 Sec. bei 100° F. Der Entflammungspunkt liegt bei 255-270° (~Rakusin~). Die +Fettsäuren+ zeigen bei 15,5° C. ein spez. Gew. = 0,9509, Erstarrungspunkt +3° C. (~Hübl~), Schmelzpunkt 13°, Säurezahl 183,1-187 (192,1), Verseifungszahl 189-191,1, Jodzahl 87-93,9 (Jodzahl der flüssigen Fettsäuren 106,9), Acetylzahl 153,4-156, Brechungsindex (bei 60° C.) 1,4546. Der Gehalt des Öls an freien Säuren schwankt bei gepreßten Ölen zwischen 0,68 und 14,61 (Mittel 9,28)% (~Nördlinger~). Bei extrahierten von 1,18-5,25, bei technischen von 1,46-2,16 bzw. 3,5-6,04 (~Ulzer~). +Medizinalöl darf höchstens 1,5% freie Säure enthalten.+ Die meisten Handelsöle enthalten nur geringe Mengen freie Fettsäuren. ~Evens Sons Lescher and Webb~ fanden in 10 English grade (first pressure) 0,4-0,49% freie Säure (auf Ölsäure berechnet), in 5 English second pressure 10-14%, in 50 Calcutta (good seconds) 0,6-2,1%, in 3 italienischen (pharmazeut.) Ölen 0,5-0,6%, in 3 französischen (pharmazeut.) Ölen 0,4 bis 0,5%. Raffiniertes Öl hält sich lange ohne sauer und ranzig zu werden (~Lewkowitsch~). Bei einem 4 Jahre der Luft ausgesetzten Medizinalöl hatte die Jodzahl nicht abgenommen, nur das spez. Gew. war von 0,9591 auf 0,9629 gestiegen und es ließen sich 1% freie Fettsäuren nachweisen (~Lewkowitsch~). Durch «Blasen» steigt das spez. Gew. von 0,9623 auf 0,9906, die Säurezahl von 1,1 auf 5,7, die Verseifungszahl von 179 auf 190,6, die Acetylzahl von 146,9 auf 164,8; die Jodzahl sinkt auf 70,01 (~Lewkowitsch~). Ricinusöl ist in Petroläther, Petroleum und Vaselinöl fast vollständig unlöslich, nimmt aber das gleiche Volumen Petroläther auf und 1½ vol. Petroleum. Es löst sich in allen Verhältnissen in Eisessig und abs. Alkohol, ferner bei 15° in 3 Teilen (D. A. V, 2,4-2,94 Teilen ~van Itallie~) und bei 25° in des gleichen Menge 90prozentigen Alkohol -- +ein für Ol. ricini sehr charakteristisches Verhalten, das es von fast allen anderen Ölen unterscheidet+. Durch Erhitzen auf 300° wird ein Öl (Floricin) erhalten von entgegengesetzten Lösungsverhältnissen (~Nördlinger~). Ricinusöl esterifiziert sich mit Säuren (Oxalsäure, Essigsäure, Ameisensäure usw.) ziemlich leicht (~Lidoff~). Die Kohlensäureester, durch Sättigen des Öls mit CO₂ erhalten (~Dieterich~), besitzen den kratzenden Geschmack des Öles nicht und höhere Resorbierbarkeit. Durch Behandeln des Ricinusöls mit englischer Schwefelsäure (und Neutralisieren mit Ammoniak) wird das +Türkischrotöl+ erhalten. Dies ist ein Gemisch, in dem Ricinolsäureschwefelsäurester, Dioxystearinsäureschwefelsäureester, polymere Ricinolsäuren, Ricinolsäure und Isoricinolsäure (angeblich ein Gemisch von Ricinolsäure mit Dioxystearinsäure) resp. deren Salze neben unverändertem Ricinusöl enthalten ist (~Scheurer-Kestner~, ~Juillard~, ~Bogajewsky~). Oxydation des Öls mit Salpetersäure liefert Pimelinsäure (~Ganther~ und ~Hill~). Behandelt man Ricinusöl mit einigen Tropfen Salpetersäure und neutralisiert mit Soda, so tritt der Geruch nach Önanthsäure auf (~Draper~). +Die purgierende Substanz des Öls ist+ (nach ~Buchheim~ und ~Hans Meyer~) +die Ricinolsäure+ (Ricinölsäure, Ricinoleïnsäure); vielleicht nehmen aber an der Wirkung auch noch andere unentdeckte Substanzen teil (~Finnemore~ und ~Deane~). Die +Ricinolsäure+, von ~Claus~ 1876 entdeckt, erhielt ~Krafft~ kristallinisch F = 16-17°. Sie ist eine ungesättigte Säure, wahrscheinlich aber nicht = CH₃.(CH₂)₅.CH(OH).CH = CH.(CH₂)₈.COOH (~Juillard~), sondern: 12 10 9 CH₃.(CH₂)₅.CH(OH).CH₂.CH = CH.(CH₂)₇.COOH (~Krafft~, ~Behrend~, ~Goldsobel~) und zwar die rechtsdrehende labile Form der Oktadeken 9 ol 12 Säure 1. Sie besitzt den gleichen kratzenden Geschmack wie Ricinusöl und geht durch salpetrige Säure in die isomere Ricinelaïdinsäure: CH₃.(CH₂)₅.CH(OH).CH₂--CH || HC.(CH₂)₇.COOH über. Da durch Oxydation der flüssigen Säuren des Ricinusöls mit alkalischem Permanganat zwei isomere Trihydroxystearinsäuren entstehen, so nehmen ~Hazura~ und ~Grüssner~ zwei isomere Säuren, Ricinolsäure und Isoricinolsäure, im Öle an. (~Grün~ erhielt aus Ricinolsäure mehrere isomere Dioxystearinsäuren). Jedoch zeigte ~Mangold~, daß diese Supposition unnötig ist, da bei der Oxydation von Säuren mit doppelten Bindungen zwei stereoisomere Säuren entstehen müssen. ~Scheurer-Kestner~ fand, daß Wasser von 150° Ricinusöl zerlegt und dabei Ricinolsäure und Diricinolsäure gebildet werden, bei höherer Temperatur werden Tetra- und Penta-Ricinolsäuren erhalten. Ricinolsäure polymerisiert sich also leicht, auch schon allein z. B. bei mehrjährigem Liegen bei gewöhnlicher Temperatur (~Meyer~). -- Die Säure- und Jodzahlen nehmen hierbei ab. -- Die Polymeren gehen aber durch alkoholische Kalilauge wieder in Ricinolsäure über. +Die aus den sorgfältig gereinigten Salzen abgeschiedene Ricinolsäure wirkt abführend wie das Öl oder stärker wie dieses.+ Ebenso ist das Glycerid wirksam (~Meyer~). ~H. Meyer~ hat festgestellt, daß auch synthetisches reines Ricinolsäureglycerid, durch Erhitzen von Ricinolsäure mit Glycerin auf 280-300° im Kohlensäurestrom erhalten (sowie Ricinelaïdinsäure) wie Ricinusöl wirken. Die Ricinelaïdinsäure und das Ricinelaïdin sind aber nur wirksam in Emulsion, nicht in Substanz (Ricinolsäuretriglycerid gibt kein festes Elaïdin). ~Dott~ und ~Stockmanns~ durch Behandeln mit überhitztem Dampf erhaltene Säuren waren nicht wirksam. Die Säuren waren wohl polymerisiert (~H. Finnemore~ und ~H. Deane~), nach ~Meyer~ sind aber auch diese wirksam. Ricinusöl und Ricinolsäure verlieren ihre Wirkung nicht durch Erhitzen auf 300°, auch nicht durch Behandeln mit trockener Salzsäure, wohl aber durch Sättigen mit Brom. Die Ricinolsäure wird durch Behandeln mit Mineralsäuren in die unwirksame Pseudoricinolsäure übergeführt. Die mit Ausschluß von Mineralsäuren dargestellten Alkylester sind wirksam. Aber nur die Ricinolsäureverbindungen führen ab, die im Darmkanal entweder selbst löslich sind (Alkaliseifen) oder durch Spaltung löslich werden (Glycerin- und andere Alkylester), während Ricinolamid und ricinolsaure Magnesia unwirksam sind (~H. Meyer~). Die optische Drehung des Ricinusöls (s. oben) beruht auf der ein asymmetrisches Kohlenstoffatom besitzenden Ricinolsäure (~Dowzard~). Ricinolsäure liefert oxydiert 2 Trioxystearinsäuren C₁₇H₃₂(OH)₃COOH, davon ist eine ätherlöslich (F. 114), eine nicht (F. 137-140). Beim Verschmelzen mit Alkalien liefert Ricinolsäure Methylhexylkarbinol und Sebacinsäure, bei Destillation unter vermindertem Druck Önanthol und Undecylensäure (CH₂ = CH-(CH₂)₈COOH), mit alkoholischem Ammoniak Ricinolamid. Bei der trockenen Destillation des Ricinusöls geht Undecylensäure und Önanthaldehyd (Cognacöl) über und in der Retorte bleibt das Glycerid der zweibasischen Triundecylensäure zurück, das bei weiterem Erhitzen in Acrolein, Wasser und Triundecylensäureanhydrid zerfällt (~Thoms~ und ~Fendler~). =Lit.= Ältere Literatur: ~Hungerbyhler~, De oleo ricini. Amsterdam 1780. -- ~Fuchs~, Trommsd. Journ. 1, 118. -- ~Pfaff~, Mat. med. -- ~Rochleder~, Pflanzenchemie 1858. -- ~Pereira~, Elements. -- ~Lecanu~ u. ~Bussy~, Journ. pharm. 13, 80. -- ~Bussy~, Journ. pharm. 1845. -- ~Bouis~, Ann. chim. 44, 123. -- ~Saalmüller~, Lieb. Ann. 1847, 108. -- ~Geiger~, Handb. d. Pharm. II, 1671 (Analyse). -- ~Boutron-Charlard et Henry~, Journ. pharm. 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Habilitationsschr. -- ~Thoms~ und ~Fendler~, Arch. Pharm. 1900, 690 u. 1901, 1. =Verfälschung.= Trübes, nicht mit Wasser gekochtes Öl ist als Arzneimittel immer zu verwerfen, da etwa beigemengtes Ricin oder Fragmente der Samenkerne wegen ihres Ricingehaltes das Öl giftig machen können. Als Verfälschungen werden genannt Sesamöl, Leinöl, Rüböl, Harzöl, Cocosöl, Cottonöl und geblasene Öle, die alle die oben (S. 636) angegebenen Konstanten verändern. Als Verfälschung wird auch gebleichtes Sesamöl angegeben. ~Evens Sons~ fanden Mineralöl und Leard oil. Über den Nachweis von Crotonöl im Ricinusöl vgl. ~Mazuchelli~, Rep. pharm. 1905, 361. 3 ccm Ol. ric., 3 ccm Chloroform (oder CS₂) und 1 ccm Schwefelsäure durcheinander geschüttelt sollen rotbraun, aber nicht schwarzbraun werden (heißgepreßtes Öl, fremde Öle). Wenn 10 Teile Ol. ric. mit je 5 Teilen Weingeist und Natronlauge unter Erwärmen verseift werden, so darf kein Geruch nach «Butteräther» (d. h. Caprin-Capryl-Capronsäure-Äthylester) auftreten (Cocosfett). =Anwendung.= Ricinusöl zeigt die allen fetten Ölen zukommende abführende Wirkung in verstärktem Maße und wird denn auch seit den ältesten Zeiten (Vorschrift im Papyrus ~Ebers~, um 1500 n. Chr.) als mildes Abführmittel benutzt. Ebenso alt ist die Anwendung als Haarwuchsmittel (s. Geschichte), neu die Benutzung zur Darstellung des _Collodium elasticum_. Die Ägypter bereiteten u. a. aus Ricinusöl eine Salbe um die Haut geschmeidig zu erhalten (~Herodot~). Auch ~Strabo~ (XVII, 2 § 5) kennt diese Verwertung des Öls. In Italien ist Ricinusöl Nationalheilmittel: «Purga il sangue e rinfresca», sagt von ihm der Italiener. Die Frühjahrskuren mit täglich einem halben Glas Ricinusöl durch mehrere Tage sind dort außerordentlich beliebt. In China dient frisches Ricinusöl bisweilen als Speiseöl! (~Schädler~). Aber 90% des Öls verbraucht die Industrie in der Woll- und Baumwollappretur, zur Herstellung des Türkischrotöls (s. oben), in der Türkischrotfärberei, in der Leder-, Seifen- und Schmierölindustrie, zum Denaturieren des Spiritus. Sehr viel verbraucht Indien als Lampenöl und Schmieröl (besonders für Eisenbahnwagen). Das Öl wird z. B. in Bengalen und Chorassan (~Aitchison~) ganz allgemein als Brennöl benutzt. Es eignet sich zum Lampenöl sehr gut, denn es übertrifft an Leuchtkraft alle anderen Öle («no other oil can vie with this light, it being almost electrical in its brilliancy», sagt ~Watt~, Dict. econ. pr. India). Auch das meiste javanische Öl wird für technische Zwecke verwendet, doch fabrizierte 1894 eine Ölfabrik in Kediri auch Medizinalöl. Das geringere Öl und die Preßrückstände dienen zur Gasgewinnung und zu Feuerungszwecken. Die Preßkuchen werden auch zu Düngezwecken verwendet, nachdem sie noch von den Ölresten durch Extraktion befreit wurden. Der Preßkuchen, der 4,8% N, 1,6% Phosphorsäure und 1,2% Kali enthält, dient in Südeuropa als Düngemittel der Weinberge, in Amerika als solches der Mais- und Hanf-, in Java der Zuckerrohr-, in Bengalen der Kartoffel-, Betel- und Getreidefelder. Die Marseiller Preßkuchen gehen ausschließlich nach Pertuis und Cavaillon und werden dort zur Düngung der Primeurs und Kartoffeln benutzt. Er ist auch ein gutes Ratten- und Mäusegift, so daß man zwei Fliegen mit einer Klappe schlägt, wenn man damit die Felder düngt. In Indien dienen angeblich die wegen des Ricin giftigen Preßrückstände bzw. ihr Dekokt als Viehfutter. ~Schulte im Hofe~ bestreitet dies und glaubt, daß sie nur in kleinen Dosen als Lactagogum gegeben werden. In Rußland müssen die Preßkuchen unschädlich gemacht werden. Es geschieht dies durch trockene Destillation, wobei Gas gewonnen wird, und durch Verfeuern. ~Kobert~ schlägt den Erlaß eines solchen Gesetzes auch für Indien und Italien vor. Als Geschmackskorrigens des Öls wird in Europa Pfefferminzessenz und Kaffee, in Indien Ingwerdekokt benutzt. Man gibt das Öl mit einem angewärmten Löffel oder in warmem Kaffee oder anderen Flüssigkeiten -- auch in Brausemischungen, als Emulsion, als Gallerte, in Gelatinekapseln. Festes Ricinusöl läßt sich mit Casein und Laktose (~Winternitz~) oder Gummi und Magnesia (~Wasserzug~) herstellen. Unter dem Namen «lösliches Ricinusöl» (soluble castor oil) versteht man aber ein +geblasenes+, halbtrocknendes, vegetabilisches Öl (blown oil), das durch das Einblasen von Luft dem Ricinusöl ähnlich geworden ist. Die oft behauptete Wirkung von Ricinusöl bei Rheumatismus sollte näher erforscht werden. In Indien wird Same und Wurzel als Antirheumaticum seit langem benutzt, auch ein indischer Name der Pflanze (s. oben S. 625) besagt dies. Wie Ricinusöl wirkt auch das Öl des Tamborbaumes (_Omphalea oleifera_ und _cardiophylla_) aus Sonsonate (Salvador). Auch die Samen anderer _Omphalea_arten purgieren (~Hemsley~). Die Blätter von R. gelten in Europa und Amerika (im Gegensatz zu Indien!) als Lactagogum. Die Blätter werden in Indien äußerlich und innerlich auch als Emenagogum benutzt. Die Fasern der Stengel sind zur Papierfabrikation zu gebrauchen. In Assam werden die Erie-Seidenraupen (_Bombyx Cynthia_, _Attacus Ricini_ ~Boisd.~) auf Ricinus gezüchtet. Nach einem Bericht des britischen Konsuls in Maracaibo wird die Ricinuspflanze in Südamerika in verschiedenen Gegenden als Mittel gegen die Moskitoplage mit Erfolg um die Häuser angepflanzt. Die eigenen Erfahrungen des Konsuls bestätigten die Zweckmäßigkeit des Mittels. =Lit.= ~Hemsley~, Pharm. Journ. (3) 1882, 301. -- ~Winternitz~, Pharm. Zeit. 1907, 363. -- ~Wasserzug~, Pharm. Era 1907, 470. -- ~Anonym~, (Die Ricinuspflanze gegen die Moskitos). Advance Sheets of Consular Report. Durch Deutsches Kolonialblatt, 1901, 160. =Geschichte.= Ricinusöl war bereits den Sumerern bekannt. Ricinus (kiki = _R. comm._ +oder+ _R. africanus_) wurde im alten Ägypten ganz allgemein angebaut. Es berichten darüber die alten Schriftsteller (~Plinius~ z. B. sagt, der kikus wächst in Ägypten sehr häufig, ~Herodot~ berichtet von Kulturen der Silicyprien an Fluß- und Seeufern). Auch heutzutage wird _Ricinus_ noch in Ägypten kultiviert. Wir finden die Pflanze dargestellt auf Monumenten (z. B. dem Gartenplane von Tell-el-Amarna, vgl. I, Fig. 366) und ihre Samen sind oft und gut erhalten in Gräbern (schon c. 4000 n. Chr. ~Caillaud~) gefunden worden (~Unger~, ~Wönig~). Im Papyrus ~Ebers~ finden sich in vielen Rezepten die Samen (Früchte), das Mark, die Wurzelrinde und die Blätter der Pflanze und (eingeschoben in den Text) eine Angabe über die Verwendung des Ricinus, der Samen als Purgans und Haarwuchsmittel, des Öls als Salbe für riechende Geschwüre. Das kikajon, kykwyn des alten Testaments, das in einer Nacht zum Schutze des Propheten ~Jona~ emporwuchs, wurde mit Gurke oder Epheu, dann auch mit _Ricinus_ übersetzt. ~Tristram~ und ~Niebuhr~ halten jedoch daran fest, daß kikajon die Gurke (= el kerra, in Palästina: kurah) und nicht _Ricinus_ (= el keroa, in Palästina: khurwah) sei. Das κρότων des ~Theophrast~ ist nach ~Fraas~ _R. commun._, nach Sprengel _R. africanus_. Nach ~Herodot~ (II, 94) wurden die Samen entweder zerstampft und gepreßt oder gebraten und ausgekocht und das Öl abgehoben. Die Bereitung des Öls schildert auch ~Plinius~. Der Same wurde mit Wasser gekocht und das Öl abgeschöpft oder (in Ägypten) eingesalzen und dann ausgepreßt. ~Dioskurides~ erwähnt in Ägypten nur das Auspressen der gemahlenen Samen in Flechtkörben. ~Dioskurides~ beschreibt die Darstellung des κίκινον ἔλαιον. Die in der Sonne getrockneten, von der Schale befreiten Früchte werden in einem Mörser zerstoßen, in einem Kessel mit Wasser ausgekocht und das Öl mit einer Muschel abgeschöpft. ~Dioskurides~ erwähnt neben äußerlichen Anwendungen und zur Pflasterbereitung die wurmtreibende und brechenerregende Wirkung des Öls und daß es unangenehm purgiere. Die Hippokratiker scheinen die Abführwirkung nicht gekannt zu haben, wohl aber ~Galen~. Das Öl wurde im Altertum, wie es scheint, vorwiegend zum Brennen benutzt, z. B. in Ägypten. ~Strabo~ erwähnt (XVII, c. 2 § 5) seine Verwendung auch zum Salben bei ärmeren Leuten. Einige beziehen den _Ricinus_ des ~Plinius~ und ~Strabo~ auf _Ricinus africanus_ ~Willd.~ Die Wurzel, die Blätter und das Öl wurden von den Indern, die die Pflanze Jahrhunderte vor Christi Geburt kannten, schon frühzeitig als Purgans-, Rheumatismus- und Augenmittel und bei Frauenleiden in der Lactationsperiode benutzt. ~Suśrutas~ erwähnt das Öl und die frische Pflanze (Pharmac. ind.). In den indischen Sprichwörtern ist die Pflanze ein Symbol der Zerbrechlichkeit (auch kirwa bezeichnet eine zarte Pflanze). Die Araber lernten die Pflanze wohl in Indien kennen. Sie nannten die Samen daher simsim-el-hindi (= indischer Sesam) und bedienten sich der Samen besonders innerlich, der Blätter äußerlich. In den Pflanzenglossaren ist _Ricinus_ selten (eine Angabe bei ~Fischer-Benzon~). Bei ~Albertus Magnus~ und ~Megenberg~ findet er sich (s. oben). Er wurde also schon damals in Europa kultiviert. Das Mittelalter scheint das Öl nur äußerlich verwendet zu haben. ~Turner~ (Herbal 1568) erwähnt R. als eine Gartenpflanze Englands und das Öl als _Oleum cicinum_ s. _ricininum_. ~Gerarde~ (I, S. 909) nennt das Öl auch _Oleum de cherua_. Dann wurde das Öl vergessen. Es fehlt bei ~Dale~ (1693) und war auch zur Zeit von ~Hill~, ~Lewis~ (I, S. 949) fast unbekannt. Durch die Dissertation des in Westindien lebenden ~Peter Canvane~, On Ol. palmae Christi 1764 (in 2. Aufl. 1769; auch französ.) wurde die Aufmerksamkeit wieder auf das Öl als ein mildes Purgans gelenkt und die Samen wurden in die Londoner Pharmakopoee 1788 aufgenommen. ~Woodville~ sagt 1790 in seiner Med. Bot., daß das Öl neuerdings öfter gebraucht werde. Damals kam der Same und das Öl aus Jamaica. 1799 exportierte Jamaica 236 casks Öl und 10 casks Samen. Später trat dann das ostindische Öl auf und die Einfuhr stieg nun rasch. 1820 kamen schon für 7102 _£_ Öl von dorther nach London (Pharmacographia). ~Heyer~ schlug (~Crells~, Neuest. Entdeckungen 1781) vor, _Ricinus comm._ im Apothekergarten zu ziehen, die Samen selbst zu ernten und das Öl selbst zu pressen. Kultiviert und verwildert war Ricinus, der sich überall leicht ansiedelt, schon zu ~Rheedes~ Zeit in Malabar, zu ~Rumphius~ Zeit auf Java und Amboina, ebenso später in Japan und China. Nach Amerika wurde R. sehr frühzeitig kurz nach der Entdeckung gebracht. ~Piso~ nennt schon einheimische brasilianische Namen: nhambu-guacu (figuero inferno der Portugiesen). =Lit.= ~Wönig~, Pflanz. d. alt. Ägypt. -- ~Joachim~, Papyrus Ebers. -- ~De Candolle~, L’origine d. plant. cult. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- Pharmacographia indica. -- ~Tristram~, Nat. hist. of the bible. Zur Ricinusölgruppe gehört nur noch das ähnlich sich verhaltende Traubenkernöl. II. Animalische Öle. 1. Öle von Seetieren. Die Öle der Seetiere unterscheiden sich in vielen Punkten von denen der Landtiere, z. B. durch hohe Jodzahlen, -- sie enthalten viel ungesättigte Fettsäuren -- durch die große Menge Hexabromid, die sie liefern, durch ihre Fähigkeit Sauerstoff zu absorbieren und die Eigenschaft bei der Elaidinprobe kein Elaidin zu liefern. Sie ähneln also den trocknenden vegetabilischen Ölen. Mit der Gruppe der Öle von Landtieren sind sie durch Übergänge verbunden (~Lewkowitsch~). a) Fischöle. Die Fischöle werden aus allen Körperteilen der gewöhnlicheren Fische (Hering, Sardinen, Lachs, Sprotte usw.) durch Auskochen erhalten. Der Dorsch dagegen enthält nur in der Leber, nicht im Fleisch beträchtlichere Mengen Öl. Zu dieser Gruppe gehören nur Öle, die nicht oder kaum medizinische Anwendung finden, wie das +Menhadenöl+ von _Alosa Menhaden_ (_Brevoortia tyrannus_), +das Sardinen- oder Japanische Fischöl+ von _Clupea sardinus_ und das +Lachsöl+ (huile de saumon) von _Salmo salar_. Ferner das Stichlingsöl (Stichlingstran) von _Gasterosterus trachurus_, das Heringsöl von _Clupea harengus_, das Störöl von _Acipenser Sturio_, das Sprottenöl von _Clupea sprattus_, das Karpfenöl von _Cyprinus carpio_ u. and. (Konstanten bei ~Lewkowitsch~. Näheres über diese Öle bei ~Benedikt-Ulzer~.) Die Fischöle enthalten, wenn rein, keine Gallenstoffe (Cholesterin, Lipochrome). Sie geben daher nicht die charakteristischen Reaktionen der Leberöle (siehe unter _Ol. jecoris_). b) Leberöle. Die Leberöle (fälschlich auch Trane genannt) sind durch eine beträchtliche Menge von Cholesterin sowie durch Lipochrome und andere Gallenstoffe ausgezeichnet. Sie geben daher in Schwefelkohlenstoff gelöst mit konz. Schwefelsäure eine blaue, wenn ranzig eine purpurne Färbung (~Lewkowitsch~, ~Tichomirow~, ~Kaiser~). Werden in Chloroform gelöste Leberöle mit Phosphormolybdänsäurelösung durchgeschüttelt, so entsteht +nach der Scheidung+ an der Berührungsstelle ein blauer Ring. Oleum Jecoris Morrhuae. =Syn.= Oleum jecoris Aselli, Ol. jec. Gadi, Ol. morrhuae (so z. B. in U.S. Pharm.). Lebertran, Dorsch-, Kabliau-, Stockfisch-Lebertran, Dorschleberöl, Kabeljauleberöl -- huile de foie de morue (franz.) -- Codliver oil, Coal- oder dogfish oil (engl.) -- Olio di fegato di merluzzo (ital.) -- levertraan (hol.) -- csukamáj olaj (ung.) -- ἔλαιον ἥπατος ονίσκον (gr.). =Etym.= Der früher allgemein (auch jetzt noch vom D. A. V.) benutzte, wie es scheint, zuerst bei ~Scherer~ auftretende Name _Ol. jec. Aselli_ ist nach dem alten, schon seit über 100 Jahren verlassenen Namen des Dorsches, _Asellus major_, gebildet. Die Worte Asellus und Callarias schon bei ~Plinius~. (Asellus = Eselchen, wegen der eselsgrauen Farbe des Tieres.) Die in Pharm. helv. IV gewählte Bezeichnung _Ol. jecoris_ ist nicht glücklich, da es auch andere Leberöle gibt und nur das Dorschleberöl benutzt werden soll. Die beste Bezeichnung scheint mir _Ol. jecoris Morrhuae_ zu sein, da es auch andere Aselli und andere Gadi gibt. -- +Tran+ erst im nhd. (Stellen bei ~Kluge~), +ndl.+ traan, +dän. schwed.+ tran. Heimat und Grundbedeutung unbekannt. -- +Dorsch+ (nhd., -- +anord.+ porskr, +dän.+ torsk.) ist wohl aus torsk umgebildet. -- Klippfisch hat mit Klippe (= Fels) nichts zu tun, sondern ist korrumpiert aus klapfisk, d. h. aufgeschnittener Fisch, von klappet = aufgespalten. -- In einem Tractatus de piscibus (Handschr. aus dem XIII. Jahrh.) wird von einem Fische berichtet: «genus piscis a nostris +mo(r)rude+ ab ore, quia +mourre+ vocant os cum prominentibus labris» (vgl. ~Schelenz~, Pharm. Centralh. 1906, 166) und in einer Handschrift aus dem Jahre 1309 heißt es: «Item grossa bestia onerata ... piscibus alecibus, +Morua+ et similibus, debet pro pedagio octo denarios» (~Du Cange~). Hier läßt sich also der Übergang von morrude in mourre und morua (aus dem dann morue, der heutige Name des Dorsch in Frankreich wurde) direkt verfolgen. Woraus aber morrude entstand, ist unklar (ob aus merluc? maris lucidus = Seehecht?). -- Cod (zuerst 1357 in Act. 31 Edw. III Stat. 3. «Les trois sortz de lob, lyng et cod» ~Murray~) kaum zu γάδος, eher zu kodde, kudse zu ziehen. =Herkunft.= Der Lebertran ist das Öl der Lebern in erster Linie von: =Gadus morrhua L.= (incl. _G. callarias_, _ruber_ und _ogat_, _Morrhua vulgaris_ und _callarias_, _Asellus major_ und _varius_), dem +Kabeljau+ oder +Dorsch+ (Dösch, Pomuchel, Pamuchel; +port.+: bacalão, +norw.+ skrei oder torsk, +franz.+: morue, cabeliau, +ital.+ baccalare, +engl.+ und +amer.+: cod) (Fig. 197), eines zu der durch drei Rücken-und zwei Afterflossen, die bestimmt von der letzten Rücken- und zweiten Afterflosse geschiedene Schwanzflosse und einen Bartfaden an der Spitze der Unterkinnlade gekennzeichneten Gattung der +Schellfische+ (Gadus) -- Pisces, Anacanthini, Gadoidei (oder Teleosteae Malacopterygiae) -- gehörenden Fisches von 0,75-1,5 m Länge und bis 20, ja 42 kg Schwere, der auf grauem Grunde mit kleinen gelblichen Flecken getüpfelt, längs der Seitenlinie weiß gestreift und auf dem lichten Bauche ungefleckt ist (Farbe und Flecke wechseln). Der Fisch bewohnt den nördlichen Teil des atlantischen Meeres und die angrenzenden Gebiete des Eismeeres und zwar vorzugsweise die unteren Wasserschichten bis c. 120 Faden Tiefe (~Günther~) und kommt nur zur Eiablage an seichtere Stellen (25-50 Faden). Er kommt in ungeheuren Massen zwischen dem 50. und 75. Grade n. B. vor und überschreitet nach Süden meist nicht den 40. Grad n. B. Er ist einer der fruchtbarsten Fische. Ein Fisch enthält meist 1¼, bisweilen 4 (~Braydley~) oder gar 9⅓ Mill. (~Leeuwenhoek~) Eier und ist im fünften Jahre fortpflanzungsfähig. Auf der östlichen Seite des Verbreitungsgebietes fällt die Laichzeit in den März, auf der westlichen, amerikanischen, Seite in den Mai und Juni. Zu dieser Zeit erscheint der Fisch in riesigen Scharen, «in Bergen», wie die Norweger sagen, d. h. in dicht gedrängten, meilenlangen, oft mehrere Meter hohen Heeren an den Küsten und Sandbänken und wird hier entweder in Netzen (Norwegen) -- Nöter-, Senk-, Zieh-, Sperrnetze, Garne -- oder mit der Handangel (Tiefseeangel) oder der c. 2000 m langen, meist mit 1200 bis 3600 Angelschnüren besetzten Grundschnur (an den übrigen Plätzen) leicht in großen Massen gefangen. Als Köder dienen Fische (z. B. Heringe und Lodden) oder Muscheln. [Illustration: Fig. 197. 1 Schellfisch (_Gadus aeglefinus_), 2 Wittling (_G. merlangus_), 3 Dorsch (_G. callarias_), 4 Kabeljau (_C. morrhua_). [Aus +Brehms+ Tierleben.]] [Illustration: Tafel XVII. Die Flotille der Lofoten-Fischer begibt sich bei Morgengrauen auf den Dorschfang. (Nach einem Gemälde bei Scott & Bowne.)] [Illustration: Fig. 198. Die Flotille der Dampf-, Motor- und Segelboote der Dorschfischer bei Bolstad (Lofoten). [+Wilse+ phot.]] Die meisten Boote (c. mit 14500 Fischern) fischen mit +Langleine+, die zahlreiche, an seitlichen, vier Fuß voneinander entfernten Leinen befestigte Angelhaken besitzt. Oft wird ein solcher stamp an den anderen befestigt, so daß meilenlange Langleinen entstehen. Jeder Ottring ist mit 3-5 Fischern bemannt. Neuerdings wird aber mit Langleine auch von großen, gedeckten Segel-, Motor- oder Dampfbooten aus gefischt, die nach amerikanischem Muster 3 bis 5 Jollen, dories, d. h. offene Boote mit flachem Boden für 2 Mann mitführen, mittels welcher die Leinen gesetzt und wieder gehoben werden (~Bull~). Viele Boote (mit c. 12500 Fischern) fischen auch mit +Netzen+, deren Maschen drei Zoll weit sind und die ebenfalls aneinander gebunden werden. Diese Boote heißen Femböring. Aber neuerdings wird nicht nur von großen und kleinen offenen Booten, sondern auch von gedeckten Fahrzeugen (Motor- und Dampfbooten) mit Netzen gefischt. Nur die kleinen, mit 2-3 Mann bemannten, Boote fischen mit Handleine. Sie bilden die Minderzahl (c. 2300 Fischer). Allein, wenn in Finmarken die Fischerei sehr reich ist, dann nehmen alle Arten von Booten daran teil. Die im Netz gefangenen Fische sind meist größer (12 Pfund mit Lebern von 11¼ Unze), die mit der Leine gefangenen sind kleiner (10 Pfund mit Lebern von 9½ Unze). Die Avantgarde erscheint im Vestfjord in der ersten Woche des Januar, die Hauptfangzeit ist der März. Gegen Mitte März beginnt die Laichzeit, dann geht der Fisch nicht an den Köder und die See trübt sich durch die riesigen Mengen der Eier und Samen der «Hochzeitzüge» der Dorsche. Der Fisch erscheint entweder in dünnen Bändern oder in ganz kompakten Massen, bald ganz oben, bald tief, bald in der Nähe des Landes, bald weit davon entfernt, bald bei den Westlofoten, bald bei den Ostlofoten. Sobald die Fische aus dem Netz genommen sind, wird es wieder ausgeworfen. Ein Netzboot fängt täglich c. 300-400 (bis 800), ein Leinenboot c. 200 (bis 400) Fische. Der Fisch wird durch einen Einschnitt hinter den Kiemen getötet, dann geöffnet, Leber und Rogen in verschiedene Behälter getan, der Rest der Eingeweide ins Meer geworfen und der Fisch selbst nach Entfernung des Kopfes an Land verkauft. Für Ordnung sorgt eine königliche Aufsichtsbehörde, ein Inspektorgeneral mit c. 50 Beamten (Gesetz vom Jahre 1857). Sie kontrolliert die Fangplätze, gibt das Signal zur Ausfahrt, verteilt die Plätze und sammelt das statistische Material. Der Fisch liebt eine Seewärme von c. 4-6° C (~Damas~). Ihr geht er nach. Der Wechsel in der Temperatur der Meereswasserschichten kommt dadurch zu stande, daß der Golfstrom mit dem Polarstrom hier zusammenstößt (s. d. Karte). [Illustration: Illustration: Fig. 199. Das Öffnen der Dorsche und Beseitigen der Köpfe an Land auf Röst (Lofoten). [+Wilse+ phot.]] [Illustration: Fig. 200. Ein norwegischer Fischer mit einem besonders großen Dorsch. [Nach einer Photographie von +Scott & Bowne+.]] Diese regelmäßigen Wanderzüge des Fisches, die sich sowohl gegen die norwegische Küste (Lofoten und Finmarken), die südlicheren Gebiete der Nordsee (Doggerbank) und die schottische Küste (Newhaven) wie auch gegen die Küsten Neufundlands richten, hängen allerdings zunächst mit der Laichzeit zusammen (bei den Lofoten laichen die Dorsche auf der Nordwest- und Südostbank, s. d. Karte) sind aber auch als Raubzüge zu betrachten, da die gefräßigen Dorsche ihrem Nahrungstriebe folgend, den Zügen des Herings und der Lodde folgen, die eben jene Gegenden zu dieser Zeit aufsuchen. Bei den Lofoten dauert der Fang meist vom Januar bis etwa 12. oder 24. April. Hier ist im März die Laichzeit. Der Schluß des Fanges ist meist Ende April. In Finmarken (70° n. B.) dauert der Fang in der Regel von November bis Ende März (Winterskrei oder Winter-Kabeljau) und von März bis etwa 24. Juni (Frühjahrs- oder Lodde-Fisch). Bei Bergen und Aalesund in Romsdalen (63° n. B.) erscheint der Fisch im Januar und Februar. Bedeutend ist der Dorschfang auch außerhalb der großen Inseln Senjen und Kvalö (westlich und südwestlich von Tromsö). Hier liegen die «Banken» (Laich-Bänke) viel weiter vom Lande entfernt und tun hier die oben erwähnten größeren modernen, zweimastigen Motorboote, die überhaupt jetzt mehr und mehr die «Nordlandsboote» (Femböring und Ottring) verdrängen, ausgezeichneten Dienst. Der Fang dauert hier besonders von Januar bis März (~Svendsen~). Stürmisches Wetter verzögert oft den Anfang der Fischerei und zwingt zu frühzeitigem Schluß. In schlechten kalten Jahren (z. B. 1902 u. 1903), in denen der Fisch südlichere Gegenden (z. B. England) aufsucht (1902 wurden dort doppelt so viel gefangen als 1901!) wird der Fang erst im Mai oder Juni, ja bisweilen erst Anfang Juli beendet. [Illustration: Tafel XVIII. Öffnen der Dorsche auf dem Schiff und Versorgen der Lebern in Fässern. [+Wilse+ phot.]] In der Umgebung von Neufundland, wo auch die Franzosen noch alte Fischereirechte besitzen, wird besonders auf der sog. Bank von Neufundland und den französischen Besitzungen bei St. Pierre und Miquelon der Dorsch vom 15. April bis Ende September gefangen. Er ist hier im September am fettesten. Den Fang (mit der ligne à la main, ligne de fonds, senne, faulx) schildert ~Rousset~ (a. a. O.). In Island (Reykiavik, Patrixfjord, Dyrefjord, Faskrudfjord) dauert der Fang in zwei Saisons und an verschiedenen Stellen vom Februar bis August. [Illustration: Fig. 201. Hafen von Mehavn (Finmarken) mit Segel-, Dampf- und Motorbooten. Im Vordergrunde die großen Behälter, in denen die Lebern aufgesammelt werden behufs Bereitung von natürlichem Dorschleberöl. [+Bull+ phot.]] Der frische Fisch heißt +Kabeljau+ (Cod), der frische der kleinen Varietät +Dorsch+, der Schellfisch +Kaddock+, der an Stangengerüsten getrocknete +Stockfisch+, der aufgeschnitten mit Salz bestreute und getrocknete +Klippfisch+, der in Fässern eingesalzene +Laberdan+. Herr ~H. Bull~, Direktor der Fiskeriforsøkstationen i Bergen berichtet mir ferner: «Von anderen Fischen, deren Leber in Norwegen für die Bereitung von Leberölen verwendet werden, muß in erster Linie der Sej, _Gadus virens_, dann die Brosme (_Brosmius brosme_), die Länge (_Molva vulgaris_), der Schellfisch (_Gadus aeglefinus_) und der Eishai (_Laemargus microcephalus_) genannt werden. Der Sej entstammt der Küstenfischerei, gibt ein sehr schönes Dampföl, das aber beim Abkühlen viel Stearin abscheidet; auch das kalt geklärte Öl enthält viel (etwa 15%) feste Fettsäuren und ist dadurch gekennzeichnet; dasselbe wird vielfach mit dem reinen Dorschleberöl vermischt und die Mischung als solches verkauft. Die Brosme sowie die Länge entstammen der Hochseefischerei (an den Abhängen der Hochplateaus im Meere), kommen daher nicht frisch ans Land, und das aus denselben durch Fäulnis bereitete Öl dürfte wohl nur für technische Zwecke verwendet werden. Dasselbe gilt vom Schellfischöl, weil demselben, auch dem Dampföl, ein unangenehmer Geruch anhaftet. Das Eishaileberöl (Dampföl) ist zwar schön, aber, weil vorwiegend eine Wachsart enthaltend, medizinisch nicht verwendbar.» Neuerdings werden auch von deutschen Hochseefischern sowohl in der Nordsee als auch in der Ostsee außer dem Kabeljau auch die Lebern einiger anderer verwandter Fische auf technischen und Medizinaltran verarbeitet, nämlich die des kleineren, gestreckteren +Schellfisches+, _Gadus aeglefinus_ L. (_Morrhua aeglefinus_ und _punctatus_, _Asellus minor_, Egrefin), der im Februar und März zur Laichzeit in großen Scharen an der friesischen Küste erscheint und die des in der Ostsee vorkommenden sog. +gewöhnlichen Dorsches+, einer kleineren Varietät von _Gadus morrhua_, die ~Linné~ als eigene Art, _G. callarias_ L., abtrennte, die aber oben mit zur Art _G. morrhua_ gezogen wurde (nicht ein Jugendzustand, wie man früher annahm). Das D. A. V. läßt auch die Leberöle dieser beiden Fische zu; Ph. austr. VIII auch die anderer _Gadus_arten. Auf der Doggerbank in der Nordsee dauert der Fang vom Dezember bis Mai. Die deutsche Dampftranproduktion erhält aber ihr Rohmaterial besonders durch Schiffe der deutschen Hochseedampferflotte aus den Gegenden Islands. Die medizinisch nicht zu verwendende Handelsmarke +Coast Cod oil+ wird aus den Lebern des Meer- oder Seehecht, Kümmel- oder Hechtdorsch, _Merluccius vulgaris_ (_Gadus merluccius_), des Leng, _Molva vulgaris_ (_Gadus molva_, _Lota molva_, _Asellus longus_), des Sejfisch, Wittling oder Weißling, _Gadus merlangus_ (_Merlangus vulgaris_, Fig. 197), des Köhler, _Gadus virens_ (_Merlangus virens s. carbonarius_, in dorscharmen Jahren auch sonst zur Lebertrangewinnung herangezogen ~H. Meyer~), des Schellfisch (s. oben) und des Eishai oder Haakjerring (_Laemargus_ oder _Seymnus borealis_ und _brevipinna_) dargestellt. Französische Fischer (von Boulogne und Graveline) fangen in der Nordsee besonders den Leng (Elingue). Haifischleberöl wird in Island, Norwegen und Californien gewonnen. Leberöle werden auch noch dargestellt außer von der Brosme, dem Lub oder Torsk (_Brosmius brosme_), der an den Küsten Norwegens, bei den Faröer Inseln und Island häufig ist, von dem Meerengel (_Rhina squatina_, _Squatina vulg._), dem Thunfisch (_Thynnus vulg._), dem Dorn- oder Nadelrochen (_Raja clavata_) und Glattrochen, Tepel, Tegel, Fleten (_Raja batis_). =Lit.= Abbild. u. Beschreibung: ~Brandt-Ratzeburg~, Mediz. Zoologie 1833, t. IX. -- ~Martiny~, Naturgesch. d. f. d. Heilk. wicht. Tiere 1854, t. XI. -- ~Guibourt~, Hist. nat. d. drog. simpl. VII. Aufl. -- ~Brehm~, Tierleben. -- ~Beauregard~, Mat. méd. zoolog. 1901, Fig. 72. =Gewinnung.= Die Gewinnung des Lebertrans erfolgt an der norwegischen Küste, besonders bei den +Lofoten+, einer felsigen Inselgruppe unter 67-69° n. B., in dem Vestfjord zwischen diesem und dem Festlande (vgl. die Karte), wo die ersten Züge der Fische schon Ende Dezember, die Hauptmassen aber erst von Mitte Januar an, besonders aber im Februar-April erscheinen. Meist dringen sie zwischen den Inseln am südwestlichen Ende der Gruppe (Moskenaes und Vaerö, Flakstadö, Röst und Ost- und West-Vaagö) in den Fjord ein und verteilen sich in diesem, in der Tiefrinne (s. d. Karte) nach Norden geführt, an den Laichstellen, «Banken». Dann wird Dorschfang und Trangewinnung auch an anderen Küstenpunkten Norwegens, wie z. B. in Romsdalen, im Throndhjemer Fjord, bei Aalesund und im nördlichen Finmarken betrieben -- Finmarken liefert jetzt viel Öl -- sowie an den Küsten Islands, den Faröer-, Shetland- und Orknay-Inseln. Endlich wird auch bei Neufundland, Neuengland, Neuschottland und in der Nordsee «Tran geschmolzen» (die Geestemünder senden schon 200 Schiffe auf den Fang), weniger in der Ostsee. [Illustration: Fig. 202. Die hauptsächlichsten Dorschfangorte der norwegischen Küste. [Mit Benutzung der Karten von +Peckel Möller+, gez. von +A. Tschirch+.]] [Illustration: Fig. 203. In Finmarken gebräuchlicher Apparat zur Dampftranbereitung. A Konischer Behälter aus Holz, B Deckel, C Dampfrohr, D, E Ablaßhähne. [+Bull+ gez.]] [Illustration: Fig. 204. Auf den Lofoten gebräuchlicher Apparat zur Dampftranbereitung. A Schmelzkessel, B Wasserbad, D, F, G Feuerung. [+Bull+ gez.]] Die Fabrikation erfolgt in den norwegischen Gewässern meist in Fabriken an Land, seit die Segler zum Teil durch Dampfboote ersetzt wurden, also der Fang, der übrigens meist in der Nähe der Küste erfolgt, rasch an Land gebracht werden kann. Das Gewicht einer Leber beträgt im Durchschnitt ½ Pfund. Die größten beobachteten Lebern wogen gegen 11 Pfund. Die Farbe guter Lebern ist sahnenartig, die Konsistenz weich. Magere Lebern sind zäh und rötlich, kranke fleckig und grünlich. Es wechselt dies nach den Jahren («auf 7 fette folgen 7 magere Jahre», sagt der Fischer). In den norwegischen Gewässern wird möglichst bald, nachdem der Dorsch gefangen ist, die große, sehr fettreiche Leber herausgeschnitten, die Gallenblase und event. kranke Teile abgetrennt, die Leber gewaschen und nun entweder zerschnitten und unter gelindem Drucke ausgepreßt (Pharm. helv. IV «das durch gelinden Druck ausfließende Öl») oder in großen Kesseln durch Einleiten von Dampf rasch aufgekocht bzw. durch Heizen der schmalen, hölzernen, doppelwandigen Kessel mit Dampf von außen auf 60-70° (nicht über 80°, Pharm. nederl.) erhitzt oder endlich in einen 200-300 l fassenden Kessel von Weißblech oder verzinntem Eisen gebracht und dieser auf ein direkt oder durch Dampf geheiztes Wasserbad gesetzt. -- Die +Wasserbadmethode+ (Fig. 204), die die älteste und die zeitraubendste ist, aber die höchste Ausbeute und die beste Qualität Öl liefert, wird besonders auf den Lofoten und südlich, die +Dampfmethode+ (Fig. 203) in Finmarken geübt. -- Diese Methoden werden an Land benutzt (1898 gab es 120 Dampfapparate). Zum Gebrauche auf den Schiffen bedient man sich abgestumpft-konischer hölzerner Gefäße, in die man, nachdem die Lebern eingebracht sind, überhitzten Dampf leitet (1898 gab es deren 40). Die deutschen Hochseefischer benutzen zum Ausschmelzen der Lebern in den Dampfkessel der Maschinen der Schiffe eingelassene Gefäße. Hauptsache ist bei allen diesen Methoden, daß die Leber frisch ist und daß die Erhitzung nicht zu hoch ist (nicht über 70°) und nicht zu lange (nicht über ¾ Stunde) dauert. Das bei diesen Methoden austretende Öl wird abgeschöpft, durch Absetzenlassen geklärt und bevor es in die mit Holz umgebenen Weißblechtonnen gefüllt wird, filtriert. Schon hierbei scheidet sich, da ja die Temperatur zu jener Zeit in den Gegenden, wo die Gewinnung erfolgt, niedrig ist, ein Teil der festen Fettbestandteile ab. Um diese Bestandteile noch weiter abzuscheiden und ein auch bei 0° klar bleibendes Öl zu erhalten, wird dann der Lebertran durch Kältemischungen (Eis und Kochsalz) in Kühlkammern auf etwa -5° abgekühlt oder auch nur der Winterkälte ausgesetzt und bei möglichst niedriger Temperatur durch Filterpressen oder Filtersäcke filtriert. Das Abgeschiedene, durch hydraulische Pressen vom Öl befreite geht als «Fischstearin» in die Seifenfabrikation oder als «Fischtalg» in die Gerbereien. Da die Luft bei dieser Fabrikationsweise verändernd auf den Lebertran einwirkt, findet neuerdings da und dort das Ausschmelzen in einer Kohlensäureatmosphäre statt (~Peter Moeller~). ~Heyerdahl~ empfahl in einer Wasserstoffatmosphäre zu arbeiten. Dieser sorgfältig aus frischen Lebern an der norwegischen Küste bereitete Lebertran ist der sog. helle +Medizinaltran+, +Dampflebertran+, norwegischer Medizinal-Dorschtran oder Fabriktran I. Qualität, der von einigen Pharmakopoeen (D. A. V., Ph. austr.) ausdrücklich verlangt wird. Aber auch der durch einfaches Auspressen oder spontanen Austritt (s. unten) gewonnene sog. +natürliche+ Lebertran kann noch in seinen besten Sorten medizinisch benutzt werden. Bei dem in Ostende benutzten Verfahren von ~Henseval~ und ~Huwart~ vermischt man die gut gewaschenen Lebern mit ⅕ Wasser und leitet unter Umrühren soviel Dampf von ¼ Atm. ein, daß die Temperatur nach 40 Minuten 70-75° beträgt. Nach ½ Stunde Ruhe wird das Öl (¼ der Gesamtmenge) abgeschöpft (durch Pressen wird eine Sekundasorte gewonnen). Das abgeschöpfte Öl wird dann, nachdem es zwei- bis dreimal mit Wasser von 50° gewaschen, in hermetisch geschlossenen Behältern im Eiskeller abgekühlt, um das Stearin abzuscheiden. Nach dem ~Wild-Robb~schen Patent wird jetzt guter Lebertran durch Ausschmelzen der Lebern im Vakuum mit Dampfmantel bereitet. Das Öl läuft durch ein Vakuumfilter in einen Tankwagen, wo es auf 4° abgekühlt wird. Das Stearin wird durch dicht nebeneinander gehängte Filtersäcke abgetrennt. Minderwertige, von der medizinischen Verwendung auszuschließende Transorten werden im Verfolg des oben beschriebenen Verfahrens durch stufenweises stärkeres Erhitzen und Auspressen der Lebern gewonnen (Sekundatran für technische Zwecke). In Island ist die Gewinnung des Dampftranes ähnlich wie in Norwegen, doch nur gering, infolge ungenügender Mengen frisch zu beschaffender Lebern. In Nordamerika (Canada, Neufundland), auf den britischen Inseln und der Nordseebank wird sie durch zu hohe Lufttemperatur und daher zu rasche Fäulnis der Lebern behindert. Dagegen hat sich der «~Peter Möller~-Prozeß», wie die Gewinnung des Dampftrans nach ihrem Erfinder genannt wird, auch in den Bezirken von der russisch-norwegischen Grenze bis zum Weißen Meer eingeführt. An der Murmanküste besteht etwa ein Dutzend woers, kleine Dampffactoreien, deren östlichste Korabelnaja ist (~Peckel Möller~). [Illustration: Fig. 205. Verladen des Lebertrans in Bergen. [Klischee von +Scott & Bowne+.]] Minderwertige Sorten sind die sog. +natürlichen+, +naturellen+, früher als +Bauerntrane+ bezeichneten, die in der Weise gewonnen werden, daß man die aus den Fischen herausgelösten Lebern, oft ohne die Gallenblase abzulösen, in Fässern (Barrels, Fig. 201) übereinander schichtet, diese verspundet und deren Inhalt erst nach mehreren Wochen oder gar Monaten, wenn die Fischer heimgekehrt sind, also die Masse schon zum Teil in Fäulnis übergegangen ist, weiter verarbeitet. (Die ersten Lebern kommen im Januar, die letzten im April in die Fässer.) Das aus den Fässern freiwillig ausfließende oder oben abgeschöpfte Öl ist noch relativ hell, gelb bis orange gefärbt (_Ol. jecoris naturale flav._, _citrinum_, helles Rohmedizinalöl, Norw. Raa-Medizinaltran) und gilt in seinen besten Sorten als zur Not noch für medizinische Zwecke brauchbar, obwohl der Trangeschmack sich zuweilen recht unangenehm bemerklich macht (die Pharmakopoeen lassen es +nicht+ zu!). Indessen gibt es vielfach gute Qualitäten, die in bezug auf Geschmack oft einem guten Dampftran vorgezogen werden (~Bull~). Das bei weiterem Faulen bis Juni an die Oberfläche kommende Öl ist der Norw. Blanktran und das bei fortgesetzter Fäulnis erhaltene dunkelbraune Öl der Norw. Braun-Blanktran. Die dann aus den Lebern in Töpfen und Kesseln auf offenem Feuer ausgekochten Trane aber, die abscheulich riechen und noch abscheulicher schmecken, und eine mehr oder weniger braune (_Ol. jecoris fuscum_) oder gar fast schwarze Farbe (_Ol. jec. nigr._, Gerbertran) besitzen, sind nur zu technischen Zwecken verwendbar (Norw. Brauntran). Der beim Auskochen der Lebern zurückbleibende Rückstand heißt graxe. Die Bauerntrane werden durch Abkühlen nicht demargariniert, sind «unracked», enthalten also viel feste Fettsäuren (s. unten). Nach dem Bauerntranverfahren wird noch jetzt, besonders an der Küste von Neufundland, dann auch an der schottischen Küste, in Island und Norwegen viel Lebertran dargestellt (~Weigel~, ~Roussel~), der zudem noch oft mit Robben- und Menhadentran (s. oben) versetzt wird (~Sage~). Besonders scheint die Methode, die 3 : 1 m großen Fässer (cajot) unten mit einem Fichtenbusch als Filter zu versehen und das spontan abfließende Öl am unteren Teile abzuziehen, beliebt zu sein, neben der Methode die Lebern in große Behälter (foissière) zu werfen, die bis 3000 Stück aufnehmen können und in denen, da der Behälter sich nur langsam füllt, die Masse allmählich in faulige Gärung übergeht und einen derartigen Gestank entwickelt, daß es verboten ist, diese Behälter in der Nähe von Straßen zu errichten. In Ostende wurde früher die zerkleinerte Leber in einen Fischmagen gelegt und dieser aufgehängt. Der Tran floß bald spontan aus. Neuerdings sind auch mit Lauge und Kohle entfärbte sowie sonnengebleichte Leberöle im Handel. Der Bauerntran geht nach Bergen. Dort lagert das Öl zunächst, um alles Wasser abzuscheiden. Dann wird es bewertet -- meist auf eine sehr primitive Weise: Eintauchen der Finger und Prüfen durch Mund und Nase. Der bei der Dampftrangewinnung erhaltene Rückstand der extrahierten Lebern (Graxe) wird getrocknet, gemahlen und als Dünger verwendet, oder, trotzdem er c. 6-10 % Öl enthält, fortgeworfen. Auch die abgeschnittenen Köpfe der Fische (Fig. 199) werden auf Dünger verarbeitet (1893: 17,7 Mill. Köpfe in drei Fabriken), die Schwimmblasen bisweilen auf Leim. Der Rogen geht als Köder nach Frankreich. =Lit.= ~Brefeld~, D. Stockfischlebertr. in naturhistor. etc. Hinsicht. Hamm 1835. -- ~Vogl~, Kommentar. -- ~Soubeiran~, Journ. pharm. 1866, 161 u. 324. -- ~R. Howden~ (Gewinn. d. L. auf den Lofoten). Pharm. Journ. 9 (1868), 312 (deutsch: Arch. Pharm. 18 [1868], 235). -- ~Heinrich Meyer~, Medizinal-Dorschlebertran 1884. -- ~König~, Abhandl. der Naturw. Ges. Isis 1895 (Ref. von ~Schelenz~ in Pharm. Zeit. 1899, 381). -- ~F. Peckel Möller~, Codliver oil and chemistry. London 1895. -- ~Roussel~, La morue et l’huile de foie de morue. Thèse Paris 1900. -- ~Henseval~ u. ~Huwart~, Beitr. z. Stud. d. Fischlebertrane. Chem. Rev. d. Fett u. Harzind. 1907, 191. -- ~Nielsen~, Instruct. sur la prep. de l’huile d. foie de morue Bull. d. Pêches marit. 1897. -- ~Rump~ u. ~Lehners~, Schweiz. Wochenschr. 1904, 160. -- ~Koch~ (Produkt. in Neufundl.), ~Mercks~ Rep. 1907, 340. -- ~Stein~ (Island), Österr. Apoth. Zeit. 1906. -- ~Brousfield~ (Lofoten, Liste der Stationen). West. Drugg. 1905, 435. -- ~Thomson~ (Neufundland). Proc. Amer. pharm. Assoc. 1905, 691. -- ~Gehe~, Handelsber. -- Die Seefischerei Norwegens 1901. -- Sea fisheries of the united kingdom 1902. -- Die Geestemünder Hochseefischerei 1902, herausgeb. z. Intern. Fischerei-Ausst. in Wien. -- Mitteil. d. deutschen Seefischereivereins. =Handel.= Der Großhandel unterscheidet meist: I. Dampftran (weiß, hellblond, gelb, album); II. Natürlicher Tran. 1. Medizinaltran (hellblank, blond, citrinum); 2. blanker T. (hellbraunblank, flavum); 3. braunblanker T. (fuscum); 4. brauner T. (braunschwarzer, nigrum, Gerbertr.), und nach der Herkunft besonders: Norwegischer-Neufundland-Labrador-Tran. Der Handel unterscheidet auch «ungeklärte» und «bei 0° nicht dick werdende» Trane, oder auch sommerfiltrierte und winterfiltrierte (bei Japantran). Die frühere Bezeichnung Fabriktran und Bauerntran ist nicht mehr üblich. Der norwegische Medizinal-Dorschtran ist sowohl als Dampftran (in Blechtonnen à 100 kg) -- die bei weitem teuerste Sorte -- wie als natürlicher Dorschtran (in Holztonnen à 100 kg) im Handel. Letzterer in den Sorten «hellgelb, kältebeständig D. A. V.», -- nur ⅔ des Preises vom Dampftran -- gelb, madeirafarbig, rotbraun -- letztere nur zu technischen Zwecken benutzbar. Der Dampftran verdrängt jetzt allmählich die sog. natürlichen Trane. Von +technischen+ Tranen führt ~Grossmann~ 1911 an: Dreikronen, Grönländer, Robben, Japan, Leber (brauner), Gerber Ia, Neufundland. Schon 1893 waren c. 40000 Menschen, darunter 26683 Fischer auf c. 6000 Schiffen allein in Norwegen mit Kabeljaufang beschäftigt, der Ertrag betrug c. 27 Mill. Fische, die 17,7 Mill. Köpfe für Dünger, 31100 hl Rogen und 31500 hl Leber ergaben. 60 Fabriken erzeugten 18600 hl Medizinaltran. Dampftran wird erzeugt auf den Lofoten-Ydersiden, in Finmarken, Tromsoe, Nordmöre, Romsdalen und Söndmöre. Hauptstapelplatz für +norwegischen+ Lebertran ist Bergen. Dann exportiert auch Aalesund, viel weniger Christiania und Tromsö. Die norwegische Dorschfischerei beschäftigt jetzt über 6000 Fahrzeuge und erzeugt in guten Jahren bis 80000 t Leberöle im Jahr. 1902 richteten Seehunde große Verwüstungen unter den Dorschen an, auch gingen die Dorsche weiter südlich, besonders 1903 war aber ein Fehljahr, da die Lebern sehr ölarm waren (s. unten). Der Preis pro hl stieg daher von 70-75 M auf 485 bis 525 M. 1902 kam aus dem gesamten norwegischen Fischereigebiete: 19878 hl Dampftran und 14054 hl gewöhnlicher T. In den Jahren 1903 und 1904 aber infolge geringen Fanges und Fettarmut der Lebern kaum der vierte Teil. Die Zahl der in Norwegen gefangenen Dorsche betrug 1905: 44,5, 1906: 46,5, 1907: 47,6, 1908: 48,2, 1909: 56,5, 1910: 55,7, 1911: 64,4 Millionen. (Zu anderen Transorten abgesetzte Lebern 1903: 7012, 1904: 7810, 1906: 18097, 1907: 21384, 1908: 25584 hl.) Der Export betrug 1909: Dampftran 40240, Medizinaltran 9900, blanker T. 4296, braunblanker 8263, brauner 17915. Norwegen erzeugte +Dampftran+ 1905: 41807, 1906: 42908, 1907: 46889, 1908: 59104, 1909: 50460, 1910: 41024, 1911: 43318 hl. Das Verhältnis der Lofotenproduktion zu der ganz Norwegens ergibt sich aus folgenden Zahlen: Die +Lofoten+ allein erzeugten 1901: 15889, 1902: 9628, 1903: 614, 1904: 3293, 1905: 31187, 1906: 33177, 1907: 36387 hl. Alle Fischereien Norwegens 1901: 29500, 1902: 22200, 1903: 2952, 1904: 18500, 1905: c. 42000 hl. Über sog. Medizinaltran fehlen genaue Zahlen. Die Menge der zur Bereitung anderer Sorten Tran, die nicht Dampftran sind, übrig bleibenden Mengen Dorschleber betrugen 1909: 27663, 1911: 12729 hl. Dazu kommen noch nicht unbeträchtliche Mengen (c. 1-2000 t) außer Kontrolle gewonnener Tran. Der +Neufundländer Tran+ der canadischen Fischer sowie der Labradortran kommen meist über London, der der französischen Fischer geht nach Frankreich. Die besten Sorten sind dem norwegischen gleichwertig. Sie werden in Nordamerika bevorzugt. Die Vereinigten Staaten importierten 1908: 246680, 1909: 209155 galls. codliveroil und exportierten 1908: 306439, 1909: 327115 galls. fishoil. Neufundland exportiert etwa 50-70000 t Tran. In Bergen besteht eine Fiskeriforsøkstationen, die alle Produkte des Meeres auf ihre Verwertung hin studiert (Direktor: ~H. Bull~). =Lit.= Handel: Chem. Drugg. London 1907, 206 und 448. -- ~Gehe & Co.~, Handelsber. -- ~Grossmann~, Liste. -- Handelsber. in Schweiz. Wochenschr. =Bildung des Öls in der Leber.= ~Roussel~ hat die Bildung des Öls in der Dorschleber in Frankreich studiert (a. a. O. mit Abbild.). Vom Dezember bis Februar sind nur wenige Öltröpfchen in den Leberzellen zu finden, während des März und April steigt deren Menge und sie erreicht ihr Maximum vom August bis November. Die Anhäufung des Öls ist kein pathologischer Prozeß, sondern eine Folge von Überernährung. =Chemie.= Der Fettgehalt der Dorschleber schwankt von 10-60% (~Benedikt-Ulzer~). Er betrug 1899: 56, 1900: 54, 1901: 51, 1902 aber nur 42%, 1906 wieder 52%. In normalen Jahren liefern 250-400 (im Mittel 320) Lebern 1 hl Tran, in schlechten (1903) sind 2000-4000 dazu nötig. Auf Jahre, in denen die Leber einen abnorm hohen Fettgehalt zeigt (1908), folgen meist solche mit geringerem Gehalt (1909 u. 1910). Fettarme Lebern geben beim «Schmelzen» kein Öl. (~Kükenthahl~ bemerkt, daß die Riesenleber des Eishai (s. oben S. 647) so tranreich ist, daß sie 2-3 norwegische Tonnen Tran liefere?). Die Zusammensetzung des Lebertrans ist natürlich verschieden, je nachdem ein natürlicher, kalt ausgetretener, ein heiß ausgeschmolzener, ein abgekühlter, demarginierter (solchen verlangt z. B. D. A. V.) oder ein nicht abgekühlter Lebertran vorliegt. «Stearinfreie» Öle heißen im Handel Racked oils. Im Durchschnitt wird angegeben: Flüssige Säuren 87-92,7, feste 6,7-12,7, Glycerin 10-11% (die älteren Angaben: Oleïn 98,87, Margarin 0,81 sind nicht richtig). Die elementare Zusammensetzung entspricht etwa C = 78,1, H = 11,61, O = 10,28. In den festen Anteilen, dem Transtearin, finden sich vorwiegend die Glyceride der +Stearin-+ und +Palmitinsäure+, etwas +Myristinsäure+ (~Benedikt-Ulzer~) und eine oder mehrere +ungesättigte Fettsäuren+ neben anderen noch unbekannten Bestandteilen. Glyceride der Essigsäure, Buttersäure (die Buttersäure sollte als Propyläther vorhanden sein? ~Winkler~), Valeriansäure und Caprinsäure finden sich nicht im Dampfmedizinaltran; die ~Reichert-Meissl~-Zahl ist immer sehr niedrig. Die freien Säuren treten jedoch als sekundäre Produkte in Tranen aus faulenden Lebern auf (~Salkowsky~ und ~Steenbach~). Über die +flüssigen Fettsäuren+ ist wenig Sicheres bekannt. ~Heyerdahl~ nahm im stearinfreien Öl 4% Palmitinsäure, 20% Jecoleïnsäure und 20% Therapinsäure an. (Er nimmt in der außerordentlich oxydablen Therapinsäure vier doppelte Bindungen an. Die Jecoleïnsäure faßt er als Isomeres der Döglingsäure auf.) Die Existenz der Jecorinsäure (C₁₈H₃₀O₂) und der Asellinsäure (C₁₇H₃₂O₂, ~Fahrion~) sowie der Jecoleïnsäure und Therapinsäure (~Heyerdahl~), sowie der ~Bull~schen Säure, C₂₃H₃₆O₂, betrachtet ~Lewkowitsch~ aber als unbewiesen. ~Heiduschka~ und ~Rheinberger~ betrachten das beim Stehen von in Chloroform gelösten Lebertranfettsäuren mit ~Hübl~scher Jodlösung sich abscheidende kristallinische Produkt als Tetrachlortetrajodtherapinsäure C₁₇H₂₆O₂(ClJ)₄. ~Fahrion~ erhielt die von einigen als Hauptbestandteil angegebene Physetölsäure nicht. ~Lucks~ Gadinsäure ist zu streichen. Die Döglingsäure, die ~Scharling~ an Dodekatylalkohol gebunden im Döglingtran angibt, ist wahrscheinlich Ölsäure (~Lewkowitsch~). ~Bull~, dem wir die besten Untersuchungen über die Fettsäuren des Trans verdanken, trennte die flüssigen Fettsäuren durch die Löslichkeit ihrer Kali- bzw. Natronsalze in vier Anteile, die sich durch ihre Jodzahl unterscheiden. Sie beträgt bei A: 67,5, bei B: 135,6, bei C: 322,4, bei D: 347. Es sind also zum Teil ungesättigte Säuren. ~Bull~ erhielt ferner (durch Fraktionierung der Methyläther der Säuren) +Myristinsäure+, +Palmitinsäure+, +Fettsäure+: C₁₆H₃₀O₂ (6%), +Stearinsäure+, +Ölsäure+ (aber nicht 99% ~Delattre~ oder 70% ~Schaper~), +Gadoleïnsäure+ C₂₀H₃₈O₂, und +Erucasäure+. ~Lewkowitsch~ betrachtet es als durch die Bromierungsversuche (~Hehner~ u. ~Mitchell~, ~Walker~ und ~Warburton~, ~Lewkowitsch~) bewiesen, daß Säuren der Reihe CₙH₂ₙ₋₆O₂ (vgl. S. 546) im Dorschleberöl vorkommen, die aber nicht Linolensäure sein können. ~Benedikt~ und ~Ulzer~, die dies bestreiten, betrachten als mit Bestimmtheit nachgewiesen folgende ungesättigte Säuren der Ölsäurereihe: die +Palmitoölsäure+ (~Bull~, C₁₆H₃₀O₂), +Ölsäure+, +Gadoleïnsäure+ (~Bull~ C₂₀H₃₈O₂ F. = 24°) und +Erucasäure+ (~Bull~) und nehmen als bewiesen (?) an, daß auch Säuren der Reihe CₙH₂ₙ₋₁₀O₂ darin vorkommen [C₂₀H₃₀O₂ (?) C₂₃H₃₆O₂ (?)], die sich durch sehr große Oxydierbarkeit auszeichnen. Die aus Japantran und anderen Tranen isolierte Clupanodonsäure gehört zur Reihe CₙH₂ₙ₋₈O₂ (~Mitsumaru Tsujimoto~). Jedenfalls besteht das Gemisch der flüssigen Fettsäuren vorwiegend aus ungesättigten Säuren. Der Gehalt an +freien Säuren+ ist beim Dampftran sehr gering (0,34-0,6% ~Parry~ und ~Sage~, 0,24-0,69% ~Salkowsky~ -- Säurezahl: 0,72-1,45 bzw. 1,68 ~Dieterich~). Doch reagieren alle Trane sauer (~Garcano~). Der Säuregehalt ist um so größer, je dunkler das Öl gefärbt ist. So beträgt die Säurezahl bei hellem naturale: 8,2-12,6, bei blankem: 11,9-15,9, bei braunblankem naturale: 19,2-36,8 (~Benedikt-Ulzer~). Besonders viel enthalten die Leberöle, die aus zerfallenen, gefaulten Lebern dargestellt wurden, da bei diesen die Glycerinester durch die Lipasen verseift wurden. Bei ihnen steigt die Säurezahl bisweilen bis auf 54,4 (~Heyerdahl~). An Luft und Licht entstehen im Tran aus den ungesättigten Säuren Oxyfettsäuren. Die Farbe des Lebertrans rührt von einem im Lichte ausbleichenden +Lipochrom+ her (~P. Möller~, von ~de Jongh~ als +Gaduin+ bezeichnet). Auf diesem beruht auch die Blaufärbung durch Schwefelsäure (s. unten S. 657). Das Unverseifbare besteht aus +Cholesterin+ und beträgt bei Medizinaldampftran 0,3-1,64% (0,46-1,32 ~Allen~ und ~Thomson~, im Durchschnitt 0,3 ~Salkowsky~), bei den technischen Ölen oft viel mehr (bis 7,89 durch alkohol. Natron Unverseifbares). Ferner sind 0,035-0,05% +organische Basen+ (Ptomaine?) in dunklen Dorschleberölen nachgewiesen (~Gautier~ und ~Mourgues~), und zwar +Butylamin+, +Isoamylamin+, +Hexylamin+, +Dihydrolutidin+ und +Trimethylamin+ (sämtlich Zersetzungsprodukte des Lebereiweißes). Ferner die nicht flüchtigen Basen +Morrhuin+ (C₁₉H₂₇N₃) und +Asellin+ (C₂₅H₃₂N₄), sowie ein lecithinartiger Körper (~Gautier~ und ~Mourgues~), der vielleicht zu den Phosphatiden gehört und mit dem Jecorin identisch ist. ~Gautier~ und ~Mourgues~ nennen noch die Basen +Merlusin+ (C₈H₁₂N₂), +Homomorrhuin+(C₂₀H₂₉N₃), +Nicomorrhuin+ (C₂₀H₂₈N₄), +Tyrosamin+ und +Morrhuamin+. Die meisten dieser, nähere Untersuchung verlangenden, Basen bilden Öle, +finden sich übrigens nur in den gefärbten sog. natürlichen Ölen+ (s. oben), +nicht im Dampftran+, der stets stickstofffrei befunden wurde (~Eberle~). Sodann nennen die genannten Autoren noch die +Morrhuinsäure+, die sie als ein Pyridinderivat der Formel: H C / \\ HC C(OH) || | HC C(C₃H₆)COOH \ // N H₂ betrachten (~Lewkowitsch~ bezweifelt ihre Existenz). Das Morrhuol (Gaduol) ist ein mit 90% Alkohol bereiteter eingedampfter Auszug des Lebertran, der die «wirksamen Bestandteile» (?) enthalten soll (~Chapeauteaut~), aber wohl vorwiegend nur die Phosphatide und Basen, sowie etwas der Fettsäuren enthält. Es ist eine bitterschmeckende, unangenehm riechende Masse. Brauner Tran liefert 4,5-6%, heller 2,5-3%. Die +Asche+ beträgt bei hellem Öl 0,1515% (bei braunblankem 0,0678, bei braunem 0,0817% ~de Jongh~), im Lofotentran 0,009 (~van der Burg~). Nachgewiesen ist außer Ca, Mg, Na, Fe, Mn, Chlor (0,102%), Phosphor (0,018%), Schwefel (0,041%) und Brom (0,004%), besonders +Jod+. Letzteres wohl in organischer Bindung (~Personne~ 1849). Der Phosphor steckt wohl im Lecithin. Frische Dorschleber enthält mehr wie zweimal so viel +Jod+ als der Tran. Der Jodgehalt des Trans wird sehr verschieden angegeben. Für blonde Trane 0,02, gelbe 0,031% Jod (~Andres~), hellblanker 0,0377, braunblanker 0,0405, brauner 0,035 (~Riegel~); Labradortran: 0,015% (~Schaper~). ~Bird~ erhielt dagegen nur 0,0012 bis 0,0021%; ~Stanford~ gar nur im Durchschnitt 0,000322%, ~Girardin~ und ~Preisser~: 0,0007-0,0008. ~Flückiger~ gibt 0,0004% an. Die niedrigsten Werte finden sich bei ~von Santen~: 0,00022 (weißer) - 0,00065 (braunblanker). Die Angabe von ~Garrod~ (Mat. med.): 0,06% ist jedenfalls zu hoch. ~Carles~ fand (1882) in farblosem, gereinigtem Tran nur außerordentlich geringe Spuren von +Phosphatiden+ und +Jod+. Doch hält ~Bird~ (im Gegensatz zu ~Bentley~ und ~Redwood~, ~Chevalier~ und ~Goblet~, sowie ~Herberger~) +Jod für einen konstanten Bestandteil des Trans+. Brom enthält der Tran nur ⅒ von dem Gehalte an Jod. Den Bromgehalt gibt ~Riegel~ auf 0,0037-0,0048% an. Der Rochenlebertran enthält etwa ebenso viel Jod und Brom wie der Dorschlebertran (~Riegel~). Die Bestimmung des Jods kann, wie ~Wackenroder~ angibt, am besten (?) in der verkohlten Transeife erfolgen, muß aber mit allen Kautelen vorgenommen werden (Salpeterschmelze), da sonst, wie die Untersuchung des Jodothyrins zeigt, Spuren von Jod leicht übersehen werden. Gallenfarbstoffe und Gallensäuren fehlen. Ein +Phosphatid+ fand bereits ~de Jongh~ und ~Gobley~ (1844). Die Substanzen, welche dem Lebertran (und and. Fischölen) den +Geruch+ geben, sind angeblich hauptsächlich aldehydischer Natur. Sie sollen aus den ungesättigten Fettsäuren durch den Luftsauerstoff entstehen (~Servais~), doch zeigt auch z. B. die ungesättigte Clupanodonsäure des Japantrans selbst schon deutlichen Fischgeruch (~Mitsumaru Tsujimoto~), wie das Glycerid der Isansäure aus Isanöl (~Hébert~. Ob diese aber ganz rein waren?). Vielleicht sind auch die Basen (s. oben) an dem Geruche beteiligt, denn besonders die dunklen Öle riechen stark. Die sich aus Tranen bei längerem Stehen bisweilen abscheidende harzartige Masse scheint ein Umwandlungsprodukt der ungesättigten Fettsäuren zu sein (~Mitsumaru~). Lebertran löst sich in Äther, Chloroform und Schwefelkohlenstoff und bei 80° zu 6% in absol. Alkohol, siedender Alkohol löst 7% (~Schädler~). Bei der Elaidinprobe erstarrt Lebertran nicht, sondern bildet eine dicke rote Masse. Bei der Behandlung des Lebertrans mit Salpetersäure entsteht neben Sebacinsäure, Brassylsäure und Korksäure nur wenig Azelainsäure (~Eberle~). Das +spez. Gew.+ von Dampfdorschlebertran beträgt bei 15° 0,920-0,927 (~Garcano~, ~Kremel~) bis 0,929 (~Wijs~) bzw. 0,931 (~Parry~, ~Sage~) -- ~Bull~ beobachtete meist c. 0,926 (Pharm. helv.: 0,925-0,930 bei 15°, 0,873-0,874 bei 98°; D. A. V.: 0,924-0,932) -- bei gelbem Medizinaltran: 0,922-0,929, bei hellem naturale I: 0,9262-0,9275 (~Weigel~), bei naturale II: 0,9245-0,9293 (~Benedikt-Ulzer~), bei Neufundländer: 0,925 (~Mann~), bei isländ.: 0,923 (~Bryde~), bei techn. hell: 0,9232 bis 0,9252, bei hellbraun: 0,9217-0,9256, bei braun: 0,9310-0,9410. Die Trane von höherem spez. Gew. geben auch eine höhere Jodzahl (~Wijs~). Die +Verseifungszahl+ bei Dampftran: 186,3 (~Bull~) bis 189 (~Kremel~) resp. 199 (~Parry~), 184-195 (Ph. austr. VIII), Verseifungszahl heiß: 185,4-192,5 (~Dieterich~). Die +Jodzahl+: 148 (~Bull~) bis 181 (~Wijs~), bei selbst ausgeschmolzenem: 160,7 bis 203, bei gutem Dampftran c. 160-170 (159-168,5 ~Parry~, nach Pharm. helv. IV: 150-170, D. A. V.: 155-175), bei naturale: 156-159, bei gelbem: 129-150, bei Neufundländer: 139,2, bei isländ.: 137,5. (Pharm. austr. VIII hat 120-145. Auch ~Weigel~ gibt niedrigere Zahlen für Dampftran: 141,11, ~Dieterich~: 122,2 bis 135,9, ~Garcano~: 126,8). Bei längerer Aufbewahrung fällt die Jodzahl und das Refraktionsvermögen nimmt zu (~Thomson~ u. ~Dunlop~). +Bromzahl+ bei bernsteingelbem: 83,44, bei braunem: 83,10 (~Telle~). Die ~Reichert-Meissl~-Zahl: 0,1-0,7 (0,85 ~Parry~), bei selbst ausgeschmolzenem 0,48-0,86; das +Unverseifbare+ im Dampftran meist 0,60-0,87%, bis 1,64 (~Benedikt-Ulzer~), 1,6 (~Parry~); durch alkohol. Natron unverseifbar bei Dampftran: 1,3 bis 2,6, bei naturale: 1,85-2,65, bei braunblank: 3,45-7,83, bei braun: 7,46 bis 7,89 (~Bull~ und ~Lillejord~). +Hehner+-Zahl: 95,3-96,5 (~Lewkowitsch~, ~Fahrion~). Ätherunlösliches Bromid: 32,64 (~Bull~) bis 45% (~Ulzer~), bei naturale hell 47,1. Maumenéprobe: 113-116° (~Baynes~, ~Allen~); Brechungsexponent bei 15°: 1,4800-1,4852 (~Strohmer~), 1,4792-1,4811 (~Parry~), bei 40°: 1,4700-1,4736 (Pharm. helv. IV); Oleorefraktometer bei 22°: +40 - +46 (~Pearmain~, ~Dowzard~); Butterrefraktometer bei 20°: 77,5-83,2 (~Utz~). Die +Thermo+zahl (bestimmt im Thermoleometer ~Tortelli~) beträgt 107 (bei Robbentran 72,1, bei Walfischtran 75,6, bei Sardinenöl 112,5). Die Lebertrane sind vorwiegend linksdrehend (~Rakusin~); Dorschtran meist inaktiv (~Liverseege~). Die +Verbrennungswärme+ beträgt bei frischem Dorschleberöl 9452 g-Kal. bei konstantem Druck und 9437 g-Kal. bei konstantem Volumen (~Shermann~ u. ~Snell~). Gesamtfettsäuren: 95,72%. Die Menge der ungesättigten Fettsäuren betrug bei 13 Proben 12,1-13,5, bei 3 Proben 14,7-15,5, bei 2 Proben 11,5-11,9%. Schmelzpunkt der Fettsäuren: 21-25 (~Parry~) bis 26,5 (~Bull~); mittleres Molekulargewicht: 287,6-292,5 (~Parry~) und Jodzahl 130,5 (~Thörner~), 164-171 (~Parry~). Der Erstarrungspunkt (meist 0-3,5° ~Barthe~) wechselt natürlich, je nachdem der Tran der Kälte kürzere oder längere Zeit oder gar nicht ausgesetzt war. Durch das Abscheiden des Stearins durch Abkühlen gehen dem Tran übrigens keine wertvollen Bestandteile verloren, auch die Konstanten ändern sich kaum (~Moreau~). =Reaktionen=: 1 gtt. Ol. jec. in 20 gtts. Chloroform (~Vogt~ oder 1 ccm in 3-4 ccm ~Salkowski~) gelöst soll auf Zusatz von einem Tropfen Schwefelsäure bei lebhaftem Umrühren mit dem Glasstab zuerst blau, dann blauviolett, rotviolett und schließlich verblassend amethystfarbig werden -- ~Salkowskis~ sog. Gaduinreaktion -- (Unterschied von anderen Leberölen, von Fischölen, wie Haifisch- und Robbentran) -- Schellfisch-, Sejfisch-, Brosmentran werden grünblau-violett-rot. Bei älteren Ol. jec. soll die Gaduinreaktion undeutlich sein (~Bedall~, ~Wiebetitz~, ~Weigel~). 3 gtt. Salpetersäure von spez. Gew. 1,4 färbt 15 gtts. Lebertran feurig rosenrot (Unterschied von Robbenspecktranen, Sej-, Hai- und Lengfischtran; ähnlich verhalten sich Brosmen- und Schellfischtran) -- ~Kremels~ Reaktion -- Bei Salpetersäure, spez. Gew. 1,5, treten bei Dorschtran vorübergehend blaue Streifen auf (~Vogt~). Der Vorschlag ~Vrevens~, den Lebertran in Äther zu lösen, mit starkem Alkohol zu fällen und die überstehende Flüssigkeit in einer flachen Schale mit rauchender Salpetersäure zu versetzen -- es tritt vorübergehende Himmelblaufärbung ein -- ist überflüssig und gefährlich (Explosionsgefahr!). Werden zu einer gekühlten Mischung von 20 gtts. Chloroform, 40 gtts. Essigsäureanhydrid und 3 gtts. H₂SO₄, 3 gtts. Lebertran zugesetzt und umgeschüttelt, so tritt vorübergehend intensiv-blaue Färbung ein, die bald in Olivgrün übergeht -- ~Liebermanns~ Cholestolreaktion -- (Unterschied von Schellfisch-, Sejfisch- und Lengfischtran und von Specktranen -- Brosmentran wird auch blau). Die +Bellierreaktion+ (salpetrigsäurefreie Salpetersäure, spez. Gew. 1,4, und Resorcinlösung) gibt bei Dorsch-, Schellfisch- und Brosmentran Orangerotfärbung, Lengfisch-, Sejfisch- und Haifischtran werden tieffuchsinrot, Robbentran himbeerrot (~Kreis~). Mit Königswasser geschüttelt gibt Dorschtran ein grünlich-dunkelgelbes Liniment. Robbentran wird schwachgelb (~Rössler~). 1 gtt. eines Gemisches von 2 Teilen Salpetersäure und 1 Teil Schwefelsäure färbt 15 gtts. Dorschtran lachsrot. Andere Trane und Fischöle werden grünlichbraun, orangerot oder braun (~Mann~). Isländische Trane verhalten sich wie norwegische (~Stein~), die amerikanischen zeigen Abweichungen (~Tolmann~, ~Kebler~). =Lit.= ~Peckel Möller~, Codliveroil 1895 (dort eine chem. Bibliographie). -- Ältere Lit. siehe unter Geschichte und bei ~Guibourt~. -- ~Wurzer~, Hufel. Journ. 1822, 31 (erste chem. Unters.). -- ~Spaarmann~, Geig. Mag. 1828, 302. -- ~Wackenroder~, Arch. Pharm. 24 (1841). -- ~Stein~, Journ. pr. 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Vegetabilische Öle (Sesam, Lein, Rapa, Cotton usw., nach ~Bishop~ auch Arachis). 6. +Mineralöle+ (~Pöhl~, bis 30% ~Baumann~). Die Konstanten der Tieröle sind in der folgenden Tabelle zusammengestellt. -----------+-------------+---------------+-------------+ +Leberöle+ | Spez. Gew. |Verseifungszahl| Jodzahl | des | | | | ===========+=============+===============+=============+ Brosmen |0,9222-0,9264| 180-185,05 | 150,5-162,4 | | | (187,8) | | Sej |0,925-0,9309 | 177-189(193) | 162,2-177,9 | | | | (123-137) | Eishai |0,9105-0,9186| 146,1-164,7 | 111,9-116,6 | | | |(125,8-131,4)| Japan. Hai |0,9156-0,9158| 148,5-163,5 | 128,3-136,5 | Schellfisch|0,9298-0,934 | 186,3-193 | 154,2-179 | | | | (187,7) | Leng |0,9200-0,9270| 181,6-188 | 130,9-133 | Glattrochen| 0,9307 | 185,4 | 157,3 | Thunfisch | -- | -- | 155,9 | Meerengel | 0,9307 | 185,4 | 157,3 | Seehecht | 0,9270 | -- | -- | -----------+-------------+---------------+-------------+ +Fischöle+ | | | | von | | | | Menhaden |0,927-0,933 | 188,7-193,0 | 139,2-178,8 | Sardinen |0,9279-0,9338| 190,6-196,16 | 156,2-193,2 | | | | | Jap. | | | | Fischöl |0,916-0,9338 | 189,8-193,7 | 100-171,3 | Lachs | 0,9258 | 182,8 | 161,42 | Sprotte | 0,9274 | 194,5 | 122,5-142 | -----------+-------------+---------------+-------------+ +Trane+ | | | | von | | | | Robbe | 0,924-0,927 | 178-196,2 | 127-159,4 | | | | | Walfisch |0,917-0,9307 | 182,1-224,4 | 110,1-146,55| Delphin | 0,9266 | | | Körper | -- | 197,3-203,4 | 99,5-126,9 | Kinnbacken | -- | 290 | 32,8 | Dugong |0,919-0,9203 | 197,5-202 | 66,6-69 | -----------+--------------+------------+----------+------------ +Leberöle+ |Unverseifbares|Reichertzahl|Refraktion| Hehnerzahl des | % | | (25°) | ===========+==============+============+==========+============ Brosmen | 0,67-1,02 | 0,32-1,9 | 67,5 | -- | (4,92) | | | Sej | 0,70-6,52 | 0,38-0,7 | 72,2 | -- | | | | Eishai | 10,2-15,06 | 0,8 | 64,9 | 86,9 | (20,8-21,8) | | | Japan. Hai | 14,4-21,5 | -- | -- | -- Schellfisch| 0,57-2,42 | 0,35-1,1 | 72,2 | 93,3 | | | | Leng | 2,23-6,44 | 0,7 | 64,2 | -- Glattrochen| -- | 0,97 | -- | -- Thunfisch | 1-1,08 | -- | -- | 95,79 Meerengel | 0,97 | -- | -- | 94,7 Seehecht | -- | -- | -- | -- -----------+--------------+------------+----------+------------ +Fischöle+ | | | | von | | | | Menhaden | 0,61-1,60 | 1,2 | 80,7 | -- Sardinen | 0,48-1,01 | -- | 50-53 | 94,5-97,08 | | | (45°) | Jap. | | | | Fischöl | 0,52-0,86 | -- | -- | 95,52-97,04 Lachs | -- | 0,55 | -- | 95,02 Sprotte | 1,36 | 1,4 | -- | 95,1 -----------+--------------+------------+----------+------------ +Trane+ | | | | von | | | | Robbe | 0,38-0,79 | 0,07-0,22 | 72,7 | 92,8-95,96 | (1,05) | | | Walfisch | -- | 0,7-2,04 | 65 | 93,5-95,18 Delphin | | | | Körper | -- | 5,6 | -- | 93,07 Kinnbacken | -- | 65,92 | -- | 66,28 Dugong | -- | 2,5 | 66,3 | -- ~Kebler~ vertritt die Ansicht, daß der amerikanische Lebertran dem norwegischen gleichwertig sei. ~Gane~ fand bei +Neufundlandtran+ spez. Gew. 0,9275, freie Säuren 1,15%, Schmelzp. der Fettsäuren 24°, «Verseifungsäquivalent» 292, Jodzahl 164. ~Roussel~ fand bei +französischen Neufundlandtran+ (von St. Pierre und Isle aux chiens) spez. Gew. 0,9233-0,9272, freie Säure 1,0-2,6%, Verseifungszahl 109-114, Jodzahl 148,38-160,68. ~Gane~ fand bei +Coast oil+ (s. oben S. 648) spez. Gew. 0,925-0,9265, freie Fettsäuren 2,06-3,94%, Schmelzp. der Fettsäuren 24-28°, Verseifungsäquivalent 284-301, Jodzahl 150-160. ~Wingård~ fand rationell bereiteten +Robbentran+ (von _Phoca_arten) nur wenig von Dorschlebertran abweichend. Er enthält mehr ungesättigte Fettsäuren. Über die Zusammensetzung der Leberöle der +Adlerroche+ (_Myliobatus Aquila_) und von _Centrina Salviani_ vgl. ~Huwart~ (Chem. Rev. d. Fett- u. Harzind. 1908, 200), über +Walfischtran+ ~Heidenreich~ und ~Wagle~, Tidsschr. for kemi 1911, Nr. 12, über +Robben-+ und +Haifischtran+ ~Titarowski~ und ~Chesnokow~ (ebenda 1910, 263), über den Tran von _Lampris Luna_ ~Eberle~ (Diss. Bern 1893). Über zahlreiche andere Trane ~Henseval~ und ~Huwart~ (ebenda 1907, 191), über japan. Sardinenöle ~Trujimoto~ (Journ. Coll. Eng. Tokio 1906); über Japantran ~Okada~ (Chem. Zeit. 1907, 1135); über Delphintran ~Hart~ (Chem. Zeit. 1908, Nr. 69). Verfälschungen mit anderen Leberölen, Tranen und Fischölen sind namentlich in Jahren, wo der Lebertran teuer war (1902 und 1903) in größtem Umfange beobachtet worden. Sogar durch Digestion mit geräucherten Fischen «parfümierte» billige Pflanzenöle gingen einmal als Lebertran. 1907 waren farblose Lebertranemulsionen im Handel, die nur aus Robbentran bereitet waren. In gebleichten Tranen wurde Blei gefunden. Unter dem Namen Fucol wurde (1904) ein +Surrogat+ in den Handel gebracht, das durch Digerieren vegetabilischer Öle (Sesamöl) mit Seealgen (bes. geröst. _Fucus vesiculos._) bereitet wurde. Ebenso findet sich ein Öl im Handel, das durch Vermischen von reinem Leberöl mit «jodiertem Sesamöl» (Jodipin) hergestellt wurde (gibt weniger Bromid!). =Lit.= ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. -- ~Weigel~ (Verf. mit Japantr.), Pharm. Centralh. 1904, 553. -- ~Wiebelitz~, Pharm. Zeit. 1904, 513. -- ~Baumann~, Apoth. Zeit. 1898, 869. -- ~Kremel~, Pharm. Post. 1884, 31. -- ~Pöhl~ (Mineralöl), Pharm. Post. 1888, 37. -- ~Gane~, Cod liver oil and its adulterations. Proc. Am. pharm. ass. 1903, ~Mercks~ Rep. 1903, Am. Drugg. 1904. -- ~Bishop~, Chem. Zeit. 1889, Rep. 306. -- ~Liverseege~ (andere Trane), Analyst 1904, 210. Pharm. Journ. 1904, 656. -- ~Töllner~ (Fucol), Pharm. Zeit. 1904, 69. -- Zeitschr. Angew. Chem. 1904, 397. -- ~Wingård~, Svensk. farm. tidsschr. 1911, No. 10 (Apoth. Zeit. 1911, 533). -- ~Schamelhout~ (Kremels Reaktion), Proc. Am. pharm. ass. 1905, 694. -- ~Tolman~, Journ. am. chem. soc. 1906, 388. -- ~Caspari~, Proc. Miss. pharm. ass. 1906, 104. -- ~Helfenberger~, Annalen 1906. -- ~Halphen~, Bull. Soc. chim. France 1907, 280. -- ~Procter~ and ~Bennet~, Exam. of marine oils, Pharm. Journ. 77 (1906) 453. -- ~Evans Sons Lescher~ and ~Webb~, Analyt. Not. 1906 u. 1907. -- ~Baird~, Proc. Mass. pharm. ass. 1907, 40. -- ~Kebler~, Am. journ. pharm. 1905, 491. -- ~Thomson~ and ~Dunlop~, Journ. soc. chem. ind. 1905, 741. Der vorstehende Artikel wurde von Herrn Direktor ~Bull~ in Bergen durchgesehen. =Prüfung.= «Für die Bewertung von Medizinalöl liefern neben der Geruch- und Geschmackprobe -- guter Tran muß milde schmecken, darf nur wenig im Schlunde kratzen und nicht bitter sein -- die Säurezahl, Jodzahl und ~Reichert-Meissl~-Zahl die wichtigsten Anhaltspunkte» (~Lewkowitsch~). Niedrige Säure- und ~Reichert-Meissl~-Zahl, hohe Jodzahl, das ist das Charakteristikum eines guten und unverfälschten Lebertrans. Beträgt das Unverseifbare mehr als 1,5%, so können Vermischungen mit Haifisch- oder Sejfischleberöl, die beide neuerdings öfter als Dorschleberöl verkauft wurden, vorliegen (+raffiniertes+ Haifischleberöl gab aber einmal auch nur 0,7%). Ist die ~Reichert-Meissl~-Zahl höher als 0,5, so waren wahrscheinlich die Lebern nicht frisch; beträgt der Gehalt an freien Säuren mehr als 1,5%, so liegt kein Dampftran vor. Im Mittel muß die Jodzahl etwa 167 betragen (~Lewkowitsch~), nicht unter 148 bzw. 154 (~Wijs~). ~Bull~ und ~Johannsen~ wägen das durch Brom in der Äther-Eisessiglösung entstehende Bromid der Fettsäuren. Das Öl soll etwa 32,64-37,77% Bromid liefern (Haifischleberöl gibt nur 12,7-15%). Auch der Gehalt an gesättigten Fettsäuren (nicht über c. 11%) gibt wertvolle Fingerzeige (~Bull~). +Die Bestimmung der Jodzahl erfordert einige Übung.+ -- Die leichte Abscheidung von in Benzol und Äther sehr schwer löslichen Bromiden aus Fischtranen benutzten ~Eisenschiml~ und ~Copthorne~ (Chem. Rev. d. Fett- u. Harzind. 1910, 107) sowie ~Marcusson~ und ~Hüber~ (ebenda 1911, 114) zum Nachweis dieser in Pflanzenölen. Unterscheidung der Trane nach der Löslichkeit ihrer Natronseifen in Wasser ist von ~Boegh~ und ~Thorsen~ 1904 vorgeschlagen worden. Während 100 Teile siedender Alkohol 7 Teile Lebertran lösen, lösen sie 15 Teile Robbentran und 50 Teile Walfischtran (~Schädler~). Der sichere Nachweis einer Verfälschung des Morrhuaöls mit anderen Leberölen ist nur selten möglich, etwas leichter läßt sich eine Beimengung von Fischölen und Tranen ermitteln (s. die Tabelle S. 659). Zum Nachweise pflanzlicher Öle ist Bestimmung des Schmelzpunktes der Stearine empfohlen worden (~Salkowski~, ~Bömer~). =Aufbewahrung.= Da _Ol. jec._ wegen der großen Menge ungesättigter Fettsäuren +leicht Sauerstoff aufnimmt+ und besonders am Licht ranzig wird -- es schmeckt alsdann abscheulich -- ist es in ganz gefüllten kleinen Gläsern (~H. Meyer~), vor Licht und Wärme geschützt, aufzubewahren -- jedenfalls nicht in halbgefüllten Fässern. Beim Ranzigwerden entstehen wahrscheinlich auch Oxyfettsäuren. Die Sauerstoffaufnahme beträgt bei der ~Livache~schen Probe in drei Tagen in 100 Teilen: 6,383 (~Jean~) -- bei Mohnöl in zwei Tagen 6,8, bei Leinöl 14,3. +Lebertran hält sich um so besser, je reiner er ist.+ Gebleichter Lebertran ist nicht haltbar. =Anwendung.= Die Wirkung des Öls beruht nur zum Teil auf dem Jod (ein mit Jod angereicherter Lebertran ist als _Ol. jec. jodatum_ in Benutzung), hauptsächlich aber wohl auf den vom Magen leicht emulgierbaren, daher gut verdaulichen Fetten. Der Magen nimmt von ihm viel mehr an als von anderen Fetten. Fischfette enthalten übrigens mehr Kohlenstoff (s. oben) als die Fette der Wiederkäuer. Lebertran ist jedenfalls ein vorzügliches, die Ernährung unterstützendes, den Kräftezustand hebendes Mittel. «Er ist ein geeignetes Mittel, um Kranken mit schwacher Verdauung in ausreichendem Maße Fett für die Ernährung zuzuführen» (~Schmiedeberg~). Er besitzt eine hohe Verbrennungswärme (s. oben). Er wird Kindern jetzt gern in Form einer Emulsion gegeben, der meist in Nachahmung der ~Scott~schen Emulsion Hypophosphite zugesetzt werden. Doch ist es nicht leicht, eine bei jeder Temperatur und langem Liegen haltbare Emulsion zu erhalten. Die Herstellung einer solchen mittelst eines Auszuges einer Saponindroge oder eines Saponins erscheint mir unzulässig, da die Saponine nicht harmlose Substanzen sind. Bei der Bereitung der Emulsion kommen u. a. Zucker, arabisches Gummi, Tragant, Caseïn (~Léger~), Pancreatin (~Defrêne~) und Carrageen (~Barbi~) in Betracht. +Geschmackkorrigentien+ sind: Bittermandelöl, Zimtöl, Anisöl, Zitronenöl, Pfefferminzöl -- Ausspülen des Mundes mit Pfefferminzwasser sowie Pfefferminzplätzchen empfahl schon ~Scherer~ 1822 -- Saccharin, Chloroform, Essigäther, Sardinen, Kaffee, Mischen mit Arak, Rum oder Bier, Nachtrinken von süßem Wein, Nachkauen von Brotrinde oder grünem Käse, oder man erwärmt den Lebertran im Eßlöffel, bis er dünnflüssig wird (auf c. 45°C). ~Pavesis~ «desodorierter» Lebertran wird durch Erhitzen mit gemahlenem Kaffee und Kohle erhalten. «Fester Lebertran» kann durch Vermischen der Lebertran-Eiweißemulsion mit Cacao erhalten werden (~Szigeti~ und ~Sziláw~), auch durch Zusammenschmelzen mit Walrat. Andere feste Arzneiformen in Real-Enzyklop. d. ges. Pharm. Der Lebertran mit Malzextrakt und der moussierende sind von ~Dieterich~ eingeführt. Man mischt ihm auch Eisen, Phosphor, Chinin, Kreosot bei. Sog. Lebertranersatzmittel sind das Butyromel, Jecorin (~Berkenheier~), Lipanin (Gemisch von Olivenöl und Ölsäure, ~Mering~). +Der Lebertran ist aber durch nichts zu ersetzen. Er ist ein sehr wertvolles Arznei- und Nährmittel.+ ~Mackenzie~, ein begeisterter Verehrer des Lebertrans, behauptet (Chem. Drugg. 1899, 697), daß sich das mittlere Lebensalter der Europäer seit dem Gebrauche des Lebertrans um 2-8 Jahre verlängert habe (?). Immerhin ist zu bemerken, daß, wie neuere Untersuchungen (1911) von ~Wingård~ und klinische von ~Wilkens~ gezeigt haben, rationell bereiteter Robbentran (_Ol. phocae medicinale_) dem Dorschlebertran ebenbürtig ist. Er weicht auch chemisch nur wenig von diesem ab. Die technischen Leberöle werden in der Lederindustrie (Sämischgerberei), als Schmiermittel usw. benutzt. =Geschichte.= ~Plinius~ berichtet, daß das Fett aller Fische mit Honig ein gutes Augenmittel sei und das Volk benutzt das Äschenfett (von _Salmo Thymallus_) noch heute zum gleichen Zwecke. ~Plinius~ erzählt auch (31, 27): «Einige rösten die Leber des Delphins in einem irdenen Geschirre so lange, bis ein ölartiges Fett darausquillt und hiermit reiben sie ein». Eine innerliche Anwendung des Fischleberöls war den Alten unbekannt, obwohl sie sowohl die Lebern von anderen Tieren wie mehrere Fische arzneilich anwendeten. In den hippokratischen Schriften wird Seehundstran als Riechmittel bei Hysterie empfohlen. Auch das Mittelalter beachtete den Tran nicht. Der Codfisch des Nordens wird schon in ~Eigils~ Sage (930 n. Chr.) erwähnt. Jedenfalls seit dieser Zeit erscheint er Jahr für Jahr an der norwegischen Küste. Tran und getrocknete Fische wurden seit c. 1000 n. Ch. nach England exportiert. Die Grönländer, Lappen und Eskimos benutzen den Lebertran seit undenklichen Zeiten. ~Lemery~ kennt 1721 nur das Äschenfett, ~Pomet~ und ~Valentini~ beschreiben den Walfang und erwähnen den Walfischtran von Grönland, Spitzbergen, den Besitzungen der Holländer im Eismeer und Bergen. Seit Jahrhunderten werden Dorschzähne in Frankreich bei Bluthusten benutzt. ~Percival~ empfahl 1783 in dem London Medic. Journal VIII, 393 das «Tranöl» bei chronischem Rheumatismus. Ihm folgte ~Bardsley~ 1807 (Medic. Reports 18). Schon damals stand das Öl in Lancashire in großem Ansehn. ~Kay~, ~Percival~ und ~Bardsley~ behandelten Gicht, Rheumatismus, Skrophulose und Hautausschläge mit Fischtran und schon ~Bardsley~ erkannte seine fettbildende Wirkung. Auf dem Kontinent wurde Lebertran 1822 durch Hofrat ~Scherer~ in Siegen in der Schrift: «Erfahrungen über die großen Heilkräfte des Lebertrans gegen chronischen Rheumatismus» (~Hufelands~ Journ. der prakt. Heilk. 1822, 6, 31) als souveränes Rheumatismusmittel, von anderen auch als Laxans, Diaphoreticum und Diureticum und 1825 bei Phtise empfohlen. ~Scherer~ bedauert, daß der Lebertran in den Apotheken fehle und man ihn von Krämern und Gerbern beziehen müsse. Er empfiehlt seine Aufnahme in die Pharmakopoee. Als _Ol. morrhuae_ erscheint der Lebertran denn auch bereits in der Pharmac. borussica IV (1827), als _Ol. jecoris Aselli_ in der Ph. hassiaca von 1827 (~Schelenz~). ~Posselt~ erwähnt 1828 «Gichttran», ohne Erwärmen durch Abtröpfeln von _Gadus callarias_ gewonnen. In Frankreich führte ihn ~Carron de Villars~ 1837 ein (~Husemann~). In England kam er durch ~Tauflied~ (London med. gaz. 1840) und ~Bennet~ (1841) in Aufnahme. Noch 1839 wurden in Londoner Apotheken frische Dorschlebern gehalten. Erst 1841 wurde dort Neufundlandtran eingeführt. Weit verbreitet war die Schrift von ~Herm. Klencke~, Der Lebertran als Heilmittel, Leipzig 1842 (auch franz. [Anvers.] und holländ. 1843). Die erste Untersuchung des Trans finden wir schon bei ~Chevreul~ (Rech. chim. sur l. corps gras d’orig. anim. Paris 1823). Ferner beschäftigten sich mit ihm ~Wurzer~ (Buchn. Rep. 21, 122), ~Marder~ (Pharm. Centralbl. 1837, 536, Arch. Pharm. 32 (1830), 90 und 1838, 153) und ~Herberger~ (ebenda 1839, 854) -- besonders aber ~L. J. de Jongh~ (Disquisitio comparativa chimico-medica de tribus olei jecoris aselli speciebus 1843, auch deutsch und franz., sowie im Journ. f. pract. Chem. 19, 151), der dadurch mit ~Mulder~ (Scheik. ondez. levertr.) in einen Streit geriet. ~de Jongh~ brachte auch selbst einen besonders reinen Tran in den Handel, der damals eine große Rolle spielte. Seit etwa 70 Jahren wird der Lebertran, seit Jahrhunderten Volksmittel in Skandinavien, in England als Nahrungsmittel benutzt (Chem. Drugg. 1910, 51). Noch zu ~Pereiras~ Zeiten kam er aber ausschließlich aus Neufundland, wo er damals noch in der gleichen Weise wie dies ~Pennant~ 1792 in seiner Artic zoology beschreibt, gewonnen wurde: Man warf die Lebern in Fässer, die unten ein mit Fichtenreisern verstopftes Loch besaßen und stellte diese in die Sonne. Das beim Faulen der Lebern ausfließende Öl wurde unten aufgefangen. Doch kochten auch damals schon die Fischer in Newhaven bei Edinburgh die Lebern in eisernen Töpfen aus und filtrierten das Öl durch ein Tuch mit etwas Sand (~Bennet~). In der Mitte des XIX. Jahrh. war Lebertran das bei Skrophulose am häufigsten angewendete Mittel und da man in jener Zeit alle etwas schwächlichen Kinder für skrophulös hielt, hat fast die ganze damals aufwachsende Generation oft wochenlang den gefürchteten Tranlöffel täglich an den Lippen gehabt. -- Ein Patient erhielt einmal 265 Pfund in 6 Monaten! -- Ich denke noch heute mit Schaudern daran. Denn der ganz leidlich schmeckende Dampftran war damals noch nicht erfunden! Erst 1853 begannen in Norwegen die ersten Versuche, Lebertran mit Hilfe von Dampf darzustellen; im größeren Maßstabe geschah dies aber erst seit 1890. Anfang der sechziger Jahre erschien des Kaufmanns ~Baschin~ heller Tran im Handel. Es war ~Peter Möller~, der 1853 die Methode, aus +frischen+ Lebern mit Hilfe von Dampf helle Trane darzustellend, erfand (~Peter Möllers~ Steam process). Während er 1853 kaum 20 Barrels Dampftran erhielt und auch diese kaum an die an dunkle Trane gewöhnten Händler absetzen konnte, wurden 40 Jahre später schon 30000 Barr. erzeugt. 1893 bestanden schon 52 Dampftran-«Fabriken», richtiger «Kochereien». In Neufundland fischen die Franzosen seit 1533, besonders seit unter ~Sullys~ Protektion eine Kolonie in Canada gegründet wurde, gingen jährlich über 100 Schiffe hinüber. Trotzdem der Utrechter Vertrag die Rechte Frankreichs stark beschnitt, sehen wir noch 1792 jährlich 210 französische Schiffe dort dem Fang obliegen. In Labrador wird der Dorsch seit 1869 gefischt. 1889 begann man auch in Amerika in größerem Maßstabe Dampftran darzustellen. 1890 errichtete ~Nielsen~ eine Fischzuchtanstalt auf Dildo in Neufundland. (Rapp. s. la propagat. artific. de la morue 1892). Auch in Norwegen und Canada sind Zuchtversuche gemacht worden. Künstliche Brut wurde zuerst 1878 in Gloucester versucht. 1899 wurden dort bereits 100 Mill. Eier künstlich ausgebrütet (Merck. Rep. 1899). Der Grund, warum sich die hellen Dampftrane nur langsam einführten, lag daran, daß man lange Zeit glaubte, daß die von ~Gautier~ und ~Mourgues~ 1890 in den dunklen Tranen entdeckten Alkaloide die wirksame Substanz sind, was aber keineswegs der Fall ist. Lebertranemulsionen erwähnt schon ~Pereira~: «Doch tritt bei ihnen der unangenehme Geschmack nur noch mehr hervor». 1843 empfahl ~Deschamps~ (Gaz. d. hopitaux No. 49) eine Lebertranseife, ~Duclon~ 1846 einen Lebertransirup, später ~Pohl~ Gelatinekapseln; 1860 erschien ~Jeannels~ Eisenlebertran. Den größten Einfluß auf die Lebertrantherapie gewann aber die zweifellos vortreffliche ~Scott~sche Emulsion. ~Kopp~ (bei ~Dierbach~) vermutete +Jod+ im Tran und der Apotheker ~Hopfer de l’Orme~ wies es 1836 nach (Lieb. Ann. 21 (1836) 73 und Hufel. Journ. f. prakt. Med.), was ~Wackenroder~, ~Brandes~, ~Bley~, ~Marchand~ und ~Gmelin~ (Ann. d. Pharm. 30, 1839 321) bestätigten. Das Brom fand ~de Jongh~, ~Allen~ 1885 das Cholesterin. Die Bildung von «Propylamin» beim Destillieren mit Kali beobachtete schon ~Winckler~ (1852). Während die nach der älteren Methode bereiteten gefärbten Trane infolge der beigemengten Fäulnisprodukte schlecht schmeckten und Aufstoßen hervorriefen, sind die nach dem ~Peter Möller~-Prozeß (s. oben S. 651) bereiteten hell und schmecken besser. Die von Peter Möller 1857 geäußerte Vermutung, daß der Lebertran, da er ganz anders wirke als andere Öle, andere Fettsäuren enthalten müsse als die übrigen Fette, hat sich durch die von ~Peckel Möller~ 1880 inaugurierten Untersuchungen ~Heyerdahls~ als richtig erwiesen. =Lit.= ~Flückiger~, Lebertran in Fehlings Handwörterbuch. -- ~König~, Isis 1895. -- ~Schelenz~, Gesch. u. wirtschaftl. Bedeut. d. Lebertrans. Pharm. Zeit. 1899, 331. -- ~Peckel Möller~ a. a. O. c) Trane. Die eigentlichen Trane werden aus dem Speck oder auch aus dem ganzen Tiere ausgeschmolzen. Sie bestehen fast ausschließlich aus Glyceriden, einige (Delphin-, Meerschweintran) enthalten auch Walrat. Sie sind für uns nur als Verfälschungsmittel des Lebertrans von Interesse (vgl. die Tabelle S. 659), dürften aber medizinische Beachtung verdienen (vgl. S. 661). Hierher gehören der +Robben-+ oder +Seehundstran+ von _Phoca vitulina_, _groenlandica_, _lagura_, _caspica_ etc., der +Walfischtran+ von _Balaena mysticetus_ (der echte Wal), _B. australis_, _Balaenoptera longimana_, _borealis_. Das +Schildkrötenöl+ von _Thalassochelys corticata_, das +Dugongöl+ von den Seekühen, _Halicore australis_ und _indicus_, der +Delphintran+ von _Delphinus globiceps_ und der Meerschwein- oder Braunfischtran von _Delphinus phocaena_. 2. Öle von Landtieren. Die Öle der Landtiere ähneln den nichttrocknenden vegetabilischen Ölen. Sie geben relativ niedrige Jodzahlen, absorbieren nicht leicht Sauerstoff und liefern harte Elaidine. Sie spielen in der Medizin eine untergeordnete Rolle. Es gehören hierher zunächst die sog. Klauenöle, das Schafpfoten- oder Hammelklauenöl, das Pferdefußöl und das Ochsenklauenöl, dann das Eieröl (aus Eidotter) und die flüssigen Öle, die aus Schmalz und Talg durch Auspressen erhalten werden (s. bei Adeps und Sevum). III. Vegetabilische feste Fette und solche enthaltende Drogen. Die Vertreter dieser Klasse von Fetten sind in der +gemäßigten+ Zone fest, wie z. B. die tropischen Fette (_Cacao_, _Cocos_), oder von Salbenkonsistenz, wie die Fette der Subtropen (_Laurus_), jedenfalls nicht flüssig (s. oben S. 548). Je weicher sie sind, um so mehr enthalten sie gewöhnlich ungesättigte Fettsäuren (Ölsäure, Linolsäure). Für einige (_Cacao_, _Muskat_) war früher die an die Konsistenz erinnernde, jetzt als irreführend verlassene Bezeichnung «Butter» in Gebrauch. 1. Myristinsäuregruppe. Die Vertreter dieser Gruppe enthalten Myristin, den Glycerinester der Myristinsäure CH₃(CH₂)₁₂COOH (vgl. S. 546). Die Myristinsäure ist im Pflanzenreiche weit verbreitet, besonders aber bei den Myristicaceen zu finden. Nachgewiesen ist sie z. B. in _Myristica fragr._, _M. surinamens._, _M. Otoba_, _M. Bicuhyba_ u. and., _Virola surinamensis_ und _venesualensis_; ferner im Cocos-, Palmkern- und Dikafett, sowie im Walrat (~Nördlinger~, ~Reimer~, ~Will~, ~Thoms~, ~Mannich~). Aus den Virolafetten läßt sich die Myristinsäure leicht darstellen (~Reimer~ und ~Will~). Semen Myristicae, Macis und Oleum myristicae. =Syn.= Nux moschata, Nucleus moschatus, Sem. nucistae, Muskatnuß, Moschatennuß, Bisamnuß, Macisnuß, noix (de) muscade; die Pflanze muscadier (franz.), nutmeg (engl.) -- notemuskaat, notmuskaat, noten (holl.) -- noce moscada (ital.) -- nuez moscada (span.) -- muskot träd (schwed.) -- muscadnöd (dän.). Der Arillus, die _Macis_: Muskatblüte, Macisblüte, Muskatblume (so noch in Preislisten 1911 [!], trotzdem der Sachverhalt seit 700 Jahren bekannt ist). Fleur de muscade (franz.) -- mace (engl.) -- macio (span.) -- folie, foelie (holl.) -- Arillus myristicae, Flores macidis. Macis wird jetzt meist als Femininum behandelt (als Masculinum bei ~Clusius~ in Exoticorum libr. 1605 und in ~Garcia~ Aromat. 1593). +sansc.+: jáji-phalam, jatiphala (phalam im Pali = Frucht), hind.: jáé-phal, jaiphal (Macis: ápatri) (weitere vorderind. Namen in Pharmacogr. indica und in ~Watt~, Dict. econ. prod.); +mal.+ pala (die Frucht: bua pala) in Atjeh: bak pala (weitere indische Namen bei ~de Clercq~). -- +arab.+: jouzbuvá, jauz-ut-trib, ganz būwa oder ǧauz bauwa (Macis: basbás, bisbasa) -- +pers.+ jouzbóyah (Macis = bazbáz) -- +chines.+ Muskatnuß: juh-tau-kʾau oder jou tou kʾou (tou kʾou = Cardamom), Macis: jou tou hua (jou = fleischig, hua = Blume.) Bei ~Simon Seth~: κάρυον αρωματικόν. -- Bei ~Myrepsus~: μοσχοκάρυδον, κάρυον μυρεψικόν. In den Glossae iatricae: νώς μυριτζικά μοσχοκάριδα. Bei den späteren Griechen auch: νούκη μοσχάτα, νάσκαφτον (weitere bei ~Langkavel~). -- Im alten Indien: jâti-kôça = dschati-kosa (Macis: dschati-patra). Daß sie sich von Indien westwärts durch den Handel verbreitete, zeigt die Aufnahme des indischen jâti-kôça in das Syrisch-Aramäische (~Lagarde~, ~Löw~). -- Bei ~Ahroun~: jeusbane -- bei ~Amrân~: Macis: adaches -- bei ~Avicenna~: jausiband (Macis: befbase) -- bei ~Serapion~: jeuzbeve, jusbegue, jumbague (Macis = bisbese) -- bei ~Averrhoës~: geoza (Macis: besbese) -- bei ~Ibn Baithar~: djouz bou (Macis: besbassa). -- Macis bei den alten Arabern, z. B. ~Avicenna~: bisbese, besbâssa befbase (später, z. B. von ~Serapion~ mit thaliphaphar, thâlisfar, talifar [= Halarrhena antidysenterica] zusammengeworfen). -- Bei ~Constantinus Africanus~: nux muscata. -- Bei ~Albertus Magnus~: muscata. -- Bei der ~Hildegard~: nuz muscata. -- In der Alphita: nux miristica, cayon mirifica. Bei ~Bartholomaeus~: nux mirifica. -- In den Tabulae: nux muscata. -- In den Synonyma Serapionis: jeumbave, jumbague. -- Bei ~Actuarius~: nux unguentaria, quam myristicam adpellant. -- In den dänischen Urteböger (I, S. 684): nux moscata und matae, muscatan blomae. -- Bei ~Megenberg~: matzenpaum, muskatpaum. -- In den mittelenglischen Medizinbüchern: lichebane, nux mustica, macys. -- Im Gothaer Arzneibuch: muscate, muschate, muscatenblome, muschatenblome. -- Bei ~Harpestreng~: nux moscata (Macis: muscatae blomae, matae). -- In der Ordinancie van der Dumwagen (XIV. Jahrh.): musschaten und musschaten bloymen. -- In The forme of cury (1380): noiez mugedez. -- Im niederdeutschen Arzneibuch (XIV. Jahrh.): muschate. -- Bei ~Hans Folcz~ (1485): muscat plue (= Macis). -- Im Inventar ~Lefort~ (I, S. 805): noys muguette, massis und uille de musterlin. -- In den Droits de courtage etc. (XV. Jahrh.): nois muguettes und massiz. -- In der Frankfurter Liste (I, S. 812): nuces muscati und maces. -- Bei ~Marco Polo~ (1295): noci moschiate. -- Im Roteiro des ~Vasco da Gama~ (I, S. 814): noz nozcada. -- Bei ~Acosta~: jauziband, seygar. -- In Ricettario fiorentino (I, S. 793) noce moscada. -- Bei ~Levinus Lemnius~ (De miraculis occultis naturae 1567): nux myristica seu moschata. -- Bei ~Rumpf~: gjauz-bawa (Macis: besbase). [Illustration: Tafel XIX. Myristica fragrans in Java. Frei stehender Baum in einem Zingiberaceengebüsch. (Links Zingiber, rechts die riesige Elettaria speciosa.) Um die Größenverhältnisse zu zeigen, ist mein malaiischer Diener mit aufgenommen. [+Tschirch+ phot.]] =Etym.= Myristica, zuerst bei ~Petrus d’Ebulo~ (1191), von μυριστικός = balsamisch, (μύρον = Balsam, d. h. ein wohlriechender Saft (der βαλανός μυρεψική des ~Dioskurides~ und ~Celsus~ ist sicher nicht zu deuten) -- fragrans = wohlriechend -- muscata zuerst bei ~Constantinus Afrikanus~, muscat schon im ~Parcival~; dies wie das mhd. muscait, muscart, mnd. muschade, muscatenblome, das franz. muguette, musguette von moschatus, was aber mit Moschus nichts zu tun hat. Die Worte muscatum, moschatum, moschelinum, wurden für etwas wohlriechendes lange bevor die Muskatnuß bekannt war, benutzt (z. B. schon bei ~Oribasius~). Sie wurden dann auf sie übertragen. In Byzanz erhielt das Gewürz -- aber nicht wegen der Ähnlichkeit des Geruches, wie ~Schrader~ meint, denn die besteht nicht -- den Namen μοσχοκάρυδον, woraus latein. nux moschata, mhd. nuzmuscata (bei der ~Hildegard~) muskât (bei ~Megenberg~) wurde. -- Das pers. gauz-i-buya (jouz bóyah) bedeutet wohlriechende Nuß. Das arabische jausiband heißt Nuß von Banda. -- Unter nuces indicae wurden früher bisweilen Muskatnüsse verstanden, später dann aber (außer der Nuces vomicae und den Arecanüssen) die Cocosnüsse (s. d.), die wohl auch als nuc. ind. grandis (z. B. bei ~Nicolai~) unterschieden wurden; nach ~Warburg~ ist die nux indica (avellana de la India) wahrscheinlicher _Moringa oleifera_. Bei ~Cordus~ heißt die Muskatnuß nux indica moschata (und moschocaryon). -- Im botanischen Sinne ist die Muskatnuß keine Nuß, d. h. keine Schließfrucht, nicht einmal der ganze Same, sondern nur der Samenkern. Der korrekte Name wäre also +Nucleus seminis myristicae+. -- Macis umgebildet aus Macer (macir, machis, machir, μάκειρ). Im Altertum (~Scribonius Largus~, ~Dioskurides~ usw.) bedeutete dies die Rinde von _Ailanthus malabarica_ ~Dc.~ in der früharabischen Zeit (~Rhazes~) wohl auch die Wurzelrinde von _Holarrhena antidysenterica_ ~Wall.~ (_Wrightia antidysenterica_ ~Grah.~), erst vom XI. Jahrh. an den Muscat-Arillus. -- Das holl.: foelie, fuly (im Dordrechter Zollerlaß 1340: foelghen) = Macis, ist wohl zu folium, feuille zu stellen (oder altportugiesisch soviel wie Blüte?). -- Muskatbutter heißt im mal. minjak pala. Minjak ist die mal. Gruppenbezeichnung für Öl und Fett. pala (mal.) wohl von ind. (pali) phala = Frucht par excellence. =Stammpflanze und Systematische Stellung.= Die Banda Muskatnuß, die Bandamacis und das Ol. myristicae werden geliefert von: =Myristica fragrans= ~Houttuyn~, Hist. nat. II, 3 p. 333 (1774) (_M. officinalis_ L. f. [non ~Mart.~] 1781, _M. moschata_ ~Thunbg.~ 1782, _M. aromatica_ ~Lam.~ 1788). Myristicaceae (Myristica) Eumyristica. Von den 235 Arten der Familie gehören 179 dem südlichen Asien bis Papuasien, 38 Südamerika, 11 Afrika, 4 Madagaskar, 2 dem trop. Australien, 3 Polynesien an (~Warburg~). Aber dauernd aromatisch sind die Samen und Arillen nur einiger weniger auf die Molukken und Papuasien beschränkter Arten. =Beschreibung der Stammpflanze.= Der meist ein Alter von 60 (selten 80 bis 100) Jahren erreichende Baum, der in seinem in der Jugend pyramidenförmigen Wuchs, wie schon ~Rumpf~ und ~Valentijn~ ganz richtig angeben, einem Birnbaum gleicht, d. h. er ist in der Jugend mit pyramidaler (Taf. XIX), im Alter mit breiter Krone versehen -- ~Jagor~ sagt, er hält die Mitte zwischen Lorbeer und Orange, ~Barbosa~ beschreibt ihn als lorbeerartig, auch ~Albertus Magnus~ gebraucht diesen Vergleich -- wird in den Molukken 12-18 (je 20) m hoch. «In ihm kommt nicht die tropische Fülle und Kraft zum Ausdruck, wie in den Feigenbäumen, den Palmen und Dipterocarpen, er bleibt auch im Alter zierlich und klein» (~Tschirch~). Die Verzweigungen beginnen in einer Höhe von 5-6 m. Beim Anschneiden des Stammes und der Zweige fließt ein roter Saft aus, der zu einem Kino erhärtet (~Tschirch~ 1888). Die kahlen, immergrünen, ganzrandigen Blätter sind länglich-elliptisch oder ei-lanzettlich, kurzgestielt, meist c. 8-12 cm lang und laufen in eine lange Träufelspitze aus. Sie enthalten Ölzellen, erscheinen daher durchscheinend punktiert. Die der Befruchtung durch Insekten angepaßten Blüten sind diklin-diözisch, doch ohne scharfe Scheidung: an den weiblichen Bäumen finden sich besonders in der Jugend oft männliche, an männlichen da und dort auch weibliche Blüten (~Warburg~). Die weiblichen bilden meist zweistrahlige, in den Blattachseln stehende Cymen, die nickenden männlichen reichere Infloreszenzen, Dichasien mit traubenartigen Endgliedern. Beide ähneln der Maiblume. Ihr sympetales, c. 6 mm langes, glockenförmiges Perigon ist bleichgelblich und hat 3-4 Zipfel und an der Basis eine Bracteola. Sie duften sehr lieblich, orangenartig (~Tschirch~), etwas an Jasmin erinnernd (~Hooker~). Doch habe ich in Java nicht bemerkt, daß man einen blühenden Baum auf weite Strecken hin riecht. Doch das mag wohl dort, wo tausende beieinander stehen, sich anders verhalten. Die männlichen Blüten führen eine zentrale, aus 9-16 Staubfäden monadelphisch verwachsene Staminalsäule, die weiblichen einen gestreckten, mit zweispaltiger Narbe versehenen, aus einem Carpell gebildeten, dickschaligen, außen rostroten Fruchtknoten, in dem sich ein basal angeheftetes Ovulum findet. Die einfächerige, einsamige Frucht ähnelt einem glattschaligen Pfirsich (~Warburg~) oder einer Quitte (~Pigafetta~). «Die pfirsichgroßen, eirunden, lichtgelben Früchte lugen freundlich aus dem frischen Laube hervor und der aus der aufgeplatzten Frucht hervorleuchtende, lebhaft rote Arillus, der sich wirkungsvoll von der tiefbraunen Samenschale abhebt (Fig. 211), fügt dem Bilde eine neue, kräftige Farbe hinzu. Fast das ganze Jahr ist der Baum mit Blüten und Früchten bedeckt» (~Tschirch~, Indische Heil- und Nutzpflanzen). ~Birkmore~ nennt sie die bei weitem schönste Frucht des ganzen Pflanzenreichs. Der Baum beginnt im 8.-9. Jahre zu blühen. Der Höhepunkt des Ertrages wird im 14.-16. Jahr erreicht. Die Bäume können bis ins 60., ja 80. Jahr tragen. Die Blüte reift in 9 Monaten zur Frucht (een noteboom staat in al zijn ontwickelings-perioden aan den mensch gelijk ~van Gorkom~). In Banda kommen auf 100 weibliche Bäume etwa 2-3 männliche. 1% genügt zur Sicherung der Befruchtung (~de Sturler~). Man läßt aber meist mehr als Windbrecher stehen. Das Aufspringen der Früchte erfolgt durch Spannungen im Perikarp, die Einleitung durch ein kleinzelliges «Schwellgewebe» an der Basis des Perikarps und an der Basis des Samens, die Erweiterung des Spaltes durch den Arillus (~Janse~). Der Arillus ist biologisch als Anlockungsmittel für Vögel zu betrachten, die ihn verspeisen, den Samen verschlucken und so verbreiten. Beim Aufspringen der Frucht wirkt er nicht primär (~Baillon~), sondern nur sekundär (~Janse~) mit. Die Samen von _Myristica fragrans_ werden durch Vögel verbreitet, besonders durch die mit metallisch glänzendem Gefieder versehenen Waldtauben _Carpophaga (Columba) aenea_ und _C. perspicillata_ ~Temm.~, die auf den Bandainseln noteneeter (= Nußesser) oder burong pala (= Muskatvogel) genannt werden (_Myristicovora_, _Casuarius_, _Megapodius_, _Buceros_ verbreiten die Samen anderer Arten und kommen für _M. fragr._ nicht in Betracht). «Die Bandainseln sieh, die herrlich prangen, in buntem Schmelz, rotfarbiger Früchte voll. Viel Vögel, flatternd dort umher, empfangen von grünen Nüssen ihren Nahrungszoll» singt schon ~Camoens~ (Deutsch von ~Wollheim da Fonseca~). [Illustration: Fig. 206. [Mit Benutzung der Karte von +Warburg+, gez. von +Tschirch+.]] Die Tauben verschlucken, angelockt durch den lebhaft gefärbten Arillus, entweder die Samen und geben sie mit den Exkrementen wieder von sich (~Rumpf~, ~Valentijn~) oder bringen sie nur in den Kropf (~Moseley~, ~Forster~) und speien sie nach einiger Zeit wieder aus. Jedenfalls keimen Samen, die diese Behandlung durchgemacht haben, gut, während sonst der _Myristica_-Same rasch, z. B. schon durch Trocknen, seine Keimkraft verliert, was, wie ich gezeigt habe, darauf beruht, daß hierbei das sehr weiche Gewebe des Keimlings rasch schrumpft und die in den Leitbahnen steckenden Endzipfel der Cotyledonen abreißen. Denn die Keimung erfolgt in der Weise, daß die beiden Cotyledonen, als Saugorgane fungierend, sich auf den Leitbahnen (s. S. 679) vorwärts schieben und allmählich das ganze Endosperm durchwachsen und aussaugen (~Tschirch~). Die Arten der Gattung _Myristica_ zeigen einen merkwürdigen Endemismus. Die Heimat der Muskatnuß sind die +Bandainseln+ (nutmeg isles), eine kleine, noch keine Quadratmeile große, oft von Erdbeben heimgesuchte Inselgruppe der östlichen Molukken (s. die Karte). Lontor oder Groß-Banda ist die größte dieser Inseln, Banda neira liegt nördlich, Rosengain östlich, Ay und Run westlich davon. Auf den eigentlichen Molukken (richtiger Malukken), wo die Gewürznelke zu Hause ist, scheint der Baum nur sehr selten gewesen zu sein. ~Warburg~ betrachtet den ganzen inneren vulkanischen, die Bandasee umschließenden Südmolukkenkreis als die Urheimat der echten Muskatnuß (s. die Karte). Wild dürfte jetzt _M. fragr._ nur ganz vereinzelt zu finden sein. =Lit.= ~Houttuyn~, Natuurl. hist. volg. Linné II, 333 (1774) und Aamerk. over de bloem van de Noot-Moskat Maatsch. Wetensch. Haarlem 26 (1789). -- ~Thunberg~, Acta Holmiae 1782 (deutsch 1785 in N. Abh. d. k. schwed. Akad.). -- ~Thunberg~ und ~Radloff~, Diss. De Myristica Upsala 1788. -- ~Lamarck~, Mém. s. l. genre du Muscadier Hist. d. l’ac. d. sc. 1788. -- ~Bickmore~, Trav. in the East Indian Archipel. 1868, 225. -- ~Wallace~, The Malay Archipel. 1869, 452. -- ~Bernstein~, Peterm. geogr. Mitt. 1873, 209. -- ~Prantl~, Myristicac. in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfam. -- ~Warburg~, Ebenda, Nachträge. -- ~Warburg~, Z. Charakt. u. Glied. der Myr. Ber. d. bot. Ges. 1885 und Monogr. d. Myristicac. Nov. Act. Leop. Car. Ac. 68. -- ~Hooker~ und ~Thomson~, Flor. ind. I. -- ~A. de Candolle~, Santalaceae et Myristicaceae. 9 tab. Lips. 1860. -- ~A. de Candolle~, Note sur la fam. d. Myristicac. Ann. sc. nat. (4) 4, 20 und Prodromus. -- ~Eichler~, Blütendiagr. -- ~Baillon~, Hist. des pl. II. -- ~King~, Spec. of the Myr. of brit. Ind. 1891. +Abbild.+, älteste: ~Clusius~, Exoticor. libr. 1605. -- ~Valentijn~, Beschrijv. van boomen, planten etc. 1726. -- ~Rumpf~, Herb. Amboin. 1743 II, t. IV. -- ~Pomet~, Hist. des drog. (schlechte Abbild.) -- ~Gärtner~, De fructibus, 1788-91. -- ~Blume~, Rumphia I (1835) t. 55-64 (schöne Abbild.). -- ~Warburg~ a. a. O. (4 Taf.). -- ~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpfl. t. 63-65. -- ~Reichenbach~, Ic. exot. t. 276-277. -- ~Nees von Esenbeck~, Plant. med. t. 133. -- ~Bentley-Trimen~, Med. pl. t. 218 (dort weitere Abbild. zitiert). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 132. -- ~Berg-Schmidt~, Atlas t. 119 u. vielfach anderwärts. =Pathologie.= In Trinidad werden die Muskatnüsse besonders von _Trogosita mauritanica_ L., _Trilobium ferrugineum_ ~Fabr.~, _Carpophilus sp._, _Laemophloeus sp._, _Hypothenemus sp._ und _Lasioderma sp._ zerstört (~Hart~). In Banda zerstört der «Muskatwurm» die Nüsse (vgl. auch unter «Kalken» S. 672). =Lit.= ~Hart~, Pharm. Journ. 1894, 818 (Apoth. Zeit. 1894, 104). =Kultur und Erntebereitung.= Die Droge stammt nur von kultivierten Bäumen. Trotz der strengsten Aufsicht ist doch der Muskatbaum aus seiner ursprünglichen Heimat (s. oben S. 667) schon zur Zeit des Monopols in andere Länder gebracht worden, so z. B. nach Mauritius durch die Franzosen (~Poivre~ 1749 bzw. 1770), durch diese auch nach Bourbon (1772), Madagaskar und den Seychellen (1780), Sansibar und Westafrika sowie nach Cayenne; durch die Engländer nach St. Vincent 1882 (in Cayenne gestohlene Bäume!), Trinidat, Jamaica und der Antilleninsel Grenada. Aber außer auf Grenada haben an keiner dieser Stellen die Muskatbäume in größerem Umfang Fuß gefaßt. Die Kultur ist noch heute vorwiegend auf die Heimat des Gewürzes beschränkt geblieben. Nur in Sumatra, wohin schon die Engländer um 1800 die Pflanze brachten (die Insel gehörte damals der englisch-ostindischen Kompagnie) -- hier besonders an der Westküste, weniger in Padang, Palembang, Atjeh und Lampong -- hat sie sich gut entwickelt, dann auch auf Java, Borneo, Celebes (Minahassa), Ambon -- dort und in Halmaheira hat die Kultur große Fortschritte gemacht -- Ceram, Ternate. Besonders aber ist Penang, wohin sie ebenfalls die Engländer (~Roxburgh~) um 1800 brachten, für die Muskatkultur wichtig geworden, weniger die übrigen Straits settlements (z. B. Singapore). Der Muskatnußbaum (Muscadeira) wurde gleichzeitig durch ~Luiz de Abreu~ (1809) nach Rio de Janeiro und durch ~Manoel Marques~ nach Para gebracht. Jetzt mag es (nach ~Warburgs~ Schätzung 1897) rund 1050000 tragende Muskatbäume auf der Erde geben. Davon entfallen auf Banda c. 400000, Sumatra 190000, auf die Malaiische Halbinsel 130000, auf Minahassa 100000, auf Westindien 70000, der Rest auf Java, Ambon und Halmaheira. Es kultivieren jetzt (1911) Muskat: Auf den Molukken: die Bandainseln, Ternate, Amboina, Halmaheira, Sangirinseln; in Nord-Celebes: Menado (Minahassa), auf Sumatra: Benkulen, Padang, Pajakomba (Pad. Bovenland.), Deli, Langkat, Sardang, auf Borneo (wenig), auf Java (Batavia, Pamanukan) hier allenthalben auch in Kampongkultur (I, S. 48), in den Straits settlements: Singapore, Penang, Malacca, in Ceylon an verschiedenen Orten, in Vorderindien: Bengalen, in Hinterindien; in Westindien: Grenada (weniger auf Jamaica, Tobago, Trinidad, St. Lucia) und in Brasilien. 1898 hat man mit Muskatkultur in Kamerun begonnen. Die Kulturen auf Bourbon und Mauritius scheinen aufgegeben zu sein. Die meisten und besten Muskatnüsse kommen aber noch heute von den Bandainseln. Die Muskatnußplantage heißt dort +Perk+ (d. h. Park), der Kultivateur Perkenier. Perks finden sich jetzt besonders auf den Bandaeilands: Lontor, Neira, Ay (seit alter Zeit «das Eldorado der Muskatkultur»), Run, Rosengain (vgl. die Karte). Die Nüsse müssen bald und in der Schale ausgesät werden, da sie rasch ihre Keimkraft verlieren, am besten sogar die ganzen Früchte vor völliger Reife. Der Muskatnußbaum verlangt einen tiefgründigen, lockeren und weichen Boden mit gut durchlässigem Untergrund. Er liebt welliges Terrain (was er z. B. in Banda findet) und ein feuchtwarmes Tropenklima ohne ausgesprochene Trockenperiode. Die Bandainseln liegen 4° 32′ s. B. und haben rein ozeanisches Klima. [Illustration: Fig. 207. Muskatnußernte im Notemuskaat-Tuin mit dem an einem Stocke befestigten Gai-Gai. [Abbild. aus dem Koloniaal-Museum in Haarlem.]] Er verlangt Windschutz. Als Windbrecher dienen besonders _Canarium_, _Casuarina_ und _Cerbera_-Arten. Da der Baum ein Waldbaum war, gibt man ihm auch in den Kulturen gern +Schattenbäume+, in +Banda+ werden in unregelmäßigen, ziemlich weiten Abständen besonders _Canarium commune_ (Kanari) und _C. mehenbethene_ (Kanari Ambon) zwischen die Muskatbäume gepflanzt sowie _Aleurites moluccana_ (Kemiri), _Calophyllum_, _Arenga_, und in der Nähe der Wohnungen Fruchtbäume (_Jambu_, _Mangostan_, _Durian_, _Tamarinde_, _Mango_, _Peté_ [_Parkia_] u. and.). In Java und Celebes wird auch der Dadap (_Erythrina_), sowie _Albizzia moluccana_ als Schattenbaum gepflanzt, sowie _Nauclea_, _Cananga_. In englisch Indien werden dagegen keine Schattenbäume gepflanzt (der Engländer liebt es nicht, welche zu pflanzen). Zu starke Beschaltung beeinträchtigt den Ertrag. Um die jungen Pflänzchen der Plantage zu schützen, pflanzt man in Java bisweilen _Bananen_ oder _Hibiscus_ dazwischen (~Tschirch~). [Illustration: Fig. 208. Gai-Gai. Körbchen mit Gabel zum Einsammeln der Muskatnüsse.] [Illustration: Fig. 209. Pflückkörbchen für Muskatnüsse. [Kew Museum, +Greenish+ phot.]] Ein Arbeiter kann täglich 1000-1500 Nüsse ernten. Ein Baum liefert auf den Bandainseln 1-2 kg Nüsse (bei sorgfältigerer Kultur 2½ kg). Obgleich der Baum das ganze Jahr Blüten und Früchte trägt und dauernd von die Befruchtung vermittelnden Insekten umschwärmt ist, pflegt man, wie ich in Indien auf Befragen erfuhr doch nur dreimal im Jahr zu ernten («drei Klimzeiten»): Ende Juli bis Anfang August, November bis Ende März und Anfang April. Die Haupternte ist im Juli-August, die besten Nüsse liefert aber die Frühjahrsernte. In Sumatra ist die Haupternte im November-Dezember, die zweite im April-Juni. Man sammelt nur ganz reife Samen, da wie ich in Indien feststellte, das Endosperm bis fast zur Reife milchig bleibt. In Grenada läßt man die reifen Früchte vom Baume fallen und liest sie von dem vom Unkraut gesäuberten Boden auf. In Banda werden die reifen Früchte gepflückt. Etwa seit Mitte des XIX. Jahrh. bedient man sich beim Pflücken des seitlich offenen, an einem langen Stiele befestigten Pflückkörbchens (Gai-Gai, Fig. 208, auch I, Fig. 198), seltener, wie ehedem, der Holz- oder Eisenhaken. Die gepflückten Nüsse werden aus dem Gai-Gai dann in einen Tragkorb, Fig. 209, geschüttet. Das +Pericarp+ wird auf den Bandainseln gewöhnlich an Ort und Stelle von den Sammlern entfernt und die Nüsse zweimal täglich auf der Estate abgeliefert. Hier wird noch am gleichen Abend die +Macis+ abgelöst (mit der Hand oder einem Messer, vgl. I, Fig. 198) und dann auf Bambutellern bzw. Matten oder Hürden an der Sonne oder in Trockenhäusern getrocknet. Sobald die Macis welk geworden ist, drückt man sie mit den Händen (oder Füßen) platt. Sie ist in 2-4 Tagen trocken. Die ursprünglich lebhaft rote Farbe ist nun in Goldgelb übergegangen und der frisch fleischige glänzende Arillus ist matt, hornartig und brüchig geworden. Bei Regenwetter trocknet man über Holzkohlenfeuer oder dem Feuer der Schalen der Kamirifrüchte. Die Sitte, Macis durch Besprengen mit Seewasser geschmeidig zu machen, scheint abgekommen zu sein, nur geschimmelte wird noch bisweilen mit Seewasser gewaschen. [Illustration: Fig 210. Notemuskaat-Kombuis (Trockenhaus). [Abbild. aus d. Koloniaal-Museum Haarlem.]] Die «+Nüsse+» kommen in das Trockenhaus (droog kombuis, noten kombuis, Fig. 210), wo sie auf Gestellen (para-para) aus Bambu oder Sagoblattstielen, die 4-5 Fächer (pettaks) haben, etwa 1′ hoch aufgeschichtet und langsam über einem mäßigen Feuer bei höchstens 60° unter öfterem Umwenden und Herabschütten auf das nächst tiefere Fach getrocknet werden. (In Grenada werden die Nüsse in flachen Kästen mit durchlöchertem Blechboden im Schatten getrocknet.) Nach 3-6 Wochen sind sie soweit trocken, daß der Samenkern beim Schütteln in der Schale «rammelt». Hierbei stirbt der Keimling ab. Minahassa und Amboina exportiert viel Samen in der Schale (noten in dop) z. B. nach London, China, Indien. Meist wird aber, bevor die Nüsse nach Makassar, Batavia oder Singapore gehen, die Schale, die c. ¼ des Gewichtes beträgt, dadurch entfernt, daß man die Samen mit Steinen, schmalen Brettern, Stäben oder Holzhämmern aufschlägt. Die Schalen dienen als Brennmaterial. Sodann werden die +Samenkerne+ sortiert (garbuliert, vgl. I, Fig. 198). Die Garbulatie entfernt zunächst die zerbrochenen Nüsse (stukkende Noten, broken nutmegs), dann die Rompen (die mageren Nüsse) und trennt die vetten oder gaven Noten von den middelbaren oder noch weiter nach der Größe. Nun werden die Samenkerne entweder direkt verpackt und ungekalkt, bisweilen unter Zusatz von Nelken oder Pfeffer (um die Insekten abzuhalten), in luftdichtem Verschluß versandt (besonders nach England) oder der +Kalkung+ unterworfen. Diese +Kalkung+, die der europäische Kontinent und Amerika verlangt, geschieht entweder in der Weise, daß man die Nüsse trocken mit gelöschtem Kalk einreibt (trockene Kalkung, früher in Singapore und Sumatra in Gebrauch) oder indem man sie in einen aus Seewasser und gebrannten Korallen bereiteten Brei einrührt (Molukken, Minahassa) und dann zum Trocknen (zweeten) ausbreitet. Früher wurden die gekalkten Nüsse noch einem Schwitzprozesse unterworfen, was, wie ich (1889) erfuhr, jetzt nicht mehr üblich ist. Es ist sicher, daß das Kalken, wenn es, wie einige meinen, den Zweck haben sollte, die Keimkraft der Muskatnuß zu vernichten, unsinnig und zwecklos ist, da die Keimkraft schon beim Trocknen erlischt. Es hat aber gar nicht diesen Zweck. Versuche, die ich mit gekalkten und ungekalkten Muskatnüssen unter Hinzufügung von lebenden Exemplaren der _Sitodrepa panicea_ (I, S. 379), der am meisten die Nüsse zerstörenden Larve, angestellt habe, zeigten, daß +das Kalken ein nahezu sicherer Schutz gegen Insektenfraß ist+. Die Tiere bohrten keinen gekalkten Samen an und gingen auf diesen rasch zugrunde, während sie im Kontrollversuch die ungekalkten Samen rasch zerstörten. Dieser Versuch lieferte also den Beweis für die Richtigkeit der Ansicht der meisten neueren Beobachter, die im Kalken einen Schutz gegen Insektenfraß glaubten sehen zu müssen. ~Milburn~ (Oriental Commerce 1813) glaubte, daß das Kalken die «Poren» schließe; ~Reinwardt~, daß es in den Randschichten das Fett verseife. Bisweilen werden die Muskatnüsse erst in London gekalkt (~Helbing~). In Singapore wird in die Kisten -- unnützerweise -- bisweilen eine Hand voll Pfeffer geworfen. Wichtiger ist das dort übliche Auspichen der Falze (~Tschirch~), wie überhaupt, daß Fässer und Kisten gut gedichtet werden. Dem englischen Geschmack entsprechend erzeugen die englischen Kolonien (Penang, Singapore) viel ungekalkte Nüsse (brown nutmegs). Das endgültige Sortieren der Muskatnüsse erfolgt in London, Rotterdam und Amsterdam. Schon während der Dauer des Monopols wurden die zerbrochenen oder wurmstichigen Nüsse auf +Muskatbutter+ verarbeitet und diese in Steinkrügen exportiert. Es geschah dies an Ort und Stelle und auch jetzt noch wird ein wenig davon auf den Bandainseln dargestellt und in Pisang- oder Palmenblätter eingehüllt in den Handel gebracht. Ich habe solche Ringel von c. 700 g Schwere 1889 aus Indien mitgebracht und noch 1894 erschienen 26 Steene (Blöcke) à 0,7 kg in Amsterdam. Das meiste wird aber in Europa (Holland, Deutschland) teils durch warmes Auspressen, teils durch Extraktion der minderwertigen Muskatnußsorten bzw. des Bruchs gewonnen. Die Darstellung der Muskatbutter erfolgt entweder in der Weise, daß man die gemahlenen Nüsse auf Haarsieben mit Wasserdampf erhitzt und dann zwischen erwärmten Platten auspreßt, das vom Wasser befreite Fett schmilzt und eventuell im Heißwassertrichter filtriert oder durch Pressen des Pulvers in erwärmten hydraulischen Pressen oder durch Extraktion mit Äther. Es ist Brauch sie in ¼, ½, ¾ oder 1 kg schweren, in Papier gewickelten Riegeln in den Handel zu bringen. Man erhält durch Auspressen der Samenkerne 20-23 (selten bis 28) % Fett -- auf den Molukken nur 12-14%. Das Rohmaterial zur Muskatbutterbereitung kann mit Zollrückvergütung eingeführt werden, wenn die Herstellung des Produktes und die Vernichtung der Rückstände unter Zollkontrolle erfolgt. =Lit.= ~Reinwardt~, Reis naar het oostelijk gedeelte van den ind. Arch. i. h. j. 1821. Amsterdam 1858. -- ~Van Gorkom~, Oostind. Cultures (auch Kultur auf Sumatra usw.). -- ~Semler~, Trop. Agrik. -- ~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpfl. -- ~Lumsdaine~, Cultiv. of nutmegs etc. in Bencoolen. Proc. agric. soc. Sumatra 1820. Pharm. Journ. II (1852) 516, ~Christy~, New Commerc. pl. -- ~Weddik~ und ~Teijsmann~, Notenmuskaat Kultuur op Java. Nat. Tijds. v. Ned. Ind. 2 (1839), 589. -- ~Seemann~, Hookers Journ. bot. 1852, 83. -- ~Oxley~, Some account of the nutmeg and its cultivat. Journ. Ind. Arch. 2 (1848) 641 u. (1856) 127. -- ~Crawfurd~, Dict. Ind. Islands 1856. -- ~Collingwood~, Nutmeg and other cultivat. in Singapore. Journ. Linn. Soc. bot. 10 (1869), 45. -- ~Eggers~, Die neuen Gewürzinseln (in Westindien). Naturw. Wochenschr. 1890, 121. -- ~Milburn~, Oriental Commerce London 1813. -- ~Warburg~, Die Muskatnuß. Ihre Geschichte, Botanik, Kultur, Handel u. Verwertung sowie ihre Verfälschungen u. Surrogate. Leipzig 1897. -- ~O. Kammerling Onnes~, Banda nutmegs and mace. Being an account of their history, cultivation, trade and use. Amsterdam 1899. -- Abbildungen des Koloniaal Museum. -- ~J. M. Janse~, de nootmuskaat cultuur in de Minahassa en op de Banda Eilanden. Med. Slands Plant. Buitenzorg 1898. 4 Tafeln. -- ~Tschirch~, Kalken der Muskatnüsse. Schweiz. Wochenschr. 1898. =Handel.= Im Handel finden sich (1911) besonders Banda-+Muskatnüsse+, weniger geschätzt sind die von Java und Menado, sowie von Westindien. Seit den siebziger Jahren des XIX. Jahrh. produziert auch Penang, Menado und Sumatra Muskatnüsse. -- Ende der achtziger Jahre schon gegen 1,5 Mill. --, die übrigen Produktionsorte siehe unter Kultur. Die Bandaernte geht meist über Makassar und Singapore. Viele Nüsse werden erst in diesen Hauptmuskathäfen (wie auch in Surabaja auf Java) aufgeklopft und gekalkt. Die ungeschälten Nüsse werden in Jutesäcken versandt, die geschälten in Kisten (zu 187 kg u. and.). Die Auslese oder eine erneute Auslese erfolgt in Amsterdam und London. Die Einteilung in gute (gave): +Vette+ und +middelbare+ (medium) und schlechte: magere (gerimpelte, inferior) und +geinfecteerde+ (aangestokene, d. h. wurmstichige) sowie +brokene+ (d. h. zerbrochene) hat sich aus der Zeit des Monopols bis heute erhalten. Die drei zuletzt genannten Sorten bilden die vorwiegend zur Muskatbutterbereitung benutzten sog. Ölnüsse (oil nuts) und gehen wohl auch unter dem Namen Rompen. Der Großhandel unterscheidet runde und längliche (diese besonders aus Westindien) Nuces moschatae majores mediae, minores. Die holländischen Marktberichte unterscheiden folgende Größen, Stück aufs kg: 150/160, 160/170, 170/180, 180/190, 190/200, 200/210, 210/220. Dies ist die teuerste Gruppe I (Preis c. 380-482 M pro 100 kg). Die zweite Gruppe umfaßt die Größen 220/230, 230/240 u. s. f. in Abständen von je 10 bzw. 20 Stück bis 380/400 (Preis c. 287-376 M). Auch der deutsche Großhandel unterscheidet bei den in Kisten à 30 oder 60 kg in den Handel gebrachten Bandanüssen die Sorten nach der Zahl der auf 1 kg gehenden Nüsse z. B. bei ~Grossmann~: 160/170 -- 210/220 -- 240/250 -- 300/320 -- 350/400 Stück pro kg. Die westindischen (in Fässern à 60-70 kg) haben meist 170/180 Stück pro kg. In Banda unterscheidet man von der +Macis+ die Sorten E, F, und G (C und D sind nicht mehr im Handel), E ist die beste. Dann unterscheidet man noch foelie separaat (vom Typus abweichend, nicht klassifiziert) und gruis. Die Macis von Java, Padang, Menado und Penang wird nicht so sorgfältig sortiert wie die von Banda. Man unterscheidet prima, secunda und separat. Die unreife, aus der geschlossenen, vom erkletterten Baume gebrochenen Frucht herausgelöste Macis heißt Klimmfoelie (d. h. durch klettern = klimmen) erhalten. Die Macis kommt in Fässern (aus Teakholz) à 150 kg oder in Kisten à 50 kg in den Handel. Man unterscheidet im deutschen Großhandel: extrafein fleischig und prima, hell sowie Macis grus (letztere in verschiedenen Qualitäten); im englischen: gute, ganze (good, gave E, F, G) und Grus (chips, gruis). Muskatnüsse und Macis werden in Amsterdam vierteljährlich verauktioniert, im Jahr etwa ¾-1 Mill. Nüsse und ¼ Mill. Macis. Außer Amsterdam sind Rotterdam, London und New York, weniger Hamburg Hauptmärkte. Die Gesamtweltproduktion schätzt ~Warburg~ (1897) auf c. 2 Mill. kg Nüsse und 0,5 Mill. kg Macis; davon entfallen 37,4% auf Banda, 19,6% auf Sumatra, 12,5% auf die Malaiische Halbinsel, der Rest auf Minahassa, Ambon, Westindien, Java, Halmaheira. Singapore exportiert etwa 2500-3500 piculs Nüsse jährlich, Java 1905: 243731, 1906: 277112 kg notenmuskat und 1905: 57176, 1906: 47012 kg foelie. In Penang, das 1860 391000 kg Nüsse und 131000 kg Macis exportierte, vernichtete eine Krankheit die Bäume in wenigen Jahren. Jetzt hat sich die Produktion wieder gehoben. +Ceylon+ exportierte 1906 nur 155 cwts nutmegs. Während zwischen 1888 und 1894 pro Jahr 485415-808400 kg echte Nüsse nach Holland kamen, betrug die Einfuhr langer nur 30345-76600 kg pro Jahr. 1889-1894 kamen jährlich zwischen 117775 und 197600 kg Macis nach Holland. +Holland+ importierte 1896: 1002000 kg Nüsse und 288000 kg Macis. 1902 kamen nach Holland 762280 kg Muskatnuß) (gewone not), 55910 kg Papuanuß, 203255 kg Foelie und 310 kg Papuamacis (~Gorkom~, Specereijen in Beschr. Catal. Kolon. Mus. Haarlem 1903). 1909 betrug die Einfuhr von Notemuskaat: 1151 t, 1910: 1060 t. +Deutschland+ importierte 1909: 5963 dz +Muskatnüsse und Macis+, besonders aus Nied. Indien etwas (521 dz) auch aus Brit. Indien, 1910: 6011 dz. und Muskatbutter (via Holland): 1908: 1100 kg, 1909: 1300 kg, 1910 (via England) 2900 kg (~Tunmann~). +Hamburg+ importierte 1908: 1706 dz +Muskatnüsse+, davon kamen aus Nied. Ostindien: 266 (über die Niederlande: 883), aus Brit. Ostindien: 256, Singapore: 173 dz. Hamburg erhielt: 1907: 89500, 1908: 170600, 1909: 179100 kg Muskatnüsse und 1907: 73200, 1908: 94000, 1909: 68900 kg Macis (~Tunmann~). +London+ 1908: 10411, 1909: 10725 Kisten Nutmegs und 1908: 1153, 1909: 1272 Kisten Macis. +New York+ ist nächst Amsterdam der zweite Muskatmarkt der Erde. Die +Vereinigten Staaten+ importierten 1908: 2043470, 1909: 2644791 pounds nutmegs und 1908: 425183, 1909: 653610 pounds mace. Ausführliche Angaben über den Handel in früherer Zeit in ~Warburg~, Muskatnuß 1897. [Illustration: Fig. 211. _Myristica fragrans_ ~Houtt~. Frucht durch einen Längsschnitt geöffnet. frs Fruchtschale, Ar Arillus, ss Samenschale. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] =Morphologie.= Bei einem Gewicht von 60 g kommen auf das Pericarp 48,3, auf den Arillus 2,1, die harte Schale 2,9 und den Samenkern 6,7 g (~Reinwardt~). Die rundlich-ovale Beerenfrucht ist gelb oder rot überhaucht und glatt, 3-6 (selten bis 7,5) cm lang, frisch c. 45-62 g schwer und besitzt beiderseits eine Furche, in der die Frucht zweiklappig aufspringt, +die Spitze liegt meist etwas exzentrisch+. Innerhalb des fleischigen, etwa 1 cm dicken, zusammenziehend schmeckenden Pericarps liegt der Arillus, der bei der unreifen +geschlossenen+ Frucht gelblich-weiß ist, reif tief karminrot wird. (Nur selten bleibt er dauernd elfenbeinfarben.) Er umschließt die Basis des Samens becherartig und ist nach oben in 10-15 flache Lappen zerschlitzt (Fig. 211). Schon ~Massimiliano~ vergleicht ihn mit einem Netz, das die Frucht umhüllt. Da er sich früher bildet als die Samenschale ihre definitive Gestalt und Härte erreicht hat, so zeigt diese, der der Arillus in der Frucht fest anliegt, die Abdrücke desselben. Der Same ist in der Form und Größe variabel, meist breit-elliptisch oder eiförmig und 1,5 bis 4,5 cm lang und 1-2,5 cm breit. Die harte Samenschale ist tief dunkelbraun, schwach glänzend. An der Basis, dort wo der Arillus angewachsen ist, sieht man das Hilum als ovalen hellen Fleck und die Mikropyle als kleines dunkles Loch, vom Hilum streicht die Rapherinne bis fast zur Spitze, wo die Chalaza in Form eines exzentrisch gelegenen Buckels sich findet. Der hell-zimtbraune, bei den gekalkten Nüssen weiß bestäubte +Samenkern, aus dem allein die Droge besteht+, ist 10-33 (meist 20-30) mm lang (die kleinsten 10-11, die größten 33 mm ~Warburg~) und 15-28 (meist 15-20) mm breit. Sowohl der Arillus wie die Samenschale bis zum Primärperisperm sind abgelöst. Der Samenkern ist bedeckt von der inneren Schicht des Primärperisperms und der vom Meristem nach außen erzeugten Schicht des Sekundärperisperms, von dem auch die braunen Zapfen gebildet werden (~Voigt~), die dem Querschnitt und Längsschnitt ein so charakteristisches Aussehn geben (Fig. 212). Diese Ruminationsfalten wurden im XVII. Jahrh. vielfach mit arabischen Schriftzügen (literae arabicae) verglichen. An den Stellen, wo die Zapfen sich an das übrige Perisperm ansetzen, welche Stellen den vertieften Stellen der Furchen der runzeligen Außenseite entsprechen, verläuft ein Bündel. Diese Bündel anastomosieren untereinander und bilden, da sich der Kalk hauptsächlich in den vertieften Stellen absetzt, das helle Netzwerk, welches der Oberfläche der Muskatnüsse das eigenartige Ansehn gibt. Die Stelle, wo beim Ovulum die Mikropyle liegt, ist auch am Samenkerne deutlich sichtbar (Fig. 212 Mp). Kurz vor der etwas seitlich gelegenen Basis, dem Hilumsende des Samens, endigen die Perispermalbündel blind. Es folgt nun eine ovale Rinne und dann ein breiter heller Buckel, der die Lage des zweiten Integumentes markiert. In der Mitte des Buckels ist die Mikropyle als ein kleines rundes Loch oder Spitzchen zu sehen. Hier erfolgt auch der Austritt des Keimlings bei der Keimung. Von dem Buckel geht eine seichte, dem Raphebündel der Samenschale entsprechende Furche zu der Stelle am anderen Ende des Samenkerns, die der Chalaza entspricht. Diese gleichfalls exzentrisch gelegene Stelle ist durch eine dunklere Vertiefung markiert, in der ein Spitzchen sichtbar ist: das Ende des hier abgelösten Raphebündels. Auch der Keimling liegt etwas exzentrisch. Er ist bei der Droge meist stark geschrumpft, oder ganz geschwunden. Die Cotyledonen bilden einen gelappten Becher. Ihre Endzipfel ragen in die Keimbahn hinein. Die besten Nüsse sind rund (bzw. eiförmig) und glatt (d. h. wenig geschrumpft). [Illustration: Fig 212. _Semen myristicae_ von außen, quer und längs durchschnitten, das Albumen ruminatum und die Leitbahnen zeigend. [Nach +Tschirch-Oesterle+ Atlas.]] Bisweilen kommen, wenn 2 (oder 3) Ovula angelegt wurden, 2 (oder 3) Samen zur Ausbildung (+Zwillingsnuß+, pala bakamar -- schon von ~Clusius~ erwähnt und in ~Nic. Schultzes~ Dissertatio de nuce moschate 1709 abgebildet). Solche Muskatnüsse, die man neuerdings viel im Handel findet, sind nicht rund, sondern plankonvex. -- Andere Abnormitäten sind: die nur erbsen- bzw. pfefferkorngroße und nur c. 0,15 g schwere sog. +Königsnuß+, pala radja, die schon im Museum Wormianum 1655 _Nux moschata regia_ genannt wird; sie besitzt meist einen relativ dicken Arillus. -- Die samenschalenfreie +Diebsnuß+ (pala pentjuri), die nur zur Hälfte mit Arillus bedeckte +Pfaffennuß+ (pala domine) und die nach ~Warburg~ von monözischen Bäumen stammende pala boy. -- Rompen, Rumpfnüsse, Rümpfe (pala rumpi) sind unreif abgefallene oder vom Winde vorzeitig heruntergeschlagene, stark schrumpfende Samen, die seit dem XVII. Jahrh. zur Darstellung von _Ol. nucistae_ benutzt werden (~Rumph~) und zu diesem Zwecke (als «Ölnüsse») auch heute noch exportiert werden. Der trockene Arillus, die Macis, ist an der Basis becherartig geschlossen, hier auch etwas dicker, nach oben hin ist er in zahlreiche Lappen zerschlitzt, die sich bisweilen übereinanderschieben, aber niemals zu einem so festen Knäuel wie bei der Bombay-Macis (Fig. 216), wo an der Spitze des Samens ein fester Kegel dicht über- und durcheinander geschobener Arillarlappen liegt. Etwas unterhalb der Stellen, wo die Lappen sich zerschlitzen, zeigt der Arillus schon tiefe Längsfurchen. Die Droge ist gelbbräunlich, sehr brüchig. Sie quillt in kaltem Wasser wenig. Die Oberfläche erscheint, mit der Lupe betrachtet, streifig punktiert. «Die Streifen verlaufen der Länge nach an den Zipfeln, allmählich schräge und fast konzentrisch gegen die Spitze sich aufrichtend» (~Vogl~). Bisweilen ist der Arillus bleichgelb und rot gesprenkelt (pala kakerlak) oder ganz weiß (weiße Muskat, pala putieh, p. holanda). Oft sind gute Nüsse von spärlicher Macis umgeben und spärliche Nüsse von kräftig entwickelter (~v. Hogendorp~). =Anatomie.= In der Korolle und dem Blütenstiel finden sich neben Ölzellen Astrosklereïden und gestreckte Milchröhren. Die etwa 10 mm dicke Fruchtschale der reifen Frucht ist mit eigenartigen, sympodial sich verzweigenden (~Warburg~) Sternhaaren bedeckt und enthält neben Astrosklereïdennestern, die den äußeren Schichten eine ziemliche Härte verleihen, zahlreiche, reich verzweigte Milchröhren mit braunem Inhalt (Kinoschläuche). Diese «Kinoschläuche», die zuerst von ~Tschirch~ (1888) und ~Hällström~ im Pericarp beobachtet und abgebildet wurden, finden sich auch in der Rinde, der Markscheide, der Blütenstandsachsen, im Perigon, den Staubfäden und den Cotyledonen (~Warburg~). [Illustration: Fig. 213. _Myristica fragrans_ ~Houtt~. 1 Querschnitt durch den Arillus (Bandamacis). 2 Isolierte Amylodextrinstärkekörner. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Der +Arillus+, die Macis, wird frühzeitig, schon in der noch ungeöffneten Blüte, angelegt. Er entspringt sowohl vom Funiculus wie vom Exostomrande, ist also eine Zwischenform zwischen Arillus und Arillodium. Schon bei einem 2,5 mm großen Samen stoßen seine Lappen an der Spitze des Samens zusammen. Der farbige Arillus zeigt an seiner Basis ein vertieftes ovales Feld mit den Eintrittsstellen der Gefäßbündel. Er ist beiderseits von einer Epidermis bedeckt, deren sehr langgestreckte (300-600 mik ~Vogl~), an den Enden meist zugespitzte, im Querschnitt rechteckige oder tangential (nie radial) gestreckte Zellen auf der Außenseite stark, aber auch auf der Innenseite verdickt sind. Die Verdickungsschicht besteht aus Cellulose und quillt stark. Bisweilen findet sich an der Basis des Arillus und hier, wie überhaupt (oft bis zur Mitte) die Innenseite bevorzugend, ein ein- oder mehrschichtiges Hypoderm (_Papuamacis_ [vgl. S. 690] zeigt beiderseits reichlich Hypodermbildung). Das Grundgewebe besteht aus dünnwandigem (bei _Papuamacis_ dickwandigem) Parenchym, dessen Zellen zahlreiche rundliche, scheiben- oder stäbchenförmige, bisweilen wulstig verbogene, 1,5-10 mik lange Amylodextrinstärkekörner (~Tschirch~) enthalten, die in Ölplasma (?) eingebettet sind. Sie färben sich mit Jod rotbraun, quellen in Wasser, besonders warmem, und lösen sich in siedendem. Die kolloidale Lösung färbt sich mit Jod rot. Ich habe während meines Aufenthaltes in Buitenzorg (1888) Amylodextrinstärke auch in den Arillen anderer _Myristica_arten gefunden (s. weiter unten). Im frischen Arillus findet sich, wie ich 1888 in Buitenzorg feststellte, in allen oder doch den meisten Amylodextrinzellen ein roter Farbstoff. Geht der Arillus in Fäulnis über, was bei auf den Boden fallenden Früchten rasch eintritt, so scheidet sich der Farbstoff in roten Kristallen (Nadeln, Blättchen) aus, die ich übrigens auch einige Male im frischen Arillus fand. Das Auftreten der Amylodextrinkörner geht mit dem Erröten des Arillus Hand in Hand. Der junge, noch in der unreifen Frucht eingeschlossene Arillus ist bleich und enthält keine Amylodextrinstärkekörner. Der geruchlose Arillus von _Myr. glauca_ u. _Myr. silvestris_ enthält rote Chromatophoren; Jod färbt die Farbstoffkristalloide erst blaugrün, dann gelb. Bei dem Arillus von _Myr. glauca_ färbt Jod die roten Chromatophoren erst blau, dann blaugrün (~Tschirch~). Eingebettet in das Grundgewebe finden sich regellos verteilt, jedenfalls nicht die Randschichten bevorzugend, meist einzeln, selten zu 2-3gliedrigen Gruppen vereinigt, bis 105 (meist c. 70) mik große, bisweilen noch Öltropfen enthaltende, meist aber leere +Ölzellen+ mit verkorkter Wand und deutlicher resinogener Schicht (~Tschirch~) und innerer Haut. Die resinogene Schicht wird durch Alkalien braun, Kalipyrochromat und Chromat färbt nur wenig. Zahlreiche kleine (Spiralgefäße führende) Gefäßbündel, die oft stark obliteriert sind, durchziehen das Gewebe in der Längsrichtung. Bei der Bombay-Macis (s. d.) enthalten die inneren Ölzellen ein gelbes, durch Ammoniak grünlich werdendes, die äußeren ein gelbrotes Sekret, das durch Ammoniak orange- bis rubinrot sich färbt. Kali löst das Sekret vollständig. Im mit Alkohol betupften Schnitt färbt Kalipyrochromat die Sekretzellen braunrot bis braunschwarz, Barytnitrat schwach blutrot. Papuamacis ist arm an Ölzellen. Sowohl Bombay- wie Papuamacis enthalten Amylodextrinstärkekörner. Bei der erstgenannten sind die Körner etwas größer (3,5-10 mik) und mehr rundlich, bei der zweiten 3-13 mik, knochenförmig, viereckig oder rundlich (vgl. auch weiter hinten). Das +Pulver der Macis+ besteht vorwiegend aus den Amylodextrinstärkekörnern. Im Chloralpräparat werden Spiralgefäße, Epidermiszellen und Fragmente der Ölzellen sichtbar. Stärke fehlt. Doch sah ich einige Male Reste der stärkeführenden Samenschalepidermis, die beim Ablösen der Macis von der Samenschale mit abgerissen wird. Die meiste Macis wird gemahlen. Das Pulver gilt um so besser, je heller es ist. Der Fruchtknoten enthält nur ein anatropes Ovulum. Das äußere Integument ist zurückgezogen, ausschließlich das innere, nur bis zur Hälfte des Nucellus reichende bildet die Mikropyle. Der Same geht aber hauptsächlich aus dem nur vom äußeren Integumente bedeckten hinteren Teile des Ovulums hervor (Details im Anatomischen Atlas). Auch die äußere Samenschale ist also im überwiegenden Teile des Samens ein Produkt des äußeren Integumentes und an der Bildung der inneren Samenschalpartien beteiligt sich nur an der Spitze des Samens das innere Integument, im übrigen sind sie Bildungen des Hüllperisperms. Die äußere Samenschale zeigt vier Schichten (vgl. Fig. 214): Eine äußere, von einer auch im reifen Samen oft noch Stärke führenden Epidermis bedeckte Parenchymschicht, in der die Gefäßbündel verlaufen, eine einreihige Schicht dünnwandiger Palissaden (Außen- oder Nebenpalissaden), eine breite Schicht hoher, stark verdickter Palissaden (Innen- oder Hauptpalissaden) und eine Reihe von Querfasern (diese fehlen bei _Myristica argentea_). Im bei weitem größten Teile des Samens gehen die Querfasern aus der Epidermis des Nucellus bzw. Perisperms, die Innenpalissaden aus der inneren Epidermis des äußeren Integumentes und die Außenpalissaden aus der unter dieser liegenden subepidermalen Zellreihe hervor. Nur dort, wo das innere Integument liegt, geht die Querfaserschicht aus der äußeren Epidermis dieses Integumentes hervor und nur in einem ebenfalls kleinen Gebiete um die Chalaza beteiligt sich auch die subepidermale Zellage des Nucellus an der Bildung der Mittelschicht. Die 850-950 mik hohen, 15-19 mik breiten Innenpalissaden zeigen meist stark spiralleistenförmig verdickte Wände und führen Oxalatkristalle. Sie sind ungleich hoch, so daß die Außenseite dieser Schicht Berge und Täler bildet. An den Stellen, wo die Wellenberge liegen, führen die dort kurzen Außenpalissaden gewöhnlich braunen Inhalt, im unreifen Samen Gerbstoff. An der Spitze des Samens liegt an der Stelle, wo die Mikropyle lag, ein die beiden Integumente durchsetzender Kanal, der der Radicula bei der Keimung als Austrittsöffnung dient. An der Basis des Samens, der Chalaza, tritt das Raphebündel durch eine ovale Öffnung in das Innere des Samens ein. [Illustration: Fig. 214. _Myristica fragrans_ ~Houtt~. 1 Samenschale (1-6) und Hüllperisperm (pPsp Primärperisperm, sPsp Sekundärperisperm). 2 Ein in das Endosperm (End) eindringender Hüllperispermzapfen. [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Die sog. innere Samenschale, von der allein der Samenkern, die Muskatnuß des Handels, bedeckt ist, geht im größten Teile des Samens nicht aus Teilen der Integumente hervor, sondern ist eine Bildung des Nucellus resp. Perisperms, also keine echte Samenschale (~Voigt~, Details im Anatom. Atlas). In diesem sog. Hüllperisperm (~A. Meyer~) entsteht nämlich in den inneren Schichten ein Meristem und dieses erzeugt Sekundärperispermschichten. Die eigenartigen Zapfen und Leisten, die zu den sog. Ruminationsfalten des Samens werden, sind Bildungen dieses Sekundärperisperms. Das ringsumlaufende Primärperisperm ist hell und bündelfrei und besteht aus Parenchymzellen, die nicht alle Phlobaphen führen. Das kleinzelligere äußere, ringsumlaufende Sekundärperisperm ist mit Phlobaphenen erfüllt und führt aus nachträglich angelegten Procambiumsträngen entstehende Gefäßbündel, und zwar ausschließlich an den Stellen, von denen die Zapfen abgehen. Dies Sekundärperisperm ist aber nur der äußere Teil des von dem Meristem gebildeten Gewebes. Der nach innen zu abgeschiedene Teil wird bis auf geringe, am Rande der Zapfen sichtbar bleibende Reste nachträglich wieder resorbiert. Die Ruminationszapfen werden viel früher angelegt als das Endosperm. Ich fand noch in ziemlich weit entwickelten Samen das ganze schon reich gekammerte Innere von einer milchigen Flüssigkeit erfüllt. Erst ganz zuletzt wird vom Rande der Zapfen her das Endosperm angelegt, und erst wenn die Frucht aufspringt, beginnt sich der Inhalt der Endospermzellen zu differenzieren. Die von den Zapfen her gebildeten Endospermstreifen stoßen in der Mitte zusammen und verwachsen hier. Diese der Quellschicht bei anderen Samen entsprechende Zone zeigt auch hier ein abweichendes Verhalten. Während die übrigen Endospermzellen außer Stärke und Aleuron reichlich Fett enthalten, ist in dieser Zone, die in Form weißer, den Ruminationszapfen in einiger Entfernung folgenden Linien auf jeder durchsägten Muskatnuß sichtbar ist, nur Stärke vorhanden. Diese Linien sind, wie ich gezeigt habe, die +Keimbahnen+, auf denen die als Saugorgane dienenden Lappen der in das Endosperm eindringenden Cotyledonen bei der Keimung des Samens wandern, ernährt von der sich lösenden Stärke. Das ganze Endosperm ist beim frischen Samen farblos, weiß oder hornartig-fettglänzend. Es zeigt, herauspräpariert, wie ich mich in +Indien überzeugte+, keinerlei Geruch und besitzt einen nußartigen Geschmack. Dort, wo der Embryo liegt, wird nicht nur kein Sekundärperisperm gebildet, sondern sogar das Nucellusgewebe vollständig resorbiert, das innere Integument, das hier an der Bildung der Samenschale teilnimmt, grenzt unmittelbar an den Embryo. Die Droge, d. h. der Samenkern, zeigt also, wenn man sie der Länge nach median durchsägt, folgendes Bild (Fig. 212). Zu äußerst liegt das Primärperisperm (Hüllperisperm I), ein aus gestreckten, dünnwandigen, verholzten Zellen bestehendes, bisweilen Phlobaphenmassen enthaltendes Gewebe, in dem sich (bisweilen korrodierte) +Kristalle in Form+ von Prismen, Blättchen, Wetzsteinen oder Zwillingen finden (Weinstein?). Die äußersten Zellen enthalten bei der gekalkten Droge sehr kleine Kalkkörnchen. Auf das Primärperisperm folgt das sich, da kleinzelliger, gut abhebende, äußere Sekundärperisperm (Hüllperisperm II), das, da es reich an Phlobaphenen ist, die natürlich braune Farbe der ungekalkten Muskatnüsse bedingt. Die Ruminationszapfen führen im unreifen Samen Stärke, im reifen frischen Samen zahlreiche große, oft aneinander stoßende Ölzellen, die ganz von einem hellgelben Öle erfüllt sind (Fig. 214). In der Droge besteht das Ruminationsgewebe aus meist leeren Zellen mit braunen Wänden, die infolge Infiltration resistent sind gegen Schwefelsäure. Die Endospermzellen enthalten eingebettet in bisweilen in Nadeln oder Blättchen auskristallisiertes +Fett+ (resp. Ölplasma), meist je ein durch Cochenille tingierbares (~Vogl~) +Aleuronkorn+ mit oft vortrefflich rhomboëdrisch oder in Form einer sechsseitigen Tafel ausgebildetem, oft lichtgelb gefärbtem Kristalloid (abgebildet bei ~Busse~ und im Anatom. Atlas) -- Globoide sind sehr selten --, sowie einfache oder zu 2-12 (selten bis 20) zusammengesetzte 3-18 (meist 10) mik große, mit einem Spalt versehene +Stärkekörner+. Die Stärke der Leitbahnen ist kleiner. Stärkearme und fettreiche Samen besitzen die am besten ausgebildeten Aleuronkörner. Bisweilen werden die großen Aleuronkörner von einigen kleinen begleitet. Hier und da finden sich im Endosperm gebräunte Zellen. Diese enthielten im unreifen Samen Gerbstoff. Das +Pulver der Muskatnuß+ bietet wenig Charakteristisches. Es besteht vorwiegend aus Stärkekörnern und Fettschollen. Erhitzt man das Pulver mit Chloral, so erscheint das ganze Präparat mit Öltropfen übersät, die beim Erkalten kristallinisch erstarren. Gefäßbündelfragmente und Fetzen des Hüllperisperms finden sich allenthalben zerstreut. =Lit.= ~Berg~, Anat. Atlas. -- ~Flückiger~, Arch. Pharm. 1871, 31. -- ~Voigt~, Bau u. Entwickl. d. Samens u. Samenmantels von Myr. fragr. Diss. Göttingen 1885 und Bau u. Entw. von Sam. mit ruminiert. Endosp. usw. Ann. Jard. Buitenz. 7 (1887) 151. -- ~A. Meyer~, Wissensch. Drogenkunde. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anat. Atlas t. 56 und 57. -- ~Busse~, Gewürze, Arbeit. d. kaiserl. Gesundheitsamtes 11 (1895) 390 und 12 (1890) 628. -- ~Tschirch~, Ges. naturforsch. Freunde 1887, Ber. d. Botan. Ges. 1888 und Angew. Anatomie. -- ~Tschirch~ (Keimungsgesch.), Ber. d. pharm. Ges. 1894, 260. -- ~Hallström~. Vgl. anat. Stud. über d. Samen d. Myristicac. (in ~Tschirch~, Indische Fragmente). Arch. Pharm. 1895 mit 3 Taf. -- ~Lüdtke~ (Aleuron), Ber. d. pharm. Ges. 1891, 56. -- ~Planchon~, Devel. et caract. d. vrais et d. faux arilles Ann. sc. nat. (3) 3, 303. -- ~Baillon~, Sur l’origine du macis etc. Compt. rend. 78, 799. Adansonia 5 (1870) 177, 11 (1876), 329 und Dict. d. botan. I (1876), 258. -- ~Tschirch~, Tagebl. d. Straßburger Naturforschervers. 1885. -- ~Warburg~, Haarbild. d. Myrist. Ber. d. bot. Ges. 1895. -- ~Planchon-Collin~, Drogues simpl. I, Fig. 315-320. -- ~Hartwich~ in Pharm. Praxis II, Fig. 41-49. -- ~Villiers et Collin~, Subst. aliment. -- ~Moeller-Winton~, Mikroskopie, Fig. 385 bis 395. -- ~Vogl~, Kommentar. -- ~Goltsinski~, Myr. fragr. Dissert. Moskau 1894 (russisch) m. 7 Taf. -- ~Pfeiffer~, D. Arillargeb. d. Pflanzens. Engl. bot. Jahrb. 13 (1891) 524. -- ~Costerus~, Double nutmegs. Ann. jard. bot. Buit. XV 1898, 40. -- ~Janse~, Ann. jard. bot. Buitenzorg 1899, 17. -- ~Kraemer~ (Pulver), Proc. Amer. Pharm. Ass. 1898, 327. -- Abbild. auch in ~Rosen~, Anatom. Wandtafeln t. 27. -- ~Hassak~, Wandtaf. für Warenkunde t. 6. =Chemie.= Das +Pericarp+ enthält 17,8% Wasser, 8,6% durch Äther Extrahierbares, 46,3% in Wasser lösliche Substanzen (darin Gerbstoff) und 1,7% Weinsäure (~Fromberg~). Die Samenkerne, die =Muskatnüsse=, enthalten im Durchschnitt in Prozenten: Wasser 7,38 (4,2-12,2), Stickstoffsubstanz 5,49 (5,2-6,1), äther. Öl 3,05 (2,5-4), Fett 34,27 (31-37,3 resp. 32,2 ~Frühling~), Alkoholextrakt 11,98, stickstofffreie Extraktstoffe inkl. Stärke 37,19 (29,9-41,8), Rohfaser 9,92 (5,6-12), Asche 2,7 (2,2-3,3) (~König~ 1-4%), obere Grenzzahl (nach ~Hauke~) 3,5%; die Praxis verlangt als Maximum der Asche: 5%. Nach neueren Bestimmungen enthalten die Nüsse 8 bis 10%, äther. Öl (~Schimmel & Co.~) und 30-40% Fett. ~Busse~ fand 30,3 bis 40,5% Fett (nur bei der geringsten Sorte 15,65%), ~Greshoff~ 27,5-42,8%. «Trockenverlust»: 9,3-15%, Gesamtasche: 1,7-4,6% (bei Ölnüssen bis 6,7%). Gerbstoffe sind nur wenig vorhanden. Der alkoholische Auszug färbt sich mit Eisenchlorid kaum dunkler. Muskatnuß enthält wechselnde Mengen +Stärke+ (nach ~König~ 23,67%), sowie 1,52% +reduzierenden Zucker+ und 0,56% +Saccharose+ (~Bourquelot~). Ferner ein +Xylan+ (~Brachin~), eine +Lipase+ (~Mastbaum~), ein +Saponin+ (~Dekker~) und +Farbstoffe+. (Vgl. auch weiter unten unter Preßkuchen.) Magere Nüsse haben ein spez. Gew. = 1,059, middelbare 1,070, vette 1,115. Diese sinken also in Wasser von 15° unter. Die +Samenschalen+ enthalten 1% Fett, 2,2% Asche und 62,6% «Cellulose» (~Ranwez~). Die =Muskatbutter= (Muskatfett, Oleum s. butyrum s. balsamum nucistae, Ol. nuc. moschatae expressum, Ol. myristicae, beurre de muscade -- butter of nutmeg, expressed oil of nutmeg -- notenzeep, bandazeep, muskaatzeep, notenvet) bildet ein bräunlichgelbes bis rötlichbraunes festes Fett von der Konsistenz eines weichen Talgs, muskatartigem Geruch und bitterem Geschmack. Durch langes Mazerieren mit Alkohol kann es fast farblos und geruchlos erhalten werden, da die Fettsubstanz in kaltem Alkohol wenig löslich ist, Riech- und Farbstoffe dagegen sich darin lösen. In 4 (nach ~Dieterich~: 10-12) Teilen siedendem Alkohol ist es bis auf die bisweilen darin vorkommenden Pflanzenreste löslich, ebenso in Äther, Chloroform und Benzol. Letzteres läßt den größten Teil der Farbstoffe ungelöst. Bei 45-51° schmilzt es zu einer rotbraunen, trüben Flüssigkeit, die keinen merklichen Bodensatz zeigen darf (Ph. helv. IV). Mikroskopisch betrachtet zeigt die Muskatbutter reichlich Kristallnadeln von Myristin, bisweilen auch Gewebsreste des Samens und Stärkekörner. Beim Einlegen in die ~Hartwich-Uhlmann~sche Kali-Ammoniakmischung entstehen große sternförmige Konglomerate kurzer, derber Kristallnadeln. Die Muskatbutter ist ein nicht immer konstantes Gemisch von +Fett+, +ätherischem Öl+ und «+Farbstoff+». Letzterer ist seinerseits wieder ein Gemisch verschiedener, nicht näher bekannter Körper. ~Koller~ fand (1864) in %: Äther. Öl 6, Myristin 70, «Elaïn» 20, saures Harz 3, «Butyrin» (nebst Spuren flüchtiger Säuren) 1. Das +Fett+ besteht zu c. 45% aus +Myristin+ (Sericin, ~Playfair~), dem +Glycerinester+ der von ~Playfair~ 1841 entdeckten +Myristinsäure+ (C₁₄H₂₈O₂). Behandelt man das Fett mit kaltem Alkohol, so bleibt das Myristin zurück und kann durch Umkristallisieren aus Äther in bei 55° schmelzenden Kristallen erhalten werden. Der in kaltem Alkohol lösliche Teil besteht vorwiegend aus +Olein+. ~Power~ und ~Salway~ fanden 1908 in ausgepreßtem Muskatfett in % (außer 12,5% äther. Öl): +Trimyristin+ 73,0, +Olein+ 3,0, +Linolsäureglycerid+ 0,5, sehr wenig +Ameisensäure+-, +Essigsäure+-, +Cerotinsäure+-Ester, Unverseifbares 8,5, Harz 2. In dem Unverseifbaren ist (zu 5% des Ganzen) eine Substanz C₁₈H₂₂O₅, dann +Myristicin+ (C₁₁H₁₂O₃) und eine kleine Menge +Phytosterol+, C₂₀H₃₄O (F. = 134-135°), enthalten. +Stearinsäure+ (~Römer~) fehlt. Muskatbutter zeigt folgende Konstanten: +Spez. Gew.+ 0,95-1,04 (~Reinwardt~), 0,945-0,996 (~Dieterich~), meist 0,990-0,995. Schmelzpunkt: 41,5-48° (bis 51° ~Uricoechea~), 33-57° (~Dieterich~). Erstarrungspunkt: 41,5-42 (~Rüdorff~, ~Wimmel~). Verseifungszahl: 134,5-178, also stark schwankend. V. Z. h.: 153,3-196,1 (~Dieterich~). Säurezahl: 14-44,8, bisweilen aber auch 56-86,8, ja 93,2, 118,8 u. 125 (~Dieterich~). Jodzahl: 33,3-57,3 (~Dieterich~), 48-65,1 (~Wijs~). Die Schwankungen in der Jodzahl rühren nicht von dem ätherischen Öl her (~Lewkowitsch~). Brechungsexponent bei 40°: 1,4700-1,4705 (~Utz~). Butterrefraktometer bei 40°: 66,4-67,2 Skalenteile (~Utz~). Erstarrungspunkt der Fettsäuren: 40° und Schmelzpunkt derselben 42,5 (~Hübl~). Die sog. «Konstanten» sind also sehr inkonstant. +Mit Äther extrahiertes Fett+ zeigte spez. Gew.: 0,996, Schmelzpunkt: 51°, Säurezahl: 22,4, Verseifungszahl: 154-159,6. Das durch Pressen erhaltene Öl ist nicht ganz identisch mit dem durch Extraktion erhaltenen, wennschon ziemlich ähnlich. Denn ~Power~ und +Salway+ fanden 1908: ----------------+--------+------------+------------------+------------ | Ausge- | Mit Äther |Ausgepreßt. Fett | Gesamte |preßtes |extrahiertes| | | Fett | Fett |frei von äther. Öl| Fettsäuren ================+========+============+==================+============ Schmelzpunkt | 48° | 50° | 49° | 49° Dichte 50°/50° | 0,9399| 0,9337 | 0,9443 | 0,9012 Säurezahl | 11,2 | 12,9 | 14,0 | 218,3 Verseifungszahl |174,6 | 180,5 | 199,6 | -- Jodzahl | 57,8 | 45,7 | 35,7 | 23,1 ⅔ des ätherischen Öls des Samenkerns treten in das Fett über (~Reinwardt~), welches wenigstens 4-8% ätherisches Öl zu enthalten pflegt. Das =ätherische Öl= der Muskatnüsse und der Macis ist «kaum zu unterscheiden». Die Unterschiede sind nur quantitative (~Schimmel~). ~Koller~ erklärte sie für identisch (?); doch hat das Macisöl ein etwas höheres spez. Gew. und ein etwas anderes Drehungsvermögen als Muskatnußöl [Macisöl: 0,890-0,930 αD = +10-20°. Muskatnußöl: 0,865-0,920 αD = +14-30°]. Das Muskatnußöl enthält mehr Terpene (~Schimmel~). Im Handel gehen beide unter dem Namen Macisöl. Aber es ist unzulässig das Öl der Muskatnüsse dem Öl der Macis einfach zu substituieren und ganz unzulässig (D. A. IV) das Wort Muskatnußöl als synonym mit _Ol. Macidis_ anzuführen oder (D. A. V) das Öl der Samenkerne ebenfalls _Ol. Macidis_ zu nennen, auch wenn man die Drehung auf αD 20° = +7°- +30° und das spez. Gewicht auf 0,870-0,930 erweitert. Es enthält +Pinen+ (~Schacht~), (~Wallach~, ~van Romburgh~ = Macen), +Dipenten+ (~Semmler~, Myristicen ~Gadstone~ ist ein Gemisch von Dipenten und Pinen). Cymol (~Wright~) fehlt (~Semmler~) oder ist vielleicht aus dem +Myristicol+ (C₁₀H₁₆O ~Wright~, ~Gladstone~), das wohl kein Individuum ist, entstanden, dem aber ~Brühl~ die Formel: C₃H₇ C₃H₇ C C / \\ // \ HC CH HC CHOH || | oder | | HC CHOH HC CH₂ \ / \\ / C C CH₃ CH₃ gibt. In den höher siedenden Anteilen: +Myristicin+ (C₁₁H₁₂O₃) nach ~Semmler~: CH₂--CH = CH₂ | C / \\ HC CH || | CH₃OC CO \ / \ C CH₂ O / nach Macis riechend -- vielleicht aus einem primär vorhandenen flüssigen Phenoläther erst bei der Verarbeitung entstehend. ~Salway~ schreibt die bei der Oxydation entstehende Myristicinsäure: COOH C / \\ COOHC CH || | CH₃O.C CO \ / \ C CH₂ O / (das Myristicin von ~John~ und ~Mulder~ ist Myristinsäure, ~Flückiger~). In den zuletzt übergehenden Anteilen findet sich ein +Phenol+ (~Semmler~). Bei der Destillation des Öls geht oft Myristinsäure über (~Flückiger~). ~Power~ und ~Salway~ fanden im Öl (1907): +Eugenol+ und +Isoeugenol+ (c. 0,2%), d-+Pinen+ und d-+Camphen+ (c. 80%), +Dipenten+ (c. 8%), d-+Linalool+, d-+Borneol+, i-+Terpineol+, +Geraniol+ (zusammen c. 6%), einen neuen +Alkohol+, der bei der Oxydation ein Diketon (C₈H₁₄O₂) gibt, einen citralähnlichen +Aldehyd+, +Safrol+ (c. 0,6%), +Myristicin+ (c. 4%), +Myristinsäure+ (0,3%, etwas auch als Ester), dann Ameisensäure, Essigsäure, Buttersäure, Octylsäure und eine neue Säure, C₁₃H₁₈O₃, alle als Ester. +Myristicol+ halten ~Power~ und ~Salway~ +für ein Gemisch, in dem Terpineol vorwaltet+. ~Schimmel & Co.~ destillierten 1893 bedeutende Mengen Muskatnußöl, zum Teil aus den Preßrückständen der Muskatbutterbereitung. Im +Preßkuchen+ fanden ~Power~ und ~Salway~ die Bestandteile des Muskatfettes wieder, speziell +Phytosterol+, die Substanz C₁₈H₂₂O₅, +Myristinsäure+ und +Trimyristin+, +Essigsäure+, +Cerotinsäure+, +Eugenol+, +Isoeugenol+, +viel+ d-+Glukose+, Gerb- und Farbstoffe, sowie Harze, endlich als neu eine sehr geringe Menge +Diacetylpuranol+ (C₂₃H₃₈O₄[COCH₃]₂). =Banda Macis.= Banda Macis enthält in Prozenten: Wasser: (4,9) 17,59-18,21, Protein: (4,6) 5,44-7,8, Fett: 18,6-29,1, äther. Öl: 3,37-5,26. In Zucker überführbare Stoffe: 41,2-44,59, Alkoholextrakt: 45,1-55,7, Holzfaser: 3,7-4,93 (bis 8,9), Asche: 1,6-4,1 (~Arnst~ und ~Hart~, ~Laube~ und ~Aldendorff~, ~König~). Der Fettgehalt beträgt meist 22,64-23,68% (~Busse~), 18,6-29,08% (~Laube~ und ~Aldendorff~, ~Richardson~, ~Arnst~ und ~Hart~), in der Trockensubstanz bis 35%. Macis enthält ätherlösliches Harz: 1,18-4,09%, alkohollösliches Harz: 3,83-3,95%, Asche: 1,70-2,8 (~Busse~). Obere Grenzzahl der Asche (nach ~Hauke~): 2,5%. ~Hauke~ fand 1,61-2,32%. Macis enthält (nach der Natriumsalicylatmethode bestimmt): 8,38 bis 8,44% äther. Öl (~Lenz~). Macis liefert destilliert 4-15 (ja bis 17)% äther. Öl (~Schimmel~, ~Semmler~) vom spez. Gew. 0,890-0,930. ~Hänsel~ stellt ein terpenfreies Macisöl her. Das +«Fett» der Macis+ zeigt eine vom Samenfett abweichende Beschaffenheit, wie aus den Beobachtungen von ~Späth~, die sowohl bei ~Benedict-Ulzer~ wie bei ~Lewkowitsch~ fälschlich auf Samenfett bezogen werden, hervorgeht. Er fand bei aus +Macis+ (von Banda, Menado, Penang und Sansibar -- wohl alle von _M. fragr._) extrahiertem Fett Schmelzpunkt: 25-26°, Verseifungszahl: 169,1-173, Jodzahl: 75,6-80,8, +Reichert-Meissl+-Zahl: 4,1-4,2, Refraktometeranzeige: 74-84,5. Demgegenüber bemerkt ~Flückiger~ (1891): «Indem ich Macis mit siedendem Äther erschöpfte und diesen abdestillierte, erhielt ich 24,5% bei 100° getrocknetem, weichem, harzartigem Rückstand, in welchem ich nicht imstande war, Fett nachzuweisen.» Offenbar ist hier als «Fett» oft ein Gemenge bezeichnet worden, das noch vielerlei andere Bestandteile enthält und dem vielleicht eigentliches Fett ganz oder fast ganz fehlt. Schon ~Henry~ fand (1824) in der Macis einen eigenen gummiartigen Stoff, der sich mit Jod purpurn färbte und mit Schwefelsäure Zucker gab. ~Flückiger~ nannte den Körper «Maciscellulose». Ich zeigte 1888, daß Banda-Macis neben +Dextrin+ und +Zucker+ (c. 2-4%, nach ~Flückiger~ 1,4%) 25% +Amylodextrinstärke+ enthält (vgl. oben S. 676). Dieselbe läßt sich in der Weise daraus darstellen, daß man durch kaltes Wasser Dextrin und Zucker, durch kalten Alkohol das ätherische Öl und den Farbstoff, durch siedenden Alkohol und Äther das «Fett» entfernt und dann durch oft wiederholtes vielstündiges Auskochen des Rückstandes die Amylodextrinstärke in Lösung bringt. Der Rückstand liefert 46,5% Amylodextrinstärke (~Tschirch~). ~Brachin~ fand in Macis keine Saccharose, sondern ein rechtsdrehendes +Pektin+ und +Galaktane+. Durch Einschnitte in die Rinde liefern _Myr. fragrans_, _Myr. malabarica_, _Myr. glabra_ und _Myr. succedanea_ einen dem Malabar+kino+ ähnlichen Stoff, der krist. Calciumtartrat enthält (~Schär~). Auch _Myr. Teysmanni_, _Virola sebifera_ u. and. verhalten sich ähnlich (~Eijkmann~). =Lit.= ~John~, Myristicin, ein näherer Bestandteil der Muskatennuß. Chem. Schriften 5 (1821), 61. -- ~Bonastre~, Pres. d. l. fécule dans la noix musc. Journ. pharm. 9 (1823), 281. -- ~Henry~, Examen du Macis. Ebenda 10 (1824), 281. -- ~Fromberg~, Natuurk. Tijds. Ned. Ind. 11, 207. -- ~Eijkmann~, Ned. Tijdschr. 1887. -- ~Schär~ (Kino), Pharm. Journ. 1896. -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Busse~, Muskatnüsse. Arbeit. d. Kais. Gesundheitsamt. 11 (1895), 391. -- ~König~, Nahr.- u. Genußm. -- ~Frühling~, Z. Unters. gemahl. Gew. Chem. Zeit. 1886, 525. -- ~Arnst~ und ~Hart~, Zeitschr. angew. Chem. 1893, 136. -- ~Balland~, Journ. pharm. 1903, 294. -- ~Brachin~, Ebenda 1903, 16. -- ~Mastbaum~, Chem. Rev. d. Fettind. 1907, 5. -- ~Dekker~, Pharm. Weekbl. 1909, 16. -- +Fett.+ ~Playfair~, Ann. d. Pharm. 37 (1841), 153. Edinb. Phil. Mag. 1841. -- ~Brandes~, Ann. d. Pharm. 7, 52. -- ~Brilmann~, Tijds. Ned. Ind. 1841, 318. -- ~Comar~, Jahresb. d. Chem. 1859, 366. -- ~Koller~, Viertelj. pr. Pharm. 13 (1864), 504, N. Jahrb. Pharm. 23, 136. -- ~Ricker~, N. Jahrb. Pharm. 19, 17. Jahresb. d. Pharm. 1863, S. 37. -- ~Witte~, Ebenda 38. -- ~H. Schiff~ (Myristinsäure), Lieb. Ann. 1880. -- ~Römer~, Vork. kohlenstoffreich. Fettsäuren. Dissert. Halle 1882. -- ~E. Schmidt~ u. ~Römer~, Arch. Pharm. 1883, 34. -- Helfenberger Ann. 1902, 1904, 1905. -- ~Hooper~, Agricult. Ledger 1907. -- ~Power~ u. ~Salway~, Transact. chem. Soc. 1908, 1653. +Äther. Öl.+ Ältere Unters. b. ~Gildemeister-Hoffmann~. -- ~Schacht~, Dissert. de oleo macidis 1862. Arch. Pharm. 1862, 106. -- ~Koller~, N. Jahrb. d. Pharm. 23 (1864), 136. -- ~Cloëz~, Journ. pharm. 1864, 150. -- ~Gladstone~, Journ. chem. soc. 1872, 1. -- ~Wright~, Ebenda 1873, 549. -- ~Wallach~, Lieb. Ann. 227 (1884), 288 u. 252 (1881), 105. -- ~Flückiger~, Pharm. Journ. 5 (1874), 136. -- ~Semmler~, Ber. d. chem. Ges. 23 (1890), 1803 und 24 (1891), 3818. -- ~Brühl~, Ebenda 21, 472. -- ~Thoms~ (Myristicin), Constitut. d. Myristicins Arb. d. pharm. Inst. Berlin I, 18, Naturforschervers. Cassel 1903. -- ~Schimmels~ Ber. 1893, 1898. -- ~Allen and Brewis~ (Optische Drehung), Pharm. Journ. 66 (1901), 328. -- ~Salway~ (Nitromyristicins.), Transact. chem. soc. 1911. +Macis.+ ~Henry~, Examen du Macis, Journ. pharm. 10 (1824), 281. -- ~Flückiger~, Arch. Pharm. 1871. -- ~Tschirch~, Ber. d. Bot. Ges. 1888, 138. -- ~Hallström~, Arch. Pharm. 1895. -- ~Brachin~, Hydrat d. carb. d. la Noix muscade et d. Macis. Journ. pharm. 18 (1903), 16. -- ~Busse~, Arb. d. kais. Gesundheitsamtes 12, 628. -- ~Arnst~ u. ~Hart~, Zeitschr. ang. Chem. 1893, 136. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. 3. Aufl. -- ~König~, Nahr. u. Genußm. -- Vgl. auch hinten unter Bombay-Macis. -- Asche: ~Hauke~, Aschengehalte 1902. -- ~Moor and Priest~, Pharm. Journ. 1900, 112. =Verfälschungen.= Selbst die ganzen +Muskatnüsse+ werden verfälscht. Eine ganze Schiffsladung aus Holz nachgemachter Muskatnüsse beobachteten ~Chevalier~ und ~Baudrimont~ (1861), aus Mehl, Ton und Muskatnußpulver zusammengesetzte künstliche wurden 1831 und 1833 beobachtet, aus Leguminosenmehl und Muskatpulver zusammengeknetete erwähnt ~Busse~, solche aus Buchweizenmehl, Ton, Muskatbutter und Farbstoff ~Waage~ (1898). Am häufigsten sind aus einem Gemisch von gemahlenem Muskatnußbruch und mineralischen Substanzen durch hydraulische Pressen hergestellte im Handel (~van der Planken~ und ~Ranwez~ 1900). Sie haben sogar einen eigenen Handelsnamen («Bombay Muskatnüsse»). Beim Durchschneiden der gefälschten Nuß beobachtet man das Fehlen jeglicher vegetabilischen Struktur, beim drei Minuten langen Behandeln mit kochendem Wasser wird die Nuß weich und läßt sich zwischen den Fingern zerreiben. Der Aschengehalt beträgt 11-18% (bei der echten Nuß 2-3%), der Fettgehalt nur c. 15%, auch sind diese gefälschten Nüsse im allgemeinen schwerer. Oft finden sich -- auch heute noch -- wurmstichige Nüsse, deren Bohrlöcher mit Kalk oder einer Kalk-Fett-Mehlmischung verstopft wurden. Dagegen scheinen «extrahierte» Nüsse nicht mehr beobachtet zu sein. Die Angabe, daß die Löcher wurmstichiger Muskatnüsse durch _Sassafras_pulver ausgefüllt wurden, erscheint mir sehr unwahrscheinlich. Die langgestreckten Nüsse von _M. argentea_, _M. fatua_ und _M. malabarica_ kommen wegen ihrer abweichenden Form nicht als Verfälschungen in Betracht. Das Muskatnußpulver fand ~Ranwez~ (1900) mit dem Pulver der Schalen verfälscht. Bisweilen wird das Muskatnuß- und Macispulver durch Verreiben mit Milchzucker hergestellt, da beide wegen des Ölgehaltes schwer zu pulvern sind. Als Verfälschung der +Macis+, besonders des Pulvers, ist neuerdings (seit 1881) vielfach Bombay-Macis (vgl. S. 691) beobachtet worden. Bombay-Macis scheint besonders nach Holland (Amsterdam) und Deutschland exportiert und erst dort zur Verfälschung der Macis gemahlen zu werden. ~Busse~ empfiehlt zur Erkennung der Bombay-Macis die +Chromat+probe (~Waage~): Erhitzen des alkoholischen Auszuges mit Kaliumbichromat, Bombay-Macis-Auszug färbt sich braun, Banda-Macis höchstens chromgelb; ferner die +Ammoniakprobe+ (~Tschirch-Hallström~): Bombay-Macis-Auszug wird tieforange bis gelbrot, Banda-Macis gelblich-rosa und die +Barytprobe+ (~Busse~): mit dem Auszuge getränkte, getrocknete Filtrierpapierstreifen werden durch Eintauchen in siedendes, gesättigtes Barytwasser und nachheriges Trocknen bei Banda-Macis blaßrötlich, bei Bombay-Macis ziegelrot. Ich empfehle den spektralanalytischen Nachweis (s. S. 691). Da Bombay-Macis sehr viel «Harz» enthält (vgl. S. 691), so ist eine Banda-Macis, die nach dem Entfetten mit Petroläther mehr als 4% Ätherextrakt liefert, verdächtig. ~Nestler~ (Über Macisverfälschungen. Ztschr. f. Unters. d. Nahrungsmittel [1903], Nr. 22) fand unter 104 Macisproben, die innerhalb 4 Jahren untersucht wurden, 37 Proben als verfälscht. In 17 Proben war ein mehr oder weniger starker Zusatz von Bombay-Macis zu Banda-Macis, in anderen Banda-Macis und Kukuruzmehl oder Bombay-Macis und Kukuruzmehl gemacht worden. Einige Proben enthielten überhaupt keine Macis, sondern waren künstlich aus Kukuruzmehl, gepulverter Semmel, Sandelholz und Curcuma hergestellt worden. Zur Fälschung fanden sich überhaupt Zusätze von Kukuruzmehl, gepulverter Semmel, Sandelholz, Curcuma oder Zimtrindenpulver, einzeln oder mehrere gemischt, vor. Auch von anderer Seite ist Curcuma als Verfälschung beobachtet (Borsäurereaktion des Auszuges) sowie das gemahlene Pericarp der Frucht. Ferner sollen Nüsse, Zwieback (~Späth~), Ocker und Schwerspath vorgekommen sein. Papuamacis ist im Pulver weder mikroskopisch noch chemisch sicher nachzuweisen. Die Arillen der _M. fatua_ scheinen jetzt nicht mehr (wie im XVII. Jahrh.) als Verfälschung benutzt zu werden. Die mittlere Zusammensetzung der drei Macissorten wird durch folgende bei König reproduzierte Tabelle illustriert: --------------+--------+-------+------------+------------+-----------+ | Anzahl |Wassser|Stickstoff- | Gesamt- |Ätherisches| Bezeichnung | der | |Substanz |Ätherextrakt| Öl | |Analysen| | | usw.) | | ==============+========+=======+============+============+===========+ | | % | % | % | % | Echte Macis | 20 | 10,48 | 6,33 | 23,25 | 7,43 | Papua „ | 6 | 9,18 | 6,68 | 54,28 | 5,89 | Wilde (Bombay)| | | | | | Macis | 5 | 7,04 | 5,05 | 60,06 | Spur | --------------+-------------+-------------+--------------------+ | Fett- |Harz löslich | Stärke | Bezeichnung |Petroläther- | in |(Amylodextrinstärke)| | Extrakt |Äther|Alkohol| | ==============+=============+=====+=======+====================+ | % | % | % | % | Echte Macis | 21,85 | 2,59| 3,89 | 24,54 | Papua „ | 52,72 | 0,88| 1,92 | 8,78 | Wilde (Bombay)| | | | | Macis | 32,64 |30,99| 3,19 | 14,51 | --------------+------------------+--------+-----+------------- | Sonstige |Rohfaser|Asche|Von der Asche Bezeichnung | stickstofffreie | | |in Wasser |Extraktionssstoffe| | |löslich ==============+==================+========+=====+============= | % | % | % | % Echte Macis | 29,12 | 4,20 | 2,11| 1,03 Papua „ | 14,41 | 4,57 | 2,10| 1,11 Wilde (Bombay)| | | | Macis | 3,79 | 8,17 | 1,38| 0,97 Die Bestimmung des Petrolätherextraktes, Harzes, der Stärke und Rohfaser sind nicht in allen Proben ausgeführt, daher entsprechen diese Zahlen nicht ganz denen für die anderen Bestandteile. Fälschungen der +Muskatbutter+ sind jetzt relativ selten. Doch kommt bisweilen gefärbter und durch Erwärmen mit Muskatnußbruch parfümierter Talg als Muskatbutter im Handel vor. In früherer Zeit wurden Cetaceum, Talg, Butter, Cacaobutter, Palmöl, Wachs angegeben -- (ob aber wirklich beobachtet?). Auch ein Parfümieren mit _Sassafras_ finde ich angegeben (~Bernays~ 1883). Muskatbutter muß sandfrei sein, also zu einer klaren Flüssigkeit schmelzen. Als Verfälschung ist das Fett der _M. argentea_ beobachtet (~Krasser~). Verfälschung mit Ucuhubafett ist an der Rotfärbung mit konz. H₂SO₄ oder H₃PO₄ zu erkennen (~Schädler~). ~Utz~ hat die Bestimmung des Brechungsindex zur Erkennung von Fälschungen benutzt. Ein Zusatz von Schweinefett, Cacaobutter, Cocosfett, Olivenöl und Talg erniedrigt, ein Zusatz von Lanolin, Paraffin, Vaselin oder Wachs erhöht die Refraktometeranzeige. =Lit.= ~Soubeiran~, Nouv. Dict. d. Falsific. etc. 1874. -- ~Chevalier et Baudrimont~, Dict. altérat. et d. Falsific. d. subst. aliment. 1882. -- ~Busse~, Muskatnüsse, Arbeit. d. Kais. Gesundheitsamt. 11 (1895), 390 u. Nachweis von Bombay-Macis. Zeitschr. Nahrungsm. 1904. -- ~van der Planken~ und ~Ranwez~, Falsific. d. noix de musc. Ann. de Pharm. 1900, 6, 1. -- ~Ranwez~, Fals. d. l. poudre d. musc. par les coques de musc. Ann. ph. 1900. -- ~Krasser~, Verfälsch. d. Muskatnüsse u. d. Macis. Zeitschr. d. Österr. Apoth. Ver. 1897, 791 und Bemerk. über Ol. myrist. u. Oleum Mac. Ebenda S. 824. -- ~Waage~, Handwörterb. d. Pharm. 1893, II, 169. -- ~Nestler~, Macisverfälschungen. Zeitschr. Unters. d. Nahrungsm. 1903. -- ~Schindler~, Pharm. Zeit. 1902, Nr. 38. -- ~Utz~, Chem. Rev. d. Fett- usw. Industr. 1903, 11. (Siehe auch unter Bombaymacis S. 692.) =Anwendung.= In Zucker eingemachte unreife Muskatfrüchte von Ambon sind in Indien sehr beliebt (sie kamen schon im XVII. Jahrh. nach Europa, ~Bauhins~ nux condita des ~Ruellius~, in der Straßburger Taxe 1646: Nux moschata condita indica, in der Prager Taxe 1659: Nuc. ind. cond.), ebenso ein aus der Fruchtschale hergestelltes Gelée (maniessan pala, maniessan = Süßigkeit, Leckerei). Auch das Fruchtfleisch wird in Zucker oder Essig eingelegt als Konfekt oder Pickle in Indien gegessen. Die Macis wird von vielen Vögeln verspeist (s. oben S. 666). Bei größeren Mengen der Droge ist narkotische Wirkung beobachtet. Es gibt noch heute Leute, die Muskatnüsse als sympathetisches Mittel gegen Furunkeln am Halse tragen. Muskatnuß gilt als Rheumatismusmittel und wird auch als Stomachicum, Stimulans und Carminativum bei Magen- und Darmkatarrh und Dyspepsie, auch als Substitut für Opium benutzt. Viel verwendet war ~Goelis~ Kinderpulver (pulvis nucis moschatae cps. sive antiscrophulosus Goelisii). Ein Abortivum sind sie nicht, obwohl das Volk sie als solches gelegentlich benutzt. Die Maximaldose gibt U. S. Pharm. auf 0,5 g an. Es unterliegt keinem Zweifel, daß die Muskatnuß infolge von im Ruminationsgewebe sitzenden Substanzen unbekannter Zusammensetzung in größeren Dosen giftig wirken kann (bisweilen schon bei einer halben Muskatnuß). Schon ~Rumph~, ~Bontius~, ~Lobelius~, ~Schmid~ und ~Cullen~ berichten über solche Fälle und ~Wibmer~ hat die bis 1837 beobachteten zusammengestellt. (Einige Vergiftungsfälle auch in ~Lewins~ Toxicologie.) ~Purkinje~ schildert die Wirkung: Verringerung der Sinnestätigkeit, Trägheit der Bewegungen, an Besinnungslosigkeit grenzende Schlaflosigkeit; ~Pereira~ spricht von Betäubung und Gefühllosigkeit. ~Hermann~ wollte schon im XVII. Jahrh. einen Stoff isoliert haben, der wie Opium einschläfernd wirkt (zitiert bei ~Valentini~) Über die toxische Wirkung, die ~Power~ und ~Salway~ auf das Öl beziehen, da sie weder Alkaloide noch ein Toxalbumin nachweisen konnten, vgl. ~Cussny~, Proc. Royal Soc. Med. 1908, I, 39, ~Wallace~, Contrib. to medical research dedicat. to ~Vaughan~. Ann. Arbor 1903, ~Power and Salway~, Chem. exam. and physiol. act. of nutmeg. Amer. journ. pharm. 1908 und ~Mendelsohn~, Deutsch. Med. Wochenschr. 1907, 2201. Über die angebliche Abortivwirkung: ~F. Jürss~, Beitr. z. Kenntn. d. Wirk. einig. als Volksabortiva benutzten Pflanzen (_Tanacetum_, _Thuja_, _Myristica_). Stuttgart 1904. Muskatbutter wird im Archipel als Einreibungsmittel bei Rheumatismus verwendet, in Europa noch jetzt zu Einreibungen des Unterleibes (Magenbalsam), bei Kolik, Diarrhöe usw. (meist mit Wachs und Olivenöl gemischt, _Balsamum nucistae_). Das beim Volke beliebte ~Klepperbein~sche Magenpflaster enthält _Ol. myristicae_, wie das in Frankreich benutzte _Pomatum nervinum_. Die auf den sich in der Nähe der Notenkombuis aufhäufenden und dort oft in besonderen Gruben verrottenden abgelösten Fruchtschalen sich entwickelnde Agaricinee (djamur pala = Muskatpilz) wird gegessen. =Geschichte.= Die Alten kannten die Muskatnuß und die Macis nicht. Weder das κωμακόν des ~Theophrast~ (vielleicht Cubebe?), noch das narcaptum (nascaphton) oder der βάλανος μυρεψικί (glans unguentaria [Moringa oleifera?]) des ~Dioskurides~, noch das caryopon des ~Plinius~ (das Samenöl einer syrischen Pflanze?), noch der macer, macir, machir, μάκειρ der Alten (nach ~Thomson~ [Mitteilung an ~Hanbury~] die Rinde des schon von ~Acosta~ als Macer abgebildeten _Ailanthus malabarica_ ~Dc.~) beziehen sich hierauf. Das bei ~Plautus~ (im Pseudolus III, 2) vorkommende Wort macis ist dort eine Phantasiebildung. Der Name macer wurde erst von ~Serapion~ und ~Averrhoes~ auf die Macis übertragen und blieb ihr dann. Nur eine einzige Stelle kann uns zweifelhaft machen, die nämlich bei ~Celsus~ (V, 18): «+glandis+, quam βάλανον μυρεψικήν Graeci vocant, +cortex+», doch stimme ich ~Warburg~ bei, daß auch hier nicht Macis gemeint ist. Es ist wahrscheinlich, daß die _Myristica_ von den Ureinwohnern der Bandainseln gar nicht beachtet wurde (~Crawfurd~). Den Indern war die Muskatnuß kaum viel früher wie den Europäern bekannt. Doch findet sie sich schon in ~Suśrutas~ als dschati (= jadi) erwähnt (weitere Nachweise bei ~Martius~). Jedenfalls kam Muskatnuß erst durch die Araber nach Europa. Die erste, aber unsichere Erwähnung finden wir in einem Räuchermittel, _Suffumigium moschatum_, das ~Aëtius~ (VI. Jahrh., vgl. I, S. 591) mitteilt. Dasselbe besteht aus _Nelken_, _Nardus_, _Costus_, _Calmus_, _Santel_ und _Nuces indicae_; letztere +können+, wie ~Caesalpini~ und ~Flückiger~ meinte, an +dieser+ Stelle Muskatnuß bedeuten. Deutlicher erwähnt sie im VII. Jahrh. das syrische Compendium von ~Ahroun~ (~Aron~, bei ~Serapion~ zitiert): Jeusbaue est nux muscata et affertur a India. Ausführlicher, auch über die Heilkraft, spricht sich dann ~Ishac ben Amrân~ (I, S. 598) aus (Stelle aus ~Serapion~ zitiert bei ~Warburg~), der von der Macis bemerkt: Est cortex nucis muscatae und sie schon gut von der harten Samenschale und dem Samenkern unterscheidet. Muskatnuß steht im Kitâb aš šagar (vor 980). Im X. Jahrh. erwähnt die Muskatnuß auch ~Kurdadbah~ (I, S. 616) unter den Ausfuhrartikeln Indiens. Weiter nach Osten verlegt ~Masudi~ (I, S. 616) die Heimat und ~Edrisi~ (I, S. 617) nennt die Inseln des Meeres Senf (= Sandji, d. h. Sunda, ~Warburg~). Später finden wir sie dann bei ~Rhazes~ (I, S. 597), ~Mesuë~ (I, S. 599), ~Algâfaqî~ (I, S. 608), der Macer und Macis gut auseinander hält, ~Avicenna~ (I, S. 602), ~Serapion~ (I, S. 604) und vielen anderen. Doch blieb die Pflanze noch lange unbekannt und noch ~Ibn Batuta~ hält im XIII. Jahrh. die Muskatnuß für die Frucht des Nelkenbaumes und Macis für die Blüte des Muskatbaumes, und ~Jacobus Vitriacus~ († 1244) und ~Thomas Cantipratensis~ wiederholten das, was ~Platearius~ sagte: Le macis est le fleur ou l’ecorce de la noix muscade. In der europäischen Literatur erwähnt die Muskatnuß zuerst ~Simon Seth~ (I, S. 593) als κάρυον ἀρωματικόν und ~Constantinus Africanus~ (I, S. 633) gedenkt sowohl der _nux muscata_ wie der _Macis_. Wir finden sie bei der ~Hildegard~ (I, S. 667), die sich ausführlich über die medizinische Verwendung äußert, bei ~Albertus Magnus~ (I, S. 675) im Grabaddin, im Antidotarium ~Nicolai~, bei ~Matthaeus Silvaticus~, ~Simon Januensis~, im Circa instans (I, S. 635), in der Alphita (I, S. 654), bei ~Harpestreng~ im XIII. Jahrh. (I, S. 684) und in zahlreichen Taxen und Listen (I, S. 810 u. f.). ~Nicolai~ erwähnt ein _Oleum moschelinum_ (muscalinum), wozu Muskatnüsse («_nuces indicae_» -- hier vielleicht aber Behennüsse?) gebraucht wurden. Wir sehen, daß genuesische Kaufleute 115810 Pfund _nucum muscatarum_ aus Alexandrien auf Lager hatten (~Flückiger~), finden die nois mouscades 1180 im Tarif der Zollstätte Accon (I, S. 699) Und 1228 unter den in Marseille zu verzollenden Waren (~Flückiger~), sowie 1191 unter den bei der Krönung Kaiser ~Heinrichs~ benutzten Räuchermitteln (I, S. 715), beim Festspiele von Treviso 1214, wo eine von Damen verteidigte Burg unter anderem mit Muskatnüssen beschossen wurde, in der Kölner Verordnung 1259 (I, S. 712), in der Liste des bischöflichen Haushaltes 1303-1310 und vielfach anderwärts (Näheres bei ~Warburg~). Sie waren im XIII. Jahrh. schon nicht mehr unerschwinglich teuer, Anfang des XIV. Jahrh. wurden sie in Konstantinopel pfundweise (~Pegolotti~) und 1380 in Brügge (wie die Macis = machos) schon ballenweise gehandelt. Immerhin wurden Muskatnüsse doch in Rezepten (z. B. im Antidotarium Nicolai) nicht dem Gewicht, sondern nach Stück verordnet und silberbeschlagene Muskatnüsse finden sich oft neben anderen Kostbarkeiten (noch 1519 in Zürich, ~Keller~), im Louvre auch aus Muskatnüssen hergestellte zierliche Gefäße aus dem XIV. Jahrh. In Stettin erhielt noch 1617 bei der Taufe jeder Gevatter «Neun Muscatennuß in Papier eingewükhlet». Die richtige Erkenntnis, was Macis ist, die schon ~Amrân~ hatte, bricht sich aber erst im XIII. Jahrh. in der Alphita Bahn: «Macis +non+ est flos nucis moscatae ut quidam credunt, sed adhaeret ipsi nuci moscatae circum quamque ut potest videri in avellanis». Ähnlich äußert sich wenig später ~Simon Januensis~. Noch ~Albertus Magnus~, ja sogar noch ~Conti~ (1419) hatten sie für die Blüte gehalten. ~Marco Polo~ erwähnt die Muskatnüsse, ebenso der Reisende ~Masudi~ (916-920) von den östlichen indischen Inseln. Der erste Bericht aber über den Muskatnuß+baum+ von einem, der ihn in seiner Heimat, als welche ~Barthema~ schon Bandam nennt, gesehen, stammt von dem Portugiesen ~Duarte Barbosa~ (1516), in dessen berühmter Preisliste Muskatnuß und Macis figurieren (vgl. I, S. 741). -- Erstere 1 farazuola zu 10-12 fanoes, letztere zu 25-30 fanoes --. (Vor der Entdeckung des Seeweges nach Ostindien kostete 1 Pfund Nüsse 4 sh 6 d, 1 Pfund Macis 9 sh (~Crawfurd~) -- etwa so viel wie eine Kuh!). 1623 war in London der Preis für ein Pfund Muskatnüsse 3 Shilling, für Macis 5½-8½ Shilling (~Flückiger~). ~Pigafetta~ (I, S. 742), der im Dienste Spaniens auf ~Magalhaẽs~ Expedition die Maluccen betrat, beschreibt die Frucht nach eigener Anschauung vortrefflich. Nachdem zuerst die Spanier, dann die Portugiesen (seit 1529) die Bandainseln besessen hatten, eroberten die Holländer die Inseln und errichteten (1602) die vereinigte holländische Kompagnie. Von 1608 an waren sie im alleinigen Besitz der Inseln, teilten das Land in einzelne Perks (1623), verjagten oder rotteten zunächst die Bevölkerung auf den Bandainseln (c. 10000 Eingeborene), dann (seit 1633) auch die Muskatnußbäume auf allen anderen Inseln des Archipels (Run, Rosengain, Seroua, Nila, Dammer, Kelang, Ceram, Gorom, Matabello, Tewer, Kouwer, Roma, Kisser usw., s. d. Karte auf S. 667) -- etwa 60000 (~Lauts~) -- aus, führten Sklaven als Arbeitskräfte der Perkeniere ein, und bestraften die unbefugte Anpflanzung außerhalb der eigentlichen Bandainseln, sowie den Schmuggel mit Nüssen auf das härteste. Die Hongitogten (Hongizüge, Hongifahrten) waren Kontrollfahrten der Kriegsschiffe (vgl. I, S. 918), die durch Kommissarissen extirpateurs (ein hübscher Titel!) am Lande unterstützt wurden. Diese Hongitogten dauerten bis in die Mitte des XVIII. Jahrh. und wurden erst 1824 definitiv aufgehoben. Als Perkeniere wurden hauptsächlich ältere holländische Soldaten oder Beamte eingesetzt. Zur Verhinderung der Überproduktion und Preisdrückung wurde die Ernte oft jahrelang gespeichert oder ganze Schiffsladungen ins Meer versenkt oder große Vorräte verbrannt (1760 in Amsterdam, -- pour huit millions argent de France! (~Bomare~) -- 1773 in Batavia c. 250000 Pfund.) Die Kompagnie, die das Gewürzmonopol etwa 200 Jahre besaß, zahlte von 1605-1700 zwischen 15 und 75% Dividende. Dann ging es mit ihr bergab und 1798 trat der Staat die Erbschaft der total verschuldeten Kompagnie an, die sich 1808 auflöste. Von 1796-1802 und 1810-1816 besaßen die Engländer die Bandainseln, von 1816 an gehören sie wieder den Holländern, die den Gewürzhandel zunächst als Regierungsmonopol betrieben (noch bis 1862 wurden die Muskatbäume auf den Nebeninseln ausgerottet!). 1864 erlosch auch dies. Seitdem Freikultur eingeführt ist, sind die Bandainseln in wirtschaftlichem Aufschwung. In China war die Muskatnuß kaum vor dem VIII. Jahrh. bekannt (~Bretschneider~). Im XVI. Jahrh. ging die Muskatnuß nach Lissabon, zur Zeit der niederländisch-indischen Kompagnie nach Holland. Dort wurden die Nüsse zu von der Kompagnie festgesetzten Monopolpreisen verkauft. Von 1600-1700 wurden im Jahre durchschnittlich bis 666747 Pfund Nüsse und bis 183270 Pfund Macis auf den Bandainseln produziert, von 1700-1777 zwischen 400- und 700000 Pfund Nüsse und 90-176000 Pfund Macis, 1860 wurde die Million Pfund überschritten (~Warburg~). Zuerst eine indische Kostbarkeit zu Geschenken an Vornehme, als Riechmittel, zu Räucherungen und Salben benutzt, dann (im XIV. Jahrh. und schon früher in Vorderindien, ~Martius~) wertvolles Gewürz, das aber, das zeigen uns die «Kochbücher», immer breiteren Schichten zugänglich wird -- die Muskatnußreibe steht heute auf jeder holländischen Tafel -- wird die Muskatnuß im XVI. und XVII. und besonders im XVIII. Jahrh. ein wichtiges Heilmittel, dem ~J. H. Dietz~ 1681 eine Dissertatio unter dem Titel Moschocaryologia und ~Ch. F. Paullini~ 1704 gar eine umfangreiche, 900 Seiten starke lateinische Μοσχοκαρυογραφία widmete (I, S. 926), in welchem kritiklosen Sammelsurium die Muskatnuß bei 138 (!) Krankheiten empfohlen wird. In nicht weniger als 86 Rezepten in des ~Cordus~ Dispensatorium (I, S. 795) findet sich Muskatnuß oder Macis, und noch ~Schröders~ wertvolle Pharmacopoea med. chym. (I, S. 890) enthält folgende Präparate: _Conditae nucistae_, _Condita macis_, _Aqua nucistae_, _Oleum nucistae stillatum_, _Ol. nucistae expressum_, _Sal commune nucistae_, _Ol. macis stillatum_, _Ol. macis expressum_, _Extr. olei nucist. express._, _Balsamus Macis_, _Balsamus nucistae_. Ende des XVIII. Jahrh. verblaßte ihr Ruhm, doch nennt noch ~Murrays~ Apparatus medicaminum (I, S. 952) eine ganze Reihe von Krankheiten. Ein Conditum nucum moscatarum sive indicarum findet sich in der Frankfurter Reformatio 1718 (I, S. 831). Olij van muscatenn +und+ oley van muscatenblomen sowie muschatenblomenconfect steht schon in der Lübecker Verordnung von Gewürtz und Apothekerwaaren um 1530, ja wir dürfen sogar schon in dem uille de musterlin des Inventar ~Lefort~ 1439 (I, S. 811) _Ol. myristicae_ sehen. Über die Bereitung der Muskatbutter aus den erwärmten und zerriebenen Samen mittelst einer Presse berichtet schon ~Acosta~ 1578 (I, S. 738) und auch ~Linschoten~ (I, S. 743) erwähnt, daß in Banda aus Nüssen und Macis Öl bereitet werde, und ~Clusius~ sah _Ol. nucistae_ 1581 bei dem Apotheker ~Morgan~ in London in 1 : 3 : 3 Zoll großen Platten. _Ol. nucistae_ und _Oleum macidis_ finden sich dann in der Taxe von +Worms+ (I, S. 817) und ~Tabernaemontanus~ (I, S. 847) gibt bereits 1613 drei Methoden an, _Ol. nucistae_ selbst herzustellen. Es kam im XVII. und XVIII. Jahrh. in guter Qualität aber auch aus Banda. Doch klagt bereits ~Pomet~ (I, S. 941), daß es viel gefälscht werde. ~Rumphius~ (I, 8. 899) und ~Valentijn~ beschreiben die Herstellung der Muskatbutter (das oly slaan = Ölschlagen) auf den Moluccen, die auch noch im XVIII. und XIX. Jahrh. dort geübt wurde (~Bomare~, ~Thunberg~). In der Mitte des XIX. Jahrh. unterschied man meist englische (aus Penang) und holländische (aus Banda) Muskatbutter. Das destillierte Muskatnuß- und Macisöl war bereits den Verfassern der Destillierbücher des XVI. Jahrh. (~Cordus~, ~Ryff~, ~Porta~, ~Winther~, vgl. I, S. 875) bekannt. Sie finden sich in der Taxe von Berlin 1574, von Frankfurt und Worms 1582 und im Dispensator. Noricum 1589 (~Gildemeister-Hoffmann~). Aus Muskatnüssen destilliertes Öl erwähnt ~Tabernaemontanus~ und ~Gesner~. Es wurde noch in der ersten Hälfte des XIX. Jahrh. in Banda destilliert, neuerdings in Singapore und Benkulen, aber nur gelegentlich. Das Macisöl erwähnt ~Dodonaeus~ (im Cruydeboek 1563), ~Acosta~ (I, S. 738). ~Rumphius~ und auch ~Valentini~ kannten außer dem destillierten auch ein rotes durch Auspressen aus der frischen Macis bereitetes und es scheint auch dem Destillat Macispulver zugesetzt worden zu sein, um ein gefärbtes Öl zu erhalten. Die ersten chemischen Untersuchungen der Öle rühren her von: ~Valentini~, Macis vulgo sed perperam Muskatenblume dicta. Diss. Gießen 1719. ~Neumann~, Chymia medica 1749. ~Bonastre~, Trommsd. N. Journ. d. Pharm. 2 (1824) 231. ~Garcia~ beschrieb zuerst die Frucht. Die erste richtige Beschreibung der Pflanze gab aber Clusius 1605 nach in Salzwasser eingelegten Fruchtzweigen (die Abbildung taugt aber nichts). Ausführlicher behandeln die Pflanze ~Rumpf~ (I, S. 899) und ~Valentini~, dem wir ein gutes Habitusbild verdanken. Auch in ~Nic. Schultze~, Dissertatio de nuce moschata 1709 findet sich eine recht gute Abbildung, und gut ist auch der botanische Teil in ~C. M. Valentinis~ Dissertatio de macide 1719 (s. oben). Noch ~Amatus Lusitanus~ (1533), ~Scaliger~ (1566), ~Lonicer~ (1609) warfen Macis und Macer durcheinander. =Lit.= ~Martius~, Z. Literaturgesch. d. Muskatnuß und Muskatblüte. Sitzungsb. d. Münch. Akad. 1860, 154 (Buchn. Rep. 9 [1860] 529). -- ~Warburg~, Wer ist der Entdecker d. Gewürzinseln (Moluccen). Verh. Ges. Erdkunde 1896. -- ~Warburg~, Die Muskatnuß 1897 (hier eine ausführliche historische Darstellung). -- ~Heyd~, Levantehandel. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Flückiger-Hanbury~, Pharmacographia. -- ~Pereira~, Elements. -- Über die Muskatbutter im XVII. Jahrh.: Fragmenta ex relatione jurata Abrahami Boudenii et Goerickii Hauptii Commissariorum desuper Arboribus Nucum Moschatarum earumque Viridario in Banda de Dato 20. Dez. 1682. De Padbrugge exhibita in Valentini Histor. simplic. reform. 1716 (Ref. in ~Warburg~, Muskatnuß). -- ~C. M. Valentini~, Dissertatio de macide 1716. -- ~Thunberg~, Dissert. de myristica. Upsala 1788. -- ~Crawfurd~, Dict. of the Indian Islands. -- ~Leber~, Appréciation de la fortune privée an moyen âge 1847. -- ~Rogers~, History of the agriculture and prices in England 1866. Andere nutzbare Muskatarten. =Myristica argentea= ~Warburg~, Neu Guinea oder +Papua Muskat+, Lange not, Nootmoschat van Nieuw Guinea, Papua noten, Mannetjes noten van Nieuw Guinea, Pferdemuskat. Ein im westlichen Neu-Guinea heimischer Baum von mittlerer Größe, mit breiter pyramidaler Krone und Stelzenwurzeln, bis 25 cm langen, elliptisch länglichen Blättern, deren Unterseite auf der Unterseite silberglänzend sind, weshalb ~Warburg~, der sie auffand, die Art als _argentea_ bezeichnet. Die großen kahlen, eiförmig-elliptischen, an beiden Enden abgerundeten Früchte werden bis 8,5 cm lang. Der rote, nur in wenige breite Lappen geteilte, +sehr aromatische Arillus+ wird beim Trocknen dunkel schmutzig-rotgelb, gelbbraun, rot- oder graubraun. Der schlanke Same (Fig. 215) ist 3½-4 cm lang, gestreckt oval-elliptisch. Seine Schale zeigt seichte Arillusabdrücke. Ihr fehlt die Querfaserschicht (s. bei _Myrist. fragr._). Das Endosperm ist stärkereich, die weitmaschigen, mehr zerstreuten und gröberen Ruminationsfalten +stark aromatisch+ (Abbild. bei ~Warburg~, t. 2). Die zuerst von ~Valentini~ erwähnte, von ~Pereira~ richtig beschriebene und abgebildete Papuanuß, die in West-Neu-Guinea noch heute die Rolle des Geldes spielt, kommt regelmäßig, besonders aus der Landschaft Onin am Mc. Cluers Golf, in den Handel, meist unter dem Namen lange Muskatnuß, Long-Papua oder wild nutmeg. Sie bildet den wichtigsten Exportartikel Neu-Guineas und wird stets in der Schale exportiert. Bisweilen unterscheidet man Macassar- und Papuanüsse als verschiedene Sorten (nur die erstgenannten gelten als gut), doch besteht kein Unterschied (~Busse~). Der Export (besonders über Macassar, Singapore und Java) betrug Ende des vorigen Jahrhunderts c. 430000 kg mit Schale (= 250000 kg ohne Schale (~Warburg~)). Ihr Preis beträgt kaum die Hälfte der echten Muskatnüsse, ihr Umsatz etwa ¹⁄₁₂ bis ⅒. +Das Aroma ist der echten ähnlich, aber weniger fein+, der Samenkern, da bröckelig, schlecht zu verreiben. [Illustration: Fig. 215. Same von _Myristica argentea_ mit dem Arillus bedeckt. [Nach +Busse+.]] Die Zusammensetzung der Papuamuskatnüsse ist im Durchschnitt in % Wasser 9,92, Stickstoffsubstanz 6,95, äther. Öl 4,7, Ätherextrakt 35,47, Stärke 29,25, stickstofffreie Extraktstoffe 8,93, Rohfaser 2,07, Asche 2,74, Alkoholextrakt 16,78 (~König~). Der Fettgehalt ist etwa derselbe wie bei der echten (31,6-39,3% ~Busse~), nach anderen 52 bis 54%. Das Fett ist heller als bei Banda-Muskat. Das ätherische Öl ist minderwertig (~Schimmel & Co.~). Da sie nicht gekalkt werden, sind sie sehr dem Insektenfraß ausgesetzt. Der Arillus, unter dem irreführenden Namen +Foelieschillen+, +Macisschalen+ oder +Macassarmacis+ im Handel -- ~Waage~ schlug vor, sie =Papua-Macis= zu nennen -- enthält sehr viel «Fett» (52-54% ~Busse~), 8,75% «Stärke» und c. 3,5% äther. Öl, das aber ebenfalls minderwertig ist (~Schimmel & Co.~). Die Asche beträgt 1,89-2,51%, ätherlösliches Harz 0,36 bis 1,39%, alkohollösliches Harz 1,74-2,09% (~Busse~). Das Fett der «Macisschalen» zeigt Schmelzpunkt: 28,5-29, Verseifungszahl: 148,2-148,8, Jodzahl: 71,3-73,4, Reichert-Meißlzahl: 1,6-1,7, Refraktometeranzeige bei 40°: 80-82 (~Späth~). Das Gewebe des Arillus enthält nur wenige Ölzellen. Die Epidermiszellen sind unregelmäßig, nicht radial gestreckt, die Amylodextrinstärkekörner sind ähnlich wie bei Bandamacis, sie werden von bisweilen krist. Fett begleitet (~Vogl~). Die Reaktionen mit Ammoniak und Kali sind undeutlich. (Anatomie der Samen und Arillen bei ~Hallström~.) Meist werden die Nüsse mit dem Arillus exportiert und dieser erst in Macassar oder Banda abgetrennt (~Warburg~). Der Arillus der _Myr. argentea_ riecht sassafrasähnlich (~Waage~). Die Macis ist im Handel meist nur in Bruchstücken zu finden. 1888 wurden schon 10445 kg «Macisschalen» in Holland zum Verkauf gebracht. 1894 kamen 13160 kg Papuamacis in den Handel. Die Samen wurden früher fälschlich von _M. fatua_ abgeleitet. +Myristica fatua+ ~Houtt.~, unechte Muskat, mal. Pala laki-laki (= männliche Muskat), in Banda: bala fuker (= Berg Muskat), mannetjes Noten (= männliche Muskatnuß, da angeblich die Zeugungskraft mehrend) (~Piso~, ~Rumph~). Ein dicht belaubter, diözischer, in Banda und Ambon heimischer Baum mit schmaler, nicht pyramidenförmiger Krone, aus der Stammbasis hervortretenden Adventivwurzeln (Abbild. in ~Warburg~, Monogr. t. XI), großen, bis 33 cm langen, auf der Unterseite infolge eines Haarüberzuges glanzlosen Blättern und großen, bis 7 cm langen, dicht rostrot behaarten, breitelliptiscben Früchten. Der fast von der Basis an zerschlitzte Arillus hat ein wenig angenehmes, beim +Trocknen schwindendes Aroma+. Die bräunlichen Samen sind 3,5-4 cm lang und 2,5-3 cm breit und umschließen einen trockenen, +fast gar nicht aromatischen Samenkern+ (~Warburg~, t. III, Fig. 10 u. 11). +Wird jetzt kaum noch gesammelt+, aber in Südostasien medizinisch benutzt, doch sind Intoxikationen beobachtet (~Rumph~). Die erste Beschreibung und Abbildung findet sich in ~Lobelius~, Plantar. stirp. hist. 1576, ausführlicher bespricht sie ~Clusius~, ~Piso~ und ~Vogels~ (Zehenjähr. Ost-Indian. Reisebeschr. 1704), sowie ~Rumph~. Näheres bei ~Warburg~. Die Anatomie der Samenschale und des Arillus bei ~Hallström~. =Myristica speciosa= ~Warb.~ +Batjan Muskat+., in den Bergwäldern auf Batjan (s. d. Karte S. 667). Besitzt eiförmige Früchte, einen sehr aromatischen Arillus und eiförmige, c. 3,5 cm lange Samen, deren Kern sowohl in Form wie Aroma, wie auch dem Verlauf der Ruminationsfalten dem der echten Muskatnuß sehr ähnlich ist. Er enthält 34,3% eines bei 63° schmelzenden Fettes (~Greshoff~). +Die Samen dieser Art sind den echten Muskatnüssen gleichwertig.+ Die Pflanze wird aber bisher nirgends kultiviert. =Myristica succedanea= ~Bl.~, +Halmaheira Muskat+. Die der _M. fragrans_ sehr nahestehende, in Halmaheira (s. d. Karte S. 667) einheimische Art besitzt rundlich-eiförmige Früchte, deren Samen in Form, Geruch und Geschmack den _Sem. myrist._ ähneln. =Myristica Schefferi= ~Warb.~, +Oninmuskat+ in West-Neaguinea hat gewürzige Samen. Die Arillen von _M. succedanea_, _M. speciosa_ und _M. Schefferi_ sollen auch verwertbar sein (~Warburg~). Viele Arten, z. B. viele afrikanische und alle amerikanischen, besitzen kein Aroma. Andere gewürzige Arten in ~Warburg~ (Die Muskatnuß). Nicht gewürzig ist: =Myristica malabarica= ~Lam.~, +Malabarmuskat+, wohl des ~Clusius~ _Nux myristica mas._ Bei ~Rheede~ (Hort. malab.), der sie zuerst beschreibt: panam palka, noz de moluco falso, Nux myristica spuria (auch ~Makhzan el Adwiya~ erwähnt sie). Kleiner, eleganter, in Vorderindien (Westküste der Dekkanhalbinsel, Concan, Canara, Nord-Malabar) heimischer Baum mit rostroten Früchten, deren schlanke, zylindrische, bis 4,5 cm lange Samen (in Bombay: kaiphal) dicht von dem bis 6,5 cm langen Arillus bedeckt sind. Der Samenkern besitzt etwa die Größe und Form einer Dattel. Die schmalen Lappen des Arillus sind an der Spitze knäuelig zusammengedreht. (Fig. 216). Die dunkelbraunrote bis purpurrote, +nicht aromatische+ Macis dieser Pflanze erschien 1880 unter dem Namen =Bombaymacis= (in Bombay: rampatri) im Handel und ich habe dieselbe 1881 zuerst +auch anatomisch+ beschrieben und abgebildet und namentlich auf die Unterschiede gegenüber der Bandamacis aufmerksam gemacht. Sie bestehen darin, daß dieser Macis meist innen eine dünne zerknitterte Haut (+Epidermis der Testa+) anliegt, daß die relativ großlumigen Epidermiszellen im Querschnitt meist radial gestreckt sind (Fig. 217) und Hypoderm meist fehlt, die +ein braunes, die inneren ein gelbes Sekret führenden, bis 120 mik großen Ölzellen+ sehr viel zahlreicher und vorwiegend in den Randschichten auftreten, auch oft zu größeren Räumen verschmelzen, die Mitte des Arillus dagegen ölzellenfrei ist. ~Flückiger~ wies in der Besprechung meiner Mitteilung im Bot. Jahresber. 1881, II, 692 ganz richtig darauf hin, daß diese Macis nach ~Dymock~ von _Myr. malabarica_ abstamme, deren Früchte ~Dymock~ (in der Mat. med. West. India 1883) beschrieb, welche Ableitung dann von ~Warburg~ bestätigt wurde. Ich habe später mit ~Hallström~ (Indische Fragmente 2, 1895) Samen und Arillen dieser und anderer Arten näher studiert und wir haben im Ammoniak, der Kalilauge (deren sich bereits ~Hanausek~, ~Frühling~ und ~Schulz~ bediente), dem Baryumnitrat und dem Kalibichromat (das bereits ~Waage~ benutzte) zur Unterscheidung vorzüglich brauchbare Reagentien gefunden (weniger Bleiessig, den ~Hefelmann~ empfahl, HCl und H₂SO₄, die ~Warburg~ benutzte, und die Filtrierpapierprobe des alkoholischen Auszuges, deren sich ~Frühling~ und ~Schulz~ bedienten). Die genannten Reagentien geben starke Färbungen bzw. stark gefärbte Lösungen mit Bombaymacis, keine oder geringe mit Bandamacis und sind auch mikrohistochemisch brauchbar. ~Busse~ hat dann auch Barytwasser als unterscheidendes Reagens benutzt (s. oben S. 684 unter Verfälschungen). Die Grundparenchymzellen enthalten auch bei dieser Macis Amylodextrinstärkekörner, bei denen aber hier die rundlichen Formen prävalieren. [Illustration: Fig. 216. _Myristica malabarica_, Arillus (Bombay-Macis). [Nach +Busse+.]] Bombaymacis enthält 29,59-34,2 Fett, 27,64-37,56% ätherlösliches Harz, 2,58-3,52% alkohollösliches Harz und 1,23-1,29% Asche (~Busse~). Nach ~Arnst~ und ~Hart~ in Prozenten: Wasser 7,04, Protein 5,24, Fett 56,75, äther. Öl 0,25, in Zucker überführbare Stoffe 29,19, Holzfaser 8,17, Asche 1,36. Nach ~Frühling~ und ~Schulz~ 5,8% Wasser, 39,2% Fett und 1,42% Asche. Der +Farbstoff+ (C₂₉H₃₈O₇?) soll aus einem krist. Chromogen (C₂₉H₄₂O₅?) hervorgehen (~Held~). Äther extrahiert auch 30,5% Harz, der die Farbstoffreaktionen gibt (~Soltsien~). Der Ätherextrakt beträgt 56,7 (~Arnst~ und ~Hart~) bzw. 61,9-67,1% (~Busse~). +Die alkalische Lösung des Sekretes gibt im Spektralapparat ein breites Absorptionsband im Grün und Blau, das den alkalischen Auszügen der Bandamacis fehlt+ (~Tschirch~). +Dies ist das beste Unterscheidungsmittel+ (s. auch oben S. 684). Das Fett zeigt eine ganz von dem der Bandamacis abweichende Beschaffenheit. Schmelzpunkt: 31-31,5, Verseifungszahl: 189,4-191,4, Jodzahl 50,4-53,5, Reichert-Meißlzahl 1-1,1, Refraktometeranzeige bei 40° 48-49 (~Späth~). Im Fett fand ~Hilger~ Stearin-, Palmitin- und Ölsäure, sowie Phytosterin. Bombaymacis enthält auch Dextrose (~Held~) und angeblich vereinzelte Stärkekörner (?) (~Waage~). Bombaymacis wird in Indien als Tonicum und bei Erbrechen benutzt, auch als Gewürz (~Dymock~). Im Amsterdamer Handel heißt die Bombaymacis meist wilde Foelie oder Sorteering A und B. [Illustration: Fig. 217. _Myristica malabarica._ Querschnitt durch den Arillus (Bombay-Macis). [Nach +Tschirch-Oesterle+, Atlas.]] Auch die fetthaltigen Samen (in Indien: jangli-jaiphal) kommen in den Handel. Sie werden in Indien medizinisch benutzt, ebenso ihr Öl (Poondy oil). ~Hooper~ fand in den Samenkernen (und der Macis) von _M. malabarica_ in Prozenten: Wasser 6,9 (4,07), Fett und Harz 40,76 (63,26), Eiweißsubstanzen 6,5 (7,31), Kohlehydrate 42,18 (20,8), Faser 2,33 (3,06), Asche 1,33 (1,5). Die Samen enthalten 29,6-34,2% Fett (Schmelzp. 31-31,5. Verseifungszahl 189,4 bis 191,4, Jodzahl 50,4-53,5), das frei ist von Myristinsäure. Fettliefernd sind folgende Myristicaceen: _Myristica canarica_ ~Bedd.~ (candlenut tree) pindi, pundee-kai in Indien. ~Hooper~ fand (1907) in den Samen (und der Macis) in Prozenten: Wasser 7,25 (5,15), Fett 49,4 (54,6), Proteinsubstanzen 7,31 (6,12), Kohlehydrate 14,65 (28,48), Faser 20,14 (3,4), Asche 1,25 (2,25). -- _Myristica angolensis_ ~Welw.~ enthält im Samenkern über 70% Fett. -- _Horsfieldia Irya_ (~Gärtn.~) ~Warb.~, von Ceylon bis zu den Moluccen, liefert das +Naharanfett+, Früchte 18 mm Durchmesser. -- _H. Iryaghedi_ (~Gärtn.~) ~Warb.~, von Ceylon, in Java viel kultiviert, tjampaka silan (= Michelia tjampaca von Ceylon), Früchte 3 cm lang. Das Fett dient zur Kerzenfabrikation. Die Samen sind ein Ersatz der Betelnüsse (Anatomie bei ~Tschirch-Hallström~). -- _Gymacranthera canarica_ (~King~) ~Warb.~ von Südindien, Samen 16 mm, liefern das Mangalorefett. -- _Pycnanthus Kombo_ (~Baill.~) ~Warb.~, von Westafrika, von Sierra Leone bis Angola. Die 72% Fett enthaltenden Samen brennen wie Kerzen. _Virola surinamensis_ (~Rol.~) ~Warb.~ von Süd- und Mittelamerika, vom Amazonas und Guiana bis Martinique. Die 15 mm großen runden Samen (Ölnüsse, oil nuts, Ucuhubanüsse) sind Handelsartikel. Sie enthalten 73% Fett, das reich an Myristin ist und als Ölnußfett im Handel ist. Die Samen enthalten prächtig ausgebildete Aleuronkristalloide (~Tschirch~). Bau der Samenschale bei ~Tschirch-Hallström~. Das einen Ausfuhrartikel von Para bildende, von ~Warburg~ zu dieser Pflanze gezogene +Urukuba-+, +Ucuhuba-+, +Ucuaba-+, +Bicuiba-+, +Bicuhyba-+ oder +Ocubafett+, +Ocubawachs+, der +Virolatalg+, wird aber von ~Mikosch~ (in ~Wiesners~ Rohstoffen) zu _Myristica officinalis_ (~Mart.~) ~Warb.~ und der wohl damit identischen (?) _Virola Bicuhyba_ (~Schott~) ~Warb.~ -- der bekanntesten südamerikanischen Myristicacee -- gestellt, von denen die zweite jedenfalls ein Samenfett aus Brasilien in den Handel liefert (die Samen sind nicht Handelsartikel). Es ist reich an Myristinsäure (~Reimer~ und ~Will~) und riecht cacaoähnlich. Schmelzpunkt 42,5-43° (~Nördlinger~). (Die Anatomie bei ~Tschirch-Hallström~, die Keimungsgeschichte bei ~Fritz Müller~.) -- _Virola sebifera_ ~Aubl.~, Talgmuskatnußbaum mit 8 mm großen Samen (mit 40-50% Fett). ~Warburg~ glaubt, daß sich die Angaben ~Aublets~ (in Plant. de la Guayane) über Fettgewinnung aus dieser Art auf _V. surinamensis_ beziehen. Jedenfalls ist das sog. Virolafett dem oben erwähnten sehr ähnlich. -- Auch die peruanischen _Virola peruviana_ (A. D. C.) ~Warb.~ und _V. venosa_ ~Benth.~ sowie die _V. guatemalensis_ (~Hemsl.~) ~Warb.~ (Anatomie bei ~Tschirch-Hallström~) liefern Fett, ebenso _Dialyanthera Otoba_ (H. u. B.) ~Warb.~, die Moscada la Sᵃ Fé, das sog. +Otobafett+, die amerikanische Muskatbutter, die neben Myristin und Olein, Otobit (C₂₄H₂₆O₅) enthält (~Uricoechea~). -- Die Samen des Cujo, _Virola venezuelensis_ ~Warb.~ enthalten 47,5% Fett, das hauptsächlich aus Trimyristin besteht (~Thoms~ und ~Mannich~). Über fettliefernde Myristicaarten vgl. auch ~Wijs~, Vetten, Oliën en Wassen Beschreijv. Catal. Koloniaal Museum Haarlem 1906. =Lit.= ~Warburg~, Über die nutzbaren Muskatnüsse. Ber. pharm. Ges. 1892, 211. -- ~Jos. Moeller~, Über Muskatnüsse. Pharm. Centralh. 1880. -- ~Tschirch~ und ~Hallström~, Vergleich. anatom. Stud. über d. Samen d. Myristicac. u. ihre Arillen (Myr. fatua, malabarica, argentea, corticosa, cahyba, Bicuiba, subalulata, Teysmanni, glabra, Virola surinamens., guatemalens., sebifera. Horsfieldia Iryaghedhi, macrosoma, glabra, Knema intermedia, glauca). Arch. Pharm. 1895. -- ~Greshoff~, Teijsmannia 1890, 380. -- ~Tschirch-Oesterle~, Anatom. Atlas. -- ~Waage~ (Papuamacis). Ber. d. pharm. Ges. 1891, 140. Pharm. Centralh. 1893, 131. -- ~Warburg~ (Papuanuß), Engl. bot. Jahrb. XIII, 311. -- ~Busse~ a. a. O. -- ~Winton~, ~Ogden~ und ~Michell~ (Papuam.). Connect. Agric. Exper. Stat. 1898 u. 1899. -- ~Vorderman~, Pala lelaki. Teysmannia 1894. -- Pharmacogr. indic. -- ~Watt~, Dict. econom. prod. -- Myristica gibbosa u. Kingii. Agricultural Ledger 1900, Nr. 5. +Bombaymacis+: ~Tschirch~, Pharm. Zeit. 1881, 556. -- ~Frühling~ und ~Schulz~, Chem. Zeit. 1886, Nr. 34. -- +T. F. Hanausek+, Jahresber. d. Wien. Handelsakad. 1887 (Jahresb. d. Pharm. 1887, 109) u. Zeitschr. f. Nahrmunt. 1890, 77; 1894, Nr. 1. -- ~Hefelmann~, Pharm. Zeit. 1891, 122. -- +Waage+, Ber. d. pharm. Ges. 1892, 229 u. 1893, 164. Pharm. Centralh. 1892, 372. -- ~Tschirch~ und ~Hallström~, Arch. Pharm. 1895 (mit 3 Taf.). -- ~Hilger~ (und ~Held~), Z. chem. Charakt. d. Bombaymacis. Forschungsber. I (1894) 136. -- ~Held~, Z. chem. Charakt. d. Samenmant. d. Myristicaart., spez. d. sog. Bombaymacis. Diss. Erlangen 1893. -- ~Soltsien~, Pharm. Zeit. 1893, 467. -- ~Arnst~ und ~Hart~, Zeitschr. angew. Chem. 1893, 136. -- ~Busse~ a. a. O. -- ~Dymock~, Veg. mat. med. West. India 1883. -- ~Späth~, Forschungsber. 1895, 148. -- ~Muter~ u. ~Hackmann~, Pharm. Journ. 29 (1909) 132. -- ~Vogl~, Nahrungsm. (dort mikrochem. Reaktionen). -- ~Hooper~, The fats of indian nutmegs (Myr. canarica, malabarica, Bicuhyba, officinalis, surinamensis etc.). Agricult. Ledger 1907. +Bicuiba+: ~Brandes~, Ann. Pharm. 7 (1833) 52. -- ~Tschirch~ (Ucuhuba). Arch. Pharm. 1887, 619. -- ~Léwy~, Ann. chim. phys. (3) 13 (1845) 449. -- ~Peckolt~, Zeitschr. Öster. Apoth. Ver. 1865, 484. Arch. Pharm. 107 (1861) und 108. -- ~Reimer~ u. ~Will~, Ber. d. chem. Ges. 8, (1885), 2011. -- ~Valenta~, Zeitschr. ang. Chem. 1889, 3. -- ~Nördlinger~, Ber. d. chem. Ges. 1885, 2617. -- ~Stutzer~, Pharm. Centralh. 1887. -- ~Uricoechea~ (Otobafett), Lieb. Ann. 91 (1854) 369. -- ~Thoms~ u. ~Mannich~, Gewinnung von Myristinsäure aus d. Sam. v. Virola venezuelens. Ber. d. pharm. Ges. 1901, 263. -- ~Fritz Müller~ (Keimung), Ber. d. bot. Ges. 1887, 468. =Als Surrogate der Muskatnuß=, die aber kaum als solche bezeichnet werden können, führt ~Warburg~ folgende auf und bildet sie a. a. O. ab: +Calebassen-Muskatnuß+ von der Anonacee _Monodora Myristica_ ~Dunal.~ in Westafrika («Afrikanische Macisbohnen»). Die Samen enthalten ein äther. Öl, in dem sich l-Limonen, Myristicol, Pinen und Dipenten findet (~Thoms~, Bestandt. d. Samen von Monodora Myristica aus Kamerun, Arb. d. pharm. Inst. Berlin I, 1903). +Chilenische Muskatnuß+ von der Monimiacee _Laurelia sempervirens_ (R. et P.) Tul. in Chile. +Pflaumen-Muskatnuß+ von der Monimiacee _Atherosperma moschatum_ ~Labill.~, in Australien. +Madagassische Muskatnuß+ von der Lauracee _Ravensara aromatica._ ~Sonn.~ («nuces caryophyllatae», «clove nuts», «noix giroflé»). Vgl. ~Schär~, Notizen über Nuces caryophyllatae. Arch. Pharm. 223, 787. +Brasilianische Muskatnuß+ von der Lauracee _Cryptocarya moschata_ ~Mart.~ («noz muscada do Brasil»). +Guyana Muskatnuß+ von _Acrodiclidium Camara_ ~R. Schomb.~ in Brit. Guyana («Wilde Muskat», «Camara- oder Ackawai-Nuß»). +Californische Muskatnuß+ von der Conifere _Torreya californica_ ~Torr.~ («Californian nutmeg») von der Sierra Nevada (und _T. taxifolia_). Vgl. ~Torrey~, Pharm. Journ. 14 (1854) 83, ~Möller~, Pharm. Centralh. 1880. +Macisbohnen+, große, von _Acrodiclidium Puchuri major_ (~Mart.~) ~Mez.~ vom Amazonas («Pichurimnuß»). +Macisbohnen+, kleine, von _Aniba Puchury minor_ (~Mart.~) ~Mez.~ vom oberen Amazonas. 2. Laurinsäuregruppe. Die Vertreter dieser Gruppe enthalten neben Myristinsäure auch Laurinsäure, also Fettsäuren mit niedrigem Molekulargewicht. Sie geben daher eine hohe Verseifungszahl, und da sie nur wenig ungesättigte Fettsäuren enthalten, eine niedrige Jodzahl. Die Laurinsäure findet sich in den Lorbeerfrüchten, in den Früchten von _Cylicodaphne sebifera_ (~Gorkom~) und von _Mangifera gabonensis_ (~Oudemans~), im Cocosfett (~Görgey~, ~Oudemans~), im Walrat, den Pichurimbohnen (~Sthamer~), im Wachs der Beeren von _Myrica cerifera_ (~Moore~), im Fruchtfett von _Litsaea sebifera_, im Crotonöl (~Schlippe~, S. 582), in dem von _Coccus axin_ stammenden Axinfett (~Hoppe-Seyler~) und (in beträchtlicher Menge) im Fett des Fieberbusches (_Lindera Benzoïn_). Nach ~Partheil~ und ~Ferié~ ist sie in Fetten weiter verbreitet als bisher angenommen wurde. Sie fanden sie z. B. in beträchtlicher Menge in der Butter und dem Schweinefett. Sie kann aus den beiden zuerst genannten Materialien oder aus Tangkallafett, das 95,96% Trilaurin enthält, dargestellt werden (~Krafft~). Fructus Lauri und Oleum Lauri. =Syn.= Baccae Lauri, Lorbeeren, -- baccae κατ’ ἐξοχὴν sind baccae lauri -- die Pflanze: Lorbeer, Lore, -- Laurier commun. (franz.) -- bay tree, sweet bay, true laurel, laurel tree, roman laurel (engl.) -- alloro, lauro (ital.) -- laurel (span.) -- loireiro (port.) -- laurierboom (die Früchte: bakke-laarboontjes, oder kurz bakke-laar) (holl.) -- lagerbärsträd (schw.) -- lawrowoe derewo (russ.) -- δάφνη oder βαϊηά (gr.). Bei ~Homer~, ~Hesiod~, ~Theophrast~ und ~Dioskurides~: δάφνη, bei ~Plinius~, ~Scribonius Largus~ u. and.: laurus (die Alten bezeichneten mit laurus mehrere Pflanzen, auch z. B. Ruscusarten). -- Bei den späteren Griechen: κοκκόδαφνον, βάκας, δαύνη. -- Bei ~Avicenna~: granum ademest. -- Bei ~Abu Hanifa~: eldehmast (pers.), elrand (syr.). -- Bei ~Ibn Baithar~: gâr, elgâr, rand. -- Im Capitulare ~Carls~ (I, S. 620): lauros. -- Bei ~Albertus Magnus~ (I, S. 674) und der ~Hildegard~: laurus. -- Im Gothaer Arzneibuch: lorbere, loerbere, lorebere. -- In Circa instans: laurus. -- In der Alphita: laurus i. e. dampnis. -- Auch bei ~Serapion~, ~Bartholomaeus~ usw. (I, S. 646) dampnis oder damphius, dampnilion (oleum laurinum), damniechoticae (dampnothecae, dampnocoti = bacca lauri). -- Im Inventar ~Lefort~ (I, S. 805): bois (= baies) de lorier und uille de lorin (de bois de lorier). -- In der Frankfurter Liste (I, S. 812): baccarum lauri. -- Das in der Bibel vorkommende Wort ezrach (Psalm. 37, 35) bedeutet vielleicht Lorbeer. So wird es wenigstens vielfach übersetzt (~Tristram~). Ob kelil auf Laurus geht (I, S. 489), ist zweifelhaft. -- ~Royle~ hält das Malabatrum der Alten für Fol. Lauri (?). =Etym.= Laurus fraglich ob von luo, lavo (= waschen); deutete dann auf den Charakter des Baumes als reinigender Sühnebaum, wahrscheinlicher von dem kleinasiatischen δυαρεία oder von kelt. blawr oder lauer (= grün) -- δάφνη (wenn nicht aus einer kleinasiatischen Sprache) vielleicht von δέφω (= benetzen), also auf dasselbe wie oben (waschen) hindeutend, oder von einer Wurzel, die brennen bedeutet (~Legerlotz~), also durch aromatische Räucherung reinigender Baum (~Schrader~) oder von φαίνομαι (= glänzen) mit dem verstärkenden δα wegen der glänzenden Blätter (~Kanngiesser~). -- Lorbeer aus ahd. lôberi = Beere des Lôrboumes, lôr (lore) ist laurus, der wohl schon vor dem VII. Jahrh. in Deutschland bekannt war (~Kluge~). -- +althd.+ auch Lorblatt, +mhd.+ lôrber, lorberepaum, lorbaum, lorper, bekeler, +mnd.+ laurboum. -- Der Titel Baccalaureus ist angeblich von baccae lauri abgeleitet. =Stammpflanze und Systemat. Stellung.= =Laurus nobilis L.= Spec. plant. ed. I 369. (_L. vulgaris_ ~Bauh.~) Lauraceae, Lauroideae-Laureae. _Laurus_ hat nur 2 Arten, die obige und _Laurus canariensis_ (auf den Canaren und Madeira). Man unterscheidet von ihm folgende Varietäten: α _latifolia_ ~Nees~, β _lanceolata_ ~Meissn.~, γ _angustifolia_ ~Nees~, δ _undulata_ ~Meissn.~, ε _floribunda_ ~Meissn.~ =Beschreibung der Stammpflanze.= Der diklin-diözische Lorbeer erreicht eine Höhe von 5-10 m. In Italien wird er 5-6,5 m hoch, in Istrien und Dalmatien in Forstkultur bis 15 m. Er besitzt eine dichte, ästige, runde Krone und kahle glänzende grüne Zweige. Die kahlen, glänzenden, immergrünen, infolge zahlreicher Ölzellen durchscheinend punktierten Blätter sind 6-12 cm lang, oblong-lanzettlich, spitz oder stumpflich, am +Rande wellig+ (nicht gekerbt!) und tragen bisweilen auf der Rückseite in den Nervenachseln kleine Domatien (Milbenwohnungen). Die achselständigen Infloreszenzen bestehen aus 2-3 dekussierten Trauben, die 4-6 gelblich-weiße Blüten und eine Gipfelblüte besitzen. Die männlichen Blüten besitzen 4 Perigonblätter und 10 (8-12) in zwei- bzw. vierzähligen Wirteln angeordnete Stamina, deren große eiförmige Antheren nach Innen mit zwei Klappen aufspringen. Die Stamina des äußeren Kreises tragen am Filament je zwei gestielte Drüsen. In der Mitte der Blüte sitzt ein Griffelrest. Die weiblichen Blüten zeigen vier mit großen sitzenden Drüsen versehene Staminodien. Der einfächerige Fruchtknoten enthält ein anatropes hängendes Ovulum und trägt an der Spitze einen Griffel mit unregelmäßig gelappter Narbe. Der Lorbeer ist eine Charakterpflanze des Mittelmeerdrogenreiches. Er findet sich noch jetzt wild (und zum Teil verwildert) in Kleinasien, Syrien, Griechenland, Dalmatien, Istrien, Italien, Sardinien, Spanien, Marocco, Algier. Kultiviert wird er im ganzen Mittelmeerdrogenreich und hält noch in Westfrankreich (Cherbourg) und Südengland, ja sogar in Irland und Schottland und an geschützten Stellen an den Schweizerseen aus. In den wärmeren Teilen Italiens und auf Sardinien wächst Laurus wild, Bestände bildend; weiter nördlich wird er kultiviert, wie bei Brescia und Verona, am Gardasee (Gargnano, Maderno), doch sah ich wilden (oder verwilderten?) Lorbeer auch am Lago di Lugano. Blütezeit: März und April; Fruchtreife im Herbst. =Lit.= ~Baillon~, Monogr. d. Laurac. etc. Hist. d. pl. 1870. -- ~Perrot~, Contr. à l’étude histol. des Laurac. Thèse Paris 1891. -- ~Luerssen~, Med. pharm. Bot. (dort d. Lit. d. Familie). -- +Abbild.+: ~Berg-Schmidt~, Atlas, 2. Aufl. t. 125 (dort die botan. Lit.). -- ~Pabst-Köhler~, Medizinalpfl. t. 1. -- ~Bentley-Trimen~, Med. plant. t. 221. -- ~Nees von Esenbeck~ t. 132. -- ~Hayne~, Arzneigew. t. 18. =Morphologie der Droge.= Die beerenartigen Steinfrüchte (in Italien: coccole di lauro) sind meist eirund, seltener kugelig, c. 8-15 mm lang, oben leicht bespitzt, am Grunde mit einer hellen Stielnarbe, außen dunkelolivgrün bis braunschwarz, runzelig, glänzend, innen gelb, einfächerig, einsamig. Die dünne, spröde und leicht zerbrechliche Fruchtschale ist mit der zarten Samenhaut verwachsen. Der endospermfreie Samenkern zerfällt leicht in die zwei plankonvexen, hellzimtbraunen Cotyledonen, die am einen Ende die kleine Plumula und Radicula einschließen. Die Früchte schmecken balsamisch-gewürzhaft, bitter und etwas herbe. =Anatomie.= Die Epidermis des Pericarps der Drupa besteht aus 15-30 mik breiten getüpfelten Zellen, die ebenso wie die kleinzellige subepidermale Zellreihe einen in Chloral mit purpurroter Farbe sich lösenden Farbstoff führen. Spaltöffnungen sind wenig zahlreich. Das von (Spiralgefäße führenden) Gefäßbündeln durchzogene Mesocarp besteht aus dünnwandigem Parenchym, in dessen Zellen sich neben Chlorophyllkörnern braunrote Massen und Körner finden, die sich durch Eisenchlorid blau, durch Kali braungelb färben (~Vogl~) und, eingestreut in dieses, zahlreiche rundliche, 60-70 mik große +Ölzellen+ mit verkorkter Wand, die einen Öltropfen oder einen Harzklumpen oder ein strahlig-fächeriges Kristallaggregat (~Vogl~) enthalten. Das +Endocarp+ besteht aus großen, radialgestreckten, c. 75 mik hohen farblosen Palissadensklereïden mit buchtig-welligem Querschnitt. Die +Samenschale+ besteht, abgesehen von der derberen Epidermis, aus einer obliterierten zartwandigen Nährschicht, in der zarte Bündel verlaufen. Die Cotyledonen sind von einer derben Epidermis bedeckt, unter der eine kleinzellige, ebenfalls stärkefreie Schicht folgt, und bestehen vorwiegend aus derbwandigem Parenchym, dessen Zellen, eingebettet in Ölplasma, zahlreiche rundliche oder ovale, einfache oder (oft zu 2 oder 3) zusammengesetzte, c. 3-8 mik große Stärkekörner und ein unregelmäßiges, lappiges oder länglich-kantiges, 10-30 mik großes, oft mit den Stärkekörnern verklebtes Aleuronkorn enthalten, das sich mit Cochenille färbt (~Vogl~). Eisenchlorid färbt den Inhalt, besonders der peripheren Zellreihen, olivbraun. In das Stärkeparenchym eingebettet finden sich auch hier verkorkte Sekretzellen mit innerer Celluloselamelle, deren Sekret (bald flüssig, bald fest) hier wohl, wie bei den Blättern, in einer resinogenen Schicht entsteht (~Tschirch~ und ~Biermann~) und sich mit Safranin rot färbt. In dem Gewebe streichen zarte Bündel mit engen Spiralgefäßen, die von vereinzelten stabförmigen Librosklereïden begleitet werden. Letztere finden sich auch im Grundgewebe verstreut. Sie werden bis 120 mik lang und besitzen abgestutzte oder knochenförmige Enden und ein relativ weites Lumen (~Vogl~). Im Pulver prävaliert die Stärke. Als «Leiter» dienen die Palissadensklereïden der Fruchtschale. Verwechslung mit +Kokkelskörnern+ wird angegeben. Aber diese sind sehr bitter, kugelig-nierenförmig und zeigen aufgebrochen zwei keulenförmige Einstülpungen der Fruchtschale, um welche sich der halbmondförmige Samen herumlegt. =Lit.= ~Vogl~, Kommentar 1908 (ausführliche Beschreibung) und Nahrungs- u. Genußm. -- ~Moeller-Winton~, Mikroskopie, Fig. 433-436. -- ~Moeller~, Lehrbuch und Leitfaden. -- ~Planchon-Collin~, Drog. simpl. -- ~Wigand~, Lehrbuch. -- ~Tschirch~, Harze u. Harzbehälter. -- ~Rudolph Müller~, Ber. d. Bot. Ges. 1905, 292. =Handel.= Lorbeerfrüchte kommen vom Gardasee in Säcken von c. 90 kg, Lorbeerblätter aus der Levante in Ballen à 30, 50 und 100 kg in den Handel. Lorbeeröl, express. echt Gardasee ist in Kisten à 2 Can. à 18 kg und (das billigere) in Barrels von c. 200 kg im Handel (~Grossmann~). Lorbeerblätteröl war 1911 aus Dalmatien u. Syrien im Handel. +Hamburg+ importierte 1907: 179300, 1908: 191200 kg _Fol. Lauri_ besonders aus Griechenland, Kleinasien und (wenig) über Triest. =Chemie.= Eine neuere Gesamtuntersuchung der +Früchte+ fehlt. ~Bonastre~ fand (1824) in Prozenten: Wasser 6,4, unkristallisierbaren Zucker 0,4, Stärke 25,9, Harz 1,6, «Öl» 12,8, «Stéarine» 17,1, Wachs 0,12, äther. Öl 0,8, Asche 1,4 und das kristallinische +Laurin+ (Lorbeercampher, 1%), ~Grosourdi~ 22% Stärke, Lauretin (?) und Lauretinsäure (?). Die obere Grenze der Asche beträgt 4% (Pharm. austr. VIII). Der Fettgehalt der Cotyledonen beträgt 30 (~Flückiger~) bis 31,5%. An Äther geben die Früchte c. 25% ab, nach dem Verjagen des ätherischen Öles auf dem Wasserbade bleiben 21-23% zurück (~Möller~). Die Asche der Schalen beträgt 3,2, die der Cotyledonen 1,2%. Das ätherische Öl wird zu 0,8-1% angegeben. Das =Lorbeeröl= oder =Lorbeerfett=, =Oleum Lauri= (Ol. lauri expressum s. unguinosum, Oleum laurinum, Lorbeerbutter, Loröl, Lorettosalbe, huile oder beurre de laurier; laurel oil, bayberry oil; olio oder burro di lauro, olio d’alloro; laurierolie; δαφνέλαιον) wird durch Auspressen der zerkleinerten und erwärmten frischen Früchte oder durch Auskochen mit Wasser erhalten und vornehmlich am Gardasee und auch in Griechenland für den Handel dargestellt. Die Gewinnung des Öles wird in Italien am Gardasee, bei +Garguano+ und +Maderno+ ziemlich in Großem vorgenommen. Zu diesem Zwecke werden die frischen Lorbeeren zuerst gestoßen, dann einige Zeit mit Dampf erhitzt oder mit Wasser gekocht und zwischen erwärmten Platten gepreßt. Das erhaltene Öl wird im geschmolzenen Zustande absetzen gelassen, klar abgegossen, im Dampftrichter filtriert und in Fässern von c. 100 kg in den Handel gesetzt (~Ravasini~ 1911). Pharm. austr. VIII. verlangt das aus den frischen Früchten durch Auskochen mit Wasser und Auspressen gewonnene Öl. Lorbeeröl ist ein salbenartiges, körnig-kristallinisches, grünes Gemenge von Fett, Chlorophyll und ätherischem Öl, das unter dem Mikroskope neben Chlorophyllkörnern zahlreiche Fettkristalle erkennen läßt und sich beim Erwärmen auf dem Dampfbade (ja schon bei 40°) zu einer dunkelgrünen, aromatisch riechenden, bitter schmeckenden Flüssigkeit klärt. An heißen Sommertagen ist es halbflüssig. Im gleichen Gewicht Äther oder Benzol löst es sich zu einer trüben Flüssigkeit, die jedoch keinen merklichen Bodensatz absetzt. Spez. Gew.: 0,93317 (~Cloëz~), bei 98,5°: 0,8806 (~Allen~), Erstarrungspunkt: 24-25° und Schmelzpunkt: 32-36° (~Villon~, ~de Negri~) bis 30,2 (~Utz~), Säurezahl 3,96-10,42 (~Eisenstein~), 7,89-42,42 (~Dieterich~), 26,3 (~Lewkowitsch~), Verseifungszahl (mg KOH) 197,5-198,9 (~Allen~, ~de Negri~, ~Lewkowitsch~), 201 bis 208 (~Eisenstein~), 200-214 (Ph. austr. VIII), bei heißer Verseifung: 196,32 bis 254,80 (~Dieterich~), 200,9 (~Matthes~), Jodzahl 67,8-80,5 (~de Negri~, ~Lewkowitsch~), 49 (~Hübl~), 75-78,4 (~Wijs~), 82,2-82,43 (~Matthes~), nach ~Hübl-Waller~ 74,7-83,92 (~Utz~), Reichertzahl: 1,6 (~Allen~), Reichert-Meißlzahl 3 bis 3,2 (~Matthes~, ~Eisenstein~), 1,79-2,61 (~Utz~), Polenskezahl: 2,8, Acetylzahl (wahre): 5,108 (~Matthes~), Hehnerzahl (nach Abzug des Unverseifbaren): 85,8, Unverseifbares 1%; Brechungsexponent (bei 40°): 1,4645-1,4666 (Ph. helv. IV), 1,4643 (~Matthes~). Die Jodzahl der Fettsäuren liegt bei 81,6-82 (~Lewkowitsch~), 82,81-99,82 (~Utz~); Refraktion der Fettsäuren 1,4545-1,4550 (~Utz~). Die Zusammensetzung ist nicht genau bekannt (~Bonastres~ Lauretin, Laurelsäure, Staurolaurin, Stearolauretin, Phaïosinsäure sind unreine Körper). Meist wird das bei 45° schmelzende +Trilaurin+ (Laurostearin, ~Bonastre~, ~Marsson~), das Glycerid der +Laurinsäure+ (~Marsson~) als Hauptbestandteil angegeben (~Schiff~, ~Marsson~, ~Staub~); in geringeren Mengen finden sich darin die Glyceride der +Myristinsäure+ (~Marsson~, ~Staub~) und +Ölsäure+ (~Flückiger~, wird aber bestritten); fraglich sind Palmitin-, Stearin- und Linolsäure (~Staub~). ~Allen~ fand geringe Mengen flüchtiger Fettsäuren. Bei der Destillation im Vacuum tritt im Destillat Trilaurin auf (~Krafft~). Die von ~Marsson~ 1842 entdeckte, seidenglänzende Nadeln oder Schuppen bildende +Laurinsäure+ (C₁₂H₂₄O₂) kann als eine gesättigte Säure (S. 546) nach dem Verfahren von ~Partheil~ und ~Ferié~ über das Lithium- und Bleisalz von den ungesättigten Säuren getrennt werden. Das Unverseifbare («Harz» der früheren Autoren) besteht nach ~Matthes~ und ~Sander~ aus +Myricylalkohol+ (Melissylalkohol C₃₀H₆₂O), dem festen Kohlenwasserstoff +Lauran+ (C₂₀H₄₂, mit Bryonan verwandt), +Phytosterin+ (F = 132-133°) und einem +ungesättigten Öle+ mit der Jodzahl 191,95, das noch nicht rein erhalten werden konnte. Aus der Jodzahl des _Ol. lauri_ kann also nicht, wie dies ~Lewkowitsch~ tut, auf einen beträchtlichen Gehalt an Ölsäure geschlossen werden. Sie wird durch dies Öl, das einen sehr +charakteristischen aromatischen Geruch besitzt+, erklärt. In siedendem Alkohol löst sich Lorbeeröl so gut wie vollständig. Beim Erkalten scheidet sich Trilaurin ab (~Flückiger~, ~Lewkowitsch~). Läßt man das Filtrat verdunsten und nimmt das Fett weg, so scheidet sich bisweilen das +Laurin+ (~Bonastre~, nach ~Delffs~ = C₂₂H₃₀O₃ Lorbeerkampfer?) ab, das zu 1% im Fett enthalten sein soll und wohl ein unreines Gemisch der von ~Matthes~ erhaltenen Körper darstellt. ~Marsson~ und ~Staub~ konnten den Körper nicht erhalten. Das dem fetten Öle beigemengte +ätherische Öl+, das als «äther. Lorbeeröl aus Früchten» im Handel ist (~Schimmel~, ~Hänsel~), enthält viel (50%) +Cineol+ (wohl der Laurineenkampfer der früheren Autoren) neben l-+Pinen+ (~Wallach~) («Lauren» ist ein Gemenge beider). Die Nelkensäure (~Gladstone~) fand ~Blas~ nicht. +Eugenol+ (~Gladstone~) konnte ~Flückiger~ nicht darin finden, ist aber wohl darin. Bei der Destillation des Lorbeeröls mengt sich dem ätherischen Öle Laurinsäure bei (~Blas~, vgl. S. 546). Ob das äther. Öl des _Ol. laurin._ mit dem der Blätter ganz identisch ist, ist noch fraglich. Das Öl der Beeren ist etwas dickflüssiger und riecht weniger fein als das der Blätter (~Schimmel & Co.~). In diesem letzteren wurde gefunden: +Cineol+ (~Wallach~, 50% ~Thoms~ und ~Molle~), l-Pinen (~Wallach~), +Eugenol+ (frei [1,7%] und verestert [0,4%]), +Geraniol+ (~Thoms~), +Sesquiterpen+, +Sesquiterpenalkohol+, vielleicht auch +Phellandren+ (~Hänsel~), Buttersäure, Essigsäure, Valeriansäure und Capronsäure, die Säuren frei, die drei letzteren auch als Ester. Das _Ol. laurin._ gibt im Spektralapparat die charakteristischen Chlorophyllbänder (~Tschirch~). Daß das +Chlorophyll+ meist in ein Metallsalz (Zink- oder Kupferphyllocyanat ~Tschirch~) übergeführt ist, zeigt die Tatsache, daß eine Lösung des Lorbeeröls in Alkohol durch Salzsäure nicht verändert wird (reines Chlorophyll wird durch Salzsäure gelb, ~Tschirch~). Auch Ammoniak verändert die grüne Farbe nicht. Das indische Lorbeeröl (Indian Laurel oil) stammt von _Laurus indica_ (welcher?). Das dickflüssige Öl enthält 33% freier Fettsäuren, hat ein spez. Gew. 0,926, und erstarrt auch bei -15° noch nicht. Verseifungszahl 170, Jodzahl 118,6 (~de Negri~ und ~Fabris~, Chem. Zeit 1896 Rep. 161). =Lit.= ~Bonastre~, Baies de laurier et de leur mat. crist. Journ. pharm. (2) 10 (1824), 30 u. 11 (1825) 3. -- ~Brandes~, Arch. Pharm. 72 (1840) 160. -- ~Möller~ in ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Grosourdi~, Journ. chim. med. 1851, 562. +Fettes Öl+: ~Delffs~, Lieb. Ann. 88 (1853), 354. -- ~Bolley~, Ebenda 106, 229. -- ~Marsson~, Ebenda 41 (1842), 329. -- ~Sthamer~, Ebenda 53 (1848) 393. -- ~Görgey~, Ebenda 66, 303. -- ~Blas~, Ebenda 134 (1865). -- ~Schlippe~, Lieb. Ann. 105 114. -- ~Heintz~, Poggend. Ann. 92, 429 u. 93, 519. -- ~Oudemanns~, Journ. pr. Ch. 81, 356. -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. -- ~Schädler~ a. a. O. -- ~Staub~, Bestandt. d. Lorbeeröls. Diss. Erlangen 1879. -- ~Matthes~ und ~Sander~, Lorbeerfett, insbes. über d. unverseifb. Anth. Arch. Pharm. 1908, 165. -- ~Krafft~, Ber. d. chem. Ges. 13, 1415. -- ~de Negri~ und ~Fabris~, Zeitschr. Anal. Chem. 1894, 547. -- ~Schädler~, Zeitschr. Anal. Chem. 1894, 569. -- ~Schiff~ (Laurostearin), Ber. d. chem. Ges. 1874, 781. -- ~Partheil~ und ~Ferié~, Arch. Pharm. 1903, 552. -- ~Römer~, Diss. Halle 1882. +Äther. Öl+: ~Wallach~, Lieb. Ann. 252 (1889) 95. -- ~Gladstone~, Journ. chem. soc. 1864, 2, 1 (Jahresber. d. Chem. 1863, 547). -- ~Flückiger~, Pharmakogn. -- ~Blas~, Lieb. Ann. 134 (1865) 1. -- ~Brühl~, Ber. d. chem. Ges. 1888, 157. -- ~F. Müller~, Ebenda 1892, 547. -- ~Barbaglia~, Att. soc. toscan. scienz. nat. 1889 (Pharm. Journ. 1889, 824). -- ~Gildemeister-Hoffmann~, Äther. Öle S. 524. -- ~Staub~ a. a. O. -- ~Thoms~ und ~Molle~ (Äth. Öl der Blätter). Arch. Ph. 1904, 161; auch Arb. d. pharm. Inst. Berlin I, 1903 und ~Molle~, Diss. Basel 1903. -- ~Schimmels~ Ber. 1897, 1899, 1909. -- ~Hänsels~ Ber. Darstellung des Ol. lauri: ~Ménigault~ und ~Soubeiran~, Journ. pharm. 1835, 510 und ~Soubeiran~, Nouv. trait. d. ph. -- ~Duhamel~, Traité d. arbres etc. I, 351. -- ~Pereira~, Elements. =Prüfung.= Wenn man 1 Teil Lorbeeröl mit 2 Teilen Alkohol (90%) auf dem Dampfbade erwärmt, so darf die hierbei entstehende Abscheidung bei der mikroskopischen Prüfung keine Kristalle (Beschwerungsmittel) und auch keine Gewebsreste der Lorbeerfrucht oder andere Elemente zeigen. Sind fremde Farbstoffe zum Auffärben benutzt worden, so bewirkt Salzsäure oder Ammoniak einen Farbenumschlag in dem alkoholischen Auszuge des Öls. Es sind (durch Erwärmen mit Lorbeerfrüchten oder -blättern) parfümierte und (mit Curcuma, Indigo, Anilinfarben, Chlorophyllauszügen) gefärbte Surrogate aus Talg, Öl und Schweinefett im Handel beobachtet (das «Chlorophyll» des Handels enthält meist Kupferphyllocyanat ~Tschirch~). Derartige Falsifikate wurden schon im XVII. Jahrh. beobachtet (~Pomet~). Fremde Farbstoffe (z. B. Curcuma, Indigo) sind meist in Benzol nicht löslich. Curcuma wird durch Ammoniak braun, Teerfarben (oft) durch Salzsäure gelb. Schweinefett kann mit der Cholesterinacetatprobe nachgewiesen werden (~Bömer~, Zeitschr. Nahr. u. Gen. 1901, 1091). =Lit.= ~Utz~, Pharm. Praxis 2 (1903), 354. -- ~Morpurgo~, Riv. chim. farm. (Bull. sc. pharm. 1905, 255). -- Helfenberger Ann. 1900, 902, 1904. =Anwendung.= Lorbeerfett, beim Volke noch sehr beliebt, ist ein Bestandteil sog. Nervensalben (Ungt. rosmar. cps. und Ungt. nervinum) und dient zu Einreibungen bei Rheumatismus, auch gegen Krätze und in der Tierheilkunde («Alte lorie»). Die Hiengfongessenz ist ein kampferhaltiger parfümierter Auszug aus Lorbeerblättern und Früchten. Die ~Sturzenegger~sche Bruchsalze enthält _Ol. laurin._ Das rohe Fett scheint im Norden bei Samojeden und Lappen als Genußmittel beliebt zu sein (~Flückiger~). 1907 wurden in Plymouth vom Volke die Früchte als Abortivum benutzt (~Holmes~, Pharm. journ. 1910). Lorbeeröl gilt als gutes Insektenschutzmittel (Bremsenöl). Die Früchte wie die Blätter dienen als Gewürz. Der Geruch des Lorbeer gilt als den Verwesungsgeruch vertreibend. Lorbeerblätter dienen in Süditalien als Packmaterial für _Succus Liquiritiae_ und _Feigen_ (~Ravasini~). =Geschichte.= Lorbeergewächse sind in Mitteleuropa schon im Tertiär nachzuweisen. _Laurus nobilis_ ist im Travertin bei Rom und Florenz, in quaternären Tuffen (mit der Feige) in Frankreich gefunden worden. Während also der Baum in Südeuropa heimisch ist und von hier nach Osten vordrang, ist der eigenartige Kultus des Lorbeers von Kleinasien über Thrakien nach Europa gelangt. Der Lorbeer, die δάφνη der Griechen (so schon bei ~Homer~), wurde schon frühzeitig ein Götterbaum. Daphne, die liebliche Tochter des Flußgottes, von Apoll verfolgt, flehte um Verwandlung in einen Baum, und wurde in einen Lorbeer verwandelt -- mit seinen Blättern bekränzte Apoll sich dann die Schläfe. ~Apollo Katharsios~ erwählte ihn sich «als Zeichen der von ihm ausgehenden Reinigungen» (~Hehn~). Er ist der Baum der Sühne. Er findet sich bei allen apollinischen Heiligtümern, dem ~Apollo~ zu Ehren wurden die Daphnephorien (Sonnenfeste) in Theben gefeiert, um den Dreifuß der ~Pythia~ schlangen sich Lorbeerzweige; es war der prophetische Baum (μαντικόν φυτὸν). Der Lorbeerkranz schmückte den Seher und Sänger; das Lorbeerreis diente zur Abwehr von Unheil und Krankheit; das Kauen seiner Blätter verlieh prophetische Gaben, das Besprengen mit ihm reinigt (Lustratio), es schützt vor Blitzgefahr. Der Lorbeer ist das Symbol des Sieges, des Friedens, des Ruhms, der Tugend, der Jungfräulichkeit, der Wahrheit. ~Theophrast~ behandelt den Lorbeer eingehend, auch seine Kultur, und ~Hippocrates~ bediente sich der Früchte, der Blätter und des Öls. Auch in Italien war der Lorbeer, _Laurus_, immer Tempel- und Gartenbaum. Er findet sich denn auch jetzt noch gewöhnlich nicht in den Macchien und war ein heiliger Baum. ~Plinius~ sagt: «adeoque in profanis usibus pollui laurum et oleam fas non est.» Mit ihm schmückten die Römer nicht nur ~Apollo~ und ~Bacchus~, sondern auch die ~Libertas~, ~Salus~, ~Aesculap~ und ~Hercules~ und er spielte auch bei dem Feste des ~Mercur~ eine Rolle, war doch ~Daphnis~ ein Sohn des ~Hermes~. Mit _Laurus_ wurden die Sieger in Delphi und die Triumphatoren in Rom (wie noch heute wahres und vermeintliches Verdienst) gekrönt, wie schon ~Plinius~ (XV, 39) berichtet, welcher vielerlei von ihm erzählt und meint, daß er beim Brennen durch lautes Knistern einen Abscheu vor dem Feuer andeute. Sein Laub wird, was dem Blatte keines anderen Baumes geschieht (als _Laurea_), besonders vom Baum unterschieden. Er findet sich auf einem Wandbilde in Pompeji. ~Plinius~ berichtet auch (XV, 7), daß das Lorbeeröl entweder durch Pressen aus den Früchten oder aus den Blättern und Fruchtschalen mit dem Öl der unreifen Olive bereitet werde und daß man ihm bisweilen _Styrax_ und andere wohlriechende Stoffe zusetze. ~Dioskurides~ (I, 49) läßt δαφνέλαιον -- ebenso wie ~Palladius~ das _oleum ex lauri baccis_ -- durch Auskochen überreifer Früchte mit Wasser und Abschöpfen des Öls bereiten oder aus Olivenöl mit Lorbeerblättern oder Früchten. Er rühmt seine anregende Wirkung und weiß, daß es brechenerregend ist. Das _Oleum laurinum_ steht neben _Lauri bacae_ bei ~Scribonius Largus~ (I, S. 578), das δάφνινον ἔλαιον auch bei ~Alexander Trallianus~ (I, S. 591). Den Baum kennt ~Carl~ und ~Albertus Magnus~. Wir finden Lorbeeröl im Gothaer (I, S. 679), die Blätter des Lôrbaumes im Tegernseer Arzneibuch. Die ~Hildegard~ empfahl Früchte, Rinde und Blätter des Baumes, und zu gleicher Zeit wird auch das Öl in England genannt (von ~Alexander Neckam~) und in der Alphita (I, S. 652) steht bei _Laurus_: «Inde dampnocce et dampnelicon (i. oleum confectum ex oleo et baccis lauri)». Die arzneiliche Anwendung der Beeren erwähnten ~Ishak ben Amran~, ~Rhazes~, ~Elgâfaki~ u. and. Das Öl scheinen die Araber nicht benutzt zu haben. Ein Magenmittel der ~Hildegard~ enthält sowohl Rinde wie Blätter des Lorbeer, ein Mittel gegen Nierengeschwulst des Tegernseer Arzneibuchs (XIII. Jahrh.) die Blätter. ~Abu Hanifa~ erwähnt Lorbeerwein. Blätter, Früchte und Öl waren schon im Mittelalter beliebte Gewürze. So findet sich oile laurin in der Liste der 1359 und 1360 für den in London gefangen gehaltenen französischen König ~Johann~ angeschafften Gewürze (~Flückiger~, Pharmak. S. 931). Und 1434 nahmen die Dänen Schiffern aus Danzig u. a. auch drei Tonnen Lorole weg (Hansarecesse II, 1 [1876] 283, bei ~Flückiger~). Nach dem Luminare majus (I, S. 793) soll _Ol. laurinum_ durch Kochen der zerriebenen frischen Früchte mit Wasser, Kolieren, Abschöpfen des Öls und Wiederholen der Operation bereitet werden. Lumen apothecariorum läßt die Fruchtschale zuvor beseitigen. Bei ~Cordus~ (I, S. 800) finden sich _Lauri baccae_, _Laurus_ (_fol._) und _Laurinum oleum_. Er erwähnt, daß es besonders aus Italien komme und bisweilen aus Olivenöl, Lorbeerblättern und Grünspan nachgemacht werde. Im Braunschweiger Register (I, S. 814) steht _ol. de bacc. lauri_ +neben+ _ol. laurinum_ (wohl das mit _Ol. Olivae_ bereitete). Die _Lauri folia_, _daphnidis folia_ stehen in der Taxe von Worms (I, S. 817) und in anderen Taxen, das ätherische Lorbeeröl in der Frankfurter Taxe von 1582. In der Taxe von Bremen 1665: _Baccae lauri longae et rotundae_. Bei ~Berlu~ (I, S. 950) steht außer _baccae lauri_, _Ol. laurin. com._ und _Ol. laurin. fland._ ein _Oleum nervinum_, das wohl ein _Ol. lauri comp._ war. ~Pomet~ (I, S. 941), der von einer Verwendung der Früchte bei den Färbern und des Öls bei den Hufschmieden spricht, sagt, daß das Öl, das nur wenig in der Pharmazie benutzt werde, in dem Languedoc und der Provence, besonders in Caluisson bei Montpellier, aus frischen, mit Wasser gekochten Früchten dargestellt werde. Er knüpft an die häufige Verfälschung oder gar Substitution desselben durch graisse Verdit eine Betrachtung über Fälschung von Drogen überhaupt. =Lit.= ~Hehn-Schrader~, Kulturpfl. -- ~Gubernatis~, Mythologie d. plant. -- ~Flückiger~, Pharmakognosie. -- ~Mayer~, A library of national antiquities I, 1857. -- ~Tristram~, Nat. hist. of the bible. Fructus Cocos, Copra und Oleum Cocos. =Syn.= Kokospalme, Cocotier (franz.), Cocoanut, coconut (engl.), Klapper- oder Kalappusboom (hol.), Cocco (ital.), coco (span.), coquo, coqueiro (port.). Im malaiischen Archipel: kalapa, klapa, klopo (jav. mal. sund.) -- bei ~Rumphius~ und ~Thunberg~: kulapa -- andjoro (Saleijer) (Zahlreiche and. Namen in ~de Clercq~, Woordenboek) -- in Rioux: anur -- in Indien: nárel, nárryal (hind. beng.), náriyál (guz.), tenha (tam.), tengino-káyi (can.), tenga (malab.), pol, polgahá (singh.) (Zahlreiche weitere Namen im Dict. econom. prod. India) -- in Ceylon: tenkay. -- Chines.: ye-tsu (= Baum Ye, Kopf des Königs von Yüe) -- in Brasilien: inaiaguacuiba -- in Chile: cocotero. -- Cocos ist indeklinabel, also nicht Oleum cocois. Die _Nux indica_ des Mittelalters -- so z. B. bei ~Serapion~ (I, S. 605) und bei ~Cordus~ -- war in erster Linie die Cocosnuß. Jedenfalls die _N. i. magna_ (so in der Alphita). Bei ~Clusius~ (I, S. 786) steht _Coccus Nux indica_, im Nördlinger Register wird _Nux magna s. communis_ (die Cocosnuß) der _Nux indica_ gegenübergestellt. In der Braunschweiger Taxe (1574) heißt die Copra: _Nucis indicae maio. pulpa_, in der Kopenhagener Taxe (1619): _Nucis indicae medulla_. =Etym.= Cocos (seit ~Magalhaẽs~ in Gebrauch) von port. coco, coquo = Maske, da die +geschälte+ Frucht drei Öffnungen hat, die sie dem Gesicht einer Meerkatze (macoco) ähnlich macht (~Garcia da Orta~). Auch die Hindus nennen sie náral (= Kopf) und benutzen sie bei gewissen Ceremonien als Kopf für Puppen. Ich sah solche Puppen auch in Java. -- Der Sanskritname nalikera, narikela ging ins Persische (nargil) und Arabische (narjil) über und kehrt im Taïtaischen ari, haari und malaiischen nura und auch in dem argéllia bei ~Kosmas Alexandrinus~ wieder. -- Das sumatranische njior kehrt im philippinischen niog, im Bali njo, in Tahiti niuh und im madagassischen wua-niu wieder. -- Das malabarische tenga = Südfrucht. -- Bei den Sanskritschriftstellern finden sich die bezeichnenden Synonyme punga (= erheben), rasayana-taru (= Delikatessenbaum), trinaraja (= König der Gräser), scanda taru (= Stammbaum), dur aroha (= schwer zu besteigen), kurcha sekhara (= gekrönt mit einem Bündel Früchte), dridha phala (= harte Frucht habend), rasa phala (= saftige Frucht habend), dridha nira (= starken Saft habend), langala (= penis), sada phala (= immer Frucht), dirghawr kscha (= Langbaum), kalpawr kscha (= nützlicher Baum), -- Nucifera = Nüsse tragend, -- Copra (schon bei ~Garcia da Orta~) von khóprá (hind.), -- Coir, keir oder kair (sansc. kera) aus ind. kayaru (= flechten). -- Arrak (arak, arack, arrack) aus orraqua (ind. = Palmbranntwein, so schon bei ~Garcia~). =Stammpflanze und Systemat. Stellung.= =Cocos nucifera= L. Spec. pl. ed. I 1188. (und in beschränktem Maße auch _Cocos butyracea_ L. «La Palma real del Brasil»), Palmae, Ceroxylinae -- Cocoineae -- Attaleeae, Unterg. Eu-Cocos. Die 30 Arten der Gattung Cocos sind in Amerika heimisch (wegen _C. nucif._ s. Geschichte). _Cocos nucifera_ bildet zahlreiche Varietäten. Schon ~Garcia da Orta~ erwähnt zwei, von denen die eine zur Bereitung des Palmweins (çura), die andere wegen der Früchte gehalten wird. ~Rumph~ hat 10 Varietäten _Calappa_. ~Blume~ nennt in der Rumphia 18 auf den Sundainseln und 39 auf den Philippinen. Die Varietäten haben verschiedenen Wuchs und verschieden große Früchte. Im malaiischen Archipel unterscheiden die Eingeborenen durch besondere Namen besonders die Var. _alba_, _canarina_, _cupuliformis_, _eburnea_, _machaeroïdes_, _macrocarpa_, _pumila_, _regia_, _rubescens_, _saccharita_ und _viridis_ (~de Clercq~). Weitere in ~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpflanzen, S. 148. Dort auch die ceylanischen Varietäten. Zur Coirbereitung dienen besonders die Var. _rutila_, _cupuliformis_ und _stupposa_. Die Varietäten von Ceylon, Nouméa, den Seychellen, Pondichéry, Mayotte, Madagaskar und Sansibar beschreibt ~Prudhomme~. Ceylon hat 8, Neu-Guinea und Bismarckarchipel 10 bis 12, Samoa 6. =Beschreibung der Stammpflanze, Morphologie und Anatomie der Frucht.= Die Cocospalme bildet einen schlanken, in leichtem Bogen aufwärts strebenden, bis 25 m hohen Baum, an dessen durch Blattnarben geringeltem, an der Basis angeschwollenem und dort mit Adventivwurzeln besetztem Stamme ich niemals Epiphyten sah. Seine riesige, aus 10-30, bis 4 ja 6 m langen Blättern bestehende schöne, im Umriß kreisförmige Krone scheint fast zu schwer für den dünnen Stamm (Fig. 220, vgl. auch I, Fig. 19 u. 32 u. Taf. IV). In den Blattachseln stehen die bis 2 m langen monözischen, von einer meterlangen Spatha bescheideten Blütenkolben, meist zu mehreren, die mit unscheinbaren, gelblichen, männlichen, 6 Stamina und 6 lanzettliche Perigonblätter enthaltenden Blüten besetzt sind und nur am Grunde ansehnlichere, gelblich-grüne, weibliche Blüten tragen, die, umgeben von derben Perigonblättern, einen aus drei Fruchtblättern bestehenden Fruchtknoten mit sitzender Narbe zeigen. Jeder Fruchtstand, von denen die Palme mehrere bildet, enthält 10-30 Früchte. [Illustration: Fig. 218. _Cocos nucifera_ mit Früchten beladen. [Koloniaal-Museum Haarlem.]] Die meist kopfgroße, bis 30 cm lange, eiförmige, stumpf-dreikantige Frucht, welche in 6-8 Monaten zur Reife kommt, ist eine einfächerige, einsamige Drupa (Steinfrucht, also fälschlich: Cocos+nuß+ genannt). Zwei Fächer des Fruchtknotens schlagen fehl. Das Epicarp ist derb, graubraun und glatt und infolge eines Wachsüberzuges von Wasser nicht benetzbar. Die Frucht kann daher, ohne daß sie leidet, durch die Meeresströmungen weithin getragen werden. Das Mesocarp ist bis 5 cm breit, grobfaserig. In ein aus getüpfelten Zellen bestehendes, schon beim Trocknen der Frucht schwindendes Grundgewebe sind zahlreiche, von derben Bastbelegen bescheidete Gefäßbündel eingebettet, die als =Coïr= oder Cocosfaser Verwendung finden. Die Bastfasern der Coirbündel werden von Sklereïden und Kiesel-Stegmata begleitet. Das steinharte, 0,3 bis 1 cm dicke, aus braunen, stark verdickten Sklereïden bestehende +Endocarp+ zeigt drei große Keimlöcher (K Fig. 219). Mit ihm verwachsen ist die dünne braune Samenschale und das an diese sich anschließende 0,7-2 cm dicke weiße, derbfleischige +Endosperm+, das aus der Steinschale herausgelöst und von der Samenschale bedeckt unter dem Namen =Copra= in den Handel kommt und das Cocosöl liefert. Innerhalb desselben findet sich eine trübe Flüssigkeit, die +Cocosmilch+, die wohl auch zum Endosperm zu rechnen ist, jedenfalls bei der Keimung aufgebraucht wird. Die unreife Frucht ist ganz mit dieser Flüssigkeit erfüllt. Aus ihr setzt sich erst allmählich das feste Endosperm am Rande ab. In den reifen Früchten des Handels ist das milchige Endosperm meist eingetrocknet und der Same besteht daher vornehmlich aus dem hohlkugeligen äußeren Endosperm, das als dicke Schale den zentralen leeren Hohlraum umschließt (Fig. 219). Das äußere Endosperm ist von einer mehrreihigen, aus mit braunem Inhalt versehenen Zellen bestehenden, von Gefäßbündeln durchzogenen Samenhaut bedeckt, die allmählich über dünnwandige Sklereïden hin, die der Copra des Handels oft noch außen anhängen, in die innere Sklereïdenschicht des Endocarps übergeht. Das Endosperm besteht vorwiegend aus stark radialgestreckten, dünn- und glattwandigen Zellen, deren Wand mit Jodschwefelsäure blau wird und dabei Spiralstreifung hervortreten läßt. Die Zellen enthalten Fetttröpfchen und -massen, zierliche Büschel von Fettkristallen und große Aleuronkörner mit sehr zahlreichen sehr kleinen Globoiden und einigen wohlausgebildeten Kristalloiden. Der Fettinhalt erfüllt die Zellen nahezu ganz. Große rundliche Tüpfel werden meist erst bei Behandlung mit Kali sichtbar. Der innerste Teil des Endosperms besteht aus mehr rundlichen, dickwandigeren, die an das Lumen grenzende Partie aus obliterierten Zellen. Der +Keimling+ ist klein und liegt in das Endosperm eingebettet unter dem mit einem Deckel verschlossenen Keimloch des nicht fehlgeschlagenen Faches. Das Mesocarp beträgt 30-57,3%, die Steinschale 11,6-19,6%, das Endosperm 18,5-37,8%, die Cocosmilch (bei unreifen Früchten) 12-13% (~Bachofen~). [Illustration: Fig. 219. _Cocos nucifera_, Frucht geöffnet. Epi derbes Epicarp, Mes faseriges Mesocarp (Coir), End hartes Endocarp, T braune Samenschale, Alb weißes Endosperm (Copra). Die die Höhlung erfüllende Cocosmilch ist ausgeflossen. [Nach +Winton+.]] Die Cocospalme trägt das ganze Jahr über Blüten und Früchte. Sie liebt die Meeresnähe, ist daher auf allen südasiatischen Inseln reichlich zu finden. Bei vielen kleineren, z. B. den Koralleninseln, bildet sie das wichtigste Glied der Vegetation. Bei den größeren, wie Java und Ceylon, bevorzugt sie unbedingt die Küsten, ohne jedoch im Inneren ganz zu fehlen. Die am Küstenrande wachsenden sah ich oft schräg gegen das Wasser geneigt. Die Anbaugrenze liegt etwa 150 km von der Küste. Sie braucht nicht zu geringe Luftfeuchtigkeit und ziemlich hohe gleichmäßige Temperatur (Mittel: 22° C.). Sie liebt brakigen Boden, Wind und Sonne. In Ceylon traf ich Cocos noch im Hochland des Inneren und in Java in den Preangerregentschaften, z. B. bei Bandoeng. Die Keimung erfolgt in der Weise, daß der Cotyledon, als Saugorgan fungierend, in die die Cocosmilch enthaltende Höhlung hineinwächst, diese schließlich ganz ausfüllend, und die Plumula und Radicula den Deckel des Keimloches beiseite schieben. Die ersten Blüten erscheinen im vierten Jahre, etwa im 15.-20. Jahre erreicht der Baum seinen höchsten Ertrag, der dann bis ins 60., ja 100. Jahr (meist etwa 50-80 Jahre lang) erhalten bleiben kann. Ein Baum kann bis 200 Früchte jährlich hervorbringen. Der Durchschnittsjahresertrag eines Baumes sind 60 Früchte (~Semler~, 50-70 ~Tschirch~), der Durchschnittsmonatsertrag in Java 5-10 (~Tschirch~). Man erntet nur vollreife Früchte. [Illustration: Tafel XX. Melanesische Arbeiter bei der Coprabereitung. [Aus Preuß, Plantagenkultur auf Samoa.]] Das von Cocospalmen bestandene Areal schätzt ~Ferguson~ 1910 auf 1582000 ha. Die meisten finden sich auf Ceylon (307500 ha), das eine wahre Cocosinsel ist und mehr als 50 Mill. Cocos enthält, -- ich sah dort Cocoswälder von 10 Meilen Länge, Polgahawela ist nach der Cocos benannt -- ferner Südamerika (202000 ha). Dann folgt Britisch Indien (Madras, Malabar, Coromandel), die Sundainseln (Java: 210000 ha), die Philippinen (170000 ha), Neu Guinea, Samoa, die Fidschi- und die pacifischen Inseln, Zentralamerika, Westindien, Columbien (Carthagena), Siam, Indochina, Ostafrika, Madagaskar, Sansibar und Mauritius, Westafrika (Togo). Von französischen Kolonien kommen in Betracht: Senegal, Martinique, Réunion, Tahiti, franz. Guyana, franz. Indien und Neucaledonien. Die Cocospalme stellt keine großen Anforderungen an den Boden. Sie ist «nützlich, anmutig und bescheiden» (~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpfl.). =Lit.= ~Martius~, Hist. nat. palmar. III, 123, t. 62, 75, 88. -- ~Miquel~, Flor. Ned. Ind. -- ~Drude~ in Flora Brasiliens. und Engl.-Prantl, Pflanzenfam. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- ~Ferguson~, Ceylon Handbook und Coconut planters manual. Colombo. -- ~Sadebeck~, Die Kulturgewächse d. deutschen Kolonien 1899. -- ~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpflanzen (dort die Kultur beschrieben). -- ~Van Gorkom~, Oostind. Cultures. -- Bijdragen tot de kennis van den kocospalm in Bull. 41 des Kolon. Museum Haarlem 1909 mit Beiträg. v. ~van Oijen~, ~Tabel~, ~Wong Tani~, ~Welborn~ und ~Bakker~ (mit Abbild.). -- ~H. Zaepernick~, D. Kultur d. Kokospalme, Tropenpflanzer, Beihefte Nr. 6, 1911. -- ~Watt~, Dict. econom. prod. of India (Kultur in Ostindien). -- ~H. Marshall~, Contribut. to a natural and economical history of the Coconut tree. Mem. Wernerian nat. hist. Soc. -- The +Coconut Palm+. Bureau of Science of the Philippines Government. -- ~Cook~, History of Coconut Palm in America. 14 pl. Washington 1910. -- ~Copeland~, On the water relations of the Coconut Palm. -- ~Walker~, The Coconut and its relation to the production of oil Manila 1906. -- ~Prudhomme~, Le cocotier. Cult. industr. et commerce dans les principaux pays de product. Coprah, huile, fibre de Coco et dérivés divers. mit 80 phot. Paris 1906. -- ~P. Hubert~, Le cocotier 1906. -- ~Preuss~, Die Cocospalme u. ihre Kultur. 1911 (m. zahlr. Abbild.). +Abbild.+ Ältere bei ~Rheede~, Hort. malab. t. 1-4 und ~Rumphius~, Herb. Amb. -- ~Berg-Schmidt~, Atlas 2. Aufl. t. 143 (dort weitere Lit.). -- ~Köhlers~ Medizinalpfl. -- ~Sadebeck~ a. a. O., Fig. 15-19. -- ~Tschirch~ a. a. O., t. 94. -- Bull. 41 des Kon. Mus. Haarlem. Auch auf zahlreichen Titelblättern (Tropenpflanzer, ~Häckels~ Reisebriefe) findet sich Cocos. -- Karte über die Verbreitung der Cocospalme in ~Scobel~, Handelsatlas. Anatomie: ~Winton~, Anat. of the fruit of Coc. nuc. Amer. Journ. sc. 12 (1901), 538. Am. Journ. pharm. 1901, 523. -- ~Moeller~, Rohst. d. Tischler- u. Drechslergew. 1884. -- ~Moeller-Winton~, Mikroskopie, Fig. 510-519 (dort weit. Lit.). -- ~Pfitzer~ (Keimung), Ber. d. Botan. Ges. 1885, 32. -- ~Wittmack~, Die Keimung der Cocosnuß. Ber. d. Bot. Ges. 1896, 145. -- ~Collin-Perrot~, Residus industr., Fig. 4 u. 5. =Pathologie.= Es liegen verschiedene Angaben vor über Pilze, welche bei Erkrankungen der Stämme von _Cocos nucifera_ beobachtet wurden (_Pestalozzia Palmarum_, _Pythium palmivorum_, _Thielaviopsis ethaceticus_) und dadurch auch indirekt den Fruchtertrag beeinträchtigen mögen (~Ed. Fischer~). Die tierischen Schädlinge der Cocospalme in ~Watt~, Diction., bei ~Welborn~ (in Bull. 41 d. Kolon. Mus. Haarlem), ~Zäpernick~ (a. a. O.) und ~Volkens~ (Über eine Schildlauskrankheit d. Cocospalmen in Togo u. auf d. Karolineninsel Yap. Notizbl. d. k. bot. G. Berl. Nr. 25 [1901]). -- ~Schwartz~, Bekämpf. der Cocospalmen-Schildlaus (Aspiodotus destructor) Tropenpfl. 1909, 114, sowie bei ~Prudhomme~ a. a. O. In Samoa ist Cocos frei von Krankheiten (~Preuss~). Ratten, fliegende Füchse, Wildschweine, Kakadus und Ameisen, sowie eine große Wespe, ein Käfer (_Promecotheca_), ein Nashornkäfer sind ihre größten Feinde. Besonders finde ich genannt die Käfer: _Oryctes_, _Xylotrupes_, _Pimelotus_, _Scapanes_, _Oryctoderes_, _Rhynchophorus_. Gegen zweifüßige Diebe sah ich in Ceylon, wo die Cocosgärten Nachts bewacht werden, eine ingeniöse Einrichtung. Die Stämme trugen auf halber Höhe ein trockenes Cocosblatt, dessen Mittelrippe von unten nach oben verlief und dessen Fiedern zu je 3-4 zusammengenommen um den Stamm gelegt waren, wodurch eine mehrere Meter lange Röhre entstand. Sobald ein Dieb sie erreicht, weckt er durch das raschelnde Geräusch, das hierbei entsteht und das in der stillen Tropennacht weithin vernehmbar ist, den Wächter. =Kultur und Erntebereitung.= Die Kultur ist einfach. Doch braucht die Palme Pflege, besonders Bewässerung. «Die Cocos tragen nicht, wenn du nicht zu ihnen gehst und mit ihnen sprichst», sagt der Singhalese. Düngung steigert den Ertrag von 40-50 auf 80-100 Früchte pro Baum. (Über die Düngungsversuche vgl. bes. ~Prudhomme~ a. a. O.). Die Aussaat erfolgt in Keimbeeten in Salz und Asche enthaltenden, lockeren Boden, aus dem die Pflanzen nach 7 bis 9 Monaten an den definitiven Standort gebracht werden. In Java sah ich die Früchte zum Keimen am First der Häuser oder an Bäumen aufgehängt, um sie gegen Bodenungeziefer zu schützen. Ich traf die Cocospalme in Ceylon und Java in Kampong- und Plantagenkultur, sog. Klappertuins (I, Taf. IV, vgl. auch I, S. 49), und die gleichen Formen der Behandlung finden wir in allen übrigen tropischen Gegenden der Erde. Oft trifft man Baumwolle, Yams, Bataten, Taro, Bananen, Lemongras, Ricinus, Maranta, Erdnuß, Sesam, Mais, Sisalagave, Ananas als Zwischenpflanzen (~Semler~). Obwohl der Baum das ganze Jahr trägt, erntet man doch nur 4-6mal im Jahr. Wie schon ~Garcia da Orta~ (I, S. 735) berichtet, besteigen die Eingeborenen den Baum entweder mit Steigriemen (I, Fig. 189) oder indem sie Stufen in den Baum einhauen und auf diesen emporklettern (Fig. 220). In Java binden sich die Eingeborenen auch die Füße an den Gelenken zusammen und erzielen so eine greifende Gabel. Auf den Sundainseln läßt man bisweilen die Früchte von abgerichteten Affen pflücken oder liest die reif abfallenden «todtreifen» Früchte vom Boden auf. Vor der Verarbeitung trocknet man die Früchte einen Monat. Ein Arbeiter kann täglich 800 bis 1000 Früchte aufbrechen und schälen. Das Brechen der Steinschale erfolgt mit der Axt, mit Steinen oder Holzschlägeln, die +Copra+ (coprah, copperah) wird mit einem gebogenen Messer herausgeholt (Taf. XX) und an der Sonne in Einrichtungen, ähnlich denen zur Trocknung der Chinarinde (I, Fig. 107) oder in Trockenhäusern (Taf. XXI) getrocknet. 1000 Nüsse geben c. 250 kg Copra. Die Coprahdarren dürfen nur mit Cocosschalen geheizt werden, die ein rauchloses Feuer geben, sonst erzielt man keine weiße Copra. In Cochin wird nur in der Sonne, in Ceylon nur auf Darren getrocknet. Man schneidet hier mit einem schweren Messer die Steinschale genau in zwei Hälften und trocknet in diesen. Man unterscheidet weiße, gelbe und schwarze Copra. Nur vollreife Früchte liefern weiße Copra. [Illustration: Fig. 220. Beklettern der Cocospalme auf eingeschnittenen Stufen zum Herabholen der Früchte. [Koloniaal-Museum, Haarlem.]] Auf den Südseeinseln erfolgt die Gewinnung des +Cocosöls+ für den Gebrauch der Eingeborenen in sehr primitiver Weise. Man wirft die Kerne auf Haufen und sammelt das ausfließende Öl in in die Erde gesetzten Gefäßen oder verwendet einen hohlen Baumstumpf als «Ölpresse», indem man die Kerne mit Steinen beschwert. Auf Diego Garcia werden primitive, von Tieren an langer Deichsel getriebene Mühlen benutzt (vgl. I, Taf. XVII). Ähnliche Mühlen sind da und dort auch in Ceylon noch in Gebrauch (I, Taf. XVI). Im Handel ist nur aus der Copra, dem getrockneten Endosperm, gepreßtes Öl. Es wird dies sowohl in Indien (Ceylon: Colombo, in Bombay und an der Malabarküste: Cochin) wie in Europa (Marseille, Mannheim, Bremen, Harburg, Magdeburg, Groß Gerau und in England) fabrikmäßig dargestellt. In Indien wird das Öl entweder in der Weise gewonnen, daß man die in der Sonne getrocknete Copra zu einem Brei zerstampft, diesen mit Wasser auskocht und das Öl abschöpft oder indem man die gemahlene Copra in meist hydraulischen Plattenpressen auspreßt. Cocosöl wird jetzt sogar in den Tropen (Ceylon, Java) in vielen zum Teil ganz modern eingerichteten Fabriken gepreßt, die auch zugleich Coir verarbeiten und aus dem Öl Seife fabrizieren. Zu einer modernen Cocos-Ölmühle gehören: Eine Schneidemaschine zum Zerkleinern der Kerne, eine Mühle, um die Schnitzel zu Brei zu verreiben, eine Dampfpfanne, um den Brei auf 50 bis 80° zu erwärmen, eine hydraulische Presse zum Auspressen des Öls, eiserne Klärbottiche und eine Filtrieranlage. Ferner Luftdruck-Akkumulatoren, Saattransportvorrichtungen, Desintegratoren und Saatwärmer. [Illustration: Tafel XXI. Copradarre der deutschen Handels- und Plantagen-Gesellschaft. [Aus Preuß, Plantagenkultur auf Samoa.]] «Die Cocosölgewinnung sah ich in den großen Hultsdorf Mills in Colombo. Die von den Natives gesammelte Copra wird in Kähnen auf Kanälen, die bis zur Mill führen, oder Ochsenkarren in die Mill gebracht. Nach dem Ausschütten werden die Coprahaufen in die Coirsäcke der Mill gefüllt, und, wenn feucht, auf den großen Zement-Barbacues nachgetrocknet, dann wandert die Copra in die Ölmühle. Hier wird sie in der Grobmühle, die aus einem in einem Zylinder laufenden Rade mit ⅜ Zoll großen Zähnen besteht, zunächst grob zerkleinert und durch geeignet angebrachte Öffnungen gleichzeitig gesiebt. Das grobe Pulver wandert nun in die erste Presse. Diese ist wie alle anderen eine hydraulische. Man bringt c. 15 Lagen des groben Pulvers abwechselnd mit Stahlplatten und Korbgeflecht in die großen zylindrischen, an der Außenwand durchlöcherten Preßgefäße und läßt die Presse von unten nach oben gehen. Sobald die Platten anziehen strömt ein finger- bis armdicker Strahl in die darunter verlaufenden Rinnen und von dort in die Sammelgefäße (Tanks) in der tieferen Etage. Das ausfließende Öl dieser ersten Pressung ist das beste. Nun werden die Preßkuchen in Schneidemaschinen zerkleinert, im Vorwärmer durch Dampf vorgewärmt und in Cylindersieben gesiebt; das feinste Pulver geht nun in die zweite Presse, das noch nicht genügend zerkleinerte wird weiter zerkleinert und zwar je nach der Größe entweder durch platte, aufeinander ruhende Hartwalzen -- die feineren Partien -- oder zwischen großen Walzen, welche die gröberen, etwa erbsengroßen Stücke flach pressen, letztere werden alsdann in Kollergängen unter großen, runden Graniträdern vollends zertrümmert. Das so gewonnene grobe Pulver wird nun vorgewärmt, das gröbste geht in die erste, das feinere in die zweite Presse (Finishpresse). Die fertigen Preßkuchen werden schließlich in den Shaping-presses mit leichtem Druck in Formen gepreßt und gehen alsdann in die Schlußpressen, wo sie unter stärkstem Drucke ihre definitive Form erhalten. Diese außerordentlich stickstoffreichen «Cocosnußpreßkuchen» werden sowohl als Futtermittel als auch namentlich zum Düngen viel verwendet. Das Cocosöl, besonders das der zweiten und späteren Pressungen wird durch Beutel aus dichtem Baumwollengewebe filtriert. Das beste ist nahezu farblos und besitzt, wenn die Copra möglichst frisch zur Presse kam, auch kaum einen Geruch. Die späteren, besonders die warmen Pressungen sind gelblich und besitzen einen mehr oder weniger starken, unangenehm süßlichen Geruch» (~Tschirch~, Ind. Heil- u. Nutzpfl.). Cocosfett wird bisweilen in Europa durch Pressen in Olein oder Cocosöl (zur Seifenfabrikation) und Cocosstearin zur Kerzenfabrikation getrennt. Der Handel unterscheidet drei Sorten: +Cochinöl+, die beste, von der Malabarküste, von sorgfältig kultivierten Pflanzen, enthält weniger freie Fettsäuren als das +Ceylonöl+. Das geringste Öl ist das an freien Fettsäuren reiche +Copraöl+, das aus der in der Sonne oder in Öfen getrockneten Copra gepreßt wird, die in großen Mengen von Ceylon, Java, den Karolinen, Marianen, den Palau- und Marschallinseln, Samoa u. and. exportiert wird. Da «Cochinöl» Qualitätsbezeichnung ist, so kennt der Handel auch australisches Cochinöl und Mauritius-Cochinöl. Das aus dem frischen Endosperm kalt gepreßte Öl (Klapperöl) ist nicht Handelsprodukt. Es wird in Indien als Speisefett verbraucht. Von den Cocospreßkuchen unterscheidet der Handel drei Sorten: weiß, halbweiß und ordinär, sowie graues Cocosmehl, das den Rückstand der Extraktion mit Schwefelkohlenstoff darstellt. Bei der Darstellung der +Desiccated coprah+ schält der Arbeiter erst die Faserschicht ab, sprengt mit einem geschickten Schlage die Steinschale von dem Endosperm ab und schält mit einem eigenartigen Hobel (abgebildet im Tropenpflanzer 1909, 459) die braune Samenhaut ab. Der schneeweiße Hohlkern wird dann in Maschinen geraspelt und in Trockenöfen getrocknet. Die +Coirfaser+ (in Java mumbang, rambok oder sabut) wird ähnlich wie Flachs behandelt. Man bringt die Faserschicht der Frucht (Husk) einige Monate in stehendes Wasser (Röste), wäscht und klopft («bricht») die getrockneten Fasern mit hölzernen Hämmern. Dadurch wird das Grundgewebe und oft auch der Siebteil der Bündel zertrümmert, so daß die Coirfaser des Handels, die 20-30 cm lang ist und vorwiegend aus den braungefärbten Bastbelegen besteht, hohl ist (Abbild. bei ~Wiesner~ vgl. auch S. 256) und daher auf Wasser schwimmt. Einzelne Bastbündel führen keine Gefäßbündelelemente. Neuerdings erfolgt die Herstellung der Coirfaser in Fabriken in Röstgruben, mit Rollmühlen und Hechelmaschinen. Diese Faser wird auch mit SO₂ gebleicht. In Ceylon unterscheidet man Rope, Yarn und Fibre. 13-15 Nüsse liefern 1 kg Coir. Coir wird in Brit. Indien, Ceylon, Südamerika, Sansibar und neuerdings auch, in Dar-es-Salam produziert, jetzt aber auch in europäischen und amerikanischen Fabriken aus dem Mesocarp (Roya) der importierten Früchte dargestellt. Die vorwiegend aus Sklereïden bestehende +Steinschale+ wird, nachdem die Copra und die Faserschicht entfernt wurde, für Gefäße und Drechslerarbeiten benutzt. Ich habe aus Java aus Cocosschalen gefertigte Löffel, Schalen und Becher mitgebracht. Aus den Blütenständen wird durch Anzapfen ein zuckerreicher Saft (jagra, jaggery) und Zucker gewonnen, der gegoren +Palmwein+ (toddy, in Indien çura) liefert (Beschreibung I, S. 1018). Durch Destillation gewinnt man aus letzterem +Arrac+ (100 l Toddy liefern 25 l Arrac), durch Sauerwerden +Essig+. Die Benutzung der jungen Blattknospen als +Palmkohl+ sah ich nirgends. Da der Baum durch Ausschneiden der Gipfelknospe zugrunde geht, ist seine Gewinnung auch zu widerraten. =Lit.= Siehe oben S. 703 und ~Tschirch~ a. a. O. Ferner ~Ferguson~, All about the coconut-palm. Colombo. -- Tropenpflanzer 1898, 1899, 1900, 1909. -- ~Massignon~, Fabricat. du beurre de Coco comestible aux colonies. Bull. Jard. col. Paris 1901 (1) 266. -- ~Preuss~, Kulturpfl. auf Samoa. Tropenpfl. Beiheft 3, 1907. -- ~van Eeden~, Plantaardige Vezelstoffen. Kol. Mus. Haarlem. -- Cocosölindustrie, Lahore Trib. Oil, Paint and Drug Rep. (Chem. Rev. 1906, 114). =Handel.= Die Copra wird entweder in Säcken versandt oder ohne Verpackung einfach in den Schiffsraum geschüttet. Ceylon kann jährlich c. 800 Mill. bis 1 Milliarde Cocosnüsse erzeugen und exportiert bis 17 Mill. Ceylon exportierte 1894: 8747000 Stück frische und 42700 cwt. trockene Nüsse, ferner Coir 176600, Copra 45800, Cocosöl 449600, Cocosnußkuchen (Poonac) 190000 cwt, sowie 98000 Gall. Arrac. Ceylon exportierte 1910: 616377 cwt Coconutoil, 766906 cwt Copra und 16114088 Stück Cocoanut, 27201074 lbs Desiccated coconut (Raspelcopra). 309589 cwt Poonac, 108775 cwt Coir yarn und 174410 cwt Coir fibre. Brit. Indien exportierte 1908/09: 595725 Cocoanut, 395126 cwt Cocoanut kernel or copra und 2845404 gals. Cocoanutoil. +Java+ exportierte 1905: 108360755, 1906: 54337508 kg Copra, 1905: 63600, 1906: 5864 l Klapperolie. +Niederl. Indien+ exportierte Copra 1908: 229491 t. Haupthandelsplätze sind London, Marseille, Rotterdam und Amsterdam. Copra ist wie Pfeffer Spekulationsartikel. Man unterscheidet die Sorten: Fair merchantable sundried (fins), Mixed, Telquel. Die Südseeinseln pressen kein Öl, sondern verschiffen die Copra. Für die Südseeinseln sind die Cocosprodukte der wichtigste Exportartikel. Die +Copraausfuhr+ betrug 1908 in kg Bismarck-Archipel: 5586672, Kaiser Wilhelmsland: 698507, Samoa: 10240000, Westkarolienen, Palauas, Marianen: 714789, Ostkarolienen: 431739, Marschallinseln: 3560899. Deutsch-Ostafrika (1909): 3026795. -- 1910 exportierte Java: 100564, Makassar: 30880, Menado, Sangir usw.: 27298, Padang: 10479, Straits settlements: 103006, Manila: 118200 t. Die Gesamtausfuhr von Copra aus allen Ländern beträgt jetzt mehr als 500000 t, von Cocosöl c. 70000 t. Das meiste verbraucht Frankreich. Der Mittelpunkt des südamerikanischen Cocoshandels ist Para. Es exportiert jährlich 7-8 Mill. Nüsse. +Deutschland+ deckt ⅓ seines Bedarfes an Copra aus seinen Kolonien. Deutschland importierte 1909: 1121593 dz +Copra+ vorwiegend aus Niederl. und Brit. Indien, sowie aus Ceylon, weniger aus Brit. Malacca, Samoa, den Philippinen und Australien und 90490 dz +Cocosöl+ besonders aus Ceylon und Brit. Indien. +Hamburg+ importierte 1908 seewärts 942110 dz +Copra+, davon 444323 aus Nied. Ostindien, 228337 aus Brit. Ostindien, 65787 aus Australien, 42986 von den Philippinen, 39135 aus Samoa, 25279 aus Singapore, 22525 aus dem Bismarckarchipel, 17395 von Neu Guinea, 16357 von den Marschallinseln, 14316 von den Fidschi- und Freundschaftsinseln, mehr wie 1000 dz von den Carolienen, Trinidat, Deutsch-Ostafrika, den Gesellschaftsinseln, Kuba, den Verein. Staaten, weniger als 1000 von Westafrika, Togo, St. Domingo, den Palauinseln, Venezuela, China usw. Ferner 91656 dz +Cocosnußöl+, davon 46744 aus Brit. Ostindien. Die Einfuhr von Cocoanut oil nach London betrug 1906: 1056, 1907: 1909, 1908: 3007, 1909: 1270 t. Frankreich importierte 1908 +Copra+ (und Amandes de Coco) 1693579 Quint., davon besonders viel von den Philippinen, Holländ. und Engl. Indien, sowie von Indochina und Engl. Ostafrika, weniger von den Ozeanischen Inseln u. and. tropischen Gegenden. Die Vereinigten Staaten importierten (vorwiegend aus dem mittelamerikanischen Drogenreich) 1909: 52302999 pounds Cocoanutoil. =Chemie.= Das +frische Endosperm+ (Cocosfleisch) enthält in Prozenten: Wasser 46,64, eiweißartige Stoffe 5,49, Fett 35,93, stickstofffreie Extraktstoffe 8,06, Faser 2,91, Asche 0,97. Die getrocknete Copra enthält meist 64-68 bis 67,85% (~Nallino~), ja 71,5% (~Bizio~) Fett, gewonnen werden daraus 54-61%. Daneben 9-10% Stickstoffsubstanz, 14-26% stickstofffreie Extraktstoffe, 1,5-2,7% Asche (~Bachofen~). In der Copra sind nachgewiesen: 46% Wasser, Zucker (Saccharose 4-5% ~Bourquelot~), Amide, Cholin, Lecithin, das Globulin Edestin (~Osborne~ und ~Campbell~), Conglutin (~Ritthausen~), Albumin, Albumosen und ein Nucleoproteid zusammen 4,63% Eiweiß, 3,39% Faser. Alkaloide und Glukoside fehlen (~van Itallie~). Die Zellwände enthalten ein Galakto-Mannan bzw. Galakto-Araban. Die +Copra+ enthält 66,25 (Manila) bis 70% (Cochinchina) Öl, Ceylon und Sansibarcopra stehen in der Mitte (68-69% ~Lahache~). Im Großen werden 50-60% gewonnen. Luftgetrocknete Nüsse liefern c. 50%, in Trockenapparaten getrocknete c. 60% Fett. =Oleum Cocos= (nicht Cocois), =Cososfett= (Cocosbutter, Cocosnußöl, Coprafett, huile de coco, beurre de coco, Cocoanut oil, burro di cocco, cocosvet, κοκέλαιον) ist im gemäßigten Klima fest, in Indien flüssig, was schon daraus hervorgeht, daß es z. B. in Java als Lampenöl benutzt wird. Es hat frisch einen angenehmen Geruch und Geschmack, wird aber leicht schon in der Copra ranzig, riecht dann widerlich und schmeckt kratzend. Ein solches Öl enthält dann bis 25% freie Fettsäuren (~Lewkowitsch~). Die Regel bildet 2-10% freie Säuren, ~Crossley~ und ~le Sueur~ fanden 5-17,7% (auf Ölsäure berechnet), ~Salkowsky~ 2,96%, ~Pastorovich~ und ~Reijst~ 4,75%. Das +gereinigte+ Cocosfett enthält keine freien Fettsäuren und steht bezüglich seiner Haltbarkeit anderen Pflanzenfetten nicht nach (~Herbert~ und ~Walker~). Die Abspaltung der freien Säuren und die Erscheinungen der Ranzidität treten schon in der Copra vor dem Pressen infolge der Einwirkung von Pilzen (_Aspergillus_) und Enzymen ein und ein so in der Copra schon zersetztes Öl unterliegt stärkerem Ranzigwerden, als ursprünglich unzersetztes, frisch und rasch gepreßtes. +Cocosfett+ zeigt eine von den anderen Fetten stark abweichende Zusammensetzung (nur Palmkernöl hat eine ähnliche Zusammensetzung). Es enthält +Trimyristin+ (beträchtliche Mengen, ~Ulzer~), +Trilaurin+ (relativ viel), +Tripalmitin+ und +Tristearin+ (1%) und +Trioleïn+, sowie die Glyceride der flüchtigen Fettsäuren: +Capronsäure+, +Caprylsäure+ und +Caprinsäure+, aber keine Buttersäure (~Reijst~) und kaum hydroxylierte Säuren. Die Alkoholyse (~Haller~ und ~Youssoufian~) ergab als Hauptbestandteile Laurin (früher Pichuritalgsäure genannt) und Myristin, dann Palmitin, Stearin, Olein, Capron-, Capryl- und Caprinsäure. ~Paulmayer~ gibt 1907 40% Laurinsäure, 24% Myristinsäure, 10,6% Palmitinsäure, 5,4% Ölsäure, 19,5% Caprinsäure, 0,5% Capron- und Caprylsäure an (keine Stearinsäure!). Die Palmitinsäure wird von ~Ulzer~ bestritten. Die Cocinsäure (~Brandes~, ~Bromeis~) ist ein Gemenge von Laurin- und Palmitinsäure, auch die Cocosstearinsäure ist zu streichen. Die von ~Flückiger~ (1894) bestrittene Ölsäure wurde bestimmt von ~Ulzer~ und ~Reijst~ nachgewiesen. Im +gereinigten+ Cocosöl (Palmin) fand ~Ulzer~ 2,32% Glyceride flüchtiger Fettsäuren (Capron- und Caprylsäure) und c. 10,45% Trioleïn, der Rest der Hauptmasse bestand aus Trilaurin und Trimyristin- und etwas Caprinsäureglycerid. Die Menge der flüchtigen Fettsäuren beträgt c. 2% (~Ulzer~, ~Farnsteiner~). Cocosfett ist bei 60° schon in 2 Teilen Alkohol von 90% löslich, besitzt also eine verhältnismäßig große Löslichkeit in Alkohol. Das +spez. Gew.+ ist ungewöhnlich hoch, es beträgt bei 15,5°: 0,9259, bei 18°: 0,9250, bei 35°: 0,9124, bei 100°: 0,870 (0,863, bei Bengalöl: 0,9040), der +Erstarrungspunkt+ liegt bei 14-25,5° (meist 16-20,5°), der +Schmelzpunkt+ bei 20-28° (meist 23-25°), die +Verseifungszahl+ ist ungewöhnlich hoch: 250-268 (gewaschen: 246,2), die Jodzahl ist sehr niedrig: 7,68-10 (meist 8-9), +Hehnerzahl+: 82,4-92,2, +Reichertzahl+: 3,5 bis 3,7, +Reichert-Meißlzahl+: 6,5-8,5. +Acetylzahl+: 9,5, +Brechungsexponent+ bei 40°: 1,4497, bei 60°: 1,441. Die freien Fettsäuren zeigen bei 98° ein spez. Gew. 0,8354, Erstarrungspunkt 15,7-20°, Schmelzpunkt 24-27°, Neutralisationszahl 258 mg KOH, mittleres Molekulargewicht 196-211, Jodzahl 8,39 bis 9,3, Jodzahl der flüssigen Fettsäuren 31,9-36,3. Das Cocosnußolein zeigt bei 60° ein spez. Gew. 0,9293, die Verseifungszahl 265,35 (253,63), Jodzahl 14,8 (4), Reichert-Meißlzahl 7,95 (4,45). Die Zahlen in Klammern beziehen sich auf Cocosnußstearin. Das Verfahren von ~Polenske~ zur Bestimmung des Cocosfettes in der Butter beruht auf der Bestimmung der Reichert-Meißl-Zahl, auf der Bestimmung der «Neuen Butterzahl» (nBZ, +Polenskezahl+), d. h. derjenigen Menge ungelöster flüchtiger Fettsäuren, die bei der Reichert-Meißl-Zahl-Bestimmung in das Destillat mit übergehen und sich im Kühlrohr und in der Vorlage vorfinden sowie auf Feststellung des Aggregatzustandes desjenigen Anteils der ungelösten flüssigen Fettsäuren bei 15°, die sich während der Destillation auf der Oberfläche des Destillates ansammeln. Das Unverseifbare (c. 1,5%) enthält zwei Phytosterine (das eine = C₃₃H₅₆O₂ F. 135-140° ~Matthes~ und ~Ackermann~). Ein fettspaltendes Enzym fehlt dem Öl (~Walker~). Dagegen findet sich im +keimenden Samen+ eine Lipase, im Saugorgan des Keimlings neben Lipase ein proteolytisches Enzym, Amylase, Katalase und eine Peroxydase (~de Kruyff~). Das Fett enthält auch einen +Farbstoff+, der durch Knochenkohle oder Walkererde entfernt werden kann und ein +Alkaloid+ (von ~van Itallie~ bestritten), das den bitteren Geschmack bedingen soll. Der unangenehme Geruch der rohen Cocosbutter rührt nach ~Haller~ und ~Lassieur~ von +Methylnonylketon+, +Methylheptylketon+ und Spuren eines optisch aktiven Ketons her, die auch im Rautenöl vorkommen. Doch ist auch der Capron-, Caprin- und Caprylsäure kein angenehmer Geruch eigen. Unter dem Mikroskop zeigt Cocosfett ein Haufwerk langer Nadeln. Cocosfett läßt sich mit verdünnten Laugen nur schwer verseifen, leicht, schon in der Kälte, mit starken. Die Seifen sind nur mit großem Kochsalzüberschuß auszusalzen. Sie sind fest und hart. Die +Coprapreßkuchen+ enthalten in Prozenten: Wasser 6,72-13,84 (20), Stickstoffsubstanz 16,25-20,94 (30), Fett 7,52-22,6, stickstofffreie Substanz 28,9-46,7, Faser 9,73 bis 15,39, Asche 5,39-6,7 (9) (~Gebek~ und in ~Collin-Perrot~, Res. ind.). Die +Cocosmilch+ ist niemals milchig, sondern nur trübe. Besser ist daher die Bezeichnung Klapperwasser (mal. ajer kalapa). Das Gewicht der Milch der unreifen Frucht variiert zwischen 230 und 383 g. Die der reifen wiegt nicht viel über 100 g (~van Slyke~). Die +Cocosmilch+ enthält in der unreifen Frucht bis 4,58% Glukose, in der reifen 4-5, bisweilen sogar 9-13% Saccharose (~van Slyke~) und Cocosit (~H. Müller~) -- keine Lävulose (~van Itallie~) -- etwas Eiweiß (0,1-0,8%), Fett (bis 0,14%), ein Zucker bildendes Enzym, Oxydase und Katalase (~de Kruyff~) und Salze 0,6%, das Extrakt beträgt 5,7-7,7% (~Behre~). Das spez. Gew. der Cocosmilch beträgt 1,0442 (1,022 ~van Itallie~). Die +Steinschale+ enthält in Prozenten: Wasser 7,36, Asche 0,54, Alkoholextrakt 1,12, Kohlehydrate (auf Stärke berechnet) 20,88, Rohfaser 56,19, Stickstoff 0,18, Gerbstoff 1,82 (~Wilson~). In der +Steinschale+ findet sich Xylan (~Tromp de Haas~ u. ~Tollens~). Ihre Asche enthält 45% K₂O. Die +Blüten+ enthalten einen Inosit (Cocosit ~H. Müller~). Im Cocosgummi finden sich 70-90% Bassorin. +Der Saft des Stammes+ enthält 3-6% Rohrzucker (~Bourquelot~). =Lit.= Ältere Analysen von ~Pelouze et Boudet~, ~Brandes~ (1838), ~Bromeis~, ~St. Evre~, ~Görgey~. -- ~van Itallie~, Over Kokosnoten, Ned. Tijdschr. 1890. -- ~H. Müller~, Proc. Chem. Soc. 1907, 219. -- ~Bourquelot~, Journ. pharm. 1904, 193. Compt. rend. 133, 690. -- ~Bachofen~ (Aschenanalysen aller Teile der Frucht). Chem. Zeit. 1900, 16. -- ~van Slyke~, Amer. Chem. Journ. 1891, 130. -- ~Behre~, Pharm. Centralh. 1906, 1045. -- ~de Kruyff~, Bull. Dep. Agr. Ind. neerl. 1907. -- ~Osborne~ und ~Campbell~, Journ. amer. chem. Soc. 1896, 609. -- ~Ritthausen~, Pflüg. Arch. 1880, 81. -- ~Gebek~ (Preßkuchen), Landw. Versuchsstat. 1894, 427. -- ~Wilson~, Connectic. Agric. exper. stat. in Am. journ. sc. 1901. Öl: ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Rivals~, Les corps gras ind. 1908, 258.-- ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. (dort weitere Lit.). -- ~Paulmayer~, Savonnerie marseillaise 1907. -- ~Crossley~ und ~Le Sueur~, Journ. Soc. chem. Ind. 1898, 991. -- ~Ulzer~, Chem. Rev. 1899, 11 und 203. -- ~Farnsteiner~, Ebenda 1898, 196. -- ~Flückiger~, Zeitschr. anal. Chem. 1894, 571. -- ~Reijst~, Pharm. Weekbl. 1906, 117 (Rec. trav. chim. Pays Bas 1906, 271). -- ~Göreys~, Lieb. Ann. 66 (1848) 315. -- ~Lahache~, Rev. chim. pur. et appl. 1905, 309. -- ~Haller~ und ~Youssoufian~, Compt. rend. 143 (1906) 803. -- ~Herbert~ und ~Walker~, Philipp. journ. of sc. 1906, 117. -- ~Walker~, Philippine Journ. sc. 1908. -- ~Fendler~ (Cocosspeisefette). Chem. Rev. 1906, 272. -- ~Blumenfeld~ und ~Seidel~, Mitt. Technol. Gew. Mus. 1900, 60. -- ~Bizio~, Journ. pharm. 1833, 455. -- ~Nallino~, Ber. d. chem. Ges. 1872, 731. -- ~Matthes~ u. ~Ackermann~, Ber. chem. Ges. 1908, 2000. -- ~Haller~ und ~Lassieur~, Compt. rend. 1910, I, 1013. -- ~White and Braithwaite~, Brit. and. Col. Dr. 1897. -- ~Polenske~, Best. v. Cocosfett in d. Butter. Zeitschr. f. Nahrmunters. 1904, 273 (auch Arbeit. d. k. Gesundhamt. 20 [1904], 545). -- Weitere Lit. bei ~Wehmer~. =Prüfung.= Zum Nachweis fremder Beimengungen benutzt ~Paulmayer~ die verschiedene Löslichkeit der Fettsäuren in Essigsäure von 81,18%. Bei sämtlichen übrigen Fettsäuren, mit Ausnahme des Ricinusöls liegt die «kritische Löslichkeitstemperatur» höher als 33°. ~Milliau~ benutzt die Phloroglucin-Resorcin-Salpetersäurereaktion, bei der sich Cocosöl ebensowenig wie Butter und Palmkernöl färbt. Wegen der Ähnlichkeit der Zusammensetzung ist Palmkernfett im Cocosfett nicht sicher nachzuweisen, auch kaum nötig, da beide den gleichen Preis besitzen. =Lit.= ~Paulmayer~, Seifen-Zeit. 1906, 286 (auch in ~Benedikt-Ulzer~). -- ~Milliau~, Compt. rend. 140 (1905) 1702. Da die der braunen Samenhaut anhaftenden Sklereïden bei Cocos dünnwandig sind und die Wände der Endospermzellen dünne glatte Wände besitzen, so ist eine Verfälschung des Coprapreßkuchen mit Palmkernpreßkuchen (s. d.) leicht zu erkennen. =Anwendung.= Was die Olive für das Mittelmeergebiet bedeutet (vgl. S. 623), das bedeutet die Cocospalme für die Tropen Asiens. Vernichtung der Cocos bedeutet Vernichtung der Existenz. «Wenn die Natur dem Bewohner der Tropen nur die Cocospalme geschenkt hätte, sie hätte ihm alles gegeben, was er braucht: Holz, seine Hütte zu bauen, Blätter, sie regendicht zu decken, Fasern für ein Gewebe, sich zu bedecken und für Stricke zum Binden, Gefäße, um Wasser zu schöpfen, Zucker, Fett und Eiweiß für die Nahrung, Palmenkohl als Zuspeise, Essig zur Würze, in den Blattstielen Brennmaterial, die Nahrung zu kochen, Palmwein als Getränk und Öl zum Brennen, ja selbst in der Cocosmilch einen kühlen Trunk für die Zeit des Fiebers» (~Tschirch~, Ind. Heil- und Nutzpfl.). Die Cocosnuß enthält alle notwendigen Nährstoffe. Zwei schiffbrüchige Matrosen haben 7 Jahre auf den Quairsinseln nur von ihnen gelebt. Sogar die Spatha sah ich in Java einmal und zwar als Wiege benutzt und die Wurzel wird in Indien mit Betel gekaut. +Cocos ist die nützlichste aller Pflanzen.+ ~M. C. Pereira~ stellte 83 aus dem Baume hergestellter Artikel zusammen (abgedr. in ~Watt~, Diction.) und der Inder sagt, sie ist «zu 99 Zwecken gut und den 100. wirst du auch noch finden». Frische weiße, sorgfältig geschälte Kerne werden an Ort und Stelle zu Schnitzel geschnitten und getrocknet (dessicated copra). Sie gehen als Mandelersatz nach Europa und bestehen nur aus dem Endosperm. Narikela kandha ist in Indien ein Copra enthaltendes beliebtes Arzneimittel. Der Saft der unreifen Frucht soll ähnlich wie Ricinusöl (~Wood~), das geraspelte Endosperm anthelmintisch wirken. Cocosöl, besonders das «Cocoolein», ist auch als Lebertranersatz empfohlen worden, ist aber nicht so leicht verdaulich. Cocosöl eignet sich nicht für Linimente, aber gut zur Seifenfabrikation. Cocosseife gibt auch mit Meerwasser Schaum. Cocosöl wird in den Tropen als Speise- und Lampenöl, sowie zum Salben des Körpers benutzt. Die ersten Versuche, das stark riechende Cocosfett, das sich zu Genußzwecken nicht zu eignen schien, als Speisefett bei der Margarinefabrikation nutzbar zu machen, wurden 1880 von ~Jeserich~ und ~Meinert~ unternommen. Um dies zu ermöglichen, muß das Fett mit Ätznatron entsäuert und dann durch Destillation mit Dampf desodoriert werden. Diese gereinigten Cocosöle sind im Handel unter den Namen Palmin, Lactine, Vegetalin, Laureol, Kunerol, Gloriol, Leda-Speisefett, Nuscin, Selecta, Nucifera, Parveol, Priol, Hodor, Fruchtin, Crêmin, Sanin, Daphnin, Estol, Jennil, Palmarol, Nutreïn, Pflanzenbutter usw. Cocosfett, bes. das Cocosstearin (s. oben) und ein Cacaoline oder Schokoladenfett genanntes Produkt werden zur Verfälschung der Cacaobutter benutzt. Die Preßkuchen (poonac) sind eins der wertvollsten Futtermittel (~Collin-Perrot~). Gemahlene Preßkuchen sind in Europa, gemahlene Steinschalen in Amerika als Gewürzfälschung beobachtet (~Moeller-Winton~). Die Cocosmilch, besonders die junger Früchte, schmeckt frisch ganz gut, süßlich-säuerlich und erfrischend, nimmt aber, wenn sie längere Zeit in der reifen Frucht verweilt, bald den ekelhaften Geruch nach ranzigem Cocosfett an. Die Eingeborenen schlagen die Frucht mit dem Messer auf und trinken den Inhalt. Cocosmilch gilt als Bandwurmmittel. Nach ~Dutt~ wird in Indien die Cocosmilch bei Nierenleiden, die Copra, der frische Saft und die Wurzel als Diuretikum, die Knospe als Erfrischungsmittel, das Öl als Haarwuchsmittel benutzt. Der gegorene Saft liefert destilliert Alkohol. Die Asche der Schalen dient zur Seifenfabrikation; ihre Kohle wird zu Tusche benutzt und dient, wie schon ~Garcia~ erwähnt, den Goldschmieden. Coirfaser wird zu Schnüren, Schiffstauen, Bürsten und Türvorlegern verarbeitet. Taue und Stricke aus Coir sah schon ~Clusius~ in Lissabon im XVI. Jahrh. Das Holz alter Bäume (Stachelschweinholz) ist ein wertvolles Bauholz. Ein wohlriechendes Sekret des Stammes ist in Tahiti als pia pia bekannt. Weitere Anwendungen bei ~Stolz~, Trop. Nutz- u. Handelspfl. Geogr. Nachr. 1894, 81. Vgl. auch ~Schröter~, Die Palmen und ihre Bedeutung für die Tropenbewohner. Neujahrsbl. d. Züricher Naturf. Ges. 1901. =Geschichte.= Es spricht vieles dafür, daß _Cocos nucifera_ im tropischen Asien, wo sie viele alte Namen hat, in zahlreichen Varietäten bekannt ist und seit Urzeiten zu unzähligen Zwecken benutzt wird, ursprünglich heimisch war -- vornehmlich wohl auf den Inseln -- frühzeitig aber wohl (vor 3-4000 Jahren) nach China, Ceylon und dem indischen Festland und durch Meeresströmungen an die Westküste Mittelamerikas, später dann auch nach Ost-Afrika gelangte (~de Candolle~). Von diesen Zentren aus hat sich die Palme dann über alle tropischen Länder verbreitet. Die neueren Forscher (~Seemann~, ~Cook~, ~Schumann~) suchen aber ihre Heimat auf den Antillen, in Columbien und in Zentralamerika, wo sie bereits ~Oviedo~ im XVI. Jahrh. wild fand. Jedenfalls sind alle übrigen Vertreter der Gattung Cocos in Amerika heimisch. ~Drude~ betrachtet sowohl das tropische Amerika wie Südasien als ursprüngliche Heimat der Pflanze. Wenn aber Polynesien der Überrest eines untergegangenen Erdteils (Oceanien) ist, dann dürften wir wohl in ihm die Heimat der Pflanze zu suchen haben, also dort, wo sie auch jetzt noch die größte Verbreitung hat. Die Cocospalme wurde in Indien seit 3-4000 Jahren benutzt und ist unter dem Sanskritnamen Narikela (weitere bei ~de Candolle~) bekannt. Nach Ceylon scheint sie erst später gekommen zu sein. Die Ägypter kannten sie nicht, die Griechen nur als indische Kuriosität. Das κουκιοφόρον δένδρον des ~Theophrast~ und die cuci des ~Plinius~ waren wohl nicht Cocos, sondern _Hyphaene coriacea_ ~Gärtn.~ (~Sprengel~). Die Cocosnuß spielt in Südindien bei vielen Zeremonien eine Rolle. Eine Nuß wird z. B. der See geopfert. Das Brechen einer Cocosnuß ist in Vorderindien Zeichen der Feindschaft. Auch bei den Hochzeitsgebräuchen und ähnlichem wird die Cocosnuß (tali) dort benutzt. Sie ist Symbol der Fruchtbarkeit. Bei der Hochzeit wirft man in Piemont mit Cocosnüssen. Coir wird in Indien seit undenklichen Zeiten als Bindematerial benutzt (~Wiesner~). In zahlreichen Sprichwörtern und Redensarten der Bewohner der südasiatischen Inseln spielt die Cocospalme eine Rolle (zitiert bei ~de Clerq~). In Ceylon wird das Vermögen der Eingeborenen oft in Cocospalmen oder Teilen derselben ausgedrückt, in Vorderindien darf eine Cocospalme bis zu 2 Shilling, in Java bis 1½ Gulden hypothekarisch belastet werden. Ursprünglich wurden die Cocospalmen in Ceylon nur bei den Tempeln angepflanzt. 1841 begannen die Europäer dort mit der Kultur. Cocosöl war im XVIII. Jahrh. bekannt und in deutschen Apotheken zu finden, ist aber in Europa erst seit Mitte des XIX. Jahrb. mehr beachtet worden. ~Kosmas Alexandrinus~ (I, S. 720) beschreibt bereits im VI. Jahrh. Cocos, -- die erste sichere Erwähnung in der europäischen Literatur. Im X. Jahrh. wurden Cocosnüsse in Kalah auf Malacca gehandelt. Bei ~Alhervi~ (I, S. 601) findet sich Nârdschîl, bei ~Ibn Baithar~ nārǧīl, bei ~Simon Januensis~ neregil und auch ~Ibn Sina~ (I, S. 603) benutzt Cocos. ~Masudi~ (I, S. 616) erwähnt die Cocosnüsse Mitte des X. Jahrh. bei den Malediven, ~Kurdadbah~ (I, S. 617) bei Java, ~Marco Polo~ bei den Nicobaren, bei Malabar und Sumatra. ~Ibn Batuta~ (I, S. 618) kennt ihre mannigfache Benutzung und auch ~Jacobus de Vitriaco~ (I, S. 722) gedenkt ihrer im XIII. Jahrh. ~Marco Polo~ erwähnt die Cocosmilch und ~Maudeville~ (I, S. 721) die große indische Nuß. Vom XV. bis XVII. Jahrh. wurde die Cocusnuß in Europa, wohin sie seit dem Mittelalter kam, viel medizinisch benutzt. (Vgl. oben.) Sie findet sich in Taxen und Registern. Das «Garn aus der Schale indischer Nüsse» bei ~Marco Polo~ (I, S. 725) ist wohl Coir. Die alten Inder benutzten nālikera (I, S. 507), das Öl bei Bereitung der Speisen. Copra wird schon von ~Garcia da Orta~ als Ausfuhrartikel von Ormuz und Balaguate erwähnt. In Brasilien erwähnt die Cocospalme schon ~Piso~ und ~Marcgraf~ (I, S. 893), in Porto-Rico ~Joseph Acosta~ (I, S. 762), in Mittelamerika ~Oviedo~ (I, S. 755). ~Hernandez~ (I, S. 757) bemerkt, daß die Mexikaner die Palme coyolli nennen. =Lit.= ~De Candolle~, L’origin. d. pl. cult. -- ~Cook~, U. S. Dep. Agric. 1901. Div. bot. VII. -- ~Neger~, Ursprung, Geschichte und Verbreitung der Cocosnußpalme. Globus 1902. -- ~Stoll~, Entdeckungsgesch. d. Cocospalme. Globus 1902. Zu dieser Gruppe gehören oder sind damit verwandt: Palmkernöl (s. S. 720), Cohuneöl von _Attalea Cohune_ ~Mart.~, Maripafett von _Attalea Maripa_ ~Aubl.~, Muritifett von _Mauritia vimfera_ ~Mart.~ (Coyol), Mocayaöl von _Acrocomia sclerocarpa_ ~Mart.~, Bactrisfett von _Bactris Plumeriana_ ~Mart.~, Gewürzbuschöl von _Lindera Benzoïn_, Dikafett von _Mangifera gabonensis_ ~Aubr. le Comte~ und _Irvingia Barteri_ ~Hook.~, Cay-Cay- oder Cochinchina-Wachs von _Irvingia Harmadiana_ und _Oliveri_, Taririfett von _Picramma_ ~Sow~ oder _Tariri_ ~Aubl.~, Tangkallafett von _Lepidadenia Wightiana_ ~Nees.~ bzw. _Cylindrodaphne sebifera_. 3. Japansäure-Gruppe. Die Japansäure ist die erste, von ~Geibel~ und ~von der Want~ (1900) in einem natürlichen Fett aufgefundene, zweibasische Fettsäure. Sie findet sich im Japantalg. Cera japonica. Japantalg, Japanwachs, Sumachwachs, -- Cire du Japon, -- Japan wax, japan tallow, -- Cera giapponesa, -- in Japan: Ro. Dies fälschlich Wachs genannte Fett wird in Japan und China aus den Früchten einiger daselbst und in Nordindien kultivierter, zu den Anacardiaceen gehörender _Sumach_arten, besonders von =Rhus succedanea= L. (Wachssumach, Wachsbaum, Fasi noki) -- wächst besonders in Shikoku und Kiushiu als Einfriedung der Felder -- dann auch von _Rhus vernicifera_ ~Dc.~ (Firnißsumach, urushi) und in beschränktem Maße von _Rh. acuminata_ ~Dc.~ und _Rh. silvestris_ ~Sieb.~ et ~Zucc.~ (Waldsumach, Yama urushi) durch Auspressen, Auskochen oder Extrahieren gewonnen (für China wird die zweifelhafte Art _Rhus chinensis_ ~Mill.~ angegeben). Ein Baum kann bis 60 lbs. Früchte tragen. Das Fett ist sowohl im Mesocarp (40-65%, -- resp. 21% bezogen auf die ganze Frucht) wie in den Cotyledonen (36%, -- resp. 26,5% bezogen auf die ganze Frucht) enthalten (~A. Meyer~). Das Mesocarp ist also besonders reich an Fett. Das Mesocarp- und Cotyledonenfett verhalten sich im Allgemeinen gleich. Die ganze Frucht enthält bei _Rh. succedanea_ 27%, bei _Rh. vernicifera_ 24,2% Fett (~Rein~). Es wird in Japan besonders auf den Inseln Hiogo, Hizen, Simabara, Chutugo, Chekusin und der Provinz Kinas erzeugt. Nach dem ältesten Verfahren werden die Früchte gestoßen, gekocht und gepreßt. Neuer ist die Methode, die geschälten Früchte zwischen Mühlsteinen zu zerkleinern, die Masse mit Wasser auszukochen, das Fett abzuschöpfen, durch Umschmelzen zu reinigen und in Tafeln auszugießen. Die drei größten Wachsraffinerien (~Kitagumi~, ~Chikusan~ und ~Shimizi~) befinden sich teils in Osaka, teils in Kobe. Auch die Methode, die unter Stroh nachgereiften Früchte in hölzernen, trichterförmigen Trögen mit der Hand zu zerdrücken, von den Hülsen durch Absieben zu befreien und die Masse in Hanfsäcken mittels Keilpressen auszupressen, ist in Gebrauch. Bisweilen werden die von den Zweigen abgedroschenen Früchte auch zuvor getrocknet und schwach geröstet und gemahlen, in Säcken auf einem Roste über kochendem Wasser gedämpft und dann erst gepreßt (~Simon~). Die Früchte erscheinen im 5. Jahr. Das Maximum des Ertrages wird im 15. Jahr erreicht. ~Arthur Meyer~ faßt die verschiedenen Berichte wie folgt zusammen: «Zur Herstellung des Japantalgs werden die vorher gut getrockneten Früchte (gut getrocknet wohl deshalb, weil erst durch das Trocknen an der Luft der Milchsaft des Mesocarps unlöslich in Wasser usw. wird) zerkleinert durch Mühlsteine, Mörserkeule oder Bambusflegel, durch Absieben oder Ausschwingen von Kernen und Epidermis befreit oder auch (bei _Rhus succedanea_ und _silvestris_) ganz gelassen. Diese Massen werden dann über Wasserdämpfen erhitzt, um das Wachs in den Zellen zu schmelzen, und dieses wird dann durch die verschiedensten Preßvorrichtungen ausgepreßt. Beim zweiten Pressen der Masse setzt man wohl hier und da etwas fettes Öl zu, um das Erstarren des Talges zu verzögern. Der so erhaltene Rohtalg wird mit dünner Lauge gekocht (Kochen mit Lauge deshalb, weil der Talg dadurch krümelig und zum Bleichen geeignet wird, nicht zur direkten Entfernung des Farbstoffes), an der Sonne gebleicht und durch mehrmaliges Umschmelzen in reinem Wasser und dazwischen wieder erfolgtes Bleichen möglichst rein und weiß hergestellt. Um dem Lichte mehr Fläche zu bieten, zerrührt man entweder das flüssige Wachs während des Erkaltens oder schneidet es nach dem Erkalten in Scheiben.» Um die Preßrückstände auszunutzen, wird ihnen bisweilen Se-nu-abura (Ye Goma), d. h. das Öl von _Perilla ocimoides_ L. zugesetzt, die in Ihren Früchten bis 40% Fett enthält. Diese späteren Pressungen zeigen also abweichende Eigenschaften, sind weicher und klebriger. Dieser Ölzusatz wird in der europäischen Literatur schon 1877 erwähnt, ist aber jedenfalls eine alte Sitte und nicht erst seit 1895 (~Lewkowitsch~) bekannt. Neuerdings wird das Fett auch mit Äther oder Schwefelkohlenstoff extrahiert (~Schädler~). «Der Rohtalg wird vor dem Export einem einfachen Verfahren unterworfen, indem er mit Wasser gekocht und dann in flüssigem Zustande abgeschöpft wird. Nach dieser Prozedur wird der Talg im Sommer 3-5, im Winter 7-8 Wochen zur Bleichung der Sonne ausgesetzt.» (~Paul Martell~ 1911). Oft wird das Rohwachs auch in dünnen Scheiben an der Sonne gebleicht. Man begießt die in flachen Körben liegenden Scheiben dabei mit Wasser. Die Ausbeute beträgt 15-25%. _Cera japonica_ ist in bisweilen zentnerschweren Blöcken und in runden oder viereckigen Kuchen oder gestempelten Scheiben im Handel, das prima ☐ in Kisten von c. 90 kg. Es ist ein bedeutender Handelsartikel Japans und kommt auch von Formosa und aus China über Singapore nach London -- das japanische direkt von Kobe, Nagasaki, Yokohama und Osaka, das chinesische über Shanghai und Hongkong. Kobe ist Hauptmarkt. Von dort kommen 90%. Die Durchschnittsernte beträgt 4 Mill. kin (= 2,4 Mill. kg, 1 kin = 0,601 kg). Japan exportierte 1906: 3913626, 1907: 3810520, 1908: 3817374, 1909: 5701963 kin. China exportiert bedeutend weniger. Die Einfuhr von +Japanwachs+ nach London betrug 1907: 615, 1908: 415, 1909: 1756 cases usw. Die Marke Kitagumi gilt im allgemeinen als gut, doch kommt neuerdings (1909) unter dem Namen auch minderwertiger Abfall in den Handel. Das Rohwachs ist oft blaugrünlich, das gebleichte und durch Einlaufenlassen in Wasser raffinierte (prima, secunda) weiß oder blaßgelblich. Beim Liegen wird es tief gelb und überzieht es sich allmählich mit einem weißen Anfluge. Die Masse bricht eben und großmuschelig und läßt sich in der Hand wie Wachs kneten. Die Bruchfläche ist glanzlos, die Schnittfläche wachsartig glänzend. Der Geruch erinnert an Talg und Bienenwachs. Mikroskopisch betrachtet zeigt die innere Masse kleinere und größere Körnchen und Blättchen sowie nadelförmige Kristalle. Der weiße Beschlag enthält viel gebogene Stäbchen und breite Prismen, die zum Teil korrodiert sind. Japantalg ist ein gemischtes Fett. Es besteht aus dem des Mesocarps +und+ dem der Cotyledonen. Japanwachs ist unlöslich in kaltem Alkohol, wenig löslich in Äther, löslich in Petroläther, Chloroform, Benzin und setzt aus der heißen alkoholischen Lösung Kristalle ab. Bei Erkalten der heißen alkoholischen Lösung scheidet sich aber nicht alles ab (~A. Meyer~). Japantalg verseift sich leicht mit Alkalihydraten, teilweise auch durch Borax und Sodalösung (~Flückiger~). Von den echten Wachsen ist Japanwachs durch seine Verseifungszahl und dadurch unterschieden, daß es als +echtes Fett+ Glycerin liefert. Japantalg enthält vornehmlich +Palmitin+ und +Palmitinsäure+. (Aus Japantalg läßt sich bequem Palmitinsäure darstellen, ~C. Mayer~, Dissert. Bern 1888.) Dann die zweibasische +Japansäure+ C₂₁H₄₀O₄ (Nonadecamethylcarbonsäure ~Schaal~) und ihre zwei niederen Homologen C₂₀H₃₈O₄ und C₁₉H₃₆O₄ (~Schaal~) sowie sehr geringe Mengen flüchtiger Säuren (darunter wohl Isobuttersäure ~Engelhardt~), dann +Pelargonsäure+, eine Säure C₁₅H₃₀O₂, Spuren Stearin- und Ölsäure, aber keine Arachinsäure (~Tassily~, ~Geitel~ und ~van Der Want~). Die Japansäure (früher C₂₂H₄₂O₄ [~Geitel~ und ~van der Want~] oder C₂₀H₃₈O₄ [~Eberhard~] formuliert) findet sich wahrscheinlich als ein gemischtes Glycerid mit Palmitinsäure: CO.O / \ C₁₉H₃₈ \ \ \ CO.O---C₃H₅ / C₁₅H₃₁ CO.O / im Fett vor (~Geitel~ und ~van der Want~). Letzteres enthält 10,3-11,2% (~Benedikt~ und ~Zsigmondy~) bzw. 11,59-14,71 (~Allen~) +Glycerin+. Im Unverseifbaren (0,54%) findet sich +Melissylalkohol+ und +Cerylalkohol+, ein Alkohol C₁₉H₄₀O und ein Phytosterin (~Matthes~ und ~Heintz~). Spez. Gew. bei 17,5° 0,998 (~Kleinstück~), bei 98-99° 0,8755 (~Allen~), bei 16-18° ist die Dichte der des Wassers gleich, bei 18° leichter, bei 16° schwerer als Wasser (~Kleinstück~). Gebleichter Japantalg hat ein niedrigeres spez. Gew., Erstarrungspunkt 48,5-53, Schmelzpunkt 50,4-56 (~Allen~, nach ~Oppermann~ 48-50°), meist um 53°. Frischgeschmolzener Japantalg hat einen anderen Schmelzpunkt (42° ~Roucher~, ~H. Müller~). Das Fett des Mesocarps hat einen anderen Schmelzpunkt wie das der Cotyledonen. Verseifungszahl 214-237,5 (~Geitel~ und ~van der Want~), bei selbstextrahiertem 206-212 (~Ahrens~). (~Dieterich~ fand 1900: Schmelzpunkt 47,5 bis 53,5° [meist um 53], Säurezahl 15,06-18,38 [1902: 13,44-17,36], Esterzahl 198-207,9 [1904: 187,5 bis 205,8], Verseifungszahl heiß 216,64-225,08 [1902: 212,8-223], V. kalt 211,95-225, Wasser 1,38-3,45), Jodzahl 4,2-8,5 (10,6-15,1 ~Bernheimer~ und ~Schiff~, ~Ahrens~ und ~Hett~), Hehnerzahl 89,8-90,66. Erstarrungspunkt der Fettsäuren 53-57° (~Allen~, ~Ulzer~), Schmelzpunkt 56 bis 62°, Unverseifbares 1,1-1,63%, freie Fettsäuren 3,87-16,4%, also sehr schwankend, Asche 0,02-0,08%. Japantalg ist bisweilen mit Wasser, mit dem es sich leicht emulgiert, beschwert (15 bis 30% ~Wimmel~, ~Stohmann~) und mit Stärke verfälscht (20-25% ~La Wall~) -- bleibt beim Auflösen in Äther zurück -- sowie mit Rinder- und Hammeltalg. Hohe Jodzahl deutet auf beigemengtes Perillaöl, das auch das spez. Gew. und andere Konstanten beeinflußt (die obigen Zahlen beziehen sich auf reinen Japantalg). Verfälschung mit Rinds- und Hammeltalg sind am niedrigen Schmelzpunkt und hoher Jodzahl zu erkennen. +Japantalg+ dient in Japan und Formosa als Surrogat des Talgs und Bienenwachses zur Kerzenfabrikation, in Europa wird es viel zu den sog. Wachszündhölzern allein oder mit Bienenwachs benutzt (die Mischung läßt sich leicht gießen), sowie zu Glanzwichsen (Bodenwichsen), zur Lederzurichtung und zu Ricinusölpomade. Japantalg erscheint erst 1854, d. h. seit Abschluß des ersten Handelsvertrags zwischen Japan und England im Londoner Handel (~Flückiger~). In China scheint das Fett der _Rhus_arten seit dem XIII. Jahrh. in Gebrauch zu sein. ~Kämpfer~ lernte _Rhus succedanea_ und _vernicifera_ 1690 in Japan kennen. (Abbild. in den Amoenitates.) ~Thunberg~ beschrieb die Pflanze in Flor. japon. 1784. =Lit.= ~Vogl~, Über Pflanzenwachs, Lotos 1872. -- ~Hanbury~, Science papers, p. 60. -- ~Arthur Meyer~, Über den Japantalg. Arch. Pharm. 215 (1879), 97 (dort weitere Literatur). -- ~Möbius~, Ber. d. bot. Ges. 1897, 435. -- ~E. Buri~, Ebenda 214 (1879) 403. -- ~Flückiger~, Pharmac. Chemie. -- ~Schädler~, Fette. -- ~Wittsteins~ Vierteljahrsschrift 14, 299. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- ~Mikosch~ in ~Wiesner~ Rohstoffe. II. Aufl. -- ~P. Martell~, D. chem. Industr. Japans, Chem. Industr. 1909, 438. -- ~Sthamer~, Lieb. Ann. 43 (1842), 335. -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. -- ~Oppermann~, Ann. chim. phys. 49, 242 (erste Unters.). -- ~Kleinstück~ (spez. Gew.), Chem. Zeit. 1890, 1303. -- ~Rouber~ (Schmelzp.), Journ. pharm. 16 (1872) 20. -- ~Wimmel~, Zeitschr. Österr. Apoth. Ver. 1867, 350. --~La Wall~ (Stärkefälsch.), Journ. Soc. chem. ind. 1897, 247 (u. Am. journ. pharm. 1897). -- ~Ahrens~ und ~Hett~, Zeitschr. ang. Chem. 1901, 684. -- ~Lemarié~ (Perillaöl), Chem. Rev. d. Fett- usw. Industr. 1904, 127. -- ~Tassilly~, La cire du Japon. Bull. sc. pharmacol. 1911, 329. Bull. Soc. chim. (4) 9, 608. -- ~Benedikt~ und ~Zsigmondy~, Jahrb. d. chem. Techn. 1885, 1103. -- ~Eberhardt~, Diss. Straßb. 1888. -- ~Bernheimer~ und ~Schiff~, Chem. Zeit. 25 (1901) 1008. -- ~Geitel~ und ~van der Want~, Journ. f. prakt. Chem. 61 (1900) 151. -- ~Schaal~, Ber. d. d. chem. Ges. 1907, 4784. -- ~Matthes~ und ~Heintz~, Arch. Pharm. 1909, 650. 4. Ölsäuregruppe. Die Fette dieser Gruppe schließen sich am nächsten den nichttrocknenden Ölen an, enthalten also alle Ölsäure als charakteristischen Bestandteil, aber weniger wie jene, sind daher in unserem Klima fest. Fructus Elaeïdis und Oleum Palmae. =Syn.= Ölpalme, Palmier à l’huile, Palmier Avoira, Elaeis de Guinée, Oil palm, Coco dente. In Kamerun: banga, malende, in Dahomey: dé, in Togo: déti, bei den Yorubas: Ope-Ifa, an der Goldküste: abobo-be. =Stammpflanze und Systemat. Stellung.= =Elaeïs guineensis= ~Jacq.~ Palmae. Ceroxylinae -- Cocoineae -- Elaeïdeae. Man unterscheidet einige Varietäten bzw. Sorten der Ölpalme: Lisombe oder Isombe (mit dünner Steinschale), groß- und kleinfrüchtige (wohl identisch mit dégbakoum), Kissede (in Dahomey), De (die häufigste in Togo), De-de bakui (mit dünner Steinschale), Se-de (liefert wenig Öl), Afa-de (Fetischpalme), Digumbe (Angola), Banga (Kamerun), Dé-Votchi (Dahomey), weitere bei ~Soskin~. Sie variieren z. B. in der Größe der Frucht. Doch wird nur klude (in Togo = fadé) in Dahomey als gute Varietät betrachtet (~Soskin~). =Beschreibung der Stammpflanze und der Frucht.= Die Ölpalme ist eine der schönsten Palmen, die ich kenne. Ihr schlanker, gerader, bis mannsstarker, kaum sich nach oben verjüngender, bis 20, ja 34 (~Preuss~) m hoher Stamm trägt eine prachtvolle Blattkrone von 20-30, meist 3-5, aber auch bis 7 m langen tiefgrünen Blättern. Er ist anfangs nicht glatt wie bei der Cocospalme, sondern mit den, durch abortierende Fiedern bedornten, Blattbasen bedeckt, in deren Achseln sich zahlreiche Epiphyten anzusiedeln pflegen (Taf. XXII), wenn sie nicht, was oft geschieht, abgeschnitten werden. Im Alter von 20 Jahren verlieren sich die Blattbasen und der Stamm wird mehr oder weniger glatt. In Westafrika bildet sie in der Nähe der Weiler «Haine von paradiesischem Zauber. Sie stattet die Landschaft mit einer Pracht aus, welche die feierliche Majestät ägyptischer Palmenwälder fast armselig erscheinen läßt» (~Schweinfurth~). «Überall herrscht sie: im Urwalde, in der Savane, im Buschwalde, an den Ufern des Stromes, überall zieht sie den Blick des Reisenden als der hervorragendste, schönste Ausdruck alles afrikanischen Pflanzenlebens auf sich» (~Soyaux~). «In der Jugend streben die zu einem mächtigen Busche vereinigten gewaltigen Blätter in steiler Linie empor, an der Spitze leicht sich überneigend, gleich als wären sie in einer Vase vereinigt; man ist unschlüssig, was man mehr bewundern soll, die strotzende Kraft tropischen Wachstums oder das ästhetisch Schöne in der Anordnung der Glieder» (~Tschirch~). Die Tragfähigkeit beginnt meist mit dem 7.-8. und dauert bis zum 60. Jahre. Mit 10-12 Jahren erreicht der Baum die Vollkraft und behält sie Jahrzehnte. Jährlich erscheinen 3-10 Fruchtstände. In Kultur kann eine Palme 50 kg Früchte liefern, in Lagos liefert sie aber nur c. 10 kg. Die männlichen Blütenstände der diklin-monözischen Pflanze entspringen oben am Stamm, die weiblichen (bis 10) weiter unten. Die Form des aufrechten, konischen, kurzgestielten weiblichen Zapfens, der 20-30 (ja 50) kg schwer wird, erinnert an eine riesige Erdbeere, an der bisweilen zwei Mann zu tragen haben (~Livingstone~) (Fig. 221). In ihm sind hunderte (oft 6 bis 800, ja über 2000 ~Preuss~) von etwa pflaumengroßen, eiförmigen, glänzenden, gelben bis rötlich-braunen, violetten oder gar schwarzen Früchten dicht gedrängt vereinigt. Meist sind die Früchte an der Basis orange, oben braunrot. Viermal im Jahre kann die Palme Früchte tragen. Reifezeit 4-6 Monate. In Guinea reifen die meisten Früchte in den ersten vier Monaten des Jahres. Die mächtigen dornartigen Zacken, in die die Deckblätter der weiblichen Blüten auslaufen, bilden einen wirksamen Schutz, namentlich der jungen Früchte, gegen Tiere, besonders Affen. ~Drude~ ist aus theoretischen Erwägungen der Ansicht, daß die Ölpalme ursprünglich im tropischen Amerika heimisch war, vor tausenden von Jahren aber nach Afrika verschlagen und dort zu einer scheinbar einheimischen Art wurde. Jedenfalls findet sich aber die echte Ölpalme in Südamerika jetzt nur in kultivierten Exemplaren (~Martius~), die ihre Eltern offenbar in Afrika haben. Vielleicht hat sich die afrikanische Art aus einer amerikanischen (der sehr ähnlichen _E. melanococca_?) umgebildet. Jedenfalls macht jetzt die Ölpalme ganz den Eindruck einer in Westafrika heimischen Art. Sie meidet höhergelegene Distrikte und liebt feuchten Boden. In Kamerun, Dahomey, Lagos, Süd-Nigeria reicht sie bis zur Küste, in Togo bis 10 km von derselben. Jetzt ist sie besonders in den Ländern am Busen von Guinea häufig. Die Grenzen ihrer Verbreitung sind durch eine Linie bezeichnet, die sich mitten zwischen Cap Branco und Cap verde beginnend bis Benguela an der ganzen Westküste von Afrika hinzieht und die Guineainseln einschließt. Von Benguela läuft die Grenzlinie nach dem Nyassasee, von da zum Tanganjika und dem oberen Uëlle, von dort zum Tsadsee und zur Küste zurück (~Ascherson~). Am üppigsten wächst sie im unteren Niger- und Benuëgebiet, auf den Inseln des Busens von Guinea (z. B. Fernando Po), der Küste von Ober-Guinea bis Cap Palmas zwischen Cap Blanco und St. Paul de Loanda, sowie am Kuánsu und im unteren Congo. Sie fehlt im ostafrikanischen Steppengebiet, in Bornu, Wadai, Darfur. Geschlossene Bestände finden sich nirgends (~Preuss~). Sie ist die Charakterpflanze des Buschlandes und der offenen Parklandschaft und meidet den Urwald. Von einer eigentlichen Kultur der Ölpalme war in Westafrika bisher nirgends die Rede (~Busse~), abgesehen von spontan und subspontan in der Nähe von Ansiedelungen entstandenen Hainen, doch versuchen die Europäer neuerdings auch die Anpflanzung mit Erfolg. Die Samen säen sich selbst aus und Tiere, die das Fruchtfleisch fressen, verbreiten sie. Die Kultur wird warm empfohlen (~Soskin~), da sie doppelt so hohe Erträge liefert als die Cocospalme. Die Kultur ist bei ~Soskin~ (a. a. O.) beschrieben. Als Feind der Ölpalme kommt fast nur der Palmbohrer, _Rhynchophorus phoenicis_ in Betracht (weitere bei ~Soskin~). [Illustration: Tafel XXII. Elaeïs guineensis in Kultur auf Java. [Tschirch, phot.]] [Illustration: Fig. 221. Eine 5-6jähr. Ölpalme mit 10 Fruchtständen. [Aus +Soskin+, Die Ölpalme.]] Sie wird kultiviert in Brit. Südafrika, Ostafrika (Pemba hat einen großen Ölpalmenhain), Südamerika (Provinz Amazonas in Brasilien) -- in Südamerika (von Bahia bis Guiana) auch verwildert -- Westindien, Java (seit 1859), Sumatra, Rioux-Lingga, Nordborneo, Ceylon, Vorderindien, hat sich aber in Südasien, wo Cocos dominiert, nirgends durchgesetzt (~Tschirch~) und auch sonst nur wenig. Die kleinere, mit roten Früchten versehene _Elaeis melanococca_ ~Gärtn.~ (Corozo colorado in Venezuela, Caiaue in Brasilien), in Amerika, von Costa Rica bis zum Amazonas und Madeira heimisch, liefert auch etwas Palmfett, aber zunächst nur für den Bedarf der Eingeborenen. Die Frucht ist eine Drupa. Das ölreiche gelbe, veilchenartig riechende Fruchtfleisch ist sehr faserig, etwa 0,5 cm dick, -- nach der Varietät wechselnd 4-5 mm (~Sadebeck~) -- der harte, grobgestreifte, dreikantige Steinkern ist 0,5 cm dick, zeigt an der Spitze 3 Keimlöcher und umschließt den 1-1,5 cm langen, schlanken, endospermreichen Samen, seltener 2 oder 3 (Ovula sind 3 vorhanden, entsprechend den 3 Carpellen, aber 2 pflegen fehlzuschlagen). Die Dicke der Steinschale wechselt sehr nach der Varietät. Bei der gewöhnlichen (Dé) kann der Steinkern nur mit einem Hammer aufgeschlagen werden, bei anderen (Lisombe, Degbakoum) bricht er wie bei Krachmandeln, bei noch anderen (Dé Votchi, Digumbe) ist die Steinschale in ein Fasergewebe aufgelöst. Feuchter fruchtbarer Boden soll die Ausbildung dünnschaliger Varietäten begünstigen. Das Gewicht der Früchte schwankt von 6-10 g. Die Epidermis der Fruchtschale bildet mit der darunterliegenden, Bastfaserbündel führenden, Schicht das Exokarp, das breite Mesokarp wird von einem fetthaltigen Parenchym gebildet, in dem Oxalatzellen liegen und das von zahlreichen, bastfaserreichen, von Kristallkammerfasern begleiteten (~Hanausek~) Gefäßbündeln durchzogen wird. Das Endokarp besteht aus einer breiten Schicht Sklereïden, die braungefärbt, außerordentlich stark verdickt und reich getüpfelt sind. Da das Raphegewebe den Carpiden tief und breit eingewachsen ist, geht das Endokarp allmählich unter Verringerung der Verdickung der Zellen in das Gewebe der Samenschale über, das aus einer breiten Schicht von Zellen mit braunem Inhalt besteht (~A. Meyer~), deren innere sich mit Kali citronengelb färben (~Hanausek~). Das große Endosperm besteht aus radial gestreckten, nicht sehr stark verdickten, aber grobgetüpfelten Zellen, die reichlich zum Teil kristallinisches Fett und große Aleuronkörner mit ein oder mehreren, vortrefflich ausgebildeten Kristalloiden (~Tschirch~) einschließen. Die aus der Steinschale herausgelösten, bis 1,5 cm langen Samen bilden die =Palmkerne= des Handels. Das als Verfälschung von Gewürzen (z. B. Pfeffer) beobachtete +Palmkernmehl+ (daher: Poivrette, Pepperette, Mischpfeffer) besteht aus den gemahlenen Preßrückständen derselben, die noch 5-16% Öl enthalten und immer auch Sklereïden des anhängenden Endocarps erkennen lassen, neben den sehr charakteristischen reichgetüpfelten Endospermzellen mit sog. knotig gegliederter Wand und den Zellen der Samenschale. =Lit.= ~Arthur Meyer~, Über d. Ölpalme. Arch. Pharm. 1884, 713. -- ~Ascherson~, Die Ölpalme. Globus 35, 209. -- ~Drude~, Geogr. Verbr. d. Palmen. Peterm. geogr. Mitt. 1878. -- ~Maycock~, Flora Barbadens. 1830. -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- ~van Gorkom~, Oostind. Cultures. -- ~Schweinfurth~, Im Herzen Afrikas 1874. -- ~Soyaux~, Aus Westafrika 1879. -- ~Sadebeck~, D. wichtigeren Nutzpflanzen usw. aus d. deutsch. Kolon. 1897. -- ~Warburg~ in ~Engler~, Pflanzenwelt Ostafr. (Verbreitung). -- ~Preuss~, D. wirtschaftl. Bedeut. d. Ölpalme. Tropenpfl. 1902. -- ~Soskin~, Die Ölpalme. Ein Beitrag zu ihrer Kultur. Kolon. wirtsch. Kom. 1909. -- ~Jean Adam~, Le Palmier à l’huile. Paris 1910. -- ~Chevalier~, Documents sur le Palmier à huile. Paris 1910. (Végétaux utiles de l’Afrique trop. franç.) -- ~Estève~, Le Palmier à huile. Journ. Agr. trop. Paris 1903, 357, 238. -- ~Moloney~, Sketch of the forestry of West Afrika. -- ~J. et Eug. Poisson~, Note sur le Palmier à l’huile etc. Bull. Museum d’hist. nat. 1903. -- ~Savariau~, Rech. sur les variétés du palmier à l’huile au Dahomey. Suppl. Journ. Offic. Afr. occident. franc. 1909. -- ~Daniel~, Le Palm. à l’huile au Dahomey. Rev. colon. 1902. -- Varieties of the Oil palm. Bull. Misc. Inf. Bot. Gard. Kew. 1909. -- ~Drabble~, Comparison of palm fruits etc. Quat. journ. Univers. Liverpool 1907 u. 1908. -- ~Strunk~, Ölpalmenkultur. Tropenpflanzer 1906, 637. -- ~Zeller~, Die Düngungsfrage f. d. Kult. d. Ölpalme. Tropenpfl. 1911. -- ~Zimmermann~, Die Ölpalme am Tanganjikasee. Tropenpfl. 1911, 549. +Abbild.+ ~Tschirch~, Ind. Heil- und Nutzpflanzen, t. 95 u. 96. -- ~Arth. Meyer~ a. a. O. (mit vielen Figuren). -- ~Sadebeck~, Kulturgewächs. d. deutsch. Kolonien 1899. -- Bulletin miscellan. informat. Royal botanic. Garden Kew 1909. -- ~Martius~ u. ~Mohl~, Hist. nat. palm. t. 54-56. -- ~Drude~ in Mart. flor. brasil. t. 105. -- ~Soyaux~ a. a. O. t. 105. -- ~Köhler-Vogtherr~, Medizinalpfl. Ergänzungsb. t. 77. -- ~Wildemann~, Plant. trop. I, Fig. 12. -- ~Soskin~ a. a. O. +Anatomie+ besonders bei ~Arth. Meyer~ a. a. O. -- ~T. F. Hanausek~, D. Frucht d. Ölpalme. Zeitschr. Österr. Apoth. Ver. 1882, 325 und in ~Wiesner~, Rohstoffe 2. Aufl. -- Aleuron: ~Tschirch~, Angew. Anatomie. -- ~Moeller~, Afrik. Ölsamen. Dingl. Polyt. Journ. 1880 und ~Moeller-Winton~, Mikroskopie (dort weitere Lit.). -- ~Harz~, Landw. Samenkunde. -- ~Vogl~, Nahrungsm. +Preßkuchen+: ~Collin-Perrot~, Resid. industr. -- ~Hanausek~, Mischpfeffer in Realenzyklop. d. Pharm. -- ~Vogl~, Nahrungsm. Fig. 265. -- ~Kobus~, Landw. Jahrb. 1884. [Illustration: Fig. 222. Bereitung von Palmöl im Ntumgebiet. [Nach Photographie von +Tessmann+, Pangweesexpedition.]] =Gewinnung des Palmöls.= Die Gewinnung des Palmöls ist noch heute, z. B. in Kamerun und Dahomey, fast ganz in den Händen der Neger und sehr primitiv. Die Neger ersteigen den Baum mit dem Klettergurt, schneiden die Fruchtbündel los und lösen nach einigen Tagen die Früchte ab. Die Früchte werden zunächst auf Haufen oder in eine Grube geworfen, wo sie 6-10 Tage zur Fermentierung bleiben, damit sich die faserige Fruchtschale leichter vom Steinkern ablöst. Je rascher sie aber verarbeitet werden, um so besser ist das Öl. Die Früchte werden daher jetzt meist sofort c. 2 Stunden mit Wasser gekocht. Nun läßt sich der Steinkern leicht herauslösen und dies geschieht entweder durch Kneten der Früchte mit den Händen oder durch Schlagen und Stampfen mit Stangen oder Keulen in mörserartigen Gefäßen (Fig. 222) bzw. in mit Steinen ausgekleideten oder mit Lehm ausgestrichenen Gruben oder durch Bearbeiten mit den Füßen oder Händen in Holztrögen oder alten Kanoos (Taf. XXIII). Man überläßt nun die Masse c. 12 Stunden sich selbst, gießt dann kaltes oder heißes Wasser darauf, drückt die Masse mit der Hand aus und wirft die Kerne und die Fasermasse beiseite. In Dahomey läßt man letztere noch gären, was weiteres Öl freimacht. Das im Troge nun obenauf schwimmende Öl wird abgeschöpft, durch Korbsiebe filtriert und durch Erwärmen vom Wasser befreit. Filtrieren und Erwärmen wird wiederholt (~Semler~). Die europäischen Händler reinigen in ihren Faktoreien bisweilen das Öl nochmals. Es kommt in Fässern in den Handel. In Viktoria werden die Früchte zuerst in Kesseln 1-2 Stunden gekocht, dann in hölzernen oder metallenen Behältern mit hölzernen Keulen zerstampft, die Kerne abgesondert und das Öl mit der Hand ausgepreßt. Das Ausgepreßte wird in Wasser geworfen und nochmals mit der Hand ausgedrückt (die Preßrückstände enthalten immer noch 12% des Trockengewichtes Öl). Die Mischung von Wasser und Öl wird dann durchgequirlt, der Ölschaum abgehoben und in einem Tropf durch Erhitzen geschieden (~Preuss~). Bei dieser Methode gehen ⅔ des Öls verloren. Das Öl aus Früchten, die vorher fermentiert wurden (s. oben), ist weniger gut. Die oben beschriebene Bereitung, bei der nur 10-12% der Frucht an Öl gewonnen werden und 50% des Öls in den Rückständen bleibt, ist schon alt. Das, was ~Martius~ nach den Autoren von 1715 und 1723, wie das, was ~Thonning~ 1828, ~Rohlfs~ 1866 und ~Soyaux~ 1875, berichten, stimmt im allgemeinen mit der noch heute zumeist geübten Methode überein. Bei den Niam-Niam wird das Öl der Fruchtwand einfach ausgepreßt, das Öl der Kerne durch Inbrandstecken eines über einen in der Erde versenkten Krug geschütteten Haufens derselben gewonnen (~Schweinfurth~). Die Bewohner von Jocuba kochen die zerkleinerte Fruchtmasse aus (~Rohlfs~). In Loango werden die Früchte auf Raphiablattrippen über dem Feuer erwärmt, das zu einem Teige zerstampfte, von den Steinkernen getrennte Fruchtfleisch in aufgehängte Beutel gebracht und durch Drehen mit einem Hebel ausgepreßt, der Preßrückstand erwärmt und mit heißen Steinen zusammen nochmals gepreßt (~Pechuël-Lösche~). ~Preuss~ bezeichnet einen Ertrag von c. 7¼ kg Öl und c. 15 kg Kerne pro Baum als das Normale. Doch wechselt dies natürlich. Den Eingeborenen liefert jeder Fruchtstand nur etwa 750 g Öl und 1500 g Kerne (~Preuss~). Das Durchschnittsgewicht der Früchte eines Fruchtstandes beträgt 10 kg. Die Javanen bereiten das Öl, indem sie die Früchte in Dampf hängen, sie dann zerkleinern und in einer sehr primitiven Presse -- zwischen zwei mit Steinen beschwerten Brettern auspressen (~van Gorkom~). In Kamerun und Togo sind seit 1906 deutsche +Palmölwerke+ in Betrieb, in denen durch Schälmaschinen das Fleisch der vorgekochten Früchte vom Steinkern getrennt und dann ausgepreßt wird. Die französische Palmölfabrik in Dahomey preßt trocken direkt. Ein Verfahren, die ganze Frucht inklusive der Kerne zu pressen, ist ~Hallet~ patentiert (Franz. Pat. 321918). +Gebleichtes Palmöl+ wird durch Ozon oder Durchblasen von ozonisierter Luft durch auf 150° erhitztes Öl (Engl. Pat. 28682) oder durch Behandeln mit Bichromat und Salzsäure erhalten. Schmutzig rote Öle lassen sich nicht bleichen. Die aus der Steinschale durch Aufschlagen mit Steinen herausgelösten +Palmkerne+ werden in Hanf- oder _Hyphaene_blatt-Säcken versandt. Die Palmnüsse oder Palmkerne werden meist erst in Europa (Marseille, Nantes, Harburg, Cöln, Liverpool, London usw.) und Amerika auf +Palmkernöl+ verarbeitet -- durch kalte und heiße Pressung und Extraktion -- aber auch die Neger stellen es da und dort dar. =Handel.= +Das Palmfett ist das von allen fetten Fetten am meisten industriell verwendete+ und seit der Mitte des XIX. Jahrh. einer der wichtigsten Handelsartikel. Im Welthandel sind jährlich c. 7-800000 dz Palmöl und 1,2-1,3 Mill. dz. Palmkerne (~Semler~). Der Wert der Ausfuhr von Palmöl aus ganz Westafrika betrug 1907: 36,1 Mill. M. (100000 t), der der Palmkerne 53,6 Mill. M. (c. 220000 t). Es gibt zahlreiche Palmöl-+Handelssorten+, wie z. B. Liberia, Saltpond, Addah, Appam, Winnebah, Fernaodo Po, Braß, Neu- und Alt-Calabar, Niger, Accra, Benin, Bonny, Grand Bassa, Togo, Kamerun, Oap Labon, Cap Palmas, Lagos, Loanda, Gold Coast, Insel Sherboro, Gaboon, Half Jack, Opobo, Whidah, Dixcove, Rio Pongo, Appolonia, Grand und Little Popo, Quittah, Lahoo, Appam, Danve, Monrovia, Benin, Congo u. and. Der größte Teil der Erzeugnisse der Ölpalme geht über +Lagos+ und das Niger Coast Protectorat, das eigentliche Gebiet der Ölflüsse. Lagos exportiert durchschnittlich im Jahre 2-4 Mill. Gall., z. B. 1895: 3826000 Gall. Palmöl und 46500 t. Palmkerne, das Nigerschutzgebiet (Alt- und Neu-Kalabar, Opobo, Bonny) durchschnittlich 10-12 Mill. Gall. Palmöl. Hauptmarkt der Kalabarhändler ist N’Dobe, Mittelpunkt des Rio del Rey-Gebietes. Kamerun erzeugt jetzt viel Palmöl. Hauptplatz ist Mandame am Mungo. 1897 exportierte +Kamerun+ für 2300000, Togo für 500000 M. Ölpalmenprodukte, 10 Jahr später schon für 4,2 bzw. 1,4 Mill. M. 1900 exportierte Kamerun 2807229 kg Palmöl und 7945169 kg Palmkerne, Togo 1900: 1987382 kg Palmöl und 6330108 kg Palmkerne. 1909 exportierte Kamerun für 2,6 Mill. M. Palmkerne und für c. 1 Mill. M. Palmöl; die Goldküste jährlich c. 3-4,5 Mill. Gall. Öl. Der Kongostaat exportierte 1906: c. 2,5 Mill. kg Öl und c. 6 Mill. kg Kerne (I, S. 183). Sierra Leone exportierte 1909: 851999 Gallons Palmöl. Der Konsum in Afrika ist etwa doppelt so hoch wie der Export. Früher lieferte ausschließlich die Westküste Afrikas Palmöl, jetzt auch die Philippinen, Indien, Südafrika. +Deutschland+ importierte 1909: 2304476 dz +Palmkerne+, besonders aus Brit. Westafrika, dann aus franz. Westafrika, Togo, Kamerun, Liberia und Port. Westafrika. Deutschland importierte 1909 152356 dz +Palmöl+, davon 132879 aus Brit. Westafrika, 11981 aus Liberia. Deutschland exportierte 1909: 425971 dz +Palmkernöl+. Hamburg importierte 1908 +Palmöl+ und +Palmkernöl+ seewärts: 151284 dz. Davon stammten aus Westafrika 112543, Kamerun: 10454, Deutsch Togo: 8084, geringe Mengen auch aus Brit. Südafrika, Brit. Ostindien. +Frankreich+ importierte 1908: 213026 Quint. +Palmöl+, besonders aus Franz. Westafrika und Engl. Ostafrika und importierte 1908: 38286 Quint. +Palmkerne+ (Amandes de palmiste), besonders vom Senegal und anderen französischen Besitzungen Westafrikas. Die +Vereinigt. Staaten+ importierten 1908: 32615073, 1909: 58971777 pounds Palmoil. [Illustration: Tafel XXIII. Palmölbereitung durch Eingeborene im Canoo. [Aus Soskin, Die Ölpalme.]] =Chemie.= Das Palmöl wird also (wie das der Olive) aus dem Fruchtfleisch dargestellt, das Palmkernöl aus den geschälten Samen. Das Fruchtfleisch beträgt je nach der Varietät 27-70% der Frucht, die Kerne 9-25%. Das Fruchtfleisch enthält 22,6-70, meist 46-66,5% (~Fendler~) Fett, das meiste enthält die Dévarietät. Die frischen Samenkerne enthalten 43-54 (meist 43-50)% Fett (~Nördlinger~, ~Fendler~). +Das frische Palmöl schmeckt süßlich, ist gelb und riecht veilchenartig.+ Mit der Zeit wird es an Licht und Luft (durch gebildetes Wasserstoffsuperoxyd (~Schönbein~) oder Ozon(?) farblos und verliert den Geruch, aber erst sobald sich das Fett zersetzt (~Sadebeck~). Beim Verseifen bleibt Geruch und Farbe erhalten (~Lewkowitsch~). Die Farbe des Handelsöls schwankt zwischen orangegelb (Lagos) und schmutzig rot (Congo), die Konsistenz zwischen Butter (Lagos) und Talg (Congo). Palmöl ist in kaltem Alkohol wenig, leichter in heißem löslich. Es ist leicht verseifbar. In frischem Palmöl sieht man unter dem Mikroskop, eingebettet in eine ölige Grundmasse, Nadeln und Nadelaggregate. Ranziges Öl besteht fast nur aus Fettsäurekristallen. Die Zusammensetzung schwankt je nach Ursprung des Öls (Varietät, Bereitungsart usw.). Die Hauptbestandteile des =Palmöls= (Palmbutter, Palmfett, huile de palme, palmoil, palmolie) sind +Palmitin+ und +Olein+. Die festen Fettsäuren bestehen (nach ~Nördlinger~) aus 98% +Palmitinsäure+, 1% +Stearinsäure+ und 1% +Heptadecylsäure+ (C₁₇H₃₄O₂, wohl = Daturinsäure S. 546). In den flüssigen ist +Ölsäure+ und +Linolsäure+ (~Hazura~ und ~Grüssner~) nachgewiesen. Das spez. Gew. ist 0,9209-0,9245 (~Tate~), 0,945-0,947 (~Schädler~, ~Marpmann~); bei 98° 0,858-0,860. Erstarrungspunkt: 31-39 (~Fendler~). Schmelzpunkt: 27-42,5 (je nach Alter und Ursprung des Öls), 35-43° (~Fendler~). Verseifungszahl: 196,3-205,52 (~Moore~, ~Valenta~, ~Fendler~). Jodzahl: 51-57,4, meist 53 bis 56 (~Tolman~, ~Lewkowitsch~), selten 34-42. Reichert-Meisslzahl: 0,74-1,87 (~Fendler~). Hehnerzahl: 94,2-97 (~Tate~). Brechungsexponent (bei 60°): 1,4510. Das spez. Gew. der Fettsäuren beträgt (bei 98°) 0,8369 (~Allen~), ihr Erstarrungspunkt liegt bei 35,8-46,2°, meist bei 44,5-45 (~de Schepper~ und ~Geitel~), ihr Schmelzpunkt bei 47,75-50°, die Jodzahl 53,2 (~Thörner~), die der flüssigen Fettsäuren 94,6-99. Da das Fruchtfleisch eine sehr energisch wirkende Lipase enthält, spalten sich die Glyceride des Fettes sehr leicht und schon frisches Palmöl enthält 10-12, etwas älteres oft 20-60% freie Fettsäuren, altes ist bisweilen gänzlich aufgespalten (~Lewkowitsch~). Die Säurezahl steigt mit dem Gehalt an Wasser und Verunreinigungen. Die Verunreinigungen betragen meist 1-8%. Der +Riechstoff+ hat einen an _Rhiz. iridis_ und Blauholz erinnernden Geruch. Der gelbe +Farbstoff+ (wohl ein Lipochrom) läßt sich nicht durch Wasser entziehen. Er wird durch rauchende Salpetersäure blau, durch Schwefelsäure blaugrün, durch Chlorzink grün (~Benedikt~) und durch Erhitzen auf 240° zerstört (~Oudemans~). Die +Lipase+ (~Pelouze~ und ~Boudet~) zerlegt das Fett rasch. Die Samen enthalten 43,7-52,5% Öl, das meist durch hydraulische Pressen ausgepreßt wird und angenehm riecht und schmeckt. Das =Palmkernöl= (huile de palmiste ou de pepin de palme, palm seed oil, palm kernel oil, palm nut oil, palm pit olie) ist ganz vom Palmöl verschieden und in seiner Zusammensetzung dem Cocosöl sehr ähnlich. Es besteht hauptsächlich aus +Laurinsäureglycerid+, enthält 12-20% +Olein+, ferner Palmitinsäure und Myristicinsäure und relativ viel flüchtige Fettsäuren, wie Caprylsäure, Caprinsäure (~Valenta~) und etwas Phytosterin (~Stellwaag~). Seine Jodzahl ist sehr niedrig: 10,3-16,8, die Verseifungszahl sehr hoch: 242-254,8. Seine Seife läßt sich schwer aussalzen. Der +Preßkuchen+ (tourteau de palmiste) enthält c. 2,4% Stickstoff (13-20% stickstoffhaltige Substanzen), 4,45-16% Fett, c. 24,92% Rohfaser und 3,60-4,48% Asche (~Cornevin~, ~Dieterich~, ~Mayer~, ~Wagner~, ~Schulze~). Palmkernkuchen enthalten ein Mannogalaktan (~Schulze~) und liefern daher bei der Hydrolyse mit verdünnten Säuren Galaktose und Mannose. Er gilt als mittelmäßiges Futtermittel und wird meist nur gemischt gegeben (~Collin-Perrot~). Die +Steinschale+ enthält 68-75% Rohfaser, 3-3,6% Rohprotein und 1,5-2,1% Rohfett (~Wehnert~, ~Völcker~ und ~Emmerling~). =Lit.= ~Frémy~, Journ. pr. Ch. 22, 120. -- ~Stenhouse~, Lieb. Ann. 36, 50. -- ~Schwarz~, Ebenda 60, 58. -- ~Pelouze~ und ~Boudet~, Lieb. Ann. 29, 42. -- +Palmkernöl+: ~Oudemans~, Journ. pr. Chem. 110, 393 und ~Valenta~, Zeitschr. ang. Chem. 1889, 335. -- ~Benedikt-Ulzer~, a. a. O. (dort weil. Lit.). -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Benedikt~ und ~Hazura~, Monatsh. f. Chem. 1889, 353. -- ~Nördlinger~, Zeitschr. angew. Chem. 1892, 110 u. 1895, 19. -- ~Fendler~, Z. Kenntn. d. Früchte von Elaeis guin. u. d. daraus gewonn. Öle. Ber. d. pharm. Ges. 1903 u. Arbeit d. pharm. Inst. Berlin I, 1903. -- ~Schepper~ und ~Geitel~ (zahlr. Sorten), Dingl. polyt. Journ. 245 (1882) 295. =Verfälschung.= Palmöl ist mit keinem anderen Öl zu verwechseln und wird wohl auch kaum mit anderen verfälscht (Cottonöl und Mineralöle sind beobachtet), doch mischen ihm die Neger Sand bei (Wasser und Sand dürfen 2% nicht überschreiten). Früher, als Palmöl noch teuer war, wurden mit _Curcuma_ gefärbte, mit _Iris_ parfümierte, aus Talg hergestellte Fälschungen beobachtet. Jetzt ist der Talg teurer. =Anwendung.= «Sämtlichen Nutzpflanzen des äquatorialen Westafrikas, einheimischen wie eingeführten, an dauerndem Wert und wirtschaftlicher Bedeutung weit überlegen ist die Ölpalme. Ihre Produkte allein vermögen schon die Rentabilität von Dampferlinien und Eisenbahnen zu garantieren» (~Busse~). Obenan steht das Palmöl und die Palmkerne. Aber auch die Blätter werden als Flechtmaterial, die Fasern der Blattstiele zu Körben usw., das harte Endokarp zu Schmuckgegenständen, der nach Anschneiden der jungen männlichen Blütenstandsanlage oder Anschneiden des gefällten Stammes ausfließende Zuckersaft zur Palmweinbereitung (vgl. I, S. 1018) benutzt. Das Öl ist das Fett der Westafrikaner und dient dort wie Butter besonders zur Palmoil-chop. Vgl. auch ~Fickendey~, Über die Verwendungsfähigkeit des Palmöls als Speisefett (Tropenpfl. 1910, 566). Palmkernmehl ist Futtermittel. Die Neger benutzen das Öl zu Einreibungen. Palmöl wird in Europa besonders in der Glycerin-, Seifen- und Kerzenindustrie verwendet. =Geschichte.= Das Palmfett kam zuerst im XVI. Jahrh. nach Europa und ist seit dem XVIII. Jahrh. auch seiner Herkunft nach bekannt (~Böhmer~), wurde aber erst im XIX. Jahrh. in größeren Mengen exportiert. Die Einfuhr begann 1807 (~Flückiger~). Es wurde zuerst in England technisch verwertet. Was das _Ol. palmae_ der Taxe von Bremen 1665 und der Berluliste (I, S. 951) war, läßt sich nicht mehr feststellen (Cocosöl?). Während früher die Palmkerne weggeworfen wurden, brachten sie deutsche Kaufleute 1858 in den Handel und es entstand zuerst in Harburg eine Palmkernölfabrik. Jetzt ist das Palmkernöl wertvoller geworden als das Palmöl, da es besser ist. Oleum Cacao. Butyrum Cacao, Ol. Theobromae (Theobromatis), Cacaofett, Cacaoöl, Cacaotalg, Cacaobutter; beurre de Cacao, graisse de Cacao; Cacaobutter, oil of Theobroma; borro di Cacao. Die Bezeichnung «Butter» ist, da die Nahrungsmittelchemiker diesen Begriff scharf umschrieben haben, hier wie bei _Ol. myristicae_ besser zu vermeiden. Das Cacaofett ist das Fett der Samen von _Theobroma Cacao_ L. Die Pflanze und die Samen werden bei den Purindrogen beschrieben. Das +Cacaofett+ wird -- wohl stets als Nebenprodukt der Cacao- und Schokoladenfabrikation -- in der Weise dargestellt, daß die schwach (bei 130-140°) gerösteten, geschälten und gemahlenen Samen in hydraulischen Pressen (bei bis 150 Atmosphären Druck) heiß (bei 60-70°) gepreßt werden. Die Ausbeute beträgt c. 30 bis 35%. Bisweilen wird vor dem Pressen ein Alkalikarbonat zugesetzt. Dann enthält das Fett Seife und gibt relativ viel Asche. Das Rohöl wird meist im Heißwassertrichter filtriert. Hauptverkaufsplätze für Cacaobutter sind London und Amsterdam. Die Produktion betrug 1907 bei van Houten 820, bei Cadbury 495, Mignon Hall 474 t. ~Grossmann~ führt (1911) Cacaobutter in Blöcken à c. 10/16 kg und «Marke Stern» in Tafeln à 500, 250, 125, 100 und 50 g. Deutschland importierte 1907: 24, 1908: 11 t und exportierte 1907: 2080, 1908: 1849 t Cacaobutter. Die Preßrückstände bilden den «entölten Cacao», der aber immer noch Fett (wenigstens 12%, meist mehr) enthält. Daß man durch Auskochen der zu Brei zerstoßenen Samen mit Wasser mehr Öl erhält wie durch Auspressen, wußte schon ~Homberg~ (s. Geschichte). Die Menge des Fettes in den Samen schwankt zwischen 36,8 und 56,5% (Extraktion mit niedrig siedendem Petroläther gibt die richtigsten Zahlen ~Davies~ und ~M’Lellan~), meist beträgt sie 51,5-56%-52% der geschälten und bei 25-30° getrockneten Samen (~Heiduschka~) -- Durchschnitt: 55% (~Welmans~). Nach anderen schwankt der Fettgehalt von 42-54 bzw. 37,1 und 51,4 (~l’Hôte~) und beträgt meist 50-53,6% (~Zipperer~). Cacaofett ist spröde und hellgelblich-weiß und wird beim Aufbewahren ganz weiß. Es besitzt einen sehr angenehmen, schokoladenartigen Geruch und einen angenehm milden Geschmack. Cacaofett ist leicht in Petroläther, im halben Gewicht Benzol und im fünffachen Gewicht heißem absolutem Alkohol löslich. Die Lösung in 2 Teilen Äther bleibt bei 12° während 24 Stunden klar, während die mit 20 Teilen siedendem absolutem Alkohol hergestellte Lösung beim Erkalten alles, bis auf 1% (Olein), wieder fallen läßt (~Flückiger~). In 90% Alkohol ist es nur zum geringen Teile löslich (Unterschied von Cocosfett). Beim Einlegen in die Kali-Ammoniakmischung von ~Hartwich~ und ~Uhlmann~ entstehen im Inneren des Tropfens Bündel ganz kurzer Kristallnadeln, an der Peripherie lange Nadeln. Das Cacaofett enthält 59,7% (~Farnsteiner~) feste Fettsäuren und zwar +Stearinsäure+ (39-40% ~Lewkowitsch~, ~Hehner~ und ~Mitchell~), +Palmitinsäure+ und +Arachinsäure+ (~Specht~ und ~Gössmann~). Palmitinsäure und Stearinsäure sind zum Teil als Triglyceride vorhanden (~Klimont~). Das Vorkommen von Laurinsäure (~Kingzett~, ~Traub~, ~Graf~) wird neuerdings bezweifelt (~Lewkowitsch~), die Theobromasäure (C₆₄H₁₂₈O₂ ~Kingzett~) ist wohl Arachinsäure (~Traub~, ~Graf~). Unter den flüssigen Fettsäuren dominiert die +Ölsäure+ (~Traub~) mit 31,2% (~Farnsteiner~), daneben finden sich noch 6,3% andere flüssige Fettsäuren, darunter +Linolsäure+ (~Benedikt~ und ~Hazura~). Von gemischten Estern sind nachgewiesen +Oleopalmitostearin+ (~Klimont~) C₃H₅(OC₁₈.H₃₃O)(OC₁₆H₃₁O)(OC₁₈.H₃₅O) F = 42°, +Oleodipalmitin+ C₃H₅(OC₁₆H₃₁O)₂(OC₁₈H₃₃O) (~Klimont~), +Myristicopalmitoolein+ C₃H₅.(O.C₁₄H₂₇O) (O.C₁₆H₃₁O)(OC₁₈H₃₃O) F = 25-27° und +Oleodistearin+ C₃H₅(C₁₈H₃₅O₂)₂C₁₈H₃₃O₂ F = 44-44,5° (6% ~Fritzweiler~), wahrscheinlich aber noch andere vorhanden. Ölsäuretriglycerid fehlt (~Klimont~). +Ameisensäure+, +Essigsäure+ und +Buttersäure+, die +Graf+ angibt, scheinen bisweilen zu fehlen (~Lewkowitsch~), ebenso fehlt Caprylsäure (~Heiduschka~). Das Fett enthält ferner eine +Lipase+ und in dem Unverseifbaren Phytosterine (~Clayton~) wohl +Stigmasterin+ (F = 162-163°) und +Sitosterin+ (F = 139° ~Matthes~ und ~Rohdich~), vielleicht auch etwas Cholesterin (~Prochnow~, ~Maurenbrecher~ und ~Tollens~), sowie neben einem festen Kohlenwasserstoff C₃₀H₄₈ (F = 133-134° wohl +Amyrilen+) ein hyazinthenartig riechendes Öl (~Matthes~ und ~Rohdich~). Der Träger des Geruches, den das Fett aus den Samen aufnimmt, soll das «+Cacaorot+ in Verbindung mit einem Glykosid» (? ~F. Müller~) sein. Das bedarf der Bestätigung. Spez. Gew. bei 15°: 0,964-0,976 (~Dieterich~), bei 98°: 0,8577 (~Allen~), Pharm. helv.: 0,857-0,858. Frisch geschmolzenes Cacaofett zeigt ein niedrigeres spez. Gew., das erst nach Tagen oder Wochen wieder normal wird (~Welmans~). Erstarrungspunkt: 21,5-27,3°, Schmelzpunkt: 26,5-36° (meist c. 33,5), Pharm. helv.: 29-32°, D. A. V. 30-34, Ph. austr. VIII: 30-35°; frisch geschmolzenes Fett schmilzt bedeutend niedriger (man lege über Nacht auf Eis!), mit Äther oder Petroläther extrahiertes bei 32-34°. Säurezahl: 1-2,3 (~Dieterich~), 1,2-2,2 (Pharm. austr. VIII), 2,41 (~Welmans~), 1,1-1,95 (~Lewkowitsch~), bei ganz altem Fett 4,6. Durch das Entwässern und Filtrieren im Dampftrichter erhöht sich der Säuregehalt zuweilen bis auf das Doppelte. Deshalb sollte längeres Erhitzen vermieden werden (~E. Dieterich~). (Das Fett der Samenschalen hat eine hohe Säurezahl, bis 56 ~Filsinger~.) Verseifungszahl: 191,8-203,7 (meist unter 200, oft 193-196), Pharm. austr. VIII: 190-196, Jodzahl: 32,8-41,7 (~Strohl~), 27,9-37,5 (~Dieterich~), D. A. V: 34-38, Pharm. helv.: 33-38. (Das Fett der Samenschalen hat eine höhere Jodzahl, 39-40 ~Filsinger~.) Bromzahl: 23,69 (~Telle~), Reichert-Meißlzahl: 0,2-0,83, Polenskezahl: 0,33-0,38 (~Heiduschka~), Hehnerzahl: 94,59-94,9, Brechungsexponent bei 40°: 1,4565-1,4578 (~Strohl~) (Pharm. hel. IV: 1,4565-1,4586), Butterrefraktometer bei 40°: 46-47,8. Die freien Fettsäuren zeigen den Erstarrungspunkt 46-51°, den Schmelzpunkt 48-52°, die Jodzahl 32,6-39,1. ~Dieterich~ fand bei Untersuchung zahlreicher Proben: Schmelzpunkt 25,5-35° (meist 32-34), Säurezahl 3,2-25,36, Jodzahl (H-W) 33,89-38,5 (meist über 35), V. Z. h 188,72 bis 203,72 (meist 195-198), V. Z. k 187,6-196,69 (meist 194-195). ~Strube~ fand, daß bei langsamem Erstarren größerer Blöcke der Cacaobutter Marke «Samana» sich ein flüssiger Anteil abscheidet, der sich abweichend verhält, dessen Schmelzpunkt c. 12°, spez. Gew. bei 17,5°: 0,906, Jodzahl 53,06-58,8 ist. Daß Cacaofett nicht ranzig wird, ist nicht richtig (~Lewkowitsch~, ~Dieterich~), aber es wird schwierig ranzig, vielleicht weil es reich an gemischten Glyceriden ist und der Ölsäurerest zwischen den anderen Fettsäureresten steht, also «geschützt» ist (~Klimont~). Mit den auf den Samen bisweilen auftretenden Schimmelpilzen und den stets vorhandenen Saccharomyceten steht das Ranzigwerden in keiner Beziehung, da nur geröstete Samen gepreßt werden. Zur +Prüfung+ bestimmt man in erster Linie die Jodzahl, dann Verseifungs- und Säurezahl sowie den Schmelzpunkt. Von den Verfälschungen ist Rinder- und Hammeltalg am häufigsten und am schwierigsten nachzuweisen. Bei der ~Björkland~schen Ätherprobe scheiden sich, wenn wenigstens 5% Talg zugegen sind, beim Abkühlen Flocken, nicht Kristallbüschel ab (~Lewkowitsch~). «Eine Lösung von 1 Teil Ol. Cacao in 2 Teilen Äther darf sich innerhalb 24 Stunden bei Zimmertemperatur nicht trüben» (D. A. V). Zuverlässiger noch ist die Phytosterinacetatprobe, unbrauchbar (nach ~Lewkowitsch~) ~Hagers~ +Anilinprobe+ (Dingl. Pol. Journ. 175, 324). Cacaofett wird auch häufig mit Cocosfett oder Palmkernstearin, die unter dem irreführenden Namen «Schokoladenfett», «Schokoladenbutter» im Handel sind (~Filsinger~), verfälscht, die an den hohen Verseifungs- und Reichert-Meißlzahlen und der niedrigen Jodzahl erkannt werden können. Ein Gemisch von Cocosfett und Japantalg fand ~Posetto~ 1901 unter dem Namen «Cacaobutter S». Die Ersatzmittel Cacaoline und Cocoline bestehen aus Cocosfett und Palmkernstearin, denen bisweilen Japantalg zugesetzt wird (~Fendler~), die «Pflanzenbutter», «Gemüsebutter» aus Cocosfett (~Filsinger~). Verfälschungen mit Mandel-, Arachis-, Sesamöl (~Filsinger~) und Haselnußöl verraten sich durch hohe Jodzahl und Erniedrigung des Schmelz- und Erstarrungspunktes, sowie durch die bei den Ölen oben (S. 576 u. 592) angegebenen Reaktionen, Wachs und Paraffin (neuerdings nicht mehr beobachtet) durch Erniedrigung der Verseifungszahl und Erhöhung des Unverseifbaren. Neuerdings sind auch Verfälschungen mit Ol. margarini, Stearinsäure und Dikafett (S. 711) beobachtet (letzteres ist aber selten und ebenso teuer), sowie mit dem Fette der Samenschalen, das zu 4-5% darin enthalten ist (~Filsinger~, s. oben S. 722). Auf unzulässig hohe Mengen freier Säuren (infolge Ranzidität) läßt Pharm. helv. wie folgt prüfen. «Eine Lösung von 2 g Cacaofett in 10 ccm Chloroform und 20 ccm absolutem Alkohol soll nach Zusatz von 3 gtts Phenolphthaleïn und 1 ccm weingeistigem n/10 Kali bleibende Rotfärbung zeigen.» Man bewahrt das Cacaofett am besten in Stanniol eingeschlagen auf. Cacaofett wird zu Suppositorien, Urethralstäbchen, Vaginalkugeln, Ceraten, Pillen, Lippenpomaden, Augensalben usw. benutzt, wozu es sich gut eignet, da es bei Körpertemperatur schmilzt. Schon ~Homberg~ (I, S. 884) schied 1695 das Cacaofett ab, das ~Quelus~ (cit. in Hallers Bibl. bot. II [1772] 158) für Salben und als Genußmittel empfahl. Zur Gewinnung des Öls benutzte ~Geoffroy~ (I, S. 883) außer der Presse bereits 1741 den Äther (~Flückiger~). Er empfiehlt es als Salbengrundlage, für Lippenpomade und bei Hämorrhoiden. Besonders die Tübinger Dissertation von ~B. D. Mauchart~ über Butyrum Cacao 1735 (I, S. 928) lenkte die Aufmerksamkeit auf das Fett als ein «novum atque commendatissimum medicamentum» (~Flückiger-Hanbury~). In die Apotheken ist es in der zweiten Hälfte des XVIII. Jahrh. gekommen. In der Pharmacopoea Wirtenbergica von 1771 steht eine Vorschrift zu seiner Bereitung in der Apotheke. Vgl. auch ~Bucholz~, Einige Vers. als Beytr. z. Bestimm. d. best. Method. die Butter aus den Cacaobohnen abzuscheiden. Trommsd. Journ. d. Pharm. 20, 1, 62. -- Das Wort +Cacao+ ist den Fremdwörterbüchern bis in die erste Hälfte des XVIII. Jahrh. noch unbekannt (~Kluge~), es ist umgebildet aus mex. cacauatl, cacaotl, cacaua (so bei ~Hernandez~, bei ~Fernandez~: cacaguata [I, S. 756]). -- coco (caca, cacau) = Schaum, atl = Wasser (~v. Lippmann~, Gesch. d. Zuckers). -- Doch finde ich bereits im Catalogus der Dresdener Hofapotheke 1683: Grana +Cacao+ (Cacahuatl), in der Gothaer Verordnung 1694 (1, S. 828): Fructus +caccau+ und im Catalogus Brunsvicensis 1706: nuclei +cacao+. =Lit.= ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Specht~ und ~Gössmann~, Lieb. Ann. 90 (1854) 126. -- ~Traub~, Zusammensetzung d. Cacaoöls. Arch. Pharm. 1883, 19. -- ~Kingzett~, Ber. d. chem. Ges. 1877, 2243; Journ. chem. soc. 1878, 38. -- ~Graf~, D. Bestandt. d. Cacaofettes, Arch. Pharm. 1888, 830. -- ~Hehner~ und ~Mitchell~, Analyst. 1896, 328. -- ~Benedikt~ und ~Hazura~, Monatsh. f. Chem. 1889, 353. -- ~Fritzweiler~, Arb. d. kais. Gesundheitsamt 1902, 371. -- ~Davies~ und ~M’Lellan~ (Fettgehalt der Samen), Journ. Soc. Chem. Ind. 1904, 480 (Chem. Rev. 1904, 151). -- ~Welmans~, Pharm. Zeit. 1900, 859, Seifenfabrikant 1901, 4; Zeitschr. öffentl. Chem. 1903, 206. -- ~Filsinger~, Chem. Zeit. 1890, 507 u. 716; Zeitschr. anal. Chem. 1880, 247 u. 1896, 519; Zeitschr. öffentl. Chem. 3 (1897) 34. -- ~Dieterich~, Helfenb. Ann. 1889, 1897, 1900, 1902, 1903, 1904. -- ~White~, Oil of Theobroma, spez. grav. under cert. condit. Pharm. Journ. 1898, 69. -- ~Maurenbrecher~ und ~Tollens~, Ber. d. chem. Ges. 39 (1906), 3581. -- ~Klimont~, Ber. d. chem. Ges. 1901, 2636; Monatsh. f. Chem. 1902, 23. -- ~Heiduschka~ und ~Herb~, Pharm. Centralh. 1908, 375. -- ~Clayton~, Chem. News 86 (1902), 51. -- ~Matthes~ und ~Rohdich~, Cacaofett, bes. die unverseifbar. Bestandt. Ber. d. chem. Ges. 1908, 19 u. 1591 und ~Rohdich~, Dissert. Jena 1908. -- ~Prochnow~, Arch. Pharm. 1910, 81. -- ~F. Müller~, Pharm. Zeit. 1908, 57. -- ~Strube~, Zeitschr. öffentl. Chem. 1905. -- ~Posetto~, Giorn. Farm. Chim. 1901, 337. -- ~Björklund~, Zeitschr. anal. Chem. 1864, 233. -- ~Kremel~, Pharm. Post 1899, 5. -- ~van der Wielen~, Invloed van andere vetten op de eigensch. van Cacaobutter, Pharm. Weekbl. 1902. -- ~Maurenbrecher~ und ~Tollens~, Ber. d. chem. Ges. 1906, 3581. -- ~Langbein~, Zeitschr. ang. Chem. 1908, 241. Zu den festen vegetabilischen Fetten der Ölsäuregruppe gehören auch: Chinesischer oder Stillingiatalg von _Stillingia sebifera_ ~Juss.~ Pongamöl aus den Früchten von _Pongamia glabra_ ~Vent.~ Chaulmugra- oder Gynocardiaöl von _Gynocardia Prainii_. Carapafett, Andirobaöl von _Carapa guianensis_, _moluccensis_ u. and. Margosaöl, Veepaöl, Veppamfett, Neemöl von _Melia azadirachta_. Kadamsamenfett von _Hodgsonia_ (_Trichosanthes_) _Kadam_ ~Miq.~ Mahwahbutter, Illipeöl von _Bassia latifolia_. Mowrahbutter, Bassiaöl von _Bassia longifolia_. Champacafett von _Melia Champaca_. Schi- oder Sheabutter, Galambutter von _Bassia_ (_Butyrospermum_) _Parkii_, dem Ölbaume des nördlichen tropischen Afrika (Haussa, Sudan, Nigergebiet) und hier so wichtig wie die Ölpalme in Westafrika. Akeeöl von _Blighia sapida_. Makassaröl von _Schleichera trijuga_. Sawaributter von _Caryocaria tomentosa_. Mafuratalg von _Mafureira oleifera_. Phulwarabutter, Fulwa- oder indische Butter von _Bassia butyracea_. Mkányifett von _Stearodendron Stuhlmanni_. Rambutantalg von _Nephelium lappaceum_. Malabar- oder Pineytalg, Vateriafett, Pflanzentalg von _Vateria indica_. Kokumbutter von _Garcinia indica_. Borneotalg, Tangkawangfett von _Shorea stenoptera_ und _aptera_, _Hopea aspera_, _Isoptera borneensis_. Myrtenwachs oder Myricawachs von _Myrica cerifera_. IV. Feste animalische Fette. Das +Fettgewebe+ der Tiere wird meist als ein modifiziertes Bindegewebe angesehen und entsteht dadurch, daß in den Bindegewebszellen Fetttröpfchen auftreten, die, sich allmählich vergrößernd, schließlich Cytoplasma und Zellkern beiseite schieben. Andere betrachten die Fettzellen als Zellen des Schleimgewebes. Die fettbildenden Stoffe werden von der Zelle aufgenommen und in ihr zu Fett verarbeitet, die daneben entstehenden Stoffe durch Lymph- und Blutserum entfernt. Als Fettbildner dürften in erster Linie die Kohlehydrate, dann aber auch die Eiweißsubstanzen in Betracht kommen. Bei der Arbeit im Organismus können Fette und Kohlehydrate einander bis zu gewissem Grade im Verhältnis ihrer Verbrennungswärmen vertreten (~Zuntz~). Auch im intermuskulären Bindegewebe und dem Sarkoplasma treten Fette auf (hier neben Lecithin und Cholesterin), ferner im Knorpelgewebe, in den Knochen, in der Nervensubstanz (hier neben Myelinsubstanzen: Lecithine, Cholesterine, Protagone), in der Blutflüssigkeit (Serum), in der Lymphe und dem Chylus, in der Haut und ihren Anhängen und endlich auch in Körpersekreten, wie z. B. der Milch. Die Natur der tierischen Fette erkannte bereits ~Chevreul~, doch ist bis heute die Untersuchung noch nicht abgeschlossen und jede neue Arbeit bringt neue Überraschungen. Die Ansicht, daß in tierischen Fetten auch gemischte Glyceride (s. S. 547) vorkommen, wurde zuerst von ~J. Bell~ in «Analyse und Verfälschung der Nahrungsmittel 1885» für die Butter ausgesprochen, in der ~Bell~ das Oleobutyropalmitin annimmt. Dies Glycerid haben dann ~Blyth~ und ~Robertson~ (Chem. Soc. London, Jan. 1889) abgeschieden und C₃H₅(C₁₈H₃₃O₂)(C₄H₇O₂)(C₁₆H₃₁O₂) formuliert. Genau beschrieben wurde aber zuerst von ~Heise~ (Arb. d. k. Gesundheitsamt. 1896) ein gemischtes Glycerid (das Oleodistearin aus Mkányifett, S. 724), welchen Befund ~Henriques~ und ~Künne~ bestätigten. Zahlreiche neue gemischte Glyceride isolierte dann ~Hansen~ (Arch. f. Hygiene 1902) aus Hammel- und Rindstalg (s. d.). Im Menschenfett fanden ~Partheil~ und ~Ferié~ (Arch. Pharm. 1903) Stearodiolein. ~Kreis~ und ~Hafner~ halten aber die Glyceride ~Hansens~ für Gemische. Sie isolierten 1904 aus Rinds- und Hammelfett: Palmitodistearin, aus Schweinefett ein gemischtes Glycerid der Formel C₃H₅(C₁₇H₃₃O₂)(C₁₈H₃₅O₂)(C₁₈H₃₅O₂), kontrollierten diese Glyceride durch die Analyse und Untersuchung der abgeschiedenen Fettsäuren und bestätigten den Befund durch die Synthese. Alle tierischen Fette enthalten Cholesterin (s. S. 748). Phytosterin tritt aus pflanzlichen Futtermitteln (z. B. Baumwollsamenpreßkuchen) nicht in das Fett der Tiere über (~C. Virchow~), so daß der Nachweis von Phytosterin wohl immer eine +Beimischung+ von pflanzlichem Fett zu tierischem erweist. =Lit.= ~Ulzer~ und ~Klimont~, Allgem. u. physiolog. Chem. d. Fette. Berlin 1906. -- Über die Bildung des Fettes im Tier, den Übergang von Nahrungsfett in das Fettgewebe und die Organe des Tieres, die Beziehungen der Fettbildung zur Nahrung, das Verhalten der Fette im Darmkanal und den Abbau der Fette im Organismus vgl. ~F. Röhmann~, Biochemie 1908, ~Lehmann~ und ~Voit~, Fettbildung aus Kohlehydraten. Zeitschr. f. Biologie 42 und ~Rousselet~, Chimisme intestinal d. graisses alimentaires et leur dosage en Coprologie. Thèse Paris 1909. -- Über gemischte Glyceride und den zuerst von ~Heintz~ (1849) und ~Duffy~ (1852) beobachteten «doppelten Schmelzpunkt» vgl. ~A. Hafner~, Über natürl. vorkomm. u. synthet. dargest. gemischte Fettsäureglyceride. Diss. Basel 1904 (mit ~Kreis~, siehe bei Adeps), ~Adolf Grün~, Über d. Constit. d. Fette. Habilitationsschrift Zürich 1907 und ~Ferié~, Z. Kenntn. d. Fette. Diss. Bern 1903 u. oben S. 547. -- Über Kristalle aus tier. Fetten: ~Zune~, Traité génér. d’analyse des beurres 1892/93 und bei ~Hafner~. -- Über die flüchtigen Fettsäuren vgl. ~Mougnaud~, Dosage d. acid. volat. dans l’analyse des corps gras. Thèse Paris 1902. -- Über das Ranzigwerden d. Fette vgl. ~E. Ritsert~, Diss. Bern 1890 (dort eine histor. Übersicht) und ~Winckel~, Apoth. Zeit. 1905. -- ~Chevreul~ untersuchte (1823) die Fettsäuren des Menschen-, Schweine-, Jaguar- und Gänsefettes, ~Heintz~ (Lieb. Ann. 84, 297) das Menschenfett. 1. Körperfette. Von den Körperfetten werden jetzt in der Medizin nur noch Schweine-, Hammel- und Rindsfett benutzt. Die alte Medizin, schon die der Assyrer (vgl. S. 551) benutzte sehr viel mehr. In zahlreichen Rezepten des Papyrus ~Ebers~ findet sich Fett. ~Dioskurides~ erwähnt das Fett der Schweine, Bären, Böcke, Schafe, Hirsche, Rinder, Panther, Löwen, Hühner, Gänse, sowie das Knochenmark; ~Galen~ das Fett der Schweine, Ziegen, Hammel, Kälber, Böcke, Bären, Löwen, Hähne, Hennen und Schlangen. ~Plinius~ bemerkt (XI, 85): «Gehörnte Tiere, die nur in einer Kinnlade eine vollständige Zahnreihe und an den Füßen Knöchel haben, liefern, wenn sie fett sind, Talg (sevum), die Zweihufer oder die, deren Füße in Zehen gespalten sind und die keine Hörner tragen, Schmalz (adeps).» ~Ibn Sina~ (I, S. 602) benutzte Gänse-, Hühner-, Tiger- und Löwenfett. Auch noch in den Pharmacopoeen des XVI. bis XVIII. Jahrh. finden sich viele tierische Fette neben _Ol. lumbricorum_ und _Viperorum_, _Adeps Leonis_, _Canis_ usw. auch Menschenfett. (Vgl. ~Tschirch~, die Pharmacopoee, ein Spiegel ihrer Zeit 1904). Die Chemie der selteneren Fette bei ~Benedikt-Ulzer~ und ~Lewkowitsch~ a. a. O. Der Hindu darf keine Seife aus Tierfett benutzen, daher spielt die aus dem Fett der _Bassia_samen (+der sog. Mowrahbutter+ s. oben S. 724) bereitete Seife in Vorderindien eine große Rolle. Adeps suillus. Axungia porci; Schweinefett, Schweineschmalz; graisse de porc, axonge de porc, adipe, saindoux; lard, hogslard; strutto. Unter «Adeps» schlechthin wird jetzt immer _Adeps suillus_ verstanden. =Etym.= Fett, von ~Luther~ aus dem ndd. für Feißt in die Schriftsprache eingeführte Nebenform; nnd. Fett aus asächs. fêtid, ahd. feizzit = feißt. -- Schmalz von aldn. smjor, ahd. smëro, mhd. smalz. -- Der alte Ausdruck für Fett: «Schmutz» ist in der Schweiz im Dialekt noch jetzt üblich. Im ganzen alamanischen Sprachgebiet: smuz = Schmiere, Fett (von smut = schmieren). -- Adeps schon bei ~Plinius~. -- Bei ~Dioskurides~: στέαρ ὔειον -- (daraus ist Stearin gebildet). Bei ~Ibn Baithar~ heißt Fett schahm. =Gewinnung.= Schweinefett wird aus dem Zellgewebe, besonders des Netzes und der Nierenhülle des Schweines, =Sus Scrofa var. domesticus L.=, ausgeschmolzen. Das Schmerfett ist oft in dicken Schichten in der Bauchhöhle, in der Nähe der Rippen und Nieren abgelagert. Das im Speck, d. h. in den äußeren Partien unter der Haut an Bauch und Rücken abgelagerte Fett ist reicher an flüssigen Fettsäuren, daher weicher. Der Speck eignet sich daher weniger zur Schmalzfabrikation und wird als solcher verwendet. Man unterscheidet: Eingeweidefett (Gekrösefett), Netzfett (Liesen, Flohmen, Schmer, Filz) und Nierenfett. Pharm. helvet. IV verlangt, daß +nur+ das aus zerriebenem und gewaschenem, frischem, ungesalzenem Zellgewebe des Netzes und der Nierenhülle des +gesunden+ Schweines im Dampfbade gewonnene Fett benutzt wird, schließt also den Speck des Unterhautbindegewebes aus. D. A. V verlangt außerdem, daß das Fett vom Wasser befreit werde und Ph. austr. VIII schreibt vor, daß dies mittelst wasserfreiem Natriumsulfat geschehen und das Fett durch Baumwolle filtriert werden solle. Alle drei Pharmacopoeen denken wohl an eine Darstellung in der Apotheke, verwerfen jedenfalls alles Fett, dessen genaue Provenienz unbekannt ist. Die Schmalzfabrikation wird im größten Stil in Nordamerika betrieben, so daß der größte Teil des Handelsfettes daher stammt, in Deutschland wird es nur vereinzelt im Großbetriebe gewonnen, viel im Kleinen. Größere Mengen liefert Ungarn und Rumänien, kleinere Serbien, Dänemark und Holland. Das Ausschmelzen der zuvor wiederholt gewaschenen und zerkleinerten Körperteile geschieht entweder über direktem Feuer oder im Dampfbade oder mit gespanntem resp. überhitztem Dampf von 110-115°. Die von dem ausgeschmolzenen Fett getrennten «Grieben» werden dann zwischen erwärmten Platten gepreßt und liefern ein zweites Fett, das mit dem ersten nicht vermischt wird. Der Rückstand geht in die Blutlaugensalzfabrikation. Das abgeschiedene Fett wird bei schlechteren Sorten bisweilen mittelst Schwefelsäure «geläutert». Schon ~Dioskurides~ beschreibt (II, 87) die Darstellung des Schweinefettes durch Auskochen der gewaschenen Fettteile mit Wasser über freiem Feuer, Durchseihen, wiederholtes Umschmelzen nach Entfernung des sich am Boden Absetzenden. In Nordamerika (Missouri, Ohio, Cincinnati) wird Schweinefett aus allen fetten Teilen des Schweines in den großen Packing houses dargestellt. Man unterscheidet von dem im Handel dominierenden amerikanischen Fett: 1. +Neutral Lard I+, Netz- und Gekrösefett (Leafs) durch Ausschmelzen frisch geschlachteter Tiere im Wasserbade bei 40-50°, weiß, beste Marke. 2. +Neutral Lard II+, Rückenfett, wie 1 dargestellt. 3. +Neutral Lard Imitation+ aus Speck von 1 gewonnen, öliger wie dieses. 4. +Leaf Lard+, durch Ausschmelzen der Rückstände von 1 mit direktem Dampf unter Druck im Autoklaven. 5. +Choice Lard+ (Choice kettle rendered lard) aus den Liesen von 1 und 2 durch Ausschmelzen in offenen, mit Dampfmantel versehenen Kesseln. 6. +Prime steam Lard+ (western steam lard) aus den Rückständen der Neutral-Lardfabrikation und aus nicht sonst verwerteten selten Teilen durch direkte Einwirkung von Dampf von 2½-2¾ Atmosphären oder durch direkten Dampf in offenen Gefäßen ausgeschmolzen. Gelblich oder grau, Röstgeschmack. Wird bisweilen in Amerika und Deutschland raffiniert, z. B. durch Kochen mit Wasser. 7. +Pure Lard+, mit Fullererde gebleichtes und gekühltes prime steam lard, weiß, fest, speckartig. Durch Pressen des Fettes in hydraulischen Pressen kann Schweinefett in +Schmalzöl+ (Specköl, lard oil, huile de graisse, Ol. Adipis) und +Solarstearin+ (Lard stearine) geschieden werden (Demargarinierungsprozeß). =Handel.= Die Vereinigten Staaten exportierten 1908: 603413770, 1909: 328722933 pounds Lard und 1908: 75183210, 1909: 75183196 pounds Lard Compounds and Substitutes for (Cottolene, Lardine usw.). Die Einfuhren von Schweinefett von Amerika nach Deutschland haben abgenommen. Sie betrugen 1907: 101,3, 1908: 104,6, 1909: 89 Mill. kg (~Gehe & Co.~). =Chemie.= ~Scheele~ entdeckte 1783 im Schweinefett das Glycerin («Ölsüß») und ~Chevreul~ zerlegte es in zwei durch ihren Schmelzpunkt unterschiedene Substanzen, die beide verseifbar waren und aus denen er einerseits die acide margarique, die von ~Heintz~ und ~Berthelot~ als Palmitin-Stearinsäure erkannt wurde, andererseits die acide oleique abschied. Das Schweinefett enthält +Palmitinsäure+, +Stearinsäure+ und +Ölsäure+, wahrscheinlich in Form gemischter Glyceride, amerikanisches Schweinefett auch Triolein. Daneben findet sich +Linolsäure+ (~Fahrion~, ~Wallenstein~ und ~Finck~, ~Farnsteiner~, ~Bömer~) und vielleicht auch +Linolensäure+. ~Twitschell~ gibt an: 10,06% Linolsäure, 49,39% Ölsäure und 40,55% feste Fettsäuren. ~Partheil~ und ~Ferié~ fanden große Mengen +Myristinsäure+ und +Laurinsäure+ und geben folgende, aber bei den Fetten verschiedener Provenienz (Rasse, Körperstelle, Fütterung, Klima usw.) jedenfalls wechselnde Mengen (im Mittel in %) an: Stearinsäure 8,4, Palmitinsäure 4,48, Myristinsäure 14,35, Laurinsäure 11,68, ungesättigte Säuren 54,05, davon stärker ungesättigt 10,03. ~Kreis~ und ~Hafner~ erhielten das gemischte Glycerid Heptadecyldistearin (Daturadistearin?) C₃H₅(O.C₁₇H₃₃O)(O.C₁₈H₃₅O)₂ F = 66,2°. Zwischen amerikanischen und europäischen Schweinefetten bestehen weitgehende Unterschiede, ebenso zwischen dem Fett des Kopfes, Rückens, Fußes, Schinkens, sowie des Herzens, der Niere, des Flomen und Netzes. So schwankt z. B. das spez. Gew. bei 100° zwischen 0,8588 und 0,8700, der Schmelzpunkt zwischen 26 und 45°, die Jodzahl zwischen 52,6 und 68,8. Kopffett hat eine besonders hohe Jodzahl (bis 85,03). Die Jodzahl (d. h. der Gehalt an Ölsäure und Linolsäure) ist auch von der Fütterungsart abhängig. Kranke und sehr fette, d. h. gemästete Schweine, produzieren ein an flüssigen Fettsäuren reicheres Fett. Das härteste Fett wird im Januar und Februar erhalten. Das Unverseifbare beträgt im Mittel 0,35% (~Lewkowitsch~). Der Wassergehalt ist gering, meist unter 1%. Stickstoffsubstanzen 0,26% (~König~). Frisch ausgeschmolzenes Fett ist fast neutral. Es enthält nur 0,09-1% freie Fettsäuren. Reines Fett erstarrt feinkristallinisch. Die Kristalle, die man aus Äther erhält, sind einzelne oder büschelförmig vereinigte oblonge Platten mit abgeschrägten Enden, die für gewöhnlich keine Krümmungen zeigen (~Belfield~) -- Unterschied von Rindstalg (s. d.). Spez. Gew. bei 15°: 0,931-0,940, bei 98°: 0,860-0,862 (Pharm. helv. IV); Schmelzpunkt: 26-31° (~König~) bis 37,5° (~Thörner~), 36-45° (~Dieterich~); 36 bis 40° (Ph. helv. IV); Erstarrungspunkt: 26-32°; Brechungsindex bei 60°: 1,4539; Hehnerzahl: 95,1-96,15; Reichert-Meißlzahl: 0,3-0,6; Verseifungszahl: 193-200 (Pharm. austr. VIII: 194-197); Jodzahl: 46-64 (selten sogar 70 oder gar 85); Pharm. helv.: 56-62, D. A. V: 46-66; Pharm. austr. VIII: 48-60; Brechungsexponent bei 40°: 1,4606, bei 60°: 1,4539 (Pharm. helv. IV bei 40°: 1,4586 bis 1,4606). Die Fettsäuren zeigen den Erstarrungspunkt 34-40°, Schmelzpunkt 35-47°, Jodzahl 64,2 (Jodzahl der flüssigen Fettsäuren: 92-106). Schweinefett löst sich geschmolzen in Petroläther, Chloroform, Äther, Benzol, Amylalkohol. ~Dieterich~ fand (Methode in Helfenb. Ann. 1897) bei +selbstausgelassenem+ Schweinefett Schmelzp.: 37-47°; S. Z.: 0,240-1,120; J. Z. n. H-W: 46,48-55,49; V. Z. k.: 195,32 bis 198,83; V. Z. h.: 192,54-199,16. Die Verbrennungswärme von Schweinefett ist bei konst. Vol. 9469 g-cal. Es ist also ein vorzügliches Nahrungsmittel. =Verfälschungen und Prüfung.= Über die Verfälschungen und ihren Nachweis ist besonders die Literatur der Nahrungsmittelchemie sowie die Werke von ~Benedikt-Ulzer~, ~Lewkowitsch~ und ~Hefter~ zu vergleichen; für Deutschland auch die Ausführungsbestimmungen zu dem Gesetze betreffend die Schlachtvieh- und Fleischbeschau vom 3. Juni 1900. Als Verfälschungen kommen besonders in Betracht: Baumwollsamenöl und Baumwollstearin, Arachisöl, Sesamöl, Cocosfett, Palmkernöl, Rindstalg, Preßtalg, Rindsstearin, seltener Mineralöle und Paraffin. Die Arzneibücher verlangen ein gleichmäßiges, streichbar weiches, nicht ranziges, zu einer klaren, noch in 1 cm dicker Schicht farblosen, Flüssigkeit schmelzendes Fett, das möglichst wenig sauer ist (D. A. V: Säuregrad nicht über 2, Pharm. austr.: soll 0,2-norm. Kali, Pharm. helv.: 1 ccm n/10 weingeistiges Kali nicht neutralisieren), keine Mineralsäuren enthält (Pharm. austr.: Wasser damit geschüttelt färbt Lakmuspapier nicht rot) und auch kein Kochsalz. Auch soll es die Silbernitratprobe aushalten (Ph. austr.). Eine Mischung von 2 g Fett, 3 g Natronlauge und 2 g Weingeist soll im Wasserbade gekocht auf Zusatz von 50 g Wasser und 10 g Weingeist klar bleiben (Mineralfette). Die Pharm. helv. IV verlangt ferner: Überschichtet man farblose Salpetersäure (spec. Gew. 1,4) mit einem gleichen Volumen geschmolzenem Schweinefett und dieses mit derselben Menge Resorcin-Benzol, so soll beim Umschütteln keine vorübergehende rot- bis blauviolette Färbung auftreten (Samenöle). Erhitzt man 1 Vol. geschmolzenes Schweinefett mit 2 Vol. Halphens Reagens 10 Minuten lang im Kochsalzbade über 100°, so soll keine Rotfärbung auftreten (Baumwollsamenöl). Werden je 5 ccm geschmolzenes Schweinefett und Salzsäure (spez. Gew. 1,19) 1 Minute lang geschüttelt, dann 5 ccm Phloroglucin hinzugefügt und weiter geschüttelt, so soll keine intensive Rotfärbung eintreten (gebleichtes und verdorbenes Fett). Einen Aufschluß über die Reinheit eines Schweinefettes gibt (nach ~Muter~ und ~Koningh~, ~Asboth~, ~Wallenstein~ und ~Finck~ u. and.) auch die Jodzahl des flüssigen Anteils («innere Jodzahl»). Sie beträgt bei mitteleuropäischem Schmalz 93-96 (93,5-103,7), bei amerikanischem 103-105 (95,2-104,9) -- (bei Baumwollsamenöl 136). Da Luft und Licht das Fett verändern (wasserhaltiges Fett wird leichter ranzig), ist es in gut verschlossenen Gefäßen, vor Licht geschützt, aufzubewahren. Benzoiniertes Fett (Adeps benzoinatus) unterliegt dem Ranzigwerden weniger. Den Prozeß des Ranzigwerdens hat hier ~Späth~ studiert; die Jodzahl nimmt ab, die Säurezahl zu, ebenso die Refraktometeranzeige und der Schmelzpunkt. _Adeps_ ist die wichtigste Salbengrundlage und dient auch bei der Seifen- und Pflasterbereitung. =Lit.= ~Scheele~, Briefe u. Aufzeichn. Herausgegeb. von ~Nordenskiöld~ 1892. -- ~Chevreul~, Rech. chim. sur les corps gras d’origine animale. Paris 1823 (vgl. auch S. 552). -- Auch ~Braconnot~ untersuchte das Fett, ~Bérard~ lieferte eine Elementaranalyse und ~A. Vogel~ (Trommsd. Journ. d. Pharm. 16, 1, 173) studierte sein Verhalten z. B. zu Licht und Luft. -- Zahlreiche Tabellen bei ~Lewkowitsch~ a. a. O., ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. und ~König~ a. a. O. -- ~Dieterich~, Helfenb. Ann. 1897. -- Die Trennung der Fettsäuren bei ~Partheil~ und ~Ferié~, Arch. Pharm. 1903. 545. -- ~Späth~, Zeitschr. anal. Chem. 1896, 471. -- ~Kreis~ und ~Hafner~, Über natürlich vorkommende und synthetisch dargestellte gemischte Fettsäureglyceride (mit Mikrophot.). Zeitschr. Unters. Nahr. u. Genußm. 1904, 641. -- ~A. Hafner~ (Gemischte Glyc.). Dissert. Basel 1904. -- ~E. Polenske~, Beitr. z. Unters. von Schweineschmalz. Arbeit. kais. Gesundheitsamt 22 (1905), 557 u. 576. Über die Körperfette anderer Tiere: Gans, Reiher, Ente, Hund, Katze, Hase, Dachs, Bär usw. vgl. ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O., ~Lewkowitsch~ a. a. O. und ~Hager-Fischer-Hartwich~, Pharm. Praxis. Sevum ovile. Sebum oder Sevum ovillum; s. vervecinum, Hammeltalg, Hammelfett, Schöpsentalg; Unschlitt, im Volksmunde: Hirschtalg; -- suif de mouton; inselt, mutton tallow, mutton suet; sego di montone. -- Bei ~Plinius~: sevum. Talg (nd.), talk (ndl.), tealg (angs.), tallow (engl.), tolgr (anord.). Ein Zusammenhang mit got. tulgus (= fest, also festgewordenes) erscheint ~Kluge~ nicht, mir wohl möglich, da das Festsein gerade das wichtigste und charakteristischste am Talge ist gegenüber anderen Fetten. -- Das eigentlich hd. oberd. Wort ist aber Unschlitt (~Kluge~). -- Ägyptisch heißt Talg: ’d die hieroglyphischen Zeichen I, S. 467). +Hammeltalg+ wird durch Ausschmelzen des zerkleinerten, gewaschenen Fettgewebes, besonders des Bauchfettes gesunder Schafe, =Ovis aries L.=, gewonnen. Pharm. austr. läßt nur das Bauchfett zu. Pharm. helv. IV verlangt ausdrücklich Ausschmelzen im Dampfbade. Im Handel ist als Hammeltalg der Talg von Schafen, Hammeln und Ziegen, auch viel australischer, Dalmatiner und türkischer Talg. Für die Pharmazie liefern den Hammeltalg einige große pharmazeutische Laboratorien. Schon ~Dioskurides~ beschreibt die Darstellung von Sevum (der Böcke, Hirsche und Schafe) durch Erhitzen des gewaschenen Fettes mit Wasser über freiem Feuer. =Chemie.= Der Hammeltalg, den bereits ~Chevreul~ untersuchte, und von dem dieser und ~Bérard~ bereits Elementaranalysen machten, -- er und ~Braconnot~ gaben 80% fester und 20% flüssiger Glyceride darin an -- ist besonders reich an gemischten Glyceriden. ~Hansen~ (Arch. f. Hygiene 42 [1902], 1) isolierte daraus die gemischten Glyceride +Oleopalmitostearin+ C₃H₅(O.C₁₈H₃₃O)(OC₁₆H₃₁O)(OC₁₈H₃₅O); F = 42°, +Oleodipalmitin+ C₃H₅(O.C₁₈H₃₃O)(O.C₁₆H₃₁O)₂; F = 48°, +Dipalmitostearin+ C₃H₅(OC₁₆H₃₁O)₂(OC₁₈H₃₅O) F = 55° und +Distearopalmitin+ C₃H₅(O.C₁₈H₃₅O)₂(OC₁₆H₃₁O) F = 62,5. ~Hafner~ fand dagegen (Diss. Basel 1904) nur das +Palmitodistearin+: C₃H₅(OC₁₆H₃₁O)(OC₁₈H₃₅O)₂ F = 63,2, das er durch die Spaltung, Untersuchung der Spaltungsprodukte und die Synthese bestätigte. Er hält die Glyceride ~Hansens~ für Gemische. Den flüchtigen riechenden Stoff des Bockstalg nannte ~Chevreul~ Hircin. Hammeltalg ist oft mit Rindstalg gemischt im Handel (mixed tallow). Er ist härter als dieser, hat einen höheren Schmelz- und Erstarrungspunkt und wird leichter ranzig. Seine Viskosität ist um 11,2% größer als die des Rindertalgs (~Lidow~). Spez. Gew. bei 15°: 0,937-0,961, bei 100°: 0,858-0,860. Schmelzpunkt: 44-55° (49,5-55° ~Moser~) D. A. V 45-50°, Pharm. helv. 44-50°; Erstarrungspunkt: 32-41°; Verseifungszahl: 192-196,5 (meist 194-195 ~Moser~), nach Pharm. austr. 193-195; Jodzahl: 32,7-44 (~Thörner~) bis 46,2 (~Wilson~); bei Dalmatiner bisweilen nur 30,96 (~Eisenstein~), D. A. V und Pharm. helv.: 33-42; Hehnerzahl: 93,91-95,54; Bromthermalprobe: 7,55-8,9 (~Archbutt~); Brechungsexponent bei 60°: 1,4501; freie Fettsäuren: 0,72-1,8% (~Ulzer~); bei älterem Talg 6,1-9,3 (~Fischer~). Aus der Fabrikation (Säuretalg s. unten S. 731) stammt bisweilen ein Gehalt an Schwefelsäure. 2 g für pharmazeutische Zwecke verwendbarer Talg sollen weniger als 1 ccm n/10 Kali neutralisieren (Pharm. helv. IV). Säuregrad nicht über 5 (D. A. V). Die Fettsäuren besitzen einen Schmelzpunkt 45-56,5°, Erstarrungspunkt 39-51,9°, Jodzahl 31-34,8 (die flüssigen: 92,7). ~Dieterich~ fand (1900): Schmelzp.: 45-52° (meist 47-49); S. Z.: 0,210-6,53; J. Z.: 33,02-42,83, V. Z. h.: 194,34-205,33; V. Z. k.: 194,82-200. Die Verbrennungswärme von Hammelfett ist bei konst. Vol. 9492 g-cal. Der Talg verschiedener Teile des Tieres differiert stark; so beträgt (nach ~Hehner~ und ~Mitchell~): -------------+-------------+---------+--------+-------+-------------- | Bei Nieren- | Rücken- | Kamm- | Herz- | Lenden- | | | | | Fett -------------+-------------+---------+--------+-------+-------------- Jodzahl | 48,16 | 63,3 | 48,6 | 58,2 | 50,6 Schmelzp. d. | 45,6 | 41,4 | 42,2 | 33,8 | 40,8 Fettsäuren | 45,6 | 41,4 | 42,2 | 33,8 | 40,8 | | | | |} keine Ab- Stearinsäure | 26,2-27,9 | 24,8 | 16,4 | c. 1 |} scheid. | | | | |} nach 2 Tagen Weitere Angaben über diese Differenz bei Moser (Ber. Landw. chem. Vers. Anst. Wien 1882 und 1883). Die Kristalle, die man aus Äther erhält, sind Bündel sehr dünner Nadeln, die pferdeschweifartig gekrümmt sind, etwa wie ein S (~Belfield~) -- Unterschied gegenüber Schweinefett (s. d.). =Prüfung.= Auf +Palmfett+ läßt Pharm. helv. durch Verrühren mit konz. Chlorzinklösung prüfen: es darf keine Grünfärbung eintreten. -- 1 Teil Hammeltalg mit 5 Teilen Weingeist (90%) erwärmt und durchgeschüttelt soll nach dem Abkühlen eine klare, Lackmus nicht rötende Flüssigkeit geben, die durch die gleiche Menge Wasser nicht getrübt wird. D. A. V und Pharm. austr. VIII schreiben ausdrücklich Hammeltalg vor, Pharm. helv. läßt auch Rindstalg (s. d.) zu. Sevum bovinum. Sebum taurinum, Rindstalg, Rindsfett, Unschlitt, suif de boeuf ou de veau; suet of beef, beef tallow, ox tallow; sevo, sego di bove. -- Bei ~Plinius~: sevum. Der Rohtalg, das wichtigste Rohmaterial, das die Fettindustrie verwertet, wird vorwiegend aus dem Bindegewebe der Niere der Ochsen, Kühe und Kälber, =Bos Taurus L.= ausgeschmolzen. Den besten Talg liefern die größeren zusammenhängenden Fettmassen (Rohkerntalg), geringeren der Rohausschnitt oder Brocken. Die dritte Sorte ist der Ausschnittalg. Das Ausschmelzen (Talgschmelze) erfolgt entweder im trockenen Schmelzverfahren mittelst direkten Feuers, indirekter Dampfheizung, Heißwasser- oder Heißluftheizung oder im nassen Schmelzverfahren durch Ausschmelzen auf Wasser entweder mittelst direkter Feuerung oder durch Dampfzufuhr. Bei diesem Verfahren wird dem Wasser bisweilen Schwefelsäure oder Natronlauge zugesetzt. Neuerdings wird Talg auch in Autoklaven (Dampftalg) im Vakuum (~Lidoff~) und in verbleiten Holzbottichen durch Kochen mit sehr verdünnter Schwefelsäure und Entsäuern (Säuretalg) oder unter Zusatz von sehr verdünnter Natronlauge (s. oben) erzeugt. Der Vakuumtalg und der Natrontalg sind fast geruchlos und rein weiß. Die überseeischen Talge sind gefärbt, gelblich (australischer) dunkelgelb (nord- und südamerikan.) oder noch stärker gefärbt (austral. und nordamerikanische «No-colour» Talge). Der Handelsunschlitt wird in den zwei Sorten +Kerntalg+ und +Ausschnittalg+ in Fässern oder Scheiben in den Handel gebracht. Er wird außer in Europa (Irland, Holland, Budapest, Graz, Wien, Florenz, Triest, Paris) in Australien, Nord- und Südamerika (New York, Buenos Aires), Rußland (Odessa, Orenburg, Petersburg) fabriziert und exportiert. Durch Pressen wird der Talg in festen +Preßtalg+ und flüssiges +Talgöl+ zerlegt. Rindstalg ist haltbarer als Hammeltalg. Die Vereinigten Staaten exportierten 1908: 91397507, 1909: 53332767 pounds tallow. =Chemie.= Die Zusammensetzung des Rindstalgs wechselt nach der Körperstelle, das Eingeweidefett ist das härteste, das Taschenfett das weichste (Tabelle von ~Mayer~ bei ~Benedikt-Ulzer~). Der Rindstalg, den bereits ~Chevreul~ untersuchte, ist reich an gemischten Glyceriden. ~Hansen~ (Arch. f. Hyg. 1902) fand darin: +Distearopalmitin+ F = 62,5°, Verseifungszahl 195,65, +Dipalmitostearin+ F = 55°, V. Z. 200,2, +Dipalmitoolein+ F = 48°, V. Z. 202,7, Jodzahl 30,18 und +Stearopalmitoolein+ F. = 42°, V. Z. 195, J. Z. 29,13 (s. oben S. 729). ~Hafner~ fand jedoch (1904) nur ein +Palmitodistearin+, wie im Hammeltalg (s. oben S. 729). Das Verhältnis von Stearin zu Palmitin ist etwa 1 : 1 (~Lewkowitsch~). Im Talgstearin fand ~Wallenstein~: Olein 21,4, Stearin 65,4, Palmitin 13,2. Auch +Linolensäure+ scheint darin vorzukommen (~Farnsteiner~), bisweilen auch oxydierte Fettsäuren (~Fahrion~); vielleicht auch +Myristinsäure+. Der Gehalt an freien Fettsäuren schwankt. Frisch ausgeschmolzener Rindstalg hat davon kaum 0,5%, beim Handelstalg erreichen sie 25% und mehr. Spez. Gew. bei 15°: 0,943-0,952, bei 98°: 0,8626, bei 100°: 0,860. Schmelzpunkt: 42-49° (meist 42-44, nie unter 40), Erstarrungspunkt: 27-38°, Verseifungszahl: 190,6-200, Säurezahl: meist 2-7 (~Ulzer~), Jodzahl: 35,4-45,2, Hehnerzahl: 94,7-96,1, Reichert-Meißlzahl: 0,5, Brechungsquotient bei 40°: 1,4551, bei 60°: 1,4510. Die Fettsäuren zeigen ein spez. Gew. bei 100°: 0,8698, Erstarrungspunkt: 39,3-46,6° (meist 43-45), Schmelzpunkt: 43-47°. Die Verbrennungswärme von Rindsfett ist bei konst. Vol. 9485 g-cal. ~Dieterich~ fand (1900. Methode: Helfenb. Ann. 1897): Schmelzp. 42,8-48,75°, S. Z.: 0,560-5,889, J. Z. nach H.-W.: 33,54-43,48, V. Z. h.: 195,28-205,01, V. Z. k.: 197,27 bis 201,52. Bei +Preßtalg+, Schmelzp.: 52,5-54,4°, S. Z.: 0,694-1,600, J. Z.: 17,75-23,64. =Prüfung.= Über die Untersuchung des Talgs vgl. ~Benedikt-Ulzer~ und ~Lewkowitsch~ a. a. O. Die Verfälschungsmittel sind zahlreich: Knochenfett, Baumwollöl, besonders Baumwollstearin, Palmkernfett, Cocosfett, Wollfett, Stearin grease, Harz, Harzöl, Paraffin. Auch der billigere Hammeltalg ist als Verfälschungsmittel beobachtet. Vgl. auch die für das Deutsche Reich erlassene Verordnung betr. die zolltechnische Unterscheidung des Talges der schmalzartigen Fette usw. vom 6. Febr. 1896. =Geschichte.= Schon ~Dioskurides~ gibt ausführliche Vorschriften zur Darstellung des Fettes der Rinder, Kühe und Stiere (στέαρ βόειον und ταύρειον). Er beschreibt auch das Würzen (ἀρωματιστέον) der Fette, besonders des Kalb-, Stier-, Hirsch-, Gänse-, Hühnerfettes, deren Geruch den Alten offenbar ebenso wie auch uns nicht angenehm war, mit Wein, Schoinos, Casia, Calamus, Narde, Balsamholz und vielem anderen, sowie das σαμψογχίζεται (das Aromatisieren mit Majoran). In der Pharmazie wird noch bisweilen auch _Sevum hircinum_ (Ziegenbockstalg) und _S. cervinum_ (Hirschtalg) benutzt. 2. Milchfette. Von den Milchfetten wurden früher einige medizinisch benutzt, wie z. B. die Frauenmilchbutter, jetzt nur noch die Kuhbutter und auch diese nur in beschränktem Maße (zu Augensalben usw.). ~Dioskurides~ und ~Plinius~ beschreiben die Bereitung von Butter aus der Milch der Schafe, Ziegen und Kühe, ~Hippokrates~ aus der der Stuten durch «Schütteln». ~Dioskurides~ kennt auch einen Rus aus Butter. Die Frauen-, Kuh- und Ziegenmilch benutzten die alten Ägypter als Arzneimittel. Butyrum. Butter, Milchfett; beurre de vache, butter fat, burro di vacca. -- Butter mdh. buter, spätahd. u. afries. butera, (ahd. anko), ndl. boter, angls. butere aus βούτυρον (skyth.? kaum von βοῦς, wie ~Plinius~ will) -- so schon bei ~Hippokrates~ -- über bûtyrum (lat. bei ~Plinius~, ~Columella~); daraus auch burro (ital.) und beurre (franz.); -- mateca (span.), manteiga (port.), mantica (rum.), vielleicht aus mantica (= Mantelsack, weil in sackartigen Schläuchen zubereitet?). -- Griechen und Römer kannten die Butter nur bei Barbaren (Skythen, Phrygiern, Thrakiern, Lusitaniern, Germanen). Da die germanischen Völker aber den roman. Namen aufnahmen, «müssen demnach romanische Völker den Deutschen in der Butter+bereitung+ oder -+benutzung+ vorbildlich gewesen sein» (~Schrader~). -- Anke steht zu anctan (altpr.), unguentum, und añjana (sansc. = Salbe) in Beziehung -- bedeutete also ursprünglich «Salbe zum Einreiben» (~Schrader~). -- Auch im vedischen Indien war Butter (ghṛtá) aus Milch als Genußmittel bekannt (~Schrader~). Indien exportierte sogar davon, wie aus dem Periplus ersichtlich. ~Galen~ kennt die Butter nur als Arzneimittel. ~Herodot~ beschreibt die Bereitung aus Stutenmilch bei den Skythen (IV, 2). ~Plinius~ berichtet über die Herstellung der Butter bei den Nordländern (XXVIII, 133). =Gewinnung.= Die Butter ist in der Milch der Kuh, des weiblichen _Bos Taurus L._ in Form sehr kleiner Kügelchen durch die Eiweißkörper emulgiert enthalten und scheidet sich beim Stehen, Zentrifugieren, Schlagen, Schütteln oder Schaukeln («Buttern») daraus ab, indem sich die Fettkügelchen zusammenballen. «Durch das Schlagen wird die physikalische Beschaffenheit der Milch geändert. Die Oberflächenspannung wird geringer, die Milch zähflüssiger. Infolgedessen können die zu Häufchen vereinigten Fettröpfchen dem Schlage schwer ausweichen und vereinigen sich leichter zu größeren Tropfen, die fest werden, sobald sie eine bestimmte Größe erreicht haben. Die fest gewordenen Tropfen rufen infolge ihrer besonderen Anziehungskraft auf die übrigen Milchbestandteile eine Veränderung der Flüssigkeit hervor» (~Siedel~ 1902). Die +Milch+ enthält im Mittel zahlreicher Analysen (vgl. bei ~König~) in %: Wasser 87,27, Casein 2,88, Albumin 0,51, Fett 3,68 (3-6, meist 3-4), Milchzucker 4,94, Asche 0,72; spez. Gew. im Mittel 1,0313. =Chemie.= Die Zusammensetzung der +Butter+ schwankt. Sie enthält (nach ~König~) in %: 69,96-90,92 Fett, 0,19-4,78 Casein, 0,05-1,63 Milchzucker, 0,02-15,08 Asche und 4,15 bis 35,12 Wasser. Meist enthält sie 83,41-86,85% Fett, 0,59-1,6% Casein, 11,54-13,75% Wasser und 0,09-2,03% Salze (~Vieth~); Mittel (nach ~König~) in %: 83,7 Fett, 0,76 Casein, 0,5 Milchzucker, 1,59 Salze, 13,45 Wasser. Gesalzene Butter enthält 3% und mehr Kochsalz. Von Fettsäuren sind nachgewiesen als Hauptbestandteile: +Palmitin-+, +Stearin-+, +Ölsäure+, sowie +Myristin-+ und +Laurinsäure+; dann +Essigsäure+, +Buttersäure+, +Capronsäure+, +Caprylsäure+, +Caprinsäure+ und +Arachinsäure+. Das Vorkommen von Oxyfettsäuren (~Bondzynski~ und ~Rufi~, ~Wachtel~, ~Browne~) bestreitet ~Lewkowitsch~, der die Acetylzahlen durch das Vorkommen von Mono- und Diglyceriden erklärt. Die Aldepalmitinsäure [n(C₁₆H₃₀O₂) ~Wanklyn~] bedarf der Bestätigung, ebenso die Linolensäure. Die Mengenverhältnisse der einzelnen Bestandteile werden sehr verschieden angegeben. ~Partheil~ und ~Ferié~ geben an in %: +Buttersäure+ 6,13, +Capron-+, +Capryl-+ und +Caprinsäure+ 2,09, +Palmitin-+, +Stearin-+, +Myristinsäure+ 49,46, +Ölsäure+ 36,10, +Glycerin+ 12,54. Nach ~Lewkowitsch~ bildet Stearinsäure aber nur 0,49% der unlöslichen Fettsäuren. Nach ~Siegfeld~ ist keine oder nur sehr wenig Stearinsäure vorhanden. ~Farnsteiner~ fand 5,4-5,5%, ~Henriques~ 5-6% flüchtige Fettsäuren. ~Duclaux~ gibt für Capronsäure 2-2,6, für Buttersäure 3,38-3,65% an, ~Violette~ in guter Butter 5,33 bis 6,07% Buttersäure, 3,23-3,66% Capronsäure, 2,8-3% feste flüchtige Säuren und 82,28-82,87% nichtflüchtige Säuren. Andere geben an: Butyrin 5-7,7%, Caproin, Caprylin und Caprin c. 3,5 bis 4% (nach ~Bell~, ~Blyth~ und ~Spallanzani~: 0,1-2,28), Glyceride fester flüchtiger Säuren c. 3%, Glyceride nicht flüchtiger Fettsäuren c. 86,5-93,5% und zwar Olein c. 37,7-42,2 (nach ~Partheil~ und ~Ferié~ ungesättigte Säuren: 30,67%). Palmitin, Stearin usw. c. 50-53% und zwar (nach ~Partheil~ und ~Ferié~) 6,65% Stearinsäure, 18,23% Palmitinsäure, 11% Myristinsäure, 16,39% Laurinsäure. ~Siegfeld~ gibt dagegen 22,94-30,7% Myristinsäure an. Diese zum Teil stark differierenden Angaben zeigen, wie unsicher zurzeit noch die feinere Analyse der Fette ist. Vorwiegend scheinen Triglyceride vorzuliegen. Aber sicher sind auch gemischte Glyceride im Butterfett vorhanden. ~Blyth~ und ~Robertson~ fanden 1889 in der Butter das erste gemischte Glycerid, das Butyrooleopalmitin: C₃H₅(O.C₄H₇O)(O.C₁₈H₃₅O)(O.C₁₆H₃₁O). Außerdem enthält das Butterfett +Cholesterin+ (möglicherweise auch etwas +Phytosterin+?) -- das Unverseifbare beträgt 0,35-0,51% -- und +Farbstoffe+ (Lactochrome). Sommerbutter ist stärker gefärbt. Ob +Lecithin+, das zu 0,017-0,38% angegeben wird, wirklich normal darin vorkommt, scheint noch zweifelhaft. ~Jäckle~ fand in fetter älterer Kochbutter 0,0035-0,0135%. Unter dem Mikroskop zeigt normale Butter keine Kristalle. Beim Liegen tritt zunächst der Geruch nach Buttersäureäthern, dann der nach Capron-, Caprin- und Caprylsäureäther und ein Talggeruch hervor. Die Untersuchung der Butter gehört in das Gebiet der Nahrungsmittelchemie. Butter bzw. Butterfett wird in der Pharmacie gern zu Brandsalben benutzt, seltener zur _Sapo butyrinus_. Butterfett ist geschmolzene, durch Absetzen vom Molken getrennte und heiß filtrierte Butter. =Lit.= ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. (dort d. Literat.). -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. (dort d. Literat.). -- ~Hager-Fischer-Hartwich~, Pharm. Praxis. -- ~König~, Chem. Zusammens. d. menschl. Nahrungs- u. Genußm. 4. Aufl. 1903, -- ~Blyth~ und ~Robertson~, Proc. Chem. Soc. 1889, 5. -- ~Bell~ (und ~Lewin~), Chemistry of foods II, 44. -- ~Partheil~ u. ~von Velsen~, Grundl. d. refraktometr. Butterunters. Arch. Ph. 1900. -- ~Schaffer~, Über d. chem. Zusammens. d. sog. Butteröls. Landw. Jahrb. d. Schweiz. 1898. -- ~Orla Jensen~, Stud. über d. Ranzigwerd. d. Butter (Mikroorganismen). Landw. Jahrb. d. Schweiz. 1901. -- ~A. Bode~, Bezieh. zwischen d. Fett. d. Milch und d. Kolostrums z. d. Fetten d. Nahrung d. mütterlich. u. kindl. Körpers. Diss. Bern 1909. -- ~Kluge~, Etymol. Wörterbuch. -- ~Schrader~, Reallex. d. indogerman. Altertumskunde. V. Wachse. Die echten Wachse unterscheiden sich von den Fetten dadurch, daß bei ihnen die Fettsäuren nicht mit dem dreiatomigen Alkohol, dem Glycerin, sondern mit ein- oder zweiatomigen höheren Alkoholen (z. B. Cetyl-, Ceryl-, Myricyl-, Coccocerylalkohol, Cholesterin, vgl. S. 548) verestert sind. Sie entwickeln daher beim Erhitzen keinen Acroleingeruch und werden, da die Wachsester schwer verseifbar sind, nicht ranzig. Oft werden diese Wachsester von Kohlenwasserstoffen begleitet. Die Wachse binden reichlich Wasser und werden dadurch salbenartig. 1. Pflanzenwachse. Viele Pflanzen bilden auf der Oberfläche ihrer Vegetations- (und bisweilen auch Reproduktions-)Organe offenbar als Ausscheidungsprodukt der stets Wachs enthaltenden Cuticula einen Wachsüberzug, der diesen Organen die Eigenschaft verleiht, nicht oder schwer mit Wasser benetzbar zu sein und der wohl auch bisweilen als Schutz gegen zu starke Verdunstung wirkt. Diese Wachsüberzüge sind bei den Pflanzen unserer Klimata nur feinkörnige Überzüge, die als Reif erscheinen, bei einigen tropischen Gewächsen, besonders Palmen, erreichen dieselben aber bedeutende Mächtigkeit und können mechanisch abgelöst werden. Sie bilden hier entweder eine Schicht feiner, radial gestellter Stäbchen oder bis 5 mm dicke Krusten von kristallinischem Gefüge. Schon ~Chevreul~ fand, daß das Wachs der Kohlblätter sich gleich verhielt wie der nicht verseifbare Anteil des Bienenwachses. Die im Inneren von Zellen oder als Membraninkrustationen vorkommenden «Wachse» stellen eine besondere, noch näher zu studierende Form dar, die uns hier nicht näher interessiert. Das Japanwachs ist wie mehrere andere «Wachs» genannte Pflanzenprodukte ein Fett (s. S. 711), ebenso das Myrica- oder Myrtlewachs, Bay berry tallow von _Myrica Cerifera L._ Das Godangwachs von _Ficus ceriflua_ bildet den Übergang von Wachs zum Kautschuk (~Greshoff~ und ~Sack~). =Lit.= ~de Bary~, Bot. Zeit. 1871, 129 und Anatomie. -- ~Wiesner~, Technische Mikroskopie, Sitzungsber. d. Wien. Akad. u. Bot. Zeit. 1871 u. 1876. -- ~Tschirch~, Angew. Anatomie Fig. 185 u. 186. -- ~Mikosch~ in Wiesner Rohstoffe, 2. Aufl. -- ~Greshoff~ und ~Sack~, Zur Kenntn. d. Wachse. Rec. trav. chim. d. Pays-Bas 1901, 65. -- Über das Vorkommen und die Zusammensetzung von Pflanzenwachsen vgl. die Zusammenstellung in ~Czapek~, Biochemie. Carnaubawachs. Canauba oder Carnahubawachs, Cearawachs, Cire de Carnauba, Carnauba wax, Cera di carnauba. -- Carnauba ist der Name der Palme bei den Eingeborenen von Ceará. Andere brasilianische Namen sind: Carnahyba, Caranda, Carnanahyba, Caranaūve (~Peckolt~). Das Carnaubawachs wird von der Carnaubapalme =Copernicia cerifera= ~Mart.~ (_Corypha cerifera_ ~Virey~, _Arrudaria cerifera_ ~Macedo~), einer sehr nützlichen, zu den Coryphinae-Sabaleae gehörenden, 10-15 m hohen Palme Südamerikas, gewonnen, die besonders in den Staaten Ceará, Pernambuco, Rio grande do Norte, Piauhi, Parahyba, Maranhao, Matto grosso und Bahia, sowie in Venezuela wächst und von der sowohl das Holz, wie die zu Flechtwerk, besonders Hüten, geeigneten Blätter, deren Fasern (tucum) die Eingeborenen seit Menschengedenken anwenden, die eßbaren Blütenkolben und Früchte, sowie endlich das Stärkemehl des Stammes (farinha de carnauba), der Zucker und Palmwein, sowie die Samen und die an NaCl reiche Asche der Wurzeln benutzt werden (~Dias~, ~Peckolt~). Es gilt von ihr fast das Gleiche wie von der Cocospalme (S. 709). Das Wachs überzieht beide Seiten der bis 1,5 m langen Blätter, besonders aber die Oberseite, in einer bis 5 mm dicken, aus prismatischen, radialgestellten, dicht miteinander verbundenen Stäbchen bestehenden Schicht, die abgelöst die Abdrücke der Epidermis erkennen läßt (~Wiesner~). Es bildet hier offenbar eine Anpassung an trockenen Standort und das relativ trockene Klima von Ceará. Denn die Palme bleibt frisch, auch wenn alles ringsum vertrocknet ist (~Macedo~). Die Gewinnung des Carnaubawachses erfolgt in der Weise, daß die zur Zeit der Trockenperiode (September-März) mit einer an einer Stange befestigten Sichel abgeschnittenen, in langen Reihen mit der Unterseite nach unten auf dem Boden getrockneten Blätter (von jedem Baum werden c. 6-8 abgelöst) nach 4-5 Tagen auf Tüchern ausgebreitet, zuerst abgebürstet und dann mit kleinen Stöcken geklopft werden, bis der Wachsüberzug sich abgelöst hat. Um das Wachs besser abzulösen, werden die Blätter mit einem Messer aufgeschlitzt. Das grauweiße Pulver wird entweder über freiem Feuer geschmolzen oder mit der Hälfte des Gewichtes Wasser in einem eisernen Topfe gekocht. Hierbei steigt das Wachs als teigige Masse an die Oberfläche. Neuerdings (1894) werden auch die Blätter direkt in heißes Wasser gebracht und das sich auf der Oberfläche abscheidende Wachs abgenommen. Es wird dann geschmolzen und in tönerne Formen gegossen und kommt jetzt meist gereinigt, d. h. umgeschmolzen und heiß filtriert in sehr verschiedener Güte in den Handel. Etwa 2000-5000 Blätter sollen 15 kg Wachs liefern, nach ~Semler~ aber schon 850, nach ~Lima~ und ~Peckolt~ 500-1200 Blätter 16 kg, was mir wahrscheinlicher erscheint, denn sicher liefert doch ein so großes Blatt, dessen Wachsschicht 5 mm Dicke erreicht, mehr als 3-15 g. Es bildet einen beträchtlichen Handelsartikel Brasiliens, das davon jährlich über 4 Mill. kg produziert. Viel wird im Lande zur Kerzenfabrikation verbraucht. 1900 wurden c. 1000 t, besonders aus der Umgegend von Aracaty, ausgeführt, 1902 betrug die Produktion 1547, 1903: 1920 t. Die Ausfuhr aus Brasilien betrug 1907: 2779000, 1908: 2592000, 1909: 3042000 kg. Hamburg empfing 1897: 350000, 1907: 1760000, 1908: 1260000, 1909: 2069000, 1910: 1800000 kg. Das meiste geht nach Nordamerika. Die Vereinigten Staaten importierten 1908: 3701156, 1909: 4088100 pounds Vegetable Wax (wohl vornehmlich Carnauba). Carnaubawachs ist im Großhandel (in Säcken à 75/80 kg) in zahlreichen Sorten zu finden: hellgelb extrafein, primagelb, mittelgelb, graufett, unberaubt, grau-courant, dann raffiniert weiß Schmelzpunkt 74, 73, 71° und endlich Rückstände A, 00, B (~Grossmann~). Carnaubawachs ist Objekt der Spekulation. In Brasilien hat sich ein Monopol gebildet. Neuerdings (1909) sind Versuche mit dem Anbau der Palme in den deutschen Schutzgebieten gemacht worden. [Illustration: Fig. 223. _Copernicia cerifera_ ~Mart.~ Ausgewachsene und junge Palme. Der obere Teil des Stammes hat die Blattnarben abgeworfen. A ein Stammstück mit diesen Narben. B Fruchtzweig. [Aus +Engler-Prantl+, Pflanzenfamilien.]] Das rohe Carnaubawachs ist schmutzig gelblich-grün, von Luftbläschen durchsetzt, das gereinigte ist gelblich, das gebleichte fast weiß. Es ist oft von einem kristallinischen Anfluge bedeckt. Carnaubawachs ist hart, spröde, fast geschmacklos, frisch etwas nach Cumarin riechend. =Chemie.= Das Carnaubawachs, in dem ~Lewy~ 80,32% C, 13,07% H und 6,61% O fand, besteht hauptsächlich aus dem +Cerotinsäure-Myricylester+, C₂₅H₅₁.CO--O.C₃₁H₆₃ (~Maskelyne~), daneben finden sich auch die beiden Spaltungsprodukte desselben: +Cerotinsäure+ (~Berard~, ~Nafzger~, C₂₅H₅₀O₂ ~Marie~, C₂₆H₅₂O₂ ~Henriques~, -- das Vorkommen der Cerotinsäure im Carnaubawachs bedarf der Bestätigung, ~Stürcke~ nimmt eine isomere Säure an), und +Myricylalkohol+ (C₃₀H₆₂O oder C₃₁H₆₄O (~Gascard~) = Melissylalkohol ~Pieverling~, ~Story~ und ~Maskelyne~), die durch kalten Alkohol dem Wachse entzogen werden können. Der Myricylalkohol aus Carnaubawachs (~Story-Maskelyne~, ~Pieverling~) ist identisch mit dem aus Bienenwachs (~Marie~). Ferner enthält das Wachs (nach ~Stürcke~) einen Kohlenwasserstoff (F = 59), einen Alkohol C₂₇H₃₆O (F = 76), +Cerylalkohol+ (C₂₆H₅₄O ~Henriques~, C₂₇H₅₆O ~Gascard~), einen zweiwertigen Alkohol, C₂₅H₅₂O₂ (F = 103,5), +Carnaubasäure+ (C₂₄H₄₈O₂, F = 72,5, isomer mit Lignocerinsäure) als Ester und eine γ-Oxysäure (C₂₁H₄₂O₂) oder deren Lakton, vielleicht auch einen Alkohol, C₂₃H₅₆CH₂OH (?), F = 76. Die früheren Angaben, daß das Wachs Palmitin-, Stearin- und Laurinsäure enthalte, beruhen wohl auf einem Irrtum. Die Asche beträgt 0,14-0,83% (~Story~). Sie enthält Fe. Das Wachs läßt sich auch mit alkoholischer Kalilauge sehr schwer verseifen, 55 (~Stürcke~) bzw. 54,87% (~Allen~ und ~Thomson~) sind unverseifbar. Man kann die Verseifung dadurch erleichtern, daß man zur Erhöhung des Siedepunktes höher siedende Kohlenwasserstoffe (z. B. Xylol) zusetzt (~Regnar Berg~). Spez. Gew. bei 100°: 0,797-0,798 (~Evers~), Schmelzpunkt: 83-86, meist c. 84° (bei gebleichtem 61), Säurezahl: 4-8 (bei gebleicht. 0,56), Verseifungszahl: 79-95, meist c. 88 (bei gebleicht. 33-34), Jodzahl: 13,17, kritische Lösungstemperatur: 154-154,5°, Butterrefraktometeranzeige bei 40°: 66. ~Dieterich~ fand bei Carnaubawachs naturale: S. Z. d. 2,8-4,2, E. Z. 73,9-77, V. Z. h. 76,72-81,2. Bei sog. Carnaubawachsrückständen: Schmelzp. 73-79°, S. Z. d. 6,4-18,3, E. Z. 7,3-10,2, V. Z. h. 15,6-26,3. Carnaubawachs ist das wichtigste Ersatzmittel des Bienenwachses, aber diesem nicht gleichwertig. Es wird ihm aber oft beigemischt. Es dient jetzt unter anderem viel bei Herstellung der Phonographenwalzen. Als Ersatz des Bienenwachses wurde es zuerst von ~William Thomas Brand~ in den Abhandl. der Royal Society 1811 empfohlen, als Graf ~Galvêas~ an Lord ~Grandville~ eine Probe gesandt hatte. ~Brand~ beschreibt schon eingehend seine Eigenschaften. Handelsartikel ist Carnaubawachs etwa seit 1846, nach dem ungewöhnlich trockenen Jahre 1845. (Noch 1836 konnte ~Macedo~ kaum ½ kg zusammenbringen.) Die Ausfuhr aus Ceará stieg dann von 26208 kg im Jahre 1846 auf 68096 kg im Jahre 1860. 1862 kamen aus ganz Brasilien, besonders aus Ceará und Aracati schon c. 720000 kg, von da an steigt die Ausfuhr beständig. =Lit.= Die erste Beschreibung der Palme gab der brasilianische Botaniker ~Arruda~ (1810). -- ~M. A. de Macedo~, Notice sur le Palmier Carnauba. Paris 1867. (Dort ausführlichere Angaben über die Palme.) -- ~Thiebaut de Berneaud~, Mém. sur le Cirier ou Arbre à Cire etc. Paris 1810. -- ~Th. Peckolt~, Nutzpfl. Brasiliens. Pharmac. Rundsch. 1888, 263. -- ~H. Theen~, Wachs, Prometheus 1894. -- ~Drude~ in ~Engler-Prantl~, Pflanzenfamilien (dort auch eine Abbild.). -- Verwert. d. Carnaubap. in Brasilien. Tropenpflanzer 1901, 173, 1902, 256. -- ~Zimmermann~, Die Wachspalme in Pflanzer 1907, 191 (dort Übersicht über d. Benutzung der Wachspalme). -- ~Seemann~, D. Palmen. -- ~Mikosch~ in ~Wiesner~, Rohstoffe, 2. Aufl. -- ~Semler~, Trop. Agrikult. -- ~Brande~, Gilb. Ann. 44 (1813), 287. -- ~Lewy~, Ann. chim. phys. 13, 449 (Elementaranalyse), -- ~Berard~, Bull. soc. chim. 1868, 41. -- ~Virey~, Journ. pharm. 1834, 112. -- ~Gerhardt~, Traité de chim. org. 1854. -- ~Girardin~, Lec. élém. d. chim. appl. 1861. -- ~Story~ und ~Maskelyne~, Journ. chem. soc. 7, 87. -- ~Maskelyne~, Ber. d. chem. Ges. 1869,. 44. -- ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. -- ~Stürcke~, Lieb. Ann. 223 (1884), 283. -- ~Pieverling~, Ebenda 183 (1876), 344. -- Chem. Rev. über d. Fett- u. Harzind. 1905, 56. -- ~K. Haegele~, Beitr. z. Kenntn. d. im Carnaubaw. enth. Myricylalkohols. Diss. Bern 1890. -- ~Henriques~, Ber. d. chem. Ges. 30 (1897) 1415. -- -- ~Gascard~, Journ. pharm. chim. 1893, 49. -- ~Lionel Guy Radcliffe~, Journ. Soc. Chem. Ind. 1906, 158. -- ~Regnar Berg~, Chem. Zeit. 1909, 886. -- ~Valenta~, Einfluß d. Carnaubawachses auf Schmelzp., Glanz und Härte von Fettkörpern, Wachs, Paraffin, Ceresin usw. Zeitschr. Landw. Gew. 1883. -- ~Dieterich~, Helfenb. Ann. [Illustration: Fig. 224. Gruppe von Wachspalmen (_Ceroxylon andicola_) mit Wachssammlern in den Anden. [Aus dem Prometheus 1903.]] Zu den +Pflanzenwachsen+ gehören ferner: Das Palmenwachs von _Ceroxylon andicola_ H. B. (Fig. 224) und _Klopstockia cerifera_ (vgl. ~E. Kr.~, Die Wachspalme der Anden [_Ceroxylon andicola_], Prometheus 1903, 324, mit Abbild.); Raphiawachs von _Raphia Ruffia_ ~Mart.~; Pisangwachs von _Musa_arten, Pisang Karet -- enthält Pisangcerylsäure (C₂₄H₄₈O₂ F = 71) und Pisangcerylalkohol (C₁₈H₂₈O F = 78 ~Greshoff~ und ~Sack~); Flachswachs von _Linum usitatissimum_ L.; Gondang- (javanisches Pflanzen-)Wachs, Sumatraw. (Getah lahu) von _Ficus ceriflua_ ~Jungh.~, enthält Ficocerylsäure (C₁₃H₂₆O₂ F = 57) und Ficocerylalkohol (C₁₇H₂₈O F = 198 ~Greshoff~ und ~Sack~); Curcaswachs von _Jatropha Curcas_, die aber eine besondere Gruppe bilden. Dem Carnaubawachs ähnlich scheint das Ocotillawachs von _Fouquiera splendens_ zu sein (~Schär~, Arch. Ph. 1898), sowie das Zuckerrohrwachs (~Wynberg~, Dissert. Amsterdam 1909). Von auf Blättern vorkommenden Wachsen sind (ich folge ~Czapeks~ Biochemie) analysiert: Das Wachs der Gramineenblätter (Myricylalkohol, Melissinsäure, Kohlenwasserstoff, Ceroten, ~König~ und ~Kiesow~), der Musablätter (Myricyl-Fettsäureester, ~Greshoff~ und ~Sack~), der Eucalyptusblätter (Cerylalkohol, ~Hartner~), der Buxusblätter (Palmitinsäure-Myricylester, ~Barbaglia~), der _Vaccinium Vitis Idaea_-Blätter (Cerotinsäure-, Melissinsäure-, Palmitinsäure- und Myristinsäureester des Myristyl- und Cerylalkohols, ~Oelze~), der Tabakblätter (Myristyl-Melissinsäureester), der _Drimys granatensis_-Blätter (Wachsalkohol Drimol ~Hesse~). 2. Animalische Wachse. Von den tierischen Wachsen kennen wir sowohl solche von Säugetieren, als auch Insektenwachse und von ersteren können wir wieder die Gruppe des Walrat und die des Wollfettes unterscheiden. a) Säugetierwachse. α) Walratgruppe. Cetaceum. Sperma ceti, Album ceti, Ambra alba, Flos maris, Halosanthos, Spuma maris, Walrat, Wallrath, Walrot, weißer Amber, Spermacet -- Blanc de balaine, Cétine, Ambre blanc, -- Spermaceti, Cetin -- Spermaceto. -- In der älteren englischen Literatur (~Sibbald~): wale shot, scale amber. =Etym.= Sperma ceti (in Lappland hvalauki) -- weil für den Samen des Wal gehalten (s. Geschichte), ist eine zu Anfang des XVI. Jahrh., vermutlich auch noch früher, übliche Bezeichnung für Walrat (~Flückiger~). -- ~Flückiger~ schreibt Walrath und Walrat, ältere Autoren meist Wallrath. Ich schreibe +der+ Walrat (nicht +das+ W.), denn rat ist = Vorrath (z. B. an Nahrungsmitteln), also Walrat = +der+ Vorrath des Wals. Man dachte wohl, daß das Öl als Reservestoff diene, was aber nicht der Fall zu sein scheint, aber immerhin als «Nebenfunktion» möglich ist. Vielleicht ist aber das Wort Walrat aus dem älteren Walrâm umgebildet und umgedeutet. -- +Cetaceum+, aus Cete = Wal gebildet, so z. B. in der Pharm. borussica 1779 (~Schelenz~). -- Physeter («aussi bien que physalus», sagt ~Cuvier~), bedeutet souffleur = Bläser, wegen des Wasserausblasens, das diese Tiere auszeichnet. -- Cachalot ist ein baskischer Name (cachau = Zahn). -- Der «Physeter des gallischen Oceans» bei ~Plinius~ (IX, 3) war vielleicht Physeter macrocephalus (kaum die Orca, die als Feinde der Wale beschrieben werden). Die φαλαῖνα des ~Aristoteles~ und ~Aelius~ war wohl eine große, mit Zähnen versehene Cetacee (~Cuvier~). ~Plinius~ kannte von den wahren _Balaena_arten nur den zahnlosen _Mysticetus_ des Mittelmeeres, während ~Juvenal~ in dem Verse «Quanto delphinis balaena britannica major» wohl _Balaena Mysticetus_ meint. =Stammtier und systemat. Stellung.= =Catodon macrocephalus= ~Lacepède~ (Physeter macrocephalus ~Shaw.~, Ph. trumpo, Balaena macrocephala). Gemeiner Cachalot, Cachelot, Pottfisch, Pottwal, Zahnwal, Spermwhale, in Grönland: kegutilik, in Irland: tweldhval. Mammalia, Cetodontes, Physeterides. Pharm. helv. läßt auch das Cetaceum anderer Pottwale, Pharm. austr. das anderer _Catodon_- und _Physeter_arten zu. Es sind neuerdings Bedenken aufgetaucht, ob der Walrat des +heutigen+ Handels überhaupt von _Catodon macrocephalus_ und nicht vielmehr von anderen Cetaceen gesammelt wird. Besonders der Entenwal _Heperoodon rostratus_ wird genannt. Es ist dies möglich, da alle Glieder der Abteilung Fetthöhlen im Schädel besitzen (vgl. Fig. 228). ~Flückiger~ nennt auch _Physeter Tursio_, _Ph. microps_ (und _Delphinus edentulus_?). Die Systematik der Abteilung läßt aus begreiflichen Gründen zu wünschen übrig (s. weiter unten). Sie bietet unüberwindliche Schwierigkeiten (~Pöppig~). =Beschreibung des Tieres.= Der nur von tierischer Nahrung (bes. Cephalopoden) lebende +Pottwal+ oder +Cachalot+ ist ein riesiges, fast schwarzes, glattes, glänzendes, unterseits weißliches, plumpes, das Meer bewohnendes Tier, das eine Länge von 25 m und darüber bei einem Körperumfang von 9-12 m erreicht, «das ungeschlachteste und abenteuerlichste Mitglied der ganzen Ordnung» (Taf. XXIV). Der große viereckige Kopf, der fast ⅓ der Körperlänge einnimmt, ist vorn an der Stirn fast senkrecht absteigend, und trägt dort etwas linksseitig ein Spritzloch (Fig. 225). Echte Zähne finden sich nur im Unterkiefer, die des beträchtlich größeren Oberkiefers verkümmern (Fig. 226). Augen und Ohröffnung sind klein. Der Kopf ist vom Körper durch eine Querfurche geschieden, hinter welcher die Brustfinnen liegen. Von dort bis zum After ist der Körper fast walzenförmig, im letzten Drittel erhebt sich eine unbewegliche Fettflosse. Die sehr fettreiche Schwanzfinne ist eingeschnitten-zweilappig. Das weibliche Tier trägt zwei Zitzen, das männliche einen riesigen Penis. An Größe steht der Pottwal nur einigen der größten Bartenwale nach, gehört also zu den größten Tieren der Erde. Das Weibchen bleibt aber in der Größe beträchtlich hinter dem Männchen zurück und erreicht oft nur die halbe Länge. [Illustration: Fig. 225. Weiblicher Pottwal. [Aus +Martiny+, Zool. med.]] Der Cachalot, der sich nur von Cephalopoden nährt, scheint vom Äquator bis zu den Polen vorzukommen, im Atlantischen Ozean jetzt aber selten zu sein. Ob die in der Südsee und im Stillen Ozean vorkommenden Arten spezifisch verschieden sind von denen der nördlichen Meere erscheint zweifelhaft. ~Gray~ unterscheidet zwei Arten von Pottwalen, deren jeder er den Rang einer Unterfamilie zuspricht. Es fragt sich aber sehr, ob die hervorgehobenen Unterschiede nicht zufällige sind. Erfahrene Walfischfänger nehmen nur eine einzige Art Pottwale an, behaupten aber, daß Aufenthaltsort, Nahrung usw. auf Größe, Farbe usw. der Pottwale Einfluß haben. Auch ~Beauregard~ nimmt nur eine Art an. Als eigentliche Heimat bezeichnet ~Pechuel-Lösche~ die zwischen 40° nördlicher und 40° südlicher Breite liegenden Meere, doch gelangt der Pottwal, warmen Strömungen folgend, bis 50, ja 60° n. und s. B. Er kommt auch an die europäischen Küsten. Die eigentliche Heimat dürfte die südliche Erdhälfte sein. Er durchzieht die Meere in oft enggeschlossenen «Schulen» oder Scharen von verschiedener Stärke (20-30), die tiefsten Stellen und die Nähe von Steilküsten bevorzugend, oft von einem männlichen «Schulmeister» geführt, in Reihen hintereinander. Nur die riesigen Männchen (Bullen) trifft man auch einzeln, oft das Wasser wie ein Dampfer durchpflügend oder senkrecht gestellt. Er kann fast eine Stunde unter Wasser verweilen, ohne an die Oberfläche zum Atemholen zu kommen. Er bläst so eigenartig, daß der Walfischfänger allein an diesem Geräusch schon den echten Pottwal erkennt. [Illustration: Fig. 226. Skelett eines männlichen Pottwal im Muséum d’histoire naturelle in Paris. [Nach +Beauregard+, Mat. med. zool.]] [Illustration: Tafel XXIV. Männlicher Pottwal. [Aus Brehms Thierleben.]] +Jetzt ist nächst dem Stillen Ozean+ (San Francisco) +die Südsee hauptsächlichster Jagdgrund+. Der Fang ist gefährlich, wie zahlreiche in ~Brehms~ Tierleben erzählte Schiffergeschichten lehren. Der +Fang+ erfolgt mit Harpunen und Lanzen wie beim Walfischfang und wird außer im Stillen Ozean und der Südsee auch bei den Azoren und im indischen Ozean (Mozambique, Sansibar, Ceylon), sowie in den nördlichen Meeren (z. B. bei Schottland), hauptsächlich von Nordamerikanern und Engländern betrieben. Die erlegten Cachalote werden an das Schiff bugsiert, der Kopf abgelöst und an Bord der Walratbehälter geöffnet. Aus dem Speck wird Tran gesotten. Der Wal trägt nämlich in seinem Schädel Ölbehälter von riesigen Dimensionen, die offenbar den Zweck haben, den großen mit starken Knochen versehenen Körper im Wasser schwebend zu erhalten und ihn gegen den langen Körper zu equilibrieren. Diese Walratbehälter liegen in einer muldenförmigen Aushöhlung der Schnauze (Fig. 226) und der oberen Fläche des Schädels vor dem eigentlichen Cranium, welches das Gehirn enthält, und völlig von diesem getrennt (Fig. 227). Es sind deren zwei, denn die Höhle ist durch eine wagerechte durchlöcherte Wand in zwei Kammern geteilt, die jedoch zusammenhängen. Unter der dicken Specklage des Kopfes sich ausbreitende Sehnenlagen («white horse») dienen ihnen als Decke. Die Fettbildung scheint hier wie bei den übrigen Säugetieren im Bindehautzellgewebe normal zu erfolgen, aber ins Riesige gesteigert zu sein. Der reinste Walrat ist in den kleinsten und am wenigsten ligamentösen Zellen enthalten (~Hunter~). Entfernt man die äußere Kopfhaut und die darunter liegende Specklage, so stößt man auf zwei Höhlen. Auf der rechten Seite der Nase und der Oberfläche des Kopfes liegt eine dreieckige Höhle, bei den Cachelotfängern Case (= Behälter), auch erste Kammer oder Klappmütze genannt. Unter der Case im vorderen Teil der Schnauze, über dem Oberkiefer, findet sich eine zweite Höhle, bei den Cachelotfängern Junk (Junke) genannt. Beide Höhlen sind 4-6′ hoch und enthalten 3000 bis 5000 (bei großen Exemplaren nach ~Scoresby~ bis 10000) Pfund Öl. Außer diesen beiden großen Walrathöhlen findet sich noch ein subkutaner Rückenkanal, eine ölführende Röhre, die mit der unteren Kammer in Verbindung steht, vom am Rückgrat fort vom Kopfe bis zum Schwanze verläuft, vorn schenkel-, hinten fingerdick ist. Nach ~Köhne~ sollen noch außerdem viele hundert kleine Seitengänge zum Speck und Fleisch des ganzen Leibes führen und auch im Fleische zerstreut dünnhäutige, mit Walrat gefüllte Höhlungen sich finden. (~Beauregard~ bestreitet [1901], daß die Walrathöhle mit anderen in Verbindung steht.) Doch stammt der Walrat vorwiegend aus den Kopfhöhlen, nach ~Beauregard~ sogar nur aus der +einen+ Höhle (A Fig. 227) «dans la région supérieure de la face, immédiatement au-dessus de la narine droite, depuis la muraille osseuse verticale formée par l’extrémité postérieure des maxillaires et le frontal, jusqu’à l’extrémité antérieure du museau». Jedenfalls wird der Kopfwalrat (head matter) gesondert gesammelt und zunächst nicht mit dem anderen gemischt. Die +Ausbeute+ an Rohöl vom Pottwal schwankt zwischen 1150 und 33350 lbs und beträgt im Durchschnitt 5750-6900 lbs beim Weibchen und bis 17250, ja 20700 lbs beim Männchen (~Lewkowitsch~); nach ~Beauregard~ beim Weibchen 15, beim Männchen 45-130 barils (1 Bar. = 114½ l). [Illustration: Fig. 227. Transversalschnitt durch den Kopf des Pottwal. A Raum, in dem sich das Cetaceum findet (organe du blanc). B faserige Wand der Kammer (caisse). C Fetthülle, in welche das rechte Nasenloch (D) getaucht ist. G linkes Nasenloch. H Scheidewandknorpel. L Speck. M linkes Nasenmuskelbündel. N rechte und linke Nasenmuskeln. O Fettpolster, die Höhlung des Maxillar- (R) und Intermaxillarknochens (P) teilend. [Aus +Beauregard+, Mat. méd. zool.]] =Gewinnung.= Auf der rechten Seite der Nase und der oberen Kopffläche befindet sich eine dreiseitige Höhle, die von den Walfischfängern die «Kappe» oder «white horse» genannt wird. In diese wird eine Öffnung gemacht und das Öl in Eimern herausgeschöpft. Die dichte Masse von Zellgewebe zwischen jener Stelle und den Nasenlöchern enthält ebenfalls Öl. Das aus den Walrathöhlen frisch geschöpfte Öl ist (infolge der Körperwärme des Tieres) flüssig, scheidet sich aber in kalter Luft bald in zwei Teile, in den auskristallisierenden +Walrat+ und das flüssig bleibende +Walratöl+ (Spermacetöl). Die erstarrte, von Walratöl durchsetzte Masse wird in Leinwandfilter gebracht (boegged sperm) und in Haarsäcken in der hydraulischen Presse ausgepreßt (pressed sperm), die feste Masse zur Abscheidung der Unreinlichkeiten und tierischen Fasern mit Wasser gekocht, umgeschmolzen und zur Entfernung des Öls mit schwacher Potasche oder Kalilauge behandelt, gewaschen, durch Dampf geschmolzen und in Formen gegossen, neuerdings auch vielfach dann noch aus Alkohol umkristallisiert. Auf den Schiffen wird zunächst das «Kopföl» von dem weniger wertvollen «Körperöl» gesondert gehalten, doch mischt man in den Ölraffinnerien oft vor der Abscheidung des Walrat beide im Verhältnis ⅓ : ⅔ (~Lewkowitsch~). [Illustration: Fig. 228. Schädel des Grindwals (_Globiocephalus melas_) von der linken Seite, mit der großen der Schnauze aufliegenden Fettmasse. f weiche Fettmasse. b feste bindegewebige Schicht unterhalb der durch eine dicke, schwarze Linie angedeuteten Oberhaut. n Nasenloch. l Luftsäckchen vom Nasengang ausgehend. [Nach +Murie+, Aus +Boas+ Lehrbuch d. Zoologie]] In den +Ölraffinerien+ wird das Rohöl in Kühlkammern 10-14 Tage bei 0° stehen gelassen und die erstarrte Masse dann in hydraulischen Pressen in der Kälte gepreßt. Das abfließende (winter sperm oil) beträgt c. 75% und erstarrt unter 38° F («Cold test 38») = 3,3° C. Der braune Preßrückstand wird dann bei 10-15° zum zweitenmal gepreßt, wobei c. 9% spring sperm oil abfließen. Die Preßkuchen schwitzen bei 26,7° nach einigen Tagen Öl aus. Die Ränder werden daher mit rotierenden Messern abgeschnitten und die Mitte bei gewöhnlicher Temperatur einem sehr hohen Preßdruck ausgesetzt. Das abfließende (taut pressed oil) beträgt 5%. Der Preßrückstand (11% des Rohöls) ist roher brauner Walrat vom Schmelzp. 43,3-46,1, der wie oben gereinigt wird. Auch das Walratöl ist ein wertvolles Produkt. Der Handel unterscheidet vom Walrat: französische Form, kubische Stücke à 15-20 kg, englische Form konisch, amerikanische Form, runde Brote. Daß Cetaceum auch im Meere schwimmend gefunden wurde berichtet ~Wormius~, ~Bartholini~, ~Pouchet~ u. and. Es scheint dies wahrscheinlich, da es beim Absterben der Tiere erstarrt und der Fäulnis widersteht. Das Altertum kannte nur dieses. Im Darm (Rectum) des Pottwal (~Pouchet~ et ~Beauregard~) bildet sich das =Ambra= genannte Sekret, das neben einem Riechstoff einen cholesterinartigen Körper (Adipocire ~Bouillon-Lagrange~, Ambrain ~John~) zu enthalten scheint. In einer dunklen orangefarbigen öligen Flüssigkeit schwimmen oft ½ kg, bisweilen sogar bis 6, ja 10 kg schwere Klumpen, die man wohl den Harn-, Gallen- oder Darmsteinen anderer Tiere vergleichen kann, die aber hier mit einem an Benzoë und Moschus erinnernden, sehr dauerhaften Riechstoff durchtränkt sind. (Über den Amber existiert eine große Menge von Fabeln.) Ob der Riechstoff der Ambra zu der vom Tier verspeisten _Eledone moschata_, deren Reste man bisweilen darin neben denen von Weichtieren, Sepien usw. findet, Beziehungen hat, ist noch nicht klar, aber wahrscheinlich. ~Pouchet~ fand, daß das Tier selbst nach Ambra riecht. Aber dies kann eben auch eine Folge der _Eledone_nahrung sein. Bisweilen tritt Ambra als Auswürfling des Meeres an den Küsten Afrikas, Südamerikas, Ost- und Westindiens auf oder wird schwimmend angetroffen. «Daß man wirklich Stücke von 90 kg, 1,5 m Länge und 0,5 m Dicke aufgefischt hat, unterliegt keinem Zweifel» (~Pechuel Lösche~ 1891). Heute kommt Ambra besonders aus Amerika, Japan, Madagaskar, Surinam und Java. +Boston+ ist Hauptplatz dafür. Sie bildet brüchige, graubraune, undurchsichtige Stücke mit schwarzen (Melanin) und gelben Adern, die in der Hand erweichen, in heißem Alkohol und Äther und in der Wärme auch in wässerigen Alkalien sich lösen und bei der Destillation 13% Öl geben. Sie sollen angeblich Benzoësäure und Bernsteinsäure enthalten. Flüssige Ambra ist Styrax. Gefälschte besteht oft aus Benzoë, Olibanum, Mehl und Moschus. =Lit.= ~G. Cuvier~, Règne animal. Mammifères pl. 100. -- ~Rapp~, D. Cetaceen zoolog.-anatom. dargest. Stuttgart 1837. -- ~Martiny~, Naturgesch. d. f. d. Heilk. wichtig. Tiere. Gießen 1854 (dort auch die älteren Angaben über Ambra). -- ~Beale~, Nat. hist. of the Sperm Whale 1839. -- ~Bennet~, Narr. of the Whaling Voyage 1833 to 1836. London 1840. -- ~Hunter~, Phil. Transact. 77 (1787), 390. -- ~Beauregard~, Mat. med. zoolog. Paris 1901. -- ~Pouchet~ et ~Beauregard~, Rech. s. l. Cachalot. Nouv. Arch. d. Museum (3) 1 und Note sur l’ambre gris C. r. Soc. Biol. 1892. -- ~Pouchet~ et ~Chaves~, Form. exter. du Cachal. Journ. d’Anat. phys. 1890. -- ~Pouchet~, Le Cachalot Rev. d. Deux Mondes 1888 und Contrib. à l’hist. du spermaceti. Bergens Mus. Aarbog 1895. -- ~Brehms~ Tierleben. -- ~Boas~, Lehrb. d. Zoologie. +Abbild.+: ~Martiny~, Mediz. Zool. t. 7. -- ~Schreber~, Naturgesch. d. Säuget. t. 337. -- ~Brandt~ und ~Ratzeburg~, Mediz. Zoolog. t. 12. -- ~Lacepède~, Hist. nat. des Cétacées t. 10. -- ~Beauregard~ a. a. O. =Handel.= _Spermaceti_ ist in Kisten à 25 kg, raff. prima in Blöcken, aber auch raff. in Tafeln à ½ und 1 kg, jede Tafel in Papier gewickelt, im Handel (~Grossmann~). Der meiste Walrat stammt aus Amerika (Kalifornien). 1909 war japanischer (~Weigel~), 1911 schottischer Walrat im Handel. Er war billiger, aber schlechter als amerikanischer. Die +Vereinigten Staaten+ exportierten 1907: 173985, 1908: 115136, 1909: 57605 pounds _Spermaceti_ and _Spermaceti Wax_. +Deutschland+ führte 1909: 212 dz +Walrat+ ein, vorwiegend aus den Ver. Staaten. Genaue Angaben aus neuerer Zeit über den Umfang der «Produktion» fehlen. Von 1820-1830 betrug der Ertrag jährlich c. 4600 t, 1831: 7605 t. Jetzt ist der Ertrag zurückgegangen. Ein guter Pottwal ist 9000-20000 M wert. =Chemie.= Walrat besteht aus schneeweißen, bröckeligen, deutlich blätterig-kristallinischen, perlmutterglänzenden Stücken, die sich fettig anfühlen und sich fast wie Wachs kauen. Der Geruch ist schwach, eigenartig und erinnert etwas an Wachs. Er wird nicht leicht ranzig. Ranziger riecht tranig. Er brennt wie Wachs. In Wasser und kaltem Alkohol ist Walrat unlöslich, wenig löslich in Benzin, leicht in Äther, Chloroform und Schwefelkohlenstoff. Heißer Alkohol löst ihn vollständig. Beim Erkalten scheiden sich die Ester kristallinisch wieder ab, das Filtrat soll nicht sauer oder alkalisch reagieren und mit Wasser keinen flockigen Niederschlag geben (Prüfung auf Stearinsäure und Alkalien). Wässrige Lauge verseift kaum, alkoholische leicht. Spez. Gewicht bei 15°: 0,930-0,960 [0,905 (?) ~Kebler~], D. A. V: 0,940 bis 0,945, bei 98°: 0,808; Schmelzpunkt: 42-49 (44,5-47,4 ~Evans~), bisweilen bis 50, ja 68°, Pharm. helv. IV: 41-50°, D. A. V: 45-54°, Pharm. austr. 45 bis 50°; Erstarrungspunkt: 49-43,4; kritische Mischtemperatur nach ~Crismer~: 120,5°; Säurezahl: 1-2 (0-5); Verseifungszahl: 108-135, meist 128,7-134 (122-124 ~Evans~); Jodzahl: 3,8-9,3; Gehalt an Unverseifbarem: 48,87. ~Fendler~ fand spez. Gew. 0,942, Schmelzp. 42° (siebenmaliges Umkristallisieren aus Alkohol erhöht den Schmelzpunkt auf 48,5, nach anderen auf 50-55°), V.-Z. 134, J.-Z. 93, Gehalt an unverseifbarer Substanz (Alkohole) 51,07, Schmelzpunkt der Alkohole 45°. Jodzahl, Schmelzpunkt, spez. Gewicht usw. sind natürlich davon abhängig, ob das Walratöl ganz oder nur zum größten Teile aus dem Walrat entfernt ist. Je reiner das Produkt, um so höher ist der Schmelzpunkt und um so niedriger die Jodzahl. Die Verbrennungswärme des Walrat ist größer als die aller anderen Fette; bei konstantem Volumen 9946 g-cal. ~Bunsen~ fand den Schmelzpunkt, = 47,7° bei gewöhnl. Druck, = 48,3° bei 29 Atm., = 50,9 bei 156 Atm. Die spez. Wärme ist zwischen +3° und -21° = 0,385 (~Person~). Das durch Alkohol vom Öl vollständig befreite Cetaceum analysierte ~Chevreul~. Er nannte es +Cetin+ (F = 49°), stellte es dem Cerin, Myricin, Elain, Stearin und Cholesterin gegenüber und fand in ihm 81,66% C, 12,86% H und 5,4% O. Den durch Verseifen erhaltenen Alkohol (Cetylalkohol) nannte er +Äthal+. ~Dumas~ und ~Peligot~ geben Margarinsäure, Elainsäure und Ceten als Ester darin an. Auch ~Bérard~ analysierte den Walrat. ~Heintz~ nahm die Alkohole +Stethal+ (C₁₈H₃₈O), +Äthal+ (C₁₆H₃₄O), +Methal+ (C₁₄H₃₀O) und +Lethal+ (C₁₂H₂₆O) (die bei der Oxydation Stearinsäure, Palmitinsäure, Myristinsäure und Laurinsäure lieferten) und einen indifferenten Körper, C₁₂H₂₄O, darin an. Er betrachtete zuletzt den Walrat als aus Verbindungen des Cetyl- und Stethyloxyds mit Stearinsäure, Palmitinsäure, Myristinsäure und Cocinsäure bestehend. Cetinsäure und Cocinsäure sind zu streichen. Der Hauptbestandteil des Walrates ist +Palmitinsäure-Cetylester+: C₁₅H₃₁CO--O.C₁₆H₃₃ (früher: cetinsaures Cetyloxyd, äthalsaures Äthal ~Heintz~), der daraus durch Umkristallisieren aus Alkohol gewonnen werden kann. Daneben finden sich geringe Mengen ähnlicher Ester (außer Cetylalkohol (Hexadecylalkohol) ist auch Octadecylalkohol, C₁₈H₃₇OH, gefunden), etwas freie Alkohole (~Lewkowitsch~) und vielleicht auch (wenn das Spermacetolöl nicht ganz entfernt war?) kleine Mengen anderer Ester (nach ~Heintz~ [1854] der Laurin-, Myristin- und Stearinsäure, was aber der Bestätigung bedarf), sowie palmitinsaures Kalium und die Salze anderer mit Palmitinsäure homologer Fettsäuren. Die Alkohole betragen 51,4%, die Fettsäuren 53,45% (~Lewkowitsch~). Glycerin ist anscheinend nicht darin. Der Palmitinsäurecetylester (Cetin), durch Umkristallisieren des Walrats aus Alkohol erhalten, zeigt den Schmelzpunkt 45° (48,9-55°), Erstarrungspunkt 52-44,5°, kritische Mischtemperatur nach ~Crismer~ 120°, spez. Gewicht bei 99°: 0,806, V.-Z. 129,1-130,1 (theoret. 116,9) (~Branderhorst~). +Der reine Ester gibt natürlich keine Jodzahl und so ist die Jodzahl selbst und ihre Höhe ein Maßstab für dem Walrat beigemengtes Walratöl.+ Schon für sich erhitzt liefert Walrat Palmitinsäure und Ceten (Hexadecylen, Palmiten, C₁₆H₃₂). Im Vakuum destilliert er zum Teil unzersetzt bei 360°. Das beim Umkristallisieren des Walrat aus Alkohol in diesem bleibende Öl nannte ~Berzelius~ Cetinelaïn. Es gab ihm beim Verseifen die von der Ölsäure verschiedene Cetinelaïnsäure. Das vom auskristallisierten Walrat abgetrennte (s. oben), dünnflüssige, fast geruchlose +Spermacetöl+ (Walratöl, Pottwaltran, Ol. cetacei, huile de cachelot ou de Spermaceti, Sperm oil) besteht aus Estern einatomiger Fettalkohole mit einer Säure der Ölsäurereihe (Physetölsäure [?] ~Hofstädter~, von ~Fendler~ bestritten); enthält ferner eine feste Fettsäure, Baldriansäure (?) und Glycerin (~Hofstädter~, ~Fendler~, ~Allen~ fand nur Spuren, ~Lewkowitsch~ bestreitet das Vorkommen von Glycerin). Es sind darin 35% (~Allen~, 39% ~Fendler~) Alkohole und zwar 25% primäre Alkohole (~Lewkowitsch~) sowie 60-65% Fettsäuren enthalten. Die Fettsäuren bestehen aus 85,78% flüssigen und 14,22% festen (~Fendler~). Die Alkohole sind ungesättigt (~Lewkowitsch~) und scheinen zur Äthylenreihe zu gehören, deren höhere Glieder zurzeit noch unbekannt sind. Freie Fettsäuren enthält das Öl nur wenig (0,11-0,42 ~Deering~). Walrat findet sich auch unter den festen Bestandteilen einiger Trane (z. B. im Delphin- und Hai-Öl). =Lit.= Ältere Analysen von ~Chevreul~ (cit. in ~Gmelins~ Handb. II, 440). ~Dumas~ und ~Peligot~, Ann. chim. phys. 72, 5. -- ~Pereira~, Elements. -- ~Fourcroy~, Syst. d. connoissances chim. IX. -- ~Bostock~, Nichols. journ. IV, 130 (N. Allg. Journ. d. Chem. V). -- ~Pfaff~, Syst. d. Mat. medic. 1808. -- ~Smith~, Lieb. Ann. 42, 241. -- ~Radcliff~, Ebenda 43, 349. -- ~Hofstädter~, Lieb. Ann. 91 (1854), 177. -- ~Heintz~, Lieb. Ann. 92 (1854), 299; Pogg. Ann. 87, 267 u. 93, 519; Journ. pr. Chem. 57, 30. -- ~Lewkowitsch~, Chem. Zeit. 1893, 1453. -- ~Kebler~, Journ. soc. chem. ind. 1896, 206. -- ~Lymann~ und ~Kebler~, Amer. journ. pharm 1896, 7. -- ~Fendler~, Chem. Zeit. 29 (1905), 555. -- ~Röder~ (Prüf. auf Stearins.), Röders Jahresber. 1904. -- ~Branderhorst~, Pharm. Weekbl. 1909, 1043. -- ~Lewkowitsch~ a. a. O. -- ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. Cetaceum wird außer in der Pharmazie auch in der Kerzenfabrikation benutzt. =Verfälschungen.= Verfälschungen des Walrat kommen selten vor, da jeder Zusatz das eigenartige Aussehen des Walrat verändert. Beimischung von Stearinsäure, die vorkommt, erhöht die Säurezahl. 1 g Walrat, 1 g Na₂CO₃ und 50 ccm Weingeist gekocht geben ein Filtrat, das mit Essigsäure angesäuert sich höchstens trüben darf (Stearinsäure). Seltener sind Talg, Solar spermaceti (Margarinsäure), Paraffin und Wachs beobachtet. Gelber ranziger Walrat ist zu verwerfen. =Geschichte.= Den Alten war _Sperma ceti_ möglicherweise bekannt. Die Beschreibung der Salzblüte (_Flos salis_) bei ~Plinius~ (XXXI, 42): riecht unangenehm, ähnlich wie Fischbrühe, hat weder mit dem Salze noch dem Salzschaume Ähnlichkeit, zeigt beim Drücken eine Art Öl, denn im Salze steckt eine gewisse Fettigkeit, deutet auf Rohwalrat und das, was ~Dioskurides~ (V, 128) über ἁλός ἄνθος sagt: übler Geruch, fettiger Geschmack, löslich in Öl -- spricht nicht dagegen, jedenfalls +nicht+ für eine Salzart oder für Ambra, womit es ~Mathioli~ identifizieren wollte, die aber doch wohlriechend ist. Was soll es denn sonst sein? _Halosanthos_ wurde im Altertum medizinisch benutzt (~Plinius~, ~Dioskurides~). Doch meint ~Flückiger~, «der Walrat scheint erst im Mittelalter in medizinischen Gebrauch genommen worden zu sein» (Grundriß 1894) und auch ~Pouchet~ hält den _Halosanthos_ nicht für Walrat. Die Bemerkung bei ~Megenberg~ nach ~Isidorus von Sevilla~ «des visches sâm wirt gevangen oben auf dem Wazzer, wan sô er geunkäuscht hât, so swimt der sâm oben, den er gelâzen hât, den vaeht man denn und tuot in in klein Fläschel und den +walrâm+ trinkt man nüchtern», deutet bestimmt auf Walrat. Es erscheint möglich, daß auch der _Halosanthos_ der Salernitaner Walrat war. (~Pouchet~ bestreitet dies.) In der Alphita steht: _Alosanthos i. e. flos maris_ (~Flückiger~). Über den Walfang in Europa und Asien (indischer Ozean) liegen jedenfalls schon Nachrichten aus dem VII. bis IX. Jahrh. vor. Er war schon damals wohlbekannt (~Lippmann~). Eine Abbildung der Zerlegung des Wals findet sich schon bei ~Lonicerus~ (1582), wohl nach älterer Quelle (auch ~Pomet~ hat eine solche). ~Albertus Magnus~ (XIII. Jahrh.) kannte in Holland gestrandete Pottwale (~Flückiger~). Auch ~Clusius~ erwähnt sie. Mit besonderem Eifer wurde aber der Pottwal, auf den seit alten Zeiten Jagd gemacht wird, seit Ende des XVII. Jahrh. verfolgt. Sicher genannt finde ich _Cetaceum_ zuerst im Nördlinger Register von 1480 als spermaceti und im Braunschweiger Register (1521) steht Spermacety brabant. Es wurde also bereits in den Apotheken des XV. und XVI. Jahrh. gehalten. Im Dispensatorium des ~Cordus~ von 1546 bildete Spermacet neben Butter einen Bestandteil des _Unguentum potabile_ (~Flückiger~), das ich aber in keinem älteren Dispensatorium finde. Walrat muß damals gut bekannt gewesen sein, denn die Scholien zum Texte des Dispensatoriums, z. B. in der Ausgabe 1627, die alle zweifelhaften Drogen erläutern, geben hierzu keine Anmerkung. ~Cordus~ schrieb eine eigene Dissertatio de halosantho seci Spermate Ceti vulgo dicto. Zürich 1565. Möglicherweise ist die _Ambragialla_ (die zweite Art) im Ricettario fiorentino auch _Cetaceum_. Auch in England war Walrat im XVI. Jahrh. gut bekannt. In ~Shakespeares~ 1598 erschienenen ~Heinrich IV.~ steht (I Act. 3 Sc.): «And telling me the sovereign’st thing on earth was +parmaceti+ for an inward bruise». Er wurde im Beginn des XVI. Jahrh. in den Mittelmeerländern schon viel gebraucht, kann also, entgegen ~Kirkby~, ~Leonardo da Vinci~ († 1519) sehr wohl bekannt gewesen sein. Der Streit über die Florabüste hat diese Frage aktuell gemacht. (~Pinkus~ fand in der Florabüste Walrat, nachgewiesen durch Cetylalkohol.) Walrat wird auch bei ~Gesner~ (Hist. animal. Zürich 1558. Nach ~Pouchet~ bezieht sich die Stelle nicht auf Walrat), bei ~Clusius~ (Exotic. l. X 1605), bei ~Sibbald~ (Phaenologia nova 1692) erwähnt. Die Stelle lautet bei ~Clusius~ (Exoticorum in Lib. VI): «Reperisse autem dicebantur mercatores +in beluae capite+ plus quam quartam partem dolii in quo adservantur saliti haleces, plenam ejus liquoris quem vulgo +Sperma ceti+, Hollandi +Wadschot+ appellant.» ~Clusius~ bildet das Tier ab. Auch ~Nic. Leméry~ bemerkt (Traité univers. d. dr. 1714), daß er nicht der Same von Walen sei (also +kein+ «Sperma»), sondern aus dem Kopfe der Wale stamme, was zuerst der Abbé ~Bourdelot~ (c. 1670) festgestellt habe, was aber, wie erwähnt, schon ~Clusius~ wußte und später ~Elsner~ (Miscell. Acad. nat. I 1652), ~Bartholini~, ~Worm~ (Museum 1615), ~Salmon~ (Seplasium 1693), ~Quincy~ (Dispens. 1719) bestätigten. ~Ettmüller~ hat diese Anschauung dann in einer eigenen Disputatio De Spermate Ceti verteidigt. ~Cordus~ hielt ihn für den Samen, ~Gesner~ für die Milch des Walfisches. Aber eigentlich finden wir schon bei der ~Hildegard~ eine beinahe richtige Deutung, die davon spricht, daß das Gehirn der Wale mit Wasser gekocht und mit Öl vermischt eine Salbe gebe. Der Renaissancezeit war der Walfischfang, der Walfischtran und der Walrat also gut bekannt. ~Pomet~, der die Bereitung selbst sah, bemerkt, daß man 1688 aus einem Kopfe 24 Barels (vingt quatre bariques) Walrat gewonnen habe. ~Pomet~ sagt (Hist. gener. d. drog. 1694 I, p. 74): «+Le blanc de Baleine+, que tout les anciens et modernes ont appellé et qu’on appelle encore aujoud’huy très mal-à-propos, sperme ou nature de Baleine est la Cervelle d’une espece de Baleine, que les Basques appellent +Byaris+ et ceux de S. Jean du Luz +Cachalot+. Cet Animal, suivant quelques uns, est appelé +Baleine mâle+ et des Latins +Orca+.» Er sagt ferner: «Le Blanc de Baleine se prepare ordinairement à Bayonne et à Saint Jean du Luz et cette fabrique est si rare en France qu’il n’y a pour le present que deux personnes à S. Jean de Luz qui sçavent bien preparer entre autre le Sieur Jean de Haraneder Monsequir». ~Pomet~ schildert das Ausschmelzen und wiederholte Umschmelzen behufs Reinigung und erwähnt bereits die Verfälschung mit weißem Wachs. Ende des XVII. Jahrh. unterschied ~J. G. Elsner~ das aus dem Kopfe stammende Sperma ceti von dem Sperma balaene der Einwohner Nord-Europas. Um 1700 war die Droge jedenfalls gut bekannt, auch ihrer Provenienz nach. Sie findet sich z. B. auch bei ~Berlu~ als Sperma Coeti von Irland und den Bermuden (I, S. 590), der sie aber als den Samen des Wals betrachtet, trotzdem er wußte, daß sie im Kopfe sich findet. Die abenteuerlichste Vorstellung bildete sich ~Schröder~ (1669) über dies «Bitumen» und «fettige Exkrement», das er als aus Schwefel, Seesalz und Fett gemischt annimmt. Erst ~Camper~ und ~Hunter~ zeigten Ende des XVIII. Jahrh., daß die Walrathöhlen nichts mit dem Gehirn zu tun haben. In ~Valentinis~ Museum Museorum (1704) wird bemerkt, daß der Walrath, Wolram oder Welset von der Grönländischen Compagnie vom Walfischfang mitgebracht werde. Der Reinigung des rohen Walrat durch Abseihen des flüssig bleibenden Öls in Lübeck und Amsterdam gedenkt ~N. Schurtz~ in seiner Materialkammer 1673 und die Reinigung des Rohwalrat mittelst Kalk und Aschenlauge in Holland und Lübeck beschreibt schon ~Ettmüller~ (wiedergegeben bei ~Valentini~). Das Behandeln des Fettes mit Potasche war im XVIII. Jahrh. gut bekannt (vgl. z. B. ~Brookes~, Introd. to phys. and surg. 1754). Einer chemischen Untersuchung unterwarf ihn zuerst ~Neumann~ (I, S. 961), dann ~Fourcroy~; ~Lorenz Crell~ stellte 1779 seine Fettnatur fest. Sein Vorkommen in den Dispensatorien hat ~Schelenz~ verfolgt. Walrat findet sich als Pinguedo Cerebri Ceti in der Pharm. Edinburgensis 1761 und in der Wirtembergica 1771 u. and. Pharm. borussica 1779 erwähnt die Reinigung mit Kalilauge. Das _Ceratum Cetacei_, die Lippenpomade, scheint zuerst im Dispensator. Lippiacum 1792 aufzutreten, _Cold cream_ schon bei ~Spielmann~ (I, S. 965) und früher (als _Ungt. infrigidans_), wurde aber unter dem Namen erst durch ~Hudson~ Anfang des XIX. Jahrh. eingeführt und der Name kam dann auch in die Pharmacopoee von Montpellier 1845 (~Schelenz~). Im XVIII. Jahrh. wurden Walratkerzen ziemlich viel gebraucht. Sie dienen noch heute zur Herstellung der Normalkerzen bei photometrischen Versuchen. Die (oder das?) Ambra (arab. anbar, ambar) war im Altertum unbekannt (die Ambra der Alten war der Balsam eines _Liquidambar_). Ihr eigenartiger, sehr intensiver Geruch wäre gewiß von den Autoren erwähnt worden. Durch die Medizin und besonders die Parfümerie der Araber und des frühen Mittelalters gelangte sie zu hohem Ansehn und wurde viel zur Herstellung des _Pomum Ambrae_, des Bisamapfels (eines Riechbüchschens) benutzt (~Flückiger~). Ihre Herkunft wurde erst 1724 bekannt. Ricettario fiorentino (I, S. 793) unterscheidet _Ambra odorifera_, _Ambra nera_ (von Grenoble) und _Ambra gialla_, und von letzterer wieder: _succinum_, dann _un grasso o bitume_, welchen das Meer auswirft (wie ich glaube Cetaceum) und un liquore che destilla da certi arbori (wohl Terpentin). =Lit.= ~Flückiger~, Pharm. Chemie und Grundriß; Pharm. Journ. 1910, 1, 385, 442. -- ~Kirkby~, Spermacet, Pharm. Journ. 1910, 1, 511. -- ~Schelenz~, Walrath. Chem. Ind. 1910, Nr. 13. -- ~Pinkus~, D. Wachs d. Florabüste. Chem. Zeit. 1910, 277. -- ~Rathgen~, Unters. d. Wachs. der Florabüste. Ebenda 1910, 305. -- ~Beauregard~ a. a. O. -- ~Pouchet~ (Ambra), Vol. commém. du centennaire du Museum 1893. β) Cholesterinwachse. Eine besondere Gruppe der Körperfette bilden die Cholesterine enthaltenden Wollfette, die in der Rohwolle vorkommen und aus den Wollwaschwässern jetzt im Großen abgeschieden werden, ursprünglich besonders deshalb, weil die Polizei das Einfließenlassen der Abwässer der Wollwäschereien in die durch sie verpesteten Flußläufe verbot und eine Selbstreinigung der Abwässer unmöglich ist. ~Liebreich~ behauptete (1885), daß Cholesterinfette (Lanolin) in dem keratinhaltigen Gewebe, wie der menschlichen Haut, den Haaren, des Vernix caseosa usw. sowie in dem Fett der Niere, der Leber und des Blutes vorkommen. Dies wurde aber von ~Buzzi~ und ~Santi~ (1889) bestritten. ~Santi~ zeigte, daß Cholesterin und Lanolin nicht die gleichen Reaktionen geben und meint, daß in den genannten Organen nur Cholesterin, nicht Cholesterinester, vorhanden sind. Das Blutplasma enthält Cholesterinester (~Hürthle~) neben Cholesterin, die Blutkörperchen Cholesterin (~Hepner~). In der Schafwolle kommen jedenfalls auch Cholesterinester vor. ~Burchard~ betrachtet (Dissert. Rostock 1889) die Sterine als im Plasma jeder entwicklungsfähigen Zelle der Tiere vorkommend. -- Cholestearin, Cholsterin (so schreibt z. B. ~Liebig~) oder Cholesterin wurde zuerst von ~Conradi~ (Dissert. Jena 1775) und ~Gren~ (Diss. Halle 1788) in den Gallensteinen aufgefunden. Es findet sich dort frei und verestert. Es wurde zuerst von ~Chevreul~, ~Couerbe~ und ~Marchand~ analysiert und von ~Chevreul~ benannt. Das rechtsdrehende Isocholesterin wurde 1872 von ~E. Schulze~ im Wollfett der Schafe aufgefunden. Das Cholesterin besitzt die merkwürdige Fähigkeit die roten Blutkörperchen vor der Einwirkung der Hämolysine (Saponine, Solanin, Schlangengift) zu schützen, daher wird ihm eine entgiftende Rolle zugeschrieben, resp. die Fähigkeit den Organismus gegen ihm von außen zugeführte hämolytische Substanzen zu schützen. Jedenfalls wirkt Cholesterin entgiftend auf Saponine (~Ransom~) und gibt mit Digitonin unlösliche Additionsprodukte. Im tierischen Organismus ist vorwiegend nur das eigentliche +Cholesterin+ (C₂₇H₄₃OH.H₂O ~Mauthner~ und ~Suida~, ~van Oordt~, C₂₇H₄₆O ~Diels~ und ~Abderhalden~), F = 147°, α_{D} = -31,12°, gefunden worden und zwar bei Vertebraten (Säugetieren, Vögeln, Reptilien, Fischen), Tunikaten, Mollusken, Arthropoden, Würmern, Echinodermen. Es war überall das gleiche (~Dorée~). Bei den Insekten dagegen scheinen mehrere verschiedene Sterine vorzukommen, wie z. B. das +Bombicesterin+ und ein anderes bei _Blatta_, doch ist auch normales Cholesterin in dem an Unverseifbaren sehr reichen Öle der Insekten nachgewiesen (z. B. in den _Canthariden_, in _Melolontha_, _Octopus_ ~Welsch~). Auch in den Schwämmen sind besondere Zoosterine [Spongosterin (C₂₇H₄₈O), Clionasterin ~Dorée~] gefunden worden. Neben dem Cholesterin findet sich dann noch in den Tieren oft +Isocholesterin+ (C₂₆H₄₃OH ~Schulze~) und in den Faeces +Coprosterin+ (C₂₇H₄₇OH ~Bondzynski~) und +Hippocoprosterin+, die ~Dorée~ in einer besonderen Klasse vereinigt. +Oxycholesterin+ (C₂₆H₄₂(OH)₂) ist außer im Wollschweiß auch im Blut und den Knochen gefunden worden (~Lifschütz~). Eine verwandte Gruppe von Körpern findet sich bei den Pflanzen. Ein Vertreter derselben wurde zuerst von ~Hesse~ (1878) von dem tierischen Cholesterin unterschieden und +Phytosterin+ genannt. ~Hesse~ und ~Thoms~ fassen +alle+ pflanzlichen Sterine unter dem Namen Phytosterin zusammen. Von ~Abderhalden~ (Lehrb. d. phys. Chem. 1909) wurde dann der Name +Sterine+ für +alle+ Cholesterine und Phytosterine vorgeschlagen. ~Dorée~ wünscht den Namen Cholesterin nur für die in der Natur vorkommenden, ungesättigten Alkohole der Formel C₂₇H₄₆O zu reservieren. Cholesterin und Phytosterin lösen sich in Chloralalkoholat leicht, schwerer und zwar verschieden schwer in Chloralhydratlösung (~Scherer~). Auf der Wiener Naturforscherversammlung 1894 habe ich darauf hingewiesen, daß wir in den +Phytosterinen+ eine ganze Klasse von nahe verwandten Substanzen nicht nur ein Individuum vor uns haben und daß diese Körper zu den regelmäßigen Bestandteilen des Plasmas der Vegetationsorgane der höheren Pflanzen gehören. Bei den Schleimpilzen hatten sie schon ~Reinke~ und ~Rodewald~ im Plasma gefunden und in Reservestoffbehältern, besonders Samen, waren sie schon 1862 von ~Beneke~ als weitverbreitet erkannt worden (analysiert hat ~Beneke~ nur das Phytosterin der Erbse, gefunden aber auch eins im Olivenöl). Auch ~Power~ und seine Mitarbeiter stießen fast bei jeder ihrer Drogenuntersuchungen der letzten 10 Jahre auf Phytosterine. Sie finden sich bei den Samen im Ölplasma (~Tschirch~), bei den Sklerotien von _Claviceps purpurea_ wohl in den Oleoplasten. Aber welche Rolle sie spielen ist noch ganz unklar. Reservestoffe sind sie keinesfalls, denn ihre Menge vermehrt sich beim Keimen (~Schulze~). ~Beneke~ meint, indem er auf das Vorkommen im Eidotter und den Samen hinweist, daß sie «sich gerade überall da finden, wo der Lebensprozeß und die Entwicklung der organischen Formen ihre reichste Entfaltung erfahren». In die Fette des Handels gelangen sie dadurch, daß sie sich, da sie am gleichen Orte wie diese vorkommen, beim Auspressen oder Ausschmelzen des Ausgangsmaterials in dem Fett lösen -- also rein zufällig. Bei der Pflanze findet sich nicht ein, sondern mehrere Sterine. Die Mannigfaltigkeit ist also bei ihr, die ja überhaupt ein viel besserer Chemiker ist wie das Tier, viel größer. Am weitesten verbreitet ist hier das +Phytosterin+, das ~Hesse~ in Calabarbohnen und ich in zahlreichen anderen Pflanzen beim Ausschütteln alkalischer Blattauszüge mit Äther fand (C₂₆H₄₄O).H₂O F = 138,5°) und das wohl mit +Sitosterin+ (C₂₇H₄₅OH.H₂O ~Burian~, ~Ritter~) identisch ist. Wahrscheinlich sind alle in Pflanzen gefundenen, zwischen 132 und 138° schmelzenden Phytosterine mehr oder weniger reines Sitosterin, z. B. das Ampelosterin, Sojasterol u. a. m. Dann sind zu nennen das höher schmelzende +Stigmasterin+ (C₃₀H₅₀O oder C₃₀H₄₈O. H₂O) aus Calabarbohnen, das, wie es scheint, besonders in Kautschukharzen und Samen weit verbreitete +Lupeol+ (~Likiernik~ C₃₀H₅₀O, identisch mit Anthesterin ~Klobb~). +Lactucerol+ (C₃₆H₅₈(OH)₂) im Milchsafte von _Lactuca virosa_; +Arnidiol+ (C₂₈H₄₆O₂ ~Klobb~) in _Arnica_ und +Onocol+ (C₂₆H₄₄O₂ ~Thoms~) in _Ononis_; +Ergosterin+ (C₂₇H₄₂O. H₂O ~Tanret~) und +Fungisterin+ (C₂₅H₄₀O. H₂O?), beide im Mutterkorn. Auch andere Pilze (_Penicillium_, _Aethalium_, _Saccharomyces_, _Mucor_, _Lobaria_, _Amanita_, _Trametes_, _Polyporus_) enthalten ergosterinartige Phytosterine; in _Aethalium septic._ fanden ~Reinke~ und ~Rodewald~ Paracholesterin C₂₆H₄₄O. Dann gehören hierher Caulosterin (~Schulze~ und ~Barbieri~), Brassicasterin (C₂₈H₄₆O. H₂O ~Welsch~), Cynanchol (~Hesse~) und Quebrachol (~Hesse~). Cupreol (C₂₀H₃₄O. H₂O), Cinchol (isomer mit Cupreol), Alkohol C₃₀H₅₀O in _Coca_ (~Hesse~), Urson (~Gintl~) in _Fol. uvi ursi_, Homosterin im Insektenpulver, Rhamnol (~Jowett~) in _Cascara Sagrada_ und viele andere Körper, die ~Hauth~ (Diss. Freiburg 1907), ~Welsch~ (Diss. Freiburg 1909) und ~Cohen~ (Over Lupeol Dissert. Utrecht 1906) in Tabellen zusammengestellt haben. Daß Isocholesterin in der Pflanze vorkommt, hat ~Cohen~ nachgewiesen. Er fand es im Africa-Rubber. Zu den Phytosterinen im weiteren Sinne gehören wahrscheinlich auch die Körper, die ich +Resinole+ genannt habe: α- und β-+Amyrin+ (C₃₀H₅₀O), +Euphorbon+ (C₃₀H₄₈O ~Tschirch~ und ~Paul~), +Benzoresinol+ (C₁₆H₂₆O₂ ~Tschirch~ und ~Lüdy~) in _Benzoë_, +Storesinol+ (C₁₆H₂₆O₂) und +Styresinol+ (C₁₆H₂₆O₂ ~Tschirch~ und ~van Itallie~) in dem _Styrax_, +Chironol+ (C₂₈H₄₈O ~Tschirch~ und ~Baur~) im _Opopanax_, +Gurjuresinol+ (C₁₅H₂₅OH ~Tschirch~ und ~Keto~) u. and. Vielleicht gehört auch die Abietinsäure in die Nähe der Phytosterine. Ich habe die in den letzten Jahren in meinem Institute isolierten Harzsubstanzen stets mit den Phytosterinreagentien prüfen lassen und oft Phytosterinreaktionen erhalten. Bemerkenswert ist endlich das Vorkommen von Sterinen in einigen Arten +Petroleum+ (~Rakusin~ 1906), was auf den organischen Ursprung dieser Produkte deutet und ihre Drehung erklärt. Bekanntlich leitet ja ~Engler~ das +Petroleum+ wesentlich von den Fetten einer untergegangenen Fauna und Flora ab. Die in den tierischen Fetten vorkommenden Cholesterine unterscheiden sich in verschiedenen Punkten von den in den Pflanzenfetten auftretenden Phytosterinen, beide Sterine sind aber offenbar nahe miteinander verwandt. Sie unterscheiden sich durch die Kristallform (Fig. 229) und den Schmelzpunkt der Acetate (~Bömer~). Derselbe liegt beim Cholesterinacetat bei 114,3-114,8, bei den Phytosterinacetaten (aus Pflanzenfetten) zwischen 125,6-137°. Wenn der Schmelzpunkt auch nach fünfmaligem Umkristallisieren unter 116° bleibt, so darf auf Cholesterin und Abwesenheit von Phytosterin geschlossen werden. Auch mit Hilfe der Dibromadditionsprodukte gelingt die Trennung (~Windaus~). Eine wichtige Rolle spielen die Sterine bekanntlich bei der Analyse der Fette. Sie bilden meist allein den «unverseifbaren Anteil» (s. oben) und wie für die tierischen Fette das Cholesterin, so sind für die pflanzlichen Fette Phytosterine, besonders das Sitosterin charakteristisch. Noch ist Cholesterin niemals mit Sicherheit in pflanzlichen, Phytosterin niemals sicher in tierischen Fetten nachgewiesen worden. [Illustration: Fig. 229. a-d Cholesterinkristalle. a-h Phytosterinkristalle. [Aus +Lewkowitsch+, Öle. Braunschweig, +Vieweg+ 1905.]] Als +Reaktionen+ zum Nachweis der Sterine dienen die von ~Liebermann-Burchard~ (Chloroform-Essigsäureanhydrid-Schwefelsäure) ~Salkowski-Hesse~ (Chloroform-Schwefelsäure), ~Mach~ (Salzsäure-Eisenchlorid), ~Hirschsohn~ (Trichloressigsäure-Salzsäure) und ~Tschugaeff~, sowie die Jodschwefelsäure-Reaktion. (Vgl. in ~Tschirch~, Harze II. Aufl.) Zum +mikrohistochemischen+ Nachweise der Phytosterine eignen sich die bisher bekannt gewordenen makrochemischen Reaktionen nicht (~Scherer~). ~Windaus~ teilt mir (1912) folgendes über das Cholesterin mit: «Dem Cholesterin kommt die Formel C₂₇H₄₆O zu; es ist ein sekundärer Alkohol, dessen CHOH-Gruppe sich in einem Ringe zwischen zwei Methylenresten befindet. Das Cholesterin besitzt eine Doppelbindung, und zwar in einer endständigen Vinylgruppe CH:CH₂. Endlich ist ein Isoamylrest, (CH₃)₂CHCH₂CH₂, im Molekül des Cholesterins nachgewiesen. Das Cholesterin enthält vier vollständig hydrierte Ringe, dagegen kein aromatisches Ringsystem. Die Formel des Cholesterins läßt sich also bisher auflösen in: CH:CH₂ / (CH₃)₂CHCH₂CH₂--C₁₇H₂₆---CH₂ \ | \ CHOH .» \ | \CH₂ ~Pickard~ und ~Yates~ glauben, daß das Cholesterin aus einem sehr beständigen komplexen Kern besteht, der mit einer normalen Kette von etwa 19 Kohlenstoffatomen verbunden ist. Bei der Oxydation entsteht Arachinsäure (C₂₀H₄₀O₂). Die Sterine werden durch Licht verändert (~Schulze~ und ~Winterstein~). =Lit.= +Cholesterin+: ~Mauthner~ und ~Suida~, Monatsh. f. Chem. 1894, 85 u. 362. -- ~van Oordt~, Jahresb. d. Tierchem. 31 (1902), Diss. Freiburg 1901. -- ~Welsch~, Vorkommen u. Verbreit. d. Sterine im Tier- u. Pflanzenreich. Diss. Freiburg 1909. -- ~Dorée~, Biochem. Journ. 4, 72. -- ~Windaus~, Arch. Pharm. 246 (1908), 117 und Habilitationsschr. Freiburg 1903; Ber. d. chem. Ges. 36, 3699 u. 3752; 37, 2027 u. 4753; 39, 518, 2008 und 2249; 40, 257 u. 2637; 41, 611; 42, 241. -- ~G. Stein~, Über Cholesterin. Diss. Freiburg 1905. -- ~Pickard~ und ~Yates~, Proc. chem. Soc. 19, 147. -- ~Diels~ und ~Abderhalden~, Ber. d. chem. Ges. 37 (1904), 3092; 39 (1906) 884. -- ~E. Schulze~, Ber. d. chem. Ges. 5, 1075; 6, 252. -- ~Liebermann~, Ber. d. chem. Ges. 18, 1803. -- ~Burchard~, Beitr. z. Kenntn. d. Cholesterine. Dissert. Rostock 1889. -- ~Bondzynski-Humnicki~, Zeitschr. phys. Chem. 22 (1896), 396; Ber. d. chem. Ges. 29, 476. -- ~Humnicki~, Über d. Schicksal d. Cholesterins im tier. Organism. Diss. Freiburg 1898. -- ~Bömer~, Zeitschr. Unters. v. Nahrungs- u. Genußm. 1898, 544. -- ~Bömer~ und ~Winter~, Über einige Ester der Cholester. u. Phytoster. Zeitschr. Unters. Nahr. u. Genußm. 1901, 1091. -- ~Blümner~, Über Cholesterinäther. Dissert. Zürich 1911. -- ~E. Ritter~, Beitr. z. Kenntn. d. Cholesterine u. d. Method., die zu ihrer Abscheid. aus d. Fetten u. z. ihrer quantit. Best. verwendbar sind. Diss. Zürich 1902. -- ~Juckenack-Hilger~, Gewinn. d. Cholest. u. Phytost. aus Tier- u. Pflanzenfetten. Arch. Pharm. 1898, 367. -- ~Raumer~, Zeitschr. angew. Chem. 1898. -- Weitere Nachweise über Cholesterin in ~Röhmann~, Biochemie. +Phytosterine+: ~Beneke~, Cholesterin im Pflanzenreiche aufgefunden. Lieb. Ann. 122 (1862), 249. -- ~Hesse~, Phytosterin und Cholesterin. Ebenda 192 (1870), 175. -- ~Lindenmeyer~, Journ. pr. Chem. 90, 321. -- ~Reinke~ und ~Rodewald~, Über Paracholesterin aus Aethal. sept. Lieb. Ann. 207 (1881), 229. -- ~Tschirch~, Verh. d. Naturforschervers. Wien 1894 und Chem. u. Biolog. d. pflanzl. Sekrete. -- ~Thoms~, Arch. Pharm. 235, 39. -- ~Schulze~, Lupeol, Zeitschr. phys. Chem. 41 (1904). -- ~Schulze~ und ~Winterstein~, Verh. d. Cholest. gegen d. Licht. Zeitschr. phys. Chem. 43, 316 und 48, 546. -- ~Hauth~, Z. Kenntn. d. Phytosterine. Diss. Freiburg 1907. -- ~H. Scherer~, Über Phytosterine usw. Diss. Straßburg 1909. -- ~Cohen~, Over Lupeol. Proefschr. Utrecht 1906, Arch. Pharm. 1908, 510, 515, 520 und 592. Phytosterine aus Balata. Ebenda 1908, 510. -- ~Sack~ und ~Tollens~, Ber. d. chem. Ges. 1904 (aus ~Sack~, Diss. Göttingen 1901). Weitere Nachweise über Phytosterine in ~Czapek~, Biochemie. +Reaktionen+: ~Salkowski~, Pflüg. Arch. 6 (1872), 207. -- ~Hesse~, Lieb. Ann. 211 (1882), 284. -- ~Liebermann~, Ber. d. chem. Ges. 18 (1885), 1803. -- ~Burchard~, Beitr. z. Kenntn. d. Cholester. Diss. Rostock 1889. -- ~Hirschsohn~, Pharm. Centralh. 1902, 357. Wollfettgruppe. Adeps Lanae. Wollfett, Wollschweißfett, Suint, Wool fat, Wool grease, Recovered grease, grasso di lana, in Amerika: Dégras, -- das wasserhaltige: +Lanolin+, Lanichol, Laniol, Lanesin, Agnin, Alapurin, Anaspalin, Vellolin usw. -- das wasserfreie: Lanolinum anhydricum, nach ~Husemanns~, ~Hebbelers~ und ~Wulfsbergs~ Ausführungen besser: oesypum (nicht oesipus wie ~Ince~ und ~Liebreich~ schreiben), das masc. kommt bei keinem römischen Autor vor. =Etym.= οἴσυπος aus ὀίς = ovis Schaf; οἰὸς ῥύπος = Schmutz der Schafe; οἰὸς λίπος = Fett der Schafe; griech. ὀίσυπος (Neutr.) oder οἰσύπη (Fem.), bei ~Dioskurides~ οἴσυπος (Masc.); bei ~Galen~ auch ὀίσπη αἰγός; bei ~Oribasius~ ὀίσσυπος, bei ~Aëtius~, ~Paulus Aeginetes~, ~Nicol. Myrepsus~ auch ὕσσωπος. Daraus wurde dann im I. Jahrh. n. Chr. Hyssopus und Hyssopum; -- gleichlautend mit der Pflanze -- so bei ~Scribonius Largus~ und ~Celsus~, bei ~Plinius~ steht sowohl Oesypum wie Hyssopus. -- In der Alphita: Ysopum vel ysopus humida cerotum est succus lanae per decoctionem extractus. Bei ~Mathaeus silvaticus~: cenferatab (aus zûfâ ratab jabis corrumpiert, zûf, zûfâ, Name des Ysop). Das lat. ysopum humidum auch bei ~Ibn Baithar~ als zûfâ rathaba (raṭab) = feuchtes Ysop (die Ysoppflanze hieß trockener Ysop = zûfâ jabis; schon ~Paulus Aeginetes~ unterscheidet das Wollfett: ὕσσωπος ὑγρός τὸ φάρμακον vom Ysop: ὕσσωπος ἡ βοτάνη). -- Bei ~Serapion~: sinferatab, im Liber Servitoris: zuscherak. -- Arab. heißt Wollschweiß auch wadsah --. Oesypum war aber im Altertum auch Kollektivbegriff für allen möglichen «Schmutz», wie Ziegenkoth und das aus Ziegenbärten ausgekämmte Ladanum (Oesypum caprarum bei ~Plinius~). Der Name Hyssopus humidus wurde durch die arabischen Autoren im ganzen Mittelalter allgemein gebräuchlich (~Mesuë~, ~Liber servitoris~, ~Nicolai~). Im XVI. Jahrh. kam aber dann wieder durch die Humanisten und das Bestreben, die Medizin vom Arabismus zu reinigen, οἴσυπος und οἴσυπον (so z. B. bei ~Brunfels~) in Aufnahme. Doch schleppt sich der Ausdruck Hyssopus humida als Nebenbezeichnung noch durch die Arzneibücher des XVII. Jahrh. (~Schröders~ Pharm. med. chym., Pharmac. augustana 1634-1734), ja ist sogar ganz als hisopo umido oder hesipo humedo in die spanische Sprache übergegangen. Im Thesaurus aromat.: ysopus humide. In des Cordus Dispensat.: oesypi i. e. hyssopi humida. Im Ricett. fiorent. nur oesypus. =Gewinnung.= Die Wolle der Schafe enthält wechselnde Mengen (20-70%) der unter dem Namen +Wollschweiß+ zusammengefaßten Ausscheidungsprodukte der Haare und Schweißdrüsen der Haut, vermischt mit mancherlei Verunreinigungen (Staub, Fasern, Kletten, Kot usw.). Dieser Wollschweiß, von dem die Wolle vor ihrer Verarbeitung befreit werden muß (+Wollwäsche+, +Entschweißen+), besteht einerseits aus in Wasser, zum Teil auch in Alkohol löslichen Bestandteilen: Kalisalzen organischer Säuren (s. unten S. 753), andererseits aus aus Cholesterinen und deren Fettsäureestern bestehendem Fett. Die Wolle enthält 20-28% dieses «Wollfettes». Die +Fabrikwäsche+ der Wolle (die Rückenwäsche am Tiere selbst wird nur selten noch geübt) geschieht entweder mittelst flüchtiger Lösungsmittel (Benzin, Äther, Schwefelkohlenstoff, Amylalkohol, Naphta) oder -- meist -- mittelst alkalischer Laugen (früher gefaulter Harn, jetzt Soda, Potasche, Seife, Ammoncarbonat, auch Wasserglas wurde empfohlen). Meist wird die Schweißwolle zunächst der +Vorwäsche+ unterworfen, d. h. mit Wasser von gewöhnlicher Temperatur behandelt. Die gelösten Kalisalze werden durch Calcinieren des Rückstandes der eingedampften Lösung auf Potasche verarbeitet («Potasche aus Wollschweiß», s. unten S. 752). Die +Hauptwäsche+ erfolgt gewöhnlich in den großen Wollwaschmaschinen (Leviathan) mittelst Seifenlösungen von 40-45° C. oder Seifen- und Sodalösungen, wodurch die Fette emulgiert werden. Das Waschwasser wird zunächst durch Klärkufen geschickt, in denen sich der Schmutz und andere Verunreinigungen absetzen, dann verschieden weiter verarbeitet. In dem einen Verfahren (Lanolinprozeß) setzt man zu der Emulsion verdünnte Schwefelsäure. Die Seife wird dadurch zerlegt und mit den freien Fettsäuren scheidet sich auch das Wollfett ab. Dies wird abgetrennt, abermals mit Kalilauge oder Potasche emulgiert und die aus Kaliseife und Lanolin bestehende Emulsion zentrifugiert, wobei sich das Lanolin als Rahm abscheidet. Dies wird dann mit Wasser gewaschen, die Seifen durch Chlorcalcium in Kalkseifen übergeführt und aus dem Gemisch das Wollfett mit Aceton extrahiert. Oder aber es wird das rohe Wollfett zunächst durch Ätzalkalien oder Carbonate in eine Emulsion verwandelt und diese dann der Zentrifugierung unterworfen. Dabei trennt sich diese in eine untere, die Fettsäuren und Fette als Seife enthaltende Lösung, und eine obere, die Cholesterinäther enthaltende, als Rahm abfließende Schicht. Das so gewonnene Rohlanolin wird dann wiederholt mit Wasser umgeschmolzen und gewaschen, hierauf Chlorcalciumlösung zugesetzt und die Kalkseife mit siedendem Aceton extrahiert. Das nach Abdestillieren des Acetons zurückbleibende Lanolin wird mit Kaliumpermanganat oder anderen Oxydationsmitteln von den Riechstoffen befreit. Durch Einkneten von 25% Wasser wird das Wollfett in Lanolin übergeführt. Neuerdings wird geruchloses Wollfett dadurch erhalten, daß der Wollfettschlamm statt mit Schwefelsäure mit schwefliger Säure gefällt wird. Ein anderes Verfahren (Adeps lanae-Prozeß) geht in der Weise vor, daß die geklärte Rohemulsion (s. oben) direkt mit Chlorcalcium versetzt und der ausfallende Schlamm (Suinter), ein Gemisch aus fettsaurem Kalk und Cholesterinestern, mit Wasser oder mit Salzlösungen (von 1,02-1,04 spez. Gew.) geschlämmt wird. Dabei bleiben die schweren Kalksalze zurück und der Wollfettschaum wird mit dem Waschwasser fortgeschlämmt und den Waschwässern durch einen Gegenstrom von Benzin oder einem anderen Lösungsmittel entzogen. Bisweilen werden auch die Rohemulsionen direkt zentrifugiert und das Fett durch Waschen, Umschmelzen usw. gereinigt. Wird die Rohwolle direkt mit Benzin oder Äther extrahiert, so müssen die Wollschweißsalze durch nachträgliches Waschen mit Wasser entfernt werden. Das Wollschweißfett, das durch Extraktion der Wolle mit flüchtigen Lösungsmitteln erhalten wird, enthält die natürlichen Bestandteile, soweit diese löslich sind: Fettsäuren, neutrale Ester und freie Alkohole, sowie Kalisalze der Fettsäuren. Die Darstellung von hellem Wollfett ist möglich, wenn die Lösung in Benzin mit Gerbsäure, Phosphorsäure, Essigsäure oder Bleiacetat unter Zusatz von Alkohol behandelt wird (~Kleemann~). Gewöhnlich wird zum Bleichen Kaliumbichromat und Schwefelsäure benutzt (~Herbig~). Die Darstellung gereinigter Wollfette ist durch vielerlei Patente geschützt. Ausführliche Darstellung der Methoden bei ~Donath~ und ~Margosches~ a. a. O. Viel rohes Wollfett kommt aus der Levante (~Caesar-Loretz~). =Handelssorten.= Die +Norddeutsche Wollkämmerei+ in Delmenhorst bringt 1912 in den Handel: +Alapurin+, reines, neutrales, wasserfreies Wollfett, die beste Sorte, dann _Adeps Lanae_ N. W. K. (Lanolinum puriss. anhydr.) und _Adeps Lanae ad usum veterinarium_. Ferner für technische Zwecke _Adeps Lanae technicus_, +Neutral-Wollfett+ I und II (säurefrei), +Wollfett-Fettsäure+ und +rohes Wollfett+. Über die Darstellung dieser Präparate teilt mir die Firma folgendes mit: «Das nach D. R. P. 69598 hergestellte, leicht schmelzbare Wollfett kommt jetzt bekanntlich unter dem Namen «Alapurin», als feinstes Produkt für medizinische Salben usw. in den Handel. Seines hohen Preises wegen tritt die Verwendung zurück gegenüber dem _Adeps Lanae_ N. W. K., welches überall eingeführt und sich dauernd bewährt hat. Dieses _Adeps Lanae_ N. W. K. hat als Grundlage das Neutral-Wollfett, welches direkt aus dem mittels Kalk und Erdalkalisalzen gewonnenem Suinter extrahiert wird. Zwei Drittel des gesamten Wollwaschwassers werden nach diesem Neutralverfahren mit Kalk und Erdalkalisalzen geklärt. Bei der Extraktion des Suinters entsteht zunächst ein gelbbraunes Fett mit ziemlich starkem Geruche, das +Neutral-Wollfett+ II. Dies wird mit Sauerstoff (Ozon) gebleicht und desodorisiert, dadurch verwandelt es sich in +Stern-Lanolin+. Ein letzter Raffinationsprozeß verwandelt das Stern-Lanolin in _Adeps Lanae_ N. W. K. Wird dies mit Wasser verknetet, so entsteht das _Adeps Lanae cum aqua_. Die im Suinter verbleibenden Alkaliseifen werden durch besondere Extraktion mit anderem Lösungsmittel gewonnen und liefern nach Zersetzung mit Salzsäure die +Wollfett-Fettsäure+. Ein Teil des Wollwaschwassers wird nach dem altbekannten sauren Verfahren mit Schwefelsäure geklärt. Der hierbei sich absetzende Schlamm (saurer Suinter) wird in Dampfpressen gepreßt. Dabei läuft das +Roh-Wollfett+ ab. Die Rückstände werden als Dünger verkauft.» =Chemie.= Die +Wolle+ enthält in %: 12,28-23,48 Wasser, 7,17-34,19 Wollfett, 9,76 bis 21,83 Wollschweiß (in Wasser löslich), 0,35-0,89 in Alkohol löslich, 1,39-5,64 in verd. Salzsäure löslich, 0,29-0,57 in Ätheralkohol löslich, 20,83-43,2 reine Wollfaser; 2,93-23,64 unlösliche Verunreinigungen (~Märcker~, ~Schulze~, ~Barbieri~). Der +Wollschweiß+ besteht aus Kaliumsalzen der Ölsäure und Stearinsäure, -- also Kaliseifen -- wahrscheinlich auch anderer nicht flüchtiger und einiger flüchtiger Fettsäuren (Essigsäure, Propionsäure, Buttersäure, Capronsäure, Baldriansäure, Önanthsäure, Cerotinsäure), sowie Kaliumchlorid, Phosphaten und Sulfaten, Ammonsalzen usw., Kaliumphenylsulfat, Sarkolaktinsäure, Benzoësäure, Oxalsäure, Milchsäure, Bernsteinsäure, Harnsäure, Glycocoll, Leucin, Tyrosin, Mono- und Trimethylamin u. a. m. (~Ulbrich~, ~Reich~, ~Hartmann~, ~Buisine~). Die Wollschweißasche (Potasche) enthält 58,9-63,4% Kali. Beim Glühen der Kohle des Wollschweißwaschwassers entstehen brauchbare Gase. Die +Wollschweißpotasche+ ist oft fast frei von Natronsalzen. Je edler die Rasse und je besser genährt die Tiere sind, um so höher ist der Kaligehalt. In Deutschland wird sie in Döhren bei Hannover, Chemnitz und in Bremen dargestellt. Die Ausbeute beträgt 5% des Gewichtes der Wolle. Das wasserfreie Wollfett bildet eine fast geruchlose, klebrige, stark viskose salbenartige Masse, die meist bei 40-42° schmilzt (die Norddeutsche Wollkämmerei liefert ein Wollfett von dem sehr niedrigen Schmelzpunkt 30-36°). Es nimmt mehr als das doppelte Gewicht Wasser auf, ohne seine salbenartige Beschaffenheit zu verlieren. Die Farbe des Wollfettes ist verschieden: hellgelb, gelb, grünlichgelb, goldgelb, dunkelgrün, dunkelbraun bis schwarzbraun. In Wasser ist es unlöslich, in Alkohol schwer löslich, leicht löslich in Aceton, Äther, Benzol, Petroläther und Schwefelkohlenstoff. Spez. Gewicht: 0,970-0,973, Schmelzpunkt: 36-42,5°, V.-Z.: 82-130, J.-Z.: 10-28 (J.-Z. der Fettsäuren: 17), Hehnerzahl: 60, Schmelzpunkt der Fettsäuren: 41,8°, Erstarrungspunkt der Fettsäuren: 40°, Schmelzpunkt der Alkohole: 33,5°, Erstarrungspunkt der Alkohole: 28°. ~Dieterich~ fand (Methode: Helfenb. Ann. 1897) für wasserfreies Wollfett (1900): Verlust bei 100°: 0,1-2,2%, S.-Z.: 0,196-2,419, Wasseraufnahmefähigkeit: 56,26-246,86, Asche: Spuren -0,3%. Adeps lanae enthält meist nur Spuren Chlor. Eine Analyse von rohem Wollfett (recovered grease) ergab ~Lewkowitsch~ in %: flüchtige Fettsäuren 1,26, unlösliche freie Fettsäuren 20,22, Unverseifbares (unverbund. Alkohole) 6,21, Total des Unverseifbaren 36,71, Wachs 72,31, darin: gebundene Alkohole 30,5 und gebundene Fettsäuren 41,81. Für mit überhitztem Wasserdampf destilliertes Wollfett (flüssiger Anteil): Freie Fettsäuren 54,91, unzersetztes Wachs 11,39, darin: gebundene Fettsäuren 7,09 und gebundene Alkohole 4,30, Unverseifbares (Kohlenwasserstoffe) 34,50. Wollfett läßt sich in einen harten (Wollwachs) und einen weichen Teil scheiden. Die Abscheidung des Wollwachses erfolgt durch Abkühlung der Lösung in Fuselöl unter den Schmelzpunkt des Wollfettes. ~Chevreuls~ Analyse des Wollschweißes (1856) ergab neben oxalsaurem Kalk, kieselsaurem Alkali und Chlorkalium die Kalisalze zweier organischer Säuren und wenigstens 5 «besondere» Fette, vorwiegend Stearerin (unverseifbar) und Elaierin (verseifbar). ~Ulbricht~ und ~Reich~ fanden 1867 Stearinsäure und Ölsäure. Die Cholesterine wurden von ~Hartmann~ (1868) und ~E. Schulze~ (1870) im Wollfett entdeckt. ~Hartmann~ wies nach, daß im Wollfett kein Glycerin enthalten ist, ~E. Schulze~, der alle wichtigen Punkte aufklärte, daß darin Isocholesterin und ein Benzoësäureester (?) vorkommen. ~v. Sanctis~ fand im Lanolin von ~Jaffé~ und ~Darmstätter~: Cerotinsäure, Palmitinsäure, geringe Mengen Capron- und Ölsäure, sehr geringe Mengen Stearin-, Isovalerian- und Buttersäure, sämtlich als Äther des Cholesterins und Isocholesterins, vielleicht auch anderer höherer Alkohole. Glycerin fehlte. Ob aber Ölsäure darin vorkommt, die auch ~Schulze~ (1874) angibt, ist zweifelhaft. Ebenso bedarf die Hyaenasäure der Bestätigung. Buisine fand Cerotinsäureceryläther. Die charakteristischen Bestandteile des Wollfettes sind Fettsäureester des linksdrehenden +Cholesterins+ (F = 145°), des rechtsdrehenden +Isocholesterins+ (F = 138,5°) und der +Oxycholesterine+, sowie die Fettsäureester kohlenstoffreicherer, cholesterinartiger Verbindungen. Die Zusammensetzung des Wollfettes ist aber eine sehr schwankende und variiert stark nach der Provenienz. ~Schulze~ erhielt mehrfach bis 15% Cholesterin- und Isocholesterinester, etwa zu gleichen Teilen (im Wollwachs 85-90%), ~Darmstädter~ sehr viel weniger. In einigen Fällen fehlte Cholesterin fast ganz, in anderen Isocholesterin. Die höher schmelzenden wachsartigen Bestandteile, das +Wollwachs+, können (s. oben) durch Lösen des Wollfettes in Fuselöl und Abkühlen der Lösung entfernt werden (~Jaffé-Darmstädter~ 1894). ~Marchetti~ isolierte den keine Cholesterinreaktion gebenden +Lanolinalkohol+ (C₁₂H₂₄O), ~Darmstädter~ und ~Lifschütz~ aus +Wollfettwachs+ +Carnaubasäure+ (C₂₄H₄₈O₂, identisch mit der Carnaubasäure ~Stürckes~) und +Myristinsäure+ (C₁₄H₂₈O₂) -- australisches Wollfett enthielt 10-12% dieser Säuren --, sowie +Lanocerinsäure+ (C₃₀H₆₀O₄, F = 104°), die eine Dioxysäure sein soll und deren Lakton C₃₀H₅₈O₃ von ihnen früher als ein Lanestol, d. h. als ein Wollalkohol betrachtet und beschrieben wurde (sie macht den Hauptbestandteil der in kaltem Alkohol unlöslichen, bei der Verseifung erhaltenen Substanzen aus) und in der alkohollöslichen Seifengruppe: 34% +Lanopalminsäure+ (C₁₆H₃₂O₃, F = 88°), die im geschmolzenen Zustande sich mit Wasser emulgiert und, neben einer flüchtigen, 15% einer öligen Säure (Ölsäure?). Von Alkoholen erhielten sie +Cerylalkohol+ und einen vielleicht damit isomeren Alkohol, sowie +Carnaubylalkohol+ (C₂₄H₅₀O), der bei der Oxydation Carnaubasäure liefert und +Cholesterin+ (im harten Bestandteil kein Isocholesterin). Das bei 55-60° schmelzende Wollfettwachs lieferte 33% Rohalkohole, 41,6% in Alkohol unlösliche Seife (rohes lanocerinsaures Kali) und 36,2% alkohollösliche Seife. Der Säurebestandteil betrug über 65% (darunter nur wenige Prozente flüssige Säuren). In dem «Weichfett» beträgt er nur 40-45%. In ihm fehlt Lanocerin- und Lanopalminsäure. Dagegen sind auch hier +Myristin-+ und +Carnaubasäure+, vielleicht auch +Cerotinsäure+ und in beträchtlicher Menge (40%) die +ölige Säure+ vorhanden, als Alkohole ein +Isocholesterin+ (C₂₆H₄₄O, F = 137-138, nicht mit ~Schulzes~ Isocholesterin identisch) neben anderen nicht näher charakterisierten Sterinen. Von Alkoholen wurden im Weichfett +Cerylalkohol+ und +Carnaubylalkohol+ nachgewiesen. Endlich wurden auch die Oxydationsstufen des Cholesterins: +Oxycholesterin+ [C₂₆H₄₂(OH)₂], +Oxycholesterinäther+ (C₂₆H₄₃O)₂O), +Cholansäure+ (C₂₆H₄₀O₄) u. and. im Wollfett gefunden (~Lifschütz~). Ob Stearinsäure, Palmitinsäure, Capronsäure, Isovaleriansäure und Normal-Buttersäure (in Esterbindung) zu den normalen Bestandteilen aller Wollfette gehören ist zweifelhaft. Sie finden sich wohl nur im Rohfett und werden bei der Reinigung zum Teil entfernt (s. oben unter Wollwäsche). Ein bedeutender Teil des Wollfettes besteht jedenfalls nicht aus Cholesterin-, Oleïn- und Cerotinsäureestern. Nach ~Darmstädter~ und ~Lifschütz~ treten weniger die Cholesterin- und Isocholesterinester der Cerotinsäure, als vielmehr die der Carnaubasäure und Lanocerinsäure in den Vordergrund. Dagegen wird nach ~Unna~ das Wollfett nicht durch Vorhandensein von Cholesterin und Cholesterinestern charakterisiert, sondern durch Isocholesterin (~Schulze~) und Oxycholesterin (+Lifschütz+), Lanocerinsäure und Lanopalminsäure (~Lifschütz~ und ~Darmstädter~). Im Fett der Epidermis, der Cutis und der Subcutis der menschlichen Fußsohle, im Ohrenschmalz und in den Nägeln, die Cholesterin enthalten, fehlen Isocholesterin und Oxycholesterin. Die +menschliche+ Haut enthält also kein Wollfett. Die Hydrophilie, die Fähigkeit mit Wasser zu lanolisieren, geht den Hautfetten ab und eignet dem Wollfett wegen seines Gehaltes an Oxycholesterinen. Die Fettsäureester der Cholesterine lassen sich nur mit +alkoholischer+ Kalilauge oder den Alkoholaten der Alkalien (~Kossel~ und ~Krüger~) verseifen. Sie sind gegen Mikroorganismen widerstandsfähiger als Fette und daher sehr geeignet zu Hautschutzmitteln. =Lit.= ~Donath~ und ~Margosches~, D. Wollfett, seine Gewinn., Zusammensetz., Untersuch., Eigensch. u. Verwert. in Samml. chem. u. chem. techn. Vortr. VI, 1901 (dort die Lit.). -- ~Möhlau~, Wollwäsche in ~Luegers~ Lexikon der Ges. Technik 1911. -- ~Knecht~, ~Rawson~ und ~Löwenthal~, Handb. d. Färberei. Berlin 1900. -- ~Herbig~, Die Verwert. d. Abfallprod. d. Wollwäschereien. Zeitschr. f. d. Ges. Textilindustrie 1897/98. -- ~Borchers~, Verwert. d. Wollschweißes. Zeitschr. Angew. Chem. 1890, 96. ~Chevreul~, Compt. rend. 43, 13 (Journ. pr. Chem. 70, 256). -- ~Berthelot~, Ann. ch. phys. (3) 56, 51 (Lieb. Ann. 112, 356). -- ~Hartmann~, Über den Fettschweiß der Schafwolle 1868. -- ~E. Schulze~ (Cholesterine). Ber. d. chem. Ges. 1872, 1075 und 1873, 1279. Zeitschr. f. Chem. 1870, 453. -- ~Schulze~ und ~Uhrich~, Ber. d. chem. Ges. 1874, 570. -- ~Ulbricht~ u. ~Reich~, Preuß. Ann. d. Landw. Monatsbl. 49, 122. -- ~Herbig~ und ~von Cochenhausen~, Dingl. Polyt. Journ. 292 u. 297. ~Liebreich~, Über d. Lanolin, eine neue Salbengrundlage. Berl. klin. Wochenschr. 1885, 761, in Real-Encycl. d. ges. Medizin XI, 1887. Vorkommen von Lanolin in der Haut: Verh. d. phys. Ges. Berlin 1890. Therapeut. Monatsh. 1890. Virchows Archiv 121 (1890) 383. Du Bois Reymonds Archiv 1890, 363. -- ~Schulze~, Journ. pr. Chem. (2) 25, 459 u. 7 (1873), 163 u. 178, 9, 321. Ber. d. chem. Ges. 6 (1872), 251. Einig. Best. d. Wollfettes. Ber. d. chem. Ges. 31 (1898), 1200. Zeitschr. phys. Chemie 14 (1890), 522. -- ~Spenzer~ u. ~Cleveland~, On gallstones Clevel. Med. Gaz. 1895. -- ~Buisine~, Bull. soc. chim. 42, 201. -- ~v. Sanctis~, l’Orosi 1894 (Apoth. Zeit. 1894, 371). -- ~Hartmann~, Über den Fettschweiß der Schafwolle. Diss. Göttingen 1868. -- ~Marchetti~ (Lanolinalkohol). Gazz. chim. ital. 25 (1895). -- ~Darmstaedter~ und ~Lifschütz~, Beitr. z. Kenntn. d. Zusammens. d. Wollfettes. Ber. d. chem. Ges. 1895, 3133; 1896, 618, 1474 u. 2890; 1898, 97 u. 1122. -- ~Burchard~, Beitr. z. Kenntn. d. Cholesterine. Rostock 1889. -- ~Unna~, Monatsh. f. prakt. Dermatologie 1907, 443. -- ~Santi~, Über Lanolin. Monatsh. f. prakt. Dermatol. 1889 u. 1892. -- ~Lifschütz~ (Oxycholester.). Zeitschr. phys. Chem. 50, 436, 53, 140 (1907). -- ~Lewkowitsch~, Chem. Technol. d. Fette I, 444 und Journ. Soc. Chem. Ind. 1892 u. 1896. -- Identitätsreaktionen für Wollfett: ~Hilger~, Jahresb. d. Pharm. 1893, 383 und ~Astolfi~, Bull. chim. farm. 1894, 4; vgl. auch bei ~Donath~ a. a. O. -- Wertbestimmung: ~v. Cochenhausen~, Chem. Zeit. 1894, 143. -- Controverse über den Chlorgehalt: Pharm. Jahresber. 1894. Zur =Wertbestimmung= gehört: Bestimmung des Wassers und der fremden Stoffe, Säurezahl, Verseifungszahl, Bestimmung der freien Fettsäuren, ihrer Säurezahl und ihres Molekulargewichts, Bestimmung der flüchtigen Fettsäuren und bei der Verseifung frei gewordenen Alkohole sowie der schwer verseifbaren Stoffe, Bestimmung der Säurezahl des aufgeschlossenen Wollfettes und der Gesamtfettsäuren (~v. Cochenhausen~). Pharm. helv. IV. verlangt bei Adeps lanae außer den Identitätsreaktionen von ~Salkowsky-Hesse~ und ~Liebermann-Burchard~ (s. oben S. 749) Prüfung auf Seife, Glycerin, mineralische Stoffe und Ammoniaksalze, Säure und Alkalinität. Schmelzpunkt 35-40°. J. Z. 20-26. =Präparate.= +Lanolin+: Adeps lana 75, Wasser 25 (D. A. V läßt flüssiges Paraffin zusetzen). +Lanogen+ ist eine Mischung der wasserbindenden Substanz des Wollfettes mit Vaselin (es bindet 300% Wasser). +Dermozon+ ist sterilisiertes wasserstoffperoxydhaltiges Wollfett, +Lanoform+ ein Formaldehydwollfettpräparat, +Thilanin+ geschwefeltes Wollfett, +Bryolin+ Borsäure-Glycerin-Olivenöl-Wollfett. (Weitere Präparate in ~Gehes~ Codex.) =Geschichte.= Das wasserhaltige Wollfett ist durch ~Liebreich~ 1885 unter dem Namen Lanolin als Salbengrundlage in den Arzneischatz eingeführt worden, aber bekannt ist Wollfett seit c. 2000 Jahren als Cosmeticum und Arzneimittel. Seine Geschichte wurde gelegentlich der Lanolin-Patentprozesse besonders durch ~Th. Husemann~ aufgeklärt. Vorschriften zur Darstellung des _Oesypum_ gab bereits ~Dioskurides~ (II c. 84) und ~Plinius~ (XXIX, c. 2). Im wesentlichen wurde es durch Auskochen der Wolle mit Wasser, Sammeln, Reinigen und Bleichen des abgeschiedenen Fettes dargestellt. Das Produkt hatte einen üblen Geruch (ut sordium virus oleat). Die Vorschrift von ~Dioskurides~, der auch schon einer Verfälschung mit Cerat und Talg gedenkt, reproduzierte mit wenigen Modifikationen ~Aëtius~, ~Nicol. Myrepsus~ und ~Serapion~, der schon ein weniger übelriechendes Produkt erhielt. Ein neues Verfahren führte ~Mésue~, der die Bereitung des Wollfettes aus der Hand der Hirten in die der Apotheker legen wollte, im Grabbadin (I, S. 599) ein, das dann das herrschende wurde, z. B. auch in das Dispensatorium ~Nicolai~ (I, S. 790) und in das Luminare majus (I, S. 793) überging. ~Jacobus Sylvius~ verlangt 1542, daß es nicht von räudigen Schafen dargestellt werde, was die Pharmac. coloniensis 1565 wiederholt. Auch ~Heinrich von Mondeville~ reproduziert in seinem Antidotarius die Vorschrift des ~Mésue~. Er bemerkt, daß _Isopus humida_ ein Mittelding zwischen Salbe und Pflaster sei. In der Zeit der Renaissance, als der Arabismus bekämpft und die Alten «wiederhergestellt» wurden, grub ~Cordus~ die Vorschrift des ~Dioskurides~ wieder aus und ihm folgt der Ricettario fiorentino (I, S. 793), die Kölnische Pharmacopoee (1565) und die Pharmac. augustana (1640) in ihren verschiedenen Ausgaben (I, S. 793). Als legitimes Quid pro quo tritt hier Knochenmark, _medulla vitulina_ und _cervina_ auf, die später ganz allgemein als Succedanea dafür angegeben wurden, denn keine der späteren amtlichen Pharmacopoeen führte mehr eine Bereitungsvorschrift für _Oesypum_ auf. Wohl aber hat die ~Schröder~sche Pharmacopoee (I, S. 890) bis in ihre spätesten Auflagen (1748) noch die Vorschrift des ~Dioskurides~ mit wenigen Abweichungen. Die Vorschrift, daß man die Schafe vorher abhetzen solle, wohl um die Ausbeute zu vermehren, steht schon im Antidotarium romanum aus dem XVI. Jahrh. und ging in die Pharmac. augustana und londinensis über. Aber im XVII. und XVIII. Jahrh. verschwinden allmählich diese schmierigen Präparate aus den Pharmacopoeen und Arzneibüchern, da sich das Präparat immer mehr verschlechterte und die Bereitung in der Apotheke zu viel Mühe machte, und erst die Pharmacop. hispanica III 1803 kennt wieder eine Oesypi purificatio und die von 1817 benutzt einen _Oesypus praeparatus_. Als Handelsware scheint _Oesypum_ schon im Altertum zur Zeit des ~Dioskurides~ einen großen Verbreitungsbezirk gehabt zu haben (~Husemann~). Es diente nach ~Plinius~ unzähligen Zwecken und war ein auch von ~Celsus~, ~Galen~ und später auch im Mittelalter (~Aëtius~, ~Paulus von Aegina~) viel benutztes Medikament (besonders für Pflaster, Salben und Pessi) und Cosmeticum trotz seines abscheulichen Geruches. Das beste Wollfett lieferte Attica. Als Verfälschungen wird neben Wachssalbe und Talg auch Teig genannt. Es gab aber sogar Ersatzmittel aus Colophonium, Wachs und Fichtenharz. Im Mittelalter wurde es jedenfalls nicht in den Apotheken gemacht, sondern von den «herbatici» bezogen. Ende des XVII. und Anfang des XVIII. Jahrh. wurde Wollfett in Frankreich in größerem Stil produziert und exportiert (~Valentini~, Hist. simpl., ~Pomet~, Hist. d. drog.). Für das Verschwinden des Wollfettes aus den Arzneivorschriften ist wohl der Protest ~Zwelfes~ in der Pharmac. august. reform. 1652 gegen dies stinkende Präparat maßgebend gewesen (~Husemann~). Erst nach der Mitte des XIX. Jahrh. wurde, nachdem die Aufmerksamkeit durch ~Chevreul~ (1856) und ~Berthelot~ (1858), später auch durch ~E. Schulze~ auf die Cholesterine des Wollfettes gelenkt war, die technische Gewinnung desselben durch die Arbeiten von ~Vohl~, Abscheidung und Benutzung der Fette aus den Seifenwässern der Tuch- und Wollwarenfabriken. Dingl. Polyt. Journ. 185 [1867], 465 und ~Hartmann~, Über den Fettschweiß der Schafwolle. Diss. Göttingen 1868 eingeleitet. Die Tatsache, daß Wollfett beim Verreiben mit Wasser weiß wird, war schon den Alten bekannt, wurde aber nur als Identitätsreaktion benutzt (~Th. Husemann~). Das Verdienst ~Liebreichs~ ist es, 1885 gezeigt zu haben, daß das durch Wasseraufnahme in Lanolin verwandelte, entsprechend +gereinigte+, völlig neutrale, seifenfreie Wollfett eine vorzügliche Salbengrundlage ist. Dargestellt wurde aber wasserhaltiges Wollfett (Lanolin) zuerst 1882 durch ~Braun~. Der «Wollfettkrieg» tobte 1894 und 1895 (vgl. d. Jahresberichte). Jetzt ist das Lanolinpatent erloschen und auch das Wort Freizeichen. Nach dem Verfahren von ~Dioskurides~ und ~Mesuë~ wird niemals ein gutes reines Wollfett, sondern stets ein übelriechendes Produkt von geringem Werte erhalten. Die besonders durch ~B. Jaffé~ und ~Darmstädter~ in Martinikenfelde und die Norddeutsche Wollkämmerei in Delmenhorst-Bremen ausgearbeiteten verbesserten neuen Fabrikationsverfahren bedeuten einen großen Fortschritt; ohne sie wäre das Wollfett niemals aus seiner Vergessenheit gezogen worden. ~Beckurts~ bezeichnete aber die +Patentierung+ der Vermischung von Wollfett mit Wasser als einen Eingriff in pharmazeutische Rechte. Die Gewinnung von Potasche aus Wollschweiß erfanden ~Maumené~ und ~Rogelet~ (1859) und ~H. Fischer~ (vgl. ~F. Fischer~, Dingl. polyt. Journ. 218, 484). Die erste Anregung dazu gaben ~Kurrer~ und ~Westrumb~ 1831. =Lit.= ~Liebreich~, Brit. Med. Journ. 1896. -- ~Wulfsberg~, Geschichtl. Not. über Oesypum. Therapeut. Monatsh. 1887. -- ~Vulpius~, Zur Gesch. d. Lanolins. Arch. Pharm. 1888. -- ~Th. Husemann~, Zur Vorgeschichte des Lanolins. Janus 1897 (ausführliche Darstellung). b) Insektenwachse. Eine große Zahl niederer Tiere, besonders Insekten, besitzen die Fähigkeit, wachsartige Substanzen auszuscheiden (häufig neben Zucker). Bisweilen sind die Ausscheidungen so beträchtlich, daß sie in größerer Menge gewonnen werden können. So entstammt das im Schellack (s. d.) enthaltene Wachs zweifellos dem Tier und auch das chinesische Wachs ist ein Insektenwachs. Besonders sind wachsausscheidend die zu den Hymenopteren gehörenden Apiden (Immen), zu denen die Bienen (Apinae), Hummeln (Bombinae), die Trigonae und Meliponae gehören. Ferner sind wachsausscheidend von den Hemipteren die Cicaden (z. B. _Cicada laternina_) und die Wachsschildläuse (z. B. _Coccus ceriferus_), die Blutlaus u. and. Die Hauptbestandteile dieser Wachse sind schwer verseifbare Ester der höheren Fettsäuren (Wachssäuren) mit einwertigen Alkoholen mit hohem Kohlenstoffgehalt (Wachsalkoholen, s. oben S. 548). Oft treten homologe Glieder der Reihe nebeneinander auf und daneben Kohlenwasserstoffe. =Lit.= betr. Insektenwachs zusammengestellt bei ~Fürth~, Vergleichend. Chem. Phys. d. nied. Tiere 1903 und ~Pillier~, Hist. nat. et chim. des cires d’insectes. Thèse Paris. Cera Flava. Cera citrina, Bienenwachs, gelbes Wachs, cire d’abeilles, cire jaune, beeswax, yellowwax. =Etym.= +Wachs+ (mhd.) -- +ahd.+ wahs, +anord.+ vax, +angels.+ weahs, +engl.+ wax, ndl. vaas. Der Zusammenhang mit wabe ist unsicher (~Kluge~). ~Schrader~ stellt die Gleichung auf: gr. κηρός, lat. cêra, lit. koris, ahd. wahs (altsl. voskû, lit. waszkas). -- Wachs heißt ägyptisch: mnḥ (die hieroglyphischen Zeichen I, S. 470). -- Propolis = Vorstadt, hier wohl = Vorbau, da man früher von der (irrigen) Ansicht ausging, daß die Bienen zuerst die Propolis auf die Wand streichen und daran die Waben befestigen (~Küstenmacher~). =Stammtier.= Das gewöhnliche Bienenwachs stammt von der Hymenoptere =Apis mellifica= L. (_A. mellifera_, _cerifera_, _domestica_, _gregaria_) und deren Rassen und Varietäten. Von _A. mellifica_ unterscheidet man gewöhnlich 6 Rassen: 1. die +einfarbig dunkle deutsche+ Biene (_A. mellifica_ im engeren Sinne) im nördlichen Europa bis 61° n. B., in Mitteleuropa und einigen Gegenden Südeuropas und Nordafrikas. Hierher gehört auch die griechische oder Hymettusbiene (_A. Cecropia_). 2. Die +bunte südeuropäische+ mit gelbem ersten Hinterleibssegment in Südfrankreich und Westasien. Hierher gehört die norditalienische Biene (_A. ligustica_), die 1853 in Deutschland eingeführt wurde. 3. Die +gebänderte ägyptische+ Biene (_A. fasciata_) in Ägypten, Arabien, Syrien, Himalaya, China, 1864 in Deutschland eingeführt. 4. Die +afrikanische Biene+ (_A. Adansonii_) mit graugelber Behaarung, in Afrika bis zum Kap, nicht in Nordafrika. 5. Die schwarze +madagassische+ Biene (_A. unicolor_) in Madagaskar und Mauritius. 6. Die amerikanische (_A. pallida_). Die Rassen können sich untereinander paaren. Sie zerfallen wieder in Varietäten. Von der deutschen unterscheidet man z. B. die Lüneburger Heidebiene, die krainische, die niederösterreichische. Das britisch-indische beeswax stammt von _Apis dorsata_ ~Fabr.~, _A. indica_ ~Fabr.~, _A. florea_ ~Fabr.~ und _Melipona_- (_Trigona_)arten (~Hooper~). _A. dorsata_ und _florea_ sind beide wildlebend und nicht domestizierbar. Auch von anderen Bienen, besonders wilden, wird da und dort (z. B. in Niederl. Indien, in Guadeloupe u. and.) Wachs gewonnen. Die +Arbeitsbienen+ sind geschlechtlich funktionslos gewordene Weibchen. Die +Drohnen+ (von Dröhnen, Summen) sind männlich, die +Königin+ (Weisel, wohl eigentlich Weiser) weiblich -- ausschließlich «Eierlegmaschine». Ein mittelstarkes Bienenvolk hat etwa 30000 (kleinere 12-24000, starke 70-100000) Arbeiterinnen, 2000 (kleinere 600-1000) Drohnen und eine Königin. Die Arbeiterinnen bauen die Waben, pflegen die Eier, füttern die Brut, die Drohnen sowie die Königin, deckeln die vor der Verpuppung stehenden Larven und helfen den ausschlüpfenden jungen Bienen beim Verlassen der Zellen. Sie allein fliegen auf «Tracht», d. h. sammeln Nektar, Pollen, Wasser und Propolis und speichern Honig, Pollen und Propolis im Wachsbau auf. Letztere werden im Körbchen eingebracht. Das «Körbchen» ist eine Mulde auf der Außenseite der Hinterschienen, von langen Wimperhaaren umstellt, in das die Arbeitsbiene bei ihren Blütenbesuchen den Pollen, beim Sammeln an harzenden Pflanzen das Kittwachs zu einem Klümpchen, dem «+Höschen+» zusammenstreicht. Es fehlt der Königin und Drohne, die auch keine «Zange» zum Abnehmen der Wachsblättchen besitzen. Die +Pollenhöschen+, die oft aus verschiedenen Pollenarten bestehen, werden von der Arbeiterin von den Hinterbeinen in eine Arbeiterzelle abgestreift, bis diese gefüllt ist. Die Masse wird mit dem Kopf festgestampft und bisweilen mit Honig übergossen. «Der Bedarf an Blütenstaub erreicht nicht den Verbrauch an Honig. Immerhin scheint der Instinkt, ihn +über+ Bedarf zu sammeln wie den Honig auch den Bienen volksgesunder Stöcke nicht zu fehlen» (~Stadler~). Jüngere Trachtbienen sammeln in der ersten Zeit ihrer Ausflüge vorwiegend Pollen. Auch sonst bringt die Arbeiterin bald entweder Pollen oder Nektar heim. Den Pollen führt die Biene mit den Oberkiefern der Mundöffnung zu. Die Arbeiterinnen säubern auch den Stock von Kranken und Toten, verteidigen den Bau mit ihren Kiefern gegen Eindringlinge und ventilieren den Bau mit ihren Flügeln. Sie arbeiten sich so ab, daß sie nicht länger als 6 Wochen leben. Nur die im Herbst ausschlüpfenden, überwinternden gehen erst während der Frühjahrsarbeit ein. Die etwa 3 Monate alt werdenden +Drohnen+ beteiligen sich nicht an den Arbeiten des Stockes. Eine Drohne befruchtet im «Hochzeitsflug» die Königin. Nachdem die Haupttracht vorüber, werden die Drohnen von den Arbeitern aus dem Bau entfernt (Drohnenschlacht). Eine +Königin+ kann zur Zeit der Haupttracht in 24 Stunden 2000-3500 Eier ablegen, in 4-5 Jahren (so alt kann sie werden) viele hunderttausende. Doch legt sie stets nur je ein Ei in je eine Zelle. In Arbeiter- und Weiselzellen legt sie befruchtete, in Drohnenzellen unbefruchtete Eier, die sich aber parthenogenetisch entwickeln. =Lit.= ~Schmiedeknecht~, Apidae europaeae 1882-86. 2 B. -- ~Cowan~, Die Honigbiene (aus dem Engl.) 1891. -- ~Hess~, Die Feinde der Biene 1887. -- ~v. Berlepsch~, Die Biene und ihre Zucht 1873, und Die Biene nach ihrem jetzigen ration. Standp. (3. Aufl. von Vogel 1891). -- ~Dathe~, Lehrb. d. Bienenzucht. 5. Aufl. 1892. -- ~Witzgall~, Das Buch von der Biene 1906. -- ~Bessler~, Illustr. Lehrb. d. Bienenzucht. Stuttgart 1896. -- ~Beauregard~, Mat. med. zool. 1901. -- ~Kramer-Theiler~, Der schweizerische Bienenvater. 7. Aufl. 1910 (darin auch die Feinde d. B.). -- ~Buttel-Reepen~, Die stammesgeschichtl. Entstehung d. Bienenstaates und: Sind die Bienen Reflexmaschinen? -- ~Forel~, D. Sinnesleben der Insekten. 1910. -- ~Hans Stadler~, Die Biologie d. Biene. 1911. -- ~H. Vogt~, Geometrie u. Ökonomie d. Bienenzelle. 1911. -- Gute Übersicht über die Morphologie der Biene in: ~Zander~, Der Bau der Biene. Stuttgart 1911. -- Viele und gute anatomische und morphologische Details der Biene in ~Snodgrass~, The anatomy of the honey bee. U. S. Dep. Agric. Bur. Entomol. 1910. Bull. No. 18. -- Vgl. auch den Artikel Honig S. 8. =Entstehung.= Aus welchen Stoffen das Wachs in den Bienen gebildet wird wissen wir nicht bestimmt. Die einen (~Liebig~, ~G. Buchner~) nehmen an, daß es aus Kohlehydraten, namentlich Zucker, umgebildet werde -- ~Hanriot~ hat für die Überführung von Hexosen in Wachs Formeln erdacht --, die anderen (~Voit~, ~Berlepsch~), daß Eiweißkörper die Muttersubstanzen sind, noch andere (~Swamerdamm~, ~Maraldi~, ~Réaumur~, ~Hoppe-Seyler~) sind der Ansicht, daß es von den Bienen fertig gebildet aus den Pflanzen aufgenommen und nur in reiner Form abgeschieden werde. Gegen letztere Ansicht spricht, daß Bienen angeblich auch bei wachsfreier (gibt es diese?) Nahrung wenigstens einige Zeit Wachs zu produzieren vermögen (~Schneider~), was freilich schwer zu kontrollieren ist. Immerhin ist zu berücksichtigen, daß das Pollenin (s. S. 472) der Pollenkörner, das dem Korke offenbar sehr nahe steht, jedenfalls wie dieses auch wachsartige Substanzen enthält, die von der Biene verarbeitet und vielleicht einige Zeit gespeichert werden können (~Tschirch~) -- daß Pollenkörner Wachs enthalten wußte schon ~Proust~. Auch sonst kommen die Bienen ja vielfach mit den Wachsüberzügen der Pflanzen in Berührung. Auch gibt zu denken, daß das Bienenwachs und das Pflanzenwachs chemisch sehr nahe verwandt sind (s. Carnaubawachs). Meist wird jetzt das Wachs als ein Produkt der Überernährung der Biene mit Honig und Pollen betrachtet und als aus dem Honig umgebildet (~Huber~ 1793, ~Hunter~). Man hat sogar berechnet, daß für 1 kg Wachswabe 10 kg Honig konsumiert werden müssen und daraus gefolgert, daß der Honigertrag durch den Wachsbau empfindlich geschmälert würde, daher eben künstliche Waben eingesetzt, die aber in erster Linie den Zweck haben, der Biene die volle Ausnutzung der Einsammeltage zur Honigproduktion zu ermöglichen. Zu denken gibt die mir von Imkern hervorgehobene Tatsache, daß die Biene +jederzeit+ zum Wachsbau angeregt werden kann, und daß der Wabenbau außerordentlich rasch erfolgt. Das sieht fast darnach aus, daß sie das Wachs +produziert+. Aber freilich, an Pollen ist ja immer Vorrat vorhanden. Die Biene hat bekanntlich einen eigenen Pollenmagen und speichert auch im Bau Pollen und anderes Wachsmaterial auf. ~Huber~ meint freilich, daß Bienen ausschließlich mit Pollen ernährt, niemals Wachs geben, und daß mit Honig ernährte es reichlich produzierten (~Dumas~ und ~Milne-Edwards~ stimmen dem bei). Aber ~Beauregard~ bemerkt, daß dies doch nicht so viel heißen solle, daß die Wachsmaterialien der Pflanze gar keinen Einfluß auf die Wachsbildung haben und niemals dazu benutzt werden. Er nimmt also einen vermittelnden Standpunkt ein. Ich nehme an (Schweiz. Wochenschr. 1911 Dez.), daß die Hauptquelle des Bienenwachses die von den Pflanzen stammenden Wachssubstanzen sind, aber zu seiner Bildung die Anwesenheit von Honig nötig ist. Wegleitend ist für mich die Tatsache, daß das Bienenwachs ebenso wie das Pflanzenwachs eigenartige Kohlenwasserstoffe enthält, und daß der Biene stets reichliche pflanzliche Wachsquellen (s. oben) zur Verfügung stehen, aus denen sie mit viel geringerem Energieaufwand wie aus Honig allein Wachs bilden kann. Die von ~Hornborstel~ ausgesprochene Ansicht, daß den Bienen zur Wachsbereitung Honig in genügender Menge zur Verfügung stehen müsse, war schon, wie es schien, durch ~Hubers~ Versuche bestätigt worden. ~Gundelach~ (1842), ~v. Berlepsch~ (1854) und ~Dönhoff~ (1861) suchten dann durch zahlreiche Fütterungsversuche den Nachweis zu erbringen, in welchen Gewichtsverhältnissen die gegebenen Honigmengen und die produzierten Wachsmassen stehen. Die Resultate sind aber so verschieden und weichen von denen späterer Beobachter so stark ab, daß sich ein sicheres Urteil nicht abgeben läßt. Der Punkt ist also auch heute noch strittig (vgl. bei ~Dreyling~ a. a. O.). Wenn ich oben als möglich bezeichnet habe, daß das Wachs, welches die Biene ausscheidet, vorwiegend den von ihr gesammelten Wachsmaterialien der Pflanze entstammt, so ist das doch selbstverständlich nicht so zu verstehen, daß dies Material einfach so wie es ist wieder ausgeschieden wird. Es passiert den Tierkörper, erleidet hier (mit Ausnahme der Kohlenwasserstoffe) eine Umbildung und wird dann in veränderter Form von den Wachsdrüsen abgeschieden. Ich stütze mich hierbei unter anderem auch auf die Tatsache, daß wir Cerotinsäure und Melissylalkohol sowie Kohlenwasserstoffe sowohl in Pflanzenwachsen wie im Bienenwachs finden und daß z. B. der in Pflanzenwachsen gefundene Myricylalkohol völlig identisch ist mit dem aus Bienenwachs isolierten. 18-24 Stunden nach der Aufnahme der Nahrung, die in dem zuckerhaltigen Nektar und dem Pollen der besuchten Blüten besteht, erfolgt bei den Arbeitsbienen an den vier letzten Bauchringen, den sog. «Spiegeln», die den Drohnen fehlen, und zwar in der sog. Wachsmembran, einer Schicht epithelialer Zellen, welche zwischen der Cuticula und der inneren membranösen Auskleidung der Bauchsegmente liegen (~Carlet~), die Ausscheidung des Wachses in Form kleiner länglich-runder Lamellen, von denen acht etwa 0,0015 wiegen (~Dumas~). Aus diesen bauen die Arbeitsbienen die sechseckigen Zellen in die sie dann den aus dem Nektar gebildeten Honig (s. S. 9) entleeren, «erbrechen». ~Dreyling~ faßt seine Untersuchungen über die wachsbereitenden Organe der gesellig lebenden Bienen (1905), wie folgt, zusammen: «Die Arbeiterinnen der Honigbiene scheiden das Wachs durch besonders ausgebildete Drüsen («Hautdrüsen») an den vier letzten Ventralplatten des Abdomens aus. Die Anlagen der Wachsdrüsen sind bereits im Puppenstadium sichtbar, erreichen bei der ausgebildeten Biene einen gewissen Höhepunkt und degenerieren mit zunehmendem Alter allmählich. Die Sekretionsfähigkeit der Wachsdrüsen hängt mit dem Bau derselben innig zusammen. Das Wachs gelangt durch die Poren auf die Außenseite des Spiegels, wo es sich in Form kleiner Plättchen ablagert.» Die Wachsdrüsen (Fig. 230) zeigen eine auffallende Ähnlichkeit mit den Drüsenflecken der Pflanzen, z. B. bei _Capsicum_ (~Tschirch~). Die Wachsdrüsen bringen also nur eine gewisse Zeit das Wachs hervor. Sie sind bei den jüngsten Bienen noch nicht ausgebildet, bei Trachtbienen schon wieder zurückgebildet. «Das «Wachsschwitzen» liegt also einer bestimmten Altersklasse der weiblichen Bienen ob, einer Altersklasse, die noch nicht auf Tracht ausfliegt, sondern noch zu den Stockbienen gehört.» «Beim Bau der Waben ziehen die Bienen mit den Hinterfüßen sich selbst oder (meist) anderen Bienen die Wachsblättchen aus den Bauchringen hervor, zerkauen und bespeicheln sie und bringen sie dort an, wo sie eine Wabe beginnen oder weiterführen wollen.» Um die für die Wachsbildung nötige Temperatur (c. 35°) zu erzielen, legen sich die Bienen in einem Haufen übereinander. Der Wabenbau erfolgt besonders im Frühling (Mai, Juni). Die neugebauten Waben sind schneeweiß, sie werden aber bald gelblich. Der Honig wird in verlängerte Arbeiter- und Drohnenzellen entleert. «Bei einem Schwarm mit noch unbefruchteter Königin bauen die Bienen zarte weiße Waben in der Farbe, wie sie das Wachs an den Bauchdrüsen ausschwitzen, das sog. Jungfernwachs, und erst, wenn die Befruchtung der Königin gelungen und Brut eingeschlagen wird, fangen die Waben an sich zu färben» (~Küstenmacher~). [Illustration: Fig. 230. +Wachsbildung bei der Honigbiene.+ 1 Sagittalschnitt durch das Abdomen bei den vier hinteren Ringen (R) mit den Wachsdrüsen (wdr). 2 Wachsdrüse stärker vergrößert. 3 Teil einer Wachsdrüse stark vergrößert. Die subcuticulare Wachsbildung (w) ist deutlich. [Nach +Dreyling+.]] [Illustration: Fig. 231. Zwei Waben mit einer Wabengasse dazwischen, die unten im Brutraum (b) zwei, oben im Honigbogen (h) einer Biene Raum gibt. [Nach +Stadler+.]] [Illustration: Fig 232. Die Biene bei der Arbeit; rechts oben gedeckelte Zellen, unten eine Königinzelle.] [Illustration: Fig. 233. Oben: Honigbogen (Halbkreis). Mitte: Geschlossene Arbeiterbrut (oben offen, die Hauptmasse gedeckelt). Unten: Drohnenbrut, zumeist offen. [Aus +Stadler+, Biologie der Biene.]] Der +Bau der Wachswaben+ beginnt an der Decke. Zunächst wird eine Vertikalwand gezogen. Bei den in dichten Guirlanden von der Decke hängenden Arbeiterinnen nimmt die vorderste von ihren Bauchschuppen ein Wachsplättchen ums andere in die Wachszangen ihrer Hinterbeine und von hier in die Klauen der Vorderbeine, erfaßt sie mit den Oberkiefern, knetet sie und klebt sie an die Decke. Die ihr zunächst hängende reicht ihr dann mit den Kiefern ihre Wachsschüppchen zu und die erste baut damit weiter. «So wandern durch die ganze Bienenkette die von den einzelnen Tieren geschwitzten Wachslamellen vor zu der vordersten. Da mehrere Ketten gleichzeitig arbeiten, so sind es gewöhnlich auch mehrere Wabenanfänge (3-4), die zu gleicher Zeit aufgeführt werden. Sobald die Fundamente gebaut sind, lösen sich die Ketten auf und es arbeiten von nun ab zahlreiche Bienen zugleich an der Vergrößerung und dem Ausbau der Waben. Dabei ziehen sich die bauenden Arbeiterinnen nun auch gegenseitig mit den Kiefern die Wachsplättchen zwischen den Bauchringen hervor». Die auf die vertikale «Mittelwand» von beiden Seiten her in großer Zahl aufgesetzten «Zellen» sind hohle sechsseitige, mit einer Kante nach unten gerichtete Säulen, die nicht genau horizontal, sondern etwas gegen die Mittelwand geneigt, angelegt werden (Fig. 231), deren Wand etwa 0,1 mm dick ist (gegen die Mittelwand dicker) und die durch einen Deckel verschlossen werden (Fig. 232 u. 233). Der Zellverband ist die Wabe. Zuerst werden immer nur Arbeiterzellen gebaut (Arbeiterwaben, Arbeiterbau) als Brutstätten für die Eier, aus denen Arbeiterinnen hervorgehen, sowie zur Aufnahme von Pollen und Honig. Der größte Teil eines Stockes besteht aus Arbeiterwaben. Die Arbeiterbrutzelle ist etwa 12,5 mm, die als Honigzelle benutzte Arbeiterzelle 5,7-39,5 (meist 16-17) mm tief (lang) und mißt von Wand zu Wand c. 5,16 mm. Sobald das Volk «an Vermehrung denkt», werden auch Drohnenzellen gebaut, die beträchtlich größer sind (6,87 : 18,75 mm) und durch Übergangs-, Flick- oder Schaltzellen angeschlossen werden, sowie schließlich die in beschränkter Zahl (höchstens 30 pro Volk) angelegten, bis 24 mm großen, unregelmäßig eichelförmigen Weiselzellen (Weiselwiege) für die Königin (Fig. 232), in denen die weiblichen Larven erbrütet werden. Ihre Öffnung liegt nach unten. Während die Weiselzelle nur einmal benutzt und ihr Wachs weiter verwendet wird, verleben in den Arbeiter- und Drohnenzellen Dutzende von Generationen ihre Larvenzeit. Die einzelnen Zellenbaue (Waben) stehen in parallelen, durch Wabengassen getrennten Reihen nebeneinander (Fig. 231) -- die Mittelwände fast genau 3,5 cm voneinander entfernt. Sie sind an der Decke und an den Seiten, bisweilen, aber nicht immer, auch unten durch besonders starke, aber fünfeckige «Heftzellen» befestigt. Im modernen Rähmchenbau (Mobilbau) werden die Mittelwände künstlich gezogen (Kunstwabe) und dadurch der Bau regelmäßiger. Die Waben enthalten die Brut, den Honig und den Pollen. Der mittlere Teil des Stockes besteht meist aus Brutwaben, über denen die nur Honig enthaltenden Zellen des «Honigbogens» (Fig. 233) liegen, die Drohnenzellen liegen zu unterst. Sind die Waben hoch genug, so füllt die Biene bisweilen auch in die gleiche Zelle unten Brut und oben Honig. Reine Pollenwaben gibt es für gewöhnlich nicht. Die Honigzellen sind meist «vertiefte», d. h. verlängerte (und bisweilen sehr stark verlängerte) Arbeiterzellen. Alle Honigzellen werden gedeckelt, aber auch die Brut-, Drohnen- und Weiselzellen erhalten meist Deckel. Junger Wabenbau ist sehr zerbrechlich. Er wird erst durch die sich den Wachszellen anschmiegenden Cocons («Nymphenhäutchen») der Larven derber, besonders wenn zahlreiche Larven nacheinander die gleiche Zelle benutzten. Die anfangs weißen Waben sollen sich «infolge der Stockausdünstung» gelb färben. Alte Waben sind fast schwarz. Die Arbeitsbienen entleeren ihren Koth nie im Bau, das tun nur die Drohnen und die Königin. Er wird aber von den Arbeiterinnen entfernt, die überhaupt den ganzen Bau rein halten. Um den Fortpflanzungstrieb der Biene zu beschränken und den Sammeltrieb zu begünstigen, wird jetzt oft der Stock in zwei Abschnitte getrennt, einen +Brutraum+, in welchem die Königin die Eier ablegt, die dann durch die Arbeiterinnen bebrütet werden und einen +Honigraum+, in dem die Arbeiterinnen den Honig ablegen. Beide werden durch ein Absperrgitter getrennt, das so enge Maschen hat, daß nur die Arbeiterinnen, nicht Drohnen und Königin es passieren können. Die im modernen +Mobilbau+, der den alten +Stabilbau+ (die Bienenkörbe usw.) immer mehr verdrängt, in +auswechselbaren+ Rähmchen sich befindenden Honigwaben werden jetzt meist, nachdem sie entdeckelt wurden, in der +Honigschleuder+ zentrifugiert und die entleerten Waben wieder in den Bau gehängt. Dies erspart den Bienen den Bau neuer Wachszellen, konzentriert ihre Arbeit auf die Honigernte, drückt aber natürlich die Wachsproduktion herab. Drei Erfindungen haben die Imkerei unserer Zeit mächtig gefördert: der Mobilbau, die Kunstwabe und die Honigschleuder. =Lit.= +Wachsbildung+: ~Claus~, Über d. wachsbereitenden Hautdrüsen der Insekten. Ges. z. Bef. d. ges. Naturw. Marburg 1867. -- ~Carlet~, Le cire et ses organes sécréteurs. La Naturaliste 1890. -- ~L. Dreyling~, Die wachsbereitenden Organe bei den gesellig lebenden Bienen. Diss. Marburg 1905 (dort auch die ältere Lit.). Der Blütenstaub wird verzehrt oder durchgearbeitet und aufbewahrt und bildet das sog. +Bienenbrot+ oder wird auf +Propolis+ verarbeitet. Außer den genannten Substanzen sammeln die Bienen angeblich besonders von harzausscheidenden Blattknospen der Erlen, Akazien, Pappeln, Roßkastanien, Birken, Eschen, Bisampappel, Mandel, Brombeere, Distel, Männertreu, Lein, Balsamine usw., das Gummiharz der Kolleteren und das Sekret anderer Drüsenhaare und verarbeiten dies zu dem sog. Kleb-, Stopf- oder Vorwachs, der +Propolis+, welches sie zum Verkleben der Löcher, besonders als Schutz gegen Zugluft, wogegen die Bienen sehr empfindlich sind, und zum Einhüllen von in den Stock eingedrungenen Fremdkörpern benutzen. Auch wurde schon oft bemerkt, daß die Bienen an dem Gummifluß der Prunoideen, am Harze des Sägemehls, ja am Peche der Bierfässer nagen (~Dieterich~), das sie dann ebenfalls zu Propolis verarbeiten. Nach der Ansicht ~Küstenmachers~, der richtig bemerkt, daß die Kolleteren der Winterknospen nicht in Betracht kommen können, da sie im Sommer abgeworfen sind, «besteht Propolis aber aus dem Öl resp. Balsam von der Oberfläche der Pollenkörner, dem von den Bienen noch Wachs und als Füllstoff alter Pollen und allerlei Gemüll aus dem Bienenstock in variabler Menge zugesetzt wird». Die Wahrheit liegt vielleicht in der Mitte und die Biene verwendet +alles+ ihr erreichbare harzartige Material. Dafür spricht die außerordentlich unregelmäßige Zusammensetzung der Propolis (~Küstenmacher~ fand z. B. Zimtalkohol und Zimtsäure darin, ~Dieterich~ nicht). Gelegentlich der Entleerung des Honigs aus den Waben, der durch einfaches Auslaufenlassen, oder durch Abpressen, Ausschleudern oder Zentrifugieren geschieht, gewinnt man nun auch als Nebenprodukt das +Wachs+ (Wachsernte). Die entleerten Waben werden in heißem Wasser zusammengeschmolzen und die Masse dann in Formen oder Erdlöcher gegossen. Dieses +Rohwachs+, das mancherlei Verunreinigungen (tote Bienen und deren Teile, Nymphenhäutchen, Pollenkörner, Sand, Staub, Erde, Pflanzenteile usw.) enthält -- besonders die überseeischen Wachse enthalten oft viel Erde -- und in Blöcken (Vergl. I. Fig. 258), Kuchen, Broten oder Stangen im Handel ist, wird in Säcken, Kisten oder Körben versandt. Die Wachsproduktion geht durch Aufgabe des Stabilbetriebs zurück. Das Rohwachs wird durch Umschmelzen mit Wasser über direkter Feuerung oder mit Dampf gereinigt (gereinigtes, geklärtes, geläutertes, raffiniertes Wachs). Das Erhitzen erfolgt meist in Holzfässern mit direktem Dampf, die Masse wird dabei durch Rührwerke gut durchgemischt und dem Wasser meist etwas Schwefelsäure, Salzsäure oder Oxalsäure zugesetzt. Das Ganze wird zum Absetzen der Verunreinigungen lange geschmolzen gehalten. Dann zieht man das obere klare Wachs mittelst Hähnen in Formen ab. Die unteren Partien liefern das Schmutz- oder Kotwachs (Wachskot). Es wird nochmals umgeschmolzen, das Klare abgezogen, die Rückstände mit Stroh geschichtet in Topfpressen ausgepreßt (Preßwachs), die Preßrückstände mit Benzin oder anderen Lösungsmitteln extrahiert (Extraktionswachs). Für pharmazeutische Zwecke ist nur das beste Wachs verwendbar. +Über die Gewinnung des Bienenwachses+ berichtet mir Herr Apotheker ~Wartmann~-Biel (Schweiz), der eine große Bienenzucht (c. 100 Völker) besitzt. «Das wachshaltige Material, das sich bei der Pflege der Bienen und der Gewinnung des Honigs ergibt, kann in zwei Gruppen geteilt werden: 1. die vor dem Ausschleudern der Honigwaben mit scharfem Schnitt abgetrennten Wachsdeckel der Zellen, meist mit etwas Honig vermischt; dann etwaige unregelmäßig ausgeführte unbebrütete, noch weiße Wabenstücke, sowie Wachsteile, die von den Bienen oft zwischen und außer den Rahmen abgelagert sind; 2. die seit kürzerer oder längerer Zeit im Brutnest benutzten Waben, durch die in den Zellen zurückgelassenen Kokonhäutchen dunkel gefärbt. Wenn auch regelmäßig gebaute Waben trotz einer mehrmaligen Bebrütung innert eines Sommers für zehn und mehr Jahre benutzt werden können, so ist eine schrittweise Erneuerung der Brutwaben doch angezeigt, -- wozu dann noch etwaige Bruchstücke kommen. Da das erstgenannte Material zum größten Teil aus Wachs besteht, ist dessen Verarbeitung eine einfachere und wird mit Vorteil unter Mithilfe der Sonnenwärme in dem sog. +Sonnwachsschmelzer+, einem nach oben mit einem gegen die Sonne geneigtem Fenster geschlossenem Holzkasten vorgenommen. Auf ein geneigtes Blech gibt man die Wachsabfälle und infolge der unter dem Fenster entstehenden Wärme (bis zu 70 Grad) fließt das reine Wachs unter Zurücklassung der nichtschmelzbaren Bestandteile in ein untergestelltes Gefäß. Um das Produkt von etwa eingeschlossenem Honig, der mit abgeflossen, zu befreien und das Ganze zu einer gleichmäßig gefärbten Masse zu vereinigen, schmilzt man es am besten in einer Email- oder Messingpfanne unter Zusatz von etwas Wasser auf ganz gelindem Feuer und läßt möglichst langsam erkalten. Etwaige Unreinigkeiten sammeln sich an der unteren Fläche des Kuchens und können davon abgekratzt werden. -- In Ermangelung eines Sonnwachsschmelzers oder der Sonnenstrahlen werden die gleichen Abfälle mit dem mehrfachen Wasser unter Umrühren geschmolzen und durch ein ziemlich dichtes Gewebe geseiht. Auch hier kann nach dem möglichst langsamen Erkalten der Kuchen auf der Unterseite vollends geputzt werden. -- Auf beiden Wegen wird nur verhältnismäßig wenig Rückstand verbleiben. Umständlicher gestaltet sich die Verarbeitung der zweiten Gruppe, da in diesen alten Waben höchstens 20-40 % reines Wachs enthalten ist und zudem in den durch die sich trennenden Kokonbecher zurückgehalten würde, wenn nicht noch in warmem Zustand eine Pressung darauf ausgeübt würde. Dies wird auf nachfolgende Weisen erreicht: Die Wabenstücke werden zerkleinert in einen lockeren Sack eingeschlossen und dieser in einem großen Kessel Wasser unter Beschwerung mit Steinen und Kneten mit einem Stück Holz oder desgleichen erhitzt. Das sich im Laufe der Behandlung auf dem Wasser ansammelnde Wachs kann dann entweder gleich oder erst nach dem Erkalten abgeschöpft werden. [Illustration: Fig. 234. Hölzerne Wachspresse. [Aus +Kramer-Theiler+, Bienenvater.]] Auch wird die Masse offen mit viel Wasser zu einem dünnen Brei erhitzt und möglichst heiß und rasch durch einen Sack gegossen und dieser auf verschiedene Art ausgepreßt. Entweder wird die +Holzpresse+ (Fig. 234) erst mit heißem Wasser vorgewärmt oder man verwendet die sog. +Dampfwachspresse+ (Fig. 235), bei der der Preßraum in einem doppelwandigen Kessel durch Wasserdampf erhitzt wird, während durch die Spindel das Wachs aus der Masse gedrückt wird. -- In allen diesen Fällen ist ein Umschmelzen des ersten Produktes und Trennung von mitgerissenem Bodensatz, wie schon oben erklärt, nötig. Da bei steter Gegenwart von Wasser ein Überhitzen fast unmöglich ist, so lässt das Produkt nichts zu wünschen übrig, sofern jede Benutzung von eisernen Gefäßen vermieden worden ist. -- Einen großen Teil des eigenen Wachses verwendet der Imker wieder für Mittelwände (Kunstwaben), auf welche die Bienen dann nur die Zellen errichten, aber in gewollter Richtung und Größe.» [Illustration: Fig. 235. Andermatts neue Dampfwachspresse. [Aus +Kramer-Theiler+, Bienenvater.]] Die sogenannte +Wachsläuterung+ wird übrigens auf verschiedene Weise betrieben. In Pommern z. B. kocht man die gesammelten Wachsstoffe im Wasser unter stetem Umrühren auf, läßt die Masse aber nicht überkochen, schüttet sie in einen Spitzbeutel von starker Leinwand und preßt diesen auf einer Flachsbrake, die über einem Gefäß mit Wasser steht. Das flüssige Wachs rinnt da hinein und schwimmt auf dem Wasser. Nachdem es erkaltet ist, erhitzt man es nochmals im Wasser, doch nicht bis zum Kochen, und läßt es in dem Gefäße, das oben weiter als unten sein muß, erkalten, hebt die ganze Platte heraus und schneidet die schmutzigen Teile an der unteren Fläche mit einem Messer ab. Statt der Flachsbrake benutzt man auch zwei entsprechend lange, runde Stäbe von etwa 2½ cm Dicke, hängt den Spitzbeutel, nachdem die aufgekochte Wachsmasse hineingeschüttet ist, mit seinem offenen Ende an einen starken Haken, stellt ein Gefäß mit Wasser darunter, nimmt den Beutel zwischen die beiden Stäbe und preßt die Masse aus, indem man die Stäbe fest zusammendrückt und nach unten zieht. Hat man ein größeres Quantum Wachs zu verarbeiten, so bedient man sich einer «Wachspresse», die in verschiedenen Konstruktionen im Handel sind (~Theen~). Das +Bleichen+ geschieht auf eine im Grunde sehr einfache, aber doch umständliche Weise, welche bisher wenig Veränderungen hat zweckmäßig erscheinen lassen. Das in einem Kessel mit etwas kochendem Wasser geschmolzene geläuterte Wachs wird in Form feiner Blättchen gebracht, entweder indem man es in geschmolzenem Zustande auf eine sich langsam drehende und halb in kaltem Wasser gehende Holzwalze laufen läßt, wobei die dadurch entstehenden dünnen Bänder (gebändertes Wachs) sich im Wasser ablösen, oder indem man von der wieder erstarrten Masse mittelst scharfer Messer ganz feine Späne abschneidet. Ehe man das Wachs schneidet, pflegt man es bisweilen einige Male in Wasser umzuschmelzen, um ihm einen gewissen Wassergehalt einzuverleiben. Schließlich kommen die in Siebkörben herausgeschöpften feinen Blätter auf den Bleichplan und unterliegen hier auf mit Tuch überspannten Drahtnetzen der Einwirkung von Sonne und Luft, je nach der Witterung und der Wachsart kürzere oder längere Zeit, jedenfalls so lange, bis der Farbstoff in ihnen zerstört und das Wachs weiß geworden ist. Ein Zusatz von etwas verdünnter englischer Schwefelsäure zu dem schmelzenden Wachse ist für die Bleichung von günstigem Einfluß. Neuerdings wendet man zum Bleichen des Wachses vornehmlich Kalibichromatschwefelsäure unter Zusatz von Oxalsäure und Einleiten von Dampf, seltener Kaliumpermanganat, Chlorkalk, Terpentinöl und Wasserstoffperoxyd an. Das gebleichte Wachs wird meistens in runden Scheiben von 5 mm Dicke ausgegossen (~Theen~). Das Bleichen kann auch mit Walkerde erfolgen, die die färbenden Substanzen aufnimmt (~A. Müller-Jakobi~). Bei der +Rasenbleiche+ wird das geschmolzene Wachs in Wasser gegossen, die dünne Scheibe abgehoben und unter Begießen an der Sonne gebleicht. In Laibach (Krain) beschäftigen sich mehrere Firmen mit dem Bleichen ägyptischen Wachses (G. und ~R. Fritz~). Hauptproduktionsländer sind: In Europa: +Deutschland+ (Bayern, Hessen, Hannover, Norddeutsche Heide, Holstein, Pommern), Krain, Schweden, +Türkei+ (Konstantinopel) und Rumelien, Bosnien, Slavonien, Moldau, Walachei, Rußland (Ukraine, Podolien), +Polen+ (Galizien), +Italien+ (Venetien: Belluno, Mailand, Livorno), +Frankreich+ (Marseille, Languedoc, Somme, Bourgogne, Gatinois, Nord, Alpes, Landes, Bretagne, Normandie, Corsica), +Portugal+, +Spanien+, +Schweiz+. In Asien: Smyrna, +Syrien+ (Beirut, Aleppo, Alexandrette), Palästina, Persien, Singapore, Ceylon, Tonkin, Rangoon, +Vorderindien+ (Bengalen, Panjab, Zentralprov., Bombay, Berar, Madras), Assam, Kashmir, Burma, Tahiti. In Afrika: +Tunis+, +Algier+, +Marocco+ (Mogador, Mazagan), +Sierra Leone+, Gambia, Kamerun, +Senegal+ (Conakry), Angola, +Benguela+, Mossamedes, +Senegambien+ (Bissao), +Deutsch-Ostafrika+, Mozambique, Mombassa, Sansibar, +Madagascar+, +Ägypten+ (Alexandrien, Cairo), +Abyssinien+. In Amerika: Carolina, +Californien+, Mexiko, +Cuba+ (Habana), St. Domingo, Haiti, +Brasilien+, +Argentinien+, +Chile+ (Valparaiso). In Australien: Melbourne, Sidney. Haupthandelsplätze sind Algier, Triest, Wien, Genua, Marseille, Havre, London, Liverpool, Lissabon, Hamburg, Bremen. Auf dem deutschen Markt ist afrikanisches, indisches, madagassisches, ostasiatisches und mittel- und südamerikanisches Wachs. Das Deutsch-Ostafrikanische erfreut sich steigender Beliebtheit. Von einer Gesamteinfuhr von 1421500 kg Wachs nach Hamburg im Jahre 1904 stammten 151000 kg dorther. +Britisch-Indien+ exportierte 1906/07: 8162, 1907/08: 5120, 1908/09: 4671 cwts Beeswax. Von indischen Wachs unterscheidet man Gheddawachs, Tonkin (Cochinchina), Rangoon, Anam. +Deutschland+ importierte 1905: 1737000 kg Bienenwachse, 1904: 18248 dz +Bienenwachs+ (incl. and. Insektenwachs), besonders aus Abyssinien und Madagaskar, dann aus Portugal, Deutsch-Ostafrika, Port. Westafrika, Brasilien, Marocco, Brit. Indien, Cuba, Spanien, Port. Ostafrika. Die +Vereinigten Staaten+ importierten 1908: 672437, 1909: 764895 pounds und exportierten 1908: 90506, 1909: 77547 pounds beeswax. Die Einfuhr von +Bienenwachs+ nach London betrug 1908: 2793, 1909: 1361 bls and srns. und 1908: 3148, 1909: 3583 cks and css. Die guten Wachssorten werden jetzt meist «mit Attest» angeboten. _Cera flava_ ist in Kisten von c. 50 kg, das gebleichte meist in runden Scheiben im Handel. =Eigenschaften.= Die Farbe des Rohwachses differiert ziemlich stark. Sie ist +hellgelb+ bei dem Wachse aus der Türkei, von Smyrna, Jaffa und der Levante, aber auch die chilenischen und Belladi- (ägyptischen) Wachse, die von Benguela, Sassi und die schwedischen und einige deutsche sind relativ hell; +dunkelgelb+ ist im allgemeinen das deutsche, belgische, italienische, marokkanische und kubanische Bienenwachs, +grünlichgelb+ das amerikanische und ostindische, +rotgelb+ einige Sorten des französischen und italienischen. Nur die Wachse von Madagascar und St. Domingo sind dunkelbraun fast schwarz. Die +Farbe+ des Wachses hängt nicht mit der Farbe der Blüten zusammen, sondern wohl mit der der Pollenkörner, besonders der eigenartigen, oft stark gefärbten Massen, die oft den Pollenkörnern anhängen und die z. B. bei _Verbascum_ tief orangerot gefärbt sind (~Tschirch~, vgl. oben S. 21). Auch ~Küstenmacher~ sagt: «Die ausgeschiedene Propolis, der Balsam des Pollens, gibt dem Wachsbau des Biens die Farbe.» Der +Geruch+ ist verschieden. Die europäischen Sorten riechen angenehm honigartig, einige italienische und indische haben einen schwer definierbaren «Blumengeruch», die amerikanischen und afrikanischen riechen oft muffig. Von einem eigenen Geschmack kann man meist nicht sprechen. Beim Kauen klebt es nicht an den Zähnen (Kauprobe, Unterschied von verfälschtem Wachs). Bienenwachs bildet durchscheinende, auf dem Bruche feinkörnige, in der Kälte spröde und brüchige Massen, die in der warmen Hand knetbar werden. Aber die einzelnen Wachssorten sind sehr verschieden hart, manche sogar fast schmierig (Marocco). Sehr hart sind Mozambique-, Haiti-, plastisch (strong) das Gheddawachs. Wachs hat einen hohen Ausdehnungskoeffizienten und brennt, da ihm das Glycerin fehlt, ohne Geruch zu verbreiten, oder beim Auslöschen zu stinken, wie dies bekanntlich die Unschlittkerze tat. Es löst sich in der Wärme in Äther, Benzol, Chloroform, Benzin, Schwefelkohlenstoff und ätherischen Ölen, besonders gut in Tetrachlorkohlenstoff. Bei gewöhnlicher Temperatur löst Äther c. 50%, Chloroform c. 25% (~Buchner~, ~Robineaud~, ~A. Vogel~). In Wasser und kaltem Alkohol ist es nahezu unlöslich. Bienenwachs verändert sich mit der Zeit kaum. Ein aus dem Jahre 1610 stammendes Stück (aus einer Pariser Büste) stimmte mit unserem heutigen Bienenwachs überein (~Pinkus~). Die reine Propolis (Pissoceros des ~Plinius~) ist sehr weich und besitzt große Klebkraft, sie ist stark aromatisch und schmeckt bitter. Die ältere mit Wachs und Gemüll zusammengeknetete Propolis (die Propolis des ~Plinius~) ist dunkler, nicht mehr so stark klebend und unter 15° brüchig. Die ältesten, mehrere Jahre alten äußeren Propolisschichten (Gummigrund, commosis des ~Plinius~) sind sehr fest und spröde, fast schwarz, erst beim Erwärmen riechend (~Küstenmacher~). =Chemie.= ~John~ unterschied das Cerin vom Myricin und ~Bucholz~ und ~Braconnot~ fanden im gelben Wachs 90% Cerin, 8% Myricin und 2% balsamisch-fettigen Stoff. Das Bienenwachs zeigt, gleichviel aus welchem Lande es stammt, ziemlich übereinstimmende Zusammensetzung auch in dem relativen Verhältnis der Bestandteile (nur ostindisches Wachs weicht stärker ab, es enthält mehr Wachsester und bei dem ostafrikanischen ist eine Verschiebung zwischen den verseifbaren und unverseifbaren Anteilen zu beobachten, ~Buchner~). Es besteht vornehmlich aus +Palmitinsäure-+, +Myricyl-+(+Melissyl-+)+ester+ (Myricin ~Brodie~ 1848), C₁₅H₃₁.CO--O.C₃₁H₆₃, und sog. roher +Cerotinsäure+ (Cerin), d. h. Cerotinsäure (C₂₆H₅₂O₂, ~Brodie~ formulierte die Cerotinsäure: C₂₇H₅₄O₂, ~Schalfejew~: C₃₄H₆₈O₂, ~Nafzger~: C₃₀H₆₀O₂ oder C₃₁H₆₂O₂, ~Marie~: C₂₅H₅₀O₂), die 30-40% der Cerotinsäure homologe Säuren enthält (~T. Marie~), sowie +Kohlenwasserstoffen+, von denen das +Heptacosan+ (C₂₇H₅₆, F = 60,5) und das +Hentriacontan+ (C₃₁H₆₄) isoliert wurden (~Schwalb~). Daneben finden sich in geringerer Menge +Melissinsäure+ (C₃₀H₆₀O₂, nach ~Schwalb~: C₃₁H₆₂O₂), +Myricyl-+(+Mellisyl-+)+alkohol+ (C₃₀H₆₂O, nach ~Schwalb~: C₃₁H₆₄O), +Cerylalkohol+ (C₂₆H₅₄O) und ein weiterer Alkohol, sowie ungesättigte Fettsäuren, ferner wahrscheinlich auch zusammengesetzte Äther der Palmitinsäure, vielleicht auch der Stearinsäure und einer der Oxalsäurereihe angehörenden, bei 44° schmelzenden Säure mit Melissylalkohol, Cerylalkohol und vielleicht auch +Cetylalkohol+, C₁₆H₃₄O (~Brodie~, ~Schwalb~, ~Nafzger~, ~Eichel~); endlich auch ungesättigte Säuren, +Farb-+, +Gerb-+ und +Riechstoffe+ und eine +klebrige, aromatisch riechende Substanz+ (Ceroleïn), sowie wahrscheinlich auch Cholesterinester und Spuren von Glyceriden. Das Verhältnis der freien Säuren (bes. Cerotinsäure) zum Myricin ist 14:86 (~Hehner~), der Gehalt an Kohlenwasserstoffen 12,7-13% (~Buisine~, ~Mangold~, 12,5-14,5 ~Kebler~, 12,8-17,35 ~Hett~ und ~Ahrens~, 5-6% ~Schwalb~), der Gehalt an Fettsäuren 46-47%, der Gehalt an unverseifbaren Stoffen (Kohlenwasserstoffen, Alkoholen) 52-55%. ~Hehner~ fand 12,17-15,71% Cerotinsäure und 85,12-92,08% Myricin. Der aromatische Geruch des Wachses rührt von einem unbekannten «Balsam» her. Er kommt Stoffen zu, die teils in Petroläther unlöslich, teils darin löslich sind. Letztere scheinen Ester zu sein, die Essigsäure, Buttersäure und Valeriansäure, sowie eine ungesättigte flüssige Säure, zum Teil gebunden an cholesterinartige Substanzen (Cholesterinester 0,6% ~R. Berg~) enthalten. Das Wachs von Bienen, die viel in Nadelholzwaldungen schwärmen, enthält +Harz+, riecht eigenartig, läßt sich nicht leicht bleichen und hängt beim Schmelzen an den Kesselwänden. Den Farbstoff hält ~Küstenmacher~ für einen Gerbstoff (?), der sich durch Oxydation immer dunkler färbt, so daß die Wabe braun bis schwarz werden kann (aber doch nicht immer wird). Die Farbe variiert oft stark, wie ja auch der an den Pollenkörnern anhaftende Balsam (s. oben S. 766) bald gelb oder gelbgrün, bald orange oder fast rot ist. +Hummelwachs+ (von _Bombus terrestris_) enthält Psyllaalkohol (C₃₃H₆₈O F = 69-69,5), aber keinen Melissylalkohol, keine Cerotin- und Palmitinsäure. Spez. Gewicht: 0,958-0,970, bei deutschem: 0,960-0,966 (~Ahrens~ und ~Hett~); Schmelzpunkt: 62-66,5° (bei deutschem: 63,5-64,5°); Säurezahl: 16,71 bis 22 (bei deutschem: 18,29-20,44), nach ~Hübl~: 19-21, meist 20; Verseifungszahl: 82-103,69 (bei deutschem: 82-97, meist 90-93); Differenzahl (von S.-Z. und V.-Z.) = Ätherzahl: 66,16-81,99 (bei deutschem: 72-77), nach ~Hübl~: 73 bis 76, meist 75; Verhältniszahl (der Säure zu den Estern): 3,02-4,3 (bei deutschem: 3,5-3,9), nach ~Hübl~: 3,6-3,8 -- diese Zahl ist sehr konstant! -- Jodzahl: 6,1-13,01 (bei deutschem: 7,5-8); Buchnerzahl (die in 80proz. Alkohol löslichen Säuren brauchen ccm n/10 KOH): 2-6,1 (bei deutschem: 2,6-3,3 ~Berg~); Kohlenwasserstoffe in %: 12,28-17,3. ~Dieterich~ fand (Helf. Ann. 1904): Spez. Gew. bei 15°: 0,962-0,966, Schmelzp.: 64-65°, S.-Z. d.: 19,6-20,53, E.-Z.: 70,99-77,7, V.-Z. h.: 91,21-98. +Die Zahlen schwanken also bei den Bienenwachsen der ganzen Erde nur in relativ engen Grenzen.+ Das spez. Gew. kann durch die auch von der Pharm. helvet. IV aufgenommene sog. ~Hager~sche Schwimmprobe (Wachstropfen schwimmen in Alkohol bestimmter Konzentration) oder mit der ~Mohr~schen Wage (~Bohrisch~ und ~Richter~) bestimmt werden. ~Kramer~-Zürich teilte mir mit, daß sowohl die Wabe wie der Honig radioaktiv sind. Indisches Gheddawachs zeigte abweichende Zahlen S. Z.: 6,01-6,1, Ä. Z.: 76,11-77,2, V. Z.: 82,12-83,3, Verhältniszahl: 12,1-12,6, Jodzahl: 10 (~G. Buchner~). Das Annam-Bienenwachs ist dem indischen ähnlich (~Bellier~). Es hat eine höhere Jodzahl und enthält weniger freie und mehr gebundene Fettsäuren als europäisches Wachs. Es hat eine hohe Verhältniszahl. Das Ind. Gheddawachs stammt von _Apis dorsata_, _florea_ und _indica_ (s. oben S. 757). Bienenwachs ist nach ~Buchner~ in absol. Alkohol gelöst und mit absolutalkoholischer Kalilauge gekocht in einer Stunde vollständig verseift, nach anderen (~Berg~, ~Bohrisch~) muß man länger, bis 3 Stunden, kochen. Die in 80% Alkohol löslichen freien Wachssäuren bestehen nur zum geringsten Teile aus Cerotinsäure (~R. Berg~). Heißer Alkohol löst alle Cerotinsäure neben geringen Mengen Melissinsäure (Cerin, rohe Cerotinsäure), Farbstoffe, einer klebrigen aromatischen Substanz (Ceroleïn) und Spuren Myricin, die beim Erkalten sich nahezu vollständig wieder abscheiden, so daß bei Zusatz von Wasser zum Filtrat nur leichte Opalescenz eintritt (Unterschied von Stearinsäure). Mit 300 Teilen Alkohol (90%) am Rückflußkühler gekocht löst sich das Wachs bis auf die Verunreinigungen (0,6-1,5%) auf. In kalten Äther geht viel Cerotinsäure, die Farbstoffe, die Kohlenwasserstoffe, ein wenig Wachsester und das Cerolëin, als weißer Rückstand bleibt die Hauptmenge der Wachsester und etwas Cerotinsäure (~G. Buchner~). +Man muß das Wachs in Porzellan oder Email schmelzen, da die Gerbstoffe, die in ihm enthalten sind, mit Eisen mißfarbige Verbindungen geben.+ Das Bleichen, das entweder in sog. Luftbleiche (Rasenbleiche) oder in chemischer Bleiche (s. oben S. 764), oder mit Tierkohle erfolgt, verändert das Wachs mehr oder weniger stark (am wenigsten die Behandlung mit Kohle), die Jodzahl sinkt, Säurezahl und Verseifungszahl steigen meist, ohne daß sich jedoch eine Gesetzmäßigkeit erkennen läßt und daß die Differenzen immer groß sind. Beim Bleichen werden die Farbstoffe und die aromatischen Substanzen zerstört bzw. in Petroläther lösliche Stoffe umgewandelt. =Lit.= ~Senebier~, Physiol. végét. 2, 424 (1800). Dort die älteste Lit. -- +Ältere+: ~John~ (Analys. d. Wachs. d. Beeren von Myrica cordifolia nebst Betracht. über d. Wachs überhaupt). Chem. Schrift. IV, 38. -- ~Saussure~, Ann. chim. phys. (2) 13, 339 (1820). -- ~Boudet~ u. ~Boissenot~, Dingl. Pol. Journ. 1827, 23, 524. -- ~Oppermann~, Ebenda (2) 49, 240 (1832). -- ~Hess~, Pogg. Ann. 43 (1838), 382; Journ. pr. Chem. 13, 411. -- ~Mulder~, Journ. pr. Chem. 32, 172 (1844). -- ~Collins Brodie~, Lieb. Ann. 67 (1848), 180; 71 (1849), 144 (Hauptarbeit). -- ~Lewy~, Dingl. Pol. Journ. 1845, 36. -- ~Gerhards~, Ebenda 1845, 36, 82. -- ~Thomson~, in Syst. d. Chem. IV. -- ~J. Bostock~, Vgl. Vers. u. Beobacht. über d. Wachs aus d. Früchten d. Wachsbaums (Myrica cerif.), das Bienenwachs, den Walrat, das Fettwachs u. d. krist. Substanz aus d. Gallensteinen. Nicholsons Journ. nat. Philos. IV u. N. allg. Journ. d. Chem. VI, 645. +Neuere+: ~Georg Buchner~ in ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. -- ~v. Fürth~, Vgl. chem. Physiol. d. nieder. Tiere 1903. -- ~Chateau~, Fette u. Wachsarten. Leipzig 1864. -- ~Schalfejeff~, Journ. d. russ. chem. Ges. 2, 113; Ber. d. chem. Ges. 1876, 278. -- ~Nafzger~, Lieb. Ann. 224, 225. -- ~Schwalb~, Ebenda 235, 106. -- ~T. Marie~, Extrait. d. acid. libr. d. l. cire d’abeilles; Compt. rend. 119, 428, Journ. Pharm. Chim. [3] 30, 199; Journ. Soc. Chem. Ind. 1894, 1895, 1896; Ann. chim. phys. 1896, 145; Bull. soc. chim. 11, 908 u. 15, 565. -- ~Henriques~, Ber. d. chem. Ges. 1897, 1415. -- ~Jirmann~, Hochmolekulare Kohlenw. aus Bienenwachs. Diss. Heidelberg 1899. -- ~Bohrisch~ und ~Richter~, Pharm. Centralh. 1906, 11 u. 208. -- ~Bohrisch~, Chem. Zeit. 1907, 191 u. 351. -- ~G. Buchner~, Chem. Zeit. 1907, 45, 126, 271, 570 u. 631; Zeitschr. öffentl. Chem. 3, 570 (1897) und 1910, 128. -- ~Berg~, Chem. Zeit. 1907, 537, 1908, 777. -- ~Buisine~, Trav. et Mém. d. facult. Lille 1891. Bull. soc. chim. 5, 654. -- ~Mangold~, Chem. Zeit. 1891, 799. ~Sundwik~ (Hummelw.), Journ. phys. Chem. 1907, 365. -- ~Mederer~ (Maroccan. W.), Zeitschr. öffentl. Chem. 1898. -- ~Bertainchaud~ u. ~Marcille~, Monit. scient. 12, 533 (Pharm. Zeit. 1898, 864). -- ~Blits~ (Schwarz. Wachs aus Holl. Ind.) Nederl. Tijdschr. 1898. -- Über indische Wachse: ~Hooper~, Sources, prepar., trade and composit. of beeswax of Brit. India. Agric. Ledger 1904. Entom. ser. No. 11. Chronolog. geordnete Bibliographie. Journ. soc. chem. ind. 1892, 756 und ~Buchner~ in ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. -- Über die Fortschritte der Wachsindustrie berichtet die Seifensiederzeitung, die Chem. Revue der Fett- und Harzindustr. und die Bienenzeitung. =Propolis= (s. S. 762). ~Vauquelin~ fand in Propolis 57% Harz, 14% Wachs und 15% einer Säure, die nach ~Cadet~ Gallussäure mit etwas Benzoesäure (?) sein soll. ~Laugier~ erwähnt ein ätherisches Öl. ~Greshoff~ und ~Sack~ bezeichnen die Propolis als ein Gemisch von Harz (84%), Wachs (12%) und Unreinheiten, unlöslich in Alkohol (4%). Im Wachs fanden sie Cerotinsäure, dem Propolisharz geben sie die Formel C₂₆H₂₆O₃ (F = 66°). Propolis ergab bei jeder Analyse andere Resultate. Sie zeigt stark abweichende Zusammensetzung. ~Bohrisch~ fand in %: Harz, unlöslich in heißem Petroläther, löslich in 96% Alkohol: 43,6, Propolisbalsam, in heißem Petroläther und 70% Alkohol löslich: 8,7, Bienenwachs: 27,9, Verunreinigungen: 12,9, flüchtige Bestandteile (incl. Wasser): 6,9. ~Küstenmacher~ fand in von den Ammen erbrochener Propolis (Pissoceros) in %: Pollen, Spuren Wachs, 95 roten Balsam, darin 10% Zimtalkohol; in selbst gesammelter Propolis: 5-18 feste Körper, 22-35 Wachs, 60 Balsam, darin 9-10,7%, Zimtalkohol; in selbst gesammelter commosis: 20 Wachs, 73 Balsam, darin 9,5% Zimtalkohol; in Propolissorten aus Thüringen und Posen: 14,7-15,2 feste Körper, 6,6-9,6 Wachs A, 1-3,64 Wachs B, 4,8-21,3 Wachs C, 4,4-5,6 Ceresin D, 3,1-7,3 Zimtalkohol, 2-2,2 Gerbstoffe, 46,8-51,4 Harze. Auch Zimtsäure wurde von ~Küstenmacher~ in der Propolis gefunden, doch fehlen Analysen der isolierten Substanzen. ~Dieterich~ fand in selbst gesammelter Propolis 65% Harz (in Handelsware bis 44%), c. 3% Balsam, 45% Wachs (in Handelsware über 60%), bis 2% Asche und 5-6% wässriges Extrakt, und bei einer eingehenderen Untersuchung in %: Wachs bis 60, unlösliche Anteile bis 22, bei 100° flüchtige Anteile bis 6, Propolisbalsam (nach ~Bohrisch~) bis 11, Vanillin und andere Aldehyde ganz geringe Mengen (im Balsam), Gummi wenig, Propolisrohharz (F = 90-106°) bis 65. Das Propolisharz bestand aus Gerbstoffen c. 20, Proporesen 1,5, α-Proporesin (F = 182-187°) c. 1, β-Proporesin (F = 124-125°) c. 4, freie Harzsäure Spuren, Reinharz c. 70 (wahrscheinlich der Resinotannolester der Propolisharzsäure), Oxydationsprodukte der Gerbstoffe c. 3,5%. Propolis wird noch jetzt zu Räucherungs- und Aromatisierungszwecken benutzt. Es ist aber kaum im Handel anzutreffen. =Lit.= (Propolis) ~Gale~, Agric. Gaz. N. S. W. 1901, 840. -- ~Root~, A B C of Bee culture 1901. -- ~Van Tricht~, Scheikund. Woordenb. 1865. -- ~Greshoff~ u. ~Sack~, Contribut à la connaissance du propolis (matière précieuse). Rev. tr. chim. P. B. 22 und Pharm. Weekbl. 1902, 933. -- ~K. Dieterich~, Anal. d. Bienenw. in s. verschied. Entwicklungsstad. u. über d. Bienenharz. Chem. Zeit. 1907, 987 (Apoth. Zeit. 1907, 824) und Beitr. z. Kenntn. d. Bienenharzes. Apoth. Zeit. 1910, 762 u. Weit. Beitr. z. Kenntn. d. Bienenharzes. Pharm. Centralh. 1911, Nr. 39. -- ~Bohrisch~, Propolis, Pharm. Centralh. 1907, 929. -- ~Küstenmacher~, Propolis. Ber. d. pharm. Ges. 1911, 65. =Verfälschungen und Prüfung.= Als Verfälschungen des Bienenwachses sind neben Wasser und mineralischen Substanzen, Mehl und Stärke, Talg, Japanwachs, Stearinsäure, Paraffin, Ceresin, Colophonium, Carnaubawachs und Insektenwachs beobachtet. In Indien wird das Wachs bisweilen mit Curcuma gefärbt (~Hooper~). Die häufigste Beimengung ist jetzt Ceresin, das dadurch hineingelangt, daß man in neuerer Zeit bisweilen künstliche, aus Ceresin oder Ceresin und Wachs hergestellte Waben verwendet. Die Schweizer Imker halten aber darauf, daß nur künstliche Waben aus Bienenwachs verwendet werden (~Kramer~). Übrigens nimmt die Biene reine Ceresinwaben nicht an, sondern baut daneben. Die Methode von ~Buisine~ (mit Kalikalk) erlaubt die dem Wachs zugesetzten Kohlenwasserstoffe direkt zu bestimmen. ~Hübl~ bemerkt: Wenn die Verseifungszahl unter 92 liegt, während die Verhältniszahl (s. oben) mit der eines reinen Bienenwachses übereinstimmt, dann muß Paraffin oder Ceresin vorhanden sein. Wenn die Verhältniszahl größer ist als 3,2, dann muß ein Zusatz von Japantalg, Carnaubawachs oder Talg vermutet werden. Wenn die Säurezahl weit unter 20 liegt, dann fehlt Japantalg, wenn jedoch die Verhältniszahl unter 3,8 liegt, dann ist Stearinsäure oder Kolophonium anwesend. Zusatz von Carnaubawachs drückt die Säurezahl herab und erhöht Spez. Gew. und Schmelzpunkt. =Lit.= Über +Wachsfälschung und Wachsuntersuchung+ existiert eine ganze Literatur, vgl. in ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O., ~Lewkowitsch~ a. a. O. und ~Dieterich~, Helf. Ann. -- Ferner: ~Niederstadt~, Pharm. Zeit. 1897, 654. -- ~Henriques~, Zeitschr. öffentl. Chem. 1897. -- ~Schweissinger~, Pharm. Centralh. 1897. -- ~Lemaire~, Rep. d. pharm. 1904. -- ~Eichhorn~, Zeitschr. anal. Chem. 1900. -- ~Buchner~, Chem. Zeit. 19 (1895), 1422, 25, 21, 31, 126 u. 570. -- ~Ragnar-Berg~, Chem. Zeit. 1907, 537 u. 1908, 777. -- ~Buisine~, Monit. scient. 1890, 1127. -- ~Bellier~ (Annam-W.). Ann. Chim. anal. 1906, 366. -- ~Geiger~ (Jodzahl). Zeitschr. angew. Chem. 1898. -- ~Hirschel~ (Extraktionsw.). Chem. Zeit. 1904. -- ~Ahrens~ und ~Hett~ (Kohlenwasserst). Pharm. Zeit. 1899, 242. -- ~Le Sueur~ und ~Crossley~ (Schmelzp.). Zeitschr. angew. Chem. 1899. -- ~Rakusin~ (spez. Gew.). Chem. Zeit. 1905. -- ~Hehner~, Analyst 1883, 16. -- ~Hübl~, Dingl. polyt. Journ. 219 (1883), 338. -- Bestimmung der Säure- und Verseifungszahl aus neuerer Zeit: ~Ragnar Berg~, Apoth. Zeit. 1910, 784. -- ~C. Jacobsen~, Ebenda 1910, 113. Vgl. auch die Chem. Revue der Fett- und Harzindustrie und die Seifensiederzeitung. [Illustration: Fig. 236. Die Zweige des Wax tree (_Fraxinus chinensis_) mit Wachs bedeckt, unten das Wachsinsekt (_Coccus ceriferus_). [Nach +Hanbury+, Science papers.]] =Geschichte.= «Eigentliche Bienenzucht ist erst nach Trennung des indogermanischen Urvolkes aufgekommen, im Norden Europas die wilde Waldbienenzucht an Zeidelbäumen, im Süden die zahme Bienenzucht in Bienenstöcken, die dann allmählich auch nach Norden vorgedrungen ist» (~Schrader~). ~Homer~ hat noch keine Spur davon, erst bei ~Hesiod~ werden Bienenkörbe erwähnt. Im Norden ist die Waldbienenzucht sehr alt. (Über Biene und Honig vergl. oben S. 8 u. 757 und ~Schrader~, Reallex. d. indogerm. Altertumsk.) In Amerika wurde in der präkolumbischen Zeit Wachs und Honig nur von den verwandten Gattungen _Trigona_ und _Melipona_ gesammelt. Nach Mexiko kam die europäische Biene bald nach der Eroberung, nach Nordamerika von England aus, 1764 kam sie nach Cuba, 1793 nach New York, 1797 nach den Gegenden westlich vom Mississippi, aber erst 1845 nach Brasilien. Jetzt hat sich die deutsche Biene über ganz Süd- und Nordamerika verbreitet und auch die italienische und ägyptische Biene (s. oben) ist von Deutschland aus hinüber gebracht worden. Nach Australien kam die Biene 1862 von England aus. ~Dioskurides~ (II, c. 105) bezeichnet als das beste Wachs (κηρός) das von Creta und dem Pontus. Er beschreibt das Bleichen durch Auskochen des Wachses mit Meerwasser und Natron, Umschmelzen, Erstarrenlassen zu dünnen Scheiben und Bleichen dieser unter fortwährendem Anfeuchten an der Sonne. Er kennt die medizinische Anwendung auch der πρόπολις, von der aber nur die gelbe, styraxartig riechende, wie _Mastix_ knetbare benutzt werden soll. ~Plinius~ (XI, 5), der für die Waben den Ausdruck cellula braucht (jetzt übertragen auf die «Zelle»), erwähnt außer cera die commosis (Gummigrund), Harzwachs (pissoceros) und Stopfwachs (propolis), dessen Bedeutung er richtig schildert -- sowie das Bienenbrot (erithace, sandarace, cerinthus) und nennt als Quelle des melligo den klebrigen, gummigen und harzigen Saft der Weiden, Ulmen und Rohre, als Quelle der Propolis das Harz der Pappel und des Weinstocks unter Zusatz von Blütenstaub (flos). Er bemerkt: «ceras ex omnium arborum satorumque floribus confingunt, excepta rumice et echinopode». Außerdem nennt er cera maxime fulva, cretisches und corsicanisches und erwähnt das Färben mit Alcanna («Anchusa»). Auch ~Ovid~ erwähnt _Cera flava_ (~Flückiger~). ~Galen~ kennt die Verwendung des Wachses zu kühlenden Pflastern. Auch die Araber erwähnen es (bei ~Ibn Baithar~: schama und mum) als Pflasterbestandteil. -- In dem Bericht der Bischöfe ~Richard~ und ~Thomas~ (1303 bzw. 1310) wird auch Cere nebst dem Preise erwähnt (~Hanbury~, The spices, groceries and wax of a mediaeval household. Science pap. 478) und ~John de Garlande~ (XIII. Jahrh.) erwähnt die schon damals häufigste Verfälschung mit «cereis esclesiasticis», d. h. einer Talg-Wachsmischung. Im Ricettario fiorentino ist Wachs von Toscana erwähnt. Die Unguenta der alten Dispensatorien enthielten meist ein Adeps und Öl, oft auch Wachs. ~Cordus~ hat z. B. _Cera citrina_ und _fulva_. ~Pomet~ nennt 1694 neben Frankreich (bes. der Champagne, Bretagne) Polen und «La Barbarie» als wachsliefernd und bezeichnet besonders das Wachs von Danzig als gut. In der Taxe von Prag 1659 steht Cera alba Veneta -- die Wachsbleicherei wurde im XVII. Jahrh. (und wohl auch schon im XVI.) besonders in Venedig betrieben. ~Plinius~ und ~Celsus~ (De medic. V, 3, 4) erwähnen Propolis, ebenso ~Varro~ (De re rustica III, 16, 23), ~Vegetus~ u. and. ~Virgil~ nennt den Namen nicht, erwähnt es aber auch. _Propoli_ steht bei ~Cordus~ in den Annotationes ad Dioscoridem und in der Frankfurter Liste (1450): propoleos uel on. Von ihm sagt ~Pomet~, daß es ehedem viel gebraucht wurde, man aber jetzt (1694) kaum mehr wisse was es eigentlich sei. Als Arzneimittel ist es längst außer Gebrauch. Chinesisches Insektenwachs. Pelawachs, Pihla, Pe-la-or, Latschu, Chung-pih-la (= weißes Insektenwachs, das rohe Wachs heißt lă-tscha = Wachs-Sediment), vegetabilisches Spermacet, chines. Baumwachs, Cire d’insectes, Insect wax, White wax of insects, Chinese wax, Chinese vegetable wax, Cera d’insetti. Das chines. Wachs ist das Produkt einer Schildlaus, =Coccus ceriferus= ~Fabr.~ (_C. pela_ ~Westw.~, pe-lah chines. = weißes Wachs, _C. cereus_ ~Walk.~, _Ericerus ceriferus_ ~Guer. Mén.~, _E. pe-la_ ~Künck.~), die auf verschiedenen Bäumen Chinas, besonders auf _Ligustrum lucidum_, im Tale Tschien-Tschang lebt. Man überträgt aber das Tier in Schantung, Honan, Tschekiang, Szetschwan, Anhwei auf am Rande der Felder kultivierte, etwa dreijährige Eschen (_Fraxinus chinensis_ ~Roxb.~), löst, sobald die Wachsproduktion ihren Höhepunkt erreicht hat, die Rinde von den Bäumen, erwärmt sie in eisernen Töpfen mit Wasser und schöpft das Wachs ab, das dann umgeschmolzen wird. Hauptproduktionsgegend ist Chiating in der Provinz Szetschwan. Die jährliche Produktion beträgt c. 200000 kg Wachs, früher beträchtlich mehr. Aber die Produktion und der Preis sind seit Einführung des Petroleums stark zurückgegangen. Nur in der Provinz Anhwei und im Distrikt Pochou und der Provinz Tschekiang hat Produktion und Handel mit diesem Wachs nicht merklich abgenommen (1900). Nach der Stadt Kiu-hua wurden 1887 gegen 300 t gebracht (~Semler~). Hauptdistrikte sind die Provinzen Szetschwan, Anhwei und Tschekiang, aber auch in Hainan, Kwangtung, Hunan, Schantung und selbst im Amurgebiet wird Wachs gewonnen. [Illustration: Fig. 237. Der Wachsbaum und sein Insekt nach einer Darstellung im Pen Tsʿao Kang Mu (I, S. 518). Die Schriftzeichen links oben bedeuten Chung-la (= Insektenwachs), die darunter stehenden Lă-chŭng (= Wachssame, die Cocons des Insektes auch la-tsze = Wachssohn), die in der Ecke rechts unten Tung-tsing-shoo (= Wintergrünbaum), die großen am Rande rechts Chŭng-pih-lă (= weißes Insektenwachs). [Aus +Hanbury+, Science papers.]] Das Wachs ist dem Walrat ähnlich, kristallinisch, fast geruch- und geschmacklos oder mit schwachem Talggeruch, weiß bis gelblich. Es kommt in großen runden Broten in den Handel. Das Wachs wird in China zur Kerzenfabrikation und zum Haarsteifen, aber auch zum Einhüllen von Pillen und Boli (ich traf 1889 damit überzogene Boli in chinesischen Apotheken), sowie für Pflaster und zum Wachsen von Papier und Baumwolle benutzt. In England wird es bisweilen dem Walrat beigemischt. Es löst sich in siedendem Chloroform und Tetrachlorkohlenstoff leicht und kristallisiert beim Erkalten wieder aus. In Alkohol ist es auch beim Kochen sehr wenig löslich; desgleichen in Äther und Petroläther. Es ist sehr schwer verseifbar. Spez. Gew. bei 15°: 0,970, Schmelzpunkt: 81-83°, Erstarrungspunkt: 80,5-81, V. Z.: 63-93. «Chines. Wachs» zeigte (~G. Buchner~): S. Z. 6,28-9,74, Ätherzahl 83,82-111,45, V. Z. 90,2-120,17, Verhältniszahl 11,06-17,9. Es besteht nach ~Brodie~ aus fast reinem Cerotinsäurecerylester (C₅₂H₁₀₄O₂), d. h. dem Ester der Cerotinsäure (C₂₆H₅₂O₂ ~Henriques~) und dem Cerylalkohol (C₂₆H₅₃OH ~Henriques~). Nach ~Herbig~ ist das Vorhandensein einer zweiten hochmolekularen Säure, einer niedrigen Säure und eines zweiten Alkohols wahrscheinlich. Ein Teil des chinesischen Wachses stammt von einer Minicicade, _Flata limbata_, die lange, dünne, weiße Wachsfäden in so großer Masse ausschwitzt, daß der ganze Hinterleib davon bedeckt ist. In Japan sammelt man das von einer Schildlaus auf _Ligustrum Ibota_ ausgeschiedene Wachs. =Lit.= ~Hanbury~, On the Insect-White Wax of China. Science pap. 60 u. Note of a spec. of insect wax from China. Ebenda 272 (dort die weitere Literatur). -- ~Beauregard~, Mat. med. zool. 1901. -- ~Hosie~, Seifensiederzeit. 1910, 1253 (nach Three Years in Western Chine). -- ~Semler~, Trop. Agrikultur. -- Chem. Rev. 1897, 290. -- ~Brodie~, Lieb. Ann. 67 (1848), 199. -- ~Henriques~, Ber. d. chem. Ges. 30, 1415. -- ~Benedikt-Ulzer~ a. a. O. (dort weit. Lit.). Zusätze und Berichtigungen zu Band II. Erste Abteilung. S. 7. Zeile 1: CH₂OH nicht CH₂CH. -- Bei d-Fructose: α_{D} = -91° statt α_{D} = c - 91°. S. 12. Honig enthält neben Katalase und Diastase auch ein eiweißlösendes Enzym (~Lenz~ 1910). S. 19. _Verbascum_ wird auch in Schweighausen bei Hagenau cultiviert (~Rosenthaler~). S. 26. Die Fig. 7, von ~Tiedemann~ als «kleinasiatischer Feigenbaum» bezeichnet, ist +nicht+ _Ficus Carica_. Dementsprechend ist die Bemerkung auf S. 24, Zeile 8 v. u., daß bei _Ficus Carica_ +Cauliflorie+ vorkommt, zu streichen. Über die neue Abstammungslehre der Feigen und besonders die Urfeige (_Ficus Carica_ [L] Erinosyce ~Tsch.~ et ~Rav.~) vgl. ~Tschirch~, die Feigenbäume Italiens, Ber. d. d. Bot. Ges. 1911, sowie die gleichlautende Dissertation von ~Ravasini~, Bern, ~M. Drechsel~ 1912 (mit zahlr. Abbildungen). S. 27. Parthenogenesis kommt bei der Feige nicht vor. Über die Caprification vgl. bei ~Ravasini~ a. a. O. S. 39. Die Fig. 13 ist in den Grandes cultures als «Rosinenmarkt» bezeichnet. Es beruht dies auf einer Verwechslung von Rosin (= Colophonium) und Rosine. Die Figur gehört also nicht hierher, sondern zum Artikel Colophonium. S. 56. Zeile 27 v. o. statt Amygdalin: Sambunigrin (~Rosenthaler~). S. 89. Zeile 3 v. u. glycyrrhizinreicher. S. 132. Dem Artikel Tabaschir habe ich, trotz der Gegenbemerkungen von ~Hosseus~ nichts hinzuzufügen. Rohrzuckerfabrikation ist erst seit dem III. bez. VII. Jahrh. n. Ch. beglaubigt (~Lippmann~). S. 137, Zeile 5 v. o. Es ist möglich, daß κερωνία nichts mit κέρας (= Horn) zu tun hat, sondern den «keronischen Feigenbaum» bezeichnen sollte. S. 154. Die Amylose scheint ein Übergangsprodukt von den kristallisierenden Sacchariden zu den komplexen Polysacchariden zu sein (~Botazzi~ und ~Victorow~ 1910). S. 155. Auch Narcein wird durch Jod blau. S. 165. ~Wittmack~ betrachtet (1909) _Solanum tuberosum_ L. als gute Art und als Stammpflanze unserer Kartoffel. S. 170. _Amylum Marantae_ wurde in Deutschland besonders durch ~Olaw Swartz~ (Observat. botanicae Erlang. 1791) bekannt, doch bedient man sich seiner in Deutschland erst seit 1819 (~Dierbach~). S. 193. Als Verfälschung des Reis ist 1910 Talcum und Asbestpulver (?) beobachtet (~Lowe~ und ~Taylor~. Lancet 1910, 1687). S. 209. _Taraxacum_ wird in Jenalöbnitz auch angebaut. Die Ernte geht nach Nordamerika (1910). S. 219. Die jetzt in Nordamerika von Maine bis Maryland, Minnesota und Missouri vorkommende Quecke ist wahrscheinlich von Europa eingeführt (~Alice Henkel~). S. 241. Der Literatur ist einzufügen: ~Cross~, ~Bevan~, ~King~ und ~Joynson~, Rep. on Indian Fibres and fibrous substances. London 1887 und S. 242. ~Cross~ und ~Bevan~, Journ. chem. soc., Ber. d. d. chem. Ges. und Cellulose an outline of the chemistry of the structural elements of plants 1895-1906. S. 243. Erste Erwähnung der Baumwolle im VIII. Jahrh. n. Chr. auf einem Tonprisma Sanheribs (~Delitzsch~, 1910). S. 250. Zeile 10 v. u. 20-30% Nicht-Cellulose statt 50-60%. S. 270. Die schlechteste Sorte _Lichen islandicus_ besteht in Ungarn aus dem ganzen, vom Boden abgehobenen Rasen und enthält nur 25-40% der Flechte, sonst viel Moose, Coniferennadeln, Vaccinium u. and. (~Augustin~). S. 283. Literatur. Grundlegend ist die Arbeit von ~Schmidt~, Lieb. Ann. 51, 29 (Jahresb. d. Pharm. 1844, 14). S. 291. _Chondrus crispus_ enthält Arsen -- in 100 g: 0,07 mg (~Tassily~ und ~Leroide~). S. 300. Zeile 1 v. o. die Formel des Methylfurfurols ist: CH---CH || || CH₃C C.COH \ / O S. 302. Jod wies in Laminarien bereits ~Price~ 1851 (Journ. pr. Chem. 55, 232) mikrochemisch nach -- mittelst HCl und KNO₂ und Stärkekleister. S. 313. Zeile 19 v. u. chirurgisch statt chirurchisch. S. 322. Das Linamarin formuliert ~Jonck~: C₃₀H₅₀N₃O₇. S. 325. Zeile 1 v. o. Cruciferen statt Coniferen. S. 347. Zeile 3 v. u. Höfles statt Horles; Zeile 2 v. u. Gründlach statt Grundlach. S. 356. Auf den Marktplätzen in Budapest verkaufen die Marktweiber der umliegenden deutschen Ortschaften als «Eibisch» das Kraut von _Lavathera thuringiaca_, dessen sich auch die ungarischen Kurpfuscher bedienen (~Augustin~). S. 357. Zeile 18 v. o. Althaeablüten statt Althaeablätter. S. 363. Bei den _Fol. Althaeae_ und _Malvae_ ist auch der Arbeit von ~Netolitzky~, Bestimmungsschlüssel der Dikotyledonenblätter zu gedenken. S. 458. nhd. Kork wurde nach dem XV. Jahrh. durch niederländische Handelsbeziehungen aus span. corcho entlehnt. S. 479. Die bisweilen in russischem und galizischem _Lycopodium_ beobachtete Weizenstärke rührt wohl von den Getreidesäcken her, in die die Droge gefüllt wurde (~Augustin~). S. 487. Zeile 12 v. o. ~Wichers~ und ~Tollens~. S. 489. Überall Ebstorf statt Ebsdorf. S. 494. Hinzufügen: ~Rosenthaler~ und ~Türk~, Über die absorbierenden Eigenschaften verschiedener Kohlensorten. Arch. Pharm. 1906, 517. -- Zeile 2 v. u. ist «und Histidin» zu streichen. S. 495. Die Formeln lauten: CH₃\ Leucin = CH.CH₂.CH(NH₂).COOH. CH₃/ C.NH₂ CH / \\ / \\ ferner: HN NH HN N | | | CH₂.CH₂.CH₂.CH(NH₂).COOH. HC = C.CH₂.CH(NH₂).COOH Arginin Histidin S. 546. Zeile 26 v. o. Myristinsäure statt Myristicinsäure. S. 553. Zeile 19 v. o.: 1 Phase > C = C < + O₂ statt > C = < + O₂. S. 563. Zeile 32 v. o. lit. statt lat. S. 569. Mohnsamen wurden 1911 verfälscht gefunden mit Samen von _Hyoscyamus niger_ und Zucker (Journ. pharm. 1911, 72). Der russische enthielt (1910) meist die Samen der einjährigen Varietät von _Hyoscyamus agrestis_ (~Dégen~). S. 576. bei der Baudouinschen Reaktion wirkt w-Oxymethylfurfurol (~Rosenthaler~). S. 589. Fettes Senföl wird in riesigen Mengen in Indien als Speiseöl dargestellt (Tropenpfl. 1909, 413). S. 606. Zeile 17 v. u. Die Analyse von ~Rosenthaler~ und ~Schaeffer~ bezieht sich auf süße Aprikosenkerne von +Südfrankreich+ (Pharm. Centralh. 1911, Nr. 19). S. 612. Der Ertrag an Oliven betrug in Spanien 1909: 13982939, 1910: 6246189 dz an Öl 1909: 2397720, 1910: 1085088 dz; die mit Ölbäumen bepflanzte Fläche 1910: 1416122 ha. S. 620. ~Holde~ fand im Olivenöl: C₃H₅(C₁₇H₃₃O₂)₂C₁₈H₃₅O₂. S. 646 und 651 sowie Taf. XVII statt Browne überall Bowne. S. 682. Bei Myristicin und Myristicinsäure sind die 2 doppelten Bindungen einzutragen. S. 684. Zeile 3 v. o. ist hinzuzufügen: ~Thoms~, Constitut. d. Myristicins Arb. d. pharm. Inst. Berlin I, 18. * * * Bei der Bearbeitung bin ich in liebenswürdigster und verdankenswertester Weise von zahlreichen Kollegen und früheren Schülern unterstützt worden, mein treuster Mitarbeiter war aber meine Frau. Die pflanzlichen Schädlinge hat Prof. ~Ed. Fischer~ (Bern), die tierischen Apotheker ~Israël~ (Gera), die Taxen und 4 Karten (im I. Bande) Dr. ~Tunmann~ (Bern) bearbeitet. Alle Bogen hat Prof. ~von Lippmann~ (Halle), viele Prof. ~Tollens~ (Göttingen) in der Korrektur durchgelesen, einige Kapitel auch Direktor ~Bull~ (Bergen), Prof. ~T. F. Hanausek~ (Krems), Prof. ~Hartwich~ (Zürich) und Prof. ~Winterstein~ (Zürich), denen allen ich wertvolle Winke verdanke. Auskünfte verdanke ich ferner Prof. ~von Wisselingh~ (Groningen), Prof. ~Windaus~ (Freiburg i. B.), Dr. ~Ravasini~ (Rom), Dr. ~Emmanuel~ (Athen), Dr. ~Peckolt~ (Rio de Janeiro), Prof. ~Greenish~ (London), Prof. ~van der Wielen~ (Amsterdam), Dr. ~Greshoff~ (Haarlem), Dr. ~Senft~ (Prag), Medizinalrat ~Döll~ (Karlsruhe), Dr. ~Tisza~ (New York), Prof. ~Schröter~ (Zürich), Dr. ~Rosenberg~ (Liestal), ~Woldemar Ferrein~ (Moskau), Prof. ~Rikli~ (Zürich), Dr. ~Keller~ (Zürich), Prof. ~Otto Müller~ (Berlin), ~Schwarz~ (Nürnberg), ~Kraft~ (Würzburg), Prof. ~Morpurgo~ (Triest), ~J. Novák~ (Prag), Dr. ~Netolitzky~ (Czernowitz), Prof. ~Mitlacher~ (Wien), Prof. ~Rosenthaler~ (Straßburg), Prof. ~A. Forel~ (Yvorne), Dr. ~Augustin~ (Budapest), ~Wartmann~ (Biel), Prof. ~van Itallie~ (Leiden), Prof. ~Oesterle~ (Bern), ~F. Kundrát~ (Pilsen), ~E. Krarup~ (Odense, Dänemark), Prof. ~Rosendahl~ (Stockholm), ~Hausding~ (Cölleda), ~R. Schmid~ (Naumburg), ~A. Weber~ (Zehlendorf) und den Drogenhäusern und Fabriken von ~Caesar-Loretz~ (Halle), ~Fritz~ (Wien), ~Gehe & Co.~ (Dresden), ~Grossmann~ (Hamburg), ~Siegfried~ (Zofingen), ~Schimmel & Co.~ (Miltitz), Norddeutsche Wollkämmerei (Delmenhorst), sowie zahlreichen deutschen Konsulaten des Auslandes. +Philologisch-historischen+ Rat empfing ich von Prof. ~Seybold~ (Tübingen), Prof. ~Marti~ (Bern), Dr. ~Oefele~ (Neuenahr), Prof. ~Müller-Hess~ (Bern), Dr. ~Dorveaux~ (Paris), Prof. ~Lotmar~ (Bern). +Abbildungen+ verdanke ich in erster Linie dem +Koloniaal Museum+ Haarlem (Dr. ~Greshoff~ und Dr. ~Dekker~), ~Stafford Allen and Sons~ (Long Melford), Dr. ~Tunmann~ (Bern), ~Wellcome~ brothrs. (London-Khartum), ~Roure-Bertrand~ (Grasse), Prof. ~van der Wielen~ (Amsterdam) und Prof. ~Perrot~ von der Ecole supér. de pharmacie in Paris; dann Prof. ~Hartwich~ (Zürich), Dr. ~Marloth~ (Kapstadt), Dr. ~Hooper~ (Kalkutta), Dr. ~Ravasini~ (Rom), Dr. ~Weigel~ (Hamburg), ~Bull~ (Bergen), Dr. ~Svendsen~ (Kristiania), Prof. ~Benedicenti~ (Genua), ~MacEwan~ Editor of the Chemist and Druggist (London), Prof. ~Moeller~ (Wien), Dr. ~Hällström~ (Helsingfors), Dr. ~Businger~ (Zürich), Dr. ~Kramer~ (Zürich), ~Scott~ und ~Bowne~ (Frankfurt a/M.), sowie zahlreichen Zeitschriften, Hand- und Lehrbüchern. Das +Kew-Museum+ hat mir die photographische Aufnahme zahlreicher Objekte gestattet und Prof. ~Greenish~ hatte die Güte, viele derselben aufzunehmen. Zahlreiche photographische Aufnahmen hat in meinem Institute auch Prof. ~Oesterle~ gemacht. Druck von Poeschel & Trepte in Leipzig *** END OF THE PROJECT GUTENBERG EBOOK HANDBUCH DER PHARMAKOGNOSIE *** Updated editions will replace the previous one—the old editions will be renamed. Creating the works from print editions not protected by U.S. copyright law means that no one owns a United States copyright in these works, so the Foundation (and you!) can copy and distribute it in the United States without permission and without paying copyright royalties. Special rules, set forth in the General Terms of Use part of this license, apply to copying and distributing Project Gutenberg™ electronic works to protect the PROJECT GUTENBERG™ concept and trademark. Project Gutenberg is a registered trademark, and may not be used if you charge for an eBook, except by following the terms of the trademark license, including paying royalties for use of the Project Gutenberg trademark. If you do not charge anything for copies of this eBook, complying with the trademark license is very easy. 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It exists because of the efforts of hundreds of volunteers and donations from people in all walks of life. Volunteers and financial support to provide volunteers with the assistance they need are critical to reaching Project Gutenberg™’s goals and ensuring that the Project Gutenberg™ collection will remain freely available for generations to come. In 2001, the Project Gutenberg Literary Archive Foundation was created to provide a secure and permanent future for Project Gutenberg™ and future generations. To learn more about the Project Gutenberg Literary Archive Foundation and how your efforts and donations can help, see Sections 3 and 4 and the Foundation information page at www.gutenberg.org. Section 3. Information about the Project Gutenberg Literary Archive Foundation The Project Gutenberg Literary Archive Foundation is a non-profit 501(c)(3) educational corporation organized under the laws of the state of Mississippi and granted tax exempt status by the Internal Revenue Service. The Foundation’s EIN or federal tax identification number is 64-6221541. Contributions to the Project Gutenberg Literary Archive Foundation are tax deductible to the full extent permitted by U.S. federal laws and your state’s laws. The Foundation’s business office is located at 809 North 1500 West, Salt Lake City, UT 84116, (801) 596-1887. Email contact links and up to date contact information can be found at the Foundation’s website and official page at www.gutenberg.org/contact Section 4. Information about Donations to the Project Gutenberg Literary Archive Foundation Project Gutenberg™ depends upon and cannot survive without widespread public support and donations to carry out its mission of increasing the number of public domain and licensed works that can be freely distributed in machine-readable form accessible by the widest array of equipment including outdated equipment. Many small donations ($1 to $5,000) are particularly important to maintaining tax exempt status with the IRS. The Foundation is committed to complying with the laws regulating charities and charitable donations in all 50 states of the United States. Compliance requirements are not uniform and it takes a considerable effort, much paperwork and many fees to meet and keep up with these requirements. We do not solicit donations in locations where we have not received written confirmation of compliance. To SEND DONATIONS or determine the status of compliance for any particular state visit www.gutenberg.org/donate. While we cannot and do not solicit contributions from states where we have not met the solicitation requirements, we know of no prohibition against accepting unsolicited donations from donors in such states who approach us with offers to donate. 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